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WO2022239817A1 - ムコ多糖症ｉ型の治療用医薬組成物 - Google Patents

ムコ多糖症ｉ型の治療用医薬組成物 Download PDF

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WO2022239817A1
WO2022239817A1 PCT/JP2022/020001 JP2022020001W WO2022239817A1 WO 2022239817 A1 WO2022239817 A1 WO 2022239817A1 JP 2022020001 W JP2022020001 W JP 2022020001W WO 2022239817 A1 WO2022239817 A1 WO 2022239817A1
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WO
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concentration
pharmaceutical composition
amino acid
acid sequence
seq
Prior art date
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PCT/JP2022/020001
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English (en)
French (fr)
Inventor
秀人 森本
祥穂 木田
彩玲 曽
聡 川島
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
JCR Pharmaceuticals Co Ltd
Original Assignee
JCR Pharmaceuticals Co Ltd
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Publication date
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Priority to KR1020237038968A priority patent/KR20240007163A/ko
Priority to CN202280033472.XA priority patent/CN117279665A/zh
Priority to EP22807516.4A priority patent/EP4335459A4/en
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    • C07K2317/50—Immunoglobulins specific features characterized by immunoglobulin fragments
    • C07K2317/56—Immunoglobulins specific features characterized by immunoglobulin fragments variable (Fv) region, i.e. VH and/or VL
    • C07K2317/565—Complementarity determining region [CDR]
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    • C07—ORGANIC CHEMISTRY
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    • C07K2319/30—Non-immunoglobulin-derived peptide or protein having an immunoglobulin constant or Fc region, or a fragment thereof, attached thereto
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    • C07K2319/00—Fusion polypeptide
    • C07K2319/33—Fusion polypeptide fusions for targeting to specific cell types, e.g. tissue specific targeting, targeting of a bacterial subspecies
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    • C12Y302/01—Glycosidases, i.e. enzymes hydrolysing O- and S-glycosyl compounds (3.2.1)
    • C12Y302/01076—L-Iduronidase (3.2.1.76)

Definitions

  • the present invention relates to a pharmaceutical composition for the treatment of mucopolysaccharidosis type I containing, as an active ingredient, a fusion protein of an anti-human transferrin receptor antibody and human ⁇ -L-iduronidase (hIDUA). is parenterally administered to patients with mucopolysaccharidosis type I to degrade dermatan sulfate and heparan sulfate accumulated in organs including the brain. Regarding.
  • ⁇ -L-iduronidase is a lysosomal enzyme that hydrolyzes non-sulfated ⁇ -L-iduronosidic bonds present in the molecules of glycosaminoglycans (GAGs) such as heparan sulfate and dermatan sulfate. is one.
  • GAGs glycosaminoglycans
  • Patients with mucopolysaccharidosis type I are genetically deficient in some or all ⁇ -L-iduronidase activity.
  • Mucopolysaccharidosis type I is classified as severe Hurler syndrome (MPS IH), intermediate Hurler-Scheie syndrome (MPS IH-S), and mild Scheie syndrome (MPS IS).
  • Non-Patent Document 1 Isolation of the gene encoding hIDUA has enabled the use of recombinant techniques to mass produce recombinant hIDUA (rhIDUA) and to use this enzyme as a therapeutic agent in enzyme replacement therapy for mucopolysaccharidosis type I.
  • rhIDUA cannot pass through the blood-brain barrier (BBB), so there is a problem that it cannot effectively improve central nervous system disorders in patients with mucopolysaccharidosis type I.
  • BBB blood-brain barrier
  • a fusion protein of an anti-human transferrin receptor antibody and human ⁇ -L-iduronidase has been developed (Patent Documents 2 and 3). .
  • This fusion protein can cross the BBB by binding to human transferrin receptors present on the BBB-constituting human transferrin endothelial cells in the brain by means of anti-human transferrin receptor antibodies.
  • An object of the present invention is to parenterally administer to patients with mucopolysaccharidosis type I a pharmaceutical composition containing, as an active ingredient, a fusion protein of an anti-human transferrin receptor antibody and human ⁇ -L-iduronidase.
  • An object of the present invention is to provide a treatment method for patients with mucopolysaccharidosis type I characterized by degrading at least glucosaminoglycan accumulated in the brain.
  • the present inventors administered a pharmaceutical composition containing, as an active ingredient, a fusion protein of an anti-human transferrin receptor antibody and human ⁇ -L-iduronidase to mucopolysaccharidosis type I patients.
  • the inventors have found that glucosaminoglycan accumulated in the brain of patients can be degraded by intravenous injection, and have completed the present invention. That is, the present invention includes the following. 1.
  • 4. The pharmaceutical composition according to 1 above, wherein the fusion protein is administered at a dose of 2 mg/kg body weight or 4 mg/kg body weight. 5.
  • pharmaceutical composition 12.
  • the ⁇ -L-iduronidase has a linker attached to the C-terminal side or N-terminal side of the light chain of the anti-human transferrin receptor antibody, or to the C-terminal side or N-terminal side of the heavy chain of the anti-human transferrin receptor antibody.
  • the linker is a peptide consisting of 1 to 150 amino acid residues.
  • the linker comprises one glycine, one serine, the amino acid sequence Gly-Ser, the amino acid sequence Gly-Gly-Ser, the amino acid sequence of SEQ ID NO: 1, the amino acid sequence of SEQ ID NO: 2, the amino acid sequence of SEQ ID NO: 3, and 17.
  • the pharmaceutical composition according to 16 above which is a peptide comprising an amino acid sequence selected from the group consisting of 1 to 10 consecutive amino acid sequences of these amino acid sequences. 18. 17. The pharmaceutical composition according to 16 above, wherein the linker is a peptide consisting of the amino acid sequence of SEQ ID NO:3. 19.
  • the anti-human transferrin receptor antibody has the amino acid sequence of SEQ ID NO: 4 or SEQ ID NO: 5 as CDR1 and the amino acid sequence of SEQ ID NO: 6 or 7 or the amino acid sequence Lys-Val-Ser as CDR2 in the light chain variable region.
  • the amino acid sequence of SEQ ID NO: 9 or 10 as CDR1 the amino acid sequence of SEQ ID NO: 11 or 2 as CDR2, and comprising the amino acid sequence of SEQ ID NO: 13 or 14 as CDR3, respectively; wherein the ⁇ -L-iduronidase is bound to the C-terminal side or N-terminal side of the light chain of the anti-human transferrin receptor antibody, or the C-terminal side or the N-terminal side of the heavy chain of the anti-human transferrin receptor antibody 19.
  • the pharmaceutical composition according to any one of 1 to 18 above, which is 20. 20.
  • the pharmaceutical composition according to 19 above, wherein the heavy chain variable region comprises the amino acid sequence of SEQ ID NO:16. 21. 21.
  • the pharmaceutical composition according to 20 above, wherein said heavy chain is a Fab heavy chain and said Fab heavy chain comprises the amino acid sequence of SEQ ID NO:19. 22. 22.
  • the pharmaceutical composition according to any one of 19 to 21 above, wherein the light chain variable region comprises the amino acid sequence of SEQ ID NO:17. 23. 23.
  • the pharmaceutical composition according to 22 above, wherein said light chain comprises the amino acid sequence of SEQ ID NO:18. 24. 24.
  • any one of 1 to 23 above, wherein said human ⁇ -L-iduronidase comprises an amino acid sequence having at least 85% identity with the amino acid sequence of SEQ ID NO: 20 or the amino acid sequence of SEQ ID NO: 21.
  • the light chain of the anti-human transferrin receptor antibody comprises the amino acid sequence of SEQ ID NO: 18, the heavy chain of the anti-human transferrin receptor antibody comprises the amino acid sequence of SEQ ID NO: 19, and the heavy chain comprises 2.
  • the drug according to 1 above which is bound to human ⁇ -L-iduronidase having the amino acid sequence of SEQ ID NO: 20 or SEQ ID NO: 21 via a linker of the amino acid sequence of SEQ ID NO: 3 on the C-terminal side.
  • the light chain of the anti-human transferrin receptor antibody comprises the amino acid sequence of SEQ ID NO: 18, the heavy chain of the anti-human transferrin receptor antibody comprises the amino acid sequence of SEQ ID NO: 19, and the heavy chain comprises At the C-terminal side, it binds to human ⁇ -L-iduronidase having the amino acid sequence of SEQ ID NO: 20 via a linker of the amino acid sequence of SEQ ID NO: 3, thereby forming the amino acid sequence of SEQ ID NO: 24. 20.
  • the pharmaceutical composition according to 19 above. 28. 28. The pharmaceutical composition according to any one of 1 to 27 above, which is a freeze-dried preparation or an aqueous solution. 29. 29.
  • the pharmaceutical composition according to 28 above further comprising at least one of a neutral salt, a disaccharide, a nonionic surfactant, and a buffer. 30. 30.
  • the pharmaceutical composition according to 28 or 29 above which contains polysorbate and/or poloxamer as the nonionic surfactant. 31.
  • the polysorbate is polysorbate 20 or polysorbate 80
  • the poloxamer is polyoxyethylene (54) polyoxypropylene (39) glycol, polyoxyethylene (196) polyoxypropylene (67) glycol, polyoxyethylene (42) polyoxypropylene (67) glycol, polyoxyethylene ( 3) selected from the group consisting of polyoxypropylene (17) glycol, polyoxyethylene (20) polyoxypropylene (20) glycol, and polyoxyethylene (120) polyoxypropylene (40) glycol, 30.
  • the pharmaceutical composition according to 30 above, wherein said polysorbate is polysorbate 80 and said poloxamer is polyoxyethylene (160) polyoxypropylene (30) glycol. 33. 33.
  • a pharmaceutical composition which is an aqueous solution according to any one of 30 to 32 above, wherein the polysorbate concentration is 0.005 to 1.5 mg/mL and the poloxamer concentration is 0.1 to 0.6 mg/mL. thing. 34. 33.
  • the pharmaceutical composition which is an aqueous solution according to any one of 30 to 32 above, wherein the polysorbate concentration is 0.025 to 1.0 mg/mL and the poloxamer concentration is 0.2 to 0.5 mg/mL. thing. 35. 33.
  • the pharmaceutical composition which is an aqueous solution according to any one of 30 to 32 above, wherein the polysorbate concentration is 0.05 to 0.15 mg/mL and the poloxamer concentration is 0.25 to 0.45 mg/mL. thing. 36. 36.
  • the buffer is selected from the group consisting of citrate buffers, phosphate buffers, glycine buffers, histidine buffers, carbonate buffers, acetate buffers, and combinations of two or more thereof. , the pharmaceutical composition according to any one of 29 to 37 above. 39. 33.
  • the pharmaceutical composition according to any one of 30 to 32 above which is an aqueous solution selected from the group consisting of the following (1) to (3): (1) the concentration of the fusion protein is 1-10 mg/mL, the concentration of the neutral salt is 0.3-1.2 mg/mL, and the concentration of the disaccharide is 50-100 mg/mL; wherein the buffer concentration is 10-30 mM, the polysorbate concentration is 0.005-1.5 mg/mL, and the poloxamer concentration is 0.1-0.6 mg/mL; (2) the fusion protein has a concentration of 2-8 mg/mL, the neutral salt has a concentration of 0.5-1.0 mg/mL, and the disaccharide has a concentration of 55-95 mg/mL; The buffer concentration is 15-25 mM, the polysorbate concentration is 0.05-1.0 mg/mL, and the poloxamer concentration is 0.25-0.45 mg/mL; and ( 3) the concentration of the fusion protein is 4-6 mg/mL, the concentration of the neutral salt is 0.7-0.9
  • composition according to any one of 28 to 41 above which is an aqueous solution having a pH of 4.5 to 6.5, 5.0 to 6.0, or 5.2 to 5.8. 41. 33.
  • the pharmaceutical composition according to any one of 30 to 32 above which is a freeze-dried agent selected from the group consisting of the following (1) to (3): (1) When dissolved in pure water, the fusion protein has a concentration of 1-10 mg/mL, the neutral salt has a concentration of 0.3-1.2 mg/mL, and the disaccharide has a concentration of 50-10 mg/mL.
  • the fusion protein When dissolved in pure water, the fusion protein has a concentration of 2 to 8 mg/mL, the neutral salt has a concentration of 0.5 to 1.0 mg/mL, and the disaccharide has a concentration of 55 to 95 mg/mL, the buffer concentration is 15-25 mM, the polysorbate concentration is 0.05-1.0 mg/mL, and the poloxamer concentration is 0.25-0.45 mg/mL; and (3) when dissolved in pure water, the fusion protein has a concentration of 4-6 mg/mL, the neutral salt has a concentration of 0.7-0.9 mg/mL, and the disaccharide has a concentration of 60 ⁇ 90 mg/mL, the buffer concentration is 15-25 mM, the polysorbate concentration is 0.05-0.15 mg/mL, and the poloxamer concentration is 0.25-0
  • composition according to any one of 1 to 46 above, wherein when the pharmaceutical composition is administered to a patient with mucopolysaccharidosis type I, it is contained in the cerebrospinal fluid collected from the patient after administration
  • concentration of heparan sulfate is 2/3 or less, 1/2 or less, or 1/1 of the concentration of heparan sulfate contained in the cerebrospinal fluid collected from the patient before the pharmaceutical composition is first administered. 3 or less, pharmaceutical composition. 50. 47.
  • the pharmaceutical composition according to any one of 1 to 46 above wherein when the pharmaceutical composition is administered to a patient with mucopolysaccharidosis type I, it is contained in the cerebrospinal fluid collected from the patient after administration A pharmaceutical composition having a heparan sulfate concentration of 2000 ng/mL or less, 1800 ng/mL or less, 1600 ng/mL or less, 1500 ng/mL or less, or 1400 ng/mL or less. 50. 47.
  • the pharmaceutical composition according to any one of 1 to 46 above wherein when the pharmaceutical composition is administered to a patient with mucopolysaccharidosis type I, a comparison is made before the pharmaceutical composition is first administered.
  • dermatan sulfate and heparan sulfate accumulated in organs including the brain of patients with mucopolysaccharidosis type I, particularly heparan sulfate accumulated in the central nervous system including the brain can be degraded. It can slow the progression of dysfunction in the patient's organs, particularly the central nervous system, including the brain.
  • FIG. 4 shows changes in the concentration of heparan sulfate contained in the cerebrospinal fluid of patients with mucopolysaccharidosis type I due to administration of test drugs in clinical trials (Phase I).
  • the values before administration of the test drug are shown on the left, and the values after administration of the test drug are shown on the right.
  • the vertical axis indicates the concentration of heparan sulfate (ng/mL), and the vertical line on the graph indicates the SD bar.
  • FIG. 2 shows changes in the concentration of dermatan sulfate contained in the cerebrospinal fluid of patients with mucopolysaccharidosis type I due to administration of test drugs in clinical trials (Phase I).
  • FIG. 4 shows changes in the concentration of heparan sulfate contained in sera of patients with mucopolysaccharidosis type I due to administration of test drugs in clinical trials (phase I).
  • the values before administration of the test drug are shown on the left, and the values after administration of the test drug are shown on the right.
  • the vertical axis indicates the concentration of heparan sulfate (ng/mL), and the vertical line on the graph indicates the SD bar.
  • FIG. 2 shows changes in the concentration of dermatan sulfate contained in the serum of patients with mucopolysaccharidosis type I due to the administration of test drugs in clinical trials (Phase I).
  • the values before administration of the test drug are shown on the left, and the values after administration of the test drug are shown on the right.
  • the vertical axis indicates the concentration of dermatan sulfate (ng/mL), and the vertical line on the graph indicates the SD bar.
  • FIG. 2 shows changes in the concentration of heparan sulfate contained in the urine of patients with mucopolysaccharidosis type I due to administration of a test drug in a clinical trial (Phase I).
  • FIG. 4 shows changes in the concentration of dermatan sulfate contained in the urine of patients with mucopolysaccharidosis type I due to administration of the test drug in clinical trials (Phase I).
  • the graph shows the values before administration of the test drug, and the right side shows the values after administration of the test drug.
  • the vertical axis indicates the amount of dermatan sulfate ( ⁇ g/mg creatinine), and the vertical line on the graph indicates the SD bar.
  • FIG. 2 shows changes in the concentration of heparan sulfate contained in the cerebrospinal fluid of patients with mucopolysaccharidosis type I due to the administration of the test drug in the first trial of the clinical trial (phase II).
  • X and ⁇ indicate the concentration of heparan sulfate in each patient.
  • the vertical axis indicates the concentration of heparan sulfate (ng/mL), and the dotted line indicates the average concentration of heparan sulfate in the cerebrospinal fluid of non-mucopolysaccharidosis type I patients.
  • FIG. 2 shows changes in the concentration of dermatan sulfate contained in the cerebrospinal fluid of patients with mucopolysaccharidosis type I due to administration of the test drug in the first trial of the clinical trial (Phase II).
  • X and ⁇ indicate the concentration of dermatan sulfate in each patient.
  • the vertical axis indicates the concentration of dermatan sulfate (ng/mL).
  • FIG. 4 shows changes in the concentration of heparan sulfate contained in the cerebrospinal fluid of patients with mucopolysaccharidosis type I due to administration of the test drug in the second study of the clinical trial (Phase II).
  • White circles, triangles, and squares indicate heparan sulfate concentration in each patient in the 2.0 mg/kg body weight group, and black circles, ⁇ , and ⁇ in each patient in the 4.0 mg/kg body weight group. Indicates the concentration of sulfuric acid.
  • the vertical axis indicates the concentration of heparan sulfate (ng/mL), and the dotted line indicates the average concentration of heparan sulfate in the cerebrospinal fluid of non-mucopolysaccharidosis type I patients.
  • FIG. 4 shows changes in the concentration of dermatan sulfate contained in the cerebrospinal fluid of patients with mucopolysaccharidosis type I due to administration of the test drug in the second study of the clinical trial (Phase II).
  • White circles, triangles, and squares indicate the concentration of dermatan sulfate in each patient in the 2.0 mg/kg body weight group, and black circles, ⁇ , and ⁇ in each patient in the 4.0 mg/kg body weight group. Indicates the concentration of sulfuric acid.
  • the vertical axis indicates the concentration of dermatan sulfate (ng/mL).
  • FIG. 2 shows changes in the concentration of heparan sulfate contained in the serum of patients with mucopolysaccharidosis type I due to the administration of the test drug in the clinical trial (phase II) first trial.
  • X and ⁇ indicate the concentration of heparan sulfate in each patient.
  • the vertical axis indicates the concentration of heparan sulfate (ng/mL).
  • FIG. 2 shows changes in the concentration of dermatan sulfate contained in the serum of patients with mucopolysaccharidosis type I due to the administration of the test drug in the first trial of the clinical trial (phase II).
  • X and ⁇ indicate the concentration of dermatan sulfate in each patient.
  • FIG. 2 shows changes in the concentration of heparan sulfate contained in sera of patients with mucopolysaccharidosis type I due to administration of the test drug in the second study of the clinical trial (Phase II).
  • White circles, triangles, and squares indicate heparan sulfate concentration in each patient in the 2.0 mg/kg body weight group, and black circles, ⁇ , and ⁇ in each patient in the 4.0 mg/kg body weight group.
  • the vertical axis indicates the concentration of heparan sulfate (ng/mL).
  • a transferrin receptor exists on the surface of brain capillary endothelial cells (cerebral vascular endothelial cells) that form the human blood brain barrier.
  • An antibody that can recognize this as an antigen can bind to hTfR.
  • Antibodies that bind to hTfR on the surface of brain capillary endothelial cells can pass through the blood-brain barrier and reach the central nervous system through hTfR-mediated transcytosis. Therefore, by binding human ⁇ -L-iduronidase (hIDUA) to this antibody, hIDUA can reach the central nervous system.
  • the anti-hTfR antibody is preferably Fab.
  • Fab means one light chain containing the variable region and C L region (constant region of the light chain), and one containing the variable region and C H 1 region (part 1 of the constant region of the heavy chain). It refers to a molecule in which heavy chains are linked by disulfide bonds between cysteine residues present in each.
  • the heavy chain may contain a part of the hinge region in addition to the variable region and the CH 1 region (part 1 of the constant region of the heavy chain), but the hinge region in this case is It lacks the cysteine residues that are present and link the heavy chains of the antibody together.
  • the light chain and heavy chain are cysteine residues present in the constant region of the light chain (CL region) and cysteine residues present in the constant region of the heavy chain ( C H 1 region) or hinge region It is bound by a disulfide bond formed between A heavy chain that forms a Fab is called a Fab heavy chain.
  • Fabs lack the cysteine residues present in the hinge region that bind antibody heavy chains together, and thus consist of one light chain and one heavy chain.
  • a light chain that constitutes Fab contains a variable region and a CL region.
  • a heavy chain that constitutes Fab may consist of a variable region and a C H 1 region, or may contain a part of the hinge region in addition to the variable region and C H 1 region.
  • the hinge region is selected so as not to contain cysteine residues linking the heavy chains so that no disulfide bond is formed between the two heavy chains at the hinge region.
  • the anti-hTfR antibody is preferably a human antibody or humanized antibody.
  • a human antibody refers to an antibody whose entirety is encoded by a human-derived gene.
  • an antibody encoded by a gene obtained by mutating the original human gene for the purpose of increasing the expression efficiency of the gene is also a human antibody.
  • an antibody obtained by combining two or more genes encoding a human antibody and replacing a portion of one human antibody with a portion of another human antibody is also a human antibody.
  • Human antibodies have 3 complementarity-determining regions (CDRs) of the immunoglobulin light chain and 3 complementarity-determining regions (CDRs) of the immunoglobulin heavy chain.
  • the three CDRs of the immunoglobulin light chain are called CDR1, CDR2 and CDR3 in order from the N-terminal side.
  • the three CDRs of the immunoglobulin heavy chain are called CDR1, CDR2 and CDR3 in order from the N-terminal side.
  • An antibody obtained by modifying the antigen specificity, affinity, etc. of a human antibody by replacing the CDRs of one human antibody with the CDRs of another human antibody is also a human antibody.
  • the term "humanized antibody” means that the amino acid sequence of part of the variable region (e.g., all or part of the CDRs in particular) is derived from mammals other than humans, and the other regions are derived from humans. Refers to an antibody.
  • a humanized antibody the three complementarity determining regions (CDRs) of the immunoglobulin light chain and the three complementarity determining regions (CDRs) of the immunoglobulin heavy chain that make up the human antibody are combined with those of other mammals. Antibodies made by replacing CDRs are included.
  • mice Other mammalian species from which CDRs to be transplanted into appropriate positions of human antibodies are derived are not particularly limited as long as they are mammals other than humans, but are preferably mice, rats, rabbits, horses, or Non-human primates, more preferably mice and rats, such as mice.
  • the light chain that constitutes the antibody may be either a ⁇ chain or a ⁇ chain.
  • Heavy chains of human antibodies and humanized antibodies include ⁇ chain, ⁇ chain, ⁇ chain, ⁇ chain and ⁇ chain, which correspond to IgG, IgM, IgA, IgD and IgE, respectively.
  • the heavy chain that constitutes the antibody may be any of ⁇ chain, ⁇ chain, ⁇ chain, ⁇ chain and ⁇ chain, preferably ⁇ chain.
  • the ⁇ chains of heavy chains of antibodies include ⁇ 1 chain, ⁇ 2 chain, ⁇ 3 chain and ⁇ 4 chain, which correspond to IgG1, IgG2, IgG3 and IgG4, respectively.
  • the ⁇ chain may be any of ⁇ 1 chain, ⁇ 2 chain, ⁇ 3 chain and ⁇ 4 chain, preferably ⁇ 1 chain or ⁇ 4 chain.
  • the antibody is a humanized antibody or a human antibody and is an IgG
  • the light chain of the antibody can be either a ⁇ chain or a ⁇ chain
  • the heavy chains of the antibody can be ⁇ 1 chain, ⁇ 2 chain, It may be either the ⁇ 3 chain or the ⁇ 4 chain, preferably the ⁇ 1 chain or the ⁇ 4 chain.
  • preferred embodiments of antibodies include ⁇ light chain and ⁇ 1 heavy chain, and ⁇ light chain and ⁇ 1 heavy chain.
  • the anti-hTfR antibody has the amino acid sequence of SEQ ID NO: 4 or SEQ ID NO: 5 as CDR1 and the amino acid sequence of SEQ ID NO: 6 or 7 or the amino acid sequence Lys- Val-Ser and the amino acid sequence of SEQ ID NO: 8 as CDR3, respectively, and the amino acid sequence of SEQ ID NO: 9 or 10 as CDR1 and the amino acid sequence of SEQ ID NO: 11 or 12 as CDR2 in the variable region of the heavy chain and the amino acid sequence of SEQ ID NO: 13 or 14 as CDR3, respectively.
  • the anti-human transferrin receptor antibody comprises, for example, the amino acid sequence of SEQ ID NO: 15 in framework region 3 of the heavy chain.
  • the heavy chain variable region of the anti-hTfR antibody comprises the amino acid sequence of SEQ ID NO: 16 and the light chain variable region comprises the amino acid sequence of SEQ ID NO: 17.
  • the anti-hTfR antibody is a Fab whose light chain comprises the amino acid sequence of SEQ ID NO: 18 and whose heavy chain is a Fab heavy chain comprising the amino acid sequence of SEQ ID NO: 19. be.
  • the anti-hTfR antibody has affinity for hTfR as long as the amino acid sequence of each CDR is conserved, as long as the amino acid sequence of the variable region or other portion containing the variable region retains affinity for hTfR. Mutations such as substitutions, deletions, and additions may be added.
  • the number of amino acids to be substituted is preferably 1 to 10, more preferably 1 to 5, still more preferably 1. ⁇ 3, and more preferably 1-2.
  • the number of amino acids to be deleted is preferably 1 to 10, more preferably 1 to 5, and still more preferably 1 to 10. 3, and more preferably 1-2. Mutations combining these amino acid substitutions and deletions can also be added.
  • amino acids are added to the variable region of the anti-hTfR antibody, preferably 1 to 10, more preferably 1 to 5, still more preferably 1 to 10, more preferably 1 to 5, in the amino acid sequence of the variable region of the anti-hTfR antibody or to the N-terminal side or C-terminal side is added with 1-3, even more preferably 1-2 amino acids. Mutations combining addition, substitution and deletion of these amino acids can also be added.
  • the amino acid sequence of the mutated anti-hTfR antibody variable region preferably has 80% or more identity, more preferably 85% or more identity, with the amino acid sequence of the original anti-hTfR antibody variable region. more preferably 90% or more identity, still more preferably 95% or more identity, still more preferably 99% or more identity. The same is true when mutating the amino acid sequence of other portions including the variable region.
  • the Kd value for hTfR of the mutated anti-hTfR antibody is preferably 50 times or less, such as 10 times or less, compared to that of the original anti-hTfR antibody. .
  • the anti-hTfR antibody has affinity for both the extracellular domain of hTfR and the extracellular domain of monkey TfR.
  • the dissociation constant of the anti-hTfR antibody with the hTfR extracellular region is 1 ⁇ 10 -10 M or less, and the dissociation constant with the monkey TfR extracellular region is 5 ⁇ 10 -9 M or less. is preferred.
  • the term "human ⁇ -L-iduronidase" or "hIDUA” particularly refers to hIDUA having the same amino acid sequence as wild-type hIDUA.
  • Wild-type hIDUA has an amino acid sequence consisting of 628 amino acids shown in SEQ ID NO:20.
  • a variant of hIDUA having an amino acid sequence consisting of 626 amino acids shown in SEQ ID NO: 21 is also hIDUA.
  • hIDUA also includes mutations such as substitutions, deletions, and additions to wild-type hIDUA amino acid sequences as long as they have IDUA activity.
  • the number of amino acids to be substituted is preferably 1 to 10, more preferably 1 to 5, still more preferably 1 to 3. , and more preferably 1 to 2.
  • the number of amino acids to be deleted is preferably 1 to 10, more preferably 1 to 5, still more preferably 1 to 3, Even more preferably, the number is 1-2. Mutations combining these amino acid substitutions and deletions can also be added.
  • amino acids When amino acids are added to hIDUA, preferably 1 to 10, more preferably 1 to 5, still more preferably 1 to 3, still more preferably in the amino acid sequence of hIDUA or on the N-terminal side or C-terminal side 1-2 amino acids are added. Mutations combining addition, substitution and deletion of these amino acids can also be added.
  • the mutated hIDUA amino acid sequence preferably has 80% or more identity, more preferably 85% or more identity, and still more preferably 90% or more identity with the original hIDUA amino acid sequence. more preferably 95% or more identity, still more preferably 99% or more identity.
  • hIDUA when hIDUA has IDUA activity, it means that when hIDUA is fused with an antibody to form a fusion protein, it has an activity of 3% or more relative to the original activity of native hIDUA. Say things. However, the activity is preferably 10% or more, more preferably 20% or more, even more preferably 50% or more, and 80% or more of the original activity of native hIDUA. is even more preferred. The same is true if the hIDUA fused to the antibody is mutated.
  • Antibodies are, for example, anti-hTfR antibodies.
  • the identity between the amino acid sequence of the original protein (including antibody) and the amino acid sequence of the mutated protein can be easily calculated using a well-known identity calculation algorithm.
  • identity calculation algorithm include BLAST (Altschul SF. J Mol. Biol. 215. 403-10, (1990)), Pearson and Lipman's similarity search method (Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 85. 2444 (1988)), Smith and Waterman's local identity algorithm (Adv. Appl. Math. 2. 482-9 (1981)).
  • substitutions of amino acids for other amino acids in the amino acid sequence of the original protein occur within families of amino acids that are related, for example, in their side chains and chemical properties. . Substitutions within such an amino acid family are expected not to cause major changes in the function of the original protein (ie, conservative amino acid substitutions).
  • Such amino acid families include, for example: (1) acidic amino acids aspartic acid and glutamic acid, (2) the basic amino acids histidine, lysine, and arginine, (3) the aromatic amine acids phenylalanine, tyrosine, and tryptophan; (4) serine and threonine, which are amino acids having a hydroxyl group (hydroxy amino acids), (5) the hydrophobic amino acids methionine, alanine, valine, leucine, and isoleucine; (6) the neutral hydrophilic amino acids cysteine, serine, threonine, asparagine, and glutamine; (7) amino acids glycine and proline that affect the orientation of the peptide chain; (8) asparagine and glutamine, which are amide-type amino acids (polar amino acids), (9) the aliphatic amino acids alanine, leucine, isoleucine, and valine; (10) small side chain amino acids alanine, glycine, serine, and
  • a fusion protein of an anti-hTfR antibody and hIDUA refers to a substance in which an anti-hTfR antibody and hIDUA are bound via a peptide linker or directly.
  • a fusion protein between an anti-hTfR antibody and hIDUA, or the C-terminus or N-terminus of the heavy chain or light chain of an antibody, and the N-terminus or C-terminus of hIDUA are linked via a linker or directly by a peptide bond, respectively. It is matter.
  • a fusion protein of the type in which hIDUA is bound to the C-terminus of the light chain of the hTfR antibody the antibody contains an amino acid sequence containing all or part of the variable region of the light chain and all or part of the variable region of the heavy chain. (eg, Fab heavy chain), with hIDUA attached to the C-terminus of the light chain of this antibody.
  • the antibody light chain and hIDUA may be directly bound or may be bound via a linker.
  • a fusion protein of the type in which hIDUA is bound to the C-terminus of the heavy chain of the hTfR antibody the antibody contains an amino acid sequence containing all or part of the variable region of the light chain and all or part of the variable region of the heavy chain. (eg, a Fab heavy chain), with hIDUA attached to the C-terminus of the heavy chain of this antibody.
  • the antibody heavy chain and hIDUA may be directly bound or may be bound via a linker.
  • a fusion protein of the type in which hIDUA is bound to the N-terminus of the light chain of the hTfR antibody the antibody contains an amino acid sequence containing all or part of the variable region of the light chain and all or part of the variable region of the heavy chain. (eg, Fab heavy chain), with hIDUA attached to the N-terminus of the light chain of this antibody.
  • the antibody light chain and hIDUA may be directly bound or may be bound via a linker.
  • a fusion protein of the type in which hIDUA is bound to the N-terminus of the heavy chain of the hTfR antibody the antibody contains an amino acid sequence containing all or part of the variable region of the light chain and all or part of the variable region of the heavy chain. (eg, a Fab heavy chain), with hIDUA attached to the N-terminus of the heavy chain of the antibody.
  • the antibody heavy chain and hIDUA may be directly bound or may be bound via a linker.
  • the sequence is preferably 1 to 50, more preferably 1 to 20, still more preferably 10 to 17, still more preferably 13 to 17 It consists of 1, for example 15 amino acids.
  • a linker has an amino acid sequence as long as the antibody linked thereby retains affinity for hTfR and the hIDUA linked by the linker can exert the bioactivity of the protein under physiological conditions. is not limited, but is preferably composed of glycine and serine.
  • amino acid sequences represented by SEQ ID NO: 1 amino acid sequences represented by SEQ ID NO: 2, amino acid sequences represented by SEQ ID NO: 3, or 1 to 10 or 2 to 5 of these amino acid sequences in succession 1 amino acid sequence, 2 to 17, 2 to 10, 10 to 40, 20 to 34, 23 to 31, 25 to 29 amino acid sequences, and the like.
  • amino acid sequence Gly-Ser and those having the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 3 can be suitably used as linkers.
  • the anti-hTfR antibody light chain comprises the amino acid sequence of SEQ ID NO: 18, and the anti-hTfR antibody heavy chain comprises the amino acid sequence of SEQ ID NO: 19. wherein the heavy chain is bound at its C-terminus to human ⁇ -L-iduronidase having the amino acid sequence of SEQ ID NO: 20 or SEQ ID NO: 21 via a linker of the amino acid sequence of SEQ ID NO: 3 mentioned.
  • the anti-hTfR antibody light chain comprises the amino acid sequence of SEQ ID NO: 18, and the anti-hTfR antibody heavy chain comprises the amino acid sequence of SEQ ID NO: 19. wherein the heavy chain is bound at its C-terminus to a human ⁇ -L-iduronidase having the amino acid sequence of SEQ ID NO:20 through a linker of the amino acid sequence of SEQ ID NO:3, whereby SEQ ID NO:24 forming the amino acid sequence of
  • the anti-hTfR antibody light chain consists of the amino acid sequence of SEQ ID NO: 18, and the anti-hTfR antibody heavy chain comprises the amino acid sequence of SEQ ID NO: 19. wherein the heavy chain is bound at its C-terminal side to human ⁇ -L-iduronidase having the amino acid sequence of SEQ ID NO: 20 or SEQ ID NO: 21 via a linker of the amino acid sequence of SEQ ID NO: 3 is mentioned.
  • the pharmaceutical composition of the present invention contains a fusion protein of an anti-hTfR antibody and hIDUA as an active ingredient.
  • the pharmaceutical composition may be a lyophilized formulation or an aqueous solution.
  • a pharmaceutical composition in one embodiment of the present invention contains at least one of a neutral salt, a disaccharide, a nonionic surfactant, and a buffer.
  • the medicament may further comprise polysorbates and/or poloxamers as non-ionic surfactants.
  • the nonionic surfactant contained in the pharmaceutical composition is not particularly limited as long as it is pharmaceutically acceptable, but polysorbates and poloxamers are suitable as such nonionic surfactants.
  • polysorbate 20 and polysorbate 80 can be exemplified as polysorbate.
  • Poloxamers include polyoxyethylene (54) polyoxypropylene (39) glycol, polyoxyethylene (196) polyoxypropylene (67) glycol, polyoxyethylene (42) polyoxypropylene (67) glycol, polyoxyethylene Examples include ethylene (3) polyoxypropylene (17) glycol, polyoxyethylene (20) polyoxypropylene (20) glycol, polyoxyethylene (120) polyoxypropylene (40) glycol, and polyoxyethylene (160) poly Oxypropylene (30) glycol is particularly preferred. Polyoxyethylene (160) polyoxypropylene (30) glycol is synonymous with poloxamer 188.
  • the pharmaceutical composition may contain two types of nonionic surfactants.
  • a preferred combination of nonionic surfactants is one that is polysorbate and the other is poloxamer.
  • combinations of polysorbate 20 and poloxamer 188, polysorbate 80 and poloxamer 188 are preferred, and combinations of polysorbate 80 and poloxamer 188 are particularly preferred. These combinations can also be combined with other types of polysorbates, poloxamers, and the like.
  • the concentration of polysorbate is preferably 0.005 to 1.5 mg/mL. , more preferably 0.025 to 1.0 mg/mL, more preferably 0.05 to 1.0 mg/mL, still more preferably 0.05 to 0.15 mg/mL, for example 0.075 mg/mL.
  • the concentration of poloxamer at this time is preferably 0.1 to 0.6 mg/mL, more preferably 0.2 to 0.5 mg/mL, still more preferably 0.25 to 0.45 mg/mL, for example, 0.325 mg/mL mL.
  • the concentration of polysorbate 80 is preferably 0.005 to 1.5 mg/ mL, more preferably 0.025 to 1.0 mg/mL, more preferably 0.05 to 1.0 mg/mL, for example 0.075 mg/mL.
  • the concentration of poloxamer 188 at this time is preferably 0.1 to 0.6 mg/mL, more preferably 0.2 to 0.5 mg/mL, still more preferably 0.25 to 0.45 mg/mL, such as 0.325 mg /mL.
  • the concentration of polysorbate 80 is 0.05 to 1.0 mg/mL and the concentration of poloxamer 188 is 0.25 to 0.45 mg/mL. Further for example, the concentration of polysorbate 80 is 0.075 mg/mL and the concentration of poloxamer 188 is 0.325 mg/mL.
  • the neutral salt contained in the pharmaceutical composition is not particularly limited as long as it is pharmaceutically acceptable.
  • a neutral salt sodium chloride and magnesium chloride are preferred, and sodium chloride is particularly preferred. preferred.
  • the disaccharide contained in the pharmaceutical composition is not particularly limited as long as it is pharmaceutically acceptable.
  • Preferred disaccharides include trehalose, sucrose, maltose, lactose, and combinations thereof. Sucrose is particularly preferred.
  • the disaccharide concentration in the aqueous solution is preferably 50-100 mg/mL, more preferably 55-95 mg/mL, and even more preferably 60-90. mg/mL, eg, 75 mg/mL.
  • the buffer contained in the pharmaceutical composition is not particularly limited as long as it is pharmaceutically acceptable, but citrate buffer, phosphate buffer, glycine buffer, histidine buffer, carbonate buffer, An acetate buffer, or a combination thereof, is preferred.
  • the concentration of the buffer contained in the aqueous solution is preferably 3-30 mM, more preferably 10-30 mM, still more preferably 15-25 mM. Yes, for example 20 mM.
  • the concentration of the citrate buffer contained in the aqueous solution is preferably 3-30 mM, more preferably 10-30 mM, and even more preferably is 15-25 mM, for example 20 mM.
  • the pH of the aqueous solution adjusted with a buffer is preferably 4.5 to 7.0, more preferably 4.5 to 6.5, still more preferably 5.0 to 6.0, still more preferably 5.2 to 5.8, For example 5.5.
  • the pH of the aqueous solution adjusted with a citrate buffer is preferably 4.5 to 7.0, more preferably 4.5 to 6.5, even more preferably 5.0 to 6.0, and even more preferably 5.2 to 5.8. Yes, for example 5.5.
  • compositions of pharmaceutical compositions that are aqueous solutions include the following (1) to (3): (1) the concentration of the fusion protein is 1-10 mg/mL, the concentration of the neutral salt is 0.3-1.2 mg/mL, the concentration of the disaccharide is 50-100 mg/mL; The buffer concentration is 10-30 mM, the polysorbate concentration is 0.005-1.5 mg/mL, and the poloxamer concentration is 0.1-0.6 mg/mL; (2) the concentration of the fusion protein is 2-8 mg/mL, the concentration of the neutral salt is 0.5-1.0 mg/mL, the concentration of the disaccharide is 55-95 mg/mL; (3) concentration of the fusion protein, wherein the buffer concentration is 15-25 mM, the polysorbate concentration is 0.05-1.0 mg/mL, and the poloxamer concentration is 0.25-0.45 mg/mL; is 4-6 mg/mL, the neutral salt concentration is 0.7-0.9 mg/mL, the disaccharide concentration is 60-90 mg/mL, and the
  • the pH of the aqueous solutions (1) to (3) above is adjusted to, for example, 4.5 to 6.5, 5.0 to 6.0, or 5.2 to 5.8.
  • Suitable compositions of pharmaceutical compositions that are freeze-dried agents include the following (1) to (3): (1) When dissolved in pure water, the fusion protein has a concentration of 1-10 mg/mL, the neutral salt has a concentration of 0.3-1.2 mg/mL, and the disaccharide has a concentration of 50-100 mg. /mL, the buffer concentration is 10-30 mM, the polysorbate concentration is 0.005-1.5 mg/mL, and the poloxamer concentration is 0.1-0.6 mg/mL; (2) When dissolved in pure water, the fusion protein has a concentration of 2-8 mg/mL, the neutral salt has a concentration of 0.5-1.0 mg/mL, and the disaccharide has a concentration of 55-95 mg.
  • the buffer concentration is 15-25 mM
  • the polysorbate concentration is 0.05-1.0 mg/mL
  • the poloxamer concentration is 0.25-0.45 mg/mL
  • (3) pure The concentration of the fusion protein of the neutral salt when dissolved in water is 4-6 mg/mL, the concentration is 0.7-0.9 mg/mL, the concentration of the disaccharide is 60-90 mg/mL, and the The buffer concentration is 15-25 mM
  • the polysorbate concentration is 0.05-0.15 mg/mL
  • the poloxamer concentration is 0.25-0.45 mg/mL.
  • the pH when the freeze-drying agents (1) to (3) above are dissolved in pure water is, for example, 4.5 to 6.5, 5.0 to 6.0, or 5.2 to 5.8.
  • the pharmaceutical composition which is an aqueous liquid, may be filled in a vial, or may be supplied as a pre-filled formulation that is prefilled in a syringe.
  • aqueous pharmaceutical compositions There are no particular restrictions on the material of containers such as syringes and vials for filling aqueous pharmaceutical compositions, but those made of borosilicate glass are preferable.
  • Hydrophobic resins such as copolymers, ring-opening polymers of cycloolefins, and hydrogenated ring-opening polymers of cycloolefins are also suitable.
  • a pharmaceutical composition that is a freeze-dried agent can also be supplied as a kit together with a dedicated solution for dissolving it.
  • the freeze-drying agent is used by, for example, dissolving it in a dedicated solution, pure water, or the like before use.
  • containers such as syringes and vials for enclosing and filling freeze-dried preparations, but those made of borosilicate glass are preferred, and copolymers of cyclic olefins and olefins are also preferred.
  • Hydrophobic resins such as cycloolefin copolymers, ring-opening polymers of cycloolefins, and hydrogenated ring-opening polymers of cycloolefins are also suitable.
  • the pharmaceutical composition is in the form of an aqueous solution or a lyophilized preparation, it is usually added to a dialysis bag containing physiological saline, etc., diluted, and injected into the patient.
  • the pharmaceutical composition is used as a therapeutic agent for mucopolysaccharidosis type I.
  • Mucopolysaccharidosis type I is classified into severe Hurler syndrome (MPS IH), intermediate Hurler-Scheie syndrome (MPS IH-S), and mild Scheie syndrome (MPS IS).
  • the product can be used for any type of mucopolysaccharidosis type I.
  • Mucopolysaccharidosis type I is genetically unique to hIDUA, which has the activity of hydrolyzing non-sulfated ⁇ -L-iduronosidic bonds present in the molecules of glycosaminoglycans (GAGs) such as heparan sulfate and dermatan sulfate.
  • GAGs glycosaminoglycans
  • Patients with mucopolysaccharidosis type I hIDUA deficiency cause abnormal accumulation of heparan sulfate and dermatan sulfate in systemic tissues, including the brain, resulting in various symptoms such as skeletal deformation and severe mental retardation.
  • the fusion protein of anti-hTfR antibody and hIDUA which is the active ingredient of the pharmaceutical composition, can pass through the BBB and exert IDUA activity in brain tissue, degrading heparan sulfate and dermatan sulfate. It is particularly effective as a therapeutic agent for enzyme replacement therapy in patients with mucopolysaccharidosis type I who have disorders of the central nervous system.
  • the present invention is administered to patients with mucopolysaccharidosis type I by a parenteral route, for example, by intravenous infusion, for example, by intravenous infusion.
  • the pharmaceutical composition is at a dose of 0.1-10 mg/kg body weight, such as 1-10 mg/kg body weight, 1-6 mg/kg body weight, 2-6 mg/kg body weight, 2 mg/kg body weight, 4 mg It is given to patients with mucopolysaccharidosis type I by IV infusion at doses of 10 mg/kg body weight, 6 mg/kg body weight, or 8 mg/kg body weight.
  • the dose rate is adjusted so that the fusion protein is infused in an amount of 0.33 mg to 200 mg per hour.
  • the time required for dosing is 30 minutes to 4 hours, eg 3 hours.
  • mucopolysaccharidosis type I is a genetic disease and medication is a symptomatic therapy
  • the pharmaceutical composition must be administered continuously.
  • the pharmaceutical composition is preferably administered at intervals of 3 to 21 days, more preferably 5 to 14 days, for example at intervals of 7 days, 14 days and the like.
  • the duration of administration of the pharmaceutical composition is not particularly limited, but is preferably at least 1 month, more preferably at least 3 months. It is envisioned that the pharmaceutical composition will be administered for a lifetime.
  • the dosage of the pharmaceutical composition can be kept small at the initial administration and then gradually increased. Since the fusion protein of anti-hTfR antibody and hIDUA, which is the active ingredient, is a foreign substance for patients, it may cause side reactions such as immune reactions. Using a dose-titration approach can reduce the risk of acute side effects in patients.
  • Examples of administration schedules in the case of adopting a method of gradually increasing the dose include the following (1) to (8).
  • (1) Administer at a dose of 0.1-2 mg/kg body weight initially, and then increase the dose compared to the initial dose.
  • the initial dose is 0.1-2 mg/kg body weight, and then the dose is increased to 2 mg/kg body weight, 4 mg/kg body weight, or 6 mg/kg body weight.
  • a suitable dosage and administration of the pharmaceutical composition is a dose of 4 mg/kg body weight for at least 1 month at intervals of 7 days, given to the patient by infusion over at least 1 or 2 hours, e.g., 3 hours. Injected intravenously.
  • the pharmaceutical composition does not cause serious adverse events in patients when administered to patients at the above dosage and administration.
  • the pharmaceutical composition can also be used in combination with an immunosuppressive agent to suppress the immune response.
  • Immunosuppressants that can be used in combination are not particularly limited, and examples include alkylating agents such as cyclophosphamide, antimetabolites such as azathioprine, mycophenolate mofetil, methotrexate, and mizoribine, and intracellular signaling inhibitors such as cyclosporine and tacrolimus. can be used.
  • the effect of administration of the pharmaceutical composition is, for example, the patient's cerebrospinal fluid (CSF), serum and/or by collecting urine and measuring the concentration of heparan sulfate and/or dermatan sulfate in these.
  • CSF cerebrospinal fluid
  • Accumulation of heparan sulfate in the central nervous system is thought to cause CNS dysfunction, so reducing the concentration of heparan sulfate in the cerebrospinal fluid should improve CNS function in patients is expected.
  • the concentration of heparan sulfate and/or dermatan sulfate can be measured by the method described in Examples.
  • the concentration of heparan sulfate contained in the cerebrospinal fluid collected from the patient after administration is higher than the concentration of heparan sulfate when the pharmaceutical composition is first administered. It is decreased compared with the concentration of heparan sulfate in cerebrospinal fluid from previous patients.
  • the concentration of heparan sulfate after administration is preferably 2/3 or less, 1/2 or less, or 1/3 or less of the heparan sulfate concentration before administration.
  • the pharmaceutical composition is administered to a patient with mucopolysaccharidosis type I at a dose of 2 mg/kg body weight or 4 mg/kg body weight, or at a dose of 1.0 mg/kg body weight for the first time and A dose of 2 mg/kg body weight, followed by escalating doses of 4 mg/kg body weight (maintenance dose) every 7 days for 3 months (12 weeks)
  • This can reduce the concentration of heparan sulfate and/or dermatan sulfate in the patient's cerebrospinal fluid (CSF), serum, and/or urine.
  • CSF cerebrospinal fluid
  • the concentration of heparan sulfate contained in the cerebrospinal fluid collected from the patient after administration is the same as that obtained from the patient before the first administration of the pharmaceutical composition. It is preferably 2/3 or less, more preferably 1/2 or less, and still more preferably 1/3 or less of the concentration of heparan sulfate contained in the cerebrospinal fluid. It is.
  • the concentration of heparan sulfate contained in the cerebrospinal fluid collected from the patient after administration is preferably 2000 ng/mL or less, more preferably 1800 ng/mL or less, and further It is preferably 1600 ng/mL or less, more preferably 1500 ng/mL or less, still more preferably 1400 ng/mL or less.
  • the pharmaceutical composition When the pharmaceutical composition is administered to patients with mucopolysaccharidosis type I, it can be expected to improve the dysfunction of patients with mucopolysaccharidosis type I.
  • Expected improvements in functional impairment include the ability to talk longer, the ability to write more, increased vitality, reduced joint pain in the hips and knees, and pain associated with walking. May include, but is not limited to, less muscle and joint stiffness, easier finger movements such as opening a can or whole-body exercises such as basketball, and improved language skills not a thing
  • Example 1 Construction of vector for expressing humanized anti-hTfR antibody-hIDUA fusion protein It was constructed using a gene encoding a heavy chain Fab region having the amino acid sequence shown in SEQ ID NO:19.
  • a pEF/myc/nuc vector (Invitrogen) was digested with KpnI and NcoI to excise a region containing the EF-1 promoter and its first intron, and blunt-ended with T4 DNA polymerase.
  • pCI-neo (Invitrogen) was digested with BglII and EcoRI to excise the region containing the CMV enhancer/promoter and intron, and then blunt-ended with T4 DNA polymerase.
  • a pE-neo vector was constructed by inserting the region containing the EF-1 ⁇ promoter and its first intron (after blunt-end treatment).
  • the pE-neo vector was digested with SfiI and BstXI to excise an approximately 1 kbp region containing the neomycin resistance gene.
  • the hygromycin gene was amplified by PCR using pcDNA3.1/Hygro(+) (Invitrogen) as a template and primer Hyg-Sfi5' (SEQ ID NO: 22) and primer Hyg-BstX3' (SEQ ID NO: 23). .
  • the amplified hygromycin gene was digested with SfiI and BstXI and inserted into the above pE-neo vector to construct the pE-hygr vector.
  • the pE-neo vector and pE-hygr vector were constructed with reference to the patent document (Japanese Patent No. 6279466).
  • pBSK IRES-Hygr-mPGKpA
  • primer IRES5' SEQ ID NO: 24
  • primer IRES3' SEQ ID NO: 25
  • pBSK NotI-IRES-Hygr-mPGKpA
  • pBSK NotI-IRES-Hygr-mPGKpA
  • restriction enzymes NotI and BamHI
  • the expression vector pPGKIH was digested with EcoRI to excise a DNA fragment consisting of a base sequence containing the mPGK promoter region (mPGKp). This DNA fragment was inserted into the EcoRI site of pBluescript SK(-) (Stratagene) and designated as mPGK promoter/pBS(-). A DNA fragment containing the mPGK promoter region (mPGKp) was amplified by PCR using mPGK promoter/pBS(-) as a template and primers mPGKP5' (SEQ ID NO: 26) and primer mPGKP3' (SEQ ID NO: 27).
  • This DNA fragment was digested with restriction enzymes (BglII and EcoRI) and inserted between the BglII and EcoRI sites of pCI-neo (Promega) to obtain pPGK-neo.
  • pE-IRES-Hygr was digested with restriction enzymes (NotI and BamHI) to excise a DNA fragment (IRES-Hygr), which was inserted between the NotI and BamHI sites of pPGK-neo to obtain pPGK-IRES-Hygr.
  • cDNA was prepared from CHO-K1 cells and used as a template to amplify a DNA fragment containing the GS gene by PCR using primer GS5' (SEQ ID NO: 28) and primer GS3' (SEQ ID NO: 29). This DNA fragment was digested with restriction enzymes (BalI and BamHI) and inserted between the BalI and BamHI sites of pPGK-IRES-Hygr to obtain pPGK-IRES-GS- ⁇ polyA.
  • restriction enzymes BalI and BamHI
  • pCAGIPuro (Miyahara M. et.al., J. Biol. Chem. 275, 613-618 (2000)) as a template and primer puro5' (SEQ ID NO: 30) and primer puro3' (SEQ ID NO: 31), A DNA fragment containing the puromycin resistance gene ( puror gene) was amplified by PCR. This DNA fragment was inserted into pT7Blue T-Vector (Novagen) and designated as pT7-puro.
  • pT7-puro was digested with restriction enzymes (AflII and BstXI) and inserted between the AflII and BstXI sites of the expression vector pE-neo to obtain pE-puro.
  • a DNA fragment containing the SV40 late polyadenylation region was amplified by PCR using pE-puro as a template and primer SV40polyA5' (SEQ ID NO: 32) and primer SV40polyA3' (SEQ ID NO: 33).
  • This DNA fragment was digested with restriction enzymes (NotI and HpaI), inserted between the NotI and HpaI sites of the expression vector pE-puro, and designated as pE-puro (XhoI).
  • pPGK-IRES-GS- ⁇ polyA was digested with restriction enzymes (NotI and XhoI) to cut out a DNA fragment containing the IRES-GS region, which was inserted between the NotI and XhoI sites of the expression vector pE-puro (XhoI), This was named pE-IRES-GS-puro. Construction of pE-IRES-GS-puro was performed with reference to the patent document (Japanese Patent No. 6279466).
  • this DNA fragment and the above primer IRES5' were used to amplify a DNA fragment containing the above region from IRES to GS by PCR.
  • This DNA fragment was digested with restriction enzymes (NotI and PstI), and the excised DNA fragment was inserted between the NotI and PstI sites of pBluescript SK(-) (Stratagene), which was designated as mIRES/pBlueScript SK(-). and
  • the expression vector pE-IRES-GS-puro was digested with SphI to excise the SV40 enhancer region. The remaining DNA fragment was self-ligated to give pE-IRES-GS-puro( ⁇ E).
  • mIRES/pBlueScript SK(-) was digested with NotI and PstI to excise the region containing the modified IRES (mIRES) and part of the GS gene.
  • pE-IRES-GS-puro( ⁇ E) was digested with NotI and PstI, and a region containing part of the mIRES and GS genes was inserted to create pE-mIRES-GS-puro( ⁇ E). It was constructed.
  • a DNA fragment (IRES-HygroR-mPGKpA) containing MluI and BamHI cleavage sites, IRES, hygromycin resistance gene and mPGK polyadenylation signal was artificially synthesized (SEQ ID NO: 40). This DNA fragment was inserted into the MluI and BamHI sites of JCR69 in pUC57 and designated as pEM hygro.
  • a DNA fragment (SEQ ID NO: 37) containing the gene encoding the full length of the light chain of the humanized anti-hTfR antibody having the amino acid sequence shown by SEQ ID NO: 14 was artificially synthesized and inserted into pUC57-Amp, which was then transferred to JCR131. It was called in pUC57-Amp.
  • An MluI sequence was introduced to the 5' side of this DNA fragment, and a NotI sequence was introduced to the 3' side.
  • This plasmid DNA was digested with MluI and NotI and inserted between MluI and NotI of the expression vector pEM hygro.
  • the obtained vector was designated as pEM-hygr (LC3), which is a vector for expressing the light chain of the humanized anti-hTfR antibody.
  • Human IDUA having the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 20 is attached to the C-terminal side of the Fab heavy chain of the humanized anti-hTfR antibody having the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 19 via the linker sequence shown in SEQ ID NO: 3.
  • a DNA fragment having the base sequence shown in SEQ ID NO:39 containing the gene encoding the protein having the amino acid sequence shown in SEQ ID NO:38 as a whole was fused was artificially synthesized.
  • An MluI sequence was introduced to the 5' side of this DNA fragment, and a NotI sequence was introduced to the 3' side.
  • pE-mIRES-GSp-Fab-IDUA is a protein expression vector in which hIDUA is bound to the C-terminal side of the Fab heavy chain of humanized anti-hTfR antibody.
  • Example 2 Generation of high expression cell line of humanized anti-hTfR antibody-hIDUA fusion protein , pEM-hygr(LC3) constructed in Example 1 and pE-mIRES-GSp-Fab-IDUA were transformed.
  • Transformation of cells was generally performed by the following method.
  • CHO-K1 cells were suspended in a 1:1 mixture of CD OptiCHO TM medium (Thermo Fisher Scientific) and PBS to a density of 2 ⁇ 10 7 cells/mL.
  • 50 ⁇ L of cell suspension was collected and 50 ⁇ L of pEM-hygr(LC3) plasmid DNA solution diluted to 200 ⁇ g/mL with a 1:1 mixture of CD OptiCHO TM medium and PBS was added.
  • Electroporation was performed using NEPA21 (NEPAGENE) to introduce pEM-hygr(LC3) plasmid DNA into the cells.
  • the ELISA method at this time was generally performed by the following method. Add 100 ⁇ L of chicken anti-IDUA polyclonal antibody solution diluted to 5 ⁇ g/mL with 0.05 M bicarbonate buffer to each well of a 96-well microtiter plate (Nunc), and incubate at room temperature or 4°C for at least 1 The plate was allowed to stand for a period of time to allow the antibody to adsorb to the plate. Then, after washing each well three times with Tris-buffered saline (pH 8.0) with 0.05% Tween20 added (TBS-T), 1% BSA was added to Tris-buffered saline (pH 8.0).
  • humanized anti-hTfR antibody-hIDUA fusion protein highly expressing cell line was designated as a humanized anti-hTfR antibody-hIDUA expression line.
  • the fusion protein of humanized anti-hTfR antibody and hIDUA expressed by this cell line was designated as humanized anti-hTfR antibody-hIDUA fusion protein (humanized anti-hTfR antibody-hIDUA).
  • the resulting humanized anti-hTfR antibody-hIDUA expression strain was added to 10 mg/L insulin, 16 ⁇ mol/L thymidine, 100 ⁇ mol/L hypoxanthine, 500 ⁇ g/mL hygromycin B, 10 ⁇ g/mL puromycin, 300 ⁇ mol
  • the cells were suspended in CD OptiCHO TM medium containing /L MSX and 10% (v/v) DMSO, dispensed into cryotubes, and stored in liquid nitrogen as seed cells.
  • Example 3 Culture of Humanized Anti-hTfR Antibody-hIDUA Expression Strain To obtain humanized anti-hTfR antibody-hIDUA, a humanized anti-hTfR antibody-hIDUA expression strain was cultured by the following method.
  • the humanized anti-hTfR antibody-hIDUA expression strain obtained in Example 2 was diluted with 10 mg/L insulin, 16 ⁇ mol/L thymidine, and 100 ⁇ mol/L hippophae so that the cell density was about 3 ⁇ 10 5 cells/mL. It was suspended in about 170 L of serum-free medium (CD OptiCHO TM medium, ThermoFisher SCIENTIFIC) containing xanthine and adjusted to pH 6.9.
  • CD OptiCHO TM medium ThermoFisher SCIENTIFIC
  • the collected medium was filtered with Millistak+HC Pod Filter grade D0HC (Merck) and further filtered with Millistak+HC grade X0HC (Merck) to obtain a culture supernatant containing humanized anti-hTfR antibody-hIDUA.
  • This culture supernatant was ultrafiltered using a Pellicon TM 3 Cassette w/Ultracel PLCTK Membrane (pore size: 30 kDa, membrane area: 1.14 m 2 , Merck) until the liquid volume was reduced to about 1/14. Concentrated. This concentrate was then filtered using Opticap XL600 (0.22 ⁇ m, Merck). The resulting liquid was used as a concentrated culture supernatant.
  • Example 4 Purification of humanized anti-hTfR antibody-hIDUA To the concentrated culture supernatant obtained in Example 3, 0.25 volumes of 2 M arginine solution (pH 7.0) was added. This solution was applied to a Capture Select TM CH1-XL column (column volume: about 3.1 L, bed height: Approximately 20 cm, Thermo Fisher Scientific) was loaded at a constant flow rate of 100 cm/hour, and the humanized anti-hTfR antibody-hIDUA was adsorbed onto the column.
  • the Capture Select TM CH1-XL column is an affinity column in which a ligand having the property of specifically binding to the CH1 domain of an IgG antibody is immobilized on a carrier.
  • the column was washed by supplying the same buffer solution in a volume 5 times the column volume at the same flow rate. Then, 25 mM MES buffer (pH 6.5) of 3 times the volume of the column was supplied at the same flow rate to further wash the column. Then, the humanized anti-hTfR antibody-hIDUA adsorbed on the column was eluted with 10 mM sodium acetate-HCl buffer (pH 3.5) of 5 times the column volume. The eluate was immediately neutralized by receiving it in a container containing 250 mM MES buffer (pH 6.0) in advance.
  • the column was washed by supplying 5 times the column volume of the same buffer at the same flow rate, and this washing solution was collected.
  • Capto MMC a multimodal weak cation exchange column
  • MES buffer pH 6.5
  • NaCl 300 mM NaCl
  • column volume approx. 3.1 L
  • bed height about 20 cm
  • GE Healthcare GE Healthcare
  • the column was washed by supplying the same buffer solution in a volume 5 times the column volume at the same flow rate. Then, the humanized anti-hTfR antibody-hIDUA adsorbed on the weak cation exchange column was eluted with 10 times the column volume of 25 mM MES buffer (pH 6.5) containing 1 M NaCl.
  • the above concentrate was equilibrated with 1.5 column volumes of 20 mM citrate buffer (pH 5.5) containing 0.8 mg/mL NaCl and 75 mg/mL sucrose, and a size exclusion column, BioSEC column ( Column volume: about 9.4 L, bed height: 30 cm, Merck) was loaded at a constant flow rate of 40 cm/h, and the same buffer solution was supplied at the same flow rate.
  • place an absorptiometer to continuously measure the absorbance of the eluate in the flow path of the eluate from the size exclusion column, monitor the absorbance at 280 nm, and show an absorption peak at 280 nm.
  • the resulting fraction was collected as a fraction containing humanized anti-hTfR antibody-hIDUA, and this was used as a purified humanized anti-hTfR antibody-hIDUA product.
  • Example 5 Preparation of aqueous pharmaceutical composition Using the purified humanized anti-hTfR antibody-hIDUA fusion protein obtained in Example 4, an aqueous pharmaceutical composition having the composition shown in Table 1 was prepared. This aqueous pharmaceutical composition is filled and sealed in a glass or plastic vial, ampoule, or syringe in a liquid volume of 1 to 10 mL, and stored at a low temperature (eg, 4°C). When this is filled and enclosed in a syringe, it becomes a prefilled syringe type preparation.
  • a low temperature eg, 4°C
  • Example 6 Clinical trial (Phase I) In order to confirm the safety of the aqueous pharmaceutical composition containing the humanized anti-hTfR antibody-hIDUA fusion protein prepared in Example 5 (hereinafter referred to as "test drug") and its efficacy against mucopolysaccharidosis type I, a clinical trial was conducted. A study (Phase I) was conducted.
  • the test drug was administered to the patient at the dosage and administration method shown in Table 3. That is, the study drug was administered to each subject at an initial dose of 0.1 mg/kg body weight, a second dose of 1.0 mg/kg body weight, a third dose of 2.0 mg/kg body weight, and a fourth dose of 4.0 mg/kg body weight. A total of 4 doses were administered. Each dose was separated by one week. In addition, each administration was performed by intravenous drip infusion over about 3 hours while observing the subject's condition. After completion of the clinical trial, the patients were to receive conventional mucopolysaccharidosis type I enzyme replacement therapy. In addition, cerebrospinal fluid was collected from each subject before administration of the test drug and within 5 hours after the fourth administration. In addition, serum and urine were collected from each subject before administration of the test drug and 1 week after the fourth administration and before usual enzyme replacement therapy for mucopolysaccharidosis type I was administered.
  • Table 5 shows some of the safety evaluation items described in the clinical trial protocol.
  • Fig. 1 and Fig. 1 show the measurement results of the concentration of heparan sulfate and dermatan sulfate contained in the cerebrospinal fluid collected from each subject before administration of the test drug collected from each subject in Example 6 and within 5 hours after the fourth administration. 2, respectively.
  • the average concentration of heparan sulfate in the cerebrospinal fluid of the subjects before administration of the test drug was 1132 ng/mL, but after administration the average concentration was 467 ng/mL.
  • the average concentration of dermatan sulfate in the cerebrospinal fluid of the subjects before administration of the test drug was 264 ng/mL, but the average concentration after administration was 213 ng/mL. mL and decreased significantly (Fig. 2).
  • dermatan sulfate concentration in the cerebrospinal fluid was predicted to be reduced to the level of non-mucopolysaccharidosis patients by continuing administration of the test drug.
  • test drug administered to the patient by intravenous infusion crossed the BBB and reached the central nervous system, where it degraded and removed glycosaminoglycans accumulated there. , indicating that the test drug is also effective against mucopolysaccharidosis type I abnormalities of the central nervous system. Based on these results, it is predicted that once-weekly administration of the test drug at a dose of 1 to 6 mg/kg body weight or 1 to 8 mg/kg body weight will exert its efficacy.
  • the mean concentration of dermatan sulfate in the serum of the subjects was 965 ng/mL before administration of the test drug, but the mean concentration after administration was 867 ng/mL. decreased (Fig. 4).
  • the mean concentration of dermatan sulfate in the urine of the subjects before administration of the test drug was 22.7 ⁇ g/mg creatinine, but after administration the mean concentration was 17.1 ⁇ g/mg. creatinine and significantly decreased (Fig. 6).
  • Clinical trial (Phase II) The clinical trial (Phase II) is to confirm the safety and efficacy against mucopolysaccharidosis type I after administration of the test drug for 3 months.
  • MPS I mucopolysaccharidosis type I
  • the clinical trial (Phase II) consists of two trials.
  • the test drug is administered to patients at the doses and administration methods shown in Table 6. That is, the test drug was administered to each subject at a dose of 1.0 mg/kg body weight for the first time, 2.0 mg/kg body weight for the second dose, and 4.0 mg/kg body weight for the 10 times from the 3rd to the 12th dose. be.
  • Each dose is separated by one week.
  • each administration is performed by intravenous drip infusion over about 3 hours while observing the subject's condition. Two subjects will be used.
  • the test drug will be administered to patients at the dosage and administration method shown in Table 7. That is, subjects are divided into two groups, and the test drug is administered to one group at a dose of 2.0 mg/kg body weight (2.0 mg/kg body weight administration group) and to the other group at a dose of 4.0 mg/kg body weight. (4.0 mg/kg body weight administration group). In each group, the test drug is administered 12 times at intervals of 1 week. In addition, each administration is performed by intravenous drip infusion over about 3 hours while observing the subject's condition. The study was conducted in an open-label manner, with 15 subjects.
  • Cerebral spinal fluid was collected from each subject before administration of the test drug and within 5 hours after the 12th administration of the study drug in both the first and second studies of the clinical trial (Phase II).
  • serum and urine were collected from each subject before administration of the test drug and 1 week after the 12th administration and before regular enzyme replacement therapy for mucopolysaccharidosis type I was administered.
  • these cerebrospinal fluid, serum and urine were collected only from 6 of the planned 15 subjects who completed the administration.
  • Table 5 shows some of the safety evaluation items described in the clinical trial protocol.
  • Example 10 Efficacy evaluation of clinical trial (phase II) (concentration of heparan sulfate and dermatan sulfate contained in cerebrospinal fluid) Measurement results of the concentration of heparan sulfate and dermatan sulfate contained in the cerebrospinal fluid collected from each subject before administration of the test drug collected from each subject in the first test in Example 9 and within 5 hours after the 12th administration are shown in FIGS. 7 and 8, respectively. Regarding heparan sulfate, the concentration of heparan sulfate contained in the cerebrospinal fluid of all subjects decreased to less than 1/3 after administration of the test drug compared to before administration (Fig. 7).
  • the concentration of heparan sulfate contained in the cerebrospinal fluid of the subjects was 1400 ng / mL or less, and the average value of the concentration of heparan sulfate contained in the cerebrospinal fluid in non-mucopolysaccharidosis patients below approximately 360 ng/mL. Based on these results, it was predicted that the concentration of heparan sulfate contained in the cerebrospinal fluid could be reduced to the level of patients with non-mucopolysaccharidosis by continuing the administration of the test drug, and this level could be maintained.
  • the concentration of dermatan sulfate contained in the cerebrospinal fluid of all subjects decreased after administration of the test drug compared to before administration (Fig. 8).
  • the mean concentration of dermatan sulfate in cerebrospinal fluid in patients with non-mucopolysaccharidoses is about 220 ng/mL.
  • dermatan sulfate concentration in the cerebrospinal fluid can be reduced to the level of patients with non-mucopolysaccharidosis by continuing administration of the test drug, and this level can be maintained. was predicted.
  • the concentration of heparan sulfate contained in the cerebrospinal fluid of the subjects was 1400 ng / mL or less, and the average value of the concentration of heparan sulfate contained in the cerebrospinal fluid in non-mucopolysaccharidosis patients approached or fell below approximately 360 ng/mL. It was predicted that the concentration of heparan sulfate contained in the cerebrospinal fluid could be reduced to the level of patients with non-mucopolysaccharidosis by further continuing the administration of the test drug, and this could be maintained.
  • the concentration of dermatan sulfate contained in the cerebrospinal fluid of the subjects decreased after administration of the test drug compared to before administration (Fig. 10).
  • the mean concentration of dermatan sulfate in cerebrospinal fluid in patients with non-mucopolysaccharidoses is about 220 ng/mL.
  • dermatan sulfate concentration in the cerebrospinal fluid can be reduced to the level of patients with non-mucopolysaccharidosis by continuing administration of the test drug, and this level can be maintained. was predicted.
  • the concentrations of heparan sulfate and dermatan sulfate were measured by the methods described in Examples 12-14.
  • test drug administered to the patient by intravenous infusion crossed the BBB and reached the central nervous system, where it degraded and removed glycosaminoglycans accumulated there. , indicating that the test drug is also effective against mucopolysaccharidosis type I abnormalities of the central nervous system. Based on these results, it is predicted that once-weekly administration of the test drug at a dose of 1 to 6 mg/kg body weight or 1 to 8 mg/kg body weight will exert its efficacy.
  • test drug administered to the patient by intravenous infusion degraded and removed glycosaminoglycans accumulated not only in the central nervous system but also in tissues throughout the body. is also effective against mucopolysaccharidosis type I central nervous system and other tissue abnormalities.
  • the dysfunction of the central nervous system is improved, enabling longer conversations.
  • Increased ability to write more letters, increased vitality, reduced joint pain in the lower back and knees, reduced pain and muscle and joint stiffness associated with walking, fingertip exercises such as opening cans and playing basketball It is expected that it will become easier to perform full-body exercises such as, and that it will improve language ability.
  • PBS/citric acid solution A citric acid solution with a concentration of 10 mM was prepared by dissolving citric acid in pure water. Furthermore, trisodium citrate dihydrate was dissolved in pure water to prepare a 10 mM sodium citrate solution. The sodium citrate solution was added dropwise to the citric acid solution to adjust the pH to 3.0. This solution was used as a 10 mM citrate buffer (pH 3.0). A PBS/citric acid solution was prepared by adding 2 mL of PBS to 18 mL of 10 mM citrate buffer (pH 3.0).
  • mobile phase A Mobile phase A was prepared by adding 2.5 mL of 1 M ammonium formate aqueous solution and 400 ⁇ L of ammonium hydroxide aqueous solution (25% NH 4 OH) to 247.5 mL of pure water and mixing them. This solution was prepared just before use.
  • mobile phase B Mobile phase B was prepared by mixing 45 mL of pure water with 5 mL of 1 M ammonium formate aqueous solution, 450 mL of acetonitrile, and 800 ⁇ L of ammonium hydroxide aqueous solution (25% NH 4 OH). This solution was prepared just before use.
  • Heparan sulfate standard stock solution Heparan sulfate (Iduron) was weighed into a 1.5 mL microtube and dissolved with water for injection to prepare a solution with a concentration of 5.0 mg/mL. 15 ⁇ L of the prepared solution was dispensed into 0.5 mL screw cap tubes and stored frozen (below -15°C) until use. This solution was used as the HS standard stock solution.
  • Dermatan sulfate standard stock solution (DS standard stock solution): Chondroitin sulfate B sodium salt from porcine intestinal mucosa (Sigma-Aldrich) was weighed into a 1.5 mL microtube and dissolved by adding water for injection to prepare a solution with a concentration of 5.0 mg/mL. 15 ⁇ L of the prepared solution was dispensed into 0.5 mL screw cap tubes and stored frozen (below -15°C) until use. This solution was used as the DS standard stock solution.
  • DS standard stock solution Chondroitin sulfate B sodium salt from porcine intestinal mucosa
  • (h) dermatan sulfate internal standard solution (DS internal standard solution): 40 ⁇ L of the DS standard stock solution was weighed into a borosilicate screw cap test tube, and the solvent was distilled off under a stream of nitrogen. After adding 400 ⁇ L of deuterium-labeled solvent to the dry matter and stirring, the mixture was allowed to react at 65° C. for 75 minutes to perform deuteriomethanolysis. After the reaction, the solvent was distilled off under a stream of nitrogen. 500 ⁇ L of MeCN/water was added to the dry matter, and ultrasonication was performed for 30 minutes. 20 ⁇ L of the prepared solution was dispensed into 0.5 mL screw cap tubes and stored frozen (below -15°C).
  • HS internal standard solution heparan sulfate internal standard solution: 40 ⁇ L of the HS standard stock solution was weighed into a borosilicate screw cap test tube, and the solvent was distilled off under a stream of nitrogen. After adding 400 ⁇ L of deuterium-labeled solvent to the dry matter and stirring, the mixture was allowed to react at 65° C. for 75 minutes to perform deuteriomethanolysis. After the reaction, the solvent was distilled off under a stream of nitrogen. 500 ⁇ L of MeCN/water was added to the dry matter, and ultrasonication was performed for 30 minutes.
  • sample dissolving solution After adding 1 ⁇ L of HS internal standard solution and 1 ⁇ L of DS internal standard solution to 5 mL of MeCN/water and stirring, sonication was performed for 30 minutes. This solution was used as a sample dissolving solution. This solution was prepared just before use.
  • (k) solution for creating a calibration curve 480 ⁇ L of PBS/citric acid solution was weighed out, and 10 ⁇ L each of HS standard undiluted solution and DS standard undiluted solution were added thereto to prepare solutions containing 100 ⁇ g/mL each of dermatan sulfate and heparan sulfate. This solution was diluted with a PBS/citric acid solution to prepare a solution containing 2500 ng/mL each of dermatan sulfate and heparan sulfate.
  • This solution was diluted with a PBS/citric acid solution in two steps to prepare solutions containing dermatan sulfate and heparan sulfate at concentrations of 25 to 2500 ng/mL, respectively. This solution was used as a solution for creating a calibration curve.
  • the dermatan sulfate standard undiluted solution and the heparan sulfate standard undiluted solution prepared in Example 12 above were diluted with PBS/citric acid solution, and the dermatan sulfate standard undiluted solution and the heparan sulfate standard undiluted solution were both diluted to 25.0 ng, 50.0 ng/mL
  • Four quality control samples (QC samples) containing concentrations of 500 ng/mL and 2000 ng/mL were prepared, designated QC-LL, QC-L, QC-M, and QC-H, respectively.
  • Example 6 or 9 the cerebrospinal fluid, serum, and urine collected in Example 6 or 9 were dispensed into borosilicate screw cap test tubes, respectively, and the solvent in the test tubes was distilled off under a nitrogen stream.
  • Example 14 Method for measuring heparan sulfate and dermatan sulfate (LC/MS/MS analysis)] LC/MS/MS analysis was performed using a combination of hydrophilic interaction ultra-performance liquid chromatography and a tandem quadrupole mass spectrometer.
  • mass spectrometer MS/MS device
  • QTRAP5500 A.B. SCIEX
  • Nexera X2 Shimadzu Corporation
  • HPLC device As an LC column, Acquity UPLC TM BEH Amid 1.7 ⁇ m (2.1 ⁇ 50 mm, Waters) was used.
  • mobile phases mobile phase A and mobile phase B prepared in Example 12 were used. In addition, the column temperature was set at 50°C.
  • the ion source parameters of the MS/MS instrument were set as shown in Table 9 according to the QTRAP5500 (A.B.Sciex) instruction manual.
  • the dermatan sulfate and heparan sulfate contained in the DS internal standard solution and HS internal standard solution are labeled with deuterium. Therefore, the mass-to-charge ratios (m/z) of precursor ions derived from these are 432 and 390, respectively, which are larger than those of unlabeled ions.
  • the mass-to-charge ratios (m/z) of precursor ions derived from unlabeled dermatan sulfate and heparan sulfate are 426 and 384, respectively. Therefore, these precursor ions are separated in the quadrupole (Q1) based on the mass-to-charge ratio (m/z) of the ions, and can be individually detected.
  • Table 10 summarizes the (m/z) of precursor ions and product ions.
  • the area ratio (DS Detected peak area/DS-IS detected peak area) was determined. Using this value as the vertical axis and the concentration of dermatan sulfate in each solution for creating a calibration curve as the horizontal axis, a regression equation was calculated using the quadratic programming method to create a calibration curve.
  • the area ratio of the detection peak derived from the HS internal standard solution (HS-IS detection peak area) to the detection peak area derived from heparan sulfate contained in each calibration solution was determined.
  • HS detection peak area/HS-IS detection peak area was determined.
  • the concentrations of DS and HS contained in each sample were obtained by interpolating the cerebrospinal fluid, serum, and urine measurements of each subject into the above calibration curve.
  • the measured values of DS and HS in urine were corrected for creatinine, and the amount contained in urine containing 1 mg of creatinine ( ⁇ g/mg creatinine) was calculated.
  • a new drug that can be used for enzyme replacement therapy for mucopolysaccharidosis type I patients can be provided.
  • SEQ ID NO: 1 amino acid sequence of linker example 1 SEQ ID NO: 2: amino acid sequence of linker example 2 SEQ ID NO: 3: amino acid sequence of linker example 3 SEQ ID NO: 4: amino acid sequence 1 of light chain CDR1 SEQ ID NO: 5: amino acid sequence 2 of light chain CDR1 SEQ ID NO: 6: amino acid sequence 1 of light chain CDR2 SEQ ID NO: 7: amino acid sequence 2 of light chain CDR2 SEQ ID NO: 8: amino acid sequence 1 of light chain CDR3 SEQ ID NO: 9: amino acid sequence 1 of heavy chain CDR1 SEQ ID NO: 10: amino acid sequence 2 of heavy chain CDR1 SEQ ID NO: 11: amino acid sequence 1 of heavy chain CDR2 SEQ ID NO: 12: amino acid sequence 2 of heavy chain CDR2 SEQ ID NO: 13: amino acid sequence 1 of heavy chain CDR3 SEQ ID NO: 14: amino acid sequence 2 of heavy chain CDR3 SEQ ID NO: 15: heavy chain framework region 3 amino acid sequence SEQ ID NO: 16: heavy

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Abstract

ムコ多糖症Ｉ型患者の治療用の医薬組成物が提供される。ここに患者は特に中枢神経系に障害を有するものである。抗ヒトトランスフェリン受容体抗体とヒトα－Ｌ－イズロニダーゼとの融合蛋白質を有効成分として含有する医薬組成物が，０．１～１０ｍｇ／ｋｇ体重の用量で，静脈内点滴によりムコ多糖症Ｉ型の患者に投与される。投与は５日～２１日の間隔で，少なくとも３ヶ月継続して行われる。これにより患者の組織内，特に中枢神経系に蓄積したデルマタン硫酸及びヘパラン硫酸が分解される。

Description

ムコ多糖症Ｉ型の治療用医薬組成物
　本発明は，抗ヒトトランスフェリン受容体抗体とヒトα－Ｌ－イズロニダーゼ（hIDUA）との融合蛋白質を有効成分として含有するムコ多糖症I型の治療用医薬組成物に関し，詳しくは，該医薬組成物をムコ多糖症I型の患者に非経口的に投与することにより，脳を含む臓器に蓄積したデルマタン硫酸及びヘパラン硫酸を分解させることを特徴とする，ムコ多糖症I型の治療用医薬組成物に関する。
　α－Ｌ－イズロニダーゼ（IDUA）は，ヘパラン硫酸やデルマタン硫酸のようなグリコサミノグリカン（GAG）の分子内に存在する非硫酸化α-L-iduronosidic結合を加水分解する活性を有するライソゾーム酵素の１つである。ムコ多糖症I型の患者は，α－Ｌ－イズロニダーゼ活性を遺伝的に一部又は全て欠損している。この酵素の欠損は，ヘパラン硫酸及びデルマタン硫酸の代謝異常を引き起こし，それは次いで肝臓や腎臓のような組織中にそれらの分子の断片の蓄積や，更には尿中へのヘパラン硫酸及びデルマタン硫酸の排泄をも引き起こす。その結果，これらの異常により，骨格の変形及び重度の精神遅滞を含む，ムコ多糖症I型の患者における種々の症状が引き起こされる。ムコ多糖症I型は，重症型のハーラー症候群（MPS IH），中間型のハーラー－シャイエ症候群（MPS IH-S），及び軽症型のシャイエ症候群（MPS IS）に分類される。
　ムコ多糖症I型の患者がIDUA活性を僅かしか示さないという事実は，1970年代に既に知られており，IDUA遺伝子の異常がこの疾病の原因であると予想されていた。1991年には，hIDUAをコードするヒト遺伝子が単離され，この疾患に対する原因遺伝子であることが確認された（非特許文献１）。hIDUAをコードする遺伝子の単離は，組換え技術を用いて組換えhIDUA（rhIDUA）を大量生産し，この酵素を治療薬としてムコ多糖症I型の酵素補充療法に使用することを可能にした(特許文献１)。
　しかしながら，rhIDUAは血液脳関門（BBB）を通過できないため，ムコ多糖症I型患者の中枢神経系の障害を有効に改善することはできないという問題があった。かかるrhIDUAを用いたムコ多糖症I型の酵素補充療法に関する課題を解決するため，抗ヒトトランスフェリン受容体抗体とヒトα－Ｌ－イズロニダーゼとの融合蛋白質が開発されている（特許文献２，３）。この融合蛋白質は，抗ヒトトランスフェリン受容体抗体によりBBBを構成する脳内の毛細血管内皮細胞上に存在するヒトトランスフェリン受容体と結合することによりBBBを通過することができる。
ＵＳ６１４９９０９ ＵＳ２０１８０１７１０１２ ＵＳ２０１９０３３８０４３
Scott HS. et. al., Proc Natl Acad Sci USA 88:9695-9 (1991)
　本発明の目的は，抗ヒトトランスフェリン受容体抗体とヒトα－Ｌ－イズロニダーゼとの融合蛋白質を有効成分として含有する医薬組成物をムコ多糖症I型の患者に非経口的に投与することにより，少なくとも脳に蓄積したグルコサミノグリカンを分解させることを特徴とする，ムコ多糖症I型の患者の処置方法を提供することである。
　上記目的に向けた研究において，本発明者らは，抗ヒトトランスフェリン受容体抗体とヒトα－Ｌ－イズロニダーゼとの融合蛋白質を有効成分として含有する医薬組成物を，ムコ多糖症I型の患者に静脈注射することにより，患者の脳に蓄積したグルコサミノグリカンを分解できることを見出し，本発明を完成した。すなわち，本発明は以下を含むものである。
１．抗ヒトトランスフェリン受容体抗体とヒトα－Ｌ－イズロニダーゼとの融合蛋白質を有効成分として含有する医薬組成物であって，該融合蛋白質が，０．１～１０ｍｇ／ｋｇ体重の用量で，静脈内注入によりムコ多糖症I型の患者に投与されるものである，医薬組成物。
２．該融合蛋白質が，０．１～８ｍｇ／ｋｇ体重の用量で投与されるものである上記１に記載の医薬組成物。
３．該融合蛋白質が，１～６ｍｇ／ｋｇ体重の用量で投与されるものである上記１に記載の医薬組成物。
４．該融合蛋白質が，２ｍｇ／ｋｇ体重又は４ｍｇ／ｋｇ体重の用量で投与されるものである上記１に記載の医薬組成物。
５．該融合蛋白質が，０．３３ｍｇ／時間～２００ｍｇ／時間の速度で投与されるものである，上記１～４の何れかに記載の医薬組成物。
６．該融合蛋白質が，少なくとも１時間かけて投与されるものである，上記１～４の何れかに記載の医薬組成物。
７．該融合蛋白質が，静脈内点滴により投与されるものである，上記１～６の何れかに記載の医薬組成物。
８．該投与が，５日～２１日の間隔で，少なくとも３ヶ月継続して行われるものである上記１～７の何れかに記載の医薬組成物。
９．該投与が，７日の間隔で，少なくとも１ヶ月継続して行われるものである上記１～７の何れかに記載の医薬組成物。
１０．該融合蛋白質が，初回の投与時は０．１～２ｍｇ／ｋｇ体重の用量で投与され，２回目以降の投与時は，用量を増加させて投与されるものである，上記８又は９に記載の医薬組成物。
１１．該融合蛋白質が，初回の投与時は０．１～２ｍｇ／ｋｇ体重の用量で投与され，その後，２～６ｍｇ／ｋｇ体重の維持用量で投与されるものである，上記８又は９に記載の医薬組成物。
１２．２ｍｇ／ｋｇ体重又は４ｍｇ／ｋｇ体重の維持用量で投与されるものである，上記８又は１０に記載の医薬組成物。
１３．該抗ヒトトランスフェリン受容体抗体が，Ｆａｂである，上記１～１２の何れかに記載の医薬組成物。
１４．該α－Ｌ－イズロニダーゼが，該抗ヒトトランスフェリン受容体抗体の軽鎖のＣ末端側若しくはＮ末端側，又は該抗ヒトトランスフェリン受容体抗体の重鎖のＣ末端側若しくはＮ末端側に，リンカーを介して結合しているものである，上記１～１３の何れかに記載の医薬組成物。
１５．該α－Ｌ－イズロニダーゼが，該抗ヒトトランスフェリン受容体抗体の重鎖のＣ末端側に，リンカーを介して結合しているものである，上記１～１３の何れかに記載の医薬組成物。
１６．該リンカーが，１～１５０個のアミノ酸残基からなるペプチドである，上記１４又は１５に記載の医薬組成物。
１７．該リンカーが，１個のグリシン，１個のセリン，アミノ酸配列Ｇｌｙ－Ｓｅｒ，アミノ酸配列Ｇｌｙ－Ｇｌｙ－Ｓｅｒ，配列番号１のアミノ酸配列，配列番号２のアミノ酸配列，配列番号３のアミノ酸配列，及びこれらのアミノ酸配列が１～１０個連続してなるアミノ酸配列からなる群より選ばれるアミノ酸配列を含んでなるペプチドである，上記１６に記載の医薬組成物。
１８．該リンカーが，配列番号３のアミノ酸配列からなるペプチドである，上記１６に記載の医薬組成物。
１９．該抗ヒトトランスフェリン受容体抗体が，軽鎖の可変領域に，ＣＤＲ１として配列番号４又は配列番号５のアミノ酸配列を，ＣＤＲ２として配列番号６若しくは配列番号７のアミノ酸配列又はアミノ酸配列Ｌｙｓ－Ｖａｌ－Ｓｅｒを，及びＣＤＲ３として配列番号８のアミノ酸配列を，それぞれ含んでなり，重鎖の可変領域に，ＣＤＲ１として配列番号９又は１０のアミノ酸配列を，ＣＤＲ２として配列番号１１又は２のアミノ酸配列を，及びＣＤＲ３として配列番号１３又は１４のアミノ酸配列を，それぞれ含んでなるものであり，
　該α－Ｌ－イズロニダーゼが，該抗ヒトトランスフェリン受容体抗体の軽鎖のＣ末端側若しくはＮ末端側，又は該抗ヒトトランスフェリン受容体抗体の重鎖のＣ末端側若しくはＮ末端側に結合したものである，上記１～１８の何れかに記載の医薬組成物。
２０．該重鎖の可変領域が配列番号１６のアミノ酸配列を含んでなるものである，上記１９に記載の医薬組成物。
２１．該重鎖がＦａｂ重鎖であり，該Ｆａｂ重鎖が配列番号１９のアミノ酸配列を含んでなるものである，上記２０に記載の医薬組成物。
２２．該軽鎖の可変領域が配列番号１７のアミノ酸配列を含んでなるものである，上記１９～２１の何れかに記載の医薬組成物。
２３．該軽鎖が配列番号１８のアミノ酸配列を含んでなるものである，上記２２に記載の医薬組成物。
２４．該ヒトα－Ｌ－イズロニダーゼが，配列番号２０のアミノ酸配列又は配列番号２１のアミノ酸配列と少なくとも８５％の同一性を有するアミノ酸配列を含んでなるものである，上記１～２３の何れかに記載の医薬組成物。
２５．該ヒトα－Ｌ－イズロニダーゼが，配列番号２０のアミノ酸配列又は配列番号２１のアミノ酸配列を含んでなるものである，上記１～２３の何れかに記載の医薬組成物。
２６．該抗ヒトトランスフェリン受容体抗体の軽鎖が配列番号１８のアミノ酸配列を含んでなり，該抗ヒトトランスフェリン受容体抗体の重鎖が配列番号１９のアミノ酸配列を含んでなり，該重鎖が，そのＣ末端側で，配列番号３のアミノ酸配列のリンカーを介して，配列番号２０又は配列番号２１のアミノ酸配列を有するヒトα－Ｌ－イズロニダーゼと結合しているものである，上記１に記載の医薬組成物。
２７．該抗ヒトトランスフェリン受容体抗体の軽鎖が配列番号１８のアミノ酸配列を含んでなり，該抗ヒトトランスフェリン受容体抗体の重鎖が配列番号１９のアミノ酸配列を含んでなり，該重鎖が，そのＣ末端側で，配列番号３のアミノ酸配列のリンカーを介して，配列番号２０のアミノ酸配列を有するヒトα－Ｌ－イズロニダーゼと結合し，それにより配列番号２４のアミノ酸配列を形成しているものである，上記１９に記載の医薬組成物。
２８．凍結乾燥剤又は水性液剤である，上記１～２７の何れかに記載の医薬組成物。
２９．中性塩，二糖類，非イオン性界面活性剤，及び緩衝剤の少なくとも一つを更に含有してなる，上記２８に記載の医薬組成物。
３０．該非イオン性界面活性剤として，ポリソルベート及び／又はポロキサマーを含むものである，上記２８又は２９に記載の医薬組成物。
３１．該ポリソルベートが，ポリソルベート２０又はポリソルベート８０であり，
　該ポロキサマーが，ポリオキシエチレン（５４）ポリオキシプロピレン（３９）グリコール，ポリオキシエチレン（１９６）ポリオキシプロピレン（６７）グリコール，ポリオキシエチレン（４２）ポリオキシプロピレン（６７）グリコール，ポリオキシエチレン（３）ポリオキシプロピレン（１７）グリコール，ポリオキシエチレン（２０）ポリオキシプロピレン（２０）グリコール，及びポリオキシエチレン（１２０）ポリオキシプロピレン（４０）グリコールからなる群から選択されるものである，上記３０に記載の医薬組成物。
３２．該ポリソルベートがポリソルベート８０であり，該ポロキサマーがポリオキシエチレン（１６０）ポリオキシプロピレン（３０）グリコールである，上記３０に記載の医薬組成物。
３３．該ポリソルベートの濃度が０．００５～１．５ｍｇ／ｍＬであり，該ポロキサマーの濃度が０．１～０．６ｍｇ／ｍＬである，上記３０～３２の何れかに記載の水性液剤である医薬組成物。
３４．該ポリソルベートの濃度が０．０２５～１．０ｍｇ／ｍＬであり，該ポロキサマーの濃度が０．２～０．５ｍｇ／ｍＬである，上記３０～３２の何れかに記載の水性液剤である医薬組成物。
３５．該ポリソルベートの濃度が０．０５～０．１５ｍｇ／ｍＬであり，該ポロキサマーの濃度が０．２５～０．４５ｍｇ／ｍＬである，上記３０～３２の何れかに記載の水性液剤である医薬組成物。
３６．該中性塩が塩化ナトリウムである，上記２９～３５の何れかに記載の医薬組成物。
３７．該二糖類がトレハロース，スクロース，マルトース，乳糖，及びこれらの２種以上の組み合わせからなる群から選択されるものである，上記２９～３６の何れかに記載の医薬組成物。
３８．該緩衝剤がクエン酸緩衝剤，リン酸緩衝剤，グリシン緩衝剤，ヒスチジン緩衝剤，炭酸緩衝剤，酢酸緩衝剤，及びこれらの２種以上を組み合わせたものからなる群から選択されるものである，上記２９～３７の何れかに記載の医薬組成物。
３９．以下の（１）～（３）からなる群から選択される水性液剤である，上記３０～３２の何れかに記載の医薬組成物：
（１）該融合蛋白質の濃度が１～１０ｍｇ／ｍＬであり，該中性塩の濃度が０．３～１．２ｍｇ／ｍＬであり，該二糖類の濃度が５０～１００ｍｇ／ｍＬであり，該緩衝剤の濃度が１０～３０ｍＭであり，該ポリソルベートの濃度が０．００５～１．５ｍｇ／ｍＬであり，及び該ポロキサマーの濃度が０．１～０．６ｍｇ／ｍＬであるもの；
（２）該融合蛋白質の濃度が２～８ｍｇ／ｍＬであり，該中性塩の濃度が０．５～１．０ｍｇ／ｍＬであり，該二糖類の濃度が５５～９５ｍｇ／ｍＬであり，該緩衝剤の濃度が１５～２５ｍＭであり，該ポリソルベートの濃度が０．０５～１．０ｍｇ／ｍＬであり，及び該ポロキサマーの濃度が０．２５～０．４５ｍｇ／ｍＬであるもの；及び
（３）該融合蛋白質の濃度が４～６ｍｇ／ｍＬであり，該中性塩の濃度が０．７～０．９ｍｇ／ｍＬであり，該二糖類の濃度が６０～９０ｍｇ／ｍＬであり，該緩衝剤の濃度が１５～２５ｍＭであり，該ポリソルベートの濃度が０．０５～０．１５ｍｇ／ｍＬであり，及び該ポロキサマーの濃度が０．２５～０．４５ｍｇ／ｍＬであるもの。
４０．ｐＨが４．５～６．５，５．０～６．０，又は５．２～５．８の水性液剤である，上記２８～４１の何れかに記載の医薬組成物。
４１．以下の（１）～（３）からなる群から選択される凍結乾燥剤である，上記３０～３２の何れかに記載の医薬組成物：
（１）純水で溶解したときに，該融合蛋白質の濃度が１～１０ｍｇ／ｍＬとなり，該中性塩の濃度が０．３～１．２ｍｇ／ｍＬとなり，該二糖類の濃度が５０～１００ｍｇ／ｍＬとなり，該緩衝剤の濃度が１０～３０ｍＭとなり，該ポリソルベートの濃度が０．００５～１．５ｍｇ／ｍＬとなり，及び該ポロキサマーの濃度が０．１～０．６ｍｇ／ｍＬとなるもの；
（２）純水で溶解したときに，該融合蛋白質の濃度が２～８ｍｇ／ｍＬとなり，該中性塩の濃度が０．５～１．０ｍｇ／ｍＬとなり，該二糖類の濃度が５５～９５ｍｇ／ｍＬとなり，該緩衝剤の濃度が１５～２５ｍＭとなり，該ポリソルベートの濃度が０．０５～１．０ｍｇ／ｍＬとなり，該ポロキサマーの濃度が０．２５～０．４５ｍｇ／ｍＬとなるもの；及び
（３）純水で溶解したときに，該融合蛋白質の濃度が４～６ｍｇ／ｍＬとなり，該中性塩の濃度が０．７～０．９ｍｇ／ｍＬとなり，該二糖類の濃度が６０～９０ｍｇ／ｍＬとなり，該緩衝剤の濃度が１５～２５ｍＭとなり，該ポリソルベートの濃度が０．０５～０．１５ｍｇ／ｍＬとなり，該ポロキサマーの濃度が０．２５～０．４５ｍｇ／ｍＬとなるもの。
４２．純水で溶解したときのｐＨが４．５～６．５，５．０～６．０，又は５．２～５．８となる凍結乾燥剤である，上記２８～３２，３６～３８，及び４１の何れかに記載の医薬組成物。
４３．該患者が，中枢神経系に障害を有するものである，上記１～４２の何れかに記載の医薬組成物。
４４．脳脊髄液，血清，及び尿に含まれるデルマタン硫酸及びヘパラン硫酸の濃度を減少させる作用を有するものである，上記１～４３の何れかに記載の医薬組成物。
４５．ムコ多糖症Ｉ型の患者の酵素補充療法に用いられる上記１～４４の何れかに記載の医薬組成物。
４６．免疫抑制剤と併用されるものである，上記１～４５の医薬組成物。
４７．上記１～４６の何れかに記載の医薬組成物を用いたムコ多糖症Ｉ型の患者の酵素補充療法。
４８．該患者が中枢神経系に障害を有するものである，上記４７に記載の酵素補充療法。
４９．上記１～４６の何れかに記載の医薬組成物であって，該医薬組成物がムコ多糖症Ｉ型の患者に投与されたときに，投与後に該患者から採取された脳脊髄液に含まれるヘパラン硫酸の濃度が，該医薬組成物が最初に投与される前の患者から採取された脳脊髄液に含まれるヘパラン硫酸の濃度と比較して2/3以下，1/2以下，又は1/3以下となるものである，医薬組成物。
５０．上記１～４６の何れかに記載の医薬組成物であって，該医薬組成物がムコ多糖症Ｉ型の患者に投与されたときに，投与後に該患者から採取された脳脊髄液に含まれるヘパラン硫酸の濃度が，2000 ng/mL以下，1800 ng/mL以下，1600 ng/mL以下，1500 ng/mL以下，又は1400 ng/mL以下となるものである，医薬組成物。
５０．上記１～４６の何れかに記載の医薬組成物であって，該医薬組成物がムコ多糖症Ｉ型の患者に投与されたときに，該医薬組成物が最初に投与される前と比較して，以下に示す少なくとも１つの機能改善を該患者に生じさせるものである，医薬組成物：
（１）より長時間の会話ができる；
（２）より多くの文字筆記ができる；
（３）腰や膝などの関節痛が軽減される；
（４）歩行に伴う痛みや筋肉及び関節のこわばりが軽減される；
（５）缶を開けるなどの指先の運動やバスケットボールなどの全身運動を行うことがより容易にできる；
（６）言語能力が向上する。
　本発明によれば，例えば，ムコ多糖症I型の患者の脳を含む臓器に蓄積したデルマタン硫酸及びヘパラン硫酸，特に脳を含む中枢神経系に蓄積したヘパラン硫酸を分解させることができるので，当該患者の臓器，特に脳を含む中枢神経系の機能障害の進行を抑制することができる。
臨床試験（第I期）における被験薬の投与によるムコ多糖症I型の患者の脳脊髄液に含まれるヘパラン硫酸の濃度の変化を示す図。左側が被験薬投与前の値，右側が被験薬投与後の値をそれぞれ示す。縦軸はヘパラン硫酸の濃度（ng/mL）を，グラフ上の縦線はSDバーをそれぞれ示す。 臨床試験（第I期）における被験薬の投与によるムコ多糖症I型の患者の脳脊髄液に含まれるデルマタン硫酸の濃度の変化を示す図。左側が被験薬投与前の値，右側が被験薬投与後の値をそれぞれ示す。縦軸はデルマタン硫酸の濃度（ng/mL）を，グラフ上の縦線はSDバーをそれぞれ示す。 臨床試験（第I期）における被験薬の投与によるムコ多糖症I型の患者の血清に含まれるヘパラン硫酸の濃度の変化を示す図。左側が被験薬投与前の値，右側が被験薬投与後の値をそれぞれ示す。縦軸はヘパラン硫酸の濃度（ng/mL）を，グラフ上の縦線はSDバーをそれぞれ示す。 臨床試験（第I期）における被験薬の投与によるムコ多糖症I型の患者の血清に含まれるデルマタン硫酸の濃度の変化を示す図。左側が被験薬投与前の値，右側が被験薬投与後の値をそれぞれ示す。縦軸はデルマタン硫酸の濃度（ng/mL）を，グラフ上の縦線はSDバーをそれぞれ示す。 臨床試験（第I期）における被験薬の投与によるムコ多糖症I型の患者の尿に含まれるヘパラン硫酸の濃度の変化を示す図。左側が被験薬投与前の値，右側が被験薬投与後の値をそれぞれ示す。縦軸はヘパラン硫酸の量（μg/ mgクレアチニン）を，グラフ上の縦線はSDバーをそれぞれ示す。 臨床試験（第I期）における被験薬の投与によるムコ多糖症I型の患者の尿に含まれるデルマタン硫酸の濃度の変化を示す図。グラフが被験薬投与前の値，右側が被験薬投与後の値をそれぞれ示す。縦軸はデルマタン硫酸の量（μg/ mgクレアチニン）を，グラフ上の縦線はSDバーをそれぞれ示す。 臨床試験（第II期）第一試験における被験薬の投与によるムコ多糖症I型の患者の脳脊髄液に含まれるヘパラン硫酸の濃度の変化を示す図。×及び◇はそれぞれの患者におけるヘパラン硫酸の濃度を示す。縦軸はヘパラン硫酸の濃度（ng/mL）を，点線は非ムコ多糖症I型患者の脳脊髄液に含まれるヘパラン硫酸の濃度の平均値をそれぞれ示す。 臨床試験（第II期）第一試験における被験薬の投与によるムコ多糖症I型の患者の脳脊髄液に含まれるデルマタン硫酸の濃度の変化を示す図。×及び◇はそれぞれの患者におけるデルマタン硫酸の濃度を示す。縦軸はデルマタン硫酸の濃度（ng/mL）を示す。 臨床試験（第II期）第二試験における被験薬の投与によるムコ多糖症I型の患者の脳脊髄液に含まれるヘパラン硫酸の濃度の変化を示す図。白塗りの○，△及び□は2.0 mg/kg体重投与群におけるそれぞれの患者におけるヘパラン硫酸の濃度を示し，黒塗りの●，▲及び■は4.0 mg/kg体重投与群におけるそれぞれの患者におけるヘパラン硫酸の濃度を示す。縦軸はヘパラン硫酸の濃度（ng/mL）を，点線は非ムコ多糖症I型患者の脳脊髄液に含まれるヘパラン硫酸の濃度の平均値をそれぞれ示す。 臨床試験（第II期）第二試験における被験薬の投与によるムコ多糖症I型の患者の脳脊髄液に含まれるデルマタン硫酸の濃度の変化を示す図。白塗りの○，△及び□は2.0 mg/kg体重投与群におけるそれぞれの患者におけるデルマタン硫酸の濃度を示し，黒塗りの●，▲及び■は4.0 mg/kg体重投与群におけるそれぞれの患者におけるデルマタン硫酸の濃度を示す。縦軸はデルマタン硫酸の濃度（ng/mL）を示す。 臨床試験（第II期）第一試験における被験薬の投与によるムコ多糖症I型の患者の血清に含まれるヘパラン硫酸の濃度の変化を示す図。×及び◇はそれぞれの患者におけるヘパラン硫酸の濃度を示す。縦軸はヘパラン硫酸の濃度（ng/mL）を示す。 臨床試験（第II期）第一試験における被験薬の投与によるムコ多糖症I型の患者の血清に含まれるデルマタン硫酸の濃度の変化を示す図。×及び◇はそれぞれの患者におけるデルマタン硫酸の濃度を示す。縦軸はデルマタン硫酸の濃度（ng/mL）を示す。 臨床試験（第II期）第二試験における被験薬の投与によるムコ多糖症I型の患者の血清に含まれるヘパラン硫酸の濃度の変化を示す図。白塗りの○，△及び□は2.0 mg/kg体重投与群におけるそれぞれの患者におけるヘパラン硫酸の濃度を示し，黒塗りの●，▲及び■は4.0 mg/kg体重投与群におけるそれぞれの患者におけるヘパラン硫酸の濃度を示す。縦軸はヘパラン硫酸の濃度（ng/mL）を示す。 臨床試験（第II期）第二試験における被験薬の投与によるムコ多糖症I型の患者の血清に含まれるデルマタン硫酸の濃度の変化を示す図。白塗りの○，△及び□は2.0 mg/kg体重投与群におけるそれぞれの患者におけるデルマタン硫酸の濃度を示し，黒塗りの●，▲及び■は4.0 mg/kg体重投与群におけるそれぞれの患者におけるデルマタン硫酸の濃度を示す。縦軸はデルマタン硫酸の濃度（ng/mL）を示す。
　ヒトの血液脳関門（Blood Brain Barrier）を形成する脳毛細血管内皮細胞（脳血管内皮細胞）の表面にはトランスフェリン受容体（hTfR）が存在する。これを抗原として認識できる抗体（抗hTfR抗体）は，hTfRに結合できる。そして脳毛細血管内皮細胞表面のhTfRに結合した抗体は，hTfRを介したトランスサイトーシスにより血液脳関門を通過して中枢神経系に到達することができる。従って，この抗体にヒトα－Ｌ－イズロニダーゼ（hIDUA）を結合させることにより，hIDUAを中枢神経系にまで到達させることができる。
　本発明において，抗hTfR抗体はFabであることが好ましい。ここでFabとは，可変領域とCL領域（軽鎖の定常領域）を含む1本の軽鎖と，可変領域とCH1領域（重鎖の定常領域の部分1）を含む1本の重鎖が，それぞれに存在するシステイン残基同士でジスルフィド結合により結合した分子のことをいう。Fabにおいて，重鎖は，可変領域とCH1領域（重鎖の定常領域の部分1）に加えて，更にヒンジ部の一部を含んでもよいが，この場合のヒンジ部は，ヒンジ部に存在して抗体の重鎖どうしを結合するシステイン残基を欠くものである。Fabにおいて，軽鎖と重鎖とは，軽鎖の定常領域（CL領域）に存在するシステイン残基と，重鎖の定常領域（CH1領域）又はヒンジ部に存在するシステイン残基との間で形成されるジスルフィド結合により結合する。Fabを形成する重鎖のことをFab重鎖という。Fabは，ヒンジ部に存在して抗体の重鎖どうしを結合するシステイン残基を欠いているので，1本の軽鎖と1本の重鎖とからなる。Fabを構成する軽鎖は，可変領域とCL領域を含む。Fabを構成する重鎖は，可変領域とCH1領域からなるものであってもよく，可変領域，CH1領域に加えてヒンジ部の一部を含むものであってもよい。但しこの場合，ヒンジ部で2本の重鎖の間でジスルフィド結合が形成されないように，ヒンジ部は重鎖間を結合するシステイン残基を含まないように選択される。
　本発明において，抗hTfR抗体はヒト抗体又はヒト化抗体であることが好ましい。ヒト抗体は，その全体がヒト由来の遺伝子にコードされる抗体のことをいう。但し，遺伝子の発現効率を上昇させる等の目的で，元のヒトの遺伝子に変異を加えた遺伝子にコードされる抗体も，ヒト抗体である。また，ヒト抗体をコードする２つ以上の遺伝子を組み合わせて，ある一つのヒト抗体の一部を，他のヒト抗体の一部に置き換えた抗体も，ヒト抗体である。ヒト抗体は，免疫グロブリン軽鎖の3箇所の相補性決定領域（CDR）と免疫グロブリン重鎖の3箇所の相補性決定領域（CDR）を有する。免疫グロブリン軽鎖の3箇所のCDRは，N末端側にあるものから順にCDR1，CDR2及びCDR3という。免疫グロブリン重鎖の3箇所のCDRは，N末端側にあるものから順にCDR1，CDR2及びCDR3という。ある一つのヒト抗体のCDRを，その他のヒト抗体のCDRに置き換えることにより，ヒト抗体の抗原特異性，親和性等を改変した抗体も，ヒト抗体である。
　本発明において，「ヒト化抗体」の語は，可変領域の一部（例えば，特にCDRの全部又は一部）のアミノ酸配列がヒト以外の哺乳動物由来であり，それ以外の領域がヒト由来である抗体のことをいう。例えば，ヒト化抗体として，ヒト抗体を構成する免疫グロブリン軽鎖の3箇所の相補性決定領域（CDR）と免疫グロブリン重鎖の3箇所の相補性決定領域（CDR）を，他の哺乳動物のCDRによって置き換えることにより作製された抗体が挙げられる。ヒト抗体の適切な位置に移植されるCDRの由来となる他の哺乳動物の生物種は，ヒト以外の哺乳動物である限り特に限定はないが，好ましくは，マウス，ラット，ウサギ，ウマ，又はヒト以外の霊長類であり，より好ましくはマウス及びラットであり，例えばマウスである。
　ヒト抗体及びヒト化抗体の軽鎖には，λ鎖とκ鎖がある。抗体を構成する軽鎖は，λ鎖とκ鎖のいずれであってもよい。また，ヒト抗体及びヒト化抗体の重鎖には，γ鎖，μ鎖，α鎖，σ鎖及びε鎖があり，それぞれ，IgG，IgM，IgA，IgD及びIgEに対応している。抗体を構成する重鎖は，γ鎖，μ鎖，α鎖，σ鎖及びε鎖のいずれであってもよいが，好ましくはγ鎖である。更に，抗体の重鎖のγ鎖には，γ1鎖，γ2鎖，γ3鎖及びγ4鎖があり，それぞれ，IgG1，IgG2，IgG3及びIgG4に対応している。抗体を構成する重鎖がγ鎖である場合，そのγ鎖は，γ1鎖，γ2鎖，γ3鎖及びγ4鎖のいずれであってもよいが，好ましくは，γ1鎖又はγ4鎖である。抗体が，ヒト化抗体又はヒト抗体であり，且つIgGである場合，その抗体の軽鎖はλ鎖とκ鎖のいずれでもあってもよく，その抗体の重鎖は，γ1鎖，γ2鎖，γ3鎖又はγ4鎖のいずれであってもよいが，好ましくは，γ1鎖又はγ4鎖である。例えば，好ましい抗体の一つの態様として，軽鎖がκ鎖であり重鎖がγ１鎖であるもの，軽鎖がλ鎖であり重鎖がγ1鎖であるものが挙げられる。
　本発明の一態様において，抗hTfR抗体は，軽鎖の可変領域に，CDR1として配列番号４又は配列番号５のアミノ酸配列を，CDR2として配列番号６又は配列番号７のアミノ酸配列若しくはアミノ酸配列Lys-Val-Serを，及びCDR3として配列番号８のアミノ酸配列を，それぞれ含んでなり，重鎖の可変領域に，CDR1として配列番号９又は１０のアミノ酸配列を，CDR2として配列番号１１又は１２のアミノ酸配列を，及びCDR3として配列番号１３又は１４のアミノ酸配列を，それぞれ含んでなるものである。更に，抗ヒトトランスフェリン受容体抗体は，例えば，重鎖のフレームワーク領域3に，配列番号１５のアミノ酸配列を含むものである。
　本発明の一態様において，抗hTfR抗体は，重鎖の可変領域が配列番号１６のアミノ酸配列を含んでなり，また，軽鎖の可変領域が配列番号１７のアミノ酸配列を含んでなる。
　本発明の好適な一態様において，抗hTfR抗体は軽鎖が配列番号１８のアミノ酸配列を含んでなるものであり，重鎖が配列番号１９のアミノ酸配列を含んでなるFab重鎖であるFabである。
　本発明の一態様において，抗hTfR抗体は，各CDRのアミノ酸配列が保存されている限り，可変領域又は可変領域を含むその他の部分のアミノ酸配列に，hTfRへの親和性が保持される限り，置換，欠失，付加等の変異を加えたものであってもよい。抗hTfR抗体の可変領域のアミノ酸配列のアミノ酸を他のアミノ酸へ置換させる場合，置換させるアミノ酸の個数は，好ましくは1～10個であり，より好ましくは1～5個であり，更に好ましくは1～3個であり，更により好ましくは1～2個である。抗hTfR抗体の可変領域のアミノ酸配列中のアミノ酸を欠失させる場合，欠失させるアミノ酸の個数は，好ましくは1～10個であり，より好ましくは1～5個であり，更に好ましくは1～3個であり，更により好ましくは1～2個である。また，これらアミノ酸の置換と欠失を組み合わせた変異を加えることもできる。抗hTfR抗体の可変領域にアミノ酸を付加させる場合，抗hTfR抗体の可変領域のアミノ酸配列中又はＮ末端側若しくはＣ末端側に，好ましくは1～10個，より好ましくは1～5個，更に好ましくは1～3個，更により好ましくは1～2個のアミノ酸が付加される。これらアミノ酸の付加，置換及び欠失を組み合わせた変異を加えることもできる。変異を加えた抗hTfR抗体の可変領域のアミノ酸配列は，元の抗hTfR抗体の可変領域のアミノ酸配列と，好ましくは80%以上の同一性を有し，より好ましくは85%以上の同一性を示し，更に好ましくは90%以上の同一性を示し，更により好ましくは95%以上の同一性を示し，更により好ましくは99%以上の同一性を示す。可変領域を含むその他の部分のアミノ酸配列に変異を加える場合も同様である。また，変異が加えられた抗hTfR抗体のhTfRに対するKd値は，元の抗hTfR抗体のそれと比較して，50倍以下の値であることが望ましく，例えば10倍以下の値であることが好ましい。
　本発明の一態様において，抗hTfR抗体は，hTfRの細胞外領域及びサルTfRの細胞外領域の双方に対して親和性を有するものである。その場合の，抗hTfR抗体のhTfRの細胞外領域との解離定数は1×10-10 M以下であり，サルTfRの細胞外領域との解離定数は5×10-9 M以下のものであることが好ましい。
　本発明の一態様において，「ヒトα－Ｌ－イズロニダーゼ」又は「hIDUA」の語は，特に野生型のhIDUAと同一のアミノ酸配列を有するhIDUAのことをいう。野生型のhIDUAは，配列番号２０で示される628個のアミノ酸から構成されるアミノ酸配列を有する。配列番号２１で示される626個のアミノ酸から構成されるアミノ酸配列を有するhIDUAのバリアントもhIDUAである。但し，これらに限らず，IDUA活性を有するものである限り，野生型のhIDUAのアミノ酸配列に置換，欠失，付加等の変異を加えたものもhIDUAに含まれる。hIDUAのアミノ酸配列のアミノ酸を他のアミノ酸へ置換させる場合，置換させるアミノ酸の個数は，好ましくは1～10個であり，より好ましくは1～5個であり，更に好ましくは1～3個であり，更により好ましくは1～2個である。hIDUAのアミノ酸配列中のアミノ酸を欠失させる場合，欠失させるアミノ酸の個数は，好ましくは1～10個であり，より好ましくは1～5個であり，更に好ましくは1～3個であり，更により好ましくは1～2個である。また，これらアミノ酸の置換と欠失を組み合わせた変異を加えることもできる。hIDUAにアミノ酸を付加させる場合，hIDUAのアミノ酸配列中又はＮ末端側若しくはＣ末端側に，好ましくは1～10個，より好ましくは1～5個，更に好ましくは1～3個，更により好ましくは1～2個のアミノ酸が付加される。これらアミノ酸の付加，置換及び欠失を組み合わせた変異を加えることもできる。変異を加えたhIDUAのアミノ酸配列は，元のhIDUAのアミノ酸配列と，好ましくは80%以上の同一性を有し，より好ましくは85%以上の同一性を示し，更に好ましくは90%以上の同一性を示し，更により好ましくは95%以上の同一性を示し，更により好ましくは99%以上の同一性を示す。
　本発明において，hIDUAがIDUA活性を有するというときは，hIDUAを抗体と融合させて融合蛋白質としたときに，天然型のhIDUAが本来有する活性に対して，3%以上の活性を有していることをいう。但し，その活性は，天然型のhIDUAが本来有する活性に対して，10%以上であることが好ましく，20%以上であることがより好ましく，50%以上であることが更に好ましく，80%以上であることが更により好ましい。抗体と融合させたhIDUAが変異を加えたものである場合も同様である。抗体は，例えば抗hTfR抗体である。
　なお本発明において，元の蛋白質（抗体を含む）のアミノ酸配列と変異を加えた蛋白質のアミノ酸配列との同一性は，周知の同一性計算アルゴリズムを用いて容易に算出することができる。例えば，そのようなアルゴリズムとして，BLAST(Altschul SF. J Mol .Biol. 215. 403-10， (1990))，Pearson及びLipmanの類似性検索法(Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 85. 2444 (1988))，Smith及びWatermanの局所同一性アルゴリズム(Adv. Appl. Math. 2. 482-9(1981))等がある。
　また，元の蛋白質（抗体を含む）のアミノ酸配列中のアミノ酸の他のアミノ酸への置換は，例えば，アミノ酸のそれらの側鎖及び化学的性質で関連性のあるアミノ酸ファミリー内で起こるものである。このようなアミノ酸ファミリー内での置換は，元の蛋白質の機能に大きな変化をもたらさない（即ち，保存的アミノ酸置換である）ことが予測される。かかるアミノ酸ファミリーとしては，例えば以下のものがある：
（１）酸性アミノ酸であるアスパラギン酸とグルタミン酸，
（２）塩基性アミノ酸であるヒスチジン，リシン，及びアルギニン，
（３）芳香族アミン酸であるフェニルアラニン，チロシン，及びトリプトファン，
（４）水酸基を有するアミノ酸（ヒドロキシアミノ酸）であるセリンとトレオニン，
（５）疎水性アミノ酸であるメチオニン，アラニン，バリン，ロイシン，及びイソロイシン，
（６）中性の親水性アミノ酸であるシステイン，セリン，トレオニン，アスパラギン，及びグルタミン，
（７）ペプチド鎖の配向に影響するアミノ酸であるグリシンとプロリン，
（８）アミド型アミノ酸（極性アミノ酸）であるアスパラギンとグルタミン，
（９）脂肪族アミノ酸である，アラニン，ロイシン，イソロイシン，及びバリン，
（１０）側鎖の小さいアミノ酸であるアラニン，グリシン，セリン，及びトレオニン，
（１１）側鎖の特に小さいアミノ酸であるアラニンとグリシン，
（１２）分岐鎖を有するアミノ酸であるバリン，ロイシン，及びイソロイシン。
　本発明の一態様において，抗hTfR抗体とhIDUAとの融合蛋白質というときは，抗hTfR抗体とhIDUAとを，ペプチドリンカーを介して，又は直接に結合させた物質のことをいう。例えば，抗hTfR抗体とhIDUAとの融合蛋白質，抗体の重鎖又は軽鎖のC末端又はN末端に，リンカーを介して又は直接に，hIDUAのN末端又はC末端をペプチド結合によりそれぞれ結合させた物質である。
　hTfR抗体の軽鎖のC末端にhIDUAを結合させたタイプの融合蛋白質は，抗体が，軽鎖の可変領域の全て又は一部を含むアミノ酸配列と，重鎖の可変領域の全て又は一部を含むアミノ酸配列とを含むもの（例えばFab重鎖）であり，hIDUAが，この抗体の軽鎖のC末端に結合したものである。ここで抗体の軽鎖とhIDUAとは，直接結合してもよく，リンカーを介して結合してもよい。
　hTfR抗体の重鎖のC末端にhIDUAを結合させたタイプの融合蛋白質は，抗体が，軽鎖の可変領域の全て又は一部を含むアミノ酸配列と，重鎖の可変領域の全て又は一部を含むアミノ酸配列とを含むもの（例えばFab重鎖）であり，hIDUAが，この抗体の重鎖のC末端に結合したものである。ここで抗体の重鎖とhIDUAとは，直接結合してもよく，リンカーを介して結合してもよい。
　hTfR抗体の軽鎖のN末端にhIDUAを結合させたタイプの融合蛋白質は，抗体が，軽鎖の可変領域の全て又は一部を含むアミノ酸配列と，重鎖の可変領域の全て又は一部を含むアミノ酸配列とを含むもの（例えばFab重鎖）であり，hIDUAが，この抗体の軽鎖のN末端に結合したものである。ここで抗体の軽鎖とhIDUAとは，直接結合してもよく，リンカーを介して結合してもよい。
　hTfR抗体の重鎖のN末端にhIDUAを結合させたタイプの融合蛋白質は，抗体が，軽鎖の可変領域の全て又は一部を含むアミノ酸配列と，重鎖の可変領域の全て又は一部を含むアミノ酸配列とを含むもの（例えばFab重鎖）であり，hIDUAが，この抗体の重鎖のN末端に結合したものである。ここで抗体の重鎖とhIDUAとは，直接結合してもよく，リンカーを介して結合してもよい。
　このときhTfR抗体とhIDUAとの間にリンカーを配置する場合，その配列は，好ましくは1～50個，より好ましくは1～20個，更に好ましくは10～17個，更により好ましくは13～17個，例えば15個のアミノ酸から構成されるものである。そのようなリンカーは，これにより連結された抗体がhTfRとの親和性を保持し，且つ当該リンカーにより連結されたhIDUAが，生理的条件下で当該蛋白質の生理活性を発揮できる限り，そのアミノ酸配列に限定はないが，好ましくは，グリシンとセリンから構成されるものであり，例えば，グリシン又はセリンのいずれか1個のアミノ酸からなるもの，アミノ酸配列Gly-Ser，アミノ酸配列Gly-Gly-Ser，配列番号１で示されるアミノ酸配列，配列番号２で示されるアミノ酸配列，配列番号３で示されるアミノ酸配列，又はこれらのアミノ酸配列が1～10個，あるいは2～5個連続してなる1～150個のアミノ酸からなる配列，2～17個，2～10個，10～40個，20～34個，23～31個，25～29個のアミノ酸からなる配列等を有するものである。例えば，アミノ酸配列Gly-Serからなるもの，配列番号３で示されるアミノ酸配列を有するものはリンカーとして好適に用いることができる。
　本発明における抗hTfR抗体とhIDUAとの融合蛋白質の好適例として，抗hTfR抗体の軽鎖が配列番号１８のアミノ酸配列を含んでなり，抗hTfR抗体の重鎖が配列番号１９のアミノ酸配列を含んでなり，該重鎖が，そのC末端で，配列番号３のアミノ酸配列のリンカーを介して，配列番号２０又は配列番号２１のアミノ酸配列を有するヒトα－Ｌ－イズロニダーゼと結合しているものが挙げられる。
　本発明における抗hTfR抗体とhIDUAとの融合蛋白質の更なる好適例として，抗hTfR抗体の軽鎖が配列番号１８のアミノ酸配列を含んでなり，抗hTfR抗体の重鎖が配列番号１９のアミノ酸配列を含んでなり，該重鎖が，そのC末端で，配列番号３のアミノ酸配列のリンカーを介して，配列番号２０のアミノ酸配列を有するヒトα－Ｌ－イズロニダーゼと結合し，それにより配列番号２４のアミノ酸配列を形成しているものが挙げられる。
　本発明における抗hTfR抗体とhIDUAとの融合蛋白質の更なる好適例として，抗hTfR抗体の軽鎖が配列番号１８のアミノ酸配列からなり，抗hTfR抗体の重鎖が配列番号１９のアミノ酸配列を含んでなり，該重鎖が，そのC末端側で，配列番号３のアミノ酸配列のリンカーを介して，配列番号２０又は配列番号２１のアミノ酸配列を有するヒトα－Ｌ－イズロニダーゼと結合しているものが挙げられる。
　本発明における医薬組成物は，有効成分として抗hTfR抗体とhIDUAとの融合蛋白質を含むものである。当該医薬組成物は，凍結乾燥剤であってもよく水性液剤であってもよい。
　本発明の一実施形態における医薬組成物は，中性塩，二糖類，非イオン性界面活性剤，及び緩衝剤の少なくとも一つを含むものである。当該医薬品は，非イオン性界面活性剤として，ポリソルベート及び／又はポロキサマーを更に含んでもよい。
　医薬組成物に含まれる非イオン性界面活性剤には，薬剤学的に許容し得るものである限り特に限定はないが，かかる非イオン性界面活性剤として，ポリソルベート及びポロキサマーが好適である。ここで，ポリソルベートとしては，ポリソルベート20，ポリソルベート80が例示できる。また，ポロキサマーとしては，ポリオキシエチレン(54)ポリオキシプロピレン(39)グリコール，ポリオキシエチレン(196)ポリオキシプロピレン(67)グリコール，ポリオキシエチレン(42)ポリオキシプロピレン(67)グリコール，ポリオキシエチレン(3)ポリオキシプロピレン(17)グリコール，ポリオキシエチレン(20)ポリオキシプロピレン(20)グリコール，ポリオキシエチレン(120)ポリオキシプロピレン(40)グリコールが例示でき，ポリオキシエチレン(160)ポリオキシプロピレン(30)グリコールが特に好適である。ポリオキシエチレン(160)ポリオキシプロピレン(30)グリコールはポロキサマー188と同義である。
　医薬組成物は２種の非イオン性界面活性剤を含むものであってもよい。医薬組成物が２種の非イオン性界面活性剤を含有するものであるときの，好ましい非イオン性界面活性剤の組み合わせとしては，一方がポリソルベートであり他方がポロキサマーであるものである。例えば，ポリソルベート２０とポロキサマー１８８，ポリソルベート８０とポロキサマー１８８の組み合わせが好ましく，ポリソルベート８０とポロキサマー１８８の組み合わせが特に好ましい。これらの組み合わせに更に他の種類のポリソルベート，ポロキサマー等を組み合わせることもできる。
　医薬組成物が水性液剤である場合に，当該水性液剤が，2種の非イオン性界面活性剤としてポリソルベートとポロキサマーを含有する場合の，ポリソルベートの濃度は，好ましくは0.005～1.5 mg/mLであり，より好ましくは0.025～1.0 mg/mLであり，更に好ましくは0.05～1.0 mg/mLであり，更により好ましくは0.05～0.15 mg/mLであり，例えば，0.075 mg/mLである。また，このときのポロキサマーの濃度は，好ましくは0.1～0.6 mg/mLであり，より好ましくは0.2～0.5 mg/mLであり，更に好ましくは0.25～0.45 mg/mLであり，例えば，0.325mg/mLである。
　医薬組成物が水性液剤である場合に，当該水性液剤が，2種の非イオン性界面活性剤としてポリソルベート80とポロキサマー188を含有する場合の，ポリソルベート80の濃度は，好ましくは0.005～1.5 mg/mLであり，より好ましくは0.025～1.0 mg/mLであり，更に好ましくは0.05～1.0 mg/mLであり，例えば，0.075 mg/mLである。また，このときのポロキサマー188の濃度は，好ましくは0.1～0.6 mg/mLであり，より好ましくは0.2～0.5 mg/mLであり，更に好ましくは0.25～0.45 mg/mLであり，例えば，0.325 mg/mLである。例えば，ポリソルベート80の濃度が0.05～1.0 mg/mLであり，ポロキサマー188の濃度が0.25～0.45 mg/mLである。更に例えば，ポリソルベート80の濃度が0.075 mg/mLであり，ポロキサマー188の濃度が0.325 mg/mLである。
　医薬組成物に含まれる中性塩には，薬剤学的に許容し得るものである限り特に限定はないが，かかる中性塩としては，塩化ナトリウム，塩化マグネシウムが好適であり，特に塩化ナトリウムが好適である。
　医薬組成物に含まれる二糖類には，薬剤学的に許容し得るものである限り特に限定はないが，かかる二糖類としては，トレハロース，スクロース，マルトース，乳糖又はこれらを組み合わせたものが好適であり，特にスクロースが好適である。
　医薬組成物が水性液剤である場合の，当該水性液剤における二糖類の濃度は，好ましくは50～100 mg/mLであり，より好ましくは55～95 mg/mLであり，更に好ましくは60～90 mg/mLであり，例えば，75 mg/mLである。
　医薬組成物に含まれる緩衝剤には，薬剤学的に許容し得るものである限り特に限定はないが，クエン酸緩衝剤，リン酸緩衝剤，グリシン緩衝剤，ヒスチジン緩衝剤，炭酸緩衝剤，酢酸緩衝剤，又はこれらを組み合わせたものが好ましい。医薬組成物が水性液剤である場合の，当該水性液剤に含まれる緩衝剤の濃度は，好ましくは3～30 mMであり，より好ましくは10～30 mMであり，更に好ましくは15～25 mMであり，例えば20 mMである。水性液剤において緩衝剤としてクエン酸緩衝剤が使用される場合，水性液剤に含まれるクエン酸緩衝剤の濃度は，好ましくは3～30 mMであり，より好ましくは10～30 mMであり，更に好ましくは15～25 mMであり，例えば20 mMである。また，緩衝剤によって調整される水性液剤のpHは，好ましくは4.5～7.0であり，より好ましくは4.5～6.5であり，更に好ましくは5.0～6.0であり，更により好ましくは5.2～5.8であり，例えば5.5である。また，クエン酸緩衝剤によって調整される水性液剤のpHは，好ましくは4.5～7.0であり，より好ましくは4.5～6.5であり，更に好ましくは5.0～6.0であり，更により好ましくは5.2～5.8であり，例えば5.5である。
　水性液剤である医薬組成物の好適な組成として，以下の（１）～（３）が挙げられる：
（１）該融合蛋白質の濃度が1～10 mg/mLであり，該中性塩の濃度が0.3～1.2 mg/mLであり，該二糖類の濃度が50～100 mg/mLであり，該緩衝剤の濃度が10～30 mMであり，該ポリソルベートの濃度が0.005～1.5 mg/mLであり，該ポロキサマーの濃度が0.1～0.6 mg/mLであるもの；
（２）該融合蛋白質の濃度が2～8 mg/mLであり，該中性塩の濃度が0.5～1.0 mg/mLであり，該二糖類の濃度が55～95 mg/mLであり，該緩衝剤の濃度が15～25 mMであり，該ポリソルベートの濃度が0.05～1.0 mg/mLであり，該ポロキサマーの濃度が0.25～0.45 mg/mLであるもの；及び
（３）該融合蛋白質の濃度が4～6 mg/mLであり，該中性塩の濃度が0.7～0.9 mg/mLであり，該二糖類の濃度が60～90 mg/mLであり，該緩衝剤の濃度が15～25 mMであり，該ポリソルベートの濃度が0.05～0.15 mg/mLであり，該ポロキサマーの濃度が0.25～0.45 mg/mLであるもの。
　なお，上記（１）～（３）の水性液剤のpHは，例えば4.5～6.5，5.0～6.0，又は5.2～5.8に調整される。
　凍結乾燥剤である医薬組成物の好適な組成として，以下の（１）～（３）が挙げられる：
（１）純水で溶解したときに，該融合蛋白質の濃度が1～10 mg/mLとなり，該中性塩の濃度が0.3～1.2 mg/mLとなり，該二糖類の濃度が50～100 mg/mLとなり，該緩衝剤の濃度が10～30 mMとなり，該ポリソルベートの濃度が0.005～1.5 mg/mLとなり，及び該ポロキサマーの濃度が0.1～0.6 mg/mLとなるもの；
（２）純水で溶解したときに，該融合蛋白質の濃度が2～8 mg/mLとなり，該中性塩の濃度が0.5～1.0 mg/mLとなり，該二糖類の濃度が55～95 mg/mLとなり，該緩衝剤の濃度が15～25 mMとなり，該ポリソルベートの濃度が0.05～1.0mg/mLとなり，及び該ポロキサマーの濃度が0.25～0.45 mg/mLとなるもの；及び
（３）純水で溶解したときの該中性塩の該融合蛋白質の濃度が4～6 mg/mLとなり，濃度が0.7～0.9 mg/mLとなり，該二糖類の濃度が60～90 mg/mLとなり，該緩衝剤の濃度が15～25 mMとなり，該ポリソルベートの濃度が0.05～0.15 mg/mLとなり，及び該ポロキサマーの濃度が0.25～0.45 mg/mLとなるもの。
　なお，上記（１）～（３）の凍結乾燥剤を純水で溶解したときのpHは，例えば4.5～6.5，5.0～6.0，又は5.2～5.8である。
　水性液剤である医薬組成物は，バイアルに充填した形態としてもよく，注射器に予め充填したものであるプレフィルド型の製剤として供給することもできる。水性医薬組成物を充填するための注射器，バイアル等の容器の材質に特に限定はないが，ほう珪酸ガラス製のものが好適であり，この他，環状オレフィンとオレフィンの共重合体であるシクロオレフィンコポリマー，シクロオレフィン類開環重合体又は，シクロオレフィン類開環重合体に水素添加したもの等の疎水性樹脂製のものも好適である。
　凍結乾燥剤である医薬組成物は，これを溶解するための専用の溶液と共にキットとして供給することもできる。凍結乾燥剤は，例えば，使用前に専用の溶液，純水等で溶解して用いられる。凍結乾燥製剤を封入，充填等するためのシリンジ及びバイアル等の容器の材質に特に限定はないが，ほう珪酸ガラス製のものが好適であり，この他，環状オレフィンとオレフィンの共重合体であるシクロオレフィンコポリマー，シクロオレフィン類開環重合体又は，シクロオレフィン類開環重合体に水素添加したもの等の疎水性樹脂製のものも好適である。
　医薬組成物は，水性液剤又は凍結乾燥剤の何れの形態であっても，通常は，生理食塩水等の入った透析バックに添加し希釈して，患者に注入される。
　本発明の一実施形態において，医薬組成物はムコ多糖症I型の治療剤として用いられるものである。ムコ多糖症I型は，重症型のハーラー症候群（MPS IH），中間型のハーラー－シャイエ症候群（MPS IH-S），及び軽症型のシャイエ症候群（MPS IS）に分類されるが，当該医薬組成物は何れのタイプのムコ多糖症I型にも使用することができる。
　ムコ多糖症I型は，ヘパラン硫酸やデルマタン硫酸のようなグリコサミノグリカン（GAG）の分子内に存在する非硫酸化α-L-iduronosidic結合を加水分解する活性を有するhIDUAを遺伝的に一部又は全て欠損することを原因とする。患者は，ムコ多糖症I型のhIDUAの欠損により，脳を含む全身の組織にヘパラン硫酸及びデルマタン硫酸が異常に蓄積し，骨格の変形，重症の精神遅滞等の諸症状を呈する。
　医薬組成物の有効成分である抗hTfR抗体とhIDUAとの融合蛋白質は，BBBを通過して脳組織内においてIDUA活性を発揮し，ヘパラン硫酸やデルマタン硫酸を分解することができるので，当該医薬組成物は，特に中枢神経系に障害を有するムコ多糖症I型の患者の酵素補充療法に用いる治療薬として有効である。
　本発明の一実施形態において，非経口経路で，例えば静脈内注入によりムコ多糖症I型の患者に投与されるものであり，例えば，点滴により静脈内注入されるものである。
　当該医薬組成物は0.1～10 mg/kg 体重の用量で，例えば，1～10 mg/kg 体重，1～6 mg/kg 体重，2～6 mg/kg 体重，2 mg/kg 体重，4 mg/kg 体重，6 mg/kg 体重，又は8 mg/kg 体重の用量で，静脈内注入によりムコ多糖症I型の患者に投与される。当該医薬組成物を点滴により静脈内注入する場合，融合蛋白質が1時間当たり0.33 mg～200 mgの量で注入されるように投薬速度が調整される。通常，投薬に要する時間は30分～4時間であり，例えば3時間である。
　ムコ多糖症I型は遺伝病であり，投薬は対処療法であるので，当該医薬組成物は継続して投与される必要がある。当該医薬組成物は，好ましくは3～21日，より好ましくは5～14日の間隔を置いて投与され，例えば7日，14日等の間隔を置いて投与される。当該医薬組成物の投与継続期間に特に制限はないが，好ましくは少なくとも1ヶ月，より好ましくは少なくとも3ヶ月である。当該医薬組成物は生涯に亘って投与されることが想定される。
　当該医薬組成物の投与量は，初回の投与は少量に留め，その後漸増させることもできる。有効成分である抗hTfR抗体とhIDUAとの融合蛋白質は，患者にとって異物であるので，免疫反応等の副反応が生ずるおそれがある。投与量を漸増させる方法を採用することによって，患者に急激な副反応が生じるおそれを低減できる。
　投与量を漸増させる方法を採用する場合の投与スケジュールとしては，例えば以下の（１）～（８）が挙げられる。
（１）初回は0.1～2 mg/kg体重の用量で投与し，その後，初回の用量と比較して，用量を増加させる。
（２）初回は0.1～2 mg/kg体重の用量で投与し，その後，2 mg/kg体重，4 mg/kg体重，又は6 mg/kg体重にまで用量を増加させる。
（３）初回は0.1～0.5 mg/kg体重の用量で投与し，2回目及び3回目は1～2 mg/kg体重の用量で投与し，4回目以降は4 mg/kg体重を維持用量として投与する。
（４）初回は0.1～0.2 mg/kg体重の用量で投与し，2回目は2 mg/kg体重の用量で投与し，3回目以降は4 mg/kg体重の用量（維持用量）で投与する。
（５）初回は0.1 mg/kg体重の用量で投与し，2回目以降は2 mg/kg体重の用量（維持用量）で投与する。
（６）初回は0.1 mg/kg体重の用量で投与し，2回目は1 mg/kg体重，3回目は2 mg/kg体重の用量で投与し，4回目以降は4 mg/kg体重の用量（維持用量）で投与する。
（７）初回は0.1 mg/kg体重の用量で投与し，2回目は2 mg/kg体重の用量で投与し，4回目以降は4 mg/kg体重の用量（維持用量）で投与する。
（８）初回は1.0 mg/kg体重の用量で投与し，2回目は2 mg/kg体重の用量で投与し，4回目以降は4 mg/kg体重の用量（維持用量）で投与する。
　当該医薬組成物の好適な用法用量としては，7日の間隔を置いて，少なくとも1ヶ月間，4 mg／kg体重の用量で，少なくとも1又は2時間，例えば，3時間かけて点滴により患者に静脈内注入される。
　当該医薬組成物は，上記の用法用量で患者に投与したときに，患者に重篤な有害事象を生じさせないものである。但し，免疫反応を抑制するため，医薬組成物は免疫抑制剤と併用させることもできる。併用できる免疫抑制剤に特に限定はなく，例えば，シクロフォスファミド等のアルキル化剤，アザチオプリン，ミコフェノール酸モフェチル，メトトレキサート，ミゾリビン等の代謝拮抗剤，シクロスポリン，タクロリムス等の細胞内シグナル伝達阻害剤が使用できる。
　当該医薬組成物をムコ多糖症I型の患者の酵素補充療法に用いる治療薬として用いる場合，当該医薬組成物の投与による効果は，例えば，投与の前後において患者の脳脊髄液（CSF），血清，及び／又は尿を採取し，これらにおけるヘパラン硫酸及び／又はデルマタン硫酸の濃度を測定することにより評価することができる。ヘパラン硫酸の中枢神経系への蓄積は中枢神経系の機能障害の原因となると考えられているので，脳脊髄液中のヘパラン硫酸の濃度の減少により，患者の中枢神経系の機能が改善することが予測される。ヘパラン硫酸及び／又はデルマタン硫酸の濃度の測定は，実施例に記載の方法で行うことができる。
　当該医薬組成物は，これをムコ多糖症Ｉ型の患者に投与したときに，投与後に該患者から採取された脳脊髄液に含まれるヘパラン硫酸の濃度が，該医薬組成物を最初に投与する前の患者から採取された脳脊髄液に含まれるヘパラン硫酸の濃度と比較して，減少するものである。投与後のヘパラン硫酸の濃度は，投与前のヘパラン硫酸の濃度と比較して，好ましくは2/3以下，1/2以下，又は1/3以下となる。
　例えば，当該医薬組成物は，これをムコ多糖症Ｉ型の患者に2 mg/kg 体重又は4 mg/kg 体重の用量で，もしくは初回は1.0 mg/kg体重の用量で投与し，2回目は2 mg/kg体重の用量で投与し，4回目以降は4 mg/kg体重の用量（維持用量）で投与量を漸増させて，7日の間隔を置いて，3ヶ月（12週間）投与することにより，患者の脳脊髄液（CSF），血清，及び／又は尿におけるヘパラン硫酸及び／又はデルマタン硫酸の濃度を減少させることができるものである。当該医薬組成物は，かかる用法用量で投与した場合に，投与後に該患者から採取された脳脊髄液に含まれるヘパラン硫酸の濃度が，該医薬組成物を最初に投与する前の患者から採取された脳脊髄液に含まれるヘパラン硫酸の濃度と比較して，好ましくは2/3以下になるものであり，より好ましくは1/2以下になるものであり，更に好ましくは1/3以下になるものである。あるいは，投与後に該患者から採取された脳脊髄液に含まれるヘパラン硫酸の濃度が，好ましくは2000 ng/mL以下になるものであり，より好ましくは1800 ng/mL以下になるものであり，更に好ましくは1600 ng/mL以下になるものであり，更に好ましくは1500 ng/mL以下になるものであり，更に好ましくは1400 ng/mL以下になるものである。
　当該医薬組成物は，これをムコ多糖症Ｉ型の患者に投与したときに，ムコ多糖症Ｉ型の患者の機能障害の改善が期待できるものである。期待できる機能障害の改善としては，より長時間の会話が可能になる，より多くの文字筆記が可能になる，活力が増大する，腰や膝などの関節痛が軽減する，歩行に伴う痛みや筋肉及び関節のこわばりが軽減する，缶を開けるなどの指先の運動やバスケットボールなどの全身運動を行うことがより容易に可能になる，言語能力が向上する，が挙げられるが，これらに限定されるものではない。
　以下，実施例を参照して本発明を更に詳細に説明するが，本発明が実施例に限定されることは意図しない。
〔実施例１〕ヒト化抗hTfR抗体-hIDUA融合蛋白質発現用ベクターの構築
　ヒト化抗hTfR抗体-hIDUA融合蛋白質発現用ベクターは，抗体部分として配列番号１８で示されるアミノ酸配列を有する軽鎖と，配列番号１９で示されるアミノ酸配列を有する重鎖のFab領域とをコードする遺伝子を用いて構築した。
〔pE-neoベクター及びpE-hygrベクターの構築〕
　pEF/myc/nucベクター（インビトロジェン社）を，KpnIとNcoIで消化し，EF-1プロモーター及びその第一イントロンを含む領域を切り出し，これをT4 DNA ポリメラーゼで平滑末端化処理した。別に，pCI-neo（インビトロジェン社）を，BglII及びEcoRIで消化して，CMVのエンハンサー／プロモーター及びイントロンを含む領域を切除した後に，T4 DNA ポリメラーゼで平滑末端化処理した。これに，上記のEF-1αプロモーター及びその第一イントロンを含む領域（平滑末端化処理後のもの）を挿入して，pE-neoベクターを構築した。pE-neoベクターを，SfiI及びBstXIで消化し，ネオマイシン耐性遺伝子を含む約1 kbpの領域を切除した。pcDNA3.1/Hygro(+)（インビトロジェン社）を鋳型にしてプライマーHyg-Sfi5'（配列番号２２）及びプライマーHyg-BstX3'（配列番号２３）を用いて，ＰＣＲ反応によりハイグロマイシン遺伝子を増幅した。増幅したハイグロマイシン遺伝子を，SfiI及びBstXIで消化し，上記のpE-neoベクターに挿入して，pE-hygrベクターを構築した。なお，pE-neoベクター及びpE-hygrベクターの構築は，特許文献（特第6279466号）を参考にして行った。
〔pE-IRES-GS-puroの構築〕
　発現ベクターpPGKIH（Miyahara M. et.al.， J. Biol. Chem. 275，613-618(2000) ）を制限酵素（XhoI及びBamHI）で消化し，マウス脳心筋炎ウイルス（EMCV）に由来する内部リボソーム結合部位（IRES），ハイグロマイシン耐性遺伝子（Hygr遺伝子）及びマウスホスホグリセリン酸キナーゼ（mPGK）のポリアデニル化領域（mPGKpA）を含むDNA断片を切り出した。このDNA断片をpBluescript SK(-) （Stratagene社）のXhoI及びBamHIサイト間に挿入し，これをpBSK(IRES-Hygr-mPGKpA)とした。
　pBSK(IRES-Hygr-mPGKpA)を鋳型とし，プライマーIRES5'（配列番号２４）及びプライマーIRES3'（配列番号２５）を用いて，PCRによりEMCVのIRESの一部を含むDNA断片を増幅させた。このDNA断片を制限酵素（XhoI及びHindIII）で消化し，pBSK(IRES-Hygr-mPGKpA) のXhoI及びHindIIIサイト間に挿入し，これをpBSK (NotI-IRES-Hygr-mPGKpA) とした。pBSK（NotI-IRES-Hygr-mPGKpA）を制限酵素（NotI及びBamHI）で消化し，pE-hygrベクターのNotI及びBamHIサイト間に挿入し，これをプラスミドpE-IRES-Hygrとした。
　発現ベクターpPGKIHをEcoRIで消化し，mPGKのプロモーター領域（mPGKp）を含む塩基配列よりなるDNA断片を切り出した。このDNA断片をpBluescript SK(-)（Stratagene社）のEcoRIサイトに挿入し，これをmPGK promoter/pBS(-)とした。mPGK promoter/pBS(-)を鋳型とし，プライマーmPGKP5'（配列番号２６）及びプライマーmPGKP3'（配列番号２７）を用いて，PCRによりmPGKのプロモーター領域（mPGKp）を含むDNA断片を増幅させた。このDNA断片を制限酵素（BglII及びEcoRI）で消化し，pCI-neo（Promega社）のBglII及びEcoRIサイト間に挿入し，これをpPGK-neoとした。pE-IRES-Hygrを制限酵素（NotI及びBamHI）で消化してDNA断片（IRES-Hygr）を切り出し，pPGK-neoのNotI及びBamHIサイト間に挿入し，これをpPGK-IRES-Hygrとした。
　CHO-K1細胞からcDNAを調製し，これを鋳型とし，プライマーGS5'（配列番号２８）及びプライマーGS3'（配列番号２９）を用いて，PCRによりGS遺伝子を含むDNA断片を増幅させた。このDNA断片を制限酵素（BalI及びBamHI）で消化し，pPGK-IRES-HygrのBalI及びBamHIサイト間に挿入し，これをpPGK-IRES-GS-ΔpolyAとした。
　pCAGIPuro（Miyahara M. et.al.， J. Biol. Chem. 275，613-618(2000)）を鋳型とし，プライマーpuro5'（配列番号３０）及びプライマーpuro3'（配列番号３１）を用いて，PCRによりピューロマイシン耐性遺伝子（puror遺伝子）を含むDNA断片を増幅させた。このDNA断片をpT7Blue T-Vector（Novagen社）に挿入し，これをpT7-puroとした。
pT7-puroを制限酵素（AflII及びBstXI）で消化し，発現ベクターpE-neoのAflII及びBstXIサイト間に挿入し，これをpE-puroとした。
　pE-puroを鋳型とし，プライマーSV40polyA5'（配列番号３２）及びプライマーSV40polyA3'（配列番号３３）を用いて，PCRによりSV40後期ポリアデニル化領域を含むDNA断片を増幅させた。このDNA断片を制限酵素（NotI及びHpaI）で消化し，発現ベクターpE-puroのNotI及びHpaIサイト間に挿入し，これをpE-puro（XhoI）とした。pPGK-IRES-GS-ΔpolyAを制限酵素（NotI及びXhoI）で消化し，IRES-GS領域を含むDNA断片を切り出し，これを発現ベクターpE-puro（XhoI）のNotI及びXhoIサイト間に挿入し，これをpE-IRES-GS-puroとした。なお，pE-IRES-GS-puroの構築は，特許文献（特第6279466号）を参考にして行った。
〔pE-mIRES-GS-puro (ΔE)の構築〕
　発現ベクターpE-IRES-GS-puroを鋳型とし，プライマーmIRES-GS5'（配列番号３４）及びプライマーmIRES-GS3'（配列番号３５）を用いて，PCRにより，EMCVのIRESからGSにかけての領域を増幅させ，EMCVのIRESの5'側から2番目に位置する開始コドン（ATG）に変異を加えて破壊したDNA断片を増幅させた。発現ベクターpE-IRES-GS-puroを鋳型として，このDNA断片と上記のプライマーIRES5'を用いて，PCRによりIRESからGSにかけての上記領域を含むDNA断片を増幅させた。このDNA断片を制限酵素（NotI及びPstI）で消化し，切り出されたDNA断片を，pBluescript SK(-)（Stratagene社）のNotI及びPstIサイト間に挿入し，これをmIRES/pBlueScript SK（-）とした。
　発現ベクターpE-IRES-GS-puroを，SphIで消化し，SV40エンハンサー領域を切除した。残りのDNA断片をセルフライゲーションし，これをpE-IRES-GS-puro(ΔE)とした。mIRES/pBlueScript SK(-)をNotI及びPstIで消化し，改変型IRES（mIRES）及びGS遺伝子の一部を含む領域を切り出した。別に，pE-IRES-GS-puro(ΔE)を，NotI及びPstIで消化して，上記のmIRES及びGS遺伝子の一部を含む領域を挿入して，pE-mIRES-GS-puro(ΔE)を構築した。
〔pEM-hygr(LC3)及びpE-mIRES-GSp-Fab-IDUAの構築〕
　β-Globin MAR (Matrix Attachment Region)，CMVエンハンサー，ヒトEF-1αプロモーター，MluI及びBamHI切断サイト，インターフェロンβ Marを含むDNA断片（CMVE-EF-1αp-IFNβMAR）を人工的に合成した（配列番号３６）。このDNA断片の5’側にはHindIII配列を，3’側にはにEcoRI配列を導入した。このDNA断片をHindIII及びEcoRIで消化し，pUC57ベクターのHindIII及びEcoRIサイト間に挿入し，これをJCR69 in pUC57とした。MluI及びBamHI切断サイト，IRES，ハイグロマイシン耐性遺伝子及びmPGKポリアデニレーションシグナルを含むDNA断片（IRES-HygroR-mPGKpA）を人工的に合成した（配列番号４０）。このDNA断片をJCR69 in pUC57のMluI及びBamHIサイトに挿入し，これをpEM hygroとした。
　配列番号１４で示されるアミノ酸配列を有するヒト化抗ｈＴｆＲ抗体の軽鎖の全長をコードする遺伝子を含むDNA断片（配列番号３７）を人工的に合成してpUC57-Ampに挿入し，これをJCR131 in pUC57-Ampとした。このDNA断片の5’側にはMluI配列を，3’側にはNotI配列を導入した。このプラスミドDNAをMluIとNotIで消化し，発現ベクターpEM hygroのMluI-NotI間に組み込んだ。得られたベクターをヒト化抗ｈＴｆＲ抗体の軽鎖の発現用ベクターであるpEM-hygr(LC3)とした。
　配列番号１９で示されるアミノ酸配列を有するヒト化抗ｈＴｆＲ抗体のFab重鎖のＣ末端側に，配列番号３で示されるリンカー配列を介して，配列番号２０で示されるアミノ酸配列を有するヒトIDUAが結合した，全体として配列番号３８で示されるアミノ酸配列を有する蛋白質をコードする遺伝子を含む配列番号３９で示される塩基配列を有するDNA断片を人工的に合成した。このDNA断片の5’側にはMluI配列を，3’側にはNotI配列を導入した。このDNA断片をMluI及びNotIで消化し，pE-mIRES-GS-puro(ΔE)のMluIとNotIの間に組み込んだ。得られたベクターをヒト化抗ｈＴｆＲ抗体のFab重鎖のC末端側にhIDUAを結合させた蛋白質の発現用ベクターであるpE-mIRES-GSp-Fab-IDUAとした。
〔実施例２〕ヒト化抗hTfR抗体-hIDUA融合蛋白質の高発現細胞株の作製
　CHO細胞（CHO-K1：American Type Culture Collectionから入手）を，下記の方法により，NEPA21（NEPAGENE社）を用いて，実施例１で構築したpEM-hygr(LC3)とpE-mIRES-GSp-Fab-IDUAを形質転換した。
　細胞の形質転換は概ね以下の方法で行った。CHO-K1細胞を2×107細胞/mLの密度となるようにCD OptiCHOTM培地（Thermo Fisher Scientific社）及びPBSの1:1混合液で懸濁した。50 μLの細胞懸濁液を採取し，これにCD OptiCHOTM培地及びPBSの1:1混合液で200 μg/mLに希釈したpEM-hygr(LC3)プラスミドDNA溶液を50 μL添加した。NEPA21（NEPAGENE社）を用いて，エレクトロポレーションを実施し，細胞にpEM-hygr(LC3)プラスミドDNAを導入した。37℃，5% CO2の条件下で一晩培養した後，細胞を，0.5 mg/mLのハイグロマイシンを添加したCD OptiCHOTM培地で選択培養した。得られた細胞に同手法によりpE-mIRES-GSp-Fab-IDUAプラスミドDNA（AhdIで消化し，リニアライズしたもの）を導入した。37℃，5% CO2の条件下で一晩培養した後，細胞を，0.5 mg/mLのハイグロマイシン及び10 μg/mLのピューロマイシンを添加したCD OptiCHOTM培地で選択培養した。選択培養の際，MSXの濃度を段階的に上昇させて，最終的にMSX濃度を300 μMとして，薬剤耐性を示す細胞を選択的に増殖させた。
　次いで，限界希釈法により，１ウェルあたり１個以下の細胞が増殖してくるように，96ウェルプレート上に選択培養で選択された細胞を播種し，各細胞が単クローンコロニーを形成するように約2週間培養した。単クローンコロニーが形成されたウェルの培養上清を採取し，ヒト化抗体含量をELISA法にて調べ，ヒト化抗hTfR抗体-hIDUA融合蛋白質の高発現細胞株を選択した。
　このときのELISA法は概ね以下の方法で実施した。96ウェルマイクロタイタープレート（Nunc社）の各ウェルに，ニワトリ抗IDUAポリクローナル抗体溶液を0.05 M 炭酸水素塩緩衝液で5 μg/mLに希釈したものを100 μLずつ加え，室温又は4℃で少なくとも１時間静置して抗体をプレートに吸着させた。次いで，トリス緩衝生理食塩水(pH 8.0)に0.05% Tween20を添加したもの(TBS-T)で各ウェルを3回洗浄後，トリス緩衝生理食塩水(pH8.0)に1% BSAを添加したものを各ウェルに300 μLずつ加えてプレートを室温で1時間静置した。次いで，各ウェルをTBS-Tで3回洗浄した後，トリス緩衝生理食塩水(pH 8.0)に0.1% BSA及び0.05% Tween20を添加したもの（TBS-BT）で適当な濃度に希釈した培養上清又はヒト化抗hTfR抗体-hIDUA融合蛋白質精製品を，各ウェルに100 μLずつ加え，プレートを室温で1時間静置した。次いで，プレートをTBS-Tで3回洗浄した後，TBS-BTで希釈したHRP標識抗ヒトIgGポリクロ－ナル抗体溶液を，各ウェルに50 μLずつ加え，プレートを室温で1時間静置した。TBS-Tで各ウェルを3回洗浄後，ELISA POD基質TMBキット（Nakalai Tesque社）を用いて発色させた。次いで，1 mol/L 硫酸を50 μLずつ各ウェルに加えて反応を停止させ，96ウェルプレートリーダーを用いて，各ウェルにつき450 nmでの吸光度を測定した。高い測定値を示したウェルに対応する細胞を，ヒト化抗hTfR抗体－hIDUA融合蛋白質の高発現細胞株として選択した。こうして得られたヒト化抗hTfR抗体-hIDUA融合蛋白質の高発現細胞株を，ヒト化抗hTfR抗体-hIDUA発現株とした。この細胞株が発現するヒト化抗ｈＴｆＲ抗体とｈＩＤＵＡとの融合蛋白質をヒト化抗hTfR抗体-hIDUA融合蛋白質（ヒト化抗hTfR抗体-hIDUA）とした。
　得られたヒト化抗hTfR抗体-hIDUA発現株を，10 mg/L インスリン，16 μmol/L チミジン，100 μmol/L ヒポキサンチン，500 μg/mL ハイグロマイシンB，10 μg/mLピューロマイシン，300 μmol/L MSX及び10% (v/v) DMSOを含有するCD OptiCHOTM培地に懸濁させてからクライオチューブに分注し，種細胞として液体窒素中で保存した。
〔実施例３〕ヒト化抗hTfR抗体-hIDUA発現株の培養
　ヒト化抗hTfR抗体-hIDUAを取得するために，ヒト化抗hTfR抗体-hIDUA発現株を以下の方法で培養した。実施例２で得たヒト化抗hTfR抗体-hIDUA発現株を，細胞密度が約3 X 105個/mLとなるように，10 mg/L インスリン，16 μmol/L チミジン，100 μmol/L ヒポキサンチンを含有する，pH6.9に調整した約170 Lの無血清培地（CD OptiCHOTM培地，ThermoFisher SCIENTIFIC社）に懸濁させた。この細胞懸濁液170 Lを培養槽に移した。培地をインペラ―で概ね100 rpmの速度で撹拌し，培地の溶存酸素飽和度を約30%に保持し，34～37℃の温度範囲で，約10日間細胞を培養した。培養期間中，細胞密度，細胞の生存率，培地のグルコース濃度及び乳酸濃度を監視した。培地のグルコース濃度が3.0 g/L以下となった場合には，直ちにグルコース濃度が3.5 g/Lとなるように，グルコース溶液を培地に添加した。培養期間中，フィード液（EFFICIENTFEED A+ TM，ThermoFisher SCIENTIFIC社）を適宜培地に添加した。培養終了後に培地を回収した。回収した培地を，Millistak+HC Pod Filter grade D0HC（Merck社)でろ過し，更にMillistak+ HCgrade X0HC (Merck社)でろ過して，ヒト化抗hTfR抗体-hIDUAを含む培養上清を得た。この培養上清を，PelliconTM 3 Cassette w/Ultracel PLCTK Membrane(孔径：30 kDa， 膜面積：1.14m2，Merck社)を用いて限外ろ過し，液量が約14分の1となるまで濃縮した。次いで，この濃縮液をOpticap XL600(0.22 μm， Merck社)を用いてろ過した。得られた液を濃縮培養上清とした。
〔実施例４〕ヒト化抗hTfR抗体-hIDUAの精製
　実施例３で得た濃縮培養上清に，0.25倍容の2 M アルギニン溶液(pH 7.0)を添加した。この溶液を，カラム体積の4倍容の400 mM アルギニンを含有する25 mM MES緩衝液(pH6.5)で平衡化した，Capture SelectTM CH1-XLカラム（カラム体積:約3.1 L，ベッド高:約20 cm，Thermo Fisher Scientific社）に，100 cm/時の一定流速で負荷し，ヒト化抗hTfR抗体-hIDUAをカラムに吸着させた。Capture SelectTM CH1-XLカラムは，IgG抗体のCH1ドメインと特異的に結合する性質を有するリガンドが担体に固定化されたアフィニティーカラムである。
　次いで，カラム体積の5倍容の同緩衝液を同流速で供給してカラムを洗浄した。次いでカラム体積の3倍容の25 mM MES緩衝液(pH 6.5)を同流速で供給してカラムを更に洗浄した。次いで，カラム体積の5倍容の10 mM 酢酸ナトリウム-HCl緩衝液(pH 3.5)で，カラムに吸着したヒト化抗hTfR抗体-hIDUAを溶出させた。溶出液は，予め250 mM MES緩衝液(pH 6.0)を入れた容器に受けて，直ちに中和した。
　上記のアフィニティーカラムからの溶出液に，250 mM MES緩衝液(pH 6.5)を添加し，溶出液のpHを6.0に調整した。次いで，この溶出液を，Opticap XL600(孔径：0.22 μm， Merck社)でろ過した。このろ過後の溶液を，カラム体積の5倍容の15 mM NaClを含有する50 mM MES緩衝液(pH 6.0)で平衡化した，マルチモーダル陰イオン交換カラムであるCapto adhereカラム(カラム体積:約1.5 L，ベッド高:約10 cm，GE Healthcare社)に，300 cm/時の一定流速で負荷させた。このヒト化抗hTfR抗体-hIDUAを含む負荷液を回収した。Capto adhereは，N-ベンジル-N-メチルエタノールアミンをリガンドとするもので，静電相互作用，水素結合，疎水性相互作用等に基づく選択性を有する強陰イオン交換体である。
　次いで，カラム体積の5倍容の同緩衝液を同流速で供給してカラムを洗浄し，この洗浄液を回収した。
　上記負荷液及び洗浄液をカラム体積の4倍容の300 mM NaClを含有する25 mM MES緩衝液(pH 6.5)で平衡化した，マルチモーダル弱陽イオン交換カラムであるCapto MMCカラム(カラム体積:約3.1 L，ベッド高:約20 cm，GE Healthcare社)に，200 cm/時の一定流速で負荷させた。Capto MMCは，疎水性相互作用，水素結合形成等に基づく選択性を有する弱陽イオン交換体である。
　次いで，カラム体積の5倍容の同緩衝液を同流速で供給してカラムを洗浄した。次いで，カラム体積の10倍容の1 M NaClを含有する25 mM MES緩衝液(pH 6.5)で，弱陽イオン交換カラムに吸着したヒト化抗hTfR抗体-hIDUAを溶出させた。
　上記の弱陽イオン交換カラムからの溶出液に，0.5倍容の0.8 mg/mL NaCl及び75 mg/mL スクロースを含有する20 mM クエン酸緩衝液(pH 5.5)を加えてpHを5.8に調整した。次いで，PelliconTM 3 Cassette w/Ultracel PLCTK Membrane(孔径：30 kDa， 膜面積：0.57 m2，Merck社)を用いて限外ろ過し，溶液中のヒト化抗hTfR抗体-hIDUAの濃度が約30 mg/mLとなるまで濃縮した。次いで，この濃縮液をOpticap XL600 (0.22 μm， Merck社)を用いてろ過した。
上記の濃縮液を，カラム体積の1.5倍容の0.8 mg/mL NaCl及び75 mg/mL スクロースを含有する20 mM クエン酸緩衝液(pH 5.5)で平衡化した，サイズ排除カラムであるBioSECカラム(カラム体積:約9.4 L， ベッド高:30 cm， Merck社)に，40 cm/時の一定流速で負荷し，更に，同緩衝液を同じ流速で供給した。このとき，サイズ排除カラムからの溶出液の流路に，溶出液の吸光度を連続的に測定するための吸光光度計を配置して，280 nmの吸光度をモニターし，280 nmで吸収ピークを示した画分を，ヒト化抗hTfR抗体-hIDUAを含む画分として回収し，これをヒト化抗hTfR抗体-hIDUA精製品とした。
〔実施例５〕水性医薬組成物の調製
　実施例４で得られたヒト化抗hTfR抗体-hIDUA融合蛋白質精製品を用いて，表１に示す組成を有する水性医薬組成物を調製した。この水性医薬組成物は，1～10 mLの液量で，ガラス製又はプラスチック製のバイアル，アンプル，又は注射器に充填・封入され，低温（例えば4℃）で貯蔵される。これが注射器に充填・封入されたものはプレフィルドシリンジ型の製剤となる。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000001
〔実施例６〕臨床試験（第I期）
　実施例５で調製したヒト化抗hTfR抗体-hIDUA融合蛋白質を含有する水性医薬組成物（以下，「被験薬」という）の安全性，及びムコ多糖症I型に対する有効性を確認するため，臨床試験（第I期）を実施した。
　臨床試験（第I期）では，少なくとも表２に示される選択基準を満たすムコ多糖症I型（MPS I）患者を被験者とした。被験者数は4名とした。なお，全ての被験者は，当該試験に参加する前まで通常のムコ多糖症I型の酵素補充療法を施されていた。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000002
　被験薬は表３に示される投与量及び投与法で患者に投与された。すなわち，被験薬を各被験者に，0.1mg/kg体重の用量で初回投与し，2回目に1.0 mg/kg体重，3回目に2.0 mg/kg体重，及び4回目に4.0 mg/kg体重の用量で計4回投与した。それぞれの投与は１週間の間隔を置いて行われた。また，各投与は被験者の状態を観察しながら約3時間かけて点滴静注することにより行われた。また，臨床試験の終了後，患者は通常のムコ多糖症I型の酵素補充療法が施されることとした。また，被験薬の投与前及び4回目の投与後5時間以内に各被験者から脳脊髄液を採取した。また，被験薬の投与前及び4回目の投与1週間後であって通常のムコ多糖症I型の酵素補充療法が施される前に各被験者から血清及び尿を採取した。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000003
　被験薬のムコ多糖症I型に対する有効性は表４に示される項目を検査することにより評価した。なお，表４は臨床試験のプロトコールに記載された有効性の評価項目の一部を示すものである。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000004
　被験薬のムコ多糖症I型の安全性は表５に示される項目を検査することにより評価した。なお，表５は臨床試験のプロトコールに記載された安全性の評価項目の一部を示すものである。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000005
〔実施例７〕臨床試験（第I期）の有効性評価
（脳脊髄液に含まれるヘパラン硫酸及びデルマタン硫酸の濃度）
　実施例６で各被験者から採取した被験薬の投与前及び4回目の投与後5時間以内に各被験者から採取した脳脊髄液に含まれるヘパラン硫酸及びデルマタン硫酸の濃度の測定結果を図１及び図２にそれぞれ示す。ヘパラン硫酸についてみると，被験薬の投与前は，被験者の脳脊髄液に含まれるヘパラン硫酸の濃度の平均値は1132 ng/mLであったが，投与後の当該濃度の平均値は467 ng/mLと大幅に減少した（図１）。非ムコ多糖症患者における脳脊髄液に含まれるヘパラン硫酸の濃度の平均値は概ね360 ng/mLであることから，被験薬の投与を更に継続させることにより脳脊髄液に含まれるヘパラン硫酸の濃度を非ムコ多糖症患者レベルにまで減少させることができると予測された。なお，ヘパラン硫酸及びデルマタン硫酸の濃度は，実施例１２～１４に記載の方法により測定した。
　デルマタン硫酸についてみると，被験薬の投与前は，被験者の脳脊髄液に含まれるデルマタン硫酸の濃度の平均値は264 ng/mLであったが，投与後の当該濃度の平均値は213 ng/mLと大幅に減少した（図２）。デルマタン硫酸についてもヘパラン硫酸と同様に，被験薬の投与を更に継続させることにより脳脊髄液に含まれるデルマタン硫酸の濃度を非ムコ多糖症患者レベルにまで減少させることができると予測された。
　これらの結果は，患者に点滴静注により投与された被験薬が，BBBを通過して中枢神経系に到達し，そこに蓄積したグリコサミノグリカンを分解して除去したことを示すものであり，被験薬がムコ多糖症I型の中枢神経系の異常に対しても薬効があることを示すものである。また，これらの結果から，被験薬は1～6 mg/kg体重，又は1～8 mg/kg体重の用量で1週間に1回投与することにより，その薬効を奏するものと予測される。
（血清及び尿に含まれるヘパラン硫酸及びデルマタン硫酸の濃度）
　実施例６で各被験者から採取した被験薬の投与前及び4回目の投与1週間後であって通常のムコ多糖症I型の酵素補充療法が施される前に各被験者からそれぞれ採取した血清に含まれるヘパラン硫酸及びデルマタン硫酸の濃度の測定結果を図３及び図４にそれぞれ示す。ヘパラン硫酸についてみると，被験薬の投与前は，被験者の血清に含まれるヘパラン硫酸の濃度の平均値は359 ng/mLであったが，投与後の当該濃度の平均値は217 ng/mLと大幅に減少した（図３）。デルマタン硫酸についてみると，被験薬の投与前は，被験者の血清に含まれるデルマタン硫酸の濃度の平均値は965 ng/mLであったが，投与後の当該濃度の平均値は867 ng/mLと減少した（図４）。
　実施例６で各被験者から採取した被験薬の投与前及び4回目の投与1週間後であって通常のムコ多糖症I型の酵素補充療法が施される前に各被験者からそれぞれ採取した尿に含まれるヘパラン硫酸及びデルマタン硫酸の濃度の測定結果を図５及び図６にそれぞれ示す。ヘパラン硫酸についてみると，被験薬の投与前は，被験者の尿に含まれるヘパラン硫酸の濃度の平均値は31.0 μg/ mgクレアチニンであったが，投与後の当該濃度の平均値は16.0 μg/ mgクレアチニンと大幅に減少した（図５）。デルマタン硫酸についてみると，被験薬の投与前は，被験者の尿に含まれるデルマタン硫酸の濃度の平均値は22.7 μg/ mgクレアチニンであったが，投与後の当該濃度の平均値は17.1μg/ mgクレアチニンと大幅に減少した（図６）。これらの結果は，患者に点滴静注により投与された被験薬が，中枢神経系のみならず，全身の組織に蓄積したグリコサミノグリカンを分解して除去したことを示すものであり，被験薬がムコ多糖症I型の中枢神経系及びその他組織の異常に対しても薬効があることを示すものである。そして，中枢神経系及びその他組織に蓄積したグリコサミノグリカンが分解して除去された患者にあっては，より長時間の会話が可能になる，より多くの文字筆記が可能になる，活力が増大する，腰や膝などの関節痛が軽減する，歩行に伴う痛みや筋肉及び関節のこわばりが軽減する，缶を開けるなどの指先の運動やバスケットボールなどの全身運動を行うことがより容易に可能になる，言語能力が向上する等の機能障害の改善が期待できる。
〔実施例８〕臨床試験（第I期）の安全性評価
　被験薬の投与期間中，全ての被験者において重篤な有害事象は認められなかった。すなわち，被験薬が，安全に0.1～4 mg/kg体重の用量で1週間に1回投与することができることを示すものである。
〔実施例９〕臨床試験（第II期）
　臨床試験（第II期）は，被験薬を3ヶ月投与したときの，安全性及びムコ多糖症I型に対する有効性を確認するためのものである。
　臨床試験（第II期）では，少なくとも表２に示される選択基準を満たすムコ多糖症I型（MPS I）患者を被験者とする。なお，全ての被験者は，当該試験に参加する前まで通常のムコ多糖症I型の酵素補充療法を施されていた。
　臨床試験（第II期）は２つの試験からなる。臨床試験（第II期）第一試験では，被験薬は表６に示される投与量及び投与法で患者に投与される。すなわち，被験薬を各被験者に，1.0 mg/kg体重の用量で初回投与し，2回目に2.0 mg/kg体重，3回目から12回目までの10回は4.0 mg/kg体重の用量で投与される。それぞれの投与は1週間の間隔を置いて行われる。また，各投与は被験者の状態を観察しながら約3時間かけて点滴静注することにより行われる。被験者は2名とする。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000006
　臨床試験（第II期）第二試験では，被験薬は表７に示される投与量及び投与法で患者に投与される。すなわち，被験者を2群に分け，被験薬を一方の群には2.0 mg/kg体重の用量で（2.0 mg/kg体重投与群），他方の群には4.0 mg/kg体重の用量で投与する（4.0 mg/kg体重投与群）。各群とも被験薬を１週間の間隔を置いて12回投与する。また，各投与は被験者の状態を観察しながら約3時間かけて点滴静注することにより行われる。試験は非盲検で行い，被験者数は15名とした。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000007
　臨床試験（第II期）第一試験及び第二試験ともに，被験薬の投与前及び12回目の投与後5時間以内に各被験者から脳脊髄液を採取した。また，被験薬の投与前及び12回目の投与1週間後であって通常のムコ多糖症I型の酵素補充療法が施される前に各被験者から血清及び尿を採取した。第二試験については，予定被験者数15名のうち投与が完了した6名からのみ，これら脳脊髄液，血清及び尿を採取した。
　被験薬のムコ多糖症I型に対する有効性は表４に示される項目を検査することに加え，簡易視空間記憶テスト改訂（BVMT-R），ホプキンス言語学習テスト改訂（HVLT-R），注意変数試験（TOVA）を被験者に課すことによっても評価する。
　被験薬のムコ多糖症I型の安全性は表５に示される項目を検査することにより評価する。なお，表５は臨床試験のプロトコールに記載された安全性の評価項目の一部を示すものである。
〔実施例１０〕臨床試験（第II期）の有効性評価
（脳脊髄液に含まれるヘパラン硫酸及びデルマタン硫酸の濃度）
　実施例９で第一試験の各被験者から採取した被験薬の投与前及び12回目の投与後5時間以内に各被験者からそれぞれ採取した脳脊髄液に含まれるヘパラン硫酸及びデルマタン硫酸の濃度の測定結果を図７及び図８にそれぞれ示す。ヘパラン硫酸についてみると，全ての被験者について，被験者の脳脊髄液に含まれるヘパラン硫酸の濃度が，被験薬の投与前と比べて投与後には1/3以下にまで減少した（図７）。そして，全ての被験者について，被験者の脳脊髄液に含まれるヘパラン硫酸の濃度が1400 ng/mL以下となり，また，非ムコ多糖症患者における脳脊髄液に含まれるヘパラン硫酸の濃度の平均値である約360 ng/mLを下回った。これらの結果から，被験薬の投与を更に継続させることにより脳脊髄液に含まれるヘパラン硫酸の濃度を非ムコ多糖症患者レベルにまで減少させ，かつこれを維持することができると予測された。
　デルマタン硫酸についてみると，全ての被験者について，被験者の脳脊髄液に含まれるデルマタン硫酸の濃度が，被験薬の投与前と比べて投与後には減少した（図８）。なお，非ムコ多糖症患者における脳脊髄液に含まれるデルマタン硫酸の濃度の平均値は約220 ng/mLである。デルマタン硫酸についてもヘパラン硫酸と同様に，被験薬の投与を更に継続させることにより脳脊髄液に含まれるデルマタン硫酸の濃度を非ムコ多糖症患者レベルにまで減少させ，かつこれを維持することができると予測された。
　実施例９で第二試験の各被験者から採取した被験薬の投与前及び12回目の投与後5時間以内に各被験者からそれぞれ採取した脳脊髄液に含まれるヘパラン硫酸及びデルマタン硫酸の濃度の測定結果を図９及び図１０にそれぞれ示す。ヘパラン硫酸についてみると，全ての被験者について，被験者の脳脊髄液に含まれるヘパラン硫酸の濃度が，被験薬の投与前と比べて投与後には1/3以下にまで減少した（図９）。そして，全ての被験者について，被験者の脳脊髄液に含まれるヘパラン硫酸の濃度が1400 ng/mL以下となり，また，非ムコ多糖症患者における脳脊髄液に含まれるヘパラン硫酸の濃度の平均値である約360 ng/mLに近づき，もしくは下回った。被験薬の投与を更に継続させることにより脳脊髄液に含まれるヘパラン硫酸の濃度を非ムコ多糖症患者レベルにまで減少させ，かつこれを維持することができると予測された。
　デルマタン硫酸についてみると，全ての被験者について，被験者の脳脊髄液に含まれるデルマタン硫酸の濃度が，被験薬の投与前と比べて投与後には減少した（図１０）。なお，非ムコ多糖症患者における脳脊髄液に含まれるデルマタン硫酸の濃度の平均値は約220 ng/mLである。デルマタン硫酸についてもヘパラン硫酸と同様に，被験薬の投与を更に継続させることにより脳脊髄液に含まれるデルマタン硫酸の濃度を非ムコ多糖症患者レベルにまで減少させ，かつこれを維持することができると予測された。なお，ヘパラン硫酸及びデルマタン硫酸の濃度は，実施例１２～１４に記載の方法により測定した。
　これらの結果は，患者に点滴静注により投与された被験薬が，BBBを通過して中枢神経系に到達し，そこに蓄積したグリコサミノグリカンを分解して除去したことを示すものであり，被験薬がムコ多糖症I型の中枢神経系の異常に対しても薬効があることを示すものである。また，これらの結果から，被験薬は1～6 mg/kg体重，又は1～8 mg/kg体重の用量で1週間に1回投与することにより，その薬効を奏するものと予測される。
（血清に含まれるヘパラン硫酸及びデルマタン硫酸の濃度）
　実施例９で第一試験の各被験者から採取した被験薬の投与前及び12回目の投与1週間後であって通常のムコ多糖症I型の酵素補充療法が施される前に各被験者からそれぞれ採取した血清に含まれるヘパラン硫酸及びデルマタン硫酸の濃度の測定結果を図１１及び図１２にそれぞれ示す。ヘパラン硫酸，デルマタン硫酸ともに，被験薬の投与前と比べて投与後の濃度が概ね減少する傾向が確認された（図１１，図１２）。
　実施例９で第二試験の各被験者から採取した被験薬の投与前及び12回目の投与1週間後であって通常のムコ多糖症I型の酵素補充療法が施される前に各被験者からそれぞれ採取した血清に含まれるヘパラン硫酸及びデルマタン硫酸の濃度の測定結果を図１３及び図１４にそれぞれ示す。ヘパラン硫酸，デルマタン硫酸ともに，被験薬の投与前と比べて投与後の濃度が概ね減少する傾向が確認された（図１３，図１４）。
　以上の結果は，患者に点滴静注により投与された被験薬が，中枢神経系のみならず，全身の組織に蓄積したグリコサミノグリカンを分解して除去したことを示すものであり，被験薬がムコ多糖症I型の中枢神経系及びその他組織の異常に対しても薬効があることを示すものである。そして，中枢神経系及びその他組織に蓄積したグリコサミノグリカンが分解して除去された患者にあっては，中枢神経系の機能障害が改善することにより，より長時間の会話が可能になる，より多くの文字筆記が可能になる，活力が増大する，腰や膝などの関節痛が軽減する，歩行に伴う痛みや筋肉及び関節のこわばりが軽減する，缶を開けるなどの指先の運動やバスケットボールなどの全身運動を行うことがより容易に可能になる，言語能力が向上する等の効果が得られることが期待できる。
〔実施例１１〕臨床試験（第II期）の安全性評価
　被験薬の投与期間中，全ての被験者において重篤な有害事象は認められなかった。すなわち，被験薬が，安全に0.1 mg/kg～4 mg/kg体重の用量で1週間に1回投与することができることを示すものである。
〔実施例１２：ヘパラン硫酸及びデルマタン硫酸の測定法（各種溶液の調製）〕
　試験に用いる（ａ）～（ｋ）の溶液を以下の手順で調製した。
（ａ）MeCN/water：
　0.5 mLの注射用水と4.5 mLのアセトニトリルを混合し，これをMeCN/waterとした。本溶液は用時調製とした。
（ｂ）重水素ラベル化溶媒：
　氷浴下で，1.5 mLのメタノール-d4（Sigma-Aldrich社）に240 μLのアセチルクロリドを滴下し，これを重水素ラベル化溶媒とした。本溶液は用時調製とした。
（ｃ）PBS/クエン酸溶液：
　クエン酸を純水に溶解して10 mMの濃度のクエン酸溶液を作製した。更に，クエン酸三ナトリウムニ水和物を純水に溶解して10 mMの濃度のクエン酸ナトリウム溶液を作製した。クエン酸溶液にクエン酸ナトリウム溶液を滴下してpH 3.0に調整した。この溶液を10 mM クエン酸緩衝液（pH 3.0）とした。また，18 mLの10 mM クエン酸緩衝液（pH 3.0）に2 mLのPBSを加えた溶液をPBS/クエン酸溶液とした。
（ｄ）移動相A：
　247.5 mLの純水に，2.5 mLの1 Mギ酸アンモニウム水溶液と400 μLの水酸化アンモニウム水溶液 (25% NH4OH)を添加して混合したものを，移動相Aとした。本溶液は用時調製とした。
（ｅ）移動相B：
　45 mLの純水に，5 mLの1 Mギ酸アンモニウム水溶液と，450 mLのアセトニトリルと，800 μLの水酸化アンモニウム水溶液 (25% NH4OH)とを混合したものを，移動相Bとした。本溶液は用時調製とした。
（ｆ）ヘパラン硫酸標準原液（HS標準原液）：
　1.5 mLマイクロチューブにHeparan sulfate（Iduron社）を秤量し，注射用水を加えて溶解し，5.0 mg/mLの濃度の溶液を調製した。調製した溶液を0.5 mLスクリューキャップチューブに15 μLずつ分注し，使用時まで冷凍（-15℃以下）して保存した。この溶液をHS標準原液とした。
（ｇ）デルマタン硫酸標準原液（DS標準原液）：
　1.5 mLマイクロチューブにChondroitin sulfate B sodium salt from porcine intestinal mucosa（Sigma-Aldrich社）を秤量し，注射用水を加えて溶解し，5.0 mg/mLの濃度の溶液を調製した。調製した溶液を0.5 mLスクリューキャップチューブに15 μLずつ分注し，使用時まで冷凍（-15℃以下）して保存した。この溶液をDS標準原液とした。
（ｈ）デルマタン硫酸内部標準溶液（DS内部標準溶液）：
　ホウケイ酸ねじ口試験管に40 μLのDS標準原液を計り取り，溶媒を窒素気流下で留去した。乾固物に400 μLの重水素ラベル化溶媒を添加し，撹拌した後，65℃で75分間反応させて，重水素化メタノール分解（deuteriomethanolysis）を行った。反応後，溶媒を窒素気流下で留去した。乾固物に500 μLのMeCN/waterを添加し，超音波処理を30分間行った。調製した溶液を0.5 mLスクリューキャップチューブに20 μLずつ分注し，冷凍（-15℃以下）して保存した。この溶液をデルマタン硫酸内部標準溶液（DS内部標準溶液）とした。
（ｉ）ヘパラン硫酸内部標準溶液（HS内部標準溶液）：
　ホウケイ酸ねじ口試験管に40 μLのHS標準原液を計り取り，溶媒を窒素気流下で留去した。乾固物に400 μLの重水素ラベル化溶媒を添加し，撹拌した後，65℃で75分間反応させて，重水素化メタノール分解（deuteriomethanolysis）を行った。反応後，溶媒を窒素気流下で留去した。乾固物に500 μLのMeCN/waterを添加し，超音波処理を30分間行った。調製した溶液を0.5 mLスクリューキャップチューブに20 μLずつ分注し，冷凍（-15℃以下）して保存した。この溶液をヘパラン硫酸内部標準溶液（HS内部標準溶液）とした。
（ｊ）サンプル溶解用溶液：
　5 mLのMeCN/waterに，1 μLのHS内部標準溶液及び1 μLのDS内部標準溶液を添加して撹拌した後，超音波処理を30分間行った。この溶液をサンプル溶解用溶液とした。本溶液は用時調製とした。
（ｋ）検量線作成用溶液：
　480 μLのPBS/クエン酸溶液を計り取り，これにHS標準原液とDS標準原液をそれぞれ10 μLずつ添加し，デルマタン硫酸とヘパラン硫酸を，それぞれ100 μg/mLずつ含有する溶液を調製した。この溶液をPBS/クエン酸溶液で希釈し，デルマタン硫酸とヘパラン硫酸を，それぞれ2500 ng/mLずつ含有する溶液を調製した。この溶液をPBS/クエン酸溶液で2段階希釈し，デルマタン硫酸とヘパラン硫酸を，それぞれ25～2500 ng/mLの濃度で含有する溶液を調製した。この溶液を検量線作成用溶液とした。
〔実施例１３：ヘパラン硫酸及びデルマタン硫酸の測定法（メタノリシス反応）〕
　上記実施例１２で調製した検量線作成用溶液を，それぞれ20 μL計り取り，個別にホウケイ酸ねじ口試験管に分取した。また，ブランクとして，PBS/クエン酸溶液をホウケイ酸ねじ口試験管に分取した。試験管中の溶媒を窒素気流下で留去した（N=1）。乾固物に，20 μLの2, 2-ジメトキシプロパンと，200 μLの塩酸の濃度が3Nである塩酸メタノールとを添加して撹拌した後，恒温水槽を用いて70℃，90分間メタノリシス反応を行った。反応後，溶媒を窒素気流下で留去した。乾固物に50 μLのサンプル溶解用溶液を添加して溶解後，遠心（15000 rpm，10分間，室温）し，上清をバイアルに採取した。
　また，上記実施例１２で調製したデルマタン硫酸標準原液とヘパラン硫酸標準原液とをPBS/クエン酸溶液で希釈し，デルマタン硫酸標準原液及びヘパラン硫酸標準原液とをいずれも25.0 ng，50.0 ng/mL，500 ng/mL，及び2000 ng/mLの濃度で含有する4種類の品質管理試料（QC試料）を調製し，それぞれ，QC-LL，QC-L，QC-M，及びQC-Hとした。これらをそれぞれ20 μL計り取り，個別にホウケイ酸ねじ口試験管に分取し，試験管中の溶媒を窒素気流下で留去した。乾固物に，20 μLの2, 2-ジメトキシプロパンと，200 μLの塩酸の濃度が3Nである塩酸メタノールとを添加して撹拌した後，恒温水槽を用いて70℃，90分間メタノリシス反応を行った。反応後，溶媒を窒素気流下で留去した。乾固物に50 μLのサンプル溶解用溶液を添加して溶解後，遠心（15000 rpm，10分間，室温）し，上清をバイアルに採取した。
　また，実施例６又は９で採取した脳脊髄液，血清，及び尿を，それぞれホウケイ酸ねじ口試験管に分取し，試験管中の溶媒を窒素気流下で留去した。乾固物に，20 μLの2, 2-ジメトキシプロパンと，200 μLの塩酸の濃度が3Nである塩酸メタノールとを添加して撹拌した後，恒温水槽を用いて70℃，90分間メタノリシス反応を行った。反応後，溶媒を窒素気流下で留去した。乾固物に50 μLのサンプル溶解用溶液を添加して溶解後，遠心（15000 rpm，10分間，室温）し，上清をバイアルに採取した。
〔実施例１４：ヘパラン硫酸及びデルマタン硫酸の測定法（LC/MS/MS分析）〕
　LC/MS/MS分析は，親水性相互作用超高性能液体クロマトグラフィーとタンデム四重極型質量分析装置とを組み合わせたものを用いて実施した。質量分析装置（MS/MS装置）として，QTRAP5500（エー・ビー・サイエックス社）を用い，これにHPLC装置として，Nexera X2（島津製作所）をセットした。また，LCカラムとして，Acquity UPLCTM BEH Amid 1.7 μm (2.1 Ｘ 50 mm，Waters社)を用いた。移動相として，実施例１２で調製した移動相A及び移動相Bを用いた。また，カラム温度は50℃に設定した。
　6% (v/v)の移動相Aと94% (v/v)の移動相Bからなる混合液でカラムを平衡化した後，10μLの試料を注入し，表８に示す移動相のグラジエント条件で，クロマトグラフィーを実施した。なお，移動相の流速は0.4 mL/分とした。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000008
　MS/MS装置のイオン源パラメーターを，QTRAP5500（エー・ビー・サイエックス社）の使用説明書に従って，表９に示すように設定した。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000009
　検量線作成用溶液及びQC試料の測定により，各検量線作成用溶液に含まれていたデルマタン硫酸及びヘパラン硫酸に由来するプロダクトイオンのクロマトチャート上に検出されるピーク（検出ピーク）の面積を求めた。また，DS内部標準溶液，及びHS内部標準溶液に由来するプロダクトイオンの検出ピークの面積を求めた。検量線作成用溶液はN=1，QC試料（QC-LL，QC-L，QC-M，及びQC-H）はN=3で測定を行った。
　なお，DS内部標準溶液及びHS内部標準溶液に含まれるデルマタン硫酸及びヘパラン硫酸は重水素ラベルされている。従って，これらに由来するプレカーサーイオンの質量電荷比（m/z）は，それぞれ432及び390と，非ラベルのものと比較して大きな値をとる。非ラベルのデルマタン硫酸及びヘパラン硫酸に由来するプレカーサーイオンの質量電荷比（m/z）は，それぞれ426及び384である。従って，これらプレカーサーイオンは，四重極（Q1）において，イオンの質量電荷比（m/z）に基づいて，分離されるので，個別に検出可能となる。表１０にプレカーサーイオンとプロダクトイオンの（m/z）をまとめて示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000010
　各検量線作成用溶液に含まれていたデルマタン硫酸に由来する検出ピークの面積（DS検出ピーク面積）に対する，DS内部標準溶液に由来する検出ピーク（DS-IS検出ピーク面積）の面積比（DS検出ピーク面積／DS-IS検出ピーク面積）を求めた。この値を縦軸にとり，各検量線作成用溶液のデルマタン硫酸の濃度を横軸にとり，二次計画法を用いて回帰式を算出し検量線を作成した。
　また，各検量線作成用溶液に含まれていたヘパラン硫酸に由来する検出ピークの面積（HS検出ピーク面積）に対する，HS内部標準溶液に由来する検出ピーク（HS-IS検出ピーク面積）の面積比（HS検出ピーク面積／HS-IS検出ピーク面積）を求めた。この値を縦軸にとり，各検量線作成用溶液のヘパラン硫酸の濃度を横軸にとり，二次計画法を用いて回帰式を算出し検量線を作成した。
　上記の検量線に，各被験者の脳脊髄液，血清，及び尿の測定値を内挿し，各試料に含まれるDS及びHSの濃度を求めた。なお，尿中のDS及びHSの測定値についてはクレアチニン補正して，1mgのクレアチニンを含む尿中に含まれる量（μg/mgクレアチニン）を算出した。
　本発明によれば，例えば，ムコ多糖症I型患者に対する酵素補充療法に用いることのできる新たな薬剤を提供できる。
配列番号１：リンカー例１のアミノ酸配列
配列番号２：リンカー例２のアミノ酸配列
配列番号３：リンカー例３のアミノ酸配列
配列番号４：軽鎖ＣＤＲ１のアミノ酸配列１
配列番号５：軽鎖ＣＤＲ１のアミノ酸配列２
配列番号６：軽鎖ＣＤＲ２のアミノ酸配列１
配列番号７：軽鎖ＣＤＲ２のアミノ酸配列２
配列番号８：軽鎖ＣＤＲ３のアミノ酸配列１
配列番号９：重鎖ＣＤＲ１のアミノ酸配列１
配列番号１０：重鎖ＣＤＲ１のアミノ酸配列２
配列番号１１：重鎖ＣＤＲ２のアミノ酸配列１
配列番号１２：重鎖ＣＤＲ２のアミノ酸配列２
配列番号１３：重鎖ＣＤＲ３のアミノ酸配列１
配列番号１４：重鎖ＣＤＲ３のアミノ酸配列２
配列番号１５：重鎖フレームワーク領域３のアミノ酸配列
配列番号１６：重鎖の可変領域のアミノ酸配列
配列番号１７：軽鎖の可変領域のアミノ酸配列
配列番号１８：軽鎖のアミノ酸配列
配列番号１９：Ｆａｂ重鎖のアミノ酸配列
配列番号２０：ヒトＩＤＵＡのアミノ酸配列１
配列番号２１：ヒトＩＤＵＡのアミノ酸配列２
配列番号２２：プライマーＨｙｇ－Ｓｆｉ５’，合成配列
配列番号２３：プライマーＨｙｇ－ＢｓｔＸ３’，合成配列
配列番号２４：プライマーIRES5'，合成配列
配列番号２５：プライマーIRES3'，合成配列
配列番号２６：プライマーmPGKP5'，合成配列
配列番号２７：プライマーmPGKP3'，合成配列
配列番号２８：プライマーGS5'，合成配列
配列番号２９：プライマーGS3'，合成配列
配列番号３０：プライマーpuro5'，合成配列
配列番号３１：プライマーpuro3'，合成配列
配列番号３２：プライマーSV40polyA5'，合成配列
配列番号３３：プライマーSV40polyA3'，合成配列
配列番号３４：プライマーmIRES-GS5'，合成配列
配列番号３５：プライマーmIRES-GS3'，合成配列
配列番号３６：CMVE-EF-1αp-IFNβMAR，合成配列
配列番号３７：軽鎖のアミノ酸配列をコードする塩基配列，合成配列
配列番号３８：Fab重鎖とヒトIDUAの融合蛋白質のアミノ酸配列
配列番号３９：Fab重鎖とヒトIDUAの融合蛋白質のアミノ酸配列をコードする遺伝子を含む塩基配列，合成配列
配列番号４０：IRES-HygroR-mPGKpA，合成配列

Claims (48)

  1. 　抗ヒトトランスフェリン受容体抗体とヒトα－Ｌ－イズロニダーゼとの融合蛋白質を有効成分として含有する医薬組成物であって，該融合蛋白質が，０．１～１０ｍｇ／ｋｇ体重の用量で，静脈内注入によりムコ多糖症Ｉ型の患者に投与されるものである，医薬組成物。
  2. 　該融合蛋白質が，０．１～８ｍｇ／ｋｇ体重の用量で投与されるものである請求項１に記載の医薬組成物。
  3. 　該融合蛋白質が，１～６ｍｇ／ｋｇ体重の用量で投与されるものである請求項１に記載の医薬組成物。
  4. 　該融合蛋白質が，２ｍｇ／ｋｇ体重又は４ｍｇ／ｋｇ体重の用量で投与されるものである請求項１に記載の医薬組成物。
  5. 　該融合蛋白質が，０．３３ｍｇ／時間～２００ｍｇ／時間の速度で投与されるものである，請求項１～４の何れかに記載の医薬組成物。
  6. 　該融合蛋白質が，３時間かけて投与されるものである，請求項１～４の何れかに記載の医薬組成物。
  7. 　該融合蛋白質が，静脈内点滴により投与されるものである，請求項１～６の何れかに記載の医薬組成物。
  8. 　該投与が，５日～２１日の間隔で，少なくとも３ヶ月継続して行われるものである請求項１～７の何れかに記載の医薬組成物。
  9. 　該投与が，７日の間隔で，少なくとも１ヶ月継続して行われるものである請求項１～７の何れかに記載の医薬組成物。
  10. 　該融合蛋白質が，初回の投与時は０．１～２ｍｇ／ｋｇ体重の用量で投与され，２回目以降の投与時は，用量を増加させて投与されるものである，請求項８又は９に記載の医薬組成物。
  11. 　該融合蛋白質が，初回の投与時は０．１～２ｍｇ／ｋｇ体重の用量で投与され，その後，２～６ｍｇ／ｋｇ体重の維持用量で投与されるものである，請求項８又は９に記載の医薬組成物。
  12. 　２ｍｇ／ｋｇ体重又は４ｍｇ／ｋｇ体重の維持用量で投与されるものである，請求項８又は１０に記載の医薬組成物。
  13. 　該抗ヒトトランスフェリン受容体抗体が，Ｆａｂである，請求項１～１２の何れかに記載の医薬組成物。
  14. 　該ヒトα－Ｌ－イズロニダーゼが，該抗ヒトトランスフェリン受容体抗体の軽鎖のＣ末端側若しくはＮ末端側，又は該抗ヒトトランスフェリン受容体抗体の重鎖のＣ末端側若しくはＮ末端側に，直接又はリンカーを介して結合しているものである，請求項１～１３の何れかに記載の医薬組成物。
  15. 　該ヒトα－Ｌ－イズロニダーゼが，該抗ヒトトランスフェリン受容体抗体の重鎖のＣ末端側に，リンカーを介して結合しているものである，請求項１～１３の何れかに記載の医薬組成物。
  16. 　該リンカーが，１～１５０個のアミノ酸残基からなるペプチドである，請求項１４又は１５に記載の医薬組成物。
  17. 　該リンカーが，１個のグリシン，１個のセリン，アミノ酸配列Ｇｌｙ－Ｓｅｒ，アミノ酸配列Ｇｌｙ－Ｇｌｙ－Ｓｅｒ，配列番号１のアミノ酸配列，配列番号２のアミノ酸配列，配列番号３のアミノ酸配列，及びこれらのアミノ酸配列が１～１０個連続してなるアミノ酸配列からなる群より選ばれるアミノ酸配列を含んでなるペプチドである，請求項１６に記載の医薬組成物。
  18. 　該リンカーが，配列番号３のアミノ酸配列からなるペプチドである，請求項１６に記載の医薬組成物。
  19. 　該抗ヒトトランスフェリン受容体抗体が，軽鎖の可変領域に，ＣＤＲ１として配列番号４又は配列番号５のアミノ酸配列を，ＣＤＲ２として配列番号６若しくは配列番号７のアミノ酸配列又はアミノ酸配列Ｌｙｓ－Ｖａｌ－Ｓｅｒを，及びＣＤＲ３として配列番号８のアミノ酸配列を，それぞれ含んでなり，重鎖の可変領域に，ＣＤＲ１として配列番号９又は１０のアミノ酸配列を，ＣＤＲ２として配列番号１１又は２のアミノ酸配列を，及びＣＤＲ３として配列番号１３又は１４のアミノ酸配列を，それぞれ含んでなるものであり，
    　該ヒトα－Ｌ－イズロニダーゼが，該抗ヒトトランスフェリン受容体抗体の軽鎖のＣ末端側若しくはＮ末端側，又は該抗ヒトトランスフェリン受容体抗体の重鎖のＣ末端側若しくはＮ末端側に結合したものである，請求項１～１８の何れかに記載の医薬組成物。
  20. 　該重鎖の可変領域が配列番号１６のアミノ酸配列を含んでなるものである，請求項１９に記載の医薬組成物。
  21. 　該重鎖がＦａｂ重鎖であり，該Ｆａｂ重鎖が配列番号１９のアミノ酸配列を含んでなるものである，請求項２０に記載の医薬組成物。
  22. 　該軽鎖の可変領域が配列番号１７のアミノ酸配列を含んでなるものである，請求項１９～２１の何れかに記載の医薬組成物。
  23. 　該軽鎖が配列番号１８のアミノ酸配列を含んでなるものである，請求項２２に記載の医薬組成物。
  24. 　該ヒトα－Ｌ－イズロニダーゼが，配列番号２０のアミノ酸配列又は配列番号２１のアミノ酸配列と少なくとも８５％の同一性を有するアミノ酸配列を含んでなるものである，請求項１～２３の何れかに記載の医薬組成物。
  25. 　該ヒトα－Ｌ－イズロニダーゼが，配列番号２０のアミノ酸配列又は配列番号２１のアミノ酸配列を含んでなるものである，請求項１～２３の何れかに記載の医薬組成物。
  26. 　該抗ヒトトランスフェリン受容体抗体の軽鎖が配列番号１８のアミノ酸配列を含んでなり，該抗ヒトトランスフェリン受容体抗体の重鎖が配列番号１９のアミノ酸配列を含んでなり，該重鎖が，そのＣ末端側で，配列番号３のアミノ酸配列のリンカーを介して，配列番号２０又は配列番号２１のアミノ酸配列を有するヒトα－Ｌ－イズロニダーゼと結合しているものである，請求項１９に記載の医薬組成物。
  27. 　該抗ヒトトランスフェリン受容体抗体の軽鎖が配列番号１８のアミノ酸配列を含んでなり，該抗ヒトトランスフェリン受容体抗体の重鎖が配列番号１９のアミノ酸配列を含んでなり，該重鎖が，そのＣ末端側で，配列番号３のアミノ酸配列のリンカーを介して，配列番号２０のアミノ酸配列を有するヒトα－Ｌ－イズロニダーゼと結合し，それにより配列番号２４のアミノ酸配列を形成しているものである，請求項１９に記載の医薬組成物。
  28. 　凍結乾燥剤又は水性液剤である，請求項１～２７の何れかに記載の医薬組成物。
  29. 　中性塩，二糖類，非イオン性界面活性剤，及び緩衝剤の少なくとも一つを更に含有してなる，請求項２８に記載の医薬組成物。
  30. 　該非イオン性界面活性剤として，ポリソルベート及び／又はポロキサマーを含むものである，請求項２８又は２９に記載の医薬組成物。
  31. 　該ポリソルベートが，ポリソルベート２０又はポリソルベート８０であり，
    　該ポロキサマーが，ポリオキシエチレン（５４）ポリオキシプロピレン（３９）グリコール，ポリオキシエチレン（１９６）ポリオキシプロピレン（６７）グリコール，ポリオキシエチレン（４２）ポリオキシプロピレン（６７）グリコール，ポリオキシエチレン（３）ポリオキシプロピレン（１７）グリコール，ポリオキシエチレン（２０）ポリオキシプロピレン（２０）グリコール，及びポリオキシエチレン（１２０）ポリオキシプロピレン（４０）グリコールからなる群から選択されるものである，請求項３０に記載の医薬組成物。
  32. 　該ポリソルベートがポリソルベート８０であり，該ポロキサマーがポリオキシエチレン（１６０）ポリオキシプロピレン（３０）グリコールである，請求項３０に記載の医薬組成物。
  33. 　該ポリソルベートの濃度が０．００５～１．５ｍｇ／ｍＬであり，該ポロキサマーの濃度が０．１～０．６ｍｇ／ｍＬである，請求項３０～３２の何れかに記載の水性液剤である医薬組成物。
  34. 　該ポリソルベートの濃度が０．０２５～１．０ｍｇ／ｍＬであり，該ポロキサマーの濃度が０．２～０．５ｍｇ／ｍＬである，請求項３０～３２の何れかに記載の水性液剤である医薬組成物。
  35. 　該ポリソルベートの濃度が０．０５～０．１５ｍｇ／ｍＬであり，該ポロキサマーの濃度が０．２５～０．４５ｍｇ／ｍＬである，請求項３０～３２の何れかに記載の水性液剤である医薬組成物。
  36. 　該中性塩が塩化ナトリウムである，請求項２９～３５の何れかに記載の医薬組成物。
  37. 　該二糖類がトレハロース，スクロース，マルトース，乳糖，及びこれらの２種以上の組み合わせからなる群から選択されるものである，請求項２９～３６の何れかに記載の医薬組成物。
  38. 　該緩衝剤がクエン酸緩衝剤，リン酸緩衝剤，グリシン緩衝剤，ヒスチジン緩衝剤，炭酸緩衝剤，酢酸緩衝剤，及びこれらの２種以上を組み合わせたものからなる群から選択されるものである，請求項２９～３７の何れかに記載の医薬組成物。
  39. 　以下の（１）～（３）からなる群から選択される水性液剤である，請求項３０又は３１に記載の医薬組成物：
    （１）該融合蛋白質の濃度が１～１０ｍｇ／ｍＬであり，該中性塩の濃度が０．３～１．２ｍｇ／ｍＬであり，該二糖類の濃度が５０～１００ｍｇ／ｍＬであり，該緩衝剤の濃度が１０～３０ｍＭであり，該ポリソルベートの濃度が０．００５～１．５ｍｇ／ｍＬであり，及び該ポロキサマーの濃度が０．１～０．６ｍｇ／ｍＬであるもの；
    （２）該融合蛋白質の濃度が２～８ｍｇ／ｍＬであり，該中性塩の濃度が０．５～１．０ｍｇ／ｍＬであり，該二糖類の濃度が５５～９５ｍｇ／ｍＬであり，該緩衝剤の濃度が１５～２５ｍＭであり，該ポリソルベートの濃度が０．０５～１．０ｍｇ／ｍＬであり，及び該ポロキサマーの濃度が０．２５～０．４５ｍｇ／ｍＬであるもの；及び
    （３）該融合蛋白質の濃度が４～６ｍｇ／ｍＬであり，該中性塩の濃度が０．７～０．９ｍｇ／ｍＬであり，該二糖類の濃度が６０～９０ｍｇ／ｍＬであり，該緩衝剤の濃度が１５～２５ｍＭであり，該ポリソルベートの濃度が０．０５～０．１５ｍｇ／ｍＬであり，及び該ポロキサマーの濃度が０．２５～０．４５ｍｇ／ｍＬであるもの。
  40. 　ｐＨが４．５～６．５，５．０～６．０，又は５．２～５．８の水性液剤である，請求項２８～４１の何れかに記載の医薬組成物。
  41. 　以下の（１）～（３）からなる群から選択される凍結乾燥剤である，請求項３０～３２の何れかに記載の医薬組成物：
    （１）純水で溶解したときに，該融合蛋白質の濃度が１～１０ｍｇ／ｍＬとなり，該中性塩の濃度が０．３～１．２ｍｇ／ｍＬとなり，該二糖類の濃度が５０～１００ｍｇ／ｍＬとなり，該緩衝剤の濃度が１０～３０ｍＭとなり，該ポリソルベートの濃度が０．００５～１．５ｍｇ／ｍＬとなり，及び該ポロキサマーの濃度が０．１～０．６ｍｇ／ｍＬとなるもの；
    （２）純水で溶解したときに，該融合蛋白質の濃度が２～８ｍｇ／ｍＬとなり，該中性塩の濃度が０．５～１．０ｍｇ／ｍＬとなり，該二糖類の濃度が５５～９５ｍｇ／ｍＬとなり，該緩衝剤の濃度が１５～２５ｍＭとなり，該ポリソルベートの濃度が０．０５～１．０ｍｇ／ｍＬとなり，該ポロキサマーの濃度が０．２５～０．４５ｍｇ／ｍＬとなるもの；及び
    （３）純水で溶解したときに，該融合蛋白質の濃度が４～６ｍｇ／ｍＬとなり，該中性塩の濃度が０．７～０．９ｍｇ／ｍＬとなり，該二糖類の濃度が６０～９０ｍｇ／ｍＬとなり，該緩衝剤の濃度が１５～２５ｍＭとなり，該ポリソルベートの濃度が０．０５～０．１５ｍｇ／ｍＬとなり，該ポロキサマーの濃度が０．２５～０．４５ｍｇ／ｍＬとなるもの。
  42. 　純水で溶解したときのｐＨが４．５～６．５，５．０～６．０，又は５．２～５．８となる凍結乾燥剤である，請求項２８～３２，３６～３８，及び４１の何れかに記載の医薬組成物。
  43. 　該患者が，中枢神経系に障害を有するものである，請求項１～４２の何れかに記載の医薬組成物。
  44. 　脳脊髄液，血清，及び尿に含まれるデルマタン硫酸及びヘパラン硫酸の濃度を減少させる作用を有するものである，請求項１～４３の何れかに記載の医薬組成物。
  45. 　ムコ多糖症Ｉ型の患者の酵素補充療法に用いられる請求項１～４４の何れかに記載の医薬組成物。
  46. 　免疫抑制剤と併用されるものである，請求項１～４５の何れかに記載の医薬組成物。
  47. 　請求項１～４６の何れかに記載の医薬組成物を用いたムコ多糖症Ｉ型の患者の酵素補充療法。
  48. 　該患者が中枢神経系に障害を有するものである，請求項４７に記載の酵素補充療法。
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