WO2018143102A1 - 細胞培養装置、撮像ユニット及び培養監視方法 - Google Patents
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Definitions
- the disclosed technology relates to a cell culture device, an imaging unit, and a culture monitoring method.
- Japanese Patent Application Laid-Open No. 2016-154450 describes a state analysis system that images a specific area in a suspension culture solution in which a plurality of cell aggregates having different particle diameters exist and analyzes the captured specific area. Yes.
- the state analysis system estimates the basal mixing ratio of each basal information in the distribution feature quantity of the cell mass by image analysis, and based on the estimated mixing ratio, the particle size distribution of the cell mass in the entire suspension culture container, and the cell mass The total number of particles is calculated.
- Japanese Patent Application Laid-Open No. 2010-99011 discloses imaging means for photographing a second culture container into which a cell suspension containing cells collected from the first culture container is injected, and the second culture container is shaken.
- a cell equipped with stirring means for stirring the cell suspension and control means for controlling the stirring means so that the second culture container is shaken by the stirring action determined based on the image taken by the imaging means.
- a culture device is described.
- Japanese Patent Application Laid-Open No. 2006-320226 discloses a cell culture container characterized in that cell seeding work is performed by controlling and swinging the cell culture container using a driving device. To obtain the seeded state of the cells.
- the cells it is necessary for the cells to periodically replace the spent culture medium in which nutrients are consumed with a fresh culture medium during the culture period.
- this culture medium exchange it is necessary to replace the used culture medium with a fresh culture medium while leaving the cell mass in the system. At this time, discharging the dead cells together with the spent culture medium is important for the subsequent normal cell growth.
- a concentration process for increasing the cell concentration in the culture liquid is performed by separating the used culture liquid and cells using a filter. In order to ascertain whether or not the concentration process has been performed appropriately, it is only necessary to determine the particle size distribution of the cell mass after the concentration process. Thereafter, a dilution and mixing process is performed in which a fresh nutrient broth rich in nutrients is added and mixed. In the dilution and mixing treatment, the target is to uniformly mix the concentrated culture solution containing cells and the fresh culture solution at a predetermined ratio.
- subculture, concentration, and dilution treatment are important steps that determine the success or failure of cell culture, but before that, the culture itself has progressed smoothly in the culture vessel. is important.
- the smoothness of the culture can be determined by capturing changes over time in the number of cells in the culture vessel and the particle size distribution of the cell mass.
- the particle size distribution of cells or cell masses during culture it is very useful to know the particle size distribution of cells or cell masses during culture. That is, by capturing changes over time in the particle size distribution of the cell mass during culture, it is possible to grasp the culture state at a glance. Moreover, the state of the division process (passage process) can be grasped by comparing the particle size distribution of the cell mass before and after the division process (passage process). Moreover, the situation of the concentration process and the dilution and mixing process can be grasped by grasping the particle size distribution of the cell mass after the concentration process and after the dilution and mixing process.
- the existing method for acquiring the particle size distribution of the cell mass is to collect the cell mass together with the culture solution, visually observe the cell mass using a microscope, and count the number of cell masses for each particle size.
- this method includes the following problems.
- the first problem is that the collection of cell mass increases the risk of causing biological contamination of the culture device.
- the second problem is that enormous labor and time are required for counting cell clusters.
- the field of view of the microscope contains a large number of cell masses, and it is not easy to manually measure the particle size by focusing on each of them. It is difficult. Therefore, the amount of the culture solution containing the cell mass must be small.
- the third problem is that the measurement by collecting a small amount of culture solution may not be a correct representative of the whole, and the measurement result always contains uncertainty.
- the fourth problem is that the cell mass collected for measurement cannot be continuously cultured, and consumes cells for each measurement.
- illumination light is irradiated from a side surface to a specific area, and imaging is performed with an imaging device from a direction of 90 degrees with respect to the traveling direction of the illumination light. Since the illumination light is not applied to areas other than the area, noise caused by cells deeper than the specific area (that is, far away) can be prevented, but the cells suspended between the specific area and the imaging device become shadows, so the cell suspension The higher the cell concentration in the cell, the higher the effect on measurement accuracy.
- the specific area captured by the imaging device is the culture container (generally, the refractive index of water is 1.3, and the refractive index of resin or glass varies depending on the physical properties but is greater than 1) and air. Since the interface with (refractive index is 1) is a curved surface, the captured image is distorted due to the surface shape of the container. Therefore, in order to obtain an accurate cell size, it is necessary to narrow the field of view of the imaging device in order to reduce the influence of image distortion.
- the disclosed technique has been made in view of the above points, and aims to perform measurement of cultured cells that do not require a collecting action and that target most of the cell suspension.
- the cell culture device is provided in a channel through which a cell suspension containing at least one of a cell and a cell mass as a granular material flows, and in the middle of the channel.
- An imaging unit that continuously captures a plurality of granular bodies contained in the cell suspension and acquires a plurality of images while flowing through the path.
- the cell culture device may further include a derivation unit that derives statistical data for a plurality of granular materials based on the plurality of images.
- the statistical data includes the number of a plurality of granular materials per predetermined particle size range, the number of predetermined particle size ranges per unit volume, the number of predetermined roundness ranges, and the total number of cells constituting the granular material. At least one may be included.
- the imaging unit may include a flow cell through which the cell suspension passes and an imaging unit including a plurality of imaging elements in which an imaging field of view is set in the flow cell.
- the flow cell is provided between the inlet through which the cell suspension flows, an outlet through which the cell suspension flowing from the inlet flows out, and the inlet and the outlet.
- a flat channel formed of a member that is lighter and thinner than the inflow port and the outflow port in the optical axis direction.
- the thickness of the flat channel along the optical axis direction in the imaging unit is thinner than the length in the width direction intersecting the flow direction of the cell suspension flowing inside the flow cell and has light transmittance. You may be comprised with the member.
- the imaging field of view of the imaging unit may be set in the flat flow path.
- the thickness of the flat channel in the optical axis direction in the flow cell is preferably uniform.
- the plurality of imaging elements include the entire area in the width direction intersecting the flow direction of the cell suspension in the flat flow path in the imaging visual field.
- the imaging unit may include an area sensor having the plurality of imaging elements and a first telecentric lens provided on the light incident side of the area sensor.
- the imaging unit may further include an illumination unit that irradiates illumination light to the flat flow path.
- the illuminating unit may include a light source that emits the illumination light, and a second telecentric lens that is provided on the light emission side of the light source. It is preferable that the optical axis of the first telecentric lens coincides with the optical axis of the second telecentric lens.
- the imaging unit images each of the plurality of granular materials passing through the flow cell at least once.
- the maximum velocity of the cell suspension flowing through the flat flow path is equal to the maximum velocity of the cell suspension flowing through the inlet and the outlet.
- the cell culture device includes at least one container connected to the flow path and containing the cell suspension; at least one processing unit connected to the flow path and processing the cell suspension; And a pump for generating a liquid flow of the cell suspension in the channel.
- the cell culture device may include a dividing unit that divides a cell mass included in the cell suspension as the processing unit.
- the imaging unit may be provided on the upstream side and the downstream side of the dividing unit.
- the cell culture device may include a concentration unit that concentrates the cell suspension as the processing unit.
- the imaging unit may be provided on the upstream side and the downstream side of the concentration unit.
- the cell culture device may include a mixing unit for mixing the cell suspension as the processing unit.
- the imaging unit may be provided on the downstream side of the mixing unit.
- the pump and the imaging unit may operate in conjunction with each other.
- An imaging unit includes an imaging unit having a plurality of imaging elements, an inlet through which a cell suspension containing at least one of a cell and a cell mass as a granular body flows, and the inlet from the inlet And an outflow port through which the cell suspension flows out, and a flow cell having a flat channel provided between the inflow port and the outflow port.
- the thickness of the flat channel along the optical axis direction in the imaging unit is thinner than the thickness of the inflow port and the outflow port in the optical axis direction.
- the imaging field of view of the imaging unit is set to the flat flow path.
- An imaging unit includes an imaging unit having a plurality of imaging elements, an inlet into which a cell suspension containing at least one of a cell and a cell mass as a granular body flows, and the inlet from the inlet And an outflow port through which the cell suspension flows out, and a flow cell having a flat channel provided between the inflow port and the outflow port.
- the flat channel has a thickness in the optical axis direction of the imaging unit in a width direction intersecting a flow direction of the cell suspension flowing inside the flow cell. The imaging field of view of the imaging unit is set to the flat flow path.
- the culture monitoring method includes a plurality of cells contained in the cell suspension that passes through the channel while the cell suspension including at least one of cells and cell clusters as a granular material is flowing in the channel.
- the granular body is continuously imaged to obtain a plurality of images, and based on the plurality of images, statistical data is obtained for the plurality of granular bodies to monitor the state of cell culture.
- the statistical data includes the number of a plurality of granular bodies per predetermined particle size range, the number per predetermined particle diameter range per unit volume, the number per predetermined roundness range, and the granular body. It may comprise at least one of the total number of constituent cells.
- the number of a plurality of granular bodies for each predetermined particle size range before and after the division process for dividing the cell mass contained in the cell suspension may be acquired as the statistical data.
- the dividing process may include a process of passing the cell suspension through a mesh at a predetermined flow rate. In this case, the flow rate may be determined based on the statistical data.
- the number of a plurality of granular bodies for each predetermined particle size range after the concentration treatment for concentrating the cell suspension may be acquired as the statistical data.
- the concentration process may include a process of separating the cell suspension a plurality of times using a filter membrane. In this case, the completion of the concentration process is determined based on the statistical data. May be. Further, clogging of the filter film may be detected based on the statistical data.
- a change with time in the density of a plurality of granular bodies after the mixing process of mixing the cell suspension may be acquired as the statistical data.
- the mixing process may include a process in which the cell suspension is passed through a mixer a plurality of times to mix a plurality of granules and a medium. In this case, based on the statistical data, Completion of the mixing process may be determined.
- the number of a plurality of granular bodies for each predetermined particle size range may be acquired as the statistical data at a predetermined timing within the culture period.
- FIG. 2 is a cross-sectional view of the flow cell taken along line 2A-2A in FIG.
- FIG. 2 is a cross-sectional view of the flow cell taken along line 2B-2B in FIG.
- 10 is a flowchart illustrating a flow of processing performed by a CPU of an image analysis apparatus according to an embodiment of the disclosed technology by executing an image analysis program. It is a figure which shows an example of the output form of the particle size distribution as statistical data derived
- FIG. 14 is a flowchart illustrating an example of determination of completion of concentration processing performed in a control unit according to an embodiment of the disclosed technology.
- 10 is a flowchart illustrating an example of determination of completion of mixing processing performed in a control unit according to an embodiment of the disclosed technology. It is a graph which shows particle size distribution, such as a cell acquired using the imaging unit which concerns on embodiment of the technique of an indication, and particle size distribution, such as a cell acquired using the commercial system. It is a graph which shows the particle size distribution of the cell etc.
- Results obtained by continuously imaging the cell suspension flowing in the flow path on the downstream side of the mixing unit according to the embodiment of the disclosed technology by the imaging unit, and arranging the number of cells and the like included in each acquired image in the order of the images It is a graph which shows. It is a graph which shows the particle size distribution of the cell etc. which were acquired at the different timing in 1 cycle period of culture
- the graph which shows the result of having observed the change of the particle size distribution of a cell mass when installing the imaging unit concerning the embodiment of the art of an indication to the entrance and exit of a tube pump, and passing a cell suspension repeatedly through a tube pump It is.
- FIG. 1 is a perspective view illustrating a configuration of an imaging unit 10 according to an embodiment of the disclosed technology.
- the imaging unit 10 is provided in the middle of the flow path through which the cell suspension flows, and at least one of the cells and the cell mass (hereinafter referred to as the cell mass) contained in the cell suspension while the cell suspension is flowing through the flow path.
- a plurality of images are obtained by continuously capturing cells).
- the plurality of images acquired by the imaging unit 10 are used for deriving statistical data for a plurality of cells and the like.
- the above statistical data includes the number of cells, etc. contained in the cell suspension for each predetermined particle size range (particle size distribution), the number of each predetermined particle size range per unit volume (density distribution), and the predetermined roundness.
- the imaging unit 10 includes a flow cell 20, an imaging unit 30, and an illumination unit 40.
- the flow cell 20 forms a flow path through which a cell suspension containing cells and the like passes.
- the flow cell 20 is entirely composed of a light-transmitting member such as optical glass or plastic, and it is possible to take an image of a cell or the like passing through the inside of the flow cell 20 by an imaging unit 30 disposed outside the flow cell 20. is there.
- the flow cell 20 has an inflow port 21 into which the cell suspension flows and an outflow port 22 through which the cell suspension flowing in from the inflow port 21 flows out. That is, the cell suspension passing through the flow cell 20 flows along the flow direction D1 indicated by the arrow in FIG.
- the flow of the cell suspension passing through the inside of the flow cell 20 is a laminar flow.
- the shape of the inflow port 21 and the outflow port 22 is, for example, a cylindrical shape.
- the shape of the inflow port 21 and the outflow port 22 may be a rectangular tube shape such as a triangular tube or a square tube.
- the flow cell 20 has a flat flow path 23 provided between the inflow port 21 and the outflow port 22, and an imaging field of view Q ⁇ b> 1 in the imaging unit 30 is set in the flat flow path 23.
- the optical axis direction D2 in the imaging unit 30 is set in a direction orthogonal to the cell suspension flow direction D1. In FIG. 1, the optical axis AX of the imaging unit 30 is indicated by a broken line.
- FIG. 2A is a cross-sectional view of the flow cell 20 along the line 2A-2A in FIG. 1
- FIG. 2B is a cross-sectional view of the flow cell 20 along the line 2B-2B in FIG. That is, FIG. 2A and FIG. 2B each show a cross section parallel to the flow direction D1 of the cell suspension passing through the inside of the flow cell 20.
- the thickness L1 of the flat flow path 23 along the optical axis direction D2 is larger than the thickness L2 of the inflow port 21 and the outflow port 22 in the same direction. Thin and uniform.
- that the thickness L1 of the flat flow path 23 in the optical axis direction is uniform means that the thickness L1 is uniform within a range in which an error is allowed.
- the length L3 of the flat channel 23 in the width direction D3 orthogonal to the flow direction D1 is longer than the length L2 of the inflow port 21 and the outflow port 22 in the same direction. .
- the flat flow path 23 has a configuration in which two flat plates having a substantially constant plate thickness made of a light-transmitting member are arranged so that their main surfaces are parallel to each other, and the optical axis
- the thickness L1 in the direction has a flat shape that is significantly thinner than the length L3 in the width direction D3.
- the thickness L1 of the flat flow path 23 When the thickness L1 of the flat flow path 23 is thinner, the overlapping of cells and the like passing through the inside of the flow cell 20 is less likely to occur, and the entire area in the optical axis direction D2 falls within the range of the focal depth of the imaging unit 30. It becomes easy. On the other hand, if the thickness L1 of the flat flow path 23 is too thin, it becomes necessary to increase the length L3 of the flat flow path 23 in the width direction D3, and the imaging field Q1 in the imaging unit 30 needs to be enlarged accordingly. Sex occurs.
- the thickness L1 of the flat channel 23 along the optical axis direction D2 is preferably about 1.5 mm to 2.5 mm, for example, and typically about 2 mm.
- the maximum value of the flow rate of the cell suspension passing through the flat flow path 23 and the flow rate of the cell suspension passing through the inlet 21 and outlet 22 is preferable that the maximum value of is substantially equal.
- the maximum value of the flow rate is substantially equivalent means that the maximum value of the flow rate of the cell suspension passing through the flat channel 23 and the maximum value of the flow rate of the cell suspension passing through the inflow port 21 and the outflow port 22. This means that the difference is within 10%, for example.
- making the flow passage areas in the inflow port 21, the outflow port 22, and the flat flow channel 23 equal to each other is effective as a technique for making the flow rate of the cell suspension passing through the flow cell 20 uniform.
- the flow path area in the inflow port 21, the outflow port 22, and the flat flow path 23 is 8 mm ⁇ 2 > or more.
- the flow path area is too small, damage to the cells becomes excessive.
- the flow path area is 8 mm 2 or more, damage to the cells during the passage of the flow cell 20 can be reduced.
- the imaging unit 30 is configured to include a plurality of imaging elements in which the imaging visual field Q1 is set in the flat flow path 23 of the flow cell 20.
- the imaging unit 30 includes the entire area in the width direction D3 perpendicular to the flow direction D1 of the cell suspension passing through the inside of the flat flow path 23 in the imaging field Q1.
- the imaging unit 30 continuously captures cells and the like passing through the imaging visual field Q1, and generates a plurality of images.
- the illumination unit 40 is provided on the opposite side of the imaging unit 30 with the flow cell 20 interposed therebetween, and irradiates illumination light to an area corresponding to the imaging visual field Q1 of the flat channel 23.
- FIG. 3 is a perspective view illustrating an example of a configuration for fixing the relative positions of the flow cell 20, the imaging unit 30, and the illumination unit 40.
- the imaging unit 30 and the illumination unit 40 are accommodated in the housing 50.
- the shape of the housing 50 is a substantially rectangular parallelepiped, but a recess 51 that is recessed toward the center of the housing 50 is formed in a part thereof.
- the flow cell 20 at least a part of the flat flow path 23 is disposed in a space formed by the recess 51 of the housing 50.
- the flow cell 20 is held by a clamper 52 fixed to the upper surface of the housing 50, so that the relative positions of the flow cell 20, the imaging unit 30, and the illumination unit 40 are fixed.
- Window portions W1 and W2 are provided on the mutually facing wall surfaces A1 and A2 that define the recess 51 of the housing 50, respectively. Illumination light emitted from the illumination unit 40 passes through the window W2, the flow cell 20, and the window W1 and enters the imaging unit 30.
- Four legs 53 are provided on the bottom surface of the housing 50. The leg portions 53 can be expanded and contracted, and the height of the housing 50 is variable.
- FIG. 4 is a diagram illustrating a configuration of the imaging unit 30, the illumination unit 40, and other optical systems housed in the housing 50.
- the imaging unit 30 includes an area sensor 31 in which a plurality of imaging elements are arranged in a matrix, and a telecentric lens 32 provided on the light incident side of the area sensor 31. That is, the telecentric lens 32 is provided between the flow cell 20 and the area sensor 31 on a path along the traveling direction of the illumination light emitted from the illumination unit 40.
- the area sensor 31 may have, for example, a CCD (Charge-Coupled Device) camera or a CMOS (Complementary Metal-oxide Semiconductor) camera. It is preferable that the area sensor 31 has a frame rate at which each cell or the like passing through the inside of the flow cell 20 can be imaged one or more times while the cell suspension is flowing inside the flow cell 20. .
- each cell or the like may be included in a plurality of images acquired by continuous imaging by the imaging unit 30.
- each cell or the like may be imaged twice or more by the imaging unit 30 while passing through the inside of the flow cell 20 once.
- the area sensor 31 preferably has a maximum frame rate of, for example, 100 fps or higher.
- the imaging resolution including the lens magnification is smaller than several tens of ⁇ m which is the size of a single cell.
- the size of the image sensor may be about 5 ⁇ m.
- the number of image sensors is determined according to the lens magnification and the size of the imaging field Q1.
- the number of imaging elements is determined so that the entire area in the width direction D3 perpendicular to the flow direction D1 of the cell suspension passing through the inside of the flat flow path 23 is included in the imaging visual field Q1.
- the imaging unit 30 includes an area sensor 31 having 2000 ⁇ 1000 imaging elements. In the present embodiment, the case where the imaging unit 30 includes the area sensor 31 is illustrated, but a line sensor may be used instead of the area sensor 31.
- the light coming from the flow cell 20 side is received by the area sensor 31 through the telecentric lens 32.
- the telecentric lens 32 is a lens whose chief ray is parallel to the optical axis.
- By using the telecentric lens 32 it is possible to capture a cell or the like passing through the flow cell 20 as a silhouette image. This is because the illumination light applied to the flow cell 20 from the illumination unit 40 is scattered by cells passing through the inside of the flow cell 20, and a portion corresponding to the cells is not imaged on the imaging surface of the area sensor 31. is there. In this way, by capturing cells and the like as silhouette images, it is possible to measure the particle size and number of cells and the like very accurately.
- the telecentric lens 32 has a feature that the size of the image hardly changes even when the imaging object moves in the optical axis direction. Due to this feature and the parallel plane created by the flow cell 20, it is possible to measure the particle size of the cells passing through the flow cell 20 very accurately.
- the telecentric lens 32 only needs to have telecentricity at least on the flow cell 20 side. That is, as the telecentric lens 32, an object-side telecentric lens can be suitably used. In addition, as the telecentric lens 32, it is also possible to use a both-side telecentric lens having telecentricity on both the flow cell 20 side and the area sensor 31 side.
- the magnification of the telecentric lens 32 may be 1 time, for example. Since the image acquired by the imaging unit 30 is mainly used for counting the number of cells and the like, the width of the imaging field of view is important. If the lens magnification is too high, the imaging field of view becomes small, the number of images to be acquired increases, and the burden of image processing increases, which is not preferable.
- the particle size of the cell mass that is the main imaging target in the imaging unit 30 is about several tens to several hundreds of ⁇ m. Therefore, when the size of the imaging element is about 5 ⁇ m, the imaging unit 30 sets the lens magnification even when the lens magnification is 1. It is possible to measure the particle size and number of cells and the like using the acquired image.
- the illumination unit 40 includes a light source 41 that emits illumination light for illuminating the imaging field Q1 in the imaging unit 30, and a telecentric lens 42 disposed between the light source 41 and the flow cell 20.
- a light source 41 any light-emitting component such as an LED (Light-Emitting-Diode) lamp, an incandescent light bulb, and a fluorescent lamp can be used.
- the illumination light emitted from the light source 41 is converted into parallel light by the telecentric lens 42.
- the optical axis AX2 of the telecentric lens 42 coincides with the optical axis AX1 of the telecentric lens 32 on the imaging unit 30 side.
- the optical axes of the telecentric lenses 32 and 42 coincide with each other means that they coincide within a range in which an error is allowed.
- parallel light parallel to the optical axis AX1 of the telecentric lens 32 on the imaging unit 30 side as illumination light, it is possible to sharpen the outline of cells or the like in the image acquired by the imaging unit 30, The particle diameter of cells and the like can be measured very accurately using the image acquired by the imaging unit 30.
- Illumination light emitted from the illumination unit 40 is bent by 90 ° in the traveling direction by the reflecting prism 61, irradiated to the flow cell 20 disposed in the recess 51 of the housing 50, and included in the cell suspension flowing in the flow cell 20.
- the flow cell 20 and the image of the cells and the like illuminated by the illumination light are further bent by 90 ° by the reflecting prism 62 and enter the imaging unit 30.
- the imaging unit 10 can be configured in a compact manner by bending the light traveling direction using the reflecting prisms 61 and 62.
- the portion of the illumination light from the illumination unit 40 that does not have cells in the flow cell 20 reaches the imaging unit 30 as it is, and the cells are A certain part is recorded as a shadow because the cells diffusely reflect the illumination light, and the illumination light of the part does not reach the imaging unit 30.
- the illumination light from the illumination unit 40 is preferably parallel light. The smaller the diffusing component contained in the illumination light, the darker the shadow obtained by the imaging unit 30, and the higher detection accuracy can be obtained.
- the imaging unit 10 is installed in a cell culture device.
- the cell culture device includes, for example, a culture vessel for culturing cells, various processing units that perform predetermined processing on a cell suspension, a flow path that connects the culture vessel and various processing units to each other, and a transmission line.
- a pump as liquid means may be included.
- the flow cell 20 of the imaging unit 10 is inserted in the middle of the flow path of the cell culture device.
- the imaging unit 10 is preferably installed in the middle of a flow path through which all cells cultured in the cell culture device pass. Thereby, all the cells etc. which are culture
- the cell suspension flowing in the flow path of the cell culture apparatus flows into the flow cell 20 from the inlet 21, passes through the flat flow path 23, and flows out of the flow cell 20 from the outlet 22.
- the imaging unit 30 has an imaging field of view Q1 set in one area of the flat channel 23, and continuously captures cells and the like moving through the flat channel 23 to generate a plurality of images.
- the entire area in the width direction D3 orthogonal to the flow direction D1 of the cell suspension passing through the inside of the flat flow path 23 is included in the imaging visual field Q1.
- the imaging unit 30 performs imaging at a frame rate at which individual cells passing through the flow cell 20 can be imaged one or more times. Therefore, all the cells in culture are imaged by the imaging unit 30 without omission.
- the illumination unit 40 irradiates the flow cell 20 with illumination light while the imaging unit 30 is imaging.
- FIG. 5 is an example of an image capturing a cell and a cell mass acquired by the imaging unit 10. As shown in FIG. 5, according to the imaging unit 10 according to the present embodiment, it is possible to capture a cell or the like passing through the flow cell 20 as a silhouette image.
- the imaging unit 10 may further include an image analysis device 70 that analyzes a plurality of images acquired by the imaging unit 30 and derives statistical data such as a particle size distribution for cells and the like.
- the image analysis device 70 is an example of a derivation unit in the disclosed technology.
- FIG. 6 is a block diagram illustrating an example of the configuration of the image analysis apparatus 70.
- the image analysis device 70 is configured by a computer including a CPU (Central Processing Unit) 72, a main storage device 73, an auxiliary storage device 74, an input device 75, an output device 76, and an interface device 77 connected to each other via a bus 71. Has been.
- a CPU Central Processing Unit
- the CPU 72 executes the image analysis program 78 to analyze a plurality of images acquired by the imaging unit 30 and derive statistical data such as a particle size distribution for cells and the like.
- the main storage device 73 has a storage area for temporarily storing the program and data being executed, and includes, for example, a RAM (Random Access Memory).
- the input device 75 includes a keyboard, a mouse, a tablet, and the like.
- the output device 76 includes a display, a printer, and the like.
- the auxiliary storage device 74 is a non-volatile storage device such as a hard disk device, for example, and image data 79 indicating a plurality of images acquired by the image analysis program 78 and the imaging unit 30 is stored in the auxiliary storage device 74. The plurality of images acquired by the imaging unit 30 are taken into the auxiliary storage device 74 via the interface device 77.
- FIG. 7 is a flowchart showing a flow of processing performed by the CPU 72 by executing the image analysis program 78.
- step S1 the CPU 72 performs a process of subtracting the average image for each of the plurality of images acquired by the imaging unit 30 and indicated by the image data 79 stored in the auxiliary storage device 74.
- the stains and scratches on the flow cell 20 are reflected in all images. It is desirable to subtract an image common to all images as a background.
- the background density distribution can be acquired from an average image obtained by averaging a plurality of acquired images. Note that an average image may be generated before the start of this routine.
- step S2 the CPU 72 performs binarization processing for each of the plurality of images that have undergone the processing in step S1. Thereby, a cell etc. and a background are separated. Further, individual cells or the like included in each image are converted into one object in image processing.
- step S3 the CPU 72 deletes the object in contact with the outer edge of the image (the outer edge of the imaging field Q1). That is, cells and the like that are in contact with the outer edge of the image (outer edge of the imaging visual field Q1) and are not entirely visible are excluded from the object of image analysis. This is because a cell or the like that is not entirely visible is measured with a particle size smaller than the actual size. In this way, even if the object that contacts the outer edge of the image (the outer edge of the imaging field of view Q1) is deleted, the effect of the deletion is reduced by imaging the individual cells and the like multiple times in the imaging unit 30. Is done.
- step S4 the CPU 72 performs a process of deleting an object smaller than a predetermined size.
- this treatment is performed to remove debris that is smaller than the cell particle size.
- cell clusters having a particle size of 50 ⁇ m or less cannot be expected to proliferate and often become dead cells. This process is performed to exclude.
- step S5 the CPU 72 performs processing for deleting an object larger than a predetermined size. It is possible that bubbles significantly larger than the particle size of the cell mass are mixed in the culture solution. Therefore, it is preferable to delete an object that is significantly larger than the size of a normal cell mass and remove it from the image analysis target.
- step S6 the CPU 72 performs particle analysis on each object. Specifically, the particle size and roundness are derived for each object.
- a circle equivalent diameter may be derived as the particle diameter.
- the equivalent circle diameter is the diameter of a circle when the region defined by the outline of the object is regarded as a circle having the same area.
- step S7 the CPU 72 derives, as statistical data, the results of particle analysis performed in step S6.
- the CPU 72 uses, for example, the number (particle size distribution) for each predetermined particle size range such as cells, the number (density distribution) for each predetermined particle size range per unit volume such as cells, and the predetermined roundness for cells and the like. The number of each range (roundness distribution) and the total number of cells are derived. The derived statistical data is output to the output device 76.
- FIG. 8A is a diagram illustrating an example of an output form of a particle size distribution as statistical data derived by the image analysis apparatus 70.
- the image analysis device 70 derives a value obtained by integrating the number of objects extracted from all images acquired by the imaging unit 30 for each particle size class as an integrated number Na.
- the integrated number Na is larger than the actual number of cells or the like (actual number). Therefore, the image analysis device 70 converts the integrated number Na into the actual number Nb as follows.
- the volume v in the imaging field Q1 in the imaging unit 30 is known.
- a product t ⁇ v of the total number t of images used for deriving the integrated number Na and the volume v in the imaging field Q1 is obtained as a total volume.
- the actual number Nb corresponding to the integrated number Na belonging to a class of a certain particle size is expressed by the following equation (1).
- the image analysis apparatus 70 outputs the representation of the integrated number Na and the actual number Nb obtained as described above as a two-dimensional array to the output device 76 as a particle size distribution.
- FIG. 8B is a diagram illustrating an example of an output form of roundness distribution as statistical data derived by the image analysis apparatus 70.
- the image analysis device 70 derives a value obtained by integrating the number of objects extracted from all the images acquired by the imaging unit 30 for each class of roundness as an integrated number Na.
- the image analysis device 70 converts the integrated number Na into the actual number Nb according to the above equation (1).
- the image analysis device 70 outputs the accumulated number Na and the actual number Nb obtained as described above as a two-dimensional array to the output device 76 as a roundness distribution.
- the image analysis device 70 derives the result of obtaining the number of objects per unit volume for each particle size class as a density distribution of cells and the like.
- the density distribution of cells and the like can be derived as follows. That is, since the inner dimension of the flow cell 20 is known, the volume v in the imaging field Q1 in the imaging unit 30 is known. A product t ⁇ v of the total number t of images used for deriving the particle size distribution and the volume v in the imaging field Q1 is obtained as a total volume. Assuming that the integrated number Na is integrated for each particle size class, the number (density) d per unit volume of cells belonging to a certain particle size class is expressed by the following equation (2).
- the image analysis device 70 derives the total number of single cells included in the total amount (total volume) of the cell suspension that has passed through the flow cell 20 as follows. From the above equation (2), the number (density distribution) for each predetermined particle size range of cells and the like per unit volume of the cell suspension can be obtained. Moreover, since the average particle diameter of a single cell is known, the volume of a single cell when a single cell is regarded as a sphere can be obtained. Similarly, since the particle size of the cell mass has been measured, the volume of each cell mass when the cell mass is regarded as a sphere can be obtained based on the particle size. By dividing the volume of each cell mass by the volume of a single cell, the number of single cells constituting each cell mass can be determined.
- the number Nc of single cells per unit volume of the cell suspension can be obtained.
- the product of the total amount (total volume) M of the cell suspension that has passed through the flow cell 20 and the number Nc of single cells per unit volume of the cell suspension It can be determined as the total number Nx of single cells contained in the total amount (total volume) of the cell suspension that has passed through the flow cell 20.
- the imaging unit 10 acquires a plurality of images that capture cells and the like passing through the flow cell 20.
- the imaging unit 10 performs image analysis on each of the plurality of images to derive the particle size and the roundness for each of the cells and the like, and the particle size distribution, the density distribution, the roundness distribution, and the total number of cells. Is derived as statistical data of cells and the like.
- the act of collecting cells and the like is not necessary. This avoids the risk of biological contamination and does not consume cells.
- measurement of cells and the like can be performed automatically, labor and time can be greatly reduced as compared with a conventional manual method.
- the imaging unit 10 in the middle of a flow path through which all cells cultured in the cell culture device pass, all cells cultured in the cell culture device can be measured. Therefore, the measurement accuracy can be improved as compared with the conventional measurement method in which only a part of the collected cells are measured.
- the flow cell 20 has a flat shape in which the thickness L1 along the optical axis direction D2 is significantly smaller than the length L3 in the width direction D3. This makes it difficult for cells or the like passing through the inside of the flow cell 20 to overlap, and the entire area in the optical axis direction D2 easily falls within the range of the focal depth of the imaging unit 30. Therefore, the influence of the depth direction can be reduced in the imaging in the imaging unit 30. Further, by making the flow cell 20 flat, more cells and the like can be included in the imaging field Q1 in the imaging unit 30, and imaging and subsequent image analysis can be performed efficiently. In addition, since the flow cell 20 has a configuration in which two flat plates having a substantially constant thickness are arranged so that their main surfaces are parallel to each other, image distortion due to the surface shape of the flow cell 20 is Does not occur.
- the imaging unit 30 performs continuous imaging while introducing the cell suspension into the flow cell 20, so that all of the cell suspension contained in the cell suspension can be obtained regardless of the amount of the cell suspension. It is possible to image cells and the like.
- the imaging unit 30 since the imaging unit 30 includes the telecentric lens 32, it is possible to capture a cell or the like passing through the flow cell 20 as a silhouette image. Thus, by capturing cells and the like as silhouette images, it is possible to accurately measure the particle size and number of cells and the like. Further, the telecentric lens 32 has a feature that the size of the image hardly changes even when the imaging object moves in the optical axis direction, so that the particle size of the cells passing through the flow cell 20 can be measured very accurately. It becomes possible to do.
- the imaging unit 10 includes an illumination unit 40 that includes a light source 41 and a telecentric lens 42.
- the illumination unit 40 emits parallel light substantially parallel to the optical axis of the telecentric lens 32 on the imaging unit 30 side as illumination light.
- the outline of a cell etc. can be sharpened and the particle size of a cell etc. can be measured correctly.
- FIG. 9 is a diagram illustrating an example of a configuration of the cell culture device 100 according to an embodiment of the technology of the present disclosure, including a plurality of imaging units 10.
- imaging units 10A, 10B, and 10C are denoted as imaging units 10A, 10B, and 10C, respectively.
- the cell culture device 100 includes a culture container 110 and a storage container 120 in which a cell suspension is accommodated.
- the cell culture device 100 includes a dividing unit 130, a concentration unit 140, and a mixing unit 150 as processing units that perform predetermined processing on the cell suspension.
- the cell culture device 100 includes channels F1 to F13 for transferring the cell suspension between the culture vessel 110, the storage vessel 120, the dividing unit 130, the concentration unit 140, and the mixing unit 150.
- the cell culture device 100 also includes pumps P1 and P2 that generate a liquid flow of the cell suspension, and directional control valves V1 to V5 that control the flow direction of the cell suspension.
- the cell culture device 100 includes pumps P1 and P2, direction control valves V1 to V5, open / close valves 171 to 173, which will be described later, and a control unit 160 that performs drive control of the imaging units 10A, 10B, and 10C.
- the pumps P1 and P2, the direction control valves V1 to V5, the on-off valves 171 to 173, and the imaging units 10A, 10B, and 10C can be connected to the control unit 160 by control wiring, but in FIG. Illustration of wiring is omitted.
- the culture container 110 is a container for storing cells and the like together with a medium and culturing the stored cells.
- the form of the culture container 110 is not particularly limited, and for example, a glass or stainless steel container or a container having a plastic bag form can be used.
- the culture vessel 110 is housed in, for example, an incubator (not shown) controlled at a temperature of 30 ° C. to 40 ° C. (preferably 37 ° C.) and a CO 2 concentration of 2% to 10% (preferably 5%) and sealed. Can be done.
- An open / close valve 171 is provided in the vicinity of the circulation port 111 of the culture vessel 110 on the flow path F1 connected to the culture vessel 110.
- the on-off valve 171 is controlled to be open when the cell suspension is allowed to flow out of the culture vessel 110 and when the cell suspension is allowed to flow into the culture vessel 110, and is otherwise controlled to be closed. Opening / closing control of the opening / closing valve 171 is performed by the control unit 160.
- the dividing unit 130 is a processing unit that performs a dividing process of dividing a cell mass generated by culturing cells in the culture vessel 110 into a plurality of cell masses having a smaller particle size.
- a dividing process for dividing the cell mass into a plurality of cell masses having a smaller particle size is required at an appropriate time during the culture period.
- the dividing unit 130 has a mesh with a size smaller than the particle size of the cell mass. By passing the cell mass through the mesh, the cell mass is divided into a plurality of cell masses having a particle size corresponding to the mesh size of the mesh.
- the dividing unit 130 has an inflow port 131 and an outflow port 132, divides the cell mass contained in the cell suspension flowing in from the inflow port 131, and flows out the treated cell suspension from the outflow port 132. .
- the cell mass divided by the dividing unit 130 is accommodated in the culture vessel 110, and a new culture cycle is started. Thus, since a new culture cycle is started after the dividing process, the dividing process can be regarded as a passage process.
- the concentration unit 140 is a processing unit that performs a concentration process for increasing the concentration of cells in the cell suspension by membrane-separating the medium and cells contained in the cell suspension.
- the concentration unit 140 has, for example, a tangential flow filter configuration, and is configured such that the cell suspension flows along the surface of the filtration membrane.
- FIG. 10 is a diagram illustrating an example of a mode of filtration by the concentration unit 140.
- the concentration unit 140 includes, for example, a filtration membrane 143 made of a hollow fiber.
- the concentration unit 140 may have a configuration of a dead end flow filter in which the flow direction of the cell suspension intersects the membrane surface of the filtration membrane.
- the concentration unit 140 includes an inflow port 141 and an outflow port 142, performs a concentration process on the cell suspension that has flowed in from the inflow port 141, and flows the treated cell suspension out of the outflow port 142.
- the used medium containing the debris that has passed through the filtration membrane 143 of the concentration unit 140 is discarded as a waste liquid.
- a pump P3 for applying a negative pressure is connected to the filtration side.
- the mixing unit 150 is a processing unit that mixes the concentrated cell suspension and a fresh medium supplied from a medium supply unit (not shown), and performs a mixing process to uniform the density of cells in the medium.
- the mixing unit 150 preferably has a configuration as a static mixer that does not have a drive unit.
- the mixing unit 150 is fixedly installed inside the tubular body, and a spiral flow path is formed inside the tubular body. And a stirring element to be formed.
- the mixing unit 150 may perform stirring and mixing by rotationally driving a stirring blade.
- the storage container 120 is a container for temporarily storing the cell suspension.
- the form of the storage container 120 is not particularly limited, and for example, a glass or stainless steel container or a container having a plastic bag form can be used.
- An opening / closing valve 172 is provided in the vicinity of the outlet 121 of the storage container 120 on the flow path F9 connected to the storage container 120.
- the on-off valve 172 is controlled to open when the cell suspension is allowed to flow out of the storage container 120, and is controlled to be closed otherwise. Opening / closing control of the opening / closing valve 172 is performed by the control unit 160.
- the channel F3 branches into a channel F4 connected to the inlet 131 of the dividing unit 130 and a channel F5 connected to the inlet 141 of the concentrating unit 140, and the intersection of the channels F3, F4 and F5. Is provided with a direction control valve V3.
- the flow path F6 connected to the outlet 132 of the dividing unit 130 and the flow path F7 connected to the outlet 142 of the concentrating unit 140 merge with the flow path F8, and intersect the flow paths F6, F7, and F8.
- the direction control valve V4 is provided in the part.
- the imaging unit 10A is provided in the middle of the flow path F3 on the upstream side (inlet side) of the dividing unit 130 and the concentrating unit 140. That is, the flow cell 20 of the imaging unit 10A is inserted in the middle of the flow path F3.
- the imaging unit 10 ⁇ / b> B is provided in the middle of the flow path F ⁇ b> 8 on the downstream side (outlet side) of the dividing unit 130 and the concentration unit 140. That is, the flow cell 20 of the imaging unit 10B is inserted in the middle of the flow path F8.
- the imaging unit 10 ⁇ / b> C is provided in the middle of the flow path F ⁇ b> 12 on the downstream side of the mixing unit 150. That is, the flow cell 20 of the imaging unit 10C is inserted in the middle of the flow path F12.
- the control unit 160 controls the direction control valves V1 to V4 to form a liquid supply route in which the cell suspension stored in the culture container 110 reaches the storage container 120 via the dividing unit 130. Thereafter, the control unit 160 controls the opening / closing valve 171 to be in an open state and operates the pump P1. Thereby, the cell suspension accommodated in the culture vessel 110 flows into the dividing unit 130 via the flow paths F1, F2, F3, and F4.
- the control unit 160 starts imaging in the imaging unit 10A at the timing when the detailed suspension reaches the flow cell 20 of the imaging unit 10A provided in the middle of the flow path F3.
- the time lag from the start time of liquid feeding by the pump P1 to the start time of imaging by the imaging unit 10A is estimated from the liquid feeding flow rate per unit time in the pump P1 and the volume of the flow path between the pump P1 and the imaging unit 10A. Is possible.
- the imaging unit 10A derives statistical data such as cells immediately before the division process based on the acquired plurality of images.
- the control unit 160 ends the imaging in the imaging unit 10A at the timing when the end of the cell suspension finishes passing through the flow cell 20 of the imaging unit 10A.
- the liquid feeding operation by the pump P1 and the imaging operation by the imaging unit 10A are linked.
- the cell mass contained in the cell suspension that has flowed into the dividing unit 130 is divided into a plurality of cell masses having smaller particle diameters.
- the cell suspension subjected to the division process is accommodated in the storage container 120 via the flow paths F6 and F8.
- the control unit 160 starts imaging in the imaging unit 10B at the timing when the detailed suspension reaches the flow cell 20 of the imaging unit 10B provided in the middle of the flow path F8. While the cell suspension passes through the flow path F8, cells and the like contained in the cell suspension are continuously imaged by the imaging unit 10B, and a plurality of images are acquired.
- the imaging unit 10B derives statistical data such as cells immediately after the division process based on the acquired plurality of images. Since all the cells and the like accommodated in the culture vessel 110 pass through the flow cell 20 of the imaging unit 10B, all of the cultured cells are reflected in the statistical data.
- the control unit 160 ends the imaging in the imaging unit 10B at the timing when the end of the cell suspension finishes passing through the flow cell 20 of the imaging unit 10B.
- the control unit 160 controls the direction control valves V1, V2, and V5, so that the cell suspension stored in the storage container 120 passes through the flow paths F9, F10, F13, and F1. Thus, a liquid supply route to the culture vessel 110 is formed. Thereafter, the control unit 160 controls the open / close valves 171 and 172 to open, and operates the pump P2. Accordingly, the cell suspension stored in the storage container 120 flows into the culture container 110 via the flow paths F9, F10, F13, and F1, and a new culture cycle is started in the culture container 110. .
- the cell culture device 100 when the dividing process by the dividing unit 130 is performed, statistical data such as cells before and after the dividing process is acquired.
- the medium exchange process consists of a concentration process that increases the concentration of cells in the cell suspension by separating the spent medium and cells contained in the cell suspension, and a fresh medium is added to the concentrated cell suspension. Adding, and then diluting and mixing them.
- the control unit 160 controls the direction control valves V1 to V4 to form a liquid supply route in which the cell suspension accommodated in the culture vessel 110 reaches the storage vessel 120 via the concentration unit 140. Thereafter, the control unit 160 controls the opening / closing valve 171 to be in an open state and operates the pump P1. Thereby, the cell suspension accommodated in the culture container 110 flows into the concentration unit 140 via the flow paths F1, F2, F3, and F5.
- the control unit 160 starts imaging in the imaging unit 10A at the timing when the detailed suspension reaches the flow cell 20 of the imaging unit 10A provided in the middle of the flow path F3.
- the time lag from the start time of liquid feeding by the pump P1 to the start time of imaging by the imaging unit 10A is estimated from the liquid feeding flow rate per unit time in the pump P1 and the volume of the flow path between the pump P1 and the imaging unit 10A. Is possible.
- the imaging unit 10A derives statistical data such as cells immediately before the concentration process based on the plurality of acquired images.
- the control unit 160 ends the imaging in the imaging unit 10A at the timing when the end of the cell suspension finishes passing through the flow cell 20 of the imaging unit 10A.
- the liquid feeding operation by the pump P1 and the imaging operation by the imaging unit 10A are linked.
- the cell suspension that has flowed into the concentration unit 140 is membrane-separated into a spent medium and cells.
- the concentrated cell suspension is accommodated in the storage container 120 via the flow paths F6 and F8.
- the used culture medium containing the debris that has passed through the filtration membrane of the concentration unit 140 is discarded as a waste liquid.
- the control unit 160 starts imaging in the imaging unit 10B at the timing when the detailed suspension reaches the flow cell 20 of the imaging unit 10B provided in the middle of the flow path F8. While the cell suspension passes through the flow path F8, cells and the like contained in the cell suspension are continuously imaged by the imaging unit 10B, and a plurality of images are acquired.
- the imaging unit 10B derives statistical data such as cells immediately after the concentration process based on the acquired plurality of images. Since all the cells and the like accommodated in the culture vessel 110 pass through the flow cell 20 of the imaging unit 10B, all of the cultured cells are reflected in the statistical data.
- the control unit 160 ends the imaging in the imaging unit 10B at the timing when the end of the cell suspension finishes passing through the flow cell 20 of the imaging unit 10B.
- the concentration treatment may be performed a plurality of times until the concentration of the cell suspension reaches a desired concentration by circulating the cell suspension between the concentration unit 140 and the storage container 120.
- the control unit 160 may determine completion of the concentration process based on the statistical data after the concentration process acquired by the imaging unit 10B.
- FIG. 11 is a flowchart illustrating an example of determination of completion of concentration processing performed in the control unit 160.
- the control unit 160 determines whether the number (particle size distribution) for each predetermined particle size range of cells and the like after the most recent concentration process derived by the imaging unit 10B has reached a target state. Determine. In this step, it may be determined whether or not the number of cells or the like per unit volume (density distribution) has reached a target state. If the control unit 160 determines that the particle size distribution or density distribution of the cells and the like after the concentration process has not reached the target state, the process proceeds to step S12.
- step S12 the control unit 160 performs the concentration process again. That is, the control unit 160 controls the direction control valves V2, V3, and V4 so that the cell suspension stored in the storage container 120 returns to the storage container 120 again via the concentration unit 140. Form. Thereafter, the control unit 160 controls the open / close valve 172 to be in an open state and operates the pump P2. Thereby, the cell suspension accommodated in the storage container 120 flows into the concentration unit 140 via the flow paths F9, F3, and F5, and the concentration process is performed again in the concentration unit 140. Also in the second and subsequent concentration processes, statistical data such as cells is acquired in each of the imaging units 10A and 10B. Thereafter, the process returns to step S11.
- step S11 determines in step S11 that the particle size distribution or density distribution of the cells after the concentration process has reached the target state.
- step S13 the control unit 160 determines that the concentration process has been completed, and ends the concentration process.
- the concentration process by the concentration unit 140 when the concentration process by the concentration unit 140 is performed, statistical data such as cells before and after the concentration process is acquired.
- the control unit 160 supplies the fresh medium into the storage container 120 in which the concentrated cell suspension is stored by controlling the open / close valve 173 to be in an open state. Thereby, the cell suspension is diluted and the concentration of the cells in the cell suspension is reduced.
- control unit 160 controls the direction control valves V2 and V5, so that the diluted cell suspension stored in the storage container 120 is returned to the storage container 120 again via the mixing unit 150. Form a return route. Thereafter, the control unit 160 controls the open / close valve 172 to be in an open state and operates the pump P2. Thereby, the diluted cell suspension accommodated in the storage container 120 flows into the mixing unit 150 via the flow paths F9, F10, and F11, and the mixing process is performed in the mixing unit 150. The cell suspension subjected to the mixing process is returned to the storage container 120 via the flow path F12.
- the control unit 160 starts imaging in the imaging unit 10C at the timing when the detailed suspension reaches the flow cell 20 of the imaging unit 10C provided in the middle of the flow path F12. While the cell suspension is passing through the flow path F12, cells and the like contained in the cell suspension are continuously imaged by the imaging unit 10C, and a plurality of images are acquired.
- the imaging unit 10C derives statistical data such as cells immediately after the mixing process based on the acquired plurality of images. Since all the cells and the like stored in the culture vessel 110 pass through the flow cell 20 of the imaging unit 10C, all of the cultured cells are reflected in the statistical data.
- the control unit 160 ends the imaging in the imaging unit 10C at the timing when the end of the cell suspension finishes passing through the flow cell 20 of the imaging unit 10C.
- the mixing process may be performed a plurality of times until the mixed state of the cell suspension becomes a desired state by circulating the cell suspension between the mixing unit 150 and the storage container 120.
- the control unit 160 may determine the completion of the mixing process based on statistical data such as cells immediately after the mixing process acquired by the imaging unit 10C.
- FIG. 12 is a flowchart illustrating an example of determination of completion of the mixing process performed in the control unit 160.
- the control unit 160 arranges the number of cells or the like included in each image acquired by the imaging unit 10 ⁇ / b> C in the order of images, and acquires the width of variation between the number of cells or the like included in one image. That is, the control unit 160 acquires a change with time in the density of cells and the like after the mixing process.
- the control unit 160 determines whether or not the range of variation between the number of images of cells or the like included in one image is within a predetermined range. That is, in this determination process, it is determined whether or not the density of cells and the like in the medium is uniform. If the control unit 160 determines that the variation range between the number of images such as cells included in one image is not within the predetermined range, the control unit 160 proceeds to step S22.
- step S22 the control unit 160 performs the mixing process again. That is, the control unit 160 controls the direction control valves V2 and V5 to form a liquid supply route in which the cell suspension stored in the storage container 120 returns to the storage container 120 again via the mixing unit 150. To do. Thereafter, the control unit 160 controls the open / close valve 172 to be in an open state and operates the pump P2. Thereby, the diluted cell suspension accommodated in the storage container 120 flows into the mixing unit 150 via the flow paths F9, F10, and F11, and the mixing process is performed again in the mixing unit 150. . Also in the second and subsequent mixing processes, statistical data is acquired in the imaging unit 10C. Thereafter, the process returns to step S21.
- step S21 when the control unit 160 determines in step S21 that the variation range between the number of images such as cells included in one image is within a predetermined range, the process proceeds to step S23. .
- step S23 the control unit 160 determines that the mixing process has been completed, and ends the mixing process.
- the cell culture device 100 when the mixing process by the mixing unit 150 is performed, statistical data such as cells after the mixing process is acquired.
- the control unit 160 controls the directional control valves V1, V2, and V5 so that the cell suspension stored in the storage container 120 becomes the flow path F9, A liquid supply route that reaches the culture vessel 110 via F10, F13, and F1 is formed. Thereafter, the control unit 160 controls the open / close valves 171 and 172 to be in the open state and operates the pump P2. Thereby, the cell suspension accommodated in the storage container 120 flows into the culture container 110 via the flow paths F9, F10, F13, and F1, and the cell culture is continued in the culture container 110.
- FIG. 13 is a graph showing the particle size distribution of cells and the like acquired using the imaging unit 10 according to the embodiment of the technology of the present disclosure and the particle size distribution of cells and the like acquired using a commercially available system.
- Multisizer 4e manufactured by Beckman Coulter was used.
- the horizontal axis indicates the particle size of cells and the vertical axis indicates the number of cells and the like per 1 mL of cell suspension.
- the cell suspension that has been measured by the imaging unit 10 according to this embodiment is diluted 20 times, and about 20 mL sampled is used for measurement by the Multisizer 4e.
- Multisizer 4e converts the particle size distribution into the number per mL and outputs it.
- the particle size distribution acquired using the imaging unit 10 according to the present embodiment is reduced to a scale that can be compared with the particle size distribution acquired using the Multisizer 4e.
- the difference between the particle size distribution acquired using the imaging unit 10 according to the present embodiment and the particle size distribution acquired using the Multisizer 4e is about ⁇ 10%.
- FIG. 14A and FIG. 14B respectively show cells and the like immediately before and after the division processing by the division unit 130 obtained using the imaging units 10A and 10B provided in the cell culture device 100 according to the embodiment of the technology of the present disclosure. It is a graph which shows the particle size distribution of this. 14A and 14B, the horizontal axis indicates the particle size of cells and the vertical axis indicates the number of cells and the like.
- the imaging unit 10A provided on the upstream side (inlet 131 side) of the dividing unit 130, the particle size distribution of cells and the like immediately before the dividing process is acquired, and provided on the downstream side (outlet 132 side) of the dividing unit 130.
- a particle size distribution of cells and the like immediately after the division processing was obtained.
- the number of cell clusters having a particle size of more than 200 ⁇ m is decreased, while the number of cell clusters having a particle size of less than 200 ⁇ m is increased. It can also be seen that the total number of cell clusters is increased by performing the division process.
- the cell culture device 100 it is possible to acquire the particle size distribution of cells and the like immediately before and immediately after the dividing process by the dividing unit 130.
- the particle size distribution of cells and the like immediately before the dividing process it is possible to grasp to what extent the cell mass immediately before the dividing process has grown.
- the actual state of the dividing process can be grasped.
- the cell culture device 100 according to the present embodiment since the actual state of the division process can be visualized, it is possible to monitor whether or not the division process is performed as expected.
- the particle size distribution of the cell mass after the division process depends on the flow velocity when the cell mass passes through the mesh constituting the division unit 130. Therefore, the flow rate when the cell mass passes through the mesh may be determined based on the particle size distribution of the cell mass after the division processing. For example, a correlation between the flow velocity and the particle size distribution may be obtained in advance, and the flow velocity may be determined using the correlation so that the particle size distribution of the cell mass after the division processing becomes a desired particle size distribution.
- 15A and 15B show the particle size distribution of cells and the like before concentration processing by the concentration unit 140 and the concentration processing by the concentration unit 140 acquired using the imaging units 10A and 10B once, three times, five times, and 15 times. It is a graph which shows the particle size distribution of the cell etc. after implementing 1 time and 23 times.
- the horizontal axis indicates the particle size of cells and the vertical axis indicates the number of cells and the like.
- FIG. 15B shows the same measurement result as FIG. 15A with the scale of the vertical axis enlarged.
- the imaging unit 10A provided on the upstream side (inlet port 141 side) of the concentration unit 140 the particle size distribution of the cells and the like before the concentration process (the number of times of processing is zero) is acquired, and the downstream side (outlet port) of the concentration unit 140
- the particle size distribution of the cells and the like after the concentration treatment was acquired using the imaging unit 10B provided on the 142th side).
- the flow rate of the cell suspension flowing on the filter membrane supply side constituting the concentration unit 140 (main flow rate) is 120 mL / min
- the flow rate of the waste liquid flowing on the filtration side of the filter membrane forming the concentration unit 140 is 5 mL / min. It was set to min. As shown in FIG.
- the cell culture device 100 it is possible to acquire the particle size distribution of cells and the like before and after the concentration process by the concentration unit 140. In addition, it is possible to grasp the transition of the particle size distribution of cells and the like when the concentration process is performed a plurality of times. As described above, according to the cell culture device 100 according to the present embodiment, the actual state of the concentration process can be visualized, so it is possible to monitor whether or not the concentration process is performed as expected. For example, when the number of particles having a relatively small particle size after the concentration treatment greatly exceeds the target value, it can be estimated that the suction pressure on the filtration side is small or the filter is clogged.
- the concentration process is completed when the particle size distribution or density distribution of the cells after the concentration process by the concentration unit 140 reaches a target state. You may judge. That is, as shown in FIG. 11, the particle size distribution after the concentration process may be used to determine whether the concentration process is complete.
- FIG. 16 shows a result of continuously imaging the cell suspension flowing in the flow path F12 on the downstream side of the mixing unit 150 by the imaging unit 10C, and arranging the number of cells included in each acquired image in the order of the images. It is a graph to show. That is, the graph of FIG. 16 shows the uniformity of the density of cells and the like flowing through the flow path F12. In other words, it shows a mixed state of cells and the medium.
- the cell suspension flowing in the flow path F3 upstream of the concentration unit 140 is continuously imaged by the imaging unit 10A, and the number of cells and the like included in each acquired image is arranged in the order of the images. The results are also shown. As shown in FIG.
- the cell culture device 100 it is possible to grasp the mixed state of the cells and the medium after the mixing process by the mixing unit 150. That is, the actual condition of the mixing process can be grasped, and the result of the mixing process can be visualized. Therefore, it is possible to monitor whether or not the mixing process is performed as expected. For example, as described above, when the density of cells or the like passing through the flow path F12 on the downstream side of the mixing unit 150 varies greatly, the flow rate when the cells or the like pass through the mixing unit 150 is changed. Can be implemented promptly.
- the mixing process is performed a plurality of times, it is determined that the mixing process has been completed when the change in density of cells and the like after the mixing process by the mixing unit 150 reaches a target state. May be. That is, as shown in FIG. 12, the change over time of the number of cells or the like included in one image may be used for determining the completion of the mixing process.
- the concentration of the cell suspension after the dilution process is determined by deriving the density distribution of the cells and the like based on the plurality of images acquired by the imaging unit 10C. I can grasp it.
- the cell culture device 100 it is also possible to quantitatively grasp whether or not the culture is smooth.
- the number of cell masses in culture and the particle size of each cell mass can be mentioned.
- the dividing process (passaging process) by the dividing unit 130 is a process of increasing the number of cell clusters, but stress is applied to the cells at the time of dividing, and thus not all of the increased cell clusters can survive. Some of the increased cell mass may become dead cells and decompose.
- the dividing process (passaging process) by the dividing unit 130 is performed every predetermined period (for example, every 5 days). Therefore, the particle size distribution of the cell mass immediately before the previous division process (passage process) and the particle size distribution of the cell mass immediately before the current division process (passage process) are acquired and compared. Thereby, the substantial increase amount by the subculture of the number of cell masses can be grasped.
- the particle size distribution of the cell mass immediately before the division process can be acquired based on a plurality of images acquired by the imaging unit 10A.
- the particle size distribution of cells etc. immediately after the previous division process is compared with the particle size distribution of cells etc. immediately before this division process (passage process), and the peak of the particle size distribution is shifted.
- the amount it is possible to grasp how much the cell mass has grown during one culture cycle.
- the causal relationship between the particle size after the division treatment (passaging treatment) and the subsequent cell growth can be obtained. That is, it is possible to determine how much the particle size of the cell mass after the division treatment is to promote the proliferation of the cells after the division treatment most. This result can be fed back to the processing conditions of the division processing, and is an effective means for determining more preferable processing conditions.
- the particle size distribution of cells and the like immediately after the dividing process (passaging process) can be acquired based on a plurality of images acquired by the imaging unit 10B.
- the particle size distribution of cells and the like immediately before the division process (passage process) can be acquired based on a plurality of images acquired by the imaging unit 10A.
- FIG. 17A, FIG. 17B, and FIG. 17C are graphs showing the particle size distribution of cells and the like obtained at different timings during one cycle period of culture by the cell culture device 100, respectively.
- FIGS. 17A, 17B, and 17C show the particle size distributions on day 1, day 3, and day 5, respectively.
- Each particle size distribution was acquired based on a plurality of images acquired by the imaging unit 10 ⁇ / b> A provided on the upstream side of the mixing unit 150.
- FIGS. 17A to 17C it can be seen that the peak of the particle size distribution of the cell mass is shifted in the direction of increasing the particle size with time.
- the cell culture device 100 according to the present embodiment, it is also possible to grasp the temporal change in the particle size distribution of the cell mass during one cycle period of the culture, and whether the culture proceeds smoothly every day. It is possible to grasp whether or not.
- the imaging unit 10 according to the present embodiment can be used not only for monitoring the cell culture state but also for determining whether or not the elements constituting the cell culture device are suitable for culture.
- a tube pump used as a cell suspension liquid feeding means can be fed while being insulated from the external environment, biological contamination hardly occurs. For this reason, it is often used as a means for feeding a cell suspension.
- the tube pump performs liquid feeding by mechanically squeezing the tube, the cell mass may be destroyed. Therefore, the effect of the tube pump on the cell mass was confirmed using the imaging unit 10 according to the present embodiment.
- FIG. 18 shows the result of observing changes in the particle size distribution of the cell mass when the imaging unit 10 according to the present embodiment is installed at the inlet and outlet of the tube pump and the cell suspension is repeatedly passed through the tube pump. It is the shown graph.
- FIG. 18 shows the particle size distribution before passing the cell suspension through the tube pump (the number of passes is 0) and the particle size distribution of the cell mass after passing the cell suspension through the tube pump once, 3 times and 6 times. Has been.
- the cell culture device 100 based on a plurality of images acquired by the imaging unit 10 provided in the middle of the flow path through which the cell suspension flows. Since cultured cells are measured, it is not necessary to collect cells. This avoids the risk of biological contamination and does not consume cells. In addition, since cultured cells can be automatically measured, labor and time can be greatly reduced as compared with conventional manual techniques.
- the imaging unit 10 since the imaging unit 10 is installed in the middle of the flow path through which all cells cultured in the cell culture device 100 pass, all cells are measured. Can be targeted. Therefore, the measurement accuracy of the cells can be improved as compared with the conventional measurement method in which only some of the collected cells are measured.
- the actual state of each process performed by the dividing unit 130, the concentration unit 140, and the mixing unit 150 can be visualized.
- an abnormality it is possible to make an early determination on whether to abort the culture, thereby minimizing the generation of unnecessary costs.
- the measurement of cells by the imaging unit 10 according to the present embodiment can be used not only during culturing but also when starting up the cell culturing apparatus.
- the statistical data acquired by the imaging unit 10 can be used when determining processing conditions in the division process, the concentration process, and the mixing process.
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Abstract
細胞培養装置は、細胞及び細胞塊の少なくとも一方を粒状体として含む細胞懸濁液が流通する流路と、流路の途中に設けられ、細胞懸濁液が流路を流れている間、細胞懸濁液に含まれる複数の粒状体を連続的に撮像して複数の画像を取得する撮像ユニットと、を含む。
Description
開示の技術は、細胞培養装置、撮像ユニット及び培養監視方法に関する。
培養中の細胞を撮像する手段を含む細胞培養装置が知られている。
例えば、特開2016-154450号公報には、複数の異なる粒径の細胞塊が存在する懸濁培養液内の特定領域を撮像し、撮影した特定領域について画像解析する状態解析システムが記載されている。状態解析システムは、画像解析により細胞塊の分布特徴量における各基底情報の基底混合比を推定し、推定した混合比に基づいて、懸濁培養容器全体における細胞塊の粒径分布、及び細胞塊の総粒子数を算出する。
特開2010-99011号公報には、第1の培養容器から採取された細胞を含む細胞懸濁液が注入された第2の培養容器を撮影する撮像手段と、第2の培養容器を動揺させて細胞懸濁液を撹拌する撹拌手段と、撮像手段で撮影された画像に基づき決定された撹拌動作で第2の培養容器が動揺するように撹拌手段を制御する制御手段と、を備えた細胞培養装置が記載されている。
特開2006-320226号公報には、細胞培養容器を駆動装置を用いて制御し揺動させる事で、細胞の播種作業を行う事を特徴とする細胞培養装置において、画像撮影装置により細胞培養容器を撮影し、細胞の播種状態を取得することが記載されている。
国際公開第2015/107667号には、培養容器と、培養容器に保持される細胞の細胞画像を撮影する撮影部と、撮影部で撮影した細胞画像の複数の分割領域の、異なる培養時期の細胞画像の情報に基づき、再生の品質を評価可能とする制御部を備えた自動培養装置が記載されている。
再生医療用の浮遊培養では、複数の細胞が凝集して球状の細胞塊を形成し、細胞の増殖が進行すると細胞塊の粒径は次第に大きくなる。細胞塊の径が、過大となると細胞塊の中心部は栄養や酸素が届きにくくなり壊死してしまう。そこで、細胞塊の粒径がある程度の大きさになった段階で、細胞塊をより小さな粒径の細胞塊に分割する分割処理(継代処理)が再生医療用の浮遊培養では必要になる。分割され粒径が小さくなった細胞塊は、再び栄養や酸素の吸収効率が改善され、時間経過とともに増殖が進行し、粒径は大きくなる。細胞塊の粒径の拡大は、細胞塊に含まれる細胞の数の増加を意味している。細胞塊を分割する適切なタイミングを把握するためには、細胞塊の粒径がどの程度にまで成長したかを把握することが必要である。細胞塊の粒径がどの程度にまで成長したかは、細胞塊の粒度分布を見ることで把握することができる。
また、細胞は、培養期間中、定期的に、栄養分が消費された使用済みの培養液を新鮮な培養液に交換することが必要になる。この培養液交換においては、細胞塊を系内に残したまま使用済みの培養液を新鮮な培養液に交換する必要がある。このとき、死細胞を使用済みの培養液とともに排出することが、その後の正常な細胞増殖のために重要である。培養液交換処理においては、フィルタを用いて使用済みの培養液と細胞とを分離することで、培養液中の細胞濃度を高めていく濃縮処理が行われる。濃縮処理が適切に実施されたか否かを把握するためには、濃縮処理後の細胞塊の粒度分布を把握すればよい。その後、濃縮された細胞に栄養に富んだ新鮮な培養液を添加して混合する希釈混合処理が行われる。希釈混合処理においては、細胞を含んだ濃縮培養液と新鮮な培養液が所定の割合で均一に混合することが目標となる。
細胞の大量培養において、継代、濃縮、希釈混合の各処理は、細胞培養の成否を左右する重要な工程ではあるが、それ以前に培養容器の中で培養そのものが順調に進行している事が重要である。培養の順調さは、培養容器内の細胞数や細胞塊の粒度分布の経時変化を捉えればよい。
以上のように、細胞の大量培養においては、培養中の細胞または細胞塊の粒度分布を知るということが、非常に有用である。すなわち、培養中の細胞塊の粒度分布の経時変化を捉えることで、培養状況を一目瞭然に把握することができる。また、分割処理(継代処理)前後で細胞塊の粒度分布を比較することで分割処理(継代処理)の状況を把握することができる。また、濃縮処理後及び希釈混合処理後における細胞塊の粒度分布を捉えることで、濃縮処理及び希釈混合処理の状況を把握することができる。
細胞塊の粒度分布を取得する既存の方法は、細胞塊を培養液ごと採取して、顕微鏡を用いて細胞塊を目視観察し、粒径毎の細胞塊の個数をカウントするというものである。しかしながら、この方法は、以下の問題を含んでいる。
1つ目の問題は、細胞塊の採取行為が、培養装置に生物学的汚染を引き起こすリスクを増大させるということである。
2つ目の問題は、細胞塊のカウントに多大な手間と時間を要することである。顕微鏡の視野中には多数の細胞塊が含まれており、それらの各々に焦点を合わせて粒径を測定していくことを、人手によって行うことは容易ではなく、多数の細胞塊を計測することは困難である。従って、細胞塊を含む培養液の採取量は少量とならざるを得ない。
3つ目の問題は、少量の培養液の採取による計測が、全体を正しく代表したものにならないおそれがあり、計測結果が常に不確かさを含んでいるということである。
4つ目の問題は、計測のために採取した細胞塊は、培養を継続することができず、計測のたびに細胞を消費してしまうということである。
一方、培養容器の内部を、撮像装置で観察することで、培養の状況を把握する方法も提案されている。この方法によれば、生物学的汚染のリスクはなく、手間と時間を削減することができ、細胞を消費することもない。しかしながら、再生医療では多量の細胞を必要とし、培養容器は例えば2L~10Lの規模になるところ、従来の撮像装置を用いた計測手法は、0.01L程度の細胞塊を観察対象とするものであり、計測誤差が200倍~1000倍に拡大されるおそれがある。2L~10L規模の大型培養容器では、細胞の存在する領域が偏るローカリティの問題も懸念されるので、全体の培養状況を的確に把握するには、撮像装置が少なくとも10セット相当分は必要になりコスト増になる。
従来の細胞または細胞塊の観測手法における他の問題点は、観察手段に起因する。すなわち、細胞観察では、コントラストを得るため位相差顕微鏡が通常使用され、高解像度を得るために高開口角撮像を行う。このため、焦点深度が浅くなり、奥行きのある液体を観察した場合、ピントの合った面に存在する細胞または細胞塊しか観察することができない。つまり、この問題は、培養液の一部しか測定できないというローカリティの問題を含有している。上記の各特許文献に記載の技術は、上記の問題点を解決し得るものではない。
例えば、特許文献1に記載のような円注形の培養容器内で、側面から特定領域に照明光を照射し、照明光の進行方向に対して90度方向から撮像装置で撮像する場合、特定領域以外に照明光が当たらないので、特定領域よりも奥(すなわち遠方)の細胞によるノイズは防止できるものの、特定領域と撮像装置との間に浮遊する細胞は、影となるので細胞懸濁液における細胞の濃度が高いほど測定精度への影響が高くなる。更に、培養容器が円柱形の場合、撮像装置が撮像する特定領域は、培養容器(一般的に水の屈折率は1.3、樹脂やガラスの屈折率も物性により変化するが1より大きい)と空気(屈折率が1)との界面が曲面となるので撮像した像は容器の表面形状による歪みが発生する。そのため正確な細胞の大きさを得るには像の歪の影響を軽減するために撮像装置の視野を狭くする必要がある。
開示の技術は、上記の点に鑑みてなされたものであり、採取行為を不要とし且つ細胞懸濁液の大部分を対象とした培養細胞の計測を行うことを目的とする。
開示の技術に係る細胞培養装置は、細胞及び細胞塊の少なくとも一方を粒状体として含む細胞懸濁液が流通する流路と、上記流路の途中に設けられ、上記細胞懸濁液が上記流路を流れている間、上記細胞懸濁液に含まれる複数の粒状体を連続的に撮像して複数の画像を取得する撮像ユニットと、を含む。
上記の細胞培養装置は、上記複数の画像に基づいて、複数の粒状体について統計データを導出する導出部を更に含み得る。上記統計データは、複数の粒状体の、所定粒径範囲ごとの個数、単位体積あたりの所定粒径範囲ごとの個数、所定真円度範囲ごとの個数及び粒状体を構成する細胞の総個数の少なくとも1つを含み得る。
上記撮像ユニットは、上記細胞懸濁液が通過するフローセルと、上記フローセルに撮像視野が設定された複数の撮像素子を含む撮像部と、を含み得る。
上記フローセルは、上記細胞懸濁液が流入する流入口と、上記流入口から流入した上記細胞懸濁液を流出させる流出口と、上記流入口と上記流出口との間に設けられ、上記撮像部の光軸方向における厚さが、上記流入口及び上記流出口の上記光軸方向における厚さよりも薄く且つ光透過性を有する部材で構成された扁平流路と、を含み得る。上記扁平流路の、上記撮像部における光軸方向に沿った厚さが、上記フローセルの内部を流れる上記細胞懸濁液の流れ方向と交差する幅方向における長さよりも薄く且つ光透過性を有する部材で構成されていてもよい。撮像部の撮像視野は、上記扁平流路に設定されていてもよい。
上記フローセル内の上記光軸方向における上記扁平流路の厚さは均一であることが好ましい。また、上記複数の撮像素子は、上記扁平流路の上記細胞懸濁液の流れ方向と交差する幅方向における全域を上記撮像視野に含んでいることが好ましい。
上記撮像部は、上記複数の撮像素子を有するエリアセンサと、上記エリアセンサの光入射側に設けられた第1のテレセントリックレンズと、を含み得る。
上記撮像ユニットは、上記扁平流路に照明光を照射する照明部を更に含み得る。上記照明部は、上記照明光を出射する光源と、上記光源の光出射側に設けられた第2のテレセントリックレンズと、を含み得る。上記第1のテレセントリックレンズの光軸と、上記第2のテレセントリックレンズの光軸とが一致していることが好ましい。
上記撮像部は、上記フローセルの内部を通過する複数の粒状体の各々を、1回以上撮像することが好ましい。
上記扁平流路を流れる上記細胞懸濁液の最高速度と、上記流入口及び上記流出口を流れる上記細胞懸濁液の最高速度とが同等であることが好ましい。
細胞培養装置は、上記流路に接続され、上記細胞懸濁液が収容される少なくとも1つの容器と、上記流路に接続され、上記細胞懸濁液に処理を施す少なくとも1つの処理部と、上記流路に上記細胞懸濁液の液流を発生させるポンプと、を更に含み得る。
上記細胞培養装置は、上記細胞懸濁液に含まれる細胞塊を分割する分割部を上記処理部として含み得る。この場合、上記撮像ユニットは、上記分割部の上流側及び下流側にそれぞれ設けられていてもよい。
上記細胞培養装置は、上記細胞懸濁液を濃縮する濃縮部を上記処理部として含み得る。この場合、上記撮像ユニットは、上記濃縮部の上流側及び下流側にそれぞれ設けられてもよい。
上記細胞培養装置は、細胞懸濁液を混合する混合部を上記処理部として含み得る。この場合、上記撮像ユニットは、上記混合部の下流側に設けられていてもよい。
上記細胞培養装置において上記ポンプと上記撮像ユニットとが連動して動作してもよい。
開示の技術の第1の観点による撮像ユニットは、複数の撮像素子を有する撮像部と、細胞及び細胞塊の少なくとも一方を粒状体として含む細胞懸濁液が流入する流入口、上記流入口から流入した上記細胞懸濁液を流出させる流出口、及び上記流入口と上記流出口との間に設けられた扁平流路を有するフローセルと、を含む。開示の技術の第1の観点による撮像ユニットにおいて、上記扁平流路の、上記撮像部における光軸方向に沿った厚さが、上記流入口及び上記流出口の上記光軸方向における厚さよりも薄く且つ光透過性を有する部材で構成され、上記撮像部の撮像視野が上記扁平流路に設定されている。
開示の技術の第2の観点による撮像ユニットは、複数の撮像素子を有する撮像部と、細胞及び細胞塊の少なくとも一方を粒状体として含む細胞懸濁液が流入する流入口、上記流入口から流入した上記細胞懸濁液を流出させる流出口、及び上記流入口と上記流出口との間に設けられた扁平流路を有するフローセルと、を含む。開示の技術の第2の観点による撮像ユニットにおいて、上記扁平流路は、上記撮像部の光軸方向における厚さが、上記フローセルの内部を流れる細胞懸濁液の流れ方向と交差する幅方向における長さよりも薄く且つ光透過性を有する部材で構成され、上記撮像部の撮像視野が上記扁平流路に設定されている。
開示の技術に係る培養監視方法は、細胞及び細胞塊の少なくとも一方を粒状体として含む細胞懸濁液が流路を流れている間、上記流路を通過する上記細胞懸濁液に含まれる複数の粒状体を連続的に撮像して複数の画像を取得し、上記複数の画像に基づいて、複数の粒状体について統計データを取得して細胞培養の状況を監視するというものである。
上記の培養監視方法において、上記統計データは、複数の粒状体の、所定粒径範囲ごとの個数、単位体積あたりの所定粒径範囲ごとの個数、所定真円度範囲ごとの個数及び粒状体を構成する細胞の総個数の少なくとも1つを含み得る。
上記培養監視方法において、上記細胞懸濁液に含まれる細胞塊を分割する分割処理の前後における、複数の粒状体の所定粒径範囲ごとの個数を上記統計データとして取得してもよい。上記分割処理は、上記細胞懸濁液を所定の流速でメッシュに通す処理を含んでいてもよく、この場合、上記統計データに基づいて、上記流速を定めてもよい。
上記培養監視方法において、上記細胞懸濁液を濃縮する濃縮処理の後における複数の粒状体の所定粒径範囲ごとの個数を上記統計データとして取得してもよい。上記の濃縮処理は、上記細胞懸濁液をフィルタ膜を用いて複数回に亘って膜分離する処理を含んでいてもよく、この場合、上記統計データに基づいて上記濃縮処理の完了を判定してもよい。また、上記統計データに基づいて上記フィルタ膜の目詰まりを検出してもよい。
上記培養監視方法において、上記細胞懸濁液を混合する混合処理の後における複数の粒状体の密度の経時変化を上記統計データとして取得してもよい。上記の混合処理は、上記細胞懸濁液を複数回に亘ってミキサーに通して、複数の粒状体と培地とを混合する処理を含んでいてもよく、この場合、上記統計データに基づいて上記混合処理の完了を判定してもよい。
上記培養監視方法において、培養期間内における所定のタイミングで複数の粒状体の所定粒径範囲ごとの個数を上記統計データとして取得してもよい。
開示の技術によれば、採取行為を不要とし且つ細胞懸濁液の大部分を対象とした培養細胞の計測を実現することが可能となる。
以下、開示の技術の実施形態の一例を、図面を参照しつつ説明する。なお、各図面において同一または等価な構成要素および部分には同一の参照符号を付与している。
図1は、開示の技術の実施形態に係る撮像ユニット10の構成を示す斜視図である。撮像ユニット10は、細胞懸濁液が流通する流路の途中に設けられ、細胞懸濁液が流路を流れている間、細胞懸濁液に含まれる細胞及び細胞塊の少なくとも一方(以下、細胞等という)を連続的に撮像して複数の画像を取得する。撮像ユニット10によって取得された複数の画像は、複数の細胞等についての統計データの導出に用いられる。上記統計データは、細胞懸濁液に含まれる複数の細胞等の、所定粒径範囲ごとの個数(粒度分布)、単位体積あたりの所定粒径範囲ごとの個数(密度分布)、所定真円度範囲ごとの個数(真円度分布)及び細胞の総個数の少なくとも1つを含み得る。なお、細胞塊とは、複数の細胞が凝集して形成される球状の凝集体である。撮像ユニット10は、フローセル20、撮像部30及び照明部40を含んで構成されている。
フローセル20は、細胞等を含む細胞懸濁液が通過する流路を形成する。フローセル20は、全体が光学ガラスまたはプラスチック等の光透過性部材で構成されており、フローセル20の内部を通過する細胞等をフローセル20の外側に配置された撮像部30によって撮像することが可能である。
フローセル20は、細胞懸濁液が流入する流入口21と、流入口21から流入した細胞懸濁液を流出させる流出口22とを有する。すなわち、フローセル20の内部を通過する細胞懸濁液は、図1において矢印で示される流れ方向D1に沿って流れる。なお、細胞等の個数のカウントを容易にする観点から、フローセル20の内部を通過する細胞懸濁液の流れが層流となることが好ましい。流入口21及び流出口22の形状は、例えば円筒形である。なお、流入口21及び流出口22の形状は、三角筒、四角筒等の角筒形であってもよい。
フローセル20は、流入口21と流出口22との間に設けられた扁平流路23を有し、扁平流路23に撮像部30における撮像視野Q1が設定されている。撮像部30における光軸方向D2は、細胞懸濁液の流れ方向D1と直交する方向に設定されている。なお、図1において、撮像部30の光軸AXが破線で示されている。
図2Aは、図1における2A-2A線に沿ったフローセル20の断面図であり、図2Bは、図1における2B-2B線に沿ったフローセル20の断面図である。すなわち、図2A及び図2Bは、それぞれ、フローセル20の内部を通過する細胞懸濁液の流れ方向D1に対して平行な断面を示している。
図2Bに示すように、扁平流路23の、光軸方向D2に沿った(光軸方向D2と平行な)厚さL1は、流入口21及び流出口22の同方向における厚さL2よりも薄く、且つ均一である。ここで、扁平流路23の光軸方向における厚さL1が均一であるとは、誤差を許容した範囲内において均一であることを意味する。一方、図2Aに示すように、扁平流路23の、流れ方向D1と直交する幅方向D3における長さL3は、流入口21及び流出口22の同方向における長さL2よりも長くなっている。扁平流路23は、光透過性を有する部材で構成された板厚が略一定の2枚の平板を、それらの主面が互いに平行となるように配置した構成を有しており、光軸方向における厚さL1が幅方向D3における長さL3に対して顕著に薄い扁平形状を有している。
扁平流路23の厚さL1は、薄い方がフローセル20の内部を通過する細胞等の重なりが発生しにくくなり、且つ、光軸方向D2の全域が撮像部30の焦点深度の範囲内に収まりやすくなる。一方、扁平流路23の厚さL1が薄すぎると、扁平流路23の幅方向D3の長さL3を長くする必要性が生じ、これに合わせて撮像部30における撮像視野Q1を拡大する必要性が生じる。また、フローセル20において、細胞懸濁液の流れ方向D1と交差する方向における流路の断面積(以下、流路面積という)が小さくなると細胞懸濁液の流速が大きくなり、撮像部30におけるフレームレートを高くする必要性が生じる。以上を勘案すると、扁平流路23の光軸方向D2に沿った厚さL1は、例えば1.5mm~2.5mm程度が好ましく、典型的には2mm程度である。
フローセル20を通過する細胞等に与えるダメージを軽減する観点から、扁平流路23を通過する細胞懸濁液の流速の最大値と、流入口21及び流出口22を通過する細胞懸濁液の流速の最大値とが略同等であることが好ましい。ここで、流速の最大値が略同等とは、扁平流路23を通過する細胞懸濁液の流速の最大値と、流入口21及び流出口22を通過する細胞懸濁液の流速の最大値の差が、例えば10%以内であることを意味する。また、流入口21、流出口22及び扁平流路23における流路面積を互いに等しくすることは、フローセル20を通過する細胞懸濁液の流速を均一にするための手法として有効である。また、流入口21、流出口22及び扁平流路23における流路面積は8mm2以上であることが好ましい。流路面積が小さすぎると細胞へのダメージが過大となるところ、流路面積を8mm2以上とすることでフローセル20の通過中に細胞に与えるダメージを軽減することができる。
撮像部30は、フローセル20の扁平流路23に撮像視野Q1が設定された複数の撮像素子を含んで構成されている。撮像部30は、扁平流路23の内部を通過する細胞懸濁液の流れ方向D1と直交する幅方向D3における全域を撮像視野Q1に含んでいる。撮像部30は、撮像視野Q1内を通過する細胞等を連続的に撮像し、複数の画像を生成する。
照明部40は、フローセル20を間に挟んで、撮像部30の反対側に設けられており、扁平流路23の撮像視野Q1に対応する領域に照明光を照射する。
図3は、フローセル20、撮像部30及び照明部40の各々の相対的な位置を固定するための構成の一例を示す斜視図である。図3に示す例では、撮像部30及び照明部40は、筐体50の内部に収容されている。筐体50の形状は、概略直方体であるが、その一部に筐体50の中央部に向けて凹んだ凹部51が形成されている。フローセル20は、扁平流路23の少なくとも一部が、筐体50の凹部51によって形成される空間内に配置されている。フローセル20は、筐体50の上面に固定されたクランパ52によって把持されることで、フローセル20と撮像部30及び照明部40との相対的な位置が固定される。
筐体50の凹部51を画定する互いに対向する壁面A1及びA2には、それぞれ窓部W1及びW2(図4参照)が設けられている。照明部40から出射される照明光は、窓部W2、フローセル20及び窓部W1を透過して撮像部30に入射する。筐体50の底面には4本の脚部53が設けられている。脚部53は、それぞれ伸縮可能であり、筐体50の高さは可変となっている。
図4は、筐体50の内部に収容された撮像部30、照明部40及びその他の光学系の構成を示す図である。
撮像部30は、複数の撮像素子がマトリックス状に配置されたエリアセンサ31と、エリアセンサ31の光入射側に設けられたテレセントリックレンズ32と、を含んで構成されている。すなわち、テレセントリックレンズ32は、照明部40から出射された照明光の進行方向に沿った経路上においてフローセル20とエリアセンサ31との間に設けられている。エリアセンサ31は、例えば、CCD(Charge Coupled Device)カメラやCMOS(Complementary metal oxide semiconductor)カメラの形態を有するものであってもよい。エリアセンサ31は、細胞懸濁液がフローセル20の内部を流れている間、フローセル20の内部を通過する個々の細胞等を1回以上撮像することができるフレームレートを有していることが好ましい。なお、撮像部30による連続的な撮像により取得された複数の画像に同一の細胞等が重複して含まれていてもよい。換言すれば、個々の細胞等は、フローセル20の内部を1回通過する間、撮像部30によって2回以上撮像されてもよい。エリアセンサ31は、最大フレームレートが例えば100fpsまたはそれよりも高速であることが好ましい。
エリアセンサ31を構成する撮像素子の1つのサイズは、レンズ倍率を含めた撮像分解能が、単一細胞のサイズである数十μmよりも小さいことが好ましい。例えば、テレセントリックレンズ32の倍率が1倍である場合、撮像素子のサイズは、5μm程度であってもよい。また、撮像素子の数は、レンズ倍率及び撮像視野Q1の大きさに応じて定められる。扁平流路23の内部を通過する細胞懸濁液の流れ方向D1と直交する幅方向D3における全域が撮像視野Q1に含まれるように、撮像素子の数が定められる。撮像部30は、一例として撮像素子数が2000×1000のエリアセンサ31を備えている。なお、本実施形態では、撮像部30がエリアセンサ31を含む場合を例示しているが、エリアセンサ31に代えてラインセンサを使用することも可能である。
フローセル20の側から到来する光は、テレセントリックレンズ32を介してエリアセンサ31に受光される。テレセントリックレンズ32は、主光線が光軸に対して平行なレンズである。テレセントリックレンズ32を用いることで、フローセル20の内部を通過する細胞等をシルエット像として撮像することが可能となる。これは、照明部40からフローセル20に照射された照明光が、フローセル20の内部を通過する細胞等によって散乱され、細胞等に対応する部分が、エリアセンサ31の撮像面に結像されないためである。このように、細胞等をシルエット像として撮像することで、細胞等の粒径及び個数を極めて正確に計測することが可能となる。また、テレセントリックレンズ32は、撮像対象物が光軸方向に移動した場合でも像の大きさが殆ど変化しないという特長を有する。この特長とフローセル20が作る平行平面により、フローセル20の内部を通過する細胞等の粒径を極めて正確に計測することが可能となる。
テレセントリックレンズ32は、少なくともフローセル20側がテレセントリック性を有していればよい。すなわち、テレセントリックレンズ32として、物体側テレセントリックレンズを好適に用いることが可能である。なお、テレセントリックレンズ32として、フローセル20側及びエリアセンサ31側の双方にテレセントリック性を有する両側テレセントリックレンズを用いることも可能である。テレセントリックレンズ32の倍率は、例えば1倍であってもよい。撮像部30によって取得される画像は、主に細胞等の個数のカウントに用いられるので撮像視野の広さが重要となる。レンズ倍率が高すぎると、撮像視野が小さくなり、取得すべき画像の数が増加し、画像処理の負担が増加するので好ましくない。撮像部30における主な撮像対象である細胞塊の粒径は、数十~数百μm程度であるので、撮像素子のサイズが5μm程度である場合、レンズ倍率は1倍でも、撮像部30によって取得された画像を用いた細胞等の粒径及び個数の計測は十分可能である。
照明部40は、撮像部30における撮像視野Q1を照明するための照明光を出射する光源41と、光源41とフローセル20との間に配置されたテレセントリックレンズ42と、を含んで構成されている。光源41としては、LED(Light Emitting Diode)ランプ、白熱電球、蛍光ランプ等のあらゆる発光部品を用いることが可能である。光源41から出射された照明光は、テレセントリックレンズ42によって平行光とされる。テレセントリックレンズ42の光軸AX2は、撮像部30側のテレセントリックレンズ32の光軸AX1と一致している。ここで、テレセントリックレンズ32及び42の光軸が一致しているとは、誤差を許容した範囲内において一致していることを意味する。このように撮像部30側のテレセントリックレンズ32の光軸AX1に平行な平行光を照明光として用いることで、撮像部30によって取得される画像において、細胞等の輪郭をシャープにすることができ、撮像部30によって取得された画像を用いて細胞等の粒径を極めて正確に計測することができる。
照明部40から出射された照明光は、反射プリズム61によって進行方向が90°折り曲げられ、筐体50の凹部51に配置されたフローセル20に照射され、フローセル20内を流れる細胞懸濁液に含まれる細胞等を照明する。照明光によって照明されたフローセル20及び細胞等の像は、反射プリズム62によって進行方向がさらに90°折り曲げられ、撮像部30に入射する。このように、反射プリズム61及び62を用いて、光の進行方向を折り曲げることにより、撮像ユニット10をコンパクトに構成することが可能となる。
以上のように照明部40と撮像部30とを対向するように配置することで、照明部40からの照明光はフローセル20内に細胞が無い部分は、そのまま撮像部30に到達し、細胞がある部分は、細胞が照明光を乱反射するため、当該部分の照明光は撮像部30に届かなくなるため影として記録される。なお、照明部40からの照明光は平行光であることが好ましい。照明光に含まれる拡散成分が少ないほど撮像部30で得られる影は濃くなり、高い検出精度を得ることができる。
以下に、撮像ユニット10の動作について説明する。撮像ユニット10は、細胞培養装置に設置される。細胞培養装置は、例えば、細胞を培養するための培養容器、細胞懸濁液に対して所定の処理を施す各種の処理部、培養容器及び各種の処理部を相互に接続する流路、及び送液手段としてのポンプを含み得る。撮像ユニット10のフローセル20は、細胞培養装置の流路の途中に挿入される。撮像ユニット10は、細胞培養装置において培養されている全ての細胞が通過する流路の途中に設置されることが好ましい。これにより、細胞培養装置において培養している全ての細胞等を撮像ユニット10において撮像し、全ての細胞等を捉えた複数の画像を取得することが可能となる。
細胞培養装置の流路を流れる細胞懸濁液は、流入口21からフローセル20の内部に流入し、扁平流路23を通過して流出口22からフローセル20の外部に流出する。撮像部30は、その撮像視野Q1が扁平流路23の一領域に設定されており、扁平流路23を移動する細胞等を連続的に撮像して複数の画像を生成する。扁平流路23の内部を通過する細胞懸濁液の流れ方向D1と直交する幅方向D3における全域が、撮像視野Q1に含まれる。また、撮像部30は、フローセル20の内部を通過する個々の細胞等を1回以上撮像することができるフレームレートで撮像を行う。従って、培養中の全ての細胞等が撮像部30によって漏れなく撮像される。照明部40は、撮像部30が撮像を行っている間、フローセル20に照明光を照射する。
図5は、撮像ユニット10によって取得された細胞及び細胞塊を捉えた画像の一例である。図5に示すように、本実施形態に係る撮像ユニット10によれば、フローセル20の内部を通過する細胞等をシルエット像として撮像することができる。
本実施形態に係る撮像ユニット10は、撮像部30によって取得された複数の画像を解析して、細胞等について粒度分布等の統計データを導出する画像解析装置70を更に含み得る。画像解析装置70は、開示の技術における導出部の一例である。図6は画像解析装置70の構成の一例を示すブロック図である。
画像解析装置70は、バス71を介して相互に接続されたCPU(Central Processing Unit)72、主記憶装置73、補助記憶装置74、入力装置75、出力装置76及びインターフェース装置77を含むコンピュータによって構成されている。
CPU72は、画像解析プログラム78を実行することにより、撮像部30によって取得された複数の画像を解析して細胞等について粒度分布等の統計データを導出する。主記憶装置73は、実行中のプログラムやデータを一時的に格納するための記憶領域を有し、例えば、RAM(Random Access Memory)を含んで構成されている。入力装置75は、一例として、キーボード、マウス、タブレット等を含んで構成されている。出力装置76は、一例として、ディスプレイ、プリンタ等を含んで構成されている。
補助記憶装置74は、例えばハードディスク装置等の不揮発性の記憶装置であり、画像解析プログラム78及び撮像部30によって取得された複数の画像を示す画像データ79が補助記憶装置74に格納されている。撮像部30によって取得された複数の画像は、インターフェース装置77を介して補助記憶装置74に取り込まれる。
図7は、CPU72が、画像解析プログラム78を実行することにより実施する処理の流れを示すフローチャートである。
ステップS1において、CPU72は、撮像部30によって取得され、補助記憶装置74に格納された画像データ79によって示される複数の画像の各々について平均画像を差し引く処理を行う。フローセル20の汚れ及び傷は、全画像に共通して映り込む。全画像に共通する画像はバックグラウンドとして差し引くことが望ましい。このバックグラウンドの濃度分布は、取得した複数の画像を平均した平均画像から取得することができる。なお、本ルーチンの開始前に平均画像を生成しておいてもよい。
ステップS2において、CPU72は、ステップS1の処理を経た複数の画像の各々について二値化処理を行う。これにより、細胞等と背景とが分離される。また、各画像に含まれる個々の細胞等は、画像処理における1つのオブジェクトに変換される。
ステップS3において、CPU72は、画像の外縁(撮像視野Q1の外縁)に接するオブジェクトを削除する。すなわち、画像の外縁(撮像視野Q1の外縁)に接し、全体が写っていない細胞等は、画像解析の対象から除外される。全体が写っていない細胞等は、粒径が実際よりも小さく計測されるからである。このように、画像の外縁(撮像視野Q1の外縁)に接するオブジェクトを削除したとしても、個々の細胞等を、撮像部30において複数回に亘り重複して撮像することで、削除の影響は軽減される。
ステップS4において、CPU72は、所定サイズよりも小さいオブジェクトを削除する処理を行う。細胞塊を形成しない培養においては、細胞の粒径よりも小さいデブリスを除去するためにこの処理を行う。一方、細胞塊を形成する培養においては、例えば、粒径が50μm以下の細胞塊は、その後の増殖は期待できず死細胞になる場合が多いので、そのような細胞塊を画像解析の対象から除外するためにこの処理を行う。
ステップS5において、CPU72は、所定サイズよりも大きいオブジェクトを削除する処理を行う。培養液中に細胞塊の粒径よりも顕著に大きい気泡が混入することが起こり得る。従って、通常の細胞塊の大きさと比較して顕著に大きいオブジェクトは、削除して画像解析の対象から除外することが好ましい。
ステップS6において、CPU72は、個々のオブジェクトについて粒子解析を行う。具体的には、オブジェクトの各々について粒径及び真円度を導出する。粒径として円相当直径を導出してもよい。円相当直径は、オブジェクトの輪郭線によって画定される領域を、同じ面積を有する円とみなした場合の円の直径である。
ステップS7において、CPU72は、ステップS6において実施した粒子解析の結果を集計したものを統計データとして導出する。CPU72は、統計データとして、例えば、細胞等の所定粒径範囲ごとの個数(粒度分布)、細胞等の単位体積あたりの所定粒径範囲ごとの個数(密度分布)、細胞等の所定真円度範囲ごとの個数(真円度分布)及び細胞の総個数を導出する。導出された統計データは、出力装置76に出力される。
図8Aは、画像解析装置70によって導出された統計データとしての粒度分布の出力形態の一例を示す図である。画像解析装置70は、撮像部30によって取得された全ての画像から抽出したオブジェクトの数を、粒径の階級ごとに積算して得られた値を積算個数Naとして導出する。撮像部30において、個々の細胞等を2回以上重複して撮像している場合、積算個数Naは、実際の細胞等の個数(実個数)よりも多くなる。そこで、画像解析装置70は、以下のようにして積算個数Naを実個数Nbに換算する。
フローセル20の内寸は既知であるので、撮像部30における撮像視野Q1内の体積vは既知である。積算個数Naの導出に用いた画像の全数tと撮像視野Q1内の体積vとの積t×vを、総体積として求める。フローセル20の内部を通過した細胞懸濁液の全量(全体積)をMとすると、ある粒径の階級に属する積算個数Naに対応する実個数Nbは、下記の(1)式によって表される。
画像解析装置70は、上記のようにして求めた積算個数Na及び実個数Nbを二次元配列として表現したものを、粒度分布として出力装置76に出力する。
画像解析装置70は、上記のようにして求めた積算個数Na及び実個数Nbを二次元配列として表現したものを、粒度分布として出力装置76に出力する。
図8Bは、画像解析装置70によって導出された統計データとしての真円度分布の出力形態の一例を示す図である。画像解析装置70は、撮像部30によって取得された全ての画像から抽出したオブジェクトの数を、真円度の階級ごとに積算して得たられた値を積算個数Naとして導出する。画像解析装置70は、上記の(1)式に従って積算個数Naを実個数Nbに換算する。画像解析装置70は、上記のようにして求めた積算個数Na及び実個数Nbを二次元配列として表現したものを、真円度分布として出力装置76に出力する。
また、画像解析装置70は、単位体積あたりのオブジェクトの数を、粒径の階級ごとに求めた結果を、細胞等の密度分布として導出する。細胞等の密度分布は、以下のようにして導出することができる。すなわち、フローセル20の内寸は既知であるので、撮像部30における撮像視野Q1内の体積vは既知である。粒度分布の導出に用いた画像の全数tと撮像視野Q1内の体積vとの積t×vを、総体積として求める。粒径の階級ごとに積算した積算個数Naとすると、ある粒径の階級に属する細胞等の、単位体積あたり個数(密度)dは、下記の(2)式によって表される。
また、画像解析装置70は、フローセル20を通過した細胞懸濁液の全量(全体積)に含まれる単一細胞の総個数を以下のように導出する。上記の(2)式から、細胞懸濁液の単位体積あたりの細胞等の所定粒径範囲ごとの個数(密度分布)を求めることができる。また、単一細胞の平均的な粒径は既知であるので、単一細胞を球体とみなした場合の単一細胞の体積を求めることができる。同様に、細胞塊の粒径は計測済みであるので、細胞塊を球体とみなした場合の各細胞塊の体積を粒径に基づいて求めることができる。各細胞塊の体積を、単一細胞の体積で除算することで、各細胞塊を構成する単一細胞の数を求めることができる。このような計算により、細胞懸濁液の単位体積あたりの単一細胞の数Ncを求めることができる。そして、下記の(3)式に示すように、フローセル20を通過した細胞懸濁液の全量(全体積)Mと細胞懸濁液の単位体積あたりの単一細胞の数Ncとの積を、フローセル20を通過した細胞懸濁液の全量(全体積)に含まれる単一細胞の総個数Nxとして求めることができる。
以上のように、本実施形態に係る撮像ユニット10は、フローセル20の内部を通過する細胞等を捉えた複数の画像を取得する。また、撮像ユニット10は、複数の画像の各々について画像解析を行うことで、細胞等の各々について粒径及び真円度を導出し、粒度分布、密度分布、真円度分布及び細胞の総個数を細胞等の統計データとして導出する。
本実施形態に係る撮像ユニット10による細胞等の計測手法によれば、細胞等の採取行為が不要である。これにより、生物学的汚染のリスクを回避することができ、また、細胞を消費することもない。また、細胞等の計測を自動で行うことができるので、従来の人手による手法と比較して、手間と時間を大幅に削減することができる。
また、細胞培養装置において培養されている全ての細胞が通過する流路の途中に撮像ユニット10を設置することで、細胞培養装置において培養されている全ての細胞を計測対象とすることができる。従って、採取された一部の細胞のみを計測対象とする従来の計測手法と比較して、計測精度を高めることができる。
また、フローセル20は、光軸方向D2に沿った厚さL1が幅方向D3における長さL3に対して顕著に小さい扁平形状を有している。これにより、フローセル20の内部を通過する細胞等の重なりが発生しにくくなり、且つ、光軸方向D2の全域が撮像部30の焦点深度の範囲内に収まりやすくなる。従って、撮像部30における撮像において、深度方向の影響を少なくすることができる。また、フローセル20を扁平形状にすることで、撮像部30における撮像視野Q1内により多くの細胞等を含めることができ、撮像及びその後の画像解析を効率的に行うことが可能となる。また、フローセル20が板厚が略一定の2枚の平板を、それらの主面が互いに平行となるように配置した構成を有しているので、フローセル20の表面形状に起因する像の歪は、発生しない。
また、フローセル20の幅方向D3における全域が、撮像部30における撮像視野Q1内に収まっている。従って、フローセル20の内部に細胞懸濁液を導入しつつ、撮像部30が連続的な撮像を行うことで、細胞懸濁液の液量にかかわらず、細胞懸濁液中に含まれる全ての細胞等を撮像することが可能である。
また、撮像部30が、テレセントリックレンズ32を備えることで、フローセル20の内部を通過する細胞等をシルエット像として撮像することが可能となる。このように、細胞等をシルエット像として撮像することで、細胞等の粒径及び個数を正確に計測することが可能となる。また、テレセントリックレンズ32は、撮像対象物が光軸方向に移動した場合でも像の大きさが殆ど変化しないという特長を有するので、フローセル20の内部を通過する細胞等の粒径を極めて正確に計測することが可能となる。
また、本実施形態に係る撮像ユニット10は、光源41及びテレセントリックレンズ42を含んで構成される照明部40を有する。照明部40は、撮像部30側のテレセントリックレンズ32の光軸に略平行な平行光を照明光として出射する。これにより、撮像部30によって取得される画像において、細胞等の輪郭をシャープにすることができ、細胞等の粒径を正確に計測することができる。
図9は、複数の撮像ユニット10を備えた、本開示の技術の実施形態に係る細胞培養装置100の構成の一例を示す図である。なお、細胞培養装置100が備える3つの撮像ユニット10を互いに区別するために、それぞれ、撮像ユニット10A、10B、10Cと表記する。
細胞培養装置100は、細胞懸濁液が収容される培養容器110及び貯留容器120を有する。また、細胞培養装置100は、細胞懸濁液に所定の処理を施す処理部として、分割部130、濃縮部140及び混合部150を有する。また、細胞培養装置100は、培養容器110、貯留容器120、分割部130、濃縮部140及び混合部150の相互間で、細胞懸濁液の移送を行うための流路F1~F13を有する。また、細胞培養装置100は、細胞懸濁液の液流を発生させるポンプP1及びP2と、細胞懸濁液の流れ方向を制御する方向制御弁V1~V5と、を有する。また、細胞培養装置100は、ポンプP1及びP2、方向制御弁V1~V5、後述する開閉バルブ171~173及び撮像ユニット10A、10B、10Cの駆動制御を行う制御部160を有している。なお、ポンプP1及びP2、方向制御弁V1~V5、開閉バルブ171~173及び撮像ユニット10A、10B、10Cは、それぞれ、制御配線によって制御部160に接続され得るが、図9においては、各制御配線の図示を省略している。
培養容器110は、細胞等を培地とともに収容し、収容された細胞を培養するための容器である。培養容器110の形態は、特に限定されず、例えば、ガラス製またはステンレス製の容器やプラスチック製のバッグの形態を有する容器を使用することが可能である。培養容器110は、例えば、温度30℃~40℃(好ましくは37℃)且つCO2濃度2%~10%(好ましくは5%)に制御され且つ密閉されたインキュベータ(図示せず)内に収容され得る。
培養容器110に接続された流路F1上の、培養容器110の流通口111の近傍には、開閉バルブ171が設けられている。開閉バルブ171は、培養容器110から細胞懸濁液を流出させる場合及び培養容器110に細胞懸濁液を流入させる場合に開状態に制御され、それ以外の場合は閉状態に制御される。開閉バルブ171の開閉制御は、制御部160によって行われる。
分割部130は、培養容器110内において細胞を培養することによって生じる細胞塊を、粒径のより小さい複数の細胞塊に分割する分割処理を行う処理部である。多能性幹細胞の培養においては、細胞を培養することによって複数の単一細胞が凝集して細胞塊が形成され、細胞の増殖に伴い細胞塊の粒径は大きくなってゆく。細胞塊の粒径が過大となると、細胞塊同士が接着融合し、細胞塊の中心部の細胞が壊死するといった問題が生じ得る。従って、細胞塊の粒径が過大となることを防止するために、培養期間中の適切な時期に、細胞塊を、粒径がより小さい複数の細胞塊に分割する分割処理が必要となる。
分割部130は、細胞塊の粒径よりも小さいサイズの網目のメッシュを有する。細胞塊をメッシュに通すことで、細胞塊はメッシュの網目サイズに応じた粒径の複数の細胞塊に分割される。分割部130は、流入口131及び流出口132を有し、流入口131から流入した細胞懸濁液に含まれる細胞塊を分割して、処理済みの細胞懸濁液を流出口132から流出する。なお、分割部130によって分割された細胞塊は、培養容器110内に収容され、新たな培養サイクルが開始される。このように、分割処理後に、新たな培養サイクルが開始されることから、分割処理を継代処理と捉えることができる。
濃縮部140は、細胞懸濁液に含まれる培地と細胞等とを膜分離することによって細胞懸濁液中の細胞の濃度を高める濃縮処理を行う処理部である。濃縮部140は、例えば、タンジェンシャルフローフィルタの構成を有しており、細胞懸濁液が濾過膜の表面に沿って流れるように構成されている。図10は、濃縮部140によるフィルトレーションの態様の一例を示す図である。濃縮部140は、例えば、中空糸からなる濾過膜143を有する。なお、濃縮部140は、細胞懸濁液の流れ方向が、濾過膜の膜面に対して交差する方向となるデッドエンドフローフィルタの構成を有していてもよい。濃縮部140は、流入口141及び流出口142を有し、流入口141から流入した細胞懸濁液に濃縮処理を施して、処理済みの細胞懸濁液を流出口142から流出する。濃縮部140の濾過膜143を透過したデブリスを含む使用済みの培地は、廃液として廃棄される。ろ過側には負圧を印加するポンプP3が接続されている。
混合部150は、濃縮された細胞懸濁液と培地供給部(図示せず)から供給される新鮮培地とを混合して、培地中の細胞の密度を均一する混合処理を行う処理部である。混合部150は、駆動部を有しないスタティックミキサとしての構成を有していることが好ましく、例えば、管状体と、管状体の内部に固定設置され、管状体の内部にらせん状の流路を形成する撹拌エレメントと、を含んで構成され得る。なお、混合部150は、撹拌翼を回転駆動することにより撹拌及び混合を行うものであってもよい。
貯留容器120は、細胞懸濁液を一次的に貯留しておくための容器である。貯留容器120の形態は、特に限定されず、例えば、ガラス製またはステンレス製の容器、プラスチック製のバッグの形態を有する容器を使用することが可能である。
貯留容器120に接続された流路F9上の、貯留容器120の流出口121の近傍には、開閉バルブ172が設けられている。開閉バルブ172は、貯留容器120から細胞懸濁液を流出させる場合に開状態に制御され、それ以外の場合は閉状態に制御される。開閉バルブ172の開閉制御は、制御部160によって行われる。
流路F3は、分割部130の流入口131に接続された流路F4と、濃縮部140の流入口141に接続された流路F5とに分岐し、流路F3、F4及びF5の交差部に方向制御弁V3が設けられている。また、分割部130の流出口132に接続された流路F6と、濃縮部140の流出口142に接続された流路F7は、流路F8に合流し、流路F6、F7及びF8の交差部に方向制御弁V4が設けられている。方向制御弁V3及びV4を切り替えることにより、分割部130による分割処理または濃縮部140による濃縮処理を選択的に実施することが可能である。
撮像ユニット10Aは、分割部130及び濃縮部140の上流側(流入口側)の流路F3の途中に設けられている。すなわち、撮像ユニット10Aのフローセル20は、流路F3の途中に挿入されている。撮像ユニット10Bは、分割部130及び濃縮部140の下流側(流出口側)の流路F8の途中に設けられている。すなわち、撮像ユニット10Bのフローセル20は、流路F8の途中に挿入されている。撮像ユニット10Cは、混合部150の下流側の流路F12の途中に設けられている。すなわち、撮像ユニット10Cのフローセル20は、流路F12の途中に挿入されている。
細胞培養装置100において、分割処理を行う場合の各部の動作について以下に説明する。制御部160は、方向制御弁V1~V4を制御することにより、培養容器110に収容された細胞懸濁液が、分割部130を経由して貯留容器120に至る送液ルートを形成する。その後、制御部160は、開閉バルブ171を開状態に制御するとともに、ポンプP1を稼働させる。これにより、培養容器110に収容されている細胞懸濁液が、流路F1、F2、F3及びF4を経由して分割部130に流入する。
制御部160は、流路F3の途中に設けられた撮像ユニット10Aのフローセル20に細部懸濁液が到達するタイミングで撮像ユニット10Aにおける撮像を開始させる。ポンプP1による送液の開始時点から撮像ユニット10Aによる撮像の開始時点までのタイムラグは、ポンプP1における単位時間あたりの送液流量と、ポンプP1と撮像ユニット10Aとの間の流路の容積から推定することが可能である。細胞懸濁液が、流路F3を通過している間、細胞懸濁液に含まれる細胞等が撮像ユニット10Aによって連続的に撮像され、複数の画像が取得される。撮像ユニット10Aは、取得した複数の画像に基づいて、分割処理の直前における細胞等の統計データを導出する。培養容器110に収容されている全ての細胞等が、撮像ユニット10Aのフローセル20を通過するので、培養細胞の全てが統計データに反映される。制御部160は、細胞懸濁液の終端が撮像ユニット10Aのフローセル20を通過し終わるタイミングで撮像ユニット10Aにおける撮像を終了させる。このように、本実施形態に係る細胞培養装置100において、ポンプP1による送液動作と撮像ユニット10Aによる撮像動作は連動している。
分割部130に流入した細胞懸濁液に含まれる細胞塊は、より粒径の小さい複数の細胞塊に分割される。分割処理が施された細胞懸濁液は、流路F6及びF8を経由して貯留容器120内に収容される。
制御部160は、流路F8の途中に設けられた撮像ユニット10Bのフローセル20に細部懸濁液が到達するタイミングで撮像ユニット10Bにおける撮像を開始させる。細胞懸濁液が、流路F8を通過している間、細胞懸濁液に含まれる細胞等が撮像ユニット10Bによって連続的に撮像され、複数の画像が取得される。撮像ユニット10Bは、取得した複数の画像に基づいて、分割処理の直後における細胞等の統計データを導出する。培養容器110に収容されている全ての細胞等が、撮像ユニット10Bのフローセル20を通過するので、培養細胞の全てが統計データに反映される。制御部160は、細胞懸濁液の終端が撮像ユニット10Bのフローセル20を通過し終わるタイミングで撮像ユニット10Bにおける撮像を終了させる。
分割処理が完了すると、制御部160は、方向制御弁V1、V2及びV5を制御することにより、貯留容器120に貯留された細胞懸濁液が、流路F9、F10、F13及びF1を経由して培養容器110に至る送液ルートを形成する。その後、制御部160は、開閉バルブ171及び172をそれぞれ開状態に制御するとともに、ポンプP2を稼働させる。これにより、貯留容器120に収容されていた細胞懸濁液が、流路F9、F10、F13及びF1を経由して培養容器110に流入し、培養容器110において、新たな培養サイクルが開始される。
以上のように、本実施形態に係る細胞培養装置100によれば、分割部130による分割処理が実施されると、分割処理の前後における細胞等の統計データが取得される。
細胞培養においては、細胞から分泌される代謝物などによって培地が変質する。そのため、培養期間内における適切な時期に、培養容器110内の培地を、新鮮な培地に交換する培地交換処理が必要となる。培地交換処理は、細胞懸濁液に含まれる使用済み培地と細胞等とを分離することによって細胞懸濁液中の細胞の濃度を高める濃縮処理と、濃縮された細胞懸濁液に新鮮培地を添加し、その後、これらを混合する希釈・混合処理と、を含む。
細胞培養装置100において、濃縮処理を行う場合の各部の動作について以下に説明する。制御部160は、方向制御弁V1~V4を制御することにより、培養容器110に収容された細胞懸濁液が、濃縮部140を経由して貯留容器120に至る送液ルートを形成する。その後、制御部160は、開閉バルブ171を開状態に制御するとともに、ポンプP1を稼働させる。これにより、培養容器110に収容されている細胞懸濁液が、流路F1、F2、F3及びF5を経由して濃縮部140に流入する。
制御部160は、流路F3の途中に設けられた撮像ユニット10Aのフローセル20に細部懸濁液が到達するタイミングで撮像ユニット10Aにおける撮像を開始させる。ポンプP1による送液の開始時点から撮像ユニット10Aによる撮像の開始時点までのタイムラグは、ポンプP1における単位時間あたりの送液流量と、ポンプP1と撮像ユニット10Aとの間の流路の容積から推定することが可能である。細胞懸濁液が、流路F3を通過している間、細胞懸濁液に含まれる細胞等が撮像ユニット10Aによって連続的に撮像され、複数の画像が取得される。撮像ユニット10Aは、取得した複数の画像に基づいて、濃縮処理の直前における細胞等の統計データを導出する。培養容器110に収容されている全ての細胞等が、撮像ユニット10Aのフローセル20を通過するので、培養細胞の全てが統計データに反映される。制御部160は、細胞懸濁液の終端が撮像ユニット10Aのフローセル20を通過し終わるタイミングで撮像ユニット10Aにおける撮像を終了させる。このように、本実施形態に係る細胞培養装置100において、ポンプP1による送液動作と撮像ユニット10Aによる撮像動作は連動している。
濃縮部140に流入した細胞懸濁液は、使用済み培地と細胞等とに膜分離される。濃縮された細胞懸濁液は、流路F6及びF8を経由して貯留容器120内に収容される。一方、濃縮部140の濾過膜を透過したデブリスを含む使用済みの培地は、廃液として廃棄される。
制御部160は、流路F8の途中に設けられた撮像ユニット10Bのフローセル20に細部懸濁液が到達するタイミングで撮像ユニット10Bにおける撮像を開始させる。細胞懸濁液が、流路F8を通過している間、細胞懸濁液に含まれる細胞等が撮像ユニット10Bによって連続的に撮像され、複数の画像が取得される。撮像ユニット10Bは、取得した複数の画像に基づいて、濃縮処理の直後における細胞等の統計データを導出する。培養容器110に収容されている全ての細胞等が、撮像ユニット10Bのフローセル20を通過するので、培養細胞の全てが統計データに反映される。制御部160は、細胞懸濁液の終端が撮像ユニット10Bのフローセル20を通過し終わるタイミングで撮像ユニット10Bにおける撮像を終了させる。
濃縮部140と貯留容器120との間で細胞懸濁液を循環させることにより、細胞懸濁液の濃度が所望の濃度になるまで、濃縮処理を複数回に亘って実施してもよい。この場合、制御部160は、撮像ユニット10Bによって取得される濃縮処理後の統計データに基づいて、濃縮処理の完了を判定してもよい。
図11は、制御部160において実施される濃縮処理の完了判定の一例を示すフローチャートである。ステップS11において、制御部160は、撮像ユニット10Bによって導出された、直近の濃縮処理後における、細胞等の所定粒径範囲ごとの個数(粒度分布)が、目標とする状態に達しているか否かを判定する。なお、本ステップにおいて、細胞等の単位体積あたりの個数(密度分布)が、目標とする状態に達しているか否かを判定してもよい。制御部160は、濃縮処理後における細胞等の粒度分布または密度分布が、目標とする状態に達していないと判定した場合には、処理をステップS12に移行する。
ステップS12において、制御部160は、濃縮処理を再度実施する。すなわち、制御部160は、方向制御弁V2、V3及びV4を制御することにより、貯留容器120に貯留された細胞懸濁液が、濃縮部140を経由して再び貯留容器120に戻る送液ルートを形成する。その後、制御部160は、開閉バルブ172を開状態に制御するとともに、ポンプP2を稼働させる。これにより、貯留容器120に収容されている細胞懸濁液が、流路F9、F3及びF5を経由して濃縮部140に流入し、濃縮部140において濃縮処理が再び実施される。2回目以降の濃縮処理においても、撮像ユニット10A及び10Bのそれぞれにおいて、細胞等の統計データが取得される。その後処理は、ステップS11に戻される。
一方、ステップS11において制御部160が、濃縮処理後における細胞等の粒度分布または密度分布が、目標とする状態に達したと判定した場合には、処理はステップS13に移行される。ステップS13において、制御部160は、濃縮処理は完了したものと判定し、濃縮処理を終了させる。
以上のように、本実施形態に係る細胞培養装置100によれば、濃縮部140による濃縮処理が実施されると、濃縮処理の前後における細胞等の統計データが取得される。
細胞培養装置100において、希釈・混合処理を行う場合の各部の動作について以下に説明する。制御部160は、開閉バルブ173を開状態に制御することにより、濃縮処理済みの細胞懸濁液が貯留された貯留容器120内に新鮮培地を供給する。これにより、細胞懸濁液が希釈され、細胞懸濁液中の細胞の濃度が低下する。
続いて、制御部160は、方向制御弁V2及びV5を制御することにより、貯留容器120内に貯留された希釈処理済みの細胞懸濁液が、混合部150を経由して再び貯留容器120に戻る送液ルートを形成する。その後、制御部160は、開閉バルブ172を開状態に制御するとともに、ポンプP2を稼働させる。これにより、貯留容器120に収容されている希釈処理済みの細胞懸濁液が、流路F9、F10及びF11を経由して混合部150に流入し、混合部150において混合処理が実施される。混合処理が施された細胞懸濁液は、流路F12を経由して貯留容器120に戻される。
制御部160は、流路F12の途中に設けられた撮像ユニット10Cのフローセル20に細部懸濁液が到達するタイミングで撮像ユニット10Cにおける撮像を開始させる。細胞懸濁液が、流路F12を通過している間、細胞懸濁液に含まれる細胞等が撮像ユニット10Cによって連続的に撮像され、複数の画像が取得される。撮像ユニット10Cは、取得した複数の画像に基づいて、混合処理の直後における細胞等の統計データを導出する。培養容器110に収容されていた全ての細胞等が、撮像ユニット10Cのフローセル20を通過するので、培養細胞の全てが統計データに反映される。制御部160は、細胞懸濁液の終端が撮像ユニット10Cのフローセル20を通過し終わるタイミングで撮像ユニット10Cにおける撮像を終了させる。
混合部150と貯留容器120との間で細胞懸濁液を循環させることにより、細胞懸濁液の混合状態が所望の状態になるまで、混合処理を複数回に亘って実施してもよい。この場合、制御部160は、撮像ユニット10Cによって取得される混合処理の直後における細胞等の統計データに基づいて、混合処理の完了を判定してもよい。
図12は、制御部160において実施され混合処理の完了判定の一例を示すフローチャートである。ステップS21において、制御部160は、撮像ユニット10Cによって取得された各画像に含まれる細胞等の個数を画像順に並べ、1画像に含まれる細胞等の個数の画像間における変動の幅を取得する。すなわち、制御部160は、混合処理後における細胞等の密度の経時変化を取得する。制御部160は、1画像に含まれる細胞等の個数の画像間における変動の幅が、所定の範囲内に収まっているか否かを判定する。すなわち、この判定処理において、培地中における細胞等の密度が均一であるか否かが判定される。制御部160は、1画像に含まれる細胞等の個数の画像間における変動の幅が、所定の範囲内に収まっていないと判定した場合には、処理をステップS22に移行する。
ステップS22において、制御部160は、混合処理を再度実施する。すなわち、制御部160は、方向制御弁V2及びV5を制御することにより、貯留容器120に貯留された細胞懸濁液が、混合部150を経由して再び貯留容器120に戻る送液ルートを形成する。その後、制御部160は、開閉バルブ172を開状態に制御するとともに、ポンプP2を稼働させる。これにより、貯留容器120に収容されている希釈処理済みの細胞懸濁液が、流路F9、F10及びF11を経由して混合部150に流入し、混合部150において混合処理が再び実施される。2回目以降の混合処理においても、撮像ユニット10Cにおいて統計データが取得される。その後処理は、ステップS21に戻される。
一方、ステップS21において制御部160が1画像に含まれる細胞等の個数の画像間における変動の幅が、所定の範囲内に収まっていると判定した場合には、処理はステップS23に移行される。ステップS23において、制御部160は、混合処理は完了したものと判定し、混合処理を終了させる。
以上のように、本実施形態に係る細胞培養装置100によれば、混合部150による混合処理が実施されると、混合処理の後における細胞等の統計データが取得される。
濃縮処理及び希釈・混合処理を含む培地交換処理が完了すると、制御部160は、方向制御弁V1、V2及びV5を制御することにより貯留容器120に貯留された細胞懸濁液が流路F9、F10、F13及びF1を経由して培養容器110に至る送液ルートを形成する。その後、制御部160は、開閉バルブ171及び172をそれぞれ開状態に制御とするとともに、ポンプP2を稼働させる。これにより、貯留容器120に収容されている細胞懸濁液が、流路F9、F10、F13及びF1を経由して培養容器110に流入し、培養容器110において、細胞培養が継続される。
図13は、本開示の技術の実施形態に係る撮像ユニット10を用いて取得した細胞等の粒度分布と、市販システムを用いて取得した細胞等の粒度分布とを示すグラフである。市販システムとしてベックマン・コールター社製のMultisizer 4eを用いた。図13において、横軸は細胞等の粒径を示し、縦軸は、細胞懸濁液1mLあたりの細胞等の個数を示す。Multisizer 4eにおいて正確な測定を行うためには、細胞の濃度を測定に適した濃度に調整する必要がある。このため、本実施形態に係る撮像ユニット10による計測を終了した細胞懸濁液を20倍に希釈し、20mL程度サンプリングしたものを、Multisizer 4eによる計測に用いた。Multisizer 4eは、粒度分布を1mLあたりの個数に換算して出力する。図13において、本実施形態に係る撮像ユニット10を用いて取得した粒度分布を、Multisizer 4eを用いて取得した粒度分布と比較できるスケールにまで縮小して表示した。本実施形態に係る撮像ユニット10を用いて取得した粒度分布と、Multisizer 4eを用いて取得した粒度分布との差異は±10%程度であり、両者で略一致した結果が得られた。このように、本実施形態に係る撮像ユニット10によれば、高精度な粒度分布を取得できる市販システムと同等の精度で粒度分布を取得できることが確認された。
図14A及び図14Bは、それぞれ、本開示の技術の実施形態に係る細胞培養装置100に設けられた撮像ユニット10A及び10Bを用いて取得した、分割部130による分割処理の直前及び直後における細胞等の粒度分布を示すグラフである。図14A及び図14Bにおいて、横軸は細胞等の粒径を示し、縦軸は細胞等の個数を示している。分割部130の上流側(流入口131側)に設けられた撮像ユニット10Aを用いて分割処理の直前における細胞等の粒度分布を取得し、分割部130の下流側(流出口132側)に設けられた撮像ユニット10Bを用いて分割処理の直後における細胞等の粒度分布を取得した。分割処理を行うことにより、粒径が200μmを超える細胞塊の個数が減少する一方、粒径が200μmよりも小さい細胞塊の個数が増加していることがわかる。また、分割処理を行うことにより、細胞塊の総個数が増加していることがわかる。
このように、本実施形態に係る細胞培養装置100によれば、分割部130による分割処理の直前及び直後における細胞等の粒度分布を取得することが可能である。分割処理の直前における細胞等の粒度分布を見ることで、分割処理の直前の細胞塊が、どの程度にまで成長したものなのかを把握することができる。また、分割処理の直前における細胞等の粒度分布と、分割処理の直後における細胞等の粒度分布とを比較して分布のピークシフトを見ることで、分割処理の実態を把握することができる。このように、本実施形態に係る細胞培養装置100によれば、分割処理の実態を可視化することができるので、分割処理が想定通りに実施されているか否かを監視することができる。
分割処理後における細胞塊の粒度分布は、細胞塊が分割部130を構成するメッシュを通過する際の流速に依存する。従って、分割処理後における細胞塊の粒度分布に基づいて、細胞塊がメッシュを通過する際の流速を定めてもよい。例えば、流速と粒度分布との相関を予め求めておき、この相関を用いて、分割処理後における細胞塊の粒度分布が所望の粒度分布となるように流速を定めてもよい。
図15A及び図15Bは、撮像ユニット10A及び10Bを用いて取得した、濃縮部140による濃縮処理前の細胞等の粒度分布、及び濃縮部140による濃縮処理を1回、3回、5回、15回及び23回実施した後の細胞等の粒度分布を示すグラフである。図15A及び図15Bにおいて、横軸は細胞等の粒径を示し、縦軸は細胞等の個数を示している。図15Bは、図15Aと同じ測定結果を、縦軸のスケールを拡大して示したものである。濃縮部140の上流側(流入口141側)に設けられた撮像ユニット10Aを用いて濃縮処理前(処理回数0回目)の細胞等の粒度分布を取得し、濃縮部140の下流側(流出口142側)に設けられた撮像ユニット10Bを用いて濃縮処理後の細胞等の粒度分布を取得した。なお、濃縮部140を構成するフィルタ膜の供給側を流れる細胞懸濁液の流速(本流の流速)を120mL/minとし、濃縮部140を構成するフィルタ膜の濾過側を流れる廃液の流速5mL/minとした。図15Aに示すように、濃縮処理の回数が増すごとに粒径が50μm以下の細胞等の個数が減少する一方、粒径が65μm以上の細胞等の個数が殆ど変化していないことがわかる。すなわち、濃縮部140において濃縮処理が、適切に行われていることが確認できた。
このように、本実施形態に係る細胞培養装置100によれば、濃縮部140による濃縮処理の前後における細胞等の粒度分布を取得することが可能である。また、濃縮処理を複数回に亘って実施した場合における細胞等の粒度分布の推移を把握することができる。このように、本実施形態に係る細胞培養装置100によれば、濃縮処理の実態を可視化することができるので、濃縮処理が想定通りに実施されているか否かを監視することができる。例えば、濃縮処理後において粒径が比較的小さい粒子の個数が、目標値を大きく上回る場合、ろ過側の引圧が小さい、またはフィルタが目詰まりを起こしているものと推定することができる。また、粒径が比較的大きい粒子の個数が濃縮処理の途中より減少し始めた場合には、フィルタが目詰まりを起こし、フィルタの局所でろ過側への引圧が上昇し、粒子が砕かれてろ過側に流れ出たものと推定できる。この場合、引圧条件を変更する、またはフィルタを交換する等の措置を速やかに実施することができる。
また、濃縮処理を複数回に亘って実施する場合に、濃縮部140による濃縮処理後における細胞等の粒度分布または密度分布が、目標とする状態に達した場合に、濃縮処理が完了したものと判定してもよい。すなわち、図11に示すように、濃縮処理後の粒度分布を濃縮処理の完了の判定に用いてもよい。
図16は、混合部150の下流側の流路F12を流れる細胞懸濁液を、撮像ユニット10Cによって連続的に撮像し、取得した各画像に含まれる細胞等の個数を画像順に並べた結果を示すグラフである。すなわち、図16のグラフは、流路F12を流れる細胞等の密度の均一性を示している。換言すれば、細胞等と培地との混合の状態を示している。また、図16には、濃縮部140の上流側の流路F3を流れる細胞懸濁液を、撮像ユニット10Aによって連続的に撮像し、取得した各画像に含まれる細胞等の個数を画像順に並べた結果も併せて示されている。図16に示すように、混合部150の下流側の流路F12を通過する細胞等の密度が大きく変動していることがわかる。混合部150による混合処理によって細胞等と培地とが均一に混合されている場合には、各画像に含まれる細胞等の個数は、画像間で略同じになるものと考えられる。すなわち、図16に示す結果から、培地中の細胞等の密度が不均一であり、混合部150による混合処理について改善の余地があることが理解できる。
このように、本実施形態に係る細胞培養装置100によれば、混合部150による混合処理後における細胞等と培地との混合状態を把握することができる。すなわち、混合処理の実態を把握することができ、混合処理の結果を可視化することができる。従って、混合処理が想定通りに実施されているか否かを監視することができる。例えば、上記のように、混合部150の下流側の流路F12を通過する細胞等の密度が大きく変動している場合には、細胞等が混合部150を通過する際の流速を変化させる等の措置を速やかに実施することができる。
また、混合処理を複数回に亘って実施する場合に、混合部150による混合処理後における細胞等の密度の経時変化が、目標とする状態に達した場合に、混合処理が完了したものと判定してもよい。すなわち、図12に示すように、1画像中に含まれる細胞等の個数の経時変化を混合処理の完了の判定に用いてもよい。
また、本実施形態に係る細胞培養装置100によれば、撮像ユニット10Cによって取得された複数の画像に基づいて細胞等の密度分布を導出することで、希釈処理後における細胞懸濁液の濃度を把握することができる。
本実施形態に係る細胞培養装置100によれば、培養が順調であるか否かを定量的に把握することも可能である。培養が順調であるか否かを確認するための直接的な指標としては、培養中の細胞塊の個数及び個々の細胞塊の粒径が挙げられる。分割部130による分割処理(継代処理)は細胞塊の個数を増加させる工程ではあるが、分割時に細胞にストレスが加わるため、増加した細胞塊の全てが生存できるわけではない。増加した細胞塊のうちの一部が死細胞となり分解してしまうことがある。
本実施形態に係る細胞培養装置100を用いた細胞培養においては、所定期間毎(例えば5日おき)に分割部130による分割処理(継代処理)が実施される。そこで、前回の分割処理(継代処理)の直前における細胞塊の粒度分布と、今回の分割処理(継代処理)の直前における細胞塊の粒度分布とを取得して、両者を比較する。これにより、細胞塊の個数の、継代による実質的な増加量を把握することができる。分割処理の直前における細胞塊の粒度分布は、撮像ユニット10Aによって取得された複数の画像に基づいて取得することができる。また、各培養サイクルにおいて、分割処理の直前における細胞塊の粒度分布のデータを蓄積していくことで、培養が、過去の平均的な実績と比較して順調であるか否かを判断することが可能となる。
また、前回の分割処理(継代処理)の直後における細胞等の粒度分布と、今回の分割処理(継代処理)の直前における細胞等の粒度分布とを比較して、粒度分布のピークのシフト量を見ることで、培養の1サイクル期間中に細胞塊がどの程度成長したかを把握することができる。このデータを培養のバッチごとに蓄積することで、分割処理(継代処理)後の粒径とその後の細胞の増殖の因果関係を求めることができる。すなわち、分割処理後の細胞塊の粒径をどの程度にすれば、分割処理後の細胞の増殖が最も促進されるのかを求めることができる。この結果は、分割処理の処理条件にフィードバックすることが可能であり、より好ましい処理条件を定めるための有効な手段となる。なお、分割処理(継代処理)の直後における細胞等の粒度分布は、撮像ユニット10Bによって取得された複数の画像に基づいて取得することができる。分割処理(継代処理)の直前における細胞等の粒度分布は、撮像ユニット10Aによって取得された複数の画像に基づいて取得することができる。
図17A、図17B及び図17Cは、それぞれ、細胞培養装置100による培養の1サイクル期間中の異なるタイミングで取得した細胞等の粒度分布を示すグラフである。培養サイクルの初日を0日目とした場合、図17A、図17B、図17Cは、それぞれ、1日目、3日目及び5日目の粒度分布である。各粒度分布は、混合部150の上流側に設けられた撮像ユニット10Aによって取得された複数の画像に基づいて取得した。図17A~17Cに示される各粒度分布を比較して明らかなように、時間経過とともに細胞塊の粒度分布のピークが、粒径が大きくなる方向にシフトしていることがわかる。このように、本実施形態に係る細胞培養装置100によれば、培養の1サイクル期間中における細胞塊の粒度分布の経時変化を把握することも可能であり、培養が日々順調に進行しているか否かを把握することができる。
本実施形態に係る撮像ユニット10は、細胞の培養状態の監視のみならず、細胞培養装置を構成するエレメントが、培養に適しているか否かを判定するために使用することも可能である。例えば、細胞懸濁液の送液手段として用いられるチューブポンプは、外部環境と絶縁して送液を行うことができるので、生物的汚染が起きにくい。このため、細胞懸濁液の送液手段として使用されことが多い。しかしながら、チューブポンプは、チューブを機械的にしごくことで送液を行うので、細胞塊を破壊してしまうおそれがある。そこで、本実施形態に係る撮像ユニット10を用いて、チューブポンプが細胞塊に与える影響について確認した。
図18は、チューブポンプの入口と出口に本実施形態に係る撮像ユニット10を設置して、細胞懸濁液を繰り返しチューブポンプに通した場合の、細胞塊の粒度分布の変化を観察した結果を示したグラフである。図18には、細胞懸濁液をチューブポンプに通す前の粒度分布(通過回数0回)及び細胞懸濁液をチューブポンプに1回、3回及び6回後の細胞塊の粒度分布が示されている。
細胞懸濁液がチューブポンプを通過する前(通過回数0回)においては、粒径155μm近辺に、細胞塊の個数のピークがあることがわかる。細胞懸濁液をチューブポンプに1回通すだけで、粒度分布のピークが、粒径が小さくなる方向にシフトしていることがわかる。その後、細胞懸濁液を繰り返しチューブポンプに通すと、粒度分布の変化は小さいものの、粒径が小さくなる方向に変化していることがわかる。以上の結果から、細胞懸濁液をチューブポンプが細胞塊を砕いていると推測することができる。
以上の説明から明らかなように、本実施形態に係る細胞培養装置100によれば、細胞懸濁液が流通する流路の途中に設けられた撮像ユニット10によって取得された複数の画像に基づいて培養細胞の計測を行うので、細胞等の採取行為が不要である。これにより、生物学的汚染のリスクを回避することができ、また、細胞を消費することもない。また、培養細胞の計測を自動で行うことができるので、従来の人手による手法と比較して、手間と時間を大幅に削減することができる。
また、本実施形態に係る細胞培養装置100によれば、細胞培養装置100において培養されている全ての細胞が通過する流路の途中に撮像ユニット10が設置されているので、全ての細胞を計測対象とすることができる。従って、採取された一部の細胞のみを計測対象とする従来の計測手法と比較して、細胞の計測精度を高めることができる。
また、本実施形態に係る細胞培養装置100によれば、分割部130、濃縮部140、混合部150によって実施される各処理の実態を可視化することができる。換言すれば、分割部130、濃縮部140、混合部150によって実施される各処理が、想定通りに実施されているか否かを監視することができる。従って、各処理部における異常の早期発見が可能となり、必要な措置を速やかに講じることができる。また、異常が発見された場合に、培養の打ち切りの判断を早期に行うことも可能となり、無駄なコストの発生を最小化できる。
また、本実施形態に係る撮像ユニット10による、細胞の計測は、培養中のみならず、細胞培養装置の立ち上げ時においても利用することが可能である。例えば、撮像ユニット10によって取得された統計データを、分割処理、濃縮処理及び混合処理における処理条件を決定する場合に利用することができる。本実施形態に係る撮像ユニット10を用いることで、的確な条件評価を省力的に行うことができるので、人的テスト負荷の削減のみならず、テスト水準数の削減も可能になる。その結果、テスト期間の短縮とテストに用いる培養液及び細胞のコストを削減することができる。
なお、2017年1月31日に出願された日本国特許出願2017-015997の開示は、その全体が参照により本明細書に取り込まれる。また、本明細書に記載された全ての文献、特許出願および技術規格は、個々の文献、特許出願、および技術規格が参照により取り込まれることが具体的かつ個々に記された場合と同程度に、本明細書中に参照により取り込まれる。
Claims (38)
- 細胞及び細胞塊の少なくとも一方を粒状体として含む細胞懸濁液が流通する流路と、
前記流路の途中に設けられ、前記細胞懸濁液が前記流路を流れている間、前記細胞懸濁液に含まれる複数の前記粒状体を連続的に撮像して複数の画像を取得する撮像ユニットと、
を含む細胞培養装置。 - 前記複数の画像に基づいて、複数の前記粒状体について統計データを導出する導出部を更に含む
請求項1に記載の細胞培養装置。 - 前記統計データは、複数の前記粒状体の、所定粒径範囲ごとの個数、単位体積あたりの所定粒径範囲ごとの個数、所定真円度範囲ごとの個数及び前記粒状体を構成する細胞の総個数の少なくとも1つを含む
請求項2に記載の細胞培養装置。 - 前記撮像ユニットは、
前記細胞懸濁液が通過するフローセルと、
前記フローセルに撮像視野が設定された複数の撮像素子を含む撮像部と、
を含む請求項1から請求項3のいずれか1項に記載の細胞培養装置。 - 前記フローセルは、
前記細胞懸濁液が流入する流入口と、
前記流入口から流入した前記細胞懸濁液を流出させる流出口と、
前記流入口と前記流出口との間に設けられ、前記撮像部の光軸方向における厚さが、前記流入口及び前記流出口の前記光軸方向における厚さよりも薄く且つ光透過性を有する部材で構成された扁平流路と、
を含み、
前記扁平流路に前記撮像視野が設定されている
請求項4に記載の細胞培養装置。 - 前記フローセルは、
前記細胞懸濁液が流入する流入口と、
前記流入口から流入した前記細胞懸濁液を流出させる流出口と、
前記流入口と前記流出口との間に設けられ、前記撮像部の光軸方向における厚さが、前記フローセルの内部を流れる前記細胞懸濁液の流れ方向と交差する幅方向における長さよりも薄く且つ光透過性を有する部材で構成された扁平流路と、
を含み、
前記扁平流路に前記撮像視野が設定されている
請求項4または請求項5に記載の細胞培養装置。 - 前記扁平流路の前記光軸方向における厚さが均一である
請求項5または請求項6に記載の細胞培養装置。 - 前記複数の撮像素子は、前記扁平流路の前記細胞懸濁液の流れ方向と交差する幅方向における全域を前記撮像視野に含んでいる
請求項5から請求項7のいずれか1項に記載の細胞培養装置。 - 前記撮像部は、
前記複数の撮像素子を有するエリアセンサと、
前記エリアセンサの光入射側に設けられた第1のテレセントリックレンズと、
を含む
請求項5から請求項8のいずれか1項に記載の細胞培養装置。 - 前記撮像ユニットは、前記扁平流路に照明光を照射する照明部を更に含む、
請求項9に記載の細胞培養装置。 - 前記照明部は、
前記照明光を出射する光源と、
前記光源の光出射側に設けられた第2のテレセントリックレンズと、
を含む請求項10に記載の細胞培養装置。 - 前記第1のテレセントリックレンズの光軸と、前記第2のテレセントリックレンズの光軸とが一致している
請求項11に記載の細胞培養装置。 - 前記撮像部は、前記フローセルの内部を通過する複数の前記粒状体の各々を、1回以上撮像する
請求項4から請求項12のいずれか1項に記載の細胞培養装置。 - 前記扁平流路を流れる前記細胞懸濁液の最高速度と、前記流入口及び前記流出口を流れる前記細胞懸濁液の最高速度とが同等である
請求項5から請求項12のいずれか1項に記載の細胞培養装置。 - 前記流路に接続され、前記細胞懸濁液が収容される少なくとも1つの容器と、
前記流路に接続され、前記細胞懸濁液に処理を施す少なくとも1つの処理部と、
前記流路に前記細胞懸濁液の液流を発生させるポンプと、
を更に含む請求項1から請求項14のいずれか1項に記載の細胞培養装置。 - 前記細胞懸濁液に含まれる細胞塊を分割する分割部を前記処理部として含み、
前記撮像ユニットは、前記分割部の上流側及び下流側にそれぞれ設けられている
請求項15に記載の細胞培養装置。 - 前記細胞懸濁液を濃縮する濃縮部を前記処理部として含み、
前記撮像ユニットは、前記濃縮部の上流側及び下流側にそれぞれ設けられている
請求項15または請求項16に記載の細胞培養装置。 - 前記細胞懸濁液を混合する混合部を前記処理部として含み、
前記撮像ユニットは、前記混合部の下流側に設けられている
請求項15から請求項17のいずれか1項に記載の細胞培養装置。 - 前記ポンプと前記撮像ユニットとが連動して動作する
請求項15から請求項18のいずれか1項に記載の細胞培養装置。 - 複数の撮像素子を有する撮像部と、
細胞及び細胞塊の少なくとも一方を粒状体として含む細胞懸濁液が流入する流入口、前記流入口から流入した前記細胞懸濁液を流出させる流出口、及び前記流入口と前記流出口との間に設けられた扁平流路を有するフローセルと、
を含み、
前記扁平流路は、前記撮像部の光軸方向における厚さが、前記流入口及び前記流出口の前記光軸方向における厚さよりも薄く且つ光透過性を有する部材で構成され、
前記撮像部の撮像視野が前記扁平流路に設定されている
撮像ユニット。 - 複数の撮像素子を有する撮像部と、
細胞及び細胞塊の少なくとも一方を粒状体として含む細胞懸濁液が流入する流入口、前記流入口から流入した前記細胞懸濁液を流出させる流出口、及び前記流入口と前記流出口との間に設けられた扁平流路を有するフローセルと、
を含み、
前記扁平流路は、前記撮像部の光軸方向における厚さが、前記フローセルの内部を流れる細胞懸濁液の流れ方向と交差する幅方向における長さよりも薄く且つ光透過性を有する部材で構成され、
前記撮像部の撮像視野が前記扁平流路に設定されている
撮像ユニット。 - 前記扁平流路の前記光軸方向における厚さが均一である
請求項20または請求項21に記載の撮像ユニット。 - 前記複数の撮像素子は、前記扁平流路の前記細胞懸濁液の流れ方向と交差する幅方向における全域を前記撮像視野に含んでいる
請求項20から請求項22のいずれか1項に記載の撮像ユニット。 - 前記撮像部は、
前記複数の撮像素子を有するエリアセンサと、
前記エリアセンサの光入射側に設けられた第1のテレセントリックレンズと、
を含む
請求項20から請求項23のいずれか1項に記載の撮像ユニット。 - 前記撮像ユニットは、前記扁平流路に照明光を照射する照明部を更に含む
請求項24に記載の撮像ユニット。 - 前記照明部は、
前記照明光を出射する光源と、
前記光源の光出射側に設けられた第2のテレセントリックレンズと、
を含む請求項25に記載の撮像ユニット。 - 第1のテレセントリックレンズの光軸と、前記第2のテレセントリックレンズの光軸が一致している
請求項26に記載の撮像ユニット。 - 前記撮像部は、前記フローセルの内部を通過する複数の前記粒状体の各々を、1回以上撮像する
請求項20から請求項27のいずれか1項に記載の撮像ユニット。 - 細胞及び細胞塊の少なくとも一方を粒状体として含む細胞懸濁液が流路を流れている間、前記流路を通過する前記細胞懸濁液に含まれる複数の前記粒状体を連続的に撮像して複数の画像を取得し、
前記複数の画像に基づいて、複数の前記粒状体について統計データを取得して細胞培養の状況を監視する
培養監視方法。 - 前記統計データは、複数の前記粒状体の、所定粒径範囲ごとの個数、単位体積あたりの所定粒径範囲ごとの個数、所定真円度範囲ごとの個数及び前記粒状体を構成する細胞の総個数の少なくとも1つを含む
請求項29に記載の培養監視方法。 - 前記細胞懸濁液に含まれる細胞塊を分割する分割処理の前後における、複数の前記粒状体の所定粒径範囲ごとの個数を前記統計データとして取得する
請求項29または請求項30に記載の培養監視方法。 - 前記分割処理は、前記細胞懸濁液を所定の流速でメッシュに通す処理を含み、
前記統計データに基づいて、前記流速を定める
請求項31に記載の培養監視方法。 - 前記細胞懸濁液を濃縮する濃縮処理の後における複数の前記粒状体の所定粒径範囲ごとの個数を前記統計データとして取得する
請求項29または請求項30に記載の培養監視方法。 - 前記濃縮処理は、前記細胞懸濁液をフィルタ膜を用いて複数回に亘って膜分離する処理を含み、
前記統計データに基づいて前記濃縮処理の完了を判定する
請求項33に記載の培養監視方法。 - 前記統計データに基づいて前記フィルタ膜の目詰まりを検出する
請求項34に記載の培養監視方法。 - 前記細胞懸濁液を混合する混合処理の後における複数の前記粒状体の密度の経時変化を前記統計データとして取得する
請求項29または請求項30に記載の培養監視方法。 - 前記混合処理は、前記細胞懸濁液を複数回に亘ってミキサーに通して、複数の前記粒状体と培地とを混合する処理を含み、
前記統計データに基づいて前記混合処理の完了を判定する
請求項36に記載の培養監視方法。 - 培養期間内における所定のタイミングで複数の前記粒状体の所定粒径範囲ごとの個数を前記統計データとして取得する
請求項29または請求項30に記載の培養監視方法。
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