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WO2025097439A1 - 一种构建空间转录组文库的方法 - Google Patents

一种构建空间转录组文库的方法 Download PDF

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WO2025097439A1
WO2025097439A1 PCT/CN2023/131048 CN2023131048W WO2025097439A1 WO 2025097439 A1 WO2025097439 A1 WO 2025097439A1 CN 2023131048 W CN2023131048 W CN 2023131048W WO 2025097439 A1 WO2025097439 A1 WO 2025097439A1
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WO
WIPO (PCT)
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sequence
chip
mrna
cdna
sequencing
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Pending
Application number
PCT/CN2023/131048
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English (en)
French (fr)
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祝珍珍
郭晶
刘亚胜
郭珊珊
廖莎
陈奥
章文蔚
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BGI Shenzhen Co Ltd
Original Assignee
BGI Shenzhen Co Ltd
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by BGI Shenzhen Co Ltd filed Critical BGI Shenzhen Co Ltd
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Priority to CN202380096903.1A priority patent/CN120958140A/zh
Publication of WO2025097439A1 publication Critical patent/WO2025097439A1/zh
Pending legal-status Critical Current
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    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00—Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09—Recombinant DNA-technology
    • C12N15/10—Processes for the isolation, preparation or purification of DNA or RNA
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/68—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
    • C12Q1/6806—Preparing nucleic acids for analysis, e.g. for polymerase chain reaction [PCR] assay
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C40—COMBINATORIAL TECHNOLOGY
    • C40B—COMBINATORIAL CHEMISTRY; LIBRARIES, e.g. CHEMICAL LIBRARIES
    • C40B50/00—Methods of creating libraries, e.g. combinatorial synthesis
    • C40B50/06—Biochemical methods, e.g. using enzymes or whole viable microorganisms

Definitions

  • the present invention belongs to the technical field of gene sequencing, and in particular, the present invention relates to a method for constructing a spatial transcriptome library.
  • gene expression of individual cells occurs strictly in a specific temporal and spatial order, that is, gene expression has temporal specificity and spatial specificity.
  • Temporal specificity can be analyzed by taking samples at different time points and using single-cell transcriptome sequencing technology to analyze cell types and gene expression patterns in the temporal dimension. Spatial specificity information is relatively difficult to obtain. Therefore, spatial transcriptome technology provides important bioinformatics support for cell typing, cell state characterization, and cell-cell interactions through in situ characterization of tissue transcriptomes.
  • TSO template switch oligo
  • the present invention aims to solve one of the technical problems in the related art at least to a certain extent.
  • one object of the present invention is to provide a method for constructing a spatial transcriptome library.
  • the traditional spatial transcriptome technology has the following steps:
  • the poly A at the 3' end of mRNA binds to the position of the poly T probe on the spatial chip, and reverse transcription is performed using mRNA as a template. During this process, the reverse transcriptase will transcribe 3 more C bases at the position of the 5' end cap structure. At this time, a template switch oligo (TSO) with 3 G bases is added, and this primer will be used as a template to continue reverse transcription and synthesize the complementary sequence of the TSO sequence;
  • TSO template switch oligo
  • primers containing the linker 2 sequence and the linker 1 sequence to perform PCR amplification to obtain a library containing position tags and mRNA sequences, which can be sequenced and analyzed.
  • the above spatial transcriptome technology has the following disadvantages: 1) It needs to rely on TSO for amplification, which has low addition efficiency and can only be added when the mRNA has a 5' end cap structure. However, degraded mRNA may not have The cap structure makes it impossible to add TSO and subsequent PCR amplification. 2)
  • the cDNA needs to be amplified by PCR for the first time, and then the amplified product needs to be interrupted by transposase, and then the adapter 1 is added to the interrupted product. Finally, the interrupted product with adapters added at both ends is amplified by PCR for the second time. The high number of cycles of the two PCR amplifications will lead to an increase in the number of repeated sequences in the data. 3) After the cDNA is released, two PCR amplifications are required, and the whole process takes a long time.
  • the method of the present invention can construct a sequencing library without adding TSO and without PCR amplification of cDNA before breaking with transposase and adding adapter 1. This method shortens the process and time of constructing a sequencing library and reduces the cost, and can also capture mRNA without a 5' end cap structure due to degradation in the sample, and reduce the repetitive sequences in the sequencing library.
  • the present invention proposes a method for constructing a sequencing library.
  • the method comprises:
  • the method of the present invention can shorten the process and time of constructing a sequencing library, thereby reducing costs, and can also capture mRNA without a 5' end cap structure due to degradation in the sample, and reduce repeated sequences in the sequencing library.
  • the above method may further include at least one of the following technical features:
  • the reverse transcription product includes a cDNA-mRNA hybrid chain, wherein the cDNA is a single cDNA chain.
  • the reverse transcription treatment further includes synthesis of the second cDNA chain; the synthesis of the second cDNA chain is carried out using random primers as primers and the first cDNA chain as a template.
  • a polymerase is used to synthesize the second chain of cDNA, and the polymerase is selected from at least one of Bst polymerase, Taq DNA polymerase, Klenow fragment, T4 DNA polymerase, reverse transcriptase with DNA-dependent polymerization activity and DNA polymerase I.
  • the polymerase is Bst polymerase.
  • the synthesis of the second strand of cDNA is carried out at 65-70° C. for 20-60 min.
  • the probes are of multiple types, and each probe contains a unique position tag sequence, and the position tag sequence corresponds one-to-one to the position of the probe on the chip.
  • the probe further contains a second linker sequence; and the 5' end of the second linker sequence is connected to the chip, the 3' end of the second linker sequence is connected to the 5' end of the position tag sequence, and the 3' end of the position tag sequence is connected to the poly-T sequence.
  • the probe further contains a molecular tag sequence; wherein the 5' end of the second linker sequence is connected to the chip, the 3' end of the second linker sequence is connected to the 5' end of the position tag sequence, the 3' end of the position tag sequence is connected to the 5' end of the molecular tag sequence, and the 3' end of the molecular tag sequence is connected to the poly-T sequence.
  • the mRNA comes from a tissue sample or a single cell sample.
  • the method before step (1), further includes: contacting the tissue sample or single cell sample with the chip; and permeabilizing the tissue sample or single cell sample to release mRNA in the tissue sample or single cell sample.
  • step (2) the reverse transcription product is interrupted using a transposase or a fragmentase.
  • the transposase is Tn5 transposase.
  • a lysis solution is used to release the fragmentation and linker addition products from the chip.
  • the lysate is an alkaline solution or formamide.
  • the lysate is a strongly alkaline solution.
  • the lysis solution is KOH.
  • step (3) after the fragmentation and adapter products are released from the chip, PCR amplification is performed on the fragmentation and adapter products to obtain the sequencing library.
  • the present invention proposes a transcriptome sequencing method.
  • the transcriptome sequencing method comprises: sequencing the sequencing library obtained by the method described in the first aspect to obtain sequence information of the sequencing library.
  • the transcriptome sequencing method of the embodiment of the present invention has the advantages of fewer library construction steps, shorter time and lower cost, and can capture mRNA in the sample without a 5' end cap structure due to degradation.
  • the present invention proposes a spatial transcriptome sequencing method.
  • the spatial transcriptome sequencing method comprises: constructing a sequencing library using the method described in the first aspect; sequencing based on the sequencing library; and obtaining spatial transcriptome information of the sample to be tested based on the sequencing results.
  • the spatial transcriptome sequencing of the embodiment of the present invention has the advantages of fewer library construction steps, short time and low cost, and can also capture mRNA without 5' end cap structure due to degradation in the sample and reduce the repetitive sequences in the sequencing library.
  • FIG1 is a schematic diagram of constructing a sequencing library using traditional spatial transcriptome technology.
  • FIG. 2 is a schematic diagram of constructing a sequencing library in one embodiment of the present invention.
  • FIG. 3 is a graph showing the results of quality inspection of library fragments using the Bioanalyzer 2100 in Example 1 of the present invention.
  • first and second are used for descriptive purposes only and should not be understood as indicating or implying relative importance or implicitly indicating the number of the indicated technical features. Therefore, the features defined as “first” and “second” may explicitly or implicitly include one or more of the features. Further, in the description of the present invention, unless otherwise specified, the meaning of "plurality” is two or more.
  • the present invention proposes a method for constructing a sequencing library, a transcriptome sequencing method, and a spatial transcriptome sequencing method, which will be described in detail below.
  • the present invention provides a method for constructing a sequencing library. According to an embodiment of the present invention, the method comprises:
  • Reverse transcription of mRNA is performed to obtain a reverse transcription product without adding a template switching primer, wherein the 3' end of the mRNA contains a poly-A sequence, the mRNA is connected to a chip, and a probe containing a poly-T sequence is connected to the chip, and the connection is achieved by complementary pairing of the poly-A sequence at the 3' end of the mRNA with the poly-T sequence on the chip.
  • the method of the embodiment of the present invention does not need to add a template switching primer (TSO), avoiding the problems of low TSO addition efficiency and low quality of the constructed sequencing library in the traditional spatial transcriptome technology; and, in the present invention, the reverse transcription product is directly interrupted and the first connector is added, and the processing is completed on the chip, avoiding the cumbersomeness of interrupting and adding connectors before the reverse transcription product is PCR amplified and purified in the traditional spatial transcriptome technology. Therefore, the method of the present invention can shorten the process and time of constructing the sequencing library, thereby reducing costs, and can also capture the mRNA without 5' end cap structure due to degradation in the sample and reduce the repetitive sequences in the sequencing library.
  • TSO template switching primer
  • the above method may further include at least one of the following technical features:
  • the reverse transcription product includes a cDNA-mRNA hybrid chain, wherein the cDNA is a single cDNA chain.
  • the processed product obtained in step 1) can be directly subjected to steps 2) to 4) to obtain a sequencing library, which can greatly shorten the process and time for constructing a sequencing library, reduce the cost of constructing a sequencing library, and can also capture mRNA without a 5' end cap structure due to degradation in the sample and reduce the repetitive sequences in the sequencing library.
  • cDNA-mRNA hybrid chain is obtained by reverse transcription using mRNA as a template.
  • the method does not require the addition of TSO, which can greatly shorten the process and time of constructing the sequencing library, reduce the cost of constructing the sequencing library, and can also capture the mRNA without a 5' end cap structure in the sample due to degradation and reduce the repetitive sequences in the sequencing library.
  • step (1) after the reverse transcription treatment and before the synthesis of the cDNA second strand, the mRNA strand in the cDNA-mRNA hybrid strand is removed.
  • the removal method can be a conventional method in the art, as long as the mRNA strand can be removed so that it can be used to synthesize the cDNA second strand using the cDNA first strand as a template.
  • the removal of the mRNA chain can be performed by alkaline hydrolysis or enzymatic hydrolysis.
  • the nucleotide sequence of the random primer is as shown in N (4-10) , wherein N is selected from any one of A, T, C and G.
  • nucleotide sequence of the random primer is as shown in NNNNNNNN, wherein N is selected from any one of A, T, C and G.
  • a polymerase is used to synthesize the cDNA duplex, and the polymerase is selected from at least one of Bst polymerase, Taq DNA polymerase, Klenow fragment, T4 DNA polymerase, DNA polymerase I, and a reverse transcriptase with DNA-dependent polymerization activity.
  • the reverse transcriptase with DNA-dependent polymerization activity may be Maxima H Minus reverse transcriptase.
  • the synthesis of the second strand of cDNA is carried out in a mixed solution, and the mixed solution includes the random primers and polymerase.
  • the polymerase is Bst polymerase, thereby further improving the synthesis efficiency of the cDNA second strand and thus improving the quality of the sequencing library.
  • the mixed solution includes 200UBst polymerase, 0.1mmoldNTP mix, 1 ⁇ g random primer, 5URNaseH and Bst buffer per 100 ⁇ L.
  • the synthesis of the second cDNA strand is carried out at 65-70° C. for 20-60 min.
  • the synthesis of the second cDNA strand can be achieved.
  • the probes are of multiple types, and each probe contains a unique position tag sequence, and the position tag sequence corresponds one-to-one to the position of the probe on the chip.
  • the probe further contains a second linker sequence; and the 5' end of the second linker sequence is connected to the chip, the 3' end of the second linker sequence is connected to the 5' end of the position tag sequence, and the 3' end of the position tag sequence is connected to the poly-T sequence.
  • position tag refers to a tag that connects different nucleic acid sequences on the chip to mark the spatial position of the chip.
  • the "position tag” can be a spatial coding sequence (also known as Barcode); the spatial coding sequence sequencing primer is used to sequence the spatial coding sequence through primer hybridization and extension, and then spatially locate each spatial coding sequence according to the image to obtain the spatial coordinates.
  • the specific sequence of the spatial coding sequence and the spatial coding sequence sequencing primer is not limited, as long as spatial positioning can be achieved.
  • first linker sequence and “linker 1” are synonymous; “second linker sequence” and “linker 2” are synonymous. Linker 1 and Linker 2 can be seen in Figure 2.
  • the probe further contains a molecular tag sequence; wherein the 5' end of the second linker sequence is connected to the chip, the 3' end of the second linker sequence is connected to the 5' end of the position tag sequence, the 3' end of the position tag sequence is connected to the 5' end of the molecular tag sequence, and the 3' end of the molecular tag sequence is connected to the poly-T sequence.
  • UMI Unique Molecular Identifier
  • the 5' end of the second linker is connected to the chip via a chemical bond.
  • the 5' end of the second linker is modified with DBCO (dibenzocyclooctyne), the chip is modified with azide, and the 5' end of the second linker and the chip are connected by a click chemistry reaction between DBCO and azide.
  • DBCO dibenzocyclooctyne
  • the mRNA comes from a tissue sample, that is, the mRNA is provided in the form of a tissue sample.
  • the mRNA is from a single cell sample, that is, the mRNA is provided in the form of a single cell suspension.
  • the method before step (1), further includes: contacting the tissue sample or single cell sample with the chip; and permeabilizing the tissue sample or single cell sample to release mRNA in the tissue sample or single cell sample.
  • spatial localization of the tissue sample or single cell sample can be achieved, and spatial transcriptome sequencing of the tissue sample or single cell sample can be performed.
  • step (2) the reverse transcription product is interrupted using a transposase or a fragmentase.
  • the transposase is Tn5 transposase.
  • a lysis solution is used to release the fragmentation and linker addition products from the chip.
  • the lysate is an alkaline solution or formamide.
  • the lysate is a strongly alkaline solution.
  • the lysis solution is KOH.
  • the concentration of the potassium hydroxide solution is 0.05-0.2M.
  • step (3) after the fragmentation and adapter products are released from the chip, the fragmentation and adapter products are PCR amplified to obtain a sequencing library.
  • the fragmentation and adapter products are PCR amplified to obtain a sequencing library.
  • the present invention provides a transcriptome sequencing method.
  • the transcriptome sequencing method comprises: sequencing the sequencing library obtained by the method of the first aspect to obtain sequence information of the sequencing library.
  • the transcriptome sequencing method of the embodiment of the present invention has the advantages of fewer library construction steps, shorter time and lower cost. It can also capture mRNA without 5' cap structure due to degradation in the sample and reduce the repetitive sequences in the sequencing library.
  • the present invention proposes a spatial transcriptome sequencing method.
  • the spatial transcriptome sequencing method comprises: constructing a sequencing library using the method described in the first aspect; sequencing based on the sequencing library; and obtaining spatial transcriptome information of the sample to be tested based on the sequencing results.
  • the spatial transcriptome sequencing of the embodiment of the present invention has the advantages of fewer library construction steps, short time and low cost, and can also capture mRNA without 5' end cap structure due to degradation in the sample and reduce the repetitive sequences in the sequencing library.
  • the chips, permeabilization reagents, and reverse transcription reagents used in the following embodiments of the present invention are from the BGI Stereo-seq transcriptome reagent kit (Cat. No.: 201ST114), and the fragmentation and PCR reagents are from the BGI Stereo-seq library construction kit (Cat. No.: 101KL114).
  • Precool methanol Add enough methanol to the slide box or 50mL centrifuge tube to ensure that the methanol is sufficient to immerse all chips. Cover the lid and precool the methanol at -20°C for 5-30 minutes.
  • step 2 Place the handheld carrier prepared in step 1 on the PCR adapter, cover the PCR instrument lid, and warm up at 37°C for 3 minutes. At the same time, place the 1 ⁇ permeabilization reagent working solution in the PCR instrument or metal bath and warm up at 37°C for 3 minutes.
  • the random primer sequence is NNNNNNNN, where N is any one of A, T, C and G.
  • step 3 After the RT reaction is completed, take out the handheld carrier in step 3 from the PCR instrument, tilt the handheld carrier slightly with an angle less than 20°, and use a pipette to aspirate the RT mix solution at one corner of the chip.
  • TMB and TME are both from the Stereo-seq library construction kit
  • TMB is the transposase reaction buffer
  • TME is the transposase with the nucleic acid adapter embedded.
  • step 4 After the second-strand reaction is completed, take out the handheld carrier in step 4 from the PCR instrument, tilt the handheld carrier slightly with an angle of less than 20°, and use a pipette to aspirate the second-strand reaction solution at one corner of the chip.
  • step 5 After the interruption reaction is completed, take out the handheld carrier in step 5 from the PCR instrument, tilt the handheld carrier slightly with an angle of less than 20°, and use a pipette to aspirate the interruption reaction solution at one corner of the chip.
  • the sequencing library constructed according to the method and steps of this embodiment has a repetitive sequence of 32.02%; while the sequencing library constructed by the traditional spatial transcriptome technology in Figure 1 (the specific construction method refers to the method disclosed in the following document: Spatiotemporal transcriptomic atlas of mouse organogenesis using DNA nanoball-patterned arrays, https://www.cell.com/cell/pdf/S0092-8674(22)00399-3.pdf) has a repetitive sequence of 55.14%. Therefore, the method of the present invention can significantly reduce the repetitive sequences in the sequencing library.
  • the cDNA products obtained in the examples and comparative examples are shown in Table 7. As can be seen from the table, compared with Klenowfragment, the total amount and concentration of cDNA products obtained by using Bst polymerase for double-strand synthesis are higher. The effect of using Bst polymerase for library construction is better.

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Abstract

本发明公开了一种构建测序文库的方法。所述方法包括：(1)将mRNA进行反转录处理，获得反转录产物，无需添加模板转换引物，其中，所述mRNA的3'端含有poly-A序列，所述mRNA与芯片相连，所述芯片上连接有含poly-T序列的探针，所述相连通过mRNA3'端的poly-A序列与芯片上的poly-T序列互补配对实现；(2)将所述反转录产物进行打断和添加第一接头处理，获得打断加接头产物，所述打断加接头产物连接在芯片上；(3)将所述打断加接头产物从芯片上释放下来，获得所述测序文库。

Description

一种构建空间转录组文库的方法 技术领域
本发明属于基因测序技术领域，具体地，本发明涉及一种构建空间转录组文库的方法。
背景技术
在多细胞生物中，单个细胞的基因表达严格按特定的时间和空间顺序发生，即基因表达具有时间特异性和空间特异性。时间特异性可以通过对不同时间点的样本取材，使用单细胞转录组测序技术来解析时间维度上细胞类型和基因表达模式。空间特异性信息则相对较难获得。因此，空间转录组技术通过对组织转录组的原位表征，为细胞分型、细胞状态表征、细胞-细胞相互作用提供重要的生物信息支持。
但是，传统的空间转录组技术需要依赖于模板转换引物(template switch oligo，TSO)进行扩增，TSO存在添加效率低，且必须要mRNA具有5'端帽子结构才能加上TSO，而降解的mRNA可能没有帽子结构，从而无法加上TSO被PCR扩增。
因此，亟需开发一种无需依赖TSO进行扩增的空间转录组文库构建方法。
发明内容
本发明旨在至少在一定程度上解决相关技术中的技术问题之一。为此，本发明的一个目的旨在提供一种构建空间转录组文库的方法。
本发明是基于发明人的下列发现而完成的：
如图1所示，传统的空间转录组技术具体如下步骤：
1.mRNA3'端的poly A结合到空间芯片上poly T探针的位置，以mRNA为模板进行反转录反应，在该过程中，反转录酶会在5'端帽子结构的位置多转录出3个C碱基，此时加入带有3个G碱基的模板转换引物(template switch oligo，TSO)，会以此引物为模板继续反转录合成TSO序列的互补序列；
2.将步骤1反转录后获得的cDNA从空间芯片上释放下来；
3.以接头2和TSO序列为引物进行PCR扩增获得双链cDNA；
4.将双链cDNA用转座酶打断并加入接头1；
5.用含有接头2序列和接头1序列的引物进行PCR扩增，获得含有位置标签和mRNA序列的文库，该文库可进行测序分析。
但是，上述空间转录组技术存在如下缺点：1)需要依赖TSO进行扩增，TSO存在添加效率低，且只有当mRNA具有5'端帽子结构时才能加上，然而，降解的mRNA可能没有 帽子结构，从而无法加上TSO，也无法进行后续的PCR扩增。2)需要先对cDNA进行第一次PCR扩增，然后用转座酶打断扩增产物，同时对打断产物加上接头1，最后对两端加上接头的打断产物再进行第二次PCR扩增，两次PCR扩增的循环数高会导致数据中的重复序列增多。3)cDNA释放后要进行两次PCR扩增，整个流程时间长。
然而，本发明的方法无需添加TSO，以及在用转座酶打断、加上接头1之前无需对cDNA进行PCR扩增，即可构建测序文库。该方法缩短了构建测序文库的流程和时间以及降低了成本，并且还可以捕获样本中因降解导致无5'端帽子结构的mRNA，以及降低测序文库中的重复序列。
基于此，在本发明的第一方面，本发明提出了一种构建测序文库的方法。根据本发明的实施例，所述方法包括：
(1)将mRNA进行反转录处理，获得反转录产物，无需添加模板转换引物，其中，所述mRNA的3'端含有poly-A序列，所述mRNA与芯片相连，所述芯片上连接有含poly-T序列的探针，所述相连通过mRNA3'端的poly-A序列与芯片上的poly-T序列互补配对实现；
(2)将所述反转录产物进行打断和添加第一接头处理，获得打断加接头产物，所述打断加接头产物连接在芯片上；
(3)将所述打断加接头产物从芯片上释放下来，获得所述测序文库。
本发明方法可缩短构建测序文库的流程和时间，从而降低成本，并且还可以捕获样本中因降解导致无5'端帽子结构的mRNA，以及降低测序文库中的重复序列。
根据本发明的实施例，上述方法还可以进一步包括如下技术特征的至少之一：
根据本发明的实施例，所述反转录产物包括cDNA-mRNA杂交链，其中，所述cDNA为cDNA一链。
根据本发明的实施例，步骤(1)中，所述反转录处理后进一步包括cDNA二链的合成；所述cDNA二链的合成是以随机引物为引物、以所述cDNA一链为模板进行的。
根据本发明的实施例，使用聚合酶进行所述cDNA二链的合成，所述聚合酶选自Bst聚合酶、Taq DNA聚合酶、Klenow片段、T4DNA聚合酶、具有DNA依赖聚合活性的反转录酶和DNA聚合酶I中的至少之一。
根据本发明的实施例，所述聚合酶为Bst聚合酶。
根据本发明的实施例，所述cDNA二链的合成是在65～70℃条件下反应20～60min。
根据本发明的实施例，所述探针为多种，并且每一种探针含有独一无二的位置标签序列，所述位置标签序列与所述该种探针在芯片上的位置一一对应。
根据本发明的实施例，所述探针进一步含有第二接头序列；并且，所述第二接头序列的5'端与所述芯片相连，所述第二接头序列的3'端与所述位置标签序列的5'端相连，所述位置标签序列的3'端’与所述poly-T序列相连。
根据本发明的实施例，所述探针进一步含有分子标签序列；其中，所述第二接头序列的5'端与所述芯片相连，所述第二接头序列的3'端与所述位置标签序列的5'端相连，所述位置标签序列的3'端与所述分子标签序列的5'端相连，所述分子标签序列的3'端与所述poly-T序列相连。
根据本发明的实施例，所述mRNA来自于组织样本或单细胞样本。
根据本发明的实施例，在步骤(1)之前进一步包括：将所述组织样本或单细胞样本接触所述芯片；对所述组织样本或单细胞样本进行透化，以释放所述组织样本或单细胞样本中的mRNA。
根据本发明的实施例，在步骤(2)，使用转座酶或者片段化酶对所述反转录产物进行打断。
根据本发明的实施例，所述转座酶为Tn5转座酶。
根据本发明的实施例，步骤(3)中，使用裂解液将所述打断加接头产物从芯片上释放下来。
根据本发明的实施例，所述裂解液为碱性溶液或甲酰胺。
根据本发明的实施例，所述裂解液为强碱性溶液。
根据本发明的实施例，所述裂解液为KOH。
根据本发明的实施例，步骤(3)中，将所述打断加接头产物从芯片上释放下来之后，对所述打断加接头产物进行PCR扩增，从而获得所述测序文库。
在本发明的第二方面，本发明提出了一种转录组测序方法。根据本发明的实施例，所述转录组测序方法包括：对第一方面所述方法获得的测序文库进行测序，以获得所述测序文库的序列信息。本发明实施例的转录组测序方法具有文库构建步骤少、时间短和成本低等优点，可以捕获样本中因降解导致无5'端帽子结构的mRNA。
在本发明的第三方面，本发明提出了一种空间转录组测序方法。根据本发明的实施例，所述空间转录组测序方法包括：利用第一方面所述的方法构建测序文库；基于所述测序文库进行测序；以及基于测序结果，获得待测样本的空间转录组信息。本发明实施例的空间转录组测序具有文库构建步骤少、时间短和成本低等优点，并且还可以捕获样本中因降解导致无5'端帽子结构的mRNA以及降低测序文库中的重复序列。
本发明的附加方面和优点将在下面的描述中部分给出，部分将从下面的描述中变得明显，或通过本发明的实践了解到。
附图说明
本发明的上述和/或附加的方面和优点从结合下面附图对实施例的描述中将变得明显和容易理解，其中：
图1为采用传统的空间转录组技术构建测序文库的示意图。
图2为本发明的一个实施例中构建测序文库的示意图。
图3为本发明实施例1中使用生物分析仪2100质检文库片段的结果图。
具体实施方式
下面详细描述本发明的实施例。下面描述的实施例是示例性的，仅用于解释本发明，而不能理解为对本发明的限制。
需要说明的是，术语“第一”、“第二”仅用于描述目的，而不能理解为指示或暗示相对重要性或者隐含指明所指示的技术特征的数量。由此，限定有“第一”、“第二”的特征可以明示或者隐含地包括一个或者更多个该特征。进一步地，在本发明的描述中，除非另有说明，“多个”的含义是两个或两个以上。
在本文中，术语“包含”或“包括”为开放式表达，即包括本发明所指明的内容，但并不排除其他方面的内容。
在本文中，术语“任选地”、“任选的”或“任选”通常是指随后所述的事件或状况可以但未必发生，并且该描述包括其中发生该事件或状况的情况，以及其中未发生该事件或状况的情况。
本发明提出了一种构建测序文库的方法、转录组测序方法、空间转录组测序方法，下面将分别对其进行详细描述。
测序文库及其构建测序文库的方法
在本发明的第一方面，本发明提出了一种构建测序文库的方法。根据本发明的实施例，所述方法包括：
(1)将mRNA进行反转录处理，获得反转录产物，无需添加模板转换引物，其中，所述mRNA的3'端含有poly-A序列，所述mRNA与芯片相连，所述芯片上连接有含poly-T序列的探针，所述相连通过mRNA3'端的poly-A序列与芯片上的poly-T序列互补配对实 现；
(2)将所述反转录产物进行打断和添加第一接头处理，获得打断加接头产物，所述打断加接头产物连接在芯片上；
(3)将所述打断加接头产物从芯片上释放下来，进行PCR扩增，获得所述测序文库。
本发明实施例的方法无需添加模板转换引物(TSO)，避免了传统的空间转录组技术中TSO添加效率低、导致构建的测序文库质量太低等问题；并且，本发明中，对反转录产物直接进行打断和添加第一接头处理，并且该处理过程在芯片上完成，避免了传统的空间转录组技术中需要先对反转录产物进行PCR扩增和纯化之后才能进行打断加接头的繁琐。因此，本发明的方法可缩短构建测序文库的流程和时间，从而可降低成本，并且还可以捕获样本中因降解导致无5'端帽子结构的mRNA以及降低测序文库中的重复序列。
根据本发明的实施例，上述方法还可以进一步包括如下技术特征的至少之一：
根据本发明的实施例，所述反转录产物包括cDNA-mRNA杂交链，其中，所述cDNA为cDNA一链。由此，可将步骤1)得到的处理产物直接进行步骤2)～步骤4)得到测序文库，可极大地缩短构建测序文库的流程和时间、降低构建测序文库的成本，并且还可以捕获样本中因降解导致无5'端帽子结构的mRNA以及降低测序文库中的重复序列。
需要说明的是，cDNA-mRNA杂交链是通过以mRNA为模板进行反转录处理得到的。
根据本发明的实施例，如图2所示，步骤(1)中，所述反转录处理后进一步包括cDNA二链的合成；所述cDNA二链的合成是以随机引物为引物、以所述cDNA一链为模板进行的。由此，cDNA二链包含mRNA的信息，将cDNA二链进行后续的建库及测序处理，然后将得到的数据进行分析，以便获得待测样本的空间转录图谱或待结合核苷酸序列宿主的空间分布图谱。并且，该方法无需添加TSO，可极大地缩短构建测序文库的流程和时间、降低构建测序文库的成本，并且还可以捕获样本中因降解导致无5'端帽子结构的mRNA以及降低测序文库中的重复序列。
在本发明的一个可选实施例中，步骤(1)中，在所述反转录处理后、cDNA二链的合成前，将cDNA-mRNA杂交链中的mRNA链去除。该去除的方法可采用本领域常规的方法，只要可实现去除mRNA链即可，以便用于以cDNA一链为模板，合成cDNA二链。
示例性地，mRNA链的去除可采用碱解法或酶解法进行。
在本发明的一个可选实施例中，所述随机引物的核苷酸序列如N(4-10)所示，其中N选自A、T、C和G中的任意一种。
示例性地，所述随机引物的核苷酸序列如NNNNNNNN所示，其中N选自A、T、C和G中的任意一种。
根据本发明的实施例，使用聚合酶进行所述cDNA二链的合成，所述聚合酶选自Bst聚合酶、Taq DNA聚合酶、Klenow片段、T4DNA聚合酶、DNA聚合酶I和具有DNA依赖聚合活性的反转录酶中的至少之一。示例性地，具有DNA依赖聚合活性的反转录酶可以是Maxima H Minus逆转录酶。由此，采用上述聚合酶可提高cDNA二链的合成效率，进而提高测序文库的质量。
根据本发明的实施例，所述cDNA二链的合成是在混合液中进行的，所述混合液中包括所述随机引物和聚合酶。
根据本发明的实施例，所述聚合酶为Bst聚合酶。由此，可进一步提高cDNA二链的合成效率，进而提高测序文库的质量。
在本发明的一些可选实施例中，所述混合液每100μL包括200UBst聚合酶、0.1mmoldNTP mix、1μg随机引物、5URNaseH和Bst缓冲液。
根据本发明的实施例，所述cDNA二链的合成是在65～70℃条件下反应20～60min。由此，可实现cDNA二链的合成。
根据本发明的实施例，所述探针为多种，并且每一种探针含有独一无二的位置标签序列，所述位置标签序列与所述该种探针在芯片上的位置一一对应。
根据本发明的实施例，所述探针进一步含有第二接头序列；并且，所述第二接头序列的5'端与所述芯片相连，所述第二接头序列的3'端与所述位置标签序列的5'端相连，所述位置标签序列的3'端’与所述poly-T序列相连。
需要说明的是，“位置标签”是指在芯片上连接不同核酸序列从而对芯片的空间位置进行标记的标签。示例性地，“位置标签”可为空间编码序列(又称Barcode)；空间编码序列测序引物用于通过引物杂交、延伸，从而对空间编码序列进行测序，然后根据图像对每个空间编码序列进行空间定位，以便获得空间坐标。空间编码序列和空间编码序列测序引物的具体序列不受限制，只要可实现空间定位即可。
在本文中，“第一接头序列”和“接头1”同义；“第二接头序列”和“接头2”同义。接头1和接头2可参见图2。
根据本发明的实施例，所述探针进一步含有分子标签序列；其中，所述第二接头序列的5'端与所述芯片相连，所述第二接头序列的3'端与所述位置标签序列的5'端相连，所述位置标签序列的3'端与所述分子标签序列的5'端相连，所述分子标签序列的3'端与所述poly-T序列相连。
在本文中，“分子标签(Unique Molecular Indentifier，UMI)”是指一段随机化或特定的核苷酸短序列，通过在PCR扩增之前给每一条DNA分子加上分子标签，构建的测序 文库在测序后，具有不同分子条形码的读段序列代表不同的DNA分子，而具有相同条形码的读段序列则是相同原始DNA分子经PCR复制的结果，从而可区分不同来源的mRNA。
在本发明的一些可选实施例中，第二接头的5'端和芯片通过化学键相连。
示例性地，第二接头的5'端具有DBCO(二苯并环辛炔)修饰，芯片具有叠氮化物修饰，第二接头的5'端和芯片是通过DBCO和叠氮化物进行点击化学(Click Chemistry)反应相连的。
根据本发明的实施例，所述mRNA来自于组织样本。即所述mRNA是以组织样本的形式提供的。
根据本发明的实施例，所述mRNA来自于单细胞样本。即所述mRNA是以单细胞悬液的形式提供的。
根据本发明的实施例，在步骤(1)之前进一步包括：将所述组织样本或单细胞样本接触所述芯片；对所述组织样本或单细胞样本进行透化，以释放所述组织样本或单细胞样本中的mRNA。由此，可实现对组织样本或单细胞样本的空间定位，用于对组织样本或单细胞样本进行空间转录组测序。
根据本发明的实施例，在步骤(2)，使用转座酶或者片段化酶对所述反转录产物进行打断。
根据本发明的实施例，所述转座酶为Tn5转座酶。
根据本发明的实施例，步骤(3)中，使用裂解液将所述打断加接头产物从芯片上释放下来。
根据本发明的实施例，所述裂解液为碱性溶液或甲酰胺。
根据本发明的实施例，所述裂解液为强碱性溶液。
根据本发明的实施例，所述裂解液为KOH。
在本发明的一个可选实施例中，所述氢氧化钾溶液的浓度为0.05～0.2M。
根据本发明的实施例，步骤(3)中，将所述打断加接头产物从芯片上释放下来之后，对所述打断加接头产物进行PCR扩增，从而获得测序文库。通过对打断加接头产物进行PCR扩增，适当增加测序读段数量，放大被捕获的mRNA信息量，以使空间转录组测序分析结果更准确。
转录组测序方法和空间转录组测序方法
在本发明的第二方面，本发明提出了一种转录组测序方法。根据本发明的实施例，所述转录组测序方法包括：对第一方面所述方法获得的测序文库进行测序，以获得所述测序文库的序列信息。本发明实施例的转录组测序方法文库构建步骤少、时间短和成本低等优 点，并且还可以捕获样本中因降解导致无5'端帽子结构的mRNA以及降低测序文库中的重复序列。
在本发明的第三方面，本发明提出了一种空间转录组测序方法。根据本发明的实施例，所述空间转录组测序方法包括：利用第一方面所述的方法构建测序文库；基于所述测序文库进行测序；以及基于测序结果，获得待测样本的空间转录组信息。本发明实施例的空间转录组测序具有文库构建步骤少、时间短和成本低等优点，并且还可以捕获样本中因降解导致无5'端帽子结构的mRNA以及降低测序文库中的重复序列。
下面详细描述本发明的实施例。下面描述的实施例是示例性的，仅用于解释本发明，而不能理解为对本发明的限制。实施例中未注明具体技术或条件的，按照本领域内的文献所描述的技术或条件或者按照产品说明书进行。所用试剂或仪器未注明生产厂商者，均为可以通过市购获得的常规产品。
在本发明下述实施例中使用的芯片、透化试剂、反转录试剂来自于华大Stereo-seq转录组试剂套装(货号：201ST114)，打断及PCR试剂来自于华大Stereo-seq建库试剂盒(货号：101KL114)。
实施例
1.组织贴片及固定
1.1从真空干燥铝箔袋中取出Stereo-seq芯片T载体，记录芯片背面的编号，室温放置复温1分钟。
1.2提前将PCR仪温度调节到37℃，热盖温度为42℃，放置PCR适配器平衡温度。
1.3预冷甲醇：在玻片盒或50mL离心管中加入足量甲醇，确保甲醇足够浸没过所有芯片。盖上盖，-20℃将甲醇预冷5-30分钟。
1.4冷冻切片机上切取10微米的组织片并展平，将芯片正面对准组织进行贴片。
1.5快速将贴片的载体置于PCR适配器上37℃孵育5分钟烤干。
1.6将上一步烤干的芯片立即放于-20℃下预冷的甲醇中固定30分钟，确保甲醇浸没过所有芯片。
1.7固定好后，将玻片盒或50mL离心管转移到通风橱中。
1.8将载体从玻片盒或50mL离心管中取出，用无尘纸吸干载玻片背面和周围多余的甲醇。
1.9将载体竖立放在载玻片染色架上，在通风柜中通风4-6分钟，让甲醇充分挥发。
1.10甲醇挥发干后，将载体转移至实验桌上。将垫圈与夹具组合成载具，把芯片固定到载具上形成手持载具。
2.组织透化
2.1提前配制2mL 0.01N HCl，准备好1×透化试剂工作液；用1mL新鲜配制的0.01N HCl将PR Enzyme溶解后，移液器吹打混匀，再用0.01N HCl将10×透化试剂储存液10μL稀释到100μL，标记为1×透化试剂工作液。
2.2提前将2个PCR仪(或1个PCR仪、1个金属浴)温度设置到37℃，热盖温度为42℃。
2.3将步骤1制备的手持载具放置于PCR适配器上，盖上PCR仪盖子，37℃复温3min，同时将1×透化试剂工作液置于PCR仪或者金属浴内，37℃复温3min。
2.4复温结束后，芯片一角加入1×透化试剂工作液，用量为100μL/芯片，用封板膜对手持载具进行封口，盖上PCR仪盖。
2.5 37℃下进行透化反应11分钟。
3.反转录
3.1提前解冻RT Reagent和RT Additive，溶解后冰上放置。
3.2参考表1配制RT反应混合液，放置于冰上。
表1：RT反应混合液(RT Mix)
3.3将另一PCR仪反应温度调节至42℃，热盖温度为47℃，放置另一个PCR适配器平衡温度。
3.4将步骤2中透化完成的手持载具从PCR仪中取出。
3.5微微倾斜手持载具，倾斜角度小于20°，用移液器从芯片的一角吸掉透化试剂。
3.6加入PR Rinse Buffer溶液100μL。
3.7微微倾斜手持载具，倾斜角度小于20°，用移液器在芯片一角吸弃PR Rinse Buffer溶液，保持芯片湿润。
3.8取出配制好的RT Mix吹打混匀后瞬时离心，在芯片一角加入RT Mix，确保RT Mix 均匀覆盖全芯片。
3.9使用封板膜将手持载具封口，放置于42℃PCR仪的PCR适配器上，盖上PCR仪盖子，反应3小时。
4.二链合成
4.1提前将一个PCR仪反应温度调节至65℃，热盖温度为70℃，放置一个PCR适配器平衡温度。
4.2 RT反应快结束时，配制表2的二链反应试剂，涡旋混合均匀，瞬时离心，待用。
表2：二链反应混合液
其中，随机引物序列为NNNNNNNN，N为A、T、C和G中的任意一种。
4.3 RT反应结束后，从PCR仪中取出步骤3中的手持载具，微微倾斜手持载具，倾斜角度小于20°，用移液器在芯片一角吸弃RT mix溶液。
4.4取出配制好的二链反应混合液吹打混匀后瞬时离心，在芯片一角加入二链反应混合液，确保二链反应混合液均匀覆盖全芯片。
4.5使用封板膜将手持载具封口，放置于65℃PCR仪的PCR适配器上，盖上PCR仪盖子，反应30分钟。
5.cDNA打断
5.1提前将一个PCR仪反应温度调节至55℃，热盖温度为60℃，放置一个PCR适配器平衡温度。
5.2取9μL TE buffer加入1μL TME稀释10倍，涡旋混合均匀，瞬时离心，待用。
5.3配制表3的TME打断混合液，涡旋混合均匀，瞬时离心，待用。其中，TMB和TME均来自于Stereo-seq建库试剂盒，TMB为转座酶反应缓冲液，TME为包埋了核酸接头的转座酶。
表3：TME打断混合液
5.4二链反应结束后，从PCR仪中取出步骤4中的手持载具，微微倾斜手持载具，倾斜角度小于20°，用移液器在芯片一角吸弃二链反应溶液。
5.5取出配制好的TME打断混合液混匀后瞬时离心，在芯片一角加入TME打断混合液，确保TME打断混合液均匀覆盖全芯片。
5.6使用封板膜将手持载具封口，放置于55℃PCR仪的PCR适配器上，盖上PCR仪盖子，反应10分钟。
6.二链洗脱
6.1提前将一个PCR仪反应温度调节至70℃，热盖温度为75℃，放置一个PCR适配器平衡温度。
6.2用无酶水将8M KOH稀释至0.2M，涡旋混合均匀，瞬时离心，待用。
6.3打断反应结束后，从PCR仪中取出步骤5中的手持载具，微微倾斜手持载具，倾斜角度小于20°，用移液器在芯片一角吸弃打断反应溶液。
6.4向芯片上加入100μL 0.2M KOH，确保KOH均匀覆盖全芯片。
6.5使用封板膜将手持载具封口，放置于70℃PCR仪的PCR适配器上，盖上PCR仪盖子，反应20分钟。
6.6将反应结束的手持载具从PCR仪中取出，微微倾斜手持载具，倾斜角度小于20°，用移液器从芯片一角吸出KOH溶液，转移至一个1.5mL管子中，再加入4μL 1M Tris-HCl(pH6.8)，移液器吹打混合均匀，分装到两个PCR管分别进行PCR反应，得到PCR产物。
7.PCR及纯化
7.1按照表4配制PCR Mix体系。
表4：PCR Mix
7.2震荡混匀，瞬时离心后置于PCR仪中，参照表5反应程序进行扩增。
表5：PCR扩增程序
7.3将步骤6获得的PCR产物和室温平衡好的磁珠按照1:0.8混合(120μL PCR产物、96μL磁珠)，震荡混匀后室温孵育5min。
7.4将离心管瞬时离心后置于磁力架上，静置3-5min，至液体澄清后用移液器小心吸取上清，然后弃掉上清。
7.5将离心管保持在磁力架上，加入200μL新鲜配制的80％乙醇，通过旋转磁力架上的离心管来漂洗磁珠。静置30s，小心吸取上清，然后丢弃上清。
7.6重复一次步骤7.5。
7.7尽量吸干管内液体。若有少量液体残留在管壁，可将离心管瞬时离心，在磁力架上分离后，用小量程的移液器将管底液体吸干。
7.8室温下静置3-5min风干磁珠，直至磁珠表面无反光、无开裂。
7.9加20μL的TE buffer进行回溶，震荡混匀后室温静置5min，瞬时离心后置于磁力架上静置3min，待液体澄清后将上清转移到1.5mL离心管内。
7.10取1μL纯化的产物进行qubit定量后，再用生物分析仪2100进行片段检测，测序文库片段的质检结果参见图3，由图3可知，测序文库片段的大小主要在200bp～300bp之间。
对比例：使用klenow fragment替代Bst聚合酶
与实施例相比，使用klenow fragment(BGI，1000004293)替代Bst聚合酶，进行二链合成反应，具体如下。
4.1将一个PCR仪反应温度调节至37℃，热盖温度为42℃，放置一个PCR适配器平衡温度。该PCR仪用于后续的步骤4.5反应。
4.2 RT反应快结束时，配制表6的二链反应试剂，涡旋混合均匀，瞬时离心。
表6：二链反应混合液
其他步骤与上述实施例相同。
结果分析：
1、依照本实施例方法构建测序文库(本方案)和依照图1中传统的空间转录组技术构建测序文库(原方案)，二者的整个时间流程对比如下：
由此说明，本发明的方法可极大地缩短构建测序文库的流程和时间，从而可降低成本。
2、经测序分析，依照本实施例方法步骤构建获得的测序文库，其重复序列为32.02％；而采用图1中传统的空间转录组技术构建获得的测序文库(具体构建方法参考下述文献公开的方法：Spatiotemporal transcriptomic atlas of mouse organogenesis using DNA nanoball-patterned arrays，https://www.cell.com/cell/pdf/S0092-8674(22)00399-3.pdf)，其重复序列为55.14％。因此，本发明的方法可显著降低测序文库中的重复序列。
3、实施例与对比例获得的cDNA产物情况如表7所示。从表中可知，相比较于Klenowfragment，使用Bst聚合酶进行二链合成，获得的cDNA产物总量更高、浓度更高。使用Bst聚合酶进行文库构建的效果更好。
表7：cDNA产物情况

在本说明书的描述中，参考术语“一个实施例”、“一些实施例”、“示例”、“具体示例”、或“一些示例”等的描述意指结合该实施例或示例描述的具体特征、结构、材料或者特点包含于本发明的至少一个实施例或示例中。在本说明书中，对上述术语的示意性表述不必须针对的是相同的实施例或示例。而且，描述的具体特征、结构、材料或者特点可以在任一个或多个实施例或示例中以合适的方式结合。此外，在不相互矛盾的情况下，本领域的技术人员可以将本说明书中描述的不同实施例或示例以及不同实施例或示例的特征进行结合和组合。
尽管上面已经示出和描述了本发明的实施例，可以理解的是，上述实施例是示例性的，不能理解为对本发明的限制，本领域的普通技术人员在本发明的范围内可以对上述实施例进行变化、修改、替换和变型。

Claims (17)

  1. 一种构建测序文库的方法，其特征在于，包括：
    (1)将mRNA进行反转录处理，获得反转录产物，无需添加模板转换引物，其中，所述mRNA的3'端含有poly-A序列，所述mRNA与芯片相连，所述芯片上连接有含poly-T序列的探针，所述相连通过mRNA3'端的poly-A序列与芯片上的poly-T序列互补配对实现；
    (2)将所述反转录产物进行打断和添加第一接头处理，获得打断加接头产物，所述打断加接头产物连接在芯片上；
    (3)将所述打断加接头产物从芯片上释放下来，获得所述测序文库。
  2. 根据权利要求1所述的方法，其特征在于，所述反转录产物包括cDNA-mRNA杂交链，其中，所述cDNA为cDNA一链。
  3. 根据权利要求2所述的方法，其特征在于，步骤(1)中，所述反转录处理后进一步包括cDNA二链的合成；
    所述cDNA二链的合成是以随机引物为引物、以所述cDNA一链为模板进行的。
  4. 根据权利要求3所述的方法，其特征在于，使用聚合酶进行所述cDNA二链的合成，所述聚合酶选自Bst聚合酶、Taq DNA聚合酶、Klenow片段、T4DNA聚合酶、DNA聚合酶I和具有DNA依赖聚合活性的反转录酶中的至少之一；
    优选地，所述聚合酶为Bst聚合酶。
  5. 根据权利要求3所述的方法，其特征在于，所述cDNA二链的合成是在65～70℃条件下反应20～60min。
  6. 根据权利要求1-5任一项所述的方法，其特征在于，所述探针为多种，并且每一种探针含有独一无二的位置标签序列，所述位置标签序列与所述探针在芯片上的位置一一对应。
  7. 根据权利要求6所述的方法，其特征在于，所述探针进一步含有第二接头序列；
    并且，所述第二接头序列的5'端与所述芯片相连，所述第二接头序列的3'端与所述位置标签序列的5'端相连，所述位置标签序列的3'端’与所述poly-T序列相连。
  8. 根据权利要求7所述的方法，其特征在于，所述探针进一步含有分子标签序列；
    其中，所述第二接头序列的5'端与所述芯片相连，所述第二接头序列的3'端与所述位置标签序列的5'端相连，所述位置标签序列的3'端与所述分子标签序列的5'端相连，所述分子标签序列的3'端与所述poly-T序列相连。
  9. 根据权利要求1-8任一项所述的方法，其特征在于，所述mRNA来自于组织样本或单细胞样本。
  10. 根据权利要求9所述的方法，其特征在于，在步骤(1)之前进一步包括：
    将所述组织样本或单细胞样本接触所述芯片；
    对所述组织样本或单细胞样本进行透化，以释放所述组织样本或单细胞样本中的mRNA。
  11. 根据权利要求1-10任一项所述的方法，其特征在于，在步骤(2)，使用转座酶或者片段化酶对所述反转录产物进行打断。
  12. 根据权利要求11任一项所述的方法，其特征在于，所述转座酶为Tn5转座酶。
  13. 根据权利要求1-12任一项所述的方法，其特征在于，步骤(3)中，使用裂解液将所述打断加接头产物从芯片上释放下来。
  14. 根据权利要求13所述的方法，其特征在于，所述裂解液为碱性溶液或甲酰胺；优选为强碱性溶液；最优为KOH。
  15. 根据权利要求1-14任一项所述的方法，其特征在于，步骤(3)中，将所述打断加接头产物从芯片上释放下来之后，对所述打断加接头产物进行PCR扩增，从而获得所述测序文库。
  16. 一种转录组测序方法，其特征在于，包括：
    对根据权利要求1-15任一项所述的方法获得的测序文库进行测序，以获得所述测序文库的序列信息。
  17. 一种空间转录组测序方法，其特征在于，包括：
    利用权利要求1～15任一项所述的方法构建测序文库；
    对所述测序文库进行测序；以及
    基于测序结果，获得待测样本的空间转录组信息。
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