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WO2020039911A1 - 細胞培養方法及び細胞培養装置 - Google Patents

細胞培養方法及び細胞培養装置 Download PDF

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WO2020039911A1
WO2020039911A1 PCT/JP2019/030860 JP2019030860W WO2020039911A1 WO 2020039911 A1 WO2020039911 A1 WO 2020039911A1 JP 2019030860 W JP2019030860 W JP 2019030860W WO 2020039911 A1 WO2020039911 A1 WO 2020039911A1
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WO
WIPO (PCT)
Prior art keywords
cell
culture
container
unit
cell suspension
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Ceased
Application number
PCT/JP2019/030860
Other languages
English (en)
French (fr)
Inventor
淳史 稲田
英俊 高山
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Fujifilm Corp
Original Assignee
Fujifilm Corp
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Fujifilm Corp filed Critical Fujifilm Corp
Priority to EP19852380.5A priority Critical patent/EP3842518A4/en
Priority to JP2020538282A priority patent/JP7053853B2/ja
Publication of WO2020039911A1 publication Critical patent/WO2020039911A1/ja
Priority to US17/134,122 priority patent/US20210115379A1/en
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Ceased legal-status Critical Current

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    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12M—APPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
    • C12M47/00—Means for after-treatment of the produced biomass or of the fermentation or metabolic products, e.g. storage of biomass
    • C12M47/04—Cell isolation or sorting
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12M—APPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
    • C12M33/00—Means for introduction, transport, positioning, extraction, harvesting, peeling or sampling of biological material in or from the apparatus
    • C12M33/14—Means for introduction, transport, positioning, extraction, harvesting, peeling or sampling of biological material in or from the apparatus with filters, sieves or membranes
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12M—APPARATUS FOR ENZYMOLOGY OR MICROBIOLOGY; APPARATUS FOR CULTURING MICROORGANISMS FOR PRODUCING BIOMASS, FOR GROWING CELLS OR FOR OBTAINING FERMENTATION OR METABOLIC PRODUCTS, i.e. BIOREACTORS OR FERMENTERS
    • C12M41/00—Means for regulation, monitoring, measurement or control, e.g. flow regulation
    • C12M41/48—Automatic or computerized control
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N5/00—Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor

Definitions

  • Japanese Patent Application Laid-Open No. 2016-131538 discloses a culture vessel, a storage vessel, a division processing section for performing division processing for dividing a cell aggregate, and a medium supply section for supplying a culture medium in a flow path.
  • a cell culture device comprising:
  • stem cells such as iPS cells (induced pluripotent stem cells)
  • iPS cells induced pluripotent stem cells
  • the size of cell aggregates (spheres) generated by suspension culture of the cells becomes excessive, the cell aggregates adhere and fuse with each other, and the cells undergo differentiation. It may start or the cells in the center of the cell aggregate may die. Therefore, in order to prevent the size of the cell aggregate from becoming excessively large, the cell aggregate is divided (disrupted) into a plurality of smaller-sized cell aggregates at an appropriate time during the cell culture period. Division processing has been performed.
  • a method of mechanically dividing the cell aggregate by passing a cell suspension containing the cell aggregate through a mesh having a plurality of openings has been proposed.
  • a division process using a mesh cell aggregates are damaged at the time of mesh collision, and many dead cells are generated.
  • cell aggregates having a relatively small size are vulnerable to a division process using a mesh.
  • cell aggregates of various sizes are stored in the culture container, but if the cell aggregates stored in the culture container are divided indiscriminately, the size can be compared. The division treatment is performed even on a cell aggregate with a very small size, which makes it difficult to suppress the incidence of dead cells.
  • the disclosed technology provides a cell culture method and a cell culture device that can suppress the occurrence of dead cells by suppressing the execution of a division process on a cell aggregate having a relatively small size.
  • the component of the cell suspension containing the cell aggregates transferred from the culture vessel, a classification step of separating according to the size, the size separated in the classification step is relatively A first collection step of collecting small cell aggregates in a culture container, a division step of dividing the cell aggregates having a relatively large size separated in the classification step, and a cell aggregate divided in the division step, A second collection step of collecting in a culture container or a collection container different from the culture container.
  • the cell culture method according to the disclosed technology it is possible to suppress the execution of the division process on the cell aggregate having a relatively small size, and to suppress the generation of dead cells.
  • the cell culture method according to the disclosed technology may further include a disposal step of discarding components belonging to the class having the smallest size separated in the classification step. This makes it possible to remove debris such as dead cells from the cell suspension.
  • the cell culture method according to the disclosed technology may further include a mixing step of mixing the cell aggregate with a medium before dividing the cell aggregate in the division step. Thereby, the cell concentration in the cell suspension that has undergone the classification step can be adjusted to an appropriate concentration.
  • the cell culture method includes, in a second collection step, a first culture step of culturing the cells collected in the collection container in the collection container; And a second culturing step of culturing in the cell.
  • the cells can be cultured in an environment suitable for the state of the cells, and the survival rate and quality of the cells can be improved.
  • the composition of the medium used in the first culture step may be different from the composition of the medium used in the second culture step.
  • a ROCK inhibitor may be added to the medium used in the first culturing step, and it is preferable that the ROCK inhibitor is not added to the medium used in the second culturing step.
  • the viscosity of the medium used in the first culture step may be lower than the viscosity of the medium used in the second culture step.
  • a cell culture device includes a culture container that contains a cell suspension containing cell aggregates, a classifying unit that separates components of the cell suspension containing cell aggregates according to size, and a cell. Includes a dividing section for dividing the aggregate, a culture vessel, a flow path connected to the classification section and the dividing section, and a control section for controlling the transfer of the cell suspension via the flow path.
  • the control unit transfers the cell suspension contained in the culture container to the classification unit, and transfers the cell suspension containing cell aggregates having a relatively small size separated in the classification unit to the culture container,
  • the cell suspension containing the cell aggregates having a relatively large size separated in the classification part was transferred to the division part, and the cell suspension containing the cell aggregates divided in the division part was connected to the channel. Transfer to container.
  • ADVANTAGE OF THE INVENTION According to the cell culture apparatus which concerns on the technique of indication, implementation of division
  • the cell culture device may further include a waste liquid container connected to the flow channel.
  • the control unit may transfer the components belonging to the class having the smallest size separated in the classification unit to the waste liquid container. This makes it possible to remove debris such as dead cells from the cell suspension.
  • the control unit may transfer the cell suspension containing the cell aggregate divided in the division unit to the culture container.
  • the cell culture device according to the disclosed technology may further include a collection container connected to the channel. In this case, the control unit may transfer the cell suspension containing the cell aggregate divided in the division unit to the collection container.
  • the control unit may be transferred to the collection container, and may transfer the cell suspension containing the cells cultured in the collection container to the culture container.
  • the cells can be cultured in an environment suitable for the state of the cells, and the survival rate and quality of the cells can be improved.
  • the cell culture device may further include a filtration unit that is connected to the flow channel and filters the cell suspension.
  • the control unit transfers the cell suspension containing the cells cultured in the collection container to the filtration unit before transferring to the culture container, and the cell suspension filtered in the filtration unit.
  • the solution may be transferred to a culture vessel. This makes it possible to remove debris such as dead cells from the cell suspension.
  • the execution of the division process on the cell aggregate having a relatively small size is suppressed, and the generation of dead cells can be suppressed.
  • FIG. 1 is a diagram illustrating an example of a configuration of a cell culture device according to an embodiment of the disclosed technology. It is sectional drawing which shows an example of a structure of the division part 16 which concerns on embodiment of the technique of indication.
  • FIG. 4 is a plan view of a mesh according to an embodiment of the disclosed technology.
  • FIG. 3B is an enlarged view of a portion Y surrounded by a broken line in FIG. 3B.
  • 9 is a flowchart illustrating an example of a flow of a process performed by a control unit according to an embodiment of the disclosed technology when performing a medium exchange process.
  • FIG. 9 is a flowchart illustrating an example of a flow of a process performed by a control unit according to an embodiment of the disclosed technology when performing a division process. It is a process flow figure showing an example of the flow of processing in the cell culture method concerning other embodiments of the art of an indication.
  • FIG. 11 is a diagram illustrating an example of a configuration of a cell culture device according to another embodiment of the disclosed technology.
  • 9 is a flowchart illustrating an example of a flow of a process performed by a control unit according to an embodiment of the disclosed technology when performing a division process.
  • FIG. 1 is a process flowchart illustrating an example of a processing flow in a cell culture method according to the first embodiment of the disclosed technology.
  • proliferating stem cells such as iPS cells, mesenchymal germ cells, ES cells, and the like are to be cultured.
  • the culture vessel for example, 1 ⁇ 10 9 or more cells form a substantially spherical aggregate (sphere) and are cultured in a state of being suspended in a medium.
  • the cell culture method according to the present embodiment includes a classification step A1, a disposal step A2, a first collection step A3, a mixing step A4, a division step A5, and a second collection step A6.
  • a classification process for classifying components contained in the cell suspension transferred from the culture vessel is performed.
  • the components contained in the cell suspension are divided into three classes according to their sizes.
  • Components belonging to the smallest class include debris such as dead cells and secretions secreted from the cells, for example, having a size of less than 50 ⁇ m.
  • Components belonging to the class having the largest size include cell aggregates (hereinafter, large size spheres) having a relatively large size (for example, 200 ⁇ m or more).
  • Components belonging to the medium size class include cell aggregates (hereinafter, referred to as small size spheres) having a relatively small size (for example, 50 ⁇ m or more and less than 200 ⁇ m).
  • the discarding step A2 debris such as dead cells contained in the component belonging to the smallest class, which is separated from the other class components in the classification process, is discarded.
  • the small-sized spheres separated from the other class components in the classification step A1 are recovered in the original culture vessel.
  • the mixing step A4 a mixing process of mixing the cell suspension containing the large spheres separated from the other rank components in the classification step A1 with a fresh medium is performed.
  • the classification step A1 the cell aggregate and the medium are separated, and the cell suspension that has passed through the classification step A1 has an excessively high cell concentration. Is mixed, the cell concentration in the cell suspension containing the large sphere is adjusted to an appropriate concentration.
  • dividing step A5 a dividing process is performed in which the large sphere separated from the other rank components in the classifying step A1 is divided into cell aggregates having a smaller size.
  • Division of the cell aggregate in the division step A5 is performed by passing the cell aggregate through a mesh.
  • stem cells such as iPS cells
  • the size of cell aggregates generated by suspension culture of cells becomes excessive, the cell aggregates adhere and fuse with each other, and the cells start to differentiate, or the center of the cell aggregates Some cells may become necrotic.
  • the size of the cell aggregate is prevented from becoming excessively large.
  • the cell aggregates divided in the division step A5 are collected in the original culture container or another collection container.
  • the recovered cells are continuously cultured in the original culture vessel or another recovery vessel.
  • the processing in each of the above steps (A1 to A6) is repeated.
  • FIG. 2 is a diagram showing an example of a configuration of the cell culture device 1 according to the first embodiment of the disclosed technology for realizing the above-described cell culture method.
  • the cell culture apparatus 1 includes a culture container 10, culture medium containers 13 and 14, a classification unit 11, a waste liquid container 12, a mixing unit 15, a division unit 16, a monitor unit 17, a control unit 20, pumps P1 to P7, and valves V1 to V3. It is comprised including.
  • the culture container 10, the culture medium storage containers 13 and 14, the classification unit 11, the waste liquid container 12, the mixing unit 15, and the division unit 16 are connected to a flow path 30.
  • the culture container 10 contains a cell suspension containing a cell aggregate composed of a plurality of cells to be cultured and a medium.
  • the culture vessel 10 has, for example, a volume that can accommodate 1 ⁇ 10 9 or more cells.
  • the form of the culture container 10 is not particularly limited, and for example, a glass container or a metal container can be used as the culture container 10.
  • the culture vessel 10 may have, for example, a form of a bag including a film having gas permeability.
  • Each of the culture medium containers 13 and 14 stores a fresh culture medium.
  • the classification unit 11 performs a classification process in the classification step A1 of the cell culture method according to the present embodiment. That is, the classification unit 11 performs a classification process of dividing the components contained in the cell suspension into three classes according to the size.
  • the classifying unit 11 causes components having different sizes separated by the classification process to flow out from the separate outlets o1, o2, and o3.
  • the outlet o1 from which the component belonging to the smallest class (mainly, debris such as dead cells) flows out is connected to the waste liquid container 12 via the flow path 30.
  • the outlet o2 from which the component belonging to the class having the largest size (mainly, the large sphere) flows out is connected to the mixing section 15 via the flow path 30.
  • the outlet o3 from which the component belonging to the middle class (mainly the small size sphere) flows out is connected to the culture vessel 10 via the flow path 30.
  • the number of classes in the classifying unit 11 is variable, and the components contained in the cell suspension can be divided into, for example, two classes according to the size of the components.
  • the classification unit 11 also functions as a filtration unit that performs a filtration process for removing debris such as dead cells contained in the cell suspension.
  • a known classifier can be used as the classifier 11.
  • a classification device constituting the classification unit 11 for example, a device that uses a difference in sedimentation velocity for each size of a classification target, a device that uses centrifugation, or a device that performs membrane separation using a filter membrane can be used. .
  • the mixing unit 15 performs the mixing process in the mixing step A4 of the cell culture method according to the present embodiment. That is, the large sphere separated in the classification step A1 and the fresh medium transferred from the medium storage container 13 are mixed in the mixing unit 15.
  • the mixing unit 15 has a function of stirring the flowing fluid.
  • the mixing unit 15 may be configured to include a so-called static mixer having no driving unit.
  • the mixing unit 15 is fixedly installed inside the tubular body and forms a spiral flow path inside the tubular body.
  • a stirring element may include a stirring device that rotates a stirring blade attached to the rotation shaft around the rotation shaft.
  • the dividing unit 16 performs the dividing process in the dividing step A5 of the cell culture method according to the present embodiment. That is, the dividing section 16 divides the large-sized spheres separated in the classification section 11 and mixed with the fresh medium in the mixing section 15 into cell aggregates having a smaller size.
  • FIG. 3A is a cross-sectional view illustrating an example of the configuration of the dividing unit 16.
  • the dividing unit 16 includes a case 201 having an inlet 202 and an outlet 203, and a mesh 210 provided inside the case 201 between the inlet 202 and the outlet 203.
  • 3B is a plan view of the mesh 210
  • FIG. 3C is an enlarged view of a portion Y surrounded by a broken line in FIG. 3B.
  • the mesh 210 has a plurality of openings (mesh) 211 formed by, for example, plain weaving a plurality of fibrous members 212.
  • the weaving method of the fibrous member 212 is not limited to plain weaving.
  • the material of the fibrous member 212 is not particularly limited, but is preferably made of a material having high corrosion resistance.
  • nylon or stainless steel can be suitably used.
  • the mesh 210 is installed in the case 201 such that a main surface having a plurality of openings 211 extends in a direction intersecting with the flow direction FL of the cell suspension.
  • the pore diameter L of the mesh 210 included in the division unit 16 is, for example, smaller than the average diameter of the cell aggregate before the division processing, and is determined according to the target size of the cell aggregate after the division processing.
  • As the average diameter of the cell aggregate it is possible to apply the arithmetic average of the diameter of the spherical shape when each of the cell aggregates is approximated to a spherical shape.
  • the monitor unit 17 is provided in a section X of the flow channel 30 between the culture vessel 10 and the classification unit 11.
  • the monitoring unit 17 monitors the cell suspension passing through the section X.
  • the monitor section 17 includes a flow cell 18 and an imaging device 19.
  • the flow cell 18 is entirely made of a light transmissive material such as glass or plastic.
  • the flow cell 18 has a first distribution port 18a and a second distribution port 18b communicating with the first distribution port 18a.
  • the imaging device 19 has an imaging field of view set in a region between the first distribution port 18a and the second distribution port 18b of the flow cell 18, and includes cells included in a cell suspension flowing inside the flow cell 18 ( The cell aggregate is continuously imaged through the flow cell 18.
  • the plurality of images captured by the imaging device 19 are transmitted to the control unit 20. Further, the medium contained in the cell suspension flowing inside the flow cell 18 is imaged by the imaging device 19 to evaluate the color, and the pH (hydrogen ion index) of the medium is determined by comparing the color with a color sample registered in advance. Quantify.
  • the flow path 30 transfers the cell suspension from the culture container 10 to the classification unit 11, transfers the cell suspension from the classification unit 11 to the culture container 10, the waste liquid container 12 and the mixing unit 15, and splits the cell suspension from the mixing unit 15.
  • the transfer of the cell suspension to the section 16 and the transfer of the cell suspension from the division section 16 to the culture vessel 10 are enabled.
  • the flow path 30 is configured to enable the transfer of the culture medium from the medium storage container 13 to the mixing unit 15 and the transfer of the culture medium from the culture medium storage container 14 to the culture container 10, respectively.
  • the flow path 30 includes a first circulation route in which the cell suspension extracted from the culture container 10 returns to the culture container 10 via the classification unit 11, the mixing unit 15, and the division unit 16, and a culture container.
  • the cell suspension extracted from 10 is configured to form a second circulation route returning to the culture vessel 10 through the classification section 11.
  • the pumps P1 to P7 and the valves V1 to V3 are appropriately arranged at various points in the flow path 30.
  • the pumps P1 to P7 are driven according to control signals supplied from the control unit 20, and the valves V1 to V3 are opened and closed according to control signals supplied from the control unit 20.
  • the configuration of the flow path 30 and the arrangement of the pumps P1 to P7 and the valves V1 to V3 are not limited to those illustrated in FIG. 2, but may be configured so that the cell culture method according to the present embodiment can be performed. I just need.
  • the control unit 20 controls the transfer of the cell suspension through the flow path 30 by controlling the driving of the pumps P1 to P7 and controlling the opening and closing of the valves V1 to V3 using the control signal.
  • FIG. 4 is a flowchart illustrating an example of a flow of a process performed by the control unit 20 when a medium exchange process is performed in the cell culture device 1.
  • step S1 the control unit 20 controls the valve V1 to open, and drives the pump P1 to transfer a part of the cell suspension contained in the culture vessel 10 to the classification unit 11.
  • the monitor unit 17 the cells contained in the cell suspension are monitored by the monitor unit 17. That is, the imaging device 19 continuously images cells (cell aggregates) contained in the cell suspension passing through the flow cell 18.
  • the imaging device 19 images all cells (cell aggregates) contained in the cell suspension passing through the section X of the flow channel 30 at an interval capable of imaging, for example. Note that the imaging device 19 may image a part of cells (cell aggregates) included in the cell suspension passing through the section X of the flow channel 30.
  • step S2 the control unit 20 acquires an image of a cell captured by the imaging device 19 of the monitor unit 17.
  • the classification unit 11 functions as a filtration unit, and performs a filtration process on the cell suspension transferred from the culture vessel 10. That is, the classification unit 11 separates cell aggregates having a relatively large size and debris such as dead cells having a relatively small size contained in the cell suspension transferred from the culture vessel 10. The classification unit 11 causes the cell aggregate having a relatively large size to flow out from the outlet o3, and causes the cell aggregate having a relatively small size to flow out from the outlet o1.
  • step S3 the control unit 20 drives the pump P2 to transfer debris such as dead cells flowing out of the outlet o1 to the waste liquid container 12.
  • step S4 the control unit 20 drives the pump P3 to transfer the cell suspension containing the cell aggregate flowing out from the outlet o3 to the culture container 10.
  • step S5 the control unit 20 drives the pump P3 to control the valve V3 to open, thereby transferring the fresh medium contained in the medium container 14 to the culture container 10.
  • the control unit 20 derives the transfer amount of the culture medium based on the image and the evaluation result obtained from the monitor unit 17 in step S2.
  • the control unit 20 derives the transfer amount of the culture medium, for example, as follows. That is, the control unit 20 derives the current cell concentration in the culture container 10 based on the image acquired in step S2.
  • the current cell concentration can be derived, for example, from the ratio of the integrated value of each size of the cell aggregate included in the image acquired in step S2 to the area of the imaging visual field of the imaging device 19.
  • the control unit 20 determines, based on the derived current cell concentration in the culture container 10, the amount of culture medium to be added to make the cell concentration in the culture container 10 a predetermined concentration from the culture container 14 to the culture container 14. It is derived as the transfer amount of the culture medium to 10.
  • step S6 the control unit 20 determines whether or not the division process is necessary based on the image acquired from the monitor unit 17 in step S2.
  • the control unit 20 determines whether or not the division processing is necessary, for example, as follows.
  • the control unit 20 derives, for example, the average diameter of the cell aggregates included in the image acquired from the monitor unit 17 in step S2, and if the derived average diameter is larger than a predetermined size, a division process is necessary. It is determined that there is, and if the derived average diameter is smaller than a predetermined size, it is determined that the dividing process is unnecessary.
  • As the average diameter of the cell aggregate it is possible to apply the arithmetic average of the diameter of the spherical shape when each of the cell aggregates is approximated to a spherical shape.
  • the control unit 20 keeps the freshness of the culture medium in the culture vessel 10 at a constant level by repeatedly or continuously performing the processing of steps S1 to S6.
  • stem cells such as iPS cells
  • the size of cell aggregates generated by suspension culture of cells becomes excessive, the cell aggregates adhere and fuse with each other, and the cells start to differentiate, or the center of the cell aggregates Some cells may become necrotic. Therefore, in order to prevent the size of the cell aggregate from becoming excessively large, at an appropriate time during the culture period of the cells, a division process of dividing the cell aggregate into a plurality of smaller-sized cell aggregates is performed. Is preferred.
  • step S6 when performing the culture medium changing process, if the dividing process is determined to be necessary in step S6 (see FIG. 4) of the process performed by the control unit 20, the dividing is performed. Processing is performed.
  • FIG. 5 is a flowchart illustrating an example of the flow of a process performed by the control unit 20 when the cell culture device 1 performs the division process.
  • step S11 the control unit 20 controls the valve V1 to open and drives the pump P1 to remove a part of the cell suspension contained in the culture container 10 from the culture container 10 to the classification unit 11 Transfer to While the cell suspension passes through the section X of the channel 30, the cells contained in the cell suspension are monitored by the monitor unit 17. That is, the imaging device 19 continuously images cells (cell aggregates) contained in the cell suspension passing through the flow cell 18.
  • step S12 the control unit 20 acquires an image of a cell captured by the imaging device 19 of the monitor unit 17.
  • the classification unit 11 performs a classification process of dividing the components contained in the cell suspension transferred from the culture vessel 10 into three classes according to the size. That is, the classification unit 11 separates large-size spheres, small-size spheres, and debris such as dead cells contained in the cell suspension transferred from the culture vessel 10 from each other. Thereby, the classification step A1 in the cell culture method according to the present embodiment is realized.
  • the classifying unit 11 causes the large size sphere to flow out of the outlet o2, the small spheres to flow out of the outlet o3, and the debris such as dead cells to flow out of the outlet o1.
  • step S13 the control unit 20 drives the pump P2 to transfer the debris such as dead cells flowing out of the outlet o1 to the waste liquid container 12. Thereby, the disposal step A2 in the cell culture method according to the present embodiment is realized.
  • step S14 the control unit 20 drives the pump P3 to transfer the cell suspension containing the small-sized spheres flowing out of the outlet o3 to the culture vessel 10.
  • the first collection step A3 in the cell culture method according to the present embodiment is realized. That is, the small-sized spheres extracted from the culture vessel 10 are collected in the culture vessel 10 without being subjected to the dividing process in the dividing section 16.
  • step S15 the control unit 20 drives the pumps P4 and P6 to transfer the cell suspension containing large spheres flowing out from the outlet o2 to the dividing unit 16.
  • the cell suspension containing the large size spheres is transferred from the classification unit 11 to the division unit 16 via the mixing unit 15.
  • step S16 the control unit 20 controls the valve V2 to be open and drives the pump P5 to transfer the fresh medium stored in the medium storage container 13 to the mixing unit 15.
  • the cell suspension containing the large-sized spheres flowing from the classification unit 11 to the division unit 16 joins the fresh medium transferred from the medium storage container 13 in the mixing unit 15, and is mixed and stirred.
  • the mixing step A4 in the cell culture method according to the present embodiment is realized.
  • the cell aggregate and the medium are separated, and the cell suspension that has passed through the classification unit 11 has an excessively high cell concentration.
  • the cell concentration in the cell suspension containing the large size sphere is adjusted to an appropriate concentration.
  • the large-sized spheres transferred to the dividing unit 16 are divided into smaller-sized cell aggregates by passing through the mesh 210 of the dividing unit 16 (see FIGS. 3A, 3B, and 3C). Thereby, the dividing step A5 in the cell culture method according to the present embodiment is realized.
  • step S17 the control unit 20 drives the pump P7 to transfer the cell aggregate divided in the division unit 16 to the culture container 10.
  • the second collection step A6 in the cell culture method according to the present embodiment is realized.
  • the cells collected in the culture vessel 10 may be continuously cultured in the culture vessel 10.
  • step S18 the control unit 20 drives the pump P3 to control the valve V3 to open, thereby transferring the fresh culture medium stored in the culture medium container 14 to the culture container 10.
  • the culture medium 10 is replenished with a fresh medium.
  • the control unit 20 derives the transfer amount of the culture medium based on the image and the evaluation result obtained from the monitor unit 17 in step S12.
  • the control unit 20 derives the transfer amount of the culture medium, for example, as follows. That is, the control unit 20 derives the current cell concentration in the culture container 10 based on the image obtained in step S12.
  • the current cell concentration can be derived, for example, from the ratio of the product of the number and size of the cell aggregates contained in the image acquired in step S12 and the area of the imaging visual field of the imaging device 19.
  • the control unit 20 determines, based on the derived current cell concentration in the culture container 10, the amount of culture medium to be added to make the cell concentration in the culture container 10 a predetermined concentration from the culture container 14 to the culture container 14. It is derived as the transfer amount of the culture medium to 10.
  • the medium may be replenished to the culture container 10 with the medium contained in the medium container 13.
  • the culture medium may be transferred to the culture vessel 10 together with the small size sphere.
  • the culture medium may be replenished to the culture vessel 10 with a medium mixed with the large-sized sphere.
  • the components of the cell suspension containing the cell aggregates transferred from the culture vessel 10 are classified in the classification unit 11. Is done.
  • the large-sized spheres separated from the other class components by the classification are subjected to a dividing process in the dividing section 16 and then collected in the culture vessel 10.
  • the small-sized spheres separated from the other rank components by the classification are collected in the culture vessel 10 without being subjected to the division processing.
  • cell aggregates are damaged at the time of mesh collision, and many dead cells are generated.
  • small-sized spheres are vulnerable to the division process using a mesh.
  • cell aggregates of various sizes are accommodated. If the cell aggregates accommodated in the culture vessel 10 are divided indiscriminately, small-sized spheres are obtained. Even then, the division processing is performed, and it is difficult to suppress the incidence of dead cells.
  • the division process is performed on the large-sized spheres, while the culture container is divided into the small-sized spheres without the division process. Collected at 10. Thereby, the generation of dead cells due to the division process can be suppressed, and the productivity of the cells can be increased. In addition, since the division processing is not originally necessary for the small size sphere, it is considered that there is no adverse effect by suppressing the division processing for the small size sphere.
  • a loss occurs because cells that cannot pass through the mesh stay on the mesh.
  • the division processing for the small-sized spheres is avoided, so that it is possible to suppress the loss of cells due to the division processing.
  • the present invention is not limited to this mode.
  • a collection container different from the culture container 10 may be provided, and the cell aggregates divided in the dividing section 16 may be collected in the collection container.
  • FIG. 6 is a process flowchart illustrating an example of a processing flow in the cell culture method according to the second embodiment of the disclosed technology.
  • the second collection step A6 is different from the above-described second collection step A6 in the cell culture method according to the first embodiment.
  • the cell culture method according to the second embodiment further includes a first culture step A7 and a second culture step A8.
  • the classification step A1, the disposal step A2, the first recovery step A3, the mixing step A4, and the division step A5 are the same as those in the culture method according to the first embodiment. Therefore, duplicate description will be omitted.
  • the cell aggregates divided in the division step A5 are collected in a collection container different from the original culture container.
  • the cells collected in the collection container are cultured in the collection container. That is, the cells damaged by the dividing process in the dividing step are cultured in the collection container.
  • the cells that have passed through the first culture step A7 are cultured in the original culture vessel. That is, the cells recovered from the damage through the first culture step A7 are transferred to the original culture vessel and cultured in the culture vessel.
  • the culturing period in the first culturing step A7 is, for example, a period (for example, about several hours to one day) required for recovery from damage due to the division processing.
  • the culturing period in the second culturing step A8 is, for example, a period (for example, about 5 days) required for the cell aggregate to grow to a size that requires the division treatment. If the average size of the cell aggregates in the culture vessel has grown to a predetermined size that requires the splitting process by the culturing in the second culturing step A8, for example, the treatment in each of the above steps (A1 to A8) is performed. It is repeated.
  • the composition of the medium used in the first culturing step A7 may be different from the composition of the medium used in the second culturing step A8.
  • Cells damaged by the splitting process may induce themselves to die.
  • the cell death that occurs after the division treatment is a factor that reduces the productivity of the cells. It is known that cell death expressed after this division treatment can be suppressed by inhibiting the action of an intracellular phosphorylase called ROCK. Therefore, a ROCK inhibitor that inhibits the function of ROCK may be added to the medium used in the first culturing step A7 performed immediately after the division treatment. By adding a ROCK inhibitor to the medium used in the first culturing step A7, an effect of suppressing cell death expressed after the division treatment can be expected.
  • the ROCK inhibitor is not contained in the medium used in the second culturing step A8 performed after recovery from the damage caused by the splitting treatment.
  • the medium required for maintaining the cell aggregates contained in the collection container in a floating state in the medium is removed.
  • the viscosity is relatively low.
  • the average size of the cell aggregate in the culture container 10 in which the cells that have passed through the first culture step A7 are stored is larger than the average size of the cell aggregate in the collection container. Therefore, the viscosity of the medium required to maintain the cell aggregates contained in the culture vessel in a suspended state in the medium is relatively high. Therefore, the viscosity of the medium used in the first culture step A7 may be lower than the viscosity of the medium used in the second culture step A8.
  • the culturing suitable for the state of the cells in each culturing step. can be performed.
  • FIG. 7 is a diagram illustrating an example of a configuration of a cell culture device 1A according to a second embodiment of the disclosed technology for realizing the above-described cell culture method.
  • the cell culture device 1A includes, in addition to the components included in the cell culture device 1 according to the first embodiment (see FIG. 2), a collection container 21, a filtration unit 22, a waste liquid container 23, and a culture medium connected to the flow path 30.
  • the container further includes a container 24 and a mixing unit 25.
  • the collection container 21 contains the cell suspension containing the cell aggregates and the culture medium after the division processing in the division unit 16.
  • the form of the collection container 21 is not particularly limited, and for example, a glass container or a metal container can be used as the collection container 21.
  • the collection container 21 may have the form of a bag including a film having gas permeability, for example.
  • the volume of the collection container 21 may be equal to or smaller than the culture container 10.
  • the filtration unit 22 performs a filtering process on the cell suspension to separate cell aggregates and debris such as dead cells contained in the cell suspension.
  • the filtration process in the filtration unit 22 may be performed by, for example, membrane separation using a filtration membrane.
  • the membrane separation method is preferably a tangential flow method in which damage to cells is relatively small.
  • the debris such as the dead cells separated is stored in a waste liquid container 23.
  • the culture medium container 24 stores a fresh culture medium.
  • the mixing unit 25 performs a mixing process of mixing the cell suspension from which debris such as dead cells has been removed in the filtration unit 22 and the fresh medium transferred from the medium storage container 24. Since the cell suspension filtered in the filtration unit 22 has an excessively high cell concentration, the filtered cell suspension is mixed with a fresh medium to obtain a filtered cell suspension. The cell concentration in the suspension is adjusted to an appropriate concentration.
  • the mixing unit 25 may have the same configuration as the mixing unit 15, and may include, for example, a static mixer.
  • the flow path 30 transfers the cell suspension from the culture container 10 to the classification unit 11, transfers the cell suspension from the classification unit 11 to the culture container 10, the waste liquid container 12 and the mixing unit 15, and splits the cell suspension from the mixing unit 15.
  • Transfer of the cell suspension to the collection unit 16 transfer of the cell suspension from the division unit 16 to the collection container 21, transfer of the cell suspension from the collection container 21 to the filtration unit 22, and transfer of the cell suspension from the filtration unit 22 to the waste liquid container 23.
  • the transfer of the cell suspension to the mixing section 25 and the transfer of the cell suspension from the mixing section 25 to the culture vessel 10 are each enabled.
  • the flow path 30 transfers the culture medium from the culture medium container 13 to the mixing unit 15, transfers the culture medium from the culture medium container 14 to the culture container 10, and transfers the culture medium from the culture medium container 24 to the mixing unit 25, respectively. It is configured to allow it.
  • the cell suspension extracted from the culture container 10 is cultured through the classification unit 11, the mixing unit 15, the division unit 16, the collection container 21, the filtration unit 22, and the mixing unit 25.
  • the first circulation route to return to the container 10 and the cell suspension extracted from the culture container 10 form a second circulation route to return to the culture container 10 by the classification unit 11.
  • FIG. 8 is a flowchart illustrating an example of a flow of processing performed by the control unit 20 when performing the division processing in the cell culture device 1A.
  • the processes in steps S21 to S26 and S28 in the flowchart shown in FIG. 8 are the same as steps S11 to S16 and S18 in the flowchart shown in FIG.
  • step S27 the control unit 20 drives the pump P7 to transfer the cell suspension containing the cell aggregates divided in the division unit 16 to the collection container 21.
  • the second collection step A6 in the cell culture method according to the present embodiment is realized.
  • the cells contained in the cell suspension transferred to the collection container 21 are continuously cultured in the collection container 21.
  • the first culture step A7 in the cell culture method according to the present embodiment is realized.
  • step S29 the control unit 20 controls the valve V4 to the open state and drives the pump P8.
  • the cell suspension contained in the collection container 21 is transferred to the filtration unit 22.
  • the filtration unit 22 performs a filtration process on the cell suspension transferred from the collection container 21. That is, the filtration unit 22 separates the relatively large cell aggregates and the relatively small size debris such as dead cells contained in the cell suspension transferred from the collection container 21.
  • step S30 the control unit 20 transfers the debris such as dead cells from the filtration unit 22 to the waste liquid container 23 by driving the pump P9.
  • step S31 the control unit 20 drives the pump P10 to transfer the cell suspension from which debris such as dead cells has been removed to the culture container 10.
  • the cell suspension is transferred from the filtration unit 22 to the culture vessel 10 via the mixing unit 25.
  • step S32 the control unit 20 controls the valve V5 to open and drives the pump P11 to transfer the fresh culture medium stored in the culture medium storage container 24 to the mixing unit 25.
  • the filtered cell suspension from the filtration unit 22 to the culture vessel 10 joins the fresh medium transferred from the culture medium container 24 in the mixing unit 25, and is mixed and stirred. Since the cell suspension filtered in the filtration unit 22 has an excessively high cell concentration, the filtered cell suspension is mixed with a fresh medium to obtain a filtered cell suspension. The cell concentration in the suspension is adjusted to an appropriate concentration.
  • the cells contained in the cell suspension transferred to the culture vessel 10 are continuously cultured in the culture vessel 10. Thereby, the second culture step A8 in the cell culture method according to the present embodiment is realized.
  • a ROCK inhibitor may be added to the medium used in the first culture step A7 performed in the collection container 21, and the medium used in the second culture step A8 performed in the culture vessel 10 , ROCK inhibitors are preferably not added. Further, the viscosity of the medium used in the first culturing step A7 may be lower than the viscosity of the medium used in the second culturing step A8.
  • the divided cell aggregates are collected in the collection container 21 different from the culture container 10 and cultured in the collection container 21.
  • First culturing step The cells cultured in the collection container 21 are transferred to the culture container 10 after a lapse of a predetermined period, and cultured in the culture container 10 (second culture step).
  • the first culturing step for culturing cells damaged by the splitting process and the second culturing step for culturing cells recovered from damage caused by the splitting process are performed in different containers.
  • the cells can be cultured in an environment suitable for the state of the cells. This makes it possible to increase cell viability and quality.
  • the composition of the culture medium used in the first culture step A7 and the composition of the culture medium used in the second culture step A8 can be different from each other.

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Abstract

細胞培養方法は、培養容器から移送された細胞凝集体を含む細胞懸濁液の成分を、サイズに応じて分離する分級工程と、分級工程において分離されたサイズが相対的に小さい細胞凝集体を培養容器に回収する第１の回収工程と、分級工程において分離されたサイズが相対的に大きい細胞凝集体を分割する分割工程と、分割工程において分割された細胞凝集体を、培養容器または培養容器とは異なる回収容器に回収する第２の回収工程と、を含む。

Description

細胞培養方法及び細胞培養装置
　本願は２０１８年８月２０日出願の日本出願第２０１８－１５４０８９号の優先権を主張すると共に、その全文を参照により本明細書に援用する。
　開示の技術は、細胞培養方法及び細胞培養装置に関する。
　細胞培養装置に関し、例えば、特開２０１６－１３１５３８号公報には、培養容器、貯留容器、細胞凝集体を分割する分割処理を行う分割処理部と、流路内に培地を供給する培地供給部と、を含む細胞培養装置が記載されている。
　ｉＰＳ細胞（induced pluripotent stem cells）等の幹細胞の培養においては、細胞を浮遊培養することによって生じる細胞凝集体（スフェア）のサイズが過大となると、細胞凝集体同士が接着融合し、細胞が分化を開始したり、細胞凝集体の中心部の細胞が壊死したりする場合がある。従って、細胞凝集体のサイズが過大となることを防止するために、細胞の培養期間中の適切な時期に、細胞凝集体を、より小さいサイズの複数の細胞凝集体に分割（解砕）する分割処理が行われている。
　細胞凝集体を分割する手法として、細胞凝集体を含む細胞懸濁液を、複数の開口部（網目）を有するメッシュに通過させることで細胞凝集体を機械的に分割する手法が提案されている。メッシュを用いた分割処理においては、メッシュ衝突時に細胞凝集体がダメージを受け、多くの死細胞が発生する。特に、サイズが比較的小さい細胞凝集体は、メッシュを用いた分割処理に対して脆弱である。培養期間中、培養容器内には、様々なサイズの細胞凝集体が収容されているところ、培養容器内に収容されている細胞凝集体に対して無差別に分割処理を行うと、サイズが比較的小さい細胞凝集体に対しても分割処理が行われることなり、死細胞の発生率の抑制が困難となる。
　開示の技術は、サイズが比較的小さい細胞凝集体に対する分割処理の実施を抑制することで、死細胞の発生を抑制できる細胞培養方法及び細胞培養装置を提供する。
　開示の技術に係る細胞培養方法は、培養容器から移送された細胞凝集体を含む細胞懸濁液の成分を、サイズに応じて分離する分級工程と、分級工程において分離されたサイズが相対的に小さい細胞凝集体を培養容器に回収する第１の回収工程と、分級工程において分離されたサイズが相対的に大きい細胞凝集体を分割する分割工程と、分割工程において分割された細胞凝集体を、培養容器または培養容器とは異なる回収容器に回収する第２の回収工程と、を含む。開示の技術に係る細胞培養方法によれば、サイズが比較的小さい細胞凝集体に対する分割処理の実施が抑制され、死細胞の発生を抑制することが可能となる。
　開示の技術に係る細胞培養方法は、分級工程において分離されたサイズが最も小さい階級に属する成分を廃棄する廃棄工程を更に含んでいてもよい。これにより、細胞懸濁液から死細胞等のデブリスを除去することが可能となる。
　開示の技術に係る細胞培養方法は、分割工程において細胞凝集体を分割する前に当該細胞凝集体と培地と混合する混合工程を更に含んでいてもよい。これにより、分級工程を経た細胞懸濁液における細胞濃度を適正な濃度に調整することができる。
　開示の技術に係る細胞培養方法は、第２の回収工程において、回収容器に回収された細胞を回収容器内で培養する第１の培養工程と、第１の培養工程を経た細胞を、培養容器内で培養する第２の培養工程と、を更に含んでいてもよい。これにより、細胞の状態に適した環境で培養することができ、細胞の生存率及び品質を高めることが可能となる。
　例えば、第１の培養工程において用いられる培地の組成は、第２の培養工程において用いられる培地の組成と異なっていてもよい。具体的には、第１の培養工程において用いられる培地にはＲＯＣＫ阻害剤が添加されていてもよく、第２の培養工程において用いられる培地にはＲＯＣＫ阻害剤が添加されていないことが好ましい。また、第１の培養工程において用いられる培地の粘度は、第２の培養工程において用いられる培地の粘度よりも低くてもよい。
　開示の技術に係る細胞培養装置は、細胞凝集体を含む細胞懸濁液を収容する培養容器と、細胞凝集体を含む細胞懸濁液の成分を、サイズに応じて分離する分級部と、細胞凝集体を分割する分割部と、培養容器、分級部及び分割部に接続された流路と、流路を介した細胞懸濁液の移送を制御する制御部と、を含む。制御部は、培養容器に収容されている細胞懸濁液を分級部に移送し、分級部において分離されたサイズが相対的に小さい細胞凝集体を含む細胞懸濁液を培養容器に移送し、分級部において分離されたサイズが相対的に大きい細胞凝集体を含む細胞懸濁液を分割部に移送し、分割部において分割された細胞凝集体を含む細胞懸濁液を流路に接続された容器に移送する。開示の技術に係る細胞培養装置によれば、サイズが比較的小さい細胞凝集体に対する分割処理の実施を抑制することができ、死細胞の発生を抑制することが可能となる。
　開示の技術に係る細胞培養装置は、流路に接続された廃液容器を更に含んでいてもよい。この場合、制御部は、分級部において分離されたサイズが最も小さい階級に属する成分を廃液容器に移送してもよい。これにより、細胞懸濁液から死細胞等のデブリスを除去することが可能となる。
　制御部は、分割部において分割された細胞凝集体を含む細胞懸濁液を培養容器に移送してもよい。また、開示の技術に係る細胞培養装置は、流路に接続された回収容器を更に含んでいてもよい。この場合、制御部は、分割部において分割された細胞凝集体を含む細胞懸濁液を回収容器に移送してもよい。
　制御部は、回収容器に移送され、回収容器内で培養された細胞を含む細胞懸濁液を培養容器に移送してもよい。これにより、細胞の状態に適した環境で培養することができ、細胞の生存率及び品質を高めることが可能となる。
　開示の技術に係る細胞培養装置は、流路に接続され、細胞懸濁液を濾過する濾過部を更に含んでいてもよい。この場合、制御部は、回収容器に移送され、回収容器内で培養された細胞を含む細胞懸濁液を培養容器に移送する前に濾過部に移送し、濾過部において濾過された細胞懸濁液を培養容器に移送してもよい。これにより、細胞懸濁液から死細胞等のデブリスを除去することが可能となる。
　開示の技術によれば、サイズが比較的小さい細胞凝集体に対する分割処理の実施が抑制され、死細胞の発生を抑制することが可能となる。
開示の技術の実施形態に係る細胞培養方法における処理の流れの一例を示す工程フロー図である。 開示の技術の実施形態に係る細胞培養装置の構成の一例を示す図である。 開示の技術の実施形態に係る分割部１６の構成の一例を示す断面図である。 開示の技術の実施形態に係るメッシュの平面図である。 図３Ｂにおいて破線で囲んだ部分Ｙの拡大図である。 培地交換処理を行う場合に、開示の技術の実施形態に係る制御部において実施される処理の流れの一例を示すフローチャートである。 分割処理を行う場合に、開示の技術の実施形態に係る制御部において実施される処理の流れの一例を示すフローチャートである。 開示の技術の他の実施形態に係る細胞培養方法における処理の流れの一例を示す工程フロー図である。 開示の技術の他の実施形態に係る細胞培養装置の構成の一例を示す図である。 分割処理を行う場合に、開示の技術の実施形態に係る制御部において実施される処理の流れの一例を示すフローチャートである。
　以下、開示の技術の実施形態の一例を、図面を参照しつつ説明する。なお、各図面において同一または等価な構成要素および部分には同一の参照符号を付与している。
[第１の実施形態]
　図１は、開示の技術の第１の実施形態に係る細胞培養方法における処理の流れの一例を示す工程フロー図である。本実施形態に係る細胞培養方法においては、ｉＰＳ細胞、間葉系胚細胞、ＥＳ細胞等の増殖性を有する幹細胞を培養の対象とする。また、培養容器内において、例えば、１×１０９個またはそれよりも多くの細胞が、略球状の凝集体（スフェア）を形成して、培地中に浮遊した状態で培養されるものとする。本実施形態に係る細胞培養方法は、分級工程Ａ１、廃棄工程Ａ２、第１の回収工程Ａ３、混合工程Ａ４、分割工程Ａ５、第２の回収工程Ａ６を含む。
　分級工程Ａ１では、培養容器から移送された細胞懸濁液に含まれる成分を分級する分級処理が行われる。本実施形態に係る分級工程Ａ１では、細胞懸濁液に含まれる成分が、そのサイズに応じて３つの階級に分けられる。サイズが最も小さい階級に属する成分には、サイズが例えば５０μｍ未満の死細胞及び細胞から分泌された分泌物等のデブリスが含まれる。サイズが最も大きい階級に属する成分には、サイズが相対的に大きい（例えば２００μｍ以上）細胞凝集体（以下、大サイズスフェア）が含まれる。サイズが中程度の階級に属する成分には、サイズが相対的に小さい（例えば５０μｍ以上２００μｍ未満）細胞凝集体（以下、小サイズスフェアという）が含まれる。
　廃棄工程Ａ２では、分級工程において他の階級成分から分離された、サイズが最も小さい階級に属する成分に含まれる死細胞等のデブリスが廃棄される。
　第１の回収工程Ａ３では、分級工程Ａ１において他の階級成分から分離された小サイズスフェアが元の培養容器に回収される。
　混合工程Ａ４では、分級工程Ａ１において他の階級成分から分離された大サイズスフェアを含む細胞懸濁液と、新鮮な培地とを混合する混合処理が行われる。分級工程Ａ１においては、細胞凝集体と培地とが分離され、分級工程Ａ１を経た細胞懸濁液は、細胞濃度が過度に高まるので、大サイズスフェアを含む細胞懸濁液と、新鮮な培地とを混合することで、大サイズスフェアを含む細胞懸濁液における細胞濃度が適正な濃度に調整される。
　分割工程Ａ５では、分級工程Ａ１において他の階級成分から分離された大サイズスフェアを、サイズがより小さい細胞凝集体に分割する分割処理が行われる。分割工程Ａ５における細胞凝集体の分割は、細胞凝集体をメッシュに通すことにより行われる。ｉＰＳ細胞等の幹細胞の培養においては、細胞を浮遊培養することによって生じる細胞凝集体のサイズが過大となると、細胞凝集体同士が接着融合し、細胞が分化を開始したり、細胞凝集体の中心部の細胞が壊死したりする場合がある。分割工程Ａ５において、分割処理が行われることで、細胞凝集体のサイズが過大となることが抑制される。
　第２の回収工程Ａ６では、分割工程Ａ５において分割された細胞凝集体が、元の培養容器またはこれとは別の回収容器に回収される。回収された細胞は、元の培養容器またはこれとは別の回収容器内で、継続して培養される。この培養により、例えば細胞凝集体の平均サイズが、分割処理が必要となる所定のサイズにまで成長した場合、上記の各工程（Ａ１～Ａ６）における処理が繰り返し行われる。
　図２は、上記した細胞培養方法を実現する開示の技術の第１の実施形態に係る細胞培養装置１の構成の一例を示す図である。
　細胞培養装置１は、培養容器１０、培地収容容器１３、１４、分級部１１、廃液容器１２、混合部１５、分割部１６、モニタ部１７、制御部２０、ポンプＰ１～Ｐ７及びバルブＶ１～Ｖ３を含んで構成されている。培養容器１０、培地収容容器１３、１４、分級部１１、廃液容器１２、混合部１５、分割部１６は、それぞれ流路３０に接続されている。
　培養容器１０には、培養対象である複数の細胞からなる細胞凝集体及び培地を含む細胞懸濁液が収容される。培養容器１０は、例えば、１×１０９個またはそれよりも多くの細胞を収容可能な容積を有する。培養容器１０の形態は、特に限定されず、例えば、ガラス容器または金属容器を培養容器１０として用いることが可能である。培養容器１０は、例えばガス透過性を有するフィルムを含んで構成されるバッグの形態を有していてもよい。培地収容容器１３、１４には、それぞれ、新鮮な培地が収容される。
　分級部１１は、本実施形態に係る細胞培養方法の分級工程Ａ１における分級処理を行う。すなわち、分級部１１は、細胞懸濁液に含まれる成分を、そのサイズに応じて３階級に分ける分級処理を行う。分級部１１は、分級処理によって分離したサイズが互いに異なる成分を、別々の流出口ｏ１、ｏ２、ｏ３から流出させる。サイズが最も小さい階級に属する成分（主として、死細胞等のデブリス）が流出する流出口ｏ１は、流路３０を介して廃液容器１２に接続されている。サイズが最も大きい階級に属する成分（主として大サイズスフェア）が流出する流出口ｏ２は、流路３０を介して混合部１５に接続されている。サイズが中程度の階級に属する成分（主として小サイズスフェア）が流出する流出口ｏ３は、流路３０を介して培養容器１０に接続されている。
　分級部１１における分級の階級数は可変とされており、細胞懸濁液に含まれる成分を、そのサイズに応じて例えば２つの階級に分けることも可能である。これにより、分級部１１は、細胞懸濁液に含まれる死細胞等のデブリスを除去する濾過処理を行う濾過部としても機能する。分級部１１として公知の分級装置を用いることが可能である。分級部１１を構成する分級装置として、例えば、分級対象のサイズ毎の沈降速度の差を利用するもの、遠心分離を利用するもの、またはフィルタ膜による膜分離を行うもの等を使用することができる。
　混合部１５は、本実施形態に係る細胞培養方法の混合工程Ａ４における混合処理を行う。すなわち、分級工程Ａ１において分離された大サイズスフェアと、培地収容容器１３から移送された新鮮な培地とが混合部１５において混合される。混合部１５は、流入する流体を撹拌する機能を有する。混合部１５は、駆動部を有しない所謂スタティックミキサを含んで構成されていてもよく、例えば、管状体と、管状体の内部に固定設置され、管状体の内部にらせん状の流路を形成する撹拌エレメントと、を含んで構成され得る。なお、混合部１５は、回転軸に取り付けられた撹拌翼を回転軸の周りに回転させる撹拌装置を含んで構成されていてもよい。
　分割部１６は、本実施形態に係る細胞培養方法の分割工程Ａ５における分割処理を行う。すなわち、分割部１６は、分級部１１において分離され、混合部１５において新鮮な培地と混合された大サイズスフェアを、サイズがより小さい細胞凝集体に分割する。
　図３Ａは、分割部１６の構成の一例を示す断面図である。分割部１６は、流入口２０２及び流出口２０３を有するケース２０１と、ケース２０１の内部の、流入口２０２と流出口２０３との間に設けられたメッシュ２１０とを含んで構成されている。図３Ｂは、メッシュ２１０の平面図、図３Ｃは、図３Ｂにおいて破線で囲んだ部分Ｙの拡大図である。メッシュ２１０は、複数の繊維状部材２１２を例えば平織りすることによって形成された複数の開口部（網目）２１１を有する。なお、繊維状部材２１２の織り方は、平織りに限定されない。繊維状部材２１２の材質は、特に限定されるものではないが、耐食性の高い材料で構成されていることが好ましく、例えばナイロンまたはステンレスを好適に用いることができる。メッシュ２１０は、複数の開口部２１１を有する主面が、細胞懸濁液の流れ方向ＦＬと交差する方向に延在するようにケース２０１内に設置されている。細胞懸濁液が、メッシュ２１０を通過することで、細胞懸濁液に含まれる細胞凝集体が機械的に分割される。分割部１６が有するメッシュ２１０の孔径Ｌは、例えば、分割処理前の細胞凝集体の平均径よりも小さい大きさとされ、分割処理後の細胞凝集体の目標サイズに応じて定められる。細胞凝集体の平均径として、細胞凝集体の各々を球形近似したときの、当該球形の直径の算術平均を適用することが可能である。
　モニタ部１７は、流路３０の、培養容器１０と分級部１１との間の区間Ｘに設けられている。モニタ部１７は、区間Ｘを通過する細胞懸濁液をモニタする。モニタ部１７は、フローセル１８及び撮像装置１９を含んで構成されている。
　フローセル１８は、その全体が、ガラスまたはプラスチック等の光透過性を有する材料で構成されている。フローセル１８は、第１の流通口１８ａと、第１の流通口１８ａに連通する第２の流通口１８ｂとを有している。撮像装置１９は、フローセル１８の第１の流通口１８ａと第２の流通口１８ｂとの間の領域に撮像視野が設定されており、フローセル１８の内部を流れる細胞懸濁液に含まれる細胞（細胞凝集体）を、フローセル１８越しに連続的に撮像する。撮像装置１９によって撮像された複数の画像は、制御部２０に送信される。また、フローセル１８の内部を流れる細胞懸濁液に含まれる培地を撮像装置１９によって撮像して色味を評価し、予め登録された色見本と照合することで培地のｐＨ（水素イオン指数）を定量する。
　流路３０は、培養容器１０から分級部１１への細胞懸濁液の移送、分級部１１から培養容器１０、廃液容器１２及び混合部１５への細胞懸濁液の移送、混合部１５から分割部１６への細胞懸濁液の移送、分割部１６から培養容器１０への細胞懸濁液の移送をそれぞれ可能とするように構成されている。また、流路３０は、培地収容容器１３から混合部１５への培地の移送、培地収容容器１４から培養容器１０への培地の移送をそれぞれ可能とするように構成されている。また、流路３０は、培養容器１０から抜き出された細胞懸濁液が、分級部１１、混合部１５及び分割部１６を経由して、培養容器１０に戻る第１の循環ルート、培養容器１０から抜き出された細胞懸濁液が、分級部１１して培養容器１０に戻る第２の循環ルートを形成するように構成されている。
　ポンプＰ１～Ｐ７及びバルブＶ１～Ｖ３は、流路３０の各所に適宜配置される。ポンプＰ１～Ｐ７は、制御部２０から供給される制御信号に応じて駆動し、バルブＶ１～Ｖ３は、制御部２０から供給される制御信号に応じて開閉する。なお、流路３０の構成及びポンプＰ１～Ｐ７及びバルブＶ１～Ｖ３の配置は、図２に例示されたものに限定されず、本実施形態に係る細胞培養方法を実施できるように構成されていればよい。
　制御部２０は、制御信号を用いてポンプＰ１～Ｐ７の駆動制御及びバルブＶ１～Ｖ３の開閉制御を行うことにより、流路３０を介した細胞懸濁液の移送を制御する。
　培養容器１０内で、細胞培養を行うと、死細胞及び細胞から分泌された分泌物等のデブリスが培養容器１０内に蓄積される。これらのデブリスは、細胞の生存率及び増殖性に悪影響を与えるおそれがあることから、定期的に（例えば、２４時間毎に）培養容器１０内の培地を新鮮な培地に交換する培地交換処理を実施することが好ましい。
　図４は、細胞培養装置１において培地交換処理を行う場合に、制御部２０において実施される処理の流れの一例を示すフローチャートである。
　ステップＳ１において、制御部２０は、バルブＶ１を開状態に制御し、ポンプＰ１を駆動させることで、培養容器１０に収容されている細胞懸濁液の一部を分級部１１に移送する。細胞懸濁液が、流路３０の区間Ｘを通過する間、当該細胞懸濁液に含まれる細胞が、モニタ部１７によってモニタされる。すなわち、撮像装置１９は、フローセル１８を通過する細胞懸濁液に含まれる細胞（細胞凝集体）を連続的に撮像する。撮像装置１９は、例えば、流路３０の区間Ｘを通過する細胞懸濁液に含まれる全ての細胞（細胞凝集体）を撮像可能な間隔で撮像を行う。なお、撮像装置１９は、流路３０の区間Ｘを通過する細胞懸濁液に含まれる一部の細胞（細胞凝集体）を撮像してもよい。
　ステップＳ２において、制御部２０は、モニタ部１７の撮像装置１９によって撮像された細胞の画像を取得する。
　分級部１１は、濾過部として機能し、培養容器１０から移送された細胞懸濁液に対して濾過処理を行う。すなわち、分級部１１は、培養容器１０から移送された細胞懸濁液に含まれる、サイズが相対的に大きい細胞凝集体と、サイズが相対的に小さい死細胞等のデブリスとを分離する。分級部１１は、サイズが相対的に大きい細胞凝集体を流出口ｏ３から流出させ、サイズが相対的に小さい細胞凝集体を流出口ｏ１から流出させる。
　ステップＳ３において、制御部２０は、ポンプＰ２を駆動させることで、流出口ｏ１から流出する死細胞等のデブリスを廃液容器１２に移送する。
　ステップＳ４において、制御部２０は、ポンプＰ３を駆動させることで、流出口ｏ３から流出する細胞凝集体を含む細胞懸濁液を培養容器１０に移送する。
　ステップＳ５において、制御部２０は、ポンプＰ３を駆動させ、バルブＶ３を開状態に制御することで、培地収容容器１４に収容されている新鮮な培地を培養容器１０に移送する。これにより、培養容器１０内に、新鮮な培地が補充される。このとき、制御部２０は、ステップＳ２においてモニタ部１７から取得した画像や評価結果に基づいて培地の移送量を導出する。制御部２０は、培地の移送量を例えば以下のように導出する。すなわち、制御部２０は、ステップＳ２において取得した画像に基づいて、培養容器１０内の現在の細胞濃度を導出する。現在の細胞濃度は、例えば、ステップＳ２において取得した画像に含まれる細胞凝集体の個々のサイズの積算値と、撮像装置１９の撮像視野の面積との比から導出することが可能である。制御部２０は、導出した培養容器１０内の現在の細胞濃度に基づいて、培養容器１０内の細胞濃度を所定の濃度とするために追加すべき培地の量を、培地収容容器１４から培養容器１０への培地の移送量として導出する。
　ステップＳ６において、制御部２０は、ステップＳ２においてモニタ部１７から取得した画像に基づいて、分割処理の要否を判断する。制御部２０は、分割処理の要否の判断を例えば、以下のようにして行う。制御部２０は、例えば、ステップＳ２においてモニタ部１７から取得した画像に含まれる細胞凝集体の平均径を導出し、導出した平均径が所定の大きさよりも大きい場合には、分割処理が必要であると判断し、導出した平均径が所定の大きさよりも小さい場合には、分割処理が不要であると判断する。細胞凝集体の平均径として、細胞凝集体の各々を球形近似したときの、当該球形の直径の算術平均を適用することが可能である。
　制御部２０は、上記ステップＳ１～Ｓ６の処理を連続的または断続的に繰り返し実施することにより、培養容器１０内における培地の鮮度を一定レベルに保持する。
　ｉＰＳ細胞等の幹細胞の培養においては、細胞を浮遊培養することによって生じる細胞凝集体のサイズが過大となると、細胞凝集体同士が接着融合し、細胞が分化を開始したり、細胞凝集体の中心部の細胞が壊死したりする場合がある。従って、細胞凝集体のサイズが過大となることを防止するために、細胞の培養期間中の適切な時期に、細胞凝集体を、より小さいサイズの複数の細胞凝集体に分割する分割処理を行うことが好ましい。
　本実施形態に係る細胞培養装置１においては、培地換処理を行う場合に、制御部２０において実施される処理のステップＳ６（図４参照）において分割処理が必要であると判断された場合に分割処理が行われる。
　図５は、細胞培養装置１において分割処理を行う場合に、制御部２０において実施される処理の流れの一例を示すフローチャートである。
　ステップＳ１１において、制御部２０は、バルブＶ１を開状態に制御し、ポンプＰ１を駆動させることで、培養容器１０に収容されている細胞懸濁液の一部を、培養容器１０から分級部１１に移送する。細胞懸濁液が、流路３０の区間Ｘを通過する間、当該細胞懸濁液に含まれる細胞が、モニタ部１７によってモニタされる。すなわち、撮像装置１９は、フローセル１８を通過する細胞懸濁液に含まれる細胞（細胞凝集体）を連続的に撮像する。
　ステップＳ１２において、制御部２０は、モニタ部１７の撮像装置１９によって撮像された細胞の画像を取得する。
　分級部１１は、培養容器１０から移送された細胞懸濁液に含まれる成分を、そのサイズに応じて３つの階級に分ける分級処理を行う。すなわち、分級部１１は、培養容器１０から移送された細胞懸濁液に含まれる大サイズスフェア、小サイズスフェア及び死細胞等のデブリスを互いに分離する。これにより、本実施形態に係る細胞培養方法における分級工程Ａ１が実現される。分級部１１は、大サイズスフェアを流出口ｏ２から流出させ、小サイズスフェアを流出口ｏ３から流出させ、死細胞等のデブリスを流出口ｏ１から流出させる。
　ステップＳ１３において、制御部２０は、ポンプＰ２を駆動させることで、流出口ｏ１から流出する死細胞等のデブリスを廃液容器１２に移送する。これにより、本実施形態に係る細胞培養方法における廃棄工程Ａ２が実現される。
　ステップＳ１４において、制御部２０は、ポンプＰ３を駆動させることで、流出口ｏ３から流出する小サイズスフェアを含む細胞懸濁液を培養容器１０に移送する。これにより、本実施形態に係る細胞培養方法における第１の回収工程Ａ３が実現される。すなわち、培養容器１０から抜き出された小サイズスフェアは、分割部１６において分割処理が施されることなく培養容器１０に回収される。
　ステップＳ１５において、制御部２０は、ポンプＰ４、Ｐ６を駆動させることで、流出口ｏ２から流出する大サイズスフェアを含む細胞懸濁液を分割部１６に移送する。大サイズスフェアを含む細胞懸濁液は、分級部１１から混合部１５を経由して分割部１６に移送される。
　ステップＳ１６において、制御部２０は、バルブＶ２を開状態に制御し、ポンプＰ５を駆動させることで、培地収容容器１３に収容されている新鮮な培地を混合部１５に移送する。分級部１１から分割部１６に向かう大サイズスフェアを含む細胞懸濁液は、培地収容容器１３から移送された新鮮な培地と、混合部１５において合流し、混合及び撹拌される。これにより、本実施形態に係る細胞培養方法における混合工程Ａ４が実現される。分級部１１においては、細胞凝集体と培地とが分離され、分級部１１を通過した細胞懸濁液は、細胞濃度が過度に高まるので、分級部１１を通過した大サイズスフェアを含む細胞懸濁液と、新鮮な培地とを混合することで、大サイズスフェアを含む細胞懸濁液における細胞濃度が適正な濃度に調整される。
　分割部１６に移送された大サイズスフェアは、分割部１６のメッシュ２１０（図３Ａ、図３Ｂ、図３Ｃ参照）を通過することにより、サイズのより小さい細胞凝集体に分割される。これにより、本実施形態に係る細胞培養方法における分割工程Ａ５が実現される。
　ステップＳ１７において、制御部２０は、ポンプＰ７を駆動させることで、分割部１６において分割された細胞凝集体を培養容器１０に移送する。これにより、本実施形態に係る細胞培養方法における第２の回収工程Ａ６が実現される。培養容器１０に回収された細胞を、培養容器１０内で継続して培養してもよい。
　ステップＳ１８において、制御部２０は、ポンプＰ３を駆動させ、バルブＶ３を開状態に制御することで、培地収容容器１４に収容されている新鮮な培地を培養容器１０に移送する。これにより、培養容器１０内に、新鮮な培地が補充される。このとき、制御部２０は、ステップＳ１２においてモニタ部１７から取得した画像や評価結果に基づいて培地の移送量を導出する。制御部２０は、培地の移送量を例えば以下のように導出する。すなわち、制御部２０は、ステップＳ１２において取得した画像に基づいて、培養容器１０内の現在の細胞濃度を導出する。現在の細胞濃度は、例えば、ステップＳ１２において取得した画像に含まれる細胞凝集体の個数とサイズの積と、撮像装置１９の撮像視野の面積との比から導出することが可能である。制御部２０は、導出した培養容器１０内の現在の細胞濃度に基づいて、培養容器１０内の細胞濃度を所定の濃度とするために追加すべき培地の量を、培地収容容器１４から培養容器１０への培地の移送量として導出する。
　なお、培養容器１０への培地の補充を、培地収容容器１３に収容されている培地によって補充してもよい。この場合、ステップＳ１４において、小サイズスフェアとともに培地を培養容器１０に移送してもよい。また、ステップＳ１６において、大サイズスフェアと混合される培地によって、培養容器１０への培地の補充を行ってもよい。
　以上のように、開示の技術の実施形態に係る細胞培養方法及び細胞培養装置１によれば、培養容器１０から移送された細胞凝集体を含む細胞懸濁液の成分が、分級部１１において分級される。分級により他の階級成分から分離された大サイズスフェアは、分割部１６において分割処理が施された後、培養容器１０に回収される。一方、分級により他の階級成分から分離された小サイズスフェアは、分割処理が施されることなく、培養容器１０に回収される。
　ここで、メッシュを用いた分割処理においては、メッシュ衝突時に細胞凝集体がダメージを受け、多くの死細胞が発生する。特に、小サイズスフェアは、メッシュを用いた分割処理に対して脆弱である。培養容器１０内には、様々なサイズの細胞凝集体が収容されているところ、培養容器１０内に収容されている細胞凝集体に対して無差別に分割処理を行うと、小サイズスフェアに対しても分割処理が行われることなり、死細胞の発生率の抑制が困難となる。
　開示の技術の実施形態に係る細胞培養方法及び細胞培養装置１によれば、大サイズスフェアに対して分割処理が施される一方、小サイズスフェアは、分割処理が施されることなく、培養容器１０に回収される。これにより、分割処理に伴う死細胞の発生を抑制することができ、細胞の生産性を高めることができる。なお、小サイズスフェアに対しては、本来、分割処理が不要であるため、小サイズスフェアに対する分割処理を抑制することによる弊害はないものと考えられる。
　また、メッシュを用いた分割処理においては、メッシュを通過できない細胞がメッシュ上に滞留することによるロスが発生する。開示の技術の実施形態に係る細胞培養方法及び細胞培養装置１によれば、小サイズスフェアに対する分割処理が回避されるので、分割処理に伴う細胞のロスを抑制することが可能である。
　なお、本実施形態に係る細胞培養装置１においては、分割部１６において分割された細胞凝集体を、培養容器１０に回収する場合を例示したが、この態様に限定されない。例えば、培養容器１０とは別の回収容器を設け、分割部１６において分割された細胞凝集体を、上記回収容器に回収してもよい。
［第２の実施形態］
　図６は、開示の技術の第２の実施形態に係る細胞培養方法における処理の流れの一例を示す工程フロー図である。第２の実施形態に係る細胞培養方法は、第２の回収工程Ａ６が、上記した第１の実施形態に係る細胞培養方法における第２の回収工程Ａ６とは異なる。また、第２の実施形態に係る細胞培養方法は、第１の培養工程Ａ７及び第２の培養工程Ａ８を更に含む。第２の実施形態に係る細胞培養方法における、分級工程Ａ１、廃棄工程Ａ２、第１の回収工程Ａ３、混合工程Ａ４、分割工程Ａ５は、上記した第１の実施形態に係る培養方法と同じであるので、重複する説明は省略する。
　第２の実施形態に係る第２の回収工程Ａ６では、分割工程Ａ５において分割された細胞凝集体が、元の培養容器とは別の回収容器に回収される。
　第１の培養工程Ａ７では、回収容器に回収された細胞が回収容器内で培養される。すなわち、分割工程における分割処理によってダメージを受けた細胞は、回収容器内で培養される。
　第２の培養工程Ａ８では、第１の培養工程Ａ７を経た細胞が、元の培養容器内で培養される。すなわち、第１の培養工程Ａ７を経ることにより、ダメージから回復した細胞は、元の培養容器に移送され、培養容器内で培養される。
　第１の培養工程Ａ７における培養期間は、例えば、分割処理によるダメージからの回復に要する期間（例えば、数時間～１日程度）とされる。第２の培養工程Ａ８における培養期間は、例えば、細胞凝集体が、分割処理が必要となるサイズにまで成長するのに要する期間（例えば５日間程度）とされる。第２の培養工程Ａ８における培養により、例えば培養容器内の細胞凝集体の平均サイズが、分割処理が必要となる所定のサイズにまで成長した場合、上記の各工程（Ａ１～Ａ８）における処理が繰り返し行われる。
　第１の培養工程Ａ７において用いられる培地の組成と、第２の培養工程Ａ８において用いられる培地の組成とは、互いに異なっていてもよい。分割処理によるダメージを受けた細胞は、自らを細胞死に誘導する場合がある。この分割処理後に発現する細胞死は、細胞の生産性を低下させる要因となっている。この分割処理後に発現する細胞死は、ＲＯＣＫと呼ばれる細胞内のリン酸化酵素の働きを阻害することで抑制できることが知られている。そこで、分割処理の直後に実施される第１の培養工程Ａ７において用いられる培地には、ＲＯＣＫの働きを阻害するＲＯＣＫ阻害剤が添加されていてもよい。第１の培養工程Ａ７において用いられる培地にＲＯＣＫ阻害剤を添加することで、分割処理後に発現する細胞死を抑制する効果が期待できる。一方、細胞による自発的な細胞死は、細胞の増殖過程において必要な事象であることから、自発的な細胞死を人為的に阻害することによるデメリットを抑制することが好ましい。従って、分割処理によるダメージから回復した後に行われる第２の培養工程Ａ８において用いられる培地には、ＲＯＣＫ阻害剤が含まれていないことが好ましい。
　また、回収容器に回収される細胞凝集体は、分割処理によって小サイズ化されているので、回収容器に収容される細胞凝集体を培地中において浮遊状態を維持するために必要とされる培地の粘度は比較的低い。一方、第１の培養工程Ａ７を経た細胞が収容される培養容器１０内における細胞凝集体の平均サイズは、回収容器内における細胞凝集体の平均サイズよりも大きい。従って、培養容器に収容される細胞凝集体を培地中に浮遊状態を維持するために必要とされる培地の粘度は比較的高い。そこで、第１の培養工程Ａ７において用いられる培地の粘度を、第２の培養工程Ａ８において用いられる培地の粘度よりも低くしてもよい。
　このように、第１の培養工程Ａ７において用いられる培地の組成と、第２の培養工程Ａ８において用いられる培地の組成とを互いに異ならせることにより、各培養工程において、細胞の状態に適した培養を行うことが可能となる。
　図７は、上記した細胞培養方法を実現する開示の技術の第２の実施形態に係る細胞培養装置１Ａの構成の一例を示す図である。細胞培養装置１Ａは、上記した第１の実施形態に係る細胞培養装置１（図２参照）が備える構成に加え、流路３０に接続された回収容器２１、濾過部２２、廃液容器２３、培地収容容器２４、混合部２５を更に含む。
　回収容器２１は、分割部１６における分割処理後の細胞凝集体及び培地を含む細胞懸濁液が収容される。回収容器２１の形態は、特に限定されず、例えば、ガラス容器または金属容器を回収容器２１として用いることが可能である。回収容器２１は、例えばガス透過性を有するフィルムを含んで構成されるバッグの形態を有していてもよい。回収容器２１の容積は、培養容器１０と同等または培養容器１０の容積よりも小さくてもよい。
　濾過部２２は、細胞懸濁液に対して濾過処理を行うことにより、細胞懸濁液に含まれる細胞凝集体と死細胞等のデブリスとを分離する。濾過部２２における濾過処理は、例えば、濾過膜を用いた膜分離によって行われてもよい。濾過部２２における濾過処理を、膜分離によって行う場合、膜分離の方式は、細胞に対するダメージが比較的小さいタンジェンシャルフロー方式であることが好ましい。濾過部２２において、分離された死細胞等のデブリスは、廃液容器２３に収容される。培地収容容器２４には、新鮮な培地が収容される。
　混合部２５は、濾過部２２において死細胞等のデブリスが除去された細胞懸濁液と、培地収容容器２４から移送された新鮮な培地とを混合する混合処理を行う。濾過部２２において濾過処理が施された細胞懸濁液は、細胞濃度が過度に高まるので、濾過処理済みの細胞懸濁液と、新鮮な培地とを混合することで、濾過処理済みの細胞懸濁液における細胞濃度が適正な濃度に調整される。混合部２５は、混合部１５と同様の構成を有していてもよく、例えばスタティックミキサを含んで構成されていてもよい。
　流路３０は、培養容器１０から分級部１１への細胞懸濁液の移送、分級部１１から培養容器１０、廃液容器１２及び混合部１５への細胞懸濁液の移送、混合部１５から分割部１６への細胞懸濁液の移送、分割部１６から回収容器２１への細胞懸濁液の移送、回収容器２１から濾過部２２への細胞懸濁液の移送、濾過部２２から廃液容器２３及び混合部２５への細胞懸濁液の移送、混合部２５から培養容器１０への細胞懸濁液の移送をそれぞれ可能とするように構成されている。また、流路３０は、培地収容容器１３から混合部１５への培地の移送、培地収容容器１４から培養容器１０への培地の移送、培地収容容器２４から混合部２５への培地の移送をそれぞれ可能とするように構成されている。また、流路３０は、培養容器１０から抜き出された細胞懸濁液が、分級部１１、混合部１５、分割部１６、回収容器２１、濾過部２２及び混合部２５を経由して、培養容器１０に戻る第１の循環ルート、培養容器１０から抜き出された細胞懸濁液が、分級部１１して培養容器１０に戻る第２の循環ルートを形成するように構成されている。
　図８は、細胞培養装置１Ａにおいて、分割処理を行う場合に、制御部２０において実施される処理の流れの一例を示すフローチャートである。なお、図８に示すフローチャートのステップＳ２１～Ｓ２６、Ｓ２８における処理は、図５に示すフローチャートのステップＳ１１～Ｓ１６、Ｓ１８と同じであるので、説明は省略する。
　ステップＳ２７において、制御部２０は、ポンプＰ７を駆動させることで、分割部１６において分割された細胞凝集体を含む細胞懸濁液を回収容器２１に移送する。これにより、本実施形態に係る細胞培養方法における第２の回収工程Ａ６が実現される。回収容器２１に移送された細胞懸濁液に含まれる細胞は、回収容器２１内で継続して培養される。これにより、本実施形態に係る細胞培養方法における第１の培養工程Ａ７が実現される。
　第１の培養工程Ａ７を開始してから所定期間（例えば数時間～１日）経過すると、ステップＳ２９において、制御部２０は、バルブＶ４を開状態に制御し、ポンプＰ８を駆動させることで、回収容器２１に収容されている細胞懸濁液を濾過部２２に移送する。
　濾過部２２は、回収容器２１から移送された細胞懸濁液に対して濾過処理を行う。すなわち、濾過部２２は、回収容器２１から移送された細胞懸濁液に含まれる、サイズが相対的に大きい細胞凝集体と、サイズが相対的に小さい死細胞等のデブリスとを分離する。
　ステップＳ３０において、制御部２０は、ポンプＰ９を駆動させることで、死細胞等のデブリスを濾過部２２から廃液容器２３に移送する。
　ステップＳ３１において、制御部２０は、ポンプＰ１０を駆動させることで、死細胞等のデブリスが除去された細胞懸濁液を培養容器１０に移送する。細胞懸濁液は、濾過部２２から混合部２５を経由して培養容器１０に移送される。
　ステップＳ３２において、制御部２０は、バルブＶ５を開状態に制御し、ポンプＰ１１を駆動させることで、培地収容容器２４に収容されている新鮮な培地を混合部２５に移送する。濾過部２２から培養容器１０に向かう濾過処理済みの細胞懸濁液は、培地収容容器２４から移送された新鮮な培地と、混合部２５において合流し、混合及び撹拌される。濾過部２２において濾過処理が施された細胞懸濁液は、細胞濃度が過度に高まるので、濾過処理済みの細胞懸濁液と、新鮮な培地とを混合することで、濾過処理済みの細胞懸濁液における細胞濃度が適正な濃度に調整される。
　培養容器１０に移送された細胞懸濁液に含まれる細胞は、培養容器１０内で継続して培養される。これにより、本実施形態に係る細胞培養方法における第２の培養工程Ａ８が実現される。
　回収容器２１内で行われる第１の培養工程Ａ７において用いられる培地には、ＲＯＣＫ阻害剤が添加されていてもよく、培養容器１０内で行われる第２の培養工程Ａ８において用いられる培地には、ＲＯＣＫ阻害剤が添加されていないことが好ましい。また、第１の培養工程Ａ７において用いられる培地の粘度は、第２の培養工程Ａ８において用いられる培地の粘度よりも低くてもよい。
　開示の技術の第２の実施形態に係る細胞培養方法及び細胞培養装置１によれば、分割された細胞凝集体が、培養容器１０とは異なる回収容器２１に回収され、回収容器２１内で培養される（第１の培養工程）。回収容器２１内で培養された細胞は、所定期間の経過後、培養容器１０に移送され、培養容器１０内で培養される（第２の培養工程）。
　このように、分割処理によるダメージを受けた細胞を培養対象とする第１の培養工程と、分割処理によるダメージから回復した細胞を培養対象とする第２の培養工程とを、互いに異なる容器で培養を行うことで、細胞の状態に適した環境で培養することができる。これにより、細胞の生存率及び品質を高めることが可能となる。例えば、第１の培養工程Ａ７において用いられる培地の組成と、第２の培養工程Ａ８において用いられる培地の組成とを、互いに異ならせることも可能である。

Claims (13)

  1. 　培養容器から移送された細胞凝集体を含む細胞懸濁液の成分を、サイズに応じて分離する分級工程と、
    　前記分級工程において分離されたサイズが相対的に小さい細胞凝集体を前記培養容器に回収する第１の回収工程と、
    　前記分級工程において分離されたサイズが相対的に大きい細胞凝集体を分割する分割工程と、
    　前記分割工程において分割された細胞凝集体を、前記培養容器または前記培養容器とは異なる回収容器に回収する第２の回収工程と、
    　を含む細胞培養方法。
  2. 　前記分級工程において分離されたサイズが最も小さい階級に属する成分を廃棄する廃棄工程を更に含む
    　請求項１に記載の細胞培養方法。
  3. 　前記分割工程において細胞凝集体を分割する前に当該細胞凝集体と培地と混合する混合工程を更に含む
    　請求項１または請求項２に記載の細胞培養方法。
  4. 　前記第２の回収工程において、前記回収容器に回収された細胞を前記回収容器内で培養する第１の培養工程と、
    　前記第１の培養工程を経た細胞を、前記培養容器内で培養する第２の培養工程と、
    　を更に含む請求項１から請求項３のいずれか１項に記載の細胞培養方法。
  5. 　前記第１の培養工程において用いられる培地の組成は、前記第２の培養工程において用いられる培地の組成と異なる
    　請求項４に記載の細胞培養方法。
  6. 　前記第１の培養工程において用いられる培地にはＲＯＣＫ阻害剤が添加され、前記第２の培養工程において用いられる培地にはＲＯＣＫ阻害剤が添加されない
    　請求項５に記載の細胞培養方法。
  7. 　前記第１の培養工程において用いられる培地の粘度は、前記第２の培養工程において用いられる培地の粘度よりも低い
    　請求項５または請求項６に記載の細胞培養方法。
  8. 　細胞凝集体を含む細胞懸濁液を収容する培養容器と、
    　細胞凝集体を含む細胞懸濁液の成分を、サイズに応じて分離する分級部と、
    　細胞凝集体を分割する分割部と、
    　前記培養容器、前記分級部及び前記分割部に接続された流路と、
    　前記流路を介した細胞懸濁液の移送を制御する制御部と、
    　を含み、
    　前記制御部は、
    　前記培養容器に収容されている細胞懸濁液を前記分級部に移送し、
    　前記分級部において分離されたサイズが相対的に小さい細胞凝集体を含む細胞懸濁液を前記培養容器に移送し、
    　前記分級部において分離されたサイズが相対的に大きい細胞凝集体を含む細胞懸濁液を前記分割部に移送し、
    　前記分割部において分割された細胞凝集体を含む細胞懸濁液を前記流路に接続された容器に移送する
    　細胞培養装置。
  9. 　前記流路に接続された廃液容器を更に含み、
    　前記制御部は、前記分級部において分離されたサイズが最も小さい階級に属する成分を前記廃液容器に移送する
    　請求項８に記載の細胞培養装置。
  10. 　前記制御部は、前記分割部において分割された細胞凝集体を含む細胞懸濁液を前記培養容器に移送する
    　請求項８または請求項９に記載の細胞培養装置。
  11. 　前記流路に接続された回収容器を更に含み、
    　前記制御部は、前記分割部において分割された細胞凝集体を含む細胞懸濁液を前記回収容器に移送する
    　請求項８から請求項１０のいずれか１項に記載の細胞培養装置。
  12. 　前記制御部は、前記回収容器に移送され、前記回収容器内で培養された細胞を含む細胞懸濁液を前記培養容器に移送する
    　請求項１１に記載の細胞培養装置。
  13. 　前記流路に接続され、細胞懸濁液を濾過する濾過部を更に含み、
    　前記制御部は、
    　前記回収容器に移送され、前記回収容器内で培養された細胞を含む細胞懸濁液を前記培養容器に移送する前に前記濾過部に移送し、
    　前記濾過部において濾過された細胞懸濁液を前記培養容器に移送する
    　請求項１１または請求項１２に記載の細胞培養装置。
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