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WO2016208658A1 - 還元型補酵素ｑ１０の製造方法 - Google Patents

還元型補酵素ｑ１０の製造方法 Download PDF

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WO2016208658A1
WO2016208658A1 PCT/JP2016/068612 JP2016068612W WO2016208658A1 WO 2016208658 A1 WO2016208658 A1 WO 2016208658A1 JP 2016068612 W JP2016068612 W JP 2016068612W WO 2016208658 A1 WO2016208658 A1 WO 2016208658A1
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WO
WIPO (PCT)
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coenzyme
oxidized
reduced coenzyme
reduced
genus
Prior art date
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Application number
PCT/JP2016/068612
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English (en)
French (fr)
Inventor
健登 金谷
裕子 大勝
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Kaneka Corp
Original Assignee
Kaneka Corp
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Publication date
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Ceased legal-status Critical Current

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    • C07—ORGANIC CHEMISTRY
    • C07C—ACYCLIC OR CARBOCYCLIC COMPOUNDS
    • C07C46/00—Preparation of quinones
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C07—ORGANIC CHEMISTRY
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    • C07C41/01—Preparation of ethers
    • C07C41/18—Preparation of ethers by reactions not forming ether-oxygen bonds
    • C07C41/26—Preparation of ethers by reactions not forming ether-oxygen bonds by introduction of hydroxy or O-metal groups
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    • C07C46/08—Preparation of quinones by oxidation giving rise to quinoid structures of at least one hydroxy group on a six-membered aromatic ring with molecular oxygen
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    • C07C46/10—Separation; Purification; Stabilisation; Use of additives
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12P—FERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P7/00—Preparation of oxygen-containing organic compounds
    • C12P7/66—Preparation of oxygen-containing organic compounds containing the quinoid structure

Definitions

  • the present invention relates to a novel method for producing reduced coenzyme Q 10 .
  • Coenzyme Q 10 is a fat-soluble substance having a quinone structure, and “10” of coenzyme Q 10 is derived from the fact that there are 10 repeating units of isoprene side chains.
  • coenzyme Q 10 There are two types of coenzyme Q 10 , oxidized and reduced, but the oxidized form is widely used because it is inexpensive. However, since the reduced type is superior in the high absorption rate, the demand for the reduced type is also increasing.
  • Patent Document 1 A method for obtaining microbial cells containing a ratio and extracting the produced reduced coenzyme Q 10 with an organic solvent is disclosed.
  • This Patent Document 1 also discloses a method for producing oxidized coenzyme Q 10 by oxidizing reduced coenzyme Q 10 with an oxidizing agent such as manganese dioxide.
  • an object of the present invention is to provide a novel production method capable of producing reduced coenzyme Q 10 efficiently, safely and simply.
  • the present inventors have made intensive studies in order to solve the above problems, to recover the direct reduced coenzyme Q 10 from an aqueous suspension containing reduced coenzyme Q 10 containing microbial cells or their crushed material Instead, once recovered as oxidized coenzyme Q 10 and then reduced to obtain reduced coenzyme Q 10 , the recovery efficiency of coenzyme Q 10 itself is improved, and reduced coenzyme in the oxidation of Q 10, while removing water from the aqueous suspension, by the water-removed substance is contacted with an oxidizing atmosphere, a very stable and simple manner coenzyme Q 10 without using the oxidizing agent As a result, the inventors have found that reduced coenzyme Q 10 can be produced with extremely excellent efficiency as a whole despite having undergone oxidized coenzyme Q 10 once. Thus, the present invention has been completed.
  • the method for producing reduced coenzyme Q 10 according to the present invention has the gist in the following points. [1] while removing water from the aqueous suspension containing reduced coenzyme Q 10 containing microbial cells or disrupted product, the water removal was brought into contact with an oxidizing atmosphere, the proportion of oxidized coenzyme Q 10 An oxidized coenzyme Q 10 production step of 50% by mass or more with respect to the total amount of oxidized and reduced coenzyme Q 10 , and oxidized coenzyme Q obtained in the oxidized coenzyme Q 10 production step production method of reduced coenzyme Q 10 which comprises reduced coenzyme Q 10 regeneration step of reducing the 10 outside microbial cells.
  • the oxidized coenzyme Q 10 obtained in oxidized coenzyme Q 10 producing step, is separated by extraction from the microbial cells or disrupted product, resulting extract isolate the reduced coenzyme Q 10 is reduced in the regeneration step [1] to the production method of reduced coenzyme Q 10 according to [7].
  • the reduced coenzyme Q 10 in contact with the oxidizing atmosphere at a removal state of the water from an aqueous suspension containing reduced coenzyme Q 10 containing microbial cells or disrupted product may very efficiently
  • the reduced coenzyme Q 10 can be oxidized safely. Since the reduced coenzyme Q 10 is produced after being reduced to an oxidized form in this way, the reduction in production efficiency due to the coexistence of the oxidized and reduced forms can be suppressed, and the reduced form as a whole. coenzyme Q 10 can be efficiently produced.
  • the water-removed product is brought into contact with an oxidizing atmosphere while removing water from an aqueous suspension containing reduced coenzyme Q 10- containing microbial cells or a crushed product thereof, and the ratio of oxidized coenzyme Q 10 is obtained.
  • the reduced coenzyme Q 10 produced in the present invention is a compound represented by the following formula (I).
  • the oxidized coenzyme Q 10 is a compound represented by the following formula (II).
  • formula (II) a compound represented by the following formula (II).
  • the aqueous suspension is prepared comprising first reduced coenzyme Q 10 containing microbial cells or their crushed materials, the production of oxidized coenzyme Q 10 from the aqueous suspension.
  • Aqueous suspensions containing the reduced coenzyme Q 10 containing microbial cells or their crushed materials are preferably of the total amount of oxidized and reduced coenzyme Q 10 (also referred to as a total coenzyme Q 10 weight), reduced It can be produced by culturing a microorganism that can produce type coenzyme Q 10 at a ratio of 50% by mass or more.
  • the actual industrial production culture conditions or above culture conditions, reduced coenzyme Q 10 is 50 wt% or more of the total coenzyme Q 10 content, preferably more than 60 wt% It is recommended to use a microbial cell showing the content. More preferably, the production capacity of reduced coenzyme Q 10 per medium under actual industrial production culture conditions or the above culture conditions is usually 1 ⁇ g / mL or more, preferably 2 ⁇ g / mL or more. It is preferable to use a microorganism having
  • Genus genus Bulleromyces, genus Bullera, genus Brevundimonas, genus Cryptococcus, genus Chionosphaera, genus Candida, genus Cerinosterus (Exo) Genus, Exobasidium genus, Fellomyces genus, Philobabasidiella genus, Filobasidium genus, Geotrichum genus, Graphiola genus, Gluconobacter genus (Ko genus ckovaella, genus Kurtzmanomyces, genus Lalaria, genus Leucosporidium, genus Legionella, genus Methylobacterium, genus Mycoplana, Oosporidium genus, Pseudomonas genus, Psedozyma genus, Paracoccus genus, Petromyces genus, Rhodotorula genus, Rhodosporidium
  • bacteria preferably non-photosynthetic bacteria
  • yeast are preferable.
  • preferable bacteria include the genus Agrobacterium, the genus Gluconobacter and the like. Examples include the genus Schizosaccharomyces and the genus Saitoella.
  • Preferred species include, for example, Agrobacterium tumefacience IFO13263, Agrobacterium radiobacter ATCC4718, Aspergillus kurabatus JCM1718, Acetobacter xylinum 23715 Bacter aganouensis (Aminobacter aganouensis JCM7854), Agromonas oligotrophica JCM1494, Acidophilus multivorum JCM8867, Buleromyces albus (Bulleromyces bus 119 (Brevundimonas diminuta JCM2788), Cryptococcus laurentii IFO0609, Chionosfaela apova Sisialis (Chionosphaera apobasidialis CBS7430), Candida ⁇ ⁇ curvata ATCC10567, Serinosterus luteoalbus (Cerinosterus luteoalbus JCM2923), Exophiala AlcophiliaJCM19 fuzhouensis IFO10374),
  • Culture is usually performed in a medium containing macronutrients and micronutrients suitable for the growth of microorganisms.
  • the nutrients include carbon sources (eg, carbohydrates such as glucose, sucrose, maltose, starch, corn syrup, molasses; alcohols such as methanol and ethanol), nitrogen sources (eg, corn steep liquor, ammonium sulfate, and phosphoric acid).
  • PH in culture can be set as appropriate in view of production efficiency of reduced coenzyme Q 10, for example, 4 or more, preferably 4.5 or more, more preferably 5 or more, for example, 10 or less, preferably 9 or less, more preferably 8.5 or less (hereinafter, this range is referred to as the first pH condition). Furthermore, the pH of the culture solution also affects the oxidation efficiency in the oxidation step of the reduced coenzyme Q 10 described below, which is treated in a low moisture and oxidizing atmosphere.
  • the pH of the aqueous suspension after culture is preferably more than 4, for example, more preferably 4.5 or more, still more preferably 5 or more, and particularly preferably 5
  • the upper limit is preferably 10 or less, more preferably 9 or less, and may be 8.5 or less (hereinafter, this range is referred to as the second pH condition).
  • the pH during the cultivation is adjusted within the first pH condition, and the pH is adjusted using an acid or base, preferably a base, so as to satisfy the second pH condition after the cultivation. It is also a preferred embodiment to carry out the oxidation step below.
  • the culture temperature is usually 15 to 45 ° C., preferably 20 to 37 ° C. Below 15 ° C, the growth rate of microorganisms tends to be low to be acceptable for industrial production, and at a high temperature above 45 ° C, the survival of microorganisms tends to be affected.
  • the culture can be terminated when the desired amount of coenzyme Q 10 is reached.
  • the culture time is not particularly limited, but is usually 20 to 300 hours, preferably 20 to 200 hours, and more preferably 50 to 100 hours.
  • the above culture is usually performed aerobically. Specifically, oxygen is supplied so that oxygen limitation (oxygen deficiency) does not occur during the culture, and the culture is usually performed under aeration, preferably with aeration and stirring.
  • the reduced coenzyme Q 10 relative to the total coenzyme Q 10 weight 50 mass% or more, preferably microbial cells containing at a ratio of more than 60 wt% Obtainable.
  • the production amount of reduced coenzyme Q 10 is, for example, 1 ⁇ g / mL or more, preferably 2 ⁇ g / mL or more, and more preferably 3 ⁇ g / mL or more.
  • the microbial cell containing the reduced coenzyme Q 10 may be pulverized as necessary.
  • the degree of crushing can be appropriately set. For example, crushing may be performed until the microbial cell is broken or fragmented, or crushing to such an extent that the microbial cell does not reach it. Even without crushing, since capable of oxidizing efficiently coenzyme Q 10 in the oxidation step described below, but there is a merit that can simplify the process without degrading the oxidation efficiency, when disrupted, the cells after later water removal when oxidized coenzyme Q 10 extraction, there is a merit that the recovery rate is increased, is beneficial in terms of production efficiency.
  • the disruption of the microbial cells is performed by performing one or several of the following disruption methods in an arbitrary order.
  • the crushing method include physical treatment, chemical treatment, enzymatic treatment, heat treatment, autolysis, osmotic pressure dissolution, protoplast dissolution, and the like.
  • Examples of the physical treatment include use of a high-pressure homogenizer, an ultrasonic homogenizer, a French press, a ball mill, and the like.
  • Examples of the chemical treatment include a treatment using an acid (preferably a strong acid) such as hydrochloric acid and sulfuric acid, and a treatment using a base (preferably a strong base) such as sodium hydroxide or potassium hydroxide.
  • Examples of the enzymatic treatment include a method using lysozyme, zymolyase, glucanase, novozyme, protease, cellulase and the like.
  • Examples of the heat treatment include a treatment at 60 to 100 ° C. for about 30 minutes to 3 hours.
  • Examples of the self-digestion include treatment with a solvent such as ethyl acetate.
  • the form of the microbial cell used for the above-mentioned cell disruption is a culture solution, a culture solution concentrated, a microbial cell collected from the culture solution as a wet cell, a solution obtained by washing these, a wet cell (for example, (Including water, physiological saline, buffer solution, and the like), preferably an aqueous suspension of microbial cells, and from the viewpoint of operability, more preferably, a culture solution, The culture solution is concentrated or washed.
  • the cell concentration in the aqueous suspension of the above microbial cell or the cell disruption product is not particularly limited, and is usually 1 to 25% by weight in terms of dry weight, but is economically 10 to 20% by weight. Is preferred.
  • Step generation of oxidized coenzyme Q 10 Aqueous suspensions were prepared as described above includes a microorganism cells or disrupted product containing reduced coenzyme Q 10. And in the present invention, the end product despite a reduced coenzyme Q 10, instead of directly collecting the reduced coenzyme Q 10 obtained once, oxidized coenzyme Q of more than a certain amount Set to 10 . Once the oxidized coenzyme Q 10 is used, inefficiency caused by the coexistence of a large amount of reduced coenzyme Q 10 can be eliminated, while reducing the coenzyme Q 10 while improving the efficiency of the entire process. Can be manufactured.
  • the water removal product and the oxidizing atmosphere are in contact with each other at the stage when the water removal product is generated, for example, before the start of water removal.
  • the treated product or aqueous suspension may be in contact with an oxidizing atmosphere from a suitable stage such as inside. Moreover, you may continue contact with oxidizing atmosphere after water removal.
  • the contact method with the oxidizing atmosphere is not particularly limited, and a method of exposing the object to be processed or the aqueous suspension to the oxidizing atmosphere may be used, and the oxidizing atmosphere is directed to the object to be processed or the aqueous suspension. Or the like).
  • the water content of the water-removed product obtained after removing water from the aqueous suspension is, for example, preferably 30% by mass or less, more preferably 25% by mass or less, still more preferably 20% by mass or less, 15 mass% or less is especially preferable.
  • a minimum in particular is not restrict
  • the oxidizing atmosphere is not particularly limited as long as it is a gas containing an oxidizing gas such as oxygen or ozone, but air is generally preferable.
  • Example 1 The microbial cell culture solution obtained in Reference Example 1 is dried with a spray dryer in an air atmosphere (inlet temperature: 180 ° C., outlet temperature: 80 ° C.) to obtain dry cells, and then open without a lid. It was stored at room temperature for 12 days in a glass bottle of the system. The moisture content of the cells immediately after drying was 13 wt%. In addition, 10 g of each of the cells immediately after drying and the cells after storage were subjected to batch extraction at 60 ° C. for 60 minutes using ethanol (100 mL). Thereafter, solid-liquid separation by filtration, to collect separated liquid phase as extract was analyzed by HPLC, of coenzyme Q 10, 48% respectively, and the proportion of the oxidized coenzyme Q 10, 97 %Met.
  • Example 4 The microbial cell culture solution obtained in Reference Example 1 is dried with a spray dryer in an air atmosphere (inlet temperature: 180 ° C., outlet temperature: 80 ° C.) to obtain dry cells, and then open without a lid. Stored in a glass bottle of the system for 14 days at room temperature. The moisture content of the dried cells was 13 wt%. Further, 15 g each of the microbial cells immediately after drying and the dried microbial cells after storage were subjected to batch extraction operation at 50 ° C. for 60 minutes using hexane (300 mL). Thereafter, solid-liquid separation by filtration, to collect separated liquid phase as extract was analyzed by HPLC, of coenzyme Q 10, 48% respectively, and the proportion of the oxidized coenzyme Q 10, 89 %Met.
  • Comparative Example 3 Concentrated sulfuric acid was added to the cultured microbial cell culture solution obtained in Reference Example 1 to adjust the pH to 4.
  • This microorganism culture solution is dried with an air atmosphere by a spray dryer (inlet temperature: 180 ° C., outlet temperature: 80 ° C.) to obtain dry cells, and then in an open glass bottle without a lid. And stored at room temperature for 12 days. The moisture content of the dried cells was 13 wt%.
  • 0.1 g each of the microbial cells immediately after drying and the dried microbial cells after storage were subjected to batch extraction for 30 minutes at room temperature using a mixed solvent (50 mL) prepared to be methanol 3: chloroform 1. went. Thereafter, solid-liquid separation by filtration, to collect separated liquid phase as extract was analyzed by HPLC, coenzyme of the enzyme Q 10, oxidized coenzyme, respectively 42% proportion of the enzyme Q 10, 49 %Met.
  • Comparative Example 4 70 parts by volume of hexane was mixed with 30 parts by volume of the microbial cell disruption solution prepared in the same manner as in Comparative Example 2, and batch extraction was performed at 45 ° C. for 60 minutes. Thereafter, when allowed to stand, rapid oil-water separation was confirmed, and the volume ratio of the extraction residue to the total liquid amount was 0.35. The separated hexane phase was collected as an extract and analyzed by HPLC. As a result, the extraction rate of coenzyme Q 10 was 60.2%. The extracted concentrated solution obtained by concentrating the prepared extracted solution 6 times using an evaporator was filtered and then passed through a silica gel normal phase column. However, coenzyme Q 10 was not fractionated satisfactorily.

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Abstract

本発明は、還元型補酵素Ｑ10を効率よく、しかも安全で且つ簡便に製造することができる新規な製造方法を提供する。　本発明に係る還元型補酵素Ｑ10の製造方法は、還元型補酵素Ｑ10含有微生物細胞またはその破砕物を含む水性懸濁液から水を除去しつつ、前記水除去物を酸化性雰囲気と接触させ、酸化型補酵素Ｑ10の割合を、酸化型及び還元型補酵素Ｑ10の合計量に対して５０質量％以上にする酸化型補酵素Ｑ10生成工程、及び　前記酸化型補酵素Ｑ10生成工程で得られた酸化型補酵素Ｑ10を微生物細胞外で還元する還元型補酵素Ｑ10再生工程 を含むことを特徴とする。

Description

還元型補酵素Ｑ１０の製造方法
　本発明は、還元型補酵素Ｑ10の新規な製造方法に関する。
　近年では、サプリメントや栄養補助食品として、補酵素Ｑ10が広く一般需要者にも知られるようになった。補酵素Ｑ10とは、キノン構造を有する脂溶性の物質であり、補酵素Ｑ10の「１０」はイソプレン側鎖の繰り返し単位が１０個であることに由来する。この補酵素Ｑ10には酸化型と還元型の２種類が存在するが、安価であることから酸化型が広く普及している。しかしながら、吸収率の高さでは還元型の方が優れているため、還元型の需要も高まっている。
　従来、還元型補酵素Ｑ10を得るにあたっては、還元型補酵素Ｑ10生産性微生物による培養法が一般的であり、例えば、特許文献１には還元型補酵素Ｑ10を７０モル％以上の比率で含有する微生物細胞を得、生産された還元型補酵素Ｑ10を有機溶媒で抽出する方法が開示されている。なおこの特許文献１には、前記還元型補酵素Ｑ10を二酸化マンガン等の酸化剤で酸化し、酸化型補酵素Ｑ10を製造する方法についても開示されている。
国際公開第０３／０５６０２４号パンフレット
　しかし、還元型補酵素Ｑ10を効率よく回収するためには、酸化型補酵素Ｑ10の副生を抑制するための特別な工夫が必要となる。加えて、特許文献１の酸化型補酵素Ｑ10の製造方法では、二酸化マンガン等の酸化剤で酸化しているところ、酸化反応による不純物が副生し、その除去が必要になっていた。また安全の面からも酸化剤の使用を避けることが望まれる。
　この様な状況下、本発明は、還元型補酵素Ｑ10を効率よく、しかも安全で且つ簡便に製造することができる新規な製造方法の提供を課題として掲げた。
　本発明者らは、前記課題を解決するために鋭意研究を重ねた結果、還元型補酵素Ｑ10含有微生物細胞またはその破砕物を含む水性懸濁液から直接還元型補酵素Ｑ10を回収するのではなく、一旦、酸化型補酵素Ｑ10として回収した後にこれを還元して還元型補酵素Ｑ10を取得すれば、補酵素Ｑ10そのものの回収効率が向上すること、そして還元型補酵素Ｑ10の酸化にあたっては、前記水性懸濁液から水を除去しつつ、前記水除去物を酸化性雰囲気と接触させることで、酸化剤を用いなくても極めて安定且つ簡便に補酵素Ｑ10を酸化できること、これにより一旦酸化型補酵素Ｑ10を経ているにも拘わらず、全体として極めて優れた効率で還元型補酵素Ｑ10を製造できること、を見出し、本発明を完成した。
　すなわち、本発明に係る還元型補酵素Ｑ10の製造方法は、以下の点に要旨を有する。
［１］還元型補酵素Ｑ10含有微生物細胞またはその破砕物を含む水性懸濁液から水を除去しつつ、前記水除去物を酸化性雰囲気と接触させ、酸化型補酵素Ｑ10の割合を、酸化型及び還元型補酵素Ｑ10の合計量に対して５０質量％以上にする酸化型補酵素Ｑ10生成工程、及び
　前記酸化型補酵素Ｑ10生成工程で得られた酸化型補酵素Ｑ10を微生物細胞外で還元する還元型補酵素Ｑ10再生工程
を含むことを特徴とする還元型補酵素Ｑ10の製造方法。
［２］前記水性懸濁液に含まれる還元型補酵素Ｑ10の割合が、酸化型及び還元型補酵素Ｑ10の合計量に対して５０質量％以上である［１］に記載の還元型補酵素Ｑ10の製造方法。
［３］前記水除去物の最終的な含水率が３０質量％以下である［１］または［２］に記載の還元型補酵素Ｑ10の製造方法。
［４］前記微生物細胞またはその破砕物を含む水性懸濁液のｐＨが４を超える［１］～［３］に記載の還元型補酵素Ｑ10の製造方法。
［５］前記水性懸濁液を酸化性雰囲気下で乾燥することによって水を除去して、または、酸化性雰囲気下で乾燥して水を除去した後さらに酸化性雰囲気下で保存して、酸化型補酵素Ｑ10の割合を、酸化型及び還元型補酵素Ｑ10の合計量に対して５０質量％以上にする［１］～［４］に記載の還元型補酵素Ｑ10の製造方法。
［６］前記水除去時の温度が５０℃以上である［５］に記載の還元型補酵素Ｑ10の製造方法。
［７］前記酸化型補酵素Ｑ10生成工程において、酸化型補酵素Ｑ10の割合を、酸化型及び還元型補酵素Ｑ10の合計量に対して８０質量％以上にする［１］～［６］に記載の還元型補酵素Ｑ10の製造方法。
［８］前記酸化型補酵素Ｑ10生成工程で得られた酸化型補酵素Ｑ10を、微生物細胞またはその破砕物から抽出して分離し、得られた抽出分離物を前記還元型補酵素Ｑ10再生工程で還元する［１］～［７］に記載の還元型補酵素Ｑ10の製造方法。
　本発明では、還元型補酵素Ｑ10含有微生物細胞またはその破砕物を含む水性懸濁液からの水の除去状態で還元型補酵素Ｑ10を酸化性雰囲気と接触させているため、極めて効率よく且つ安全に還元型補酵素Ｑ10を酸化することができる。そして、このように一旦酸化型にした後で還元して還元型補酵素Ｑ10を製造しているため、酸化型と還元型の共存に起因する製造効率の低下を抑制でき、全体として還元型補酵素Ｑ10を効率よく製造することができる。
　本発明は、還元型補酵素Ｑ10含有微生物細胞またはその破砕物を含む水性懸濁液から水を除去しつつ、前記水除去物を酸化性雰囲気と接触させ、酸化型補酵素Ｑ10の割合を、酸化型及び還元型補酵素Ｑ10の合計量に対して５０質量％以上にする酸化型補酵素Ｑ10生成工程、及び
　前記酸化型補酵素Ｑ10生成工程で得られた酸化型補酵素Ｑ10を微生物細胞外で還元する還元型補酵素Ｑ10再生工程
を含むことを特徴とする。
　なお本発明で製造される還元型補酵素Ｑ10は、下記式（Ｉ）で表される化合物である。
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000001
　また酸化型補酵素Ｑ10とは、下記式（ＩＩ）で表される化合物である。以下、本発明について詳述する。
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000002
〔還元型補酵素Ｑ10含有微生物細胞を含む水性懸濁液の調製〕
　本発明では、まず還元型補酵素Ｑ10含有微生物細胞又はその破砕物を含む水性懸濁液を調製し、この水性懸濁液から酸化型補酵素Ｑ10を製造する。前記還元型補酵素Ｑ10含有微生物細胞又はその破砕物を含む水性懸濁液は、好ましくは酸化型及び還元型補酵素Ｑ10の合計量（総補酵素Ｑ10量ともいう）のうち、還元型補酵素Ｑ10を５０質量％以上となる比率で生成しうる微生物を培養することによって製造することができる。本発明においては、実際の補酵素Ｑ10生産条件において還元型補酵素Ｑ10を優先的に生成しうる微生物であればいずれも還元型補酵素Ｑ10含有微生物として採用出来るが、簡便なスクリーニング法として、例えば、試験管（内径２１ｍｍ、全長２００ｍｍ）を用いて、微生物を１０ｍＬの培地［（グルコース２０ｇ、ペプトン５ｇ、酵母エキス３ｇ、マルトエキス３ｇ）／Ｌ、ｐＨ６．０］中で２５℃、７２時間振とう培養（振幅２ｃｍ、３１０往復／分）する方法によって生成物を評価したとき、還元型補酵素Ｑ10を優先的に生成するかどうかで判断することもできる。
　本発明の製造方法においては、実際の工業生産培養条件下、あるいは上記の培養条件下、還元型補酵素Ｑ10が総補酵素Ｑ10量のうち５０質量％以上、好ましくは６０質量％以上の含量を示す微生物細胞を用いるとよい。尚、さらに好ましくは、実際の工業生産培養条件下、あるいは上記の培養条件下、培地当たりの還元型補酵素Ｑ10の生産能力として、通常１μｇ／ｍＬ以上、好ましくは２μｇ／ｍＬ以上の生産能力を有する微生物を用いるのが良い。
　ここで、上記の還元型補酵素Ｑ10含有量、及び、総補酵素Ｑ10量中の還元型補酵素Ｑ10比率は、微生物細胞を物理的に破砕した後、有機溶媒で抽出してＨＰＬＣ分析を行うことにより確認できる。その具体的な方法として、特に限定されないが、例えば、以下の手順により測定される。
１）培養後の微生物含有培養液を必要に応じて濃縮し、当該培養液１０容量部をネジ口試験管（内径１６．５ｍｍ、全長１３０ｍｍ）に移し、ガラスビーズ（４２５～６００ミクロン；ＳＩＧＭＡ社製）１０容量部を加える。
２）窒素雰囲気下、該培養液１０容量部に対してイソプロパノール３容量部及びｎ－ヘキサン１８．５容量部を加える。
３）窒素雰囲気下、３分間激しく振とうすることにより、微生物細胞の破砕及び抽出を行う。
４）得られた疎水性有機溶剤相（ｎ－ヘキサン相）を減圧下にエバポレート（バス温：４０℃）し、ＨＰＬＣにより分析する。
カラム：ＹＭＣ－Ｐａｃｋ４．６×２５０ｍｍ（ＹＭＣ．Ｃｏ．，Ｌｔｄ．製）
移動相：メタノール／ｎ－ヘキサン＝８５／１５
流速　：１ｍＬ／ｍｉｎ
検出　：ＵＶ２７５ｎｍ
　本発明で用いる上記還元型補酵素Ｑ10生産性微生物としては、細菌、酵母、カビのいずれも制限無く使用することができる。上記微生物としては、具体的には、例えば、アグロバクテリウム（Agrobacterium）属、アスペルギルス（Aspergillus）属、アセトバクター（Acetobacter）属、アミノバクター（Aminobacter）属、アグロモナス（Agromonas）属、アシドフィラス（Acidiphilium）属、ブレロミセス（Bulleromyces）属、ブレラ（Bullera）属、ブレブンジモナス（Brevundimonas）属、クリプトコッカス（Cryptococcus）属、キオノスファエラ（Chionosphaera）属、カンジタ（Candida）属、セリノステルス（Cerinosterus）属、エキソフィアラ（Exisophiala）属、エキソバシジウム（Exobasidium）属、フィロミセス（Fellomyces）属、フィロバシジエラ（Filobasidiella）属、フィロバシジウム（Filobasidium）属、ゲオトリカム（Geotrichum）属、グラフィオラ（Graphiola）属、グルコノバクター（Gluconobacter）属、コッコバエラ（Kockovaella）属、クルツマノミセス（Kurtzmanomyces）属、ララリア（Lalaria）属、ロイコスポリジウム（Leucosporidium）属、レギオネラ（Legionella）属、メチロバクテリウム（Methylobacterium）属、ミコプラナ（Mycoplana）属、オースポリジウム（Oosporidium）属、シュードモナス（Pseudomonas）属、シュドジマ（Psedozyma）属、パラコッカス（Paracoccus）属、ペトロミセス（Petromyces）属、ロドトルラ（Rhodotorula）属、ロドスポリジウム（Rhodosporidium）属、リゾモナス（Rhizomonas）属、ロドビウム（Rhodobium）属、ロドプラネス（Rhodoplanes）属、ロドシュードモナス（Rhodopseudomonas）属、ロドバクター（Rhodobacter）属、スポロボロミセス（Sporobolomyces）属、スポリジオボラス（Sporidiobolus）属、サイトエラ（Saitoella）属、シゾサッカロミセス（Schizosaccharomyces）属、スフィンゴモナス（Sphingomonas）属、スポロトリクム（Sporotrichum）属、シンポジオミコプシス（Sympodiomycopsis）属、ステリグマトスポリジウム（Sterigmatosporidium）属、タファリナ（Tapharina）属、トレメラ（Tremella）属、トリコスポロン（Trichosporon）属、チレチアリア（Tilletiaria）属、チレチア（Tilletia）属、トリポスポリウム（Tolyposporium）属、チレチオプシス（Tilletiopsis）属、ウスチラゴ（Ustilago）属、ウデニオミセス（Udeniomyces）属、キサントフィロミセス（Xanthophllomyces）属、キサントバクター（Xanthobacter）属、ペキロマイセス（Paecilomyces）属、アクレモニウム（Acremonium）属、ハイホモナス（Hyhomonus）属、リゾビウム（Rhizobium）属等の微生物を挙げることができる。
　培養の容易さや生産性の観点からは、細菌（好ましくは非光合成細菌）及び酵母が好ましく、例えば、好ましい細菌としてはアグロバクテリウム（Agrobacterium）属、グルコノバクター（Gluconobacter）属等が、好ましい酵母としてはシゾサッカロミセス（Schizosaccharomyces）属、サイトエラ（Saitoella）属等が挙げられる。
　好ましい種としては、例えば、アグロバクテリウム・ツメファシエンス（Agrobacterium tumefacience IFO13263）、アグロバクテリウム・ラジオバクター（Agrobacterium radiobacter ATCC4718）、アスペルギルス・クラバータス（Aspergillus clavatus JCM1718）、アセトバクター・キシリヌム（Acetobacter xylinum IFO15237）、アミノバクター・アガノウエンシス（Aminobacter aganouensis JCM7854）、アグロモナス・オリゴトロフィカ（Agromonas oligotrophica JCM1494）、アシドフィラス・ムルチボルム（Acidiphilium multivorum JCM8867）、ブレロミセス・アルバス（Bulleromyces albus IFO1192）、ブレラ・アルメニカ（Bullera armeniaca IFO10112）、ブレブンジモナス・ジミヌタ（Brevundimonas diminuta JCM2788）、クリプトコッカス・ラウレンティー（Cryptococcus laurentii IFO0609）、キオノスファエラ・アポバシジアリス（Chionosphaera apobasidialis CBS7430）、カンジタ・クルバータ（Candida curvata ATCC10567）、セリノステルス・ルテオアルバス（Cerinosterus luteoalbus JCM2923）、エキソフィアラ・アルカロフィラ（Exisophiala alcalophila JCM12519）、エキソバシジウム・グラシル（Exobasidium gracile IFO7788）、フィロミセス・フゾエンシス（Fellomyces fuzhouensis IFO10374）、フィロバシジエラ・ネオフォルマス（Filobasidiella neoformans CBS132）、フィロバシジウム・カプスロイゲヌム（Filobasidium capsuloigenum CBS1906）、ゲオトリカム・カピタウム（Geotrichum capitatum JCM6258）、グラフィオラ・シリンドリカム（Graphiola cylindrica IFO6426）、グルコノバクター・スボキシダンス（Gluconobacter suboxydans IFO3257）、コッコバエラ・イムペラタエ（Kockovaella imperatae JCM7826）、クルツマノミセス・ネクタイレイ（Kurtzmanomyces nectairei IFO10118）、ララリア・セラシ（Lalaria cerasi CBS275.28）、ロイコスポリジウム・スコティー（Leucosporidium scottii IFO1212）、レギオネラ・アニーサ（Legionella anisa JCM7573）、メチロバクテリウム・エキトルグエンス（Methylobacterium extorguens JCM2802）、ミコプラナ・ラモーサ（Mycoplana ramosa JCM7822）、オースポリジウム・マルガリチフェルム（Oosporidium margaritiferum CBS2531）、シュードモナス・デニトリフィカンス（Pseudomonas denitrificans IAM 12023）、シュードモナス・シルキリエンシス（Pseudomonas shuylkilliensis IAM 1092）、シュドジマ・アフィジス（Psedozyma aphidis CBS517.23）、パラコッカス・デニトリフィカンス（Paracoccus denitrificans JCM6892）、ペトロミセス・アリアセウス（Petromyces alliaceus IFO7538）、ロドトルラ・グルティニス（Rhodotorula glutinis IFO1125）、ロドトルラ・ミヌタ（Rhodotorula minuta IFO0387）、ロドスポリジウム・ジオボバツム（Rhodosporidium diobovatum ATCC1830）、リゾモナス・スベリファシエンス（Rhizomonas suberifaciens IFO15212）、ロドビウム・オリエンツ（Rhodobium orients JCM9337）、ロドプラネス・エレガンス（Rhodoplanes elegans JCM9224）、ロドシュードモナス・パルトリス（Rhodopseudomonas palustris JCM2524）、ロドバクター・カプスレータス（Rhodobacter capsulatus SB1003）、スポロボロミセス・ホルサティカス（Sporobolomyces holsaticus IFO1034）、スポロボロミセス・パラロセウス（Sporobolomyces pararoseus IFO0471）、スポリジオボラス・ジョンソニー（Sporidiobolus johnsonii IFO1840）、サイトエラ・コンプリカタ（Saitoella complicata IFO10748）、シゾサッカロミセス・ポンペ（Schizosaccharomyces pombe IFO0347）、スフィンゴモナス・パラパウシモビリス（Sphingomonas parapaucimobilis IFO15100）、スポトリクム・セルロフィリウム（Sporotrichum cellulophilium ATCC20493）、シンポジオミコプシス・パフィオペジリ（Sympodiomycopsis paphiopedili JCM8318）、ステリグマトスポリジウム・ポリモルファ（Sterigmatosporidium polymorphum IFO10121）、スフィンゴモナス・アドヘシバ（Sphingomonas adhesiva JCM7370）、タファリナ・カエルレスセンス（Tapharina caerulescens CBS351.35）、トレメラ・メセンテリカ（Tremella mesenterica ATCC24438）、トリコスポロン・クタネウム（Trichosporon cutaneum IFO1198）、チレチアリア・アノマラ（Tilletiaria anomala CBS436.72）、チレチア・カリエス（Tilletia caries JCM1761）、トリポスポリウム・ブラタム（Tolyposporium bullatum JCM2006）、チレチオプシス・ワシントネシス（Tilletiopsis washintonesis CBS544）、ウスチラゴ・エスクレンタ（Ustilago esculenta IFO9887）、ウデニオミセス・メガロスポラス（Udeniomyces megalosporus JCM5269）、キサントフィロミセス・デンドロロウス（Xanthophyllomyces dendrorhous IFO10129）、キサントバクター・フラブス（Xanthobacter flavus JCM1204）、ペキロマイセス・リアシヌス（Paecilomyces lilacinus ATCC10114）、アクレモニウム・クリソゲナム（Acremonium chrysogenum ATCC11550）、ハイホモナス・ヒシアナ（Hyphomonas hirschiana ATCC33886）、リゾビウム・メリロッティ（Rhizobium meliloti ATCC9930）等が挙げられる。
　還元型補酵素Ｑ10生産性微生物としては、上記微生物の野生株のみならず、例えば、上記の微生物の還元型補酵素Ｑ10生合成に関与する遺伝子の転写及び翻訳活性、或いは発現蛋白質の酵素活性を改変或いは改良した微生物も好ましく使用することができる。
　本発明に使用しうるより好ましい微生物は、前記培養方法並びに測定方法により評価した場合に、還元型補酵素Ｑ10が酸化型及び還元型補酵素Ｑ10のうち、５０質量％以上、好ましくは６０質量％以上、より好ましくは６５質量％以上、さらに好ましくは７０質量％以上、特に好ましくは８０質量％以上の含量を示す微生物である。
　培養は、通常、微生物の増殖に適した多量栄養素や微量栄養素を含んでなる培地中で行われる。上記栄養素は、例えば、炭素源（例えば、グルコース、シュークロース、マルトース、デンプン、コーンシロップ、糖蜜等の炭水化物；メタノール、エタノール等のアルコール等）、窒素源（例えば、コーンスチープリカー、硫酸アンモニウム、リン酸アンモニウム、水酸化アンモニウム、尿素、ペプトン等）、リン源（例えば、リン酸アンモニウム、リン酸等）、並びに、微量栄養素（例えば、マグネシウム、カリウム、亜鉛、銅、鉄、マンガン、モリブデン、硫酸、塩酸等のミネラル；ビオチン、デスチオビオチン、ビタミンＢ１等のビタミン類；アラニン、ヒスチジン等のアミノ酸；酵母エキスやマルトエキス等のビタミン類を含有する天然原料等）からなるが、これらに制限されるものではなく、一般的に使用されるものを用いることができる。なお、酵母エキス等の天然培地成分中には、リン酸塩等のリン源も含まれる。また、上記の栄養素は、適宜、組み合わせて用いられる。
　培養中のｐＨは、還元型補酵素Ｑ10の産生効率の観点から適宜設定でき、例えば、４以上、好ましくは４．５以上、より好ましくは５以上であり、また例えば、１０以下、好ましくは９以下、より好ましくは８．５以下である（以下、この範囲を第１ｐＨ条件と称す）。さらに培養液のｐＨは、低水分及び酸化性雰囲気下で処理する後述の還元型補酵素Ｑ10の酸化工程での酸化効率にも影響を与える。この酸化効率の観点からすると、培養後の水性懸濁液のｐＨは、例えば、４を超えることが好ましく、より好ましくは４．５以上であり、更に好ましくは５以上であり、特に好ましくは５．５以上であり、上限は例えば、１０以下が好ましく、より好ましくは９以下であり、８．５以下であってもよい（以下、この範囲を第２ｐＨ条件と称す）。なお本発明では、培養時のｐＨを第１ｐＨ条件内で調整し、培養後に第２ｐＨ条件を満足する様に酸や塩基、好ましくは塩基を用いてｐＨを調整して、低水分及び酸化性雰囲気下での酸化工程を実施することも好ましい態様の一つである。
　培養の温度は、通常、１５～４５℃、好ましくは２０～３７℃である。１５℃未満では、工業生産のために許容されるには微生物の増殖速度が低くなる傾向があり、４５℃を超える高温では、微生物の生存に影響が生じる傾向にある。
　工業規模での発酵生産においては、微生物の種類にもよるが、培養中、炭素源（生成したアルコールも含む）の濃度を、補酵素Ｑ10生産能力に実質的に悪影響を及ぼさない濃度に制御するのが好ましい。よって、培養液中の炭素源の濃度が、補酵素Ｑ10生産能力に実質的に悪影響を及ぼさない濃度、つまり、通常２０ｇ／Ｌ以下、好ましくは５ｇ／Ｌ以下、より好ましくは２ｇ／Ｌ以下となるように、培養を制御するのが好ましい。
　培養は、所望の補酵素Ｑ10の生産量に達した時点で終了することができる。培養時間は特に制限されないが、通常、２０～３００時間であり、好ましくは２０～２００時間であり、より好ましくは５０～１００時間である。
　上記の培養は、通常、好気的に行われる。具体的には、培養中に酸素の制限（酸素の欠乏）が生じないように酸素の供給が行われ、通常は通気下、好ましくは通気攪拌下に培養が行われる。
　上記のような微生物、並びに培養条件を用いることにより、還元型補酵素Ｑ10を総補酵素Ｑ10量に対して、５０質量％以上、好ましくは６０質量％以上の比率で含有する微生物細胞を得ることができる。また、還元型補酵素Ｑ10の生産量は、例えば、１μｇ／ｍＬ以上、好ましくは２μｇ／ｍＬ以上、さらに好ましくは３μｇ／ｍＬ以上になる。
　還元型補酵素Ｑ10を含有する微生物細胞は、必要に応じて、粉砕してもよい。破砕の程度は適当に設定でき、例えば、微生物細胞が破れる或いは断片化されるまで破砕してもよく、そこに至らない程度の破砕でもよい。破砕しない場合でも、後述の酸化工程で補酵素Ｑ10を効率よく酸化できる為、酸化効率を落とすことなくプロセスを簡略化できるというメリットが存在するが、破砕すると、後述する水除去後の細胞からの酸化型補酵素Ｑ10抽出時に、回収率が向上するというメリットがあり、生産効率の点で有益である。
　上記微生物細胞の破砕は、以下の１つ又は幾つかの破砕方法を任意の順序で行うことにより行われる。破砕方法としては、例えば、物理的処理、化学的処理、酵素的処理の他、加熱処理、自己消化、浸透圧溶解、原形質溶解等を挙げることができる。
　上記物理的処理としては、例えば、高圧ホモジナイザー、超音波ホモジナイザー、フレンチプレス、ボールミル等の使用を挙げることができる。上記化学的処理としては、例えば、塩酸、硫酸等の酸（好ましくは強酸）を用いる処理、水酸化ナトリウムや水酸化カリウム等の塩基（好ましくは強塩基）を用いる処理を挙げることができる。上記酵素的処理としては、例えば、リゾチーム、ザイモリアーゼ、グルカナーゼ、ノボザイム、プロテアーゼ、セルラーゼ等を用いる方法を挙げることができる。上記加熱処理としては、例えば、６０～１００℃で３０分～３時間程度の処理を挙げることができる。上記自己消化としては、例えば、酢酸エチル等の溶媒による処理を挙げることができる。
　上記の細胞破砕に用いる微生物細胞の形態は、培養液、培養液を濃縮したもの、培養液から微生物細胞を湿菌体として採取したもの、これらを洗浄したもの、湿菌体を溶剤（例えば、水、生理食塩水、緩衝液等も含む）に懸濁したもの等であってよいが、好ましくは微生物細胞の水性懸濁液であり、操作性等の面から、より好ましくは、培養液、培養液を濃縮したものや、これらを洗浄したものである。
　上記の微生物細胞又は該細胞破砕物の水性懸濁液における菌体濃度は、特に制限されず、乾燥重量で通常１～２５重量％であるが、経済的には１０～２０重量％であるのが好ましい。
　〔酸化型補酵素Ｑ10の生成工程〕
　以上の様にして調製した水性懸濁液は、還元型補酵素Ｑ10を含有する微生物細胞又はその破砕物を含んでいる。そして本発明では、最終目的物が還元型補酵素Ｑ10であるにも拘わらず、得られた還元型補酵素Ｑ10をそのまま回収するのではなく、一旦、一定量以上を酸化型補酵素Ｑ10にする。一旦、酸化型補酵素Ｑ10にしておくことで、還元型補酵素Ｑ10が多く共存することに起因する非効率性を排除でき、かえってプロセス全体の効率を高めつつ、還元型補酵素Ｑ10を製造できる。
　そして本発明では、還元型補酵素Ｑ10を酸化するにあたり、前記水性懸濁液から水を除去し、酸化性雰囲気と接触させている。この方法によれば、酸化剤を特段用いなくても、還元型補酵素Ｑ10を簡便かつ安全に酸化することができる。そのため酸化剤の使用に由来する不純物の生成をも抑制でき、不純物除去処理が不要となって、さらに製造効率を高めることができる。
　酸化性雰囲気との接触のタイミングは、一部であっても水除去物が生じた段階で該水除去物と酸化性雰囲気とが接触していれば足り、例えば、水除去開始前、水除去中などの適当な段階から処理物あるいは水性懸濁液が酸化性雰囲気と接触していてもよい。また水除去後に、酸化性雰囲気との接触を継続してもよい。
　酸化性雰囲気との接触手法は特に限定されず、酸化性雰囲気に被処理物や水性懸濁液を暴露する方法でもよく、酸化性雰囲気を被処理物や水性懸濁液に向けて通気（送風など）する方法でもよい。
　水性懸濁液から水を除去した後に得られる水除去物の含水率は、最終的には、例えば、３０質量％以下が好ましく、２５質量％以下がより好ましく、２０質量％以下が更に好ましく、１５質量％以下が特に好ましい。下限は特に制限されず、例えば、１質量％以上であってもよく、５質量％以上であってもよい。含水率を小さくすることで、酸化効率を高めることができる。前記酸化性雰囲気としては、酸素やオゾンなどの酸化性の気体を含む気体であれば特に限定されないが、一般的には空気が好ましい。
　水性懸濁液からの水の除去方法としては、水を気化して除去する方法が好ましく、具体的には種々の乾燥方法が採用できる。また公知の濃縮方法や蒸留方法であっても、水を気化することで所定の範囲に低減できる限り、本発明の水除去方法に含まれる。水除去時（乾燥などによって水を除去する際など）には、処理物を適宜加熱してもよい。水除去時の温度（乾燥温度など）は限定されず、例えば減圧乾燥などは室温やそれ以下の温度でも実施できるが、加熱する場合は、５０℃以上が好ましく、より好ましくは７０℃以上である。水性懸濁液の成分が変質しないよう、水除去時の温度（乾燥温度など）は２００℃以下が好ましく、より好ましくは１９０℃以下である。
　乾燥方法は特に限定されず、減圧乾燥、加熱乾燥、通気乾燥などの公知の乾燥方法を適宜採用でき、好ましい乾燥方法には、噴霧乾燥が含まれる。噴霧乾燥による場合は、前記水性懸濁液を、気体（特に高温の気体。好ましくは高温の空気）中に噴霧して微粒化分散させ、急速に（数秒～数十秒間で）水分を気化させる。噴霧乾燥では水性懸濁液を微粒化しているため、噴霧された微粒子が高温の熱風に晒されても、水分の蒸発により微粒子自体の温度上昇が抑えられ熱履歴を低減できる、また噴霧された微粒子は球状を維持したまま乾燥されるため、乾燥後の菌体と酸化性雰囲気との接触面積を大きくすることができる、といったメリットがある。
　噴霧乾燥としては、水性懸濁液を高圧でノズルから吹出する加圧噴霧、回転円盤による遠心力を利用した遠心噴霧等が挙げられる。噴霧乾燥の場合、加熱温度を前述した範囲内に設定するためには、乾燥機の入口温度を好ましくは１００～２００℃、より好ましくは１５０～２００℃に調整し、出口温度を好ましくは５０～１５０℃、より好ましくは７０～１２０℃に調整するとよい。また噴霧乾燥を行う際には、液体等の分散性を高めるために、適宜、水性懸濁液に分散剤を添加してもよい。
　上述した様に、本発明では、水除去後に、さらに被処理物と酸化性雰囲気との接触を継続してもよい。酸化性雰囲気との接触を継続することで、酸化反応をさらに促進させることができる。そのため、例えば、乾燥直後では酸化型補酵素Ｑ10の生成率が不足していたとしても、酸化性雰囲気との接触を継続することで、酸化型補酵素Ｑ10の割合を高めることができる。
　酸化性雰囲気との接触を継続するには、いわゆる「保存」を行うことが簡便である。「保存」とは、還元型補酵素Ｑ10含有微生物細胞またはその破砕物を含む水性懸濁液を乾燥させて得られる水除去物を、酸化性雰囲気下、一定期間そのままの状態で置いておく操作をいう。なお保存は、密閉容器中で行ってもよいが、酸化性雰囲気の量が不足する場合などは、開放容器中で行うことが好ましい。また保存期間は、酸化型補酵素Ｑ10の割合が、総補酵素Ｑ10量に対して５０質量％以上となる限り特に限定されないが、例えば、１日～３０日が好ましく、５日～２０日がより好ましく、１０日～１８日が更に好ましい。
　保存中に温度は特に限定されないが、酸化反応を促進するため、－３０℃以上が好ましく、より好ましくは－１０℃以上であり、更に好ましくは５℃以上であり、８０℃以下が好ましく、より好ましくは６０℃以下であり、更に好ましくは４０℃以下である。
　酸化型補酵素Ｑ10の生成工程後の酸化型補酵素Ｑ10の割合は、総補酵素Ｑ10量に対して５０質量％以上、好ましくは６０質量％以上、更に好ましくは７０質量％以上、特に好ましくは８０質量％以上であり、より更に好ましくは９０質量％以上であり、上限は特に限定されないが、１００質量％が好ましく、９７質量％以下であってもよい。
〔還元型補酵素Ｑ10再生工程〕
　前記酸化工程で生成する酸化型補酵素Ｑ10を微生物細胞外で還元することで、還元型補酵素Ｑ10を再生する。一旦、酸化型補酵素Ｑ10にした後で還元することで、還元型補酵素Ｑ10を安定して効率よく製造できる。
　（１）抽出工程
　酸化型補酵素Ｑ10は、酸化終了後は、微生物又はその破砕物と共に存在している。そのため本発明では、該酸化型補酵素Ｑ10を還元するに先立って、前記酸化型補酵素Ｑ10生成工程で得られた酸化型補酵素Ｑ10を、微生物細胞またはその破砕物から抽出して分離し、得られた抽出分離物を前記還元型補酵素Ｑ10再生工程で還元するのが好ましい。先に酸化型補酵素Ｑ10を還元してから還元型補酵素Ｑ10を抽出分離する場合には、抽出分離中に還元型補酵素Ｑ10が酸化されて収率が低下する心配があるのに対して、酸化型補酵素Ｑ10の状態で抽出分離してから還元する場合には、収率が低下する心配がなく、効率よく還元型補酵素Ｑ10を製造できる。
　酸化型補酵素Ｑ10を細胞又はその破砕物から抽出するには、炭化水素類、脂肪酸エステル類、エーテル類、アルコール類、脂肪酸類、ケトン類、窒素化合物類（ニトリル類、アミド類を含む）、硫黄化合物類等の有機溶媒が使用できる。
　炭化水素類としては、特に制限されないが、例えば、脂肪族炭化水素、芳香族炭化水素、ハロゲン化炭化水素等を挙げることができる。
　脂肪族炭化水素としては、環状、非環状を問わず、又、飽和、不飽和を問わず、特に制限されないが、一般に、飽和のものが好ましく用いられる。通常、炭素数３～２０、好ましくは炭素数５～１２、より好ましくは炭素数５～８のものが用いられる。具体例としては、例えば、プロパン、ブタン、イソブタン、ペンタン、２－メチルブタン、ヘキサン、２－メチルペンタン、２，２－ジメチルブタン、２，３－ジメチルブタン、ヘプタン、ヘプタン異性体（例えば、２－メチルヘキサン、３－メチルヘキサン、２，３－ジメチルペンタン、２，４－ジメチルペンタン）、オクタン、２，２，３－トリメチルペンタン、イソオクタン、ノナン、２，２，５－トリメチルヘキサン、デカン、ドデカン、２－ペンテン、１－ヘキセン、１－ヘプテン、１－オクテン、１－ノネン、１－デセン、シクロペンタン、メチルシクロペンタン、シクロヘキサン、メチルシクロヘキサン、エチルシクロヘキサン、ｐ－メンタン、シクロヘキセン等を挙げることができる。より好ましくは、ペンタン、２－メチルブタン、ヘキサン、２－メチルペンタン、２，２－ジメチルブタン、２，３－ジメチルブタン、ヘプタン、ヘプタン異性体（例えば、２－メチルヘキサン、３－メチルヘキサン、２，３－ジメチルペンタン、２，４－ジメチルペンタン）、オクタン、２，２，３－トリメチルペンタン、イソオクタン、シクロペンタン、メチルシクロペンタン、シクロヘキサン、メチルシクロヘキサン、エチルシクロヘキサン等である。
　芳香族炭化水素としては、特に制限されないが、通常、炭素数６～２０、好ましくは炭素数６～１２、より好ましくは炭素数７～１０のものが用いられる。具体例としては、例えば、ベンゼン、トルエン、キシレン、ｏ－キシレン、ｍ－キシレン、ｐ－キシレン、エチルベンゼン、クメン、メシチレン、テトラリン、ブチルベンゼン、ｐ－シメン、シクロヘキシルベンゼン、ジエチルベンゼン、ペンチルベンゼン、ジペンチルベンゼン、ドデシルベンゼン、スチレン等を挙げることができる。好ましくは、トルエン、キシレン、ｏ－キシレン、ｍ－キシレン、ｐ－キシレン、クメン、テトラリン等であり、最も好ましくは、クメンである。
　ハロゲン化炭化水素としては、環状、非環状を問わず、又、飽和、不飽和を問わず、特に制限されないが、一般に、非環状のものが好ましく用いられる。より好ましくは塩素化炭化水素、フッ素化炭化水素であり、さらに好ましくは塩素化炭化水素である。また、炭素数１～６、好ましくは炭素数１～４、より好ましくは炭素数１～２のものが好適に用いられる。具体例としては、例えば、ジクロロメタン、クロロホルム、四塩化炭素、１，１－ジクロロエタン、１，２－ジクロロエタン、１，１，１－トリクロロエタン、１，１，２－トリクロロエタン、１，１，１，２－テトラクロロエタン、１，１，２，２－テトラクロロエタン、ペンタクロロエタン、ヘキサクロロエタン、１，１－ジクロロエチレン、１，２－ジクロロエチレン、トリクロロエチレン、テトラクロロエチレン、１，２－ジクロロプロパン、１，２，３－トリクロロプロパン、クロロベンゼン，１，１，１，２－テトラフルオロエタン等を挙げることができる。好ましくは、ジクロロメタン、クロロホルム、１，２－ジクロロエチレン、トリクロロエチレン、クロロベンゼン、１，１，１，２－テトラフルオロエタン等であり、最も好ましくはクロロホルムである。
　脂肪酸エステル類としては、特に制限されないが、例えば、プロピオン酸エステル、酢酸エステル、ギ酸エステル等を挙げることができ、好ましくは酢酸エステルである。エステル基としては、特に制限されないが、通常、炭素数１～８のアルキルエステル、炭素数７～１２のアラルキルエステルが、好ましくは炭素数１～４のアルキルエステルが用いられる。
　プロピオン酸エステルの具体例としては、例えば、プロピオン酸メチル、プロピオン酸エチル、プロピオン酸ブチル、プロピオン酸イソペンチル等を挙げることができる。好ましくはプロピオン酸エチル等である。
　酢酸エステルの具体例としては、例えば、酢酸メチル、酢酸エチル、酢酸プロピル、酢酸イソプロピル、酢酸ブチル、酢酸イソブチル、酢酸ｓｅｃ－ブチル、酢酸ペンチル、酢酸イソペンチル、酢酸ｓｅｃ－ヘキシル、酢酸シクロヘキシル、酢酸ベンジル等を挙げることができる。好ましくは、酢酸メチル、酢酸エチル、酢酸プロピル、酢酸イソプロピル、酢酸ブチル、酢酸イソブチル等であり、最も好ましくは、酢酸エチルである。
　ギ酸エステルの具体例としては、例えば、ギ酸メチル、ギ酸エチル、ギ酸プロピル、ギ酸イソプロピル、ギ酸ブチル、ギ酸イソブチル、ギ酸ｓｅｃ－ブチル、ギ酸ペンチル等を挙げることができる。好ましくは、ギ酸メチル、ギ酸エチル、ギ酸プロピル、ギ酸ブチル、ギ酸イソブチル、ギ酸ペンチル等である。最も好ましくは、ギ酸エチルである。
　エーテル類としては、環状、非環状を問わず、又、飽和、不飽和を問わず、特に制限されないが、一般に、飽和のものが好ましく用いられる。通常、炭素数３～２０、好ましくは炭素数４～１２、より好ましくは炭素数４～８のものが用いられる。具体例としては、例えば、ジエチルエーテル、メチルｔｅｒｔ－ブチルエーテル、ジプロピルエーテル、ジイソプロピルエーテル、ジブチルエーテル、ジヘキシルエーテル、エチルビニルエーテル、ブチルビニルエーテル、アニソール、フェネトール、ブテルフェニルエーテル、メトキシトルエン、ジオキサン、フラン、２－メチルフラン、テトラヒドロフラン、テトラヒドロピラン、エチレングリコールジメチルエーテル、エチレングリコールジエチルエーテル、エチレングリコールジブチルエーテル、エチレングリコールモノメチルエーテル、エチレングリコールモノエチルエーテル、エチレングリコールモノブチルエーテル等を挙げることができる。好ましくは、ジエチルエーテル、メチルｔｅｒｔ－ブチルエーテル、アニソール、ジオキサン、テトラヒドロフラン、エチレングリコールモノメチルエーテル、エチレングリコールモノエチルエーテル等である。さらに好ましくは、ジエチルエーテル、メチルｔｅｒｔ－ブチルエーテル、アニソール等である。
　アルコール類としては、環状、非環状を問わず、又、飽和、不飽和を問わず、特に制限されないが、一般に、飽和のものが好ましく用いられる。通常、炭素数１～２０、好ましくは炭素数１～１２、より好ましくは炭素数１～６である。なかでも、炭素数１～５の１価アルコール、炭素数２～５の２価アルコール、炭素数３の３価アルコールが好ましい。これらアルコール類の具体例としては、例えば、メタノール、エタノール、１－プロパノール、２－プロパノール、１－ブタノール、２－ブタノール、イソブチルアルコール、ｔｅｒｔ－ブチルアルコール、１－ペンタノール、２－ペンタノール、３－ペンタノール、２－メチル－１－ブタノール、イソペンチルアルコール、ｔｅｒｔ－ペンチルアルコール、３－メチル－２－ブタノール、ネオペンチルアルコール、１－ヘキサノール、２－メチル－１－ペンタノール、４－メチル－２－ペンタノール、２－エチル－１－ブタノール、１－ヘプタノール、２－ヘプタノール、３－ヘプタノール、１－オクタノール、２－オクタノール、２－エチル－１－ヘキサノール、１－ノナノール、１－デカノール、１－ウンデカノール、１－ドデカノール、アリルアルコール、プロパルギルアルコール、ベンジルアルコール、シクロヘキサノール、１－メチルシクロヘキサノール、２－メチルシクロヘキサノール、３－メチルシクロヘキサノール、４－メチルシクロヘキサノール等の１価アルコール；１，２－エタンジオール、１，２－プロパンジオール、１，３－プロパンジオール、１，２－ブタンジオール、１，３－ブタンジオール、１，４－ブタンジオール、２，３－ブタンジオール、１，５－ペンタンジオール等の２価アルコール；グリセリン等の３価アルコールを挙げることができる。
　１価アルコールとしては、好ましくは、メタノール、エタノール、１－プロパノール、２－プロパノール、１－ブタノール、２－ブタノール、イソブチルアルコール、ｔｅｒｔ－ブチルアルコール、１－ペンタノール、２－ペンタノール、３－ペンタノール、２－メチル－１－ブタノール、イソペンチルアルコール、ｔｅｒｔ－ペンチルアルコール、３－メチル－２－ブタノール、ネオペンチルアルコール等である。最も好ましくは、メタノール、エタノールである。
　２価アルコールとしては、１，２－エタンジオール、１，２－プロパンジオール、１，３－プロパンジオール等が好ましく、１，２－エタンジオールが最も好ましい。３価アルコールとしては、グリセリンが好ましい。
　脂肪酸類としては、例えば、ギ酸、酢酸、プロピオン酸等を挙げることができる。好ましくは、ギ酸、酢酸であり、最も好ましくは酢酸である。
　ケトン類としては、特に制限されず、炭素数３～６のものが好適に用いられる。具体例としては、例えば、アセトン、メチルエチルケトン、メチルブチルケトン、メチルイソブチルケトン等を挙げることができる。好ましくは、アセトン、メチルエチルケトンである。
　ニトリル類としては、環状、非環状を問わず、又、飽和、不飽和を問わず、特に制限されないが、一般に飽和のものが好ましく用いられる。通常、炭素数２～２０、好ましくは炭素数２～１２、より好ましくは炭素数２～８のものが用いられる。
　具体例としては、例えば、アセトニトリル、プロピオニトリル、マロノニトリル、ブチロニトリル、イソブチロニトリル、スクシノニトリル、バレロニトリル、グルタロニトリル、ヘキサンニトリル、ヘプチルシアニド、オクチルシアニド、ウンデカンニトリル、ドデカンニトリル、トリデカンニトリル、ペンタデカンニトリル、ステアロニトリル、クロロナセトニトリル、ブロモアセトニトリル、クロロプロピオニトリル、ブロモプロピオニトリル、メトキシアセトニトリル、シアノ酢酸メチル、シアノ酢酸エチル、トルニトリル、ベンゾニトリル、クロロベンゾニトリル、ブロモベンゾニトリル、シアノ安息香酸、ニトロベンゾニトリル、アニソニトリル、フタロニトリル、ブロモトルニトリル、メチルシアノベンゾエート、メトキシベンゾニトリル、アセチルベンゾニトリル、ナフトニトリル、ビフェニルカルボニトリル、フェニルプロピオニトリル、フェニルブチロニトリル、メチルフェニルアセトニトリル、ジフェニルアセトニトリル、ナフチルアセトニトリル、ニトロフェニルアセトニトリル、クロロベンジルシアニド、シクロプロパンカルボニトリル、シクロヘキサンカルボニトリル、シクロヘプタンカルボニトリル、フェニルシクロヘキサンカルボニトリル、トリルシクロヘキサンカルボニトリル等を挙げることができる。好ましくはアセトニトリル、プロピオニトリル、ブチロニトリル、イソブチロニトリルである。
　ニトリル類を除く窒素化合物類としては、例えば、ホルムアミド、Ｎ－メチルホルムアミド、Ｎ，Ｎ－ジメチルホルムアミド、Ｎ，Ｎ－ジメチルアセトアミド、Ｎ－メチルピロリドン等のアミド類やニトロメタン、トリエチルアミン、ピリジン等を挙げることができる。
　硫黄化合物類としては、例えば、ジメチルスルホキシド、スルホラン等を挙げることができる。
　上記有機溶剤の中でも、沸点、粘性等の性質（例えば、溶解度を高めるための適度な加温ができ、且つ、湿体からの溶剤の乾燥除去や晶析濾液等からの溶剤回収の行いやすい沸点（１気圧下、約３０～１５０℃）、室温での取り扱い時及び室温以下に冷却した時も固化しにくい融点（約０℃以上、好ましくは約１０℃以上、より好ましくは約２０℃以上）を持ち、粘性が低い（２０℃において約１０ｃｐ以下等））を考慮して選定するのが好ましい。
　上記有機溶剤のうち、好ましい有機溶剤としては、脂肪族炭化水素、ハロゲン化炭化水素、アルコール類、ケトン類、ニトリル類が挙げられ、中でも、ヘキサン、メタノール、エタノール、１－プロパノール、２－プロパノール、アセトン、アセトニトリル等が好ましい。なお前述した各溶媒は、単独で用いても混合して用いてもよい。
　抽出時の温度は、特に制限されないが、通常０～６０℃、好ましくは２０～５０℃の範囲である。
　抽出方法としては、回分抽出、連続抽出（好ましくは、向流多段抽出）のどちらの方法でも行うことが可能である。回分抽出における撹拌時間は、特に制限されないが、通常５分以上であり、連続抽出における平均滞留時間は、特に制限されないが、通常１０分以上である。
　抽出後、抽出液を微生物やその破砕物から分離する方法も特に限定されず、濾過、遠心分離等の公知の固液分離方法が採用できる。
　（２）精製工程
　抽出などによって細胞から分離された酸化型補酵素Ｑ10は、そのまま還元してもよく、精製してから還元してもよい。精製してから還元することで、還元後の精製負荷を低減することができ、また還元後の精製中に酸化型補酵素Ｑ10が生じて還元体の収率が低下することも防止できるので好ましい。先に酸化型補酵素Ｑ10を精製してから還元すると、精製段階で補酵素Ｑ10における酸化型比率が高い為、還元型と酸化型の両方が混在する場合に比べて簡便且つ効率よく、酸化型補酵素Ｑ10を精製できる。
　精製方法としては特に限定されず、カラムクロマトグラフィー、晶析等の公知の精製方法が採用でき、また両者を組み合わせることもできる。好ましくはカラムクロマトグラフィーか、カラムクロマトグラフィーと他の精製法との組み合わせである。また精製に先だって、抽出液を濃縮してもよい。
　（３）還元工程
　酸化型補酵素Ｑ10生成工程で得られた酸化型補酵素Ｑ10は、以上の様な前処理を必要に応じて実施した後、還元工程で処理することで還元型補酵素Ｑ10とすることができる。この還元工程では、還元剤を用いて酸化型補酵素Ｑ10を還元する。還元剤としては、Ｌ－アスコルビン酸、Ｄ－arabo-アスコルビン酸、Ｌ－アスコルビルパルミテート、Ｌ－アスコルビルステアレート等のアスコルビン酸類、水素化ホウ素ナトリウム、ハイドロサルファイトナトリウム（次亜硫酸ナトリウム）、レチナール、β－カロチン、トコトリエノール、ＮＡＤＨ、シアノコバラミン、没食子酸オクチル、没食子酸ドデシル、セサモール、チアミン塩酸塩等が挙げられ、好ましくはハイドロサルファイトナトリウム（次亜硫酸ナトリウム）、水素化ホウ素ナトリウム、アスコルビン酸類等である。なお前記還元剤を含む天然物、天然抽出物、天然色素などを還元剤として用いてもよく、こうした天然物にはローヤルゼリー、香酢等が含まれる。天然抽出物には、アセロラ抽出物、松皮抽出物、黄杞葉抽出物、ドクダミ抽出物、酵素処理ルチンが含まれる。天然色素には、カカオ色素、クチナシ色素、ブドウ果皮色素、紅麹色素等が含まれる。
　還元剤は、酸化型補酵素Ｑ10に対し、１～５０ｍｏｌ％、より好ましくは１０～３０ｍｏｌ％、更に好ましくは１５～２５ｍｏｌ％の比率で添加することが好ましい。
　還元反応における温度は、反応を促進する観点から４０～１２０℃が好ましく、より好ましくは５０～１１０℃であり、更に好ましくは６０～１００℃である。また反応時間は特に限定されないが、１～５０時間が好ましく、より好ましくは１０～４０時間であり、更に好ましくは１５～２５時間である。
　還元工程では、前記還元剤と酸化型補酵素Ｑ10とを反応溶媒中で攪拌することが多い。反応溶媒としては、酸化・還元反応に悪影響を及ぼさない限り特に限定されず、上述した抽出用有機溶媒と同様の範囲から選択してもよく、水を用いてもよく、有機溶媒と水との混合溶媒であってもよい。また反応溶媒を使用せず、酸化型補酵素Ｑ10を含む補酵素Ｑ10を加温条件下油状物として直接還元剤と反応させてもよい。前記有機溶媒としては限定されず、例えば、アルコール類、ケトン類、ニトリル類、エーテル類などを挙げることができ、好ましくは、エタノールなどのアルコール類である。還元反応における溶媒としてアルコールなどを用いた場合、得られた還元型補酵素Ｑ10を引き続き晶析等により精製し、結晶として回収できる。
　還元工程で得られた還元型補酵素Ｑ10は、さらに、濃縮、晶析、カラムクロマトグラフィー等の適当な方法で精製してもよい。好ましい精製方法は、濃縮、晶析等である。これらの方法によれば、還元型補酵素Ｑ10を酸化させることなく、高純度の還元型補酵素Ｑ10を固体（特に結晶）として回収できる。
　本発明によれば、固体（好ましくは結晶）中の還元型補酵素Ｑ10の含有率は極めて高く、例えば、９８質量％以上、より好ましくは９９質量％以上を達成できる。
　本願は、２０１５年６月２３日に出願された日本国特許出願第２０１５－１２５９６５号に基づく優先権の利益を主張するものである。２０１５年６月２３日に出願された日本国特許出願第２０１５－１２５９６５号の明細書の全内容が、本願に参考のため援用される。
　以下、実施例を挙げて本発明をより具体的に説明するが、本発明はもとより下記実施例によって制限を受けるものではなく、前・後記の趣旨に適合し得る範囲で適当に変更を加えて実施することも勿論可能であり、それらはいずれも本発明の技術的範囲に包含される。
〔ＨＰＬＣ分析条件〕
　カラム：ＹＭＣ－Ｐａｃｋ４．６×２５０ｍｍ（ＹＭＣ．Ｃｏ．，Ｌｔｄ．製）
　移動相：メタノール／ｎ－ヘキサン＝８５／１５
　流速：１ｍＬ／分
　検出：ＵＶ２７５ｎｍ
　参考例１
　補酵素Ｑ10を生産するサイトエラ・コンプリカタ（Saitoella complicata）ＩＦＯ１０７４８株を、１０Ｌの培地（ペプトン５ｇ／Ｌ、酵母エキス３ｇ／Ｌ、マルトエキス３ｇ／Ｌ、グルコース２０ｇ／Ｌ、ｐＨ６．０）を用いて、好気的に２５℃で７２時間培養した。得られた微生物細胞培養液のｐＨは６であった。
　実施例１
　参考例１で得られた微生物細胞培養液を、空気雰囲気下、スプレードライヤーにより乾燥させて（入口温度：１８０℃、出口温度：８０℃）、乾燥菌体を得、次いで蓋をしていない開放系のガラス製ボトル中で、１２日間、室温で保存した。乾燥直後の菌体の含水率は１３ｗｔ％であった。また乾燥直後の菌体、及び保存後の乾燥菌体をそれぞれ１０ｇずつ、エタノール（１００ｍＬ）を用いて、６０℃で６０分間の回分抽出操作を行った。その後、ろ過により固液分離を行い、分離した液相を抽出液として採取し、ＨＰＬＣによる分析を行ったところ、補酵素Ｑ10のうち、酸化型補酵素Ｑ10の割合はそれぞれ４８％、９７％であった。
　実施例２
　参考例１で得られた微生物細胞培養液を、空気雰囲気下、スプレードライヤーにより乾燥させて（入口温度：１８０℃、出口温度：８０℃）、乾燥菌体を得、次いで蓋をしていない開放系のガラス製ボトル中で、１２日間室温で保存した。乾燥菌体の含水率は１３ｗｔ％であった。また乾燥直後の菌体、及び保存後の乾燥菌体をそれぞれ０．１ｇずつ、メタノール３：クロロホルム１となるように調製した混合溶媒（５０ｍＬ）を用いて、室温で３０分間の回分抽出操作を行った。その後、ろ過により固液分離を行い、分離した液相を抽出液として採取し、ＨＰＬＣによる分析を行ったところ、補酵素Ｑ10のうち、酸化型補酵素Ｑ10の割合はそれぞれ４８％、９１％であった。
　実施例３
　参考例１で得られた培養後の微生物細胞培養液に、４０％（ｗ／ｗ）の水酸化ナトリウム水溶液を添加してｐＨを８に調整した。この微生物培養液を、空気雰囲気下、スプレードライヤーにより乾燥させて（入口温度：１８０℃、出口温度：８０℃）、乾燥菌体を得、次いで蓋をしていない開放系のガラス製ボトル中で、１２日間室温で保存した。乾燥菌体の含水率は１３ｗｔ％であった。また乾燥直後の菌体、及び保存後の乾燥菌体をそれぞれ０．１ｇずつ、メタノール３：クロロホルム１となるように調製した混合溶媒（５０ｍＬ）を用いて、室温で３０分間の回分抽出操作を行った。その後、ろ過により固液分離を行い、分離した液相を抽出液として採取し、ＨＰＬＣによる分析を行ったところ、補酵素Ｑ10のうち、酸化型補酵素Ｑ10の割合はそれぞれ６２％、９１％であった。
　実施例４
　参考例１で得られた微生物細胞培養液を、空気雰囲気下、スプレードライヤーにより乾燥させて（入口温度：１８０℃、出口温度：８０℃）、乾燥菌体を得、次いで蓋をしていない開放系のガラス製ボトル中で、１４日間室温で保存した。乾燥菌体の含水率は１３ｗｔ％であった。また乾燥直後の菌体、及び保存後の乾燥菌体をそれぞれ１５ｇずつ、ヘキサン（３００ｍＬ）を用いて、５０℃で６０分間の回分抽出操作を行った。その後、ろ過により固液分離を行い、分離した液相を抽出液として採取し、ＨＰＬＣによる分析を行ったところ、補酵素Ｑ10のうち、酸化型補酵素Ｑ10の割合はそれぞれ４８％、８９％であった。
　比較例１
　参考例１で得られた微生物細胞培養液を１ｍＬ、メタノール３：クロロホルム１となるように調製した混合溶媒（５０ｍＬ）を用いて、室温で３０分間の回分抽出操作を行った。その後、ろ過により固液分離を行い、分離した液相を抽出液として採取し、ＨＰＬＣによる分析を行ったところ、補酵素Ｑ10のうち、酸化型補酵素Ｑ10の割合は１０％であった。
　比較例２
　参考例１の培養により得られた微生物菌体を、圧力式ホモジナイザー（ラニー社製）により破砕圧力８０ＭＰａで２回破砕し、補酵素Ｑ10を含有する微生物細胞破砕液を調製した。得られた微生物細胞破砕液１ｍＬを、メタノール３：クロロホルム１となるように調製した混合溶媒（５０ｍＬ）を用いて、室温で３０分間の回分抽出操作を行った。その後、ろ過により固液分離を行い、分離した液相を抽出液として採取し、ＨＰＬＣによる分析を行ったところ、補酵素Ｑ10のうち、酸化型補酵素Ｑ10の割合は３０％であった。
　比較例３
　参考例１で得られた培養後の微生物細胞培養液に、濃硫酸を添加してｐＨを４に調整した。この微生物培養液を、空気雰囲気下、スプレードライヤーにより乾燥させて（入口温度：１８０℃、出口温度：８０℃）、乾燥菌体を得、次いで蓋をしていない開放系のガラス製ボトル中で、１２日間室温で保存した。乾燥菌体の含水率は１３ｗｔ％であった。また乾燥直後の菌体、及び保存後の乾燥菌体をそれぞれ０．１ｇずつ、メタノール３：クロロホルム１となるように調製した混合溶媒（５０ｍＬ）を用いて、室温で３０分間の回分抽出操作を行った。その後、ろ過により固液分離を行い、分離した液相を抽出液として採取し、ＨＰＬＣによる分析を行ったところ、補酵素Ｑ10のうち、酸化型補酵素Ｑ10の割合はそれぞれ４２％、４９％であった。
　比較例４
　比較例２と同様に調製した微生物細胞破砕液３０容量部に、ヘキサン７０容量部を混合し、４５℃で６０分間の回分抽出操作を行った。その後、静置させたところ、速やかな油水分離を確認され、全液量に対する抽出残渣の容量比は０．３５であった。分離したヘキサン相を抽出液として採取し、ＨＰＬＣによる分析を行ったところ、補酵素Ｑ10の抽出率は６０．２％であった。調製した抽出液を、エバポレータを使って６倍に濃縮して得た抽出濃縮液をろ過後、シリカゲル順相カラムに通液したが、補酵素Ｑ10は満足に分画されなかった。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000003
　実施例５
　実施例１で得られた抽出液を、エバポレータを使って６倍に濃縮した。得られた抽出濃縮液をろ過した後、シリカゲル順相カラムを用いて酸化型補酵素Ｑ10画分を分取した。補酵素Ｑ10分取液をエタノールに溶解し、アスコルビン酸を補酵素Ｑ10に対して２０ｍｏｌ％添加し、７８℃で２０時間の還元反応を行った。これにより取得された還元型補酵素Ｑ10の結晶における還元型補酵素Ｑ10の含有率は９９．６％であった。

Claims (8)

  1. 　還元型補酵素Ｑ10含有微生物細胞またはその破砕物を含む水性懸濁液から水を除去しつつ、前記水除去物を酸化性雰囲気と接触させ、酸化型補酵素Ｑ10の割合を、酸化型及び還元型補酵素Ｑ10の合計量に対して５０質量％以上にする酸化型補酵素Ｑ10生成工程、及び
    　前記酸化型補酵素Ｑ10生成工程で得られた酸化型補酵素Ｑ10を微生物細胞外で還元する還元型補酵素Ｑ10再生工程
    を含むことを特徴とする還元型補酵素Ｑ10の製造方法。
  2. 　前記水性懸濁液に含まれる還元型補酵素Ｑ10の割合が、酸化型及び還元型補酵素Ｑ10の合計量に対して５０質量％以上である請求項１に記載の還元型補酵素Ｑ10の製造方法。
  3. 　前記水除去物の最終的な含水率が３０質量％以下である請求項１または２に記載の還元型補酵素Ｑ10の製造方法。
  4. 　前記微生物細胞またはその破砕物を含む水性懸濁液のｐＨが４を超える請求項１～３のいずれか１項に記載の還元型補酵素Ｑ10の製造方法。
  5. 　前記水性懸濁液を酸化性雰囲気下で乾燥することによって水を除去して、または、酸化性雰囲気下で乾燥して水を除去した後さらに酸化性雰囲気下で保存して、酸化型補酵素Ｑ10の割合を、酸化型及び還元型補酵素Ｑ10の合計量に対して５０質量％以上にする請求項１～４のいずれか１項に記載の還元型補酵素Ｑ10の製造方法。
  6. 　前記水除去時の温度が５０℃以上である請求項５に記載の還元型補酵素Ｑ10の製造方法。
  7. 　前記酸化型補酵素Ｑ10生成工程において、酸化型補酵素Ｑ10の割合を、酸化型及び還元型補酵素Ｑ10の合計量に対して８０質量％以上にする請求項１～６のいずれか１項に記載の還元型補酵素Ｑ10の製造方法。
  8. 　前記酸化型補酵素Ｑ10生成工程で得られた酸化型補酵素Ｑ10を、微生物細胞またはその破砕物から抽出して分離し、得られた抽出分離物を前記還元型補酵素Ｑ10再生工程で還元する請求項１～７のいずれか１項に記載の還元型補酵素Ｑ10の製造方法。
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