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WO2021029346A1 - 脳血管性認知症の治療または予防剤 - Google Patents

脳血管性認知症の治療または予防剤 Download PDF

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Publication number
WO2021029346A1
WO2021029346A1 PCT/JP2020/030330 JP2020030330W WO2021029346A1 WO 2021029346 A1 WO2021029346 A1 WO 2021029346A1 JP 2020030330 W JP2020030330 W JP 2020030330W WO 2021029346 A1 WO2021029346 A1 WO 2021029346A1
Authority
WO
WIPO (PCT)
Prior art keywords
cells
cell
muse
administered
cerebrovascular dementia
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Ceased
Application number
PCT/JP2020/030330
Other languages
English (en)
French (fr)
Inventor
邦泰 新妻
悌二 冨永
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Tohoku University NUC
Life Science Institute Ltd
Life Science Institute Inc
Original Assignee
Tohoku University NUC
Life Science Institute Ltd
Life Science Institute Inc
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Tohoku University NUC, Life Science Institute Ltd, Life Science Institute Inc filed Critical Tohoku University NUC
Priority to JP2021539261A priority Critical patent/JP7618233B2/ja
Priority to EP20853040.2A priority patent/EP4011382A1/en
Priority to CA3150769A priority patent/CA3150769A1/en
Priority to US17/633,871 priority patent/US20220395536A1/en
Publication of WO2021029346A1 publication Critical patent/WO2021029346A1/ja
Anticipated expiration legal-status Critical
Ceased legal-status Critical Current

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Classifications

    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P25/00Drugs for disorders of the nervous system
    • A61P25/28Drugs for disorders of the nervous system for treating neurodegenerative disorders of the central nervous system, e.g. nootropic agents, cognition enhancers, drugs for treating Alzheimer's disease or other forms of dementia
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K35/00Medicinal preparations containing materials or reaction products thereof with undetermined constitution
    • A61K35/12Materials from mammals; Compositions comprising non-specified tissues or cells; Compositions comprising non-embryonic stem cells; Genetically modified cells
    • A61K35/28Bone marrow; Haematopoietic stem cells; Mesenchymal stem cells of any origin, e.g. adipose-derived stem cells
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K35/00Medicinal preparations containing materials or reaction products thereof with undetermined constitution
    • A61K35/12Materials from mammals; Compositions comprising non-specified tissues or cells; Compositions comprising non-embryonic stem cells; Genetically modified cells
    • A61K35/48Reproductive organs
    • A61K35/54Ovaries; Ova; Ovules; Embryos; Foetal cells; Germ cells
    • A61K35/545Embryonic stem cells; Pluripotent stem cells; Induced pluripotent stem cells; Uncharacterised stem cells
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N5/00Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
    • C12N5/06Animal cells or tissues; Human cells or tissues
    • C12N5/0602Vertebrate cells
    • C12N5/0607Non-embryonic pluripotent stem cells, e.g. MASC

Definitions

  • the present invention relates to a cell preparation for regenerative medicine. More specifically, it relates to a cell preparation containing pluripotent stem cells effective for the treatment or prevention of vascular dementia.
  • Dementia is a serious social problem that places a heavy mental, physical, and financial burden not only on the patient himself but also on his family.
  • Alzheimer-type dementia causes amyloid plaque, neurofibrillary tangles, nerve cell shedding and brain atrophy, but the causes are still unknown.
  • cerebrovascular dementia occurs due to insufficient oxygen and nutrients to nerve cells in the brain due to cerebral angiopathy, cerebral infarction and cerebral hemorrhage.
  • the current situation is that there is no fundamental therapeutic drug for cerebrovascular dementia, and it is an urgent task to provide an effective drug for the treatment and prevention of cerebrovascular dementia.
  • Patent Document 1 discloses a synaptogenesis agent containing bone marrow-derived mesenchymal stem cells as an active ingredient, and describes that an effect was also observed in a model of vascular dementia.
  • no therapeutic method has been found that completely cures vascular dementia, which has been confirmed to be safe and effective, and the realization of curative treatment is awaited.
  • SSEA-3 Stage-Special Embryonic Antigen-3
  • Muse cells pluripotent stem cells
  • Muse cells can be obtained from bone marrow fluid, adipose tissue (Ogura, F., et al., Stem Cells Dev., Nov 20, 2013 (Epub) (published on Jan 17, 2014)), skin connective tissue, and the like. It is known that it is widely present in connective tissues of tissues and organs. Patent Document 3 discloses that Muse cells are effective in treating cerebral infarction, but the effect on cerebrovascular dementia was unknown.
  • An object of the present invention is to provide a cell preparation for the treatment or prevention of vascular dementia.
  • the present inventors protect nerve cells and improve cognitive function by administering human Muse cells to cerebrovascular dementia model rats experimentally induced by causing chronic cerebral hypoperfusion.
  • Muse cells can be used for the treatment and prevention of vascular dementia, and have completed the present invention.
  • the present invention is as follows.
  • a cell preparation for treating or preventing cerebrovascular dementia which comprises SSEA-3 positive pluripotent stem cells derived from living mesenchymal tissues or cultured mesenchymal cells.
  • cerebrovascular dementia is cerebrovascular dementia with white matter lesions.
  • pluripotent stem cell is a pluripotent stem cell having all of the following properties: (I) Low or no telomerase activity; (Ii) Has the ability to differentiate into cells of any of the three germ layers; (Iii) show no neoplastic growth; and (iv) have self-renewal ability.
  • the pluripotent stem cell is a pluripotent stem cell having all of the following properties: (I) SSEA-3 positive; (Ii) CD105 positive; (Iii) Low or no telomerase activity; (Iv) Has the ability to differentiate into one of the three germ layers; (V) does not show neoplastic growth; and (vi) has self-renewal ability.
  • SSEA-3 positive pluripotent stem cells derived from living mesenchymal tissues or cultured mesenchymal cells in the production of cell preparations for treating or preventing cerebrovascular dementia.
  • the damaged part of the brain is repaired by administering Muse cells from a blood vessel or the like or directly in the brain. It is possible to prevent the onset of dementia and improve or ameliorate the symptoms. Therefore, the cell preparation containing Muse cells of the present invention can be used for the treatment or prevention of cerebrovascular dementia.
  • Muse cells can efficiently migrate and engraft in the damaged part of the brain where leukoaraiosis has occurred, and are thought to spontaneously differentiate into pyramidal cells at the engrafted part, so prior to transplantation. It is not necessary to induce differentiation into the cells to be treated. In addition, it is non-tumorogenic and has excellent safety. Furthermore, since Muse cells are not immune rejected, they can be treated with allogeneic preparations manufactured from donors. Therefore, Muse cells with the above-mentioned excellent performance can provide an easily viable means for the treatment or prevention of vascular dementia.
  • the graph which shows the GFAP brightness.
  • the GFAP brightness per area of the hippocampal CA1, CA2-3, CA4 and DG (dentate gyrus) regions of the Muse cell-administered group and the MSC-administered group when Muse cells or MSC was administered one week after the treatment is shown.
  • the present invention relates to cell preparations for treating or preventing cerebrovascular dementia, which include SSEA-3 positive pluripotent stem cells (Muse cells). Treatment includes healing, alleviation, and prevention of recurrence of symptoms. Prevention includes preventing the onset of dementia and preventing the progression of white matter lesions. The present invention will be described in detail below.
  • Applicable Diseases Cell preparations containing SSEA-3 positive pluripotent stem cells (Muse cells) of the present invention are used for the treatment or prevention of cerebrovascular dementia.
  • Cerebrovascular dementia is diagnosed by 1) the presence of dementia, 2) the presence of cerebrovascular accidents, and 3) the relationship (causal relationship) between the two. Cerebrovascular dementia includes multiple infarct dementia, microvascular dementia, dementia due to a single lesion at a strategic site, hypoperfused dementia, cerebral hemorrhagic dementia, etc. It is preferable to have dementia accompanied by. Moreover, the dementia in the present invention is preferably dementia without cerebral infarction.
  • Pluripotent stem cells The pluripotent stem cell used in the cell preparation of the present invention is a cell that Dezawa et al. Found its existence in a human body and named it "Muse (Multipleage-differentiation Stress Enduring) cell". Muse cells can be obtained from bone marrow fluid, adipose tissue (Ogura, F., et al., Stem Cells Dev., Nov20, 2013 (Epub) (published on Jan 17, 2014)), skin connective tissue, and the like. In addition to being able to do so, it is widely known to be present in connective tissues of tissues and organs.
  • this cell is a cell having both pluripotent stem cell and mesenchymal stem cell properties, and is, for example, a cell surface marker "SSEA-3 (Stage-specific embryonic antigen-3)" positive cell, preferably. Is identified as SSEA-3 positive and CD105 positive double positive cells. Therefore, a Muse cell or a cell population containing a Muse cell can be separated from a living tissue using, for example, SSEA-3 alone or the expression of SSEA-3 and CD105 as an index. Details such as a method for separating Muse cells, a method for identifying them, and their characteristics are disclosed in International Publication No. WO2011 / 007900.
  • Muse cells can be selectively concentrated by culturing under various external stress conditions such as the presence of a substance, the presence of active oxygen, mechanical stimulation, and pressure treatment.
  • a cell preparation for treating cerebrovascular dementia pluripotency prepared from living mesenchymal tissue or cultured mesenchymal tissue using SSEA-3 as an index.
  • a stem cell (Muse cell) or a cell population containing a Muse cell may be simply referred to as "SSEA-3 positive cell".
  • non-Muse cell refers to a cell contained in a living mesenchymal tissue or a cultured mesenchymal cell, and refers to a cell other than the “SSEA-3 positive cell”. is there.
  • Muse cells or cell populations containing Muse cells can be prepared from living tissues (for example, mesenchymal tissues) using the cell surface markers SSEA-3 or SSEA-3 and CD105 as indicators.
  • the "living body” refers to a living body of a mammal.
  • the living body does not include a fertilized egg or an embryo at a developmental stage before the blastogenic stage, but includes an embryo at a developmental stage after the blastogenic stage including a foetation or a blastoblast.
  • Mammals include, but are not limited to, primates such as humans and monkeys, rodents such as mice, rats, rabbits and guinea pigs, cats, dogs, sheep, pigs, cows, horses, donkeys, goats and ferrets.
  • Muse cells used in the cell preparation of the present invention are clearly distinguished from embryonic stem cells (ES cells) and induced pluripotent stem (iPS) cells in that they are directly separated from living tissues with markers.
  • ES cells embryonic stem cells
  • iPS induced pluripotent stem
  • “membranous tissue” refers to tissues such as bone, synovium, fat, blood, bone marrow, skeletal muscle, dermatitis, ligaments, tendons, dental pulp, umbilical cord, umbilical cord blood, sheep membrane, and tissues existing in various organs.
  • Muse cells can be obtained from bone marrow, skin, adipose tissue, blood, pulp, umbilical cord, umbilical cord blood, amniotic membrane and the like.
  • Muse cells may be prepared from cultured mesenchymal cells such as fibroblasts and bone marrow mesenchymal stem cells using the above-mentioned preparation means.
  • the cell population containing Muse cells used in the cell preparation of the present invention can produce cells resistant to the external stress by giving an external stress stimulus to the mesenchymal tissue or cultured mesenchymal cells of the living body. It can also be prepared by a method involving the recovery of cells that have been selectively grown to increase their abundance.
  • the external stress is protease treatment, culture at low oxygen concentration, culture under low phosphoric acid condition, culture at low serum concentration, culture under low nutrition condition, culture under heat shock exposure, low temperature.
  • Culturing in, freezing, culturing in the presence of harmful substances, culturing in the presence of active oxygen, culturing under mechanical stimulation, culturing under shaking treatment, culturing under pressure treatment or physical impact It may be any or a combination of two or more.
  • the treatment time with the protease is preferably 0.5 to 36 hours in total in order to give external stress to the cells.
  • the protease concentration may be any concentration used when peeling cells adhering to the culture vessel, breaking up cell clusters into single cells, or recovering single cells from tissues.
  • the protease is preferably a serine protease, an aspartic protease, a cysteine protease, a metal protease, a glutamate protease or an N-terminal threonine protease. Further, it is preferable that the protease is trypsin, collagenase or dyspase.
  • the Muse cells used may be autologous or allogeneic to the recipient undergoing cell transplantation.
  • a Muse cell or a cell population containing Muse cells can be prepared from a living tissue using, for example, SSEA-3 positive or double positive of SSEA-3 and CD105 as an index, but on human adult skin. Is known to include various types of stem and progenitor cells. However, Muse cells are not the same as these cells. Such stem cells and progenitor cells include skin-derived progenitor cells (SKP), neural ridge stem cells (NCSC), melanoblasts (MB), perivascular cells (PC), endothelial progenitor cells (EP), and adipose-derived stem cells (ADSC). ). Muse cells can be prepared using the "non-expression" of a marker unique to these cells as an index.
  • SSEA-3 positive or double positive of SSEA-3 and CD105 as an index
  • Muse cells are not the same as these cells.
  • Such stem cells and progenitor cells include skin-derived progenitor cells (SKP), neural ridge stem cells (NCSC), melanoblasts (
  • Muse cells include CD34 (markers for EP and ADSC), CD117 (c-kit) (markers for MB), CD146 (markers for PC and ADSC), CD271 (NGFR) (markers for NCSC), NG2 (PC marker), vWF factor (Fonville brand factor) (EP marker), Sox10 (NCSC marker), Snai1 (SKP marker), Slug (SKP marker), Tyrp1 (MB marker), and At least one of 11 markers selected from the group consisting of Dct (MB marker), for example, 2, 3, 4, 5, 6, 7, 8, 9, 10 The non-expression of 11 or 11 markers can be separated as an index.
  • the non-expression of CD117 and CD146 can be used as an index, and further, the non-expression of CD117, CD146, NG2, CD34, vWF and CD271 can be used as an index.
  • the non-expression of 11 markers can be used as an index for preparation.
  • Muse cells having the above characteristics used in the cell preparation of the present invention include: (I) Low or no telomerase activity; (Ii) Has the ability to differentiate into cells of any of the three germ layers; It may have at least one property selected from the group consisting of (iii) no neoplastic growth; and (iv) capable of self-renewal.
  • the Muse cells used in the cell preparation of the present invention have all of the above properties.
  • telomerase activity means, for example, low or undetectable when telomerase activity is detected using TRAPEZE XL telomerase detection kit (Millipore).
  • Low telomerase activity means, for example, telomerase having the same level of telomerase activity as somatic human fibroblasts, or 1/5 or less, preferably 1/10 or less of that of Hela cells. It means having activity.
  • Muse cells have the ability to differentiate into three germ layers (endoderm lineage, mesodermal lineage, and ectodermal lineage) in invitro and invivo, and are, for example, induced and cultured in vitro.
  • hepatocytes including cells expressing hepatoblasts or hepatocyte markers
  • nerve cells including cells expressing hepatoblasts or hepatocyte markers
  • skeletal muscle cells including cells expressing hepatoblasts or hepatocyte markers
  • nerve cells skeletal muscle cells
  • smooth muscle cells smooth muscle cells
  • bone cells fat cells and the like.
  • fat cells and the like.
  • it may show the ability to differentiate into three germ layers.
  • it has the ability to migrate and engraft in injured organs (heart, skin, spinal cord, liver, muscle, etc.)
  • Muse cells proliferate at a proliferation rate of about 1.3 days, but in suspension culture, they proliferate from one cell, and when they form an embryo-like cell mass and reach a certain size, they proliferate in about 14 days. However, when these embryo-like cell masses are transferred to adhesive culture, cell proliferation is started again, and the cells proliferated from the cell mass spread at a proliferation rate of about 1.3 days. .. Furthermore, when transplanted into the testis, it has the property of not becoming cancerous for at least half a year.
  • Muse cells have a self-renewal (self-renewal) ability.
  • self-renewal means that the differentiation of cells contained in embryoid body-like cell clusters obtained by culturing one Muse cell in suspension culture into three germ layer cells can be confirmed, and at the same time, By bringing the cells of the embryo-like cell mass to the suspension culture again with one cell, the next generation embryo-like cell mass is formed, and from there, the embryos in the three germ layer differentiation and suspension culture are again formed. It means that a morphological cell mass can be confirmed. Self-renewal may be repeated once or a plurality of cycles.
  • the cell preparations containing Muse cells of the present invention are not limited, but the Muse cells obtained in (1) above or a cell population containing Muse cells can be prepared with physiological saline or a cell population containing Muse cells. It is obtained by suspending in a suitable buffer (eg, phosphate buffered physiological saline). In this case, if the number of Muse cells separated from autologous or allogeneic tissues is small, the cells may be cultured before cell transplantation and proliferated until a predetermined number of cells is obtained. As already reported (Pamphlet of International Publication No.
  • Muse cells do not become tumors, so even if cells recovered from living tissues are contained in an undifferentiated state, there is a possibility of canceration. Is low and safe.
  • the culture of the collected Muse cells is not particularly limited, but can be carried out in a normal growth medium (for example, ⁇ -minimum essential medium ( ⁇ -MEM) containing 10% calf serum). More specifically, with reference to the above-mentioned International Publication No. WO2011 / 007900 pamphlet, in the culture and proliferation of Muse cells, a medium, additives (for example, antibiotics, serum) and the like are appropriately selected, and a predetermined concentration of Muse cells is obtained. A solution containing the above can be prepared.
  • a medium, additives for example, antibiotics, serum
  • a cell preparation containing Muse cells of the present invention When a cell preparation containing Muse cells of the present invention is administered to a human subject, it is effective to collect bone marrow fluid from human intestinal bone and, for example, cultivate bone marrow mesenchymal stem cells as adherent cells from the bone marrow fluid. After increasing the therapeutic amount of Muse cells until the amount of cells obtained is reached, Muse cells can be separated using the antigen marker of SSEA-3 as an index, and autologous or allogeneic Muse cells can be prepared as a cell preparation. Alternatively, for example, bone marrow mesenchymal stem cells obtained from bone marrow fluid are cultured under external stress conditions to proliferate and concentrate Muse cells until an effective therapeutic amount is reached, and then autologous or allogeneic Muse cells are cultured. It can be prepared as a preparation.
  • DMSO dimethyl sulfoxide
  • serum albumin etc.
  • antibiotics, etc. are contained in the cell preparations to prevent bacterial contamination and proliferation. You may.
  • other formulationally acceptable ingredients eg, carriers, excipients, disintegrants, buffers, emulsifiers, suspensions, soothing agents, stabilizers, preservatives, preservatives, saline, etc.
  • carriers, excipients, disintegrants, buffers, emulsifiers, suspensions, soothing agents, stabilizers, preservatives, preservatives, saline, etc. It may be contained in a cell preparation. Those skilled in the art can add these factors and agents to cell preparations in appropriate concentrations.
  • Muse cells can also be used as a pharmaceutical composition containing various additives.
  • the number of Muse cells contained in the cell preparation prepared above determines the sex, age, body weight, condition of the affected area, and cells to be used so that the desired effect can be obtained in the treatment or prevention of vascular dementia. It can be adjusted as appropriate in consideration of the state of.
  • the target individuals include, but are not limited to, mammals such as humans.
  • the cell preparation containing Muse cells of the present invention is used at intervals (for example, twice a day, once a day, twice a week, 1) a plurality of times until a desired therapeutic effect is obtained. It may be administered once a week, once every two weeks, once a month, once every two months, once every three months, once every six months).
  • the therapeutically effective dose is, for example, 1 ⁇ 10 3 cells to 1 ⁇ 10 10 cells per individual, and a dose of 1 to 10 times in one year. preferable.
  • the total dose administered to an individual is not limited, but is limited to 1 ⁇ 10 3 cells to 1 ⁇ 10 11 cells, preferably 1 ⁇ 10 4 cells to 1 ⁇ 10 10 cells, and more preferably 1 ⁇ 10 5 cells to 1 ⁇ 10. 9 cells and the like can be mentioned.
  • the Muse cells used in the cell preparation of the present invention have the property of migrating to the damaged site of the brain and engrafting. Therefore, in the administration of the cell preparation, the administration site and administration method of the cell preparation are not limited, and intravenous administration (intravenous, intraarterial), intramedullary administration, intrathecal brain, and the like are exemplified.
  • the cell preparation containing Muse cells of the present invention can realize repair and regeneration of a damaged site in a patient with vascular dementia.
  • Muse cells were obtained according to the method described in International Publication No. WO2011 / 007900 on the separation and identification of human Muse cells. Muse cells were expanded and enriched by culturing mesenchymal stem cells under stress conditions.
  • ⁇ Preparation of rat cerebrovascular dementia model The experimental protocol using rats in this example complies with the "Regulations on Animal Experiments, etc. of Tohoku University", and the experimental animals were prepared in accordance with the regulations under the supervision of the Animal Experiment Center of Tohoku University.
  • a chronic cerebral hypoperfusion model was used as a rat vascular dementia model. Specifically, in SD rats (male 8-10 weeks old, body weight 250-300 g), bilateral neck as described in Journal of Cerebral Blood Flow & Metabolism 2016, vol. 36 (9) 1592-1602. Chronic cerebral hypoperfusion was achieved by performing arterial ligation. In this model, cerebral blood flow is reduced to about 30 to 50% of normal, and cognitive impairment develops with white matter lesions and hippocampal neurodegeneration.
  • ⁇ Muse cell administration> Divided the chronic cerebral hypoperfusion model rats into two groups, treatment after one week (equivalent to acute cerebrovascular dementia), Muse cells (3 ⁇ 10 5 cells / PBS) or HBSS (the vehicle) the It was administered by injection into the jugular vein of rats in the group.
  • an immunosuppressant FK506 was administered to cerebral infarction rats before transplantation.
  • the Burns Maze a test of spatial memory, consists of a disk platform with 18 circular holes evenly arranged along the perimeter. There is a black escape box under one of the holes. After acclimatizing the rats to the maze for 1 day, the time to reach the escape box and the exploration strategy were recorded for 4 days (Days 1 to 4) (tests were performed 3 times per day). The search strategies were classified into three categories: 1) direct, 2) serial, and 3) random.
  • ⁇ Histological evaluation> After the above behavioral tests, the hippocampal region of the rat brain was isolated to prepare tissue sections and histologically evaluated by Kluver-Barrera staining. Apoptosis analysis was performed by examining the expression of Bcl-2 by Western blotting. In the Muse cell administration group, engraftment of human Muse cells was confirmed by human mitochondrial staining. The CA1 region, CA2-3 region, and CA4 region of the hippocampus were stained, and the following pyramidal cell counts and neuropathological scores were calculated and graphed.
  • Pyramidal cell count (%) number of live pyramidal cells / total number of pyramidal cells
  • Neuropathology score 0 No lesion, 1: Dead cells 1-10%, 2: Dead cells 11-25%, 3: Dead cells 26-45%, 4: Dead cells 46% or more
  • FIG. 3 The results of the CA1 region are shown in FIG. 3, the results of the CA2-3 region are shown in FIG. 4, and the results of the CA4 region are shown in FIG.
  • FIG. 6 shows a summary of the results of the entire hippocampus.
  • the Muse cell-administered group showed a significant improvement in pyramidal cell count and a significant improvement in neuropathological score. From this result, it was considered that the administered Muse cells engraft in the hippocampal region of the brain, protect nerve cells, and maintain cognitive function.
  • ⁇ Chronic phase administration evaluation> To the above chronic cerebral hypoperfusion model rats were administered treatment after 6 weeks Muse cells (corresponding to chronic phase of cerebral vascular dementia) (3 ⁇ 10 5 cells / PBS) or HBSS (vehicle), and the Similarly, cognitive-behavioral evaluation (starting 9 weeks after the procedure) and histological evaluation (10 weeks after the procedure) using the Burns labyrinth were performed. As a histological evaluation, in addition to the neuropathological score, myelin staining and CD34 staining were performed. Regarding apoptosis, the expressions of the pro-apoptotic markers Bid and Bim and the anti-apoptotic markers Bcl-2 and Bcl-xL were analyzed by Western blotting. In the Muse cell administration group, engraftment of human Muse cells was confirmed by human mitochondrial staining.
  • FIGS. 8 and 9 The results of the cognitive behavioral evaluation test are shown in FIGS. 8 and 9. Latency tended to be shortened in the Muse-administered group on Day 2 and Day 3. In addition, the ratio of direct to cereal in the search strategy was also significantly improved in Day 2 in the Muse-administered group. Thus, it was found that Muse cells can improve cognitive function even in the chronic phase administration.
  • FIG. 11 shows a summary of the results of the entire hippocampus.
  • the Muse cell-administered group showed a significant improvement in the neuropathological score in the CA1, CA2-3, and CA4 regions.
  • the Muse cell-administered group showed a significant improvement in the neuropathological score in the entire hippocampus. From these results, it was considered that the administered Muse cells engraft in the hippocampal region of the brain, protect nerve cells, and maintain cognitive function.
  • the results of CD34 staining are shown in FIGS. 13 and 14.
  • the Muse cell-administered group showed a significant increase in CD34-positive cells in the CA1, CA2-3, and CA4 regions.
  • the results calculated for the entire hippocampus also showed a significant increase in CD34-positive cells in the Muse cell-administered group. From these results, it was considered that the administered Muse cells engraft in the hippocampal region of the brain and promote angiogenesis to protect nerve cells and maintain cognitive function.
  • Muse cells were obtained according to the method described in International Publication No. WO2011 / 007900 on the separation and identification of human Muse cells.
  • Commercially available mesenchymal cells (MSC, Lonza) were used as the source of Muse cells.
  • the Muse cells used for transplantation express green fluorescent protein (GFP), and the lentivirus-GFP gene is pre-labeled so that the cells are labeled with this.
  • GFP-labeled Muse cells were separated by FACS as double positive cells of GFP and SSEA-3 to form a Muse cell group.
  • GFP-positive MSCs were isolated by FACS to form an MSC group, and the remaining cells from which Muse cells were isolated from GFP-positive MSCs were designated as a non-Muse cell group.
  • ⁇ Histological evaluation> One week after the above cell administration, the rat brain was measured by Nissle staining, and after excluding the sample having cerebral infarction, the brain tissue was fixed and GFAP, which is an astrocyte marker in the brain, was used as a histological evaluation. Glial fibrillary acidic protein), Iba1 which is a marker of microglial cells and an index of neuroinflammation, was stained.
  • the results of GFAP staining are shown in FIGS. 16 and 17.
  • the Muse cell-administered group showed a significant decrease in GFAP-positive cells in the CA1 region, CA2-3 region, CA4 region, and DG (dentate gyrus) as compared with the non-Muse cell group.
  • the Muse cell-administered group showed a tendency to decrease GFAP-positive cells in the CA1 region, CA2-3 region, CA4 region, and DG (dentate gyrus) as compared with the MSC-administered group.
  • the results of Iba1 staining are shown in FIGS. 18 and 19.
  • the Muse cell-administered group showed a significant decrease in Iba1-positive cells in the CA1 region, CA4 region, and DG (dentate gyrus), and showed a decreasing tendency in the CA2-3 region, as compared with the non-Muse cell group. ..
  • the Muse cell-administered group showed a significant decrease in Iba1-positive cells in the CA1 region, CA4 region, and DG (dentate gyrus) as compared with the MSC-administered group, and showed a decreasing tendency in the CA2-3 region.
  • the expression of astrocytes and microglial cell markers in the Muse cell-administered group was lower than that in the non-Muse cell-administered group and the MSC-administered group, and it is considered that the administered Muse cells repair the disorder in the hippocampal region of the brain.
  • the cell preparation of the present invention When the cell preparation of the present invention is administered to a patient who has developed cerebrovascular dementia or a patient suspected of having cerebrovascular dementia, it repairs a damaged part of the brain that has caused white matter lesions and causes cognitive dysfunction. It can be improved or recovered, and can be applied to the treatment and prevention of cerebrovascular dementia.

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Abstract

脳血管性認知症の治療や予防のための細胞製剤を提供することを課題とする。本発明は、生体の間葉系組織又は培養間葉系細胞に由来するSSEA-3陽性の多能性幹細胞(Muse細胞)を含む、脳血管性認知症を治療または予防するための細胞製剤を提供する。

Description

脳血管性認知症の治療または予防剤
 本発明は、再生医療のための細胞製剤に関する。より具体的には、脳血管性認知症の治療または予防に有効な多能性幹細胞を含有する細胞製剤に関する。
 高齢化社会を迎え、増加する認知症をどのように抑えていくかという課題が世界的な問題となっている。認知症は患者自身のみならず、家族への精神的、肉体的、経済的負担も大きく、深刻な社会的問題である。
 認知症は、アルツハイマー型認知症と脳血管性認知症とに大別される。アルツハイマー型認知症は、老人斑、神経原線維変化、神経細胞の脱落と脳の萎縮等が生じるが、原因は未だ不明である。一方、脳血管性認知症は、脳の血管障害、脳梗塞や脳出血により、脳の神経細胞に酸素や栄養が行き届かなくなり生じる。
 日本で使用されているアルツハイマー型認知症治療薬としては、アリセプト、メマリー、レミニール、イクセロンが存在する。一方、脳血管性認知症そのものを治療する薬はなく、脳の血管障害、脳梗塞等の処置のために、脳血流改善薬、脳血管拡張薬、脳代謝賦活薬等が使用されている。
 このように、脳血管性認知症に対する根本的な治療薬がないのが現状であり、脳血管性認知症の治療や予防に有効な医薬を提供することは急務である。
 一方、近年の再生医療の研究の進展により、骨髄幹細胞移植等による脳血管性認知症の治療が探索されつつある。
 例えば、特許文献1には骨髄由来間葉系幹細胞を有効成分とするシナプス形成剤が開示され、脳血管性認知症モデルに対しても効果が見られたことが記載されている。
 しかしながら、現在も、安全性と有効性が確認された、脳血管性認知症を完全に治癒させる治療法は見いだされておらず、根治的治療の実現が待たれている。
 一方、出澤らの研究により、間葉系細胞画分に存在し、遺伝子導入やサイトカイン等による誘導操作なしに得られる、SSEA-3(Stage-Specific Embryonic Antigen-3)を表面抗原として発現している多能性幹細胞(Multilineage-differentiating Stress Enduringcells;Muse細胞)が間葉系細胞画分の有する多能性を担っており、組織再生を目指した疾患治療に応用できる可能性があることが分かってきた(例えば、特許文献2;非特許文献1~3)。Muse細胞は、骨髄液、脂肪組織(Ogura,F.,et al.,Stem Cells Dev.,Nov 20,2013(Epub)(published on Jan 17,2014))や皮膚の真皮結合組織等から得ることができるほか、広く組織や臓器の結合組織に存在することが知られている。
 特許文献3にはMuse細胞が脳梗塞の治療に有効であることが開示されているが、脳血管性認知症に対する効果は不明であった。
国際公開2017/188457号 特許第5185443号 特開2018-111722号
Kuroda Y et al. Proc Natl Acad Sci USA 2010; 107: 8639-8643. Wakao S et al. Proc Natl Acad Sci USA 2011; 108: 9875-9880. Kuroda Y et al. Nat Protc 2013; 8: 1391-1415.
 本発明は、脳血管性認知症の治療や予防のための細胞製剤を提供することを目的とする。
 本発明者らは、実験的に慢性脳低灌流状態を引き起こすことで誘導された脳血管性認知症モデルラットにヒトMuse細胞を投与することによって、神経細胞を保護し、認知機能を向上させることができることを見出し、それにより、Muse細胞が脳血管性認知症の治療や予防に使用できることを見出し、本発明を完成するに至った。
 すなわち、本発明は、以下の通りである。
[1]生体の間葉系組織又は培養間葉系細胞に由来するSSEA-3陽性の多能性幹細胞を含む、脳血管性認知症を治療または予防するための細胞製剤。
 [2]脳血管性認知症が脳梗塞を伴わない脳血管性認知症である、[1]に記載の細胞製剤。
 [3]脳血管性認知症が白質病変を伴う脳血管性認知症である、[1]または[2]に記載の細胞製剤。
 [4]前記多能性幹細胞が、以下の性質の全てを有する多能性幹細胞である、上記[1]~[3]のいずれかに記載の細胞製剤:
 (i)テロメラーゼ活性が低いか又は無い;
 (ii)三胚葉のいずれの胚葉の細胞に分化する能力を持つ;
 (iii)腫瘍性増殖を示さない;及び
 (iv)セルフリニューアル能を持つ。
 [5]前記多能性幹細胞が、以下の性質の全てを有する多能性幹細胞である、上記[1]~[4]のいずれかに記載の細胞製剤:
 (i)SSEA-3陽性;
 (ii)CD105陽性;
 (iii)テロメラーゼ活性が低いか又は無い;
 (iv)三胚葉のいずれかの胚葉に分化する能力を持つ;
 (v)腫瘍性増殖を示さない;及び
 (vi)セルフリニューアル能を持つ。
 [6]生体の間葉系組織又は培養間葉系細胞に由来するSSEA-3陽性の多能性幹細胞の、脳血管性認知症を治療又は予防するための細胞製剤の製造における使用。
 [7]生体の間葉系組織又は培養間葉系細胞に由来するSSEA-3陽性の多能性幹細胞を含む細胞製剤の有効量を、治療又は予防を必要とする脳血管性認知症患者に投与する工程を含む、脳血管性認知症の治療方法。
 本発明によれば、脳血管性認知症の患者または脳血管性認知症が疑われる患者に対し、Muse細胞を血管等から投与、あるいは脳内に直接投与することにより、脳の障害部位を修復し、認知症の発症を予防したり、症状を改善又は回復させることができる。したがって、本発明のMuse細胞を含む細胞製剤は脳血管性認知症の治療または予防に使用できることができる。
 Muse細胞は、白質病変などを生じた脳の障害部位に効率的に遊走して生着することができ、生着した部位で錐体細胞などに自発的に分化すると考えられるので移植に先立って治療対象細胞への分化誘導が不要である。また、非腫瘍形成性であり安全性にも優れる。さらに、Muse細胞は免疫拒絶を受けないことから、ドナーから製造された他家製剤による治療も可能である。従って、上記に示す優れた性能を有するMuse細胞によって、脳血管性認知症の治療や予防に対する容易に実行可能な手段を提供することができる。
施術1週間後にMuse細胞またはベヒクルを投与したときの、Muse細胞投与群およびベヒクル投与群のバーンズ迷路における到達時間を示すグラフ。**はP<0.01を示す。(なお、図1、図2はtwo way ANOVA、Bonferroni post hoc testで統計処理し、その他の図はt 検定で統計処理した。) 施術1週間後にMuse細胞またはベヒクルを投与したときの、Muse投与群およびベヒクル投与群のバーンズ迷路におけるDirectとSerialの割合を示すグラフ。*はP<0.05を示す。 施術1週間後にMuse細胞またはベヒクルを投与したときの、Muse細胞投与群およびベヒクル投与群の海馬CA1領域のKluver-Barrera 染色結果を示す顕微鏡写真と、錐体細胞カウントおよび神経病理スコアを示すグラフ。 施術1週間後にMuse細胞またはベヒクルを投与したときの、Muse細胞投与群およびベヒクル投与群の海馬CA2-3領域のKluver-Barrera 染色結果を示す顕微鏡写真と、錐体細胞カウントおよび神経病理スコアを示すグラフ。 施術1週間後にMuse細胞またはベヒクルを投与したときの、Muse細胞投与群およびベヒクル投与群の海馬CA4領域のKluver-Barrera 染色結果を示す顕微鏡写真を示す顕微鏡写真と、錐体細胞カウントおよび神経病理スコアを示すグラフ。 施術1週間後にMuse細胞またはベヒクルを投与したときの、Muse細胞投与群およびベヒクル投与群の海馬全体における錐体細胞カウントおよび神経病理スコアを示すグラフ。 施術1週間後にMuse細胞またはベヒクルを投与したときの、Muse細胞投与群およびベヒクル投与群の海馬におけるBcl-2の発現量をウエスタンブロットにより解析した結果を示す写真とグラフ。 施術6週間後にMuse細胞またはベヒクルを投与したときの、Muse細胞投与群およびベヒクル投与群のバーンズ迷路における到達時間を示すグラフ。 施術6週間後にMuse細胞またはベヒクルを投与したときの、Muse投与群およびベヒクル投与群のバーンズ迷路におけるDirectとSerialの割合を示すグラフ。*はP<0.05を示す。 施術6週間後にMuse細胞またはベヒクルを投与したときの、Muse細胞投与群およびベヒクル投与群の海馬CA1領域、CA2-3領域、CA4領域およびDG(歯状回)領域の神経病理スコアを示すグラフ。*、**はそれぞれP<0.05、P<0.01を示す。 施術6週間後にMuse細胞またはベヒクルを投与したときの、Muse細胞投与群およびベヒクル投与群の海馬全体における神経病理スコアを示すグラフ。*はP<0.05を示す。 施術6週間後にMuse細胞またはベヒクルを投与したときの、Muse細胞投与群およびベヒクル投与群の脳梁におけるミエリン密度を示すグラフ。*はP<0.05を示す。 施術6週間後にMuse細胞またはベヒクルを投与したときの、Muse細胞投与群およびベヒクル投与群の海馬CA1領域、CA2-3領域、CA4領域およびDG(歯状回)領域のCD34陽性細胞数を示すグラフ。*、**はそれぞれP<0.05、P<0.01を示す。 施術6週間後にMuse細胞またはベヒクルを投与したときの、Muse細胞投与群およびベヒクル投与群の海馬全体におけるCD34陽性細胞数を示すグラフ。**はP<0.01を示す。 施術6週間後にMuse細胞またはベヒクルを投与したときの、Muse細胞投与群およびベヒクル投与群の海馬におけるプロアポトーシスマーカー(BidとBim)およびアンチアポトーシスマーカー(Bcl-2とBcl-xL)の発現解析結果を示すグラフ。*、***はそれぞれP<0.05、P<0.001を示す。 施術1週間後にMuse細胞または非Muse細胞を投与したときの、Muse細胞投与群および非Muse細胞投与群の海馬CA1領域、CA2-3領域、CA4領域およびDG(歯状回)領域の面積当たりのGFAP輝度を示すグラフ。 施術1週間後にMuse細胞またはMSCを投与したときの、Muse細胞投与群およびMSC投与群の海馬CA1領域、CA2-3領域、CA4領域およびDG(歯状回)領域の面積当たりのGFAP輝度を示すグラフ。 施術1週間後にMuse細胞または非Muse細胞を投与したときの、Muse細胞投与群および非Muse細胞投与群の海馬CA1領域、CA2-3領域、CA4領域およびDG(歯状回)領域の面積当たりのIba1輝度を示すグラフ。 施術1週間後にMuse細胞またはMSCを投与したときの、Muse細胞投与群およびMSC投与群の海馬CA1領域、CA2-3領域、CA4領域およびDG(歯状回)領域の面積当たりのIba1輝度を示すグラフ。
<1>Muse細胞を含む細胞製剤
 本発明は、SSEA-3陽性の多能性幹細胞(Muse細胞)を含む、脳血管性認知症を治療または予防するための細胞製剤に関する。なお、治療には症状の治癒、緩和、再発防止などが含まれる。予防には認知症の発症を防ぐことや白質病変の進行を防ぐことなどが含まれる。本発明を以下に詳細に説明する。
1.適用疾患
 本発明のSSEA-3陽性の多能性幹細胞(Muse細胞)を含む細胞製剤は、脳血管性認知症の治療または予防に使用される。
 脳血管性認知症は、1)認知症の存在、2)脳血管障害の存在、および3)両者の関連性(因果関係)によって診断される。脳血管性認知症には、多発梗塞性認知症、小血管病性認知症、戦略的部位の単一病変による認知症、低灌流性認知症、脳出血性認知症などが含まれるが、白質病変を伴う認知症であることが好ましい。また、本発明における認知症は、脳梗塞を伴わない認知症であることが好ましい。
2.細胞製剤
(1)多能性幹細胞(Muse細胞)
 本発明の細胞製剤に使用される多能性幹細胞は、出澤らが、ヒト生体内にその存在を見出し、「Muse(Multilineage-differentiating Stress Enduring)細胞」と命名した細胞である。Muse細胞は、骨髄液、脂肪組織(Ogura,F.,et al.,Stem Cells Dev.,Nov20,2013(Epub)(published on Jan 17,2014))や皮膚の真皮結合組織等から得ることができるほか、広く組織や臓器の結合組織に存在することが知られている。また、この細胞は、多能性幹細胞と間葉系幹細胞の両方の性質を有する細胞であり、例えば、細胞表面マーカーである「SSEA-3(Stage-specific embryonic antigen-3)」陽性細胞、好ましくはSSEA-3陽性かつCD105陽性の二重陽性細胞として同定される。したがって、Muse細胞又はMuse細胞を含む細胞集団は、例えば、SSEA-3単独又はSSEA-3及びCD105の発現を指標として生体組織から分離することができる。Muse細胞の分離法、同定法、及び特徴などの詳細は、国際公開第WO2011/007900号に開示されている。また、Muse細胞が様々な外的ストレスに対する耐性が高いことを利用して、蛋白質分解酵素処理や、低酸素条件、低リン酸条件、低血清濃度、低栄養条件、熱ショックへの暴露、有害物質存在下、活性酸素存在下、機械的刺激下、圧力処理下など各種外的ストレス条件下での培養によりMuse細胞を選択的に濃縮することができる。なお、本明細書においては、脳血管性認知症を治療するための細胞製剤として、SSEA-3を指標として用いて、生体の間葉系組織又は培養間葉系組織から調製された多能性幹細胞(Muse細胞)又はMuse細胞を含む細胞集団を単に「SSEA-3陽性細胞」と記載することがある。また、本明細書においては、「非Muse細胞」とは、生体の間葉系組織又は培養間葉系細胞に含まれる細胞であって、「SSEA-3陽性細胞」以外の細胞を指すことがある。
 Muse細胞又はMuse細胞を含む細胞集団は、細胞表面マーカーであるSSEA-3又はSSEA-3及びCD105を指標として生体組織(例えば、間葉系組織)から調製することができる。ここで、「生体」とは、哺乳動物の生体をいう。本発明において、生体には、受精卵や胞胚期より発生段階が前の胚は含まれないが、胎児や胞胚を含む胞胚期以降の発生段階の胚は含まれる。哺乳動物には、限定されないが、ヒト、サル等の霊長類、マウス、ラット、ウサギ、モルモット等のげっ歯類、ネコ、イヌ、ヒツジ、ブタ、ウシ、ウマ、ロバ、ヤギ、フェレット等が挙げられる。本発明の細胞製剤に使用されるMuse細胞は、生体の組織から直接マーカーを持って分離される点で、胚性幹細胞(ES細胞)や人工多能性幹(iPS)細胞と明確に区別される。また、「間葉系組織」とは、骨、滑膜、脂肪、血液、骨髄、骨格筋、真皮、靭帯、腱、歯髄、臍帯、臍帯血、羊膜などの組織及び各種臓器に存在する組織をいう。例えば、Muse細胞は、骨髄や皮膚、脂肪組織、血液、歯髄、臍帯、臍帯血、羊膜などから得ることができる。例えば、生体の間葉系組織を採取し、この組織からMuse細胞を調製し、利用することが好ましい。また、上記調製手段を用いて、線維芽細胞や骨髄間葉系幹細胞などの培養間葉系細胞からMuse細胞を調製してもよい。
 また、本発明の細胞製剤に使用されるMuse細胞を含む細胞集団は、生体の間葉系組織又は培養間葉系細胞に外的ストレス刺激を与えることにより、該外的ストレスに耐性の細胞を選択的に増殖させてその存在比率を高めた細胞を回収することを含む方法によっても調製することができる。
 前記外的ストレスは、プロテアーゼ処理、低酸素濃度での培養、低リン酸条件下での培養、低血清濃度での培養、低栄養条件での培養、熱ショックへの暴露下での培養、低温での培養、凍結処理、有害物質存在下での培養、活性酸素存在下での培養、機械的刺激下での培養、振とう処理下での培養、圧力処理下での培養又は物理的衝撃のいずれか又は複数の組み合わせであってもよい。
 前記プロテアーゼによる処理時間は、細胞に外的ストレスを与えるために合計0.5~36時間行うことが好ましい。また、プロテアーゼ濃度は、培養容器に接着した細胞を剥がすとき、細胞塊を単一細胞にばらばらにするとき、又は組織から単一細胞を回収するときに用いられる濃度であればよい。
 前記プロテアーゼは、セリンプロテアーゼ、アスパラギン酸プロテアーゼ、システインプロテアーゼ、金属プロテアーゼ、グルタミン酸プロテアーゼ又はN末端スレオニンプロテアーゼであることが好ましい。更に、前記プロテアーゼがトリプシン、コラゲナーゼ又はジスパーゼであることが好ましい。
 なお、本発明の細胞製剤においては、使用されるMuse細胞は、細胞移植を受けるレシピエントに対して自家であってもよく、又は他家であってもよい。
 上記のように、Muse細胞又はMuse細胞を含む細胞集団は、例えば、SSEA-3陽性又はSSEA-3及びCD105の二重陽性を指標にして生体組織から調製することができるが、ヒト成人皮膚には、種々のタイプの幹細胞及び前駆細胞を含むことが知られている。しかしながら、Muse細胞は、これらの細胞と同じではない。このような幹細胞及び前駆細胞には、皮膚由来前駆細胞(SKP)、神経堤幹細胞(NCSC)、メラノブラスト(MB)、血管周囲細胞(PC)、内皮前駆細胞(EP)、脂肪由来幹細胞(ADSC)が挙げられる。これらの細胞に固有のマーカーの「非発現」を指標として、Muse細胞を調製することができる。より具体的には、Muse細胞は、CD34(EP及びADSCのマーカー)、CD117(c-kit)(MBのマーカー)、CD146(PC及びADSCのマーカー)、CD271(NGFR)(NCSCのマーカー)、NG2(PCのマーカー)、vWF因子(フォンビルブランド因子)(EPのマーカー)、Sox10(NCSCのマーカー)、Snai1(SKPのマーカー)、Slug(SKPのマーカー)、Tyrp1(MBのマーカー)、及びDct(MBのマーカー)からなる群から選択される11個のマーカーのうち少なくとも1個、例えば、2個、3個、4個、5個、6個、7個、8個、9個、10個又は11個のマーカーの非発現を指標に分離することができる。例えば、限定されないが、CD117及びCD146の非発現を指標に調製することができ、さらに、CD117、CD146、NG2、CD34、vWF及びCD271の非発現を指標に調製することができ、さらに、上記の11個のマーカーの非発現を指標に調製することができる。
 また、本発明の細胞製剤に使用される上記特徴を有するMuse細胞は、以下: 
(i)テロメラーゼ活性が低いか又は無い;
(ii)三胚葉のいずれの胚葉の細胞に分化する能力を持つ;
(iii)腫瘍性増殖を示さない;及び
(iv)セルフリニューアル能を持つ
 からなる群から選択される少なくとも1つの性質を有してもよい。好ましくは、本発明の細胞製剤に使用されるMuse細胞は、上記性質を全て有する。
 上記(i)について、「テロメラーゼ活性が低いか又は無い」とは、例えば、TRAPEZE XL telomerase detection kit(Millipore社)を用いてテロメラーゼ活性を検出した場合に、低いか又は検出できないことをいう。テロメラーゼ活性が「低い」とは、例えば、体細胞であるヒト線維芽細胞と同程度のテロメラーゼ活性を有しているか、又はHela細胞に比べて1/5以下、好ましくは1/10以下のテロメラーゼ活性を有していることをいう。
 上記(ii)について、Muse細胞は、in vitro及びin vivoにおいて、三胚葉(内胚葉系、中胚葉系、及び外胚葉系)に分化する能力を有し、例えば、in vitroで誘導培養することにより、肝細胞(肝芽細胞又は肝細胞マーカーを発現する細胞を含む)、神経細胞、骨格筋細胞、平滑筋細胞、骨細胞、脂肪細胞等に分化し得る。また、in vivoで精巣に移植した場合にも三胚葉に分化する能力を示す場合がある。さらに、静注により生体に移植することで傷害を受けた臓器(心臓、皮膚、脊髄、肝、筋肉等)に遊走及び生着し、組織に応じた細胞に分化する能力を有する。
 上記(iii)について、Muse細胞は、増殖速度約1.3日で増殖するが、浮遊培養では1細胞から増殖し、胚様体様細胞塊を作り一定の大きさになると14日間程度で増殖が止まる、という性質を有するが、これらの胚様体様細胞塊を接着培養に移行すると、再び細胞増殖が開始され、細胞塊から増殖した細胞が約1.3日の増殖速度で広がっていく。さらに精巣に移植した場合、少なくとも半年間は癌化しないという性質を有する。
 また、上記(iv)について、Muse細胞は、セルフリニューアル(自己複製)能を有する。ここで、「セルフリニューアル」とは、1個のMuse細胞から浮遊培養で培養することにより得られる胚様体様細胞塊に含まれる細胞から3胚葉性の細胞への分化が確認できると同時に、胚様体様細胞塊の細胞を再び1細胞で浮遊培養に持っていくことにより、次の世代の胚様体様細胞塊を形成させ、そこから再び3胚葉性の分化と浮遊培養での胚様体様細胞塊が確認できることをいう。セルフリニューアルは1回又は複数回のサイクルを繰り返せばよい。
(2)Muse細胞を含む細胞製剤の調製及び使用
 本発明のMuse細胞を含む細胞製剤は、限定されないが、上記(1)で得られたMuse細胞又はMuse細胞を含む細胞集団を生理食塩水や適切な緩衝液(例えば、リン酸緩衝生理食塩水)に懸濁させることによって得られる。この場合、自家又は他家の組織から分離したMuse細胞数が少ない場合には、細胞移植前に細胞を培養して、所定の細胞数が得られるまで増殖させてもよい。なお、すでに報告されているように(国際公開第WO2011/007900号パンフレット)、Muse細胞は、腫瘍化しないため、生体組織から回収した細胞が未分化のまま含まれていても癌化の可能性が低く安全である。また、回収したMuse細胞の培養は、特に限定されないが、通常の増殖培地(例えば、10%仔牛血清を含むα-最少必須培地(α-MEM)など)において行うことができる。より詳しくは、上記国際公開第WO2011/007900号パンフレットを参照して、Muse細胞の培養及び増殖において、適宜、培地、添加物(例えば、抗生物質、血清)等を選択し、所定濃度のMuse細胞を含む溶液を調製することができる。ヒト対象に本発明のMuse細胞を含む細胞製剤を投与する場合には、ヒトの腸骨から骨髄液を採取し、例えば、骨髄液からの接着細胞として骨髄間葉系幹細胞を培養して有効な治療量のMuse細胞が得られる細胞量に達するまで増やした後、Muse細胞をSSEA-3の抗原マーカーを指標として分離し、自家又は他家のMuse細胞を細胞製剤として調製することができる。あるいは、例えば、骨髄液から得られた骨髄間葉系幹細胞を外的ストレス条件下で培養して有効な治療量に達するまでMuse細胞を増殖、濃縮した後、自家又は他家のMuse細胞を細胞製剤として調製することができる。
 また、Muse細胞の細胞製剤への使用においては、該細胞を保護するためにジメチルスルフォキシド(DMSO)や血清アルブミン等を、細菌の混入及び増殖を防ぐために抗生物質等を細胞製剤に含有させてもよい。さらに、製剤上許容される他の成分(例えば、担体、賦形剤、崩壊剤、緩衝剤、乳化剤、懸濁剤、無痛化剤、安定剤、保存剤、防腐剤、生理食塩水など)を細胞製剤に含有させてもよい。当業者は、これら因子及び薬剤を適切な濃度で細胞製剤に添加することができる。このように、Muse細胞は、各種添加物を含む医薬組成物として使用することも可能である。
 上記で調製される細胞製剤中に含有するMuse細胞数は、脳血管性認知症の治療や予防において所望の効果が得られるように、対象の性別、年齢、体重、患部の状態、使用する細胞の状態等を考慮して、適宜、調整することができる。なお、対象とする個体はヒトなどの哺乳動物を含むがこれに限定されない。また、本発明のMuse細胞を含む細胞製剤は、所望の治療効果が得られるまで、複数回、適宜、間隔(例えば、1日に2回、1日に1回、1週間に2回、1週間に1回、2週間に1回、1ヶ月に1回、2ヶ月に1回、3ヶ月に1回、6ヶ月に1回)をおいて投与されてもよい。したがって、対象の状態にもよるが、治療上有効量としては、例えば、一個体あたり一回につき1×10細胞~1×1010細胞で1年間の間に1~10回の投与量が好ましい。一個体における投与総量としては、限定されないが、1×10細胞~1×1011細胞、好ましくは1×10細胞~1×1010細胞、さらに好ましくは1×10細胞~1×10細胞などが挙げられる。
 本発明の細胞製剤に使用されるMuse細胞は、脳の障害部位へと遊走し、生着する性質を有する。したがって、細胞製剤の投与において、細胞製剤の投与部位や投与方法は限定されず、血管内投与(静脈内、動脈内)、髄腔内投与、脳実質内などが例示される。
 本発明のMuse細胞を含む細胞製剤は、脳血管性認知症の患者の障害部位の修復及び再生を実現することができる。
 以下の実施例により、本発明をさらに具体的に説明するが、本発明はこれら実施例により何ら限定されるものではない。
<ヒトMuse細胞の調製>
 ヒトMuse細胞の分離及び同定に関する国際公開第WO2011/007900号に記載された方法に準じて、Muse細胞を得た。Muse細胞は間葉系幹細胞をストレス条件下で培養することにより拡大富化培養した。
<ラット脳血管性認知症モデルの作製>
 本実施例におけるラットを用いた実験プロトコールは、「国立大学法人東北大学動物実験等に関する規定」を遵守し、実験動物は、東北大学動物実験センターの監督下において該規定に沿って作製された。ラット脳血管性認知症モデルとして、慢性脳低灌流モデルを用いた。具体的には、SDラット(雄性8-10週齢、体重250~300g)において、Journal of Cerebral Blood Flow & Metabolism 2016, vol. 36(9) 1592-1602に記載されているようにして両側頸動脈結紮術を施すことで慢性脳低灌流状態にさせた。このモデルは脳血流が正常の30~50%程度に低下し、白質病変と海馬の神経変性に伴い認知障害を発症する。
<Muse細胞投与>
 上記の慢性脳低灌流モデルラットを2群に分け、施術1週間後(脳血管性認知症の急性期に相当)に、Muse細胞(3×10細胞/PBS)又はHBSS(ベヒクル)を各群のラットの頸静脈に注射することにより投与した。なお、ラットに対して異種となるヒトMuse細胞を移植するため、移植前に免疫抑制剤(FK506)を脳梗塞ラットに投与した。
<バーンズ迷路を用いた認知行動評価>
 Muse細胞またはベヒクル投与の3週間後にバーンズ迷路を用いた認知行動評価を行った。空間記憶の試験であるバーンズ迷路は、外周沿いに18個の円形孔が均一に配置された円板プラットフォームからなる。そのうちの1個の孔の下に黒い逃走箱が存在する。ラットを1日間迷路に慣れさせた後、4日間(Day1~Day4)にわたって、逃走箱に入るまでの到達時間および探索ストラテジーを記録した(試験は一日当たり3回行った)。
 探索ストラテジーは、1)ダイレクト、2)シリアル、3)ランダムの3つに分類した。
  1)ダイレクト:逃走箱に直接到達するか、逃走箱の隣の箱に到達した次に逃走箱に到達
  2)シリアル:迷路の周辺部をたどりながら逃走箱に到達
  3)ランダム:何回も迷路の中央と周辺を往復しながら穴を探索
 結果を図1および2に示す。到達時間(Latency)はMuse投与群がDay2において有意に短縮した。また、探索ストラテジーにおけるダイレクトとシリアルの割合についても、Muse投与群がDay2において有意に向上していた。このように、Muse細胞投与により、慢性脳低灌流状態により低下した認知機能を向上させることができることが分かった。
<組織学的評価>
 上記の行動学的試験の後、ラットの脳の海馬領域を単離して組織切片を作製し、Kluver-Barrera 染色により組織学的評価を行った。アポトーシス解析はBcl-2の発現をウエスタンブロットにより調べることで行った。なお、Muse細胞投与群ではヒトミトコンドリア染色によりヒトMuse細胞の生着を確認した。
 海馬のCA1領域、CA2-3領域、CA4領域をそれぞれ染色し、下記の錐体細胞(Pyramidal cell)カウントと神経病理スコアを算出してグラフ化した。
錐体細胞(Pyramidal cell)カウント(%)=生錐体細胞数/全錐体細胞数
神経病理スコア
0:病変無し、1:死細胞1~10%、2:死細胞11~25%、3:死細胞26~45%、4:死細胞46%以上
 CA1領域の結果を図3に、CA2-3領域の結果を図4に、CA4領域の結果を図5に示す。また、海馬全体の結果をまとめたものを図6に示す。その結果、CA1領域においてはMuse細胞投与群とベヒクル投与群で有意な差は見られなかったものの、Muse細胞投与群は、CA2-3領域において錐体細胞カウントの有意な向上を示し、CA4領域において錐体細胞カウントの有意な向上および神経病理スコアの有意な改善を示した。海馬全体で計算した結果、Muse細胞投与群は錐体細胞カウントの有意な向上および神経病理スコアの有意な改善を示した。
 この結果から、投与されたMuse細胞は脳の海馬領域に生着し、神経細胞を保護して認知機能を維持することが考えられた。
 また、ウエスタンブロットにより海馬におけるBcl-2の発現量を調べたところ、図6に示すように、Muse細胞投与群でBcl-2の発現が上昇しており、Muse細胞投与によりアポトーシスが抑制されていることが予想された。なお、Tunnel染色によっても同様の結果が見られた(データは示さず)。また、Ki67染色の結果から、Muse細胞投与により海馬における細胞増殖が増加している傾向が見られた。
<慢性期投与評価>
 上記の慢性脳低灌流モデルラットに対し、施術6週間後(脳血管性認知症の慢性期に相当)にMuse細胞(3×10細胞/PBS)又はHBSS(ベヒクル)を投与し、上記と同様に、バーンズ迷路を用いた認知行動評価(施術9週間後に開始)および組織学的評価(施術10週間後)を行った。なお、組織学的評価としては、神経病理スコアに加えて、ミエリン染色、CD34染色を行った。また、アポトーシスに関しては、プロアポトーシスマーカーであるBidとBimおよびアンチアポトーシスマーカーであるBcl-2とBcl-xLの発現をウエスタンブロットで解析した。なお、Muse細胞投与群ではヒトミトコンドリア染色によりヒトMuse細胞の生着を確認した。
 認知行動評価試験の結果を図8および図9に示す。到達時間(Latency)はMuse投与群がDay2およびDay3において短縮傾向がみられた。また、探索ストラテジーにおけるダイレクトとシリアルの割合についても、Muse投与群がDay2において有意に向上していた。このように、Muse細胞は慢性期投与においても認知機能を向上させることができることが分かった。
 神経病理スコアの解析として、CA1領域、CA2-3領域、CA4領域およびDG(歯状回)の結果を図10に示す。また、海馬全体の結果をまとめたものを図11に示す。その結果、Muse細胞投与群は、CA1領域、CA2-3領域、CA4領域において神経病理スコアの有意な改善を示した。また、海馬全体でもMuse細胞投与群は神経病理スコアの有意な改善を示した。これらの結果から、投与されたMuse細胞は脳の海馬領域に生着し、神経細胞を保護して認知機能を維持することが考えられた。
 ミエリン染色の結果を図12に示す。その結果、脳梁(corpus callosum)におけるミエリン密度がMuse細胞投与群において有意に増加していることが分かり、Muse細胞は脳の白質障害の改善効果も有することがわかった。
 CD34染色の結果を図13及び図14に示す。その結果、Muse細胞投与群は、CA1領域、CA2-3領域、CA4領域においてCD34陽性細胞の有意な増加を示した。海馬全体で計算した結果でも、Muse細胞投与群はCD34陽性細胞の有意な増加を示した。これらの結果から、投与されたMuse細胞は脳の海馬領域に生着し、血管新生を促進することで、神経細胞を保護して認知機能を維持することが考えられた。
 また、ウエスタンブロットにより海馬におけるプロアポトーシスマーカーおよびアンチアポトーシスマーカーの発現量を調べたところ、図15に示すように、Muse細胞投与群でプロアポトーシスマーカーの発現が低下し、アンチアポトーシスマーカーの発現が上昇しており、Muse細胞投与によりアポトーシスが抑制されていることが予想された。なお、Tunel染色によっても同様の結果が見られた(データは示さず)。
<ヒトMuse細胞、非Muse細胞、MSCの調製>
 ヒトMuse細胞の分離及び同定に関する国際公開第WO2011/007900号に記載された方法に準じて、Muse細胞を得た。Muse細胞のソースとしては市販の間葉系細胞(MSC、Lonza社)を用いた。また、各組織に生着したことを確認するために、移植に使用されるMuse細胞は、緑色蛍光タンパク質(GFP)を発現し、細胞がこれにより標識されるように、予めレンチウィルス-GFP遺伝子をMuse細胞に導入した。GFPで標識されたMuse細胞をGFPとSSEA-3の二重の陽性細胞としてFACSにて分離し、Muse細胞群とした。また、GFP陽性MSCをFACSにて単離してMSC群とし、GFP陽性MSCからMuse細胞を分離した残りの細胞を非Muse細胞群とした。
<Muse細胞等の投与>
 上記の慢性脳低灌流モデルラットに対し、施術1週間後(脳血管性認知症の急性期に相当)に、GFP-Muse細胞(1×10細胞/個体)、GFP-非Muse細胞(1×10細胞/個体)、GFP-MSC(1×10細胞/個体)をラット左頚静脈に注射することにより投与した。
<組織学的評価>
 上記細胞投与一週間後、ラットの脳をNissle染色で測定し、脳梗塞を起こしている検体を除外した後、脳組織を固定し、組織学的評価として脳内のアストロサイトマーカーであるGFAP(Glial fibrillary acidic protein)、ミクログリア細胞のマーカーであり神経炎症の指標ともなるIba1の染色を行った。
 GFAP染色の結果を図16および図17に示す。その結果、Muse細胞投与群は非Muse細胞群に比較して、CA1領域、CA2-3領域、CA4領域、DG(歯状回)においてGFAP陽性細胞の有意な減少を示した。また、Muse細胞投与群はMSC投与群に比較して、CA1領域、CA2-3領域、CA4領域、DG(歯状回)においてGFAP陽性細胞の減少傾向を示した。
 Iba1染色の結果を図18および図19に示す。その結果、Muse細胞投与群は非Muse細胞群に比較して、CA1領域、CA4領域、DG(歯状回)においてIba1陽性細胞の有意な減少を示し、CA2-3領域において減少傾向を示した。また、Muse細胞投与群はMSC投与群に比較して、CA1領域、CA4領域、DG(歯状回)においてIba1陽性細胞の有意な減少を示し、CA2-3領域において減少傾向を示した。
 Muse細胞投与群でアストロサイトおよびミクログリア細胞マーカーの発現が、非Muse細胞投与群およびMSC投与群より低下しており、投与されたMuse細胞により脳の海馬領域の障害が修復されると考えられる。
 本発明の細胞製剤は、脳血管性認知症を発症した患者または脳血管性認知症が疑われる患者に投与することにより、白質病変などを生じた脳の障害部位を修復し、認知機能障害を改善又は回復させることができ、脳血管性認知症の治療や予防に応用することができる。

Claims (5)

  1.  生体の間葉系組織又は培養間葉系細胞に由来するSSEA-3陽性の多能性幹細胞を含む、脳血管性認知症を治療または予防するための細胞製剤。
  2.  脳血管性認知症が脳梗塞を伴わない脳血管性認知症である、請求項1に記載の細胞製剤。
  3.  脳血管性認知症が白質病変を伴う脳血管性認知症である、請求項1または2に記載の細胞製剤。
  4.  前記多能性幹細胞が、以下の性質の全てを有する多能性幹細胞である、請求項1~3のいずれか1項に記載の細胞製剤:
     (i)テロメラーゼ活性が低いか又は無い;
     (ii)三胚葉のいずれの胚葉の細胞に分化する能力を持つ;
     (iii)腫瘍性増殖を示さない;及び
     (iv)セルフリニューアル能を持つ。
  5.  前記多能性幹細胞が、以下の性質の全てを有する多能性幹細胞である、請求項1~4のいずれか1項に記載の細胞製剤:
     (i)SSEA-3陽性;
     (ii)CD105陽性;
     (iii)テロメラーゼ活性が低いか又は無い;
     (iv)三胚葉のいずれかの胚葉に分化する能力を持つ;
     (v)腫瘍性増殖を示さない;及び
     (vi)セルフリニューアル能を持つ。
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