[go: up one dir, main page]

ES2278436T3 - Antigenos de estreptococos del grupo b. - Google Patents

Antigenos de estreptococos del grupo b. Download PDF

Info

Publication number
ES2278436T3
ES2278436T3 ES99904646T ES99904646T ES2278436T3 ES 2278436 T3 ES2278436 T3 ES 2278436T3 ES 99904646 T ES99904646 T ES 99904646T ES 99904646 T ES99904646 T ES 99904646T ES 2278436 T3 ES2278436 T3 ES 2278436T3
Authority
ES
Spain
Prior art keywords
polypeptide
baselineskip
polynucleotide
seq
group
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Expired - Lifetime
Application number
ES99904646T
Other languages
English (en)
Inventor
Bernard R. Brodeur
Clement Rioux
Martine Boyer
Isabelle Charlebois
Josee Hamel
Denis Martin
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
ID Biomedical Corp of Quebec
Original Assignee
ID Biomedical Corp of Quebec
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by ID Biomedical Corp of Quebec filed Critical ID Biomedical Corp of Quebec
Application granted granted Critical
Publication of ES2278436T3 publication Critical patent/ES2278436T3/es
Anticipated expiration legal-status Critical
Expired - Lifetime legal-status Critical Current

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K14/00Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K14/00Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/195Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from bacteria
    • C07K14/315Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from bacteria from Streptococcus (G), e.g. Enterococci
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P31/00Antiinfectives, i.e. antibiotics, antiseptics, chemotherapeutics
    • A61P31/04Antibacterial agents
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P37/00Drugs for immunological or allergic disorders
    • A61P37/02Immunomodulators
    • A61P37/04Immunostimulants
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00Medicinal preparations containing antigens or antibodies

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Gastroenterology & Hepatology (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Oncology (AREA)
  • Communicable Diseases (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)
  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

Un polinucleótido aislado que codifica un polipéptido que tiene al menos un 70% de identidad con un segundo polipéptido que tiene una secuencia seleccionada del grupo que consiste en SEQ ID NO: 39 y SEQ ID NO: 44, o un fragmento de dicho polipéptido, en donde dicho polipéptido o fragmento de dicho polipéptido retiene la capacidad de inducir una respuesta inmune específica de estreptococos del grupo B.

Description

Antígenos de estreptococos del grupo B.
Campo de la invención
La presente invención se refiere a antígenos, más particularmente a antígenos de patógenos bacterianos de estreptococos del grupo B (GBS), que son útiles como componentes de vacunas para la terapia y/o la profilaxis.
Antecedentes de la invención
Los estreptococos son bacterias gram (+) que se diferencian por antígenos de carbohidratos específicos de la A a la O en su superficie celular. Los grupos de estreptococos se distinguen además por antígenos de polisacáridos capsulares de tipo específico. Se han identificado varios serotipos para los estreptococos de Grupo B (GBS): Ia, Ib, II, III, IV, V, VI, VII y VIII. Los GBS también contienen proteínas antigénicas conocidas como "proteínas-C" (alfa, beta, gamma y delta), algunas de las cuales han sido clonadas. Aunque el GBS es un componente común de la flora colónica y vaginal humana, dicho patógeno ha sido reconocido durante mucho tiempo como una causa principal de sepsis neonatal y de meningitis, de meningitis de activación tardía en niños, de endometritis post-parto, así como de mastitis en el ganado lechero. Las madres parturientas expuestas a GBS corren el riesgo de infección post-parto y pueden transferir la infección a sus bebés cuando atraviesan el canal de nacimiento. Aunque el organismo es sensible a antibióticos, la elevada velocidad de ataque y el rápido inicio de la sepsis en neonatos, y de la meningitis en niños, da lugar a una elevada tasa de mortalidad.
Para encontrar una vacuna que proteja a individuos frente a la infección por GBS, los investigadores se han fijado en los antígenos de tipo específico. Desafortunadamente estos polisacáridos han demostrado ser pobremente inmunogénicos en humanos y están restringidos al serotipo concreto del cual procede el polisacárido. Además, el polisacárido capsular provoca una respuesta independiente de células T, es decir, sin producción de IgG. Por consiguiente los antígenos de polisacáridos capsulares no son adecuados como componentes de vacunas para la protección frente a la infección por GBS.
Otros investigadores se han centrado en el antígeno beta de proteína-C, que ha demostrado presentar propiedades inmunogénicas en modelos de ratón y de conejo. Se descubrió que esta proteína era inadecuada como vacuna humana debido a la no deseable propiedad de interaccionar con una alta afinidad y de un modo no inmunogénico con la región Fc del IgA humano. El antígeno alfa de proteína-C es poco común en los serotipos de tipo III de GBS, que es el serotipo responsable de la mayoría de afecciones originadas por GBS y que, por tanto, es de poca utilidad como componente de una vacuna.
Por tanto, sigue existiendo una necesidad no satisfecha de antígenos de GBS que puedan ser usados como componentes de vacuna para la profilaxis y/o la terapia de la infección por GBS.
Resumen de la invención
De acuerdo con un aspecto, la presente invención proporciona un polinucleótido aislado que codifica un polipéptido que tiene al menos una identidad del 70% con un segundo polipéptido que comprende una secuencia seleccionada del grupo que consiste en: SEQ ID NO: 39 y SEQ ID NO: 44, o fragmentos de las mismas.
En otros aspectos, se proporcionan vectores que comprenden polinucleótidos de la invención ligados operativamente a una región de control de la expresión, así como células hospedantes transfectadas con dichos vectores, y métodos para producción polipéptidos que comprenden cultivar dichas células hospedantes en las condiciones adecuadas para la expresión.
En otro aspecto adicional, se proporcionan nuevos polipéptidos codificados por polinucleótidos de la invención.
Breve descripción de las figuras
La Figura 1a (únicamente a modo de referencia) es la secuencia de ADN del clon 1 (SEQ ID NO: 1) con las correspondientes secuencias de aminoácidos de los marcos de lectura abiertos;
la Figura 1b es la secuencia de aminoácidos SEQ ID NO: 2;
la Figura 1c es la secuencia de aminoácidos SEQ ID NO: 3;
la Figura 1d es la secuencia de aminoácidos SEQ ID NO: 4;
la Figura 1e es la secuencia de aminoácidos SEQ ID NO: 5;
la Figura 1f es la secuencia de aminoácidos SEQ ID NO: 6.
La Figura 2a (únicamente a modo de referencia) es la secuencia de ADN del clon 2 (SEQ ID NO: 7) con las correspondientes secuencias de aminoácidos de los marcos de lectura abiertos;
la Figura 2b es la secuencia de aminoácidos SEQ ID NO: 8;
la Figura 2c es la secuencia de aminoácidos SEQ ID NO: 9;
la Figura 2d es la secuencia de aminoácidos SEQ ID NO: 10;
la Figura 2e es la secuencia de aminoácidos SEQ ID NO: 11;
la Figura 2f es la secuencia de aminoácidos SEQ ID NO: 12.
La Figura 3a (únicamente a modo de referencia) es la secuencia de ADN del clon 3 (SEQ ID NO: 13) con las correspondientes secuencias de aminoácidos de los marcos de lectura abiertos;
la Figura 3b es la secuencia de aminoácidos SEQ ID NO: 14;
la Figura 3c es la secuencia de aminoácidos SEQ ID NO: 15;
la Figura 3d es la secuencia de aminoácidos SEQ ID NO: 16;
la Figura 3e es la secuencia de aminoácidos SEQ ID NO: 17;
la Figura 3f es la secuencia de aminoácidos SEQ ID NO: 18;
la Figura 3g es la secuencia de aminoácidos SEQ ID NO: 19;
la Figura 3h es la secuencia de aminoácidos SEQ ID NO: 20;
la Figura 3i es la secuencia de aminoácidos SEQ ID NO: 21.
La Figura 4a (únicamente a modo de referencia) es la secuencia de ADN del clon 4 (SEQ ID NO: 22) con las correspondientes secuencias de aminoácidos de los marcos de lectura abiertos;
la Figura 4b es la secuencia de aminoácidos SEQ ID NO: 23;
la Figura 4c es la secuencia de aminoácidos SEQ ID NO: 24;
la Figura 4d es la secuencia de aminoácidos SEQ ID NO: 25;
la Figura 4e es la secuencia de aminoácidos SEQ ID NO: 26.
La Figura 5a (únicamente a modo de referencia) es la secuencia de ADN del clon 5 (SEQ ID NO: 27) con las correspondientes secuencias de aminoácidos de los marcos de lectura abiertos;
la Figura 5b es la secuencia de aminoácidos SEQ ID NO: 28;
la Figura 5c es la secuencia de aminoácidos SEQ ID NO: 29;
la Figura 5d es la secuencia de aminoácidos SEQ ID NO: 30;
la Figura 5e es la secuencia de aminoácidos SEQ ID NO: 31.
La Figura 6a (únicamente a modo de referencia) es la secuencia de ADN del clon 6 (SEQ ID NO: 32) con las correspondientes secuencias de aminoácidos de los marcos de lectura abiertos;
la Figura 6b es la secuencia de aminoácidos SEQ ID NO: 33;
la Figura 6c es la secuencia de aminoácidos SEQ ID NO: 34;
la Figura 6d es la secuencia de aminoácidos SEQ ID NO: 35;
la Figura 6e es la secuencia de aminoácidos SEQ ID NO: 36.
La Figura 7a es la secuencia de ADN del clon 7 (SEQ ID NO: 37); (inventiva);
la Figura 7b es la secuencia de aminoácidos SEQ ID NO: 38;
la Figura 7c es la secuencia de aminoácidos SEQ ID NO: 39;
la Figura 7d es la secuencia de aminoácidos SEQ ID NO: 40;
la Figura 7e es la secuencia de aminoácidos SEQ ID NO: 41.
La Figura 8 es la secuencia de ADN de una parte del clon 7 que una secuencia señal (SEQ ID NO: 42); (inventiva).
La Figura 9 es la secuencia de ADN de una parte del clon 7 sin secuencia señal (SEQ ID NO: 43); (inventiva).
La Figura 9a es la secuencia de aminoácidos (SEQ ID NO: 44); (inventiva).
La Figura 10 representa la distribución de títulos de ELISA anti-GBS en sueros procedentes de ratones CD-1 inmunizados con proteína de GBS recombinante correspondiente a la SEQ ID NO: 39. (inventiva).
Descripción detallada de la invención
La presente invención se refiere a nuevos polipéptidos antigénicos de estreptococos del grupo B (GBS), que se caracterizan por la secuencia de aminoácidos seleccionada del grupo que consiste en: SEQ ID NO: 39 y SEQ ID NO: 44.
La invención incluye la SEQ ID NO: 39 y la SEQ ID NO: 44.
Una realización preferida adicional de la invención es la SEQ ID NO: 39.
Una realización preferida adicional de la invención es la SEQ ID NO: 44.
Tal como se usan en la presente memoria, "fragmentos" de los polipéptidos de la invención incluyen aquellos polipéptidos en los que se sustituye uno o más residuos de aminoácido con un residuo de aminoácido conservado o no conservado (preferiblemente conservado) y que pueden ser naturales o no naturales.
El término "fragmentos" de polipéptidos de la presente invención también incluye polipéptidos que se modifican mediante adición, eliminación, sustitución de aminoácidos, siempre que los polipéptidos retengan la capacidad de inducir una respuesta inmune.
Por el término "aminoácido conservado" se entiende una sustitución de uno o más aminoácidos por otro en el cual el determinante antigénico (incluyendo su estructura secundaria y la naturaleza hidropática) de un antígeno dado se conserva completa o parcialmente a pesar de la sustitución.
Por ejemplo, se puede sustituir uno o más residuos de aminoácido de la secuencia con otro aminoácido de polaridad similar, que actúa como un equivalente funcional, dando como resultado una alteración silenciosa. Los sustitutos de un aminoácido dentro de la secuencia se pueden seleccionar entre otros miembros de la clase a la que pertenece el aminoácido. Por ejemplo, los aminoácidos no polares (hidrófobos) incluyen alanina, leucina, isoleucina, valina, prolina, fenilalanina, triptófano y metionina. Los aminoácidos polares neutros incluyen glicina, serina, treonina, cisteína, tirosina, asparagina y glutamina. Los aminoácidos cargados positivamente (básicos) incluyen arginina, lisina e histidina. Los aminoácidos cargados negativamente (ácidos) incluyen ácido aspártico y ácido glutámico.
Preferiblemente, los derivados y análogos de polipéptidos de la invención tendrán aproximadamente un 70% de identidad con respecto a las secuencias ilustradas en las figuras, o a fragmentos de las mismas. Es decir, el 70% de los residuos son los mismos. Más preferiblemente, los polipéptidos tendrán una homología superior al 95%. En otra realización preferida, los derivados y análogos de polipéptidos de la invención tendrán menos de aproximadamente 20 sustituciones, modificaciones o eliminaciones de residuos de aminoácido, y más preferiblemente menos de 10. Las sustituciones preferidas son las que se conocen en la técnica como conservadas, es decir, los residuos sustituidos comparten propiedades físicas o químicas tales como la hidrofobicidad, el tamaño, la carga o grupos funcionales.
Además, en las situaciones en las que se descubre que las regiones de aminoácidos son polimórficas, puede ser deseable variar uno o más aminoácidos en particular para imitar de forma más eficaz los diferentes epítopos de las diferentes cepas de GBS.
También se incluyen polipéptidos fusionados a otros compuestos que alteran las propiedades biológicas y farmacológicas de los polipéptidos, por ejemplo, polietilénglicol (PEG) para aumentar la vida media; secuencias de aminoácidos líderes o secretoras para facilitar la purificación; prepro- y pro-secuencias; y (poli)sacáridos.
Además, los polipéptidos de la presente invención se pueden modificar mediante acilación terminal de -NH_{2} (por ejemplo mediante acetilación, o amidación con ácido tioglicólico, amidación carbositerminal, por ejemplo con amoníaco o metilamina) para proporcionar estabilidad, y aumentar la hidrofobicidad para la unión a un soporte u a otra molécula.
También se contemplan los multímeros de hetero y homo polipéptido de los fragmentos de polipéptido, análogos y derivados. Estas formas poliméricas incluyen, por ejemplo, uno o más polipéptidos que han sido reticulados con agentes reticulantes tales como avidita/biotina, glutaraldehído o dimetil-superimidato. Dichas formas poliméricas también incluyen polipéptidos que contienen dos o más secuencias contiguas invertidas o emparejadas, producidos a partir de mARNs multicistrónicos generados mediante tecnología de ADN recombinante.
Preferiblemente, un fragmento, análogo o derivado de un polipéptido de la invención comprenderá al menos una región antigénica, es decir, al menos un epítopo.
Con el fin de alcanzar la formación de polímeros antigénicos (es decir, multímeros sintéticos), se pueden utilizar polipéptidos que tengan grupos bishaloacetilo, nitroarilhaluros, o similares, en donde los reactivos sean específicos para los grupos tiol. Por tanto, el enlace entre dos grupos mercapto de los diferentes péptidos puede ser un enlace sencillo o puede estar compuesto por un grupo de unión de al menos dos átomos de carbono, típicamente de al menos cuatro, y no más de 16, pero normalmente no más de aproximadamente 14.
En una realización concreta, los fragmentos de polipéptido de la invención no contienen un residuo de metionina (Met) de inicio. Preferiblemente, los polipéptidos no incorporarán una secuencia líder o secretora (secuencia señal). La porción señal de un polipéptido de la invención se puede determinar de acuerdo con técnicas biológicas moleculares establecidas. En general, el polipéptido de interés se puede aislar a partir de un cultivo de GBS, y posteriormente puede
secuenciarse para determinar el residuo inicial de la proteína madura y, por tanto, la secuencia del polipéptido maduro.
De acuerdo con otro aspecto, se proporcionan composiciones de vacuna que comprenden uno o más polipéptidos de GBS de la invención mezclados con un vehículo, diluyente o adyuvante farmacéuticamente aceptable.
Los adyuvantes adecuados incluyen aceites, por ejemplo adyuvante de Freund completo o incompleto; sales, por ejemplo AlK(SO_{4})_{2}, AlNa(SO_{4})_{2}, AlNH_{4}(SO_{4})_{2}, Al(OH)_{3}, AlPO_{4}, sílice, caolín; derivado de saponina; polinucleótidos de carbono, por ejemplo poli IC y poli AU y también toxina del cólera detoxificada (CTB), y toxina de E. coli térmicamente lábil para la inducción de inmunidad mucosal. Los adyuvantes preferidos incluyen QuilA^{TM}, Alhydrogel^{TM} y Adjuphos^{TM}. Las vacunas de la invención se pueden administrar parenteralmente mediante inyección, infusión rápida, absorción nasofaríngea, dermoabsorción, o bucal u oral.
Las composiciones de vacuna de la invención se usan para el tratamiento o profilaxis de la infección por estreptococos y/o de enfermedades y síntomas mediados por la infección por estreptococos, en particular de estreptococos del grupo A (pyogenes), de estreptococos del grupo B (GBS o agalactiae), dysgalactiae, uberis, nocardia, así como Staphylococcus aureus. Se dispone de información general sobre los estreptococos en el Manual of Clinical Microbiology de P.R. Murria y col. (1995, 6ª Edición, ASM Press, Washington, D.C.). Más concretamente, de los estreptococos del grupo B, agalactiae. En una realización particular se administran vacunas a individuos con riesgo de infección de GBS, tales como mujeres embarazadas y niños para sepsis, meningitis y neumonía, así como individuos inmunocomprometidos tales como los que padecen diabetes, enfermedades del hígado o cáncer. Las vacunas también pueden tener aplicaciones veterinarias tales como para el tratamiento de la mastitis en ganado, que está mediada por las anteriores bacterias, así como por E. coli.
La vacuna de la presente invención también se puede usar para la fabricación de un medicamento usado para el tratamiento o profilaxis de la infección de estreptococos y/o de enfermedades o síntomas mediados por la infección de estreptococos, en particular de estreptococos del grupo A (pyogenes), de estreptococos del grupo B (GBS o agalactiae), dysgalactiae, uberis, nocardia, así como Staphylococcus aureus. Más particularmente estreptococos del grupo B, agalactiae.
Las composiciones de vacuna se encuentran preferiblemente en formas unitarias de dosis de entre aproximadamente 0,001 y 100 \mug/Kg (antígeno/peso corporal) y más preferiblemente de 0,01 a 10 \mug/Kg, y aún más preferiblemente de 0,1 a 1 \mug/Kg de 1 a 3 veces con un intervalo de aproximadamente 1 a 12 semanas entre inmunizaciones, y más preferiblemente de 1 a 6 semanas.
De acuerdo con otro aspecto, se proporcionan polinucleótidos que codifican polipéptidos de estreptococos del grupo B (GBS) que se caracterizan por la secuencia de aminoácidos seleccionada del grupo que consiste en: SEQ ID NO: 39, y SEQ ID NO: 44, o fragmentos de las mismas.
Los polinucleótidos preferidos son los ilustrados en las Figuras 7a (SEQ ID NO: 37), 8 (SEQ ID NO: 42) y 9 (SEQ ID NO: 43) que corresponden a marcos de lectura abiertos, que codifican polipéptidos de la invención.
Los polinucleótidos preferidos son los ilustrados en las Figuras 7a (SEQ ID NO: 37), 8 (SEQ ID NO: 42) y 9 (SEQ ID NO: 43), y fragmentos de los mismos.
Los polinucleótidos más preferidos de la invención son los ilustrados en las Figuras 7 (SEQ ID NO: 37), 8 (SEQ ID NO: 42) y 9 (SEQ ID NO: 43).
Los polinucleótidos aún más preferidos de la invención son los ilustrados en las Figuras 8 (SEQ ID NO: 42) y 9 (SEQ ID NO: 43).
Cabe destacar que las secuencias de polinucleótidos ilustradas en las figuras pueden alterarse con codones degenerados y aún así seguir codificando los polipéptidos de la invención.
Debido a la degeneración de las secuencias codificadoras de nucleótidos, en la práctica de la invención pueden usarse otras secuencias de polinucleótidos que codifiquen sustancialmente los mismos polipéptidos de la presente invención. Éstas incluyen, aunque sin limitación, secuencias de nucleótidos que son alteradas por la sustitución de diferentes codones que codifican el mismo residuo de aminoácido dentro de la secuencia, produciendo de este modo un cambio silencioso.
En consecuencia, la presente invención proporciona adicionalmente polinucleótidos que se hibridan con las secuencias de polinucleótidos descritas en la presente memoria (o con las secuencias complementarias de las mismas) que tengan al menos un 70% de identidad entre secuencias. Más preferiblemente, los polinucleótidos son hibridables en condiciones severas, por ejemplo que tengan un 95% de identidad y más preferiblemente más de un 97% de identidad.
Por "capaces de hibridarse en condiciones severas" se entiende templar una molécula de ácido nucleico a al menos una región de una segunda secuencia de ácido nucleico (como cADN, mARN ó ADN genómico) o a su cadena complementaria en condiciones estándar, por ejemplo alta temperatura y/o bajo contenido salino, que tiende a desfavorecer la hibridación de secuencias de nucleótidos no complementarias. Se describe un protocolo adecuado en Maniatis T. y col., Molecular Cloning: A Laboratory Manual, Cold Spring Harbor Laboratory, 1982, que se incorpora a la presente memoria a modo de referencia.
En un aspecto adicional, se pueden usar polinucleótidos que codifican polipéptidos de la invención, o fragmentos de los mismos, en un método de inmunización de ADN. Es decir, se pueden incorporar en un vector que es replicable y expresable mediante inyección, produciendo con ello el polipéptido antigénico in vivo. Por ejemplo, se pueden incorporar polinucleótidos en un vector plásmido bajo el control del promotor CMV que es funcional en células eucarióticas. Preferiblemente el vector se inyecta intramuscularmente.
De acuerdo con otro aspecto, se proporciona un proceso para la producción de polipéptidos de la invención mediante técnicas recombinantes a través de la expresión de un polinucleótido que codifica dicho polipéptido en una célula hospedante, y recuperando el polipéptido producto. De forma alternativa, los polipéptidos se pueden producir de acuerdo con técnicas químicas sintéticas establecidas, por ejemplo, síntesis de oligopéptidos en fase sólida o en disolución, que son ligados para producir el polipéptido completo (ligadura en bloque).
Para la producción recombinante, se transfectan células hospedantes con vectores que codifican el polipéptido, y a continuación se cultivan en un medio nutriente modificado de forma apropiada para activar promotores, seleccionando transformantes o amplificando los genes. Los vectores adecuados son aquellos que son viables y replicables en el hospedante elegido e incluyen secuencias de ADN cromosomales, no cromosomales y sintéticas, por ejemplo, plásmidos bacterianos, ADN de fago, baculovirus, plásmidos de levadura, vectores derivados de combinaciones de plásmidos y ADN de fago. La secuencia de polipéptidos se puede incorporar al vector en una posición apropiada usando enzimas de restricción, de tal forma que se une operativamente a una región de control de la expresión que comprende un promotor, una posición de unión de ribosomas (región de consenso o secuencia de Shine-Dalgarno), y opcionalmente un operador (elemento de control). Uno puede seleccionar componentes individuales de la región de control de la expresión que sean apropiados para un hospedante y un vector dados de acuerdo con principios establecidos de biología molecular (Sambrook y col., Molecular Cloning: A Laboratory Manual, 2ª edición, Cold Spring Harbor, N.Y., 1989, incorporado a la presente memoria a modo de referencia). Los promotores adecuados incluyen, aunque sin limitación, el promotor LTR ó SV40, los promotores lac, tac ó trp de E. coli y el promotor P_{L} lambda de fago. Preferiblemente los vectores incorporarán un origen de replicación así como marcadores de selección, por ejemplo gen de resistencia a ampicilina. Los vectores bacterianos adecuados incluyen pET, pQE70, pQE60, pQE-9, pbs, pD10 phagescript, psiX174, pbluescript SK, pbsks, pNH8A, pNH16a, pNH18A, pNH46A, ptrc99a, pKK223-3, pKK233-3, pDR540, pRIT5, y los vectores eucarióticos pBlueBacIII, pWL-NEO, pSV2CAT, pOG44, pXT1, pSG, pSVK3, pBPV, pMSG y pSVL. Las células hospedantes pueden ser bacterianas, por ejemplo E. coli, Bacillus subtilis, Streptomyces; fúngicas, por ejemplo Aspergillus niger, Aspergillus nidulins; de levaduras, por ejemplo Saccharomyces; o eucarióticas, por ejemplo CHO, COS.
En la expresión del polipéptido en cultivo, las células se recolectan normalmente mediante centrifugación, a continuación se rompen empleando medios físicos o químicos (si el polipéptido expresado no es segregado al medio) y el extracto crudo resultante se retiene para aislar el polipéptido de interés. La purificación del polipéptido a partir del medio de cultivo o lisato se puede lograr empleando técnicas establecidas que dependen de las propiedades del polipéptido, por ejemplo, usando precipitación en sulfato de amonio o etanol, extracción ácida, cromatografía de intercambio aniónico o catiónico, cromatografía de fosfocelulosa, cromatografía de interacción hidrofóbica, cromatografía de hidroxilapatita y cromatografía de lectina. La purificación final se puede lograr empleando HPLC.
El polipéptido se puede expresar con o sin una secuencia líder o de secreción. En el primer caso el líder se puede eliminar usando procesado post-traducción (véanse los documentos US 4.431.739, 4.425.437 y 4.338.397) o pueden ser eliminados químicamente después de purificar el polipéptido expresado.
De acuerdo con un aspecto adicional, los polipéptidos de GBS de la invención se pueden usar en un ensayo diagnóstico para la infección de estreptococos, en concreto la infección de GBS. Es posible utilizar varios métodos diagnósticos, por ejemplo la detección de un organismo estreptococal en una muestra biológica. Se puede seguir el siguiente procedimiento:
a)
obtener una muestra biológica de un paciente;
b)
incubar un anticuerpo o fragmento del mismo que sea reactivo con un polipéptido de GBS de la invención con la muestra biológica para formar una mezcla; y
c)
detectar anticuerpos unidos específicamente o fragmentos unidos en la mezcla, lo que indica la presencia de estreptococos.
De forma alternativa, se puede llevar a cabo un método para la detección de anticuerpos específicos de un antígeno de estreptococos en una muestra biológica que contiene, o que se sospecha que contiene, dicho anticuerpo de la siguiente manera:
a)
aislar una muestra biológica de un paciente;
b)
incubar uno o más polipéptidos de GBS de la invención, o fragmentos de los mismos, con la muestra biológica para formar una mezcla; y
c)
detectar antígenos unidos específicamente o fragmentos unidos en la mezcla, lo que indica la presencia de anticuerpos específicos de estreptococos.
El especialista en la técnica reconocerá que este ensayo diagnóstico puede presentarse en diversas formas, que incluyen un ensayo inmunológico tal como el ensayo inmunosorbente ligado a enzima (ELISA), un radioinmunoensayo o un ensayo de aglutinación de látex, esencialmente para determinar si los anticuerpos específicos de la proteína están presentes en un organismo.
Las secuencias de ADN que codifican polipéptidos de la invención también pueden usarse para diseñar sondas de ADN para su uso en la detección de la presencia de estreptococos en una muestra biológica que se sospecha contiene dichas bacterias. El método de detección de la invención comprende:
a)
aislar la muestra biológica de un paciente;
b)
incubar una o más sondas de ADN que presenten una secuencia de ADN que codifica un polipéptido de la invención o fragmentos del mismo con la muestra biológica para formar una mezcla; y
c)
detectar la sonda de ADN unida específicamente en la mezcla, lo que indica la presencia de bacterias estreptococales.
Las sondas de ADN de esta invención también pueden usarse para detectar estreptococos circulantes, por ejemplo ácidos nucleicos de GBS en una muestra, por ejemplo usando una reacción en cadena de polimerasa, como un método para diagnosticar infecciones de estreptococos. La sonda se puede sintetizar usando técnicas convencionales y puede inmovilizarse sobre una fase sólida, o puede etiquetarse con una marca detectable. Una sonda de ADN preferida para esta aplicación es un oligómero que tiene una secuencia complementaria a al menos 6 nucleótidos contiguos de los polipéptidos de GBS de la invención.
Otro método diagnóstico para la detección de estreptococos es un paciente comprende:
a)
etiquetar un anticuerpo reactivo con un polipéptido de la invención o un fragmento del mismo con una marca detectable;
b)
administrar el anticuerpo marcado o el fragmento marcado al paciente; y
c)
detectar anticuerpos marcados o fragmentos marcados unidos específicamente en el paciente, lo que indica la presencia de estreptococos.
Un aspecto adicional de la invención es el uso de polipéptidos de GBS de la invención como inmunógenos para la producción de anticuerpos específicos para la diagnosis, y en concreto para el tratamiento de la infección de estreptococos. Los anticuerpos adecuados se pueden determinar usando métodos de escrutinio apropiados, por ejemplo midiendo la capacidad de un anticuerpo concreto para proteger pasivamente frente a infección de estreptococos en un modelo de ensayo. Un ejemplo de un modelo animal es el modelo de ratón descrito en los Ejemplos de la presente memoria. El anticuerpo puede ser un anticuerpo entero o un fragmento de unión a antígeno del mismo, y puede pertenecer en general a cualquier clase de inmunoglobulina. El anticuerpo o fragmento puede ser de origen animal, específicamente de origen mamífero y más específicamente de origen murino, de rata o humano. Puede ser un anticuerpo natural o un fragmento del mismo, o si se desea, un anticuerpo o fragmento de anticuerpo recombinante. El término anticuerpo o fragmento de anticuerpo recombinante significa un anticuerpo o fragmento de anticuerpo que se produjo usando técnicas de biología molecular. El anticuerpo o fragmento de anticuerpo puede ser policlonal, o preferiblemente monoclonal. Puede ser específico de una serie de epítopos asociados con los polipéptidos de GBS, pero preferiblemente es específico de uno solo.
Ejemplo 1 Modelo de murina de infección de Estreptococo de Grupo B (GBS) letal
El modelo de ratón de infección de GBS se describe con detalle en Lancefield y col. (J Exp Med 142: 165-179, 1975). La cepa de GBS C388/90 (producto clínico aislado obtenido en 1990 a partir de fluido cefalorraquídeo de un paciente que sufría meningitis, Hospital Infantil de Eastern Notario, Ottawa, Canadá) y la cepa NCS246 (Nacional Center for Streptococcus, Provincial Laboratory of Public Health for Northern Alberta, Edmonton, Canadá) fueron serotipadas respectivamente como el tipo Ia/c y el tipo II/R.
Para aumentar su virulencia, se sometió en serie a ratones a las cepas de GBS C388/90 (serotipo Ia/c) y NCS246 (serotipo II/R) tal como se ha descrito previamente (Lancefield y col., J. Exp. Med. 142: 165-179, 1975). En resumen, se siguió la evolución del aumento de la virulencia usando inoculaciones intraperitoneales de diluciones en serie de un subcultivo en caldo de Todd-Hewitt obtenido a partir de sangre o de bazo de ratones infectados. Tras la última exposición, las muestras de sangre infectadas se usaron para inocular caldo de Todd-Hewitt. Tras una incubación de 2 horas a 37ºC con un 7% de CO_{2}, se añadió al cultivo glicerol con una concentración final del 10% (v/v). A continuación se dividió en alícuotas el cultivo y se almacenó a -80ºC para su uso en los experimentos de exposición a GBS. Se determinó el número de cfu de GBS presentes en estas muestras congeladas. Se determinó que las concentraciones bacterianas necesarias para matar al 100% (LD100) de los ratones de 18 semanas de edad eran de 3,5 x 10^{5} y de 1,1 x 10^{5} respectivamente para las cepas de GBS C388/90 y NCS246, que corresponden a un aumento significativo de la virulencia para ambas cepas. De hecho, las LD100 registradas antes de las exposiciones para estas dos cepas eran superiores a 10^{9} cfu.
En una exposición bacteriana, se ajustó una alícuota recién congelada de una cepa virulenta de GBS a la concentración bacteriana apropiada usando caldo de Todd-Hewitt, y se inyectó 1 mL intraperitonealmente a cada ratón CD-1 hembra. Los ratones usados para los experimentos de protección pasiva tenían una edad de 6 a 8 semanas, mientras que los usados para los experimentos de protección activa tenían una edad de aproximadamente 18 semanas en el momento de la exposición. Todos los inóculos fueron verificados mediante conteo de colonias. Se observó a los animales en busca de cualquier signo de infección cuatro veces al día durante las primeras 48 horas después de la exposición, y a continuación a diario durante los siguientes 12 días. Al final de dicho periodo, se obtuvieron muestras de sangre de los supervivientes y se congelaron a -20ºC. El bazo obtenido de cada ratón que sobrevivió a la exposición se cultivó con el objetivo de identificar cualquier GBS remanente.
Ejemplo 2 Inmunización y protección en ratones con células de GBS enteras muertas con formaldehído
Se prepararon células enteras de GBS muertas por formaldehído de acuerdo con los procedimientos descritos en Lancefield y col. (J. Exp. Med. 142: 165-179, 1975). En resumen, se lavó un cultivo de una noche de placas de agar de sangre de oveja (Quelab Laboratorios, Montreal, Canadá) de una cepa de GBS dos veces en tampón PBS (disolución salina de fosfato tamponada, pH 7,2), se ajustó a aproximadamente 3 x 10^{9} cfu/mL y se incubó toda la noche en PBS que contenía formaldehído al 0,3% (v/v). La suspensión muerta por formaldehído se lavó con PBS y se mantuvo congelada a -80ºC.
Se inyectó subcutáneamente ratones CD-1 hembra, con una edad de 6 a 8 semanas (Charles River, St-Constant, Québec, Canadá), tres veces con un intervalo de dos semanas, con 0,1 mL de células muertas por formaldehído de la cepa de GBS C388/90 (aproximadamente 6 x 10^{7} GBS), o con 0,1 mL de PBS para el grupo de control. El día antes de la inmunización, se añadió a estas preparaciones Alhydrogel^{TM} (Superfos Biosector, Frederikssund, Dinamarca) con una concentración final de 0,14 mg ó de 0,21 mg de Al, y se incubó una noche a 4ºC con agitación. Se obtuvieron muestras de suero de cada ratón antes de comenzar el protocolo de inmunización y dos semanas después de la última inyección. Los sueros se congelaron a -20ºC.
Ocho ratones de cada grupo de control inyectados con PBS y del grupo inmunizado con células de GBS de la cepa C388/90 (Ia/c) enteras muertas por formaldehído, fueron expuestos a 1,5 x 10^{4} cfu de la cepa de GBS C388/90 (Ia/c) una semana después de la tercera inyección. Todos los ratones inmunizados con las células enteras de GBS muertas por formaldehído sobrevivieron a la exposición homóloga, mientras que, a los 5 días tras la exposición, sólo 4 de cada 8 ratones inyectados con PBS sobrevivieron a la infección. Con el fin de aumentar la tasa de mortalidad en los grupos de control, la suspensión bacteriana se tuvo que ajustar de acuerdo con la edad de los ratones en el momento de la exposición bacteriana. En los experimentos de exposición posteriores, cuando los ratones tenían más de 15 semanas de edad, el inóculo bacteriano fue incrementado hasta concentraciones entre 3,0 x 10^{5} y 2,5 x 10^{6} cfu.
TABLA 1 Inmunización de ratones CD1 con células enteras de GBS muertas por formaldehído, y posterior exposición homóloga [cepa C388/90 (Ia/c)] y exposición heteróloga [cepa NCS246 (II/R)]
1
En otro experimento, se inyectó PBS a un grupo de 12 ratones correspondiente a un grupo de control, mientras que un segundo grupo de 12 ratones fue inmunizado con células de GBS enteras muertas por formaldehído de la cepa C388/90 (Ia/c). Seis ratones de cada uno de estos dos grupos fueron expuestos a 2,1 x 10^{6} cfu de la cepa de GBS C388/90 (Ia/c) (Tabla 1). Como primer experimento de exposición, todos los ratones inmunizados con la cepa de GBS C388/90 (Ia/c) sobrevivieron a la exposición homóloga. Solamente dos de cada 6 ratones inyectados con PBS sobrevivieron a la infección.
Los restantes 6 ratones de ambos grupos fueron usados a continuación una semana después para verificar si dicha preparación antigénica podía conferir protección cruzada frente a la cepa NCS246 (II/R), que produce una cápsula serológicamente distinta. Ninguno de los ratones infectados con esta segunda cepa de GBS sobrevivió a la infección. Este último resultado sugirió que la mayoría de la respuesta inmune protectora inducida por la cepa C388/90 muerta por formaldehído se dirige contra el polisacárido capsular, y que podría estar restringida a cepas de dicho serotipo en particular. Estos resultados indicaron claramente que este modelo concreto de infección se puede usar de forma eficaz para estudiar la protección conferida a través de vacunación.
Ejemplo 3 Inmunización de conejo con células de GBS enteras muertas por formaldehído y protección pasiva en ratones
Se inmunizó un conejo de Nueva Zelanda (2,5 Kg, Charles River, St-Constant, Québec, Canadá) con células de GBS de cepa C388/90 (Ia/c) muertas por formaldehído para obtener suero hiperinmune. Dicho conejo fue inyectado subcutáneamente tres veces, con un intervalo de tres semanas, con aproximadamente 1,5 x 10^{9} cfu de células enteras muertas por formaldehído de GBS cepa C388/90 (Ia/c). Se usó adyuvante completo de Freund (Gibco BRL Life Technologies, Grand Island, Nueva York) como adyuvante para la primera inmunización, y se usó adyuvante incompleto de Freund (Gibco BRL) para las siguientes dos inyecciones. Se obtuvieron muestras de suero antes de comenzar el protocolo de inmunización y dos semanas después de la última inyección. Los sueros se congelaron a -20ºC.
También se evaluó la capacidad de este particular suero hiperinmune de conejo para proteger pasivamente ratones frente a infección letal con GBS. La inyección intraperitoneal de los ratones con 15 ó 25 \muL de suero hiperinmune de conejo 18 horas antes de la exposición protegió a 4 de cada 5 ratones (80%) frente a la infección. De forma comparativa, para los ratones del grupo de control, inyectados con PBS o con suero obtenido a partir de conejo inmunizado con una preparación de membrana exterior meningococal, se registraron tasas de supervivencia inferiores al 20%. Este resultado indica claramente que la inmunización de otra especie animal con células de GBS muertas puede inducir la producción de anticuerpos que pueden proteger pasivamente a ratones. Este reactivo también se usará para caracterizar clones.
TABLA 2 Protección pasiva de ratones CD-1 conferida mediante suero de conejo obtenido tras inmunización con una preparación antigénica de estreptococos enteros de grupo B muertos por formaldehído (cepa C388/90 (Ia/c))
2
Ejemplo 4 Producción recombinante de proteína de fusión His.Tag-GBS
Se amplificó la región codificadora de un gen de GBS mediante PCR (Sistema DNA Termal Cycler GeneAmp PCR 2400 Perkin Elmer, San Jose, CA) a partir de ADN genómico de la cepa de GBS C388/90 (Ia/c) usando los oligos que contenían las extensiones de base correspondientes a la adición de las posiciones de restricción BgIII (AGATCT) y HindIII (AAGCTT), respectivamente. El producto de PCR se purificó en gel de agarosa usando un kit de extracción de gel Qiaex II de Qiagen (Chatsworth, CA), se digirió con las enzimas de restricción BgIII y HindIII (Pharmacia Canada Inc. Baie d'Urfe, Canadá), y se extrajo con fenol:cloroformo antes de ser precipitado en etanol. El vector pET-32b(+) (Novagen, Madison, WI) que contiene la secuencia tiorredoxin-His.Tag se digirió con las enzimas de restricción BgIII y HindIII, se extrajo con fenol:cloroformo, y a continuación se precipitó en etanol. El fragmento de ADN genómico BgIII-HindIII se ligó al vector BgIII-HindIII pET-32b(+) para crear la secuencia codificadora correspondiente a la proteína de fusión tiorredoxin-His.Tag-GBS, cuyo gen estaba bajo el control del promotor T7. Los productos ligados se transformaron en la cepa de E. coli XLI Blue MRF' (\Delta(mcrA) 183\Delta (mcrCB-hsdSMR-mrr) 173 endA1 supE44 thi-1 recA1 gyrA96 relA1 lac [F' proAB lacI^{q}Z\DeltaM15Tn10 (Tet^{r})]^{c}) (Stratagene, La Jolla, CA) de acuerdo con el método de Simanis (Hanahan, D., DNA Cloning, 1985, D.M. Glover (ed.), páginas 109-135). El plásmido pET recombinante se purificó usando un kit de Qiagen (Qiagen, Chatsworth, CA) y la secuencia de nucleótidos del injerto de ADN se verificó mediante secuenciamiento de ADN (kit Taq Dye Deoxy Terminador Cycle Sequencing, ABI, Foster City, CA). El plásmido pET recombinante fue transformado mediante electroporación (aparato Gene Pulser II, BIO-RAD Labs, Mississauga, Canadá) en la cepa de E. coli AD494 (DE3) (\Deltaara^{-}leu7697 \DeltalacX74 \DeltaphoA PvuII phoR \DeltamaIF3 F' [lac^{+} (lacI^{q}) pro] trxB::Kan (DE3)) (Novagen, Madison, WI). En esta cepa de E. coli, el promotor T7 que controla la expresión de la proteína de fusión, es reconocido específicamente por la polimerasa de ARN T7 (presente en el profago \lambdaDE3), cuyo gen se encuentra bajo el control del promotor lac que es inducible mediante isopropil-\beta-D-tio-galactopiranósido (IPTG).
El transformante AD494(DE3)/rpET se cultivó a 37ºC con agitación a 250 rpm en caldo LB (peptona 10 g/L, extracto de levadura 5 g/L, NaCl 10 g/L) que contiene 100 \mug de ampicilina (Sigma-Aldrich Canada Ltd, Oakville, Canadá) por mL hasta que la A_{600} alcanzó un valor de 0,6. Con el fin de inducir la producción de la proteína de fusión tiorredoxin-His.Tag-GBS, las células se incubaron otras 2 horas más en presencia de IPTG con una concentración final de 1 mM. Las células bacterianas se recogieron por centrifugación.
La proteína de fusión recombinante producida por AD494(DE3)/rpET32 tras inducción con IPTG durante 2 h se obtuvo parcialmente como cuerpos de inclusión insolubles que fueron purificados a partir de las proteínas de E. coli endógenas mediante aislamiento de los agregados insolubles (Gerlach, G.F., y col., 1992, Infect. Immun. 60: 892). Las células inducidas a partir de un cultivo de 500 mL se resuspendieron en 20 mL de tampón Tris-HCl 50 mM con un 25% de sacarosa (pH 8,0) y se congelaron a -70ºC. La lisis de las células en suspensión congelada se logró mediante la adición de 5 mL de una disolución de lisozima (10 mg/mL) en tampón Tris-HCl 250 mM (pH 8,0) seguida de una incubación de 10 a 15 minutos en hielo, y de la adición de 150 mL de mezcla detergente (5 partes de tampón Tris-HCl 20 mM (pH 7,4)-NaCl 300 mM-ácido desoxicólico al 2%-Nonidet P-40 al 2% y 4 partes de tampón Tris-HCl 100 mM (pH 8)-EDTA 50 mM-Triton X-100 al 2%) seguida de una incubación de 5 minutos en hielo. Después de ser sometido a sonicación, se recogieron los agregados proteicos mediante centrifugación durante 30 minutos a 35.000 x g, y se mantuvo una muestra de la fracción celular soluble. Las proteínas agregadas fueron solubilizadas en hidrocloruro de guanidina 6 M. El análisis Western blot demostró la presencia de la proteína de fusión en las fracciones soluble e insoluble a la vez, realizado usando el suero de un ratón inyectado con células de GBS cepa C388/90 (Ia/c) muertas por formaldehído que sobrevivió a la exposición bacteriana con la correspondiente cepa de GBS.
La purificación de la proteína de fusión a partir de la fracción soluble de AD494(DE3)/rpET inducida por IPTG se realizó mediante cromatografía de afinidad basada en las propiedades de la secuencia His.Tag (6 residuos de histidina consecutivos) para ligarse a cationes divalentes (Ni^{2+}) inmovilizados sobre resina de quelación metálica His.Bind (Novagen, Madison, WI). Los métodos de purificación usados son los descritos en el Manual del sistema pET, 6ª Edición (Novagen, Madison, WI). En resumen, las células paletizadas obtenidas de un cultivo de 100 mL inducido con IPTG se resuspendieron en 4 mL de tampón de Unión (imidazol 5 mM-NaCl 500 mM-Tris-HCl 20 mM, pH 7,9), se sometieron a sonicación, y se giraron a 39.000 x g durante 20 minutos para eliminar los desechos. Se filtró el sobrenadante (membrana con un tamaño de poro de 0,45 \mum) y se depositó en una columna de resina His.Bind equilibrada en tampón de unión. A continuación se lavó la columna con 10 volúmenes de columna de tampón de unión seguidos de 6 volúmenes de columna de tampón de lavado (imidazol 20 mM-NaCl 500 mM-Tris-HCl 20 mM, pH 7,9). La eliminación de la sal y del imidazol de la muestra se realizó mediante diálisis frente a 3 x 1 litro de PBS a 4ºC.
Las cantidades de proteína de fusión obtenidas de las fracciones citoplásmicas soluble e insoluble de E. coli se estimaron mediante tinción de Coomassie de un gel de dodecilsulfato sódico (SDS)-poliacrilamida con diluciones en serie de dichas proteínas, y con un patrón de albúmina de suero bovino (Pierce Chemical Co., Rockford, I11).
Ejemplo 5 Producción recombinante de proteína de GBS bajo control de promotor P_{L} lambda
Se insertó la región de codificación de ADN de una proteína de GBS por debajo del promotor \lambdaP_{L} en el vector de traducción pURV22. Este plásmido fue derivado de p629 (George y col., 1987, Bio/Technology 5: 600), del cual se eliminó la región codificadora de una porción de la glicoproteína (gD-1) de virus simple del herpes de tipo I (HSV-I), y se sustituyó el gen de resistencia a la ampicilina por una casete de canamicina obtenida del vector plásmido pUC4K (Pharmacia Biotech Canada Inc., Baie D'Urfe, Canadá). El vector contenía una casete del gen represor sensible a la temperatura \lambda cI857 bacteriófago, en el cual se había eliminado el promotor funcional P_{R}. La desactivación del represor cI857 mediante un aumento de la temperatura desde los intervalos 30-37ºC hasta 37-42ºC dio como resultado la inducción del gen bajo el control de \lambda P_{L}. La traducción del gen se controló mediante la posición de unión de ribosomas cro, seguida por debajo de una posición de restricción BgIII (AGATCT) y la ATG: ACTAAGGAGGTTAGATCTATG.
Se usaron enzimas de restricción y ligasa de ADN T4 de acuerdo con los suministradores (Pharmacia Biotech Canada Inc., Baie D'Urfe, Canadá; y New England Biolabs Ltd., Mississauga, Canadá). Se llevó a cabo una electroforesis en gel de agarosa de los fragmentos de ADN tal como se describe en Sambrook y col. (Molecular Cloning: A Laboratory Manual, 1989, Cold Spring Harbor Laboratory Press, N.Y.). Se preparó el AND de las bacterias GBS de acuerdo con procedimientos descritos en Jayarao y col. (J. Clin. Microbiol., 1991, 29: 2774). Se realizaron reacciones de amplificación de ADN mediante reacción en cadena de polimerasa (PCR) usando el Sistema DNA Termal Cycler GeneAmp PCR 2400 (Perkin Elmer, San Jose, CA). Los plásmidos usados para el secuenciamiento de ADN se purificaron usando kits de plásmidos de Qiagen (Chatsworth, CA). Los fragmentos de ADN fueron purificados en geles de agarosa usando kits de extracción de gel Qiaex II de Qiagen (Chatsworth, CA). Las transformaciones de plásmidos se llevaron a cabo mediante el método descrito por Hanahan (DNA Cloning, Glover (ed.), páginas 109-135, 1985). El secuenciamiento de injertos de ADN genómico en plásmidos se realizó usando oligonucleótidos sintéticos que fueron sintetizados mediante el sintetizador de oligonucleótidos modelo 394 (Perkin-Elmer Corp., Applied Biosystems Div. (ABI), Foster City, CA). Las reacciones de secuenciamiento se llevaron a cabo mediante PCR, usando el kit Taq Dye Deoxy Terminador Cycle Sequencing (ABI, Foster City, CA), y se realizó electroforesis de ADN en un secuenciador de ADN automatizado 373A (ABI, Foster City, CA). El montaje de la secuencia de ADN se realizó usando el programa Sequencer 3.0 (Gene Codes Corporation, Ann Arbor, MI). El análisis de las secuencias de ADN y de sus polipéptidos predichos se realizó con el programa Gene Works versión 2.45 (Intelligenetics, Inc., Mountain View, CA).
La región codificadora del gen de GBS se amplificó mediante PCR de ADN genómico de la cepa de GBS C388/90 (Ia/c) usando oligos que contenían extensiones base para la adición de posiciones de restricción BgIII (AGATCT) y XbaI (TCTAGA), respectivamente. El producto de PCR se purificó en gel de agarosa usando un kit de extracción de gel Qiaex II de Qiagen (Chatsworth, CA), se digirió con las enzimas de restricción BgIII y XbaI, y se extrajo con fenol:cloroformo antes de ser precipitado en etanol. El vector pURV22 se digirió con las enzimas de restricción BgIII y XbaI, se extrajo con fenol:cloroformo, y se precipitó en etanol. El fragmento de ADN genómico BgIII-XbaI se ligó al vector BgIII-XbaI pURV22, en el cual el gen de GBS estaba bajo el control del promotor \lambdaP_{L}. Los productos ligados se transformaron en la cepa de E. coli XLI Blue MRF' (\Delta(mcrA) 183\Delta (mcrCB-hsdSMR-mrr) 173 endA1 supE44 thi-1 recA1 gyrA96 relA1 lac [F' proAB lacI^{q}Z\DeltaM15Tn10 (Tet^{r})]^{c}) (Stratagene, La Jolla, CA) de acuerdo con los métodos descritos en Hanahan (ver anteriormente). Los transformantes que alojan plásmidos con el injerto fueron identificados mediante el análisis de células lisadas sometido a electroforesis sobre gel de agarosa (Sambrook y col., ver anteriormente). El plásmido pURV22 recombinante fue purificado usando un kit Qiagen (Qiagen, Chatsworth, CA) y la secuencia de nucleótidos del injerto de ADN se verificó mediante secuenciamiento de ADN.
El transformante XLI Blue MRF'/rpURV22 se cultivó a 34ºC con agitación a 250 rpm en caldo LB que contenía 50 \mug de canamicina por mL hasta que la A_{600} alcanzó un valor de 0,6. Con el fin de inducir la producción de la proteína de fusión, las células fueron incubadas durante otras 4 horas más a 39ºC. Las células bacterianas se recogieron mediante centrifugación, se resuspendieron en un tampón de muestra, se hirvieron durante 10 minutos y se mantuvieron a -20ºC.
Ejemplo 6 Subclonación de gen de proteína de GBS en el plásmido pCMV-GH de CMV
Se insertó la región codificadora de ADN de una proteína en fase por debajo del gen de la hormona de crecimiento humana (hGH), que estaba bajo el control transcripcional del promotor de citomegalovirus (CMV) en el vector plásmido pCMV-GH (Tang y col., Nature, 1992, 356: 152). El promotor CMV no es funcional en células de E. coli pero es activo cuando se administra el plásmido en células eucarióticas. El vector también incorporaba el gen de resistencia a ampicilina.
La región codificadora del gen se amplificó mediante PCR a partir de ADN genómico de la cepa C388/90 (Ia/c) de GBS usando los oligos que contenían extensiones base para la adición de las posiciones de restricción BgIII (AGATCT) y HindIII (AAGCTT). El producto de la PCR se purificó en gel de agarosa usando el kit de extracción de gel Qiaex II de Qiagen (Chatsworth, CA), se digirió con las enzimas de restricción BgIII y HindIII, y se extrajo con fenol:cloroformo antes de precipitarse con etanol. El vector pCMV-GH (Laboratorio del Dr. Stephen A. Johnston, Departamento de Bioquímica, Universidad de Texas, Dallas, Texas), que contiene hormona de crecimiento humana para crear proteínas de fusión, se digirió con las enzimas de restricción BamHI y HindIII, se extrajo con fenol:cloroformo, y se precipitó con etanol. El fragmento de ADN genómico de 1,3 Kb BgIII-HindIII se ligó al vector BamHI-HindIII pCMV-GH para crear la proteína de fusión hGH-GBS bajo el control del promotor CMV. Los productos ligados fueron transformados en la cepa de E. coli DH5\alpha[\phi80 lacZ \DeltaM15 endA1 recA1 hsdR17 (^{r}K^{-m}K^{+}) supE44 thi-1\lambda^{-} gyrA96 relA1 \Delta (lacZYA-argF) U169] (Gibco BRL, Gaithersburg, MD) de acuerdo con los métodos descritos por Hanahan (ver anteriormente). Los transformantes que albergan plásmidos con el injerto fueron identificados mediante análisis de células lisadas sometidas a electroforesis sobre gel de agarosa (Sambrook, J. y col., ver anterior). El plásmido pCMV recombinante fue purificado usando un kit Qiagen (Qiagen, Chatsworth, CA) y la secuencia de nucleótidos del injerto de ADN se verificó mediante secuenciamiento de ADN.
Ejemplo 7 Actividad Inmunológica de proteína de GBS para exposición a GBS
Se inyectó subcutáneamente a cuatro grupos de 12 ratones CD-1 hembra (Charles River, St-Constant, Québec, Canadá), de 6 a 8 semanas de edad, tres veces a intervalos de tres semanas con 0,1 mL de las siguientes preparaciones antigénicas: células de cepa C388/90 de GBS muertas por formaldehído (aproximadamente 6 x 10^{7} cfu), 20 \mug de la proteína de fusión, purificada por afinidad (columna de níquel), a partir de la fracción citoplásmica soluble de E. coli, ó 20 \mug de polipéptido de control tiorredoxin-His.Tag purificado por afinidad (columna de níquel). Como adyuvante, se añadieron 20 \mug de QuilA^{TM} (Cedarlane Laboratorios Ltd., Hornby, Canadá) a cada preparación antigénica. Se extrajeron muestras de suero de cada ratón antes de la inmunización (PB) y en los días 20 (TB1), 41 (TB2) y 54 (TB3) durante los protocolos de inmunización. Los sueros se congelaron a -20ºC.
Se registró un aumento en los títulos de ELISA después de cada inyección de la proteína de fusión, lo que indica una buena respuesta primaria y un aumento brusco de la respuesta inmune humoral después de la segunda y de la tercera administración. Al final del periodo de inmunización, el valor medio de los títulos de ELISA recíprocos fue de 456.145 para el grupo inmunizado con 20 \mug de proteína de fusión obtenida de cuerpos de inclusión, en comparación a 290.133 correspondiente al grupo de ratones inmunizados con la proteína procedente de la fracción soluble de E. coli. Este último resultado sugiere que la proteína obtenida a partir de cuerpos de inclusión podría ser más inmunogénica que la proteína soluble. El análisis de sueros de ratones en ELISA usando la tiorredoxin-His.Tag purificada por afinidad para cubrir placas demostró que se obtienen títulos despreciables frente a la porción de tiorredoxin-His.Tag de la proteína de fusión. La reactividad de los sueros de ratones inyectados con la proteína de fusión recombinante también fue evaluada mediante ELISA frente a células enteras muertas por formaldehído de GBS de cepa C388/90. Los anticuerpos inducidos por inmunización con proteína de fusión recombinante también reconocieron sus epítopos específicos sobre células de GBS, lo que indica que su conformación está suficientemente próxima a la de la proteína estreptococal nativa para inducir anticuerpos reactivos.
Para verificar si la respuesta inmune inducida por la inmunización podría proteger frente a una infección de GBS, se expuso a los ratones a 3,5 x 10^{5} cfu de GBS de la cepa C388/90 (Ia/c) y 1,2 x 10^{5} cfu de GBS de la cepa NCS246 (II/R), cuyos resultados se muestran en las tablas 3 y 4, respectivamente. Los ratones inmunizados con péptido de tiorredoxin-His.Tag de control no fueron protegidos frente a la exposición a cualquiera de las cepas de GBS, mientras que los inmunizados con células enteras muertas por formaldehído de cepa C388/90 sólo proporcionaron protección frente a la exposición homóloga. La proteína de fusión tiorredoxin-His.Tag-GBS de la invención protegió a los ratones frente a la exposición con ambas cepas de GBS. Los cultivos de sangre y de bazo de estos ratones no revelaron presencia alguna de GBS.
\vskip1.000000\baselineskip
TABLA 3 Supervivencia a exposición a GBS cepa C388/90 (Ia/c)^{1}
3
TABLA 4 Supervivencia a exposición a GBS cepa NCS246 (II/R)^{1}
4
\vskip1.000000\baselineskip
Ejemplo 8 La inmunización con proteína de GBS recombinante confiere protección frente a infección de GBS experimental
Este Ejemplo ilustra la protección de ratones contra infección fatal de GBS mediante inmunización con la proteína recombinante correspondiente a la SEQ ID NO: 39.
Se inmunizaron grupos de 10 ratones CD-1 hembra (Charles River) subcutáneamente tres veces con intervalos de tres semanas con 20 \mug de proteína recombinante purificada a partir de la cepa de E. coli BLR (Novagen), que aloja el vector plásmido pURV22 recombinante que contiene el gen de GBS correspondiente a la SEQ ID NO: 42, en presencia de 20 \mug de adyuvante QuilA^{TM} (Cedarlane Laboratorios Ltd, Hornby, Canadá) o, a modo de control, solo con adyuvante QuilA^{TM} en PBS. Se tomaron muestras de sangre del seno orbital en los días 1, 22 y 43 antes de cada inmunización, y catorce días (día 57) después de la tercera inyección. Una semana después, se expusieron los ratones a aproximadamente entre 10^{4} y 10^{5} cfu de diversas cepas virulentas de GBS. Las muestras del inóculo de exposición a GBS se colocaron en placas de agar de sangre de oveja al 5%/TSA para determinar la CFU y para verificar la dosis de exposición. Se registraron las muertes durante un periodo de 14 días, y en el día 14 después de la exposición los ratones supervivientes fueron sacrificados y se determinó la presencia de organismos GBS en la sangre y en el bazo. Los datos de supervivencia se muestran en la Tabla 5.
Los sueros pre-exposición fueron analizados en busca de la presencia de anticuerpos reactivos con GBS mediante inmunoensayos estándar. Los análisis Elisa y de inmunotinción indicaron que la inmunización con proteína de GBS recombinante producida en E. coli provocó anticuerpos reactivos con proteínas de GBS nativas y recombinantes. Las respuestas de anticuerpos a GBS se describen en el Ejemplo 9.
TABLA 5 Capacidad de la proteína de GBS recombinante correspondiente a la SEQ ID NO: 39 para provocar protección frente a la exposición a 8 cepas diversas de GBS
5
Todos los hemocultivos de ratones supervivientes dieron negativo en el 14 después de la exposición. Los cultivos de bazo de los ratones supervivientes dieron negativo excepto para algunos ratones del experimento MB-11.
Ejemplo 9 La vacunación con la proteína de GBS recombinante provoca una respuesta inmune frente a GBS
Se inmunizó grupos de 10 ratones CD-1 hembra subcutáneamente con proteína de GBS recombinante correspondiente a la SEQ ID NO: 39, tal como se describe en el Ejemplo 8. Con el fin de establecer la respuesta de anticuerpos frente a la proteína de GBS nativa, se analizaron los sueros procedentes de muestras de sangre antes de cada inmunización y a los catorce días de la tercera inmunización en busca de anticuerpos reactivos a células de GBS mediante ELISA usando placas recubiertas con células de GBS muertas por formaldehído de tipo III de cepa NCS 954, de tipo Ib de cepa ATCC12401, de tipo V de cepa NCS 535 ó de tipo VI de cepa NCS 9842. La especificidad de los anticuerpos activados por la proteína de GBS se confirmó mediante análisis Western blot realizados sobre extractos celulares de GBS y sobre antígenos recombinantes purificados. Los resultados mostrados en la Figura 10 demuestran claramente que los animales responden enérgicamente a la proteína de GBS recombinante usada como inmunógeno, con títulos de anticuerpos recíprocos medios que varían entre 12.000 y 128.000, para sueros recogidos después de la tercera inmunización, dependiendo del antígeno que recubre. Todos los sueros preinmunización resultaron negativos cuando fueron evaluados con una dilución de 1 : 100. Los anticuerpos reactivos a GBS eran detectables en los sueros de cada animal después de una única inyección de proteína de GBS recombinante.
Ejemplo 10 Conservación antigénica de la proteína de GBS de la presente invención
Se usaron anticuerpos monoclonales (MAbs) específicos de la proteína de GBS de la presente invención para demostrar que dicho antígeno superficial se produce en todos los GBS, y también que es antigénicamente altamente conservado.
Se usó una colección de 68 elementos aislados de GBS para evaluar la actividad de MAbs específicos de GBS. Dichas cepas se obtuvieron del National Center for Streptococcus, del Provincial Laboratory of Public Health for Northern Alberta, Canadá; del Centre Hospitalier Universitaire de Quebec, Pabellón CHUL, Québec, Canadá; de la American Type Culture Collection, EE.UU.; del Laboratoire de Sante Publique du Québec, Canadá; y del Dept. of Infectious Disease, Children's Hospital and Medical Center, Seattle, EE.UU. Se evaluó los ocho MAbs frente al siguiente panel de cepas: 6 elementos aislados de serotipo Ia ó Ia/c, 3 elementos aislados de serotipo Ib, 4 elementos aislados de serotipo II, 14 elementos aislados de serotipo III, 2 elementos aislados de serotipo IV, 2 elementos aislados de serotipo V, 2 elementos aislados de serotipo VI, 2 elementos aislados de serotipo VII, 1 elemento aislado de serotipo VIII, 10 elementos aislados que no estaban serotipados y 3 cepas bovinas de S. agalactiae. También se hizo reaccionar MAb 3A2 con GBS adicional: 9 elementos aislados de serotipo Ia/c y 10 elementos aislados de serotipo V. Se cultivaron las cepas una noche sobre placas de agar de sangre a 37ºC en una atmósfera con un 5% en CO_{2}. Los cultivos fueron almacenados a -70ºC en un caldo de infusión de corazón con un 20% (v/v) de glicerol.
Para obtener los MAbs específicos de proteína de GBS, se inmunizó ratones tres veces a intervalos de tres semanas con 20 \mug de proteína de GBS recombinante purificada (SEQ ID NO: 44), en presencia de adyuvante QuilA^{TM} al 20%. Se generaron líneas celulares de hibridoma mediante fusión de células de bazo recuperadas de los ratones inmunizados con la línea celular de mieloma SP2/0 no secretora tal como se ha descrito previamente (Hamel, J. y col., 1987, J. Med. Microbiol. 23: 163-170). Se evaluaron los sobrenadantes de clones híbridos en busca de una producción de anticuerpos específicos mediante ELISA usando GBS desactivado por formaldehído y proteína de GBS recombinante purificada (SEQ ID NO: 39 ó 44) como antígeno cubriente, tal como se ha descrito previamente (Hamel, J. y col., 1987, J. Med. Microbiol. 23: 163-170). Los híbridos específicos fueron clonados mediante diluciones limitantes, fueron expandidos y congelados en nitrógeno líquido. La producción de proteína de GBS recombinante se presentó en los Ejemplos 4 y 5. La proteína de GBS recombinante purificada o el GBS desactivado por formaldehído fueron redisueltos mediante electroforesis usando el sistema tampón discontinuo de Laemmli, tal como recomienda el fabricante, y a continuación se transfirieron a una membrana de nitrocelulosa para realizar la inmunotinción Western tal como se ha descrito previamente (Martin y col., 1992, Infect. Immun. 60: 2718-2725).
Los experimentos de inmunotinción de Western claramente indicaron que los ocho MAbs reconocen una banda de proteína que se corresponde con proteína de GBS recombinante purificada (SEQ ID NO: 39). Dichos MAbs también reaccionaron con una banda de proteína presente en todos los elementos aislados de GBS evaluados. La reactividad de estos MAbs específicos de GBS se presenta en la Tabla 6. Cada MAb reaccionó bien con los 46 GBS. Además, estos MAbs también reconocieron las 3 cepas de S. agalactiae de origen bovino que fueron evaluadas. El MAb 3A2 también reconoció diecinueve GBS; 9 elementos aislados de serotipo Ia/c y 10 de serotipo V. Los otros MAbs no fueron evaluados frente a estas cepas adicionales.
Estos resultados demuestran que la proteína de GBS (SEQ ID NO: 39) fue producida por todos los 65 GBS, y por las 3 cepas de S. agalactiae de origen bovino que fueron evaluadas. Aún más importante, estos resultados claramente demuestran que los epítopos reconocidos por estos ocho MAbs específicos de GBS estaban distribuidos y conservados ampliamente entre los GBS. Estos resultados también indicaron que dichos epítopos no estaban restringidos a elementos aislados relacionados serológicamente, ya que se evaluaron representantes de todos los serotipos de GBS conocidos, incluyendo los grupos principales causantes de enfermedades.
En conclusión, los datos presentados en este Ejemplo demuestran claramente que la proteína de GBS de la presente invención es producida por todos los GBS y que es antigénicamente altamente conservada.
TABLA 6 Reactividad de ocho MAbs específicos de proteína de GBS con diferentes cepas de S. agalactiae evaluada mediante inmunotinciones Western
6
<110> BioChem Vaccins
\hskip1cm RIOUX, Clément
\hskip1cm DENIS, Martin
\hskip1cm BRODEUR, Bernard R.
\hskip1cm HAMEL, Josée
\hskip1cm CHARLEBOIS, Isabelle
\hskip1cm BOYER, Martine
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<120> NUEVOS ANTÍGENOS DE ESTREPTOCOCOS DEL GRUPO B
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<130> 12806-9PCT
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<150> 60/075,425
\vskip0.400000\baselineskip
<151> 1998-02-20
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<160>44
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<170> FastSEQ para Windows Versión 3.0
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 1
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 4514
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Estreptococos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> CDS
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (3)...(464)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<221> CDS
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (534)...(887)
\vskip0.400000\baselineskip
<223>
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<221> CDS
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1024)...(1767)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<221> CDS
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1841)... (4288)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<221> CDS
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (2735)...(4288)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 1
\vskip1.000000\baselineskip
7
8
9
10
11
12
13
14
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 2
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 154
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Estreptococos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 2
\vskip1.000000\baselineskip
15
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 3
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 118
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Estreptococos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 3
\vskip1.000000\baselineskip
16
17
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 4
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 247
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Estreptococos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 4
\vskip1.000000\baselineskip
18
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 5
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 816
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Estreptococos
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 5
\vskip1.000000\baselineskip
19
20
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 6
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 518
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Estreptococos
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 6
\vskip1.000000\baselineskip
21
22
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 7
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 5126
\vskip0.400000\baselineskip
<212> Adn
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Estreptococos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> CDS
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)...(687)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<221> CDS
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (701)...(2557)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<221> CDS
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (2566)...(3036)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<221> CDS
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (3106)...(4842)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<221> CDS
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (4850)...(5125)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 7
\vskip1.000000\baselineskip
23
24
25
26
27
28
29
30
31
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 8
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 229
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Estreptococos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 8
\vskip1.000000\baselineskip
32
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 9
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 622
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Estreptococos
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 9
\vskip1.000000\baselineskip
33
34
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 10
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 157
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Estreptococos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 10
\vskip1.000000\baselineskip
35
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 11
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 579
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Estreptococos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 11
\vskip1.000000\baselineskip
36
37
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 12
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 92
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Estreptococos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 12
\vskip1.000000\baselineskip
38
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 13
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 5215
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Estreptococos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> CDS
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (3)...(122)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<221> CDS
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (133)...(2511)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<221> CDS
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (367)...(2511)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<221> CDS
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (2946)...(2716)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> de cadena complementaria
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<221> CDS
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (3252)...(2995)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> de cadena complementaria
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<221> CDS
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (3676)...(3299)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> de cadena complementaria
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<221> CDS
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (4124)...(3837)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> de cadena complementaria
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<221> CDS
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (5214)...(4351)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> de cadena complementaria
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 13
\vskip1.000000\baselineskip
39
40
41
42
43
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 14
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 40
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Estreptococos
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 14
\vskip1.000000\baselineskip
44
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 15
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 793
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Estreptococos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 15
45
46
47
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 16
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 715
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Estreptococos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 16
\vskip1.000000\baselineskip
48
49
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 17
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 77
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Estreptococos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 17
\vskip1.000000\baselineskip
50
51
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 18
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 86
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Estreptococos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 18
\vskip1.000000\baselineskip
52
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 19
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 126
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Estreptococos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 19
\vskip1.000000\baselineskip
53
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 20
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 96
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Estreptococos
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 20
\vskip1.000000\baselineskip
54
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 21
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 288
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Estreptococos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 21
\vskip1.000000\baselineskip
55
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 22
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 5058
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Estreptococos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> CDS
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)...(663)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<221> CDS
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (763)...(1344)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<221> CDS
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1362)...(1739)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<221> CDS
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (2266)...(5058)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 22
\vskip1.000000\baselineskip
56
57
58
59
60
61
62
63
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 23
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 221
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Estreptococos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 23
\vskip1.000000\baselineskip
64
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 24
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 194
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Estreptococos
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 24
\vskip1.000000\baselineskip
65
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 25
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 126
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Estreptococos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 25
\vskip1.000000\baselineskip
66
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 26
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 931
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Estreptococos
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 26
\vskip1.000000\baselineskip
67
68
\newpage
69
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 27
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 5607
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Estreptococos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> CDS
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (2)...(301)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 27
\vskip1.000000\baselineskip
70
71
72
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 28
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 111
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Estreptococos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 28
73
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 29
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 173
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Estreptococos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 29
74
75
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 30
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 389
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Estreptococos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 30
\vskip1.000000\baselineskip
76
77
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 31
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 169
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Estreptococos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 31
78
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 32
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 4171
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Estreptococos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 32
79
80
81
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 33
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 649
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Estreptococos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 33
\vskip1.000000\baselineskip
82
83
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 34
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 119
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Estreptococos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 34
84
85
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 35
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 326
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Estreptococos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 35
\vskip1.000000\baselineskip
86
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 36
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 247
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Estreptococos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 36
\vskip1.000000\baselineskip
88
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 37
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 3480
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Estreptococos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 37
\vskip1.000000\baselineskip
89
90
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 38
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 306
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Estreptococos
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 38
\vskip1.000000\baselineskip
91
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 39
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 434
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Estreptococos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 39
\vskip1.000000\baselineskip
92
93
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 40
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 232
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Estreptococos
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 40
94
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 41
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 39
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Estreptococos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 41
95
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 42
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 1305
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Estreptococos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 42
96
97
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 43
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 1230
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Estreptococos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 43
98
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 44
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 409
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Estreptococos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 44
99
100

Claims (43)

1. Un polinucleótido aislado que codifica un polipéptido que tiene al menos un 70% de identidad con un segundo polipéptido que tiene una secuencia seleccionada del grupo que consiste en SEQ ID NO: 39 y SEQ ID NO: 44, o un fragmento de dicho polipéptido, en donde dicho polipéptido o fragmento de dicho polipéptido retiene la capacidad de inducir una respuesta inmune específica de estreptococos del grupo B.
2. El polinucleótido aislado de acuerdo con la reivindicación 1, que codifica un polipéptido que tiene al menos un 70% de identidad con un segundo polipéptido que tiene una secuencia seleccionada del grupo que consiste en SEQ ID NO: 39 y SEQ ID NO: 44, en donde dicho polipéptido retiene la capacidad de inducir una respuesta inmune específica de estreptococos del grupo B.
3. Un polinucleótido de acuerdo con la reivindicación 1 ó 2, en donde dicho polinucleótido codifica un polipéptido que tiene al menos un 95% de identidad con el segundo polipéptido.
4. Un polinucleótido aislado que codifica un polipéptido que tiene al menos un 70% de identidad con un segundo polipéptido capaz de generar anticuerpos que presentan especificidad de unión por un polipéptido que tiene una secuencia seleccionada del grupo que consiste en SEQ ID NO: 39 y SEQ ID NO: 44, o un fragmento de dicho polipéptido, y en donde dicho polipéptido o fragmento de dicho polipéptido retiene la capacidad de inducir una respuesta inmune específica de estreptococos del grupo B.
5. Un polinucleótido aislado que codifica un polipéptido que tiene al menos un 70% de identidad con un segundo polipéptido capaz de generar anticuerpos que presentan especificidad de unión por un polipéptido que tiene una secuencia seleccionada del grupo que consiste en SEQ ID NO: 39 y SEQ ID NO: 44, y en donde dichos polipéptidos retienen la capacidad de inducir una respuesta inmune específica de estreptococos del grupo B.
6. Un polinucleótido aislado que es complementario al polinucleótido de la reivindicación 1 ó 2.
7. Un polinucleótido aislado que es complementario al polinucleótido de la reivindicación 4 ó 5.
8. El polinucleótido de la reivindicación 1 ó 2, en donde dicho polinucleótido es ADN.
9. El polinucleótido de la reivindicación 4 ó 5, en donde dicho polinucleótido es ADN.
10. El polinucleótido de la reivindicación 1 ó 2, en donde dicho polinucleótido es ARN.
11. El polinucleótido de la reivindicación 4 ó 5, en donde dicho polinucleótido es ARN.
12. Un polinucleótido aislado que se hibrida en condiciones severas con el complemento de un segundo polinucleótido que tiene una secuencia seleccionada del grupo que consiste en SEQ ID NO: 37, SEQ ID NO: 42 y SEQ ID NO: 43, o un fragmento de dicho polinucleótido, en donde dicho polinucleótido tiene al menos un 70% de identidad con dicho segundo polinucleótido y en donde dicho polinucleótido, o fragmento del mismo, codifica un polipéptido que retiene la capacidad de inducir una respuesta inmune específica de estreptococos del grupo B.
13. Un polinucleótido aislado que se hibrida en condiciones severas con un segundo polinucleótido que tiene una secuencia seleccionada del grupo que consiste en SEQ ID NO: 37, SEQ ID NO: 42 y SEQ ID NO: 43, en donde dicho polinucleótido tiene al menos un 70% de identidad con dicho segundo polinucleótido y en donde dicho polinucleótido codifica un polipéptido que retiene la capacidad de inducir una respuesta inmune específica de estreptococos del
grupo B.
14. Un polinucleótido aislado que se hibrida en condiciones severas con el complemento de un segundo polinucleótido que tiene una secuencia seleccionada del grupo que consiste en SEQ ID NO: 37, SEQ ID NO: 42 y SEQ ID NO: 43, en donde dicho polinucleótido tiene al menos un 95% de identidad con dicho segundo polinucleótido y en donde dicho polinucleótido codifica un polipéptido que retiene la capacidad de inducir una respuesta inmune específica de estreptococos del grupo B.
15. Un polinucleótido de acuerdo con la reivindicación 14, que se hibrida en condiciones severas con el complemento de un segundo polinucleótido que tiene la secuencia SEQ ID NO: 37.
16. Un polinucleótido de acuerdo con la reivindicación 14, que se hibrida en condiciones severas con el complemento de un segundo polinucleótido que tiene la secuencia SEQ ID NO: 42.
17. Un polinucleótido de acuerdo con la reivindicación 14, que se hibrida en condiciones severas con el complemento de un segundo polinucleótido que tiene la secuencia SEQ ID NO: 43.
18. Un polinucleótido de acuerdo con la reivindicación 12, en donde dicho polinucleótido tiene al menos un 95% de complementariedad con el segundo polinucleótido.
19. Un vector que comprende el polinucleótido de la reivindicación 1 ó 2, en donde dicho polinucleótido está ligado operativamente a una región de control de expresión.
20. Un vector que comprende el polinucleótido de la reivindicación 4 ó 5, en donde dicho polinucleótido está ligado operativamente a una región de control de expresión.
21. Una célula hospedante transfectada con el vector de la reivindicación 19.
22. Una célula hospedante transfectada con el vector de la reivindicación 20.
23. Un proceso para producir un polipéptido que comprende cultivar una célula hospedante de acuerdo con la reivindicación 21 en las condiciones adecuadas para la expresión de dicho polipéptido.
24. Un proceso para producir un polipéptido que comprende cultivar una célula hospedante de acuerdo con la reivindicación 22 en las condiciones adecuadas para la expresión de dicho polipéptido.
25. Un polipéptido aislado que tiene al menos un 70% de identidad con un segundo polipéptido que tiene una secuencia seleccionada del grupo que consiste en: SEQ ID NO: 39 y SEQ ID NO: 44, o un fragmento de dicho polipéptido, y en donde dicho polipéptido o fragmento de dicho polipéptido retiene la capacidad de inducir una respuesta inmune específica de estreptococos del grupo B.
26. Un polipéptido aislado que tiene al menos un 70% de identidad con un segundo polipéptido que tiene una secuencia seleccionada del grupo que consiste en SEQ ID NO: 39 y SEQ ID NO: 44, y en donde dicho polipéptido retiene la capacidad de inducir una respuesta inmune específica de estreptococos del grupo B.
27. El polipéptido aislado de la reivindicación 25 ó 26 que tiene una secuencia de acuerdo con la SEQ ID NO: 39.
28. El polipéptido aislado de la reivindicación 25 ó 26 que tiene una secuencia de acuerdo con la SEQ ID NO: 44.
29. Un polipéptido aislado que tiene al menos un 70% de identidad con un segundo polipéptido, y que es capaz de generar anticuerpos que presentan especificidad de unión por un polipéptido que tiene una secuencia seleccionada del grupo que consiste en: SEQ ID NO: 39 y SEQ ID NO: 44, o un fragmento de dicho polipéptido, en donde dicho polipéptido o fragmento de dicho polipéptido retiene la capacidad de inducir una respuesta inmune específica de estreptococos del grupo B.
30. Un polipéptido aislado que tiene al menos un 70% de identidad con un segundo polipéptido, y que es capaz de generar anticuerpos que presentan especificidad de unión por un polipéptido que tiene una secuencia seleccionada del grupo que consiste en: SEQ ID NO: 39 y SEQ ID NO: 44, en donde dichos polipéptidos retienen la capacidad de inducir una respuesta inmune específica de estreptococos del grupo B.
31. El polipéptido aislado de la reivindicación 29 ó 30 que tiene una secuencia de acuerdo con la SEQ ID NO:
39.
32. El polipéptido aislado de la reivindicación 29 ó 30 que tiene una secuencia de acuerdo con la SEQ ID NO:
44.
33. Un polipéptido aislado que tiene una secuencia de aminoácidos seleccionada del grupo que consiste en SEQ ID NO: 39, o fragmentos del mismo, y en donde dicho polipéptido o fragmento de dicho polipéptido retiene la capacidad de inducir una respuesta inmune específica de estreptococos del grupo B.
34. Un polipéptido aislado de acuerdo con la reivindicación 33, en donde se elimina el residuo N-terminal Met.
35. Un polipéptido aislado de acuerdo con la reivindicación 33, en donde se elimina la secuencia de aminoácidos secretora.
36. Una composición de vacuna que comprende un polipéptido de acuerdo con una cualquiera de las reivindicaciones 25 a 33 y un vehículo, diluyente o adyuvante farmacéuticamente aceptable.
37. Una composición de vacuna que comprende un polipéptido de acuerdo con la reivindicación 34 y un vehículo, diluyente o adyuvante farmacéuticamente aceptable.
38. Una composición de vacuna que comprende un polipéptido de acuerdo con la reivindicación 35 y un vehículo, diluyente o adyuvante farmacéuticamente aceptable.
39. El uso de un polipéptido de acuerdo con una cualquiera de las reivindicaciones 25 a 33 para la fabricación de una vacuna para el tratamiento terapéutico o profiláctico de infección bacteriana estreptococal de grupo B en un animal susceptible a la infección estreptococal de grupo B.
40. El uso de un polipéptido de acuerdo con la reivindicación 34 para la fabricación de una vacuna para el tratamiento terapéutico o profiláctico de infección bacteriana estreptococal de grupo B en un animal susceptible a la infección estreptococal de grupo B.
41. El uso de un polipéptido de acuerdo con la reivindicación 35 para la fabricación de una vacuna para el tratamiento terapéutico o profiláctico de infección bacteriana estreptococal de grupo B en un animal susceptible a la infección estreptococal de grupo B.
42. El uso de acuerdo con una cualquiera de las reivindicaciones 39 a 41, en donde dicho animal es un bovino.
43. El uso de acuerdo con una cualquiera de las reivindicaciones 39 a 41, en donde dicho animal es un humano.
ES99904646T 1998-02-20 1999-02-17 Antigenos de estreptococos del grupo b. Expired - Lifetime ES2278436T3 (es)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US7542598P 1998-02-20 1998-02-20
US75425P 1998-02-20

Publications (1)

Publication Number Publication Date
ES2278436T3 true ES2278436T3 (es) 2007-08-01

Family

ID=22125658

Family Applications (2)

Application Number Title Priority Date Filing Date
ES99904646T Expired - Lifetime ES2278436T3 (es) 1998-02-20 1999-02-17 Antigenos de estreptococos del grupo b.
ES10180962.2T Expired - Lifetime ES2540281T3 (es) 1998-02-20 1999-02-17 Antígenos de estreptococos del grupo B

Family Applications After (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
ES10180962.2T Expired - Lifetime ES2540281T3 (es) 1998-02-20 1999-02-17 Antígenos de estreptococos del grupo B

Country Status (22)

Country Link
US (4) US20030031682A1 (es)
EP (3) EP2280072B1 (es)
JP (2) JP4637350B2 (es)
KR (1) KR100771148B1 (es)
CN (2) CN1944652A (es)
AP (1) AP2000001886A0 (es)
AT (1) ATE347600T1 (es)
AU (1) AU2505999A (es)
CA (1) CA2321106C (es)
CZ (1) CZ301056B6 (es)
DE (1) DE69934299T2 (es)
EA (1) EA200000860A1 (es)
ES (2) ES2278436T3 (es)
HU (1) HU228497B1 (es)
ID (1) ID27482A (es)
IL (3) IL137921A0 (es)
NO (2) NO330491B1 (es)
NZ (1) NZ529854A (es)
OA (1) OA11686A (es)
TR (1) TR200002437T2 (es)
WO (1) WO1999042588A2 (es)
ZA (1) ZA991325B (es)

Families Citing this family (31)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
HU228497B1 (en) 1998-02-20 2013-03-28 Id Biomedical Corp Quebec Group b steptococcus antigens
JP2002531054A (ja) * 1998-07-27 2002-09-24 マイクロビアル テクニクス リミティッド B群連鎖球菌由来の核酸およびタンパク質
US7098182B2 (en) 1998-07-27 2006-08-29 Microbial Technics Limited Nucleic acids and proteins from group B streptococcus
GB0105922D0 (en) * 2001-03-09 2001-04-25 Microscience Ltd Genes and proteins, and their use
US6812021B1 (en) 1998-12-22 2004-11-02 Microscience Limited Genes and proteins and their use
US6890539B2 (en) 1998-12-22 2005-05-10 Microscience, Ltd. Genes and proteins, and their use
US7128918B1 (en) 1998-12-23 2006-10-31 Id Biomedical Corporation Streptococcus antigens
CA2382795A1 (en) * 1999-08-25 2001-03-01 Medimmune, Inc. Homologs of a pneumococcal protein and fragments for vaccines
US6833356B1 (en) 1999-08-25 2004-12-21 Medimmune, Inc. Pneumococcal protein homologs and fragments for vaccines
US6833134B2 (en) 2000-06-12 2004-12-21 University Of Saskacthewan Immunization of dairy cattle with GapC protein against Streptococcus infection
DK1294771T3 (da) 2000-06-12 2008-12-15 Univ Saskatchewan Kimært GapC-protein fra Streptococcus og anvendelse deraf til vaccinering og diagnosticering
EP1734050A3 (en) * 2000-06-12 2012-12-05 University Of Saskatchewan Immunization of dairy cattle with GapC protein against streptococcus infection
US6866855B2 (en) 2000-06-12 2005-03-15 University Of Saskatchewan Immunization of dairy cattle with GapC protein against Streptococcus infection
ES2273861T3 (es) * 2000-06-12 2007-05-16 University Of Saskatchewan Inmunizacion de ganado vacuno lechero con proteina gapc frente a infecciones por streptococcus.
CA2424433A1 (en) * 2000-10-13 2002-04-18 Shire Biochem Inc. Bvh-a2 and bvh-a3 antigens of group b streptococcus
AU1412702A (en) 2000-10-27 2002-05-06 Chiron Spa Nucleic acids and proteins from streptococcus groups a and b
AU1686302A (en) * 2000-12-21 2002-07-01 Shire Biochem Inc Streptococcus pyogenes antigens and corresponding dna fragments
FR2824074A1 (fr) * 2001-04-26 2002-10-31 Pasteur Institut Sequence du genome streptococcus agalactiae, application au developpement de vaccins, d'outils de diagnostic, et a l'identification de cibles therapeutiques
EP1472353B1 (en) * 2002-02-11 2012-02-01 ID Biomedical Corporation Group b streptococcus antigen
GB0210128D0 (en) * 2002-05-02 2002-06-12 Chiron Spa Nucleic acids and proteins from streptococcus groups A & B
PT1648500E (pt) 2003-07-31 2014-10-10 Novartis Vaccines & Diagnostic Composições imunogénicas para estreptococos piogenes
US8945589B2 (en) 2003-09-15 2015-02-03 Novartis Vaccines And Diagnostics, Srl Immunogenic compositions for Streptococcus agalactiae
EP1784211A4 (en) 2004-07-29 2010-06-30 Novartis Vaccines & Diagnostic IMMUNOGENIC COMPOSITIONS FOR GRAMPOSITIVE BACTERIA SUCH AS STREPTOCOCCUS AGALACTIAE
JP2008544949A (ja) 2004-10-08 2008-12-11 ノバルティス バクシンズ アンド ダイアグノスティックス,インコーポレーテッド 化膿性レンサ球菌のための免疫激性組成物および治療用組成物
JP2008530021A (ja) * 2005-02-08 2008-08-07 アイディー バイオメディカル コーポレイション オブ ケベック シー.オー.ビー. アズ グラクソスミスクライン バイオロジカルズ ノース アメリカ 医薬組成物
GB0605247D0 (en) * 2006-03-15 2006-04-26 Chiron Srl Compositions and methods for immunisation
MX2010002773A (es) 2007-09-12 2010-03-31 Novartis Ag Antigenos mutantes de gas57 y anticuerpos de gas57.
CA2709927C (en) 2007-12-21 2017-05-16 Novartis Ag Mutant forms of streptolysin o
CN102304185A (zh) * 2011-09-02 2012-01-04 黑龙江八一农垦大学 预防奶牛乳房炎的融合蛋白sip-trap及制备方法和应用
EP2949340A1 (en) * 2014-05-30 2015-12-02 IDT Biologika GmbH Vaccine composition against Streptococcus suis infection
CN115057944B (zh) * 2022-06-24 2025-06-24 南京农业大学 一种针对所有gbs血清型的多表位亚单位疫苗

Family Cites Families (19)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4431739A (en) 1979-11-05 1984-02-14 Genentech, Inc. Transformant bacterial culture capable of expressing heterologous protein
US4425437A (en) 1979-11-05 1984-01-10 Genentech, Inc. Microbial polypeptide expression vehicle
US5302386A (en) * 1986-04-16 1994-04-12 Brigham And Women's Hospital, Inc. Bacterial antigens, antibodies, vaccines and methods of manufacture
US5472696A (en) * 1988-02-26 1995-12-05 Univ. Of Florida Research Foundation, Inc. Antigen of group B streptococci
US5648241A (en) * 1989-09-15 1997-07-15 The General Hospital Corporation Conjugate vaccine against group B streptococcus
US5679768A (en) * 1991-02-15 1997-10-21 Uab Research Foundation Epitopic regions of pneumococcal surface protein A
US5225331A (en) * 1991-04-25 1993-07-06 National Research Council Of Canada Immunoassay for detecting group b streptococcus
JP3976334B2 (ja) * 1993-03-19 2007-09-19 リンダール, グンナル B群れんさ球菌の多くの菌株に対する免疫を与える細胞表面タンパク質であるタンパク質Rib、そのタンパク質の精製方法、薬剤キットおよび医薬組成物
US5595740A (en) * 1994-05-16 1997-01-21 University Of Florida Cloning of non-IgA FC binding forms of the group B streptococcal beta antigens
EP0754703A4 (en) * 1994-11-01 1999-11-24 Kirin Brewery PEPTIDE SEQUENCE FORMING A MUCIN CHAIN AND TECHNIQUE FOR MODIFYING THE PROTEIN TO BE LINKED TO THE MUCIN CHAIN
DE69739981D1 (de) * 1996-10-31 2010-10-14 Human Genome Sciences Inc Streptococcus pneumoniae-Antigene und Impfstoffe
HU228497B1 (en) * 1998-02-20 2013-03-28 Id Biomedical Corp Quebec Group b steptococcus antigens
US6248329B1 (en) * 1998-06-01 2001-06-19 Ramaswamy Chandrashekar Parasitic helminth cuticlin nucleic acid molecules and uses thereof
JP2002531054A (ja) 1998-07-27 2002-09-24 マイクロビアル テクニクス リミティッド B群連鎖球菌由来の核酸およびタンパク質
PT1140157E (pt) 1998-12-21 2009-05-06 Medimmune Inc Proteínas de streptococcus pneumoniae e fragmentos imunogénicos para vacinas
CN100398653C (zh) 1998-12-23 2008-07-02 益得生物医学公司 新颖的链球菌抗原
US7128918B1 (en) * 1998-12-23 2006-10-31 Id Biomedical Corporation Streptococcus antigens
GB9921125D0 (en) 1999-09-07 1999-11-10 Microbial Technics Limited Proteins
EP1472353B1 (en) 2002-02-11 2012-02-01 ID Biomedical Corporation Group b streptococcus antigen

Also Published As

Publication number Publication date
US20030031682A1 (en) 2003-02-13
KR100771148B1 (ko) 2007-10-29
WO1999042588A3 (en) 2000-03-23
US7914794B2 (en) 2011-03-29
US8580262B2 (en) 2013-11-12
CN1268745C (zh) 2006-08-09
NO20004161D0 (no) 2000-08-18
EP2280072A2 (en) 2011-02-02
NO330491B1 (no) 2011-05-02
IL137921A (en) 2008-06-05
ID27482A (id) 2001-04-12
US20030228323A1 (en) 2003-12-11
CN1297482A (zh) 2001-05-30
DE69934299D1 (de) 2007-01-18
KR20010034518A (ko) 2001-04-25
CN1944652A (zh) 2007-04-11
IL190018A0 (en) 2008-08-07
US8226953B2 (en) 2012-07-24
AP2000001886A0 (en) 2000-09-30
HU228497B1 (en) 2013-03-28
AU2505999A (en) 1999-09-06
HUP0102304A3 (en) 2008-03-28
WO1999042588A2 (en) 1999-08-26
JP4637350B2 (ja) 2011-02-23
NO20004161L (no) 2000-10-19
EP1757697A3 (en) 2007-05-30
OA11686A (en) 2005-01-12
TR200002437T2 (tr) 2000-11-21
DE69934299T2 (de) 2007-07-05
US20110182923A1 (en) 2011-07-28
EP2280072A3 (en) 2012-06-06
NZ529854A (en) 2005-08-26
EP1757697A2 (en) 2007-02-28
US20130095498A1 (en) 2013-04-18
EP1054971B1 (en) 2006-12-06
EP2280072B1 (en) 2015-03-25
ES2540281T3 (es) 2015-07-09
ZA991325B (en) 1999-08-20
CA2321106A1 (en) 1999-08-26
CZ301056B6 (cs) 2009-10-29
JP2002507396A (ja) 2002-03-12
EA200000860A1 (ru) 2001-10-22
EP1054971A2 (en) 2000-11-29
JP2009242403A (ja) 2009-10-22
NO20101682L (no) 2000-10-19
IL137921A0 (en) 2001-10-31
ATE347600T1 (de) 2006-12-15
HUP0102304A1 (hu) 2001-10-28
CA2321106C (en) 2013-07-23
CZ20003054A3 (cs) 2001-03-14
IL190018A (en) 2011-07-31

Similar Documents

Publication Publication Date Title
ES2278436T3 (es) Antigenos de estreptococos del grupo b.
ES2400280T3 (es) Antígenos de estreptococos
US7262024B2 (en) Streptococcus antigens
US7074415B2 (en) Streptococcus antigens
AU2010227084B2 (en) Group B Streptococcus Antigens
AU2007200130B2 (en) Group B Streptococcus Antigens
EP1950302B1 (en) Streptococcus antigens
HK1100752A (en) Group b streptococcus antigens
HK1118575B (en) Streptococcus antigens