ES2206407T3 - Revestimiento proteico. - Google Patents
Revestimiento proteico.Info
- Publication number
- ES2206407T3 ES2206407T3 ES01910206T ES01910206T ES2206407T3 ES 2206407 T3 ES2206407 T3 ES 2206407T3 ES 01910206 T ES01910206 T ES 01910206T ES 01910206 T ES01910206 T ES 01910206T ES 2206407 T3 ES2206407 T3 ES 2206407T3
- Authority
- ES
- Spain
- Prior art keywords
- solution
- coating
- implant
- protein
- calcium
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Expired - Lifetime
Links
- 238000000576 coating method Methods 0.000 title claims abstract description 63
- 239000011248 coating agent Substances 0.000 title claims abstract description 57
- 102000004169 proteins and genes Human genes 0.000 title claims abstract description 50
- 108090000623 proteins and genes Proteins 0.000 title claims abstract description 50
- 239000000243 solution Substances 0.000 claims abstract description 78
- 239000007943 implant Substances 0.000 claims abstract description 58
- 238000000034 method Methods 0.000 claims abstract description 41
- 239000002253 acid Substances 0.000 claims abstract description 20
- NBIIXXVUZAFLBC-UHFFFAOYSA-K phosphate Chemical compound [O-]P([O-])([O-])=O NBIIXXVUZAFLBC-UHFFFAOYSA-K 0.000 claims abstract description 20
- OYPRJOBELJOOCE-UHFFFAOYSA-N Calcium Chemical compound [Ca] OYPRJOBELJOOCE-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims abstract description 17
- 239000011575 calcium Substances 0.000 claims abstract description 17
- 229910052791 calcium Inorganic materials 0.000 claims abstract description 17
- FYYHWMGAXLPEAU-UHFFFAOYSA-N Magnesium Chemical compound [Mg] FYYHWMGAXLPEAU-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims abstract description 13
- 239000011777 magnesium Substances 0.000 claims abstract description 13
- 229910052749 magnesium Inorganic materials 0.000 claims abstract description 13
- 239000007864 aqueous solution Substances 0.000 claims abstract description 7
- 238000007872 degassing Methods 0.000 claims abstract description 4
- 235000018102 proteins Nutrition 0.000 claims description 48
- CURLTUGMZLYLDI-UHFFFAOYSA-N Carbon dioxide Chemical compound O=C=O CURLTUGMZLYLDI-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 42
- 229910002092 carbon dioxide Inorganic materials 0.000 claims description 21
- 210000000988 bone and bone Anatomy 0.000 claims description 13
- 239000003352 sequestering agent Substances 0.000 claims description 12
- 239000001569 carbon dioxide Substances 0.000 claims description 11
- 239000003795 chemical substances by application Substances 0.000 claims description 10
- BVKZGUZCCUSVTD-UHFFFAOYSA-L Carbonate Chemical compound [O-]C([O-])=O BVKZGUZCCUSVTD-UHFFFAOYSA-L 0.000 claims description 7
- 230000002378 acidificating effect Effects 0.000 claims description 7
- 230000033558 biomineral tissue development Effects 0.000 claims description 5
- 239000000919 ceramic Substances 0.000 claims description 4
- 239000008139 complexing agent Substances 0.000 claims description 3
- 230000014759 maintenance of location Effects 0.000 claims description 3
- 108010088751 Albumins Proteins 0.000 claims description 2
- 102000009027 Albumins Human genes 0.000 claims description 2
- 108010076119 Caseins Proteins 0.000 claims description 2
- 229920001661 Chitosan Polymers 0.000 claims description 2
- KCXVZYZYPLLWCC-UHFFFAOYSA-N EDTA Chemical group OC(=O)CN(CC(O)=O)CCN(CC(O)=O)CC(O)=O KCXVZYZYPLLWCC-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 2
- 102000009123 Fibrin Human genes 0.000 claims description 2
- 108010073385 Fibrin Proteins 0.000 claims description 2
- BWGVNKXGVNDBDI-UHFFFAOYSA-N Fibrin monomer Chemical compound CNC(=O)CNC(=O)CN BWGVNKXGVNDBDI-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 2
- 102000016359 Fibronectins Human genes 0.000 claims description 2
- 108010067306 Fibronectins Proteins 0.000 claims description 2
- 108010010803 Gelatin Proteins 0.000 claims description 2
- JLVVSXFLKOJNIY-UHFFFAOYSA-N Magnesium ion Chemical compound [Mg+2] JLVVSXFLKOJNIY-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 2
- 108010039918 Polylysine Proteins 0.000 claims description 2
- 239000005018 casein Substances 0.000 claims description 2
- BECPQYXYKAMYBN-UHFFFAOYSA-N casein, tech. Chemical compound NCCCCC(C(O)=O)N=C(O)C(CC(O)=O)N=C(O)C(CCC(O)=N)N=C(O)C(CC(C)C)N=C(O)C(CCC(O)=O)N=C(O)C(CC(O)=O)N=C(O)C(CCC(O)=O)N=C(O)C(C(C)O)N=C(O)C(CCC(O)=N)N=C(O)C(CCC(O)=N)N=C(O)C(CCC(O)=N)N=C(O)C(CCC(O)=O)N=C(O)C(CCC(O)=O)N=C(O)C(COP(O)(O)=O)N=C(O)C(CCC(O)=N)N=C(O)C(N)CC1=CC=CC=C1 BECPQYXYKAMYBN-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 2
- 235000021240 caseins Nutrition 0.000 claims description 2
- 229950003499 fibrin Drugs 0.000 claims description 2
- 229920000159 gelatin Polymers 0.000 claims description 2
- 239000008273 gelatin Substances 0.000 claims description 2
- 235000019322 gelatine Nutrition 0.000 claims description 2
- 235000011852 gelatine desserts Nutrition 0.000 claims description 2
- 229910001425 magnesium ion Inorganic materials 0.000 claims description 2
- 108010077051 polycysteine Proteins 0.000 claims description 2
- 229920000656 polylysine Polymers 0.000 claims description 2
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 claims 2
- BHPQYMZQTOCNFJ-UHFFFAOYSA-N Calcium cation Chemical compound [Ca+2] BHPQYMZQTOCNFJ-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims 1
- 102000016943 Muramidase Human genes 0.000 claims 1
- 108010014251 Muramidase Proteins 0.000 claims 1
- 108010062010 N-Acetylmuramoyl-L-alanine Amidase Proteins 0.000 claims 1
- 230000015572 biosynthetic process Effects 0.000 claims 1
- 229910001424 calcium ion Inorganic materials 0.000 claims 1
- 229940071106 ethylenediaminetetraacetate Drugs 0.000 claims 1
- 239000004325 lysozyme Substances 0.000 claims 1
- 229960000274 lysozyme Drugs 0.000 claims 1
- 235000010335 lysozyme Nutrition 0.000 claims 1
- 108010054442 polyalanine Proteins 0.000 claims 1
- 230000002308 calcification Effects 0.000 description 33
- 239000013078 crystal Substances 0.000 description 29
- 239000007789 gas Substances 0.000 description 22
- QORWJWZARLRLPR-UHFFFAOYSA-H tricalcium bis(phosphate) Chemical class [Ca+2].[Ca+2].[Ca+2].[O-]P([O-])([O-])=O.[O-]P([O-])([O-])=O QORWJWZARLRLPR-UHFFFAOYSA-H 0.000 description 20
- 239000001506 calcium phosphate Substances 0.000 description 17
- 235000011010 calcium phosphates Nutrition 0.000 description 17
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Substances O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 16
- 229910000389 calcium phosphate Inorganic materials 0.000 description 14
- 235000001465 calcium Nutrition 0.000 description 12
- 230000006911 nucleation Effects 0.000 description 12
- 238000010899 nucleation Methods 0.000 description 12
- 229910019142 PO4 Inorganic materials 0.000 description 11
- 229910010293 ceramic material Inorganic materials 0.000 description 11
- 235000021317 phosphate Nutrition 0.000 description 11
- 239000010452 phosphate Substances 0.000 description 11
- 239000000758 substrate Substances 0.000 description 11
- 229910052500 inorganic mineral Inorganic materials 0.000 description 7
- 239000011707 mineral Substances 0.000 description 7
- 230000007935 neutral effect Effects 0.000 description 7
- CSCPPACGZOOCGX-UHFFFAOYSA-N Acetone Chemical compound CC(C)=O CSCPPACGZOOCGX-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 6
- 230000003592 biomimetic effect Effects 0.000 description 6
- 230000005587 bubbling Effects 0.000 description 6
- 238000004090 dissolution Methods 0.000 description 6
- -1 hydrofluoric acids Chemical class 0.000 description 6
- 230000001965 increasing effect Effects 0.000 description 6
- 239000000463 material Substances 0.000 description 6
- 229910052751 metal Inorganic materials 0.000 description 6
- 239000002184 metal Substances 0.000 description 6
- 150000003839 salts Chemical class 0.000 description 6
- 229910052588 hydroxylapatite Inorganic materials 0.000 description 5
- 150000002500 ions Chemical class 0.000 description 5
- XYJRXVWERLGGKC-UHFFFAOYSA-D pentacalcium;hydroxide;triphosphate Chemical compound [OH-].[Ca+2].[Ca+2].[Ca+2].[Ca+2].[Ca+2].[O-]P([O-])([O-])=O.[O-]P([O-])([O-])=O.[O-]P([O-])([O-])=O XYJRXVWERLGGKC-UHFFFAOYSA-D 0.000 description 5
- 238000001556 precipitation Methods 0.000 description 5
- 229910052586 apatite Inorganic materials 0.000 description 4
- KBQXDPRNSDVNLB-UHFFFAOYSA-L calcium;carbonic acid;hydrogen phosphate Chemical compound [Ca+2].OC(O)=O.OP([O-])([O-])=O KBQXDPRNSDVNLB-UHFFFAOYSA-L 0.000 description 4
- VSIIXMUUUJUKCM-UHFFFAOYSA-D pentacalcium;fluoride;triphosphate Chemical compound [F-].[Ca+2].[Ca+2].[Ca+2].[Ca+2].[Ca+2].[O-]P([O-])([O-])=O.[O-]P([O-])([O-])=O.[O-]P([O-])([O-])=O VSIIXMUUUJUKCM-UHFFFAOYSA-D 0.000 description 4
- 239000000126 substance Substances 0.000 description 4
- 238000011282 treatment Methods 0.000 description 4
- OKTJSMMVPCPJKN-UHFFFAOYSA-N Carbon Chemical compound [C] OKTJSMMVPCPJKN-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N Ethanol Chemical compound CCO LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- KRHYYFGTRYWZRS-UHFFFAOYSA-N Fluorane Chemical class F KRHYYFGTRYWZRS-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- 230000000975 bioactive effect Effects 0.000 description 3
- 229910052799 carbon Inorganic materials 0.000 description 3
- 239000012530 fluid Substances 0.000 description 3
- 238000001727 in vivo Methods 0.000 description 3
- 239000000203 mixture Substances 0.000 description 3
- 239000011148 porous material Substances 0.000 description 3
- 239000002244 precipitate Substances 0.000 description 3
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 description 3
- 238000004381 surface treatment Methods 0.000 description 3
- 210000001519 tissue Anatomy 0.000 description 3
- 239000010936 titanium Substances 0.000 description 3
- 238000002604 ultrasonography Methods 0.000 description 3
- 108091003079 Bovine Serum Albumin Proteins 0.000 description 2
- 238000005033 Fourier transform infrared spectroscopy Methods 0.000 description 2
- DHMQDGOQFOQNFH-UHFFFAOYSA-N Glycine Chemical compound NCC(O)=O DHMQDGOQFOQNFH-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- VEXZGXHMUGYJMC-UHFFFAOYSA-N Hydrochloric acid Chemical compound Cl VEXZGXHMUGYJMC-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- MHAJPDPJQMAIIY-UHFFFAOYSA-N Hydrogen peroxide Chemical compound OO MHAJPDPJQMAIIY-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- PXHVJJICTQNCMI-UHFFFAOYSA-N Nickel Chemical compound [Ni] PXHVJJICTQNCMI-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- GRYLNZFGIOXLOG-UHFFFAOYSA-N Nitric acid Chemical compound O[N+]([O-])=O GRYLNZFGIOXLOG-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 229910001069 Ti alloy Inorganic materials 0.000 description 2
- MCMNRKCIXSYSNV-UHFFFAOYSA-N Zirconium dioxide Chemical compound O=[Zr]=O MCMNRKCIXSYSNV-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 150000007513 acids Chemical class 0.000 description 2
- 235000001014 amino acid Nutrition 0.000 description 2
- 229940024606 amino acid Drugs 0.000 description 2
- 150000001413 amino acids Chemical class 0.000 description 2
- 239000011230 binding agent Substances 0.000 description 2
- 210000004027 cell Anatomy 0.000 description 2
- 238000010668 complexation reaction Methods 0.000 description 2
- 239000000356 contaminant Substances 0.000 description 2
- 230000008021 deposition Effects 0.000 description 2
- 239000003966 growth inhibitor Substances 0.000 description 2
- 238000007654 immersion Methods 0.000 description 2
- 238000000338 in vitro Methods 0.000 description 2
- 230000001939 inductive effect Effects 0.000 description 2
- 239000011159 matrix material Substances 0.000 description 2
- 150000002739 metals Chemical class 0.000 description 2
- 229910017604 nitric acid Inorganic materials 0.000 description 2
- 230000000399 orthopedic effect Effects 0.000 description 2
- 239000000843 powder Substances 0.000 description 2
- 238000004626 scanning electron microscopy Methods 0.000 description 2
- 239000011734 sodium Substances 0.000 description 2
- 230000009772 tissue formation Effects 0.000 description 2
- 229910052719 titanium Inorganic materials 0.000 description 2
- MTCFGRXMJLQNBG-REOHCLBHSA-N (2S)-2-Amino-3-hydroxypropansäure Chemical compound OC[C@H](N)C(O)=O MTCFGRXMJLQNBG-REOHCLBHSA-N 0.000 description 1
- BVKZGUZCCUSVTD-UHFFFAOYSA-M Bicarbonate Chemical compound OC([O-])=O BVKZGUZCCUSVTD-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 1
- 101100283604 Caenorhabditis elegans pigk-1 gene Proteins 0.000 description 1
- ZAMOUSCENKQFHK-UHFFFAOYSA-N Chlorine atom Chemical compound [Cl] ZAMOUSCENKQFHK-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- VYZAMTAEIAYCRO-UHFFFAOYSA-N Chromium Chemical compound [Cr] VYZAMTAEIAYCRO-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 239000004471 Glycine Substances 0.000 description 1
- DGAQECJNVWCQMB-PUAWFVPOSA-M Ilexoside XXIX Chemical compound C[C@@H]1CC[C@@]2(CC[C@@]3(C(=CC[C@H]4[C@]3(CC[C@@H]5[C@@]4(CC[C@@H](C5(C)C)OS(=O)(=O)[O-])C)C)[C@@H]2[C@]1(C)O)C)C(=O)O[C@H]6[C@@H]([C@H]([C@@H]([C@H](O6)CO)O)O)O.[Na+] DGAQECJNVWCQMB-PUAWFVPOSA-M 0.000 description 1
- XUJNEKJLAYXESH-REOHCLBHSA-N L-Cysteine Chemical compound SC[C@H](N)C(O)=O XUJNEKJLAYXESH-REOHCLBHSA-N 0.000 description 1
- ONIBWKKTOPOVIA-BYPYZUCNSA-N L-Proline Chemical compound OC(=O)[C@@H]1CCCN1 ONIBWKKTOPOVIA-BYPYZUCNSA-N 0.000 description 1
- QNAYBMKLOCPYGJ-REOHCLBHSA-N L-alanine Chemical compound C[C@H](N)C(O)=O QNAYBMKLOCPYGJ-REOHCLBHSA-N 0.000 description 1
- CKLJMWTZIZZHCS-REOHCLBHSA-N L-aspartic acid Chemical compound OC(=O)[C@@H](N)CC(O)=O CKLJMWTZIZZHCS-REOHCLBHSA-N 0.000 description 1
- ZDXPYRJPNDTMRX-VKHMYHEASA-N L-glutamine Chemical compound OC(=O)[C@@H](N)CCC(N)=O ZDXPYRJPNDTMRX-VKHMYHEASA-N 0.000 description 1
- AGPKZVBTJJNPAG-WHFBIAKZSA-N L-isoleucine Chemical compound CC[C@H](C)[C@H](N)C(O)=O AGPKZVBTJJNPAG-WHFBIAKZSA-N 0.000 description 1
- ROHFNLRQFUQHCH-YFKPBYRVSA-N L-leucine Chemical compound CC(C)C[C@H](N)C(O)=O ROHFNLRQFUQHCH-YFKPBYRVSA-N 0.000 description 1
- FFEARJCKVFRZRR-BYPYZUCNSA-N L-methionine Chemical compound CSCC[C@H](N)C(O)=O FFEARJCKVFRZRR-BYPYZUCNSA-N 0.000 description 1
- KZSNJWFQEVHDMF-BYPYZUCNSA-N L-valine Chemical compound CC(C)[C@H](N)C(O)=O KZSNJWFQEVHDMF-BYPYZUCNSA-N 0.000 description 1
- ROHFNLRQFUQHCH-UHFFFAOYSA-N Leucine Natural products CC(C)CC(N)C(O)=O ROHFNLRQFUQHCH-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- ZOKXTWBITQBERF-UHFFFAOYSA-N Molybdenum Chemical compound [Mo] ZOKXTWBITQBERF-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- RSPISYXLHRIGJD-UHFFFAOYSA-N OOOO Chemical class OOOO RSPISYXLHRIGJD-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 208000012868 Overgrowth Diseases 0.000 description 1
- 239000002202 Polyethylene glycol Substances 0.000 description 1
- ONIBWKKTOPOVIA-UHFFFAOYSA-N Proline Natural products OC(=O)C1CCCN1 ONIBWKKTOPOVIA-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- MTCFGRXMJLQNBG-UHFFFAOYSA-N Serine Natural products OCC(N)C(O)=O MTCFGRXMJLQNBG-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 229910004298 SiO 2 Inorganic materials 0.000 description 1
- FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M Sodium chloride Chemical class [Na+].[Cl-] FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 1
- RTAQQCXQSZGOHL-UHFFFAOYSA-N Titanium Chemical compound [Ti] RTAQQCXQSZGOHL-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- KZSNJWFQEVHDMF-UHFFFAOYSA-N Valine Natural products CC(C)C(N)C(O)=O KZSNJWFQEVHDMF-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 238000002441 X-ray diffraction Methods 0.000 description 1
- QCWXUUIWCKQGHC-UHFFFAOYSA-N Zirconium Chemical compound [Zr] QCWXUUIWCKQGHC-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 239000003929 acidic solution Substances 0.000 description 1
- 230000002411 adverse Effects 0.000 description 1
- 235000004279 alanine Nutrition 0.000 description 1
- 125000000217 alkyl group Chemical group 0.000 description 1
- 125000005233 alkylalcohol group Chemical group 0.000 description 1
- PNEYBMLMFCGWSK-UHFFFAOYSA-N aluminium oxide Inorganic materials [O-2].[O-2].[O-2].[Al+3].[Al+3] PNEYBMLMFCGWSK-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 125000000539 amino acid group Chemical group 0.000 description 1
- 125000003277 amino group Chemical group 0.000 description 1
- 239000003242 anti bacterial agent Substances 0.000 description 1
- 229940088710 antibiotic agent Drugs 0.000 description 1
- 238000011882 arthroplasty Methods 0.000 description 1
- 235000003704 aspartic acid Nutrition 0.000 description 1
- OQFSQFPPLPISGP-UHFFFAOYSA-N beta-carboxyaspartic acid Natural products OC(=O)C(N)C(C(O)=O)C(O)=O OQFSQFPPLPISGP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 239000012867 bioactive agent Substances 0.000 description 1
- 229940088623 biologically active substance Drugs 0.000 description 1
- 239000000316 bone substitute Substances 0.000 description 1
- 235000020682 bottled natural mineral water Nutrition 0.000 description 1
- 239000012888 bovine serum Substances 0.000 description 1
- 229940098773 bovine serum albumin Drugs 0.000 description 1
- 229910000394 calcium triphosphate Inorganic materials 0.000 description 1
- MWKXCSMICWVRGW-UHFFFAOYSA-N calcium;phosphane Chemical compound P.[Ca] MWKXCSMICWVRGW-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 125000004432 carbon atom Chemical group C* 0.000 description 1
- 150000001768 cations Chemical class 0.000 description 1
- 238000005524 ceramic coating Methods 0.000 description 1
- 239000003153 chemical reaction reagent Substances 0.000 description 1
- 239000000460 chlorine Substances 0.000 description 1
- 229910052801 chlorine Inorganic materials 0.000 description 1
- 229910052804 chromium Inorganic materials 0.000 description 1
- 239000011651 chromium Substances 0.000 description 1
- 229910017052 cobalt Inorganic materials 0.000 description 1
- 239000010941 cobalt Substances 0.000 description 1
- GUTLYIVDDKVIGB-UHFFFAOYSA-N cobalt atom Chemical compound [Co] GUTLYIVDDKVIGB-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 239000003086 colorant Substances 0.000 description 1
- 230000000536 complexating effect Effects 0.000 description 1
- 229920001577 copolymer Polymers 0.000 description 1
- 238000002425 crystallisation Methods 0.000 description 1
- 230000008025 crystallization Effects 0.000 description 1
- XUJNEKJLAYXESH-UHFFFAOYSA-N cysteine Natural products SCC(N)C(O)=O XUJNEKJLAYXESH-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 235000018417 cysteine Nutrition 0.000 description 1
- 230000003247 decreasing effect Effects 0.000 description 1
- 239000013527 degreasing agent Substances 0.000 description 1
- 238000005115 demineralization Methods 0.000 description 1
- 230000002328 demineralizing effect Effects 0.000 description 1
- 238000004925 denaturation Methods 0.000 description 1
- 230000036425 denaturation Effects 0.000 description 1
- 230000001627 detrimental effect Effects 0.000 description 1
- 239000006185 dispersion Substances 0.000 description 1
- 230000000694 effects Effects 0.000 description 1
- 238000005516 engineering process Methods 0.000 description 1
- 150000002148 esters Chemical class 0.000 description 1
- 238000005530 etching Methods 0.000 description 1
- 239000011521 glass Substances 0.000 description 1
- ZDXPYRJPNDTMRX-UHFFFAOYSA-N glutamine Natural products OC(=O)C(N)CCC(N)=O ZDXPYRJPNDTMRX-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 235000004554 glutamine Nutrition 0.000 description 1
- 238000000227 grinding Methods 0.000 description 1
- 238000010438 heat treatment Methods 0.000 description 1
- 230000003301 hydrolyzing effect Effects 0.000 description 1
- 125000002887 hydroxy group Chemical group [H]O* 0.000 description 1
- 238000002513 implantation Methods 0.000 description 1
- 238000010348 incorporation Methods 0.000 description 1
- 230000006698 induction Effects 0.000 description 1
- 239000012948 isocyanate Substances 0.000 description 1
- 150000002513 isocyanates Chemical class 0.000 description 1
- 229960000310 isoleucine Drugs 0.000 description 1
- AGPKZVBTJJNPAG-UHFFFAOYSA-N isoleucine Natural products CCC(C)C(N)C(O)=O AGPKZVBTJJNPAG-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 230000000670 limiting effect Effects 0.000 description 1
- 235000001055 magnesium Nutrition 0.000 description 1
- 238000005259 measurement Methods 0.000 description 1
- 239000012528 membrane Substances 0.000 description 1
- 229910044991 metal oxide Inorganic materials 0.000 description 1
- 150000004706 metal oxides Chemical class 0.000 description 1
- 229930182817 methionine Natural products 0.000 description 1
- 229910052750 molybdenum Inorganic materials 0.000 description 1
- 239000011733 molybdenum Substances 0.000 description 1
- 229910052759 nickel Inorganic materials 0.000 description 1
- 229910052758 niobium Inorganic materials 0.000 description 1
- 239000010955 niobium Substances 0.000 description 1
- GUCVJGMIXFAOAE-UHFFFAOYSA-N niobium atom Chemical compound [Nb] GUCVJGMIXFAOAE-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 239000011368 organic material Substances 0.000 description 1
- 230000010355 oscillation Effects 0.000 description 1
- 230000011164 ossification Effects 0.000 description 1
- 239000005022 packaging material Substances 0.000 description 1
- 230000036961 partial effect Effects 0.000 description 1
- RFWLACFDYFIVMC-UHFFFAOYSA-D pentacalcium;[oxido(phosphonatooxy)phosphoryl] phosphate Chemical compound [Ca+2].[Ca+2].[Ca+2].[Ca+2].[Ca+2].[O-]P([O-])(=O)OP([O-])(=O)OP([O-])([O-])=O.[O-]P([O-])(=O)OP([O-])(=O)OP([O-])([O-])=O RFWLACFDYFIVMC-UHFFFAOYSA-D 0.000 description 1
- 108010025647 phosphate-binding proteolipid Proteins 0.000 description 1
- 150000003013 phosphoric acid derivatives Chemical class 0.000 description 1
- UNQNIRQQBJCMQR-UHFFFAOYSA-N phosphorine Chemical compound C1=CC=PC=C1 UNQNIRQQBJCMQR-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- XNGIFLGASWRNHJ-UHFFFAOYSA-M phthalate(1-) Chemical compound OC(=O)C1=CC=CC=C1C([O-])=O XNGIFLGASWRNHJ-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 1
- 230000004962 physiological condition Effects 0.000 description 1
- 210000002381 plasma Anatomy 0.000 description 1
- 238000005498 polishing Methods 0.000 description 1
- 229920001223 polyethylene glycol Polymers 0.000 description 1
- 229920000307 polymer substrate Polymers 0.000 description 1
- 229920001184 polypeptide Polymers 0.000 description 1
- 229920001296 polysiloxane Polymers 0.000 description 1
- 239000002243 precursor Substances 0.000 description 1
- 108090000765 processed proteins & peptides Proteins 0.000 description 1
- 102000004196 processed proteins & peptides Human genes 0.000 description 1
- 230000009103 reabsorption Effects 0.000 description 1
- 230000002829 reductive effect Effects 0.000 description 1
- 230000002787 reinforcement Effects 0.000 description 1
- 239000000523 sample Substances 0.000 description 1
- 239000004576 sand Substances 0.000 description 1
- 229920006395 saturated elastomer Polymers 0.000 description 1
- 239000012890 simulated body fluid Substances 0.000 description 1
- 238000002791 soaking Methods 0.000 description 1
- 229910052708 sodium Inorganic materials 0.000 description 1
- 159000000000 sodium salts Chemical class 0.000 description 1
- 238000001228 spectrum Methods 0.000 description 1
- 239000007921 spray Substances 0.000 description 1
- 230000006641 stabilisation Effects 0.000 description 1
- 238000011105 stabilization Methods 0.000 description 1
- 239000010935 stainless steel Substances 0.000 description 1
- 229910001220 stainless steel Inorganic materials 0.000 description 1
- 229910052715 tantalum Inorganic materials 0.000 description 1
- GUVRBAGPIYLISA-UHFFFAOYSA-N tantalum atom Chemical compound [Ta] GUVRBAGPIYLISA-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- KKEYFWRCBNTPAC-UHFFFAOYSA-L terephthalate(2-) Chemical compound [O-]C(=O)C1=CC=C(C([O-])=O)C=C1 KKEYFWRCBNTPAC-UHFFFAOYSA-L 0.000 description 1
- 125000003396 thiol group Chemical group [H]S* 0.000 description 1
- 229910021642 ultra pure water Inorganic materials 0.000 description 1
- 239000012498 ultrapure water Substances 0.000 description 1
- 239000004474 valine Substances 0.000 description 1
- 229910052726 zirconium Inorganic materials 0.000 description 1
Classifications
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61L—METHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
- A61L27/00—Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses
- A61L27/28—Materials for coating prostheses
- A61L27/34—Macromolecular materials
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61L—METHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
- A61L27/00—Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses
- A61L27/28—Materials for coating prostheses
- A61L27/30—Inorganic materials
- A61L27/32—Phosphorus-containing materials, e.g. apatite
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61L—METHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
- A61L31/00—Materials for other surgical articles, e.g. stents, stent-grafts, shunts, surgical drapes, guide wires, materials for adhesion prevention, occluding devices, surgical gloves, tissue fixation devices
- A61L31/08—Materials for coatings
- A61L31/082—Inorganic materials
- A61L31/086—Phosphorus-containing materials, e.g. apatite
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61L—METHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
- A61L31/00—Materials for other surgical articles, e.g. stents, stent-grafts, shunts, surgical drapes, guide wires, materials for adhesion prevention, occluding devices, surgical gloves, tissue fixation devices
- A61L31/08—Materials for coatings
- A61L31/10—Macromolecular materials
Landscapes
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Animal Behavior & Ethology (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Veterinary Medicine (AREA)
- Public Health (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Epidemiology (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Transplantation (AREA)
- Inorganic Chemistry (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Dermatology (AREA)
- Heart & Thoracic Surgery (AREA)
- Surgery (AREA)
- Vascular Medicine (AREA)
- Oral & Maxillofacial Surgery (AREA)
- Materials For Medical Uses (AREA)
- Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
- Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
- Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
- Polysaccharides And Polysaccharide Derivatives (AREA)
- Peptides Or Proteins (AREA)
- Medicinal Preparation (AREA)
Abstract
Un método que proporciona un recubrimiento proteináceo sobre un implante médico, que consiste en los pasos de: - sumergir el implante en una primera solución acuosa que contiene una proteína e iones magnesio, calcio y fosfato a través de la cual se hace pasar un ácido débil gaseoso; - desgasificar la solución; - permitir que el recubrimiento precipite sobre el implante; - sumergir el implante recubierto en una segunda solución para redisolver los iones magnesio, calcio y fosfato y obtener el recubrimiento proteináceo.
Description
Revestimiento protéico.
La invención se refiere al campo de implantes
médicos. Más en particular, la invención se refiere a un
recubrimiento que mejora la biocompatibilidad y propiedades de
unión al hueso de los implantes médicos, como prótesis ortopédicas y
dentales.
Recientemente, se ha desarrollado un
recubrimiento biomimético para el recubrimiento de implantes médicos
con materiales cerámicos, como hidroxiapatita similar a la ósea.
Esta tecnología se ha descrito en la solicitud de patente europea
98203085.0 y consiste en sumergir el material del implante, por
ejemplo, un soporte para la reconstrucción de tejidos óseos, en una
solución supersaturada de fosfato cálcico que simula un fluido
fisiológico. Se precipita uniformemente una capa de fosfato cálcico
sobre la superficie del implante bajo condiciones para una
nucleación y crecimiento del cristal modulados. Este método imita
la forma en que se forman los cristales óseos de hidroxiapatita en
el cuerpo. Teniendo en cuenta las condiciones fisiológicas en las
que el recubrimiento biomimético crece desde un fluido a temperatura
corporal, se pueden precipitar simultáneamente otros agentes
biológicamente activos como antibióticos.
La patente EP 0 806 212 describe un dispositivo
recubierto implantable que contiene una capa de fosfato cálcico en
la que se puede incorporar una sustancia biológicamente activa. El
recubrimiento que contiene fosfato cálcico y un factor de
crecimiento puede mejorar la formación ósea. Para la preparación del
recubrimiento, es necesario que la superficie del dispositivo tenga
un aspecto rugoso (valor Ra) de 10-1000 nm.
En la patente WO 97/41273 se describe un proceso
para recubrir un sustrato metálico o cerámico por calentamiento de
una determinada solución mineral, en la que se sumerge el sustrato a
una temperatura elevada hasta que el pH es al menos de 8, después de
lo cual se induce el depósito de hidroxiapatita carbonatada
cristalina sobre el sustrato. Tal recubrimiento se describe como
osteoinductor pero no se revela la incorporación de agentes
bioactivos. Es improbable que el proceso pudiera ser adecuado para
tal fin, ya que la combinación de una temperatura elevada y un pH
alto tendría un efecto perjudicial sobre los agentes bioactivos
termosensibles.
Muchos tejidos mineralizados de los seres vivos
están compuestos por cristales formados en condiciones bien
controladas. Las proteínas son las participantes clave en el
proceso de control. Algunas proteínas recubren los cristales
individuales, mientras que otras quedan ocluidas en el interior de
los cristales. Aún no se conoce claramente cómo estas proteínas
quedan ocluidas en el interior de un cristal y cuál es su papel en
el proceso de cristalización y en la determinación de las
propiedades del cristal.
La presente invención intenta encontrar una forma
de utilizar la función de control esperada de las proteínas en los
procesos de mineralización. En particular, es un objetivo de la
invención encontrar una forma de usar una proteína para inducir la
mineralización, calcificación o la formación de tejido óseo en un
implante médico.
Estos objetivos, así como los demás objetivos de
la invención que serán evidentes a partir de la presente
descripción, se han alcanzado en virtud de un recubrimiento
proteináceo sobre el implante que se aplica en él de una forma
específica.
En consecuencia, la invención se refiere
específicamente a un método que proporciona un recubrimiento
proteináceo sobre un implante médico, que consiste en los pasos
de:
- sumergir el implante en una primera solución
acuosa que contiene una proteína e iones magnesio, calcio y fosfato
a través de la cual se hace pasar un ácido débil gaseoso;
- desgasificar la solución;
- permitir que el recubrimiento precipite sobre
el implante;
- sumergir el implante recubierto en una segunda
solución para redisolver los iones magnesio, calcio y fosfato y
obtener el recubrimiento proteináceo.
Sorprendentemente, se ha encontrado que se puede
proporcionar un recubrimiento proteináceo sobre un implante médico,
cuyo recubrimiento induce la nucleación y crecimiento de los
cristales de fosfato cálcico tanto in vitro como in
vivo. Aunque el recubrimiento por sí mismo no contendrá
habitualmente ningún material de fosfato cálcico, se ha encontrado
que actúa a modo de plantilla o matriz para la mineralización. Esta
propiedad ventajosa permite la aplicación del implante médico para
servir como un soporte para la reconstrucción de tejido óseo.
Por otro lado, dicha propiedad aumenta también la
idoneidad del implante para el fin que tenía originalmente, es
decir, ser implantado en un paciente que necesita un sustituto
óseo. El recubrimiento proteináceo que se describe en este documento
puede inducir el depósito de varios compuestos de fosfato cálcico
que contienen carbonato y otros iones en la superficie de un
dispositivo implantable. La composición y cristalinidad de las capas
serán similares a las del mineral de los huesos y dientes y tendrán
las propiedades de unión al hueso y capacidad de reabsorción
biológica deseadas para mejorar la fijación biológica de los
dispositivos médicos en el tejido calcificado vivo.
El recubrimiento proteináceo puede formar
posteriormente una mezcla con los cristales de fosfato cálcico, por
ejemplo in vivo, produciendo un recubrimiento biomimético
con propiedades mecánicas superiores a las de los recubrimientos
cerámicos convencionales. Se cree que la proteína puede funcionar
como un refuerzo para el recubrimiento biomimético al unir entre sí
los cristales de fosfato cálcico.
Además, el recubrimiento proteináceo mejora la
unión entre las células y mejora la biocompatibilidad y propiedades
de unión al hueso de los implantes médicos.
El implante médico sobre el que se aplica un
recubrimiento de acuerdo con la invención puede ser de cualquier
material inorgánico, metálico, polimérico u orgánico. El implante
puede ser plano, denso o de una forma compleja y puede tener una
superficie porosa, arrosariada o mallada.
Los metales como el acero inoxidable, titanio,
níquel, cobalto, cromo, niobio, molibdeno, zirconio, tantalio y sus
combinaciones, se pueden recubrir para aplicaciones ortopédicas y
odontológicas. Por ejemplo, se pueden recubrir los dispositivos que
se usan en la artroplastia total de cadera, como los cotilos
acetabulares porosos o no porosos y la región proximal de los
vástagos de cadera.
Asimismo, se pueden recubrir materiales
cerámicos, como alúmina y zirconia, cristales como los cristales
bioactivos elaborados con
CaO-SiO_{2}-P_{2}O_{5}, y
fosfatos cálcicos, como hidroxiapatita y trifosfato cálcico.
Dichos recubrimientos pueden aplicarse a varios
polímeros y plásticos, más preferiblemente biocompatibles o
biorresorbibles como Polyactive^{TM}, un copolimero de
polietileno glicol y polibutilén tereftalato.
Antes de aplicar el recubrimiento, los sustratos
preferentemente se limpian o se tratan para eliminar cualquier
contaminante de la superficie y para promover una buena adhesión
del recubrimiento. Se pueden emplear varios métodos para limpiar.
Los implantes metálicos pueden aclararse con un desengrasante, como
por ejemplo acetona, alcoholes alquilo, etc. y después aclararse
cuidadosamente con agua pura.
Para mejorar la adhesión del recubrimiento,
pueden aplicarse varios tratamientos de superficie a los implantes
metálicos. Los tratamientos mecánicos de superficie como aspersión
de arena, incisión, pulido y molido puede aumentar la rugosidad de
la superficie de los implantes y mejorar la fuerza de unión entre
los recubrimientos y el sustrato. Con fines similares, también
pueden aplicarse tratamientos químicos de superficie a los
sustratos metálicos antes del recubrimiento. Entre otros
tratamientos químicos disponibles para los metales, se preferirá el
grabado por ácido para el tratamiento de dispositivos implantables
con ácidos minerales fuertes, como ácidos fluorhídrico,
clorhídrico, sulfúrico, nítrico y perclórico. También puede
resultar útil tratar los dispositivos metálicos con agentes
oxidantes como ácido nítrico, ácidos peroxihalógenos,
hidroxiperóxidos o peróxido de hidrógeno para formar una capa de
óxido metálico fresca. Después del tratamiento mecánico o químico,
es necesario aclarar los implantes con agua pura bajo ultrasonidos
para eliminar los contaminantes de la superficie.
El método para recubrir implantes médicos
consiste en empapar los implantes médicos en una solución de
calcificación que comprende una proteína a baja temperatura. Este
método sencillo está basado en el descubrimiento de que los
fosfatos cálcicos son más solubles en un medio ligeramente ácido que
en pH neutro o incluso básico. Esto también se aplica a condiciones
que esencialmente no afectan a la estabilidad y a la actividad de la
proteína de una forma dañina. Así, las soluciones acuosas de iones
calcio y fosfato y una proteína pueden estar más concentradas en un
pH ligeramente ácido que en uno neutro. Dicho de otro modo, los
fosfatos cálcicos precipitan en pH neutro o básico mientras que
permanecen solubles en un pH ligeramente suave a partir de una
solución con las mismas concentraciones de sales.
Un aumento del pH en la solución puede inducir
las siguientes fases: subsaturación, sobresaturación o la formación
de un estado metaestable, nucleación y crecimiento del cristal. Se
pueden formar núcleos de fosfato cálcico sobre una nucleación
heterogénea de sustrato cuando una solución ha alcanzado el límite
de sobresaturación o el estado metaestable. En el estado de
sobresaturación, los cristales pueden crecer a partir de fluidos
metaestables. Con una mayor saturación, la nucleación homogénea o
la precipitación en la solución es el proceso predominante. Esta
invención hace uso de cambios de pH para controlar los estados
mencionados más arriba y para inducir el depósito de capas de
fosfato cálcico carbonato sobre la superficie de los implantes
médicos.
El objetivo anterior puede conseguirse haciendo
burbujear un ácido débil gaseoso, preferiblemente gas dióxido de
carbono, en una solución de calcificación para reducir el pH y de
esta forma aumentar la solubilidad de las sales de fosfato cálcico.
Es bien conocido que el agua mineral natural con gas tiene un pH
ligeramente ácido derivado del gas dióxido de carbono disuelto.
También es una característica importante que el pH del agua mineral
aumenta lentamente a pH neutro o ligeramente básico durante la
liberación natural o el intercambio de gas dióxido de carbono
disuelto con el aire.
En algunas realizaciones preferidas, se requiere
el burbujeo del gas dióxido de carbono en la solución de
calcificación. El gas dióxido de carbono se disolverá en la
solución de calcificación y formará iones hidrógeno carbonato en
agua. Dichos implantes médicos se colocan en una solución de
calcificación acuosa a través de la cual se pasa un ácido débil
gaseoso, como por ejemplo gas dióxido de carbono, para producir un
medio débilmente ácido. El pH inicial de dicha solución de
calcificación se mantiene en el intervalo 3-7;
preferiblemente en torno a 5,5 a 6,5 burbujeando gas CO_{2}. El
gas dióxido de carbono se introduce en la solución a una presión
suficiente para generar burbujas de forma continua. La presión de
gas CO_{2} estará en el intervalo 0,1-10 bar,
preferiblemente de 0,5 a 1,5 bar, más preferiblemente
aproximadamente 1 bar.
En un método de acuerdo a la invención, la
presencia de iones magnesio, calcio y fosfato en la solución de
calcificación es esencial. Particularmente, se ha observado que la
presencia de magnesio es importante para controlar el crecimiento de
cristales del recubrimiento durante el depósito a partir de la
solución de calcificación. Un control óptimo del crecimiento de
cristales conduce a un recubrimiento uniforme, fuerte y resistente
al desgaste. Particularmente, la fijación del recubrimiento al
sustrato se ve positivamente influida por la presencia de iones
magnesio en la solución de calcificación. Un recubrimiento preparado
de acuerdo con la invención, preferiblemente tiene cristales con un
tamaño dentro del rango submicrométrico. En una realización
preferida, se pueden incorporar en la solución de calcificación
inhibidores adicionales del crecimiento de cristales, como iones
carbonato. Si se requiere; también pueden estar presentes
contra-iones, como sodio y cloro, para proporcionar
una fuerza iónica constante.
Preferiblemente, la solución de calcificación se
prepara mientras se hacen pasar las burbujas del ácido débil
gaseoso, para evitar la precipitación. La introducción del gas
reduce el pH de la solución y permite la disolución completa del
magnesio, calcio y fosfato, y otras posibles sales.
Preferiblemente, el burbujeo se inicia al menos 5 minutos antes, y
durante el añadido de las sales. De esta forma, el pH se reduce a
aproximadamente 3-8, más preferiblemente a
5.5-6.
Por supuesto, también es posible iniciar el
burbujeo con el ácido débil gaseoso después del añadido de las
cantidades deseadas de sales a la solución. Una vez que se ha
iniciado el burbujeo, de acuerdo con esta realización, es importante
asegurar que las sales se disuelven completamente.
La solución de calcificación se prepara
preferiblemente agua ultra pura y productos químicos de grado puro.
La solución de calcificación se esteriliza preferiblemente con
filtro a través de una membrana de filtro de 0,2 micras antes de
su uso. La proporción molar calcio fósforo en la solución de
calcificación se sitúa generalmente dentro del intervalo
1-3, más preferiblemente entre 1,5 y 2,5. Las
concentraciones de iones en la solución de calcificación se eligen
de manera que en ausencia del ácido débil gaseoso, la solución está
supersaturada o sobresaturada. La molaridad de la fuente de calcio
estará generalmente en el intervalo 0,5-50 mM,
preferiblemente en torno a 2,5 a 25 mM. La fuente de fosfato estará
generalmente aproximadamente entre 0,5 y 20 mM, más preferiblemente
aproximadamente 1 a 10 mM. La concentración de magnesio en la
solución de calcificación estará normalmente dentro del intervalo
0,1-20 mM, más preferiblemente aproximadamente 1,5 a
10 mM. La concentración de carbonate estará en el intervalo de 0 a
50 mM, más preferiblemente 0 a 42 mM. La fuerza iónica estará
dentro del intervalo 0,10-2 M, más preferiblemente
entre 0,15 y 1,5 M. La solución de calcificación se agita
preferiblemente a aproximadamente 10-1000 rpm, más
usualmente 50 a 200 rpm. La temperatura se mantiene a
aproximadamente 5-80ºC, preferiblemente en el
intervalo de aproximadamente 5-50ºC.
La proteína está preferiblemente presente en la
solución de calcificación descrita más arriba. Puede añadirse ante,
durante o después de la disolución de los diversos iones que se
desean en el recubrimiento. La concentración en la que la proteína
está preferiblemente presente en la solución de calcificación
preferiblemente se entre 0,001 y 10 g/l, más preferiblemente entre
0,01 y 1 g/l.
En principio, el presente método puede llevarse a
cabo utilizando cualquier tipo de proteína. Las proteínas
preferidas y altamente adecuadas están cargadas negativamente en el
pH al que se produce la precipitación. Se prefiere además que la
solubilidad de la proteína sea al menos de 1 gramo por litro de agua
con pH neutro. Además, se considera ventajoso si la proteína posee
puentes disulfido en su estructura. Ejemplos de proteínas altamente
adecuadas incluyen albúmina, caseína, gelatina, lisosima,
fibronectina, fibrina y chitosan. En principio, se puede cualquier
proteína basada en amino ácidos que tenga un punto isoeléctrico por
debajo de 7 y que tenga carga negativa. Ejemplos de tales
aminoácidos son alanina, ácido aspártico, cisteína, glutamina,
glicina, isoleucina, leucina, metionina, prolina, fosforina, serina
y valina. Entre las proteínas, son particularmente preferidas las
proteínas sintéticas como polilisina, polialanina, y policisteína.
Las proteínas biológicamente activas, como los factores de
crecimiento (por ejemplo, BMP, FGF o TGF) también se pueden usar con
ciertas ventajas.
Opcionalmente, el recubrimiento proteináceo puede
unirse al implante de forma covalente haciendo uso de un agente de
unión o enlace. Este agente debería ser capaz de reaccionar con
grupos OH sobre la superficie del implante y con grupos amino
proteína. La unión covalente asegurará una buena fijación mecánica
del recubrimiento proteináceo al implante. El agente de unión se
elige preferiblemente dentro del grupo de isocianatos, ácido
cianúrico, alcóxidos de titanio (Ti(OR)4), y ésteres
de silicona, como Si(OR)2C'2, en el que R representa
un grupo alquilo de 1-4 átomos de carbono. Para
obtener el enlace covalente, el agente de unión se añade simplemente
a la solución de calcificación en una cantidad apropiada que
típicamente estará entre 1 y 20% del peso basado en el peso de la
solución.
El dióxido de carbono tiene una solubilidad
limitada en soluciones acuosas. En contacto con el aire, una
solución acuosa carbonada está libre de CO_{2} o se desgasifica
completamente al cabo de unas pocas horas dependiendo de la
superficie de la solución en contacto con el aire. El intercambio
completo de gas CO_{2} disuelto en la atmósfera pude realizarse
en aproximadamente 8 a 48 horas, más preferiblemente entre 12 y 24
horas. La liberación natural de gas CO_{2} hace que el pH de la
solución remanente aumente. Dicho de otro modo, la saturación en la
solución de calcificación puede aumentar hasta que se produce la
precipitación de las capas bioactivas, incluyendo fosfato cálcico y
proteína, sobre la superficie. Opcionalmente, se pueden hacer pasar
burbujas de aire a través de la solución para desgasificar o airear
la solución y acelerar el escape, liberación o intercambio del
ácido débil gaseoso. Los valores pH inicial y final así como los
cambios en el pH con el tiempo dependen de la cantidad de carbonato
y sales de fosfato añadidas a la solución de calcificación. La
capacidad tamponadora puede ajustarse a un valor pH deseado
añadiendo más o menos sales de fosfato y carbonato. El pH se puede
mantener dentro del rango deseado introduciendo gas dióxido de
carbono. Esencialmente, el flujo de dióxido de carbono pude
ajustarse usando una electroválvula o una válvula solenoide pilotada
por el controlador. Durante la liberación natural de gas CO_{2}
fuera de la solución de calcificación, el pH aumentará hasta
aproximadamente 6-10, más preferiblemente
aproximadamente 7,5 a 8,5 después de estar empapada durante 24
horas. La capa de fosfato cálcico carbonato que comprende la
proteína se precipitará sobre la superficie del dispositivo
implantable con un valor de pH en el intervalo de aproximadamente
5-7.5. Dicha precipitación sobre la superficie de
los implantes médicos está relacionada con un paso de nucleación
heterogénea. Los cristales de fosfato cálcico carbonato pueden
posteriormente precipitarse en la solución de calcificación mediante
un proceso de crecimiento de cristales. De acuerdo con la
invención, la nucleación heterogénea se ve favorecida por la
estabilización energética del núcleo sobre el sustrato. La alta
densidad de nucleación asegura un depósito uniforme de los
cristales de fosfato cálcico carbonato sobre la superficie de los
implantes médicos.
En un método de acuerdo con la invención, puede
ser deseable control el pH y de esta forma la fase de nucleación
introduciendo burbujas de gas CO_{2} gas en diversos tiempos. El
tiempo de burbujeo es normalmente de entre unos pocos segundos y
unos minutos, preferiblemente aproximadamente de 1 a 600 segundos.
La introducción de dióxido de carbono provoca una disminución del
pH, mientras que el pH de la solución de calcificación tiende a
aumentar naturalmente sin burbujeo de gas CO_{2} gas. El aumento
del pH pude deberse al intercambio natural del gas CO_{2} gas con
la atmósfera y a la capacidad de amortiguación de la solución de
calcificación. Ajustando el tiempo y el flujo del gas CO_{2} gas
introducido en la solución de calcificación, el pH puede oscilar en
torno a un valor situado en el rango de 6 a 9, más preferiblemente
el pH de la solución de calcificación se puede mantener entre 6,5 y
7,5. Esta oscilación del pH está relacionada con la fase de
nucleación de los cristales de fosfato cálcico carbonato sobre la
superficie de los implantes médicos. Por lo tanto, se proporciona
una alta densidad de nucleación y los cristales de fosfato cálcico
carbonato pueden nuclear y crecer sobre la superficie de los
implantes médicos. Capas homogéneas que comprenden material cerámico
y proteína pueden depositarse uniformemente sobre el sustrato del
implante. El espesor total de las capas estará preferiblemente
dentro del intervalo de 0,5-100 micras, más
probablemente entre 0,5 y 50 micras. Mientras las capas son finas,
normalmente por debajo de 5 micras, los recubrimientos pueden
difractar la luz natural formando franjas de colores que van del
azul al rojo. Esta difracción de la luz es similar al fenómeno que
puede observarse cuando una gota de aceite está presente en el
agua. Cuando el espesor es mayor, las capas adquieren una coloración
gris brillante o blanca.
El recubrimiento así obtenido contiene tanto el
material cerámico como la proteína. De acuerdo con la invención, el
material cerámico se elimina mediante disolución en una segunda
solución para proporcionar el recubrimiento proteináceo objetivo.
Las condiciones en las que se lleva a cabo la disolución se eligen
de manera que el material cerámico se disuelve sustancialmente de
forma completa y la proteína permanece sustancialmente de forma
completa recubierta sobre la superficie del implante médico. Dicho
de otro modo, deberá tenerse cuidado de evitar, en la medida de lo
posible, la hidrolización de la proteína. Aunque cabría esperar que
se produjera una desnaturalización (parcial) de la proteína durante
esta fase, no se considera que esto perjudique las propiedades
inductivas del recubrimiento y puede de hecho ser positivo.
La disolución puede conseguirse utilizando una
solución ácida, como una solución acuosa de la que el pH se elige
preferiblemente entre 2 y 5, más preferiblemente ente 3 y 4. El
ácido utilizado para obtener el pH objetivo puede en principio ser
cualquier ácido adecuado para alcanzar el grado deseado de acidez.
Los ácidos adecuados no afectan de forma negativa a la proteína.
Ejemplos son el ftalato hidrógeno y el ácido hidroclórico que se
usan preferiblemente en una solución acuosa de
30-70 mM.
En otra realización la disolución del material
cerámico se consigue en una solución que comprende un agente
acomplejante o secuestrante para redisolver los iones magnesio,
calcio y fosfato y obtener el recubrimiento proteináceo. La solución
que comprende el agente secuestrante es preferiblemente una
solución acuosa en la que el pH puede ser alcalino; neutro o ácido.
El pH está preferiblemente en el intervalo de 2-9,
más preferiblemente en el intervalo de 2-7. De forma
todavía más preferiblemente, el pH está en el intervalo de
4-6, debido a la mejor solubilidad del calcio libre
y del magnesio con un pH ácido, en combinación con un grado
relativamente alto de complejación.
En principio puede usarse cualquier agente
secuestrante para calcio y magnesio para disolver la parte mineral
del recubrimiento. Un agente secuestrante adecuado no afecta
negativamente a la proteína. El agente secuestrante pude usarse por
sí sólo o junto con un agente secuestrante más o más agentes
secuestrantes, por ejemplo, para optimizar la complejación de los
diferentes cationes en los materiales cerámicos.
Se han conseguido muy Buenos resultados con
acetato tetra diamina etileno (EDTA, por ejemplo, la sal sódica)
como agente secuestrante. Un pH altamente preferido para esta
realización en particular es el intervalo de
4-6.
Se ha observado que el material cerámico pude
disolverse del recubrimiento utilizando el agente secuestrante en un
rango amplio de concentración. El agente secuestrante puede
utilizarse en cualquier concentración, hasta llegar a concentración
saturada. Preferiblemente la concentración es entre 0,1 y 20% en
peso, más preferiblemente entre 1 y 10%.
La disolución del material cerámico utilizando un
agente secuestrante o acomplejante puede llevarse a cabo de manera
que la proteína no se desnaturalice significativamente, lo que puede
ser ventajoso para aplicaciones particulares.
Una vez que el material cerámico se ha eliminado
esencialmente de forma completa, el implante médico con el
recubrimiento proteináceo puede sacarse de la solución en la que se
ha disuelto el material cerámico y aclararse opcionalmente con agua
o con agua desmineralizada para eliminar trazas de ácido o de
material cerámico. Se ha observado que el implante médico así
obtenido induce la mineralización, la calcificación o la formación
de tejido óseo en vitro y en vivo. Por lo tanto, el
implante tiene un rendimiento mejorado como sustituto del hueso en
comparación con el implante sin el recubrimiento proteináceo.
También se ha observado que al exponerlo a una
solución de calcificación, puede producirse una recalcificación de
la capa proteinácea de manera que la morfología de la capa después
de la remineralización se parece mucho a la del recubrimiento
intermedio, incluyendo proteína y fosfato cálcico, antes de la
descalcificación. Se espera que este proceso de recalcificación se
produzca en vivo, dependiendo del lugar la implantación. Como la
capa puede reabsorber totalmente los minerales, se minimiza el
riesgo de crear zonas quebradizas que pudieran causar fractura en
los recubrimientos.
Además, la propiedad inductora del recubrimiento
hace que el implante recubierto sea altamente adecuado para su uso
como soporte para hueso para la reconstrucción de tejidos. En esta
aplicación, se pueden plantar células en el implante y hacer
cultivos para formar o empezar a formar tejido óseo.
La invención se ilustrará ahora mediante los
siguientes ejemplo no limitativos.
Ejemplo
Se usaron placas de aleación de titanio de alto
grado (Ti6AI4V) de 20 x 20 x 1 mm. Las soluciones de calcificación
se prepararon con reactivos químicos puros (Merck) y agua
desmineralizada. La proteína usada en este estudio fue la albúmina
sérica bovina (BSA) en forma de polvo (fracción V, >98%, Sigma).
La BSA es una cadena polipeptídica sencilla que contiene
aproximadamente 583 residuos de aminoácidos (PM 66,4303). En un pH
de 5-7 contiene 17 puentes disulfuro
intracatenáricos y 1 grupo sulfhidrilo (Sigma
A-8806).
Las placas de Ti6AI4V se limpiaron por
ultrasonidos durante 15 min en acetona y después etanol (70%) y, por
último, en agua desmineralizada. Todas las muestras se grabaron con
una mezcla de ácido fluorhídrico (HF, 40% del peso), ácido nítrico
(HNO_{3}, 65% del peso) y agua desmineralizada durante 10 min bajo
ultrasonidos. Después del grabado, se aclararon abundantemente con
agua desmineralizada.
Se aplicaron posteriormente dos capas de fosfato
cálcico sobre las muestras de Ti6AI4V utilizando un método
biomimético. La primera capa se preparó con unas condiciones altas
de nucleación en presencia de inhibidores de crecimiento de
cristales en un líquido corporal simulado concentrado (SBF x 5)
(Tabla 1). Se elaboró una solución de calcificación disolviendo
sales NaCl: CaCl_{2}, 2 H_{2}O, MgCl_{2}, 6 H_{2}O,
NaHCO_{3} y Na_{2}HPO_{4}, 2 H_{2}O en 1000 ml de agua
desmineralizada y haciendo pasar gas dióxido de carbono a su
través. Después de la inmersión durante 24 horas a 37ºC, el pH de
esta solución había aumentado desde 5-6 a 8. Las
placas se aclararon cuidadosamente con agua desmineralizada durante
10 minutos y por último se secaron a temperatura ambiente toda la
noche. Sobre la superficie de aleación de titanio se depositó
uniformemente una capa fina, densa y amorfa de fosfato cálcico. Esta
fina capa producía la difracción de la luz natural formando ondas
coloreadas, por lo que se denominó recubrimiento en arco iris. Las
placas de Ti6AI4V con recubrimiento en arco iris se usaron a
continuación como superficie de siembra para el crecimiento de una
capa de apatita cristalina posterior.
HBP = Un preparado habitual de plasma sanguíneo
humano
La segunda capa se preparó en condiciones
conductivas para el crecimiento del cristal, es decir, por
inmersión de los implantes de Ti6AI4V en una solución supersaturada
de fosfato cálcico (CPS, Tabla 1) durante 48 horas a temperatura
ambiente. Estas soluciones también contenían albúmina sérica bovina
[(BSA) en forma de polvo, fracción V, >98%, de Sigma] en
concentraciones de 0, 0,01, 0,1 y 1 mg/ml de BSA.
Las muestras se lavaron a continuación en agua
desmineralizada y se secaron al aire a temperatura ambiente. El
microscópico electrónico de barrido (SEM, Philips, Modelo 525, 15
kV, muestras de carbono potenciado) reveló que las películas de
proteína tenían estructura foliácea, repitiendo los cristales
lamelares originales de hidroxiapatita (Figura 1a). Durante este
proceso de recubrimiento, se depositó uniformemente una película
gruesa (30 - 50 \mum) y densa de apatita cristalizada sobre la
superficie del sustrato. La capa arco iris actúa como una estructura
de base y se reabsorbe durante este paso.
El tratamiento de estos implantes recubiertos con
soluciones ácidas (SPS, Tabla 1) a 37ºC produjo la disolución
completa de los componentes del mineral cristalizado (calcio y
fosfato) (13), dejando atrás una matriz de proteínas fina (7 - 10
\mum), blanda y porosa (Figura 1b).
La microscopia electrónica por escáner reveló que
el proceso de remineralización había convertido al capa de proteína
a la morfología de película laminar original. También se observó
sobre las películas cierto sobrecrecimiento de agrupamientos
cristalinos de tipo rosa (Figura 1c). Los implantes desprovistos de
la película de proteína film no se recubrieron con una capa
mineralizada.
La espectometría Fourier Transform InfraRed
(FT-IR, Perkin-Elmer, Spectrum 1000)
utilizando bolas transparente KBr ) de la película original
mineralizada muestra claramente la característica de doblete de
fosfato 563 y 602 cm^{-1} (figura 2a). Este doblete está ausente
después de la desmineralización (figura 2b). El doblete fosfato
reaparece después de la remineralización (figura 2c). El BSA muestra
un gran pico debido a OH, >NH y agua absorbida en torno a 3500
cm^{-1} y bandas características de >C=O y -COO- a 1640
cm^{-1} y 1550 cm^{-1}.
Las películas de proteína eran insolubles en la
solución tanto de pH ácido como neutro. Tras la liberación del
recubrimiento, el espesor de la película BSA se midió utilizando
una sonta de inducción magnética (Electrophysik Minitest 2100). El
rango de medición de este aparato es entre 0 y 100 micras. Estas
mediciones se repitieron 10 veces y se obtuvieron medias en cada
muestra. Su espesor aumentaba a medida que la concentración de BSA
en el baño de solución SCP aumentaba (Tabla 2).
Los poros entre los cristales se mantienen como
poros en la película de proteína desmineralizada (Tabla 2). El
tamaño de cristal -y por lo tanto el tamaño de poro- disminuyó a
medida que la concentración de BSA en la solución SCP se aumentaba.
El espesor de la película de proteína desmineralizada aumentó en
aproximadamente un 20% a 27% de película de precursor mineralizado
con una concentración mayor de BSA. No se observaron cristales de
apatita residuales en estas películas de proteína.
Análisis por rayos X de dispersión de energía
(EDS, Voyager) mostraron evidencia de que el calcio residual y el
fosfato en las películas de proteína estaban por debajo de 1,14%
(Tabla 3).
Cuando implantes que estaban cubiertos con estas
películas de proteína se sumergen de nuevo en soluciones SCP (sin
BSA) en las mismas condiciones, se recubrieron con una capa espesa
(30\mum), densa de apatita (deducido de los resultados que se
muestran en la Figura 3).
Otras realización de la invención se definen en
las reivindicaciones.
Claims (21)
1. Un método que proporciona un recubrimiento
proteináceo sobre un implante médico, que consiste en los pasos
de:
- sumergir el implante en una primera solución
acuosa que contiene una proteína e iones magnesio, calcio y fosfato
a través de la cual se hace pasar un ácido débil gaseoso;
- desgasificar la solución;
- permitir que el recubrimiento precipite sobre
el implante;
- sumergir el implante recubierto en una segunda
solución para redisolver los iones magnesio, calcio y fosfato y
obtener el recubrimiento proteináceo.
2. Un método de acuerdo a la reivindicación 1, en
el que el ácido débil gaseoso es dióxido de carbono.
3. Un método de acuerdo a la reivindicación 1 ó
2, en el que el implante es un implante metálico, orgánico,
polimérico o cerámico.
4. Un método de acuerdo a cualquiera de las
reivindicaciones precedentes, en el que los iones calcio y fosfato
se encuentran en la primera solución en una relación molar entre 1
y 3, preferiblemente entre 1,5 y 2,5.
5. Un método de acuerdo a la reivindicación 4, en
el que la primera solución contiene iones calcio en una
concentración de 0,5-50 mM, preferiblemente
2,5-25 mM, e iones fosfato en una concentración de
0,5-20 mM, preferiblemente 1-10
mM.
6. Un método de acuerdo a cualquiera de las
reivindicaciones precedentes, en el que la primera solución
contiene iones magnesio en una concentración de
0,1-20 mM, preferiblemente 1,5-10
mM.
7. Un método de acuerdo a cualquiera de las
reivindicaciones precedentes, en el que la primera solución
contiene además iones carbonato en una concentración de
0-50 mM, preferiblemente 0-42
mM.
8. Un método de acuerdo a cualquiera de las
reivindicaciones precedentes, en el que la fuerza iónica de la
primera solución se encuentra en el intervalo de
0,1-2 M, preferiblemente de 0,15-1,5
M.
9. Un método de acuerdo a cualquiera de las
reivindicaciones precedentes, en el que la presión del ácido débil
gaseoso se encuentra en el intervalo de 0,1-10 bar,
preferiblemente de 0,5-1,5 bar.
10. Un método de acuerdo a cualquiera de las
reivindicaciones precedentes, en el que la temperatura de la
primera y segunda soluciones se elige independientemente en el
intervalo de 5 a 80ºC, preferiblemente de 5 a 50ºC.
11. Un método de acuerdo a cualquiera de las
reivindicaciones precedentes, en el que la proteína se elige entre
el grupo de albúmina, caseína, gelatina: lisozima, fibronectina,
fibrina, chitosan, polilisina, polialanina, policisteína, factores
de crecimiento, y sus combinaciones.
12. Un método de acuerdo a cualquiera de las
reivindicaciones precedentes, en el que la proteína se encuentra en
la primera solución en una concentración de entre 0,001 y 10
g/l.
13. Un método de acuerdo a cualquiera de las
reivindicaciones precedentes, en el que la segunda solución es una
solución acuosa ácida.
14. Un método de acuerdo a la reivindicación 13,
en el que la segunda solución tiene un pH de entre 2 y 5.
15. Un método de acuerdo a cualquiera de las
reivindicaciones precedentes, en el que la segunda solución
contiene un agente secuestrante o acomplejante.
16. Un método de acuerdo a la reivindicación 15,
en el que el agente secuestrante o acomplejante es
etilendiaminotetraacetato.
17. Un método de acuerdo a la reivindicación 15 ó
16, en el que el agente secuestrante se encuentra en una
concentración entre un 0,1 y un 20% del peso.
18. Un implante médico que consiste en un
recubrimiento proteináceo que se puede obtener con un método de
acuerdo a cualquiera de las reivindicaciones precedentes.
\newpage
19. Un implante médico de acuerdo a la
reivindicación 18, en el que el recubrimiento proteináceo tiene un
grosor en el intervalo de 0,5 a 100 micras.
20. El uso de un recubrimiento proteináceo que se
puede obtener con un método de acuerdo a cualquiera de las
reivindicaciones 1-17 para la fabricación de un
implante médico útil como un soporte para la reconstrucción de
tejidos óseos.
21. El uso de un recubrimiento proteináceo que se
puede obtener con un método de acuerdo a cualquiera de las
reivindicaciones 1-17 para la fabricación de un
implante médico para inducir la mineralización o formación de
tejido óseo.
Applications Claiming Priority (2)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| EP00200393 | 2000-02-04 | ||
| EP00200393 | 2000-02-04 |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| ES2206407T3 true ES2206407T3 (es) | 2004-05-16 |
Family
ID=8170984
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| ES01910206T Expired - Lifetime ES2206407T3 (es) | 2000-02-04 | 2001-02-01 | Revestimiento proteico. |
Country Status (9)
| Country | Link |
|---|---|
| US (1) | US6692790B2 (es) |
| EP (1) | EP1251889B1 (es) |
| JP (1) | JP2003521351A (es) |
| AT (1) | ATE244027T1 (es) |
| AU (1) | AU2001237786A1 (es) |
| CA (1) | CA2399216A1 (es) |
| DE (1) | DE60100433T2 (es) |
| ES (1) | ES2206407T3 (es) |
| WO (1) | WO2001056628A1 (es) |
Families Citing this family (40)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| AU2002246785A1 (en) | 2000-12-28 | 2002-08-06 | The Board Of Regents Of The University Of Nebraska | Electrolytic deposition of coatings for prosthetic metals and alloys |
| DE10119096A1 (de) * | 2001-04-19 | 2002-10-24 | Keramed Medizintechnik Gmbh | Biologisch funktionalisierte, metabolisch induktive Implantatoberflächen |
| CA2466947C (en) † | 2001-11-19 | 2012-05-22 | Scil Technology Gmbh | A homogeneously coated device having osteoinductive and osteoconductive properties |
| US7371719B2 (en) | 2002-02-15 | 2008-05-13 | Northwestern University | Self-assembly of peptide-amphiphile nanofibers under physiological conditions |
| DE10230720A1 (de) * | 2002-07-08 | 2004-02-12 | Tinox Ag I.Ins. | Implantat |
| US6749429B1 (en) * | 2002-09-10 | 2004-06-15 | William J. Haraden | Matrix band for use in dentistry |
| US7554021B2 (en) | 2002-11-12 | 2009-06-30 | Northwestern University | Composition and method for self-assembly and mineralization of peptide amphiphiles |
| JP4478754B2 (ja) * | 2002-11-25 | 2010-06-09 | 独立行政法人産業技術総合研究所 | タンパク質担持リン酸カルシウム、その製造方法及びそれを用いたタンパク質徐放体、人工骨及び組織工学スキャフォールド |
| US7087086B2 (en) * | 2003-01-31 | 2006-08-08 | Depuy Products, Inc. | Biological agent-containing ceramic coating and method |
| JP4837553B2 (ja) * | 2003-02-11 | 2011-12-14 | ノースウエスタン ユニバーシティ | ナノ結晶表面被膜の方法及び材料ならびにその上へのペプチド両親媒性物質ナノ繊維の付着物 |
| JP4472267B2 (ja) * | 2003-05-02 | 2010-06-02 | 株式会社ジーシー | 骨結合を得るためのチタン製インプラント及びその表面処理方法 |
| US8251700B2 (en) | 2003-05-16 | 2012-08-28 | Biomet 3I, Llc | Surface treatment process for implants made of titanium alloy |
| CN1905892A (zh) | 2003-12-05 | 2007-01-31 | 西北大学 | 自组装的肽两亲物和用于生长因子传递的相关方法 |
| ES2350939T3 (es) | 2004-03-10 | 2011-01-28 | Scil Technology Gmbh | Implantes recubiertos, su fabricación y uso de los mismos. |
| US20080241353A1 (en) * | 2004-08-10 | 2008-10-02 | Yekimed Ag | Biomimetic Process For Coating Substrates With A Biomimetic Solution Containing A Bioactive Substance And Use Of Said Process And Substrates In Bone, Connective Tissue-, Fat Tissue-And Muscle Tissue Engineering |
| US20060039949A1 (en) * | 2004-08-20 | 2006-02-23 | Nycz Jeffrey H | Acetabular cup with controlled release of an osteoinductive formulation |
| JP2006325467A (ja) * | 2005-05-25 | 2006-12-07 | Pentax Corp | コラーゲン被覆担体およびコラーゲン被覆担体の製造方法 |
| US20090053391A1 (en) * | 2005-12-06 | 2009-02-26 | Ludwig Florian N | Method Of Coating A Drug-Releasing Layer Onto A Substrate |
| US8003156B2 (en) | 2006-05-04 | 2011-08-23 | Advanced Cardiovascular Systems, Inc. | Rotatable support elements for stents |
| US20080097618A1 (en) * | 2006-10-18 | 2008-04-24 | Kevin Charles Baker | Deposition of calcium-phosphate (CaP) and calcium-phosphate with bone morphogenic protein (CaP+BMP) coatings on metallic and polymeric surfaces |
| US20080233203A1 (en) * | 2007-03-21 | 2008-09-25 | Jennifer Woodell-May | Porous orthapedic materials coated with demineralized bone matrix |
| US8076295B2 (en) | 2007-04-17 | 2011-12-13 | Nanotope, Inc. | Peptide amphiphiles having improved solubility and methods of using same |
| US8133553B2 (en) | 2007-06-18 | 2012-03-13 | Zimmer, Inc. | Process for forming a ceramic layer |
| US8309521B2 (en) | 2007-06-19 | 2012-11-13 | Zimmer, Inc. | Spacer with a coating thereon for use with an implant device |
| JP2009067669A (ja) * | 2007-08-20 | 2009-04-02 | Council Of Scientific & Industrial Research | 金属基材上にタンパク質媒介カルシウムヒドロキシアパタイト(hap)コーティングを作製する方法 |
| US20110230973A1 (en) * | 2007-10-10 | 2011-09-22 | Zimmer, Inc. | Method for bonding a tantalum structure to a cobalt-alloy substrate |
| US8608049B2 (en) * | 2007-10-10 | 2013-12-17 | Zimmer, Inc. | Method for bonding a tantalum structure to a cobalt-alloy substrate |
| US20090187256A1 (en) * | 2008-01-21 | 2009-07-23 | Zimmer, Inc. | Method for forming an integral porous region in a cast implant |
| US20090198286A1 (en) * | 2008-02-05 | 2009-08-06 | Zimmer, Inc. | Bone fracture fixation system |
| AU2010236584A1 (en) | 2009-04-13 | 2011-11-10 | Northwestern University | Novel peptide-based scaffolds for cartilage regeneration and methods for their use |
| WO2010138062A1 (en) * | 2009-05-28 | 2010-12-02 | Addbio Ab | Multilayer protein films, methods of making, and drug delivery devices and biomedical implants employing the films |
| KR101286721B1 (ko) * | 2009-06-05 | 2013-07-16 | 한국과학기술연구원 | 폴리-시스테인 펩티드 융합 재조합 알부민 및 이의 제조방법 |
| PL2473151T3 (pl) * | 2009-09-04 | 2018-05-30 | The Procter And Gamble Company | Urządzenia i sposoby wizualnej prezentacji erozji zębów na symulowanych materiałach dentystycznych |
| US20110076396A1 (en) * | 2009-09-28 | 2011-03-31 | Limin Guan | Method of forming a calcium phosphate coating within a porous material |
| UA104738C2 (ru) * | 2011-05-18 | 2014-03-11 | Олег Миколайович Лазаренко | Композиция для повышения биосовместимости имплантатов и клеток для трансплантации с организмом реципиента и способ ее приготовления |
| CN104013997B (zh) * | 2014-05-06 | 2016-01-20 | 重庆大学 | 一种具有生物仿生多层结构界面的医用钛合金制备方法 |
| CN104667350B (zh) * | 2015-03-12 | 2017-03-29 | 南京医科大学第一附属医院 | 三层一体化复合支架及其制作方法 |
| CN115137875B (zh) * | 2021-03-29 | 2023-06-13 | 杭州彗搏科技有限公司 | 一种高效的双相磷酸钙涂层方法 |
| CN113230453A (zh) * | 2021-05-06 | 2021-08-10 | 长兴盛隆科技有限公司 | 一种医用镁合金耐腐蚀涂层的制备方法 |
| CN114890400B (zh) * | 2022-06-15 | 2023-12-01 | 杭州彗搏科技有限公司 | 纳米晶体羟基磷灰石骨修复颗粒、制备方法及应用 |
Family Cites Families (7)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| DE3414924A1 (de) * | 1984-04-19 | 1985-10-31 | Klaus Dr.med. Dr.med.habil. 8000 München Draenert | Beschichtetes verankerungsteil fuer implantate |
| NL9301941A (nl) * | 1993-11-09 | 1995-06-01 | Klaas De Groot | Werkwijze voor het aanbrengen van een bekleding van een bioactief materiaal op implantaten. |
| IT1288038B1 (it) * | 1996-04-30 | 1998-09-10 | Flametal S P A | Procedimento per la preparazione di rivestimenti di idrossiapatite |
| EP0806212B1 (en) * | 1996-05-10 | 2003-04-02 | IsoTis N.V. | Device for incorporation and release of biologically active agents |
| WO1999011202A1 (en) * | 1997-09-05 | 1999-03-11 | Icet, Inc. | Biomimetic calcium phosphate implant coatings and methods for making the same |
| US6139585A (en) * | 1998-03-11 | 2000-10-31 | Depuy Orthopaedics, Inc. | Bioactive ceramic coating and method |
| JP2000093503A (ja) | 1998-09-15 | 2000-04-04 | Isotis Bv | 医療用インプラントをコ―トする方法 |
-
2001
- 2001-02-01 CA CA002399216A patent/CA2399216A1/en not_active Abandoned
- 2001-02-01 EP EP01910206A patent/EP1251889B1/en not_active Expired - Lifetime
- 2001-02-01 AT AT01910206T patent/ATE244027T1/de not_active IP Right Cessation
- 2001-02-01 AU AU2001237786A patent/AU2001237786A1/en not_active Abandoned
- 2001-02-01 ES ES01910206T patent/ES2206407T3/es not_active Expired - Lifetime
- 2001-02-01 WO PCT/NL2001/000071 patent/WO2001056628A1/en not_active Ceased
- 2001-02-01 JP JP2001556526A patent/JP2003521351A/ja active Pending
- 2001-02-01 DE DE60100433T patent/DE60100433T2/de not_active Expired - Lifetime
-
2002
- 2002-08-05 US US10/212,468 patent/US6692790B2/en not_active Expired - Fee Related
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| JP2003521351A (ja) | 2003-07-15 |
| DE60100433D1 (de) | 2003-08-07 |
| US6692790B2 (en) | 2004-02-17 |
| WO2001056628A1 (en) | 2001-08-09 |
| DE60100433T2 (de) | 2004-04-15 |
| EP1251889B1 (en) | 2003-07-02 |
| CA2399216A1 (en) | 2001-08-09 |
| EP1251889A1 (en) | 2002-10-30 |
| AU2001237786A1 (en) | 2001-08-14 |
| ATE244027T1 (de) | 2003-07-15 |
| US20030113438A1 (en) | 2003-06-19 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| ES2206407T3 (es) | Revestimiento proteico. | |
| AU772751B2 (en) | Method for coating medical implants | |
| US6569489B1 (en) | Bioactive ceramic coating and method | |
| LeGeros | Calcium phosphate-based osteoinductive materials | |
| Uchida et al. | Bonelike apatite formation induced on zirconia gel in a simulated body fluid and its modified solutions | |
| US6736849B2 (en) | Surface-mineralized spinal implants | |
| Song et al. | Biomimetic apatite coatings on micro-arc oxidized titania | |
| US7534761B1 (en) | Charged peptide-amphiphile solutions and self-assembled peptide nanofiber networks formed therefrom | |
| EP0987031B1 (en) | Method for coating medical implants | |
| JPH08299429A (ja) | チタン系インプラントの表面処理方法及び生体親和性チタン系インプラント | |
| He et al. | In Vivo Effect of Titanium Implants with Porous Zinc-Containing Coatings Prepared by Plasma Electrolytic Oxidation Method on Osseointegration in Rabbits. | |
| JP2009067669A (ja) | 金属基材上にタンパク質媒介カルシウムヒドロキシアパタイト(hap)コーティングを作製する方法 | |
| Kamitakahara et al. | Coating of bone-like apatite for development of bioactive materials for bone reconstruction | |
| Fan et al. | Surface structural biomimetics and the osteoinduction of calcium phosphate biomaterials | |
| ES2250902T3 (es) | Interfaz osteointegrativa para protesis implantables y procedimiento para su fabricacion. | |
| ES2427043T3 (es) | Superficies multifuncionales de titanio para integración en hueso | |
| US20110282463A1 (en) | Tissue-bondable material for medical use | |
| KR100388074B1 (ko) | 칼슘 포스페이트 초박막 코팅된 임플란트 | |
| Daculsi et al. | Outcome and perspectives in bioactive coatings: What's new, what's coming | |
| Barrere et al. | Physical and chemical characteristics of plasma-sprayed and biomimetic apatite coating | |
| Pramatarova et al. | Modified inorganic surfaces as a model for hydroxyapatite growth | |
| KR100362699B1 (ko) | 칼슘 포스페이트 초박막 코팅된 우골 분말 | |
| Cai et al. | Biofunctionalization of NiTi Shape Memory Alloy Promoting Osseointegration by Chemical Treatment | |
| Campbell | Bioactive and Porous Metal Coatings for Improved Tissue Regeneration | |
| Ohtsuki et al. | CONTROL OF HYDROXYAPATITE DEPOSITION ON ORGANIC POLYMER UNDER BIOMIMICKING CONDITION |