WO2016178448A1 - Hydrogel particles and composite embolic material - Google Patents
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Definitions
- the invention relates to hydrogel particles and complex embolic materials used in embolization.
- Liver tissue is oxygenated and nourished by two blood vessels.
- One is a vessel called the portal vein that exits the small and large intestines, and the other is the hepatic artery that comes directly from the aorta.
- Normal liver tissue is supplied primarily from the portal vein, while tumor tissue is supplied mainly from the hepatic artery. Therefore, by selecting only the hepatic arteries that supply the tumor and administering the anticancer agent and blocking the blood vessel after the anticancer agent, only the tumor can be selectively necrotic without significantly damaging normal liver tissue.
- Liver cancer chemoembolization is a treatment that finds a hepatic artery that nourishes liver tumors, administers anticancer drugs, and then blocks the blood vessels.
- a thin tube of about 2-3 mm is inserted into the hepatic artery.
- the catheter enters the hepatic artery, the hepatic arterial angiogram is taken by injecting angiography to obtain information about the location, size, and blood supply of the tumor.
- a thin tube about 1 mm thick is used to find a hepatic artery that goes to the liver tumor.
- Typical examples of embolic materials used in embolization liver chemistry may be mentioned lipiodol ® (lipiodol ®) and gelpom ® (gelfoam ®).
- Lipiodol ® is an iodide ethyl ester of fatty acids extracted from poppy seed oil, which is optionally deposited on liver tumors when mixed with anticancer agents.
- Lipiodol ® is a fat-soluble iodine based contrast media, it may serve as the embolic material having embolic effect of microvessels.
- Lipiodol ® can function as an embolic substance, but because it is a fat-soluble iodine-based contrast agent, excessive use of Lipiodol ® can cause side effects such as nausea, vomiting, hives, itching, hypotensive shock, respiratory arrest, cardiac arrest, and convulsions.
- Gelfoam ® promotes blood clot formation in the hepatic artery or blocks blood flow to block the nutrients supplied to the liver tumor.
- Gelpom ® is composed of protein, so does the safety is not excellent, but the selective deposition in the liver tumors did not function as a contrast agent, in the case of using only gelpom ® alone, or artery or vein connected to other organs such as the brain, not the hepatic artery in Side effects can occur in blood clots or block blood flow.
- the present invention aims to provide a complex embolic material and an embolizing hydrogel particle for use in minimizing the side effects of an iodine-based contrast agent and at the same time improving the function of selective thrombus formation or blood flow blocking.
- Hydrogel particles according to one embodiment of the invention, biodegradable polymer of at least one of gelatin (chilatin) and chitosan (chitosan) and at least one C 18 ⁇ C 26 aliphatic hydrocarbon derivative of alkyl amine and alkyl amide.
- the FT stretching CH peak of the methylene (CH 2 ) of C 18 ⁇ C 26 aliphatic hydrocarbons (FT 2) appears in the frequency range of 2850 cm -1 to 3000 cm - 1 FT Have an IR spectrum.
- Hydrogel particles in accordance with one embodiment of the invention is an iodide C 18 ⁇ C 26 average absorption of the fatty acid ester exceeds 50% by weight, based on the amount of the iodide C 18 ⁇ C 26 fatty acid esters.
- Hydrogel particles in accordance with one embodiment of the invention, followed by the addition of a phosphate buffered saline (PBS) centrifuged was then measured after removing the supernatant the iodide C 18 ⁇ C 26 average residual content of the iodide C 18 fatty acid ester More than 25% by weight based on the amount of C 26 fatty acid ester added.
- PBS phosphate buffered saline
- the complex embolic material according to an embodiment of the present invention includes the hydrogel particles and the iodide C 18 to C 26 fatty acid ester.
- the C 18 to C 26 aliphatic hydrocarbon derivative may be a C 18 to C 26 n-alkyl derivative.
- the alkyl amine may be C 18 to C 26 n-alkyl amine.
- the C 18 to C 26 n-alkyl amine may be octadecylamine.
- the alkyl amide may be C 18 to C 26 n-alkyl amide.
- the C 18 to C 26 n-alkyl amide may be an octadecane amide.
- the iodide C 18 ⁇ C 26 fatty acid ester may be ethyl monoiodostearate.
- the iodide C 18 ⁇ C 26 may be an average water absorption of the fatty acid ester it exceeds 70% by weight, based on the amount of the iodide C 18 ⁇ C 26 fatty acid esters.
- An average value of the average absorption of the iodide C 18 to C 26 fatty acid ester may be greater than 85 wt% to less than 88 wt% based on the amount of the iodide C 18 to C 26 fatty acid ester added.
- the average residual content of the phosphoric acid was added to buffered saline (PBS) centrifugation was separated with the iodide, measured after removal of the supernatants C 18 ⁇ C 26 fatty acid esters are based on the amount of the iodide C 18 ⁇ C 26 fatty acid ester And greater than 35% by weight.
- PBS buffered saline
- the added amount of was added to the phosphate-buffered saline (PBS) centrifugation was separated measured after removing the supernatant the iodide C 18 ⁇ C 26 average residual content of the average value of the iodide C 18 ⁇ C 26 fatty acid ester of a fatty acid ester And from greater than 72 weight percent to less than 77 weight percent based on the total weight.
- PBS phosphate-buffered saline
- FIG. 1 is a micrograph of a test sample 1 according to an embodiment of the present invention.
- FIG. 2 is a micrograph of a test sample 2 according to an embodiment of the present invention.
- FIG. 3 is a micrograph of a test sample 3 according to an embodiment of the present invention.
- FIG. 5 is a micrograph of an experimental sample 5 according to an embodiment of the present invention.
- FIG. 6 is a micrograph of a test sample 6 according to an embodiment of the present invention.
- 9 and 10 are experimental compound embolism lipiodol ® residual content comparison graph of the material sample and the comparative composite material sample embolization according to one embodiment of the invention.
- Figure 11 is a graph comparing the amount of test compound lipiodol ® embolic material sample for lipiodol ® content of the comparison compound embolic material sample based on the analysis gas chromatography (GC).
- GC analysis gas chromatography
- GC gas chromatography
- 15 and 16 are graphs of gas chromatography (GC) analysis of Lipiodol ® content of comparative complex embolic samples.
- GC gas chromatography
- GC 17 is a graph of gas chromatography (GC) analysis results of a standard product.
- 18 to 20 are FT-IR spectra of hydrogel particles of a test sample according to an embodiment of the present invention.
- 21 and 22 are FT-IR spectra of hydrogel particles of a comparative sample.
- Hydrogel particles are particles that can be used for embolization and can be swellable by water as one embolic material.
- the hydrogel particles may be sphere-shaped particles having a smooth spherical surface in order to prevent inflammation that may occur when long-term contact with the vessel wall after embolization.
- the size of the hydrogel particles is not particularly limited, but may be determined within a range of several ⁇ m or more to several hundred ⁇ m or less.
- Complex embolic material means an embolic material in which two or more embolic materials are combined or an embolic material in which one embolic material and one contrast agent are combined.
- the complex embolic material includes, of course, a case in which the function of the embolic material and the contrast agent functions in a complex manner, such as when one embolic material has a function of a contrast agent.
- a “biodegradable polymer” is a biomaterial that is replaced with autologous tissue that is slowly degraded and regenerated in the body after transplantation.
- the biodegradable polymer may be made of a natural polymer compound, the natural polymer compound may be, for example, one or more of gelatin and chitosan.
- the gelatin and the chitosan may be used alone as the biodegradable polymer, respectively, or a combination thereof, that is, a combination of the gelatin and the chitosan may be used as the biodegradable polymer.
- C 18 to C 26 aliphatic hydrocarbon derivative is a derivative of aliphatic hydrocarbon having 18 to 26 carbon atoms.
- C 18 to C 26 alkyl amines are amines having alkyl having 18 to 26 carbon atoms.
- C 18 to C 26 alkyl amides are amides having alkyl having 18 to 26 carbon atoms.
- C 18 to C 26 alkyl refers to C 18 to C 26 n-alkyl and C 18 to C 26 iso-alkyl which do not have a branched carbon chain bonded to the main carbon chain, or alkyl having a branched carbon chain bonded to the main carbon chain, such as sec-alkyl and the like.
- “Amine” and “amide” include diamine and diamide, respectively.
- C18 - C26 n-alkyl amines is octadecyl amine.
- An example of a C 18 to C 26 n-alkyl amide is octadecyl amine.
- Iodide C 18 to C 26 fatty acid ester is a compound in which iodine is substituted for a fatty acid ester having an alkyl having from 18 to 26 carbon atoms.
- Iodide C 18 ⁇ C 26 average absorption of the fatty acid ester is an amount of a C 18 ⁇ C 26 fatty acid ester, measured after having added the iodide C 18 ⁇ C 26 fatty acid ester of a predetermined amount of the embolic material and centrifuging the mixture .
- Iodide C 18 ⁇ C 26 average residual content of the fatty acid ester is measured after a mixture of phosphate buffered saline (PBS) with a predetermined amount of the embolic material are the iodide C 18 ⁇ C 26 fatty acid esters absorbed and centrifuging the mixture The remaining content of one C 18 to C 26 fatty acid ester.
- PBS phosphate buffered saline
- Hydrogel particles according to an embodiment of the present invention includes the biodegradable polymer and C 18 ⁇ C 26 aliphatic hydrocarbon derivative.
- the C 18 to C 26 aliphatic hydrocarbon derivative may be, for example, C 18 to C 26 alkyl amine and / or C 18 to C 26 alkyl amide.
- a and / or B means "A, B or A and B.”
- Each of the C 18 to C 26 alkyl amines and the C 18 to C 26 alkyl amides may include a linker bonded to the biodegradable polymer, and the linker may have a chemical structure derived from a crosslinking agent.
- the crosslinking agent may be formaldehyde, glutaraldehyde, genipin, or the like.
- each of C 18 to C 26 alkyl amine and C 18 to C 26 alkyl amide may include a methylene bridge bonded to the biodegradable polymer.
- the methylene bridge may function as a linker.
- the methylene bridge may be derived from the methylene of methylene glycol (HOCH 2 OH) produced by the reaction of the formaldehyde and water, dehydration condensation reaction of the biodegradable polymer, the C 18 ⁇ C 26 aliphatic hydrocarbon derivative and methylene glycol
- HOCH 2 OH methylene glycol
- each of the C 18 to C 26 alkyl amines and the C 18 to C 26 alkyl amides may include the methylene bridge as a linker.
- the methylene bridge may connect the nitrogen atom (N) of the gelatin and the nitrogen atom (N) of the C 18 to C 26 alkyl amine, or the nitrogen atom (N) of the gelatin and the C 18 to C 26
- the nitrogen atom (N) of the alkyl amide may be connected.
- the methylene bridge may connect the nitrogen atom (N) of the chitosan and the nitrogen atom (N) of the C 18 to C 26 alkyl amine, or the nitrogen atom (N) of the chitosan and the C 18 to C
- the nitrogen atom (N) of the 26 alkyl amide may be connected.
- each of C 18 to C 26 alkyl amines and C 18 to C 26 alkyl amides may include a shift base bonded to the biodegradable polymer.
- the seed base may function as a linker.
- each of the C 18 to C 26 alkyl amines and the C 18 to C 26 alkyl amides may include the seed base as a linker. Can be.
- the sipebase may connect a nitrogen atom (N) of one of the gelatin and the chitosan and a nitrogen atom (N) of the C 18 to C 26 alkyl amine, or a nitrogen atom of one of the gelatin and the chitosan.
- N nitrogen atom
- N nitrogen atom of the C 18 ⁇ C 26 alkyl amide
- each of the C 18 to C 26 alkyl amines and the C 18 to C 26 alkyl amides may include a linker represented by the following Formula (1).
- the nitrogen atom (N) of the heterocyclic amine may be a nitrogen atom (N) of one of the gelatin and the chitosan, and the nitrogen atom (N) of the amine next to the carbonyl group is It may be a nitrogen atom (N) of one of the C 18 ⁇ C 26 alkyl amine and the C 18 ⁇ C 26 alkyl amide.
- the C 18 to C 26 aliphatic hydrocarbon derivative may be uniformly mixed with the biodegradable polymer within the range of C 18 to C 26 , and may generate a lot of foam during whipping.
- the mixing was not well performed, and foam was not visually confirmed even during whipping. This will be described in more detail in the experimental example described later.
- Complex embolic material comprises the hydrogel particles and iodide fatty acid ester. It is assumed that the iodide fatty acid ester is bound through hydrophilic interaction with the aliphatic hydrocarbon derivative.
- the complex embolic material according to an embodiment of the present invention is due to the hydrophobic interaction between the carbon chain of the C 18 to C 26 aliphatic hydrocarbon derivative and the carbon chain of the iodide fatty acid ester, and two embolic materials are chemically bonded. It is assumed to be.
- the iodide fatty acid ester may be an iodide fatty acid ester having a carbon chain of C 18 to C 26 n-alkyl.
- the carbon chain of the C 18 to C 26 aliphatic hydrocarbon derivative may include n-alkyl to increase hydrophobic interaction between alkyl.
- the C 18 to C 26 alkyl amine may be C 18 to C 26 n-alkyl amine
- the C 18 to C 26 alkyl amide may be C 18 to C 26 n-alkyl amide.
- hydrogel particles and the composite embolic material according to the embodiment of the present invention have excellent absorption or binding strength to the iodide C 18 to C 26 fatty acid ester, respectively.
- hydrogel gel particles and the composite embolic material according to an embodiment of the present invention will be described in more detail through experimental examples using experimental samples and comparative samples.
- 6% gelatin aqueous solution was prepared by dissolving gelatin in water at 60 ° C.
- Octadecyl amine was dissolved in ethanol to prepare a 2.5% octadecyl amine ethanol solution.
- test sample 1 100 mL of 6% gelatin aqueous solution and 10 mL of 2.5% octadecyl amine ethanol solution were respectively taken and mixed, followed by stirring until uniformly mixed. Thereafter, 11.75 mL of a 3% aqueous solution of formaldehyde was added to the stirred product, and the test sample 1 was prepared by stirring at 2000 rmp for 15 minutes using a foam maker.
- 6% gelatin aqueous solution was prepared by dissolving gelatin in water at 60 ° C.
- Octadecyl amine was dissolved in ethanol to prepare a 5% octadecyl amine ethanol solution.
- Chitosan was dissolved in water at 60 ° C. to prepare 6% gelatin aqueous solution.
- Octadecyl amine was dissolved in ethanol to prepare a 5% octadecyl amine ethanol solution.
- test sample 1 100 mL of 6% gelatin aqueous solution and 10 mL of 5% octadecyl amine ethanol solution were respectively taken and mixed, followed by stirring until uniformly mixed. Thereafter, 11.75 mL of a 3% aqueous solution of formaldehyde was added to the stirred product, and the test sample 1 was prepared by stirring at 2000 rmp for 15 minutes using a foam maker.
- Chitosan and gelatin were mixed at a mass ratio of 3: 7 to prepare a chitosan-gelatin mixture.
- the chitosan-gelatin mixture was dissolved in water at 60 ° C. to prepare a 6% chitosan-gelatin mixture aqueous solution.
- Octadecyl amine was dissolved in ethanol to prepare a 5% octadecyl amine ethanol solution.
- Chitosan and gelatin were mixed at a mass ratio of 7: 3 to prepare a chitosan-gelatin mixture.
- the chitosan-gelatin mixture was dissolved in water at 60 ° C. to prepare a 6% chitosan-gelatin mixture aqueous solution.
- Octadecyl amine was dissolved in ethanol to prepare a 5% octadecyl amine ethanol solution.
- 6% gelatin aqueous solution was prepared by dissolving gelatin in water at 60 ° C.
- Octadecyl amine was dissolved in ethanol to prepare a 5.0% octadecyl amine ethanol solution.
- 6% gelatin aqueous solution was prepared by dissolving gelatin in water at 60 ° C.
- Octadecyl amine was dissolved in ethanol to prepare a 5% hexadecyl amine ethanol solution.
- Chitosan was dissolved in water at 60 ° C. to prepare 6% gelatin aqueous solution.
- Octadecyl amine was dissolved in ethanol to prepare a 5% hexadecyl amine ethanol solution.
- 1 is a micrograph of a test sample 1 according to an embodiment of the present invention.
- 2 is a micrograph of a test sample 2 according to an embodiment of the present invention.
- 3 is a micrograph of a test sample 3 according to an embodiment of the present invention.
- 4 is a photomicrograph of Experimental Sample 4 according to an embodiment of the invention.
- 5 is a micrograph of an experimental sample 5 according to an embodiment of the present invention.
- 6 is a micrograph of a test sample 6 according to an embodiment of the present invention.
- Comparative Samples 1 and 2 are not considered to be homogeneous with gelatin and hexadecyl amine and chitosan and hexadecyl amine, respectively.
- Comparative Samples 1 and 2 were confirmed to be difficult to prepare porous hydrogel particles that can be used as an embolic material.
- a hydrogel particle including a mixture of two or more biodegradable polymers and including a C 18 to C 26 aliphatic hydrocarbon derivative was possible.
- 6% gelatin aqueous solution was prepared by dissolving gelatin in water at 60 ° C.
- Octadecyl amine was dissolved in ethanol to prepare a 0.5% octadecyl amine ethanol solution.
- test sample 7 was prepared by selecting hydrogel particles having a size of 560 ⁇ m or more and 710 ⁇ m or less.
- 6% gelatin aqueous solution was prepared by dissolving gelatin in water at 60 ° C. 11.75 mL of an aqueous 3% formaldehyde solution was added to 100 mL of an aqueous 6% gelatin solution, and stirred for 15 minutes at 2000 rmp using a foam maker.
- the stirring product was naturally dried at room temperature, the natural drying product was crushed finely, and hydrogel particles having a size of 560 ⁇ m or more and 710 ⁇ m or less were selected.
- test sample 7 to 12 Using a test sample 7 to 12, and comparative samples 3 and 4 was compared to absorption of lipiodol ® according to the concentration of octadecylamine.
- Table 7 is a graph comparing experimental samples 7 to 12 of the comparative samples and the hydrogel particles of the hydrogel particles of the third and lipiodol 4 ® absorption.
- Table 2 summarizes Lipiodol ® mass conversion values of FIG. 7 and summarizes it as a percentage of Lipiodol ® addition.
- the hydrogel particles of the test samples 7 to 12 was confirmed that the average absorption amount of Lipiodol ® is greater than 70% by weight based on the amount of Lipiodol ® added.
- the average absorption of Lipiodol ® in Experimental Samples 7-12 was 85.4 wt%, and the average absorption of Lipiodol ® in Experimental Samples 8-12 was 87.8 wt%. From this, it can be seen that the hydrogel particles of the test samples 7 to 12 have an average of the average absorption of Lipiodol ® at least 85 wt% and less than 88 wt%.
- FIG. 8 is a graph comparing Lipiodol® absorption of hydrogel particles of Experimental Sample 13 and hydrogel particles of Comparative Sample 4.
- FIG. Table 3 summarizes Lipiodol ® mass conversion values of FIG. 8 and summarizes it as a percentage of Lipiodol ® addition.
- the hydrogel particles of the test sample 13 was confirmed that the average absorption amount of Lipiodol ® is greater than 70% by weight based on the amount of Lipiodol ® added.
- Figure 9 shows the hydrogel particles and Lipiodol ® of the test samples 7 to 12 Hydrogel particles of samples 3 and 4 and Lipiodol ® were compared with experimental composite embolic samples containing Lipiodol ® residual content comparison graph of comparative complex embolic samples containing.
- Table 4 summarizes Lipiodol ® mass conversion values of FIG. 9 and summarizes it as a percentage of Lipiodol ® addition.
- the experimental hydrogel particles of the sample 7 to 12 were found to be an average residual content of lipiodol ® is more than 50% by weight, based on the amount of lipiodol ®.
- Experimental Samples 7 to 12 show that the content of octadecyl amine is 0.5% by weight relative to the total weight of the hydrogel particles, and the content of octadecyl amine is 0% by weight relative to the total weight of the hydrogel particles. unlike the comparative samples 3 and 4, it can be seen that maintaining a certain level even if the average residual content of lipiodol ® significantly increased after increasing the content of octadecylamine.
- the average of the self-sustained content of Lipiodol ® of the test samples 7-12 was 72.4% by weight, and the average absorption of Lipiodol ® of the test samples 8-12 was 76.3% by weight. From this, it can be seen that the hydrogel particles of the test samples 7 to 12 have an average value of the average residual content of Lipiodol ® at least 72 wt% and less than 77 wt%.
- Lipiodol ® mass was converted in the same manner as in Experiment 4, except that 2.5 mL (3.200 g) of Lipiodol ® (ethyl monoiodostearate) was added to each of Experimental Sample 13 and Comparative Sample 4.
- Figure 10 is a comparison graph of lipiodol ® absorbent hydrogel particles in the experimental sample and the comparative sample 13, the hydrogel particles 4.
- Table 5 summarizes Lipiodol ® mass conversion values of FIG. 10 and summarizes it as a percentage of Lipiodol ® addition.
- the hydrogel particles of Comparative Sample 4 whereas the average residual content of lipiodol ® is less than 20% by weight, based on the amount of lipiodol ®, hydrogels of the experimental samples 13 the particles can be confirmed that the average residual content of lipiodol ® is more than 20% by weight, based on the amount of lipiodol ®.
- hydrogel particles of the test sample 13 was confirmed that the average residual content of lipiodol ® than 35% by weight, based on the amount of lipiodol ®.
- Table 5 provides a comparison of lipiodol ® content of experimental sample embolic materials for lipiodol ® content of the comparison compound embolic material sample.
- test composite sample embolic materials can see this amount of water absorption of 150% of lipiodol ® plenty compared to comparative compound embolic material sample.
- FIGS. 12 to 17 A summary of the GC analysis results of FIGS. 12 to 17 is shown in Table 7 below.
- 12 is a gas chromatography (GC) analysis result graph of an experimental composite embolic material sample including hydrogel particles and Lipiodol ® of Experimental Sample 10.
- FIG. 13 is a graph of gas chromatography (GC) analysis of an experimental composite embolic material sample including hydrogel particles and Lipiodol ® of Experimental Sample 11.
- GC gas chromatography
- FIG. 14 is a gas chromatographic (GC) analysis result graph of an experimental composite embolic material sample including hydrogel particles and Lipiodol ® of Experimental Sample 12.
- FIG. 14 is a gas chromatographic (GC) analysis result graph of an experimental composite embolic material sample including hydrogel particles and Lipiodol ® of Experimental Sample 12.
- FIG. 15 is a graph of gas chromatography (GC) analysis of a comparative composite embolic material sample including hydrogel particles and Lipiodol ® of Comparative Sample 3.
- GC gas chromatography
- FIG. 16 is a graph of gas chromatography (GC) analysis of comparative composite embolic material samples including hydrogel particles and Lipiodol ® of Comparative Sample 4.
- GC gas chromatography
- GC 17 is a graph of gas chromatography (GC) analysis results of a standard product.
- Table 8 below is a mass spectrometry (MS) result table. Referring to Table 8 below, it can be seen that ethyl stearate is detected at around 27.0 minutes, showing a concordance rate of 98%.
- Figure 11 is a comparison of the relative content of gas chromatography lipiodol ® 27.0 minutes based on the peak area units and based on a (GC) analysis of the 12 to 16.
- the chemical structures of the hydrogel particles of the test sample and the chemical structures of the hydrogel particles of the comparative sample were analyzed using the test samples 10 to 12 and the comparative samples 3 and 4.
- Experimental Samples 10-12, Comparative Samples 3 and 4 hydrogel particles were mixed with potassium bromide (Kbr) to produce pellets, and then FT-FT spectrometer (Spectrum GX, Perkin Elmer) -IR spectrum was obtained. Analysis range is 4,000 cm -1 to 400 cm - was one, it was scanned six times repeated with a resolution of 1 cm -1.
- FIG. 18 is an FT-IR spectrum of hydrogel particles of Comparative Sample 10.
- FIG. 19 is an FT-IR spectrum of hydrogel particles of Comparative Sample 11.
- FIG. 21 are FT-IR spectra of the hydrogel particles of Comparative Sample 3.
- FIG. 21 are FT-IR spectra of the hydrogel particles of Comparative Sample 3.
- FIG. 22 is FT-IR spectra of hydrogel particles of Comparative Sample 4.
- the experimental sample of hydrogel particles from 10 to 12 are about 2850 cm -1 to about 3000 cm - in the wave number range of 1, whereas the CH stretching vibration (stretching vibration) peak appears, the comparative sample 3 and hydrogel particles 4 are approximately 2850 cm -1 to about 3000 cm - was no CH stretching vibrations in the wave number range from 1 (stretching vibration) peak.
- the CH stretching vibration peak in the frequency range of about 2850 cm ⁇ 1 to about 3000 cm ⁇ 1 is the CH stretching vibration peak of methylene (CH 2 ) of C 18 to C 26 aliphatic hydrocarbon, FIGS. 18 to 22. It was confirmed that the C 18 ⁇ C 26 aliphatic hydrocarbon is chemically bonded to gelatin.
- CH stretching vibration is about 2920 cm -1 at CH Asymmetrical stretch vibration peaks and CH symmetrical stretch vibration peaks at about 2,853 cm ⁇ 1 are analyzed.
- the number of waves in the FT-IR spectrum can have an error range within the range of ⁇ 8 cm ⁇ 1 .
- Hydrogel gel particles and complex embolic material according to an embodiment of the present invention can minimize the use of iodine-based contrast agent to reduce the side effects of the iodine-based contrast agent, to selectively form blood clots in the blood vessels or to block blood flow As a result, the accuracy of embolization can be increased.
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Abstract
Description
발명은 색전술에 사용되는 수화겔 입자 및 복합 색전물질에 대한 것이다.The invention relates to hydrogel particles and complex embolic materials used in embolization.
간 조직은 두 가지의 혈관에 의해 산소 및 영양을 공급받는다. 하나는 소장 및 대장 등을 돌아나오는 문맥(portal vein)이라는 혈관이며, 다른 하나는 대동맥에서 직접 나오는 간동맥이다. 정상 간 조직은 주로 문맥에서, 종양 조직은 주로 간동맥에서 혈액을 공급받게 된다. 그러므로 종양에 영양을 공급하는 간동맥만을 선택하여 항암제를 투여하고 항암제 투여 후 혈관을 막게 되면 정상 간 조직은 크게 손상시키지 않으면서 종양만을 선택적으로 괴사시킬 수 있다. Liver tissue is oxygenated and nourished by two blood vessels. One is a vessel called the portal vein that exits the small and large intestines, and the other is the hepatic artery that comes directly from the aorta. Normal liver tissue is supplied primarily from the portal vein, while tumor tissue is supplied mainly from the hepatic artery. Therefore, by selecting only the hepatic arteries that supply the tumor and administering the anticancer agent and blocking the blood vessel after the anticancer agent, only the tumor can be selectively necrotic without significantly damaging normal liver tissue.
간암 화학색전술(transarterial chemoembolization)은 간종양에 영양을 공급하는 간동맥을 찾아 항암제를 투여한 다음 혈관을 막아주는 치료법으로서, 간암 화학색전술의 일반적인 시술방법은 다음과 같다.Liver cancer chemoembolization (transarterial chemoembolization) is a treatment that finds a hepatic artery that nourishes liver tumors, administers anticancer drugs, and then blocks the blood vessels.
서혜부(사타구니)에 위치한 대퇴동맥을 통하여 카테터(catheter)라고 하는 약 2 ~ 3 mm 정도의 가는 관을 삽입하여 간동맥으로 접근한다. 카테터가 간동맥에 들어가면 혈관 조영제를 주사하면서 간동맥 조영 사진을 얻어 종양의 위치, 크기 및 혈액 공급 양상 등 치료에 필요한 정보를 얻는다. 치료 방침이 정해지면 약 1 mm 정도 굵기의 가는 관을 이용하여 간종양으로 가는 간동맥을 찾아 항암제와 색전물질을 넣어 시술하게 된다.Through the femoral artery located in the inguinal (groin), a thin tube of about 2-3 mm, called a catheter, is inserted into the hepatic artery. When the catheter enters the hepatic artery, the hepatic arterial angiogram is taken by injecting angiography to obtain information about the location, size, and blood supply of the tumor. Once the treatment policy is determined, a thin tube about 1 mm thick is used to find a hepatic artery that goes to the liver tumor.
간암 화학색전술에 보통 사용되는 색전물질의 대표적인 예로는 리피오돌®(lipiodol®)과 겔폼®(gelfoam®)을 들 수 있다.Average Typical examples of embolic materials used in embolization liver chemistry, may be mentioned lipiodol ® (lipiodol ®) and gelpom ® (gelfoam ®).
리피오돌®은 양귀비 종자유에서 추출한 지방산의 요오드화 에틸 에스테르로서, 항암제와 혼합 주입되면 선택적으로 간종양에 침착된다. 리피오돌®은 지용성 요오드계 조영제이고, 미세혈관의 색전 효과를 가지는 색전물질로서 기능할 수 있다. Lipiodol ® is an iodide ethyl ester of fatty acids extracted from poppy seed oil, which is optionally deposited on liver tumors when mixed with anticancer agents. Lipiodol ® is a fat-soluble iodine based contrast media, it may serve as the embolic material having embolic effect of microvessels.
요오드계 조영제의 과다 사용은 오심, 구토, 두드러기, 가려움증, 저혈압성 쇼크, 호흡정지, 심정지, 경련과 같은 부작용을 일으킬 수 있다. 리피오돌® 은 색전물질로서 기능할 수 있으나, 지용성 요오드계 조영제이므로 리피오돌® 의 과다 사용은 오심, 구토, 두드러기, 가려움증, 저혈압성 쇼크, 호흡정지, 심정지, 경련과 같은 부작용을 일으킬 수 있다.Overuse of iodine-based contrast agents can cause side effects such as nausea, vomiting, hives, itching, hypotensive shock, respiratory arrest, cardiac arrest, and convulsions. Lipiodol ® can function as an embolic substance, but because it is a fat-soluble iodine-based contrast agent, excessive use of Lipiodol ® can cause side effects such as nausea, vomiting, hives, itching, hypotensive shock, respiratory arrest, cardiac arrest, and convulsions.
겔폼®은 간동맥 내에 혈전 형성을 촉진하거나 혈류를 차단하여 간종양에 공급되는 영양분을 차단하며 주성분이 단백질로 구성되어 있어서 안전성이 우수한 색전물질이다. Gelfoam ® promotes blood clot formation in the hepatic artery or blocks blood flow to block the nutrients supplied to the liver tumor.
겔폼®은 단백질로 구성되어 안전성이 우수하지만, 간종양에 선택적으로 침착되지 못하고 조영제로서 기능하지 못하므로, 겔폼® 만을 단독으로 사용하는 경우, 간동맥이 아닌 뇌와 같은 다른 기관에 연결된 동맥 또는 정맥 내에서 혈전을 형성하거나 혈류를 차단하는 부작용이 발생할 수 있다. Gelpom ® is composed of protein, so does the safety is not excellent, but the selective deposition in the liver tumors did not function as a contrast agent, in the case of using only gelpom ® alone, or artery or vein connected to other organs such as the brain, not the hepatic artery in Side effects can occur in blood clots or block blood flow.
또한, 예를 들어, 항암제와 리피오돌® 을 1차 주입한 후 겔폼®을 2차 주입하는 방식으로 간암 화학색전술을 실시하는 경우에도, 겔폼® 만을 단독으로 사용하는 경우와 같이, 간동맥이 아닌 뇌와 같은 다른 기관에 연결된 동맥 또는 정맥 내에서 혈전을 형성하거나 혈류를 차단하는 부작용이 발생할 수 있다.Also, for example, even when subjected to liver chemical embolization of chemotherapy and lipiodol ® primary injection after gelpom ® as a secondary injection which, as in the case of using only gelpom ® alone, or the brain and non-hepatic Side effects can occur that form blood clots or block blood flow in arteries or veins that are connected to other organs, such as.
발명은 요오드계 조영제의 부작용을 최소화하는 동시에 색전물질의 선택적 혈전 형성 내지 혈류 차단 기능을 향상시킨 복합 색전물질 및 이에 사용되는 색전술용 수화겔 입자를 제공하고자 한다. The present invention aims to provide a complex embolic material and an embolizing hydrogel particle for use in minimizing the side effects of an iodine-based contrast agent and at the same time improving the function of selective thrombus formation or blood flow blocking.
발명이 해결하고자 하는 과제는 이상에서 언급한 기술적 과제로 제한되지 않으며, 언급되지 않은 또 다른 기술적 과제들은 아래의 기재로부터 본 기술분야에서 통상의 지식을 가진 자에게 명확하게 이해될 수 있을 것이다.The problem to be solved by the invention is not limited to the above-mentioned technical problem, and other technical problems not mentioned will be clearly understood by those skilled in the art from the following description.
발명의 일 실시예에 따른 수화겔 입자는, 젤라틴(gelatin)과 키토산(chitosan) 중 하나 이상의 생분해성 고분자 및 알킬 아민과 알킬 아마이드 중 하나 이상의 C18 ~ C26 지방족 탄화수소 유도체를 포함한다.Hydrogel particles according to one embodiment of the invention, biodegradable polymer of at least one of gelatin (chilatin) and chitosan (chitosan) and at least one C 18 ~ C 26 aliphatic hydrocarbon derivative of alkyl amine and alkyl amide.
발명의 일 실시예에 따른 수화겔 입자는, C18 ~ C26 지방족 탄화수소의 메틸렌(CH2)의 C-H 신축 진동(stretching vibration) 피크가 2850 cm-1 내지 3000 cm- 1 의 파동수 범위에서 나타나는 FT-IR 스펙트럼을 갖는다.Hydrogel gel particles according to an embodiment of the present invention, the FT stretching CH peak of the methylene (CH 2 ) of C 18 ~ C 26 aliphatic hydrocarbons (FT 2) appears in the frequency range of 2850 cm -1 to 3000 cm - 1 FT Have an IR spectrum.
발명의 일 실시예에 따른 수화겔 입자는, 요오드화 C18 ~ C26 지방산 에스테르의 평균 흡수량이 상기 요오드화 C18 ~ C26 지방산 에스테르의 첨가량을 기준으로 50 중량% 초과이다.Hydrogel particles in accordance with one embodiment of the invention is an iodide C 18 ~ C 26 average absorption of the fatty acid ester exceeds 50% by weight, based on the amount of the iodide C 18 ~ C 26 fatty acid esters.
발명의 일 실시예에 따른 수화겔 입자는 인산완충식염수(PBS)를 첨가한 후 원심분리시킨 후 상층액을 제거한 이후에 측정된 상기 요오드화 C18 ~ C26 지방산 에스테르의 평균 잔존 함량이 상기 요오드화 C18 ~ C26 지방산 에스테르의 첨가량을 기준으로 25 중량% 초과이다.Hydrogel particles in accordance with one embodiment of the invention, followed by the addition of a phosphate buffered saline (PBS) centrifuged was then measured after removing the supernatant the iodide C 18 ~ C 26 average residual content of the iodide C 18 fatty acid ester More than 25% by weight based on the amount of C 26 fatty acid ester added.
발명의 일 실시예에 따른 복합 색전물질은, 상기 수화겔 입자와 요오드화 C18 ~ C26 지방산 에스테르를 포함한다.The complex embolic material according to an embodiment of the present invention includes the hydrogel particles and the iodide C 18 to C 26 fatty acid ester.
상기 C18 ~ C26 지방족 탄화수소 유도체는 C18 ~ C26 n-알킬 유도체일 수 있다. The C 18 to C 26 aliphatic hydrocarbon derivative may be a C 18 to C 26 n-alkyl derivative.
상기 알킬 아민은 C18 ~ C26 n-알킬 아민일 수 있다. 상기 C18 ~ C26 n-알킬 아민은 옥타데실아민일 수 있다. The alkyl amine may be C 18 to C 26 n-alkyl amine. The C 18 to C 26 n-alkyl amine may be octadecylamine.
상기 알킬 아마이드는 C18 ~ C26 n-알킬 아마이드일 수 있다. 상기 C18 ~ C26 n-알킬 아마이드는 옥타데칸 아마이드(octadecane amide)일 수 있다.The alkyl amide may be C 18 to C 26 n-alkyl amide. The C 18 to C 26 n-alkyl amide may be an octadecane amide.
상기 요오드화 C18 ~ C26 지방산 에스테르는 에틸 모노아이오도스테아레이트(ethyl monoiodostearate)일 수 있다.The iodide C 18 ~ C 26 fatty acid ester may be ethyl monoiodostearate.
상기 요오드화 C18 ~ C26 지방산 에스테르의 평균 흡수량이 상기 요오드화 C18 ~ C26 지방산 에스테르의 첨가량을 기준으로 70 중량% 초과일 수 있다.The iodide C 18 ~ C 26 may be an average water absorption of the fatty acid ester it exceeds 70% by weight, based on the amount of the iodide C 18 ~ C 26 fatty acid esters.
상기 요오드화 C18 ~ C26 지방산 에스테르의 평균 흡수량의 평균값이 상기 요오드화 C18 ~ C26 지방산 에스테르의 첨가량을 기준으로 85 중량% 초과 내지 88 중량% 미만일 수 있다. An average value of the average absorption of the iodide C 18 to C 26 fatty acid ester may be greater than 85 wt% to less than 88 wt% based on the amount of the iodide C 18 to C 26 fatty acid ester added.
상기 인산완충식염수(PBS)를 첨가한 후 원심분리시킨 후 상층액을 제거한 이후에 측정된 상기 요오드화 C18 ~ C26 지방산 에스테르의 평균 잔존 함량이 상기 요오드화 C18 ~ C26 지방산 에스테르의 첨가량을 기준으로 35 중량% 초과일 수 있다.The average residual content of the phosphoric acid was added to buffered saline (PBS) centrifugation was separated with the iodide, measured after removal of the supernatants C 18 ~ C 26 fatty acid esters are based on the amount of the iodide C 18 ~ C 26 fatty acid ester And greater than 35% by weight.
상기 인산완충식염수(PBS)를 첨가한 후 원심분리시킨 후 상층액을 제거한 이후에 측정된 상기 요오드화 C18 ~ C26 지방산 에스테르의 평균 잔존 함량의 평균값이 상기 요오드화 C18 ~ C26 지방산 에스테르의 첨가량을 기준으로 72 중량% 초과 내지 77 중량% 미만일 수 있다.The added amount of was added to the phosphate-buffered saline (PBS) centrifugation was separated measured after removing the supernatant the iodide C 18 ~ C 26 average residual content of the average value of the iodide C 18 ~ C 26 fatty acid ester of a fatty acid ester And from greater than 72 weight percent to less than 77 weight percent based on the total weight.
기타 실시예들의 구체적인 사항은 상세한 설명 및 도면들에 포함되어 있다.Specific details of other embodiments are included in the detailed description and the drawings.
도 1은 발명의 일 실시예에 따른 실험시료 1의 현미경 사진이다.1 is a micrograph of a
도 2는 발명의 일 실시예에 따른 실험시료 2의 현미경 사진이다.2 is a micrograph of a
도 3은 발명의 일 실시예에 따른 실험시료 3의 현미경 사진이다. 3 is a micrograph of a
도 4는 발명의 일 실시예에 따른 실험시료 4의 현미경 사진이다.4 is a photomicrograph of
도 5는 발명의 일 실시예에 따른 실험시료 5의 현미경 사진이다.5 is a micrograph of an experimental sample 5 according to an embodiment of the present invention.
도 6은 발명의 일 실시예에 따른 실험시료 6의 현미경 사진이다. 6 is a micrograph of a
도 7 및 도 8은 발명의 일 실시예에 따른 실험시료의 수화겔 입자들과 비교시료의 수화겔 입자들의 리피오돌® 흡수력 비교 그래프이다. 7 and 8 are comparative plots of the experimental samples lipiodol ® absorbent hydrogel particles of the comparative sample with the hydrogel particles in accordance with one embodiment of the invention.
도 9 및 도 10은 발명의 일 실시에에 따른 실험 복합 색전물질 시료들과 비교 복합 색전물질 시료들의 리피오돌® 잔류 함량 비교 그래프이다.9 and 10 are experimental compound embolism lipiodol ® residual content comparison graph of the material sample and the comparative composite material sample embolization according to one embodiment of the invention.
도 11은 기체크로마토그래피(GC) 분석 결과를 토대로 비교 복합 색전물질 시료들의 리피오돌® 함량에 대한 실험 복합 색전물질 시료들의 리피오돌® 함량을 비교한 그래프이다. Figure 11 is a graph comparing the amount of test compound lipiodol ® embolic material sample for lipiodol ® content of the comparison compound embolic material sample based on the analysis gas chromatography (GC).
도 12 내지 도 14는 발명의 일 실시예에 따른 실험 복합 색전물질 시료들의 리피오돌® 함량에 대한 기체크로마토그래피(GC) 분석 결과 그래프들이다. 12 to 14 are graphs of gas chromatography (GC) analysis of Lipiodol ® content of experimental complex embolic samples according to an embodiment of the present invention.
도 15 및 도 16은 비교 복합 색전물질 시료들의 리피오돌® 함량에 대한 기체크로마토그래피(GC) 분석 결과 그래프들이다 15 and 16 are graphs of gas chromatography (GC) analysis of Lipiodol ® content of comparative complex embolic samples.
도 17은 표준품의 기체크로마토그래피(GC) 분석 결과 그래프이다. 17 is a graph of gas chromatography (GC) analysis results of a standard product.
도 18 내지 도 20은 발명의 일 실시예에 따른 실험시료의 수화겔 입자들의 FT-IR 스펙트럼들이다.18 to 20 are FT-IR spectra of hydrogel particles of a test sample according to an embodiment of the present invention.
도 21 및 도 22는 비교시료의 수화겔 입자들의 FT-IR 스펙트럼들이다. 21 and 22 are FT-IR spectra of hydrogel particles of a comparative sample.
발명의 이점 및 특징, 그리고 그것들을 달성하는 방법은 첨부되는 도면과 함께 상세하게 후술되어 있는 실험예들을 참조하면 명확해질 것이다. Advantages and features of the invention, and methods of achieving them will be apparent with reference to the experimental examples described below in detail in conjunction with the accompanying drawings.
"수화겔 입자(hydrogel particle)"는 색전술(embolization)에 사용될 수 있고 1종의 색전물질로서 물에 의해 팽윤 가능될 수 있는 입자이다. 상기 수화겔 입자는 색전술 시술 후 혈관 벽과 오랜 기간 접촉했을 때 발생할 수 있는 염증을 방지하기 위해서 매끈한 구형의 표면을 가진 구(sphere) 형상의 입자일 수 있다. 상기 수화겔 입자의 크기는 특별히 제한되는 것은 아니지만, 수 ㎛ 이상 내지 수백 ㎛ 이하의 범위 내에서 결정될 수 있다."Hydrogel particles" are particles that can be used for embolization and can be swellable by water as one embolic material. The hydrogel particles may be sphere-shaped particles having a smooth spherical surface in order to prevent inflammation that may occur when long-term contact with the vessel wall after embolization. The size of the hydrogel particles is not particularly limited, but may be determined within a range of several μm or more to several hundred μm or less.
"복합 색전물질"은 2 종 이상의 색전물질들이 복합된 색전물질을 의미하거나 또는 1종의 색전물질과 1 종의 조영제가 복합된 색전물질을 의미한다. 상기 복합 색전물질은 1종의 색전물질이 조영제의 기능을 가진 경우와 같이 색전물질의 기능과 조영제의 기능이 복합적으로 기능하는 경우도 물론 포함한다. "Complex embolic material" means an embolic material in which two or more embolic materials are combined or an embolic material in which one embolic material and one contrast agent are combined. The complex embolic material includes, of course, a case in which the function of the embolic material and the contrast agent functions in a complex manner, such as when one embolic material has a function of a contrast agent.
"생분해성 고분자"는 이식 후 서서히 체내에서 분해되어 재생하는 자가조직으로 치환되는 생체 재료이다. 예를 들어, 상기 생분해성 고분자는 천연 고분자 화합물로 이루어질 수 있고, 상기 천연 고분자 화합물은 예를 들어, 젤라틴과 키토산 중 하나 이상일 수 있다. 상기 젤라틴과 상기 키토산은 각각 상기 생분해성 고분자로서 단독 사용될 수 있고, 이들의 조합, 즉, 상기 젤라틴과 상기 키토산의 조합이 상기 생분해성 고분자로서 사용될 수도 있다. A "biodegradable polymer" is a biomaterial that is replaced with autologous tissue that is slowly degraded and regenerated in the body after transplantation. For example, the biodegradable polymer may be made of a natural polymer compound, the natural polymer compound may be, for example, one or more of gelatin and chitosan. The gelatin and the chitosan may be used alone as the biodegradable polymer, respectively, or a combination thereof, that is, a combination of the gelatin and the chitosan may be used as the biodegradable polymer.
"C18 ~ C26 지방족 탄화수소 유도체"는 탄소수가 18 이상 내지 26 이하인 지방족 탄화수소의 유도체이다. "C 18 to C 26 aliphatic hydrocarbon derivative" is a derivative of aliphatic hydrocarbon having 18 to 26 carbon atoms.
"C18 ~ C26 알킬 아민"은 탄소수가 18 이상 내지 26 이하인 알킬을 가진 아민이다. "C18 ~ C26 알킬 아마이드"는 탄소수가 18 이상 내지 26 이하인 알킬을 가진 아마이드이다. “C 18 to C 26 alkyl amines” are amines having alkyl having 18 to 26 carbon atoms. “C 18 to C 26 alkyl amides” are amides having alkyl having 18 to 26 carbon atoms.
"C18 ~ C26 알킬"은 주 탄소사슬에 결합된 곁 가지 탄소사슬을 가지지 않는 C18 ~ C26 n-알킬(n-alkyl)과 C18 ~ C26 iso-알킬(iso-alkyl) 또는 sec-알킬(sec-alkyl) 등과 같이 주 탄소사슬에 결합된 곁 가지 탄소사슬을 가진 알킬들을 포함한다. "아민"과 "아마이드"는 각각 디아민(diamine)과 디아마이드(diamide)를 포함한다. "C 18 to C 26 alkyl" refers to C 18 to C 26 n-alkyl and C 18 to C 26 iso-alkyl which do not have a branched carbon chain bonded to the main carbon chain, or alkyl having a branched carbon chain bonded to the main carbon chain, such as sec-alkyl and the like. "Amine" and "amide" include diamine and diamide, respectively.
C18 ~ C26 n-알킬 아민의 일례로는, 옥타데실 아민(octadecyl amine)을 들 수 있다. An example of C18 - C26 n-alkyl amines is octadecyl amine.
C18 ~ C26 n-알킬 아마이드의 일례로는, 옥타데실 아민(octadecyl amine)을 들 수 있다. An example of a C 18 to C 26 n-alkyl amide is octadecyl amine.
"요오드화 C18 ~ C26 지방산 에스테르"는 탄소수가 18 이상 내지 26 이하인 알킬을 가진 지방산 에스테르에 요오드가 치환된 화합물이다. 상기 요오드화 C18 ~ C26 지방산 에스테르의 예로는 리피오돌®을 들 수 있고, 상기 리피오돌® 은 에틸 모노아이오도스테아레이트(ethyl monoiodostearate) 일 수 있다. "Iodide C 18 to C 26 fatty acid ester" is a compound in which iodine is substituted for a fatty acid ester having an alkyl having from 18 to 26 carbon atoms. Examples of the iodide C 18 ~ C 26 fatty acid esters there may be mentioned lipiodol ®, the lipiodol ® may be a mono-iodo ethyl stearate (ethyl monoiodostearate).
"요오드화 C18 ~ C26 지방산 에스테르의 평균 흡수량"은 색전물질에 소정 량의 요오드화 C18 ~ C26 지방산 에스테르를 첨가하고 혼합물을 원심분리시킨 이후에 측정한 C18 ~ C26 지방산 에스테르의 함량이다. "Iodide C 18 ~ C 26 average absorption of the fatty acid ester" is an amount of a C 18 ~ C 26 fatty acid ester, measured after having added the iodide C 18 ~ C 26 fatty acid ester of a predetermined amount of the embolic material and centrifuging the mixture .
"요오드화 C18 ~ C26 지방산 에스테르의 평균 잔존 함량"은 상기 요오드화 C18 ~ C26 지방산 에스테르가 흡수된 색전물질에 소정 량의 인산완충식염수(PBS)를 혼합시키고 혼합물을 원심분리시킨 이후에 측정한 C18 ~ C26 지방산 에스테르의 잔존 함량이다."Iodide C 18 ~ C 26 average residual content of the fatty acid ester" is measured after a mixture of phosphate buffered saline (PBS) with a predetermined amount of the embolic material are the iodide C 18 ~ C 26 fatty acid esters absorbed and centrifuging the mixture The remaining content of one C 18 to C 26 fatty acid ester.
발명의 일 실시예에 따른 수화겔 입자는 상기 생분해성 고분자와 C18 ~ C26 지방족 탄화수소 유도체를 포함한다. 상기 C18 ~ C26 지방족 탄화수소 유도체는 예를 들어, C18 ~ C26 알킬 아민 및/또는 C18 ~ C26 알킬 아마이드일 수 있다. 본 명세서에서, "A 및/또는 B"는 "A, B 또는 A 및 B"를 의미한다.Hydrogel particles according to an embodiment of the present invention includes the biodegradable polymer and C 18 ~ C 26 aliphatic hydrocarbon derivative. The C 18 to C 26 aliphatic hydrocarbon derivative may be, for example, C 18 to C 26 alkyl amine and / or C 18 to C 26 alkyl amide. In this specification, "A and / or B" means "A, B or A and B."
상기 C18 ~ C26 알킬 아민과 상기 C18 ~ C26 알킬 아마이드 각각은 상기 생분해성 고분자에 결합된 링커(linker)를 포함할 수 있고, 상기 링커는 가교제로부터 유래된 화학구조를 가질 수 있다. Each of the C 18 to C 26 alkyl amines and the C 18 to C 26 alkyl amides may include a linker bonded to the biodegradable polymer, and the linker may have a chemical structure derived from a crosslinking agent.
예를 들어, 상기 가교제는, 포름알데히드(formaldehyde), 글루타르알데히드(glutaraldehyde), 제니핀(genipin) 등일 수 있다. For example, the crosslinking agent may be formaldehyde, glutaraldehyde, genipin, or the like.
예를 들어, 상기 포름알데히드가 가교제로서 사용되는 경우, C18 ~ C26 알킬 아민과 상기 C18 ~ C26 알킬 아마이드 각각은 상기 생분해성 고분자에 결합된 메틸렌 브릿지(methylene bridge)를 포함할 수 있다. 이 때, 상기 메틸렌 브릿지는 링커로서 기능할 수 있다. For example, when the formaldehyde is used as a crosslinking agent, each of C 18 to C 26 alkyl amine and C 18 to C 26 alkyl amide may include a methylene bridge bonded to the biodegradable polymer. . At this time, the methylene bridge may function as a linker.
상기 메틸렌 브릿지는 상기 포름알데히드와 물의 반응으로 생성된 메틸렌 글리콜(HOCH2OH)의 메틸렌에서 유래된 것일 수 있고, 상기 생분해성 고분자, 상기 C18 ~ C26 지방족 탄화수소 유도체 및 메틸렌 글리콜의 탈수 축합 반응에 의해 상기 C18 ~ C26 알킬 아민과 상기 C18 ~ C26 알킬 아마이드 각각은 상기 메틸렌 브릿지를 링커로서 포함할 수 있다. The methylene bridge may be derived from the methylene of methylene glycol (HOCH 2 OH) produced by the reaction of the formaldehyde and water, dehydration condensation reaction of the biodegradable polymer, the C 18 ~ C 26 aliphatic hydrocarbon derivative and methylene glycol As such, each of the C 18 to C 26 alkyl amines and the C 18 to C 26 alkyl amides may include the methylene bridge as a linker.
일례로서, 상기 메틸렌 브릿지는 상기 젤라틴의 질소 원자(N)와 상기 C18 ~ C26 알킬 아민의 질소 원자(N)를 연결할 수 있거나, 상기 젤라틴의 질소 원자(N)와 상기 C18 ~ C26 알킬 아마이드의 질소 원자(N)를 연결할 수 있다. As an example, the methylene bridge may connect the nitrogen atom (N) of the gelatin and the nitrogen atom (N) of the C 18 to C 26 alkyl amine, or the nitrogen atom (N) of the gelatin and the C 18 to C 26 The nitrogen atom (N) of the alkyl amide may be connected.
다른 일례로서, 상기 메틸렌 브릿지는 상기 키토산의 질소 원자(N)와 상기 C18 ~ C26 알킬 아민의 질소 원자(N)를 연결할 수 있거나, 상기 키토산의 질소 원자(N)와 상기 C18 ~ C26 알킬 아마이드의 질소 원자(N)를 연결할 수 있다.As another example, the methylene bridge may connect the nitrogen atom (N) of the chitosan and the nitrogen atom (N) of the C 18 to C 26 alkyl amine, or the nitrogen atom (N) of the chitosan and the C 18 to C The nitrogen atom (N) of the 26 alkyl amide may be connected.
예를 들어, 가교제로서 상기 글루타르알데히드가 사용되는 경우, C18 ~ C26 알킬 아민과 상기 C18 ~ C26 알킬 아마이드 각각은 상기 생분해성 고분자에 결합된 시프염기(Shiff base)를 포함할 수 있다. 이 때, 상기 시프 염기는 링커로서 기능할 수 있다. For example, when the glutaraldehyde is used as a crosslinking agent, each of C 18 to C 26 alkyl amines and C 18 to C 26 alkyl amides may include a shift base bonded to the biodegradable polymer. have. At this time, the seed base may function as a linker.
상기 생분해성 고분자, 상기 C18 ~ C26 지방족 탄화수소 유도체 및 메틸렌 글리콜의 탈수 축합 반응에 의해 상기 C18 ~ C26 알킬 아민과 상기 C18 ~ C26 알킬 아마이드 각각은 상기 시프염기를 링커로서 포함할 수 있다. By dehydration condensation of the biodegradable polymer, the C 18 to C 26 aliphatic hydrocarbon derivative, and methylene glycol, each of the C 18 to C 26 alkyl amines and the C 18 to C 26 alkyl amides may include the seed base as a linker. Can be.
일례로서, 상기 시프염기는 상기 젤라틴과 상기 키토산 중 하나의 질소 원자(N)와 상기 C18 ~ C26 알킬 아민의 질소 원자(N)를 연결할 수 있거나, 상기 젤라틴과 상기 키토산 중 하나의 질소 원자(N)와 상기 C18 ~ C26 알킬 아마이드의 질소 원자(N)를 연결할 수 있다.As an example, the sipebase may connect a nitrogen atom (N) of one of the gelatin and the chitosan and a nitrogen atom (N) of the C 18 to C 26 alkyl amine, or a nitrogen atom of one of the gelatin and the chitosan. (N) and the nitrogen atom (N) of the C 18 ~ C 26 alkyl amide may be connected.
예를 들어, 가교제로서 상기 제니핀이 사용되는 경우, C18 ~ C26 알킬 아민과 상기 C18 ~ C26 알킬 아마이드 각각은 하기 화학식 (1)로 표현되는 링커(linker)를 포함할 수 있다. For example, when the nippin is used as a crosslinking agent, each of the C 18 to C 26 alkyl amines and the C 18 to C 26 alkyl amides may include a linker represented by the following Formula (1).
하기 화학식 (1)에서, 헤테로 고리 아민의 질소 원자(N)는 상기 젤라틴과 상기 키토산 중 하나의 질소 원자(N)일 수 있고, 카보닐기(carbonyl group) 옆의 아민의 질소 원자(N)는 상기 C18 ~ C26 알킬 아민과 상기 C18 ~ C26 알킬 아마이드 중 하나의 질소 원자(N)일 수 있다. In formula (1), the nitrogen atom (N) of the heterocyclic amine may be a nitrogen atom (N) of one of the gelatin and the chitosan, and the nitrogen atom (N) of the amine next to the carbonyl group is It may be a nitrogen atom (N) of one of the C 18 ~ C 26 alkyl amine and the C 18 ~ C 26 alkyl amide.
<화학식 (1) ><Formula (1)>
상기 C18 ~ C26 지방족 탄화수소 유도체는 C18 ~ C26 인 범위 내에서 상기 생분해성 고분자와 균일하게 혼합될 수 있고, 휘핑(whipping) 시 많은 거품을 만들어낼 수 있다. 이하, 실험예를 통해 확인할 수 있는 바와 같이, 상기 C18 ~ C26 지방족 탄화수소 유도체로서 헥사데실아민을 사용한 경우, 혼합이 잘 이루어지지 않았고, 휘핑 시에도 거품을 육안으로 확인할 수 없었다. 이에 대해서는 후술하는 실험예에서 더욱 구체적으로 설명하기로 한다. The C 18 to C 26 aliphatic hydrocarbon derivative may be uniformly mixed with the biodegradable polymer within the range of C 18 to C 26 , and may generate a lot of foam during whipping. Hereinafter, as can be seen through the experimental example, when hexadecylamine was used as the C 18 to C 26 aliphatic hydrocarbon derivative, the mixing was not well performed, and foam was not visually confirmed even during whipping. This will be described in more detail in the experimental example described later.
발명의 일 실시예에 따른 복합 색전물질은 상기 수화겔 입자와 요오드화 지방산 에스테르를 포함한다. 상기 요오드화 지방산 에스테르는 상기 지방족 탄화수소 유도체와의 소수성 상호작용(hydrophilic interaction)을 통해 결합되어 있는 것으로 추측된다. Complex embolic material according to an embodiment of the invention comprises the hydrogel particles and iodide fatty acid ester. It is assumed that the iodide fatty acid ester is bound through hydrophilic interaction with the aliphatic hydrocarbon derivative.
즉, 발명의 일 실시예에 따른 복합 색전물질은 상기 C18 ~ C26 지방족 탄화수소 유도체의 탄소사슬과 상기 요오드화 지방산 에스테르의 탄소사슬 간의 소수성 상호작용으로 인해, 2종의 색전물질이 화학결합되어 있는 것으로 추측된다.That is, the complex embolic material according to an embodiment of the present invention is due to the hydrophobic interaction between the carbon chain of the C 18 to C 26 aliphatic hydrocarbon derivative and the carbon chain of the iodide fatty acid ester, and two embolic materials are chemically bonded. It is assumed to be.
예를 들어, 상기 요오드화 지방산 에스테르는 탄소사슬이 C18 ~ C26 n-알킬인 요오드화 지방산 에스테르일 수 있다. 상기 C18 ~ C26 지방족 탄화수소 유도체의 탄소사슬은 알킬 간의 소수성 상호작용을 증가시키기 위해서 n-알킬을 포함할 수 있다. 예를 들어, 상기 C18 ~ C26 알킬 아민은 C18 ~ C26 n-알킬 아민일 수 있고, 상기 C18 ~ C26 알킬 아마이드는 C18 ~ C26 n-알킬 아마이드일 수 있다.For example, the iodide fatty acid ester may be an iodide fatty acid ester having a carbon chain of C 18 to C 26 n-alkyl. The carbon chain of the C 18 to C 26 aliphatic hydrocarbon derivative may include n-alkyl to increase hydrophobic interaction between alkyl. For example, the C 18 to C 26 alkyl amine may be C 18 to C 26 n-alkyl amine, and the C 18 to C 26 alkyl amide may be C 18 to C 26 n-alkyl amide.
후술하는 실험예들로부터, 발명의 일 실시예에 따른 수화겔 입자와 복합 색전물질이 각각 요오드화 C18 ~ C26 지방산 에스테르에 대해 우수한 흡수력 내지 결합력을 가짐을 확인할 수 있다. From the experimental examples described below, it can be seen that the hydrogel particles and the composite embolic material according to the embodiment of the present invention have excellent absorption or binding strength to the iodide C 18 to C 26 fatty acid ester, respectively.
이하, 실험시료들과 비교시료들을 이용한 실험예들을 통해 발명의 일 실시예에 따른 수화겔 입자와 복합 색전물질에 대해 보다 구체적으로 설명하기로 한다. Hereinafter, the hydrogel gel particles and the composite embolic material according to an embodiment of the present invention will be described in more detail through experimental examples using experimental samples and comparative samples.
<실험시료 1의 제조예><Preparation Example of
젤라틴을 60 ℃의 물에 넣고 용해시켜 6% 젤라틴 수용액을 제조하였다. 옥타데실 아민을 에탄올에 용해시켜 2.5% 옥타데실 아민 에탄올 용액을 제조하였다. 6% gelatin aqueous solution was prepared by dissolving gelatin in water at 60 ° C. Octadecyl amine was dissolved in ethanol to prepare a 2.5% octadecyl amine ethanol solution.
6% 젤라틴 수용액 100 mL 와 2.5% 옥타데실 아민 에탄올 용액 10 mL 를 각각 취하여 이들을 섞은 후, 균일하게 혼합될 때까지 교반하였다. 이후, 교반 결과물에 3% 포름알데히드 수용액 11.75 mL 를 첨가하고 거품 제조기를 이용하여 2000 rmp 에서 15분 동안 교반하여 실험시료 1을 제조하였다. 100 mL of 6% gelatin aqueous solution and 10 mL of 2.5% octadecyl amine ethanol solution were respectively taken and mixed, followed by stirring until uniformly mixed. Thereafter, 11.75 mL of a 3% aqueous solution of formaldehyde was added to the stirred product, and the
<실험시료 2의 제조예><Preparation Example of
젤라틴을 60 ℃의 물에 넣고 용해시켜 6% 젤라틴 수용액을 제조하였다. 옥타데실 아민을 에탄올에 용해시켜 5% 옥타데실 아민 에탄올 용액을 제조하였다. 6% gelatin aqueous solution was prepared by dissolving gelatin in water at 60 ° C. Octadecyl amine was dissolved in ethanol to prepare a 5% octadecyl amine ethanol solution.
6% 젤라틴 수용액 100 mL 와 5% 옥타데실 아민 에탄올 용액 10 mL 를 각각 취하여 이들을 섞은 후, 균일하게 혼합될 때까지 교반하였다. 이후, 교반 결과물에 글루타르알데히드 11.75 mL 를 첨가하고 거품 제조기를 이용하여 2000 rmp 에서 15분 동안 교반하여 실험시료 2를 제조하였다. 100 mL of 6% gelatin aqueous solution and 10 mL of 5% octadecyl amine ethanol solution were respectively taken and mixed, followed by stirring until uniformly mixed. Thereafter, 11.75 mL of glutaraldehyde was added to the agitated product and stirred for 15 minutes at 2000 rmp using a bubble maker to prepare
<실험시료 3의 제조예><Preparation Example of
키토산을 60 ℃의 물에 넣고 용해시켜 6% 젤라틴 수용액을 제조하였다. 옥타데실 아민을 에탄올에 용해시켜 5% 옥타데실 아민 에탄올 용액을 제조하였다. Chitosan was dissolved in water at 60 ° C. to prepare 6% gelatin aqueous solution. Octadecyl amine was dissolved in ethanol to prepare a 5% octadecyl amine ethanol solution.
6% 젤라틴 수용액 100 mL 와 5% 옥타데실 아민 에탄올 용액 10 mL 를 각각 취하여 이들을 섞은 후, 균일하게 혼합될 때까지 교반하였다. 이후, 교반 결과물에 3% 포름알데히드 수용액 11.75 mL 를 첨가하고 거품 제조기를 이용하여 2000 rmp 에서 15분 동안 교반하여 실험시료 1을 제조하였다. 100 mL of 6% gelatin aqueous solution and 10 mL of 5% octadecyl amine ethanol solution were respectively taken and mixed, followed by stirring until uniformly mixed. Thereafter, 11.75 mL of a 3% aqueous solution of formaldehyde was added to the stirred product, and the
<실험시료 4의 제조예 ><Production Example of
키토산과 젤라틴을 3:7의 질량비로 혼합하여 키토산-젤라틴 혼합물을 제조하였다. 키토산-젤라틴 혼합물을 60 ℃의 물에 넣고 용해시켜 6% 키토산-젤라틴 혼합물 수용액을 제조하였다. 옥타데실 아민을 에탄올에 용해시켜 5% 옥타데실 아민 에탄올 용액을 제조하였다. Chitosan and gelatin were mixed at a mass ratio of 3: 7 to prepare a chitosan-gelatin mixture. The chitosan-gelatin mixture was dissolved in water at 60 ° C. to prepare a 6% chitosan-gelatin mixture aqueous solution. Octadecyl amine was dissolved in ethanol to prepare a 5% octadecyl amine ethanol solution.
6% 키토산-젤라틴 혼합물 수용액 100 mL 와 5% 옥타데실 아민 에탄올 용액 10 mL 를 각각 취하여 이들을 섞은 후, 균일하게 혼합될 때까지 교반하였다. 이후, 교반 결과물에 3% 포름알데히드 수용액 11.75 mL 를 첨가하고 거품 제조기를 이용하여 2000 rmp 에서 15분 동안 교반하였다. 100 mL of a 6% chitosan-gelatin mixture aqueous solution and 10 mL of a 5% octadecyl amine ethanol solution were taken, mixed, and stirred until uniformly mixed. Thereafter, 11.75 mL of an aqueous 3% formaldehyde solution was added to the stirred product, and stirred for 15 minutes at 2000 rmp using a foam maker.
<실험시료 5의 제조예 ><Production Example of Experimental Sample 5>
키토산과 젤라틴을 7:3의 질량비로 혼합하여 키토산-젤라틴 혼합물을 제조하였다. 키토산-젤라틴 혼합물을 60 ℃의 물에 넣고 용해시켜 6% 키토산-젤라틴 혼합물 수용액을 제조하였다. 옥타데실 아민을 에탄올에 용해시켜 5% 옥타데실 아민 에탄올 용액을 제조하였다. Chitosan and gelatin were mixed at a mass ratio of 7: 3 to prepare a chitosan-gelatin mixture. The chitosan-gelatin mixture was dissolved in water at 60 ° C. to prepare a 6% chitosan-gelatin mixture aqueous solution. Octadecyl amine was dissolved in ethanol to prepare a 5% octadecyl amine ethanol solution.
6% 키토산-젤라틴 혼합물 수용액 100 mL 와 5% 옥타데실 아민 에탄올 용액 10 mL 를 각각 취하여 이들을 섞은 후, 균일하게 혼합될 때까지 교반하였다. 이후, 교반 결과물에 3% 포름알데히드 수용액 11.75 mL 를 첨가하고 거품 제조기를 이용하여 2000 rmp 에서 15분 동안 교반하였다. 100 mL of a 6% chitosan-gelatin mixture aqueous solution and 10 mL of a 5% octadecyl amine ethanol solution were taken, mixed, and stirred until uniformly mixed. Thereafter, 11.75 mL of an aqueous 3% formaldehyde solution was added to the stirred product, and stirred for 15 minutes at 2000 rmp using a foam maker.
<실험시료 6의 제조예 ><Preparation Example of
젤라틴을 60 ℃의 물에 넣고 용해시켜 6% 젤라틴 수용액을 제조하였다. 옥타데실 아민을 에탄올에 용해시켜 5.0% 옥타데실 아민 에탄올 용액을 제조하였다. 6% gelatin aqueous solution was prepared by dissolving gelatin in water at 60 ° C. Octadecyl amine was dissolved in ethanol to prepare a 5.0% octadecyl amine ethanol solution.
6% 젤라틴 수용액 100 mL 와 5.0% 옥타데실 아민 에탄올 용액 10 mL 를 각각 취하여 이들을 섞은 후, 균일하게 혼합될 때까지 교반하였다. 이후, 교반 결과물에 3% 포름알데히드 수용액 11.75 mL 를 첨가하고 거품 제조기를 이용하여 2000 rmp 에서 15분 동안 교반하였다. 100 mL of a 6% gelatin aqueous solution and 10 mL of a 5.0% octadecyl amine ethanol solution were respectively taken, mixed, and stirred until uniformly mixed. Thereafter, 11.75 mL of an aqueous 3% formaldehyde solution was added to the stirred product, and stirred for 15 minutes at 2000 rmp using a foam maker.
<비교시료 1의 제조예><Production Example of
젤라틴을 60 ℃의 물에 넣고 용해시켜 6% 젤라틴 수용액을 제조하였다. 옥타데실 아민을 에탄올에 용해시켜 5% 헥사데실 아민 에탄올 용액을 제조하였다. 6% gelatin aqueous solution was prepared by dissolving gelatin in water at 60 ° C. Octadecyl amine was dissolved in ethanol to prepare a 5% hexadecyl amine ethanol solution.
6% 젤라틴 수용액 100 mL 와 5% 헥사데실 아민 에탄올 용액 10 mL 를 각각 취하여 이들을 섞은 후, 균일하게 혼합될 때까지 교반하였다. 이후, 교반 결과물에 3% 포름알데히드 수용액 11.75 mL 를 첨가하고 거품 제조기를 이용하여 2000 rmp 에서 15분 동안 교반하여 비교시료 1을 제조하였다. 100 mL of a 6% gelatin aqueous solution and 10 mL of a 5% hexadecyl amine ethanol solution were respectively taken and mixed, followed by stirring until uniformly mixed. Thereafter, 11.75 mL of an aqueous 3% formaldehyde solution was added to the stirred product, and a
<비교시료 2의 제조예><Production Example of
키토산을 60 ℃의 물에 넣고 용해시켜 6% 젤라틴 수용액을 제조하였다. 옥타데실 아민을 에탄올에 용해시켜 5% 헥사데실 아민 에탄올 용액을 제조하였다. Chitosan was dissolved in water at 60 ° C. to prepare 6% gelatin aqueous solution. Octadecyl amine was dissolved in ethanol to prepare a 5% hexadecyl amine ethanol solution.
6% 젤라틴 수용액 100 mL 와 5% 헥사데실 아민 에탄올 용액 10 mL 를 각각 취하여 이들을 섞은 후, 균일하게 혼합될 때까지 교반하였다. 이후, 교반 결과물에 3% 포름알데히드 수용액 11.75 mL 를 첨가하고 거품 제조기를 이용하여 2000 rmp 에서 15분 동안 교반하여 비교시료 2를 제조하였다. 100 mL of a 6% gelatin aqueous solution and 10 mL of a 5% hexadecyl amine ethanol solution were respectively taken and mixed, followed by stirring until uniformly mixed. Thereafter, 11.75 mL of an aqueous 3% formaldehyde solution was added to the stirred product, and a
<실험예 1: 성상 비교>Experimental Example 1: Comparison of Properties
현미경을 이용하여 실험시료 1 내지 3, 비교시료 1의 거품 발생 정도를 비교하였다. 결과를 표 1에 나타내었다. Using the microscope, the degree of foaming of the
표 1
도 1은 발명의 일 실시예에 따른 실험시료 1의 현미경 사진이다. 도 2는 발명의 일 실시예에 따른 실험시료 2의 현미경 사진이다. 도 3은 발명의 일 실시예에 따른 실험시료 3의 현미경 사진이다. 도 4는 발명의 일 실시예에 따른 실험시료 4의 현미경 사진이다. 도 5는 발명의 일 실시예에 따른 실험시료 5의 현미경 사진이다. 도 6은 발명의 일 실시예에 따른 실험시료 6의 현미경 사진이다. 1 is a micrograph of a
도 1 내지 도 6 및 상기 표 1을 참고하면, 실험시료 1 내지 6은 비교시료 1 및 2와 달리 거품이 육안으로 확인되었음을 알 수 있다. 이와 달리, 비교시료 1 및 2는 거품이 육안으로 확인되지 않았다. 비교시료 1 및 2는 각각 젤라틴과 헥사데실 아민의 혼합과 키토산과 헥사데실 아민의 혼합이 균질하게 이루어지지 않은 것으로 추정된다. Referring to Figures 1 to 6 and Table 1, it can be seen that the
실험예 1로부터 비교시료 1 및 2이 색전물질로 사용될 수 있는 다공성 수화겔 입자의 제조가 어렵다는 것을 확인할 수 있었다. 또한, 실험예 1로부터 2 종 이상의 생분해성 고분자의 혼합물을 포함하고 C18~C26 지방족 탄화수소 유도체를 포함하는 수화겔 입자의 제조가 가능함을 확인할 수 있었다. From Experimental Example 1,
<실험시료 7의 제조예 ><Preparation Example of
젤라틴을 60 ℃의 물에 넣고 용해시켜 6% 젤라틴 수용액을 제조하였다. 옥타데실 아민을 에탄올에 용해시켜 0.5% 옥타데실 아민 에탄올 용액을 제조하였다. 6% gelatin aqueous solution was prepared by dissolving gelatin in water at 60 ° C. Octadecyl amine was dissolved in ethanol to prepare a 0.5% octadecyl amine ethanol solution.
6% 젤라틴 수용액 100 mL 와 0.5% 옥타데실 아민 에탄올 용액 10 mL 를 각각 취하여 이들을 섞은 후, 균일하게 혼합될 때까지 교반하였다. 이후, 교반 결과물에 3% 포름알데히드 수용액 11.75 mL 를 첨가하고 거품 제조기를 이용하여 2000 rmp 에서 15분 동안 교반하였다. 100 mL of a 6% gelatin aqueous solution and 10 mL of a 0.5% octadecyl amine ethanol solution were respectively taken and mixed, followed by stirring until uniformly mixed. Thereafter, 11.75 mL of an aqueous 3% formaldehyde solution was added to the stirred product, and stirred for 15 minutes at 2000 rmp using a foam maker.
교반 결과물을 상온에서 자연 건조한 후, 자연 건조 결과물을 잘게 부순 후, 크기가 560 ㎛ 이상 내지 710 ㎛ 이하의 수화겔 입자들을 선별하여 실험시료 7을 제조하였다. After the stirring product was naturally dried at room temperature, the natural drying result was crushed finely, and the
<실험시료 8의 제조예 ><Preparation Example of
옥타데실 아민을 에탄올에 용해시켜 1.0% 옥타데실 아민 에탄올 용액을 제조한 후, 6% 젤라틴 수용액 100 mL 와 1.0% 옥타데실 아민 에탄올 용액 10 mL 를 각각 취하여 이들을 섞은 후, 균일하게 혼합될 때까지 교반한 것을 제외하고는 실험시료 7의 제조예에 따라 실험시료 8을 제조하였다. Dissolve octadecyl amine in ethanol to prepare 1.0% octadecyl amine ethanol solution, take 100 mL of 6% gelatin aqueous solution and 10 mL of 1.0% octadecyl amine ethanol solution, mix them, and stir until uniform mixing. Except for one, the
<실험시료 9의 제조예 ><Preparation Example of
옥타데실 아민을 에탄올에 용해시켜 2.0% 옥타데실 아민 에탄올 용액을 제조한 후, 6% 젤라틴 수용액 100 mL 와 2.0% 옥타데실 아민 에탄올 용액 10 mL 를 각각 취하여 이들을 섞은 후, 균일하게 혼합될 때까지 교반한 것을 제외하고는 실험시료 7의 제조예에 따라 실험시료 9를 제조하였다.Dissolve octadecyl amine in ethanol to prepare 2.0% octadecyl amine ethanol solution, take 100 mL of 6% gelatin aqueous solution and 10 mL of 2.0% octadecyl amine ethanol solution, mix them, and stir until uniformly mixed. Except for one, the
<실험시료 10의 제조예 ><Preparation Example of
옥타데실 아민을 에탄올에 용해시켜 2.5% 옥타데실 아민 에탄올 용액을 제조한 후, 6% 젤라틴 수용액 100 mL 와 2.5% 옥타데실 아민 에탄올 용액 10 mL 를 각각 취하여 이들을 섞은 후, 균일하게 혼합될 때까지 교반한 것을 제외하고는 실험시료 7의 제조예에 따라 실험시료 10을 제조하였다.Dissolve octadecyl amine in ethanol to prepare 2.5% octadecyl amine ethanol solution, take 100 mL of 6% gelatin aqueous solution and 10 mL of 2.5% octadecyl amine ethanol solution, mix them, and stir until uniformly mixed. Except for one, the
<실험시료 11의 제조예 ><Preparation Example of
옥타데실 아민을 에탄올에 용해시켜 5.0% 옥타데실 아민 에탄올 용액을 제조한 후, 6% 젤라틴 수용액 100 mL 와 5.0% 옥타데실 아민 에탄올 용액 10 mL 를 각각 취하여 이들을 섞은 후, 균일하게 혼합될 때까지 교반한 것을 제외하고는 실험시료 7의 제조예에 따라 실험시료 11을 제조하였다.Dissolve octadecyl amine in ethanol to prepare a 5.0% octadecyl amine ethanol solution, take 100 mL of 6% gelatin aqueous solution and 10 mL of 5.0% octadecyl amine ethanol solution, mix them, and stir until uniformly mixed. Except for one, the
<실험시료 12의 제조예 ><Preparation Example of
옥타데실 아민을 에탄올에 용해시켜 10.0% 옥타데실 아민 에탄올 용액을 제조한 후, 6% 젤라틴 수용액 100 mL 와 10.0% 옥타데실 아민 에탄올 용액 10 mL 를 각각 취하여 이들을 섞은 후, 균일하게 혼합될 때까지 교반한 것을 제외하고는 실험시료 7의 제조예에 따라 실험시료 12를 제조하였다.Dissolve octadecyl amine in ethanol to prepare a 10.0% octadecyl amine ethanol solution, take 100 mL of 6% gelatin aqueous solution and 10 mL of 10.0% octadecyl amine ethanol solution, mix them, and stir until uniformly mixed. Except one, the
<실험시료 13의 제조예 ><Preparation Example of
옥타데칸 아마이드를 에탄올에 용해시켜 2.5% 옥타데칸 아마이드 에탄올 용액을 제조한 후, 6% 젤라틴 수용액 100 mL 와 2.5% 옥타데칸 아마이드 에탄올 용액 10 mL 를 각각 취하여 이들을 섞은 후, 균일하게 혼합될 때까지 교반한 것을 제외하고는 실험시료 7의 제조예에 따라 실험시료 13을 제조하였다.Dissolve octadecane amide in ethanol to prepare 2.5% octadecane amide ethanol solution, take 100 mL of 6% gelatin aqueous solution and 10 mL of 2.5% octadecane amide ethanol solution, mix them, and stir until uniform mixing Except one, the
<비교시료 3의 제조예 ><Production Example of
젤라틴을 60 ℃의 물에 넣고 용해시켜 6% 젤라틴 수용액을 제조하였다. 6% 젤라틴 수용액 100 mL 에 3% 포름알데히드 수용액 11.75 mL 를 첨가하고 거품 제조기를 이용하여 2000 rmp 에서 15분 동안 교반하였다. 6% gelatin aqueous solution was prepared by dissolving gelatin in water at 60 ° C. 11.75 mL of an aqueous 3% formaldehyde solution was added to 100 mL of an aqueous 6% gelatin solution, and stirred for 15 minutes at 2000 rmp using a foam maker.
교반 결과물을 상온에서 자연 건조한 후, 자연 건조 결과물을 잘게 부순 후, 크기가 560 ㎛ 이상 내지 710 ㎛ 이하의 수화겔 입자들을 선별하였다. After the stirring product was naturally dried at room temperature, the natural drying product was crushed finely, and hydrogel particles having a size of 560 μm or more and 710 μm or less were selected.
<비교시료 4의 제조예 ><Production Example of
젤라틴이 주 물질인 색전물질로서 칼리-겔®(Cali-Gel®)을 사용하였다. 칼리-겔®은 엠보제닉(EMBOGENIC)사(社)로부터 구매하였다. As the embolization gelatin Prime Material curry was used for gel ® (Cali-Gel ®). Kali-Gel ® was purchased from EMBOGENIC.
<실험예 2: 리피오돌®의 흡수력 비교 >Experimental Example 2: Comparison of Absorption Capacity of Lipiodol ®
실험시료 7 내지 12, 비교시료 3 및 4를 이용하여 옥타데실 아민의 농도에 따른 리피오돌®의 흡수력을 비교하였다. Using a
실험시료 7 내지 12를 각각 50 mg 씩 취한 후, 이를 각각 별개의 15 mL 용량의 원심분리용 튜브에 넣었다. 같은 방법으로 비교시료 3 및 4를 각각 50 mg 취한 후, 이를 15 mL 용량의 원심분리용 튜브에 넣었다.50 mg of each of the test samples 7-12 were taken and then placed in separate 15 mL centrifuge tubes. In the same manner, 50 mg of
실험시료 7 내지 12, 비교시료 3 및 4를 각각 담고 있는 각각의 원심분리용 튜브에 리피오돌® (에틸 모노아이오도스테아레이트) 2 mL (2.560g) 씩을 넣고 섞은 후 30 분간 방치하였다. After the
이후, 4000 rpm에서 1분간 원심분리하였고, 상층액을 제거한 후, 질량을 측정하였다. 측정값에서 리피오돌® 질량을 환산하였다. 상기한 실험과정을 3회 반복하였다. Thereafter, the mixture was centrifuged at 4000 rpm for 1 minute, and after removing the supernatant, the mass was measured. Lipiodol ® mass was converted from the measured values. The above experimental procedure was repeated three times.
도 7은 실험시료 7 내지 12의 수화겔 입자들과 비교시료 3 및 4의 수화겔 입자들의 리피오돌® 흡수력 비교 그래프이다. 표 2는 도 7의 리피오돌® 질량 환산값들을 정리하고, 이를 리피오돌® 첨가량에 대한 백분율로 정리한 표이다. 7 is a graph comparing
표 2
도 7과 상기 표 2를 참고하면, 실험오차를 고려하더라도 비교시료 3 및 4의 수화겔 입자는 리피오돌® 의 평균 흡수량이 리피오돌® 의 첨가량을 기준으로 50 중량% 미만인 반면에, 실험시료 7 내지 12의 수화겔 입자는 리피오돌® 의 평균 흡수량이 리피오돌® 의 첨가량을 기준으로 50 중량% 초과임을 확인할 수 있다. On the other hand, Figure 7 and Referring to Table 2, even considering the experimental error detection hydrogel particles of the
또한, 실험시료 7 내지 12의 수화겔 입자는 리피오돌® 의 평균 흡수량이 리피오돌® 의 첨가량을 기준으로 70 중량% 초과임을 확인할 수 있었다. In addition, the hydrogel particles of the
도 7과 상기 표 2를 참고하면, 옥타데실 아민의 함량이 수화겔 입자의 전체 중량 대비 0 중량%인 비교시료 3 및 4 와 달리, 실험시료 7 내지 12 는 옥타데실 아민의 함량이 수화겔 입자의 전체 중량 대비 0.5 중량% 인 때부터, 리피오돌® 의 평균 흡수량이 급격히 증가한 후, 옥타데실 아민의 함량이 증가하는 경우에도 일정 수준을 유지하는 것을 확인할 수 있다. Referring to FIG. 7 and Table 2, unlike
이를 수치로 환산해보면, 실험시료 7 내지 12의 리피오돌® 의 평균 흡수량의 평균은 85.4 중량% 이고, 실험시료 8 내지 12의 리피오돌® 의 평균 흡수량의 평균은 87.8 중량% 이었다. 이로부터, 실험시료 7 내지 12의 수화겔 입자는 리피오돌® 의 평균 흡수량의 평균이 최소 85 중량% 초과이고, 88 중량% 미만임을 알 수 있다. In terms of numerical values, the average absorption of Lipiodol ® in Experimental Samples 7-12 was 85.4 wt%, and the average absorption of Lipiodol ® in Experimental Samples 8-12 was 87.8 wt%. From this, it can be seen that the hydrogel particles of the
<실험예 3: 리피오돌®의 흡수력 비교 >Experimental Example 3: Comparison of Absorption Capacity of Lipiodol ®
실험시료 13, 비교시료 4 각각에 리피오돌® (에틸 모노아이오도스테아레이트) 2.5 mL (3.200g) 씩을 넣은 것을 제외하고는 실험예 2와 동일한 방법으로 리피오돌® 질량을 환산하였다.
도 8은 실험시료 13의 수화겔 입자와 비교시료 4의 수화겔 입자의 리피오돌® 흡수력 비교 그래프이다. 표 3은 도 8의 리피오돌® 질량 환산값들을 정리하고, 이를 리피오돌® 첨가량에 대한 백분율로 정리한 표이다. 8 is a graph comparing Lipiodol® absorption of hydrogel particles of
표 3
도 8과 상기 표 3을 참고하면, 비교시료 4의 수화겔 입자는 리피오돌® 의 평균 흡수량이 리피오돌® 의 첨가량을 기준으로 50 중량% 미만인 반면에, 실험시료 13의 수화겔 입자는 리피오돌® 의 평균 흡수량이 리피오돌® 의 첨가량을 기준으로 50 중량% 초과임을 확인할 수 있다. Hydrogel particles of Figure 8 and Table Referring to Figure 3, compare hydrogel particles of the
또한, 실험시료 13의 수화겔 입자는 리피오돌® 의 평균 흡수량이 리피오돌® 의 첨가량을 기준으로 70 중량% 초과임을 확인할 수 있었다. In addition, the hydrogel particles of the
<실험예 4 : 리피오돌®의 잔류 함량 비교 >Experimental Example 4: Residual Content Comparison of Lipiodol ®
실제 색전술을 모사하기 위하여 상기 실험예 2에서 원심분리 후 상층액이 분리된 실험시료 7 내지 12 각각의 튜브, 비교시료 3 및 4 의 각각의 튜브에 5 mL의 인산완충식염수(PBS)를 각각 첨가하고 롤링 믹서(rolling mixer)에서 10 분간 혼합하였다. In order to simulate the actual embolization, 5 mL of phosphate buffered saline (PBS) was added to each tube of the
이후, 4000 rpm에서 1분간 원심분리한 후, 상층액을 제거하고, 질량을 측정하였다. 측정값에서 리피오돌® 질량을 환산하였다. 상기한 실험과정을 3회 반복하였다. Then, after centrifuging for 1 minute at 4000 rpm, the supernatant was removed, and the mass was measured. Lipiodol ® mass was converted from the measured values. The above experimental procedure was repeated three times.
도 9는 실험시료 7 내지 12의 수화겔 입자들과 리피오돌® 을 포함하는 실험 복합 색전물질 시료들과 비교시료 3 및 4의 수화겔 입자들과 리피오돌® 을 포함하는 비교 복합 색전물질 시료들의 리피오돌® 잔류 함량 비교 그래프이다. 표 4는 도 9의 리피오돌® 질량 환산값들을 정리하고, 이를 리피오돌® 첨가량에 대한 백분율로 정리한 표이다. Figure 9 shows the hydrogel particles and Lipiodol ® of the
표 4
도 9와 상기 표 4를 참고하면, 실험오차를 고려하더라도 비교시료 3 및 4의 수화겔 입자는 리피오돌® 의 평균 잔존 함량이 리피오돌® 의 첨가량을 기준으로 25 중량% 미만인 반면에, 실험시료 7 내지 12의 수화겔 입자는 리피오돌® 의 평균 잔존 함량이 리피오돌® 의 첨가량을 기준으로 25 중량% 초과임을 확인할 수 있다. 9 and referring to Table 4, even considering the experimental error detection hydrogel particles of the
또한, 실험시료 7 내지 12의 수화겔 입자는 리피오돌® 의 평균 잔존 함량이 리피오돌® 의 첨가량을 기준으로 50 중량% 초과임을 확인할 수 있었다. The experimental hydrogel particles of the
도 9와 상기 표 4를 참고하면, 실험시료 7 내지 12 는 옥타데실 아민의 함량이 수화겔 입자의 전체 중량 대비 0.5 중량% 인 때부터, 옥타데실 아민의 함량이 수화겔 입자의 전체 중량 대비 0 중량%인 비교시료 3 및 4 와 달리, 리피오돌® 의 평균 잔존 함량이 급격히 증가한 후, 옥타데실 아민의 함량이 증가하는 경우에도 일정 수준을 유지하는 것을 확인할 수 있다. Referring to FIG. 9 and Table 4,
이를 수치로 환산해보면, 실험시료 7 내지 12의 리피오돌® 의 평균 자존 함량의 평균은 72.4 중량% 이고, 실험시료 8 내지 12의 리피오돌® 의 평균 흡수량의 평균은 76.3 중량% 이었다. 이로부터, 실험시료 7 내지 12의 수화겔 입자는 리피오돌® 의 평균 잔존 함량의 평균값이 최소 72 중량% 초과이고, 77 중량% 미만임을 알 수 있다. In terms of the numerical value, the average of the self-sustained content of Lipiodol ® of the test samples 7-12 was 72.4% by weight, and the average absorption of Lipiodol ® of the test samples 8-12 was 76.3% by weight. From this, it can be seen that the hydrogel particles of the
<실험예 5: 리피오돌®의 잔류 함량 비교 >Experimental Example 5: Residual Content Comparison of Lipiodol ®
실험시료 13, 비교시료 4 각각에 리피오돌® (에틸 모노아이오도스테아레이트) 2.5 mL (3.200g) 씩을 넣은 것을 제외하고는 실험예 4와 동일한 방법으로 리피오돌® 질량을 환산하였다. Lipiodol ® mass was converted in the same manner as in
도 10은 실험시료 13의 수화겔 입자와 비교시료 4의 수화겔 입자의 리피오돌® 흡수력 비교 그래프이다. 표 5는 도 10의 리피오돌® 질량 환산값들을 정리하고, 이를 리피오돌® 첨가량에 대한 백분율로 정리한 것이다. Figure 10 is a comparison graph of lipiodol ® absorbent hydrogel particles in the experimental sample and the
표 5
도 10과 상기 표 5를 참고하면, 실험오차를 고려하여도, 비교시료 4의 수화겔 입자는 리피오돌® 의 평균 잔존 함량이 리피오돌® 의 첨가량을 기준으로 20 중량% 미만인 반면에, 실험시료 13의 수화겔 입자는 리피오돌® 의 평균 잔존 함량이 리피오돌® 의 첨가량을 기준으로 20 중량% 초과임을 확인할 수 있다. With reference to Table 5 and FIG. 10, in consideration of the experimental error, the hydrogel particles of
또한, 실험시료 13의 수화겔 입자는 리피오돌® 의 평균 잔존 함량이 리피오돌® 의 첨가량을 기준으로 35 중량% 초과임을 확인할 수 있었다. In addition, the hydrogel particles of the
<실험예 6: GC/MS >Experimental Example 6: GC / MS
실험시료 10 내지 12를 각각 50 mg 씩 취한 후, 이를 각각 별개의 15 mL 용량의 원심분리용 튜브에 넣었다. 같은 방법으로 비교시료 3 및 4를 각각 50 mg 취한 후, 이를 15 mL 용량의 원심분리용 튜브에 넣었다.50 mg of each of the test samples 10-12 was taken and then placed in separate 15 mL centrifuge tubes. In the same manner, 50 mg of
실험시료 10 내지 12, 비교시료 3 및 4를 각각 담고 있는 각각의 원심분리용 튜브에 리피오돌® (에틸 모노아이오도스테아레이트) 2 mL (2.560g) 씩을 넣고 섞은 후 30 분간 방치하였다. 이후, 4000 rpm에서 1분간 원심분리하였고, 상층액을 제거한 후, 각각의 원심분리용 튜브에 헥산 1 mL를 첨가하고 10분간 실온(23 ℃)에서 초음파 분산시켰다. 이후, 4000 rpm에서 1분간 원심분리한 후, 상층액에서 200 ㎛ 씩을 취하여 여과한 후, GC/MS 분석법을 이용하여 리피오돌®의 함량을 분석하였다. 표준품(STD)은 헥산 1 mL이었다.After the
표 6은 비교 복합 색전물질 시료들의 리피오돌® 함량에 대한 실험 색전물질 시료들의 리피오돌® 함량의 비교표이다.Table 5 provides a comparison of lipiodol ® content of experimental sample embolic materials for lipiodol ® content of the comparison compound embolic material sample.
표 6
도 11과 상기 표 6을 참고하면, 실험 복합 색전물질 시료들은 비교 복합 색전물질 시료들에 비해 약 150% 정도 리피오돌® 의 흡수량이 많음을 확인할 수 있다. Referring to Table 6 and Figure 11, the test composite sample embolic materials can see this amount of water absorption of 150% of lipiodol ® plenty compared to comparative compound embolic material sample.
도 12 내지 도 17의 GC 분석결과를 요약하면 하기 표 7과 같다. 도 12 는 실험시료 10의 수화겔 입자와 리피오돌® 을 포함하는 실험 복합 색전물질 시료의 기체크로마토그래피(GC) 분석 결과 그래프이다. A summary of the GC analysis results of FIGS. 12 to 17 is shown in Table 7 below. 12 is a gas chromatography (GC) analysis result graph of an experimental composite embolic material sample including hydrogel particles and Lipiodol ® of
도 13은 실험시료 11의 수화겔 입자와 리피오돌®을 포함하는 실험 복합 색전물질 시료의 기체크로마토그래피(GC) 분석 결과 그래프이다. FIG. 13 is a graph of gas chromatography (GC) analysis of an experimental composite embolic material sample including hydrogel particles and Lipiodol ® of
도 14는 실험시료 12의 수화겔 입자와 리피오돌® 을 포함하는 실험 복합 색전물질 시료의 기체크로마토그래피(GC) 분석 결과 그래프이다. FIG. 14 is a gas chromatographic (GC) analysis result graph of an experimental composite embolic material sample including hydrogel particles and Lipiodol ® of
도 15는 비교시료 3의 수화겔 입자와 리피오돌® 을 포함하는 비교 복합 색전물질 시료의 기체크로마토그래피(GC) 분석 결과 그래프이다. FIG. 15 is a graph of gas chromatography (GC) analysis of a comparative composite embolic material sample including hydrogel particles and Lipiodol ® of
도 16은 비교시료 4의 수화겔 입자와 리피오돌® 을 포함하는 비교 복합 색전물질 시료의 기체크로마토그래피(GC) 분석 결과 그래프이다. FIG. 16 is a graph of gas chromatography (GC) analysis of comparative composite embolic material samples including hydrogel particles and Lipiodol ® of
도 17은 표준품의 기체크로마토그래피(GC) 분석 결과 그래프이다. 17 is a graph of gas chromatography (GC) analysis results of a standard product.
표 7
하기 표 8은 질량분석(MS) 결과표이다. 하기 표 8을 참고하면, 27.0 분 근처에서 에틸 스테아레이트가 검출됨을 확인할 수 있고, 98%의 일치율을 보임을 확인할 수 있다. 도 11은 도 12 내지 도 16의 기체크로마토그래피(GC) 분석 결과를 토대로 하여 27.0 분 대의 피크 면적을 기반으로 리피오돌® 의 상대 함량을 비교한 것이다. Table 8 below is a mass spectrometry (MS) result table. Referring to Table 8 below, it can be seen that ethyl stearate is detected at around 27.0 minutes, showing a concordance rate of 98%. Figure 11 is a comparison of the relative content of gas chromatography lipiodol ® 27.0 minutes based on the peak area units and based on a (GC) analysis of the 12 to 16.
표 8
<실험예 7: FT-IR 스펙트럼 >Experimental Example 7: FT-IR Spectrum
실험시료 10 내지 12, 비교시료 3 및 4를 이용하여 실험시료의 수화겔 입자들의 화학 구조와 비교시료의 수화겔 입자들의 화학 구조를 비교 분석하였다. 실험시료 10 내지 12, 비교시료 3 및 4 각각의 수화겔 입자를 각각 브롬화 칼륨(Kbr)과 혼합하여 펠렛(pellet)을 제작한 후, FT-IR 분광기(Spectrum GX, Perkin Elmer 社)를 이용하여 FT-IR 스펙트럼을 얻었다. 분석범위는 4,000 ㎝-1 내지 400 ㎝-
1 이었고, 1 ㎝-1의 분해능으로 6회 반복 스캔하였다. The chemical structures of the hydrogel particles of the test sample and the chemical structures of the hydrogel particles of the comparative sample were analyzed using the
도 18은 비교시료 10의 수화겔 입자의 FT-IR 스펙트럼이다. FIG. 18 is an FT-IR spectrum of hydrogel particles of
도 19는 비교시료 11의 수화겔 입자의 FT-IR 스펙트럼이다. 19 is an FT-IR spectrum of hydrogel particles of
도 20은 비교시료 12의 수화겔 입자의 FT-IR 스펙트럼이다. 20 is an FT-IR spectrum of the hydrogel particles of
도 21은 비교시료 3의 수화겔 입자의 FT-IR 스펙트럼들이다. 21 are FT-IR spectra of the hydrogel particles of
도 22는 비교시료 4의 수화겔 입자의 FT-IR 스펙트럼들이다.
FIG. 22 is FT-IR spectra of hydrogel particles of
도 18 내지 도 22를 참조하면, 실험시료 10 내지 12의 수화겔 입자들은 약 2850 cm-1 내지 약 3000 cm-
1 의 파동수 범위에서 C-H 신축 진동(stretching vibration) 피크가 나타나는 반면에, 비교시료 3 및 4의 수화겔 입자들은 약 2850 cm-1 내지 약 3000 cm-
1 의 파동수 범위에서 C-H 신축 진동(stretching vibration) 피크가 나타나지 않았다. Referring to Figure 18 to Figure 22, the experimental sample of hydrogel particles from 10 to 12 are about 2850 cm -1 to about 3000 cm - in the wave number range of 1, whereas the CH stretching vibration (stretching vibration) peak appears, the
약 2850 cm-1 내지 약 3000 cm- 1 의 파동수 범위에서 C-H 신축 진동(stretching vibration) 피크는 C18 ~ C26 지방족 탄화수소의 메틸렌(CH2)의 C-H 신축 진동 피크로서, 도 18 내지 도 22 로부터 젤라틴에 C18 ~ C26 지방족 탄화수소가 화학결합되어 있음이 확인되었다. C-H 신축 진동은 약 2920 ㎝-1 에서 C-H 비대칭 신축(asymmetrical stretch) 진동 피크와 약 2,853 ㎝-1 에서 C-H 대칭 신축(symmetrical stretch) 진동 피크로 분석된다. FT-IR 스펙트럼에서 파동수는 ±8 cm-1 범위 내의 오차범위를 가질 수 있다. The CH stretching vibration peak in the frequency range of about 2850 cm −1 to about 3000 cm − 1 is the CH stretching vibration peak of methylene (CH 2 ) of C 18 to C 26 aliphatic hydrocarbon, FIGS. 18 to 22. It was confirmed that the C 18 ~ C 26 aliphatic hydrocarbon is chemically bonded to gelatin. CH stretching vibration is about 2920 cm -1 at CH Asymmetrical stretch vibration peaks and CH symmetrical stretch vibration peaks at about 2,853 cm −1 are analyzed. The number of waves in the FT-IR spectrum can have an error range within the range of ± 8 cm −1 .
옥타데실 아민이 포함되어 있지 않고 젤라틴이 주 물질인 비교시료 3 및 4의 수화겔 입자들의 FT-IR 스펙트럼은 거의 동일함을 확인할 수 있었다. It was confirmed that the FT-IR spectra of the hydrogel particles of
상기한 실험시료의 제조예, 실험예 등은 발명의 이해를 돕기 위한 것으로서 발명의 기술적 사상이 상기한 실험시료의 제조예, 실험예 등으로만 제한되는 것은 아니다. 발명의 기술적 사상을 해치지 않는 범위 내에서의 균등물의 치환, 다른 구성요소의 부가, 삭제 등은 여전히 본 명세서 내에 합체되어 발명의 내용을 구성한다 할 것이다. The preparation examples, experimental examples, and the like of the experimental samples are for the purpose of understanding the invention, and the technical spirit of the present invention is not limited to the above-described preparation examples, experimental examples, and the like. Substitution of equivalents, addition of other components, deletion, and the like within the scope of not impairing the technical idea of the present invention will still be incorporated in the present specification to constitute the present invention.
발명의 일 실시예에 따른 수화겔 입자와 복합 색전물질은 요오드계 조영제의 사용을 최소화할 수 있으므로 상기 요오드계 조영제의 부작용을 저감시킬 수 있고, 혈관 내에서 선택적으로 혈전을 형성시키거나 또는 혈류를 차단할 수 있으므로 색전술의 정밀도를 높일 수 있다. Hydrogel gel particles and complex embolic material according to an embodiment of the present invention can minimize the use of iodine-based contrast agent to reduce the side effects of the iodine-based contrast agent, to selectively form blood clots in the blood vessels or to block blood flow As a result, the accuracy of embolization can be increased.
본 발명에 따른 효과는 이상에서 예시된 내용에 의해 제한되지 않으며, 더욱 다양한 효과들이 본 명세서 내에 포함되어 있다.The effects according to the present invention are not limited by the contents exemplified above, and more various effects are included in the present specification.
Claims (20)
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- 2015-05-08 WO PCT/KR2015/004648 patent/WO2016178448A1/en not_active Ceased
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| KR101667328B1 (en) | 2016-10-18 |
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| Date | Code | Title | Description |
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| 121 | Ep: the epo has been informed by wipo that ep was designated in this application |
Ref document number: 15891312 Country of ref document: EP Kind code of ref document: A1 |
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| NENP | Non-entry into the national phase |
Ref country code: DE |
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| 122 | Ep: pct application non-entry in european phase |
Ref document number: 15891312 Country of ref document: EP Kind code of ref document: A1 |