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WO2018101358A1 - タンパク質組成物、その製造方法及び熱安定性向上方法 - Google Patents

タンパク質組成物、その製造方法及び熱安定性向上方法 Download PDF

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WO2018101358A1
WO2018101358A1 PCT/JP2017/042896 JP2017042896W WO2018101358A1 WO 2018101358 A1 WO2018101358 A1 WO 2018101358A1 JP 2017042896 W JP2017042896 W JP 2017042896W WO 2018101358 A1 WO2018101358 A1 WO 2018101358A1
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WO
WIPO (PCT)
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protein
tert
butyl
stabilizer
cresol
Prior art date
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PCT/JP2017/042896
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English (en)
French (fr)
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俊明 谷池
アン ティ ゴック ダオ
超 中山
潤一 下方
健悟 竹内
アビジット ラビキラン ムレイ
スニタ ダルビ
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Kojima Industries Corp
Spiber Inc
Original Assignee
Kojima Industries Corp
Spiber Inc
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Publication date
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Priority to JP2018554208A priority patent/JP7113429B2/ja
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Priority to CN201780073152.6A priority patent/CN109996805B/zh
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    • C07K14/43513—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans from invertebrates from arachnidae
    • C07K14/43518—Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans from invertebrates from arachnidae from spiders
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    • C07K1/00—General methods for the preparation of peptides, i.e. processes for the organic chemical preparation of peptides or proteins of any length
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    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
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    • A61K47/08—Organic compounds, e.g. natural or synthetic hydrocarbons, polyolefins, mineral oil, petrolatum or ozokerite containing oxygen, e.g. ethers, acetals, ketones, quinones, aldehydes, peroxides
    • A61K47/10—Alcohols; Phenols; Salts thereof, e.g. glycerol; Polyethylene glycols [PEG]; Poloxamers; PEG/POE alkyl ethers
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
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    • A61K47/00—Medicinal preparations characterised by the non-active ingredients used, e.g. carriers or inert additives; Targeting or modifying agents chemically bound to the active ingredient
    • A61K47/06—Organic compounds, e.g. natural or synthetic hydrocarbons, polyolefins, mineral oil, petrolatum or ozokerite
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    • A61K9/14—Particulate form, e.g. powders, Processes for size reducing of pure drugs or the resulting products, Pure drug nanoparticles
    • A61K9/141—Intimate drug-carrier mixtures characterised by the carrier, e.g. ordered mixtures, adsorbates, solid solutions, eutectica, co-dried, co-solubilised, co-kneaded, co-milled, co-ground products, co-precipitates, co-evaporates, co-extrudates, co-melts; Drug nanoparticles with adsorbed surface modifiers
    • A61K9/145—Intimate drug-carrier mixtures characterised by the carrier, e.g. ordered mixtures, adsorbates, solid solutions, eutectica, co-dried, co-solubilised, co-kneaded, co-milled, co-ground products, co-precipitates, co-evaporates, co-extrudates, co-melts; Drug nanoparticles with adsorbed surface modifiers with organic compounds

Definitions

  • the present invention relates to a protein composition, a method for producing the same, and a method for improving thermal stability.
  • an object of the present invention is to provide a protein composition with improved thermal stability, a method for producing the same, and a method for improving the thermal stability of proteins.
  • the present invention is a protein composition containing a dried product of a dispersion in which a protein is dispersed in a stabilizer solution, wherein the stabilizer is a catechol stabilizer, 6-hydroxy-2,5,7. , 8-tetramethylchroman-2-carboxylic acid, 2,6-di-tert-butyl-p-cresol, 2-tert-butyl-4-methoxyphenol, and 6,6′-di-tert-butyl-4
  • a protein composition comprising at least one selected from the group consisting of, 4'-butylidene-m-cresol.
  • the present invention also provides a protein composition containing a dried product of a solution in which a protein and a stabilizer are dissolved, the stabilizer comprising N, N′-hexane-1,6-diylbis [3- (3 , 5-di-tert-butyl-4-hydroxyphenylpropionamide), 1,6-hexanediol bis [3- (3,5-di-tert-butyl-4-hydroxyphenyl) propionate], 6,6 ′ -Di-tert-butyl-4,4'-butylidenedi-m-cresol, 2,6-di-tert-butyl-p-cresol, 3,9-bis (2,6-di-tert-butyl-4- Methylphenoxy) -2,4,8,10-tetraoxa-3,9-diphosphaspiro [5.5] undecane, poly [[6-[(1,1,3,3-tetramethylbutyl) amino] -1, , 5-
  • Protein compositions 1 and 2 can be obtained by the following production methods 1 and 2, respectively.
  • Production method 1 A method for producing a protein composition comprising: a step of dispersing a protein in a stabilizer solution to obtain a dispersion; and a step of removing a volatile matter from the dispersion to obtain a dried product.
  • the stabilizers include catechol stabilizers, 6-hydroxy-2,5,7,8-tetramethylchroman-2-carboxylic acid, 2,6-di-tert-butyl-p-cresol, 2- A production method comprising at least one selected from the group consisting of tert-butyl-4-methoxyphenol and 6,6'-di-tert-butyl-4,4'-butylidenedi-m-cresol.
  • Production method 2 A protein composition comprising: a step of mixing a protein, a dissolution solvent for the protein, and a stabilizer solution to obtain a mixed solution; and a step of removing a volatile matter from the mixed solution to obtain a dried product.
  • the stabilizer is N, N′-hexane-1,6-diylbis [3- (3,5-di-tert-butyl-4-hydroxyphenylpropionamide), 1,6 -Hexanediol bis [3- (3,5-di-tert-butyl-4-hydroxyphenyl) propionate], 6,6′-di-tert-butyl-4,4′-butylidene di-m-cresol, 2, 6-di-tert-butyl-p-cresol, 3,9-bis (2,6-di-tert-butyl-4-methylphenoxy) -2,4,8,10-tetraoxa-3,9-di Sufaspiro [5.5] undecane,
  • Both protein compositions 1 and 2 exhibit high thermal stability and can be used effectively as industrial materials. That is, the present invention provides a method for improving the thermal stability of a protein such as the following methods 1 and 2.
  • Method 1 A method for improving the thermal stability of a protein, comprising a catechol stabilizer, 6-hydroxy-2,5,7,8-tetramethylchroman-2-carboxylic acid, 2,6-di-tert-butyl Dissolves at least one compound selected from the group consisting of -p-cresol, 2-tert-butyl-4-methoxyphenol, and 6,6'-di-tert-butyl-4,4'-butylidenedi-m-cresol
  • a method for improving thermal stability wherein the protein is dispersed in a solution obtained to obtain a dispersion, and volatile components are removed from the dispersion to obtain a dried product in which the protein and the compound coexist.
  • Method 2 A method for improving the thermal stability of a protein, the protein, a solvent for the protein, and N, N′-hexane-1,6-diylbis [3- (3,5-di-tert-butyl -4-hydroxyphenylpropionamide), 1,6-hexanediol bis [3- (3,5-di-tert-butyl-4-hydroxyphenyl) propionate], 6,6′-di-tert-butyl-4 , 4'-butylidenedi-m-cresol, 2,6-di-tert-butyl-p-cresol, 3,9-bis (2,6-di-tert-butyl-4-methylphenoxy) -2,4 8,10-tetraoxa-3,9-diphosphaspiro [5.5] undecane, poly [[6-[(1,1,3,3-tetramethylbutyl) amino] -1,3,5-triazi -2,4-diyl] [(2,
  • a protein composition having improved thermal stability having improved thermal stability, a method for producing the same, and a method for improving the thermal stability of a protein are provided.
  • FIG. 1 It is a schematic cross section of a pressure molding machine.
  • A is a schematic cross-sectional view of a pressure molding machine before the composition is introduced, (b) is immediately after the composition is introduced, and (c) is a pressure molding machine in a state where the composition is heated and pressurized.
  • the protein composition according to the first embodiment is a protein composition containing a dried product of a dispersion in which proteins are dispersed in a stabilizer solution, and the stabilizer is a catechol-based stabilizer.
  • Agent 6-hydroxy-2,5,7,8-tetramethylchroman-2-carboxylic acid, 2,6-di-tert-butyl-p-cresol, 2-tert-butyl-4-methoxyphenol, and It contains at least one selected from the group consisting of 6,6′-di-tert-butyl-4,4′-butylidenedi-m-cresol.
  • the catechol stabilizers include 2- (3,4-dihydroxyphenyl) -3,5,7-trihydroxy-4H-chromen-4-one, (1S, 3R, 4R, 5R) -3- ⁇ [ 3- (3,4-Dihydroxyphenyl) acryloyl] oxy ⁇ -1,4,5-trihydroxycyclohexane-1-carboxylic acid, 2- (3,4-dihydroxyphenyl) -5,7-dihydroxy-3- ⁇ [(2S, 3R, 4S, 5S, 6R) -3,4,5-trihydroxy-6-( ⁇ [(2R, 3R, 4R, 5R, 6S) -3,4,5-trihydroxy-6- Methyloxan-2-yl] oxy ⁇ methyl) oxan-2-yl] oxy ⁇ -4H-chromen-4-one, propyl 3,4,5-trihydroxybenzoate, and 4,4 ′-(2,3-dimethyl) pig 1,4-diyl) can be at least one selected from
  • stabilizers 6-hydroxy-2,5,7,8-tetramethylchroman-2-carboxylic acid, 2,6-di-tert-butyl-p-cresol, 2-tert-butyl- 4-Methoxyphenol and 6,6′-di-tert-butyl-4,4′-butylidenedi-m-cresol are collectively referred to as “stabilizer for the first embodiment”.
  • the content of the stabilizer for the first embodiment with respect to 100 parts by mass of the protein is preferably more than 0 parts by mass and 10 parts by mass or less, more preferably 0.001 parts by mass to 10 parts by mass. 0.01 mass part or more and 5 mass parts or less are more preferable, 0.1 mass part or more and 2 mass parts or less are more preferable, 0.1 mass part or more and 1 mass part or less are more preferable, 0.1 mass part or more and 0.5 mass part or less. A part by mass or less is more preferable. This is because even if the content is increased beyond 10 parts by mass, the improvement in thermal stability commensurate with it is reduced.
  • the protein composition 1 includes, for example, a step of dispersing a protein in a solution of the stabilizer for the first embodiment to obtain a dispersion, and a step of removing volatile matter from the dispersion to obtain a dried product. It can manufacture with the manufacturing method with which it is equipped (the said manufacturing method 1).
  • the protein composition 1 may be a solution in which a dried product is dissolved in a solvent or the like, or a dispersion in which the dried product is dispersed in a solvent or the like.
  • the protein composition 1 may contain the other component. That is, the protein composition 1 may contain other components other than the protein and the stabilizer. Moreover, when obtaining the protein composition 1, you may melt
  • Solvents for producing the stabilizer solution for the first embodiment include primary alcohols such as ethanol and methanol, secondary alcohols such as 2-propanol, tertiary alcohols such as tert-butyl alcohol, A single solvent such as acetone, methyl ethyl ketone, or dichloromethane, or a mixed solvent of at least two of these solvents may be used.
  • dichloromethane is preferable, a mixed solvent of acetone / methanol having a volume ratio of 1/1 is more preferable, and methanol is still more preferable. This is considered to be because the higher the compatibility between the solvent and the protein, the higher the effect of allowing the stabilizer to enter the protein molecule, thereby improving the thermal stability effect.
  • the concentration of the stabilizer for the first embodiment in this solution is, for example, 0.1 to 1 mg / ml.
  • the protein is preferably in a powder form. Moreover, it is preferable to add protein to the solution of the stabilizer for 1st Embodiment according to the suitable ratio mentioned above of the protein and the stabilizer for 1st Embodiment.
  • the stabilizer for the first embodiment is dissolved in the solvent, but the protein is dispersed in the solvent.
  • the protein composition 1 can be obtained by further stirring and drying.
  • the stirring time is not particularly limited, and examples thereof include 16 to 60 hours or 16 to 24 hours at room temperature.
  • the drying method is not particularly limited, and examples thereof include natural drying (for example, 25 ° C., 1 atm) and reduced pressure drying (for example, 40 ° C. for 4 hours).
  • the protein composition thus obtained is typically in the form of a powder or film.
  • the dried product of the protein composition may be a molded body (such as a molded body).
  • a production example of a molded body, which is a kind of molded body, is as follows. That is, the molded body can be obtained by introducing the protein composition 1 into a mold (mold) and molding it, and can be heated and pressurized in the molding process.
  • the protein composition 1 to be molded can be in the form of a powder (such as freeze-dried powder) or a fiber (such as a fiber obtained by spinning). Further, the molded body may be a fused body of the protein composition having the above shape.
  • a pressure molding machine 10 shown in FIG. 1 includes a mold 2 in which a through hole is formed and which can be heated, and an upper pin 4 and a lower pin 6 that can move up and down in the through hole of the mold 2.
  • the protein composition is introduced into the gap formed by inserting the upper pin 4 or the lower pin 6 into the mold 2, and the mold 2 is heated while being heated with the upper pin 4 and the lower pin 6.
  • the composition can be compressed to produce a molded body.
  • the protein composition is introduced into the through hole with only the lower pin 6 inserted into the through hole of the mold 2, and as shown in FIG. 2 (b)
  • the upper pin 4 is inserted into the through hole 2 and lowered to start heating the mold 2, and the protein composition 8 a before being heated and pressurized is heated and pressurized in the through hole.
  • the upper pin 4 is lowered until reaching a predetermined pressure, and heating and pressurization are continued until the protein composition reaches a predetermined temperature in the state shown in FIG. Composition 8b is obtained.
  • the temperature of the mold 2 is lowered using a cooler (for example, a spot cooler), and when the protein composition 8b reaches a predetermined temperature, the upper pin 4 or the lower pin 6 is removed from the mold 2 and the contents An article is taken out to obtain a molded body.
  • the pressurization may be performed by lowering the upper pin 4 with the lower pin 6 fixed, but both the lowering of the upper pin 4 and the raising of the lower pin 6 may be performed.
  • the heating is preferably performed at 80 to 300 ° C, more preferably 100 to 200 ° C, and further preferably 130 to 200 ° C.
  • the pressurization is preferably performed at 5 kN or more, more preferably 10 kN or more, and further preferably 20 kN or more.
  • the time for continuing the treatment under the condition is preferably 0 to 100 minutes, more preferably 1 to 50 minutes, and further preferably 5 to 30 minutes.
  • the protein composition according to the first embodiment contains propyl 3,4,5-trihydroxybenzoate or 6,6′-di-tert-butyl-4,4′-butylidene di-m-cresol as a stabilizer
  • the dried product of the protein composition (for example, a molded product) is superior in bending strength.
  • the protein composition according to the second embodiment is a protein composition containing a dried product of a solution in which protein and stabilizer are dissolved, and the stabilizer is N, N′-hexane.
  • protein composition 2 is a protein composition containing a dried product of a solution in which protein and stabilizer are dissolved, and the stabilizer is N, N′-hexane.
  • -1,6-diylbis [3- (3,5-di-tert-butyl-4-hydroxyphenylpropionamide), 1,6-hexanediol bis [3- (3,5-di-tert-butyl-4 -Hydroxyphenyl) propionate], 6,6′-di-tert-butyl-4,4′-butylidenedi-m-cresol, 2,6-di-tert-butyl-p-cresol, 3,9-bis (2 , 6-Di-tert-butyl-4-methylphenoxy) -2,4,8,10-te
  • a preferred stabilizer for the second embodiment is: A combination of propyl 3,4,5-trihydroxybenzoate and 2,2′-methylenebis (4,6-di-tert-butylphenyl) 2-ethylhexyl phosphite, 6,6′-di-tert-butyl-4,4′-butylidenedi-m-cresol and thiobis [2- (1,1-dimethylethyl) -5-methyl-4,1-phenylene] -bis [3- (Dodecylthio) propionate], N, N′-hexane-1,6-diylbis (3- (3,5-di-tert-butyl-4-hydroxyphenylpropionamide)) and 2,2′-methylenebis (4,6-di-tert- Butylphenyl) 2-ethylhexyl phosphite combination, Poly [[6-[(1,1,3,3-tetramethylbutyl) amino] -1,
  • the content of the stabilizer with respect to 100 parts by mass of the protein is preferably more than 0 parts by mass and 10 parts by mass or less, more preferably 0.001 parts by mass to 10 parts by mass, and 0.01 parts by mass or more 5 parts by mass or less is more preferable, 0.1 parts by mass or more and 2 parts by mass or less is more preferable, 0.1 parts by mass or more and 1 part by mass or less are more preferable, and 0.1 parts by mass or more and 0.5 parts by mass or less are further included. Is preferred. This is because even if the content is increased beyond 10 parts by mass, the improvement in thermal stability commensurate with it is reduced.
  • the protein composition 2 includes, for example, a step of mixing a protein, a solution of the protein and a solution of the stabilizer for the second embodiment to obtain a mixed solution, and removing a volatile component from the mixed solution to obtain a dried product.
  • the protein composition 2 may be a composition obtained by dissolving a dried product in a solvent or the like.
  • the protein composition 2 may consist only of the above-mentioned dried product, or may contain other components. That is, the protein composition 2 may contain other components other than the protein and the stabilizer. Moreover, when obtaining the protein composition 2, you may dissolve another component in a solvent.
  • the protein dissolving solvent may be any solvent that can dissolve proteins, and examples thereof include calcium chloride / ethanol / water mixed solvents, DMSO, HFIP, formic acid, and the like.
  • the addition amount of the dissolution solvent is an amount capable of dissolving the protein, and for example, it is preferably adjusted so that the amount of protein is 10 to 24% by mass.
  • Solvents for producing the stabilizer solution for the second embodiment include primary alcohols such as ethanol and methanol, secondary alcohols such as 2-propanol, tertiary alcohols such as tert-butyl alcohol, A single solvent such as acetone, methyl ethyl ketone, or dichloromethane, or a mixed solvent of at least two of these solvents may be used.
  • the concentration of the stabilizer for the second embodiment is limited to the solubility of the stabilizer in the protein dissolution solvent.
  • the protein is preferably in a powder form. Moreover, it is preferable to manufacture a mixed solution according to the suitable ratio mentioned above of protein and the stabilizer for 2nd Embodiment.
  • the mixed solution may be prepared, for example, by mixing protein, a protein dissolution solvent, and the stabilizer for the second embodiment, and stirring at 65 ° C. ⁇ 5 ° C. for 3 to 6 hours. In the mixed solution (dope solution) thus obtained, both the protein and the stabilizer for the second embodiment are dissolved.
  • the dried product of protein composition 2 is typically non-powdered (film, fiber, string, plate, etc.).
  • the dried product of the protein composition 2 may be a molded body (film, plate, fiber, string, etc.).
  • the mixed solution (dope solution) obtained above is cast on a polystyrene substrate and dried under reduced pressure (for example, 60 ° C., 0.54 atm for 7 days) to be molded.
  • the mixture is impregnated with a mixed solution of acetone and methanol (ratio 7: 3) for 30 minutes, further impregnated with a methanol solution for 30 minutes, and then naturally dried (for example, 25 ° C., 1 atm) to obtain a dried product composition 2 ( Film-like or plate-like) can be obtained.
  • the dried product (fibrous or string-like) of the protein composition 2 can be obtained by spinning the mixed solution (dope solution) obtained above.
  • the protein and the stabilizer can coexist, thereby improving the thermal stability of the protein. That is, the protein is dispersed in a solution in which the stabilizer for the first embodiment is dissolved to obtain a dispersion, and volatile components are removed from the dispersion to obtain a dried product in which the protein and the compound coexist.
  • the method for improving the property (Method 1 above) the protein, the solvent for dissolving the protein, and the solution of the stabilizer for the second embodiment are mixed to obtain a mixed solution, and volatile components are removed from the mixed solution.
  • a method for improving thermal stability (Method 2 above), which obtains a dried product in which a protein and a compound coexist.
  • the method for evaluating the thermal stability of the protein compositions 1 and 2 can be performed by a commonly used method. For example, chemiluminescence, simultaneous differential thermal-thermogravimetric measurement (TG-DTA), differential scanning calorimetry (DSC), high-pressure differential scanning calorimetry (HP-DSC), runaway reaction test (ARC), tensile test, bending Various methods such as a mechanical strength test such as a test (for example, a bending strength test), a compression test, and an impact test are included.
  • TG-DTA simultaneous differential thermal-thermogravimetric measurement
  • DSC differential scanning calorimetry
  • HP-DSC high-pressure differential scanning calorimetry
  • ARC runaway reaction test
  • tensile test tensile test
  • bending Various methods such as a mechanical strength test such as a test (for example, a bending strength test), a compression test, and an impact test are included.
  • the chemiluminescence method is an analytical method for evaluating degradation by detecting weak chemiluminescence (chemiluminescence) caused by thermal oxidation degradation.
  • Chemiluminescence is light that is generated when a molecule returns from the excited state to the ground state during the chemical reaction of the substance.
  • Chemiluminescence in the degradation of the polymer is when the excited carbonyl generated by auto-oxidation degradation falls to the ground state. It is said to occur.
  • an olefin polymer compound such as polypropylene into which a stabilizer is introduced, there is almost no light emission from the material while the stabilizer is in effect, but it is automatic when the stabilizer is consumed. Chemoluminescence is observed by the rapid progress of oxidative degradation.
  • the time until the stabilizer loses its efficacy and the substance emits light is called an oxidation induction period (OIT), and this time is an index indicating the stability of the substance.
  • OIT oxidation induction period
  • some non-olefin polymer compounds such as polyamide 6 do not have OIT, and the emission intensity gradually rises with heating, and shows a behavior that decreases after reaching the maximum value.
  • a decrease in emission intensity and a time delay to the maximum value (Extension of Time at I max [%]) are observed, and this is regarded as an index of stability. Is possible.
  • the type of protein is not particularly limited. It may be produced with a microorganism or the like by a gene recombination technique, may be produced by synthesis, or may be a product obtained by purifying a naturally derived protein.
  • the protein may be, for example, a structural protein.
  • the structural protein means a protein that forms or maintains a structure, a form, or the like in a living body. Examples of such structural proteins include fibroin, collagen, elastin, and resilin. These proteins are used as structural proteins each alone or in appropriate combination.
  • the fibroin may be one or more selected from the group consisting of silk fibroin, spider silk fibroin, and hornet silk fibroin, for example.
  • the structural protein may be silk fibroin, spider silk fibroin or a combination thereof.
  • the ratio of silk fibroin may be, for example, 40 parts by mass or less, 30 parts by mass or less, or 10 parts by mass or less with respect to 100 parts by mass of spider silk fibroin.
  • the silk thread is a fiber (a silk thread) obtained from a silkworm made by a silkworm, Bombyx mori larva.
  • one silk thread is composed of two silk fibroins and glue quality (sericin) covering them from the outside.
  • Silk fibroin is composed of many fibrils.
  • Silk fibroin is covered with four layers of sericin.
  • silk filaments obtained by dissolving and removing outer sericin by refining are used for clothing.
  • a general silk thread has a specific gravity of 1.33, an average fineness of 3.3 decitex, and a fiber length of about 1300 to 1500 m.
  • Silk fibroin can be obtained from natural or domestic silkworms, or used or discarded silk fabrics.
  • the silk fibroin may be sericin-removed silk fibroin, sericin-unremoved silk fibroin, or a combination thereof.
  • Sericin-removed silk fibroin is purified by removing sericin covering silk fibroin and other fats.
  • the silk fibroin thus purified is preferably used as a lyophilized powder.
  • the sericin unremoved silk fibroin is an unpurified silk fibroin from which sericin and the like have not been removed.
  • the spider silk fibroin may contain a spider silk polypeptide selected from the group consisting of a natural spider silk protein and a polypeptide derived from the natural spider silk protein.
  • spider silk proteins examples include large sphincter bookmark protein, weft protein, and small bottle-like gland protein. Since the large spout bookmarker has a repeating region composed of a crystalline region and an amorphous region (also referred to as an amorphous region), it has both high stress and stretchability.
  • the weft of spider silk has a feature that it does not have a crystalline region but has a repeating region consisting of an amorphous region. The weft thread is less stressed than the large spout bookmarker thread, but has high stretchability.
  • Large splint bookmark protein is produced with spider large bottle-like wire and has excellent toughness.
  • Examples of the large sphincter bookmark thread protein include large bottle-shaped gland spiders MaSp1 and MaSp2 derived from Nephila clavipes, and ADF3 and ADF4 derived from tiger spider (Araneus diadematus).
  • ADF3 is one of the two main dragline proteins of the elder spider.
  • Polypeptides derived from natural spider silk proteins may be polypeptides derived from these bookmark silk proteins.
  • a polypeptide derived from ADF3 is relatively easy to synthesize and has excellent properties in terms of strength and toughness.
  • weft protein is produced in the flagellate gland of spiders.
  • flagellum silk protein derived from the American spider (Nephila clavipes) can be mentioned.
  • the polypeptide derived from a natural spider silk protein may be a recombinant spider silk protein.
  • recombinant spider silk proteins include mutants, analogs or derivatives of natural spider silk proteins.
  • a preferred example of such a polypeptide is a recombinant spider silk protein (also referred to as “polypeptide derived from a large sputum bookmarker protein”).
  • Examples of a protein derived from a large sphincter bookmark thread or a silkworm silk, which are fibroin-like proteins include, for example, a protein containing a domain sequence represented by Formula 1: [(A) n motif-REP1] m (here In Formula 1, (A) n motif represents an amino acid sequence composed of 4 to 20 amino acid residues, and (A) the number of alanine residues relative to the total number of amino acid residues in n motif is 80% or more.
  • REP1 represents an amino acid sequence composed of 10 to 200 amino acid residues, m represents an integer of 8 to 300.
  • a plurality of (A) n motifs may be the same amino acid sequence, or different amino acid sequences
  • a plurality of REP1 may have the same amino acid sequence or different amino acid sequences.) .
  • a protein containing the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 1 can be mentioned.
  • Examples of the protein derived from the weft protein include a protein containing a domain sequence represented by Formula 2: [REP2] o (where REP2 is composed of Gly-Pro-Gly-Gly-X in Formula 2)
  • X represents an amino acid sequence
  • X represents one amino acid selected from the group consisting of alanine (Ala), serine (Ser), tyrosine (Tyr), and valine (Val)
  • o represents an integer of 8 to 300.
  • I can give you.
  • Specific examples include a protein containing the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 2.
  • amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 2 is from the N-terminal corresponding to the repeat part and the motif of the partial sequence (NCBI accession number: AAF36090, GI: 7106224) of a partial sequence of the American flagella silk protein obtained from the NCBI database.
  • PR1 sequence An amino acid sequence from the 1220th residue to the 1659th residue (referred to as PR1 sequence) and a partial sequence of American flagella silk protein obtained from the NCBI database (NCBI accession number: AAC38847, GI: 2833649)
  • a C-terminal amino acid sequence from the 816th residue to the 907th residue from the C-terminal is linked, and the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 6 (tag sequence and hinge sequence) is added to the N-terminus of the combined sequence. is there.
  • a protein derived from collagen for example, a protein comprising a domain sequence represented by Formula 3: [REP3] p (wherein, in Formula 3, p represents an integer of 5 to 300.
  • REP3 represents Gly-XY
  • X and Y represent any amino acid residue other than Gly, and a plurality of REP3 may be the same amino acid sequence or different amino acid sequences.
  • a protein containing the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 3 can be exemplified.
  • the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 3 corresponds to the repeat part and motif of the partial sequence of human collagen type 4 (NCBI Genbank accession number: CAA56335.1, GI: 3702452) obtained from the NCBI database.
  • An amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 6 (tag sequence and hinge sequence) is added to the N-terminus of the amino acid sequence from the 301st residue to the 540th residue.
  • a protein derived from resilin for example, a protein containing a domain sequence represented by Formula 4: [REP4] q (wherein q represents an integer of 4 to 300.
  • REP4 is Ser-JJ-).
  • Plural REP4s may have the same or different amino acid sequences. ). Specific examples include a protein containing the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 4.
  • amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 4 is the amino acid sequence of resilin (NCBI Genbank accession number NP611157, Gl: 24654243), wherein Thr at 87th residue is replaced with Ser, and Asn at 95th residue is
  • amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 6 (tag sequence and hinge sequence) is added to the N-terminus of the amino acid sequence from the 19th residue to the 321st residue of the sequence substituted with Asp.
  • proteins derived from elastin include proteins having amino acid sequences such as NCBI Genbank accession numbers AAC98395 (human), I47076 (sheep), and NP786966 (bovine). Specific examples include a protein containing the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 5.
  • the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 5 is the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 6 at the N-terminus of the amino acid sequence from residue 121 to residue 390 of the amino acid sequence of NCBI Genbank accession number AAC98395 (tag sequence). And a hinge arrangement).
  • a protein contained as a main component in a protein raw material fiber is, for example, a host transformed with an expression vector having a nucleic acid sequence encoding the protein and one or more regulatory sequences operably linked to the nucleic acid sequence. Can be produced by expressing the nucleic acid.
  • the method for producing a gene encoding a protein contained as a main component in a protein raw material fiber is not particularly limited.
  • a gene encoding a natural structural protein can be used to produce the gene by a method of amplification and cloning by polymerase chain reaction (PCR) or the like, or chemical synthesis.
  • the method of chemical synthesis of the gene is not particularly limited.
  • AKTA oligopilot plus 10/100 GE Healthcare Japan Co., Ltd.
  • a gene can be chemically synthesized by a method of linking oligonucleotides automatically synthesized in step 1 by PCR or the like.
  • a gene encoding a protein consisting of an amino acid sequence in which an amino acid sequence consisting of a start codon and a His10 tag is added to the N-terminus of the above amino acid sequence may be synthesized. Good.
  • Regulatory sequences are sequences that control the expression of recombinant proteins in the host (for example, promoters, enhancers, ribosome binding sequences, transcription termination sequences, etc.), and can be appropriately selected depending on the type of host.
  • an inducible promoter that functions in a host cell and can induce expression of a target protein may be used.
  • An inducible promoter is a promoter that can control transcription by the presence of an inducer (expression inducer), absence of a repressor molecule, or physical factors such as an increase or decrease in temperature, osmotic pressure or pH value.
  • the type of expression vector can be appropriately selected according to the type of host, such as a plasmid vector, virus vector, cosmid vector, fosmid vector, artificial chromosome vector, and the like.
  • An expression vector that can replicate autonomously in a host cell or can be integrated into a host chromosome and contains a promoter at a position where a nucleic acid encoding a target protein can be transcribed is preferably used. .
  • any of prokaryotes and eukaryotes such as yeast, filamentous fungi, insect cells, animal cells and plant cells can be preferably used.
  • prokaryotes include bacteria belonging to the genus Escherichia, Brevibacillus, Serratia, Bacillus, Microbacterium, Brevibacterium, Corynebacterium, Pseudomonas and the like.
  • microorganisms belonging to the genus Escherichia include Escherichia coli.
  • microorganisms belonging to the genus Brevibacillus include Brevibacillus agri and the like.
  • microorganisms belonging to the genus Serratia include Serratia liqufaciens and the like.
  • microorganisms belonging to the genus Bacillus include Bacillus subtilis.
  • microorganisms belonging to the genus Microbacterium include microbacterium / ammonia film.
  • microorganisms belonging to the genus Brevibacterium include Brevibacterium divaricatam.
  • microorganisms belonging to the genus Corynebacterium include Corynebacterium ammoniagenes.
  • microorganisms belonging to the genus Pseudomonas include Pseudomonas putida.
  • vectors for introducing a nucleic acid encoding a protein contained as a main component in a protein raw material fiber include pBTrp2 (manufactured by Boehringer Mannheim), pGEX (manufactured by Pharmacia), pUC18, pBluescriptII, pSupex, pET22b, pCold, pUB110, pNCO2 (Japanese Patent Laid-Open No. 2002-238696) and the like can be mentioned.
  • Examples of eukaryotic hosts include yeast and filamentous fungi (molds, etc.).
  • yeast include yeasts belonging to the genus Saccharomyces, Pichia, Schizosaccharomyces and the like.
  • Examples of the filamentous fungi include filamentous fungi belonging to the genus Aspergillus, the genus Penicillium, the genus Trichoderma and the like.
  • vectors examples include YEP13 (ATCC 37115) and YEp24 (ATCC 37051).
  • any method can be used as long as it is a method for introducing DNA into the host cell.
  • a method using calcium ions [Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 69, 2110 (1972)]
  • electroporation method spheroplast method, protoplast method, lithium acetate method, competent method, and the like.
  • a method for expressing a nucleic acid by a host transformed with an expression vector in addition to direct expression, secretory production, fusion protein expression, etc. can be performed according to the method described in Molecular Cloning 2nd edition, etc. .
  • the protein can be produced, for example, by culturing a host transformed with an expression vector in a culture medium, producing and accumulating the protein in the culture medium, and collecting the protein from the culture medium.
  • the method for culturing a host in a culture medium can be performed according to a method usually used for culturing a host.
  • the culture medium contains a carbon source, nitrogen source, inorganic salts, etc. that can be assimilated by the host, and can efficiently culture the host. If so, either a natural medium or a synthetic medium may be used.
  • Any carbon source may be used as long as it can be assimilated by the above-mentioned transformed microorganism.
  • Examples thereof include glucose, fructose, sucrose, and carbohydrates such as molasses, starch and starch hydrolyzate, acetic acid and propionic acid, etc.
  • Organic acids and alcohols such as ethanol and propanol can be used.
  • the nitrogen source examples include ammonium salts of inorganic acids or organic acids such as ammonia, ammonium chloride, ammonium sulfate, ammonium acetate, and ammonium phosphate, other nitrogen-containing compounds, and peptone, meat extract, yeast extract, corn steep liquor, Casein hydrolyzate, soybean meal and soybean meal hydrolyzate, various fermented cells and digested products thereof can be used.
  • the inorganic salt for example, monopotassium phosphate, dipotassium phosphate, magnesium phosphate, magnesium sulfate, sodium chloride, ferrous sulfate, manganese sulfate, copper sulfate, and calcium carbonate can be used.
  • Cultivation of prokaryotes such as E. coli or eukaryotes such as yeast can be performed under aerobic conditions such as shaking culture or deep aeration and agitation culture.
  • the culture temperature is, for example, 15 to 40 ° C.
  • the culture time is usually 16 hours to 7 days.
  • the pH of the culture medium during the culture is preferably maintained at 3.0 to 9.0.
  • the pH of the culture medium can be adjusted using an inorganic acid, an organic acid, an alkaline solution, urea, calcium carbonate, ammonia, or the like.
  • antibiotics such as ampicillin and tetracycline may be added to the culture medium as needed during the culture.
  • an inducer may be added to the medium as necessary.
  • isopropyl- ⁇ -D-thiogalactopyranoside is used when cultivating a microorganism transformed with an expression vector using the lac promoter
  • indole acrylic is used when culturing a microorganism transformed with an expression vector using the trp promoter.
  • An acid or the like may be added to the medium.
  • Protein isolation and purification can be carried out by a commonly used method. For example, when the protein is expressed in a dissolved state in the cell, the host cell is recovered by centrifugation after culturing, suspended in an aqueous buffer, and then subjected to an ultrasonic crusher, a French press, a Manton Gaurin. The host cells are disrupted with a homogenizer, dynomill, or the like to obtain a cell-free extract. From the supernatant obtained by centrifuging the cell-free extract, a method usually used for protein isolation and purification, that is, a solvent extraction method, a salting-out method using ammonium sulfate, a desalting method, an organic solvent, etc.
  • a method usually used for protein isolation and purification that is, a solvent extraction method, a salting-out method using ammonium sulfate, a desalting method, an organic solvent, etc.
  • Precipitation method anion exchange chromatography method using resin such as diethylaminoethyl (DEAE) -Sepharose, DIAION HPA-75 (manufactured by Mitsubishi Kasei), positive using resin such as S-Sepharose FF (manufactured by Pharmacia)
  • Electrophoresis methods such as ion exchange chromatography, hydrophobic chromatography using resins such as butyl sepharose and phenyl sepharose, gel filtration using molecular sieve, affinity chromatography, chromatofocusing, isoelectric focusing Using methods such as these alone or in combination, purification It is possible to obtain the goods.
  • the host cell is similarly recovered, crushed, and centrifuged to recover the insoluble substance of the modified fibroin as a precipitate fraction.
  • the recovered insoluble form of modified fibroin can be solubilized with a protein denaturant.
  • a purified preparation of modified fibroin can be obtained by the same isolation and purification method as described above.
  • the protein can be recovered from the culture supernatant. That is, a culture supernatant is obtained by treating the culture with a technique such as centrifugation, and a purified preparation can be obtained from the culture supernatant by using the same isolation and purification method as described above.
  • the protein raw material fiber which contains the above proteins as a main component is manufactured by a well-known method. That is, for example, when producing a protein raw fiber containing spider silk fibroin, first, spider silk fibroin produced using a host transformed with the expression vector is converted to dimethyl sulfoxide (DMSO), N, N -A dope solution is prepared by dissolving in a solvent such as dimethylformamide (DMF), formic acid or hexafluoroisopronol (HFIP) alone, or the spider silk fibroin is added to these solvents together with an inorganic salt as a dissolution accelerator. To prepare a dope solution.
  • DMSO dimethyl sulfoxide
  • N -A dope solution is prepared by dissolving in a solvent such as dimethylformamide (DMF), formic acid or hexafluoroisopronol (HFIP) alone, or the spider silk fibroin is added to these solvents together with an inorganic salt as a dissolution accelerator.
  • a protein raw material can be obtained by spinning by a known spinning technique such as wet spinning, dry spinning, and dry wet spinning.
  • the stabilizer may be added to the dope solution and dissolved, or the spider silk fibroin may be mixed with the solution in which the stabilizer is dissolved to form a dope solution.
  • a solvent capable of dissolving the stabilizer is used as the solvent of the dope solution used here.
  • a mixed solution of a solution in which a stabilizer is dissolved and a solution in which the spider silk fibroin is dissolved may be used as a dope solution.
  • spider silk protein (spider silk fibroin) (synthesis of spider silk protein-encoding gene and construction of expression vector)
  • a modified fibroin having the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 1 (hereinafter referred to as “PRT410”) based on the base sequence and amino acid sequence of fibroin (GenBank accession numbers: P46804.1, GI: 1174415) derived from Nephila clavipes. Was also designed.)
  • the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 1 has an amino acid sequence obtained by performing substitution, insertion and deletion of amino acid residues for the purpose of improving productivity with respect to the amino acid sequence of fibroin derived from Nephila clavipes.
  • An amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 6 (tag sequence and hinge sequence) is added to the N-terminus.
  • nucleic acid encoding PRT410 was synthesized.
  • the nucleic acid was added with an NdeI site at the 5 'end and an EcoRI site downstream of the stop codon.
  • the nucleic acid was cloned into a cloning vector (pUC118). Thereafter, the nucleic acid was cleaved by restriction enzyme treatment with NdeI and EcoRI, and then recombined with the protein expression vector pET-22b (+) to obtain an expression vector.
  • Escherichia coli BLR (DE3) was transformed with a pET22b (+) expression vector containing a nucleic acid encoding a protein having the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 1.
  • the transformed Escherichia coli was cultured in 2 mL of LB medium containing ampicillin for 15 hours.
  • the culture solution was added to 100 mL of a seed culture medium (Table 1) containing ampicillin so that the OD 600 was 0.005.
  • the culture temperature was kept at 30 ° C., and flask culture was performed until the OD 600 reached 5 (about 15 hours) to obtain a seed culture solution.
  • the seed culture solution was added to a jar fermenter to which 500 mL of production medium (Table 2 below) was added so that the OD 600 was 0.05.
  • the culture solution temperature was maintained at 37 ° C., and the culture was performed at a constant pH of 6.9. Further, the dissolved oxygen concentration in the culture solution was maintained at 20% of the dissolved oxygen saturation concentration.
  • a feed solution (glucose 455 g / 1 L, Yeast Extract 120 g / 1 L) was added at a rate of 1 mL / min.
  • the culture solution temperature was maintained at 37 ° C., and the culture was performed at a constant pH of 6.9.
  • the dissolved oxygen concentration in the culture solution was maintained at 20% of the dissolved oxygen saturation concentration, and cultured for 20 hours.
  • 1M isopropyl- ⁇ -thiogalactopyranoside (IPTG) was added to the culture solution to a final concentration of 1 mM to induce expression of the target protein.
  • the culture solution was centrifuged, and the cells were collected. SDS-PAGE was performed using cells prepared from the culture solution before and after the addition of IPTG, and the expression of the target protein was confirmed by the appearance of a band of the desired protein size depending on the addition of IPTG.
  • the washed precipitate was suspended in 8M guanidine buffer (8M guanidine hydrochloride, 10 mM sodium dihydrogen phosphate, 20 mM NaCl, 1 mM Tris-HCl, pH 7.0) to a concentration of 100 mg / mL, and 60 ° C. And stirred for 30 minutes with a stirrer to dissolve. After dissolution, dialysis was performed with water using a dialysis tube (cellulose tube 36/32 manufactured by Sanko Junyaku Co., Ltd.). The white aggregated protein obtained after dialysis was recovered by centrifugation, the water was removed with a freeze dryer, and the lyophilized powder was recovered.
  • 8M guanidine buffer 8M guanidine hydrochloride, 10 mM sodium dihydrogen phosphate, 20 mM NaCl, 1 mM Tris-HCl, pH 7.0
  • the degree of purification of the target protein in the obtained lyophilized powder was confirmed by image analysis of the results of polyacrylamide gel electrophoresis of the powder using Totallab (nonlinear dynamics Ltd.). As a result, the purity of all the proteins was about 85%.
  • the stabilizer-containing powder (powdered protein composition) was placed in a chamber containing the sample, and this chamber was set in the apparatus. Thereafter, dry air was circulated at a flow rate of 100 mL / min and maintained at 200 ° C., and a change with time in chemiluminescence intensity was detected with a chemiluminescence analyzer (CLA-ID2-HS manufactured by Tohoku Electronics Industrial Co., Ltd.). The time until the chemiluminescence intensity of the protein powder to which the stabilizer is not added reaches the maximum value is T 0 , and the time until the chemiluminescence intensity of the powder containing the stabilizer (powdered protein composition) reaches the maximum value.
  • CLA-ID2-HS chemiluminescence analyzer
  • Extension of Time at I max was calculated from the following equation. (T 1 -T 0 ) / T 0 ⁇ 100 [%] “Extension of Time at I max [%]” means a delay time until the chemiluminescence intensity reaches the maximum value, and a larger value indicates higher thermal stability.
  • the results for the stabilizers in Table 3 are shown in Table 4 below.
  • propyl 3,4,5-trihydroxybenzoate and 2,2 ′ are more stable than the stabilizer-containing artificial spider silk film produced by using propyl 3,4,5-trihydroxybenzoate alone.
  • the stabilizer-containing powder is pulverized with a mill (IFMATA, IFM-80) to adjust the particle size, and then the stabilizer-containing powder (hereinafter referred to as “protein composition”) after the particle size adjustment is 1 .35 g and this protein composition is a mold 2 of the pressure molding machine 10 shown in FIG. 1 (a cylindrical mold having a rectangular through-hole with a cross section of 35 mm ⁇ 15 mm). Was introduced into the through hole. At this time, the protein composition was added so that the thickness was uniform. After all the protein composition is introduced, heating of the mold 2 is started, and the upper pin 4 and the lower pin 6 are penetrated using a hand press machine (NT-100H-V09, manufactured by NPa System Co., Ltd.).
  • a hand press machine NT-100H-V09, manufactured by NPa System Co., Ltd.
  • the protein composition was pressurized by inserting it into the hole. At this time, the pressure condition of the protein composition was controlled to be 40 kN. When the temperature of the protein composition reaches 200 ° C., the heating is stopped and the mixture is allowed to cool naturally. When the temperature of the protein composition reaches 50 ° C., it is taken out and deburred, and then 35 mm ⁇ 15 mm ⁇ 2 mm A cuboid-shaped stabilizer-containing molded product was obtained (stabilizer content ratio relative to the total amount of the dried product: 0.2% by mass).
  • a bending test was performed to evaluate the strength of the molded body. That is, the molded product obtained was allowed to stand in a constant temperature and humidity chamber (Espec, LHL-113) at 20 ° C./65% RH for 1 day, and then autograph (Shimadzu Corporation, AG A three-point bending test was performed using a scissors jig at ⁇ Xplus). The load cell used was 50 kN. At this time, the distance between fulcrums of the three-point bending was fixed to 27 mm, and the measurement speed was 1 mm / min. Further, the size of the molded body was measured with a micro caliper, and placed on a jig for testing. The results are shown in Table 15 below.
  • protein composition 1 (molded article) 4-1.
  • 1.35 g of a stabilizer-containing powder (hereinafter referred to as “protein composition”) prepared in the same manner as described above was weighed and introduced into the through-hole of the mold 2 (FIG. 1) (stabilizer for the total amount of the dried product). Content rate: 0.2 mass%).
  • the heating of the protein composition was held for 5 minutes when the temperature of the protein composition reached 130 ° C., and then the heating was stopped.
  • a stabilizer-containing molded product was obtained by the same procedure as (Stabilizer content rate relative to the total amount of the dried product: 0.2% by mass).
  • the stabilizer-containing mold molded body prepared by adding propyl 3,4,5-trihydroxybenzoate is more than the mold molded body prepared without adding a stabilizer. , Showed higher thermal stability.
  • protein composition a stabilizer-containing powder (powdered protein composition) (Hereinafter referred to as “protein composition”). 1.35 g of the protein composition was weighed and introduced into the through hole of the mold 2 (FIG. 1). The heating of the protein composition was held for 5 minutes when the temperature of the protein composition reached 190 ° C., and then the heating was stopped. Others are described in 4-1. In the same manner as described above, a 35 mm ⁇ 15 mm ⁇ 2 mm rectangular shaped stabilizer-containing molded product was obtained (stabilizer content ratio relative to the total amount of the dried product: 0.3% by mass).
  • 2-Propanol was introduced into another vial and propyl 3,4,5-trihydroxybenzoate was added and dissolved as a stabilizer to prepare a stabilizer solution.
  • the prepared stabilizer solution was added to the protein solution. While stirring the mixed solution using a mechanical stirrer, the mixture solution was heated to 90 ° C. and dissolved to prepare a stabilizer-containing dope solution.
  • the stabilizer content of the stabilizer-containing dope solution was 0.2% by mass, 0.5% by mass, 1.0% by mass, and 4.0% by mass, respectively.
  • a dope solution containing no stabilizer was prepared.
  • 3.5 g of the dried powder of artificial spider silk protein powder (PRT410) obtained in the above purification step was weighed and introduced into a vial.
  • the above LiCl / DMSO solvent was added so as to have a concentration of 24% by mass, and a dope solution was prepared in the same manner as above (without addition of a stabilizer).
  • thermal stability was performed as follows. The stabilizer-containing protein fiber was placed in a chamber that accommodated the sample, and this chamber was set in the apparatus. Thereafter, dry air was circulated at a flow rate of 100 mL / min and maintained at 190 ° C., and a change in chemiluminescence intensity with time was detected with a chemiluminescence analyzer (CLA-ID2-HS manufactured by Tohoku Electronics Industrial Co., Ltd.).
  • the stabilizer-containing protein fiber produced using the stabilizer-containing dope solution having a stabilizer content of 0.5% by mass showed the highest thermal stability.

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Abstract

本発明は、タンパク質が安定化剤溶液中に分散した分散体の乾燥物からなるタンパク質組成物であって、前記安定化剤は、カテコール系安定化剤、６－ヒドロキシ－２，５，７，８－テトラメチルクロマン－２－カルボン酸、２，６－ジ－ｔｅｒｔ－ブチル－ｐ－クレゾール、２－ｔｅｒｔ－ブチル－４－メトキシフェノール、及び６，６'－ジ－ｔｅｒｔ－ブチル－４，４'－ブチリデンジ－ｍ－クレゾールからなる群より選ばれる少なくとも一種を含む、タンパク質組成物を提供する。

Description

タンパク質組成物、その製造方法及び熱安定性向上方法
　本発明は、タンパク質組成物、その製造方法及び熱安定性向上方法に関する。
　クモ糸に代表される構造タンパク質の素材の優位性を活用し、新規素材の設計や製造、工業用材料化プロセスの検討がされている。産業化を見据えた材料開発においては、耐劣化性（耐久性）、安定性が重要となるが、特にタンパク質の熱劣化に関しては、劣化機構の曖昧性等を原因として安定化剤の選定が困難であった。また、安定化剤に関しては、疎水性樹脂に関する知見は多く存在するものの、疎水性樹脂とは性質が全く異なるタンパク質に対して、有効な安定化剤の分子構造やその添加プロセスについては今なお不明な状態である。なお、天然クモ糸の耐熱性については、例えば非特許文献１に記載されている。
蛋白質核酸酵素　Ｖｏｌ．４１，　Ｎｏ．１４　（１９９６）
　そこで、本発明の課題は、熱安定性の向上したタンパク質組成物、その製造方法及びタンパク質の熱安定性向上方法を提供することにある。
　本発明は、タンパク質が安定化剤溶液中に分散した分散体の乾燥物を含有するタンパク質組成物であって、上記安定化剤は、カテコール系安定化剤、６－ヒドロキシ－２，５，７，８－テトラメチルクロマン－２－カルボン酸、２，６－ジ－ｔｅｒｔ－ブチル－ｐ－クレゾール、２－ｔｅｒｔ－ブチル－４－メトキシフェノール、及び６，６’－ジ－ｔｅｒｔ－ブチル－４，４’－ブチリデンジ－ｍ－クレゾールからなる群より選ばれる少なくとも一種を含む、タンパク質組成物（タンパク質組成物１）を提供する。
　本発明はまた、タンパク質と安定化剤が溶解した溶液の乾燥物を含有するタンパク質組成物であって、上記安定化剤は、Ｎ，Ｎ’－ヘキサン－１，６－ジイルビス［３－（３，５－ジ－ｔｅｒｔ－ブチル－４－ヒドロキシフェニルプロピオンアミド）、１，６－ヘキサンジオールビス［３－（３，５－ジ－ｔｅｒｔ－ブチル－４－ヒドロキシフェニル）プロピオナート］、６，６’－ジ－ｔｅｒｔ－ブチル－４，４’－ブチリデンジ－ｍ－クレゾール、２，６－ジ－ｔｅｒｔ－ブチル－ｐ－クレゾール、３，９－ビス（２，６－ジ－ｔｅｒｔ－ブチル－４－メチルフェノキシ）－２，４，８，１０－テトラオキサ－３，９－ジホスファスピロ［５．５］ウンデカン、ポリ［［６－［（１，１，３，３－テトラメチルブチル）アミノ］－１，３，５－トリアジン－２，４－ジイル］［（２，２，６，６－テトラメチル－４－ピペリジニル）イミノ］－１，６－ヘキサンジイル［（２，２，６，６－テトラメチル－４－ピペリジニル）イミノ］］］、α－トコフェロール、プロピル　３，４，５－トリヒドロキシベンゾエート、及び４，４’，４’’－（１－メチルプロパニル－３－イリデン）トリス（６－ｔｅｒｔ－ブチル－ｍ－クレゾール）からなる群より選ばれる少なくとも一種を含む、タンパク質組成物（タンパク質組成物２）を提供する。
　タンパク質組成物１及び２は、それぞれ以下のような製造方法１及び２で得ることができる。
　製造方法１：安定化剤溶液中にタンパク質を分散させて分散体を得る工程と、この分散体から揮発分を除去して乾燥物を得る工程と、を備えるタンパク質組成物の製造方法であって、上記安定化剤は、カテコール系安定化剤、６－ヒドロキシ－２，５，７，８－テトラメチルクロマン－２－カルボン酸、２，６－ジ－ｔｅｒｔ－ブチル－ｐ－クレゾール、２－ｔｅｒｔ－ブチル－４－メトキシフェノール、及び６，６’－ジ－ｔｅｒｔ－ブチル－４，４’－ブチリデンジ－ｍ－クレゾールからなる群より選ばれる少なくとも一種を含む、製造方法。
　製造方法２：タンパク質、このタンパク質の溶解溶媒、及び安定化剤溶液を混合して混合溶液を得る工程と、この混合溶液から揮発分を除去して乾燥物を得る工程と、を備えるタンパク質組成物の製造方法であって、上記安定化剤は、Ｎ，Ｎ’－ヘキサン－１，６－ジイルビス［３－（３，５－ジ－ｔｅｒｔ－ブチル－４－ヒドロキシフェニルプロピオンアミド）、１，６－ヘキサンジオールビス［３－（３，５－ジ－ｔｅｒｔ－ブチル－４－ヒドロキシフェニル）プロピオナート］、６，６’－ジ－ｔｅｒｔ－ブチル－４，４’－ブチリデンジ－ｍ－クレゾール、２，６－ジ－ｔｅｒｔ－ブチル－ｐ－クレゾール、３，９－ビス（２，６－ジ－ｔｅｒｔ－ブチル－４－メチルフェノキシ）－２，４，８，１０－テトラオキサ－３，９－ジホスファスピロ［５．５］ウンデカン、ポリ［［６－［（１，１，３，３－テトラメチルブチル）アミノ］－１，３，５－トリアジン－２，４－ジイル］［（２，２，６，６－テトラメチル－４－ピペリジニル）イミノ］－１，６－ヘキサンジイル［（２，２，６，６－テトラメチル－４－ピペリジニル）イミノ］］］、α－トコフェロール、プロピル　３，４，５－トリヒドロキシベンゾエート、及び４，４’，４’’－（１－メチルプロパニル－３－イリデン）トリス（６－ｔｅｒｔ－ブチル－ｍ－クレゾール）からなる群より選ばれる少なくとも一種を含む、製造方法。
　タンパク質組成物１及び２はいずれも、高い熱安定性を示すため、産業材料として有効に活用できる。すなわち、本発明は以下の方法１及び２のようなタンパク質の熱安定性向上方法を提供するものである。
　方法１：タンパク質の熱安定性向上方法であって、カテコール系安定化剤、６－ヒドロキシ－２，５，７，８－テトラメチルクロマン－２－カルボン酸、２，６－ジ－ｔｅｒｔ－ブチル－ｐ－クレゾール、２－ｔｅｒｔ－ブチル－４－メトキシフェノール、及び６，６’－ジ－ｔｅｒｔ－ブチル－４，４’－ブチリデンジ－ｍ－クレゾールからなる群より選ばれる少なくとも一種の化合物が溶解した溶液に、上記タンパク質を分散させて分散体を得、この分散体から揮発分を除去して、上記タンパク質と上記化合物が共存した乾燥物を得る、熱安定性向上方法。
　方法２：タンパク質の熱安定性向上方法であって、上記タンパク質と、このタンパク質の溶解溶媒と、Ｎ，Ｎ’－ヘキサン－１，６－ジイルビス［３－（３，５－ジ－ｔｅｒｔ－ブチル－４－ヒドロキシフェニルプロピオンアミド）、１，６－ヘキサンジオールビス［３－（３，５－ジ－ｔｅｒｔ－ブチル－４－ヒドロキシフェニル）プロピオナート］、６，６’－ジ－ｔｅｒｔ－ブチル－４，４’－ブチリデンジ－ｍ－クレゾール、２，６－ジ－ｔｅｒｔ－ブチル－ｐ－クレゾール、３，９－ビス（２，６－ジ－ｔｅｒｔ－ブチル－４－メチルフェノキシ）－２，４，８，１０－テトラオキサ－３，９－ジホスファスピロ［５．５］ウンデカン、ポリ［［６－［（１，１，３，３－テトラメチルブチル）アミノ］－１，３，５－トリアジン－２，４－ジイル］［（２，２，６，６－テトラメチル－４－ピペリジニル）イミノ］－１，６－ヘキサンジイル［（２，２，６，６－テトラメチル－４－ピペリジニル）イミノ］］］、α－トコフェロール、プロピル　３，４，５－トリヒドロキシベンゾエート、及び４，４’，４’’－（１－メチルプロパニル－３－イリデン）トリス（６－ｔｅｒｔ－ブチル－ｍ－クレゾール）からなる群より選ばれる少なくとも一種の化合物の溶液と、を混合して混合溶液を得、この混合溶液から揮発分を除去して、上記タンパク質と上記化合物が共存した乾燥物を得る、熱安定性向上方法。
　本発明によれば、熱安定性の向上したタンパク質組成物、その製造方法及びタンパク質の熱安定性向上方法が提供される。
加圧成形機の模式断面図である。 （ａ）は組成物導入前、（ｂ）は組成物導入直後、（ｃ）は組成物を加熱及び加圧している状態の加圧成形機の模式断面図である。
　以下、本発明の好適な実施形態について説明する。ただし、本発明は下記実施形態に何ら限定されるものではない。
　第１実施形態に係るタンパク質組成物（タンパク質組成物１）は、タンパク質が安定化剤溶液中に分散した分散体の乾燥物を含有するタンパク質組成物であって、安定化剤は、カテコール系安定化剤、６－ヒドロキシ－２，５，７，８－テトラメチルクロマン－２－カルボン酸、２，６－ジ－ｔｅｒｔ－ブチル－ｐ－クレゾール、２－ｔｅｒｔ－ブチル－４－メトキシフェノール、及び６，６’－ジ－ｔｅｒｔ－ブチル－４，４’－ブチリデンジ－ｍ－クレゾールからなる群より選ばれる少なくとも一種を含む。
　上記カテコール系安定化剤は、２－（３，４－ジヒドロキシフェニル）－３，５，７－トリヒドロキシ－４Ｈ－クロメン－４－オン、（１Ｓ，３Ｒ，４Ｒ，５Ｒ）－３－｛［３－（３，４－ジヒドロキシフェニル）アクリロイル］オキシ｝－１，４，５－トリヒドロキシシクロヘキサン－１－カルボン酸、２－（３，４－ジヒドロキシフェニル）－５，７－ジヒドロキシ－３－｛［（２Ｓ，３Ｒ，４Ｓ，５Ｓ，６Ｒ）－３，４，５－トリヒドロキシ－６－（｛［（２Ｒ，３Ｒ，４Ｒ，５Ｒ，６Ｓ）－３，４，５－トリヒドロキシ－６－メチルオキサン－２－イル］オキシ｝メチル）オキサン－２－イル］オキシ｝－４Ｈ－クロメン－４－オン、プロピル　３，４，５－トリヒドロキシベンゾエート、及び４，４’－（２，３－ジメチルブタン－１，４－ジイル）ジベンゼン－１，２－ジオールからなる群より選ばれる少なくとも一種とすることができる。以下、これらの安定化剤と、６－ヒドロキシ－２，５，７，８－テトラメチルクロマン－２－カルボン酸、２，６－ジ－ｔｅｒｔ－ブチル－ｐ－クレゾール、２－ｔｅｒｔ－ブチル－４－メトキシフェノール、及び６，６’－ジ－ｔｅｒｔ－ブチル－４，４’－ブチリデンジ－ｍ－クレゾールを併せて「第１実施形態用安定化剤」という。
　タンパク質組成物１において、タンパク質１００質量部に対する第１実施形態用安定化剤の含有量は、０質量部超１０質量部以下が好ましく、０．００１質量部以上１０質量部以下がより好ましく、０．０１質量部以上５質量部以下がより好ましく、０．１質量部以上２質量部以下がより好ましく、０．１質量部以上１質量部以下がより好ましく、０．１質量部以上０．５質量部以下が更に好適である。これは、１０質量部を超えて含有量を増やしても、それに見合った熱安定性の向上が少なくなるからである。タンパク質組成物１は、例えば、第１実施形態用安定化剤の溶液中にタンパク質を分散させて分散体を得る工程と、この分散体から揮発分を除去して乾燥物を得る工程と、を備える製造方法により製造可能である（上記製造方法１）。タンパク質組成物１は、乾燥物を溶媒等に溶解した溶液又は乾燥物を溶媒等に分散した分散体であってもよい。
　なお、タンパク質組成物１は上述した乾燥物のみからなっていても、その他の成分を含有していてもよい。すなわち、タンパク質組成物１にはタンパク質と安定化剤以外のその他の成分が含まれていてもよい。また、そのタンパク質組成物１を得る際には、その他の成分を溶媒に溶解させてもよく、分散体又は乾燥物に添加してもよい。
　第１実施形態用安定化剤の溶液を製造するための溶媒としては、エタノール、メタノール等の第一級アルコール、２－プロパノール等の第二級アルコール、ｔｅｒｔ－ブチルアルコール等の第三級アルコール、アセトン、メチルエチルケトン、ジクロロメタン等の単独溶媒か、又はこれらの溶媒の内の少なくとも２つの混合溶媒等が挙げられる。この溶媒としては、ジクロロメタンが好ましく、体積比１／１のアセトン／メタノールの混合溶媒がより好ましく、メタノールが更に好ましい。これは、溶媒とタンパク質の相溶性が高い溶媒ほど、安定化剤をタンパク質分子内へ侵入させる効果が高く、熱安定性効果を向上させるためと考えられる。この溶液における第１実施形態用安定化剤の濃度は、例えば、０．１～１ｍｇ／ｍｌである。
　分散体を得るためには、タンパク質は粉末状であることが好ましい。また、タンパク質と第１実施形態用安定化剤の上述した好適比率に従って、タンパク質を第１実施形態用安定化剤の溶液に添加することが好ましい。このようにして得られる分散体では、第１実施形態用安定化剤が溶媒中に溶解しているが、タンパク質は溶媒中に分散している。添加後は、さらに攪拌した後に乾燥させてタンパク質組成物１を得ることができる。なお、攪拌時間は特に限定されるものではないが、例えば、室温で１６～６０時間又は１６～２４時間等が挙げられる。乾燥方法も特に限定されるものではないが、例えば、自然乾燥（例えば、２５℃、１気圧）又は減圧乾燥（例えば、４０℃で４時間）等が挙げられる。
　このようにして得られるタンパク質組成物は、典型的には粉末状又はフィルム状である。また、このタンパク質組成物の乾燥物は、成形体（モールド成形体等）であってもよい。成形体の一種であるモールド成形体の製造例は以下のとおりである。
　すなわち、モールド成形体は、鋳型（モールド）にタンパク質組成物１を導入し成形加工する等して得ることができ、成形加工の工程において、加熱及び加圧することが可能である。成形加工の対象のタンパク質組成物１は、粉末状（凍結乾燥粉末等）又は繊維状（紡糸して得られる繊維等）の形状を有することができる。また、モールド成形体は、上記形状のタンパク質組成物の融着体であり得る。
　モールド成形体を、加圧成形機（鋳型）を用いて作成する方法について図を用いて説明する。図１に示す加圧成形機１０は、貫通孔が形成され加温可能な金型２と、金型２の貫通孔内で上下動が可能な上側ピン４及び下側ピン６とを備えるものであり、金型２に、上側ピン４又は下側ピン６を挿入して生じる空隙に、タンパク質組成物を導入して、金型２を加温しつつ、上側ピン４及び下側ピン６で組成物を圧縮し、モールド成形体を製造することができる。
　図２（ａ）に示すように、金型２の貫通孔に下側ピン６のみを挿入した状態で貫通孔内にタンパク質組成物を導入し、図２（ｂ）に示すように、金型２の貫通孔に上側ピン４を挿入して下降させ、金型２の加熱を開始して、加熱加圧前のタンパク質組成物８ａを貫通孔内で加熱加圧する。あらかじめ定めた加圧力に至るまで上側ピン４を下降させ、図２（ｃ）に示す状態でタンパク質組成物が所定の温度に達するまで、加熱及び加圧を継続して、加熱加圧後のタンパク質組成物８ｂを得る。その後、冷却器（例えばスポットクーラー）を用いて金型２の温度を下降させ、タンパク質組成物８ｂが所定の温度になったところで、上側ピン４又は下側ピン６を金型２から抜き取り、内容物を取り出して、モールド成形体を得る。加圧に関しては、下側ピン６を固定した状態で上側ピン４を下降させて実施してもよいが、上側ピン４の下降と下側ピン６の上昇の両方を実施してもよい。
　加熱は、８０～３００℃で行うことが好ましく、１００～２００℃がより好ましく、１３０～２００℃が更に好ましい。加圧は、５ｋＮ以上で行うことが好ましく、１０ｋＮ以上がより好ましく、２０ｋＮ以上が更に好ましい。また、所定の加熱加圧条件に達した後、その条件での処理を続ける時間（保温条件）は、０～１００分が好ましく、１～５０分がより好ましく５～３０分が更に好ましい。
　第１実施形態に係るタンパク質組成物が安定化剤としてプロピル　３，４，５－トリヒドロキシベンゾエート又は６，６’－ジ－ｔｅｒｔ－ブチル－４，４’－ブチリデンジ－ｍ－クレゾールを含有する場合、そのタンパク質組成物の乾燥物（例えば、モールド成形体）は、曲げ強度により優れる。
　第２実施形態に係るタンパク質組成物（タンパク質組成物２）は、タンパク質と安定化剤が溶解した溶液の乾燥物を含有するタンパク質組成物であって、安定化剤は、Ｎ，Ｎ’－ヘキサン－１，６－ジイルビス［３－（３，５－ジ－ｔｅｒｔ－ブチル－４－ヒドロキシフェニルプロピオンアミド）、１，６－ヘキサンジオールビス［３－（３，５－ジ－ｔｅｒｔ－ブチル－４－ヒドロキシフェニル）プロピオナート］、６，６’－ジ－ｔｅｒｔ－ブチル－４，４’－ブチリデンジ－ｍ－クレゾール、２，６－ジ－ｔｅｒｔ－ブチル－ｐ－クレゾール、３，９－ビス（２，６－ジ－ｔｅｒｔ－ブチル－４－メチルフェノキシ）－２，４，８，１０－テトラオキサ－３，９－ジホスファスピロ［５．５］ウンデカン、ポリ［［６－［（１，１，３，３－テトラメチルブチル）アミノ］－１，３，５－トリアジン－２，４－ジイル］［（２，２，６，６－テトラメチル－４－ピペリジニル）イミノ］－１，６　ヘキサンジイル［（２，２，６，６－テトラメチル－４－ピペリジニル）イミノ］］］、α－トコフェロール、プロピル　３，４，５－トリヒドロキシベンゾエート、及び４，４’，４’’－（１－メチルプロパニル－３－イリデン）トリス（６－ｔｅｒｔ－ブチル－ｍ－クレゾール）からなる群より選ばれる少なくとも一種を含む、タンパク質組成物である。以下、これらの安定化剤を「第２実施形態用安定化剤」という。
　好ましい第２実施形態用安定化剤は、
　プロピル　３，４，５－トリヒドロキシベンゾエートと２，２’－メチレンビス（４，６－ジ－ｔｅｒｔ－ブチルフェニル）　２－エチルヘキシルホスファイトの組み合わせ、
　６，６’－ジ－ｔｅｒｔ－ブチル－４，４’－ブチリデンジ－ｍ－クレゾールとチオビス［２－（１，１－ジメチルエチル）－５－メチル－４，１－フェニレン］－ビス［３－（ドデシルチオ）プロピオネート］の組み合わせ、
　Ｎ，Ｎ’－ヘキサン－１，６－ジイルビス（３－（３，５－ジ－ｔｅｒｔ－ブチル－４－ヒドロキシフェニルプロピオンアミド））と２，２’－メチレンビス（４，６－ジ－ｔｅｒｔ－ブチルフェニル）　２－エチルヘキシルホスファイトの組み合わせ、
　ポリ［［６－［（１，１，３，３－テトラメチルブチル）アミノ］－１，３，５－トリアジン－２，４－ジイル］［（２，２，６，６－テトラメチル－４－ピペリジニル）イミノ］－１，６－ヘキサンジイル［（２，２，６，６－テトラメチル－４－ピペリジニル）イミノ］］）と３，９－ビス（２，６－ジ－ｔｅｒｔ－ブチル－４－メチルフェノキシ）－２，４，８，１０－テトラオキサ－３，９－ジホスファスピロ［５．５］ウンデカンの組み合わせ、又は
　ポリ［［６－［（１，１，３，３－テトラメチルブチル）アミノ］－１，３，５－トリアジン－２，４－ジイル］［（２，２，６，６－テトラメチル－４－ピペリジニル）イミノ］－１，６－ヘキサンジイル［（２，２，６，６－テトラメチル－４－ピペリジニル）イミノ］］）と２，２’－メチレンビス（４，６－ジ－ｔｅｒｔ－ブチルフェニル）　２－エチルヘキシルホスファイトの組み合わせ、又は
　ポリ［［６－［（１，１，３，３－テトラメチルブチル）アミノ］－１，３，５－トリアジン－２，４－ジイル］［（２，２，６，６－テトラメチル－４－ピペリジニル）イミノ］－１，６－ヘキサンジイル［（２，２，６，６－テトラメチル－４－ピペリジニル）イミノ］］）とチオビス［２－（１，１－ジメチルエチル）－５－メチル－４，１－フェニレン］　ビス［３－（ドデシルチオ）プロピオネート］の組み合わせであることが好ましい。安定化剤が上記組み合わせのいずれかであると、それを含有するタンパク質組成物の熱安定性がさらに向上する。
　タンパク質組成物２において、タンパク質１００質量部に対する安定化剤の含有量は、０質量部超１０質量部以下が好ましく、０．００１質量部以上１０質量部以下がより好ましく、０．０１質量部以上５質量部以下がより好ましく、０．１質量部以上２質量部以下がより好ましく、０．１質量部以上１質量部以下がより好ましく、０．１質量部以上０．５質量部以下が更に好適である。これは、１０質量部を超えて含有量を増やしても、それに見合った熱安定性の向上が少なくなるからである。タンパク質組成物２は、例えば、タンパク質、このタンパク質の溶解溶媒、及び第２実施形態用安定化剤の溶液を混合して混合溶液を得る工程と、この混合溶液から揮発分を除去して乾燥物を得る工程と、を備える製造方法により製造可能である（上記製造方法２）。また、タンパク質組成物２は、乾燥物を溶媒等に溶解した組成物であってもよい。
　なお、タンパク質組成物２は上述した乾燥物のみからなっていても、その他の成分を含有していてもよい。すなわち、タンパク質組成物２にはタンパク質と安定化剤以外のその他の成分が含まれていてもよい。また、そのタンパク質組成物２を得る際には、その他の成分を溶媒に溶解させてもよい。
　タンパク質の溶解溶媒としては、タンパク質を溶解し得るものであればよく、例えば、塩化カルシウム／エタノール／水の混合溶媒や、ＤＭＳＯ、ＨＦＩＰ、ギ酸等が挙げられる。溶解溶媒の添加量は、タンパク質を溶解できる量であり、例えば、タンパク質の量が１０～２４質量％となるように調整することが好ましい。
　第２実施形態用安定化剤の溶液を製造するための溶媒としては、エタノール、メタノール等の第一級アルコール、２－プロパノール等の第二級アルコール、ｔｅｒｔ－ブチルアルコール等の第三級アルコール、アセトン、メチルエチルケトン、ジクロロメタン等の単独溶媒か、又はこれらの溶媒の内の少なくとも２つの混合溶媒等が挙げられる。第２実施形態用安定化剤の濃度は、タンパク質の溶解溶媒に対する安定化剤の溶解度を上限とする。
　混合溶液を得るためには、タンパク質は粉末状であることが好ましい。また、タンパク質と第２実施形態用安定化剤との上述した好適比率に従って、混合溶液を製造することが好ましい。混合溶液は、例えば、タンパク質、タンパク質の溶解溶媒、第２実施形態用安定化剤を混合し、６５℃±５℃で、３～６時間攪拌して調製してもよい。このようにして得られる混合溶液（ドープ溶液）は、タンパク質と第２実施形態用安定化剤の両方が溶解している。
　タンパク質組成物２の乾燥物は、典型的には非粉末状（フィルム状、繊維状、紐状、板状等）である。タンパク質組成物２の乾燥物は、成形体（フィルム、板、繊維、紐等）であってもよい。例えば、上記で得られた混合溶液（ドープ溶液）をポリスチレン製の基板上にキャストし、減圧乾燥（例えば、６０℃、０．５４気圧で７日間）して成形する。その後、アセトン、メタノール混合溶液（比率　７：３）に３０分間含浸し、さらにメタノール溶液に３０分間含浸した後、自然乾燥（例えば、２５℃、１気圧）してタンパク質組成物２の乾燥物（フィルム状又は板状）を得ることができる。また、上記で得られた混合溶液（ドープ溶液）を紡糸することにより、タンパク質組成物２の乾燥物（繊維状又は紐状）を得ることができる。
　上述の製造方法１及び２を行うことで、このタンパク質と安定化剤とを共存させることができ、これによりタンパク質の熱安定性を向上させることができる。すなわち、第１実施形態用安定化剤が溶解した溶液に、タンパク質を分散させて分散体を得、この分散体から揮発分を除去して、タンパク質と化合物が共存した乾燥物を得る、熱安定性向上方法（上記方法１）、並びに、タンパク質と、このタンパク質の溶解溶媒と、第２実施形態用安定化剤の溶液とを混合して混合溶液を得、この混合溶液から揮発分を除去して、タンパク質と化合物が共存した乾燥物を得る、熱安定性向上方法（上記方法２）が提供される。
　タンパク質組成物１及び２の熱安定性の評価方法は、通常用いられている方法で行うことができる。例えば、化学発光法、示差熱－熱重量同時測定（ＴＧ－ＤＴＡ）、示差走査熱量測定（ＤＳＣ）、高圧示差走査熱量測定（ＨＰ－ＤＳＣ）、暴走反応試験（ＡＲＣ）、或いは引張試験、曲げ試験（例えば、曲げ強度試験）、圧縮試験、衝撃試験等の機械強度試験等の種々の方法が挙げられる。
　化学発光法は熱酸化劣化によって生じる微弱な化学発光（ケミルミネッセンス）を検出することで劣化の評価を行う分析手法である。化学発光とは物質の化学反応時に分子が励起状態から基底状態に戻ることで生じる光のことであり、ポリマーの劣化における化学発光は、自動酸化劣化によって生じた励起カルボニルが基底状態に落ちる際に生じると言われている。安定化剤を導入したポリプロピレンのようなオレフィン系高分子化合物の場合、安定化剤が効力を発揮している間には、材料からの発光はほとんどないが、安定化剤が消費され尽くすと自動酸化劣化が急激に進行することで、化学発光が観測される。このように安定化剤が効力を失って物質が発光するまでの時間を酸化誘導期（ＯＩＴ）といい、この時間が物質の安定性を示す指標となる。一方、ポリアミド６のような一部の非オレフィン系高分子化合物については、ＯＩＴが存在せず、加熱とともに発光強度が緩やかに上昇し、最大値を示した後減少するような挙動を示す。このような材料を安定化した場合、発光強度の減少ならびに、最大値までの時間の遅延（Ｅｘｔｅｎｔｉｏｎ　ｏｆ　Ｔｉｍｅ　ａｔ　Ｉｍａｘ［％］）が観測されることから、これを安定性の指標とみなすことが可能である。
　第１実施形態においても、第２実施形態においても、タンパク質の種類は、特に限定されるものではない。遺伝子組換え技術により微生物等で製造したものであってもよく、合成により製造されたものであってもよく、また天然由来のタンパク質を精製したものであってもよい。
　タンパク質は、例えば、構造タンパク質であってもよい。構造タンパク質とは、生体内で構造、形態等を形成又は保持するタンパク質を意味する。このような構造タンパク質としては、例えば、フィブロイン、コラーゲン、エラスチン、レシリン等を挙げることができる。これらのタンパク質が、構造タンパク質として、それぞれ単独で、もしくは適宜に組み合わされて用いられる。
　フィブロインは、例えば、絹フィブロイン、クモ糸フィブロイン、及びホーネットシルクフィブロインからなる群より選択される１種以上であってよい。特に、構造タンパク質は、絹フィブロイン、クモ糸フィブロイン又はこれらの組み合わせであってもよい。絹フィブロインとクモ糸フィブロインとを併用する場合、絹フィブロインの割合は、例えば、クモ糸フィブロイン１００質量部に対して、４０質量部以下、３０質量部以下、又は１０質量部以下であってよい。
　絹糸は、カイコガ（Ｂｏｍｂｙｘ　ｍｏｒｉ）の幼虫である蚕の作る繭から得られる繊維（繭糸）である。一般に、１本の繭糸は、２本の絹フィブロインと、これらを外側から覆うニカワ質（セリシン）とから構成される。絹フィブロインは、多数のフィブリルで構成される。絹フィブロインは、４層のセリシンで覆われる。実用的には、精錬により外側のセリシンを溶解して取り除いて得られる絹フィラメントが、衣料用途に使用されている。一般的な絹糸は、１．３３の比重、平均３．３ｄｅｃｉｔｅｘの繊度、及び１３００～１５００ｍ程度の繊維長を有する。絹フィブロインは、天然若しくは家蚕の繭、又は中古若しくは廃棄のシルク生地を原料として得られる。
　絹フィブロインは、セリシン除去絹フィブロイン、セリシン未除去絹フィブロイン、又はこれらの組み合わせであってもよい。セリシン除去絹フィブロインは、絹フィブロインを覆うセリシン、及びその他の脂肪分などを除去して精製したものである。このようにして精製した絹フィブロインは、好ましくは、凍結乾燥粉末として用いられる。セリシン未除去絹フィブロインは、セリシンなどが除去されていない未精製の絹フィブロインである。
　クモ糸フィブロインは、天然クモ糸タンパク質、及び天然クモ糸タンパク質に由来するポリペプチドからなる群より選ばれるクモ糸ポリペプチドを含有していてもよい。
　天然クモ糸タンパク質としては、例えば、大吐糸管しおり糸タンパク質、横糸タンパク質、及び小瓶状腺タンパク質が挙げられる。大吐糸管しおり糸は、結晶領域と非晶領域（無定形領域とも言う。）からなる繰り返し領域を持つため、高い応力と伸縮性を併せ持つ。クモ糸の横糸は、結晶領域を持たず、非晶領域からなる繰り返し領域を持つという特徴を有する。横糸は、大吐糸管しおり糸に比べると応力は劣るが、高い伸縮性を持つ。
　大吐糸管しおり糸タンパク質は、クモの大瓶状線で産生され、強靭性に優れるという特徴を有する。大吐糸管しおり糸タンパク質としては、例えば、アメリカジョロウグモ（Ｎｅｐｈｉｌａ　ｃｌａｖｉｐｅｓ）に由来する大瓶状腺スピドロインＭａＳｐ１及びＭａＳｐ２、並びにニワオニグモ（Ａｒａｎｅｕｓ　ｄｉａｄｅｍａｔｕｓ）に由来するＡＤＦ３及びＡＤＦ４が挙げられる。ＡＤＦ３は、ニワオニグモの２つの主要なしおり糸タンパク質の一つである。天然クモ糸タンパク質に由来するポリペプチドは、これらのしおり糸タンパク質に由来するポリペプチドであってもよい。ＡＤＦ３に由来するポリペプチドは、比較的合成し易く、また、強伸度及びタフネスの点で優れた特性を有する。
　横糸タンパク質は、クモの鞭毛状腺（ｆｌａｇｅｌｌｉｆｏｒｍ　ｇｌａｎｄ）で産生される。横糸タンパク質としては、例えばアメリカジョロウグモ（Ｎｅｐｈｉｌａ　ｃｌａｖｉｐｅｓ）に由来する鞭毛状絹タンパク質（ｆｌａｇｅｌｌｉｆｏｒｍ　ｓｉｌｋ　ｐｒｏｔｅｉｎ）が挙げられる。
　天然クモ糸タンパク質に由来するポリペプチドは、組換えクモ糸タンパク質であってよい。組換えクモ糸タンパク質としては、天然型クモ糸タンパク質の変異体、類似体又は誘導体等が挙げられる。このようなポリペプチドの好適な一例は、大吐糸管しおり糸タンパク質の組換えクモ糸タンパク質（「大吐糸管しおり糸タンパク質に由来するポリペプチド」ともいう）である。
　フィブロイン様タンパク質である、大吐糸管しおり糸由来のタンパク質あるいはカイコシルク由来のタンパク質としては、例えば、式１：［（Ａ）ｎモチーフ－ＲＥＰ１］ｍで表されるドメイン配列を含むタンパク質（ここで、式１中、（Ａ）ｎモチーフは４～２０アミノ酸残基から構成されるアミノ酸配列を示し、かつ（Ａ）ｎモチーフ中の全アミノ酸残基数に対するアラニン残基数が８０％以上である。ＲＥＰ１は１０～２００アミノ酸残基から構成されるアミノ酸配列を示す。ｍは８～３００の整数を示す。複数存在する（Ａ）ｎモチーフは、互いに同一のアミノ酸配列でもよく、異なるアミノ酸配列でもよい。複数存在するＲＥＰ１は、互いに同一のアミノ酸配列でもよく、異なるアミノ酸配列でもよい。）をあげることができる。具体的には配列番号１で示されるアミノ酸配列を含むタンパク質をあげることができる。
　横糸タンパク質に由来するタンパク質としては、例えば、式２：［ＲＥＰ２］ｏで表されるドメイン配列を含むタンパク質（ここで、式２中、ＲＥＰ２はＧｌｙ－Ｐｒｏ－Ｇｌｙ－Ｇｌｙ－Ｘから構成されるアミノ酸配列を示し、Ｘはアラニン（Ａｌａ）、セリン（Ｓｅｒ）、チロシン（Ｔｙｒ）及びバリン（Ｖａｌ）からなる群から選ばれる一つのアミノ酸を示す。ｏは８～３００の整数を示す。）をあげることができる。具体的には配列番号２で示されるアミノ酸配列を含むタンパク質をあげることができる。配列番号２で示されるアミノ酸配列は、ＮＣＢＩデータベースから入手したアメリカジョロウグモの鞭毛状絹タンパク質の部分的な配列（ＮＣＢＩアクセッション番号：ＡＡＦ３６０９０、ＧＩ：７１０６２２４）のリピート部分及びモチーフに該当するＮ末端から１２２０残基目から１６５９残基目までのアミノ酸配列（ＰＲ１配列と記す。）と、ＮＣＢＩデータベースから入手したアメリカジョロウグモの鞭毛状絹タンパク質の部分配列（ＮＣＢＩアクセッション番号：ＡＡＣ３８８４７、ＧＩ：２８３３６４９）のＣ末端から８１６残基目から９０７残基目までのＣ末端アミノ酸配列を結合し、結合した配列のＮ末端に配列番号６で示されるアミノ酸配列（タグ配列及びヒンジ配列）が付加されたものである。
　コラーゲン由来のタンパク質として、例えば、式３：［ＲＥＰ３］ｐで表されるドメイン配列を含むタンパク質（ここで、式３中、ｐは５～３００の整数を示す。ＲＥＰ３は、Ｇｌｙ－Ｘ－Ｙから構成されるアミノ酸配列を示し、Ｘ及びＹはＧｌｙ以外の任意のアミノ酸残基を示す。複数存在するＲＥＰ３は、互いに同一のアミノ酸配列でもよく、異なるアミノ酸配列でもよい。）を挙げることができる。具体的には、配列番号３で示されるアミノ酸配列を含むタンパク質を挙げることができる。配列番号３で示されるアミノ酸配列は、ＮＣＢＩデータベースから入手したヒトのコラーゲンタイプ４の部分的な配列（ＮＣＢＩのＧｅｎｂａｎｋのアクセッション番号：ＣＡＡ５６３３５．１、ＧＩ：３７０２４５２）のリピート部分及びモチーフに該当する３０１残基目から５４０残基目までのアミノ酸配列のＮ末端に配列番号６で示されるアミノ酸配列（タグ配列及びヒンジ配列）が付加されたものである。
　レシリン由来のタンパク質として、例えば、式４：［ＲＥＰ４］ｑで表されるドメイン配列を含むタンパク質（ここで、式４中、ｑは４～３００の整数を示す。ＲＥＰ４はＳｅｒ－Ｊ－Ｊ－Ｔｙｒ－Ｇｌｙ－Ｕ－Ｐｒｏから構成されるアミノ酸配列を示す。Ｊは任意のアミノ酸残基を示し、特にＡｓｐ、Ｓｅｒ及びＴｈｒからなる群から選ばれるアミノ酸残基であることが好ましい。Ｕは任意のアミノ酸残基を示し、特にＰｒｏ、Ａｌａ、Ｔｈｒ及びＳｅｒからなる群から選ばれるアミノ酸残基であることが好ましい。複数存在するＲＥＰ４は、互いに同一のアミノ酸配列でもよく、異なるアミノ酸配列でもよい。）を挙げることができる。具体的には、配列番号４で示されるアミノ酸配列を含むタンパク質を挙げることができる。配列番号４で示されるアミノ酸配列は、レシリン（ＮＣＢＩのＧｅｎｂａｎｋのアクセッション番号ＮＰ６１１１５７、Ｇｌ：２４６５４２４３）のアミノ酸配列において、８７残基目のＴｈｒをＳｅｒに置換し、かつ９５残基目のＡｓｎをＡｓｐに置換した配列の１９残基目から３２１残基目までのアミノ酸配列のＮ末端に配列番号６で示されるアミノ酸配列（タグ配列及びヒンジ配列）が付加されたものである。
　エラスチン由来のタンパク質として、例えば、ＮＣＢＩのＧｅｎｂａｎｋのアクセッション番号ＡＡＣ９８３９５（ヒト）、Ｉ４７０７６（ヒツジ）、ＮＰ７８６９６６（ウシ）等のアミノ酸配列を有するタンパク質を挙げることができる。具体的には、配列番号５で示されるアミノ酸配列を含むタンパク質を挙げることができる。配列番号５で示されるアミノ酸配列は、ＮＣＢＩのＧｅｎｂａｎｋのアクセッション番号ＡＡＣ９８３９５のアミノ酸配列の１２１残基目から３９０残基目までのアミノ酸配列のＮ末端に配列番号６で示されるアミノ酸配列（タグ配列及びヒンジ配列）が付加されたものである。
　タンパク質原料繊維に主成分として含まれるタンパク質は、例えば、当該タンパク質をコードする核酸配列と、当該核酸配列に作動可能に連結された１又は複数の調節配列とを有する発現ベクターで形質転換された宿主により、当該核酸を発現させることにより生産することができる。
　タンパク質原料繊維に主成分として含まれるタンパク質をコードする遺伝子の製造方法は、特に制限されない。例えば、天然の構造タンパク質をコードする遺伝子を利用して、ポリメラーゼ連鎖反応（ＰＣＲ）などで増幅しクローニングする方法、又は、化学的な合成によって、遺伝子を製造することができる。遺伝子の化学的な合成方法も特に制限されず、例えば、ＮＣＢＩのウェブデータベースなどより入手した構造タンパク質のアミノ酸配列情報をもとに、ＡＫＴＡ　ｏｌｉｇｏｐｉｌｏｔ　ｐｌｕｓ　１０／１００（ＧＥヘルスケア・ジャパン株式会社）などで自動合成したオリゴヌクレオチドをＰＣＲなどで連結する方法によって遺伝子を化学的に合成することができる。この際に、タンパク質の精製や確認を容易にするため、上記のアミノ酸配列のＮ末端に開始コドン及びＨｉｓ１０タグからなるアミノ酸配列を付加したアミノ酸配列からなるタンパク質、をコードする遺伝子を合成してもよい。
　調節配列は、宿主における組換えタンパク質の発現を制御する配列（例えば、プロモーター、エンハンサー、リボソーム結合配列、転写終結配列等）であり、宿主の種類に応じて適宜選択することができる。プロモーターとして、宿主細胞中で機能し、目的とするタンパク質を発現誘導可能な誘導性プロモーターを用いても良い。誘導性プロモーターは、誘導物質（発現誘導剤）の存在、リプレッサー分子の非存在、又は温度、浸透圧若しくはｐＨ値の上昇若しくは低下等の物理的要因により、転写を制御できるプロモーターである。
　発現ベクターの種類は、プラスミドベクター、ウイルスベクター、コスミドベクター、フォスミドベクター、人工染色体ベクター等、宿主の種類に応じて適宜選択することができる。発現ベクターとしては、宿主細胞において自立複製が可能、又は宿主の染色体中への組込みが可能で、目的とするタンパク質をコードする核酸を転写できる位置にプロモーターを含有しているものが好適に用いられる。
　宿主として、原核生物、並びに酵母、糸状真菌、昆虫細胞、動物細胞及び植物細胞等の真核生物のいずれも好適に用いることができる。
　原核生物の好ましい例として、エシェリヒア属、ブレビバチルス属、セラチア属、バチルス属、ミクロバクテリウム属、ブレビバクテリウム属、コリネバクテリウム属及びシュードモナス属等に属する細菌を挙げることができる。エシェリヒア属に属する微生物として、例えば、エシェリヒア・コリ等を挙げることができる。ブレビバチルス属に属する微生物として、例えば、ブレビバチルス・アグリ等を挙げることができる。セラチア属に属する微生物として、例えば、セラチア・リクエファシエンス等を挙げることができる。バチルス属に属する微生物として、例えば、バチルス・サチラス等を挙げることができる。ミクロバクテリウム属に属する微生物として、例えば、ミクロバクテリウム・アンモニアフィラム等を挙げることができる。ブレビバクテリウム属に属する微生物として、例えば、ブレビバクテリウム・ディバリカタム等を挙げることができる。コリネバクテリウム属に属する微生物として、例えば、コリネバクテリウム・アンモニアゲネス等を挙げることができる。シュードモナス（Ｐｓｅｕｄｏｍｏｎａｓ）属に属する微生物として、例えば、シュードモナス・プチダ等を挙げることができる。
　タンパク質原料繊維に主成分として含まれるタンパク質をコードする核酸を導入するベクターとしては、例えば、ｐＢＴｒｐ２（ベーリンガーマンハイム社製）、ｐＧＥＸ（Ｐｈａｒｍａｃｉａ社製）、ｐＵＣ１８、ｐＢｌｕｅｓｃｒｉｐｔＩＩ、ｐＳｕｐｅｘ、ｐＥＴ２２ｂ、ｐＣｏｌｄ、ｐＵＢ１１０、ｐＮＣＯ２（特開第２００２－２３８５６９号公報）等を挙げることができる。
　真核生物の宿主としては、例えば、酵母及び糸状真菌（カビ等）を挙げることができる。酵母としては、例えば、サッカロマイセス属、ピキア属、シゾサッカロマイセス属等に属する酵母を挙げることができる。糸状真菌としては、例えば、アスペルギルス属、ペニシリウム属、トリコデルマ（Ｔｒｉｃｈｏｄｅｒｍａ）属等に属する糸状真菌を挙げることができる。
　ベクターとしては、例えば、ＹＥＰ１３（ＡＴＣＣ３７１１５）、ＹＥｐ２４（ＡＴＣＣ３７０５１）等を挙げることができる。上記宿主細胞への発現ベクターの導入方法としては、上記宿主細胞へＤＮＡを導入する方法であればいずれも用いることができる。例えば、カルシウムイオンを用いる方法〔Ｐｒｏｃ．　Ｎａｔｌ．　Ａｃａｄ．　Ｓｃｉ．　ＵＳＡ，６９，２１１０　（１９７２）〕、エレクトロポレーション法、スフェロプラスト法、プロトプラスト法、酢酸リチウム法、コンピテント法等を挙げることができる。
　発現ベクターで形質転換された宿主による核酸の発現方法としては、直接発現のほか、モレキュラー・クローニング第２版に記載されている方法等に準じて、分泌生産、融合タンパク質発現等を行うことができる。
　タンパク質は、例えば、発現ベクターで形質転換された宿主を培養培地中で培養し、培養培地中に当該タンパク質を生成蓄積させ、該培養培地から採取することにより製造することができる。宿主を培養培地中で培養する方法は、宿主の培養に通常用いられる方法に従って行うことができる。
　宿主が、大腸菌等の原核生物又は酵母等の真核生物である場合、培養培地として、宿主が資化し得る炭素源、窒素源及び無機塩類等を含有し、宿主の培養を効率的に行える培地であれば天然培地、合成培地のいずれを用いてもよい。
　炭素源としては、上記形質転換微生物が資化し得るものであればよく、例えば、グルコース、フラクトース、スクロース、及びこれらを含有する糖蜜、デンプン及びデンプン加水分解物等の炭水化物、酢酸及びプロピオン酸等の有機酸、並びにエタノール及びプロパノール等のアルコール類を用いることができる。窒素源としては、例えば、アンモニア、塩化アンモニウム、硫酸アンモニウム、酢酸アンモニウム及びリン酸アンモニウム等の無機酸又は有機酸のアンモニウム塩、その他の含窒素化合物、並びにペプトン、肉エキス、酵母エキス、コーンスチープリカー、カゼイン加水分解物、大豆粕及び大豆粕加水分解物、各種発酵菌体及びその消化物を用いることができる。無機塩としては、例えば、リン酸第一カリウム、リン酸第二カリウム、リン酸マグネシウム、硫酸マグネシウム、塩化ナトリウム、硫酸第一鉄、硫酸マンガン、硫酸銅及び炭酸カルシウムを用いることができる。
　大腸菌等の原核生物又は酵母等の真核生物の培養は、例えば、振盪培養又は深部通気攪拌培養等の好気的条件下で行うことができる。培養温度は、例えば、１５～４０℃である。培養時間は、通常１６時間～７日間である。培養中の培養培地のｐＨは３．０～９．０に保持することが好ましい。培養培地のｐＨの調整は、無機酸、有機酸、アルカリ溶液、尿素、炭酸カルシウム及びアンモニア等を用いて行うことができる。
　また、培養中必要に応じて、アンピシリン及びテトラサイクリン等の抗生物質を培養培地に添加してもよい。プロモーターとして誘導性のプロモーターを用いた発現ベクターで形質転換した微生物を培養するときには、必要に応じてインデューサーを培地に添加してもよい。例えば、ｌａｃプロモーターを用いた発現ベクターで形質転換した微生物を培養するときにはイソプロピル－β－Ｄ－チオガラクトピラノシド等を、ｔｒｐプロモーターを用いた発現ベクターで形質転換した微生物を培養するときにはインドールアクリル酸等を培地に添加してもよい。
　タンパク質の単離、精製は通常用いられている方法で行うことができる。例えば、当該タンパク質が、細胞内に溶解状態で発現した場合には、培養終了後、宿主細胞を遠心分離により回収し、水系緩衝液に懸濁した後、超音波破砕機、フレンチプレス、マントンガウリンホモゲナイザー及びダイノミル等により宿主細胞を破砕し、無細胞抽出液を得る。該無細胞抽出液を遠心分離することにより得られる上清から、タンパク質の単離精製に通常用いられている方法、すなわち、溶媒抽出法、硫安等による塩析法、脱塩法、有機溶媒による沈殿法、ジエチルアミノエチル（ＤＥＡＥ）－セファロース、ＤＩＡＩＯＮ　ＨＰＡ－７５（三菱化成社製）等のレジンを用いた陰イオン交換クロマトグラフィー法、Ｓ－Ｓｅｐｈａｒｏｓｅ　ＦＦ（Ｐｈａｒｍａｃｉａ社製）等のレジンを用いた陽イオン交換クロマトグラフィー法、ブチルセファロース、フェニルセファロース等のレジンを用いた疎水性クロマトグラフィー法、分子篩を用いたゲルろ過法、アフィニティークロマトグラフィー法、クロマトフォーカシング法、等電点電気泳動等の電気泳動法等の方法を単独又は組み合わせて使用し、精製標品を得ることができる。
　また、タンパク質が細胞内に不溶体を形成して発現した場合は、同様に宿主細胞を回収後、破砕し、遠心分離を行うことにより、沈殿画分として改変フィブロインの不溶体を回収する。回収した改変フィブロインの不溶体は蛋白質変性剤で可溶化することができる。該操作の後、上記と同様の単離精製法により改変フィブロインの精製標品を得ることができる。当該タンパク質が細胞外に分泌された場合には、培養上清から当該タンパク質を回収することができる。すなわち、培養物を遠心分離等の手法により処理することにより培養上清を取得し、その培養上清から、上記と同様の単離精製法を用いることにより、精製標品を得ることができる。
　なお、上記したようなタンパク質を主成分として含むタンパク質原料繊維は、公知の手法によって製造される。即ち、例えば、クモ糸フィブロインを含むタンパク質原料繊維を製造する際には、先ず、前記発現ベクターで形質転換した宿主等を用いて製造されるクモ糸フィブロインをジメチルスルホキシド（ＤＭＳＯ）や、Ｎ，Ｎ－ジメチルホルムアミド（ＤＭＦ）、ギ酸、或いはヘキサフルオロイソプロノール（ＨＦＩＰ）等の溶媒単独に溶解してドープ溶液を作製、又は、これら溶媒に上記クモ糸フィブロインを溶解促進剤としての無機塩と共に添加し、溶解してドープ溶液を作製する。次いで、このドープ溶液を用いて、湿式紡糸や乾式紡糸、乾湿式紡糸等の公知の紡糸手法により紡糸して、タンパク質原料を得ることができる。なお、安定化剤を上記ドープ溶液に添加して溶解させてもよく、また、安定化剤を溶解させた溶液に、上記クモ糸フィブロインを混合してドープ溶液としてもよい。ここで用いられるドープ溶液の溶媒としては、安定化剤をも溶解可能なものが用いられる。安定化剤を溶解させた溶液と上記クモ糸フィブロインを溶解させた溶液の混合溶液をドープ溶液としてもよい。
　さらに、安定化剤を溶解させた溶液に、上記クモ糸フィブロインを分散させて分散体を得、この分散体から溶媒を除去して得られる乾燥物を用いてドープ溶液を作製してもよい。
　以下、実施例に基づいて本発明をより具体的に説明する。ただし、本発明は以下の実施例に限定されるものではない。
１．クモ糸タンパク質（クモ糸フィブロイン）の製造
（クモ糸タンパク質をコードする遺伝子の合成、及び発現ベクターの構築）
　ネフィラ・クラビペス（Ｎｅｐｈｉｌａ　ｃｌａｖｉｐｅｓ）由来のフィブロイン（ＧｅｎＢａｎｋアクセッション番号：Ｐ４６８０４．１、ＧＩ：１１７４４１５）の塩基配列及びアミノ酸配列に基づき、配列番号１で示されるアミノ酸配列を有する改変フィブロイン（以下、「ＰＲＴ４１０」ともいう。）を設計した。
　配列番号１で示されるアミノ酸配列は、ネフィラ・クラビペス由来のフィブロインのアミノ酸配列に対して、生産性の向上を目的としてアミノ酸残基の置換、挿入及び欠失を施したアミノ酸配列を有し、さらにＮ末端に配列番号６で示されるアミノ酸配列（タグ配列及びヒンジ配列）が付加されている。
　次に、ＰＲＴ４１０をコードする核酸を合成した。当該核酸には、５’末端にＮｄｅＩサイト及び終止コドン下流にＥｃｏＲＩサイトを付加した。当該核酸をクローニングベクター（ｐＵＣ１１８）にクローニングした。その後、同核酸をＮｄｅＩ及びＥｃｏＲＩで制限酵素処理して切り出した後、タンパク質発現ベクターｐＥＴ－２２ｂ（＋）に組換えて発現ベクターを得た。
　配列番号１で示されるアミノ酸配列を有するタンパク質をコードする核酸を含むｐＥＴ２２ｂ（＋）発現ベクターで、大腸菌ＢＬＲ（ＤＥ３）を形質転換した。当該形質転換大腸菌を、アンピシリンを含む２ｍＬのＬＢ培地で１５時間培養した。当該培養液を、アンピシリンを含む１００ｍＬのシード培養用培地（表１）にＯＤ６００が０．００５となるように添加した。培養液温度を３０℃に保ち、ＯＤ６００が５になるまでフラスコ培養を行い（約１５時間）、シード培養液を得た。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000001
　当該シード培養液を５００ｍＬの生産培地（下記表２）を添加したジャーファーメンターにＯＤ６００が０．０５となるように添加した。培養液温度を３７℃に保ち、ｐＨ６．９で一定に制御して培養した。また培養液中の溶存酸素濃度を、溶存酸素飽和濃度の２０％に維持するようにした。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000002
　生産培地中のグルコースが完全に消費された直後に、フィード液（グルコース４５５ｇ／１Ｌ、Ｙｅａｓｔ　Ｅｘｔｒａｃｔ　１２０ｇ／１Ｌ）を１ｍＬ／分の速度で添加した。培養液温度を３７℃に保ち、ｐＨ６．９で一定に制御して培養した。また培養液中の溶存酸素濃度を、溶存酸素飽和濃度の２０％に維持するようにし、２０時間培養を行った。その後、１Ｍのイソプロピル－β－チオガラクトピラノシド（ＩＰＴＧ）を培養液に対して終濃度１ｍＭになるよう添加し、目的のタンパク質を発現誘導させた。ＩＰＴＧ添加後２０時間経過した時点で、培養液を遠心分離し、菌体を回収した。ＩＰＴＧ添加前とＩＰＴＧ添加後の培養液から調製した菌体を用いてＳＤＳ－ＰＡＧＥを行い、ＩＰＴＧ添加に依存した目的とするタンパク質サイズのバンドの出現により、目的とするタンパク質の発現を確認した。
（タンパク質の精製）
　ＩＰＴＧを添加してから２時間後に回収した菌体を２０ｍＭ　Ｔｒｉｓ－ＨＣｌ　ｂｕｆｆｅｒ（ｐＨ７．４）で洗浄した。洗浄後の菌体を約１ｍＭのＰＭＳＦを含む２０ｍＭ　Ｔｒｉｓ－ＨＣｌ緩衝液（ｐＨ７．４）に懸濁させ、高圧ホモジナイザー（ＧＥＡ　Ｎｉｒｏ　Ｓｏａｖｉ社）で細胞を破砕した。破砕した細胞を遠心分離し、沈殿物を得た。得られた沈殿物を、高純度になるまで２０ｍＭ　Ｔｒｉｓ－ＨＣｌ緩衝液（ｐＨ７．４）で洗浄した。洗浄後の沈殿物を１００ｍｇ／ｍＬの濃度になるように８Ｍ　グアニジン緩衝液（８Ｍグアニジン塩酸塩、１０ｍＭリン酸二水素ナトリウム、２０ｍＭ　ＮａＣｌ、１ｍＭ　Ｔｒｉｓ－ＨＣｌ、ｐＨ７．０）で懸濁し、６０℃で３０分間、スターラーで撹拌し、溶解させた。溶解後、透析チューブ（三光純薬株式会社製のセルロースチューブ３６／３２）を用いて水で透析を行った。透析後に得られた白色の凝集タンパク質を遠心分離により回収し、凍結乾燥機で水分を除き、凍結乾燥粉末を回収した。
　得られた凍結乾燥粉末における目的タンパク質の精製度は、粉末のポリアクリルアミドゲル電気泳動の結果をＴｏｔａｌｌａｂ（ｎｏｎｌｉｎｅａｒ　ｄｙｎａｍｉｃｓ　Ｌｔｄ．）を用いて画像解析することにより確認した。その結果、いずれのタンパク質も精製度は約８５％であった。
２－１．タンパク質組成物１（粉末）の製造
　上記精製工程で得られた人工クモ糸タンパク質粉末２００ｍｇをそれぞれサンプル瓶に導入した。以下の表３に示す安定化剤を０．３ｍｇ／ｍＬの濃度で溶媒（アセトン／メタノールを体積比１／１とした混合溶媒）に溶解させ、その安定化剤溶液２ｍＬをそれぞれサンプル瓶に導入した（安定化剤量：０．６ｍｇ）。そして、サンプル瓶に封をして室温で１６時間撹拌を行った後、自然乾燥を行い、溶媒を揮発させることで安定化剤含有粉末（粉末状タンパク質組成物）（乾燥物全量に対する安定化剤含有量：０．３質量％）を調製した。
　安定化剤を添加しなかった以外は、上記と同様にしてタンパク質粉末を調製し、それをコントロールとした。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000003
　熱安定性の評価は、以下のように行った。試料を収容するチャンバーに上記安定化剤含有粉末（粉末状タンパク質組成物）を設置し、このチャンバーを装置にセットした。その後、乾燥空気を流速１００ｍＬ／ｍｉｎで流通し、２００℃に保持して化学発光強度の経時変化をケミルミネッセンスアナライザー（東北電子産業株式会社製ＣＬＡ－ＩＤ２－ＨＳ）で検出した。安定化剤を添加していないタンパク質粉末の化学発光強度が最大値に達するまでの時間をＴ０、安定化剤含有粉末（粉末状タンパク質組成物）の化学発光強度が最大値に達するまでの時間をＴ１として、次式よりＥｘｔｅｎｔｉｏｎ　ｏｆ　Ｔｉｍｅ　ａｔ　Ｉｍａｘを算出した。
（Ｔ１－Ｔ０）／Ｔ０×１００　［％］
　Ｅｘｔｅｎｔｉｏｎ　ｏｆ　Ｔｉｍｅ　ａｔ　Ｉｍａｘ［％］は化学発光強度が最大値に達するまでの遅延時間を意味し、数値が大きい方が熱安定性が高いことを示す。表３の安定化剤について、結果を以下の表４に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000004
２－２．タンパク質組成物１（粉末）の製造
　上記精製工程で得られた人工クモ糸タンパク質粉末（ＰＲＴ４１０）２００ｍｇをサンプル瓶に導入した。安定化剤としてプロピル　３，４，５－トリヒドロキシベンゾエートを用い、安定化剤の含有量を０．５質量％とした他は、上記２－１．と同様にして安定化剤含有粉末（粉末状タンパク質組成物）（乾燥物全量に対する安定化剤含有量：０．５質量％）を調製した。
　コントロールとして、安定化剤を添加しなかった以外は、上記と同様にしてタンパク質粉末を調製した。
　上記２－１．と同様にして熱安定性の評価を行った。算出されたＥｘｔｅｎｔｉｏｎ　ｏｆ　Ｔｉｍｅ　ａｔ　Ｉｍａｘ［％］の値は、３５％であった。
３－１．タンパク質組成物２（フィルム）の製造
　上記精製工程で得られた人工クモ糸タンパク質粉末（ＰＲＴ４１０）０．５６ｇをそれぞれサンプル瓶に導入した。蒸留水８．４ｍＬ、エタノール６．７ｍＬの混合溶液に塩化カルシウムを２．２２ｇ溶解させて、人工クモ糸タンパク質粉末の溶解溶媒を作成した後、その溶解溶媒５ｇをそれぞれサンプル瓶に導入した。以下の表５に示す安定化剤を１．４質量％の濃度でエタノールに溶解させた。その安定化剤溶液１００μＬをそれぞれサンプル瓶に導入し（安定化剤量：１．１２ｍｇ）、６５℃で６時間、撹拌を行うことでドープ溶液を調製した。
　調製したドープ溶液をポリスチレン（ＰＳ）製のペトリ皿に０．６３ｇキャストし、６０℃、５５０ｈＰａの状態で７日間静置させることで乾燥を行った。乾燥後は、アセトン、メタノール混合溶液（比率７：３）にペトリ皿ごと３０分間浸漬させた。その後、ペトリ皿からフィルムを剥がし取り、メタノール溶液に３０分浸漬させてから自然乾燥を行うことによって、厚み１２０μｍの安定化剤含有人工クモ糸フィルム（乾燥物全量に対する安定化剤含有率：０．２質量％）を作製した。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000005
　熱安定性の評価は、以下のように行った。試料を収容するチャンバーに上記フィルムを設置し、このチャンバーを装置にセットした。その後、乾燥空気を流速１００ｍＬ／ｍｉｎで流通し、２００℃に保持して化学発光強度の経時変化をケミルミネッセンスアナライザー（東北電子産業株式会社製ＣＬＡ－ＩＤ２－ＨＳ）で検出した。安定化剤を添加していないフィルムの化学発光強度が最大値に達するまでの時間をＴ０、安定化剤含有フィルムの化学発光強度が最大値に達するまでの時間をＴ１とした他は、上記２－１．と同様の方法で、Ｅｘｔｅｎｔｉｏｎ　ｏｆ　Ｔｉｍｅ　ａｔ　Ｉｍａｘ［％］を算出した。その結果を以下の表６に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000006
３－２．タンパク質組成物２（フィルム）の製造
　表５に示した安定化剤の内、以下の表７に示す組み合わせで安定化剤を使用した。２種類の安定化剤をそれぞれ１．４質量％の濃度でエタノールに溶解させた以外は、上記３－１．と同様にして、ドープ溶液（安定化剤量：２．２４ｍｇ）を調製し、厚み１２０μｍの安定化剤含有人工クモ糸フィルム（乾燥物全量に対する安定化剤含有率：０．４質量％）を作製した。
　比較のために、プロピル　３，４，５－トリヒドロキシベンゾエートを単独で安定化剤として使用し、２．８質量％の濃度でエタノールに溶解させた以外は、上記３－１．と同様にして、厚み１２０μｍの安定化剤含有人工クモ糸フィルム（乾燥物全量に対する安定化剤含有率：０．４質量％）を作製した。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000007
　熱安定性の評価は上記３－１．と同様の手順で行い、Ｅｘｔｅｎｔｉｏｎ　ｏｆ　Ｔｉｍｅ　ａｔ　Ｉｍａｘ［％］を算出した。その結果を以下の表８に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000008
　表８に示すとおり、プロピル　３，４，５－トリヒドロキシベンゾエートを単独で使用して作製した安定化剤含有人工クモ糸フィルムよりも、プロピル　３，４，５－トリヒドロキシベンゾエートと２，２’－メチレンビス（４，６－ジ－ｔｅｒｔ－ブチルフェニル）　２－エチルヘキシルホスファイトの２種類の安定化剤を使用して作製した安定化剤含有人工クモ糸フィルムの方が、より高い熱安定性を示した。
３－３．タンパク質組成物２（フィルム）の製造
　以下の表９に示す組み合わせで安定化剤を使用した以外は、上記３－２．と同様にして、厚み１２０μｍの安定化剤含有人工クモ糸フィルム（乾燥物全量に対する安定化剤含有率：０．４質量％）を作製した。
　比較のために、６，６’－ジ－ｔｅｒｔ－ブチル－４，４’－ブチリデンジ－ｍ－クレゾールを単独で安定化剤として使用した以外は、上記３－２．と同様にして、厚み１２０μｍの安定化剤含有人工クモ糸フィルム（乾燥物全量に対する安定化剤含有率：０．４質量％）を作製した。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000009
　熱安定性の評価は上記３－１．と同様の手順で行い、Ｅｘｔｅｎｔｉｏｎ　ｏｆ　Ｔｉｍｅ　ａｔ　Ｉｍａｘ［％］を算出した。その結果を以下の表１０に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000010
　表１０に示すとおり、６，６’－ジ－ｔｅｒｔ－ブチル－４，４’－ブチリデンジ－ｍ－クレゾールを単独で使用して作製した安定化剤含有人工クモ糸フィルムよりも、６，６’－ジ－ｔｅｒｔ－ブチル－４，４’－ブチリデンジ－ｍ－クレゾールとチオビス［２－（１，１－ジメチルエチル）－５－メチル－４，１－フェニレン］－ビス［３－（ドデシルチオ）プロピオネート］の２種類の安定化剤を使用して作製した安定化剤含有人工クモ糸フィルムの方が、より高い熱安定性を示した。
３－４．タンパク質組成物２（フィルム）の製造
　以下の表１１に示す組み合わせで安定化剤を使用した以外は、上記３－２．と同様にして、厚み１２０μｍの安定化剤含有人工クモ糸フィルム（乾燥物全量に対する安定化剤含有率：０．４質量％）を作製した。
　比較のために、Ｎ，Ｎ’－ヘキサン－１，６－ジイルビス（３－（３，５－ジ－ｔｅｒｔ－ブチル－４－ヒドロキシフェニルプロピオンアミド））を単独で安定化剤として使用した以外は、上記３－２．と同様にして、厚み１２０μｍの安定化剤含有人工クモ糸フィルム（乾燥物全量に対する安定化剤含有率：０．４質量％）を作製した。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000011
　熱安定性の評価は上記３－１．と同様の手順で行い、Ｅｘｔｅｎｔｉｏｎ　ｏｆ　Ｔｉｍｅ　ａｔ　Ｉｍａｘ［％］を算出した。その結果を以下の表１２に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000012
　表１２に示すとおり、Ｎ，Ｎ’－ヘキサン－１，６－ジイルビス（３－（３，５－ジ－ｔｅｒｔ－ブチル－４－ヒドロキシフェニルプロピオンアミド））を単独で使用して作製した安定化剤含有人工クモ糸フィルムよりも、Ｎ，Ｎ’－ヘキサン－１，６－ジイルビス（３－（３，５－ジ－ｔｅｒｔ－ブチル－４－ヒドロキシフェニルプロピオンアミド））と２，２’－メチレンビス（４，６－ジ－ｔｅｒｔ－ブチルフェニル）　２－エチルヘキシルホスファイトの２種類の安定化剤を使用して作製した安定化剤含有人工クモ糸フィルムの方が、より高い熱安定性を示した。
３－５．タンパク質組成物２（フィルム）の製造
　以下の表１３に示す組み合わせで安定化剤を使用した以外は、上記３－２．と同様にして厚み１２０μｍの安定化剤含有人工クモ糸フィルム（乾燥物全量に対する安定化剤含有率：０．４質量％）を作製した。
　比較のために、ポリ［［６－［（１，１，３，３－テトラメチルブチル）アミノ］－１，３，５－トリアジン－２，４－ジイル］［（２，２，６，６－テトラメチル－４－ピペリジニル）イミノ］－１，６－ヘキサンジイル［（２，２，６，６－テトラメチル－４－ピペリジニル）イミノ］］）を単独で安定化剤として使用した以外は、上記３－２．と同様にして、厚み１２０μｍの安定化剤含有人工クモ糸フィルム（乾燥物全量に対する安定化剤含有率：０．４質量％）を作製した。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000013
　熱安定性の評価は上記３－１．と同様の手順で行い、Ｅｘｔｅｎｔｉｏｎ　ｏｆ　Ｔｉｍｅ　ａｔ　Ｉｍａｘ［％］を算出した。その結果を以下の表１４に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000014
　表１４に示すとおり、ポリ［［６－［（１，１，３，３－テトラメチルブチル）アミノ］－１，３，５－トリアジン－２，４－ジイル］［（２，２，６，６－テトラメチル－４－ピペリジニル）イミノ］－１，６－ヘキサンジイル［（２，２，６，６－テトラメチル－４－ピペリジニル）イミノ］］）を単独で使用して作製した安定化剤含有人工クモ糸フィルムよりも、ポリ［［６－［（１，１，３，３－テトラメチルブチル）アミノ］－１，３，５－トリアジン－２，４－ジイル］［（２，２，６，６－テトラメチル－４－ピペリジニル）イミノ］－１，６－ヘキサンジイル［（２，２，６，６－テトラメチル－４－ピペリジニル）イミノ］］）と、３，９－ビス（２，６－ジ－ｔｅｒｔ－ブチル－４－メチルフェノキシ）－２，４，８，１０－テトラオキサ－３，９－ジホスファスピロ［５．５］ウンデカン、２，２’－メチレンビス（４，６－ジ－ｔｅｒｔ－ブチルフェニル）　２－エチルヘキシルホスファイト又はチオビス［２－（１，１－ジメチルエチル）－５－メチル－４，１－フェニレン］－ビス［３－（ドデシルチオ）プロピオネート］のいずれか一種の２種類の安定化剤を使用して作製した安定化剤含有人工クモ糸フィルムの方が、より高い熱安定性を示した。
４－１．タンパク質組成物１（モールド成形体）の製造
　上記精製工程で得られた人工クモ糸タンパク質粉末（ＰＲＴ４１０）９．９８ｇをバイアル瓶に導入した。安定化剤としてプロピル　３，４，５－トリヒドロキシベンゾエートを１ｍｇ／ｍＬの濃度でエタノールに溶解させ、その安定化剤溶液を２０ｍＬバイアル瓶に導入した（安定化剤量：２０ｍｇ）。そして、バイアル瓶に封をして室温で超音波攪拌を６０分行った。さらに６０時間撹拌を行った後、４０℃で４時間減圧乾燥を行い、溶媒を揮発させることで安定化剤含有粉末（乾燥物全量に対する安定化剤含有量率：０．２質量％）を調製した。
　安定化剤含有粉末をミル（ＩＷＡＴＡＮＩ社製、ＩＦＭ－８０）にて粉砕して粒子径を調節した後、粒子径調節後の安定化剤含有粉末（以下「タンパク質組成物」という。）を１．３５ｇ量り取り、このタンパク質組成物を図１に示す加圧成形機１０の金型２（円柱形状の金型であり、断面が３５ｍｍ×１５ｍｍの長方形状の貫通孔を有している。）の貫通孔内に導入した。この際、厚みが均等になるようにタンパク質組成物を加えていった。全てのタンパク質組成物を導入した後、金型２の加熱を開始するとともに、ハンドプレス機（ＮＰａシステム株式会社製、ＮＴ－１００Ｈ－Ｖ０９）を用いて、上側ピン４と下側ピン６を貫通孔内に挿入することでタンパク質組成物の加圧を行った。この際、タンパク質組成物の加圧条件が４０ｋＮとなるように制御した。タンパク質組成物の温度が２００℃になったところで加熱を中止し、自然放冷して、タンパク質組成物の温度が５０℃になったところで取り出し、バリ取りを行った後、３５ｍｍ×１５ｍｍ×２ｍｍの直方体形状の安定化剤含有モールド成形体を得た（乾燥物全量に対する安定化剤含有量率：０．２質量％）。
　また、上記精製工程で得られた人工クモ糸タンパク質粉末（ＰＲＴ４１０）９．９５ｇをバイアル瓶に導入した。安定化剤としてプロピル　３，４，５－トリヒドロキシベンゾエートを２．５ｍｇ／ｍＬの濃度でエタノールに溶解させ、その安定化剤溶液を２０ｍＬバイアル瓶に導入した（安定化剤量：５０ｍｇ）。その他は、上記と同様の手順で３５ｍｍ×１５ｍｍ×２ｍｍの直方体形状の安定化剤含有モールド成形体を得た（乾燥物全量に対する安定化剤含有量率：０．５質量％）。
　比較のため、上記精製工程で得られた人工クモ糸タンパク質粉末（ＰＲＴ４１０）１０ｇをバイアル瓶に導入し、その後エタノール２０ｍＬを導入した（安定化剤の添加なし）。その他は、上記と同様の手順で３５ｍｍ×１５ｍｍ×２ｍｍの直方体形状のモールド成形体を得た。
　熱安定性に関し、曲げ試験を行い成形体の強度評価を行った。すなわち、得られたモールド成形体を恒温恒湿槽（ｅｓｐｅｃ社製、ＬＨＬ－１１３）で２０℃／６５％ＲＨの条件下で１日静置した後、オートグラフ（島津製作所株式会社製、ＡＧ－Ｘｐｌｕｓ）にて籠治具を用いて、三点曲げ試験を行った。使用したロードセルは５０ｋＮであった。この際、三点曲げの支点間距離を２７ｍｍに固定し、測定速度を１ｍｍ／分とした。また、モールド成形体のサイズをマイクロノギスで測定し、治具に設置し試験を行った。その結果を以下の表１５に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000015
４－２．タンパク質組成物１（モールド成形体）の製造
　上記４－１．と同様にして調製した安定化剤含有粉末（以下「タンパク質組成物」という。）を１．３５ｇ量り取り、金型２（図１）の貫通孔内に導入した（乾燥物全量に対する安定化剤含有量率：０．２質量％）。タンパク質組成物の加熱を、タンパク質組成物の温度が１３０℃に達したところで５分間ホールドした後で、加熱を中止した他は、上記４－１．と同様の手順で安定化剤含有モールド成形体を得た（乾燥物全量に対する安定化剤含有量率：０．２質量％）。
　比較のため、上記精製工程で得られた人工クモ糸タンパク質粉末１０ｇ（ＰＲＴ４１０）をバイアル瓶に導入し、その後エタノール２０ｍＬを導入した。その他は、上記４－１．と同様にしてモールド成形体を得た（安定化剤の添加なし）。
　熱安定性に関し、上記４－１．と同様にして曲げ試験を行い成形体の強度評価を行った。その結果を以下の表１６に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000016
　表１６に示されるとおり、安定化剤を添加せずに作製したモールド成形体に比べて、プロピル　３，４，５－トリヒドロキシベンゾエートを添加して作製した安定化剤含有モールド成形体の方が、より高い熱安定性を示した。
４－３．タンパク質組成物１（モールド成形体）の製造
　安定化剤として６，６’－ジ－ｔｅｒｔ－ブチル－４，４’－ブチリデンジ－ｍ－クレゾールを１ｍｇ／ｍＬの濃度でエタノールに溶解させ、その安定化剤溶液を３０ｍＬバイアル瓶に導入した（安定化剤量：３０ｍｇ）。上記精製工程で得られた人工クモ糸タンパク質粉末（ＰＲＴ４１０）９．９７ｇをバイアル瓶に導入した。バイアル瓶に封をして室温で市販のマグネチックスターラーを用いて攪拌を一晩行った。分散液を蓋のない容器に移し替え、３日間ドラフト内に静置してエタノールを揮発除去した後、さらに３５℃で数時間減圧乾燥を行い、安定化剤含有粉末（粉末状タンパク質組成物）を調製した（以下「タンパク質組成物」という）。タンパク質組成物を１．３５g量り取り、金型２（図１）の貫通孔内に導入した。タンパク質組成物の加熱を、タンパク質組成物の温度が１９０℃に達したところで５分間ホールドした後に、加熱を中止した。その他は、上記４－１．と同様にして、３５ｍｍ×１５ｍｍ×２ｍｍの直方体形状の安定化剤含有モールド成形体を得た（乾燥物全量に対する安定化剤含有量率：０．３質量％）。
　比較のために、上記精製工程で得られた人工クモ糸タンパク質粉末（ＰＲＴ４１０）１０ｇをバイアル瓶に導入し、その後エタノール３０ｍＬを導入した。その他は、上記４－１．と同様にして３５ｍｍ×１５ｍｍ×２ｍｍの直方体形状のモールド成形体を得た（安定化剤の添加なし）。
　熱安定性に関し、上記４－１．と同様に曲げ試験を行い成形体の強度評価を行った。その結果を以下の表１７に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000017
　表１７に示されるとおり、安定化剤を添加せずに作製したモールド成形体に比べて、６，６’－ジ－ｔｅｒｔ－ブチル－４，４’－ブチリデンジ－ｍ－クレゾールを添加して作製した安定化剤含有モールド成形体の方が、より高い熱安定性を示した。
５．タンパク質組成物２（繊維）の製造
＜ドープ溶液の調製＞
　溶媒として、ＬｉＣｌを濃度４質量％で溶解させたジメチルスルホキシド（ＬｉＣｌ／ＤＭＳＯ）を調製した。上記精製工程で得られた人工クモ糸タンパク質粉末（ＰＲＴ４１０）の乾燥粉末を３．５ｇ秤量し、バイアル瓶に導入した。濃度２４質量％となるようにＬｉＣｌ／ＤＭＳＯ溶媒を添加し、メカニカルスターラーを使用して撹拌させながら、９０℃に加熱して溶解させ、６０℃まで放冷してタンパク質溶液を調製した。
　２－プロパノールを別のバイアル瓶に導入し、安定化剤としてプロピル　３，４，５－トリヒドロキシベンゾエートを添加して溶解させ、安定化剤溶液を調製した。調製した安定化剤溶液を、上記タンパク質溶液に添加した。メカニカルスターラーを使用して混合溶液を撹拌させながら、９０℃に加熱して溶解させ、安定化剤含有ドープ溶液を調製した。安定化剤含有ドープ溶液の安定化剤含有率は、それぞれ０．２質量％、０．５質量％、１．０質量％、４．０質量％とした。
　比較のため、安定化剤を含まないドープ溶液を調製した。上記精製工程で得られた人工クモ糸タンパク質粉末（ＰＲＴ４１０）の乾燥粉末を３．５ｇ秤量し、バイアル瓶に導入した。濃度２４質量％となるように上記のＬｉＣｌ／ＤＭＳＯ溶媒を添加し、上記と同様にしてドープ溶液を調製した（安定化剤添加なし）。
＜紡糸＞
　得られた安定化剤含有ドープ溶液を、公知の紡糸装置を用いて、下記の条件で乾湿式紡糸を行い、形成された繊維を乾燥してから巻き取ることにより、タンパク質組成物２（繊維）を作製した。乾湿式紡糸の条件は以下のとおりである。
　凝固液：メタノール
　総延伸倍率：５倍
　乾燥温度：６０℃
＜熱安定性の評価＞
　熱安定性の評価は、以下のように行った。試料を収容するチャンバーに上記安定化剤含有タンパク質繊維を設置し、このチャンバーを装置にセットした。その後、乾燥空気を流速１００ｍＬ／ｍｉｎで流通し、１９０℃に保持して化学発光強度の経時変化をケミルミネッセンスアナライザー（東北電子産業株式会社製ＣＬＡ－ＩＤ２－ＨＳ）で検出した。安定化剤を添加していないタンパク質繊維の化学発光強度が最大値に達するまでの時間をＴ０、安定化剤含有タンパク質繊維の化学発光強度が最大値に達するまでの時間をＴ１として、次式よりＥｘｔｅｎｔｉｏｎ　ｏｆ　Ｔｉｍｅ　ａｔ　Ｉｍａｘを算出した。
（Ｔ１－Ｔ０）／Ｔ０×１００　［％］
　その結果を以下の表１８に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000018
　表１８に示すとおり、安定化剤含有率０．５質量％の安定化剤含有ドープ溶液を用いての作製した安定化剤含有タンパク質繊維において、最も高い熱安定性を示した。
　２…金型、４…上側ピン、６…下側ピン、８ａ…加熱加圧前のタンパク質組成物、８ｂ…加熱加圧後のタンパク質組成物、１０…加圧成形機。

Claims (37)

  1. 　タンパク質が安定化剤溶液中に分散した分散体の乾燥物を含有するタンパク質組成物であって、
    　前記安定化剤は、カテコール系安定化剤、６－ヒドロキシ－２，５，７，８－テトラメチルクロマン－２－カルボン酸、２，６－ジ－ｔｅｒｔ－ブチル－ｐ－クレゾール、２－ｔｅｒｔ－ブチル－４－メトキシフェノール、及び６，６’－ジ－ｔｅｒｔ－ブチル－４，４’－ブチリデンジ－ｍ－クレゾールからなる群より選ばれる少なくとも一種を含む、タンパク質組成物。
  2. 　前記カテコール系安定化剤は、２－（３，４－ジヒドロキシフェニル）－３，５，７－トリヒドロキシ－４Ｈ－クロメン－４－オン、（１Ｓ，３Ｒ，４Ｒ，５Ｒ）－３－｛［３－（３，４－ジヒドロキシフェニル）アクリロイル］オキシ｝－１，４，５－トリヒドロキシシクロヘキサン－１－カルボン酸、２－（３，４－ジヒドロキシフェニル）－５，７－ジヒドロキシ－３－｛［（２Ｓ，３Ｒ，４Ｓ，５Ｓ，６Ｒ）－３，４，５－トリヒドロキシ－６－（｛［（２Ｒ，３Ｒ，４Ｒ，５Ｒ，６Ｓ）－３，４，５－トリヒドロキシ－６－メチルオキサン－２－イル］オキシ｝メチル）オキサン－２－イル］オキシ｝－４Ｈ－クロメン－４－オン、プロピル　３，４，５－トリヒドロキシベンゾエート又は４，４’－（２，３－ジメチルブタン－１，４－ジイル）ジベンゼン－１，２－ジオールを含む、請求項１に記載のタンパク質組成物。
  3. 　粉末状である、請求項１又は２に記載のタンパク質組成物。
  4. 　モールド成形体である、請求項１又は２に記載のタンパク質組成物。
  5. 　タンパク質と安定化剤が溶解した溶液の乾燥物を含有するタンパク質組成物であって、
    　前記安定化剤は、Ｎ，Ｎ’－ヘキサン－１，６－ジイルビス［３－（３，５－ジ－ｔｅｒｔ－ブチル－４－ヒドロキシフェニルプロピオンアミド）、１，６－ヘキサンジオールビス［３－（３，５－ジ－ｔｅｒｔ－ブチル－４－ヒドロキシフェニル）プロピオナート］、６，６’－ジ－ｔｅｒｔ－ブチル－４，４’－ブチリデンジ－ｍ－クレゾール、２，６－ジ－ｔｅｒｔ－ブチル－ｐ－クレゾール、３，９－ビス（２，６－ジ－ｔｅｒｔ－ブチル－４－メチルフェノキシ）－２，４，８，１０－テトラオキサ－３，９－ジホスファスピロ［５．５］ウンデカン、ポリ［［６－［（１，１，３，３－テトラメチルブチル）アミノ］－１，３，５－トリアジン－２，４－ジイル］［（２，２，６，６－テトラメチル－４－ピペリジニル）イミノ］－１，６－ヘキサンジイル［（２，２，６，６－テトラメチル－４－ピペリジニル）イミノ］］］、α－トコフェロール、プロピル　３，４，５－トリヒドロキシベンゾエート及び４，４’，４’’－（１－メチルプロパニル－３－イリデン）トリス（６－ｔｅｒｔ－ブチル－ｍ－クレゾール）からなる群より選ばれる少なくとも一種を含む、タンパク質組成物。
  6. 　前記安定化剤が、３，９－ビス（２，６－ジ－ｔｅｒｔ－ブチル－４－メチルフェノキシ）－２，４，８，１０－テトラオキサ－３，９－ジホスファスピロ［５．５］ウンデカン、２，２’－メチレンビス（４，６－ジ－ｔｅｒｔ－ブチルフェニル）　２－エチルヘキシルホスファイト、及びチオビス［２－（１，１－ジメチルエチル）－５－メチル－４，１－フェニレン］－ビス［３－（ドデシルチオ）プロピオネート］からなる群から選ばれるいずれか一種と、ポリ［［６－［（１，１，３，３－テトラメチルブチル）アミノ］－１，３，５－トリアジン－２，４－ジイル］［（２，２，６，６－テトラメチル－４－ピペリジニル）イミノ］－１，６　ヘキサンジイル［（２，２，６，６－テトラメチル－４－ピペリジニル）イミノ］］］と、を含む、請求項５に記載のタンパク質組成物。
  7. 　前記安定化剤が、６，６’－ジ－ｔｅｒｔ－ブチル－４，４’－ブチリデンジ－ｍ－クレゾールと、チオビス［２－（１，１－ジメチルエチル）－５－メチル－４，１－フェニレン］－ビス［３－（ドデシルチオ）プロピオネート］と、を含む、請求項５又は６に記載のタンパク質組成物。
  8. 　前記安定化剤が、Ｎ，Ｎ’－ヘキサン－１，６－ジイルビス［３－（３，５－ジ－ｔｅｒｔ－ブチル－４－ヒドロキシフェニルプロピオンアミド）と、２，２’－メチレンビス（４，６－ジ－ｔｅｒｔ－ブチルフェニル）　２－エチルヘキシルホスファイトと、を含む、請求項５～７のいずれか一項に記載のタンパク質組成物。
  9. 　非粉末状である、請求項５～８のいずれか一項に記載のタンパク質組成物。
  10. 　前記タンパク質１００質量部に対して、前記安定化剤が０質量部超１０質量部以下である、請求項１～９のいずれか一項に記載のタンパク質組成物。
  11. 　前記タンパク質が構造タンパク質である、請求項１～１０のいずれか一項に記載のタンパク質組成物。
  12. 　前記タンパク質がコラーゲン、エラスチン、レシリン、絹フィブロイン及びクモ糸フィブロインからなる群より選ばれる少なくとも一種である、請求項１～１１のいずれか一項に記載のタンパク質組成物。
  13. 　前記タンパク質がクモ糸フィブロインである、請求項１～１２のいずれか一項に記載のタンパク質組成物。
  14. 　安定化剤溶液中にタンパク質を分散させて分散体を得る工程と、該分散体から揮発分を除去して乾燥物を得る工程と、を備えるタンパク質組成物の製造方法であって、
    　前記安定化剤は、カテコール系安定化剤、６－ヒドロキシ－２，５，７，８－テトラメチルクロマン－２－カルボン酸、２，６－ジ－ｔｅｒｔ－ブチル－ｐ－クレゾール、２－ｔｅｒｔ－ブチル－４－メトキシフェノール、及び６，６’－ジ－ｔｅｒｔ－ブチル－４，４’－ブチリデンジ－ｍ－クレゾールからなる群より選ばれる少なくとも一種を含む、製造方法。
  15. 　前記カテコール系安定化剤は、２－（３，４－ジヒドロキシフェニル）－３，５，７－トリヒドロキシ－４Ｈ－クロメン－４－オン、（１Ｓ，３Ｒ，４Ｒ，５Ｒ）－３－｛［３－（３，４－ジヒドロキシフェニル）アクリロイル］オキシ｝－１，４，５－トリヒドロキシシクロヘキサン－１－カルボン酸、２－（３，４－ジヒドロキシフェニル）－５，７－ジヒドロキシ－３－｛［（２Ｓ，３Ｒ，４Ｓ，５Ｓ，６Ｒ）－３，４，５－トリヒドロキシ－６－（｛［（２Ｒ，３Ｒ，４Ｒ，５Ｒ，６Ｓ）－３，４，５－トリヒドロキシ－６－メチルオキサン－２－イル］オキシ｝メチル）オキサン－２－イル］オキシ｝－４Ｈ－クロメン－４－オン、プロピル　３，４，５－トリヒドロキシベンゾエート、又は４，４’－（２，３－ジメチルブタン－１，４－ジイル）ジベンゼン－１，２－ジオールを含む、請求項１４に記載の製造方法。
  16. 　前記タンパク質組成物は、粉末状である、請求項１４又は１５に記載の製造方法。
  17. 　タンパク質、該タンパク質の溶解溶媒、及び安定化剤溶液を混合して混合溶液を得る工程と、該混合溶液から揮発分を除去して乾燥物を得る工程と、を備えるタンパク質組成物の製造方法であって、
    　前記安定化剤は、Ｎ，Ｎ’－ヘキサン－１，６－ジイルビス［３－（３，５－ジ－ｔｅｒｔ－ブチル－４－ヒドロキシフェニルプロピオンアミド）、１，６－ヘキサンジオールビス［３－（３，５－ジ－ｔｅｒｔ－ブチル－４－ヒドロキシフェニル）プロピオナート］、６，６’－ジ－ｔｅｒｔ－ブチル－４，４’－ブチリデンジ－ｍ－クレゾール、２，６－ジ－ｔｅｒｔ－ブチル－ｐ－クレゾール、３，９－ビス（２，６－ジ－ｔｅｒｔ－ブチル－４－メチルフェノキシ）－２，４，８，１０－テトラオキサ－３，９－ジホスファスピロ［５．５］ウンデカン、ポリ［［６－［（１，１，３，３－テトラメチルブチル）アミノ］－１，３，５－トリアジン－２，４－ジイル］［（２，２，６，６－テトラメチル－４－ピペリジニル）イミノ］－１，６－ヘキサンジイル［（２，２，６，６－テトラメチル－４－ピペリジニル）イミノ］］］、α－トコフェロール、プロピル　３，４，５－トリヒドロキシベンゾエート及び４，４’，４’’－（１－メチルプロパニル－３－イリデン）トリス（６－ｔｅｒｔ－ブチル－ｍ－クレゾール）からなる群より選ばれる少なくとも一種を含む、製造方法。
  18. 　前記安定化剤が、３，９－ビス（２，６－ジ－ｔｅｒｔ－ブチル－４－メチルフェノキシ）－２，４，８，１０－テトラオキサ－３，９－ジホスファスピロ［５．５］ウンデカン、２，２’－メチレンビス（４，６－ジ－ｔｅｒｔ－ブチルフェニル）　２－エチルヘキシルホスファイト、及びチオビス［２－（１，１－ジメチルエチル）－５－メチル－４，１－フェニレン］－ビス［３－（ドデシルチオ）プロピオネート］からなる群から選ばれるいずれか一種と、ポリ［［６－［（１，１，３，３－テトラメチルブチル）アミノ］－１，３，５－トリアジン－２，４－ジイル］［（２，２，６，６－テトラメチル－４－ピペリジニル）イミノ］－１，６－ヘキサンジイル［（２，２，６，６－テトラメチル－４－ピペリジニル）イミノ］］］と、を含む、請求項１７に記載の製造方法。
  19. 　前記安定化剤が、６，６’－ジ－ｔｅｒｔ－ブチル－４，４’－ブチリデンジ－ｍ－クレゾールと、チオビス［２－（１，１－ジメチルエチル）－５－メチル－４，１－フェニレン］－ビス［３－（ドデシルチオ）プロピオネート］と、を含む、請求項１７又は１８に記載の製造方法。
  20. 　前記安定化剤が、Ｎ，Ｎ’－ヘキサン－１，６－ジイルビス［３－（３，５－ジ－ｔｅｒｔ－ブチル－４－ヒドロキシフェニルプロピオンアミド）と、２，２’－メチレンビス（４，６－ジ－ｔｅｒｔ－ブチルフェニル）　２－エチルヘキシルホスファイトと、を含む、請求項１７～１９のいずれか一項に記載の製造方法。
  21. 　前記タンパク質組成物は、非粉末状である、請求項１７～２０のいずれか一項に記載の製造方法。
  22. 　前記タンパク質１００質量部に対して、前記安定化剤が０質量部超１０質量部以下である、請求項１７～２１のいずれか一項に記載の製造方法。
  23. 　前記タンパク質が構造タンパク質である、請求項１７～２２のいずれか一項に記載の製造方法。
  24. 　前記タンパク質がコラーゲン、エラスチン、レシリン、絹フィブロイン及びクモ糸フィブロインからなる群より選ばれる少なくとも一種である、請求項１７～２３のいずれか一項に記載の製造方法。
  25. 　前記タンパク質がクモ糸フィブロインである、請求項１７～２４のいずれか一項に記載の製造方法。
  26. 　タンパク質の熱安定性向上方法であって、
    　カテコール系安定化剤、６－ヒドロキシ－２，５，７，８－テトラメチルクロマン－２－カルボン酸、２，６－ジ－ｔｅｒｔ－ブチル－ｐ－クレゾール、及び２－ｔｅｒｔ－ブチル－４－メトキシフェノール、及び６，６’－ジ－ｔｅｒｔ－ブチル－４，４’－ブチリデンジ－ｍ－クレゾールからなる群より選ばれる少なくとも一種の化合物が溶解した溶液に、前記タンパク質を分散させて分散体を得、該分散体から揮発分を除去して、前記タンパク質と前記化合物が共存した乾燥物を得る、熱安定性向上方法。
  27. 　前記カテコール系安定化剤は、２－（３，４－ジヒドロキシフェニル）－３，５，７－トリヒドロキシ－４Ｈ－クロメン－４－オン、（１Ｓ，３Ｒ，４Ｒ，５Ｒ）－３－｛［３－（３，４－ジヒドロキシフェニル）アクリロイル］オキシ｝－１，４，５－トリヒドロキシシクロヘキサン－１－カルボン酸、２－（３，４－ジヒドロキシフェニル）－５，７－ジヒドロキシ－３－｛［（２Ｓ，３Ｒ，４Ｓ，５Ｓ，６Ｒ）－３，４，５－トリヒドロキシ－６－（｛［（２Ｒ，３Ｒ，４Ｒ，５Ｒ，６Ｓ）－３，４，５－トリヒドロキシ－６－メチルオキサン－２－イル］オキシ｝メチル）オキサン－２－イル］オキシ｝－４Ｈ－クロメン－４－オン、プロピル　３，４，５－トリヒドロキシベンゾエート、又は４，４’－（２，３－ジメチルブタン－１，４－ジイル）ジベンゼン－１，２－ジオールを含む、請求項２６に記載の熱安定性向上方法。
  28. 　前記乾燥物は粉末状である、請求項２６又は２７に記載の熱安定性向上方法。
  29. 　タンパク質の熱安定性向上方法であって、
    　前記タンパク質と、
    　前記タンパク質の溶解溶媒と、
    　Ｎ，Ｎ’－ヘキサン－１，６－ジイルビス［３－（３，５－ジ－ｔｅｒｔ－ブチル－４－ヒドロキシフェニルプロピオンアミド）、１，６－ヘキサンジオールビス［３－（３，５－ジ－ｔｅｒｔ－ブチル－４－ヒドロキシフェニル）プロピオナート］、６，６’－ジ－ｔｅｒｔ－ブチル－４，４’－ブチリデンジ－ｍ－クレゾール、２，６－ジ－ｔｅｒｔ－ブチル－ｐ－クレゾール、３，９－ビス（２，６－ジ－ｔｅｒｔ－ブチル－４－メチルフェノキシ）－２，４，８，１０－テトラオキサ－３，９－ジホスファスピロ［５．５］ウンデカン、ポリ［［６－［（１，１，３，３－テトラメチルブチル）アミノ］－１，３，５－トリアジン－２，４－ジイル］［（２，２，６，６－テトラメチル－４－ピペリジニル）イミノ］－１，６－ヘキサンジイル［（２，２，６，６－テトラメチル－４－ピペリジニル）イミノ］］］、α－トコフェロール、プロピル　３，４，５－トリヒドロキシベンゾエート及び４，４’，４’’－（１－メチルプロパニル－３－イリデン）トリス（６－ｔｅｒｔ－ブチル－ｍ－クレゾール）からなる群より選ばれる少なくとも一種の化合物の溶液と、を混合して混合溶液を得、
    　該混合溶液から揮発分を除去して、
    　前記タンパク質と前記化合物が共存した乾燥物を得る、熱安定性向上方法。
  30. 　前記化合物が、３，９－ビス（２，６－ジ－ｔｅｒｔ－ブチル－４－メチルフェノキシ）－２，４，８，１０－テトラオキサ－３，９－ジホスファスピロ［５．５］ウンデカン、２，２’－メチレンビス（４，６－ジ－ｔｅｒｔ－ブチルフェニル）　２－エチルヘキシルホスファイト、及びチオビス［２－（１，１－ジメチルエチル）－５－メチル－４，１－フェニレン］－ビス［３－（ドデシルチオ）プロピオネート］からなる群から選ばれるいずれか一種と、ポリ［［６－［（１，１，３，３－テトラメチルブチル）アミノ］－１，３，５－トリアジン－２，４－ジイル］［（２，２，６，６－テトラメチル－４－ピペリジニル）イミノ］－１，６－ヘキサンジイル［（２，２，６，６－テトラメチル－４－ピペリジニル）イミノ］］］と、を含む、請求項２９に記載の熱安定性向上方法。
  31. 　前記化合物が、６，６’－ジ－ｔｅｒｔ－ブチル－４，４’－ブチリデンジ－ｍ－クレゾールと、チオビス［２－（１，１－ジメチルエチル）－５－メチル－４，１－フェニレン］－ビス［３－（ドデシルチオ）プロピオネート］と、を含むものである、請求項２９又は３０に記載の熱安定性向上方法。
  32. 　前記化合物が、Ｎ，Ｎ’－ヘキサン－１，６－ジイルビス［３－（３，５－ジ－ｔｅｒｔ－ブチル－４－ヒドロキシフェニルプロピオンアミド）と、２，２’－メチレンビス（４，６－ジ－ｔｅｒｔ－ブチルフェニル）　２－エチルヘキシルホスファイトと、を含む、請求項２９～３１のいずれか一項に記載の熱安定性向上方法。
  33. 　前記乾燥物は非粉末状である、請求項２９～３２のいずれか一項に記載の熱安定性向上方法。
  34. 　前記タンパク質１００質量部に対して、前記化合物が０質量部超１０質量部以下である、請求項２９～３３のいずれか一項に記載の熱安定性向上方法。
  35. 　前記タンパク質が構造タンパク質である、請求項２９～３４のいずれか一項に記載の熱安定性向上方法。
  36. 　前記タンパク質がコラーゲン、エラスチン、レシリン、絹フィブロイン及びクモ糸フィブロインからなる群より選ばれる少なくとも一種である、請求項２９～３５のいずれか一項に記載の熱安定性向上方法。
  37. 　前記タンパク質がクモ糸フィブロインである、請求項２９～３６のいずれか一項に記載の熱安定性向上方法。
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