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WO2017115789A1 - 加齢による生理機能の低下を回復または改善する組成物 - Google Patents

加齢による生理機能の低下を回復または改善する組成物 Download PDF

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WO2017115789A1
WO2017115789A1 PCT/JP2016/088865 JP2016088865W WO2017115789A1 WO 2017115789 A1 WO2017115789 A1 WO 2017115789A1 JP 2016088865 W JP2016088865 W JP 2016088865W WO 2017115789 A1 WO2017115789 A1 WO 2017115789A1
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aging
acid sequence
seq
gdf6
mir
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勇人 金田
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RIKEN
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    • C12N2740/00—Reverse transcribing RNA viruses
    • C12N2740/00011—Details
    • C12N2740/10011—Retroviridae
    • C12N2740/16011—Human Immunodeficiency Virus, HIV
    • C12N2740/16041—Use of virus, viral particle or viral elements as a vector
    • C12N2740/16043—Use of virus, viral particle or viral elements as a vector viral genome or elements thereof as genetic vector

Definitions

  • the present invention relates to a composition for recovering or improving a decrease in physiological function due to aging.
  • GDF6 is a member of the transforming growth factor ⁇ (TGF- ⁇ ) family that was first cloned in Non-Patent Document 1.
  • GDF6 is also called BMP-13 or CDMP-2.
  • Human GDF6 is a protein of 455 amino acids (molecular weight: about 50 kDa), is a protein encoded by the base sequence of SEQ ID NO: 1 and having the amino acid sequence shown by SEQ ID NO: 2.
  • Human GDF6 is cleaved during the maturation process and becomes a 120 amino acid mature protein represented by SEQ ID NO: 3. The mature protein forms a dimer (especially a homodimer) under physiological conditions, and expresses a physiological function as GDF6.
  • the function of GDF6 protein is thought to be involved in the formation of the eyeball, skull, foot bones and joints (Non-Patent Documents 2 to 4).
  • GDF11 which is a member of the TGF- ⁇ family, has been reported to be used for the treatment of a condition associated with aging, such as a decrease in expression associated with aging (eg, heart failure) (Patent Document 1, Non-Patent Document). 5). On the other hand, there is a report that expression of GDF11 increases due to aging and decreases muscle regeneration ability (Non-patent Document 6).
  • Non-patent Documents 7 to 9 SASP (Senescence Associate Secretory Phenotype), and secreted proteins are collectively called SASP factors (Non-patent Documents 7 to 9). Since SASP factor has been reported to induce paracrine action on surrounding cells to induce cell senescence (Non-patent Document 10), it is not limited to the phenomenon caused by aging of cells, but at various sites in the body. It is also a factor that promotes aging. In addition, it has been pointed out that SASP factor leads to induction of chronic inflammation, ashamed of various conditions, and cancer development, and its association with individual aging has been shown (Non-Patent Documents 11 to 13).
  • the present invention provides a composition for recovering or improving a decrease in physiological function due to aging.
  • the present inventors show that young mesenchymal stem / stromal cells (hereinafter also referred to as MSCs) secrete GDF6 protein, which is a humoral factor, that Gdf6 expression decreases with age, It has been found that the expression of miR-17 family members is decreased by the expression of GDF6, and that the expression of Gdf6 is decreased even at an early age when miR-17 family expression is suppressed.
  • MSCs young mesenchymal stem / stromal cells
  • Gdf6 protein functions as a potential regeneration factor of tissue stem cells, Gdf6 protein lowers the amount of SASP factor in the blood, and aging via Gdf6 protein. It has been found to induce recovery or improvement of physiology.
  • MSCs young mesenchymal stem / stromal cells
  • a composition for treating a condition associated with aging comprising a GDF6 protein or a miR-17 family member.
  • a composition for treating a condition associated with aging comprising a GDF6 protein or a miR-17 family member human expression vector.
  • a composition for treating a condition associated with aging comprising cells that secrete GDF6 protein.
  • Cells overexpressing GDF6 protein or miR-17 family member comprising The cell according to (4), which is obtained by overexpressing a GDF6 protein or a miR-17 family member in a mesenchymal stem / stromal cell or a blood cell.
  • GDF6 protein is (I) having the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 2 or 3, (Ii) having a sequence showing 90% or more homology with the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 2 or 3; (Iii) having an amino acid sequence having a deletion, insertion and / or substitution of 1 to 10 amino acids in the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 2 or 3, or (iv) shown in SEQ ID NO: 2 or 3
  • (10) miR-17 family members (I) has the nucleic acid sequence shown in SEQ ID NO: 4 or (Ii) has 90% or more identity with the nucleic acid sequence shown in SEQ ID NO: 4, or (Iii) having a nucleic acid sequence having a deletion, insertion and / or substitution of 1 to 10 bases in the nucleic acid sequence shown in SEQ ID NO: 4.
  • the composition according to the above (1), (2) or (8). (11) The above-mentioned (1) to (3), wherein the aging-related condition is muscle aging, hematopoietic aging, nervous system aging, vascular system aging, skin tissue aging, hair aging or cell aging. ) And (8) to (10).
  • a state associated with aging is the following state associated with aging: decreased resilience of muscle damage, decreased lymphocytes, decreased neural stem / progenitor cells, stiffening of vascular wall, contraction of vascular lumen, (1) to (3) and (8) to (8) above, which are decreased vascular network, decreased elasticity of skin tissue, thinned skin tissue, decreased gloss, decreased undifferentiated cells or increased secretion of SASP factor.
  • GDF6 protein is (I) having the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 2 or 3, (Ii) having a sequence showing 90% or more homology with the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 2 or 3; (Iii) having an amino acid sequence having a deletion, insertion and / or substitution of 1 to 10 amino acids in the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 2 or 3, or (iv) shown in SEQ ID NO: 2 or 3
  • a nucleic acid having a sequence complementary to a DNA sequence encoding the amino acid sequence to be encoded, and an amino acid sequence encoded by a sequence capable of hybridizing under stringent conditions, The cell according to any one of (4) to (7) above.
  • miR-17 family members (I) has the nucleic acid sequence shown in SEQ ID NO: 4 or (Ii) has 90% or more identity with the nucleic acid sequence shown in SEQ ID NO: 4, or (Iii) having a nucleic acid sequence having a deletion, insertion and / or substitution of 1 to 10 bases in the nucleic acid sequence shown in SEQ ID NO: 4.
  • the cell according to any one of (4) to (7) above.
  • a decrease in physiological function due to aging can be recovered or improved in an aging subject.
  • a decrease in plasma protein concentration of various SASP factors inflammatory cytokines and / or chemokines
  • the present invention has been shown to improve the decrease in physiological function due to systemic aging, and the present invention is related to or affected by age-related diseases such as cancer, Alzheimer's disease, arteriosclerosis, osteoporosis, and pulmonary fibrosis. It is also useful to improve the state of possibility.
  • FIG. 1 shows a difference in differentiation ability into osteoblasts and differentiation into adipocytes between young mesenchymal stem / stromal cells (MSC) and old MSC (FIG. 1a), Senescence-Associated Secretory.
  • MSC mesenchymal stem / stromal cells
  • FIG. 1a shows a difference in differentiation ability into osteoblasts and differentiation into adipocytes between young mesenchymal stem / stromal cells (MSC) and old MSC (FIG. 1a), Senescence-Associated Secretory.
  • SASP Phenotype
  • FIG. 2 shows changes in the expression level of miR-17 family members in young MSCs and old MSCs (FIG. 2a), and the ability of cells overexpressing miR-17 to differentiate into bone cells and The influence on the differentiation ability to fat cells (FIGS. 2b and c) is shown.
  • FIG. 1 shows a difference in differentiation ability into osteoblasts and differentiation into adipocytes between young mesenchymal stem / stromal
  • FIG. 3 shows a scheme in which aged MSCs into which miR-17 has been introduced are administered to old mice (FIG. 3a), engraftment of the administered cells into tissues (FIGS. 3b and d), and lymphocytes in the mice after administration The change in number (Fig. 3c) is shown.
  • FIG. 4 shows the results of screening for secretory factors in MSCs overexpressing miR-17 whose expression level decreased with aging and recovered by overexpression of miR-17 (FIGS. 4a and b).
  • FIGS. 4c and d show that among the 13 candidate genes identified, Gdf6 in particular has a strong effect of restoring and / or improving the decline in physiological function due to aging.
  • FIG. 4e shows the expression of Bmp2 / 4.
  • FIG. 4 f shows the change in the differentiation ability into bone cells in MSC by BMP2.
  • FIG. 5 shows the effect of Gdf6 knockdown on the differentiation potential of cells.
  • FIG. 6 shows the results of an experiment in which a GDF6-expressing virus was administered intraperitoneally to mice.
  • FIG. 6a shows a scheme of an intraperitoneal administration experiment of GDF6 overexpression virus to old mice.
  • FIG. 6b shows the recovery effect on the decrease in the number of lymphocytes in aged mice overexpressing GDF6.
  • FIG. 6 c shows the recovery effect on muscle regeneration ability in aged mice overexpressing GDF6.
  • FIG. 7a shows the effect of increasing the number of neural progenitor cells in the brain of an aged mouse overexpressing GDF6.
  • FIG. 7b shows the result of confirming the expression of GDF6 protein in plasma by Western blotting.
  • FIG. 8 shows the measurement of various inflammatory cytokines in blood in an aged mouse intraperitoneally administered with a virus for overexpression of GDF6, and the amount of various inflammatory cytokines based on the values of mice administered with an EGFP-expressing lentivirus. Indicates the relative value of.
  • FIG. 9 shows the ratio of lymphocytes after administration of Gdf6 gene-introduced cells to old mice.
  • FIG. 10 shows an immunohistological staining image using an anti-CD31 antibody in a brain tissue section of an aged mouse overexpressing GDF6 (left in FIG. 10).
  • FIG. 10 also shows that blood vessels are increased in brain tissue sections of aged mice overexpressing GDF6 (right side of FIG. 10).
  • FIG. 11 shows an immunohistologically stained image using an anti-Dcx antibody in a brain tissue section of an aged mouse overexpressing GDF6 (left in FIG. 11).
  • FIG. 11 also shows that neuroblasts are increased in brain tissue sections of aged mice overexpressing GDF6 (right in FIG. 11).
  • FIG. 12 shows that GDF6 recovers hair loss and hair gloss reduction in young mice.
  • “GDF6” indicates the result of a mouse administered with a lentivirus ligated to express DNA encoding hGDF6.
  • CT refers to a negative control in which no virus was administered
  • EGFP refers to a negative control in which EGFP was expressed instead of GDF6.
  • the results on the left are 2 months after administration, and the results on the right are 8 months after administration.
  • cell preparation means a composition that is administered to a subject to treat a state in which physiological functions are reduced, and that contains cells as active ingredients.
  • protein preparation means a composition containing protein as an active ingredient.
  • a “state associated with aging” or a similar expression refers to a state that occurs when the physiology of cells and / or tissues decreases with age.
  • the state associated with aging is not particularly limited.
  • lymphocyte decrease or decrease in lymphocyte production ability
  • nerve cell decrease or decrease in lymphocyte production ability
  • muscle decrease or decrease in skin tissue thinning
  • vascular network decrease and cell aging Increase in the number of cells (senescent cells).
  • Conditions associated with aging also include decreased brain function, increased incidence of infection, increased incidence of cancer, decreased resilience of muscle damage, decreased wound healing, vessel wall stiffness, vessel lumen Decrease in physiological function such as reduction in skin tissue elasticity and hairiness, and age-related diseases and senile syndromes caused by such conditions.
  • SASP Senscenece Associated Secretory Phenotype
  • SASP factors whose secretion increases with cell aging include inflammatory cytokines, chemokines, MMPs (Matrix metalloproteases) and growth factors. More specifically, the inflammatory cytokine is IL-1a, IL-1b, IL-6, IL-17, interferon ⁇ and / or G-SCF, and the chemokine is CCL3, CCL4, CCL11 and / or MCP. -1.
  • An increase in the secretion of SASP factor can be confirmed, for example, as an increase in blood concentration.
  • Treatment means “treatment” and / or “prevention”. “Treatment” as used herein means delaying the worsening of a condition, preventing the worsening of a condition, or improving the condition. As used herein, “prevention” means inhibiting the onset of a condition.
  • the “stringent conditions” used in the present specification can be conditions for washing at, for example, 65 ° C., 0.1 ⁇ SSC and 0.1% SDS in the washing after hybridization.
  • overexpression refers to introduction of an exogenous nucleic acid (including DNA, RNA, artificial base, or a combination thereof) encoding a target protein into a target cell. It means a state in which the expression level is increased as compared to cells not introduced, or a state in which a target protein that has not been expressed in cells not introduced is expressed.
  • Methods for overexpression of proteins and nucleic acids in cells are well known to those skilled in the art and can be introduced using, for example, viruses such as lentivirus, adenovirus, and Sendai virus.
  • the GDF6 protein functions as a humoral factor, spreads throughout the body in the blood, and exerts a recovery and / or improvement action on a decrease in physiological function due to aging in an aging subject.
  • a decrease in lymphocytes eg, a decrease in B cells and / or T cells
  • a decrease in muscle e.g., a decrease in muscle
  • a decrease in nerves e.g., a decrease in vascular network
  • Conditions associated with aging such as decreased gloss, decreased undifferentiated cells such as Sox2-expressing cells, or blood levels of SASP factors were improved.
  • GDF6 protein increases lymphocytes (eg, increases B cells and / or T cells), increases muscle regeneration, increases the number of neurogenesis, increases blood vessels or vascular networks, and improves gloss (glossy). Improved), an effect of improving the state associated with aging, such as an increase in undifferentiated cells such as Sox2-expressing cells or a decrease in blood concentration of SASP factor, was observed. Thus, the inventors have revealed that GDF6 protein restores and / or improves the decrease in physiological function due to aging in aged mice.
  • a vector for expressing GDF6 in a cell and a composition for recovering and / or improving a decrease in physiological function due to aging are provided.
  • the present invention also provides a cell that secretes GDF6 protein (for example, blood cell or MSC) and a composition for recovering and / or improving a decrease in physiological function due to aging.
  • the present invention further provides a composition for recovering and / or improving a decrease in physiological function due to aging, such as a protein preparation containing GDF6 protein.
  • the present invention provides a composition for recovering and / or improving a decrease in physiological function due to aging, such as a cell preparation containing cells that secrete GDF6 protein.
  • compositions of the present invention can be used in an aging subject to improve the state accompanying aging, for example, to recover and / or improve the decrease in physiological function associated with aging.
  • the compositions of the present invention are for use in aging subjects to improve lymphocyte reduction and / or lymphocyte function associated with aging.
  • the composition of the present invention can be a composition for use in aging subjects to reduce muscle cell loss and / or improve muscle cell function associated with aging.
  • the composition of the present invention can be a composition for use in aging subjects to reduce neural progenitor cells associated with aging and / or improve neural progenitor cell function.
  • the composition of the present invention can be a composition for use in improving aging of a vascular network accompanying aging in an aging subject.
  • the composition of the present invention can be a composition for use in improving a decrease in wound healing power associated with aging in an aging subject.
  • the composition of the present invention can be a composition for use in an aging subject to improve a decrease in wound healing power in muscle with aging.
  • the composition of the present invention can be a composition for use in recovering a decrease in undifferentiated cells associated with aging (eg, a decrease in Sox2-expressing cells) in an aging subject.
  • the compositions of the present invention in aging subjects, are SASP factors associated with aging (eg, IL-1b, IL-6, IL-17, G-SCF, CCL11, MCP-1, CCL3 and / or A composition for use in reducing the amount of CCL4) in the blood can be obtained.
  • SASP factors associated with aging eg, IL-1b, IL-6, IL-17, G-SCF, CCL11, MCP-1, CCL3 and / or
  • a composition for use in reducing the amount of CCL4 in the blood can be obtained.
  • These compositions also increase lymphocytes (eg, increased B and / or T cells), increased muscle regeneration, increased neurogenesis, increased blood vessels or vascular networks, and improved gloss (glossy).
  • the composition can be used for improving a state associated with aging, such as an increase in undifferentiated cells such as Sox2-expressing cells or a decrease in blood concentration of SASP factor.
  • the subject is an aged or suspected mammal (eg, human).
  • an aged or suspected aging person for example, there are individual differences, but a person over 20 years old, preferably a person over 40 years old, a person over 45 years old, a person over 50 years old, a person over 55 years old These are the above humans, humans over 60 years old, humans over 65 years old, humans over 70 years old, humans over 75 years old, or humans over 80 years old. Aging can be easily determined by a doctor or the like depending on whether there is a decrease in infectivity, a decrease in memory, or other conditions associated with aging.
  • the GDF6 protein used in the present invention is considered to be cleaved within a molecule by protein processing and exhibit activity as a 120 amino acid mature protein (activated form). Therefore, in a preferred embodiment of the present invention, the GDF6 protein used in the present invention is an activated form of GDF6 protein, for example, (I) It may be a protein having the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 3.
  • the GDF6 protein used in the present invention is (Ii) whether it has a sequence showing homology (or identity) of 90% or more, more preferably 95% or more, more preferably 98% or more, and even more preferably 99% with the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 3 Or (Iii) deletion or insertion of 1 to 10, more preferably 1 to 5, more preferably 1 to 3, and even more preferably 1 amino acid in the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 3 And / or a protein having an amino acid sequence with substitution.
  • an activated form of GDF6 protein can form a homodimer.
  • the GDF6 protein used in the present invention is a precursor form, for example, (I) It may be a protein having the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 2.
  • the GDF6 protein used in the present invention is (Ii) whether it has a sequence showing homology (or identity) of 90% or more, more preferably 95% or more, more preferably 98% or more, and even more preferably 99% with the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 2 Or (Iii) deletion or insertion of 1 to 10, more preferably 1 to 5, more preferably 1 to 3, even more preferably 1 amino acid in the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 2 And / or a protein having an amino acid sequence with substitution.
  • the precursor form of GDF6 protein can form a homodimer. In order to convert the precursor form into the activated form, it is preferable that the amino acid sequence corresponding to the amino acid sequence Nos.
  • homology can be determined using the default parameters (initial settings) in the BLAST program provided by the National Center for Biotechnology Information (NCBI) (http: //blast.ncbi.nlm. nih.gov/Blast.cgi). “Identity” is determined by the number of exact sequence matches between two aligned sequences. Alignment can be performed using the default parameters of ClustalW Ver.2.
  • GDF6 is a growth factor of the TGF ⁇ family, and it is considered that the recovery and / or improvement action of the decrease in physiological function due to aging in an aging subject is due to the activity as a growth factor.
  • BMP2 / 4 sharing Smad1 / 5/8 with the same TGF ⁇ receptor (specifically, ALK3 / 6) exerts a partial function even though it is weak (FIG. 4f). Therefore, it is considered that the recovery and / or improvement action of the decrease in physiological function due to aging by GDF6 is partly due to the activation of ALK3 / 6. Therefore, in a preferred embodiment of the present invention, the GDF6 protein used in the present invention may have ALK3 / 6 activation ability.
  • the GDF6 protein used in the present invention comprises (ii) a protein having the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 3 and 90% or more, more preferably 95% or more, and still more preferably 98% or more. Even more preferably, the protein having a sequence showing 99% homology may have ALK3 / 6 activation ability, and (iii) 1 to 10 amino acids in the amino acid sequence shown in SEQ ID NO: 3
  • an intracellular expression vector comprising a nucleic acid sequence in which a nucleic acid sequence encoding the GDF6 protein used in the present invention is operably linked to a promoter.
  • the expression vector of the present invention may be a nucleic acid having a sequence that can hybridize under stringent conditions to a complementary sequence of the nucleic acid sequence encoding the GDF6 protein used in the present invention.
  • the intracellular expression vector of the present invention can be a human expression vector.
  • the vector of the present invention may have an origin of replication that enables replication in microorganisms such as yeast and E. coli.
  • the vector of the present invention may have an origin of replication that allows replication in the human body, or may be a vector that cannot replicate in the human body in consideration of safety.
  • viral vectors well known to those skilled in the art such as adenovirus, lentivirus, and retrovirus can be used.
  • mRNA itself encoding GDF6 protein may be administered to the subject.
  • GDF6 protein can be obtained from cells expressing GDF6 by methods well known to those skilled in the art.
  • a method of expressing as a tag fusion protein and purifying using a tag a method using the principle of immunoprecipitation using an anti-GDF6 antibody, a method of expressing by a cell-free extraction system, a method of producing by chromatography, etc. are known ing.
  • conservative substitutions are possible when substituting some amino acids of the GDF6 protein.
  • Conservative substitution means substitution of an amino acid with another amino acid having similar properties.
  • the following substitutions within the same group are non-limiting examples of conservative substitutions: a group consisting of acidic amino acids such as glutamic acid and aspartic acid; a group consisting of basic amino acids such as lysine and arginine; leucine, alanine, glycine And a group consisting of hydrophobic amino acids such as isoleucine; a group consisting of polar amino acids such as glutamine, histidine, methionine and asparagine; a group consisting of aromatic amino acids such as tryptophan, tyrosine and phenylalanine; and the like such as glycine, alanine, serine and threonine A group consisting of amino acids having a low molecular weight; and a group consisting of sulfur-containing amino acids such as cysteine and methionine.
  • a composition such as a cell preparation for treating a condition associated with aging, including cells that secrete GDF6 protein.
  • GDF6 protein can be secreted as a precursor.
  • Cells that secrete GDF6 protein can be obtained, for example, by overexpressing GDF6 protein in the cell.
  • the cell obtained by overexpressing GDF6 protein in a blood cell or MSC can be used.
  • the blood cells may be a single type of cell or a group of cells in which a plurality of cells are mixed.
  • peripheral blood collected from a subject may be used.
  • red blood cells or white blood cells can be used as blood cells.
  • the cell secreting GDF6 protein may be a GDF6 protein secreting cell isolated from a mammal, more preferably a human.
  • cells that secrete GDF6 protein may be obtained by overexpressing GDF6 protein in aged cells obtained from an aged subject.
  • GDF6 protein can be secreted by overexpressing miR-17 family members in cells. Therefore, in the present invention, cells overexpressing GDF6 protein may be obtained as cells in which miR-17 family members are overexpressed. According to the present invention, it was also possible to overexpress GDF6 protein by overexpressing miR-17 family members even in senescent cells. Therefore, in one embodiment of the present invention, cells overexpressing GDF6 protein can be obtained by overexpressing miR-17 family members in aged cells.
  • the aged cell can be an MSC obtained from an aged subject or a subject suspected of aging, or a blood cell. Methods for expressing miR-17 family members in these cells are well known to those skilled in the art.
  • miR-17 family member means one or more microRNAs selected from the group consisting of miR-17, miR-106a, miR-106b, miR-20a, miR-20b, and miR-93, preferably miR -17.
  • miR-17 is meant to include both the precursor and mature form of the microRNA.
  • the miR-17 precursor has the base sequence of SEQ ID NO: 4.
  • Examples of mature miR-17 include SEQ ID NO: 5 (miR-17-5p) or SEQ ID NO: 6 (miR-17-3p).
  • the miR-20a precursor has the base sequence of SEQ ID NO: 7, and the mature miR-20a is exemplified by SEQ ID NO: 8 (miR-20a-5p) and SEQ ID NO: 9 (miR-20a-3p).
  • the miR-106b precursor has SEQ ID NO: 10
  • examples of mature miR-106b include SEQ ID NO: 11 (miR-106b-5p) and SEQ ID NO: 12 (miR-106b-3p).
  • the miR-93 precursor has SEQ ID NO: 13, and examples of mature miR-93 include SEQ ID NO: 14 (miR-93-5p) and SEQ ID NO: 15 (miR-93-3p).
  • the miR-106a precursor has SEQ ID NO: 16, and mature miR-106a is exemplified by SEQ ID NO: 17 (miR-106a-5p) and SEQ ID NO: 18 (miR-106a-3p).
  • the miR-20b precursor has the base sequence of SEQ ID NO: 19, and examples of the mature miR-20b include SEQ ID NO: 20 (miR-20b-5p) and SEQ ID NO: 21 (miR-20b-3p).
  • the miR-17 family may have any sequence as long as expression of the GDF6 protein can be induced.
  • (I) having any one of the nucleic acid sequences of SEQ ID NOS: 4 to 21; (Ii) has 90% or more identity with the nucleic acid sequence shown in any of SEQ ID NOs: 4 to 21, or (Iii) 1 to 10, preferably 1 to 5, more preferably 1 to 3, more preferably 1 to 2, even more preferably in the nucleic acid sequence shown in any of SEQ ID NOs: 4 to 21 Can be RNA having a nucleic acid sequence with a single base deletion, insertion and / or substitution.
  • miR-17 (I) has the nucleic acid sequence shown in SEQ ID NO: 4 or (Ii) has 90% or more identity with the nucleic acid sequence shown in SEQ ID NO: 4, or (Iii) 1 to 10, preferably 1 to 5, more preferably 1 to 3, more preferably 1 to 2, even more preferably 1 base in the nucleic acid sequence shown in SEQ ID NO: 4 RNA having a nucleic acid sequence having a deletion, insertion and / or substitution.
  • Whether miR-17 family members induce GDF6 protein expression can be evaluated, for example, by analyzing cells overexpressing miR-17 family members or culture supernatants thereof by Western blotting.
  • the present invention also provides a composition such as a cell preparation for treating a condition associated with aging, comprising a miR-17 family member.
  • the present invention also provides an intracellular expression vector comprising a nucleic acid sequence in which a DNA encoding a miR-17 family member is operably linked to a promoter.
  • the intracellular expression vector of the present invention can be a human expression vector.
  • the vector of the present invention may have an origin of replication that enables replication in microorganisms such as yeast and E. coli.
  • the vector of the present invention may have an origin of replication that allows replication in the human body, or may be a vector that cannot replicate in the human body in consideration of safety.
  • viral vectors well known to those skilled in the art such as adenovirus, lentivirus, and retrovirus can be used.
  • miRNA itself may be administered to a subject for the purpose of transient expression.
  • vectors expressing miR-17 family members can be prepared by methods well known to those skilled in the art.
  • MicroRNAs can be prepared by methods well known to those skilled in the art. For example, a method for purifying microRNA from a cell extract using an anti-Ago2 antibody is known.
  • the cell preparation of the present invention may contain cells and a pharmaceutically acceptable excipient, carrier or vehicle.
  • the cell preparation of the present invention is not particularly limited, and can be administered parenterally by, for example, intravenous administration, intracorporeal administration, intraventricular administration, intraventricular administration, intraperitoneal administration, subcutaneous administration, or intramuscular administration. .
  • the cell preparation of the present invention may be used as a pharmaceutical composition.
  • the protein preparation of the present invention may contain GDF6 protein and a pharmaceutically acceptable excipient, carrier or vehicle.
  • the protein preparation of the present invention is not particularly limited, and can be administered parenterally by, for example, intravenous administration, intracorporeal administration, intraventricular administration, intraperitoneal administration, subcutaneous administration or intramuscular administration.
  • the protein preparation of the present invention may be used as a pharmaceutical composition.
  • the composition containing the vector of the present invention may contain a vector and a pharmaceutically acceptable excipient, carrier or vehicle.
  • the composition containing the vector of the present invention is not particularly limited, and can be administered parenterally by, for example, intravenous administration, intracavitary administration, intraventricular administration, intraperitoneal administration, subcutaneous administration or intramuscular administration.
  • the composition containing the vector of the present invention may be used as a pharmaceutical composition.
  • a method for treating a condition associated with aging in an aging subject or a subject suspected of aging wherein the GDF6 protein used in the present invention, a cell secreting GDF6 protein, or GDF6 is used.
  • a method comprising administering a vector to be expressed to a subject in need thereof.
  • a method of treating a condition associated with aging in an aging subject or a subject suspected of aging, wherein the miR-17 family member, miR-17 family member used in the invention is expressed comprising administering a vector or a cell overexpressing a miR-17 family member to a subject in need thereof.
  • a cell expressing a GDF6 or miR-17 family member is contacted with a test compound, and a change in the expression level of GDF6 and / or GDF6 protein secretion after the contact is detected to detect expression of GDF6 and / or GDF6.
  • candidate compounds for treating conditions associated with aging can be screened.
  • test compound used for screening is not particularly limited, and examples thereof include expression products of gene libraries, synthetic low molecular compound libraries, peptide libraries, antibodies, bacterial release substances, cells (microorganisms, plant cells, and Animal cell) extracts and culture supernatants, purified or partially purified polypeptides, marine organism extracts, plant or animal extracts, soil, and random phage peptide display libraries.
  • Contact between a cell expressing GDF6 and a test compound can be carried out, for example, by adding a cell expressing GDF6 or a miR-17 family member to a culture medium maintained.
  • Detection of changes in the expression level of GDF6 and / or the secretion level of GDF6 protein after contact with the test compound can be performed by methods known to those skilled in the art.
  • detection includes RT-PCR method for measuring the amount of GDF6 RNA, and immunoprecipitation performed by collecting the culture supernatant.
  • Example 1 Mesenchymal stem / stromal cell (MSC) senescence and changes in gene expression
  • MSC Mesenchymal stem / stromal cell
  • MSCs were CD45 negative, CD31 negative, TER119 negative, Pdgfra positive and Sca-1 positive and were prepared from C57BL / 6JJcl mice using routine methods (Morisawa S et al., J Exp. Med., 206: 2483-2496, 2009). Those prepared from 2 to 3 weeks old mice were used as young MSCs, and those prepared from mice after 18 months of age were used as aging MSCs (Old MSCs). MSC at time "and" MSC at old age "). MSCs were cultured in an alpha-modified minimum essential medium ( ⁇ -MEM) using a 37 ° C. 5% CO 2 incubator.
  • ⁇ -MEM alpha-modified minimum essential medium
  • Bone differentiation and fat differentiation were performed according to the manufacturer's manual using Human Mesenchymal Stem Cell Osteogenic / Adipogenic Differentiation Bullet Kit Medium (Lonza). Osteoblasts are detected using Leukocyte Alkaline ho Phosphatase Kit (Sigma-Aldrich), and adipocytes are detected using oil red O (Muto Chemical Co., Ltd., 40491). It was carried out according to a conventional method by detecting drops.
  • FIG. 1a the area of ALP positive cells was reduced to about 20% in Old ⁇ MSC compared to Young MSC. As a result, it was clarified that MSC decreases its adipocyte differentiation ability with aging. Moreover, as shown by the graph on the right side of FIG. 1a, the area of oil red O-positive cells was reduced to less than half of that of Young MSC in Old MSC. Thereby, it became clear that MSC reduces the bone differentiation ability with aging. The experiment was repeated three times. All the results showed statistical significance (p ⁇ 0.05).
  • Example 2 Identification of Factors Associated with MSC Aging
  • factors associated with the decrease in MSC ability associated with aging shown in Example 1 were identified.
  • MiR-17 has been reported to promote and suppress the differentiation of MSCs into osteoblasts, and its role in the differentiation potential of undifferentiated MSCs is unclear. Therefore, miR-17 (SEQ ID NO: 4) was introduced into MSC using lentivirus and cultured for 1 week to evaluate its differentiation ability.
  • the lentivirus was prepared using a conventional method (Naka-Kaneda H., PNAS, 111: 1604-1609, 2014). As a negative control, a lentivirus incorporating miR-LacZ was used.
  • the ability of MSCs to differentiate into osteoblasts was evaluated by measuring the area of ALP positive.
  • the ability of MSCs to differentiate into adipocytes was evaluated by measuring the area of oil red O positive.
  • Old MSCs overexpressing miR-17 partially restored bone and adipogenic ability (FIGS. 2b and c).
  • the ALP positive area increased about 1.6 times in miR-17-transfected cells compared to the negative control, and the oil red O positive area increased about 1.7 times in miR-17-introduced cells compared to the negative control ( 2b and c).
  • Example 3 Old MSC transplantation experiment in which miR-17 was forcibly expressed
  • Example 2 in the old MSC in which miR-17 was forcibly expressed, bone forming ability and adipogenic ability that were characteristic of the aging phenomenon were observed. Partially recovered.
  • MSCs that had recovered the ability decline due to aging were transplanted, and the effect of this on lymphocyte regeneration ability in recipients was confirmed.
  • the transplantation experiment was performed according to the scheme illustrated in FIG. Specifically, one week after preparing MSC cells as P ⁇ S cells (PDGFR ⁇ +, ScaI + cells) from old mice after 18 months of age, miR-17 or LacZ is forcibly expressed in MSC cells together with green fluorescent protein (GFP) using lentivirus. I let you. Then, after further culturing for 1 week, the cells were collected, and the collected cells were intravenously administered to old mice after 18 months of age. Aged mice that received a transplant after 16 weeks were analyzed.
  • P ⁇ S cells P ⁇ S cells
  • GFP green fluorescent protein
  • transplanted MSC In order to confirm the distribution of the transplanted MSC in the body, bone marrow, lung, liver, spleen and peripheral blood were collected and analyzed for GFP expression by FACS. As a result, the transplanted MSC was detected only from the lung (see FIG. 3b). On the other hand, transplanted MSCs were not detected from bone marrow, liver, spleen and peripheral blood (FIGS. 3b and d).
  • Example 4 Identification of secretory factor that restores aging From the results of Example 3, MSC releases a secretory factor that restores senescence and restores the decline in physiological function due to aging and / or It became clear that the improvement effect was exhibited. In this example, a secretory factor responsible for recovery and / or improvement of a decrease in physiological function due to aging was identified.
  • the gene expression profiles were analyzed by microarray as described in Example 2 and compared between the groups among the aged mice transplanted with Young MSC, Old MSC and MSC forcibly expressing miR-17. 701 genes (probes) were narrowed down from 59,305 genes (probes) according to the criteria for selecting the following candidate genes (FIG. 4a).
  • Expression level is less than 0.7 times in Old MSC compared to Young MSC
  • Expression level introduced a negative control (miR-LacZ) compared to Young MSC
  • the expression level is 0.7 times or more in Old MSC in which miR-17 is forcibly expressed compared to Young MSC.
  • the expression level is Old in which a negative control was introduced. More than 1.5 times in old MSC in which miR-17 was forcibly expressed compared to MSC
  • the above criteria (1) and (2) relate to the condition that the expression level decreases in aged MSC, and the above criteria (3) and (4) improve the expression level by forced expression of miR-17 It is related to the condition.
  • each of the 13 genes was cloned from a Young MSC cDNA library, introduced into 293T cells, and the culture supernatant containing secretory factors produced from each gene was collected.
  • BMSC bone marrow stromal cells
  • Gdf6 is a secreted factor belonging to the TGF- ⁇ superfamily and is known to be necessary for the formation of the eyes, skull, some bones and the joints of the feet (Asai-Coakwell M, et al., Am J. Hum. Genet., 80, 306-315, 2007 and Clendenning DE & Mortlock DP, PLoS One, 7, e36789, 2012).
  • Gdf6 is known to utilize the same BMP receptor as Bmp2 / 4 (Mazerbourg S, et al., J. Biol. Chem., 280, 32122-32132, 2005). Therefore, an experiment was conducted to compare the properties of Bmp2 / 4 and Gdf6.
  • Example 5 Verification of physiological role of Gdf6 and effect on aging 1
  • the physiological significance of Gdf6 was analyzed by knocking down Gdf6 in vitro using MSC.
  • Gdf6 was also expressed in aged mice in vivo to verify the effect on the aging phenomenon.
  • shRNA knockdown was verified using three shRNAs.
  • the sequence of shRNA used was as shown in SEQ ID NO: 23 (shGdf6-1), SEQ ID NO: 24 (shGdf6-2) and SEQ ID NO: 25 (shGdf6-3).
  • shRNA was introduced into YoungYouMSC by a conventional method.
  • a vector expressing a fusion protein in which the red fluorescent protein mKate2 was added to the N-terminal side of the cloned Gdf6 was prepared, co-introduced into the shRNA expression lentiviral vector incorporating GFP as a reporter and 293T cells, and analyzed by FACS.
  • the expression level of shRNA was read from the GFP expression intensity, the expression level of Gdf6 was read from the mKate2 expression intensity, and knockdown efficiency was evaluated.
  • shGdf6- 1 was confirmed to be the most effective knockdown.
  • human GDF6 was forcibly expressed in aged mice over 18 months of age to confirm the effect.
  • GDF6 having the sequence shown in SEQ ID NO: 1 (hereinafter referred to as “hGDF6”) was used.
  • Mice were injected intraperitoneally with a lentivirus operably linked to the DNA encoding hGDF6.
  • hGDF6 As negative subjects, mice not injected and mice expressing EGFP instead of GDF6 were used.
  • the lentivirus was injected by injecting the virus intraperitoneally three times every other day.
  • Peripheral blood was collected at 4, 8, 12, and 16 weeks after injection, and the percentage of peripheral blood cell types was analyzed (FIG. 6a). Then, in old mice into which hGDF6 has been introduced, B220 positive cells (that is, B cells) and CD3e positive cells (that is, T cells) that are lymphoid cells increase, and the ratio of CD11b positive cells (that is, myeloid cells) Decreased (left dot plot in FIG. 6b). By introducing hGDF6 into old mice, the proportion of myeloid cells and the proportion of B cells were restored to the same level as in young mice (FIG. 6b, right graph).
  • B220 positive cells that is, B cells
  • CD3e positive cells that is, T cells
  • CD11b positive cells that is, myeloid cells
  • the anterior tibial muscle was damaged by local injection of cardiotoxin (CTX), and repair of the damage was observed 5 days later (FIG. 6a).
  • CTX cardiotoxin
  • the repair was verified by the presence or absence of embryonic myosin heavy chain positive (eMHC +) neoplastic myoblasts.
  • Immunohistological staining was performed as follows. First, the tissue at the damaged site is embedded in paraffin by an ordinary method, and eMHC positive cells are stained with an anti-eMHC antibody (MYH3; 1:50, Santa Cruz Biotechnology sc-53091), and an anti-Sox2 antibody (1: 100 Sox2-positive cells were stained using Abcam ab92494). As secondary antibodies, Alexa Flour-conjugated anti-mouse and rabbit IgG antibodies (1: 500, Thermo Fisher Scientific A21424, A21206) were used. Sections were analyzed using a BZ-X700 microscope (manufactured by KEYENCE) and a hybrid cell count function attached thereto.
  • FIG. 6c The result was as shown in FIG. 6c.
  • many eMHC positive myoblasts appeared in young mice, whereas the amount was small in old mice and old mice introduced with EGFP.
  • eMHC positive myoblasts appeared remarkably many (FIG. 6c).
  • FIG. 6c When the number of eMHC positive myoblasts per unit area was compared, it was revealed that the muscle regeneration in the old mice became equal to or higher than that in the young mice by introducing hGDF6 (FIG. 6c).
  • Sox2-positive neural progenitor cells were confirmed in mice 16 weeks after lentivirus injection. Then, the proportion of Sox2-positive cells that decreased in old mice was restored to a level equivalent to that in young mice by forcibly expressing hGDF (FIG. 7a). This percentage recovery was observed in a wide range of areas including the subventricular zone and the striatum.
  • Immunohistological staining of a brain tissue section of an aged mouse with an antibody against CD31, a vascular endothelial marker revealed a significant increase in vascular tissue in the brain tissue of a mouse forcibly expressing GDF6, as shown in FIG. It was clear that Furthermore, when a brain tissue section of an aged mouse was stained with an antibody against Dcx and observed for neuroblasts, it was clear that neuroblasts were increased by GDF6 and neurogenesis was improved as shown in FIG. Met.
  • HGDF6 in mouse plasma was confirmed by Western blotting.
  • Plasma was purified by Aurum Serum Protein Mini Kit (Bio-Rad, 7326701), and anti-GDF6 antibody (Sigma-Aldrich, PRS4691) was used as a detection antibody in Western blotting.
  • anti-GDF6 antibody Sigma-Aldrich, PRS4691
  • Example 6 Verification of the physiological role of Gdf6 and its effect on aging 2 In this example, it was examined whether GDF6 can suppress the secretion of SASP factor accompanying cell aging.
  • peripheral blood was collected 12 weeks after injection from old mice aged 18 months or older in which hGDF6 was forcibly expressed by intraperitoneal administration of a lentivirus encoding hGDF6, and plasma was collected by centrifugation.
  • Plasma of IL1-b, IL-6, IL-17, G-SCF, MCP-1 (CCL2), MIP-1a (CCL3) and MIP-1b (CCL4) of inflammatory cytokines or chemokines known as SASP factors was quantified using Bio-Plex® Pro® mouse cytokine assay (BIO-RAD) and Bio-Plex200 (Bio-Rad).
  • SASP factors Bio-Plex® Pro® mouse cytokine assay
  • Bio-Rad Bio-Rad
  • Example 7 Verification of effects on aging by cells into which Gdf6 gene was introduced
  • lentivirus was administered to aged mice themselves, and GDF6 was forcibly expressed in the mice.
  • Peripheral blood forcibly expressed was administered to aged mice to verify the effect on aging.
  • peripheral blood 200 ⁇ l of peripheral blood was collected from 20 young mice, and the lentivirus for hGDF6 expression of the previous example was used for half of the leukocyte fraction obtained by lysing red blood cells, and the lentivirus for EGFP expression (control) was used for the other half.
  • the cells were introduced and cultured for 3 hours.
  • the expression of hGDF6 or EGFP by lentivirus was confirmed, and sufficient secretion of hGDF6 was confirmed from the culture supernatant.
  • a total of about 50 to 200 million GDF6-expressing cell group or EGFP-expressing cell group was transplanted intravenously to old mice.
  • Peripheral blood was collected 4 weeks later from an aged mouse administered with each cell group, and the percentage lymphocytes of peripheral blood cell types were analyzed in the same manner as in Example 5.
  • the forced expression of miR-17 allows MSC to exert a recovery and / or improvement action on the decrease in physiological function due to aging to an aged mouse, and this action is mediated by a secretory factor.
  • GDF6 which is a secreted factor, plays a role in recovering and / or improving the decrease in physiological function due to aging.
  • the presence of GDF6 in plasma was able to suppress / recover lymphocyte decrease with aging, decreased muscle regeneration ability against injury, decreased neural progenitor cells, and secretion of inflammatory cytokines and chemokines .
  • GDF6 can be used to treat various conditions associated with aging.
  • Example 8 Verification of the effect of Gdf6 on hair
  • the lentivirus ligated to express the same DNA encoding hGDF6 as in the above-mentioned example was introduced into the abdominal cavity of young mice once a day for 3 days. The mice were administered continuously, and the mice were followed for aging and hair loss and shine. As negative subjects, mice not receiving virus and mice expressing EGFP instead of GDF6 were bred in the same cage. The result was as shown in FIG. As shown in FIG. 12, the mice expressing hGDF6 maintained hair and hair gloss throughout the back compared to the negative control at 2 months and 8 months after administration, respectively. Indicated.

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Abstract

本発明は、加齢による生理機能の低下の回復および／または改善する組成物を提供する。ＧＤＦ６タンパク質またはｍｉＲ－１７ファミリーメンバーを過剰発現した細胞。ＧＤＦ６タンパク質を含む、老化に関連する状態を処置するための組成物。ＧＤＦ６タンパク質またはｍｉＲ－１７ファミリーメンバーのヒト発現用ベクターを含む、老化に関連する状態を処置するための組成物。ＧＤＦ６タンパク質を分泌する細胞を含む、老化に関連する状態を処置するための組成物。

Description

加齢による生理機能の低下を回復または改善する組成物
　本発明は、加齢による生理機能の低下を回復または改善する組成物に関する。
　ＧＤＦ６は、非特許文献１において初めてクローニングされたトランスフォーミング増殖因子β（ＴＧＦ－β）ファミリーの一員である。ＧＤＦ６は、ＢＭＰ－１３またはＣＤＭＰ－２とも呼ばれる。ヒトＧＤＦ６は、４５５アミノ酸（分子量：約５０ｋＤａ）のタンパク質であり、配列番号１の塩基配列によりコードされ、配列番号２で示されるアミノ酸配列を有するタンパク質である。ヒトＧＤＦ６は、成熟過程で開裂を受け、配列番号３で示される１２０アミノ酸の成熟タンパク質となる。成熟タンパク質は、生理的条件下で二量体（特にホモ二量体）を形成し、ＧＤＦ６としての生理的機能を発現する。ＧＤＦ６タンパク質の機能は、眼球、頭蓋骨、足の骨および関節の形成に関与していると考えられている（非特許文献２～４）。
　ＴＧＦ－βファミリーの一員であるＧＤＦ１１は、老化と関連して発現が低下すること、老化と関連する状態（例えば、心不全）の処置に用いることが報告されている（特許文献１、非特許文献５）。一方で、ＧＤＦ１１は老化によって発現が上昇し、筋再生能を低下させるという報告もある（非特許文献６）。
　老化に伴って、筋肉の減少、皮膚組織の菲薄化、血管網の減退、リンパ球の減少、神経細胞の減少、脱毛、白髪などの状態変化に加え、がん、アルツハイマー病、動脈硬化、骨粗鬆症、肺線維症などの加齢性疾患の罹患または罹患の可能性が高い状態となることがよく知られている。また、老化によって、加齢性疾患のように明確な病態ではなくとも認知障害、せん妄、老人性うつ、運動機能障害、慢性めまい、食欲不振、創傷治癒力の低下などの老年性症候群の症状を呈するようになる。これらの状態は、生体組織または生物個体で確認される個体老化である。一方で、微視的な状態変化に着目すれば、老化に関連する状態には細胞老化も含まれる。
　細胞老化を起こした細胞（老化細胞）は炎症性サイトカイン、ケモカイン、ＭＭＰｓ（Matrix metalloproteases）および増殖因子などの様々な分泌因子を高発現していることが報告されている。このように細胞老化に伴って炎症性サイトカインなどが分泌される現象はＳＡＳＰ（Senescence Associated Secretory Phenotype）と呼ばれ、分泌されるタンパク質はＳＡＳＰ因子と総称される（非特許文献７～９）。ＳＡＳＰ因子は周囲の細胞にパラクライン作用を及ぼして細胞老化を誘導することも報告されていることから（非特許文献１０）、細胞が老化して起こる現象にとどまらず、体内の様々な部位で老化を促進する因子でもある。また、ＳＡＳＰ因子は慢性炎症の惹起、各種の状態の憎悪およびがん発生に繋がることが指摘され、個体老化との関連が示されている（非特許文献１１～１３）。
ＷＯ２０１３／１４２１１４
Wolfman et al., J. Clin. Invest., 100 (2): 321-330, 1997 Asai-Coakwell M. et al., Am. J. Hum. Genet., 80, 306-315, 2007 Clendenning DE and Mortlock DP, PLoS One, 7, e36789, 2012 Settle SH Jr. et al., Dev. Biol., 254, 116-130, 2003 Loffredo et al., Cell, 153, 828-839, 2013 Egerman MA et al., Cell Metab, 22, 164-174, 2015 Acosta et al., Cell, 133, 1006-18, 2008 Kuilman et al., Cell, 133, 1019-31, 2008 Coppe et al., PLoS Biol., 6, 2853-68, 2008 Acosta et al., Nat Cell Biol., 8, 978-90, 2013 Takahashi et al., Mol Cell., 45, 123-31, 2012 Velarde MC et al., Interdiscip Top Gerontol., 38, 17-27, 2013 Yoshimoto et al., Nature, 499, 97-101, 2013
　本発明は、加齢による生理機能の低下を回復または改善する組成物を提供する。
　本発明者らは、若齢時の間葉系幹／間質細胞（以下、ＭＳＣともいう。）は液性因子であるＧＤＦ６タンパク質を分泌すること、加齢によってＧｄｆ６の発現は低下すること、加齢によってｍｉＲ－１７ファミリーメンバーの発現が低下すること、ｍｉＲ－１７ファミリーを発現抑制するとＧｄｆ６の発現が若齢時でも低下することを見出した。その一方で、本発明者らは、Ｇｄｆ６タンパク質は組織幹細胞の潜在的な再生因子として機能すること、Ｇｄｆ６タンパク質は血中のＳＡＳＰ因子の量を下げること、およびＧｄｆ６タンパク質を介して、加齢による生理機能低下の回復または改善を誘導することを見出した。本発明はこれらの知見に基づいてなされたものである。
　すなわち、本発明によれば以下の発明が提供される。
（１）ＧＤＦ６タンパク質またはｍｉＲ－１７ファミリーメンバーを含む、老化に関連する状態を処置するための組成物。
（２）ＧＤＦ６タンパク質またはｍｉＲ－１７ファミリーメンバーのヒト発現用ベクターを含む、老化に関連する状態を処置するための組成物。
（３）ＧＤＦ６タンパク質を分泌する細胞を含む、老化に関連する状態を処置するための組成物。
（４）ＧＤＦ６タンパク質またはｍｉＲ－１７ファミリーメンバーを過剰発現した細胞。
（５）間葉系幹／間質細胞または血球細胞にＧＤＦ６タンパク質またはｍｉＲ－１７ファミリーメンバーを過剰発現させて得られる、上記（４）に記載の細胞。
（６）間葉系幹／間質細胞または血球細胞が老化した細胞である、上記（５）に記載の細胞。
（７）ヒト細胞である、上記（４）～（６）のいずれかに記載の細胞。
（８）細胞が、上記（４）～（７）のいずれかに記載の細胞である、上記（３）に記載の組成物。
（９）ＧＤＦ６タンパク質が、
　（i）配列番号２または３に示されるアミノ酸配列を有するか、
　（ii）配列番号２または３に示されるアミノ酸配列と９０％以上の相同性を示す配列を有するか、
　（iii）配列番号２または３に示されるアミノ酸配列において、１個～１０個のアミノ酸の欠失、挿入および／または置換を有するアミノ酸配列を有するか、または
　（iv）配列番号２または３に示されるアミノ酸配列をコードするＤＮＡ配列に対して相補的な配列を有する核酸と、ストリンジェントな条件でハイブリダイズ可能な配列によりコードされるアミノ酸配列を有する、
上記（１）～（３）および（８）のいずれかに記載の組成物。
（１０）ｍｉＲ－１７ファミリーメンバーが、
　（i）配列番号４に示される核酸配列を有するか、
　（ii）配列番号４に示される核酸配列と９０％以上の同一性を有するか、または、
　（iii）配列番号４に示される核酸配列において、１個～１０個の塩基の欠失、挿入および／または置換を有する核酸配列を有する、
上記（１）、（２）または（８）に記載の組成物。
（１１）老化に関連する状態が、筋肉の老化、造血系の老化、神経系の老化、血管系の老化、皮膚組織の老化、毛髪の老化または細胞老化である、上記（１）～（３）および（８）～（１０）のいずれかに記載の組成物。
（１２）老化に関連する状態が、老化に伴う以下の状態：筋肉の損傷の回復力の減少、リンパ球の減少、神経幹／前駆細胞の減少、血管壁の硬化、血管内腔の縮小、血管網の減退、皮膚組織の弾力の低下、皮膚組織の菲薄化、毛つやの低下、未分化細胞の減少またはＳＡＳＰ因子の分泌上昇である、上記（１）～（３）および（８）～（１０）のいずれかに記載の組成物。
（１３）ＧＤＦ６タンパク質が、
　（i）配列番号２または３に示されるアミノ酸配列を有するか、
　（ii）配列番号２または３に示されるアミノ酸配列と９０％以上の相同性を示す配列を有するか、
　（iii）配列番号２または３に示されるアミノ酸配列において、１個～１０個のアミノ酸の欠失、挿入および／または置換を有するアミノ酸配列を有するか、または
　（iv）配列番号２または３に示されるアミノ酸配列をコードするＤＮＡ配列に対して相補的な配列を有する核酸と、ストリンジェントな条件でハイブリダイズ可能な配列によりコードされるアミノ酸配列を有する、
上記（４）～（７）のいずれかに記載の細胞。
（１４）ｍｉＲ－１７ファミリーメンバーが、
　（i）配列番号４に示される核酸配列を有するか、
　（ii）配列番号４に示される核酸配列と９０％以上の同一性を有するか、または、
　（iii）配列番号４に示される核酸配列において、１個～１０個の塩基の欠失、挿入および／または置換を有する核酸配列を有する、
上記（４）～（７）のいずれかに記載の細胞。
　本発明によれば、老化した対象において、加齢による生理機能の低下を回復または改善することができる。特に、ＧＤＦ６によって老化した細胞が分泌する老化促進効果が報告されている各種ＳＡＳＰ因子（炎症性サイトカインおよび／またはケモカイン）の血漿中のタンパク質濃度が低下したことは、単に細胞の機能低下を改善するに留まらず、全身性の加齢による生理機能の低下を改善することを示しており、本発明はがん、アルツハイマー病、動脈硬化、骨粗鬆症、肺線維症などの加齢性疾患の罹患または罹患可能性の状態を改善することにも有用である。
図１は、若齢時の間葉系幹／間質細胞（ＭＳＣ）と老齢時のＭＳＣとにおいて、骨芽細胞への分化能および脂肪細胞への分化能の相違（図１ａ）、Senescence-Associated Secretory Phenotype（SASP）様の炎症性因子の発現の相違（図１ｂ）並びに、成長因子の発現の相違（図１ｃ）を示す。 図２は、若齢時のＭＳＣと老齢時のＭＳＣとにおけるｍｉＲ－１７ファミリーメンバーの発現量の変化（図２ａ）、並びに、ｍｉＲ－１７を過剰発現させた細胞の骨細胞への分化能および脂肪細胞への分化能への影響（図２ｂおよびｃ）を示す。 図３は、ｍｉＲ－１７を導入した老いたＭＳＣを老齢マウスに投与するスキーム（図３ａ）、投与した細胞の組織への生着（図３ｂおよびｄ）、および、投与後のマウスにおけるリンパ球数の変化（図３ｃ）を示す。 図４は、ｍｉＲ－１７を過剰発現したＭＳＣにおいて、発現量が老化に伴い低下し、ｍｉＲ－１７の過剰発現により回復する分泌因子のスクリーニングの結果を示す（図４ａおよびｂ）。図４ｃおよびｄは、同定した１３の候補遺伝子のうち、特にＧｄｆ６が加齢による生理機能の低下の回復および／または改善の強い作用を有することを示す。図４ｅは、Ｂｍｐ２／４の発現を示す。図４ｆは、ＢＭＰ２によるＭＳＣにおける骨細胞への分化能の変化を示す。 図５は、Ｇｄｆ６ノックダウンの細胞の分化能への影響を示す。 図６は、ＧＤＦ６発現ウイルスをマウス腹腔内に投与した実験の結果を示す。図６ａは、老齢マウスへのＧＤＦ６過剰発現用ウイルスの腹腔内投与実験のスキームを示す。図６ｂは、ＧＤＦ６過剰発現の老齢マウスにおけるリンパ球数減少への回復効果を示す。図６ｃは、ＧＤＦ６過剰発現の老齢マウスにおける筋再生能への回復効果を示す。 図７ａは、ＧＤＦ６過剰発現の老齢マウスの脳における神経前駆細胞数の増加効果を示す。図７ｂは、血漿中におけるＧＤＦ６タンパク質の発現をウェスタンブロット法により確認した結果を示す。 図８は、ＧＤＦ６過剰発現用ウイルスを腹腔内投与した老齢マウスにおける血中の各種炎症性サイトカインをＭｕｌｔｉｐｌｅｘ法で測定し、ＥＧＦＰ発現レンチウイルスを投与したマウスの値を基準とした各種炎症性サイトカイン量の相対値を示す。 図９は、Ｇｄｆ６遺伝子を導入した細胞を老齢マウスに投与した後のリンパ球の割合を示す。 図１０は、ＧＤＦ６過剰発現の老齢マウスの脳組織切片における、抗ＣＤ３１抗体を用いた免疫組織学染色像を示す（図１０左）。図１０はまた、ＧＤＦ６過剰発現の老齢マウスの脳組織切片において血管が増加していることを示す（図１０右）。 図１１は、ＧＤＦ６過剰発現の老齢マウスの脳組織切片における、抗Ｄｃｘ抗体を用いた免疫組織学染色像を示す（図１１左）。図１１はまた、ＧＤＦ６過剰発現の老齢マウスの脳組織切片において神経芽細胞が増加していることを示す（図１１右）。 図１２は、若齢マウスにおける毛の減少および毛のつやの低下をＧＤＦ６が回復することを示す図である。「ＧＤＦ６」はｈＧＤＦ６をコードするＤＮＡを発現可能に連結したレンチウイルスを投与したマウスの結果を示している。「ＣＴ」はウイルス投与をしていない陰性対照、「ＥＧＦＰ」はＧＤＦ６に代えてＥＧＦＰを発現させた陰性対照を指す。左側は投与から２ヵ月後、右側は投与から８カ月後の結果である。
発明の具体的な説明
　本明細書で用いられる「細胞製剤」とは、生理機能が低下した状態を処置するために対象に投与される組成物であって、細胞を有効成分として含む組成物を意味する。本明細書で用いられる「タンパク質製剤」とは、タンパク質を有効成分とする組成物を意味する。
　本明細書で用いられる「老化に関連する状態」または類似した表現は、細胞および／または組織の生理機能が加齢によって低下して起こる状態を意味する。老化に関連する状態としては、特に限定されないが例えば、リンパ球の減少（あるいはリンパ球産生能力の減少）、神経細胞の減少、筋肉の減少、皮膚組織の菲薄化、血管網の減退および細胞老化を起こした細胞（老化細胞）の増加が挙げられる。老化に関連する状態としてはまた、脳機能の低下、感染症発生率の上昇、癌発生率の上昇、筋肉における損傷の回復力の低下、創傷治癒力の低下、血管壁の硬化、血管内腔の縮小、皮膚組織の弾力の低下および毛つやの低下などの生理機能の低下、並びにこのような状態により生じる加齢性疾患および老年性症候群が挙げられる。細胞老化の状態としては、細胞内のＤＮＡ損傷の蓄積、Ｓｏｘ２陽性神経前駆細胞の減少若しくは消失、組織幹細胞の再生能の低下および細胞老化に伴うSenescenece Associated Secretory Phenotype（SASP）因子の分泌増加が含まれる。細胞老化に伴って分泌が増加するＳＡＳＰ因子としては、炎症性サイトカイン、ケモカイン、ＭＭＰｓ（Matrix metalloproteases）および増殖因子などが挙げられる。より具体的には、炎症性サイトカインとしてはＩＬ－１ａ、ＩＬ－１ｂ、ＩＬ－６、ＩＬ－１７、インターフェロンβおよび／またはＧ－ＳＣＦであり、ケモカインとしてはＣＣＬ３、ＣＣＬ４、ＣＣＬ１１および／またはＭＣＰ‐１が挙げられる。ＳＡＳＰ因子の分泌増加は、例えば血中濃度の上昇として確認することができる。
　本明細書で用いられる「処置」とは、「治療」および／または「予防」を意味する。本明細書で用いられる「治療」とは、状態の悪化を遅延させること、状態の悪化を防止すること、または、状態を改善することを意味する。本明細書で用いられる「予防」とは、状態の発症を抑制することを意味する。
　本明細書で用いられる「ストリンジェントな条件」とは、ハイブリダイゼーション後の洗浄において、例えば６５℃、０．１×ＳＳＣおよび０．１％ＳＤＳで洗浄する条件とすることができる。
　本明細書で用いられる「過剰発現」とは、目的のタンパク質をコードする外来の核酸（ＤＮＡ、ＲＮＡ、人工塩基またはこれらの組合せを含む）を対象の細胞に導入することで、目的のタンパク質の発現量が導入していない細胞と比較して増大している状態、または導入していない細胞では発現していなかった目的のタンパク質が発現するようになった状態を意味する。細胞におけるタンパク質や核酸の過剰発現の方法は当業者に周知であり、特に限定されないが例えば、レンチウイルス、アデノウイルス、センダイウイルスなどのウイルスを用いて導入することができる。
　本発明によれば、ＧＤＦ６タンパク質は、液性因子として機能し、血中を巡って全身に行き渡り、老化した対象において、加齢による生理機能の低下の回復および／または改善作用を発揮する。具体的には、ＧＤＦ６タンパク質を過剰発現させることにより、老齢マウスにおいて、リンパ球の減少（例えば、Ｂ細胞および／またはＴ細胞の減少）、筋肉の減少、神経の減少、血管網の減退および、毛つやの低下、Ｓｏｘ２発現細胞などの未分化細胞の減少またはＳＡＳＰ因子の血中濃度などの、老化に伴う状態が改善された。すなわち、ＧＤＦ６タンパク質により、リンパ球の増加（例えば、Ｂ細胞および／またはＴ細胞の増加）、筋肉再生量の増加、神経新生数の増加、血管若しくは血管網の増加および、毛つやの改善（つやが良くなる）、Ｓｏｘ２発現細胞などの未分化細胞の増加またはＳＡＳＰ因子の血中濃度の低下などの、老化に伴う状態の改善効果が見られた。このように、発明者らは、ＧＤＦ６タンパク質が、老齢マウスにおいて、加齢による生理機能の低下を回復および／または改善することを明らかにした。
　従って、本発明によれば、ＧＤＦ６を細胞に発現させるためのベクターおよびこれを含む、加齢による生理機能の低下の回復および／または改善するための組成物が提供される。本発明によればまた、ＧＤＦ６タンパク質を分泌する細胞（例えば、血球細胞またはＭＳＣ）およびこれを含む、加齢による生理機能の低下の回復および／または改善するための組成物が提供される。本発明ではさらに、ＧＤＦ６タンパク質を含むタンパク質製剤などの加齢による生理機能の低下の回復および／または改善するための組成物が提供される。本発明ではさらにまた、ＧＤＦ６タンパク質を分泌する細胞を含む細胞製剤などの加齢による生理機能の低下の回復および／または改善するための組成物が提供される。
　これらの組成物は、老化した対象において、老化を伴う状態の改善、例えば加齢に伴う生理的機能の低下の回復および／または改善に用いることができる。ある態様では、本発明の組成物は、老化した対象において、老化に伴うリンパ球の減少および／またはリンパ球の機能を改善することに用いるためのものである。ある態様では、本発明の組成物は、老化した対象において、老化に伴う筋肉細胞の減少および／または筋肉細胞の機能を改善することに用いるための組成物とすることができる。ある態様では、本発明の組成物は、老化した対象において、老化に伴う神経前駆細胞の減少および／または神経前駆細胞の機能を改善することに用いるための組成物とすることができる。本発明の組成物は、老化した対象において、老化に伴う血管網の減退を改善することに用いるための組成物とすることができる。ある態様では、本発明の組成物は、老化した対象において、老化に伴う創傷治癒力の低下を改善することに用いるための組成物とすることができる。ある態様では、本発明の組成物は、老化した対象において、老化に伴う筋肉における創傷治癒力の低下を改善することに用いるための組成物とすることができる。ある態様では、本発明の組成物は、老化した対象において、老化に伴う未分化細胞の減少（例えば、Ｓｏｘ２発現細胞の減少）を回復することに用いるための組成物とすることができる。ある態様では、本発明の組成物は、老化した対象において、老化に伴うＳＡＳＰ因子（例えば、ＩＬ－１ｂ、ＩＬ－６、ＩＬ－１７、Ｇ－ＳＣＦ、ＣＣＬ１１、ＭＣＰ－１、ＣＣＬ３および／またはＣＣＬ４）の血中の量を減少させることに用いるための組成物とすることができる。これらの組成物はまた、リンパ球の増加（例えば、Ｂ細胞および／またはＴ細胞の増加）、筋肉再生量の増加、神経新生数の増加、血管若しくは血管網の増加および、毛つやの改善（つやが良くなる）、Ｓｏｘ２発現細胞などの未分化細胞の増加またはＳＡＳＰ因子の血中濃度の低下などの、老化に伴う状態を改善することに用いるための組成物とすることができる。
　本発明では、対象は、老化した、または老化が疑われるほ乳類（例えば、ヒト）である。老化した、または老化が疑われるヒトとしては、例えば、個人差があるが、２０歳以上のヒトであり、好ましくは４０歳以上のヒト、４５歳以上のヒト、５０歳以上のヒト、５５歳以上のヒト、６０歳以上のヒト、６５歳以上のヒト、７０歳以上のヒト、７５歳以上のヒト、または８０歳以上のヒトである。老化は、感染力の低下や記憶力の低下その他老化に伴う状態を有しているか否かにより医師等により容易に決定することができる。
　本発明で用いられるＧＤＦ６タンパク質は、タンパク質プロセッシングにより分子内で切断されて１２０アミノ酸の成熟タンパク質（活性化型フォーム）として活性を発揮すると考えられる。従って、本発明の好ましい態様では、本発明で用いられるＧＤＦ６タンパク質は、ＧＤＦ６タンパク質の活性化型フォーム、例えば、
（i）配列番号３で示されるアミノ酸配列を有するタンパク質であり得る。
　あるいは、他の好ましい態様では、本発明で用いられるＧＤＦ６タンパク質は、
（ii）配列番号３に示されるアミノ酸配列と９０％以上、より好ましくは９５％以上、さらに好ましくは９８％以上、さらにより好ましくは９９％の相同性（または同一性）を示す配列を有するか、または、
（iii）配列番号３に示されるアミノ酸配列において、１個～１０個、より好ましくは１個～５個、さらに好ましくは１個～３個、さらにより好ましくは１個のアミノ酸の欠失、挿入および／または置換を有するアミノ酸配列を有する、タンパク質であり得る。本発明では、ＧＤＦ６タンパク質の活性化型フォームはホモ二量体を形成し得る。
　ＴＧＦβファミリーのタンパク質は、前駆体を形成し、その後、細胞外でプロテアーゼにより分解されることが知られている。ＧＤＦ６も、前駆体形成の後、細胞外でプロテアーゼにより分解されると考えられる。従って、本発明の別の好ましい態様では、本発明で用いられるＧＤＦ６タンパク質は、前駆体フォーム、例えば、
（i）配列番号２で示されるアミノ酸配列を有するタンパク質であり得る。
　あるいは、他の好ましい態様では、本発明で用いられるＧＤＦ６タンパク質は、
（ii）配列番号２に示されるアミノ酸配列と９０％以上、より好ましくは９５％以上、さらに好ましくは９８％以上、さらにより好ましくは９９％の相同性（または同一性）を示す配列を有するか、または、
（iii）配列番号２に示されるアミノ酸配列において、１個～１０個、より好ましくは１個～５個、さらに好ましくは１個～３個、さらにより好ましくは１個のアミノ酸の欠失、挿入および／または置換を有するアミノ酸配列を有する、タンパク質であり得る。本発明では、ＧＤＦ６タンパク質の前駆体フォームはホモ二量体を形成し得る。前駆体フォームが活性化型フォームに変換されるためには、配列番号２に示されるアミノ酸配列の３３１番～３３５番に対応するアミノ酸の配列が保存されていることが好ましい。従って、本発明で用いられるＧＤＦ６タンパク質が前駆体フォームとして提供される場合には、配列番号２に示されるアミノ酸配列の３３１番～３３５番に対応するアミノ酸の配列が保存されているか、または、ＲＸＸＲモチーフ（ここでＸは任意のアミノ酸を意味する）が保存されているＧＤＦタンパク質を用いることが好ましい。
　本明細書では、「相同性」は、米国バイオテクノロジー情報センター（NCBI）が提供するBLASTプログラムでデフォルトパラメータ（初期設定）を用いて決定することができる（http://blast.ncbi.nlm.nih.gov/Blast.cgi参照）。「同一性」は、２つのアラインメントされた配列間の正確な配列の一致数により決定される。アラインメントは、ClustalW Ver.2のデフォルトパラメータを用いて行うことができる。
　ＧＤＦ６は、ＴＧＦβファミリーの増殖因子であり、老化した対象における加齢による生理機能の低下の回復および／または改善作用は、この増殖因子としての活性に起因するものであると考えられる。例えば、同じＴＧＦβ受容体（具体的にはＡＬＫ３／６）とＳｍａｄ１／５／８を共有するＢＭＰ２／４でも、弱いながらも部分的な機能を発揮する（図４ｆ）。従って、ＧＤＦ６による加齢による生理機能の低下の回復および／または改善作用は、部分的には、ＡＬＫ３／６の活性化によるものと考えられる。従って、本発明の好ましい態様では、本発明で用いられるＧＤＦ６タンパク質は、ＡＬＫ３／６活性化能を有していてもよい。すなわち、本発明の好ましい態様では、本発明で用いられるＧＤＦ６タンパク質は、(ii)配列番号３で示されるアミノ酸配列を有するタンパク質と９０％以上、より好ましくは９５％以上、さらに好ましくは９８％以上、さらにより好ましくは９９％の相同性を示す配列を有するタンパク質は、ＡＬＫ３／６活性化能を有していてもよく、（iii）配列番号３に示されるアミノ酸配列において、１個～１０個、より好ましくは１個～５個、さらに好ましくは１個～３個、さらにより好ましくは１個のアミノ酸の欠失、挿入および／または置換を有するアミノ酸配列を有するタンパク質は、ＡＬＫ３／６活性化能を有していてもよい。
　本発明によれば、本発明で用いられるＧＤＦ６タンパク質をコードする核酸配列がプロモータに作動可能に連結された核酸配列を含む、細胞内発現ベクターが提供される。本発明の発現ベクターには、本発明で用いられるＧＤＦ６タンパク質をコードする核酸配列の相補配列に対してストリンジェントな条件でハイブリダイズ可能な配列を有する核酸を用いてもよい。本発明の細胞内発現ベクターは、ヒト発現用ベクターとすることができる。本発明のベクターは、酵母や大腸菌内などの微生物内での複製を可能とする複製起点を有していてよい。本発明のベクターは、ヒト体内で複製を可能とする複製起点を有していてもよいし、安全面を考慮してヒト体内では複製ができないベクターであってもよい。ベクターとしては、アデノウイルス、レンチウイルス、およびレトロウイルスなどの当業者に周知のウイルスベクターを用いることができる。また、さらに安全面を考慮して、一過性の発現を目的とした場合には、ＧＤＦ６タンパク質をコードするｍＲＮＡ自体を対象に投与してもよい。ＧＤＦ６タンパク質は、ＧＤＦ６を発現する細胞から当業者に周知の方法により得ることができる。例えば、タグ融合タンパク質として発現させてタグを用いて精製する方法、抗ＧＤＦ６抗体を用いて免疫沈降させる原理を用いる方法、無細胞抽出系により発現させる方法、およびクロマトグラフィーによる生成方法などが知られている。
　ある態様では、ＧＤＦ６タンパク質のアミノ酸の一部を置換する場合には、保存的置換が可能である。保存的置換とは、アミノ酸を、性質の類似した他のアミノ酸に置換することを意味する。下記の同一群内における置換は、保存的置換の非限定的な例である：グルタミン酸およびアスパラギン酸などの酸性アミノ酸からなる群；リジンおよびアルギニンなどの塩基性アミノ酸からなる群；ロイシン、アラニン、グリシン、およびイソロイシンなどの疎水性アミノ酸からなる群；グルタミン、ヒスチジン、メチオニンおよびアスパラギンなどの極性アミノ酸からなる群；トリプトファン、チロシンおよびフェニルアラニンなどの芳香族アミノ酸からなる群；グリシン、アラニン、セリンおよびトレオニンなどの分子量の小さいアミノ酸からなる群；並びに、システインおよびメチオニンなどの含硫アミノ酸からなる群。
　本発明によれば、ＧＤＦ６タンパク質を分泌する細胞を含む、老化に関連する状態を処置するための細胞製剤などの組成物が提供される。ＧＤＦ６タンパク質は、前駆体として分泌され得る。ＧＤＦ６タンパク質を分泌する細胞は、例えば、ＧＤＦ６タンパク質を細胞に過剰発現させて得ることができる。ＧＤＦ６タンパク質を分泌する細胞としては、特に限定されないが例えば、血液細胞またはＭＳＣにＧＤＦ６タンパク質を過剰発現させて得られる細胞を用いることができる。血液細胞としては、一種類の細胞または複数の細胞が混ざった細胞群でもよく、例えば対象から採取した末梢血を用いてもよい。また、ある態様では、血液細胞としては、赤血球または白血球を用いることができる。白血球としては、好中球、好酸球、好塩基球、リンパ球または単球を用いることができる。また、リンパ球としては長寿命細胞であるメモリーＢ細胞、メモリーＴ細胞などを用いても良い。これらの細胞にＧＤＦ６タンパク質を発現させる方法は、当業者に周知である。本発明のある態様では、ＧＤＦ６タンパク質を分泌する細胞は、ほ乳類、より好ましくはヒトから単離したＧＤＦ６タンパク質分泌細胞であってもよい。
　本発明のある態様では、ＧＤＦ６タンパク質を分泌する細胞は、老化した対象から得られた老化した細胞にＧＤＦ６タンパク質を過剰発現させて得てもよい。
　本発明によれば、ＧＤＦ６タンパク質は、細胞にｍｉＲ－１７ファミリーメンバーの過剰発現させることにより分泌され得る。従って、本発明では、ＧＤＦ６タンパク質を過剰発現した細胞は、細胞にｍｉＲ－１７ファミリーメンバーを過剰発現させた細胞として得てもよい。本発明によればまた、老化した細胞であっても、ｍｉＲ－１７ファミリーメンバーを過剰発現させることでＧＤＦ６タンパク質を過剰発現させることができた。従って、本発明のある態様では、ＧＤＦ６タンパク質を過剰発現した細胞は、老化した細胞にｍｉＲ－１７ファミリーメンバーを過剰発現させて得ることもできる。本発明のある態様では、老化した細胞は、老化した対象若しくは老化が疑われる対象から得られたＭＳＣ、または血液細胞とすることができる。これらの細胞にｍｉＲ－１７ファミリーメンバーを発現させる方法は、当業者に周知である。
　ｍｉＲ－１７ファミリーメンバーは、ｍｉＲ－１７、ｍｉＲ－１０６ａ、ｍｉＲ－１０６ｂ、ｍｉＲ－２０ａ、ｍｉＲ－２０ｂ、およびｍｉＲ－９３からなる群より選択される１以上のマイクロＲＮＡを意味し、好ましくはｍｉＲ－１７である。「ｍｉＲ－１７」は、上記マイクロＲＮＡの前駆体も成熟型のどちらも含む意である。例えば、ｍｉＲ－１７前駆体は配列番号４の塩基配列を有する。成熟型ｍｉＲ－１７としては、配列番号５（miR-17-5p）または配列番号６（miR-17-3p）が例示される。例えば、ｍｉＲ－２０ａ前駆体は配列番号７の塩基配列を有し、成熟型ｍｉＲ－２０ａは、配列番号８（miR-20a-5p）および配列番号９（miR-20a-3p）が例示される。例えば、ｍｉＲ－１０６ｂ前駆体は配列番号１０を有し、成熟型ｍｉＲ－１０６ｂとしては、配列番号１１（miR-106b-5p）および配列番号１２（miR-106b-3p）が例示される。例えば、ｍｉＲ－９３前駆体は配列番号１３を有し、成熟型ｍｉＲ－９３としては、配列番号１４（miR-93-5p）および配列番号１５（miR-93-3p）が例示される。例えば、ｍｉＲ－１０６ａ前駆体は配列番号１６を有し、成熟型ｍｉＲ－１０６ａとしては、配列番号１７（miR-106a-5p）および配列番号１８（miR-106a-3p）が例示される。例えば、ｍｉＲ－２０ｂ前駆体は配列番号１９の塩基配列を有し、成熟型ｍｉＲ－２０ｂとしては、配列番号２０（miR-20b-5p）および配列番号２１（miR-20b-3p）が例示される。ｍｉＲ－１７ファミリーは、ＧＤＦ６タンパク質を発現誘導できる限り、どのような配列を有していてもよい。例えば、ｍｉＲ－１７ファミリーとしては、
　（i）配列番号４～２１のいずれかの核酸配列を有するか、
　（ii）配列番号４～２１のいずれかに示される核酸配列と９０％以上の同一性を有するか、または、
　（iii）配列番号４～２１のいずれかに示される核酸配列において、１個～１０個、好ましくは１～５個、より好ましくは１～３個、さらに好ましくは１～２個、さらにより好ましくは１個の塩基の欠失、挿入および／または置換を有する核酸配列を有する、ＲＮＡとすることができる。例えば、ｍｉＲ－１７としては、
　（i）配列番号４に示される核酸配列を有するか、
　（ii）配列番号４に示される核酸配列と９０％以上の同一性を有するか、または、
　（iii）配列番号４に示される核酸配列において、１個～１０個、好ましくは１～５個、より好ましくは１～３個、さらに好ましくは１～２個、さらにより好ましくは１個の塩基の欠失、挿入および／または置換を有する核酸配列を有する、ＲＮＡとすることができる。ｍｉＲ－１７ファミリーメンバーがＧＤＦ６タンパク質を発現誘導するか否かは、例えば、ｍｉＲ－１７ファミリーメンバーを過剰発現する細胞またはその培養上清をウェスタンブロット法により分析することにより評価できる。
　本発明ではまた、ｍｉＲ－１７ファミリーメンバーを含む、老化に関連する状態を処置するための細胞製剤などの組成物が提供される。
　また、本発明によれば、ｍｉＲ－１７ファミリーメンバーをコードするＤＮＡがプロモータに作動可能に連結された核酸配列を含む、細胞内発現ベクターが提供される。本発明の細胞内発現ベクターは、ヒト発現用ベクターとすることができる。本発明のベクターは、酵母や大腸菌内などの微生物内での複製を可能とする複製起点を有していてよい。本発明のベクターは、ヒト体内で複製を可能とする複製起点を有していてもよいし、安全面を考慮してヒト体内では複製ができないベクターであってもよい。ベクターとしては、アデノウイルス、レンチウイルス、およびレトロウイルスなどの当業者に周知のウイルスベクターを用いることができる。また、さらに安全面を考慮して、一過性の発現を目的とした場合には、ｍｉＲＮＡ自体を対象に投与してもよい。
また、ｍｉＲ－１７ファミリーメンバーを発現するベクターは当業者に周知の方法で作製できる。マイクロＲＮＡは、当業者に周知の方法により調製することができる。例えば、抗Ａｇｏ２抗体を用いて細胞抽出物からマイクロＲＮＡを精製する方法が知られている。
　本発明の細胞製剤は、細胞と薬学的に許容可能な賦形剤、担体またはビヒクルを含んでいてもよい。本発明の細胞製剤は、特に限定されないが例えば、静脈内投与、体腔内投与、脳室内投与、心室内投与、腹腔内投与、皮下投与、または筋肉内投与により非経口的に投与することができる。本発明の細胞製剤は、医薬組成物として使用してもよい。
　本発明のタンパク質製剤は、ＧＤＦ６タンパク質と薬学的に許容可能な賦形剤、担体またはビヒクルを含んでいてもよい。本発明のタンパク質製剤は、特に限定されないが例えば、静脈内投与、体腔内投与、心室内投与、腹腔内投与、皮下投与または筋肉内投与により非経口的に投与することができる。本発明のタンパク質製剤は、医薬組成物として使用してもよい。
　本発明のベクターを含む組成物は、ベクターと薬学的に許容可能な賦形剤、担体またはビヒクルを含んでいてもよい。本発明のベクターを含む組成物は、特に限定されないが例えば、静脈内投与、体腔内投与、心室内投与、腹腔内投与、皮下投与または筋肉内投与により非経口的に投与することができる。本発明のベクターを含む組成物は、医薬組成物として使用してもよい。
　本発明の別の側面では、老化した対象または老化が疑われる対象において、老化に関連した状態を処置する方法であって、本発明で用いられるＧＤＦ６タンパク質、ＧＤＦ６タンパク質を分泌する細胞、またはＧＤＦ６を発現させるベクターをその必要のある対象に投与することを含む方法が提供される。
　本発明のある態様では、老化した対象または老化が疑われる対象において、老化に関連した状態を処置する方法であって、本発明で用いられるｍｉＲ－１７ファミリーメンバー、ｍｉＲ－１７ファミリーメンバーを発現させるベクターまたはｍｉＲ－１７ファミリーメンバーを過剰発現する細胞をその必要のある対象に投与することを含む方法が提供される。
　また、ＧＤＦ６またはｍｉＲ－１７ファミリーメンバーを発現する細胞と被検化合物と接触させ、当該接触後のＧＤＦ６の発現量および／またはＧＤＦ６タンパク質の分泌量の変化を検出し、ＧＤＦ６の発現および／またはＧＤＦ６タンパク質の分泌を向上させる化合物を選択することにより、老化に関連した状態を処置するための候補化合物をスクリーニングすることができる。
　スクリーニングに用いる「被検化合物」としては、特に制限はなく、例えば、遺伝子ライブラリーの発現産物、合成低分子化合物ライブラリー、ペプチドライブラリー、抗体、細菌放出物質、細胞（微生物、植物細胞、および動物細胞）の抽出液および培養上清、精製または部分精製ポリペプチド、海洋生物由来の抽出物、植物または動物由来の抽出物、土壌、並びにランダムファージペプチドディスプレイライブラリーが挙げられる。
　ＧＤＦ６を発現する細胞と被検化合物との「接触」は、例えば、ＧＤＦ６またはｍｉＲ－１７ファミリーメンバーを発現する細胞を培養、維持している培地中への添加することによって行うことができる。
　被検化合物の接触後のＧＤＦ６の発現量および／またはＧＤＦ６タンパク質の分泌量の変化の検出は、当業者に公知の方法で行うことができる。例えば、検出は、ＧＤＦ６のＲＮＡ量を測定するＲＴ－ＰＣＲ法、および培養上清を回収して行う免疫沈降などが挙げられる。
　以下の実施例は、発明を説明するために例示的に示されるものであって、本発明の技術的範囲を限定するものではない。本発明の技術的範囲は、特許請求の範囲の記載により定められる。
実施例１：間葉系幹／間質細胞（ＭＳＣ）の老化と遺伝子発現の変化
　本実施例では、ＭＳＣの老化に伴う遺伝子発現の変動を解析した。
　初代ＭＳＣは、ＣＤ４５陰性、ＣＤ３１陰性、ＴＥＲ１１９陰性、Ｐｄｇｆｒａ陽性かつＳｃａ－１陽性であり、Ｃ５７ＢＬ／６ＪＪｃｌマウスから常法を用いて調製した（Morisawa S et al., J Exp. Med., 206: 2483-2496, 2009参照）。２～３週齢のマウスから調製したものを、若いＭＳＣ（Young MSC）とし、１８月齢以降のマウスから調製したものを、老化ＭＳＣ（Old MSC）として用いた（本明細書ではそれぞれ「若齢時のＭＳＣ」および「老齢時のＭＳＣ」ということがある）。ＭＳＣの培養は、アルファ改変最小必須培地（α-MEM）中で３７℃５％ＣＯ2インキュベーターを用いて行った。
　骨分化および脂肪分化は、Human Mesenchymal Stem Cell Osteogenic/Adipogenic Differentiation BulletKit Medium（Lonza社製）を用いて製造者マニュアルに従って行った。骨芽細胞の検出は、Leukocyte Alkaline Phosphatase Kit（Sigma-Aldrich社製）を用いて行い、脂肪細胞の検出は、オイルレッドＯ（武藤化学（株）、40491）を用いて脂肪細胞が産生する油滴を検出することにより常法に従い行った。
　過去の報告の通り、Young MSCは、骨芽細胞、脂肪細胞、軟骨細胞、筋芽細胞および神経への良好な多能性（multipotency）を維持していた。これに対して、Old MSCは、骨形成能および脂肪形成能が低下していた（図１ａ）。図１ａの左のグラフにより示されるように、Old MSCでは、ＡＬＰ陽性細胞の面積がYoung MSCに対して約２０％に低下していた。これによりＭＳＣは老化に伴いその脂肪細胞分化能を低下させることが明らかとなった。また、図１ａの右のグラフにより示されるように、Old MSCでは、オイルレッドＯ陽性細胞の面積がYoung MSCに対して半分以下に低下していた。これにより、ＭＳＣは老化に伴いその骨分化能を低下させることが明らかとなった。実験は、３回繰り返した。いずれの結果も統計学的有意差を示した（ｐ＜０．０５）。
　Old MSCにおいて、Senescence-Associated Secretory Phenotype（SASP）様の炎症性因子の発現増加が見られ、また、ある種の成長因子の発現レベルが変動していた（図１ｂおよびｃ）。
実施例２：ＭＳＣの老化に関連する因子の同定
　本実施例では、実施例１で示された老化に伴うＭＳＣの能力の低下に関連する因子を同定した。
　この目的のために、ＲＮＡを、Old MSCとYoung MSCとからそれぞれ抽出して、マイクロアレイ（Agilent社製, SurePrint G3 Mouse GE microarray）およびmiRNA qPCR array（Thermo Fisher Scientific Applied Biosystems社製, TaqMan Array Rodent MicroRNA A+B Cards Set v3.0）を用いて、細胞の老化に関連するｍＲＮＡおよびｍｉＲＮＡの発現の変化を分析した。分化の測定は、Hybrid Cell Count programとBZ-X700 顕微鏡 (KEYENCE社製)、およびImageJ software (http://imagej.nih.gov/ij/)を用いて行った。
　すると、ｍｉＲ－１７ファミリーメンバーのいずれもが老化と関連してその発現を低下させることを見出した（図２ａ）。
　ｍｉＲ－１７は、ＭＳＣの骨芽細胞への分化を促進するとも抑制するとも報告されており、未分化ＭＳＣの分化能に対するその役割は不明である。そこで、ｍｉＲ－１７（配列番号４）をレンチウイルスを用いてＭＳＣに導入し、１週間培養してその分化能を評価した。レンチウイルスの作成は常法を用いて行った（Naka-Kaneda H., PNAS, 111:1604-1609, 2014）。陰性対照として、ｍｉＲ－ＬａｃＺを組込んだレンチウイルスを用いた。
　ＭＳＣの骨芽細胞への分化能は、ＡＬＰ陽性の面積を測定することにより評価した。また、ＭＳＣの脂肪細胞への分化能は、オイルレッドＯ陽性の面積を測定することにより評価した。ｍｉＲ－１７を過剰発現させたOld MSCでは、骨形成能および脂肪形成能が部分的に回復した（図２ｂおよびｃ）。ＡＬＰ陽性面積は、ｍｉＲ－１７導入細胞で、陰性対照よりも約１．６倍増加し、オイルレッドＯ陽性面積は、ｍｉＲ－１７導入細胞で、陰性対照よりも約１．７倍増加した（図２ｂおよびｃのグラフ）。
実施例３：ｍｉＲ－１７を強制発現させたOld MSCの移植実験
　実施例２では、ｍｉＲ－１７を強制発現させたOld MSCにおいて、老化現象に特徴的であった骨形成能や脂肪形成能が部分的に回復した。本実施例では、このように老化に伴う能力低下を回復させたＭＳＣを移植してこれがレシピエントにおけるリンパ球再生能に及ぼす影響を確認した。
　移植実験は、図３ａに図示するスキームにより行った。すなわち、１８月齢以降の老齢マウスからＰαＳ細胞（ＰＤＧＦＲα＋、ＳｃａＩ＋細胞）としてＭＳＣ細胞を調製した１週間後に、レンチウイルスを用いてｍｉＲ－１７またはＬａｃＺを緑色蛍光タンパク質（ＧＦＰ）と共にＭＳＣ細胞に強制発現させた。その後、さらに１週間培養してから細胞を回収し、回収した細胞を１８月齢以降の老齢マウスに静脈投与した。１６週間後に移植を受けた老齢マウスを分析した。
　まず、末梢血におけるＢ２２０陽性Ｂ細胞、ＣＤ３ε陽性Ｔ細胞およびＣＤ１１ｂ陽性ミエロイド細胞の割合をＦＡＳＣにより分析した。
　すると、ｍｉＲ－１７を強制発現させたOld MSCを移植したマウスでは、老化に伴い減少するリンパ球の比率を顕著に回復させた（図３ｃ）。
　移植したＭＳＣの体内での分布を確認するため、骨髄、肺、肝臓、脾臓および末梢血を回収し、ＦＡＣＳによりそのＧＦＰ発現を分析した。その結果、移植されたＭＳＣは肺のみから検出された（図３ｂ参照）。一方で、骨髄、肝臓、脾臓および末梢血からは移植されたＭＳＣは検出されなかった（図３ｂおよびｄ）。
　図３ｂおよびｄの結果から、移植されたＭＳＣは骨髄にも末梢血にも存在しなかった。しかしながら、図３ｃの結果によると、miR-17を過剰発現したＭＳＣを移植することにより老化に伴うリンパ球数の減少に遅延／回復効果が観察された。これらの結果は、移植されたＭＳＣ自体ではなくむしろ、移植したmiR-17を過剰発現するＭＳＣから放出される分泌性因子がリンパ球の回復を担うことを示唆する。
実施例４：老化を回復する分泌性因子の同定
　実施例３の結果から、ＭＳＣは老化を回復する分泌性因子を放出して老齢マウスに対して加齢による生理機能の低下の回復および／または改善作用を発揮させることが明らかとなった。本実施例では、加齢による生理機能の低下の回復および／または改善作用を担う分泌性因子を同定した。
　Young MSC、Old MSC、およびｍｉＲ－１７を強制発現させたＭＳＣを移植した老齢マウスの間で、遺伝子発現プロファイルを実施例２の記載のようにマイクロアレイにより分析して各群間で比較した。下記候補遺伝子を選択する基準により５９，３０５遺伝子（プローブ）から７０１遺伝子（プローブ）を絞り込んだ（図４ａ）。
候補遺伝子を選択する基準
（１）発現量が、Young MSCと比較してOld MSCにおいて0.7倍未満である
（２）発現量が、Young MSCと比較して陰性対照（ｍｉＲ－ＬａｃＺ）を導入したOld MSCにおいて0.7倍未満である
（３）発現量が、Young MSCと比較してｍｉＲ－１７を強制発現させたOld MSCにおいて0.7倍以上である
（４）発現量が、陰性対照を導入したOld MSCと比較してｍｉＲ－１７を強制発現させたOld MSCにおいて1.5倍を超える
　上記基準の（１）および（２）は、老化したＭＳＣにおいて発現量が低下するという条件に関し、上記基準の（３）および（４）は、ｍｉＲ－１７の強制発現により発現量が改善されるという条件に関するものである。
　絞り込まれた７０１遺伝子から、遺伝子オントロジー解析により分泌因子と考えられる遺伝子として１３遺伝子を選択した（図４ｂの下線で示された遺伝子）。この１３遺伝子の中に加齢による生理機能の低下の回復および／または改善作用を担う分泌性因子が存在すると考えられた。
　従って、図４ｃに示されるように、上記１３遺伝子それぞれをYoung MSCのｃＤＮＡライブラリーからクローニングして、２９３Ｔ細胞に導入し、それぞれの遺伝子から産生される分泌因子を含む培養上清を回収した。
　次いで、回収された培養上清を用いて細胞の骨分化アッセイを行った。アッセイは図４ｃに記載されるスキームに従って行った。具体的には、１８月齢以降の老齢マウスの骨髄から骨髄間質細胞（ＢＭＳＣ）を採取して培養ディッシュに播種した。ＭＳＣ成長培地（α－ＭＥＭ＋１０％ＦＢＳ）中で５日間培養した後、細胞を再播種した。播種１日後、回収された培養上清を５０％含む、または含まない骨芽細胞分化培地（Lonza, PT-3002）で１４日間培養した。
　回収した細胞をＡＬＰで染色すると、Ｇｄｆ６を導入した２９３Ｔ細胞の培養上清で培養したOld MSCのみがＡＬＰ陽性であった（図４ｄ）。
　Ｇｄｆ６は、ＴＧＦ－βスーパーファミリーに属する分泌因子であり、目、頭蓋骨、一部の骨および足の関節の形成に必要であることで知られている（Asai-Coakwell M, et al., Am. J. Hum. Genet., 80, 306-315, 2007およびClendenning D.E. & Mortlock D.P., PLoS One, 7, e36789, 2012）。Ｇｄｆ６は、Ｂｍｐ２／４と同じＢＭＰ受容体を利用することで知られている（Mazerbourg S, et al., J. Biol. Chem., 280, 32122-32132, 2005）。そこで、Ｂｍｐ２／４とＧｄｆ６の性質を比較する実験を行った。
　Ｂｍｐ２／４の発現を、Young MSCとOld MSCとで比較すると、Young MSCとOld MSCとで大きな相違は観察されず（図４ｅ）、細胞の老化で大きく変化しないことが分かった。Ｂｍｐ２／４をYoung MSCおよびOld MSCにそれぞれ導入すると、Ｂｍｐ２／４はYoung MSCにおいては骨分化を顕著に増強させたが、Old MSCにおいては改善効果はあったものの小さな改善効果であった（図４ｆ）。この結果から、Ｇｄｆ６は、Ｂｍｐ２／４とは独立した経路により、Old MSCにおける骨形成能を改善していることが示唆された。
実施例５：Ｇｄｆ６の生理的役割および老化に対する効果の検証１
　本実施例では、ＭＳＣを用いてインビトロでＧｄｆ６をノックダウンすることにより、Ｇｄｆ６の生理的意義を分析した。本実施例ではまた、インビボでＧｄｆ６を老齢マウスに発現させて老化現象に対する効果を検証した。
　Ｇｄｆ６のノックダウンは、３種のｓｈＲＮＡを用いて検証した。用いたｓｈＲＮＡの配列は、配列番号２３（ｓｈＧｄｆ６‐１）、配列番号２４（ｓｈＧｄｆ６‐２）および配列番号２５（ｓｈＧｄｆ６‐３）に示される通りであった。ｓｈＲＮＡは、常法によりYoung MSCに導入した。コントロールｓｈＲＮＡとしては、２２を用いた。
　クローニングしたＧｄｆ６のＮ末側に赤色蛍光タンパク質ｍＫａｔｅ２を付加した融合タンパク質を発現するベクターを作成し、ＧＦＰをレポーターとして組み込んだ前記ｓｈＲＮＡ発現レンチウイルスベクターと２９３Ｔ細胞に共導入してＦＡＣＳで解析した。ＧＦＰ発現強度からｓｈＲＮＡの発現量を読み取り、ｍＫａｔｅ２発現強度からＧｄｆ６の発現量を読み取り、ノックダウン効率を評価した。コントロールｓｈＲＮＡを導入した際のｍＫａｔｅ２陽性細胞数を基準値として、ｓｈＧｄｆ６‐１、－２、または－３を導入した際のｍＫａｔｅ２陽性細胞数がどのぐらい減少しているかを相対定量した結果、ｓｈＧｄｆ６‐１が最も効果的にノックダウンできることが確認された。
　ＡＬＰ陽性細胞の面積（図５ａ）およびオイルレッドＯ陽性細胞の面積（図５ｂ）は、Ｇｄｆ６をノックダウンした場合に増大した。Ｇｄｆ６は、脂肪形成と骨形成の両方に関与していることが明らかとなった。
　次に、ヒトＧＤＦ６を１８月齢以上の老齢マウスに強制発現させてその効果を確認した。ヒトＧＤＦ６としては、配列番号１に示される配列を有するＧＤＦ６（以下、「ｈＧＤＦ６」という）を用いた。ｈＧＤＦ６をコードするＤＮＡを発現可能に連結したレンチウイルスをマウスの腹腔内に注射した。陰性対象としては、注射をしないマウスおよびＧＤＦ６に代えてＥＧＦＰを発現させたマウスを用いた。レンチウイルスの注射は、腹腔内にウイルスを１日おきに３回注射することにより行った。
　注射から４、８、１２および１６週後に末梢血を回収し、末梢血細胞種の割合を分析した（図６ａ）。すると、ｈＧＤＦ６を導入した老齢マウスでは、リンパ球系細胞であるＢ２２０陽性細胞（すなわち、Ｂ細胞）およびＣＤ３ｅ陽性細胞（すなわち、Ｔ細胞）が増加し、ＣＤ１１ｂ陽性細胞（すなわち、ミエロイド細胞）の割合が低下した（図６ｂ左ドットプロット）。老齢マウスにｈＧＤＦ６を導入することによってミエロイド細胞の割合およびＢ細胞の割合が若いマウスと同等のレベルに回復していた（図６ｂ右グラフ）。
　次に、レンチウイルス注射の１６週後に前脛骨筋をカルジオトキシン（ＣＴＸ）の局所注射により損傷させ、その５日後に損傷の修復を観察した（図６ａ）。修復は、胚性ミオシン重鎖陽性（ｅＭＨＣ＋）の新生筋芽細胞の存在の有無により検証した。
　免疫組織学染色は以下のように行った。まず、常法により、損傷箇所の組織をパラフィン包埋し、抗ｅＭＨＣ抗体（MYH3; 1:50, Santa Cruz Biotechnology sc-53091）を用いてｅＭＨＣ陽性細胞を染色し、抗Ｓｏｘ２抗体（1:100, Abcam ab92494）を用いてＳｏｘ２陽性細胞を染色した。二次抗体としては、Alexa Flour結合抗マウスおよびウサギＩｇＧ抗体（1:500, Thermo Fisher Scientific A21424, A21206）を用いた。BZ-X700 顕微鏡(KEYENCE社製)とそれに付属するハイブリッドセルカウント機能を用いて切片を解析した。
　結果は、図６ｃに示される通りであった。図６ｃに示される通り、若いマウスではｅＭＨＣ陽性筋芽細胞が多く出現するのに対して、老齢マウスやＥＧＦＰ導入老齢マウスではその量は少なかった。これに対して、ｈＧＤＦ６を強制発現させた老齢マウスでは、ｅＭＨＣ陽性筋芽細胞が顕著に多く出現した（図６ｃ）。単位面積あたりのｅＭＨＣ陽性筋芽細胞の数を比較すると、ｈＧＤＦ６を導入することによって老齢マウスにおける筋肉の再生が若いマウスと同等以上になることが明らかとなった（図６ｃ）。
　さらに、Ｓｏｘ２陽性神経前駆細胞をレンチウイルス注射１６週後のマウスにおいて確認した。すると、老齢マウスでは減少するＳｏｘ２陽性細胞の割合が、ｈＧＤＦを強制発現させることにより若いマウスと同等のレベルにまで回復した（図７ａ）。この割合の回復は、脳室下帯および線条体を含む広範な領域において認められた。老齢マウスの脳組織切片を血管内皮マーカーであるＣＤ３１に対する抗体で免疫組織学染色を行ったところ、図１０に示されるように、ＧＤＦ６を強制発現したマウスの脳組織では血管組織が大幅に増加していることが明らかであった。さらにＤｃｘに対する抗体で老齢マウスの脳組織切片を染色して神経芽細胞を観察したところ、図１１に示されるように、ＧＤＦ６により神経芽細胞が増加し、神経新生が改善していることが明らかであった。
　マウス血漿中のｈＧＤＦ６をウェスタンブロット法により確認した。血漿をAurum Serum Protein Mini Kit (Bio-Rad, 7326701)により精製し、ウェスタンブロット法では、抗ＧＤＦ６抗体（Sigma-Aldrich, PRS4691）を検出抗体として用いた。その結果、不活性型フォームである全長形態および活性化型フォームであるダイマー形態のｈＧＤＦ６が、レンチウイルス注射１０日後～５ヶ月後にわたり血漿中に確認された（図７ｂ）。
実施例６：Ｇｄｆ６の生理的役割および老化に対する効果の検証２
　本実施例では、細胞老化に伴うＳＡＳＰ因子の分泌をＧＤＦ６が抑制することができるかどうかを調べた。
　実施例５と同様に、ｈＧＤＦ６をコードするレンチウイルスを腹腔内投与してｈＧＤＦ６を強制発現させた１８月齢以上の老齢マウスより、注射から１２週後に末梢血を回収し、遠心分離により血漿を採取した。ＳＡＳＰ因子として知られる炎症性サイトカインまたはケモカインのＩＬ１－ｂ、ＩＬ－６、ＩＬ－１７、Ｇ－ＳＣＦ、ＭＣＰ－１（ＣＣＬ２）、ＭＩＰ－１ａ（ＣＣＬ３）およびＭＩＰ－１ｂ（ＣＣＬ４）の血漿中のタンパク質量を、Bio-Plex Pro マウスサイトカインアッセイ（BIO-RAD社）およびBio-Plex200（Bio-Rad社）を用いて定量した。比較対象としてＥＧＦＰを発現させたマウスの血漿中の炎症性サイトカインおよびケモカイン量を基準値（１）として相対値を求めた。
　結果は図８に示される通りであった。図８に示されるように、ＧＤＦ６によってＳＡＳＰ因子の各種炎症サイトカインおよびケモカインの量がいずれも０．５以下に減少していることが確認された（図８）。このことより、ＧＤＦ６は細胞老化に伴うＳＡＳＰ因子の分泌を抑制することが示された。
実施例７：Ｇｄｆ６遺伝子を導入した細胞による老化に対する効果の検証
　実施例５および６では、老齢マウス自体にレンチウイルスを投与してＧＤＦ６をマウスに強制発現させたが、本実施例では、ＧＤＦ６を強制発現させた末梢血を老齢マウスに投与して老化に対する効果を検証した。
　若いマウス２０匹から末梢血を２００μｌずつ採取し、赤血球を溶血して得られた白血球分画の半分に前期実施例のｈＧＤＦ６発現用レンチウイルスを、もう半分にＥＧＦＰ発現用レンチウイルス（対照）を導入して３時間培養した。レンチウイルスによるｈＧＤＦ６またはＥＧＦＰの発現を確認し、培養上清から十分なｈＧＤＦ６の分泌を確認した。前記の培養後、全細胞約５千万～２億個のＧＤＦ６発現細胞群またはＥＧＦＰ発現細胞群をそれぞれ老齢マウスに静脈投与で移植した。各細胞群を投与した老齢マウスから４週後に末梢血を回収し、実施例５と同様に末梢血細胞種の割合リンパ球を分析した。
　結果は図９に示される通りであった。図９に示されるように、ｈＧＤＦ６発現細胞群を導入した老齢マウスでは、リンパ球系細胞であるＢ２２０陽性細胞（すなわち、Ｂ細胞）およびＣＤ３ｅ陽性細胞（すなわち、Ｔ細胞）が増加し、ＣＤ１１ｂ陽性細胞（すなわち、ミエロイド細胞）の割合が低下していた。
　以上より、老齢マウスにｈＧＤＦ６を過剰発現する細胞を投与することで、ｈＧＤＦ６の遺伝子発現用ベクターの導入と同様の効果を得ることが確認された。
　これらの実施例により、ｍｉＲ－１７の強制発現によりＭＳＣが老齢マウスに対して加齢による生理機能の低下の回復および／または改善作用を発揮するようになること、この作用は、分泌因子を介して発揮されること、分泌因子であるＧＤＦ６が加齢による生理機能の低下の回復および／または改善作用を担うことが明らかとなった。具体的には、ＧＤＦ６の血漿における存在は、老化に伴うリンパ球の減少、損傷に対する筋再生能の減少、神経前駆細胞の減少、炎症性サイトカインおよびケモカインの分泌を抑制／回復することができた。また、ＧＤＦ６を強制発現させた老齢マウスでは、毛のつやが回復した。このように、ＧＤＦ６は、老化に伴う様々な状態を処置することに用いることができることが明らかとなった。
実施例８：Ｇｄｆ６の毛に対する効果の検証
　次に、前述の実施例と同じｈＧＤＦ６をコードするＤＮＡを発現可能に連結したレンチウイルスを若齢マウスの腹腔内に１日１回の頻度として３日連続で投与し、老化に伴うマウスの毛の減少および毛のつやについて経過観察した。陰性対象としては、ウイルス投与をしていないマウスおよびＧＤＦ６に代えてＥＧＦＰを発現させたマウスを用いて、同ケージ内で飼育した。結果は図１２に示される通りであった。図１２に示されるように、投与から２カ月後及び８カ月後のそれぞれにおいて、ｈＧＤＦ６を発現させたマウスでは、陰性対照と比較して背中全体で毛および毛のつやが維持されていることが示された。
 
 

Claims (14)

  1. 　ＧＤＦ６タンパク質またはｍｉＲ－１７ファミリーメンバーを含む、老化に関連する状態を処置するための組成物。
  2. 　ＧＤＦ６タンパク質またはｍｉＲ－１７ファミリーメンバーのヒト発現用ベクターを含む、老化に関連する状態を処置するための組成物。
  3. 　ＧＤＦ６タンパク質を分泌する細胞を含む、老化に関連する状態を処置するための組成物。
  4. 　ＧＤＦ６タンパク質またはｍｉＲ－１７ファミリーメンバーを過剰発現した細胞。
  5. 　間葉系幹／間質細胞または血球細胞にＧＤＦ６タンパク質またはｍｉＲ－１７ファミリーメンバーを過剰発現させて得られる、請求項４に記載の細胞。
  6. 　間葉系幹／間質細胞または血球細胞が老化した細胞である、請求項５に記載の細胞。
  7. 　ヒト細胞である、請求項４～６のいずれか一項に記載の細胞。
  8. 　細胞が、請求項４～７のいずれか一項に記載の細胞である、請求項３に記載の組成物。
  9. 　ＧＤＦ６タンパク質が、
    　（i）配列番号２または３に示されるアミノ酸配列を有するか、
    　（ii）配列番号２または３に示されるアミノ酸配列と９０％以上の相同性を示す配列を有するか、
    　（iii）配列番号２または３に示されるアミノ酸配列において、１個～１０個のアミノ酸の欠失、挿入および／または置換を有するアミノ酸配列を有するか、または、
    　（iv）配列番号２または３に示されるアミノ酸配列をコードするＤＮＡ配列に対して相補的な配列を有する核酸と、ストリンジェントな条件でハイブリダイズ可能な配列によりコードされるアミノ酸配列を有する、
    請求項１～３および８のいずれか一項に記載の組成物。
  10. 　ｍｉＲ－１７ファミリーメンバーが、
    　（i）配列番号４に示される核酸配列を有するか、
    　（ii）配列番号４に示される核酸配列と９０％以上の同一性を有するか、または、
    　（iii）配列番号４に示される核酸配列において、１個～１０個の塩基の欠失、挿入および／または置換を有する核酸配列を有する、
    請求項１、２または８に記載の組成物。
  11. 　老化に関連する状態が、筋肉の老化、造血系の老化、神経系の老化、血管系の老化、皮膚組織の老化、毛髪の老化または細胞老化である、請求項１～３および８～１０のいずれか一項に記載の組成物。
  12. 　老化に関連する状態が、老化に伴う以下の状態：筋肉の損傷の回復力の減少、リンパ球の減少、神経幹／前駆細胞の減少、血管壁の硬化、血管内腔の縮小、血管網の減退、皮膚組織の弾力の低下、皮膚組織の菲薄化、毛つやの低下、未分化細胞の減少またはＳＡＳＰ因子の分泌上昇である、請求項１～３および８～１０のいずれか一項に記載の組成物。
  13. 　ＧＤＦ６タンパク質が、
    　（i）配列番号２または３に示されるアミノ酸配列を有するか、
    　（ii）配列番号２または３に示されるアミノ酸配列と９０％以上の相同性を示す配列を有するか、
    　（iii）配列番号２または３に示されるアミノ酸配列において、１個～１０個のアミノ酸の欠失、挿入および／または置換を有するアミノ酸配列を有するか、または、
    　（iv）配列番号２または３に示されるアミノ酸配列をコードするＤＮＡ配列に対して相補的な配列を有する核酸と、ストリンジェントな条件でハイブリダイズ可能な配列によりコードされるアミノ酸配列を有する、
    請求項４～７のいずれか一項に記載の細胞。
  14. 　ｍｉＲ－１７ファミリーメンバーが、
    　（i）配列番号４に示される核酸配列を有するか、
    　（ii）配列番号４に示される核酸配列と９０％以上の同一性を有するか、または、
    　（iii）配列番号４に示される核酸配列において、１個～１０個の塩基の欠失、挿入および／または置換を有する核酸配列を有する、
    請求項４～７のいずれか一項に記載の細胞。
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