ES2278436T3 - Antigenos de estreptococos del grupo b. - Google Patents
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Abstract
Un polinucleótido aislado que codifica un polipéptido que tiene al menos un 70% de identidad con un segundo polipéptido que tiene una secuencia seleccionada del grupo que consiste en SEQ ID NO: 39 y SEQ ID NO: 44, o un fragmento de dicho polipéptido, en donde dicho polipéptido o fragmento de dicho polipéptido retiene la capacidad de inducir una respuesta inmune específica de estreptococos del grupo B.
Description
Antígenos de estreptococos del grupo B.
La presente invención se refiere a antígenos,
más particularmente a antígenos de patógenos bacterianos de
estreptococos del grupo B (GBS), que son útiles como componentes de
vacunas para la terapia y/o la profilaxis.
Los estreptococos son bacterias gram (+) que se
diferencian por antígenos de carbohidratos específicos de la A a la
O en su superficie celular. Los grupos de estreptococos se
distinguen además por antígenos de polisacáridos capsulares de tipo
específico. Se han identificado varios serotipos para los
estreptococos de Grupo B (GBS): Ia, Ib, II, III, IV, V, VI, VII y
VIII. Los GBS también contienen proteínas antigénicas conocidas como
"proteínas-C" (alfa, beta, gamma y delta),
algunas de las cuales han sido clonadas. Aunque el GBS es un
componente común de la flora colónica y vaginal humana, dicho
patógeno ha sido reconocido durante mucho tiempo como una causa
principal de sepsis neonatal y de meningitis, de meningitis de
activación tardía en niños, de endometritis
post-parto, así como de mastitis en el ganado
lechero. Las madres parturientas expuestas a GBS corren el riesgo
de infección post-parto y pueden transferir la
infección a sus bebés cuando atraviesan el canal de nacimiento.
Aunque el organismo es sensible a antibióticos, la elevada velocidad
de ataque y el rápido inicio de la sepsis en neonatos, y de la
meningitis en niños, da lugar a una elevada tasa de mortalidad.
Para encontrar una vacuna que proteja a
individuos frente a la infección por GBS, los investigadores se han
fijado en los antígenos de tipo específico. Desafortunadamente estos
polisacáridos han demostrado ser pobremente inmunogénicos en
humanos y están restringidos al serotipo concreto del cual procede
el polisacárido. Además, el polisacárido capsular provoca una
respuesta independiente de células T, es decir, sin producción de
IgG. Por consiguiente los antígenos de polisacáridos capsulares no
son adecuados como componentes de vacunas para la protección frente
a la infección por GBS.
Otros investigadores se han centrado en el
antígeno beta de proteína-C, que ha demostrado
presentar propiedades inmunogénicas en modelos de ratón y de
conejo. Se descubrió que esta proteína era inadecuada como vacuna
humana debido a la no deseable propiedad de interaccionar con una
alta afinidad y de un modo no inmunogénico con la región Fc del IgA
humano. El antígeno alfa de proteína-C es poco común
en los serotipos de tipo III de GBS, que es el serotipo responsable
de la mayoría de afecciones originadas por GBS y que, por tanto, es
de poca utilidad como componente de una vacuna.
Por tanto, sigue existiendo una necesidad no
satisfecha de antígenos de GBS que puedan ser usados como
componentes de vacuna para la profilaxis y/o la terapia de la
infección por GBS.
De acuerdo con un aspecto, la presente invención
proporciona un polinucleótido aislado que codifica un polipéptido
que tiene al menos una identidad del 70% con un segundo polipéptido
que comprende una secuencia seleccionada del grupo que consiste en:
SEQ ID NO: 39 y SEQ ID NO: 44, o fragmentos de las mismas.
En otros aspectos, se proporcionan vectores que
comprenden polinucleótidos de la invención ligados operativamente a
una región de control de la expresión, así como células hospedantes
transfectadas con dichos vectores, y métodos para producción
polipéptidos que comprenden cultivar dichas células hospedantes en
las condiciones adecuadas para la expresión.
En otro aspecto adicional, se proporcionan
nuevos polipéptidos codificados por polinucleótidos de la
invención.
La Figura 1a (únicamente a modo de referencia)
es la secuencia de ADN del clon 1 (SEQ ID NO: 1) con las
correspondientes secuencias de aminoácidos de los marcos de lectura
abiertos;
la Figura 1b es la secuencia de aminoácidos SEQ
ID NO: 2;
la Figura 1c es la secuencia de aminoácidos SEQ
ID NO: 3;
la Figura 1d es la secuencia de aminoácidos SEQ
ID NO: 4;
la Figura 1e es la secuencia de aminoácidos SEQ
ID NO: 5;
la Figura 1f es la secuencia de aminoácidos SEQ
ID NO: 6.
La Figura 2a (únicamente a modo de referencia)
es la secuencia de ADN del clon 2 (SEQ ID NO: 7) con las
correspondientes secuencias de aminoácidos de los marcos de lectura
abiertos;
la Figura 2b es la secuencia de aminoácidos SEQ
ID NO: 8;
la Figura 2c es la secuencia de aminoácidos SEQ
ID NO: 9;
la Figura 2d es la secuencia de aminoácidos SEQ
ID NO: 10;
la Figura 2e es la secuencia de aminoácidos SEQ
ID NO: 11;
la Figura 2f es la secuencia de aminoácidos SEQ
ID NO: 12.
La Figura 3a (únicamente a modo de referencia)
es la secuencia de ADN del clon 3 (SEQ ID NO: 13) con las
correspondientes secuencias de aminoácidos de los marcos de lectura
abiertos;
la Figura 3b es la secuencia de aminoácidos SEQ
ID NO: 14;
la Figura 3c es la secuencia de aminoácidos SEQ
ID NO: 15;
la Figura 3d es la secuencia de aminoácidos SEQ
ID NO: 16;
la Figura 3e es la secuencia de aminoácidos SEQ
ID NO: 17;
la Figura 3f es la secuencia de aminoácidos SEQ
ID NO: 18;
la Figura 3g es la secuencia de aminoácidos SEQ
ID NO: 19;
la Figura 3h es la secuencia de aminoácidos SEQ
ID NO: 20;
la Figura 3i es la secuencia de aminoácidos SEQ
ID NO: 21.
La Figura 4a (únicamente a modo de referencia)
es la secuencia de ADN del clon 4 (SEQ ID NO: 22) con las
correspondientes secuencias de aminoácidos de los marcos de lectura
abiertos;
la Figura 4b es la secuencia de aminoácidos SEQ
ID NO: 23;
la Figura 4c es la secuencia de aminoácidos SEQ
ID NO: 24;
la Figura 4d es la secuencia de aminoácidos SEQ
ID NO: 25;
la Figura 4e es la secuencia de aminoácidos SEQ
ID NO: 26.
La Figura 5a (únicamente a modo de referencia)
es la secuencia de ADN del clon 5 (SEQ ID NO: 27) con las
correspondientes secuencias de aminoácidos de los marcos de lectura
abiertos;
la Figura 5b es la secuencia de aminoácidos SEQ
ID NO: 28;
la Figura 5c es la secuencia de aminoácidos SEQ
ID NO: 29;
la Figura 5d es la secuencia de aminoácidos SEQ
ID NO: 30;
la Figura 5e es la secuencia de aminoácidos SEQ
ID NO: 31.
La Figura 6a (únicamente a modo de referencia)
es la secuencia de ADN del clon 6 (SEQ ID NO: 32) con las
correspondientes secuencias de aminoácidos de los marcos de lectura
abiertos;
la Figura 6b es la secuencia de aminoácidos SEQ
ID NO: 33;
la Figura 6c es la secuencia de aminoácidos SEQ
ID NO: 34;
la Figura 6d es la secuencia de aminoácidos SEQ
ID NO: 35;
la Figura 6e es la secuencia de aminoácidos SEQ
ID NO: 36.
La Figura 7a es la secuencia de ADN del clon 7
(SEQ ID NO: 37); (inventiva);
la Figura 7b es la secuencia de aminoácidos SEQ
ID NO: 38;
la Figura 7c es la secuencia de aminoácidos SEQ
ID NO: 39;
la Figura 7d es la secuencia de aminoácidos SEQ
ID NO: 40;
la Figura 7e es la secuencia de aminoácidos SEQ
ID NO: 41.
La Figura 8 es la secuencia de ADN de una parte
del clon 7 que una secuencia señal (SEQ ID NO: 42); (inventiva).
La Figura 9 es la secuencia de ADN de una parte
del clon 7 sin secuencia señal (SEQ ID NO: 43); (inventiva).
La Figura 9a es la secuencia de aminoácidos (SEQ
ID NO: 44); (inventiva).
La Figura 10 representa la distribución de
títulos de ELISA anti-GBS en sueros procedentes de
ratones CD-1 inmunizados con proteína de GBS
recombinante correspondiente a la SEQ ID NO: 39. (inventiva).
La presente invención se refiere a nuevos
polipéptidos antigénicos de estreptococos del grupo B (GBS), que se
caracterizan por la secuencia de aminoácidos seleccionada del grupo
que consiste en: SEQ ID NO: 39 y SEQ ID NO: 44.
La invención incluye la SEQ ID NO: 39 y la SEQ
ID NO: 44.
Una realización preferida adicional de la
invención es la SEQ ID NO: 39.
Una realización preferida adicional de la
invención es la SEQ ID NO: 44.
Tal como se usan en la presente memoria,
"fragmentos" de los polipéptidos de la invención incluyen
aquellos polipéptidos en los que se sustituye uno o más residuos de
aminoácido con un residuo de aminoácido conservado o no conservado
(preferiblemente conservado) y que pueden ser naturales o no
naturales.
El término "fragmentos" de polipéptidos de
la presente invención también incluye polipéptidos que se modifican
mediante adición, eliminación, sustitución de aminoácidos, siempre
que los polipéptidos retengan la capacidad de inducir una respuesta
inmune.
Por el término "aminoácido conservado" se
entiende una sustitución de uno o más aminoácidos por otro en el
cual el determinante antigénico (incluyendo su estructura secundaria
y la naturaleza hidropática) de un antígeno dado se conserva
completa o parcialmente a pesar de la sustitución.
Por ejemplo, se puede sustituir uno o más
residuos de aminoácido de la secuencia con otro aminoácido de
polaridad similar, que actúa como un equivalente funcional, dando
como resultado una alteración silenciosa. Los sustitutos de un
aminoácido dentro de la secuencia se pueden seleccionar entre otros
miembros de la clase a la que pertenece el aminoácido. Por ejemplo,
los aminoácidos no polares (hidrófobos) incluyen alanina, leucina,
isoleucina, valina, prolina, fenilalanina, triptófano y metionina.
Los aminoácidos polares neutros incluyen glicina, serina, treonina,
cisteína, tirosina, asparagina y glutamina. Los aminoácidos
cargados positivamente (básicos) incluyen arginina, lisina e
histidina. Los aminoácidos cargados negativamente (ácidos) incluyen
ácido aspártico y ácido glutámico.
Preferiblemente, los derivados y análogos de
polipéptidos de la invención tendrán aproximadamente un 70% de
identidad con respecto a las secuencias ilustradas en las figuras, o
a fragmentos de las mismas. Es decir, el 70% de los residuos son
los mismos. Más preferiblemente, los polipéptidos tendrán una
homología superior al 95%. En otra realización preferida, los
derivados y análogos de polipéptidos de la invención tendrán menos
de aproximadamente 20 sustituciones, modificaciones o eliminaciones
de residuos de aminoácido, y más preferiblemente menos de 10. Las
sustituciones preferidas son las que se conocen en la técnica como
conservadas, es decir, los residuos sustituidos comparten
propiedades físicas o químicas tales como la hidrofobicidad, el
tamaño, la carga o grupos funcionales.
Además, en las situaciones en las que se
descubre que las regiones de aminoácidos son polimórficas, puede
ser deseable variar uno o más aminoácidos en particular para imitar
de forma más eficaz los diferentes epítopos de las diferentes cepas
de GBS.
También se incluyen polipéptidos fusionados a
otros compuestos que alteran las propiedades biológicas y
farmacológicas de los polipéptidos, por ejemplo, polietilénglicol
(PEG) para aumentar la vida media; secuencias de aminoácidos
líderes o secretoras para facilitar la purificación; prepro- y
pro-secuencias; y (poli)sacáridos.
Además, los polipéptidos de la presente
invención se pueden modificar mediante acilación terminal de
-NH_{2} (por ejemplo mediante acetilación, o amidación con ácido
tioglicólico, amidación carbositerminal, por ejemplo con amoníaco o
metilamina) para proporcionar estabilidad, y aumentar la
hidrofobicidad para la unión a un soporte u a otra molécula.
También se contemplan los multímeros de hetero y
homo polipéptido de los fragmentos de polipéptido, análogos y
derivados. Estas formas poliméricas incluyen, por ejemplo, uno o más
polipéptidos que han sido reticulados con agentes reticulantes
tales como avidita/biotina, glutaraldehído o
dimetil-superimidato. Dichas formas poliméricas
también incluyen polipéptidos que contienen dos o más secuencias
contiguas invertidas o emparejadas, producidos a partir de mARNs
multicistrónicos generados mediante tecnología de ADN
recombinante.
Preferiblemente, un fragmento, análogo o
derivado de un polipéptido de la invención comprenderá al menos una
región antigénica, es decir, al menos un epítopo.
Con el fin de alcanzar la formación de polímeros
antigénicos (es decir, multímeros sintéticos), se pueden utilizar
polipéptidos que tengan grupos bishaloacetilo, nitroarilhaluros, o
similares, en donde los reactivos sean específicos para los grupos
tiol. Por tanto, el enlace entre dos grupos mercapto de los
diferentes péptidos puede ser un enlace sencillo o puede estar
compuesto por un grupo de unión de al menos dos átomos de carbono,
típicamente de al menos cuatro, y no más de 16, pero normalmente no
más de aproximadamente 14.
En una realización concreta, los fragmentos de
polipéptido de la invención no contienen un residuo de metionina
(Met) de inicio. Preferiblemente, los polipéptidos no incorporarán
una secuencia líder o secretora (secuencia señal). La porción señal
de un polipéptido de la invención se puede determinar de acuerdo con
técnicas biológicas moleculares establecidas. En general, el
polipéptido de interés se puede aislar a partir de un cultivo de
GBS, y posteriormente puede
secuenciarse para determinar el residuo inicial de la proteína madura y, por tanto, la secuencia del polipéptido maduro.
secuenciarse para determinar el residuo inicial de la proteína madura y, por tanto, la secuencia del polipéptido maduro.
De acuerdo con otro aspecto, se proporcionan
composiciones de vacuna que comprenden uno o más polipéptidos de
GBS de la invención mezclados con un vehículo, diluyente o adyuvante
farmacéuticamente aceptable.
Los adyuvantes adecuados incluyen aceites, por
ejemplo adyuvante de Freund completo o incompleto; sales, por
ejemplo AlK(SO_{4})_{2},
AlNa(SO_{4})_{2},
AlNH_{4}(SO_{4})_{2},
Al(OH)_{3}, AlPO_{4}, sílice, caolín; derivado de
saponina; polinucleótidos de carbono, por ejemplo poli IC y poli AU
y también toxina del cólera detoxificada (CTB), y toxina de E.
coli térmicamente lábil para la inducción de inmunidad mucosal.
Los adyuvantes preferidos incluyen QuilA^{TM}, Alhydrogel^{TM} y
Adjuphos^{TM}. Las vacunas de la invención se pueden administrar
parenteralmente mediante inyección, infusión rápida, absorción
nasofaríngea, dermoabsorción, o bucal u oral.
Las composiciones de vacuna de la invención se
usan para el tratamiento o profilaxis de la infección por
estreptococos y/o de enfermedades y síntomas mediados por la
infección por estreptococos, en particular de estreptococos del
grupo A (pyogenes), de estreptococos del grupo B (GBS o
agalactiae), dysgalactiae, uberis, nocardia, así como
Staphylococcus aureus. Se dispone de información general
sobre los estreptococos en el Manual of Clinical
Microbiology de P.R. Murria y col. (1995, 6ª Edición, ASM Press,
Washington, D.C.). Más concretamente, de los estreptococos del
grupo B, agalactiae. En una realización particular se
administran vacunas a individuos con riesgo de infección de GBS,
tales como mujeres embarazadas y niños para sepsis, meningitis y
neumonía, así como individuos inmunocomprometidos tales como los
que padecen diabetes, enfermedades del hígado o cáncer. Las vacunas
también pueden tener aplicaciones veterinarias tales como para el
tratamiento de la mastitis en ganado, que está mediada por las
anteriores bacterias, así como por E. coli.
La vacuna de la presente invención también se
puede usar para la fabricación de un medicamento usado para el
tratamiento o profilaxis de la infección de estreptococos y/o de
enfermedades o síntomas mediados por la infección de estreptococos,
en particular de estreptococos del grupo A (pyogenes), de
estreptococos del grupo B (GBS o agalactiae),
dysgalactiae, uberis, nocardia, así como Staphylococcus
aureus. Más particularmente estreptococos del grupo B,
agalactiae.
Las composiciones de vacuna se encuentran
preferiblemente en formas unitarias de dosis de entre
aproximadamente 0,001 y 100 \mug/Kg (antígeno/peso corporal) y
más preferiblemente de 0,01 a 10 \mug/Kg, y aún más
preferiblemente de 0,1 a 1 \mug/Kg de 1 a 3 veces con un
intervalo de aproximadamente 1 a 12 semanas entre inmunizaciones, y
más preferiblemente de 1 a 6 semanas.
De acuerdo con otro aspecto, se proporcionan
polinucleótidos que codifican polipéptidos de estreptococos del
grupo B (GBS) que se caracterizan por la secuencia de aminoácidos
seleccionada del grupo que consiste en: SEQ ID NO: 39, y SEQ ID NO:
44, o fragmentos de las mismas.
Los polinucleótidos preferidos son los
ilustrados en las Figuras 7a (SEQ ID NO: 37), 8 (SEQ ID NO: 42) y 9
(SEQ ID NO: 43) que corresponden a marcos de lectura abiertos, que
codifican polipéptidos de la invención.
Los polinucleótidos preferidos son los
ilustrados en las Figuras 7a (SEQ ID NO: 37), 8 (SEQ ID NO: 42) y 9
(SEQ ID NO: 43), y fragmentos de los mismos.
Los polinucleótidos más preferidos de la
invención son los ilustrados en las Figuras 7 (SEQ ID NO: 37), 8
(SEQ ID NO: 42) y 9 (SEQ ID NO: 43).
Los polinucleótidos aún más preferidos de la
invención son los ilustrados en las Figuras 8 (SEQ ID NO: 42) y 9
(SEQ ID NO: 43).
Cabe destacar que las secuencias de
polinucleótidos ilustradas en las figuras pueden alterarse con
codones degenerados y aún así seguir codificando los polipéptidos
de la invención.
Debido a la degeneración de las secuencias
codificadoras de nucleótidos, en la práctica de la invención pueden
usarse otras secuencias de polinucleótidos que codifiquen
sustancialmente los mismos polipéptidos de la presente invención.
Éstas incluyen, aunque sin limitación, secuencias de nucleótidos que
son alteradas por la sustitución de diferentes codones que
codifican el mismo residuo de aminoácido dentro de la secuencia,
produciendo de este modo un cambio silencioso.
En consecuencia, la presente invención
proporciona adicionalmente polinucleótidos que se hibridan con las
secuencias de polinucleótidos descritas en la presente memoria (o
con las secuencias complementarias de las mismas) que tengan al
menos un 70% de identidad entre secuencias. Más preferiblemente, los
polinucleótidos son hibridables en condiciones severas, por ejemplo
que tengan un 95% de identidad y más preferiblemente más de un 97%
de identidad.
Por "capaces de hibridarse en condiciones
severas" se entiende templar una molécula de ácido nucleico a al
menos una región de una segunda secuencia de ácido nucleico (como
cADN, mARN ó ADN genómico) o a su cadena complementaria en
condiciones estándar, por ejemplo alta temperatura y/o bajo
contenido salino, que tiende a desfavorecer la hibridación de
secuencias de nucleótidos no complementarias. Se describe un
protocolo adecuado en Maniatis T. y col., Molecular Cloning: A
Laboratory Manual, Cold Spring Harbor Laboratory, 1982, que se
incorpora a la presente memoria a modo de referencia.
En un aspecto adicional, se pueden usar
polinucleótidos que codifican polipéptidos de la invención, o
fragmentos de los mismos, en un método de inmunización de ADN. Es
decir, se pueden incorporar en un vector que es replicable y
expresable mediante inyección, produciendo con ello el polipéptido
antigénico in vivo. Por ejemplo, se pueden incorporar
polinucleótidos en un vector plásmido bajo el control del promotor
CMV que es funcional en células eucarióticas. Preferiblemente el
vector se inyecta intramuscularmente.
De acuerdo con otro aspecto, se proporciona un
proceso para la producción de polipéptidos de la invención mediante
técnicas recombinantes a través de la expresión de un polinucleótido
que codifica dicho polipéptido en una célula hospedante, y
recuperando el polipéptido producto. De forma alternativa, los
polipéptidos se pueden producir de acuerdo con técnicas químicas
sintéticas establecidas, por ejemplo, síntesis de oligopéptidos en
fase sólida o en disolución, que son ligados para producir el
polipéptido completo (ligadura en bloque).
Para la producción recombinante, se transfectan
células hospedantes con vectores que codifican el polipéptido, y a
continuación se cultivan en un medio nutriente modificado de forma
apropiada para activar promotores, seleccionando transformantes o
amplificando los genes. Los vectores adecuados son aquellos que son
viables y replicables en el hospedante elegido e incluyen
secuencias de ADN cromosomales, no cromosomales y sintéticas, por
ejemplo, plásmidos bacterianos, ADN de fago, baculovirus, plásmidos
de levadura, vectores derivados de combinaciones de plásmidos y ADN
de fago. La secuencia de polipéptidos se puede incorporar al vector
en una posición apropiada usando enzimas de restricción, de tal
forma que se une operativamente a una región de control de la
expresión que comprende un promotor, una posición de unión de
ribosomas (región de consenso o secuencia de
Shine-Dalgarno), y opcionalmente un operador
(elemento de control). Uno puede seleccionar componentes
individuales de la región de control de la expresión que sean
apropiados para un hospedante y un vector dados de acuerdo con
principios establecidos de biología molecular (Sambrook y col.,
Molecular Cloning: A Laboratory Manual, 2ª edición, Cold
Spring Harbor, N.Y., 1989, incorporado a la presente memoria a modo
de referencia). Los promotores adecuados incluyen, aunque sin
limitación, el promotor LTR ó SV40, los promotores lac, tac ó trp de
E. coli y el promotor P_{L} lambda de fago.
Preferiblemente los vectores incorporarán un origen de replicación
así como marcadores de selección, por ejemplo gen de resistencia a
ampicilina. Los vectores bacterianos adecuados incluyen pET, pQE70,
pQE60, pQE-9, pbs, pD10 phagescript, psiX174,
pbluescript SK, pbsks, pNH8A, pNH16a, pNH18A, pNH46A, ptrc99a,
pKK223-3, pKK233-3, pDR540, pRIT5, y
los vectores eucarióticos pBlueBacIII, pWL-NEO,
pSV2CAT, pOG44, pXT1, pSG, pSVK3, pBPV, pMSG y pSVL. Las células
hospedantes pueden ser bacterianas, por ejemplo E. coli, Bacillus
subtilis, Streptomyces; fúngicas, por ejemplo
Aspergillus niger, Aspergillus nidulins; de
levaduras, por ejemplo Saccharomyces; o eucarióticas, por
ejemplo CHO, COS.
En la expresión del polipéptido en cultivo, las
células se recolectan normalmente mediante centrifugación, a
continuación se rompen empleando medios físicos o químicos (si el
polipéptido expresado no es segregado al medio) y el extracto crudo
resultante se retiene para aislar el polipéptido de interés. La
purificación del polipéptido a partir del medio de cultivo o lisato
se puede lograr empleando técnicas establecidas que dependen de las
propiedades del polipéptido, por ejemplo, usando precipitación en
sulfato de amonio o etanol, extracción ácida, cromatografía de
intercambio aniónico o catiónico, cromatografía de fosfocelulosa,
cromatografía de interacción hidrofóbica, cromatografía de
hidroxilapatita y cromatografía de lectina. La purificación final se
puede lograr empleando HPLC.
El polipéptido se puede expresar con o sin una
secuencia líder o de secreción. En el primer caso el líder se puede
eliminar usando procesado post-traducción (véanse
los documentos US 4.431.739, 4.425.437 y 4.338.397) o pueden ser
eliminados químicamente después de purificar el polipéptido
expresado.
De acuerdo con un aspecto adicional, los
polipéptidos de GBS de la invención se pueden usar en un ensayo
diagnóstico para la infección de estreptococos, en concreto la
infección de GBS. Es posible utilizar varios métodos diagnósticos,
por ejemplo la detección de un organismo estreptococal en una
muestra biológica. Se puede seguir el siguiente procedimiento:
- a)
- obtener una muestra biológica de un paciente;
- b)
- incubar un anticuerpo o fragmento del mismo que sea reactivo con un polipéptido de GBS de la invención con la muestra biológica para formar una mezcla; y
- c)
- detectar anticuerpos unidos específicamente o fragmentos unidos en la mezcla, lo que indica la presencia de estreptococos.
De forma alternativa, se puede llevar a cabo un
método para la detección de anticuerpos específicos de un antígeno
de estreptococos en una muestra biológica que contiene, o que se
sospecha que contiene, dicho anticuerpo de la siguiente manera:
- a)
- aislar una muestra biológica de un paciente;
- b)
- incubar uno o más polipéptidos de GBS de la invención, o fragmentos de los mismos, con la muestra biológica para formar una mezcla; y
- c)
- detectar antígenos unidos específicamente o fragmentos unidos en la mezcla, lo que indica la presencia de anticuerpos específicos de estreptococos.
El especialista en la técnica reconocerá que
este ensayo diagnóstico puede presentarse en diversas formas, que
incluyen un ensayo inmunológico tal como el ensayo inmunosorbente
ligado a enzima (ELISA), un radioinmunoensayo o un ensayo de
aglutinación de látex, esencialmente para determinar si los
anticuerpos específicos de la proteína están presentes en un
organismo.
Las secuencias de ADN que codifican polipéptidos
de la invención también pueden usarse para diseñar sondas de ADN
para su uso en la detección de la presencia de estreptococos en una
muestra biológica que se sospecha contiene dichas bacterias. El
método de detección de la invención comprende:
- a)
- aislar la muestra biológica de un paciente;
- b)
- incubar una o más sondas de ADN que presenten una secuencia de ADN que codifica un polipéptido de la invención o fragmentos del mismo con la muestra biológica para formar una mezcla; y
- c)
- detectar la sonda de ADN unida específicamente en la mezcla, lo que indica la presencia de bacterias estreptococales.
Las sondas de ADN de esta invención también
pueden usarse para detectar estreptococos circulantes, por ejemplo
ácidos nucleicos de GBS en una muestra, por ejemplo usando una
reacción en cadena de polimerasa, como un método para diagnosticar
infecciones de estreptococos. La sonda se puede sintetizar usando
técnicas convencionales y puede inmovilizarse sobre una fase
sólida, o puede etiquetarse con una marca detectable. Una sonda de
ADN preferida para esta aplicación es un oligómero que tiene una
secuencia complementaria a al menos 6 nucleótidos contiguos de los
polipéptidos de GBS de la invención.
Otro método diagnóstico para la detección de
estreptococos es un paciente comprende:
- a)
- etiquetar un anticuerpo reactivo con un polipéptido de la invención o un fragmento del mismo con una marca detectable;
- b)
- administrar el anticuerpo marcado o el fragmento marcado al paciente; y
- c)
- detectar anticuerpos marcados o fragmentos marcados unidos específicamente en el paciente, lo que indica la presencia de estreptococos.
Un aspecto adicional de la invención es el uso
de polipéptidos de GBS de la invención como inmunógenos para la
producción de anticuerpos específicos para la diagnosis, y en
concreto para el tratamiento de la infección de estreptococos. Los
anticuerpos adecuados se pueden determinar usando métodos de
escrutinio apropiados, por ejemplo midiendo la capacidad de un
anticuerpo concreto para proteger pasivamente frente a infección de
estreptococos en un modelo de ensayo. Un ejemplo de un modelo animal
es el modelo de ratón descrito en los Ejemplos de la presente
memoria. El anticuerpo puede ser un anticuerpo entero o un fragmento
de unión a antígeno del mismo, y puede pertenecer en general a
cualquier clase de inmunoglobulina. El anticuerpo o fragmento puede
ser de origen animal, específicamente de origen mamífero y más
específicamente de origen murino, de rata o humano. Puede ser un
anticuerpo natural o un fragmento del mismo, o si se desea, un
anticuerpo o fragmento de anticuerpo recombinante. El término
anticuerpo o fragmento de anticuerpo recombinante significa un
anticuerpo o fragmento de anticuerpo que se produjo usando técnicas
de biología molecular. El anticuerpo o fragmento de anticuerpo
puede ser policlonal, o preferiblemente monoclonal. Puede ser
específico de una serie de epítopos asociados con los polipéptidos
de GBS, pero preferiblemente es específico de uno solo.
El modelo de ratón de infección de GBS se
describe con detalle en Lancefield y col. (J Exp Med 142:
165-179, 1975). La cepa de GBS C388/90 (producto
clínico aislado obtenido en 1990 a partir de fluido cefalorraquídeo
de un paciente que sufría meningitis, Hospital Infantil de Eastern
Notario, Ottawa, Canadá) y la cepa NCS246 (Nacional Center for
Streptococcus, Provincial Laboratory of Public Health for Northern
Alberta, Edmonton, Canadá) fueron serotipadas respectivamente como
el tipo Ia/c y el tipo II/R.
Para aumentar su virulencia, se sometió en serie
a ratones a las cepas de GBS C388/90 (serotipo Ia/c) y NCS246
(serotipo II/R) tal como se ha descrito previamente (Lancefield y
col., J. Exp. Med. 142: 165-179, 1975). En resumen,
se siguió la evolución del aumento de la virulencia usando
inoculaciones intraperitoneales de diluciones en serie de un
subcultivo en caldo de Todd-Hewitt obtenido a partir
de sangre o de bazo de ratones infectados. Tras la última
exposición, las muestras de sangre infectadas se usaron para
inocular caldo de Todd-Hewitt. Tras una incubación
de 2 horas a 37ºC con un 7% de CO_{2}, se añadió al cultivo
glicerol con una concentración final del 10% (v/v). A continuación
se dividió en alícuotas el cultivo y se almacenó a -80ºC para su
uso en los experimentos de exposición a GBS. Se determinó el número
de cfu de GBS presentes en estas muestras congeladas. Se determinó
que las concentraciones bacterianas necesarias para matar al 100%
(LD100) de los ratones de 18 semanas de edad eran de 3,5 x
10^{5} y de 1,1 x 10^{5} respectivamente para las cepas de GBS
C388/90 y NCS246, que corresponden a un aumento significativo de la
virulencia para ambas cepas. De hecho, las LD100 registradas antes
de las exposiciones para estas dos cepas eran superiores a 10^{9}
cfu.
En una exposición bacteriana, se ajustó una
alícuota recién congelada de una cepa virulenta de GBS a la
concentración bacteriana apropiada usando caldo de
Todd-Hewitt, y se inyectó 1 mL intraperitonealmente
a cada ratón CD-1 hembra. Los ratones usados para
los experimentos de protección pasiva tenían una edad de 6 a 8
semanas, mientras que los usados para los experimentos de
protección activa tenían una edad de aproximadamente 18 semanas en
el momento de la exposición. Todos los inóculos fueron verificados
mediante conteo de colonias. Se observó a los animales en busca de
cualquier signo de infección cuatro veces al día durante las
primeras 48 horas después de la exposición, y a continuación a
diario durante los siguientes 12 días. Al final de dicho periodo,
se obtuvieron muestras de sangre de los supervivientes y se
congelaron a -20ºC. El bazo obtenido de cada ratón que sobrevivió a
la exposición se cultivó con el objetivo de identificar cualquier
GBS remanente.
Se prepararon células enteras de GBS muertas por
formaldehído de acuerdo con los procedimientos descritos en
Lancefield y col. (J. Exp. Med. 142: 165-179, 1975).
En resumen, se lavó un cultivo de una noche de placas de agar de
sangre de oveja (Quelab Laboratorios, Montreal, Canadá) de una cepa
de GBS dos veces en tampón PBS (disolución salina de fosfato
tamponada, pH 7,2), se ajustó a aproximadamente 3 x 10^{9} cfu/mL
y se incubó toda la noche en PBS que contenía formaldehído al 0,3%
(v/v). La suspensión muerta por formaldehído se lavó con PBS y se
mantuvo congelada a -80ºC.
Se inyectó subcutáneamente ratones
CD-1 hembra, con una edad de 6 a 8 semanas (Charles
River, St-Constant, Québec, Canadá), tres veces con
un intervalo de dos semanas, con 0,1 mL de células muertas por
formaldehído de la cepa de GBS C388/90 (aproximadamente 6 x
10^{7} GBS), o con 0,1 mL de PBS para el grupo de control. El día
antes de la inmunización, se añadió a estas preparaciones
Alhydrogel^{TM} (Superfos Biosector, Frederikssund, Dinamarca)
con una concentración final de 0,14 mg ó de 0,21 mg de Al, y se
incubó una noche a 4ºC con agitación. Se obtuvieron muestras de
suero de cada ratón antes de comenzar el protocolo de inmunización y
dos semanas después de la última inyección. Los sueros se
congelaron a -20ºC.
Ocho ratones de cada grupo de control inyectados
con PBS y del grupo inmunizado con células de GBS de la cepa
C388/90 (Ia/c) enteras muertas por formaldehído, fueron expuestos a
1,5 x 10^{4} cfu de la cepa de GBS C388/90 (Ia/c) una semana
después de la tercera inyección. Todos los ratones inmunizados con
las células enteras de GBS muertas por formaldehído sobrevivieron a
la exposición homóloga, mientras que, a los 5 días tras la
exposición, sólo 4 de cada 8 ratones inyectados con PBS
sobrevivieron a la infección. Con el fin de aumentar la tasa de
mortalidad en los grupos de control, la suspensión bacteriana se
tuvo que ajustar de acuerdo con la edad de los ratones en el
momento de la exposición bacteriana. En los experimentos de
exposición posteriores, cuando los ratones tenían más de 15 semanas
de edad, el inóculo bacteriano fue incrementado hasta
concentraciones entre 3,0 x 10^{5} y 2,5 x 10^{6} cfu.
En otro experimento, se inyectó PBS a un grupo
de 12 ratones correspondiente a un grupo de control, mientras que
un segundo grupo de 12 ratones fue inmunizado con células de GBS
enteras muertas por formaldehído de la cepa C388/90 (Ia/c). Seis
ratones de cada uno de estos dos grupos fueron expuestos a 2,1 x
10^{6} cfu de la cepa de GBS C388/90 (Ia/c) (Tabla 1). Como
primer experimento de exposición, todos los ratones inmunizados con
la cepa de GBS C388/90 (Ia/c) sobrevivieron a la exposición
homóloga. Solamente dos de cada 6 ratones inyectados con PBS
sobrevivieron a la infección.
Los restantes 6 ratones de ambos grupos fueron
usados a continuación una semana después para verificar si dicha
preparación antigénica podía conferir protección cruzada frente a la
cepa NCS246 (II/R), que produce una cápsula serológicamente
distinta. Ninguno de los ratones infectados con esta segunda cepa de
GBS sobrevivió a la infección. Este último resultado sugirió que la
mayoría de la respuesta inmune protectora inducida por la cepa
C388/90 muerta por formaldehído se dirige contra el polisacárido
capsular, y que podría estar restringida a cepas de dicho serotipo
en particular. Estos resultados indicaron claramente que este modelo
concreto de infección se puede usar de forma eficaz para estudiar
la protección conferida a través de vacunación.
Se inmunizó un conejo de Nueva Zelanda (2,5 Kg,
Charles River, St-Constant, Québec, Canadá) con
células de GBS de cepa C388/90 (Ia/c) muertas por formaldehído para
obtener suero hiperinmune. Dicho conejo fue inyectado
subcutáneamente tres veces, con un intervalo de tres semanas, con
aproximadamente 1,5 x 10^{9} cfu de células enteras muertas por
formaldehído de GBS cepa C388/90 (Ia/c). Se usó adyuvante completo
de Freund (Gibco BRL Life Technologies, Grand Island, Nueva York)
como adyuvante para la primera inmunización, y se usó adyuvante
incompleto de Freund (Gibco BRL) para las siguientes dos
inyecciones. Se obtuvieron muestras de suero antes de comenzar el
protocolo de inmunización y dos semanas después de la última
inyección. Los sueros se congelaron a -20ºC.
También se evaluó la capacidad de este
particular suero hiperinmune de conejo para proteger pasivamente
ratones frente a infección letal con GBS. La inyección
intraperitoneal de los ratones con 15 ó 25 \muL de suero
hiperinmune de conejo 18 horas antes de la exposición protegió a 4
de cada 5 ratones (80%) frente a la infección. De forma
comparativa, para los ratones del grupo de control, inyectados con
PBS o con suero obtenido a partir de conejo inmunizado con una
preparación de membrana exterior meningococal, se registraron tasas
de supervivencia inferiores al 20%. Este resultado indica
claramente que la inmunización de otra especie animal con células
de GBS muertas puede inducir la producción de anticuerpos que pueden
proteger pasivamente a ratones. Este reactivo también se usará para
caracterizar clones.
Se amplificó la región codificadora de un gen de
GBS mediante PCR (Sistema DNA Termal Cycler GeneAmp PCR 2400 Perkin
Elmer, San Jose, CA) a partir de ADN genómico de la cepa de GBS
C388/90 (Ia/c) usando los oligos que contenían las extensiones de
base correspondientes a la adición de las posiciones de restricción
BgIII (AGATCT) y HindIII (AAGCTT), respectivamente. El producto de
PCR se purificó en gel de agarosa usando un kit de extracción de
gel Qiaex II de Qiagen (Chatsworth, CA), se digirió con las enzimas
de restricción BgIII y HindIII (Pharmacia Canada Inc. Baie d'Urfe,
Canadá), y se extrajo con fenol:cloroformo antes de ser precipitado
en etanol. El vector pET-32b(+) (Novagen, Madison,
WI) que contiene la secuencia tiorredoxin-His.Tag se
digirió con las enzimas de restricción BgIII y HindIII, se extrajo
con fenol:cloroformo, y a continuación se precipitó en etanol. El
fragmento de ADN genómico BgIII-HindIII se ligó al
vector BgIII-HindIII pET-32b(+) para
crear la secuencia codificadora correspondiente a la proteína de
fusión tiorredoxin-His.Tag-GBS, cuyo
gen estaba bajo el control del promotor T7. Los productos ligados se
transformaron en la cepa de E. coli XLI Blue MRF'
(\Delta(mcrA) 183\Delta
(mcrCB-hsdSMR-mrr) 173 endA1
supE44 thi-1 recA1 gyrA96 relA1
lac [F' proAB lacI^{q}Z\DeltaM15Tn10
(Tet^{r})]^{c}) (Stratagene, La Jolla, CA) de acuerdo con el
método de Simanis (Hanahan, D., DNA Cloning, 1985, D.M.
Glover (ed.), páginas 109-135). El plásmido pET
recombinante se purificó usando un kit de Qiagen (Qiagen,
Chatsworth, CA) y la secuencia de nucleótidos del injerto de ADN se
verificó mediante secuenciamiento de ADN (kit Taq Dye Deoxy
Terminador Cycle Sequencing, ABI, Foster City, CA). El plásmido pET
recombinante fue transformado mediante electroporación (aparato
Gene Pulser II, BIO-RAD Labs, Mississauga, Canadá)
en la cepa de E. coli AD494 (DE3)
(\Deltaara^{-}leu7697 \DeltalacX74
\DeltaphoA PvuII phoR \DeltamaIF3
F' [lac^{+} (lacI^{q}) pro]
trxB::Kan (DE3)) (Novagen, Madison, WI). En esta cepa de
E. coli, el promotor T7 que controla la expresión de la
proteína de fusión, es reconocido específicamente por la polimerasa
de ARN T7 (presente en el profago \lambdaDE3), cuyo gen se
encuentra bajo el control del promotor lac que es inducible
mediante
isopropil-\beta-D-tio-galactopiranósido
(IPTG).
El transformante AD494(DE3)/rpET se
cultivó a 37ºC con agitación a 250 rpm en caldo LB (peptona 10 g/L,
extracto de levadura 5 g/L, NaCl 10 g/L) que contiene 100 \mug de
ampicilina (Sigma-Aldrich Canada Ltd, Oakville,
Canadá) por mL hasta que la A_{600} alcanzó un valor de 0,6. Con
el fin de inducir la producción de la proteína de fusión
tiorredoxin-His.Tag-GBS, las células
se incubaron otras 2 horas más en presencia de IPTG con una
concentración final de 1 mM. Las células bacterianas se recogieron
por centrifugación.
La proteína de fusión recombinante producida por
AD494(DE3)/rpET32 tras inducción con IPTG durante 2 h se
obtuvo parcialmente como cuerpos de inclusión insolubles que fueron
purificados a partir de las proteínas de E. coli endógenas
mediante aislamiento de los agregados insolubles (Gerlach, G.F., y
col., 1992, Infect. Immun. 60: 892). Las células inducidas a partir
de un cultivo de 500 mL se resuspendieron en 20 mL de tampón
Tris-HCl 50 mM con un 25% de sacarosa (pH 8,0) y se
congelaron a -70ºC. La lisis de las células en suspensión congelada
se logró mediante la adición de 5 mL de una disolución de lisozima
(10 mg/mL) en tampón Tris-HCl 250 mM (pH 8,0)
seguida de una incubación de 10 a 15 minutos en hielo, y de la
adición de 150 mL de mezcla detergente (5 partes de tampón
Tris-HCl 20 mM (pH 7,4)-NaCl 300
mM-ácido desoxicólico al 2%-Nonidet P-40 al 2% y 4
partes de tampón Tris-HCl 100 mM (pH
8)-EDTA 50 mM-Triton
X-100 al 2%) seguida de una incubación de 5 minutos
en hielo. Después de ser sometido a sonicación, se recogieron los
agregados proteicos mediante centrifugación durante 30 minutos a
35.000 x g, y se mantuvo una muestra de la fracción celular soluble.
Las proteínas agregadas fueron solubilizadas en hidrocloruro de
guanidina 6 M. El análisis Western blot demostró la presencia de la
proteína de fusión en las fracciones soluble e insoluble a la vez,
realizado usando el suero de un ratón inyectado con células de GBS
cepa C388/90 (Ia/c) muertas por formaldehído que sobrevivió a la
exposición bacteriana con la correspondiente cepa de GBS.
La purificación de la proteína de fusión a
partir de la fracción soluble de AD494(DE3)/rpET inducida por
IPTG se realizó mediante cromatografía de afinidad basada en las
propiedades de la secuencia His.Tag (6 residuos de histidina
consecutivos) para ligarse a cationes divalentes (Ni^{2+})
inmovilizados sobre resina de quelación metálica His.Bind (Novagen,
Madison, WI). Los métodos de purificación usados son los descritos
en el Manual del sistema pET, 6ª Edición (Novagen, Madison, WI). En
resumen, las células paletizadas obtenidas de un cultivo de 100 mL
inducido con IPTG se resuspendieron en 4 mL de tampón de Unión
(imidazol 5 mM-NaCl 500
mM-Tris-HCl 20 mM, pH 7,9), se
sometieron a sonicación, y se giraron a 39.000 x g durante 20
minutos para eliminar los desechos. Se filtró el sobrenadante
(membrana con un tamaño de poro de 0,45 \mum) y se depositó en una
columna de resina His.Bind equilibrada en tampón de unión. A
continuación se lavó la columna con 10 volúmenes de columna de
tampón de unión seguidos de 6 volúmenes de columna de tampón de
lavado (imidazol 20 mM-NaCl 500
mM-Tris-HCl 20 mM, pH 7,9). La
eliminación de la sal y del imidazol de la muestra se realizó
mediante diálisis frente a 3 x 1 litro de PBS a 4ºC.
Las cantidades de proteína de fusión obtenidas
de las fracciones citoplásmicas soluble e insoluble de E.
coli se estimaron mediante tinción de Coomassie de un gel de
dodecilsulfato sódico (SDS)-poliacrilamida con
diluciones en serie de dichas proteínas, y con un patrón de
albúmina de suero bovino (Pierce Chemical Co., Rockford, I11).
Se insertó la región de codificación de ADN de
una proteína de GBS por debajo del promotor \lambdaP_{L} en el
vector de traducción pURV22. Este plásmido fue derivado de p629
(George y col., 1987, Bio/Technology 5: 600), del cual se eliminó
la región codificadora de una porción de la glicoproteína
(gD-1) de virus simple del herpes de tipo I
(HSV-I), y se sustituyó el gen de resistencia a la
ampicilina por una casete de canamicina obtenida del vector
plásmido pUC4K (Pharmacia Biotech Canada Inc., Baie D'Urfe, Canadá).
El vector contenía una casete del gen represor sensible a la
temperatura \lambda cI857 bacteriófago, en el cual se había
eliminado el promotor funcional P_{R}. La desactivación del
represor cI857 mediante un aumento de la temperatura desde los
intervalos 30-37ºC hasta 37-42ºC dio
como resultado la inducción del gen bajo el control de \lambda
P_{L}. La traducción del gen se controló mediante la posición de
unión de ribosomas cro, seguida por debajo de una posición de
restricción BgIII (AGATCT) y la ATG: ACTAAGGAGGTTAGATCTATG.
Se usaron enzimas de restricción y ligasa de ADN
T4 de acuerdo con los suministradores (Pharmacia Biotech Canada
Inc., Baie D'Urfe, Canadá; y New England Biolabs Ltd., Mississauga,
Canadá). Se llevó a cabo una electroforesis en gel de agarosa de
los fragmentos de ADN tal como se describe en Sambrook y col.
(Molecular Cloning: A Laboratory Manual, 1989, Cold Spring
Harbor Laboratory Press, N.Y.). Se preparó el AND de las bacterias
GBS de acuerdo con procedimientos descritos en Jayarao y col.
(J. Clin. Microbiol., 1991, 29: 2774). Se realizaron
reacciones de amplificación de ADN mediante reacción en cadena de
polimerasa (PCR) usando el Sistema DNA Termal Cycler GeneAmp PCR
2400 (Perkin Elmer, San Jose, CA). Los plásmidos usados para el
secuenciamiento de ADN se purificaron usando kits de plásmidos de
Qiagen (Chatsworth, CA). Los fragmentos de ADN fueron purificados en
geles de agarosa usando kits de extracción de gel Qiaex II de
Qiagen (Chatsworth, CA). Las transformaciones de plásmidos se
llevaron a cabo mediante el método descrito por Hanahan (DNA
Cloning, Glover (ed.), páginas 109-135, 1985).
El secuenciamiento de injertos de ADN genómico en plásmidos se
realizó usando oligonucleótidos sintéticos que fueron sintetizados
mediante el sintetizador de oligonucleótidos modelo 394
(Perkin-Elmer Corp., Applied Biosystems Div. (ABI),
Foster City, CA). Las reacciones de secuenciamiento se llevaron a
cabo mediante PCR, usando el kit Taq Dye Deoxy Terminador Cycle
Sequencing (ABI, Foster City, CA), y se realizó electroforesis de
ADN en un secuenciador de ADN automatizado 373A (ABI, Foster City,
CA). El montaje de la secuencia de ADN se realizó usando el
programa Sequencer 3.0 (Gene Codes Corporation, Ann Arbor, MI). El
análisis de las secuencias de ADN y de sus polipéptidos predichos
se realizó con el programa Gene Works versión 2.45 (Intelligenetics,
Inc., Mountain View, CA).
La región codificadora del gen de GBS se
amplificó mediante PCR de ADN genómico de la cepa de GBS C388/90
(Ia/c) usando oligos que contenían extensiones base para la adición
de posiciones de restricción BgIII (AGATCT) y XbaI (TCTAGA),
respectivamente. El producto de PCR se purificó en gel de agarosa
usando un kit de extracción de gel Qiaex II de Qiagen (Chatsworth,
CA), se digirió con las enzimas de restricción BgIII y XbaI, y se
extrajo con fenol:cloroformo antes de ser precipitado en etanol. El
vector pURV22 se digirió con las enzimas de restricción BgIII y
XbaI, se extrajo con fenol:cloroformo, y se precipitó en etanol. El
fragmento de ADN genómico BgIII-XbaI se ligó al
vector BgIII-XbaI pURV22, en el cual el gen de GBS
estaba bajo el control del promotor \lambdaP_{L}. Los productos
ligados se transformaron en la cepa de E. coli XLI Blue MRF'
(\Delta(mcrA) 183\Delta
(mcrCB-hsdSMR-mrr) 173 endA1
supE44 thi-1 recA1 gyrA96 relA1
lac [F' proAB lacI^{q}Z\DeltaM15Tn10
(Tet^{r})]^{c}) (Stratagene, La Jolla, CA) de acuerdo con los
métodos descritos en Hanahan (ver anteriormente). Los transformantes
que alojan plásmidos con el injerto fueron identificados mediante
el análisis de células lisadas sometido a electroforesis sobre gel
de agarosa (Sambrook y col., ver anteriormente). El plásmido pURV22
recombinante fue purificado usando un kit Qiagen (Qiagen,
Chatsworth, CA) y la secuencia de nucleótidos del injerto de ADN se
verificó mediante secuenciamiento de ADN.
El transformante XLI Blue MRF'/rpURV22 se
cultivó a 34ºC con agitación a 250 rpm en caldo LB que contenía 50
\mug de canamicina por mL hasta que la A_{600} alcanzó un valor
de 0,6. Con el fin de inducir la producción de la proteína de
fusión, las células fueron incubadas durante otras 4 horas más a
39ºC. Las células bacterianas se recogieron mediante
centrifugación, se resuspendieron en un tampón de muestra, se
hirvieron durante 10 minutos y se mantuvieron a -20ºC.
Se insertó la región codificadora de ADN de una
proteína en fase por debajo del gen de la hormona de crecimiento
humana (hGH), que estaba bajo el control transcripcional del
promotor de citomegalovirus (CMV) en el vector plásmido
pCMV-GH (Tang y col., Nature, 1992, 356:
152). El promotor CMV no es funcional en células de E. coli
pero es activo cuando se administra el plásmido en células
eucarióticas. El vector también incorporaba el gen de resistencia a
ampicilina.
La región codificadora del gen se amplificó
mediante PCR a partir de ADN genómico de la cepa C388/90 (Ia/c) de
GBS usando los oligos que contenían extensiones base para la adición
de las posiciones de restricción BgIII (AGATCT) y HindIII (AAGCTT).
El producto de la PCR se purificó en gel de agarosa usando el kit de
extracción de gel Qiaex II de Qiagen (Chatsworth, CA), se digirió
con las enzimas de restricción BgIII y HindIII, y se extrajo con
fenol:cloroformo antes de precipitarse con etanol. El vector
pCMV-GH (Laboratorio del Dr. Stephen A. Johnston,
Departamento de Bioquímica, Universidad de Texas, Dallas, Texas),
que contiene hormona de crecimiento humana para crear proteínas de
fusión, se digirió con las enzimas de restricción BamHI y HindIII,
se extrajo con fenol:cloroformo, y se precipitó con etanol. El
fragmento de ADN genómico de 1,3 Kb BgIII-HindIII se
ligó al vector BamHI-HindIII
pCMV-GH para crear la proteína de fusión
hGH-GBS bajo el control del promotor CMV. Los
productos ligados fueron transformados en la cepa de E. coli
DH5\alpha[\phi80 lacZ \DeltaM15 endA1
recA1 hsdR17 (^{r}K^{-m}K^{+}) supE44
thi-1\lambda^{-} gyrA96 relA1 \Delta
(lacZYA-argF) U169] (Gibco BRL,
Gaithersburg, MD) de acuerdo con los métodos descritos por Hanahan
(ver anteriormente). Los transformantes que albergan plásmidos con
el injerto fueron identificados mediante análisis de células lisadas
sometidas a electroforesis sobre gel de agarosa (Sambrook, J. y
col., ver anterior). El plásmido pCMV recombinante fue purificado
usando un kit Qiagen (Qiagen, Chatsworth, CA) y la secuencia de
nucleótidos del injerto de ADN se verificó mediante secuenciamiento
de ADN.
Se inyectó subcutáneamente a cuatro grupos de 12
ratones CD-1 hembra (Charles River,
St-Constant, Québec, Canadá), de 6 a 8 semanas de
edad, tres veces a intervalos de tres semanas con 0,1 mL de las
siguientes preparaciones antigénicas: células de cepa C388/90 de
GBS muertas por formaldehído (aproximadamente 6 x 10^{7} cfu), 20
\mug de la proteína de fusión, purificada por afinidad (columna de
níquel), a partir de la fracción citoplásmica soluble de E.
coli, ó 20 \mug de polipéptido de control
tiorredoxin-His.Tag purificado por afinidad (columna
de níquel). Como adyuvante, se añadieron 20 \mug de QuilA^{TM}
(Cedarlane Laboratorios Ltd., Hornby, Canadá) a cada preparación
antigénica. Se extrajeron muestras de suero de cada ratón antes de
la inmunización (PB) y en los días 20 (TB1), 41 (TB2) y 54 (TB3)
durante los protocolos de inmunización. Los sueros se congelaron a
-20ºC.
Se registró un aumento en los títulos de ELISA
después de cada inyección de la proteína de fusión, lo que indica
una buena respuesta primaria y un aumento brusco de la respuesta
inmune humoral después de la segunda y de la tercera
administración. Al final del periodo de inmunización, el valor medio
de los títulos de ELISA recíprocos fue de 456.145 para el grupo
inmunizado con 20 \mug de proteína de fusión obtenida de cuerpos
de inclusión, en comparación a 290.133 correspondiente al grupo de
ratones inmunizados con la proteína procedente de la fracción
soluble de E. coli. Este último resultado sugiere que la
proteína obtenida a partir de cuerpos de inclusión podría ser más
inmunogénica que la proteína soluble. El análisis de sueros de
ratones en ELISA usando la tiorredoxin-His.Tag
purificada por afinidad para cubrir placas demostró que se obtienen
títulos despreciables frente a la porción de
tiorredoxin-His.Tag de la proteína de fusión. La
reactividad de los sueros de ratones inyectados con la proteína de
fusión recombinante también fue evaluada mediante ELISA frente a
células enteras muertas por formaldehído de GBS de cepa C388/90. Los
anticuerpos inducidos por inmunización con proteína de fusión
recombinante también reconocieron sus epítopos específicos sobre
células de GBS, lo que indica que su conformación está
suficientemente próxima a la de la proteína estreptococal nativa
para inducir anticuerpos reactivos.
Para verificar si la respuesta inmune inducida
por la inmunización podría proteger frente a una infección de GBS,
se expuso a los ratones a 3,5 x 10^{5} cfu de GBS de la cepa
C388/90 (Ia/c) y 1,2 x 10^{5} cfu de GBS de la cepa NCS246
(II/R), cuyos resultados se muestran en las tablas 3 y 4,
respectivamente. Los ratones inmunizados con péptido de
tiorredoxin-His.Tag de control no fueron protegidos
frente a la exposición a cualquiera de las cepas de GBS, mientras
que los inmunizados con células enteras muertas por formaldehído de
cepa C388/90 sólo proporcionaron protección frente a la exposición
homóloga. La proteína de fusión
tiorredoxin-His.Tag-GBS de la
invención protegió a los ratones frente a la exposición con ambas
cepas de GBS. Los cultivos de sangre y de bazo de estos ratones no
revelaron presencia alguna de GBS.
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
Este Ejemplo ilustra la protección de ratones
contra infección fatal de GBS mediante inmunización con la proteína
recombinante correspondiente a la SEQ ID NO: 39.
Se inmunizaron grupos de 10 ratones
CD-1 hembra (Charles River) subcutáneamente tres
veces con intervalos de tres semanas con 20 \mug de proteína
recombinante purificada a partir de la cepa de E. coli BLR
(Novagen), que aloja el vector plásmido pURV22 recombinante que
contiene el gen de GBS correspondiente a la SEQ ID NO: 42, en
presencia de 20 \mug de adyuvante QuilA^{TM} (Cedarlane
Laboratorios Ltd, Hornby, Canadá) o, a modo de control, solo con
adyuvante QuilA^{TM} en PBS. Se tomaron muestras de sangre del
seno orbital en los días 1, 22 y 43 antes de cada inmunización, y
catorce días (día 57) después de la tercera inyección. Una semana
después, se expusieron los ratones a aproximadamente entre 10^{4}
y 10^{5} cfu de diversas cepas virulentas de GBS. Las muestras
del inóculo de exposición a GBS se colocaron en placas de agar de
sangre de oveja al 5%/TSA para determinar la CFU y para verificar
la dosis de exposición. Se registraron las muertes durante un
periodo de 14 días, y en el día 14 después de la exposición los
ratones supervivientes fueron sacrificados y se determinó la
presencia de organismos GBS en la sangre y en el bazo. Los datos de
supervivencia se muestran en la Tabla 5.
Los sueros pre-exposición fueron
analizados en busca de la presencia de anticuerpos reactivos con GBS
mediante inmunoensayos estándar. Los análisis Elisa y de
inmunotinción indicaron que la inmunización con proteína de GBS
recombinante producida en E. coli provocó anticuerpos
reactivos con proteínas de GBS nativas y recombinantes. Las
respuestas de anticuerpos a GBS se describen en el Ejemplo 9.
Todos los hemocultivos de ratones supervivientes
dieron negativo en el 14 después de la exposición. Los cultivos de
bazo de los ratones supervivientes dieron negativo excepto para
algunos ratones del experimento MB-11.
Se inmunizó grupos de 10 ratones
CD-1 hembra subcutáneamente con proteína de GBS
recombinante correspondiente a la SEQ ID NO: 39, tal como se
describe en el Ejemplo 8. Con el fin de establecer la respuesta de
anticuerpos frente a la proteína de GBS nativa, se analizaron los
sueros procedentes de muestras de sangre antes de cada inmunización
y a los catorce días de la tercera inmunización en busca de
anticuerpos reactivos a células de GBS mediante ELISA usando placas
recubiertas con células de GBS muertas por formaldehído de tipo III
de cepa NCS 954, de tipo Ib de cepa ATCC12401, de tipo V de cepa
NCS 535 ó de tipo VI de cepa NCS 9842. La especificidad de los
anticuerpos activados por la proteína de GBS se confirmó mediante
análisis Western blot realizados sobre extractos celulares de GBS y
sobre antígenos recombinantes purificados. Los resultados mostrados
en la Figura 10 demuestran claramente que los animales responden
enérgicamente a la proteína de GBS recombinante usada como
inmunógeno, con títulos de anticuerpos recíprocos medios que varían
entre 12.000 y 128.000, para sueros recogidos después de la tercera
inmunización, dependiendo del antígeno que recubre. Todos los sueros
preinmunización resultaron negativos cuando fueron evaluados con
una dilución de 1 : 100. Los anticuerpos reactivos a GBS eran
detectables en los sueros de cada animal después de una única
inyección de proteína de GBS recombinante.
Se usaron anticuerpos monoclonales (MAbs)
específicos de la proteína de GBS de la presente invención para
demostrar que dicho antígeno superficial se produce en todos los
GBS, y también que es antigénicamente altamente conservado.
Se usó una colección de 68 elementos aislados de
GBS para evaluar la actividad de MAbs específicos de GBS. Dichas
cepas se obtuvieron del National Center for Streptococcus, del
Provincial Laboratory of Public Health for Northern Alberta,
Canadá; del Centre Hospitalier Universitaire de Quebec, Pabellón
CHUL, Québec, Canadá; de la American Type Culture Collection,
EE.UU.; del Laboratoire de Sante Publique du Québec, Canadá; y del
Dept. of Infectious Disease, Children's Hospital and Medical Center,
Seattle, EE.UU. Se evaluó los ocho MAbs frente al siguiente panel
de cepas: 6 elementos aislados de serotipo Ia ó Ia/c, 3 elementos
aislados de serotipo Ib, 4 elementos aislados de serotipo II, 14
elementos aislados de serotipo III, 2 elementos aislados de serotipo
IV, 2 elementos aislados de serotipo V, 2 elementos aislados de
serotipo VI, 2 elementos aislados de serotipo VII, 1 elemento
aislado de serotipo VIII, 10 elementos aislados que no estaban
serotipados y 3 cepas bovinas de S. agalactiae. También se
hizo reaccionar MAb 3A2 con GBS adicional: 9 elementos aislados de
serotipo Ia/c y 10 elementos aislados de serotipo V. Se cultivaron
las cepas una noche sobre placas de agar de sangre a 37ºC en una
atmósfera con un 5% en CO_{2}. Los cultivos fueron almacenados a
-70ºC en un caldo de infusión de corazón con un 20% (v/v) de
glicerol.
Para obtener los MAbs específicos de proteína de
GBS, se inmunizó ratones tres veces a intervalos de tres semanas
con 20 \mug de proteína de GBS recombinante purificada (SEQ ID NO:
44), en presencia de adyuvante QuilA^{TM} al 20%. Se generaron
líneas celulares de hibridoma mediante fusión de células de bazo
recuperadas de los ratones inmunizados con la línea celular de
mieloma SP2/0 no secretora tal como se ha descrito previamente
(Hamel, J. y col., 1987, J. Med. Microbiol. 23:
163-170). Se evaluaron los sobrenadantes de clones
híbridos en busca de una producción de anticuerpos específicos
mediante ELISA usando GBS desactivado por formaldehído y proteína
de GBS recombinante purificada (SEQ ID NO: 39 ó 44) como antígeno
cubriente, tal como se ha descrito previamente (Hamel, J. y col.,
1987, J. Med. Microbiol. 23: 163-170). Los
híbridos específicos fueron clonados mediante diluciones
limitantes, fueron expandidos y congelados en nitrógeno líquido. La
producción de proteína de GBS recombinante se presentó en los
Ejemplos 4 y 5. La proteína de GBS recombinante purificada o el GBS
desactivado por formaldehído fueron redisueltos mediante
electroforesis usando el sistema tampón discontinuo de Laemmli, tal
como recomienda el fabricante, y a continuación se transfirieron a
una membrana de nitrocelulosa para realizar la inmunotinción
Western tal como se ha descrito previamente (Martin y col., 1992,
Infect. Immun. 60: 2718-2725).
Los experimentos de inmunotinción de Western
claramente indicaron que los ocho MAbs reconocen una banda de
proteína que se corresponde con proteína de GBS recombinante
purificada (SEQ ID NO: 39). Dichos MAbs también reaccionaron con
una banda de proteína presente en todos los elementos aislados de
GBS evaluados. La reactividad de estos MAbs específicos de GBS se
presenta en la Tabla 6. Cada MAb reaccionó bien con los 46 GBS.
Además, estos MAbs también reconocieron las 3 cepas de S.
agalactiae de origen bovino que fueron evaluadas. El MAb 3A2
también reconoció diecinueve GBS; 9 elementos aislados de serotipo
Ia/c y 10 de serotipo V. Los otros MAbs no fueron evaluados frente a
estas cepas adicionales.
Estos resultados demuestran que la proteína de
GBS (SEQ ID NO: 39) fue producida por todos los 65 GBS, y por las 3
cepas de S. agalactiae de origen bovino que fueron evaluadas.
Aún más importante, estos resultados claramente demuestran que los
epítopos reconocidos por estos ocho MAbs específicos de GBS estaban
distribuidos y conservados ampliamente entre los GBS. Estos
resultados también indicaron que dichos epítopos no estaban
restringidos a elementos aislados relacionados serológicamente, ya
que se evaluaron representantes de todos los serotipos de GBS
conocidos, incluyendo los grupos principales causantes de
enfermedades.
En conclusión, los datos presentados en este
Ejemplo demuestran claramente que la proteína de GBS de la presente
invención es producida por todos los GBS y que es antigénicamente
altamente conservada.
<110> BioChem Vaccins
\hskip1cm RIOUX, Clément
\hskip1cm DENIS, Martin
\hskip1cm BRODEUR, Bernard R.
\hskip1cm HAMEL, Josée
\hskip1cm CHARLEBOIS, Isabelle
\hskip1cm BOYER, Martine
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<120> NUEVOS ANTÍGENOS DE ESTREPTOCOCOS
DEL GRUPO B
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<130> 12806-9PCT
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<150> 60/075,425
\vskip0.400000\baselineskip
<151>
1998-02-20
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<160>44
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<170> FastSEQ para Windows Versión 3.0
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 1
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 4514
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Estreptococos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> CDS
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (3)...(464)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<221> CDS
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (534)...(887)
\vskip0.400000\baselineskip
<223>
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<221> CDS
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1024)...(1767)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<221> CDS
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1841)... (4288)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<221> CDS
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (2735)...(4288)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 1
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 2
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 154
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
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<213> Estreptococos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 2
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 3
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 118
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
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<213> Estreptococos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 3
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 4
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<211> 247
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Estreptococos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 4
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 5
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<211> 816
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<212> PRT
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<213> Estreptococos
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 5
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\vskip0.400000\baselineskip
<210> 6
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<211> 518
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
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<213> Estreptococos
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 6
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 7
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 5126
\vskip0.400000\baselineskip
<212> Adn
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Estreptococos
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\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> CDS
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)...(687)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<221> CDS
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (701)...(2557)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<221> CDS
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<222> (2566)...(3036)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<221> CDS
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (3106)...(4842)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<221> CDS
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (4850)...(5125)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 7
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 8
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 229
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Estreptococos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 8
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 9
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 622
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Estreptococos
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 9
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 10
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 157
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Estreptococos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 10
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\vskip0.400000\baselineskip
<210> 11
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 579
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<212> PRT
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<213> Estreptococos
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\vskip0.400000\baselineskip
<400> 11
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 12
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 92
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Estreptococos
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\vskip0.400000\baselineskip
<400> 12
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\vskip0.400000\baselineskip
<210> 13
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 5215
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
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<213> Estreptococos
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\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> CDS
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (3)...(122)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<221> CDS
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (133)...(2511)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<221> CDS
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (367)...(2511)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<221> CDS
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (2946)...(2716)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> de cadena complementaria
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<221> CDS
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (3252)...(2995)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> de cadena complementaria
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<221> CDS
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (3676)...(3299)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> de cadena complementaria
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<221> CDS
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (4124)...(3837)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> de cadena complementaria
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<221> CDS
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (5214)...(4351)
\vskip0.400000\baselineskip
<223> de cadena complementaria
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 13
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 14
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 40
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Estreptococos
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 14
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 15
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 793
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Estreptococos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 15
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 16
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 715
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Estreptococos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 16
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 17
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 77
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Estreptococos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 17
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 18
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 86
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Estreptococos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 18
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 19
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 126
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Estreptococos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 19
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 20
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 96
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Estreptococos
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 20
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 21
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 288
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Estreptococos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 21
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 22
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 5058
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Estreptococos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> CDS
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1)...(663)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<221> CDS
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (763)...(1344)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<221> CDS
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (1362)...(1739)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<221> CDS
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (2266)...(5058)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 22
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 23
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 221
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Estreptococos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 23
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 24
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 194
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Estreptococos
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 24
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 25
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 126
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Estreptococos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 25
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 26
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 931
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Estreptococos
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 26
\vskip1.000000\baselineskip
\newpage
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 27
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 5607
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Estreptococos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<220>
\vskip0.400000\baselineskip
<221> CDS
\vskip0.400000\baselineskip
<222> (2)...(301)
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 27
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 28
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 111
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Estreptococos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 28
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 29
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 173
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Estreptococos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 29
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 30
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 389
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Estreptococos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 30
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 31
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 169
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Estreptococos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 31
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 32
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 4171
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Estreptococos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 32
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 33
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 649
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Estreptococos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 33
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 34
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 119
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Estreptococos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 34
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 35
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 326
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Estreptococos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 35
\vskip1.000000\baselineskip
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 36
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 247
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Estreptococos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 36
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 37
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 3480
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Estreptococos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 37
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 38
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 306
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Estreptococos
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 38
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 39
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 434
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Estreptococos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 39
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 40
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 232
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Estreptococos
\newpage
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 40
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 41
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 39
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Estreptococos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 41
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 42
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 1305
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Estreptococos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 42
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 43
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 1230
\vskip0.400000\baselineskip
<212> ADN
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Estreptococos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 43
\vskip0.400000\baselineskip
<210> 44
\vskip0.400000\baselineskip
<211> 409
\vskip0.400000\baselineskip
<212> PRT
\vskip0.400000\baselineskip
<213> Estreptococos
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip0.400000\baselineskip
<400> 44
Claims (43)
1. Un polinucleótido aislado que codifica un
polipéptido que tiene al menos un 70% de identidad con un segundo
polipéptido que tiene una secuencia seleccionada del grupo que
consiste en SEQ ID NO: 39 y SEQ ID NO: 44, o un fragmento de dicho
polipéptido, en donde dicho polipéptido o fragmento de dicho
polipéptido retiene la capacidad de inducir una respuesta inmune
específica de estreptococos del grupo B.
2. El polinucleótido aislado de acuerdo con
la reivindicación 1, que codifica un polipéptido que tiene al menos
un 70% de identidad con un segundo polipéptido que tiene una
secuencia seleccionada del grupo que consiste en SEQ ID NO: 39 y
SEQ ID NO: 44, en donde dicho polipéptido retiene la capacidad de
inducir una respuesta inmune específica de estreptococos del grupo
B.
3. Un polinucleótido de acuerdo con la
reivindicación 1 ó 2, en donde dicho polinucleótido codifica un
polipéptido que tiene al menos un 95% de identidad con el segundo
polipéptido.
4. Un polinucleótido aislado que codifica un
polipéptido que tiene al menos un 70% de identidad con un segundo
polipéptido capaz de generar anticuerpos que presentan especificidad
de unión por un polipéptido que tiene una secuencia seleccionada
del grupo que consiste en SEQ ID NO: 39 y SEQ ID NO: 44, o un
fragmento de dicho polipéptido, y en donde dicho polipéptido o
fragmento de dicho polipéptido retiene la capacidad de inducir una
respuesta inmune específica de estreptococos del grupo B.
5. Un polinucleótido aislado que codifica un
polipéptido que tiene al menos un 70% de identidad con un segundo
polipéptido capaz de generar anticuerpos que presentan especificidad
de unión por un polipéptido que tiene una secuencia seleccionada
del grupo que consiste en SEQ ID NO: 39 y SEQ ID NO: 44, y en donde
dichos polipéptidos retienen la capacidad de inducir una respuesta
inmune específica de estreptococos del grupo B.
6. Un polinucleótido aislado que es
complementario al polinucleótido de la reivindicación 1 ó 2.
7. Un polinucleótido aislado que es
complementario al polinucleótido de la reivindicación 4 ó 5.
8. El polinucleótido de la reivindicación 1 ó
2, en donde dicho polinucleótido es ADN.
9. El polinucleótido de la reivindicación 4 ó
5, en donde dicho polinucleótido es ADN.
10. El polinucleótido de la reivindicación 1 ó
2, en donde dicho polinucleótido es ARN.
11. El polinucleótido de la reivindicación 4 ó
5, en donde dicho polinucleótido es ARN.
12. Un polinucleótido aislado que se hibrida en
condiciones severas con el complemento de un segundo polinucleótido
que tiene una secuencia seleccionada del grupo que consiste en SEQ
ID NO: 37, SEQ ID NO: 42 y SEQ ID NO: 43, o un fragmento de dicho
polinucleótido, en donde dicho polinucleótido tiene al menos un 70%
de identidad con dicho segundo polinucleótido y en donde dicho
polinucleótido, o fragmento del mismo, codifica un polipéptido que
retiene la capacidad de inducir una respuesta inmune específica de
estreptococos del grupo B.
13. Un polinucleótido aislado que se hibrida en
condiciones severas con un segundo polinucleótido que tiene una
secuencia seleccionada del grupo que consiste en SEQ ID NO: 37, SEQ
ID NO: 42 y SEQ ID NO: 43, en donde dicho polinucleótido tiene al
menos un 70% de identidad con dicho segundo polinucleótido y en
donde dicho polinucleótido codifica un polipéptido que retiene la
capacidad de inducir una respuesta inmune específica de
estreptococos del
grupo B.
grupo B.
14. Un polinucleótido aislado que se hibrida en
condiciones severas con el complemento de un segundo polinucleótido
que tiene una secuencia seleccionada del grupo que consiste en SEQ
ID NO: 37, SEQ ID NO: 42 y SEQ ID NO: 43, en donde dicho
polinucleótido tiene al menos un 95% de identidad con dicho segundo
polinucleótido y en donde dicho polinucleótido codifica un
polipéptido que retiene la capacidad de inducir una respuesta
inmune específica de estreptococos del grupo B.
15. Un polinucleótido de acuerdo con la
reivindicación 14, que se hibrida en condiciones severas con el
complemento de un segundo polinucleótido que tiene la secuencia SEQ
ID NO: 37.
16. Un polinucleótido de acuerdo con la
reivindicación 14, que se hibrida en condiciones severas con el
complemento de un segundo polinucleótido que tiene la secuencia SEQ
ID NO: 42.
17. Un polinucleótido de acuerdo con la
reivindicación 14, que se hibrida en condiciones severas con el
complemento de un segundo polinucleótido que tiene la secuencia SEQ
ID NO: 43.
18. Un polinucleótido de acuerdo con la
reivindicación 12, en donde dicho polinucleótido tiene al menos un
95% de complementariedad con el segundo polinucleótido.
19. Un vector que comprende el polinucleótido
de la reivindicación 1 ó 2, en donde dicho polinucleótido está
ligado operativamente a una región de control de expresión.
20. Un vector que comprende el polinucleótido
de la reivindicación 4 ó 5, en donde dicho polinucleótido está
ligado operativamente a una región de control de expresión.
21. Una célula hospedante transfectada con el
vector de la reivindicación 19.
22. Una célula hospedante transfectada con el
vector de la reivindicación 20.
23. Un proceso para producir un polipéptido que
comprende cultivar una célula hospedante de acuerdo con la
reivindicación 21 en las condiciones adecuadas para la expresión de
dicho polipéptido.
24. Un proceso para producir un polipéptido que
comprende cultivar una célula hospedante de acuerdo con la
reivindicación 22 en las condiciones adecuadas para la expresión de
dicho polipéptido.
25. Un polipéptido aislado que tiene al menos
un 70% de identidad con un segundo polipéptido que tiene una
secuencia seleccionada del grupo que consiste en: SEQ ID NO: 39 y
SEQ ID NO: 44, o un fragmento de dicho polipéptido, y en donde
dicho polipéptido o fragmento de dicho polipéptido retiene la
capacidad de inducir una respuesta inmune específica de
estreptococos del grupo B.
26. Un polipéptido aislado que tiene al menos
un 70% de identidad con un segundo polipéptido que tiene una
secuencia seleccionada del grupo que consiste en SEQ ID NO: 39 y SEQ
ID NO: 44, y en donde dicho polipéptido retiene la capacidad de
inducir una respuesta inmune específica de estreptococos del grupo
B.
27. El polipéptido aislado de la reivindicación
25 ó 26 que tiene una secuencia de acuerdo con la SEQ ID NO: 39.
28. El polipéptido aislado de la reivindicación
25 ó 26 que tiene una secuencia de acuerdo con la SEQ ID NO: 44.
29. Un polipéptido aislado que tiene al menos
un 70% de identidad con un segundo polipéptido, y que es capaz de
generar anticuerpos que presentan especificidad de unión por un
polipéptido que tiene una secuencia seleccionada del grupo que
consiste en: SEQ ID NO: 39 y SEQ ID NO: 44, o un fragmento de dicho
polipéptido, en donde dicho polipéptido o fragmento de dicho
polipéptido retiene la capacidad de inducir una respuesta inmune
específica de estreptococos del grupo B.
30. Un polipéptido aislado que tiene al menos
un 70% de identidad con un segundo polipéptido, y que es capaz de
generar anticuerpos que presentan especificidad de unión por un
polipéptido que tiene una secuencia seleccionada del grupo que
consiste en: SEQ ID NO: 39 y SEQ ID NO: 44, en donde dichos
polipéptidos retienen la capacidad de inducir una respuesta inmune
específica de estreptococos del grupo B.
31. El polipéptido aislado de la reivindicación
29 ó 30 que tiene una secuencia de acuerdo con la SEQ ID NO:
39.
39.
32. El polipéptido aislado de la reivindicación
29 ó 30 que tiene una secuencia de acuerdo con la SEQ ID NO:
44.
44.
33. Un polipéptido aislado que tiene una
secuencia de aminoácidos seleccionada del grupo que consiste en SEQ
ID NO: 39, o fragmentos del mismo, y en donde dicho polipéptido o
fragmento de dicho polipéptido retiene la capacidad de inducir una
respuesta inmune específica de estreptococos del grupo B.
34. Un polipéptido aislado de acuerdo con la
reivindicación 33, en donde se elimina el residuo
N-terminal Met.
35. Un polipéptido aislado de acuerdo con la
reivindicación 33, en donde se elimina la secuencia de aminoácidos
secretora.
36. Una composición de vacuna que comprende un
polipéptido de acuerdo con una cualquiera de las reivindicaciones
25 a 33 y un vehículo, diluyente o adyuvante farmacéuticamente
aceptable.
37. Una composición de vacuna que comprende un
polipéptido de acuerdo con la reivindicación 34 y un vehículo,
diluyente o adyuvante farmacéuticamente aceptable.
38. Una composición de vacuna que comprende un
polipéptido de acuerdo con la reivindicación 35 y un vehículo,
diluyente o adyuvante farmacéuticamente aceptable.
39. El uso de un polipéptido de acuerdo con una
cualquiera de las reivindicaciones 25 a 33 para la fabricación de
una vacuna para el tratamiento terapéutico o profiláctico de
infección bacteriana estreptococal de grupo B en un animal
susceptible a la infección estreptococal de grupo B.
40. El uso de un polipéptido de acuerdo con la
reivindicación 34 para la fabricación de una vacuna para el
tratamiento terapéutico o profiláctico de infección bacteriana
estreptococal de grupo B en un animal susceptible a la infección
estreptococal de grupo B.
41. El uso de un polipéptido de acuerdo con la
reivindicación 35 para la fabricación de una vacuna para el
tratamiento terapéutico o profiláctico de infección bacteriana
estreptococal de grupo B en un animal susceptible a la infección
estreptococal de grupo B.
42. El uso de acuerdo con una cualquiera de las
reivindicaciones 39 a 41, en donde dicho animal es un bovino.
43. El uso de acuerdo con una cualquiera de las
reivindicaciones 39 a 41, en donde dicho animal es un humano.
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