WO2018030365A1 - イムノクロマトグラフィー検出キット - Google Patents
イムノクロマトグラフィー検出キット Download PDFInfo
- Publication number
- WO2018030365A1 WO2018030365A1 PCT/JP2017/028679 JP2017028679W WO2018030365A1 WO 2018030365 A1 WO2018030365 A1 WO 2018030365A1 JP 2017028679 W JP2017028679 W JP 2017028679W WO 2018030365 A1 WO2018030365 A1 WO 2018030365A1
- Authority
- WO
- WIPO (PCT)
- Prior art keywords
- sample
- antibody
- substance
- detected
- detection
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Ceased
Links
Images
Classifications
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
- G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
- G01N33/50—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
- G01N33/53—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
- G01N33/558—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor using diffusion or migration of antigen or antibody
- G01N33/559—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor using diffusion or migration of antigen or antibody through a gel, e.g. Ouchterlony technique
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
- G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
- G01N33/50—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
- G01N33/53—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
- G01N33/543—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor with an insoluble carrier for immobilising immunochemicals
- G01N33/54393—Improving reaction conditions or stability, e.g. by coating or irradiation of surface, by reduction of non-specific binding, by promotion of specific binding
-
- B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
- B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
- B01L—CHEMICAL OR PHYSICAL LABORATORY APPARATUS FOR GENERAL USE
- B01L3/00—Containers or dishes for laboratory use, e.g. laboratory glassware; Droppers
- B01L3/50—Containers for the purpose of retaining a material to be analysed, e.g. test tubes
- B01L3/502—Containers for the purpose of retaining a material to be analysed, e.g. test tubes with fluid transport, e.g. in multi-compartment structures
- B01L3/5023—Containers for the purpose of retaining a material to be analysed, e.g. test tubes with fluid transport, e.g. in multi-compartment structures with a sample being transported to, and subsequently stored in an absorbent for analysis
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N21/00—Investigating or analysing materials by the use of optical means, i.e. using sub-millimetre waves, infrared, visible or ultraviolet light
- G01N21/62—Systems in which the material investigated is excited whereby it emits light or causes a change in wavelength of the incident light
- G01N21/63—Systems in which the material investigated is excited whereby it emits light or causes a change in wavelength of the incident light optically excited
- G01N21/64—Fluorescence; Phosphorescence
- G01N21/6428—Measuring fluorescence of fluorescent products of reactions or of fluorochrome labelled reactive substances, e.g. measuring quenching effects, using measuring "optrodes"
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
- G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
- G01N33/50—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
- G01N33/53—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
- G01N33/543—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor with an insoluble carrier for immobilising immunochemicals
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
- G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
- G01N33/50—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
- G01N33/53—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
- G01N33/543—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor with an insoluble carrier for immobilising immunochemicals
- G01N33/54366—Apparatus specially adapted for solid-phase testing
- G01N33/54386—Analytical elements
- G01N33/54387—Immunochromatographic test strips
- G01N33/54388—Immunochromatographic test strips based on lateral flow
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
- G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
- G01N33/50—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
- G01N33/72—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving blood pigments, e.g. haemoglobin, bilirubin or other porphyrins; involving occult blood
- G01N33/721—Haemoglobin
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N35/00—Automatic analysis not limited to methods or materials provided for in any single one of groups G01N1/00 - G01N33/00; Handling materials therefor
- G01N35/00029—Automatic analysis not limited to methods or materials provided for in any single one of groups G01N1/00 - G01N33/00; Handling materials therefor provided with flat sample substrates, e.g. slides
-
- B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
- B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
- B01L—CHEMICAL OR PHYSICAL LABORATORY APPARATUS FOR GENERAL USE
- B01L2200/00—Solutions for specific problems relating to chemical or physical laboratory apparatus
- B01L2200/14—Process control and prevention of errors
-
- B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
- B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
- B01L—CHEMICAL OR PHYSICAL LABORATORY APPARATUS FOR GENERAL USE
- B01L2300/00—Additional constructional details
- B01L2300/08—Geometry, shape and general structure
- B01L2300/0809—Geometry, shape and general structure rectangular shaped
- B01L2300/0825—Test strips
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N21/00—Investigating or analysing materials by the use of optical means, i.e. using sub-millimetre waves, infrared, visible or ultraviolet light
- G01N21/75—Systems in which material is subjected to a chemical reaction, the progress or the result of the reaction being investigated
- G01N21/77—Systems in which material is subjected to a chemical reaction, the progress or the result of the reaction being investigated by observing the effect on a chemical indicator
- G01N2021/7769—Measurement method of reaction-produced change in sensor
- G01N2021/7786—Fluorescence
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N21/00—Investigating or analysing materials by the use of optical means, i.e. using sub-millimetre waves, infrared, visible or ultraviolet light
- G01N21/75—Systems in which material is subjected to a chemical reaction, the progress or the result of the reaction being investigated
- G01N21/77—Systems in which material is subjected to a chemical reaction, the progress or the result of the reaction being investigated by observing the effect on a chemical indicator
- G01N21/78—Systems in which material is subjected to a chemical reaction, the progress or the result of the reaction being investigated by observing the effect on a chemical indicator producing a change of colour
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N21/00—Investigating or analysing materials by the use of optical means, i.e. using sub-millimetre waves, infrared, visible or ultraviolet light
- G01N21/84—Systems specially adapted for particular applications
- G01N21/8483—Investigating reagent band
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N2333/00—Assays involving biological materials from specific organisms or of a specific nature
- G01N2333/005—Assays involving biological materials from specific organisms or of a specific nature from viruses
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N2400/00—Assays, e.g. immunoassays or enzyme assays, involving carbohydrates
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
- G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
- G01N33/50—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
- G01N33/53—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
- G01N33/569—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor for microorganisms, e.g. protozoa, bacteria, viruses
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
- G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
- G01N33/50—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
- G01N33/53—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
- G01N33/577—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor involving monoclonal antibodies binding reaction mechanisms characterised by the use of monoclonal antibodies; monoclonal antibodies per se are classified with their corresponding antigens
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
- G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
- G01N33/50—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
- G01N33/58—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving labelled substances
- G01N33/582—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving labelled substances with fluorescent label
Definitions
- the present invention relates to a detection kit comprising a conjugate reagent and an immunochromatographic test strip.
- the test strip is a test strip in which a third antibody and a saccharide against a detection target are retained so as to be eluted separately from the first antibody contained in the conjugate reagent and the second antibody for immunochromatographic detection.
- the present invention particularly relates to a detection kit in which the test strip is a test strip in which a polymer viscous substance is held on the downstream side of a sample supply section so that it can be eluted.
- the present invention also relates to a detection method using these detection kits.
- a method for detecting an antigen as a substance to be detected in a sample using an immunochromatographic test strip is as follows. First, the conjugate in which the first antibody is immobilized on the label is brought into contact with the sample. By these contacts, a complex of an antigen, which is a substance to be detected in the sample, and a conjugate is formed.
- the immunochromatographic test strip has a capture site (detection site) to which the second antibody is immobilized. When the complex is provided to the carrier, the complex is captured in the capture site while expanding in the carrier. The presence / absence and strength of the complex labeling substance can be detected by visual observation or optical means.
- the presence mode of the conjugate in detection using immunochromatography includes a mode in which the conjugate exists as a conjugate portion downstream from the sample supply portion of the test strip (typically on the sample pad). Or there exists a form which exists as a conjugate reagent, such as a conjugate chip apart from a test strip (patent document 1).
- the conjugate chip is obtained by applying a conjugate to a filter that filters a sample liquid.
- the conjugate when the sample is dropped into the sample supply section, the sample will be in the sample from when it reaches the conjugate section downstream of the sample supply section. The binding reaction between the antigen to be detected and the conjugate starts.
- Patent Document 2 is known as a method for adjusting sensitivity in detection using immunochromatography.
- Patent Document 2 discloses a method of reacting an analysis target sample with a sensitivity adjusting substance in order to reduce the analysis target component.
- the sensitivity-modulating substance is an antibody labeled with an indistinguishable label (for example, a white substance that cannot be distinguished from a test strip), which is different from an antibody labeled with a distinguishable substance.
- the analysis is performed by holding the antibody labeled upstream with the substance upstream of the immobilization part.
- the analysis target component partially moves on the chromatographic carrier while reacting with the sensitivity control substance, and the analysis target component that does not react with the sensitivity control substance reacts with the labeling substance and is fixed by the detection unit.
- the presence mode of the labeled antibody corresponds to the case where the labeled antibody exists as a part of the test strip of the above-described presence mode.
- the problem that the flow continues until equilibrium is reached does not arise.
- Patent Document 3 in immunochromatographic detection of a specimen such as fecal occult blood, a predetermined amount of a specimen is contacted with an antibody immobilized on a sample pad in advance and then bound, and then an unbound specimen. Is disclosed by binding to and detecting antibodies bound to colored latex.
- this method corresponds to the case where the labeled antibody is present as a part of the test strip in the above-described manner, and in the first place, the enhancement of the color intensity is continued until the flow of the liquid sample reaches equilibrium. The problem of continuing does not arise.
- this is a method that prevents the color intensity at the detection site from continuing to rise for a long time. Did not exist until.
- the color intensity at the detection site is prevented from continuing to rise for a long time, and is combined at a fixed time. It is an object of the present invention to provide a detection kit and a detection method using immunochromatography that completes the capture at the detection site of the body and stops the enhancement of the color intensity.
- the present inventors need a certain amount of complex within a certain time for detection of antigen, and what should be done to suppress detection of other complexes?
- free antibody against the antigen to be detected is present on the sample pad, thereby masking the antigen and suppressing the formation of unnecessary complexes. Therefore, it was thought that capture of unnecessary complex at the detection site could be suppressed.
- free antibody alone is present on the sample pad, it may elute immediately and mask the complex originally required for detection. By imparting the properties and masking the complex with a slight delay, it succeeded in selectively suppressing the supplementation of the delayed complex and completed the present invention.
- Detection kit using immunochromatography including: (1) A conjugate reagent in which a first antibody that immunologically reacts with a substance to be detected is immobilized on a label (2) an insoluble carrier that detects the substance to be detected in the sample by developing the sample A test strip for immunochromatography, wherein the insoluble carrier is supported in order from the upstream side on which a saccharide and a third antibody can be eluted, a sample supply unit for supplying a sample, and a substance to be detected.
- the test strip ⁇ 2> comprising a detection unit on which a second antibody that immunologically reacts is immobilized.
- the detection kit according to ⁇ 1> wherein the saccharide is any one or more selected from the group consisting of monosaccharides and disaccharides.
- ⁇ 3> ⁇ 1> or ⁇ 2> The detection kit according to ⁇ 1> or ⁇ 2>, wherein the saccharide and the third antibody supporting part are formed in a line shape on the insoluble carrier so as to be orthogonal to the sample development direction.
- the insoluble carrier includes at least a sample pad and a membrane pad separate from the sample pad, the sample pad has a saccharide or third antibody carrier and a sample supply, and the membrane pad has a detector ⁇
- ⁇ 5> The detection kit according to any one of ⁇ 1> to ⁇ 4>, wherein the label of (1) is colored latex particles or metal colloid particles.
- ⁇ 6> The detection kit according to any one of ⁇ 1> to ⁇ 5>, wherein the substance to be detected is hemoglobin, and the first to third antibodies are anti-hemoglobin antibodies.
- ⁇ 7> The detection kit according to any one of ⁇ 1> to ⁇ 6>, wherein the saccharide and third antibody-supporting portion is disposed upstream of the sample supply portion.
- ⁇ 8> The detection kit according to any one of ⁇ 1> to ⁇ 7>, wherein the saccharide and third antibody-supporting portion is formed at the upstream end of the sample pad.
- a detection method using immunochromatography comprising the following steps.
- a support part comprising the insoluble carrier, in which a saccharide and a third antibody are supported so as to be eluted in order from the upstream, a sample supply part for supplying a sample, and a second antibody that immunologically reacts with a substance to be detected ⁇ 10> a step of detecting a complex of a substance to be detected and a conjugate in the sample of the test strip (C) in the detection section, the detection section including a detection section on which is immobilized
- the insoluble carrier includes at least a sample pad and a membrane pad separate from the sample pad, the sample pad has a saccharide or third antibody carrier and a sample supply, and the membrane pad has a detector ⁇
- ⁇ 14> The detection method according to any one of ⁇ 9> to ⁇ 13>, wherein the substance to be detected is hemoglobin, and the first to third antibodies are anti-hemoglobin antibodies.
- ⁇ 15> The detection method according to any one of ⁇ 9> to ⁇ 14>, wherein the saccharide and third antibody-supporting portion is disposed upstream of the sample supply portion.
- ⁇ 16> The detection method according to any one of ⁇ 9> to ⁇ 15>, wherein the saccharide and third antibody-supporting portion is formed at the upstream end of the sample pad.
- ⁇ 17> The detection method according to any one of ⁇ 9> to ⁇ 16>, wherein the specimen is feces.
- a detection kit using immunochromatography including the following.
- a test strip for immunochromatography comprising: a sample supply unit for supplying a sample in order from upstream; a polymer viscous material supporting unit for supporting a polymer viscous material; and a substance to be detected.
- the test strip ⁇ 2> having a molecular weight of 6000 or more and a viscosity of 4 to 1000 mPa ⁇ S, including a detection part on which an immunologically reactive second antibody is immobilized ⁇ 1>
- the insoluble carrier includes at least a sample pad and a membrane pad separate from the sample pad, the sample pad includes a sample supply unit and a polymer viscous material supporting unit, and the membrane pad includes a detection unit ⁇
- ⁇ 5> The detection kit according to ⁇ 4>, wherein the polymer viscous substance-carrying part is disposed on the downstream side of the sample supply part of the sample pad.
- ⁇ 6> The detection kit according to any one of ⁇ 1> to ⁇ 5>, wherein the label of (1) is a colored latex or a gold colloid.
- a detection method using immunochromatography which includes the following steps.
- the detection method according to ⁇ 8> which is 1000 mPa ⁇ S.
- the insoluble carrier includes at least a sample pad and a membrane pad separate from the sample pad, the sample pad includes a sample supply unit and a polymer viscous material supporting unit, and the membrane pad includes a detection unit ⁇ The detection method according to any one of 8> to ⁇ 10>. ⁇ 12> The detection method according to ⁇ 11>, wherein the polymer viscous substance supporting unit is disposed on the downstream side of the sample supply unit of the sample pad. ⁇ 13> The detection method according to any one of ⁇ 8> to ⁇ 12>, wherein the label of (1) is a colored latex or a gold colloid.
- ⁇ 14> The detection method according to any one of ⁇ 8> to ⁇ 13>, wherein the substance to be detected is hemoglobin, and the first and second antibodies are anti-hemoglobin antibodies.
- ⁇ 15> The detection method according to any one of ⁇ 8> to ⁇ 14>, wherein the specimen is feces.
- the conjugate and the antibody for detection in a method for detecting an antigen, which is a substance to be detected in a specimen, provided to a sample supply part of an immunochromatography test strip in a state in which the specimen is previously contacted with a conjugate reagent, the conjugate and the antibody for detection Separately, the presence of saccharide and free antibody in the test strip can suppress the enhancement of the color intensity at the detection site within a certain period of time, enabling accurate detection in a short time. Furthermore, by arranging a site for retaining free antibodies and saccharides on the upstream side in the flow direction from the sample supply unit, the conjugate or conjugate-antigen complex that flows into the upstream from the sample supply unit. The body can be effectively masked, and the detection intensity at the detection site can be controlled more effectively.
- an antigen which is a substance to be detected in a specimen
- a method for detecting an antigen by providing the specimen to a sample supply part of an immunochromatography test strip in a state in which the specimen has been previously contacted with a conjugate reagent
- the polymer viscous material By allowing the polymer viscous material to exist downstream of the sample supply section of the test strip, it is possible to suppress the inflow of excess antigen to the detection site and to suppress the enhancement of the color intensity at the detection site within a certain time. This enables accurate detection in a short time.
- Example 1 which is a figure which shows the time-dependent change of the color development intensity
- Example 2 which is a figure which shows the time-dependent change of the color development intensity
- sample In the present invention, biological samples such as blood, urine, sputum, saliva, nasal discharge, other body fluids, and feces are used as samples.
- the biological sample may be used as it is as a sample, or may be diluted as appropriate with a diluent or filtered to obtain a sample.
- the substance to be detected of the present invention may be any substance as long as it is contained in a biological sample as a sample and can be detected using an antigen-antibody reaction, and examples thereof include viruses, bacteria, parasites, and proteins. Influenza viruses, adenoviruses, rotaviruses, noroviruses as viruses to be detected, and human hemoglobin in fecal occult blood, hepatitis B virus antibodies, hepatitis C virus antibodies, human immunodeficiency A viral antibody etc. are mentioned.
- the detection kit using the immunochromatography of the present invention may be a detection kit including the following (1) and (2).
- the test strip includes a detection unit on which an immunologically reactive second antibody is immobilized.
- a detection kit using immunochromatography includes the following (1) and ( Any detection kit including 2) may be used.
- a test strip for immunochromatography comprising: a sample supply unit for supplying a sample in order from upstream; a polymer viscous material supporting unit for supporting a polymer viscous material; and a substance to be detected.
- These test strips include a detection section on which an immunologically reactive second antibody is immobilized.
- These kits include other reagents necessary for detection, sample dilutions, test tubes, and stool collection kits.
- a swab, instructions, a housing for storing the test strip, and the like may also be included.
- the sample supply unit for supplying the sample is provided as a sample pad separately from the insoluble membrane having the detection unit, or on the same membrane as the insoluble membrane, upstream of the detection unit. In some cases as a sample supply section on the side. Of these, it is desirable to exist as a sample pad. In the test strip of the present invention, there is no conjugate pad, and the conjugate is present as a conjugate reagent separately from the test strip.
- the conjugate reagent is added in advance to a liquid such as a specimen diluent such as a conjugate chip in which a conjugate is impregnated in a filter, a lyophilized reagent, a frozen reagent, or a dried reagent.
- a specimen diluent such as a conjugate chip in which a conjugate is impregnated in a filter, a lyophilized reagent, a frozen reagent, or a dried reagent.
- the liquid reagent are as follows.
- the conjugate chip may be a filter as it is, or may be incorporated in a housing.
- the conjugate in the chip and the substance to be detected can be combined to form a complex.
- a lyophilized reagent form, a frozen reagent form, or a dried reagent form it can be used by adding to a substance to be detected or a sample diluent immediately before use.
- the sample pad may be a pad having a portion (sample supply unit) for receiving a sample, absorbs a liquid sample in a state of being molded into the pad, And any substance and form that the detection object can pass through.
- materials suitable for the sample pad include, but are not limited to, glass fiber (glass fiber), acrylic fiber, hydrophilic polyethylene material, dry paper, paper pulp, and fabric.
- a fiberglass pad is used.
- the sample pad can contain a commonly used blocking reagent for the purpose of preventing / suppressing nonspecific reaction (adsorption) in the antibody-immobilized membrane described later.
- the saccharide supported in the support portion of the test strip of the present invention may be any saccharide that can control the elution rate of free antibody, and among these, one or more selected from monosaccharides and disaccharides are preferable.
- monosaccharides include glucose, galactose, fructose, and mannose.
- disaccharides include sucrose, lactose, maltose, trehalose, and fructose.
- the third antibody carried in the carrying part of the strike strip of the present invention may be an antibody against the detection target, as long as it is an antibody that binds to the detection target or a complex of the detection target and the conjugate.
- the antibody may be the same antibody as the first antibody contained in the conjugate or the second antibody immobilized on the detection unit, or may be a different antibody. Moreover, a monoclonal antibody or a polyclonal antibody may be sufficient.
- the third antibody is not immobilized on the test strip, unlike the antibody bound to the solid phase, such as a conjugate, or the antibody immobilized on the membrane, such as a detection antibody. It is desirable that the antibody is a free antibody that is retained so that it can be eluted.
- the saccharide and the antibody are preferably carried on the upstream side of the sample supply unit in the sample pad.
- the sample supply unit and the detection unit are provided on the same insoluble membrane without the sample pad, it is desirable that the insoluble membrane is supported on the upstream side of the sample supply unit. Further, it is even more desirable that it is carried on the most upstream part, that is, on the upstream end of the insoluble membrane on the upstream side of the sample supply part.
- saccharides and antibodies As a method for allowing saccharides and antibodies to be supported on a sample pad or an insoluble membrane so as to be eluted, a method of applying a solution containing saccharides and a solution containing antibodies to a sample pad or the like, or immersing and drying the sample pad in these solutions Is mentioned.
- the saccharide and the antibody may be dried by applying different solutions, respectively, or may be applied and dried by mixing a solution in which the saccharide and the antibody are mixed.
- the concentration of the saccharide solution is preferably 0.1 to 10%, more preferably 0.5 to 8%, and even more preferably 1 to 5%.
- the concentration of the antibody solution is preferably 0.05 to 5 mg / mL, more preferably 0.1 to 1 mg / mL, and even more preferably 0.1 to 0.7 mg / mL.
- the amount of sugar or antibody supported on the sample pad or insoluble membrane carrier can be optimized by adjusting the discharge speed from the nozzle of the above apparatus in the case of the lateral flow type, and preferably 1 to 20 ⁇ L / cm. 5 to 10 ⁇ L / cm is more preferable.
- the supporting portion is formed in a line shape so as to be orthogonal to the flow direction, and the line width is preferably 1 to 10 mm, more preferably 2 to 8 mm, and even more preferably 3 to 5 mm.
- the pad When a sample containing a conjugate reagent, a substance to be detected, and a specimen diluent is supplied to the sample pad of such a test strip, the pad is placed while the substance to be detected and the conjugate contact to form a complex. pass. Thereafter, the complex is developed into an insoluble membrane on which the detection antibody is immobilized. Since the second antibody that immunologically reacts with the substance to be detected is immobilized on a part of the insoluble membrane, the complex is bound and immobilized on the second antibody. become.
- the immobilized complex is detected by a means for detecting absorbance, reflected light, fluorescence, magnetism, etc. derived from the conjugate labeling substance.
- the sample supplied to the sample supply unit diffuses in all directions on the membrane, there are those that develop downstream and those that wrap around upstream. Of these, those that wrap around upstream develop later and cause the color development intensity in the detection unit to be increased for a long time.
- the action of the saccharide of the present invention and the third antibody probably masks the substance to be detected and the complex of the substance to be detected and the conjugate by reacting with the sample that circulates upstream. It seems that the binding of can be suppressed.
- the polymer viscous substance to be carried on the test strip of the present invention may be any substance capable of aggregating the complex of the antigen and conjugate in the sample and controlling the flow to the detection part, and has a viscosity of 4 to 1000 mPa. -S is preferable. This is because if it is less than 4 mPa ⁇ S, the ability to aggregate the complex is poor, and if it is greater than 1000 mPa ⁇ S, the complex is rapidly aggregated, and the detection section cannot obtain the required sensitivity.
- the molecular weight is preferably 6000 or more. More preferably, the viscosity is 4 to 1000 mPa ⁇ S and the molecular weight is 6000 or more.
- the viscosity is more preferably 5 to 500 mPa ⁇ S, still more preferably 10 to 200 mPa ⁇ S.
- the molecular weight is more preferably 20,000 or more, and even more preferably 20,000 to 400,000.
- any one or more selected from polyethylene glycol (PEG) having a molecular weight of 6000 or more, pullulan, dextran, polyvinylpyrrolidone (PVP), or the like is preferable.
- the polymer viscous substance needs to be carried on the downstream side of the sample supply unit in the sample pad.
- the sample supply section and the detection section are provided on the same insoluble membrane without the sample pad, it is desirable that the insoluble membrane is carried on the downstream side of the sample supply section. Further, it is more desirable that the sample is also carried on the downstream side of the sample supply unit and downstream of the sample supply unit and upstream of the overlapping portion with the membrane.
- the sample can be applied to a sample pad or an insoluble membrane carrier and dried so that it can be eluted. It is preferable to adjust the concentration of the polymer viscous substance solution so as to obtain the above-mentioned preferable viscosity.
- the loading amount of the polymer viscous substance on the sample pad or the insoluble membrane carrier can be optimized by adjusting the discharge speed from the nozzle of the above apparatus in the case of the lateral flow type, and is 1 to 20 ⁇ L / cm.
- the supporting portion is formed in a line shape so as to be orthogonal to the flow direction, and the line width is preferably 1 to 10 mm, more preferably 2 to 8 mm, and even more preferably 3 to 5 mm.
- the pad When a sample containing a conjugate reagent, a substance to be detected, and a specimen diluent is supplied to the sample pad of such a test strip, the pad is placed while the substance to be detected and the conjugate contact to form a complex. pass. Thereafter, the complex is developed into an insoluble membrane on which the detection antibody is immobilized. Since the second antibody that immunologically reacts with the substance to be detected is immobilized on a part of the insoluble membrane, the complex is bound and immobilized on the second antibody. become.
- the immobilized complex is detected by a means for detecting absorbance, reflected light, fluorescence, magnetism, etc. derived from the conjugate labeling substance.
- the sample supplied to the sample supply unit diffuses in all directions on the membrane, there are those that develop downstream and those that wrap around upstream. Of these, those that wrap around upstream develop later and cause the color development intensity in the detection unit to be increased for a long time.
- the action of the viscous polymer of the present invention is probably due to the reaction between the sample and the conjugate that circulates upstream, and these complexes aggregate and do not flow further downstream. The downstream supply is stopped. In other words, since the complex is captured at the polymer viscous material carrying site, only the portion that has passed without being captured is bound by the detection unit. Therefore, it seems that the coupling
- the third pad is desirably arranged as necessary depending on the properties of the sample, and any third pad may be used as long as it can permeate the complex of the substance to be detected and the conjugate in the sample.
- glass fiber glass fiber
- acrylic fiber acrylic fiber
- hydrophilic polyethylene material dry paper, paper pulp, woven fabric and the like
- the porous member is made of polysulfone or cellulose acetate.
- the pore size of the porous third pad of the present invention is preferably 1 to 100 ⁇ m in average pore size, more preferably 10 to 100 ⁇ m, still more preferably 20 to 80 ⁇ m, and most preferably 25 to 70 ⁇ m. This is because if it is less than 1 ⁇ m, clogging is caused and the flow of the sample itself becomes poor, and if it is more than 100 ⁇ m, it is considered that the nonspecific reaction substance cannot be captured.
- the insoluble membrane used in the present invention has at least one detection unit on which a first antibody that immunologically reacts with a substance to be detected is immobilized. Immobilization of an antibody that reacts immunologically with a substance to be detected on an insoluble membrane carrier can be performed by a conventionally known method.
- a device having a mechanism capable of preparing a liquid containing the above-mentioned antibody at a predetermined concentration and moving it horizontally while discharging the liquid from the nozzle at a constant speed, etc. Can be immobilized by applying the liquid to an insoluble membrane carrier in a line and drying.
- the concentration of the antibody in the solution is preferably from 0.1 to 5 mg / mL, and more preferably from 0.5 to 2 mg / mL.
- the amount of the antibody immobilized on the insoluble membrane carrier can be optimized by adjusting the ejection speed from the nozzle of the above apparatus in the case of the lateral flow type, and is preferably 0.5 to 2 ⁇ L / cm. .
- the measurement method using the lateral flow type immunochromatography reagent is a measurement method in which the sample is developed so as to move in a parallel direction with respect to the insoluble membrane carrier by capillary action.
- a solution containing the above antibody at a predetermined concentration can be prepared by adding the antibody to a buffer solution.
- the buffer examples include normal buffers such as phosphate buffer, Tris buffer, and Good's buffer.
- the pH of the buffer is preferably in the range of 6.0 to 9.5, more preferably 6.5 to 8.5, and even more preferably 7.0 to 8.0.
- the buffer may further contain salts such as sodium chloride, stabilizers such as sucrose, preservatives, preservatives such as Procrine (registered trademark), and the like.
- the salts include those added for the purpose of adjusting the pH of the buffer solution, such as sodium hydroxide, in addition to those included for adjusting the ionic strength, such as sodium chloride.
- control capture reagent conventionally used in immunochromatographic reagents may be immobilized on the insoluble membrane.
- the control capture reagent is a reagent for ensuring the reliability of the assay, and captures the control reagent contained in the conjugate reagent.
- an anti-KLH antibody or the like corresponds to the control capture reagent.
- the position at which the control capture reagent is immobilized can be appropriately selected to suit the design of the assay system.
- a known membrane conventionally used as an insoluble membrane carrier for an immunochromatographic reagent can be used.
- membranes composed of fibers made of polyethylene, polyethylene terephthalate, nylons, glass, polysaccharides such as cellulose and cellulose derivatives, ceramics, and the like are preferred.
- glass fiber filter paper and cellulose filter paper commercially available from Sartorius, Millipore, Toyo Roshi, Whatman and the like. Of these, Sartorius and UniSart® CN140 are preferred.
- by appropriately selecting the pore size and structure of the insoluble membrane carrier it is possible to control the speed at which the complex of the conjugate and the substance to be detected in the sample flows through the insoluble membrane carrier.
- the immunochromatographic test strip is preferably disposed on a solid support such as a plastic adhesive sheet.
- the solid support is composed of a material that does not interfere with the capillary flow of the sample and conjugate.
- the immunochromatographic test strip may be fixed on a solid support with an adhesive or the like.
- the adhesive component and the like are also composed of a substance that does not interfere with the capillary flow of the sample and the conjugate.
- the immunochromatographic test strip is stored in an appropriate container (housing) taking into account the size of the immunochromatographic test strip, the method and position of sample addition, the position where the insoluble membrane detector is formed, and the signal detection method. -It can be mounted and used, and the state stored and mounted in this way is called "device".
- the first to third antibodies that immunologically react with the substance to be detected used in the present invention are antibodies that can bind to the substance to be detected.
- the first and second antibodies are immobilized on a label and detection unit described later.
- the third antibody is releasably retained on the insoluble membrane having the saccharide and upstream of the sample pad or the detection part.
- These first to third antibodies may be the same, but the first and second antibodies are preferably different.
- the antibody may be a polyclonal antibody or a monoclonal antibody. Moreover, a functional antibody fragment, Fab, Fab prime, etc. may be sufficient.
- a known label conventionally used for a test strip for immunochromatography can be used.
- colloidal metal particles such as gold colloid particles and platinum colloid particles, colored latex particles, magnetic particles, and fluorescent particles are preferable, and gold colloid particles and colored latex particles are particularly preferable.
- the conjugate used in the present invention is obtained by immobilizing an antibody that immunologically reacts with a substance to be detected on the label as described above.
- Examples of a method for immobilizing an antibody that immunologically reacts with a substance to be detected to a label include physical adsorption and chemical bonding, and is generally immobilized by physical adsorption.
- the conjugate in the present invention exists as a separate conjugate reagent so as to be mixed with the specimen separately from the test strip.
- the conjugate reagent may be a conjugate as it is, or may contain other components and components other than the conjugate as necessary. For example, the form of the conjugate chip
- the conjugate chip By using the conjugate chip and filtering the specimen diluent, the conjugate and the substance to be detected can be combined to form a complex. It is desirable that the conjugate chip is incorporated in a cap having an opening and a nozzle that are fitted with the specimen diluent container. Such a conjugate chip is sometimes called a conjugate cap.
- the filtration method using the conjugate cap is as follows. The conjugate liquid is passed through the conjugate chip in the conjugate cap by fitting the conjugate cap into the opening of the specimen diluent container, inverting the specimen diluent container, and pressing the container. As a result, the diluent containing the conjugate is discharged from the nozzle. This is provided to the sample supply of the immunochromatographic test strip.
- the immunochromatographic test strip of the present invention may further contain other reagents and structures depending on the measurement conditions and the type of sample.
- examples of other reagents include blocking agents that prevent non-specific reactions.
- Other configurations include, for example, an absorption pad that controls the development of the sample by absorbing the sample that has moved and passed through the insoluble membrane.
- the production of the immunochromatographic test strip of the present invention can be carried out by appropriately modifying or altering the method described in the examples.
- upstream or downstream is used to mean the upstream side or the downstream side in the direction of sample flow. That is, when the test pad of the present invention is laminated so that the sample pad, the third pad, and the insoluble membrane partially overlap from above, the sample pad is the most upstream and the insoluble membrane is the downstream.
- an absorbent pad also referred to as an end pad
- the absorbent pad may be laminated on the downstream side of the insoluble membrane so as to overlap. In this case, the absorbent pad is the most downstream.
- the specimen diluent in this specification is also referred to as a specimen extract.
- the sample diluent has an action of developing the sample, and may be expressed as a developing solution.
- Example 1 Effect confirmation test of the present invention
- the control effect in the detection reaction of hemoglobin was confirmed by including each concentration of sugar and anti-hemoglobin antibody in the upstream end of the sample pad so as to be eluted.
- a mouse monoclonal antibody was used as the colored latex-labeled anti-hemoglobin antibody
- a goat polyclonal antibody was used as the anti-hemoglobin antibody of the sample pad and test strip.
- GSA Goat Serum Albumin
- test device Preparation of sample pad of the present invention A solution containing sucrose 0-7% and anti-hemoglobin antibody 0-0.5 mg / mL was applied to the end surface of the sample pad at 10 ⁇ L / cm and dried. Thus, a sample pad of the present invention having a saccharide and a third antibody support was prepared. (In the figure, notation such as S1% -0.5 mg / mL indicates the concentration of sucrose and antibody contained in the sample pad. For example, S1% -0.5 mg / mL indicates sucrose 1% and antibody 0.5 mg / mL. (The same is true for Figures 2 and 3. Control shows the case without sucrose or antibody.) (2) Production of Test Strip FIG.
- FIG. 4 shows a schematic configuration diagram of the immunochromatographic test strip of the present invention.
- An antibody-immobilized membrane (b) is attached to a plastic backing sheet (a), and a sample pad (e) of the present invention having a saccharide and third antibody support (d) prepared in (1) above is applied thereon.
- the absorbent pad (f) was placed and mounted on the opposite end.
- an anti-hemoglobin antibody and a control reagent are immobilized on an insoluble membrane in a line shape perpendicular to the flow direction.
- Each pad is laminated so that the upper and lower pads are in contact with a part thereof.
- test line (c1) The line consisting of the anti-hemoglobin antibody is called the test line (c1), and the line consisting of the control reagent is called the control line (c2).
- Specimen Diluent Human hemoglobin was added to a specimen diluent containing 10 mM PBS so as to be 120 ng / mL to obtain a measurement sample.
- Test Method The measurement sample was filtered with a conjugate chip, and 5 drops were dropped on the sample pad from the sample addition window of the test device. The color development intensity of the line was measured at each time point of 2, 5, 7, 10, 15, 20, and 30 minutes after the dropping, and digitized.
- the hemoglobin in the sample passes through the filter inside the conjugate chip, and forms a complex with the colored latex-labeled anti-hemoglobin antibody in the course of passage. The complex is detected by developing the membrane, binding to the anti-hemoglobin antibody immobilized on the test line.
- Test results The results are shown in FIG. When a sample pad containing a constant concentration of antibody and each concentration of sucrose was used, the effect of suppressing the detection reaction of hemoglobin was observed at any sucrose concentration. In particular, good results were confirmed at a sucrose concentration of 1-3%.
- Example 2 Effect confirmation test of the present invention (2) Sugar and anti-hemoglobin antibody at various concentrations were included in the upstream end of the sample pad so as to be able to elute, and the control effect in the hemoglobin detection reaction was confirmed.
- an anti-hemoglobin antibody antibody
- Test Method A sample pad was prepared and tested in the same manner as in Example 1 except that a solution containing sucrose 0, 5%, and 10% was applied to the end surface of the sample pad of the test strip at 10 ⁇ L / cm and dried. A strip was produced. 2. Test results The results are shown in FIG. When a sample pad containing only sucrose (sugar) but not containing an anti-hemoglobin antibody (antibody) was used, no effect of suppressing the detection reaction of hemoglobin in the sample was observed.
- Example 3 Effect confirmation test of the present invention
- the control effect in the detection reaction of hemoglobin was confirmed by including a polymer viscous substance in the downstream of the sample supply part of the sample pad so that it can be eluted.
- a mouse monoclonal antibody was used as the colored latex-labeled anti-hemoglobin antibody
- a goat polyclonal antibody was used as the anti-hemoglobin antibody of the sample pad and test strip.
- conjugate chip A sintered filter was impregnated with conjugate (colored latex-labeled anti-hemoglobin antibody) and GSA (Goat Serum Albumin) -sensitized latex as a control reagent and dried to prepare a conjugate chip.
- conjugate colored latex-labeled anti-hemoglobin antibody
- GSA Goat Serum Albumin
- test device 10 mM phosphate buffered saline solution (pH 7.2) containing the following high molecular viscosity substances at concentrations of 1%, 5% and 10% (hereinafter referred to as PBS) Solution) is applied to the surface of the sample pad downstream of the sample supply portion (FIG. 15 (g)) at 10 ⁇ L / cm and dried to provide a sample pad of the present invention having a polymer viscous substance supporting portion.
- PBS phosphate buffered saline solution
- a sample pad was prepared by replacing the solution containing the polymer viscous substance with sucrose (33%) and glycerol (30%).
- Table 1 shows the results of measuring the viscosity (mPa ⁇ s) of each polymer viscous substance and each concentration of the polymer substance using a viscometer.
- FIG. 15 shows a schematic configuration diagram of the immunochromatographic test strip of the present invention.
- An antibody-immobilized membrane (b) is attached to a plastic backing sheet (a), and a sample pad (e ′) of the present invention having a polymer viscous substance supporting part (d ′) prepared in (1) above is applied thereon.
- the absorbent pad (f) was placed and mounted on the opposite end.
- an anti-hemoglobin antibody and a control reagent are immobilized on an insoluble membrane in a line shape perpendicular to the flow direction.
- Each pad is laminated so that the upper and lower pads are in contact with a part thereof.
- test line (c1) The line consisting of the anti-hemoglobin antibody is called the test line (c1), and the line consisting of the control reagent is called the control line (c2).
- Specimen Diluent Human hemoglobin was added to a specimen diluent containing 10 mM PBS so as to be 120 ng / mL to obtain a measurement sample.
- Test Method The measurement sample was filtered with a conjugate chip, and 5 drops were dropped on the sample supply portion of the sample pad from the sample addition window portion of the test device. The color intensity of the line was measured and digitized at each time point of 2.5, 5, 7.5, 10, 15, 20, and 30 minutes after the dropping.
- the hemoglobin in the sample passes through the filter inside the conjugate chip, and forms a complex with the colored latex-labeled anti-hemoglobin antibody in the course of passage. The complex is detected by developing the membrane, binding to the anti-hemoglobin antibody immobilized on the test line.
- FIG. 6 show that PEG 2K, PEG 4K, and dextran 40K have any viscosity (viscosity of 1.0 to 2.14, 1.03 to 2.68, 1. 11 to 3.85), no effect of suppressing the detection reaction of hemoglobin was observed.
- the sucrose and glycerol concentrations of 30% or higher did not show the effect of suppressing the detection reaction of hemoglobin. From this, it was found that the viscosity of the polymer viscous substance is required to be 4.0 or more in order to obtain the detection reaction suppressing effect.
- an antigen which is a substance to be detected in a specimen
- a method for detecting an antigen by providing the specimen to a sample supply part of an immunochromatography test strip in a state in which the specimen is previously contacted with a conjugate reagent
- the presence of saccharide and free antibody in the test strip can suppress the enhancement of the color intensity at the detection site within a certain period of time, thereby enabling reaction control.
- a method for detecting an antigen as a substance to be detected in a specimen by providing the specimen to a sample supply part of an immunochromatography test strip in a state in which the specimen is previously contacted with a conjugate reagent.
- the presence of a specific polymer viscous substance downstream of the sample supply unit can suppress the increase in color intensity at the detection site within a certain period of time, thereby enabling reaction control.
- A backing sheet
- B antibody-immobilized membrane
- c1 test line
- c2 control line
- d saccharide and third antibody carrier
- d ' polymer viscous substance carrier
- e sample pad
- f Absorption pad
Landscapes
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Immunology (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Hematology (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Urology & Nephrology (AREA)
- Analytical Chemistry (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Physics & Mathematics (AREA)
- Pathology (AREA)
- General Physics & Mathematics (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- Cell Biology (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Food Science & Technology (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
- Clinical Laboratory Science (AREA)
- Dispersion Chemistry (AREA)
- Optics & Photonics (AREA)
- Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
- Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)
- Plasma & Fusion (AREA)
Abstract
コンジュゲートを液体サンプルと混合した状態で、テストストリップに供給する場合に、検出部位における発色強度が長時間上がり続けることを抑制し、一定時間で複合体の検出部位における捕捉を完了させ、発色強度の増強が停止するようなイムノクロマトグラフィーを利用した検出キットおよび検出方法の提供。 本発明は、イムノクロマトグラフィーテストストリップにおいて、コンジュゲートおよび検出部位における抗体とは別の、検出対象の抗原に対する遊離の抗体および糖類をサンプルパッド上に保持させることで課題を解決する。また、本発明は、イムノクロマトグラフィーテストストリップにおいて、特定の高分子粘性物質をサンプルパッド上に保持させることで課題を解決する。
Description
本発明は、コンジュゲート試薬とイムノクロマトグラフィーテストストリップを含む検出キットに関する。
特に、前記テストストリップが、コンジュゲート試薬に含まれる第一の抗体及びイムノクロマトグラフ検出用の第二の抗体とは別に、検出対象物に対する第三の抗体及び糖類が溶出可能に保持されたテストストリップである検出キットに関する。
さらにまた、本発明は、特に、前記テストストリップが、サンプル供給部の下流側に高分子粘性物質が溶出可能に保持されたテストストリップである検出キットに関する。
また、これらの検出キットを用いた検出方法に関する。
特に、前記テストストリップが、コンジュゲート試薬に含まれる第一の抗体及びイムノクロマトグラフ検出用の第二の抗体とは別に、検出対象物に対する第三の抗体及び糖類が溶出可能に保持されたテストストリップである検出キットに関する。
さらにまた、本発明は、特に、前記テストストリップが、サンプル供給部の下流側に高分子粘性物質が溶出可能に保持されたテストストリップである検出キットに関する。
また、これらの検出キットを用いた検出方法に関する。
イムノクロマトグラフィーテストストリップを用いて試料中の被検出物質である抗原を検出する方法は次のとおりである。まず、第一の抗体が標識体に固定化されたコンジュゲートと、サンプルとを接触させる。これらの接触によりサンプル中の被検出物質である抗原とコンジュゲートとの複合体が形成される。イムノクロマトグラフィーテストストリップは、第二の抗体が固定化された捕捉部位(検出部位)を有し、前記複合体を担体に提供すると複合体は、担体中を展開しながら、捕捉部位に捕捉され、目視あるいは光学的手段などにより複合体標識物質の有無や強度を検出することができる。
ここで、イムノクロマトグラフィーを利用した検出におけるコンジュゲートの存在様式としては、テストストリップ(典型的にはサンプルパッド上)のサンプル供給部より下流側にコンジュゲート部として存在する様式がある。あるいは、テストストリップとは別にコンジュゲートチップなど、コンジュゲート試薬として存在する様式がある(特許文献1)。コンジュゲートチップとは、検体液を濾過するフィルターにコンジュゲートが塗布されたものである。
前者の、コンジュゲートがテストストリップの一部として存在する場合には、サンプル供給部にサンプルが滴下されると、サンプルは、サンプル供給部の下流のコンジュゲート部に到達したときから、サンプル中の被検出物質である抗原とコンジュゲートとの結合反応が開始することになる。したがって、コンジュゲート部のコンジュゲートがすべて流れきってしまうことにより、捕捉部位(検出部位)における発色強度の増強は停止することになる。
一方、コンジュゲートチップとして存在する場合、サンプルを当該チップで濾過した液体をテストストリップのサンプルパッドに滴下すると、サンプルおよびコンジュゲートの混合物である液体がサンプルパッドの全体に一気に分散することになる。したがって、滴下直後からサンプル中の抗原とコンジュゲートの結合反応が開始し、混合物の液体の流れが平衡に達するまで捕捉部位(検出部位)の発色強度は増強し続けることになる。
イムノクロマトグラフィーを利用した検出における感度の調節方法としては、例えば特許文献2が知られている。特許文献2には、分析対象成分を減らすために、分析対象試料を感度調節物質と反応させる方法が開示されている。具体的には、感度調節物質は、識別可能物質で標識した抗体とは別の、識別不能標識(例えば、テストストリップと区別できないような白色物質)で標識した抗体であり、これを、標識可能物質で標識した抗体の固定化部よりも上流に保持させて、分析を行う。分析対象成分は、一部は感度調節物質と反応しながらクロマトグラフ担体を移動し、感度調節物質と反応しない分析対象成分は、標識物質と反応し、検出部で固定されることになる。
本方法では、分析対象物を減らすという一定の効果は期待できるものの、標識抗体の存在様式は、上記存在様式のテストストリップの一部として存在する場合に相当し、そもそも発色強度の増強が液体サンプルの流れが平衡に達するまで続くという問題は生じない。
また、特許文献3には、糞便潜在血液のような被検体のイムノクロマトグラフィー検出において、あらかじめ所定量の被検体をサンプルパッドに固定化された抗体と接触させて結合させてから、未結合の検体を着色ラテックスに結合された抗体と結合させ、検出する方法が開示されている。
本方法も、特許文献2と同様に、標識抗体の存在様式は、上記存在様式のテストストリップの一部として存在する場合に相当し、そもそも発色強度の増強が液体サンプルの流れが平衡に達するまで続くという問題は生じない。
このように、コンジュゲートチップなどを使って、コンジュゲートを液体サンプルと混合した状態で、テストストリップに供給する場合に、検出部位における発色強度が長時間上がり続けることを抑制するような方法はこれまで存在しなかった。
ここで、イムノクロマトグラフィーを利用した検出におけるコンジュゲートの存在様式としては、テストストリップ(典型的にはサンプルパッド上)のサンプル供給部より下流側にコンジュゲート部として存在する様式がある。あるいは、テストストリップとは別にコンジュゲートチップなど、コンジュゲート試薬として存在する様式がある(特許文献1)。コンジュゲートチップとは、検体液を濾過するフィルターにコンジュゲートが塗布されたものである。
前者の、コンジュゲートがテストストリップの一部として存在する場合には、サンプル供給部にサンプルが滴下されると、サンプルは、サンプル供給部の下流のコンジュゲート部に到達したときから、サンプル中の被検出物質である抗原とコンジュゲートとの結合反応が開始することになる。したがって、コンジュゲート部のコンジュゲートがすべて流れきってしまうことにより、捕捉部位(検出部位)における発色強度の増強は停止することになる。
一方、コンジュゲートチップとして存在する場合、サンプルを当該チップで濾過した液体をテストストリップのサンプルパッドに滴下すると、サンプルおよびコンジュゲートの混合物である液体がサンプルパッドの全体に一気に分散することになる。したがって、滴下直後からサンプル中の抗原とコンジュゲートの結合反応が開始し、混合物の液体の流れが平衡に達するまで捕捉部位(検出部位)の発色強度は増強し続けることになる。
イムノクロマトグラフィーを利用した検出における感度の調節方法としては、例えば特許文献2が知られている。特許文献2には、分析対象成分を減らすために、分析対象試料を感度調節物質と反応させる方法が開示されている。具体的には、感度調節物質は、識別可能物質で標識した抗体とは別の、識別不能標識(例えば、テストストリップと区別できないような白色物質)で標識した抗体であり、これを、標識可能物質で標識した抗体の固定化部よりも上流に保持させて、分析を行う。分析対象成分は、一部は感度調節物質と反応しながらクロマトグラフ担体を移動し、感度調節物質と反応しない分析対象成分は、標識物質と反応し、検出部で固定されることになる。
本方法では、分析対象物を減らすという一定の効果は期待できるものの、標識抗体の存在様式は、上記存在様式のテストストリップの一部として存在する場合に相当し、そもそも発色強度の増強が液体サンプルの流れが平衡に達するまで続くという問題は生じない。
また、特許文献3には、糞便潜在血液のような被検体のイムノクロマトグラフィー検出において、あらかじめ所定量の被検体をサンプルパッドに固定化された抗体と接触させて結合させてから、未結合の検体を着色ラテックスに結合された抗体と結合させ、検出する方法が開示されている。
本方法も、特許文献2と同様に、標識抗体の存在様式は、上記存在様式のテストストリップの一部として存在する場合に相当し、そもそも発色強度の増強が液体サンプルの流れが平衡に達するまで続くという問題は生じない。
このように、コンジュゲートチップなどを使って、コンジュゲートを液体サンプルと混合した状態で、テストストリップに供給する場合に、検出部位における発色強度が長時間上がり続けることを抑制するような方法はこれまで存在しなかった。
本発明は、コンジュゲートチップなどを使って、コンジュゲートを液体サンプルと混合した状態で、テストストリップに供給する場合に、検出部位における発色強度が長時間上がり続けることを抑制し、一定時間で複合体の検出部位における捕捉を完了させ、発色強度の増強が停止するようなイムノクロマトグラフィーを利用した検出キットおよび検出方法の提供を課題とする。
上記課題を解決するために、本発明者らは、抗原の検出には、一定時間内に一定量の複合体が必要であり、それ以外の複合体の検出を抑制するためにはどうすればよいか鋭意検討を行った。
その結果、コンジュゲートおよび検出部位における抗体とは別に、検出対象の抗原に対する遊離の抗体をサンプルパッド上に存在させることで、抗原をマスキングすることで、不要な複合体の形成を抑制し、また、不要な複合体の検出部位での捕捉を抑制できるのではないかと考えた。さらに、遊離の抗体を単独でサンプルパッド上に存在させると、すぐに溶出して、検出に本来必要な複合体をもマスキングしてしまうおそれがあるため、糖類と共に存存させることにより、徐放性を付与し、少し遅れて複合体をマスキングすることで、遅れた複合体の補足を選択的に抑制することに成功し、本発明を完成するに至った。
すなわち、本発明は以下の構成を有する。
<1>
以下を含むイムノクロマトグラフィーを利用した検出キット。
(1)被検出物質に対して免疫学的に反応する第一の抗体が標識体に固定化されたコンジュゲート試薬
(2)サンプルを展開させることによりサンプル中の被検出物質を検出する不溶性担体を備えたイムノクロマトグラフィー用テストストリップであって、前記不溶性担体は、上流から順に糖類および第三の抗体が溶出可能に担持された担持部、サンプルを供給するサンプル供給部、および被検出物質に対して免疫学的に反応する第二の抗体が固定化された検出部、を含む、前記テストストリップ
<2>
糖類が、単糖類及び2糖類からなる群から選ばれるいずれか1以上である<1>に記載の検出キット。
<3>
糖類および第三の抗体の担持部は、不溶性担体上にサンプルの展開方向と直行するようにライン状に形成されている<1>または<2>に記載の検出キット。
<4>
不溶性担体は、少なくともサンプルパッドおよびサンプルパッドとは別体のメンブレンパッドを含み、サンプルパッドは、糖類もしくは第三の抗体の担持部およびサンプル供給部を有し、メンブレンパッドは、検出部を有する<1>~<3>のいずれかに記載の検出キット。
<5>
(1)の標識体が着色ラテックス粒子又は金属コロイド粒子である<1>~<4>のいずれかに記載の検出キット。
<6>
被検出物質がヘモグロビンであり、第一~第三の抗体が抗ヘモグロビン抗体である<1>~<5>のいずれかに記載の検出キット。
<7>
糖類および第三の抗体の担持部が、サンプル供給部よりも上流側に配置されている<1>~<6>のいずれかに記載の検出キット。
<8>
糖類および第三の抗体の担持部が、サンプルパッドの上流側端部に形成されている<1>~<7>のいずれかに記載の検出キット。
<9>
イムノクロマトグラフィーを利用した検出方法であって、以下の工程を含む検出方法。
(A)被検出物質に対して免疫学的に反応する第一の抗体が標識体に固定化されたコンジュゲート試薬、検体および検体希釈液を混合し、これらの混合物からなるサンプルを得る工程
(B)下記イムノクロマトグラフィー用テストストリップのサンプル供給部に(A)で得られたサンプルを滴下し、不溶性担体中を展開させる工程
イムノクロマトグラフィー用テストストリップ;
前記不溶性担体を備え、上流から順に糖類および第三の抗体が溶出可能に担持された担持部、サンプルを供給するサンプル供給部、および被検出物質に対して免疫学的に反応する第二の抗体が固定化された検出部、を含む、前記テストストリップ
(C)サンプル中の被検出物質とコンジュゲートの複合体、を検出部において検出する工程
<10>
糖類が、単糖類及び2糖類からなる群から選ばれるいずれか1以上である<9>に記載の検出方法。
<11>
糖類および第三の抗体の担持部は、不溶性担体上にサンプルの展開方向と直行するようにライン状に形成されている<9>または<10>に記載の検出方法。
<12>
不溶性担体は、少なくともサンプルパッドおよびサンプルパッドとは別体のメンブレンパッドを含み、サンプルパッドは、糖類もしくは第三の抗体の担持部およびサンプル供給部を有し、メンブレンパッドは、検出部を有する<9>~<11>のいずれかに記載の検出方法。
<13>
(1)の標識体が着色ラテックス粒子又は金属コロイド粒子である<9>~<12>のいずれかに記載の検出方法。
<14>
被検出物質がヘモグロビンであり、第一~第三の抗体が抗ヘモグロビン抗体である<9>~<13>のいずれかに記載の検出方法。
<15>
糖類および第三の抗体の担持部が、サンプル供給部よりも上流側に配置されている<9>~<14>のいずれかに記載の検出方法。
<16>
糖類および第三の抗体の担持部が、サンプルパッドの上流側端部に形成されている<9>~<15>のいずれかに記載の検出方法。
<17>
検体が、糞便である、<9>~<16>のいずれかに記載の検出方法。
その結果、コンジュゲートおよび検出部位における抗体とは別に、検出対象の抗原に対する遊離の抗体をサンプルパッド上に存在させることで、抗原をマスキングすることで、不要な複合体の形成を抑制し、また、不要な複合体の検出部位での捕捉を抑制できるのではないかと考えた。さらに、遊離の抗体を単独でサンプルパッド上に存在させると、すぐに溶出して、検出に本来必要な複合体をもマスキングしてしまうおそれがあるため、糖類と共に存存させることにより、徐放性を付与し、少し遅れて複合体をマスキングすることで、遅れた複合体の補足を選択的に抑制することに成功し、本発明を完成するに至った。
すなわち、本発明は以下の構成を有する。
<1>
以下を含むイムノクロマトグラフィーを利用した検出キット。
(1)被検出物質に対して免疫学的に反応する第一の抗体が標識体に固定化されたコンジュゲート試薬
(2)サンプルを展開させることによりサンプル中の被検出物質を検出する不溶性担体を備えたイムノクロマトグラフィー用テストストリップであって、前記不溶性担体は、上流から順に糖類および第三の抗体が溶出可能に担持された担持部、サンプルを供給するサンプル供給部、および被検出物質に対して免疫学的に反応する第二の抗体が固定化された検出部、を含む、前記テストストリップ
<2>
糖類が、単糖類及び2糖類からなる群から選ばれるいずれか1以上である<1>に記載の検出キット。
<3>
糖類および第三の抗体の担持部は、不溶性担体上にサンプルの展開方向と直行するようにライン状に形成されている<1>または<2>に記載の検出キット。
<4>
不溶性担体は、少なくともサンプルパッドおよびサンプルパッドとは別体のメンブレンパッドを含み、サンプルパッドは、糖類もしくは第三の抗体の担持部およびサンプル供給部を有し、メンブレンパッドは、検出部を有する<1>~<3>のいずれかに記載の検出キット。
<5>
(1)の標識体が着色ラテックス粒子又は金属コロイド粒子である<1>~<4>のいずれかに記載の検出キット。
<6>
被検出物質がヘモグロビンであり、第一~第三の抗体が抗ヘモグロビン抗体である<1>~<5>のいずれかに記載の検出キット。
<7>
糖類および第三の抗体の担持部が、サンプル供給部よりも上流側に配置されている<1>~<6>のいずれかに記載の検出キット。
<8>
糖類および第三の抗体の担持部が、サンプルパッドの上流側端部に形成されている<1>~<7>のいずれかに記載の検出キット。
<9>
イムノクロマトグラフィーを利用した検出方法であって、以下の工程を含む検出方法。
(A)被検出物質に対して免疫学的に反応する第一の抗体が標識体に固定化されたコンジュゲート試薬、検体および検体希釈液を混合し、これらの混合物からなるサンプルを得る工程
(B)下記イムノクロマトグラフィー用テストストリップのサンプル供給部に(A)で得られたサンプルを滴下し、不溶性担体中を展開させる工程
イムノクロマトグラフィー用テストストリップ;
前記不溶性担体を備え、上流から順に糖類および第三の抗体が溶出可能に担持された担持部、サンプルを供給するサンプル供給部、および被検出物質に対して免疫学的に反応する第二の抗体が固定化された検出部、を含む、前記テストストリップ
(C)サンプル中の被検出物質とコンジュゲートの複合体、を検出部において検出する工程
<10>
糖類が、単糖類及び2糖類からなる群から選ばれるいずれか1以上である<9>に記載の検出方法。
<11>
糖類および第三の抗体の担持部は、不溶性担体上にサンプルの展開方向と直行するようにライン状に形成されている<9>または<10>に記載の検出方法。
<12>
不溶性担体は、少なくともサンプルパッドおよびサンプルパッドとは別体のメンブレンパッドを含み、サンプルパッドは、糖類もしくは第三の抗体の担持部およびサンプル供給部を有し、メンブレンパッドは、検出部を有する<9>~<11>のいずれかに記載の検出方法。
<13>
(1)の標識体が着色ラテックス粒子又は金属コロイド粒子である<9>~<12>のいずれかに記載の検出方法。
<14>
被検出物質がヘモグロビンであり、第一~第三の抗体が抗ヘモグロビン抗体である<9>~<13>のいずれかに記載の検出方法。
<15>
糖類および第三の抗体の担持部が、サンプル供給部よりも上流側に配置されている<9>~<14>のいずれかに記載の検出方法。
<16>
糖類および第三の抗体の担持部が、サンプルパッドの上流側端部に形成されている<9>~<15>のいずれかに記載の検出方法。
<17>
検体が、糞便である、<9>~<16>のいずれかに記載の検出方法。
さらにまた、特定の高分子粘性物質をサンプル供給部の下流側に存在させることで、抗原が結合したコンジュゲート(複合体)の流れを抑制し、不要な複合体の検出部位での捕捉を抑制できることをも見出し、本発明の別の態様を完成するに至った。
<1>以下を含むイムノクロマトグラフィーを利用した検出キット。
(1)被検出物質に対して免疫学的に反応する第一の抗体が標識体に固定化されたコンジュゲート試薬
(2)サンプルを展開させることによりサンプル中の被検出物質を検出する不溶性担体を備えたイムノクロマトグラフィー用テストストリップであって、前記不溶性担体は、上流から順にサンプルを供給するサンプル供給部、高分子粘性物質が担持された高分子粘性物質担持部、および被検出物質に対して免疫学的に反応する第二の抗体が固定化された検出部、を含む、前記テストストリップ
<2>高分子粘性物質が分子量6000以上、かつ、粘度が4~1000mPa・Sである<1>に記載の検出キット。
<3>高分子粘性物質担持部は、不溶性担体上にサンプルの展開方向と直行するようにライン状に形成されている<1>または<2>に記載の検出キット。
<4>不溶性担体は、少なくともサンプルパッドおよびサンプルパッドとは別体のメンブレンパッドを含み、サンプルパッドは、サンプル供給部及び高分子粘性物質担持部を有し、メンブレンパッドは、検出部を有する<1>~<3>のいずれかに記載の検出キット。
<5>高分子粘性物質担持部が、サンプルパッドのサンプル供給部の下流側に配置されている<4>に記載の検出キット。
<6>(1)の標識体が着色ラテックス又は金コロイドである<1>~<5>のいずれかに記載の検出キット。
<7>被検出物質がヘモグロビンであり、第一及び第二の抗体が抗ヘモグロビン抗体である<1>~<6>のいずれかに記載の検出キット。
<8>イムノクロマトグラフィーを利用した検出方法であって、以下の工程を含む検出方法。
(A)被検出物質に対して免疫学的に反応する第一の抗体が標識体に固定化されたコンジュゲート試薬、検体および検体希釈液を混合し、これらの混合物からなるサンプルを得る工程
(B)下記イムノクロマトグラフィー用テストストリップのサンプル供給部に(A)で得られたサンプルを滴下し、不溶性担体中を展開させる工程
イムノクロマトグラフィー用テストストリップ;
前記不溶性担体を備え、上流から順にサンプルを供給するサンプル供給部、高分子粘性物質が担持された担持部、及び被検出物質に対して免疫学的に反応する第二の抗体が固定化された検出部、を含む、前記テストストリップ
(C)サンプル中の被検出物質とコンジュゲートの複合体、を検出部において検出する工程
<9>高分子粘性物質が分子量6000以上、かつ、粘度が4~1000mPa・Sである<8>に記載の検出方法。
<10>高分子粘性物質の担持部は、不溶性担体上にサンプルの展開方向と直行するようにライン状に形成されている<8>または<9>に記載の検出方法。
<11>不溶性担体は、少なくともサンプルパッドおよびサンプルパッドとは別体のメンブレンパッドを含み、サンプルパッドは、サンプル供給部及び高分子粘性物質担持部を有し、メンブレンパッドは、検出部を有する<8>~<10>のいずれかに記載の検出方法。
<12>高分子粘性物質担持部が、サンプルパッドのサンプル供給部の下流側に配置されている<11>に記載の検出方法。
<13>(1)の標識体が着色ラテックス又は金コロイドである<8>~<12>のいずれかに記載の検出方法。
<14>被検出物質がヘモグロビンであり、第一及び第二の抗体が抗ヘモグロビン抗体である<8>~<13>のいずれかに記載の検出方法。
<15>検体が、糞便である、<8>~<14>のいずれかに記載の検出方法。
<1>以下を含むイムノクロマトグラフィーを利用した検出キット。
(1)被検出物質に対して免疫学的に反応する第一の抗体が標識体に固定化されたコンジュゲート試薬
(2)サンプルを展開させることによりサンプル中の被検出物質を検出する不溶性担体を備えたイムノクロマトグラフィー用テストストリップであって、前記不溶性担体は、上流から順にサンプルを供給するサンプル供給部、高分子粘性物質が担持された高分子粘性物質担持部、および被検出物質に対して免疫学的に反応する第二の抗体が固定化された検出部、を含む、前記テストストリップ
<2>高分子粘性物質が分子量6000以上、かつ、粘度が4~1000mPa・Sである<1>に記載の検出キット。
<3>高分子粘性物質担持部は、不溶性担体上にサンプルの展開方向と直行するようにライン状に形成されている<1>または<2>に記載の検出キット。
<4>不溶性担体は、少なくともサンプルパッドおよびサンプルパッドとは別体のメンブレンパッドを含み、サンプルパッドは、サンプル供給部及び高分子粘性物質担持部を有し、メンブレンパッドは、検出部を有する<1>~<3>のいずれかに記載の検出キット。
<5>高分子粘性物質担持部が、サンプルパッドのサンプル供給部の下流側に配置されている<4>に記載の検出キット。
<6>(1)の標識体が着色ラテックス又は金コロイドである<1>~<5>のいずれかに記載の検出キット。
<7>被検出物質がヘモグロビンであり、第一及び第二の抗体が抗ヘモグロビン抗体である<1>~<6>のいずれかに記載の検出キット。
<8>イムノクロマトグラフィーを利用した検出方法であって、以下の工程を含む検出方法。
(A)被検出物質に対して免疫学的に反応する第一の抗体が標識体に固定化されたコンジュゲート試薬、検体および検体希釈液を混合し、これらの混合物からなるサンプルを得る工程
(B)下記イムノクロマトグラフィー用テストストリップのサンプル供給部に(A)で得られたサンプルを滴下し、不溶性担体中を展開させる工程
イムノクロマトグラフィー用テストストリップ;
前記不溶性担体を備え、上流から順にサンプルを供給するサンプル供給部、高分子粘性物質が担持された担持部、及び被検出物質に対して免疫学的に反応する第二の抗体が固定化された検出部、を含む、前記テストストリップ
(C)サンプル中の被検出物質とコンジュゲートの複合体、を検出部において検出する工程
<9>高分子粘性物質が分子量6000以上、かつ、粘度が4~1000mPa・Sである<8>に記載の検出方法。
<10>高分子粘性物質の担持部は、不溶性担体上にサンプルの展開方向と直行するようにライン状に形成されている<8>または<9>に記載の検出方法。
<11>不溶性担体は、少なくともサンプルパッドおよびサンプルパッドとは別体のメンブレンパッドを含み、サンプルパッドは、サンプル供給部及び高分子粘性物質担持部を有し、メンブレンパッドは、検出部を有する<8>~<10>のいずれかに記載の検出方法。
<12>高分子粘性物質担持部が、サンプルパッドのサンプル供給部の下流側に配置されている<11>に記載の検出方法。
<13>(1)の標識体が着色ラテックス又は金コロイドである<8>~<12>のいずれかに記載の検出方法。
<14>被検出物質がヘモグロビンであり、第一及び第二の抗体が抗ヘモグロビン抗体である<8>~<13>のいずれかに記載の検出方法。
<15>検体が、糞便である、<8>~<14>のいずれかに記載の検出方法。
本発明により、検体をあらかじめコンジュゲート試薬と接触させた状態でイムノクロマトグラフィーテストストリップのサンプル供給部に提供し、検体中の被検出物質である抗原を検出する方法において、コンジュゲートおよび検出用の抗体とは別に、テストストリップに、糖類および遊離の抗体を存在させることにより、検出部位における発色強度の増強を一定時間内に抑えることができ、短時間で正確な検出が可能となった。
さらには、遊離の抗体及び糖類を保持させる部位を、サンプル供給部より流れ方向の上流側に配置することで、サンプル供給部より上流に流れ込んでしまうようなコンジュゲートやコンジュゲートと抗原との複合体を効果的にマスキングすることが可能となり、より効果的に検出部位における検出強度の制御が可能となった。
さらには、遊離の抗体及び糖類を保持させる部位を、サンプル供給部より流れ方向の上流側に配置することで、サンプル供給部より上流に流れ込んでしまうようなコンジュゲートやコンジュゲートと抗原との複合体を効果的にマスキングすることが可能となり、より効果的に検出部位における検出強度の制御が可能となった。
また、さらに本発明の別の態様により、検体をあらかじめコンジュゲート試薬と接触させた状態でイムノクロマトグラフィーテストストリップのサンプル供給部に提供し、検体中の被検出物質である抗原を検出する方法において、テストストリップのサンプル供給部の下流側に高分子粘性物質を存在させることにより、余分な抗原の検出部位への流入を抑制し、検出部位における発色強度の増強を一定時間内に抑えることができることから、短時間で正確な検出が可能となった。
(サンプル)
本発明において、サンプルとしては、血液、尿、痰、唾液、鼻汁、その他の体液、糞便等の生体試料を用いる。生体試料は、そのままサンプルとして用いてもよく、適宜希釈液によって希釈したり、ろ過してサンプルとしてもよい。
本発明において、サンプルとしては、血液、尿、痰、唾液、鼻汁、その他の体液、糞便等の生体試料を用いる。生体試料は、そのままサンプルとして用いてもよく、適宜希釈液によって希釈したり、ろ過してサンプルとしてもよい。
(被検出物質)
本発明の被検出物質としては、サンプルである生体試料中に含まれ、抗原抗体反応を利用して検出し得るものであればいずれでもよく、ウイルス、細菌、寄生虫、タンパク質などが挙げられる。
被検出物質となるウイルスとしてインフルエンザウイルス、アデノウィルス、ロタウィルス、ノロウィルス、被検出物質となるタンパク質としては、糞便潜在血液中のヒトヘモグロビン、B型肝炎ウイルス抗体、C型肝炎ウイルス抗体、ヒト免疫不全ウイルス抗体等が挙げられる。
本発明の被検出物質としては、サンプルである生体試料中に含まれ、抗原抗体反応を利用して検出し得るものであればいずれでもよく、ウイルス、細菌、寄生虫、タンパク質などが挙げられる。
被検出物質となるウイルスとしてインフルエンザウイルス、アデノウィルス、ロタウィルス、ノロウィルス、被検出物質となるタンパク質としては、糞便潜在血液中のヒトヘモグロビン、B型肝炎ウイルス抗体、C型肝炎ウイルス抗体、ヒト免疫不全ウイルス抗体等が挙げられる。
(キット)
本発明のイムノクロマトグラフィーを利用した検出キットは、以下の(1)及び(2)を含む検出キットであればよい。
(1)被検出物質に対して免疫学的に反応する第一の抗体が標識体に固定化されたコンジュゲート試薬
(2)サンプルを展開させることによりサンプル中の被検出物質を検出する不溶性担体を備えたイムノクロマトグラフィー用テストストリップであって、前記不溶性担体は、上流から順に糖類および第三の抗体が溶出可能に担持された担持部、サンプルを供給するサンプル供給部、および被検出物質に対して免疫学的に反応する第二の抗体が固定化された検出部、を含む、前記テストストリップ
また、本発明の別の態様のイムノクロマトグラフィーを利用した検出キットは、以下の(1)及び(2)を含む検出キットであればよい。
(1)被検出物質に対して免疫学的に反応する第一の抗体が標識体に固定化されたコンジュゲート試薬
(2)サンプルを展開させることによりサンプル中の被検出物質を検出する不溶性担体を備えたイムノクロマトグラフィー用テストストリップであって、前記不溶性担体は、上流から順にサンプルを供給するサンプル供給部、高分子粘性物質が担持された高分子粘性物質担持部、および被検出物質に対して免疫学的に反応する第二の抗体が固定化された検出部、を含む、前記テストストリップ
これらのキットは、他に検出に必要な試薬、サンプルの希釈液、試験用チューブ、便採取用の綿棒、取扱い説明書、テストストリップ格納用のハウジングなどを含んでもよい。
本発明のイムノクロマトグラフィーを利用した検出キットは、以下の(1)及び(2)を含む検出キットであればよい。
(1)被検出物質に対して免疫学的に反応する第一の抗体が標識体に固定化されたコンジュゲート試薬
(2)サンプルを展開させることによりサンプル中の被検出物質を検出する不溶性担体を備えたイムノクロマトグラフィー用テストストリップであって、前記不溶性担体は、上流から順に糖類および第三の抗体が溶出可能に担持された担持部、サンプルを供給するサンプル供給部、および被検出物質に対して免疫学的に反応する第二の抗体が固定化された検出部、を含む、前記テストストリップ
また、本発明の別の態様のイムノクロマトグラフィーを利用した検出キットは、以下の(1)及び(2)を含む検出キットであればよい。
(1)被検出物質に対して免疫学的に反応する第一の抗体が標識体に固定化されたコンジュゲート試薬
(2)サンプルを展開させることによりサンプル中の被検出物質を検出する不溶性担体を備えたイムノクロマトグラフィー用テストストリップであって、前記不溶性担体は、上流から順にサンプルを供給するサンプル供給部、高分子粘性物質が担持された高分子粘性物質担持部、および被検出物質に対して免疫学的に反応する第二の抗体が固定化された検出部、を含む、前記テストストリップ
これらのキットは、他に検出に必要な試薬、サンプルの希釈液、試験用チューブ、便採取用の綿棒、取扱い説明書、テストストリップ格納用のハウジングなどを含んでもよい。
(イムノクロマトグラフィー用テストストリップ)
本発明のテストストリップにおいて、上記サンプルを供給するサンプル供給部は、サンプルパッドとして、検出部を備えた不溶性メンブレンと別個に存在する場合、または、前記不溶性メンブレンと同一メンブレン上に、検出部の上流側のサンプル供給部として存在する場合等がある。このうちでもサンプルパッドとして存在する場合が望ましい。
本発明のテストストリップには、コンジュゲートパッドが存在せず、コンジュゲートはテストストリップとは別に、コンジュゲート試薬として存在する。コンジュゲート試薬は、例えば、フィルター中にコンジュゲートが含浸されたコンジュゲートチップの形態、凍結乾燥試薬の形態、凍結試薬の形態、乾燥試薬の形態等、検体希釈液等の液体にあらかじめ添加されている液状試薬の形態が挙げられる。コンジュゲートチップは、フィルターそのままであってもよいし、ハウジングに内蔵されていてもよい。このようなコンジュゲートチップを使って、検体希釈液を濾過して通過させることでチップ内のコンジュゲートと被検出物質が結合し、複合体を形成することができる。凍結乾燥試薬の形態、凍結試薬の形態、乾燥試薬の形態の場合は、使用直前に、被検出物質、又は検体希釈液に添加して使用することができる。
本発明のテストストリップにおいて、上記サンプルを供給するサンプル供給部は、サンプルパッドとして、検出部を備えた不溶性メンブレンと別個に存在する場合、または、前記不溶性メンブレンと同一メンブレン上に、検出部の上流側のサンプル供給部として存在する場合等がある。このうちでもサンプルパッドとして存在する場合が望ましい。
本発明のテストストリップには、コンジュゲートパッドが存在せず、コンジュゲートはテストストリップとは別に、コンジュゲート試薬として存在する。コンジュゲート試薬は、例えば、フィルター中にコンジュゲートが含浸されたコンジュゲートチップの形態、凍結乾燥試薬の形態、凍結試薬の形態、乾燥試薬の形態等、検体希釈液等の液体にあらかじめ添加されている液状試薬の形態が挙げられる。コンジュゲートチップは、フィルターそのままであってもよいし、ハウジングに内蔵されていてもよい。このようなコンジュゲートチップを使って、検体希釈液を濾過して通過させることでチップ内のコンジュゲートと被検出物質が結合し、複合体を形成することができる。凍結乾燥試薬の形態、凍結試薬の形態、乾燥試薬の形態の場合は、使用直前に、被検出物質、又は検体希釈液に添加して使用することができる。
(サンプルパッド)
本発明のイムノクロマトグラフィーテストストリップがサンプルパッドを含む場合、サンプルパッドとはサンプルを受け入れる部位(サンプル供給部)を有するパッドであればよく、パッドに成型された状態で液体のサンプルを吸収し、液体と検出対象物とが通り抜けることができるどんな物質及び形態をも含む。サンプルパッドに適した材料の具体例として、ガラス繊維(グラスファイバー)、アクリル繊維、親水性ポリエチレン材、乾燥紙、紙パルプ、織物等が含まれるが、これらに限定されない。好適には、グラスファイバー製パッドが用いられる。サンプルパッドには、後述する抗体固定化メンブレンにおける非特異的反応(吸着)を防止・抑制する目的で、通常使用されるブロッキング試薬を含ませることができる。
本発明のイムノクロマトグラフィーテストストリップがサンプルパッドを含む場合、サンプルパッドとはサンプルを受け入れる部位(サンプル供給部)を有するパッドであればよく、パッドに成型された状態で液体のサンプルを吸収し、液体と検出対象物とが通り抜けることができるどんな物質及び形態をも含む。サンプルパッドに適した材料の具体例として、ガラス繊維(グラスファイバー)、アクリル繊維、親水性ポリエチレン材、乾燥紙、紙パルプ、織物等が含まれるが、これらに限定されない。好適には、グラスファイバー製パッドが用いられる。サンプルパッドには、後述する抗体固定化メンブレンにおける非特異的反応(吸着)を防止・抑制する目的で、通常使用されるブロッキング試薬を含ませることができる。
(糖類および抗体)
本発明のテストストリップの担持部において担持させる糖類は、遊離の抗体の溶出速度をコントロールできる作用があるものであればよく、このうち単糖類及び2糖類から選ばれるいずれか1以上が好ましい。具体的には、単糖類としては、グルコース、ガラクトース、フルクトース、マンノース等が挙げられ、2糖類としては、スクロース、ラクトース、マルトース、トレハロース、フルクトース等が挙げられる。
本発明のストストリップの担持部において担持される第三の抗体とは、検出対象に対する抗体であって、検出対象または、検出対象及びコンジュゲートの複合体と結合するような抗体であればよい。したがって、コンジュゲートに含まれる第一の抗体または検出部に固定化される第二の抗体と同一の抗体であってもよいし、異なる抗体であってもよい。また、モノクローナル抗体でもポリクローナル抗体でもよい。第三の抗体は、コンジュゲートのような固相に結合した抗体や、検出用抗体のようにメンブレンに固定化された抗体と異なり、テストストリップに固定化されておらず、サンプルパッドや不溶性メンブレンから溶出可能に保持されている遊離の抗体であることが望ましい。
本発明のテストストリップの担持部において担持させる糖類は、遊離の抗体の溶出速度をコントロールできる作用があるものであればよく、このうち単糖類及び2糖類から選ばれるいずれか1以上が好ましい。具体的には、単糖類としては、グルコース、ガラクトース、フルクトース、マンノース等が挙げられ、2糖類としては、スクロース、ラクトース、マルトース、トレハロース、フルクトース等が挙げられる。
本発明のストストリップの担持部において担持される第三の抗体とは、検出対象に対する抗体であって、検出対象または、検出対象及びコンジュゲートの複合体と結合するような抗体であればよい。したがって、コンジュゲートに含まれる第一の抗体または検出部に固定化される第二の抗体と同一の抗体であってもよいし、異なる抗体であってもよい。また、モノクローナル抗体でもポリクローナル抗体でもよい。第三の抗体は、コンジュゲートのような固相に結合した抗体や、検出用抗体のようにメンブレンに固定化された抗体と異なり、テストストリップに固定化されておらず、サンプルパッドや不溶性メンブレンから溶出可能に保持されている遊離の抗体であることが望ましい。
本発明において、糖類および抗体は、テストストリップがサンプルパッドを有する場合には、サンプルパッドのうち、サンプル供給部より上流側に担持されることが望ましい。
また、サンプルパッドを有さず、同一の不溶性メンブレン上にサンプル供給部および検出部を有する場合には、不溶性メンブレンのうち、サンプル供給部の上流側に担持されることが望ましい。また、サンプル供給部の上流側でも、最上流部、すなわち、不溶性メンブレンの上流側端部に担持されることがよりいっそう望ましい。
また、サンプルパッドを有さず、同一の不溶性メンブレン上にサンプル供給部および検出部を有する場合には、不溶性メンブレンのうち、サンプル供給部の上流側に担持されることが望ましい。また、サンプル供給部の上流側でも、最上流部、すなわち、不溶性メンブレンの上流側端部に担持されることがよりいっそう望ましい。
糖類および抗体をサンプルパッドや不溶性メンブレンに溶出可能に担持させる方法としては、糖類を含む溶液および抗体を含む溶液をサンプルパッド等に塗布したり、これらの溶液にサンプルパッドを浸漬して乾燥する方法が挙げられる。
糖類と抗体は、それぞれ別々の溶液をそれぞれ塗布して乾燥してもよいし、糖類と抗体を混合した溶液を塗布して乾燥してもよい。
糖類と抗体は、それぞれ別々の溶液をそれぞれ塗布して乾燥してもよいし、糖類と抗体を混合した溶液を塗布して乾燥してもよい。
上記の糖類または抗体を所定の濃度で含有する液を調製し、ノズルから液を一定の速度で吐出しながら水平方向に移動させることのできる機構を有する装置などを用いて、上記液をライン状にサンプルパッドや不溶性メンブレン担体に塗布し、乾燥させることにより溶出可能に担持させることができる。上記糖類の液の濃度は0.1~10%が好ましく、0.5~8%さらに好ましく、1~5%がよりいっそう好ましい。上記抗体の液の濃度は0.05~5mg/mLが好ましく、0.1~1mg/mLがさらに好ましく、0.1~0.7mg/mLがよりいっそう好ましい。また、糖類または抗体のサンプルパッドまたは不溶性メンブレン担体への担持量は、ラテラルフロー式の場合には上記の装置のノズルからの吐出速度を調節することによって最適化でき、1~20μL/cmが好ましく、5~10μL/cmより好ましい。
また、担持部は、流れ方向に直行するようにライン状に形成されることが望ましく、ラインの幅は、1~10mmが好ましく、2~8mmがより好ましく、3~5mmがよりいっそう好ましい。
また、担持部は、流れ方向に直行するようにライン状に形成されることが望ましく、ラインの幅は、1~10mmが好ましく、2~8mmがより好ましく、3~5mmがよりいっそう好ましい。
このようなテストストリップのサンプルパッドに、コンジュゲート試薬、被検出物質、検体希釈液を含有するサンプルが供給されると、被検出物質とコンジュゲートが接触して複合体を形成しながら当該パッドを通過する。その後、複合体は検出用抗体が固定化された不溶性メンブレンへと展開される。
不溶性メンブレンには、その一部に被検出物質に対して免疫学的に反応する第二の抗体が固定化されているため、該複合体は第二の抗体に結合して固定化されることになる。固定化された複合体は、コンジュゲートの標識物質に由来する吸光度、反射光、蛍光、磁気等を検出する手段により検出される。
ここで、本発明の作用について説明する。サンプル供給部に供給されたサンプルはメンブレン上で四方に拡散することから、下流に展開するものと、上流に回り込んでしまうものがある。このうち上流に回り込んでしまうものは、その後遅れて展開し、検出部における発色強度を長く増強させる原因となる。本発明の糖類および第三の抗体の作用は、おそらく、この上流に回り込んでしまうサンプルと反応することで、被検出物質や被検出物質とコンジュゲートとの複合体をマスキングし、検出部での結合を抑制することができると思われる。
不溶性メンブレンには、その一部に被検出物質に対して免疫学的に反応する第二の抗体が固定化されているため、該複合体は第二の抗体に結合して固定化されることになる。固定化された複合体は、コンジュゲートの標識物質に由来する吸光度、反射光、蛍光、磁気等を検出する手段により検出される。
ここで、本発明の作用について説明する。サンプル供給部に供給されたサンプルはメンブレン上で四方に拡散することから、下流に展開するものと、上流に回り込んでしまうものがある。このうち上流に回り込んでしまうものは、その後遅れて展開し、検出部における発色強度を長く増強させる原因となる。本発明の糖類および第三の抗体の作用は、おそらく、この上流に回り込んでしまうサンプルと反応することで、被検出物質や被検出物質とコンジュゲートとの複合体をマスキングし、検出部での結合を抑制することができると思われる。
(高分子粘性物質)
本発明のテストストリップに担持させる高分子粘性物質は、サンプル中の抗原とコンジュゲートの複合体を凝集させ、検出部への流れをコントロールできる作用があるものであればよく、粘度は4~1000mPa・Sが好ましい。4mPa・S未満では、前記複合体を凝集させる能力に乏しく、また1000mPa・Sより大きいと、前記複合体を速く凝集させてしまい、検出部において必要な感度が得られないからである。また、分子量は6000以上が好ましい。さらに好ましくは、粘度が4~1000mPa・Sで、かつ、分子量が6000以上である。粘度は、5~500mPa・Sがより好ましく、10~200mPa・Sがさらにいっそう好ましい。分子量は、20000以上がより好ましく、20000以上~400000以下が更にいっそう好ましい。具体的には、分子量が6000以上のポリエチレングリコール(PEG)、プルラン、デキストラン、ポリビニルピロリドン(PVP)等から選ばれるいずれか1以上が好ましい。
本発明のテストストリップに担持させる高分子粘性物質は、サンプル中の抗原とコンジュゲートの複合体を凝集させ、検出部への流れをコントロールできる作用があるものであればよく、粘度は4~1000mPa・Sが好ましい。4mPa・S未満では、前記複合体を凝集させる能力に乏しく、また1000mPa・Sより大きいと、前記複合体を速く凝集させてしまい、検出部において必要な感度が得られないからである。また、分子量は6000以上が好ましい。さらに好ましくは、粘度が4~1000mPa・Sで、かつ、分子量が6000以上である。粘度は、5~500mPa・Sがより好ましく、10~200mPa・Sがさらにいっそう好ましい。分子量は、20000以上がより好ましく、20000以上~400000以下が更にいっそう好ましい。具体的には、分子量が6000以上のポリエチレングリコール(PEG)、プルラン、デキストラン、ポリビニルピロリドン(PVP)等から選ばれるいずれか1以上が好ましい。
本発明において、高分子粘性物質は、テストストリップがサンプルパッドを有する場合には、サンプルパッドのうち、サンプル供給部より下流側に担持される必要がある。また、サンプルパッドを有さず、同一の不溶性メンブレン上にサンプル供給部および検出部を有する場合には、不溶性メンブレンのうち、サンプル供給部の下流側に担持されることが望ましい。また、サンプル供給部の下流側でもサンプル供給部より下流であって、かつ、メンブレンとの重なり部分より上流側に担持されることがさらに望ましい。
高分子粘性物質をサンプルパッドや不溶性メンブレンに溶出可能に担持させる方法としては、高分子粘性物質を含む溶液をサンプルパッド等に塗布したり、これらの溶液にサンプルパッドを浸漬して乾燥する方法が挙げられる。
上記の高分子粘性物質を所定の濃度で含有する液を調製し、ノズルから液を一定の速度で吐出しながら水平方向に移動させることのできる機構を有する装置などを用いて、上記液をライン状にサンプルパッドや不溶性メンブレン担体に塗布し、乾燥させることにより溶出可能に担持させることができる。上記高分子粘性物質溶液の濃度は前述の好ましい粘度となるような濃度に調整して利用することが好ましい。また、高分子粘性物質のサンプルパッドまたは不溶性メンブレン担体への担持量は、ラテラルフロー式の場合には上記の装置のノズルからの吐出速度を調節することによって最適化でき、1~20μL/cmが好ましく、5~10μL/cmより好ましい。
また、担持部は、流れ方向に直行するようにライン状に形成されることが望ましく、ラインの幅は、1~10mmが好ましく、2~8mmがより好ましく、3~5mmがよりいっそう好ましい。
また、担持部は、流れ方向に直行するようにライン状に形成されることが望ましく、ラインの幅は、1~10mmが好ましく、2~8mmがより好ましく、3~5mmがよりいっそう好ましい。
このようなテストストリップのサンプルパッドに、コンジュゲート試薬、被検出物質、検体希釈液を含有するサンプルが供給されると、被検出物質とコンジュゲートが接触して複合体を形成しながら当該パッドを通過する。その後、複合体は検出用抗体が固定化された不溶性メンブレンへと展開される。
不溶性メンブレンには、その一部に被検出物質に対して免疫学的に反応する第二の抗体が固定化されているため、該複合体は第二の抗体に結合して固定化されることになる。固定化された複合体は、コンジュゲートの標識物質に由来する吸光度、反射光、蛍光、磁気等を検出する手段により検出される。
ここで、本発明の作用について説明する。サンプル供給部に供給されたサンプルはメンブレン上で四方に拡散することから、下流に展開するものと、上流に回り込んでしまうものがある。このうち上流に回り込んでしまうものは、その後遅れて展開し、検出部における発色強度を長く増強させる原因となる。本発明の高分子粘性物質の作用は、おそらく、この上流に回り込んでしまうサンプルとコンジュゲートと反応することで、これらの複合体が凝集してしまい、それ以上下流側に流れなくなり、コンジュゲートの下流への供給が停止される。つまり、高分子粘性物質担持部位で複合体は捕捉されることから、捕捉されずに通過した分のみが検出部で結合されることになる。したがって、検出部での結合を抑制することができると思われる。
不溶性メンブレンには、その一部に被検出物質に対して免疫学的に反応する第二の抗体が固定化されているため、該複合体は第二の抗体に結合して固定化されることになる。固定化された複合体は、コンジュゲートの標識物質に由来する吸光度、反射光、蛍光、磁気等を検出する手段により検出される。
ここで、本発明の作用について説明する。サンプル供給部に供給されたサンプルはメンブレン上で四方に拡散することから、下流に展開するものと、上流に回り込んでしまうものがある。このうち上流に回り込んでしまうものは、その後遅れて展開し、検出部における発色強度を長く増強させる原因となる。本発明の高分子粘性物質の作用は、おそらく、この上流に回り込んでしまうサンプルとコンジュゲートと反応することで、これらの複合体が凝集してしまい、それ以上下流側に流れなくなり、コンジュゲートの下流への供給が停止される。つまり、高分子粘性物質担持部位で複合体は捕捉されることから、捕捉されずに通過した分のみが検出部で結合されることになる。したがって、検出部での結合を抑制することができると思われる。
(サードパッド)
サードパッドは、試料の性状等により必要に応じて配置されることが望ましく、サンプル中の被検出物質とコンジュゲートの複合体を透過させることができるものであればいずれでもよい。具体的には、ガラス繊維(グラスファイバー)、アクリル繊維、親水性ポリエチレン材、乾燥紙、紙パルプ、織物等が含まれるが、特に、ポリスルホンまたはセルロースアセテートからなる多孔質性の部材であることが望ましい。
また、本発明の多孔質性サードパッドの孔径は、平均孔径で1~100μmであることが望ましく、より望ましくは10~100μm、よりいっそう望ましくは20~80μmであり25~70μmがもっとも望ましい。1μm未満では詰まりの原因となり、検体の流れ自体が不良となるからであり100μmより大きいと前記非特異反応物質を捕捉することができないためと思われるからである。
サードパッドは、試料の性状等により必要に応じて配置されることが望ましく、サンプル中の被検出物質とコンジュゲートの複合体を透過させることができるものであればいずれでもよい。具体的には、ガラス繊維(グラスファイバー)、アクリル繊維、親水性ポリエチレン材、乾燥紙、紙パルプ、織物等が含まれるが、特に、ポリスルホンまたはセルロースアセテートからなる多孔質性の部材であることが望ましい。
また、本発明の多孔質性サードパッドの孔径は、平均孔径で1~100μmであることが望ましく、より望ましくは10~100μm、よりいっそう望ましくは20~80μmであり25~70μmがもっとも望ましい。1μm未満では詰まりの原因となり、検体の流れ自体が不良となるからであり100μmより大きいと前記非特異反応物質を捕捉することができないためと思われるからである。
(不溶性メンブレン)
本発明に用いられる不溶性メンブレンは、被検出物質に対して免疫学的に反応する第一の抗体が固定化された少なくとも1つの検出部を有する。被検出物質に対して免疫学的に反応する抗体の不溶性メンブレン担体への固定化は、従来公知の方法で実施することができる。ラテラルフロー式のイムノクロマト試薬の場合には、上記の抗体を所定の濃度で含有する液を調製し、ノズルから液を一定の速度で吐出しながら水平方向に移動させることのできる機構を有する装置などを用いて、上記液をライン状に不溶性メンブレン担体に塗布し、乾燥させることにより固定化させることができる。上記液の抗体の濃度は0.1~5mg/mLが好ましく、0.5~2mg/mLがさらに好適である。また、抗体の不溶性メンブレン担体への固定化量は、ラテラルフロー式の場合には上記の装置のノズルからの吐出速度を調節することによって最適化でき、0.5~2μL/cmが好適である。
なお、上記ラテラルフロー式のイムノクロマト試薬を用いた測定方法は、サンプルが毛細管現象により不溶性メンブレン担体に対して並行方向に移動するように展開する方式の測定方法である。
また、上記の抗体を所定の濃度で含有する液は、緩衝液に抗体を添加することにより調製することができる。該緩衝液の種類としては、リン酸緩衝液、トリス緩衝液、グッド緩衝液など通常使用される緩衝液をあげることができる。緩衝液のpHは6.0~9.5の範囲が好ましく、6.5~8.5がより好ましく、7.0~8.0がさらに好ましい。緩衝液には、さらに塩化ナトリウムなどの塩類、スクロースなどの安定剤や保存剤、プロクリン(登録商標)などの防腐剤等を含んでもよい。塩類は塩化ナトリウムなどのようにイオン強度の調整のために含ませるもののほか、水酸化ナトリウムなど緩衝液のpHを調整する目的で添加するものも含まれる。
不溶性メンブレンに抗体を固定化した後、さらに、通常使用されるブロッキング剤を溶液あるいは蒸気状にして抗体を固定化した部位以外を被覆し、ブロッキングを行うこともできる。
なお、不溶性メンブレンには、従来からイムノクロマト試薬で用いられているコントロール捕捉試薬を固定化してもよい。該コントロール捕捉試薬は、アッセイの信頼性を担保するための試薬であって、コンジュゲート試薬に含ませたコントロール試薬を捕捉するものである。例えば、コンジュゲート試薬に標識されたKLHをコントロール試薬として含む場合には、抗KLH抗体などがコントロール捕捉試薬に該当する。コントロール捕捉試薬を固定化する位置は、アッセイ系の設計に適合するよう適宜選択することができる。
本発明に用いられる不溶性メンブレンは、被検出物質に対して免疫学的に反応する第一の抗体が固定化された少なくとも1つの検出部を有する。被検出物質に対して免疫学的に反応する抗体の不溶性メンブレン担体への固定化は、従来公知の方法で実施することができる。ラテラルフロー式のイムノクロマト試薬の場合には、上記の抗体を所定の濃度で含有する液を調製し、ノズルから液を一定の速度で吐出しながら水平方向に移動させることのできる機構を有する装置などを用いて、上記液をライン状に不溶性メンブレン担体に塗布し、乾燥させることにより固定化させることができる。上記液の抗体の濃度は0.1~5mg/mLが好ましく、0.5~2mg/mLがさらに好適である。また、抗体の不溶性メンブレン担体への固定化量は、ラテラルフロー式の場合には上記の装置のノズルからの吐出速度を調節することによって最適化でき、0.5~2μL/cmが好適である。
なお、上記ラテラルフロー式のイムノクロマト試薬を用いた測定方法は、サンプルが毛細管現象により不溶性メンブレン担体に対して並行方向に移動するように展開する方式の測定方法である。
また、上記の抗体を所定の濃度で含有する液は、緩衝液に抗体を添加することにより調製することができる。該緩衝液の種類としては、リン酸緩衝液、トリス緩衝液、グッド緩衝液など通常使用される緩衝液をあげることができる。緩衝液のpHは6.0~9.5の範囲が好ましく、6.5~8.5がより好ましく、7.0~8.0がさらに好ましい。緩衝液には、さらに塩化ナトリウムなどの塩類、スクロースなどの安定剤や保存剤、プロクリン(登録商標)などの防腐剤等を含んでもよい。塩類は塩化ナトリウムなどのようにイオン強度の調整のために含ませるもののほか、水酸化ナトリウムなど緩衝液のpHを調整する目的で添加するものも含まれる。
不溶性メンブレンに抗体を固定化した後、さらに、通常使用されるブロッキング剤を溶液あるいは蒸気状にして抗体を固定化した部位以外を被覆し、ブロッキングを行うこともできる。
なお、不溶性メンブレンには、従来からイムノクロマト試薬で用いられているコントロール捕捉試薬を固定化してもよい。該コントロール捕捉試薬は、アッセイの信頼性を担保するための試薬であって、コンジュゲート試薬に含ませたコントロール試薬を捕捉するものである。例えば、コンジュゲート試薬に標識されたKLHをコントロール試薬として含む場合には、抗KLH抗体などがコントロール捕捉試薬に該当する。コントロール捕捉試薬を固定化する位置は、アッセイ系の設計に適合するよう適宜選択することができる。
本発明で用いられる不溶性メンブレンを構成するメンブレンとしては、従来からイムノクロマト試薬の不溶性メンブレン担体として用いられている公知のメンブレンが使用できる。例えば、ポリエチレン、ポリエチレンテレフタレート、ナイロン類、ガラス、セルロースやセルロース誘導体などの多糖類、セラミックス等からなる繊維から構成されるメンブレンがあげられる。具体的には、ザルトリウス社、ミリポア社、東洋濾紙社、ワットマン社などから市販されているガラス繊維ろ紙やセルロースろ紙などが挙げられる。中でも、ザルトリウス社、UniSart CN140が好ましい。また、この不溶性メンブレン担体の孔径と構造を適宜選択することにより、コンジュゲートとサンプル中の被検出物質との複合体が不溶性メンブレン担体中を流れる速度を制御することが可能である。
上記イムノクロマトグラフィー用テストストリップは、プラスチック製粘着シートのような固相支持体上に配置させることが好ましい。該固相支持体は、サンプル及びコンジュゲートの毛管流を妨げない物質で構成する。また、イムノクロマトグラフィー用テストストリップを固相支持体上に接着剤等で固定化してもよい。この場合、接着剤の成分等においてもサンプル及びコンジュゲートの毛管流を妨げない物質で構成する。該イムノクロマトグラフィー用テストストリップは、イムノクロマトグラフィー用テストストリップの大きさ、サンプルの添加方法や添加位置、不溶性メンブレンの検出部の形成位置、シグナルの検出方法などを考慮した適当な容器(ハウジング)に格納・搭載して使用することができ、このように格納・搭載された状態を「デバイス」という。
(被検出物質に対して免疫学的に反応する抗体)
本発明で用いられる被検出物質に対して免疫学的に反応する第一~第三の抗体は、被検出物質に結合可能な抗体である。第一および第二の抗体は、後述する標識体および検出部に固定化される。第三の抗体は、糖類とともにサンプルパッドの上流または検出部を有する不溶性メンブレンに溶出可能に保持される。
また、これらの第一~第三の抗体は同一であってもよいが、第一と第二の抗体とは、別のものであることが好ましい。上記抗体は、ポリクローナル抗体、モノクローナル抗体のいずれでもよい。また、機能性抗体断片、Fab、Fabプライム等であってもよい。
本発明で用いられる被検出物質に対して免疫学的に反応する第一~第三の抗体は、被検出物質に結合可能な抗体である。第一および第二の抗体は、後述する標識体および検出部に固定化される。第三の抗体は、糖類とともにサンプルパッドの上流または検出部を有する不溶性メンブレンに溶出可能に保持される。
また、これらの第一~第三の抗体は同一であってもよいが、第一と第二の抗体とは、別のものであることが好ましい。上記抗体は、ポリクローナル抗体、モノクローナル抗体のいずれでもよい。また、機能性抗体断片、Fab、Fabプライム等であってもよい。
(標識体)
本発明で用いられる標識体は、従来からイムノクロマトグラフィー用テストストリップに用いられている公知の標識体を用いることができる。例えば、金コロイド粒子や白金コロイド粒子などのコロイド状金属粒子、着色ラテックス粒子、磁性粒子、蛍光粒子などが好ましく、特に金コロイド粒子、着色ラテックス粒子が好ましい。
本発明で用いられる標識体は、従来からイムノクロマトグラフィー用テストストリップに用いられている公知の標識体を用いることができる。例えば、金コロイド粒子や白金コロイド粒子などのコロイド状金属粒子、着色ラテックス粒子、磁性粒子、蛍光粒子などが好ましく、特に金コロイド粒子、着色ラテックス粒子が好ましい。
(コンジュゲート試薬)
本発明で用いられるコンジュゲートは、上記のような標識体に被検出物質に対して免疫学的に反応する抗体が固定化されたものである。被検出物質に対して免疫学的に反応する抗体を標識体へ固定化させる方法としては、物理吸着、化学結合等が挙げられ、物理吸着により固定化させるのが一般的である。本発明におけるコンジュゲートは、テストストリップとは別に、検体と混合されるように個別のコンジュゲート試薬として存在する。コンジュゲート試薬は、コンジュゲートそのままであってもよいし、必要に応じてコンジュゲート以外の他の成分や構成を含むものであってもよい。例えば、フィルター中にコンジュゲートが含浸されたコンジュゲートチップの形態が挙げられる。コンジュゲートチップを使って、検体希釈液を濾過することでコンジュゲートと被検出物質が結合し、複合体を形成することができる。
コンジュゲートチップは、検体希釈液容器と嵌合する開口部及びノズルを備えたキャップに内蔵されていることが望ましい。このようなコンジュゲートチップを特にコンジュゲートキャップということがある。コンジュゲートキャップを使ったろ過方法が次の通りである。コンジュゲートキャップを検体希釈液容器の開口部に嵌合し、検体希釈液容器を逆さにして、容器を圧迫することにより、希釈液がコンジュゲートキャップ内のコンジュゲートチップを通過する。その結果、コンジュゲートを含む希釈液がノズルから排出されることなる。これをイムノクロマトグラフィーテストストリップのサンプル供給部に提供する。
本発明で用いられるコンジュゲートは、上記のような標識体に被検出物質に対して免疫学的に反応する抗体が固定化されたものである。被検出物質に対して免疫学的に反応する抗体を標識体へ固定化させる方法としては、物理吸着、化学結合等が挙げられ、物理吸着により固定化させるのが一般的である。本発明におけるコンジュゲートは、テストストリップとは別に、検体と混合されるように個別のコンジュゲート試薬として存在する。コンジュゲート試薬は、コンジュゲートそのままであってもよいし、必要に応じてコンジュゲート以外の他の成分や構成を含むものであってもよい。例えば、フィルター中にコンジュゲートが含浸されたコンジュゲートチップの形態が挙げられる。コンジュゲートチップを使って、検体希釈液を濾過することでコンジュゲートと被検出物質が結合し、複合体を形成することができる。
コンジュゲートチップは、検体希釈液容器と嵌合する開口部及びノズルを備えたキャップに内蔵されていることが望ましい。このようなコンジュゲートチップを特にコンジュゲートキャップということがある。コンジュゲートキャップを使ったろ過方法が次の通りである。コンジュゲートキャップを検体希釈液容器の開口部に嵌合し、検体希釈液容器を逆さにして、容器を圧迫することにより、希釈液がコンジュゲートキャップ内のコンジュゲートチップを通過する。その結果、コンジュゲートを含む希釈液がノズルから排出されることなる。これをイムノクロマトグラフィーテストストリップのサンプル供給部に提供する。
本発明のイムノクロマトグラフィー用テストストリップは、さらに測定条件やサンプルの種類に応じて他の試薬や構成を含み得る。
他の試薬としては、例えば非特異反応を防止するブロッキング剤が挙げられる。
他の構成としては、例えば、不溶性メンブレンを移動・通過したサンプルを吸収することにより、サンプルの展開を制御する吸収パッドが挙げられる。
本発明のイムノクロマトグラフィー用テストストリップの作製は実施例に記載の方法を適宜、修飾・改変して行うことができる。
他の試薬としては、例えば非特異反応を防止するブロッキング剤が挙げられる。
他の構成としては、例えば、不溶性メンブレンを移動・通過したサンプルを吸収することにより、サンプルの展開を制御する吸収パッドが挙げられる。
本発明のイムノクロマトグラフィー用テストストリップの作製は実施例に記載の方法を適宜、修飾・改変して行うことができる。
(その他)
本明細書中、上流または下流という意味は、サンプルの流れる方向の上流側、下流側という意味で用いる。すなわち、本発明のテストストリップで上からサンプルパッド、サードパッド、不溶性メンブレンが一部で重なるように積層されている場合、サンプルパッドがもっとも上流であり、不溶性メンブレンが下流ということになる。また、不溶性メンブレンの下流側端部が重なるように上に吸収パッド(エンドパッドともいう)が積層されることがあるが、この場合、吸収パッドがもっとも下流である。
また、本明細書中の検体希釈液は、検体抽出液ともいう。また、検体希釈液は検体を展開する作用も有することから、展開液と表現されることもある。
本明細書中、上流または下流という意味は、サンプルの流れる方向の上流側、下流側という意味で用いる。すなわち、本発明のテストストリップで上からサンプルパッド、サードパッド、不溶性メンブレンが一部で重なるように積層されている場合、サンプルパッドがもっとも上流であり、不溶性メンブレンが下流ということになる。また、不溶性メンブレンの下流側端部が重なるように上に吸収パッド(エンドパッドともいう)が積層されることがあるが、この場合、吸収パッドがもっとも下流である。
また、本明細書中の検体希釈液は、検体抽出液ともいう。また、検体希釈液は検体を展開する作用も有することから、展開液と表現されることもある。
〔実施例1〕本願発明の効果確認試験(1)
サンプルパッドの上流側端部に各濃度の糖および抗ヘモグロビン抗体を溶出可能に含ませて、ヘモグロビンの検出反応における制御効果を確認した。以下、着色ラテックス標識抗ヘモグロビン抗体は、マウスモノクローナル抗体を、サンプルパッド及びテストストリップの抗ヘモグロビン抗体は、ヤギポリクローナル抗体をそれぞれ使用した。
1.コンジュゲートチップの作成
コンジュゲート(着色ラテックス標識抗ヘモグロビン抗体)及びコントロール試薬としてGSA(Goat Serum Albumin)感作ラテックスを焼結フィルターに含浸して乾燥し、コンジュゲートチップを作製した。
サンプルパッドの上流側端部に各濃度の糖および抗ヘモグロビン抗体を溶出可能に含ませて、ヘモグロビンの検出反応における制御効果を確認した。以下、着色ラテックス標識抗ヘモグロビン抗体は、マウスモノクローナル抗体を、サンプルパッド及びテストストリップの抗ヘモグロビン抗体は、ヤギポリクローナル抗体をそれぞれ使用した。
1.コンジュゲートチップの作成
コンジュゲート(着色ラテックス標識抗ヘモグロビン抗体)及びコントロール試薬としてGSA(Goat Serum Albumin)感作ラテックスを焼結フィルターに含浸して乾燥し、コンジュゲートチップを作製した。
2.テストデバイスの作製
(1)本発明のサンプルパッドの作製
スクロース0~7%と抗ヘモグロビン抗体0~0.5mg/mLを含む溶液を、10μL/cmでサンプルパッドの端部表面に塗布し乾燥させて、糖類および第三の抗体の担持部を有する本発明のサンプルパッドを作製した。(図中、S1%-0.5mg/mLなどの表記は、サンプルパッドに含ませるスクロースと抗体の濃度を示す。例えば、S1%-0.5mg/mLはスクロース1%、抗体0.5mg/mLを示す。図2,3においても同じ。コントロールはスクロースも抗体も含まない場合を示す。)
(2)テストストリップの作製
図4に、本発明のイムノクロマトグラフィー用テストストリップの模式構成図を示した。
プラスチックバッキングシート(a)に抗体固定化メンブレン(b)を貼り、その上に上記(1)で作製した糖類および第三の抗体の担持部(d)を有する本発明のサンプルパッド(e)を装着し、反対側の端には吸収パッド(f)を配置装着した。抗体固定化メンブレンは、不溶性メンブレンに、抗ヘモグロビン抗体およびコントロール試薬が流れ方向に対して垂直にライン状に固定化されている。各パッドは、上下のパッドとその一部が接するように積層して配置される。抗ヘモグロビン抗体からなるラインをテストライン(c1)、コントロール試薬からなるラインをコントロールライン(c2)という。
このように各構成要素を重ね合わせた構造物を一定幅に切断してイムノクロマトグラフィー用テストストリップを作製した。
テストストリップをサンプル添加窓部及び検出窓部(図示せず)を有するプラスチック製ハウジングに収容し、テストデバイスを作製した。
(1)本発明のサンプルパッドの作製
スクロース0~7%と抗ヘモグロビン抗体0~0.5mg/mLを含む溶液を、10μL/cmでサンプルパッドの端部表面に塗布し乾燥させて、糖類および第三の抗体の担持部を有する本発明のサンプルパッドを作製した。(図中、S1%-0.5mg/mLなどの表記は、サンプルパッドに含ませるスクロースと抗体の濃度を示す。例えば、S1%-0.5mg/mLはスクロース1%、抗体0.5mg/mLを示す。図2,3においても同じ。コントロールはスクロースも抗体も含まない場合を示す。)
(2)テストストリップの作製
図4に、本発明のイムノクロマトグラフィー用テストストリップの模式構成図を示した。
プラスチックバッキングシート(a)に抗体固定化メンブレン(b)を貼り、その上に上記(1)で作製した糖類および第三の抗体の担持部(d)を有する本発明のサンプルパッド(e)を装着し、反対側の端には吸収パッド(f)を配置装着した。抗体固定化メンブレンは、不溶性メンブレンに、抗ヘモグロビン抗体およびコントロール試薬が流れ方向に対して垂直にライン状に固定化されている。各パッドは、上下のパッドとその一部が接するように積層して配置される。抗ヘモグロビン抗体からなるラインをテストライン(c1)、コントロール試薬からなるラインをコントロールライン(c2)という。
このように各構成要素を重ね合わせた構造物を一定幅に切断してイムノクロマトグラフィー用テストストリップを作製した。
テストストリップをサンプル添加窓部及び検出窓部(図示せず)を有するプラスチック製ハウジングに収容し、テストデバイスを作製した。
3.検体希釈液
10mM PBSを含む検体希釈液に、ヒトヘモグロビンを120ng/mLとなるように添加し、測定サンプルとした。
10mM PBSを含む検体希釈液に、ヒトヘモグロビンを120ng/mLとなるように添加し、測定サンプルとした。
4.試験方法
測定サンプルをコンジュゲートチップでろ過して、テストデバイスのサンプル添加窓部よりサンプルパッド上に5滴滴下した。滴下後2,5,7,10、15,20,30分の各時点でラインの発色強度を測定し、数値化した。サンプル中のヘモグロビンは、コンジュゲートチップ内部のフィルターを通過し、通過途中で着色ラテックス標識抗ヘモグロビン抗体と複合体を形成する。複合体は、メンブレンを展開し、テストラインに固定化された抗ヘモグロビン抗体と結合し、検出される。
測定サンプルをコンジュゲートチップでろ過して、テストデバイスのサンプル添加窓部よりサンプルパッド上に5滴滴下した。滴下後2,5,7,10、15,20,30分の各時点でラインの発色強度を測定し、数値化した。サンプル中のヘモグロビンは、コンジュゲートチップ内部のフィルターを通過し、通過途中で着色ラテックス標識抗ヘモグロビン抗体と複合体を形成する。複合体は、メンブレンを展開し、テストラインに固定化された抗ヘモグロビン抗体と結合し、検出される。
5.試験結果
結果を図1に示す。
一定濃度の抗体および各濃度のスクロースを含むサンプルパッドを使った場合、いずれのスクロース濃度であっても、ヘモグロビンの検出反応抑制効果が認められた。特に、スクロース濃度1~3%では、良好な結果が確認された。
結果を図1に示す。
一定濃度の抗体および各濃度のスクロースを含むサンプルパッドを使った場合、いずれのスクロース濃度であっても、ヘモグロビンの検出反応抑制効果が認められた。特に、スクロース濃度1~3%では、良好な結果が確認された。
〔実施例2〕本発明の効果確認試験(2)
サンプルパッドの上流側端部に糖および各濃度の抗ヘモグロビン抗体を溶出可能に含ませて、ヘモグロビンの検出反応における制御効果を確認した。
サンプルパッドの上流側端部に糖および各濃度の抗ヘモグロビン抗体を溶出可能に含ませて、ヘモグロビンの検出反応における制御効果を確認した。
1.試験方法
スクロース5%及び抗ヘモグロビン抗体(抗体)を0.1mg/mL、0.3mg/mL、0.5mg/mL若しくは0.7mg/mL含む溶液を、10μL/cmでテストストリップのサンプルパッドの端部表面に塗布し乾燥させた以外は、実施例1と同様にサンプルパッドを作製し、テストストリップを製造した。
スクロース5%及び抗ヘモグロビン抗体(抗体)を0.1mg/mL、0.3mg/mL、0.5mg/mL若しくは0.7mg/mL含む溶液を、10μL/cmでテストストリップのサンプルパッドの端部表面に塗布し乾燥させた以外は、実施例1と同様にサンプルパッドを作製し、テストストリップを製造した。
2.試験結果
結果を図2に示す。一定濃度のスクロース(糖)および各濃度の抗ヘモグロビン抗体を含むサンプルパッドを使った場合、いずれの抗体濃度であっても、ヘモグロビンの検出反応における抑制効果が認められた。
結果を図2に示す。一定濃度のスクロース(糖)および各濃度の抗ヘモグロビン抗体を含むサンプルパッドを使った場合、いずれの抗体濃度であっても、ヘモグロビンの検出反応における抑制効果が認められた。
〔参考例1〕
本願発明の効果と比較するために、サンプルパッドの上流側端部に糖のみを溶出可能に含ませて、ヘモグロビンの検出反応における制御効果を確認した。
本願発明の効果と比較するために、サンプルパッドの上流側端部に糖のみを溶出可能に含ませて、ヘモグロビンの検出反応における制御効果を確認した。
1.試験方法
スクロース0、5%、10%を含む溶液を、10μL/cmでテストストリップのサンプルパッドの端部表面に塗布し乾燥させた以外は、実施例1と同様にサンプルパッドを作製し、テストストリップを製造した。
2.試験結果
結果を図3に示す。抗ヘモグロビン抗体(抗体)を含まず、スクロース(糖)のみを含むサンプルパッドを使った場合には、サンプル中のヘモグロビンの検出反応抑制効果は認められなかった。
スクロース0、5%、10%を含む溶液を、10μL/cmでテストストリップのサンプルパッドの端部表面に塗布し乾燥させた以外は、実施例1と同様にサンプルパッドを作製し、テストストリップを製造した。
2.試験結果
結果を図3に示す。抗ヘモグロビン抗体(抗体)を含まず、スクロース(糖)のみを含むサンプルパッドを使った場合には、サンプル中のヘモグロビンの検出反応抑制効果は認められなかった。
〔実施例3〕本願発明の効果確認試験
サンプルパッドのサンプル供給部の下流側に高分子粘性物質を溶出可能に含ませて、ヘモグロビンの検出反応における制御効果を確認した。以下、着色ラテックス標識抗ヘモグロビン抗体は、マウスモノクローナル抗体を、サンプルパッド及びテストストリップの抗ヘモグロビン抗体は、ヤギポリクローナル抗体をそれぞれ使用した。
1.コンジュゲートチップの作製
コンジュゲート(着色ラテックス標識抗ヘモグロビン抗体)及びコントロール試薬としてGSA(Goat Serum Albumin)感作ラテックスを焼結フィルターに含浸して乾燥し、コンジュゲートチップを作製した。
サンプルパッドのサンプル供給部の下流側に高分子粘性物質を溶出可能に含ませて、ヘモグロビンの検出反応における制御効果を確認した。以下、着色ラテックス標識抗ヘモグロビン抗体は、マウスモノクローナル抗体を、サンプルパッド及びテストストリップの抗ヘモグロビン抗体は、ヤギポリクローナル抗体をそれぞれ使用した。
1.コンジュゲートチップの作製
コンジュゲート(着色ラテックス標識抗ヘモグロビン抗体)及びコントロール試薬としてGSA(Goat Serum Albumin)感作ラテックスを焼結フィルターに含浸して乾燥し、コンジュゲートチップを作製した。
2.テストデバイスの作製
(1)本発明のサンプルパッドの作製
下記に示す高分子粘性物質を1%、5%、10%の濃度で含む10mMリン酸緩衝生理食塩溶液(pH7.2)(以下、PBS溶液という)を、10μL/cmでサンプルパッドのサンプル供給部(図15の(g))より下流側の表面に塗布し乾燥させて、高分子粘性物質の担持部を有する本発明のサンプルパッドを作製した。高分子粘性物質を含まないPBS溶液のみを塗布して乾燥させたサンプルパッドも作製した。また、上記高分子粘性物質を含む溶液をスクロース(33%)、グリセロール(30%)に代えたサンプルパッドも作製した。各高分子粘性物質及び高分子物質の各濃度における粘度(mPa・s)を粘度計を用いて測定した結果を表1に示す。
<高分子粘性物質>
PEG 2K(和光純薬工業)
PEG 4K(和光純薬工業)
PEG 6K(和光純薬工業)
PEG 20K(和光純薬工業)
プルラン(株式会社林原)
デキストラン 40K(和光純薬工業)
デキストラン 200K(和光純薬工業)
PVP K-25(和光純薬工業)
PVP K-90(和光純薬工業)
(1)本発明のサンプルパッドの作製
下記に示す高分子粘性物質を1%、5%、10%の濃度で含む10mMリン酸緩衝生理食塩溶液(pH7.2)(以下、PBS溶液という)を、10μL/cmでサンプルパッドのサンプル供給部(図15の(g))より下流側の表面に塗布し乾燥させて、高分子粘性物質の担持部を有する本発明のサンプルパッドを作製した。高分子粘性物質を含まないPBS溶液のみを塗布して乾燥させたサンプルパッドも作製した。また、上記高分子粘性物質を含む溶液をスクロース(33%)、グリセロール(30%)に代えたサンプルパッドも作製した。各高分子粘性物質及び高分子物質の各濃度における粘度(mPa・s)を粘度計を用いて測定した結果を表1に示す。
<高分子粘性物質>
PEG 2K(和光純薬工業)
PEG 4K(和光純薬工業)
PEG 6K(和光純薬工業)
PEG 20K(和光純薬工業)
プルラン(株式会社林原)
デキストラン 40K(和光純薬工業)
デキストラン 200K(和光純薬工業)
PVP K-25(和光純薬工業)
PVP K-90(和光純薬工業)
(2)テストストリップの作製
図15に、本発明のイムノクロマトグラフィー用テストストリップの模式構成図を示した。
プラスチックバッキングシート(a)に抗体固定化メンブレン(b)を貼り、その上に上記(1)で作製した高分子粘性物質の担持部(d’)を有する本発明のサンプルパッド(e’)を装着し、反対側の端には吸収パッド(f)を配置装着した。抗体固定化メンブレンは、不溶性メンブレンに、抗ヘモグロビン抗体およびコントロール試薬が流れ方向に対して垂直にライン状に固定化されている。各パッドは、上下のパッドとその一部が接するように積層して配置される。抗ヘモグロビン抗体からなるラインをテストライン(c1)、コントロール試薬からなるラインをコントロールライン(c2)という。
このように各構成要素を重ね合わせた構造物を一定幅に切断してイムノクロマトグラフィー用テストストリップを作製した。
テストストリップをサンプル添加窓部及び検出窓部(図示せず)を有するプラスチック製ハウジングに収容し、テストデバイスを作製した。
図15に、本発明のイムノクロマトグラフィー用テストストリップの模式構成図を示した。
プラスチックバッキングシート(a)に抗体固定化メンブレン(b)を貼り、その上に上記(1)で作製した高分子粘性物質の担持部(d’)を有する本発明のサンプルパッド(e’)を装着し、反対側の端には吸収パッド(f)を配置装着した。抗体固定化メンブレンは、不溶性メンブレンに、抗ヘモグロビン抗体およびコントロール試薬が流れ方向に対して垂直にライン状に固定化されている。各パッドは、上下のパッドとその一部が接するように積層して配置される。抗ヘモグロビン抗体からなるラインをテストライン(c1)、コントロール試薬からなるラインをコントロールライン(c2)という。
このように各構成要素を重ね合わせた構造物を一定幅に切断してイムノクロマトグラフィー用テストストリップを作製した。
テストストリップをサンプル添加窓部及び検出窓部(図示せず)を有するプラスチック製ハウジングに収容し、テストデバイスを作製した。
3.検体希釈液
10mM PBSを含む検体希釈液に、ヒトヘモグロビンを120ng/mLとなるように添加し、測定サンプルとした。
10mM PBSを含む検体希釈液に、ヒトヘモグロビンを120ng/mLとなるように添加し、測定サンプルとした。
4.試験方法
測定サンプルをコンジュゲートチップでろ過して、テストデバイスのサンプル添加窓部よりサンプルパッドのサンプル供給部上に5滴滴下した。滴下後2.5,5,7.5,10、15,20,30分の各時点でラインの発色強度を測定し、数値化した。サンプル中のヘモグロビンは、コンジュゲートチップ内部のフィルターを通過し、通過途中で着色ラテックス標識抗ヘモグロビン抗体と複合体を形成する。複合体は、メンブレンを展開し、テストラインに固定化された抗ヘモグロビン抗体と結合し、検出される。
測定サンプルをコンジュゲートチップでろ過して、テストデバイスのサンプル添加窓部よりサンプルパッドのサンプル供給部上に5滴滴下した。滴下後2.5,5,7.5,10、15,20,30分の各時点でラインの発色強度を測定し、数値化した。サンプル中のヘモグロビンは、コンジュゲートチップ内部のフィルターを通過し、通過途中で着色ラテックス標識抗ヘモグロビン抗体と複合体を形成する。複合体は、メンブレンを展開し、テストラインに固定化された抗ヘモグロビン抗体と結合し、検出される。
5.試験結果と考察
結果を図5~図14に示す。
図7、図12より、PEG 6K、PVP K-25は、10%の濃度(粘度5.44、4.36)でわずかにヘモグロビンの検出反応抑制効果が認められた。
特に、図8、図9、図11、図13より、PEG 20Kは5%(粘度4.14)、10%(粘度11.4)、プルランは5%(粘度14.0)、10%(粘度86.8)で、デキストラン 200Kは5%(粘度4.34)、10%(粘度13.0)、PVP K-90は5%(粘度30.3)、10%(粘度160.0)、でヘモグロビンの検出反応抑制効果が認められた。
一方、図5、図6、図10、より、PEG 2K、PEG 4K、デキストラン 40K、は、いずれの濃度でも(粘度それぞれ、1.0~2.14、1.03~2.68、1.11~3.85)、ヘモグロビンの検出反応抑制効果が認められなかった。
また、図14より、スクロースとグリセロールは濃度30%以上(粘度それぞれ3.27、2.08)でもヘモグロビンの検出反応抑制効果は認められなかった。
これより、検出反応抑制効果を得るためには、高分子粘性物質は、粘度は4.0以上必要であることがわかった。
結果を図5~図14に示す。
図7、図12より、PEG 6K、PVP K-25は、10%の濃度(粘度5.44、4.36)でわずかにヘモグロビンの検出反応抑制効果が認められた。
特に、図8、図9、図11、図13より、PEG 20Kは5%(粘度4.14)、10%(粘度11.4)、プルランは5%(粘度14.0)、10%(粘度86.8)で、デキストラン 200Kは5%(粘度4.34)、10%(粘度13.0)、PVP K-90は5%(粘度30.3)、10%(粘度160.0)、でヘモグロビンの検出反応抑制効果が認められた。
一方、図5、図6、図10、より、PEG 2K、PEG 4K、デキストラン 40K、は、いずれの濃度でも(粘度それぞれ、1.0~2.14、1.03~2.68、1.11~3.85)、ヘモグロビンの検出反応抑制効果が認められなかった。
また、図14より、スクロースとグリセロールは濃度30%以上(粘度それぞれ3.27、2.08)でもヘモグロビンの検出反応抑制効果は認められなかった。
これより、検出反応抑制効果を得るためには、高分子粘性物質は、粘度は4.0以上必要であることがわかった。
本発明によれば、検体をあらかじめコンジュゲート試薬と接触させた状態でイムノクロマトグラフィーテストストリップのサンプル供給部に提供し、検体中の被検出物質である抗原を検出する方法において、コンジュゲートおよび検出用の抗体とは別に、テストストリップに、糖類および遊離の抗体を存在させることにより、検出部位における発色強度の増強を一定時間内に抑えることができ、反応制御が可能となった。
また、さらに本発明の別の態様によれば、検体をあらかじめコンジュゲート試薬と接触させた状態でイムノクロマトグラフィーテストストリップのサンプル供給部に提供し、検体中の被検出物質である抗原を検出する方法において、テストストリップのうち、サンプル供給部の下流側に特定の高分子粘性物質を存在させることにより、検出部位における発色強度の増強を一定時間内に抑えることができ、反応制御が可能となった。
また、さらに本発明の別の態様によれば、検体をあらかじめコンジュゲート試薬と接触させた状態でイムノクロマトグラフィーテストストリップのサンプル供給部に提供し、検体中の被検出物質である抗原を検出する方法において、テストストリップのうち、サンプル供給部の下流側に特定の高分子粘性物質を存在させることにより、検出部位における発色強度の増強を一定時間内に抑えることができ、反応制御が可能となった。
(a)バッキングシート
(b)抗体固定化メンブレン
(c1)テストライン
(c2)コントロールライン
(d)糖類および第三の抗体の担持部
(d’)高分子粘性物質の担持部
(e),(e')サンプルパッド
(f)吸収パッド
(g)サンプル供給部
(b)抗体固定化メンブレン
(c1)テストライン
(c2)コントロールライン
(d)糖類および第三の抗体の担持部
(d’)高分子粘性物質の担持部
(e),(e')サンプルパッド
(f)吸収パッド
(g)サンプル供給部
Claims (34)
- 以下の(1)及び(2a)若しくは(2b)を含むイムノクロマトグラフィーを利用した検出キット。
(1)被検出物質に対して免疫学的に反応する第一の抗体が標識体に固定化されたコンジュゲート試薬
(2a)サンプルを展開させることによりサンプル中の被検出物質を検出する不溶性担体を備えたイムノクロマトグラフィー用テストストリップであって、前記不溶性担体は、上流から順に糖類および第三の抗体が溶出可能に担持された担持部、サンプルを供給するサンプル供給部、および被検出物質に対して免疫学的に反応する第二の抗体が固定化された検出部、を含む、前記テストストリップ
(2b)サンプルを展開させることによりサンプル中の被検出物質を検出する不溶性担体を備えたイムノクロマトグラフィー用テストストリップであって、前記不溶性担体は、上流から順にサンプルを供給するサンプル供給部、高分子粘性物質が担持された高分子粘性物質担持部、および被検出物質に対して免疫学的に反応する第二の抗体が固定化された検出部、を含む、前記テストストリップ - 以下を含むイムノクロマトグラフィーを利用した検出キット。
(1)被検出物質に対して免疫学的に反応する第一の抗体が標識体に固定化されたコンジュゲート試薬
(2)サンプルを展開させることによりサンプル中の被検出物質を検出する不溶性担体を備えたイムノクロマトグラフィー用テストストリップであって、前記不溶性担体は、上流から順に糖類および第三の抗体が溶出可能に担持された担持部、サンプルを供給するサンプル供給部、および被検出物質に対して免疫学的に反応する第二の抗体が固定化された検出部、を含む、前記テストストリップ - 糖類が、単糖類及び2糖類からなる群から選ばれるいずれか1以上である請求項2に記載の検出キット。
- 糖類および第三の抗体の担持部は、不溶性担体上にサンプルの展開方向と直行するようにライン状に形成されている請求項2又は3に記載の検出キット。
- 不溶性担体は、少なくともサンプルパッドおよびサンプルパッドとは別体のメンブレンパッドを含み、サンプルパッドは、糖類もしくは第三の抗体の担持部およびサンプル供給部を有し、メンブレンパッドは、検出部を有する請求項2~4のいずれかに記載の検出キット。
- (1)の標識体が着色ラテックス粒子又は金属コロイド粒子である請求項2~5のいずれかに記載の検出キット。
- 被検出物質がヘモグロビンであり、第一~第三の抗体が抗ヘモグロビン抗体である請求項2~6のいずれかに記載の検出キット。
- 糖類および第三の抗体の担持部が、サンプル供給部よりも上流側に配置されている請求項2~7のいずれかに記載の検出キット。
- 糖類および第三の抗体の担持部が、サンプルパッドの上流側端部に形成されている請求項2~8のいずれかに記載の検出キット。
- 以下を含むイムノクロマトグラフィーを利用した検出キット。
(1)被検出物質に対して免疫学的に反応する第一の抗体が標識体に固定化されたコンジュゲート試薬
(2)サンプルを展開させることによりサンプル中の被検出物質を検出する不溶性担体を備えたイムノクロマトグラフィー用テストストリップであって、前記不溶性担体は、上流から順にサンプルを供給するサンプル供給部、高分子粘性物質が担持された高分子粘性物質担持部、および被検出物質に対して免疫学的に反応する第二の抗体が固定化された検出部、を含む、前記テストストリップ - 高分子粘性物質が分子量6000以上、かつ、粘度が4~1000mPa・Sである請求項10に記載の検出キット。
- 高分子粘性物質担持部は、不溶性担体上にサンプルの展開方向と直行するようにライン状に形成されている請求項10または11に記載の検出キット。
- 不溶性担体は、少なくともサンプルパッドおよびサンプルパッドとは別体のメンブレンパッドを含み、サンプルパッドは、サンプル供給部及び高分子粘性物質担持部を有し、メンブレンパッドは、検出部を有する請求項10~12のいずれかに記載の検出キット。
- 高分子粘性物質担持部が、サンプルパッドのサンプル供給部の下流側に配置されている請求項13に記載の検出キット。
- (1)の標識体が着色ラテックス又は金コロイドである請求項10~14のいずれかに記載の検出キット。
- 被検出物質がヘモグロビンであり、第一及び第二の抗体が抗ヘモグロビン抗体である請求項10~15のいずれかに記載の検出キット。
- イムノクロマトグラフィーを利用した検出方法であって、以下の工程を含む検出方法。
(A)被検出物質に対して免疫学的に反応する第一の抗体が標識体に固定化されたコンジュゲート試薬、検体および検体希釈液を混合し、これらの混合物からなるサンプルを得る工程
(B)下記(1)又は(2)のイムノクロマトグラフィー用テストストリップのサンプル供給部に(A)で得られたサンプルを滴下し、不溶性担体中を展開させる工程
(1)イムノクロマトグラフィー用テストストリップ;
前記不溶性担体を備え、上流から順に糖類および第三の抗体が溶出可能に担持された担持部、サンプルを供給するサンプル供給部、および被検出物質に対して免疫学的に反応する第二の抗体が固定化された検出部、を含む、前記テストストリップ
(2)イムノクロマトグラフィー用テストストリップ;
前記不溶性担体を備え、上流から順にサンプルを供給するサンプル供給部、高分子粘性物質が担持された担持部、及び被検出物質に対して免疫学的に反応する第二の抗体が固定化された検出部、を含む、前記テストストリップ
(C)サンプル中の被検出物質とコンジュゲートの複合体、を検出部において検出する工程 - イムノクロマトグラフィーを利用した検出方法であって、以下の工程を含む検出方法。
(A)被検出物質に対して免疫学的に反応する第一の抗体が標識体に固定化されたコンジュゲート試薬、検体および検体希釈液を混合し、これらの混合物からなるサンプルを得る工程
(B)下記イムノクロマトグラフィー用テストストリップのサンプル供給部に(A)で得られたサンプルを滴下し、不溶性担体中を展開させる工程
イムノクロマトグラフィー用テストストリップ;
前記不溶性担体を備え、上流から順に糖類および第三の抗体が溶出可能に担持された担持部、サンプルを供給するサンプル供給部、および被検出物質に対して免疫学的に反応する第二の抗体が固定化された検出部、を含む、前記テストストリップ
(C)サンプル中の被検出物質とコンジュゲートの複合体、を検出部において検出する工程 - 糖類が、単糖類及び2糖類からなる群から選ばれるいずれか1以上である請求項18に記載の検出方法。
- 糖類および第三の抗体の担持部は、不溶性担体上にサンプルの展開方向と直行するようにライン状に形成されている請求項18または19に記載の検出方法。
- 不溶性担体は、少なくともサンプルパッドおよびサンプルパッドとは別体のメンブレンパッドを含み、サンプルパッドは、糖類もしくは第三の抗体の担持部およびサンプル供給部を有し、メンブレンパッドは、検出部を有する請求項18~20のいずれかに記載の検出方法。
- (1)の標識体が着色ラテックス粒子又は金属コロイド粒子である請求項18~21のいずれかに記載の検出方法。
- 被検出物質がヘモグロビンであり、第一~第三の抗体が抗ヘモグロビン抗体である請求項18~22のいずれかに記載の検出方法。
- 糖類および第三の抗体の担持部が、サンプル供給部よりも上流側に配置されている請求項18~23のいずれかに記載の検出方法。
- 糖類および第三の抗体の担持部が、サンプルパッドの上流側端部に形成されている請求項18~24のいずれかに記載の検出方法。
- 検体が、糞便である、請求項18~25のいずれかに記載の検出方法。
- イムノクロマトグラフィーを利用した検出方法であって、以下の工程を含む検出方法。
(A)被検出物質に対して免疫学的に反応する第一の抗体が標識体に固定化されたコンジュゲート試薬、検体および検体希釈液を混合し、これらの混合物からなるサンプルを得る工程
(B)下記イムノクロマトグラフィー用テストストリップのサンプル供給部に(A)で得られたサンプルを滴下し、不溶性担体中を展開させる工程
イムノクロマトグラフィー用テストストリップ;
前記不溶性担体を備え、上流から順にサンプルを供給するサンプル供給部、高分子粘性物質が担持された担持部、及び被検出物質に対して免疫学的に反応する第二の抗体が固定化された検出部、を含む、前記テストストリップ
(C)サンプル中の被検出物質とコンジュゲートの複合体、を検出部において検出する工程 - 高分子粘性物質が分子量6000以上、かつ、粘度が4~1000mPa・Sである請求項27に記載の検出方法。
- 高分子粘性物質の担持部は、不溶性担体上にサンプルの展開方向と直行するようにライン状に形成されている請求項27または28に記載の検出方法。
- 不溶性担体は、少なくともサンプルパッドおよびサンプルパッドとは別体のメンブレンパッドを含み、サンプルパッドは、サンプル供給部及び高分子粘性物質担持部を有し、メンブレンパッドは、検出部を有する請求項27~29のいずれかに記載の検出方法。
- 高分子粘性物質担持部が、サンプルパッドのサンプル供給部の下流側に配置されている請求項30に記載の検出方法。
- (1)の標識体が着色ラテックス又は金コロイドである請求項27~31のいずれかに記載の検出方法。
- 被検出物質がヘモグロビンであり、第一及び第二の抗体が抗ヘモグロビン抗体である請求項27~32のいずれかに記載の検出方法。
- 検体が、糞便である、請求項27~33のいずれかに記載の検出方法。
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| US16/095,902 US20190064160A1 (en) | 2016-08-09 | 2017-08-08 | Immunochromatographic detection kit |
Applications Claiming Priority (4)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| JP2016-156287 | 2016-08-09 | ||
| JP2016156287A JP6371808B2 (ja) | 2016-08-09 | 2016-08-09 | イムノクロマトグラフィー検出キット |
| JP2016-182673 | 2016-09-20 | ||
| JP2016182673A JP6736437B2 (ja) | 2016-09-20 | 2016-09-20 | イムノクロマトグラフィー検出キット |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| WO2018030365A1 true WO2018030365A1 (ja) | 2018-02-15 |
Family
ID=61162792
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| PCT/JP2017/028679 Ceased WO2018030365A1 (ja) | 2016-08-09 | 2017-08-08 | イムノクロマトグラフィー検出キット |
Country Status (2)
| Country | Link |
|---|---|
| US (1) | US20190064160A1 (ja) |
| WO (1) | WO2018030365A1 (ja) |
Cited By (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CN112305217A (zh) * | 2020-11-19 | 2021-02-02 | 深圳市易瑞生物技术股份有限公司 | 分体式免疫层析检测装置和免疫层析检测方法 |
| JPWO2021200916A1 (ja) * | 2020-03-31 | 2021-10-07 | ||
| US12345705B2 (en) | 2018-11-19 | 2025-07-01 | Sekisui Medical Co., Ltd. | Immunochromatographic test strip and immunochromatographic detection kit |
Families Citing this family (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CN110261605B (zh) * | 2019-06-25 | 2022-07-15 | 陕西科技大学 | 一种壳聚糖改性增强试纸检测灵敏度的方法 |
| CN112485453A (zh) * | 2020-11-18 | 2021-03-12 | 重庆中元汇吉生物技术有限公司 | 一种测定糖化血红蛋白的液相层析试剂及其制备方法 |
| CN113281526B (zh) * | 2021-03-18 | 2022-04-08 | 杭州微策生物技术股份有限公司 | 一种游离甲状腺素检测试剂条的样本垫处理试剂 |
| KR20240019075A (ko) * | 2021-06-07 | 2024-02-14 | 덴카 주식회사 | 분변 검체의 검사 방법 및 그것을 위한 이뮤노크로마토그래피 시험편 |
Citations (6)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JPH1048210A (ja) * | 1996-08-07 | 1998-02-20 | Eiken Chem Co Ltd | 特異結合分析における感度調節方法 |
| US6080551A (en) * | 1995-04-03 | 2000-06-27 | Biotrin Intellectual Properties, Ltd. | Rapid assays for the assessment of organ status based on the detection of one or more isoenzymes of glutathione S-transferase |
| JP2000310639A (ja) * | 1999-04-28 | 2000-11-07 | Sekisui Chem Co Ltd | 免疫クロマトグラフィー装置 |
| JP2012058058A (ja) * | 2010-09-08 | 2012-03-22 | Tanaka Kikinzoku Kogyo Kk | 核酸又は免疫クロマトグラフィー用試薬組成物、核酸又は免疫クロマトグラフィー測定方法及び核酸又は免疫クロマトグラフィー測定用キット |
| JP2012524277A (ja) * | 2009-04-15 | 2012-10-11 | レリア ダイアグノスティック システムズ,インク. | 試験ストリップのダイナミックレンジの拡張 |
| JP2016028241A (ja) * | 2010-03-31 | 2016-02-25 | 積水メディカル株式会社 | 多価抗原測定用コンジュゲート、これを用いた多価抗原測定用イムノクロマトテストストリップおよびイムノクロマト測定方法 |
-
2017
- 2017-08-08 WO PCT/JP2017/028679 patent/WO2018030365A1/ja not_active Ceased
- 2017-08-08 US US16/095,902 patent/US20190064160A1/en not_active Abandoned
Patent Citations (6)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US6080551A (en) * | 1995-04-03 | 2000-06-27 | Biotrin Intellectual Properties, Ltd. | Rapid assays for the assessment of organ status based on the detection of one or more isoenzymes of glutathione S-transferase |
| JPH1048210A (ja) * | 1996-08-07 | 1998-02-20 | Eiken Chem Co Ltd | 特異結合分析における感度調節方法 |
| JP2000310639A (ja) * | 1999-04-28 | 2000-11-07 | Sekisui Chem Co Ltd | 免疫クロマトグラフィー装置 |
| JP2012524277A (ja) * | 2009-04-15 | 2012-10-11 | レリア ダイアグノスティック システムズ,インク. | 試験ストリップのダイナミックレンジの拡張 |
| JP2016028241A (ja) * | 2010-03-31 | 2016-02-25 | 積水メディカル株式会社 | 多価抗原測定用コンジュゲート、これを用いた多価抗原測定用イムノクロマトテストストリップおよびイムノクロマト測定方法 |
| JP2012058058A (ja) * | 2010-09-08 | 2012-03-22 | Tanaka Kikinzoku Kogyo Kk | 核酸又は免疫クロマトグラフィー用試薬組成物、核酸又は免疫クロマトグラフィー測定方法及び核酸又は免疫クロマトグラフィー測定用キット |
Cited By (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US12345705B2 (en) | 2018-11-19 | 2025-07-01 | Sekisui Medical Co., Ltd. | Immunochromatographic test strip and immunochromatographic detection kit |
| JPWO2021200916A1 (ja) * | 2020-03-31 | 2021-10-07 | ||
| JP7743393B2 (ja) | 2020-03-31 | 2025-09-24 | キヤノンメディカルダイアグノスティックス株式会社 | ヘモグロビンの検出方法、溶液、便保存器、及び便含有液の評価方法 |
| CN112305217A (zh) * | 2020-11-19 | 2021-02-02 | 深圳市易瑞生物技术股份有限公司 | 分体式免疫层析检测装置和免疫层析检测方法 |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| US20190064160A1 (en) | 2019-02-28 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| WO2018030365A1 (ja) | イムノクロマトグラフィー検出キット | |
| CN102227631B (zh) | 免疫层析测试中信号放大的方法以及使用该方法的免疫层析试剂盒 | |
| JP5792859B1 (ja) | 免疫クロマト分析方法 | |
| JP6168529B2 (ja) | 多価抗原測定用コンジュゲート、これを用いた多価抗原測定用イムノクロマトテストストリップおよびイムノクロマト測定方法 | |
| JP6426872B1 (ja) | イムノクロマト用試験片及びイムノクロマト検出キット | |
| JP6348240B2 (ja) | イムノクロマトグラフィーを利用した検出方法 | |
| EP3076177B1 (en) | Immunochromatography-assisted detection method | |
| WO2012133615A1 (ja) | 検体不添加サンプルを操作不適サンプルと判定できるイムノクロマトグラフィーに基づく検出方法及びこれに用いるテストストリップ | |
| WO2017029992A1 (ja) | 免疫学的検出方法及びこれに用いるテストストリップ | |
| JP6736437B2 (ja) | イムノクロマトグラフィー検出キット | |
| JP5936797B1 (ja) | イムノクロマトグラフィー用テストストリップ | |
| JP7356204B2 (ja) | イムノクロマト用試験片 | |
| JP2020063911A (ja) | イムノクロマトグラフィー用テストストリップおよび被検出物質の検出方法 | |
| JP6371808B2 (ja) | イムノクロマトグラフィー検出キット | |
| WO2020091028A1 (ja) | マイコプラズマ・ニューモニエの免疫学的検出方法 | |
| EP3885767B1 (en) | Test piece for immunochromatography and immunochromatographic detection kit | |
| JP6470147B2 (ja) | 免疫学的検出方法 | |
| JP2023110104A (ja) | 生物学的サンプルの前処理方法、前処理用濾過部材、及び免疫学的分析方法 |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| 121 | Ep: the epo has been informed by wipo that ep was designated in this application |
Ref document number: 17839436 Country of ref document: EP Kind code of ref document: A1 |
|
| NENP | Non-entry into the national phase |
Ref country code: DE |
|
| 122 | Ep: pct application non-entry in european phase |
Ref document number: 17839436 Country of ref document: EP Kind code of ref document: A1 |