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WO2016039163A1 - 神経疾患の治療に適したｈｇｆ製剤 - Google Patents

神経疾患の治療に適したｈｇｆ製剤 Download PDF

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WO2016039163A1
WO2016039163A1 PCT/JP2015/074310 JP2015074310W WO2016039163A1 WO 2016039163 A1 WO2016039163 A1 WO 2016039163A1 JP 2015074310 W JP2015074310 W JP 2015074310W WO 2016039163 A1 WO2016039163 A1 WO 2016039163A1
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WO
WIPO (PCT)
Prior art keywords
hgf
protein
preparation according
preparation
solution
Prior art date
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PCT/JP2015/074310
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English (en)
French (fr)
Inventor
一弘 福田
逸男 井上
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Kringle Pharma Inc
Original Assignee
Kringle Pharma Inc
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
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Publication date
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Priority to CN201580048600.8A priority patent/CN106714823A/zh
Priority to KR1020177009589A priority patent/KR101950916B1/ko
Priority to US15/507,886 priority patent/US10213485B2/en
Priority to ES15840062T priority patent/ES2907125T3/es
Priority to JP2016547358A priority patent/JP6281992B2/ja
Application filed by Kringle Pharma Inc filed Critical Kringle Pharma Inc
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Priority to DK15840062.2T priority patent/DK3192524T3/da
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    • A61P25/28—Drugs for disorders of the nervous system for treating neurodegenerative disorders of the central nervous system, e.g. nootropic agents, cognition enhancers, drugs for treating Alzheimer's disease or other forms of dementia
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    • A61P9/00—Drugs for disorders of the cardiovascular system
    • A61P9/10—Drugs for disorders of the cardiovascular system for treating ischaemic or atherosclerotic diseases, e.g. antianginal drugs, coronary vasodilators, drugs for myocardial infarction, retinopathy, cerebrovascula insufficiency, renal arteriosclerosis

Definitions

  • the present invention relates to a preparation containing a hepatocyte growth factor (hereinafter referred to as “HGF”) protein. More specifically, the present invention relates to preparations such as lyophilized preparations and injection solutions containing HGF protein. The present invention also relates to preparations such as lyophilized preparations and injection solutions that contain HGF protein and are suitable for treatment of central nervous system diseases.
  • HGF hepatocyte growth factor
  • HGF was found as a physiologically active protein having growth promoting activity on mature hepatocytes (see, for example, Non-Patent Document 1). From subsequent studies, it is known that HGF protein acts not only on hepatocytes but also on many epithelial cells, vascular endothelial cells, etc., and is involved in the repair and regeneration of tissue and organ damage (Non-Patent Documents). 2). The HGF protein can be mass-produced as a recombinant protein by biotechnological techniques (see, for example, Non-Patent Document 3), and the recombinant HGF protein can be used not only for hepatitis and cirrhosis but also as a therapeutic agent for kidney diseases, wounds, etc.
  • Non-Patent Document 2 HGF protein has also promoted neuronal survival and neurite outgrowth through numerous studies in gene expression and functional analysis including the technique of knockout / knock-in mice in recent years. Is also an important factor (see Non-Patent Documents 4 and 5).
  • HGF protein exhibits neurotrophic factor activity against nerve cells such as hippocampal neurons, dopaminergic neurons, cerebellar granule cells, sensory neurons, and motor neurons (see Non-Patent Document 6).
  • HGF protein exhibits a strong survival promoting action on motor neurons (see Non-Patent Document 7), and its activity is derived from a glial cell line known to have the most powerful survival promoting action on motor neurons. It is also comparable to the activity of neurotrophic factor (GDNF). Based on such neurotrophic activity, it has been reported that HGF protein can be used as a therapeutic agent for various neurological diseases including amyotrophic lateral sclerosis (ALS) and spinal cord injury (Patent Documents 1 to 4). 3, see Non-Patent Documents 5, 8, and 9).
  • ALS amyotrophic lateral sclerosis
  • Patent Documents 1 to 4 see Non-Patent Documents 5, 8, and 9.
  • Protein drugs are generally injected intravenously, subcutaneously or intramuscularly.
  • proteins administered by these administration routes are extremely difficult to transfer to the central nervous system due to the presence of the brain blood barrier existing between the brain tissue and blood vessels. Therefore, in order to use HGF protein for the treatment of central nervous system diseases, it is not directly administered to the central nervous system rather than the administration route such as intravenous injection, subcutaneous or intramuscular injection performed for the treatment of general organ diseases. Therefore, intrathecal administration or intracerebroventricular administration is considered to be effective in order to deliver HGF protein (see Non-Patent Documents 8 and 9).
  • Intrathecal administration and intracerebroventricular administration are administration routes that are also used in anticancer drug treatment for brain tumors. In addition, for the purpose of treating central nervous disease, it is also conceivable to administer HGF protein directly into the brain parenchyma or spinal cord parenchyma.
  • Patent Document 4 discloses an aqueous solution preparation containing albumin, human serum, gelatin, sorbitol, mannitol, xylitol and the like as stabilizers in HGF protein (also referred to as TCF-II). (See Patent Document 4).
  • HGF aqueous solution preparation has drawbacks that aggregation, white turbidity, and gelation of HGF protein progress during storage, and a low physicochemical stability such as formation of a polymer of HGF protein (HGF polymer). There is a problem that the biological activity decreases.
  • Patent Document 5 discloses a lyophilized HGF preparation in which HGF contains arginine, lysine, histidine, glutamine, proline, glutamic acid, aspartic acid or the like as a stabilizer.
  • Patent Document 6 discloses a freeze-dried HGF preparation containing HGF containing glycine, alanine, sorbitol, mannitol, dextran sulfate, or the like as a stabilizer (see Patent Document 6).
  • Patent Document 7 discloses a freeze-dried HGF preparation obtained by adding purified sucrose, alanine and the like to HGF (see Patent Document 7).
  • Injection solutions prepared from such formulations are considered safe for intravenous, subcutaneous or intramuscular injections performed for the treatment of common organ diseases, such as intrathecal administration and
  • intracerebroventricular administration the HGF protein is directly administered to the central nervous system, and it is necessary to sufficiently confirm the safety of the formulation components to the central nervous system, including various components added to the formulation.
  • the conventionally disclosed HGF preparations there is no known preparation that has been confirmed to be safe for use in intrathecal or intraventricular administration, intraspinal administration or intraparenchymal administration.
  • HGF preparation that can be used for intrathecal administration, intraventricular administration, spinal cord intraparenchymal administration, or intracerebral administration for the treatment of CNS diseases.
  • the present invention provides an HGF preparation such as an injection solution having high safety for the central nerve, which can be used for intrathecal administration or intracerebroventricular administration, spinal cord intraparenchymal administration or intracerebral administration for the treatment of CNS diseases. This is the issue.
  • the HGF preparation usually needs to be excellent in stability so that it can be used as a practical medicine.
  • Another object of the present invention is to provide HGF preparations such as injection solutions and freeze-dried preparations having excellent stability.
  • HGF protein polymer by adding lactose, glycine, sodium chloride, pH buffering agent and surfactant to HGF protein. It was found that HGF solution containing these components can be used as a stable HGF injection solution, and that a stable HGF freeze-dried preparation can be obtained by freeze-drying the HGF solution. . Furthermore, it has been found that an HGF injection solution containing these components has very little toxicity to the central nervous system and is highly safe for the nervous system such as the central nervous system. Based on these findings, the inventors of the present invention have further advanced research and have completed the present invention. The HGF preparation of the present invention has sufficient stability for use as a pharmaceutical product.
  • the HGF injection solution of the present invention is used in the intrathecal or brain for the treatment of various central nervous diseases such as ALS and spinal cord injury. It can be safely administered indoors, or in the spinal cord parenchyma or brain parenchyma.
  • the present invention provides the following HGF preparations.
  • An HGF preparation comprising hepatocyte growth factor (HGF) protein as an active ingredient, and further containing lactose, glycine, sodium chloride, a pH buffer, and a surfactant.
  • the HGF preparation according to (1) above which is a lyophilized preparation.
  • the lyophilized preparation obtained by lyophilizing an aqueous solution containing hepatocyte growth factor (HGF) protein, lactose, glycine, sodium chloride, a pH buffer, and a surfactant.
  • HGF preparation (4) The HGF preparation according to any one of (1) to (3), wherein the lactose content is 0.1 to 50 parts by weight with respect to 1 part by weight of HGF.
  • the HGF preparation according to (3) wherein the concentration of lactose in the aqueous solution is 0.1 to 100 mg / mL.
  • the HGF preparation according to (3) wherein the concentration of glycine in the aqueous solution is 0.05 to 50 mg / mL.
  • the HGF preparation according to (3) above wherein the HGF protein concentration in the aqueous solution is 0.05 to 40 mg / mL.
  • the HGF preparation according to (1) above, wherein the pH buffer is a combination of citric acid or a hydrate thereof and a salt of citric acid.
  • the HGF preparation according to (1) above, wherein the surfactant is polysorbate.
  • the HGF preparation according to (1) which is an injection solution.
  • the HGF preparation according to the above (1) which is used for treatment of a central nervous disease.
  • the central nervous disease is amyotrophic lateral sclerosis (ALS), Alzheimer's disease, Parkinson's disease, Huntington's chorea, spinocerebellar degeneration, spinal cord injury, cerebral infarction, cerebral ischemia, and multiple sclerosis.
  • the HGF preparation according to (12) which is any of the above.
  • the HGF preparation according to (10), wherein the lactose concentration in the injection solution is 0.1 to 100 mg / mL.
  • the HGF preparation according to (10) above, wherein the concentration of glycine in the injection solution is 0.05 to 50 mg / mL.
  • the HGF preparation according to (10) above, wherein the HGF protein concentration in the injection solution is 0.05 to 40 mg / mL.
  • the HGF preparation according to (1), wherein the HGF protein is a human-derived HGF protein.
  • the HGF preparation according to (18), wherein the HGF protein is a protein comprising the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 5 or SEQ ID NO: 6.
  • the HGF protein according to (1) wherein the HGF protein is a protein having a sequence identity of 80% or more with respect to the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 5, and having a biological activity as HGF.
  • HGF preparation also relates to a method for stabilizing HGF in an HGF aqueous solution or an HGF lyophilized preparation with lactose, glycine, sodium chloride, a pH buffer, and a surfactant, more specifically, a method for suppressing the production of a polymer of HGF protein.
  • lactose lactose
  • glycine sodium chloride
  • a pH buffer a pH buffer
  • surfactant more specifically, a method for suppressing the production of a polymer of HGF protein.
  • the present invention treats the central nervous system disease by administering the HGF preparation described in the above (1) intrathecally, intraventricularly, in the spinal cord parenchyma or in the brain parenchyma of a patient suffering from a central nervous system disease.
  • the method administering the HGF preparation described in the above (1) intrathecally, intraventricularly, in the spinal cord parenchyma or in the brain parenchyma of a patient suffering from a central nervous system disease.
  • the HGF preparation of the present invention is stable as a preparation and can be safely used for the central nervous system.
  • the HGF injection solution of the present invention is highly safe for the central nervous system, and is used for treatment of various central nervous diseases such as ALS and spinal cord injury, intrathecally or intraventricularly, or in the spinal cord parenchyma or brain. It can be administered intrathecally.
  • the HGF preparation of the present invention contains HGF protein as an active ingredient, and further contains lactose, glycine, sodium chloride, a pH buffer, and a surfactant.
  • the HGF preparation of the present invention may contain an active ingredient (medicinal ingredient) in addition to the HGF protein, but preferably contains no active ingredient other than the HGF protein.
  • the dosage form of the HGF preparation of the present invention is not particularly limited.
  • a lyophilized preparation a dosage form for parenteral administration such as an injection solution, and the like are preferable.
  • the lyophilized formulation is preferably a lyophilized formulation for injection.
  • the injection solution means a liquid composition that can be directly injected into a living body.
  • HGF injection solution When the HGF preparation of the present invention is an injection solution, it may be simply abbreviated as “HGF injection solution”.
  • the freeze-dried preparation means a preparation whose components are provided in a solid state called a lyophilized product.
  • HGF freeze-dried preparation When the HGF preparation of the present invention is a freeze-dried preparation, it may be simply abbreviated as “HGF freeze-dried preparation”.
  • the lyophilized preparation is usually dissolved in an appropriate solvent (solution) at the time of use, and the solution is directly administered as an injection solution or, if desired, further diluted in an appropriate solvent and then administered as an injection solution. That is, it can be said that a solution obtained by adding an arbitrary solvent to a lyophilized preparation is substantially equivalent to an injection solution.
  • the HGF preparation of the present invention is preferably a lyophilized preparation containing HGF protein as an active ingredient and further containing lactose, glycine, sodium chloride, a pH buffering agent, and a surfactant.
  • An HGF injection solution containing HGF protein as an active ingredient and further containing lactose, glycine, sodium chloride, a pH buffer, and a surfactant is also a preferred embodiment of the HGF preparation of the present invention.
  • the HGF preparation of the present invention is highly safe for the central nervous system.
  • HGF preparations such as the HGF injection of the present invention have extremely low toxicity to the central nervous system, and can be administered, for example, intrathecally or intraventricularly, or in the spinal cord or brain parenchyma, It can be suitably used for the treatment of various central nervous diseases.
  • the species of HGF protein in the present invention is not particularly limited, and various animal-derived HGF proteins (natural HGF proteins or recombinant proteins produced by genetic engineering techniques) and the like can be suitably used.
  • an animal-derived HGF protein to which the HGF preparation of the present invention is applied.
  • a human-derived HGF protein hereinafter sometimes referred to as human HGF protein
  • it is a recombinant human HGF protein.
  • HGF preparation of the present invention is used for mammals other than humans, it is preferable to use HGF derived from those animal species, such as monkeys, cows, horses, pigs, sheep, dogs, cats, rats. HGF proteins derived from mice, rabbits, hamsters, guinea pigs, chimpanzees and the like can be used.
  • the HGF protein used in the present invention may be a deletion type (dHGF) from which 5 amino acid residues have been deleted.
  • the human HGF protein is preferably, for example, a protein encoded by DNA consisting of the base sequence represented by SEQ ID NO: 1 or SEQ ID NO: 2. More specifically, a protein comprising the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 3, a protein comprising the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 4, a protein comprising the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 5, A protein comprising such an amino acid sequence is preferred.
  • a protein having the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 5 or SEQ ID NO: 6 is preferable, and a protein comprising the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 5 or SEQ ID NO: 6 is more preferable.
  • the HGF protein consisting of the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 6 is a 5-amino acid deficient HGF protein from which the 5th amino acid residue at positions 131 to 135 of the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 5 has been deleted. (DHGF).
  • HGF proteins naturally present in the human body, and have a mitogen activity as HGF, motogen) activity and the like.
  • the HGF protein used in the present invention is a protein having at least about 80% sequence identity with the amino acid sequence of various animal-derived HGF proteins (natural HGF protein), preferably about 90% or more sequence identity. And a protein having a sequence identity of about 95% or more, and a protein having biological activity (mitogenic activity and motogenic activity) as HGF is also included.
  • sequence identity means the identity of amino acid residues constituting each sequence between sequences when comparing the primary structure of proteins.
  • “% Or more” means the degree of identity. means. It can be confirmed that the HGF protein has the mitogenic activity and the motogenic activity according to the method described in J. Biol. Chem. 273, 22913-22920, 1998, for example. Compared with natural HGF protein, the mitogenic activity and motogenic activity measured according to the above J. Biol. Is preferably about 80% or more, more preferably about 90% or more of protein.
  • Examples of the protein having the above sequence identity with the HGF protein include an amino acid sequence in which one to several amino acid residues are substituted, deleted, and / or inserted from the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 5 or 6, Alternatively, a protein having an amino acid sequence in which one to several amino acid residues are modified, etc., and having a biological activity as HGF can be mentioned. “Several” means usually 1 to 8 (1, 2, 3, 4, 5, 6, 7, 8), usually 8, preferably 6, more preferably 5, The number is preferably 3, and particularly preferably 2.
  • the amino acid to be inserted or substituted is preferably a natural amino acid, but may be a non-natural amino acid other than the 20 amino acids encoded by the gene.
  • the unnatural amino acid may be any compound as long as it has an amino group and a carboxyl group, and examples thereof include ⁇ -aminobutyric acid.
  • substitution of an amino acid residue means substitution of an amino acid residue in a polypeptide with another amino acid residue, preferably conservative substitution.
  • conservative substitution is meant replacing one to several amino acid residues with another chemically similar amino acid residue such that the activity of the polypeptide is not substantially altered. For example, when a certain hydrophobic amino acid residue is substituted by another hydrophobic amino acid residue, a certain polar amino acid residue is substituted by another polar amino acid residue having the same charge, and the like. Functionally similar amino acids that can make such substitutions are known in the art for each amino acid.
  • amino acids having nonpolar (hydrophobic) side chains include glycine, alanine, valine, isoleucine, leucine, proline, tryptophan, phenylalanine, and methionine.
  • neutral ones include serine, threonine, tyrosine, glutamine, asparagine, cysteine and the like.
  • positively charged (basic) amino acids include arginine, histidine, and lysine.
  • negatively charged (acidic) amino acids include aspartic acid and glutamic acid.
  • HGF protein Only one type of HGF protein may be contained in the preparation of the present invention, or two or more types of HGF proteins described above may be used.
  • HGF protein used in the preparation of the present invention those prepared by various methods can be used as long as they are purified to the extent that they can be used as pharmaceuticals.
  • Various methods are known as methods for preparing HGF protein, such as liver, spleen, lung, bone marrow, brain, kidney, placenta and other organs of mammals such as rats, cows, horses, sheep, platelets, It can be obtained by extraction and purification from blood cells such as leukocytes, plasma, serum or the like.
  • HGF protein As a method for extracting and purifying the HGF protein from the above-mentioned biological tissue or the like, for example, carbon tetrachloride is intraperitoneally administered to a rat, and the liver of a rat in a hepatitis state is excised and pulverized, and S-sepharose, heparin sepharose, etc. It can be purified by conventional protein purification methods such as column chromatography and HPLC.
  • HGF protein can also be obtained by culturing primary cultured cells or established cells that produce HGF protein, and separating and purifying from the culture (culture supernatant, cultured cell, etc.).
  • a gene encoding the HGF protein (preferably DNA consisting of the nucleotide sequence represented by SEQ ID NO: 1 or 2) is inserted into an appropriate vector by genetic engineering techniques, and this is inserted into an appropriate host for transformation.
  • the desired recombinant HGF protein can be obtained from the culture of this transformant (for example, Biochem. Biophys. Res. Commun. 180: 1151-1158, 1991; J. Clin. Invest. 87: 1853- 1857, 1991; Protein Expr. Purif.
  • the host cell is not particularly limited, and various host cells conventionally used in genetic engineering techniques such as Escherichia coli, Bacillus subtilis, yeast, filamentous fungi, plant or animal cells can be used.
  • animal cells such as Chinese hamster ovary (CHO) cells, mouse C127 cells, monkey COS cells, etc. are expressed by an expression vector incorporating a cDNA encoding the amino acid sequence of human HGF protein. And the culture supernatant is separated and purified by the above column chromatography or the like to obtain the HGF protein.
  • one or more of the amino acid sequences of the natural HGF protein [for example, 1 to several (“several” means the same as above)
  • 1 to 8 preferably 1 to 6, more preferably 1 to 5, further preferably 1 to 3, particularly preferably 1 to 2; It may be a substituted, deleted and / or inserted amino acid sequence.
  • the substitution is preferably a conservative substitution.
  • sugar chains may be substituted, deleted, or inserted in the HGF protein.
  • “one or more amino acids are deleted, substituted and / or inserted” means a known engineering method such as a genetic engineering method, site-directed mutagenesis method, or the like.
  • an HGF protein in which a sugar chain is substituted, deleted or inserted is, for example, an HGF protein in which a sugar chain added to a natural HGF protein is treated with an enzyme or the like to delete the sugar chain, or a sugar chain in a natural HGF protein Those in which the amino acid sequence at the glycosylation site is mutated so that the chain is not added, or those in which the sugar chain is mutated so that the sugar chain is added to a site different from the natural glycosylation site Say.
  • lactose, glycine, sodium chloride, pH buffering agent and surfactant used in the HGF preparation of the present invention are preferably those listed in each country's pharmacopoeia (for example, Japanese Pharmacopeia, US Pharmacopeia, European Pharmacopeia). When using those that are not listed in the pharmacopoeia, those that are pharmaceutically acceptable are preferred. “Pharmaceutically acceptable” means that it is usually safe and less toxic, biologically or otherwise problematic, and useful for the preparation of animal and human pharmaceutically acceptable formulations. means.
  • lactose used in the HGF preparation of the present invention lactose listed in each country's pharmacopoeia (for example, Japanese pharmacopoeia, US pharmacopoeia, European pharmacopoeia) can be suitably used.
  • the amount of lactose added is preferably about 0.1 to 50 parts by weight, more preferably about 0.5 to 10 parts by weight, even more preferably about 1 to 5 parts by weight (1 to 1 part by weight per 1 part by weight of the HGF protein.
  • glycine used in the HGF preparation of the present invention glycine listed in the pharmacopoeia of each country (for example, the Japanese pharmacopoeia) can be preferably used.
  • the amount of glycine added is preferably about 0.01 to 1 part by weight, more preferably about 0.05 to 1 part by weight, and further preferably about 0.1 to 0.5 part by weight with respect to 1 part by weight of the HGF protein.
  • Parts (0.1 to 0.2 parts by weight, 0.1 to 0.3 parts by weight, 0.1 to 0.4 parts by weight, 0.1 to 0.5 parts by weight, 0.2 to 0.3 parts by weight Parts, 0.2 to 0.4 parts by weight, 0.2 to 0.5 parts by weight, 0.3 to 0.4 parts by weight, 0.3 to 0.5 parts by weight, 0.4 to 0.5 parts by weight Part.).
  • the pH buffer used in the HGF preparation of the present invention refers to a drug that can be a buffer having an action of maintaining the pH of a solution within a certain range when dissolved in a solvent such as water, and usually a combination of a weak acid and its salt, etc. Is mentioned.
  • Suitable pH buffers include, for example, phosphate buffer, citrate buffer or borate buffer when dissolved, such as a combination of phosphate, citric acid, or boric acid and their salts.
  • a combination of citric acid and a salt thereof that can be a citrate buffer is more preferable.
  • These weak acids and their salts may be solvates, and the solvates are preferably hydrates, for example.
  • the solution in which the pH buffer is dissolved becomes a buffer, and has the action of adjusting the pH of the HGF aqueous solution and maintaining the solubility and stability of the HGF protein.
  • the HGF aqueous solution in the present invention include an HGF injection solution, an aqueous solution before lyophilization prepared when producing a lyophilized formulation described below, and an aqueous solution after redissolving the lyophilized formulation in a solvent.
  • the pH buffer is preferably one in which the pH of the aqueous solution after re-dissolution of the HGF preparation is about 4.5 to 8.0.
  • the pH of the injection solution is about 4.5 to 8.0.
  • the pH buffer in the present invention is a combination of citric acid or a solvate thereof and citrate or a solvate thereof in any HGF preparation such as an HGF injection solution or an HGF lyophilized preparation.
  • a combination is preferable, and a combination of citric acid or a hydrate thereof and a salt of citric acid is more preferable, and citric acid hydrate and sodium citrate (preferably trisodium citrate dihydrate or tricitrate tricitrate) A combination with sodium (anhydrous) is more preferable.
  • the citrate buffer is excellent in the action of stabilizing the HGF protein in the HGF aqueous solution, and the HGF aqueous solution before preparing the HGF injection solution, the HGF lyophilized formulation, and the aqueous solution after redissolving the HGF lyophilized formulation. It can contribute to the stabilization of HGF protein.
  • the pH buffer is preferably added so that the concentration in the injection solution is preferably about 1 to 100 mM, more preferably about 1 to 20 mM.
  • the concentration in the aqueous solution before freeze-drying when producing the freeze-dried preparation described below is in the range of about 1 to 100 mM, more preferably about 1 to 20 mM. Is preferred.
  • Examples of the surfactant used in the HGF preparation of the present invention include polysorbate (for example, polysorbate 20 (polyoxyethylene sorbitan monolaurate), polysorbate 80 (polyoxyethylene sorbitan monooleate), etc.), Pluronic (registered trademark). Examples thereof include F-68 (GIBCO) and polyethylene glycol, and two or more of them may be used in combination.
  • polysorbate is preferable, and polysorbate 80 is particularly preferable. Since the HGF protein is likely to be adsorbed on the container material such as glass or resin, the addition of such a surfactant can prevent the HGF protein from adsorbing to the container during the production process of the HGF preparation. .
  • the addition amount of the surfactant is preferably in the range of, for example, about 0.001 to 2.0% by weight as the concentration in the injection solution, and about 0.005 to 1.0%. A range of% by weight is more preferred.
  • the amount of the surfactant added is, for example, about 0.001 to 2.0% by weight as a concentration in an aqueous solution before freeze-drying when producing a freeze-dried preparation described later. A range of about 0.005 to 1.0% by weight is more preferred.
  • Sodium chloride used in the HGF preparation of the present invention has an action of maintaining the solubility of HGF protein. That is, the solubility of the HGF protein is improved by the addition of sodium chloride, and the solubility is improved particularly at about 150 mM or more of sodium chloride. Further, by adding sodium chloride, the osmotic pressure of the HGF aqueous solution can be brought close to the osmotic pressure of the body fluid.
  • the amount of sodium chloride to be added may be appropriately adjusted according to the target osmotic pressure ratio, but the osmotic pressure ratio of about 1 allowed as an osmotic pressure ratio for medical or veterinary injections based on a physiological saline solution (osmotic pressure ratio 1).
  • the sodium chloride concentration is preferably about 150 to 1000 mM, more preferably about 150 to 300 mM.
  • concentration in an aqueous HGF solution when producing a freeze-dried preparation described later is preferably about 150 to 1000 mM, more preferably about 150 to 300 mM.
  • the method for producing the HGF preparation of the present invention is not particularly limited.
  • an aqueous solution containing HGF protein, lactose, glycine, sodium chloride, pH buffer, and surfactant is freeze-dried.
  • the freeze-dried preparation thus obtained is one of the preferred embodiments of the HGF preparation of the present invention.
  • the said aqueous solution used for manufacture of a freeze-dried formulation should just be aqueous solution containing HGF protein, lactose, glycine, sodium chloride, a pH buffer, and surfactant, and the preparation method is not specifically limited.
  • the aqueous solution is, for example, a purified HGF protein solution (usually containing a pH buffer, sodium chloride and a surfactant), lactose, glycine, and optionally a pharmaceutically acceptable solvent (eg, sterile water, for injection) Distilled water, purified water, buffer solution, physiological saline, etc.).
  • the HGF protein is preferably in the aqueous solution at a concentration of about 0.05 to 40 mg / mL, more preferably about 0.1 to 40 mg / mL, and even more preferably about 0.1 to 20 mg / mL. It is preferable to prepare it.
  • Lactose is preferably added in an aqueous solution such that the concentration is about 0.1 to 100 mg / mL, more preferably about 0.5 to 50 mg / mL, and still more preferably about 1 to 20 mg / mL.
  • Glycine is added to the aqueous solution so that the concentration is preferably about 0.05 to 50 mg / mL, more preferably about 0.05 to 20 mg / mL, and still more preferably about 0.1 to 10 mg / mL.
  • additives such as a solubilizing agent, an antioxidant, a soothing agent or an isotonic agent can be added to the aqueous HGF solution.
  • the HGF aqueous solution is sterilized by filtration with a filter or the like, injected into a vial or ampoule, and lyophilized.
  • a filter for example, a sterilizing filter having a pore size of about 0.22 ⁇ m or less is preferably used.
  • Preferred examples of the sterilizing filter include Durapore (registered trademark, manufactured by Merck & Co., Ltd.) and Zaltopore 2 (registered trademark, manufactured by Sartorius).
  • a method for freeze-drying the aqueous solution is not particularly limited, and a normal freeze-drying method can be employed.
  • the freeze-drying method includes, for example, a freezing process that cools and freezes under normal pressure, a primary drying process that sublimates and drys free water that is not restricted by the solute, and a secondary drying process that removes adsorbed water and crystallization water inherent to the solute.
  • the drying method comprised in three processes is mentioned.
  • the cooling temperature in the freezing process is preferably ⁇ 60 ° C. to ⁇ 40 ° C.
  • the temperature in the primary drying process is preferably ⁇ about 50 ° C. to 0 ° C.
  • the temperature in the secondary drying process is preferably about 4 ° C. to 40 ° C.
  • the vacuum pressure is preferably about 0.1 to 1.5 Pa, and particularly preferably about 0.5 to 1.2 Pa. Restore the pressure in the drying cabinet after freeze-drying.
  • aseptic air or inert gas for example, sterile nitrogen gas, sterile helium gas, etc.
  • the vial is preferably stoppered after the primary decompression, and the stoppered vial is preferably fastened with a cap immediately after the secondary decompression.
  • the end of the ampoule be melt-sealed with heat (usually a gas burner) after drying.
  • the HGF lyophilized preparation preferably has a water content of about 2% by weight or less.
  • the HGF freeze-dried preparation of the present invention is excellent in stability because the formation of HGF protein polymer during storage is suppressed.
  • the “protein polymer” refers to a substance formed by combining a plurality of protein monomers in, for example, a chain or network, and in the present invention, a dimer, trimer or tetramer of HGF protein. including.
  • the HGF lyophilized preparation of the present invention is usually dissolved in a pharmaceutically acceptable solvent and used in the form of an aqueous solution.
  • a pharmaceutically acceptable solvent has the same meaning as described above.
  • Preferred examples of the pharmaceutically acceptable solvent include distilled water for injection, physiological saline, various infusion solutions (for example, 5% glucose solution, Ringer's solution, etc.), artificial cerebrospinal fluid, and the like.
  • the solvent is more preferably distilled water for injection or physiological saline.
  • the HGF lyophilized preparation of the present invention has an HGF protein concentration of preferably about 0.05 to 40 mg / mL, more preferably about 0.1 to 40 mg / mL, and still more preferably about 0.1 to For example, it is dissolved in a pharmaceutically acceptable solvent such as distilled water for injection so as to be 20 mg / mL, and can be suitably used as an injection solution.
  • a pharmaceutically acceptable solvent such as distilled water for injection so as to be 20 mg / mL, and can be suitably used as an injection solution.
  • the HGF lyophilized preparation of the present invention can be packaged and produced as a kit together with the above-mentioned pharmaceutically acceptable solvent.
  • the HGF injection solution of the present invention is preferably an aqueous solution containing HGF protein, lactose, glycine, sodium chloride, a pH buffering agent, and a surfactant. Lactose, glycine, sodium chloride, a pH buffering agent, a surfactant, and preferred embodiments thereof are as described above.
  • the method for producing the HGF injection solution of the present invention is not particularly limited, and can be obtained, for example, by dissolving the above HGF lyophilized preparation in a pharmaceutically acceptable solvent.
  • a pharmaceutically acceptable solvent include distilled water for injection, physiological saline, various infusion solutions (for example, 5% glucose solution, Ringer's solution, etc.), artificial cerebrospinal fluid, and the like.
  • the solvent is more preferably distilled water for injection or physiological saline.
  • the HGF injection solution of the present invention contains a purified HGF protein aqueous solution (usually containing a pH buffer, sodium chloride and a surfactant) at a concentration of about 0.1 to 40 mg / mL and lactose, glycine, and if necessary, a pharmaceutical agent.
  • a purified HGF protein aqueous solution usually containing a pH buffer, sodium chloride and a surfactant
  • lactose, glycine if necessary, a pharmaceutical agent.
  • a pharmaceutical agent e.glycine, glycine, and if necessary, a pharmaceutical agent.
  • an acceptable solvent for example, sterile water, distilled water for injection, purified water, buffer, physiological saline, etc.
  • an aqueous solution containing HGF protein, lactose, glycine, sodium chloride, a pH buffer, and a surfactant used for the production of the lyophilized preparation can also be used as an HGF injection.
  • the HGF protein concentration in the HGF injection solution of the present invention is preferably about 0.05 to 40 mg / mL, more preferably about 0.1 to 40 mg / mL, and further preferably about 0.1 to 20 mg / mL.
  • the concentration of lactose in the HGF injection solution of the present invention is preferably about 0.1 to 100 mg / mL, more preferably about 0.5 to 50 mg / mL, and further preferably about 1 to 20 mg / mL.
  • the concentration of glycine in the HGF injection solution of the present invention is preferably about 0.05 to 50 mg / mL, more preferably about 0.05 to 20 mg / mL, and further preferably about 0.1 to 10 mg / mL. is there.
  • the pH of the HGF injection solution of the present invention is preferably about 4.5 to 8.0. If necessary, additives such as a solubilizing agent, an antioxidant, a soothing agent or an isotonic agent can be added to the HGF injection solution of the present invention.
  • the HGF injection solution of the present invention is usually a clear solution.
  • the HGF injection solution of the present invention is excellent in stability because the HGF polymer formation during storage is suppressed while being in a solution state.
  • the use of the HGF preparation of the present invention is not particularly limited, and central nervous diseases such as amyotrophic lateral sclerosis (ALS), Alzheimer's disease, Parkinson's disease, Huntington's chorea, spinocerebellar degeneration, spinal cord injury, cerebral infarction It is preferably used as a pharmaceutical composition for the treatment or prevention of cerebral ischemia, multiple sclerosis and the like.
  • the HGF preparation of the present invention is preferably used for the treatment of central nervous disease.
  • HGF preparations such as the HGF injection solution and HGF freeze-dried preparation of the present invention can be administered, for example, into the ventricle or intrathecally.
  • the HGF injection solution of the present invention is suitable as a preparation for intraventricular administration or intrathecal administration.
  • the medullary cavity into which the HGF injection solution of the present invention can be administered is a space filled with cerebrospinal fluid around the spinal cord, and the space is surrounded by two layers of the arachnoid and dura mater membranes.
  • the medullary cavity is a space inside the arachnoid membrane located on the inner side of these two layers of membranes, and intrathecal administration means intrathecal administration.
  • both intraventricular administration and intrathecal administration are administration of a drug in the cerebrospinal fluid, and in general, intraventricular administration and intrathecal administration are substantially the same administration route.
  • the HGF preparation such as the HGF injection solution of the present invention can be administered into the brain parenchyma or spinal cord parenchyma.
  • intracerebral administration or intraspinal administration the injection solution may be administered as a bolus, or may be continuously infused using a syringe pump or the like.
  • the use of the HGF preparation of the present invention is not limited only to the treatment of central nervous system diseases. Since the HGF preparation of the present invention has sufficient stability as a pharmaceutical and is excellent in safety, it can also be used for the treatment of diseases other than central nervous diseases.
  • an administration route suitable for treatment of the disease to be applied such as intravenous injection, subcutaneous injection, intramuscular injection, and local administration, can be adopted.
  • the dose of the HGF preparation of the present invention may be appropriately set according to the type of disease, disease state, etc. to be treated.
  • an HGF injection solution is used for the treatment of a central nervous system disease, preferably about 0.01 to 50 mg, more preferably about 0.1 to 10 mg is administered as an HGF protein per day for an adult. Is preferred.
  • the HGF preparations such as the HGF injection solution of the present invention may be used after appropriately diluted with an appropriate pharmaceutically acceptable solvent at the time of administration.
  • the pharmaceutically acceptable solvent examples include distilled water for injection, physiological saline, various infusion solutions (for example, 5% glucose solution, Ringer's solution, etc.) or artificial cerebrospinal fluid, and more preferably distilled water for injection. Or a physiological saline solution is mentioned.
  • the present invention also includes a method for treating a central nervous disease, in which an HGF preparation containing an HGF protein as an active ingredient and further containing lactose, glycine, sodium chloride, a pH buffer, and a surfactant is administered to a patient with central nervous disease.
  • the present invention also includes an HGF preparation containing an HGF protein as an active ingredient and further containing lactose, glycine, sodium chloride, a pH buffer, and a surfactant for use in the treatment of a central nervous disease.
  • the HGF preparation is preferably a freeze-dried preparation (HGF freeze-dried preparation) or an injection solution (HGF injection solution), more preferably an injection solution.
  • the HGF preparation, the HGF lyophilized preparation, the HGF injection solution, and preferred embodiments thereof are as described above.
  • the HGF preparation is preferably administered intrathecally or intraventricularly, or in the spinal cord parenchyma or brain parenchyma.
  • the present invention relates to a method for suppressing the production of HGF polymer (polymer of HGF protein) in an aqueous solution containing HGF protein, wherein lactose, glycine, sodium chloride, a pH buffering agent and a surfactant are added to the aqueous solution. And a method for inhibiting the production of HGF polymer in an aqueous solution.
  • HGF protein, lactose, glycine, sodium chloride, pH buffering agent and surfactant in the aqueous solution, and their preferred addition amounts are the same as those in the HGF injection solution described above.
  • the present invention relates to a method for suppressing the production of HGF polymer (polymer of HGF protein) in a lyophilized preparation containing HGF protein, wherein the lyophilized preparation contains lactose, glycine, sodium chloride, a pH buffer, And a method for inhibiting the production of HGF polymer in a lyophilized preparation, which comprises blending a surfactant and a surfactant.
  • HGF protein, lactose, glycine, sodium chloride, pH buffering agent, surfactant, and preferred addition amounts thereof are the same as those in the above-mentioned HGF lyophilized preparation.
  • HGF human HGF protein consisting of the amino acid sequence represented by SEQ ID NO: 6 (hereinafter simply referred to as HGF), and the stability and safety were examined.
  • % means “% by mass” unless otherwise specified.
  • the HGF used was produced using CHO cells according to the method described in Biochem. Biophys. Res. Commun. 180: 1151-1158, 1991.
  • Lactose and glycine were dissolved in an HGF solution containing 5 mM citrate buffer (pH 6.0) and 0.375 M sodium chloride and 0.005% polysorbate 80 to prepare the concentrations shown in Table 1 below.
  • Example 2 An HGF lyophilized preparation was obtained in the same manner as in Example 1 except that the addition concentration of lactose was 7.5 mg / mL.
  • Example 3 An HGF lyophilized preparation was obtained in the same manner as in Example 1 except that the addition concentration of lactose was 10 mg / mL.
  • Example 4 Lactose and glycine were dissolved in HGF solution containing 2 mM citrate buffer (pH 6.0) and 0.15 M sodium chloride and 0.002% polysorbate 80 to the concentrations shown in Table 2 below, and HGF injection solution Got.
  • HGF lyophilized preparation obtained in Example 2 can be dissolved in 2.5 mL of distilled water for injection to obtain an HGF injection solution having the composition shown in Table 2.
  • the polymer content of the HGF preparation is the area percentage (%) obtained by dissolving each lyophilized preparation with 2 mL of distilled water for injection and analyzing the resulting HGF solution by high performance liquid chromatography (HPLC) under the following conditions. (Hereinafter referred to as polymer content (%)) was determined by the following formula 1.
  • a M represents the HGF peak area
  • a A represents the polymer peak area
  • Liquid B was added to liquid A, adjusted to pH 6.0, filtered through a 0.45 ⁇ m filter (trade name: Millicup-HV, pore size 0.45 ⁇ m, manufactured by Merck), and degassed before use. Stored at room temperature and used within 2 weeks. Column temperature: 25 ° C Flow rate: 0.5 mL / min Test solution injection volume: 25 ⁇ L Detection wavelength: 280 nm
  • Experimental example 2 The basic ingredients are 2.5 mg / mL HGF, 5 mM citrate buffer (pH 6.0), and 0.375 M sodium chloride, 0.005% polysorbate 80.
  • HGF solutions (1 mL) were prepared and lyophilized in vials as in Example 1 to make each lyophilized formulation.
  • Each freeze-dried preparation was stored at 50 ° C. for 1 week, and the polymer content before and after storage was measured in the same manner as in Experimental Example 1. The results are shown in Table 6.
  • freeze-dried preparations prepared from the HGF solutions of Formulations 5 and 7 to which glycine and lactose were added the polymer content was suppressed to a slight increase even after storage for 2 months at 25 ° C. at room temperature. Furthermore, the freeze-dried preparations prepared from the HGF solutions of Formulations 5 and 7 had a polymer content of just over 1% even after storage under severe conditions at 50 ° C. for 2 weeks, and the production of the polymer was suppressed.
  • HGF lyophilized preparation obtained in Example 2 was dissolved in 2.5 mL of distilled water for injection to obtain an HGF injection solution having the composition shown in Table 2.
  • the injection solution was stored at 40 ° C. in a sealed container for 2 weeks.
  • the polymer content of the HGF injection before and after storage was measured in the same manner as in Experimental Example 1.
  • the biological activity of HGF in the HGF injection solution before and after storage was evaluated using the proliferation of Mv1Lu cells (RIKEN, BRC ID: RCB0996) as mink lung-derived epithelial cells as an index.
  • the polymer contents in the HGF injection before and after storage were 1.54% and 2.67%, respectively, and the increase in the polymer content during storage for 2 weeks at 40 ° C.
  • the biological activity of HGF in the HGF injection solution after storage at 40 ° C. for 2 weeks maintained a high activity of 89.4% (relative activity with 100% before storage) as compared to before storage. .
  • the HGF injection solution of the present invention was almost stable during storage at 40 ° C. for 2 weeks.
  • Test example 1 Bolus single administration of HGF solutions 1 and 2 in Table 9 or various solvents (solvent A or B) or physiological saline 45 ⁇ L was performed in the rat medullary cavity, and the safety to the central nervous system was examined.
  • the amount of cerebrospinal fluid in the rat is about 200 ⁇ L, and a single bolus administration of an excessive amount of the solution here causes abnormal symptoms in the rat itself.
  • the maximum allowable amount was set as 45 ⁇ L.
  • the rat Under anesthesia with pentobarbital, the rat was shaved from the neck to the back with an electric clipper, and the shaved area was cleaned and disinfected with ethanol for disinfection and 10% isodine solution (trade name, Meiji Co., Ltd .: Popidone iodine 10% solution). .
  • the dorsal skin was incised, the second lumbar vertebrae were exposed from the eleventh thoracic vertebrae, the ligament between the twelfth and thirteenth thoracic vertebrae was excised, and the dura mater was exposed.
  • the polyurethane catheter (MRE025 (OD: 0.25mm, 10cm) and MRE010 (Filled with Otsuka Pharmaceutical Factory) was immediately filled with physiological saline.
  • the tip of a two-stage catheter (Braintree, USA) connected with OD: 0.65 mm (2.5 cm) was inserted into the medullary cavity (toward the head) from the incision by about 2.5 cm.
  • the catheter is fixed to the surrounding tissue using Aron Alpha for medical use (trade name: Aron Alpha A “Sankyo”, Daiichi Sankyo Co., Ltd.), and the distal end of the catheter is occluded by heat treatment, so that the appropriate length is removed from the neck skin. Exposed.
  • the wound was sutured using sutures.
  • the rats were kept warm with a heat-insulating mat until the rats awakened from anesthesia, and then returned to the cage after awakening.
  • the rats were awakened and a single bolus administration of 45 ⁇ L of the HGF solutions 1 and 2, solvent A or B of Table 9 or physiological saline solution was conducted via the indwelling catheter, followed by 10 ⁇ L of physiological saline solution (catheter). The HGF solution or solvent remaining inside was pushed into the medullary canal). Thereafter, the catheter was heat-treated to be occluded and returned subcutaneously, and the state of the rat was observed.
  • the rat Even if the HGF solution 1 prepared in this solvent B (same as the injection solution of Example 4 and corresponds to the HGF injection solution of the present invention) was similarly administered into the medullary cavity of the rat, the rat was not abnormal. Did not show. The HGF injection solution of the present invention was confirmed to have a very safe composition without adversely affecting the central nervous system. On the other hand, when the HGF solution 2 prepared with a solvent having a composition in which the lactose of the solvent B is replaced with sucrose is administered intrathecally in the rat, the rat has a nerve such as squealing and limb stiffness for about 20 minutes after the administration. Showed abnormal symptoms.
  • the spinal cord injury model rat was prepared as follows. Rats were first shaved with an electric clipper from the neck to the waist under anesthesia with ketamine and xylazine and wiped with 70% alcohol and 10% isodine solution (trade name, Meiji Co., Ltd .: Popidone iodine 10% solution).
  • the dorsal skin was incised and exposed from the 6th thoracic vertebra to the vicinity of the 5th lumbar vertebrae, and then the vertebral arches and ligaments of the 9th to 10th thoracic vertebrae were excised to expose the dura mater.
  • a 10 g weight was dropped from a height of 25 mm to the 10th thoracic vertebrae to create a spinal cord injury.
  • the ligament between the first and second lumbar vertebrae was excised to expose the dura mater, and a small incision was made in the dura mater and the arachnoid membrane.
  • the animals were kept warm with a heat-insulating mat from anesthesia to awakening, and then returned to the cage after awakening. Thereafter, the administration of the HGF solution or the solvent was performed via an indwelling catheter at a frequency of 3 times / week for 4 weeks. In each administration, administration of 45 ⁇ L of HGF solution or solvent was followed by administration of 10 ⁇ L of physiological saline (to push the HGF solution or solvent remaining in the catheter into the medullary canal). After the end of each administration, the end of the catheter was occluded by heat treatment.
  • BBB scale (assessed from 21 points: 21 points (complete paralysis) to 21 points (normal hindlimb movement)) (Basso DM, Beattie MS, Bresnahan JC: A sensitive and reliable locomotor rating scale for open field testing in rats. J Neurotrauma 12: 1-21, 1995) was used to evaluate the hindlimb motor function of rats over time and to examine the therapeutic effect of HGF on spinal cord injury.
  • the BBB score was 0 for all individuals, but 4 weeks after the spinal cord injury, the average of the BBB score recovered to 10 points or more in the HGF administration group, and that of the solvent administration group (control group) The value was significantly higher than the score (average less than 10 points). The therapeutic effect of HGF on spinal cord injury was confirmed.
  • the rats showed no abnormal symptoms other than spinal cord injury in any of the solvent administration group (control group) and the HGF administration group. Further, when the rat was dissected 4 weeks after the spinal cord injury, no abnormality was found in the spinal cord of the rat other than the site of the spinal cord injury. It was confirmed that the HGF solution obtained by re-dissolving the lyophilized preparation of Example 2 was safe and effective in the treatment of spinal cord injury.
  • an HGF preparation having excellent storage stability useful as a medicine can be provided.
  • the HGF injection solution of the present invention can be administered intrathecally or intraventricularly, or in the spinal cord parenchyma or in the brain parenchyma, for the treatment of central nervous system diseases such as ALS and spinal cord injury. Therefore, the present invention is useful in the medical field and the like.

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Abstract

　本発明は、中枢神経疾患治療のために髄腔内投与又は脳室内投与、あるいは、脊髄実質内投与又は脳実質内投与に使用できる、中枢神経に対する安全性が高く、かつ安定性に優れる注射液等のＨＧＦ製剤を提供する。本発明のＨＧＦ製剤は、肝細胞増殖因子（ＨＧＦ）蛋白質を有効成分とし、さらに乳糖、グリシン、塩化ナトリウム、ｐＨ緩衝剤、及び界面活性剤を含有するＨＧＦ製剤である。

Description

神経疾患の治療に適したＨＧＦ製剤
　本発明は、肝細胞増殖因子（Hepatocyte Growth Factor、以下、本明細書中では「ＨＧＦ」と略す場合がある）蛋白質を含有する製剤に関する。より詳細には、本発明は、ＨＧＦ蛋白質を含有する凍結乾燥製剤、注射液等の製剤に関する。本発明はまた、ＨＧＦ蛋白質を含有し、中枢神経疾患の治療に好適な凍結乾燥製剤、注射液等の製剤に関する。
　ＨＧＦは、成熟肝細胞に対する増殖促進活性を持つ生理活性蛋白質として見出された（例えば、非特許文献１参照）。その後の研究により、ＨＧＦ蛋白質は肝細胞のみならず、多くの上皮系細胞、血管内皮細胞などに作用し、組織や臓器の傷害の修復・再生に関与することが知られている（非特許文献２参照）。ＨＧＦ蛋白質は、生物工学的手法により組換え蛋白質として量産が可能であり（例えば、非特許文献３参照）、組換えＨＧＦ蛋白質は、肝炎及び肝硬変のみならず、腎疾患、創傷などに対する治療薬としての適用が期待されている（非特許文献２参照）。
　一方、近年のノックアウト／ノックインマウスの手法を含む遺伝子の発現及び機能的解析における多数の研究により、ＨＧＦ蛋白質は神経細胞の生存や神経突起の伸長を促す作用も有しており、神経栄養因子としても重要な因子であることも明らかにされている（非特許文献４、及び５参照）。
　ＨＧＦ蛋白質は海馬ニューロン、ドーパミン作動性ニューロン、小脳顆粒細胞、感覚ニューロン、及び運動ニューロンなどの神経細胞に対して神経栄養因子活性を示す（非特許文献６参照）。とりわけＨＧＦ蛋白質は、運動ニューロンに対して強力な生存促進作用を示し（非特許文献７参照）、その活性は、運動ニューロンに対して最も強力な生存促進作用を有することが知られるグリア細胞株由来神経栄養因子（ＧＤＮＦ）の活性にも匹敵する。
　このような神経栄養活性に基づき、ＨＧＦ蛋白質は筋萎縮性側索硬化症（ＡＬＳ）及び脊髄損傷を始め、各種の神経疾患に対する治療薬として使用し得ることが報告されている（特許文献１～３、非特許文献５、８、及び９参照）。
　蛋白質医薬品は、一般的には静脈内、又は皮下若しくは筋肉内に注射される。しかしながら、これらの投与経路で投与された蛋白質は、脳組織と血管との間に存在する脳血液関門の存在によって中枢神経組織への移行が極めて困難なことが知られている。そこで、ＨＧＦ蛋白質を中枢神経疾患の治療に用いるためには、一般的な臓器疾患の治療のために行われる静脈内注射、皮下又は筋肉内注射のような投与経路ではなく、中枢神経組織に直接的にＨＧＦ蛋白質を送達するため、髄腔内投与又は脳室内投与が有効と考えられる（非特許文献８及び９参照）。髄腔内投与及び脳室内投与は、脳腫瘍に対する抗癌剤治療においても用いられる投与経路である。また、中枢神経疾患の治療の目的では、ＨＧＦ蛋白質を脳実質内または脊髄実質内に直接投与することも考えられる。
　ＨＧＦ蛋白質の医薬品化においては、安定化されたＨＧＦ蛋白質製剤の開発が必要である。ＨＧＦ蛋白質製剤としては、ＨＧＦ蛋白質（ＴＣＦ－ＩＩとも称される）にアルブミン、ヒト血清、ゼラチン、ソルビトール、マンニトール、及びキシリトールなどを安定化剤として含有させた水溶液製剤が特許文献４に開示されている（特許文献４参照）。しかしながら、該ＨＧＦ水溶液製剤は保存中にＨＧＦ蛋白質が凝集、白濁、ゲル化が進行するという難点があり、またＨＧＦ蛋白質の重合体（ＨＧＦ重合体）が形成されるなど物理化学的安定性が低く、生物活性が低下するという問題がある。
　このような重合体形成を抑制するため、例えば、特許文献５には、ＨＧＦにアルギニン、リジン、ヒスチジン、グルタミン、プロリン、グルタミン酸、アスパラギン酸などを安定化剤として含有させた凍結乾燥ＨＧＦ製剤が開示されている（特許文献５参照）。また、特許文献６には、ＨＧＦにグリシン、アラニン、ソルビトール、マンニトール、及びデキストラン硫酸などを安定化剤として含有させた凍結乾燥ＨＧＦ製剤が開示されている（特許文献６参照）。さらに、特許文献７には、ＨＧＦに精製白糖及びアラニン等を添加した凍結乾燥ＨＧＦ製剤が開示されている（特許文献７参照）。
　このような製剤から調製される注射液は、一般的な臓器疾患の治療のために行われる静脈内注射、皮下又は筋肉内注射においては安全であると考えられるが、例えば、髄腔内投与及び脳室内投与では、中枢神経系に直接ＨＧＦ蛋白質を投与することになり、製剤中に添加する各種成分を含めて、製剤成分の中枢神経系に対する安全性を十分に確認する必要がある。従来開示されているＨＧＦ製剤において、髄腔内投与又は脳室内投与、あるいは脊髄実質内投与又は脳実質内投与に用いても安全であることが確認された製剤は知られていない。
　中枢神経疾患治療のために髄腔内投与又は脳室内投与、あるいは脊髄実質内投与又は脳実質内投与に使用できる安全性の高いＨＧＦ製剤が望まれている。
国際公開第２００２／２２１６２号（対応US Pub. No. US 2003/0176347） 国際公開第２００７／１２２９７６号（対応US Patent No. US 8,575,099） 国際公開第２００８／１０５５０７号（対応US Patent No. US 8,518,880） 国際公開第９０／１０６５１号（対応 EP Patent No. EP 0462277） 国際公開第００／７２８７３号（対応 EP Patent No. EP 1180368） 特開平９－２５２４１号公報（対応US Patent No. US 7,173,008） 国際公開第２００８／１０２８４９号（対応US Patent No. US 8,461,112）
T. Nakamuraら、Biochem. Biophys. Res. Commun., 第122巻, p. 1450, 1984年 T. Nakamuraら、J. Gastroenterol. Hepatol., 第26巻, Suppl. 1、p.188-202 (2011年) Jeong Soo Parkら、Protein Expr. Purif., 第70巻, p.231-235 (2010年) Flavio Mainaら、Nat.Neurosci., 第2巻, p.213-217(1999年) Funakoshi H ら、Current Signal Transduction Therapy第6巻, p 156-167 (2011年) Honda, S.ら、Brain Res. Mol. Brain Res. 第32巻, p.197-210 (1995年) Allen Ebens ら、Neuron、第17巻, p 1157-1172 (1996年) Ishigaki A ら、J Neuropathol Exp Neurol., 第66巻, p.1037-1044 (2007年) Kitamura K ら、PLoS One., 第6巻: e27706 (2011年)
　本発明は、中枢神経疾患治療のために髄腔内投与又は脳室内投与、あるいは脊髄実質内投与又は脳実質内投与に使用できる、中枢神経に対する安全性が高い注射液等のＨＧＦ製剤を提供することを課題とする。ＨＧＦ製剤は、通常、実用的な医薬として使用できるように安定性にも優れている必要がある。本発明はまた、安定性に優れる注射液、凍結乾燥製剤等のＨＧＦ製剤を提供することを課題とする。
　本発明者らは、上記課題を解決するために鋭意研究を重ねた結果、ＨＧＦ蛋白質に乳糖、グリシン、塩化ナトリウム、ｐＨ緩衝剤、及び界面活性剤を添加することにより、ＨＧＦ蛋白質の重合体生成が抑制されることを見出し、これらの成分を含有するＨＧＦ溶液は安定なＨＧＦ注射液として使用できること、また、該ＨＧＦ溶液を凍結乾燥することにより安定なＨＧＦ凍結乾燥製剤が得られることを見出した。さらに、これらの成分を含有するＨＧＦ注射液は中枢神経系への毒性が極めて少なく、中枢神経等の神経系に対する安全性が高いことを見出した。
　本発明者らは、これらの知見に基づいてさらに研究を進め、本発明を完成するに至った。本発明のＨＧＦ製剤は、医薬品として用いる上で十分な安定性を有し、例えば本発明のＨＧＦ注射液は、ＡＬＳや脊髄損傷などの各種中枢神経疾患の治療のために、髄腔内又は脳室内、あるいは脊髄実質内又は脳実質内に安全に投与することが可能である。
　すなわち、本発明は、以下のＨＧＦ製剤を提供する。
（１）肝細胞増殖因子（ＨＧＦ）蛋白質を有効成分とし、さらに乳糖、グリシン、塩化ナトリウム、ｐＨ緩衝剤、及び界面活性剤を含有することを特徴とするＨＧＦ製剤。
（２）凍結乾燥製剤である前記（１）に記載のＨＧＦ製剤。
（３）肝細胞増殖因子（ＨＧＦ）蛋白質、乳糖、グリシン、塩化ナトリウム、ｐＨ緩衝剤、及び界面活性剤を含有する水溶液を凍結乾燥して得られる凍結乾燥製剤である前記（２）に記載のＨＧＦ製剤。
（４）乳糖の含有量がＨＧＦ１重量部に対して０．１～５０重量部である前記（１）～（３）のいずれか一項に記載のＨＧＦ製剤。
（５）水溶液における乳糖の濃度が０．１～１００ｍｇ／ｍＬである前記（３）に記載のＨＧＦ製剤。
（６）水溶液におけるグリシンの濃度が０．０５～５０ｍｇ／ｍＬである前記（３）に記載のＨＧＦ製剤。
（７）水溶液におけるＨＧＦ蛋白質濃度が０．０５～４０ｍｇ／ｍＬである前記（３）に記載のＨＧＦ製剤。
（８）ｐＨ緩衝剤がクエン酸又はその水和物と、クエン酸の塩との組み合わせである前記（１）に記載のＨＧＦ製剤。
（９）界面活性剤がポリソルベートである前記（１）に記載のＨＧＦ製剤。
（１０）注射液である前記（１）に記載のＨＧＦ製剤。
（１１）注射液が、前記（２）に記載の凍結乾燥製剤を、薬学的に許容される溶媒に溶解して得られる水溶液である前記（１０）に記載のＨＧＦ製剤。
（１２）中枢神経疾患の治療用である前記（１）に記載のＨＧＦ製剤。
（１３）中枢神経疾患が、筋萎縮性側索硬化症（ＡＬＳ）、アルツハイマー病、パーキンソン病、ハンチントン舞踏病、脊髄小脳変性症、脊髄損傷、脳梗塞、脳虚血、及び多発性硬化症のいずれかである前記（１２）に記載のＨＧＦ製剤。
（１４）髄腔内、脳室内、脊髄実質内又は脳実質内に投与されるものであることを特徴とする前記（１）に記載のＨＧＦ製剤。
（１５）注射液中の乳糖の濃度が０．１～１００ｍｇ／ｍＬである前記（１０）に記載のＨＧＦ製剤。
（１６）注射液中のグリシンの濃度が０．０５～５０ｍｇ／ｍＬである前記（１０）に記載のＨＧＦ製剤。
（１７）注射液中のＨＧＦ蛋白質濃度が０．０５～４０ｍｇ／ｍＬである前記（１０）に記載のＨＧＦ製剤。
（１８）ＨＧＦ蛋白質がヒト由来のＨＧＦ蛋白質である前記（１）に記載のＨＧＦ製剤。
（１９）ＨＧＦ蛋白質が、配列番号５又は配列番号６で表されるアミノ酸配列からなる蛋白質である前記（１８）に記載のＨＧＦ製剤。
（２０）ＨＧＦ蛋白質が、配列番号５で表されるアミノ酸配列に対して８０％以上の配列同一性を有する蛋白質であって、ＨＧＦとしての生物活性を有する蛋白質である前記（１）に記載のＨＧＦ製剤。
　また、本発明は、乳糖、グリシン、塩化ナトリウム、ｐＨ緩衝剤、及び界面活性剤によるＨＧＦ水溶液またはＨＧＦ凍結乾燥製剤におけるＨＧＦの安定化方法、より詳しくはＨＧＦタンパク質の重合体の生成を抑制する方法に関する。
　さらに、本発明は、前記（１）記載のＨＧＦ製剤を、中枢神経疾患を患っている患者の髄腔内、脳室内、脊髄実質内または脳実質内に投与して、中枢神経疾患を治療する方法に関する。
　本発明のＨＧＦ製剤は、製剤として安定であり、かつ中枢神経に対して安全に使用できる。例えば、本発明のＨＧＦ注射液は、中枢神経系に対して安全性が高く、ＡＬＳや脊髄損傷などの各種中枢神経疾患の治療のために、髄腔内又は脳室内、あるいは脊髄実質内又は脳実質内に投与することができる。
　本発明のＨＧＦ製剤は、ＨＧＦ蛋白質を有効成分とし、さらに乳糖、グリシン、塩化ナトリウム、ｐＨ緩衝剤、及び界面活性剤を含有する。
　本発明のＨＧＦ製剤は、ＨＧＦ蛋白質以外に有効成分（薬効成分）を含んでも良いが、ＨＧＦ蛋白質以外に有効成分を含まないことが好ましい。
　本発明のＨＧＦ製剤の剤型は特に限定されないが、例えば、凍結乾燥製剤、注射液等の非経口投与の剤型等が好ましい。凍結乾燥製剤は、好ましくは注射用凍結乾燥製剤である。
　注射液とは、そのまま生体に注射することが可能な液状の組成物を意味する。本発明のＨＧＦ製剤が注射液である場合、単に「ＨＧＦ注射液」と略記する場合がある。
　また、凍結乾燥製剤とは、その成分が凍結乾燥体という固体の状態で提供される製剤を意味する。本発明のＨＧＦ製剤が凍結乾燥製剤である場合、単に「ＨＧＦ凍結乾燥製剤」と略記する場合がある。凍結乾燥製剤は、通常、用時には適当な溶媒（溶解液）を用いて溶解し、その溶液をそのまま注射液として、又は所望によりさらに適当な溶媒などに希釈後、注射液として投与される。すなわち、凍結乾燥製剤に任意の溶媒を添加して溶解したものは、注射液と実質的に同等のものであるということができる。
　本発明のＨＧＦ製剤は、ＨＧＦ蛋白質を有効成分とし、さらに乳糖、グリシン、塩化ナトリウム、ｐＨ緩衝剤、及び界面活性剤を含有する凍結乾燥製剤であることが好ましい。またＨＧＦ蛋白質を有効成分とし、さらに乳糖、グリシン、塩化ナトリウム、ｐＨ緩衝剤、及び界面活性剤を含有するＨＧＦ注射液も、本発明のＨＧＦ製剤の好ましい実施態様の１つである。
　本発明のＨＧＦ製剤は、中枢神経系に対する安全性が高いものである。本発明のＨＧＦ注射液等のＨＧＦ製剤は、中枢神経系への毒性が極めて低いため、例えば髄腔内又は脳室内、あるいは脊髄実質内又は脳実質内に投与することが可能なものであり、各種の中枢神経疾患の治療等に好適に用いることができる。
　本発明におけるＨＧＦ蛋白質としては種の限定は特になく、種々の動物由来のＨＧＦ蛋白質（天然型ＨＧＦ蛋白質又は遺伝子工学技術により製造した組換え蛋白質）等を好適に用いることができる。本発明においては、例えば、本発明のＨＧＦ製剤を適用する動物由来のＨＧＦ蛋白質を用いることが好ましい。例えば、本発明で使用されるＨＧＦ蛋白質として、本発明の製剤をヒトに適用する場合はヒト由来のＨＧＦ蛋白質（以下、ヒトＨＧＦ蛋白質ということもある。）が好適に用いられる。より好ましくは、組換えヒトＨＧＦ蛋白質である。本発明のＨＧＦ製剤をヒト以外の哺乳動物に対して使用する場合は、それらの動物種由来のＨＧＦを使用することが好ましく、例えば、サル、ウシ、ウマ、ブタ、ヒツジ、イヌ、ネコ、ラット、マウス、ウサギ、ハムスター、モルモット、チンパンジー等に由来するＨＧＦ蛋白質が使用可能である。また、本発明に用いるＨＧＦ蛋白質はアミノ酸５残基が欠失したデリーションタイプ（ｄＨＧＦ）であってもよい。
　ヒトＨＧＦ蛋白質は、例えば、配列番号１又は配列番号２で表される塩基配列からなるＤＮＡにコードされる蛋白質等が好ましい。より具体的には、配列番号３で表されるアミノ酸配列からなる蛋白質、配列番号４で表されるアミノ酸配列からなる蛋白質、配列番号５で表されるアミノ酸配列からなる蛋白質、配列番号６で表されるアミノ酸配列からなる蛋白質等が好ましい。中でも、ヒトＨＧＦ蛋白質として、配列番号５又は配列番号６で表されるアミノ酸配列を有する蛋白質が好ましく、配列番号５又は配列番号６で表されるアミノ酸配列からなる蛋白質がより好ましい。例えば、配列番号６で表されるアミノ酸配列からなるＨＧＦ蛋白質は、配列番号５で表されるアミノ酸配列の１３１～１３５番目の５個のアミノ酸残基が欠失している５アミノ酸欠損型ＨＧＦ蛋白質（ｄＨＧＦ）である。配列番号５又は配列番号６で表されるアミノ酸配列を有する蛋白質は、両者ともヒト体内に天然に存在するＨＧＦ蛋白質（天然型ＨＧＦ蛋白質）であって、ＨＧＦとしてのマイトゲン（mitogen）活性、モートゲン（motogen）活性等を有する。
　本発明に使用されるＨＧＦ蛋白質には、各種動物由来のＨＧＦ蛋白質（天然型ＨＧＦ蛋白質）のアミノ酸配列と少なくとも約８０％以上の配列同一性を有する蛋白質、好ましくは約９０％以上の配列同一性を有する蛋白質、より好ましくは約９５％以上の配列同一性を有する蛋白質であって、かつＨＧＦとしての生物活性（マイトゲン活性、及びモートゲン活性）を有する蛋白質も含まれる。アミノ酸配列について「配列同一性」とは、蛋白質の一次構造を比較した場合の、配列間において各々の配列を構成するアミノ酸残基の一致性を意味し、「％以上」はその一致の程度を意味する。
　ＨＧＦ蛋白質が上記マイトゲン活性、及びモートゲン活性を有することは、例えば、J. Biol. Chem.　273, 22913-22920, 1998に記載の方法に従って確認することができる。上記J. Biol. Chem.　273, 22913-22920, 1998に従って測定されるマイトゲン活性、及びモートゲン活性が、天然型ＨＧＦ蛋白質と比較して、通常約５０％以上、好ましくは約７０％以上、より好ましくは約８０％以上、さらに好ましくは約９０％以上の蛋白質を用いることが好ましい。
　ＨＧＦ蛋白質と上記配列同一性を有する蛋白質としては、例えば配列番号５又は６で表されるアミノ酸配列から、１～数個のアミノ酸残基を置換、欠失、及び／又は挿入させたアミノ酸配列、又は１～数個のアミノ酸残基が修飾されたアミノ酸配列等を含む蛋白質であってＨＧＦとしての生物活性を有する蛋白質が挙げられる。
　「数個」とは、通常１～８個（１，２，３，４，５，６，７，８個）を意味し、通常８個、好ましくは６個、より好ましくは５個、さらに好ましくは３個、特に好ましくは２個である。挿入されるアミノ酸又は置換されるアミノ酸は、天然アミノ酸が好ましいが、遺伝子によりコードされる２０種類のアミノ酸以外の非天然アミノ酸であってもよい。非天然アミノ酸は、アミノ基とカルボキシル基を有する限りどのような化合物でもよいが、例えばγ－アミノ酪酸等が挙げられる。
　アミノ酸残基を置換させるとは、ポリペプチド中のアミノ酸残基を別のアミノ酸残基で置き換えることであり、好ましくは保存的置換である。「保存的置換」とは、ポリペプチドの活性を実質的に変化しないように１～数個のアミノ酸残基を、別の化学的に類似したアミノ酸残基によって置き換えることを意味する。例えば、ある疎水性アミノ酸残基を別の疎水性アミノ酸残基によって置換する場合、ある極性アミノ酸残基を同じ電荷を有する別の極性アミノ酸残基によって置換する場合などが挙げられる。このような置換を行うことができる機能的に類似したアミノ酸は、アミノ酸毎に当該技術分野において公知である。非極性（疎水性）の側鎖を持つアミノ酸としては、グリシン、アラニン、バリン、イソロイシン、ロイシン、プロリン、トリプトファン、フェニルアラニン、メチオニン等が挙げられる。極性の側鎖を持つアミノ酸のなかで中性のものとしては、セリン、スレオニン、チロシン、グルタミン、アスパラギン、システイン等が挙げられる。陽電荷をもつ（塩基性）アミノ酸としては、アルギニン、ヒスチジン、リジン等が挙げられる。また、負電荷をもつ（酸性）アミノ酸としては、アスパラギン酸、グルタミン酸等が挙げられる。
　本発明の製剤に含まれるＨＧＦ蛋白質は、１種のみであってもよく、上述したＨＧＦ蛋白質２種以上であってもよい。
　本発明の製剤に使用されるＨＧＦ蛋白質は、医薬として使用できる程度に精製されたものであれば、種々の方法で調製されたものを用いることができる。ＨＧＦ蛋白質の調製方法としては、各種の方法が知られており、例えば、ラット、ウシ、ウマ、ヒツジなどの哺乳動物の肝臓、脾臓、肺臓、骨髄、脳、腎臓、胎盤などの臓器、血小板、白血球などの血液細胞、あるいは血漿、血清などから抽出、及び精製して得ることができる。
　ＨＧＦ蛋白質を上記生体組織等から抽出精製する方法としては、例えば、ラットに四塩化炭素を腹腔内投与し、肝炎状態にしたラットの肝臓を摘出して粉砕し、Ｓ－セファロース、ヘパリンセファロースなどによるカラムクロマトグラフィーやＨＰＬＣなどの通常の蛋白質精製法にて精製することができる。
　また、ＨＧＦ蛋白質を産生する初代培養細胞や株化細胞を培養し、培養物（培養上清、培養細胞など）から分離精製してＨＧＦ蛋白質を得ることもできる。あるいは遺伝子工学的手法によりＨＧＦ蛋白質をコードする遺伝子（好ましくは、配列番号１又は２で表される塩基配列からなるＤＮＡ）を適切なベクターに組込み、これを適当な宿主に挿入して形質転換し、この形質転換体の培養物から目的とする組換えＨＧＦ蛋白質を得ることができる（例えば、Biochem. Biophys. Res. Commun. 180: 1151-1158, 1991; J. Clin. Invest. 87: 1853-1857, 1991; Protein Expr. Purif. 70: 231-235, 2010など参照）。上記の宿主細胞は特に限定されず、従来から遺伝子工学的手法で用いられている各種の宿主細胞、例えば大腸菌、枯草菌、酵母、糸状菌、植物又は動物細胞などを用いることができる。例えば宿主細胞として動物細胞を用いる場合であれば、ヒトＨＧＦ蛋白質のアミノ酸配列をコードするｃＤＮＡを組み込んだ発現ベクターによって動物細胞、例えば、チャイニーズハムスター卵巣（ＣＨＯ）細胞、マウスＣ１２７細胞、サルＣＯＳ細胞などを形質転換し、その培養上清を分離し、上記のカラムクロマトグラフィー等によって精製してＨＧＦ蛋白質を得ることができる。
　このようにして得られたＨＧＦ蛋白質は、ＨＧＦとしての生物活性を有する限り、天然型ＨＧＦ蛋白質のアミノ酸配列中の１若しくは複数個〔例えば、１～数個（「数個」は上記と同じ意味であり、例えば１～８個、好ましくは１～６個、より好ましくは１～５個、さらに好ましくは１～３個、特に好ましくは１～２個；以下同様である。）〕のアミノ酸が置換、欠失及び／又は挿入されたアミノ酸配列であってもよい。置換は、好ましくは保存的置換である。また同様に、ＨＧＦ蛋白質には、糖鎖が置換、欠失若しくは挿入されていてもよい。ここで、アミノ酸配列について、「１若しくは複数個のアミノ酸が欠失、置換及び／又は挿入」とは、遺伝子工学的手法、部位特異的突然変異誘発法等の周知の技術的方法により、又は天然に生じうる程度の数（通常１～数個）のアミノ酸が、欠失、置換及び／又は挿入等されていることを意味する。糖鎖が置換、欠失若しくは挿入したＨＧＦ蛋白質とは、例えば天然型ＨＧＦ蛋白質に付加している糖鎖を酵素等で処理し糖鎖を欠損させたＨＧＦ蛋白質、また天然型ＨＧＦ蛋白質において、糖鎖が付加しない様に糖鎖付加部位のアミノ酸配列に変異が施されたもの、あるいは天然の糖鎖付加部位とは異なる部位に糖鎖が付加するようアミノ酸配列に変異が施されたもの等をいう。
　本発明のＨＧＦ製剤に使用される乳糖、グリシン、塩化ナトリウム、ｐＨ緩衝剤、及び界面活性剤は、各国薬局方（例えば、日本薬局方、米国薬局方、ヨーロッパ薬局方など）収載品が好ましく使用でき、薬局方に収載されていないものを用いる場合は、薬学的に許容されるものが好ましい。「薬学的に許容される」は、通常安全で毒性が低く、生物学的にも、その他の点でも問題なく、かつ動物薬及びヒトの医薬として許容しうる製剤の調製に有用であることを意味する。
　本発明のＨＧＦ製剤に使用される乳糖は、各国薬局方（例えば、日本薬局方、米国薬局方、ヨーロッパ薬局方など）に収載されている乳糖を好適に使用することができる。乳糖の添加量は、ＨＧＦ蛋白質１重量部に対して、約０．１～５０重量部が好ましく、約０．５～１０重量部がより好ましく、さらに好ましくは約１～５重量部（１～２重量部、１～３重量部、１～４重量部、１～５重量部、２～３重量部、２～４重量部、２～５重量部、３～４重量部、３～５重量部、４～５重量部を含む。）である。
　本発明のＨＧＦ製剤に使用されるグリシンは、各国薬局方（例えば、日本薬局方など）に収載されているグリシンを好適に使用することができる。グリシンの添加量は、ＨＧＦ蛋白質１重量部に対して、約０．０１～１重量部が好ましく、約０．０５～１重量部がより好ましく、さらに好ましくは約０．１～０．５重量部（０．１～０．２重量部、０．１～０．３重量部、０．１～０．４重量部、０．１～０．５重量部、０．２～０．３重量部、０．２～０．４重量部、０．２～０．５重量部、０．３～０．４重量部、０．３～０．５重量部、０．４～０．５重量部を含む。）である。
　本発明のＨＧＦ製剤に用いられるｐＨ緩衝剤は、水等の溶媒に溶解したとき、溶液のｐＨを一定範囲に保つ作用のある緩衝液となり得る薬剤をいい、通常、弱酸とその塩の組み合わせなどが挙げられる。好適なｐＨ緩衝剤としては、溶解したときに、例えばリン酸緩衝液、クエン酸緩衝液またはホウ酸緩衝液となり得る、例えばリン酸、クエン酸、又はホウ酸と、それらの塩との組み合わせなどが挙げられ、クエン酸緩衝液となり得るクエン酸とその塩との組み合わせがより好ましい。これらの弱酸及びそれらの塩は溶媒和物であってもよく、溶媒和物は、例えば水和物が好ましい。ｐＨ緩衝剤を溶かした溶液は緩衝液となり、ＨＧＦ水溶液のｐＨを調整し、ＨＧＦ蛋白質の溶解性及び安定性を保つ作用を有する。本発明におけるＨＧＦ水溶液としては、例えば、ＨＧＦ注射液、後述する凍結乾燥製剤を製造する際に調製される凍結乾燥前の水溶液、該凍結乾燥製剤を溶媒に再溶解した後の水溶液などが挙げられる。ｐＨ緩衝剤は、例えばＨＧＦ製剤が凍結乾燥製剤であれば、ＨＧＦ製剤再溶解後の水溶液のｐＨが約４．５～８．０となるものが好ましい。また、ＨＧＦ注射液であれば、該注射液のｐＨが約４．５～８．０となるものが好ましい。具体的には例えば、本発明におけるｐＨ緩衝剤は、ＨＧＦ注射液、ＨＧＦ凍結乾燥製剤等のいずれのＨＧＦ製剤においても、クエン酸またはその溶媒和物と、クエン酸塩またはその溶媒和物との組み合わせが好ましく、クエン酸又はその水和物と、クエン酸の塩との組み合わせがより好ましく、クエン酸水和物とクエン酸ナトリウム（好ましくは、クエン酸三ナトリウム二水和物、又はクエン酸三ナトリウム(無水)）との組み合わせがさらに好ましい。クエン酸緩衝液は、ＨＧＦ水溶液中のＨＧＦ蛋白質を安定化する作用に優れており、ＨＧＦ注射液、ＨＧＦ凍結乾燥製剤を調製する前のＨＧＦ水溶液、及びＨＧＦ凍結乾燥製剤再溶解後の水溶液中のＨＧＦの蛋白質の安定化に寄与できる。ｐＨ緩衝剤の添加量は、例えば、ＨＧＦ注射液であれば、注射液中の濃度として、好ましくは約１～１００ｍＭ、より好ましくは約１～２０ｍＭの範囲となるように添加するのが好ましい。凍結乾燥製剤であれば、後述する凍結乾燥製剤を製造する際の凍結乾燥前の水溶液中の濃度として、好ましくは約１～１００ｍＭ、より好ましくは約１～２０ｍＭの範囲となるように添加するのが好ましい。
　本発明のＨＧＦ製剤に用いられる界面活性剤としては、例えばポリソルベート（例えば、ポリソルベート２０（ポリオキシエチレンソルビタンモノラウレート）、ポリソルベート８０（ポリオキシエチレンソルビタンモノオレエート）など）、プルロニック（登録商標）Ｆ－６８（GIBCO社）、ポリエチレングリコールなどが挙げられ、二種以上を併用してもよい。界面活性剤として、ポリソルベートが好ましく、ポリソルベート８０が特に好ましい。容器の材質であるガラスや樹脂などにＨＧＦ蛋白質が吸着しやすいため、このような界面活性剤を添加することによって、ＨＧＦ製剤の製造過程において、ＨＧＦ蛋白質の容器への吸着を防止することができる。また、界面活性剤を添加することによって、ＨＧＦ注射液、及びＨＧＦ製剤再溶解後のＨＧＦ水溶液においてＨＧＦ蛋白質の容器への吸着を防止することができる。界面活性剤の添加量は、ＨＧＦ注射液であれば、注射液中の濃度として、例えば、約０．００１～２．０重量％の範囲であるのが好ましく、約０．００５～１．０重量％の範囲がより好ましい。また、凍結乾燥製剤であれば、界面活性剤の添加量は、例えば、後述する凍結乾燥製剤を製造する際の凍結乾燥前の水溶液中の濃度として、約０．００１～２．０重量％の範囲であるのが好ましく、約０．００５～１．０重量％の範囲がより好ましい。
　本発明のＨＧＦ製剤に用いられる塩化ナトリウムは、ＨＧＦ蛋白質の溶解性を保つ作用を有する。すなわち、塩化ナトリウムの添加によりＨＧＦ蛋白質の溶解度が向上し、特に塩化ナトリウム約１５０ｍＭ以上では溶解性が向上する。また、塩化ナトリウムを添加することにより、ＨＧＦ水溶液の浸透圧を体液の浸透圧に近づけることができる。塩化ナトリウムの添加量は目的とする浸透圧比により適宜調製すれば良いが、生理食塩液を基準（浸透圧比１）にして、医療用又は動物薬用注射剤の浸透圧比として許容される浸透圧比約１～３となる量が好ましい。例えばＨＧＦ注射液であれば、塩化ナトリウム濃度として約１５０～１０００ｍＭが好ましく、約１５０～３００ｍＭがより好ましい。凍結乾燥製剤であれば、例えば、後述する凍結乾燥製剤を製造する際のＨＧＦ水溶液中での濃度として、約１５０～１０００ｍＭが好ましく、約１５０～３００ｍＭがより好ましい。
　本発明のＨＧＦ製剤の製造方法は特に限定されないが、例えば凍結乾燥製剤であれば、ＨＧＦ蛋白質、乳糖、グリシン、塩化ナトリウム、ｐＨ緩衝剤、及び界面活性剤を含有する水溶液を凍結乾燥することにより製造できる。このようにして得られる凍結乾燥製剤は、本発明のＨＧＦ製剤の好ましい実施態様の１つである。凍結乾燥製剤の製造に用いられる上記水溶液は、ＨＧＦ蛋白質、乳糖、グリシン、塩化ナトリウム、ｐＨ緩衝剤、及び界面活性剤を含む水溶液であればよく、その調製方法は特に限定されない。前記水溶液は、例えば、精製されたＨＧＦ蛋白質溶液（通常、ｐＨ緩衝液、塩化ナトリウム及び界面活性剤を含む）に乳糖、グリシン及び必要により薬学的に許容される溶媒（例えば、滅菌水、注射用蒸留水、精製水、緩衝液、生理食塩液など）をそれぞれ添加することにより製造できる。ＨＧＦ蛋白質は、水溶液中に好ましくは約０．０５～４０ｍｇ／ｍＬの濃度、より好ましくは約０．１～４０ｍｇ／ｍＬの濃度、さらに好ましくは約０．１～２０ｍｇ／ｍＬの濃度となるように調製することが好ましい。乳糖は、水溶液中に約０．１～１００ｍｇ／ｍＬが好ましく、約０．５～５０ｍｇ／ｍＬがより好ましく、さらに好ましくは約１～２０ｍｇ／ｍＬとなるように添加される。グリシンは、水溶液中に好ましくは約０．０５～５０ｍｇ／ｍＬ、より好ましくは約０．０５～２０ｍｇ／ｍＬ、さらに好ましくは約０．１～１０ｍｇ／ｍＬとなるように添加される。このＨＧＦ水溶液には、さらに必要に応じて、溶解補助剤、酸化防止剤、無痛化剤又は等張化剤などの添加物を加えることもできる。ＨＧＦ水溶液は、フィルターなどで濾過して滅菌し、バイアル又はアンプルに注入して凍結乾燥することが好ましい。フィルターは、例えば、ポアサイズ約０．２２μｍ以下の滅菌用フィルターを使用するのが好ましい。滅菌用フィルターとしては、例えば、デュラポア（登録商標、メルク株式会社製）又はザルトポア２（登録商標、ザルトリウス株式会社製）などが好ましく挙げられる。
　前記水溶液を凍結乾燥する方法は特に限定されず、通常の凍結乾燥方法を採用することができる。凍結乾燥方法としては、例えば、常圧下で冷却凍結する凍結過程、溶質に拘束されない自由水を減圧下で昇華乾燥する一次乾燥過程、溶質固有の吸着水や結晶水を除去する二次乾燥過程の３つの工程で構成される乾燥方法が挙げられる。凍結過程の冷却温度は－約６０℃～－４０℃が好ましく、一次乾燥過程の温度は－約５０℃～０℃が好ましく、さらに二次乾燥過程の温度は約４℃～４０℃が好ましい。真空圧力は約０．１～１．５Ｐａが好ましく、特に約０．５～１．２Ｐａが好ましい。凍結乾燥後の乾燥庫内は復圧させる。復圧の方法としては、無菌の空気又は不活性ガス（例えば、無菌窒素ガス、無菌ヘリウムガスなど）を庫内に送入して好ましくは約７０～１００ｋＰａ、より好ましくは約８０～９５ｋＰａまで一次復圧し、次いで大気圧まで復圧（二次復圧）する方法が好ましい。バイアルの打栓は、一次復圧後に行うのが好ましく、打栓したバイアルは二次復圧後に速やかにキャップで締めることが好ましい。アンプルの場合は、乾燥終了後にアンプル末端を熱（通常ガスバーナー）で溶融封止するのが好ましい。
　ＨＧＦ凍結乾燥製剤は、水分含量が約２重量％以下であることが好ましい。
　本発明のＨＧＦ凍結乾燥製剤は、保存中におけるＨＧＦ蛋白質重合体形成が抑制され、安定性に優れている。ここで「蛋白質重合体」とは複数の蛋白質単量体が例えば鎖状または網状に結合して生成される物質をいい、本発明においてはＨＧＦ蛋白質の２量体、３量体または４量体を含む。
　本発明のＨＧＦ凍結乾燥製剤は、使用に当たっては、通常、薬学的に許容される溶媒に溶解させて、水溶液の形態で用いられる。「薬学的に許容される」は、前記と同じ意味である。薬学的に許容される溶媒としては、例えば、注射用蒸留水、生理食塩液、各種輸液（例えば、５％ブドウ糖液、リンゲル液など）又は人工髄液などが好ましく挙げられる。溶媒は、より好ましくは、注射用蒸留水又は生理食塩液である。好ましい態様においては、本発明のＨＧＦ凍結乾燥製剤は、ＨＧＦ蛋白質の濃度が好ましくは約０．０５～４０ｍｇ／ｍＬ、より好ましくは約０．１～４０ｍｇ／ｍＬ、さらに好ましくは約０．１～２０ｍｇ／ｍＬとなるように、例えば注射用蒸留水などの薬学的に許容される溶媒に溶解し、注射液として好適に用いることができる。
　本発明のＨＧＦ凍結乾燥製剤は、上記した薬学的に許容される溶媒とともにキットとして包装し、製造することもできる。
　本発明のＨＧＦ注射液は、好ましくはＨＧＦ蛋白質、乳糖、グリシン、塩化ナトリウム、ｐＨ緩衝剤、及び界面活性剤を含有する水溶液である。乳糖、グリシン、塩化ナトリウム、ｐＨ緩衝剤、及び界面活性剤、並びにその好ましい態様等は、上述した通りである。
　本発明のＨＧＦ注射液の製造方法は特に限定されず、例えば、前記のＨＧＦ凍結乾燥製剤を薬学的に許容される溶媒に溶解して得ることができる。薬学的に許容される溶媒としては、例えば、注射用蒸留水、生理食塩液、各種輸液（例えば、５％ブドウ糖液、リンゲル液など）又は人工髄液などが好ましく挙げられる。溶媒は、より好ましくは、注射用蒸留水又は生理食塩液である。また、本発明のＨＧＦ注射液は、約０．１～４０ｍｇ／ｍＬの濃度の精製ＨＧＦ蛋白質水溶液（通常、ｐＨ緩衝液、塩化ナトリウム及び界面活性剤を含む）に乳糖、グリシン及び必要により薬学的に許容される溶媒（例えば、滅菌水、注射用蒸留水、精製水、緩衝液、生理食塩液など）を添加して調製することもできる。例えば、上記凍結乾燥製剤の製造に使用されるＨＧＦ蛋白質、乳糖、グリシン、塩化ナトリウム、ｐＨ緩衝剤、及び界面活性剤を含有する水溶液を、ＨＧＦ注射液として使用することもできる。
　本発明のＨＧＦ注射液中のＨＧＦ蛋白質濃度は、好ましくは約０．０５～４０ｍｇ／ｍＬ、より好ましくは約０．１～４０ｍｇ／ｍＬ、さらに好ましくは約０．１～２０ｍｇ／ｍＬである。
　本発明のＨＧＦ注射液中の乳糖の濃度は、約０．１～１００ｍｇ／ｍＬが好ましく、約０．５～５０ｍｇ／ｍＬの範囲がより好ましく、さらに好ましくは約１～２０ｍｇ／ｍＬである。
　本発明のＨＧＦ注射液中のグリシンの濃度は、約０．０５～５０ｍｇ／ｍＬが好ましく、約０．０５～２０ｍｇ／ｍＬの範囲がより好ましく、さらに好ましくは約０．１～１０ｍｇ／ｍＬである。
　本発明のＨＧＦ注射液のｐＨは、好ましくは約４．５～８．０である。
　本発明のＨＧＦ注射液には、さらに必要に応じて、溶解補助剤、酸化防止剤、無痛化剤又は等張化剤などの添加物を加えることもできる。
　本発明のＨＧＦ注射液は、通常澄明な溶液である。本発明のＨＧＦ注射液は、溶液の状態でありながらも保存中のＨＧＦ重合体形成が抑制され、安定性に優れている。
　本発明のＨＧＦ製剤の用途は特に限定されず、中枢神経疾患、例えば、筋萎縮性側索硬化症（ＡＬＳ）、アルツハイマー病、パーキンソン病、ハンチントン舞踏病、脊髄小脳変性症、脊髄損傷、脳梗塞、脳虚血、多発性硬化症等の治療又は予防のための医薬組成物として好適に用いられる。中でも、本発明のＨＧＦ製剤は、中枢神経疾患の治療のために好適に用いられるものである。
　本発明のＨＧＦ注射液、ＨＧＦ凍結乾燥製剤等のＨＧＦ製剤は、例えば、脳室内又は髄腔内に投与することができるものである。例えば本発明のＨＧＦ注射液は、脳室内投与用又は髄腔内投与用の製剤として好適である。本発明のＨＧＦ注射液が投与され得る髄腔とは、脊髄周囲の脳脊髄液で満たされた空間であり、該空間は、くも膜及び硬膜の２層の膜によって囲まれている。髄腔とは、これら周囲２層の膜のうち内側に位置するくも膜の内部にある空間であり、髄腔内投与は、すなわち、くも膜下腔内投与を意味する。脳と脊髄の周囲は、ともに脳脊髄液で満たされており、脳内部の脳室もまた脳脊髄液で満たされている。脳室と脳周囲と髄腔とはつながった空間を形成しており、脳脊髄液はこの空間を循環している。したがって、脳室内投与も髄腔内投与も、ともに脳脊髄液中に薬剤を投与することであり、通常、実質的に脳室内投与と髄腔内投与とは同一の投与経路である。また、本発明のＨＧＦ注射液等のＨＧＦ製剤は、脳実質内又は脊髄実質内に投与することも可能である。脳室内投与又は髄腔内投与、あるいは脳実質内投与又は脊髄実質内投与にあたっては、注射液をボーラス投与してもよいし、シリンジポンプなどを用いて持続注入してもよい。
　なお、本発明のＨＧＦ製剤の使用用途は、中枢神経疾患の治療にのみ限定されるものではない。本発明のＨＧＦ製剤は、医薬として十分な安定性を有しているとともに、安全性にも優れているため、中枢神経疾患以外の疾患の治療に用いることもできる。この場合、投与経路は、静脈内注射、皮下注射、筋肉内注射、局所投与など、適用する疾患の治療に適した投与経路を採用することができる。
　本発明のＨＧＦ製剤の投与量は、対象とする疾患の種類、病状等に応じて適宜設定すればよい。例えば、ＨＧＦ注射液を中枢神経疾患の治療のために用いる場合であれば、成人１日当たり、ＨＧＦ蛋白質として、好ましくは約０．０１～５０ｍｇ、より好ましくは約０．１～１０ｍｇを投与することが好ましい。また、ＨＧＦ注射液を脳室内投与又は髄腔内投与することが好ましい。また、本発明のＨＧＦ注射液等のＨＧＦ製剤は、投与の際に、薬学的に許容される適切な溶媒で適宜希釈して使用してもよい。薬学的に許容される溶媒としては、例えば、注射用蒸留水、生理食塩液、各種輸液（例えば、５％ブドウ糖液、リンゲル液など）又は人工髄液などであり、より好ましくは、注射用蒸留水又は生理食塩液が挙げられる。
　本発明は、ＨＧＦ蛋白質を有効成分とし、さらに乳糖、グリシン、塩化ナトリウム、ｐＨ緩衝剤、及び界面活性剤を含有するＨＧＦ製剤を中枢神経疾患の患者に投与する中枢神経疾患の治療方法も包含する。
　本発明は、中枢神経疾患の治療に使用するための、ＨＧＦ蛋白質を有効成分とし、さらに乳糖、グリシン、塩化ナトリウム、ｐＨ緩衝剤、及び界面活性剤を含有するＨＧＦ製剤も包含する。
　ＨＧＦ製剤は、好ましくは凍結乾燥製剤（ＨＧＦ凍結乾燥製剤）又は注射液（ＨＧＦ注射液）であり、より好ましくは注射液である。
　ＨＧＦ製剤、ＨＧＦ凍結乾燥製剤、及びＨＧＦ注射液、及びそれらの好ましい態様等は、上述した通りである。中枢神経疾患の治療において、ＨＧＦ製剤は、好ましくは髄腔内又は脳室内、あるいは脊髄実質内又は脳実質内に投与される。
　本発明は、ＨＧＦ蛋白質を含む水溶液中のＨＧＦ重合体（ＨＧＦ蛋白質の重合体）生成を抑制する方法であって、該水溶液に乳糖、グリシン、塩化ナトリウム、ｐＨ緩衝剤、及び界面活性剤を配合することを特徴とする、水溶液におけるＨＧＦ重合体生成抑制方法も包含する。水溶液におけるＨＧＦ蛋白質、乳糖、グリシン、塩化ナトリウム、ｐＨ緩衝剤、及び界面活性剤、並びにそれらの好ましい添加量等は、上述したＨＧＦ注射液におけるものと同様である。
　本発明は、ＨＧＦ蛋白質を含む凍結乾燥製剤中のＨＧＦ重合体（ＨＧＦ蛋白質の重合体）の生成を抑制する方法であって、該凍結乾燥製剤に、乳糖、グリシン、塩化ナトリウム、ｐＨ緩衝剤、及び界面活性剤を配合することを特徴とする、凍結乾燥製剤におけるＨＧＦ重合体生成抑制方法も包含する。ＨＧＦ蛋白質、乳糖、グリシン、塩化ナトリウム、ｐＨ緩衝剤、及び界面活性剤、並びにそれらの好ましい添加量等は、上述したＨＧＦ凍結乾燥製剤におけるものと同様である。
　以下に、実施例により本発明をさらに詳細に説明するが、本発明はこれら実施例により限定されるものではない。
　以下、配列番号６に表されるアミノ酸配列からなる組換えヒトＨＧＦ蛋白質（以下、単にＨＧＦとのみ表記する）に各種の添加物を加え、安定性及び安全性を検討した。なお、以下の実施例において特に断りのない場合、％は質量％を示す。使用したＨＧＦは、Biochem. Biophys. Res. Commun. 180: 1151-1158, 1991に記載の方法に準じてＣＨＯ細胞を用いて製造した。
［実施例１］
　５ｍＭ　クエン酸緩衝液（ｐＨ６．０）、及び０．３７５Ｍ　塩化ナトリウム、０．００５％ポリソルベート８０を含むＨＧＦ溶液に、乳糖およびグリシンを溶解し、それぞれ下記表１に示す濃度となるよう調製した。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000001
　得られた上記溶液をバイアル（φ２３×４３ｍｍ）に１ｍＬずつ無菌的に分注した。バイアルにゴム栓を半打栓し、トレイに整列させ、凍結乾燥機（トリオマスター；共和真空技術株式会社製）に入れ、－５０℃で予備凍結した後、一次乾燥（－５０℃→－２０℃／４時間、－２０℃／２４時間以上、０．０１～０．１Ｔｏｒｒ）及び二次乾燥（－２０℃→２０～３０℃／８～１０時間、２０～３０℃／１０時間以上、０．０１～０．１Ｔｏｒｒ）を経て凍結乾燥製剤を得た。　凍結乾燥終了後、トリオマスター庫内に無菌窒素を送入して復圧（庫内圧力：８８．０ｋＰａ；一次復圧）し、ゴム栓を全打栓してから無菌窒素でトリオマスター庫内を大気圧に戻し（二次復圧）、バイアルを取り出した後、速やかにバイアルをキャップで締めた。このようにして、本発明のＨＧＦ凍結乾燥製剤を得た。
［実施例２］
　乳糖の添加濃度を７．５ｍｇ／ｍＬとする以外は、実施例１と同様にして、ＨＧＦ凍結乾燥製剤を得た。
［実施例３］
　乳糖の添加濃度を１０ｍｇ／ｍＬとする以外は、実施例１と同様にして、ＨＧＦ凍結乾燥製剤を得た。
［実施例４］
　２ｍＭクエン酸緩衝液（ｐＨ６．０）、及び０．１５Ｍ　塩化ナトリウム、０．００２％ポリソルベート８０を含むＨＧＦ溶液に、乳糖およびグリシンをそれぞれ下記表２に示す濃度となるよう溶解し、ＨＧＦ注射液を得た。また、実施例２で得たＨＧＦ凍結乾燥製剤を注射用蒸留水２．５ｍＬで溶解し、表２の組成のＨＧＦ注射液を得ることもできる。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000002
　実験例１
　１０ｍｇ／ｍＬ　ＨＧＦ、１０ｍＭ　クエン酸緩衝液（ｐＨ６．０）、０．３Ｍ　塩化ナトリウム、及び０．０３％ポリソルベート８０を基本成分とし、この基本成分に表３の各添加物を加えて処方１～３のＨＧＦ溶液（２ｍＬ）を調製し、これをバイアル中で実施例１と同様に凍結乾燥して、各凍結乾燥製剤を作製した。各凍結乾燥製剤を強制劣化させる条件として５０℃で１週間保存し、保存前後の重合体含量を測定した。結果を表４に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000003
　ＨＧＦ製剤の重合体含量は、各凍結乾燥製剤を２ｍＬの注射用蒸留水で溶解し、得られるＨＧＦ溶液を下記条件で高速液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）にて分析して得られる面積百分率（％）（以下、重合体含量（％）という）として下記式１により求めた。
Figure JPOXMLDOC01-appb-M000004
　式１中、ＡＭはＨＧＦピーク面積、ＡＡは重合体ピーク面積を示す。
（ＨＰＬＣ条件）
カラム：ゲルろ過カラム（商品名：Ｓｕｐｅｒｄｅｘ　２００　１０／３００、ＧＥヘルスケア社製）
移動相：塩化ナトリウム５８．４４ｇ、クエン酸三ナトリウム二水和物２．９４ｇ、及びポリソルベート８０　０．１ｇを精製水に溶かし、精製水で１Ｌとした液をＡ液とした。塩化ナトリウム５８．４４ｇ、クエン酸一水和物２．１０ｇ、及びポリソルベート８０　０．１ｇを精製水に溶かし、１Ｌとした液をＢ液とした。Ａ液にＢ液を加え、ｐＨ６．０に調整後、０．４５μｍのフィルター（商品名：Millicup-HV、孔径0.45μm、メルク社製）でろ過し、使用前に脱気した。室温で保存し、２週間以内に使用した。
カラム温度：２５℃
流速：０．５ｍＬ／分
検液注入量：２５μＬ
検出波長：２８０ｎｍ
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000005
　基本成分のみで構成される処方１のＨＧＦ溶液から作製した凍結乾燥製剤では、過酷条件で保存すると著しい重合体の生成が認められた。一方、処方２及び３のＨＧＦ溶液から作製した凍結乾燥製剤では過酷条件でも重合体の生成が抑制されており、従来知られているように、精製白糖又はＬ－アラニンには、ＨＧＦ凍結乾燥製剤を安定に維持する効果が認められた。
　実験例２
　２．５ｍｇ／ｍＬ　ＨＧＦ、５ｍＭ　クエン酸緩衝液（ｐＨ６．０）、及び０．３７５Ｍ　塩化ナトリウム、０．００５％ポリソルベート８０を基本成分とし、この基本成分に表５の各添加物を加えて処方４～６のＨＧＦ溶液（１ｍＬ）を調製し、これをバイアル中で実施例１と同様に凍結乾燥して、各凍結乾燥製剤を作製した。各凍結乾燥製剤を５０℃で１週間保存し、保存前後の重合体含量を実験例１と同様に測定した。結果を表６に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000006
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000007
　グリシン及び乳糖を添加した処方５のＨＧＦ凍結乾燥製剤では、重合体の生成が抑制されており、製剤の安定性がよいことがわかった。
　実験例３
　グリシン及び乳糖を添加したＨＧＦ凍結乾燥製剤の安定性を確認するため、２．５ｍｇ／ｍＬ　ＨＧＦ、５ｍＭ　クエン酸緩衝液（ｐＨ６．０）、０．３７５Ｍ　塩化ナトリウム、及び０．００５％ポリソルベート８０を基本成分とし、この基本成分に表７の各添加物を加えて処方４、５、７及び８のＨＧＦ溶液（１ｍＬ）を調製し、これをバイアル中で実施例１と同様に凍結乾燥して、各凍結乾燥製剤を作製した。各凍結乾燥製剤を２５℃で１～２ヶ月あるいは５０℃で２週間保存し、保存前後の重合体含量を実験例１と同様に測定した。結果を表８に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000008
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000009
　グリシンと乳糖を添加した処方５及び７のＨＧＦ溶液から作製した凍結乾燥製剤では、室温の２５℃で２ヶ月保存後も重合体含量はわずかな増加に抑制されていた。さらに、処方５及び７のＨＧＦ溶液から作製した凍結乾燥製剤では、過酷条件である５０℃、２週間保存後でも重合体含量は１％強に過ぎず、重合体の生成が抑制されていた。処方５及び７のＨＧＦ溶液から作製した凍結乾燥製剤における重合体形成抑制効果は、ＨＧＦ凍結乾燥製剤の安定化に有効であることが知られている精製白糖をグリシンとともに加えた処方８とほぼ同等であった。
　実験例４
　実施例２で得たＨＧＦ凍結乾燥製剤を注射用蒸留水２．５ｍＬで溶解し、表２の組成のＨＧＦ注射液を得た。該注射液を密閉容器中で２週間、４０℃で保存した。保存前後のＨＧＦ注射液の重合体含量を実験例１と同様に測定した。また、保存前後のＨＧＦ注射液のＨＧＦの生物活性を、ミンク肺由来上皮様細胞であるＭｖ１Ｌｕ細胞（理研、ＢＲＣ　ＩＤ：ＲＣＢ０９９６）の増殖性を指標に評価した。
　保存前及び保存後のＨＧＦ注射液中の重合体含量はそれぞれ１．５４％及び２．６７％で、４０℃で２週間保存した間の重合体含量の増加は１％程度に留まった。また、４０℃で２週間保存した後のＨＧＦ注射液中のＨＧＦの生物活性は、保存前に比べて８９．４％（保存前を１００％としての相対活性）と高い活性を維持していた。このように、本発明のＨＧＦ注射液は、４０℃で２週間保存する間もほぼ安定であった。
　試験例１
　ラット髄腔内に表９のＨＧＦ溶液１、２又は各種溶媒（溶媒ＡまたはＢ）又は生理食塩液４５μＬをボーラス（bolus）単回投与し、中枢神経系に対する安全性を検討した。なお、ラットの髄液量は約２００μＬであり、ここに過剰な量の溶液をボーラス単回投与することはそれ自体がラットに異常な症状を引き起こすため、ラットの髄腔内にボーラス単回投与できる最大許容量を４５μＬとして設定した。
　ラットをペントバルビタール麻酔下に、頸部から背部にかけて電気バリカンで剪毛し、消毒用エタノール及びイソジンン液１０％（商品名、株式会社明治：ポピドンヨード１０％溶液）で剃毛部位を清拭及び消毒した。背部皮膚を切開し、第１１胸椎から第２腰椎を露出後、第１２／１３胸椎間の靭帯を切除し、硬膜を露出させた。露出部位の硬膜及びくも膜に小切開を加え髄液の流出を確認した後、直ちに生理食塩液（株式会社大塚製薬工場）を満たしたポリウレタンカテーテル（MRE025(OD:0.25mm、10cm)とMRE010(OD:0.65mm、2.5cm) を接続した２段カテーテル；Braintree, USA）の先端を切開部より髄腔内（頭部側に向けて）に約２．５ｃｍ挿入した。医療用アロンアルファ（商品名：アロンアルファA「三共」、第一三共株式会社）を用いてカテーテルを周囲組織に固定するとともに、カテーテルの末端を熱処理により閉塞し、適切な長さで頸部皮膚から露出させた。創部は縫合糸を用いて縫合した。ラットが麻酔から覚醒するまでの間は保温マットにより保温し、覚醒後、飼育ケージに戻した。カテーテル留置翌日、ラットの覚醒下において、留置カテーテルを介して表９のＨＧＦ溶液１、２、溶媒ＡもしくはＢ又は生理食塩液４５μＬを単回ボーラス投与し、続いて生理食塩液を１０μＬ投与（カテーテル内に残留するＨＧＦ溶液または溶媒を髄腔内に押し込むため）した。その後にカテーテルを熱処理して閉塞させて皮下へ戻し、ラットの状態を観察した。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000010
　ラット髄腔内へのボーラス投与において、生理食塩液の投与ではラットは何ら異常を示さなかった。一方、従来ＨＧＦ製剤に対する安定化効果が知られている添加物を配合して調製した溶媒Ａの髄腔内投与では、一過性ではあるが、ラットの自発運動低下、流涎、痙攣などの神経学的異常所見が認められた。これに対し、本発明のＨＧＦ製剤に用いられる添加物を配合して調製した溶媒Ｂの髄腔内投与では、生理食塩液を投与した場合と同様に、ラットは何ら異常を示さなかった。この溶媒Ｂで調製されたＨＧＦ溶液１（実施例４の注射液と同一であり、本発明のＨＧＦ注射液に該当する）をラットの髄腔内に同様に投与しても、ラットは何ら異常を示さなかった。本発明のＨＧＦ注射液は、中枢神経系に対して悪影響を及ぼさず、非常に安全な組成であることが確認された。一方、溶媒Ｂの乳糖を白糖に代えた組成の溶媒で調製されたＨＧＦ溶液２をラットの髄腔内に投与した場合は、ラットは投与後２０分程度の間、啼鳴や四肢硬直など神経学的に異常な症状を示した。
　試験例２
　ラットの脊髄損傷モデルを作製し、損傷直後からＨＧＦ溶液を髄腔内に反復投与した（４５μＬ／ｓｈｏｔ、３回／週、４週間）（ＨＧＦ投与群；ｎ＝６）。このとき、ＨＧＦ溶液として、実施例２の凍結乾燥製剤を２．５ｍＬの注射用蒸留水で再溶解して得られる表２の組成のＨＧＦ溶液を使用した。また、対照群の脊髄損傷モデルラット（ｎ＝６）にはＨＧＦを含まない溶媒（２ｍＭクエン酸緩衝液（ｐＨ６．０）、０．１５Ｍ塩化ナトリウム、０．００２％ポリソルベート８０、０．１６ｍｇ／ｍＬグリシン、及び３ｍｇ／ｍＬ乳糖）を同様に投与した。
　脊髄損傷モデルラットの作製は以下のように行った。ラットは、まずケタミン及びキシラジン麻酔下に頸部から腰部にかけて電気バリカンで剪毛し、７０％アルコール及びイソジン液１０％（商品名、株式会社明治：ポピドンヨード１０％溶液）で清拭した。背部皮膚を切開し、第６胸椎から第５腰椎付近まで露出後、第９～１０胸椎の椎弓及び靭帯を切除し、硬膜を露出させた。直ちにMASCIS Impactor（Rutgers university, USA）を用いて１０ｇの重錘を２５ｍｍの高さから第１０胸椎高位に落下させ、脊髄損傷を作製した。脊髄損傷直後に第１／２腰椎間の靭帯を切除し、硬膜を露出させ、硬膜及びくも膜に小切開を加えた。髄液の漏出を確認し、直ちにポリウレタンカテーテル（MRE025 (OD:0.25 mm、10 cm、Braintree, USA) とMRE010 (OD:0.65 mm、2.5 cm、Braintree, USA) を接続した２段カテーテル）の先端を髄腔内に頭側に向けて挿入し、脊髄損傷付近まで進めた。カテーテルを医療用アロンアルファ（商品名：アロンアルファＡ「三共」、第一三共株式会社製）で筋層に固定して留置し、第１回目の薬液（ＨＧＦ溶液または溶媒）投与を行った後、カテーテル末端を適切な長さで頸部皮膚から露出させ、創部を縫合した。動物は麻酔からの覚醒まで保温マットで保温し、覚醒後、飼育ケージに戻した。ＨＧＦ溶液または溶媒の投与は以後、３回／週の頻度で４週間、留置したカテーテルを介して行った。各回の投与では、ＨＧＦ溶液または溶媒４５μＬの投与に続いて生理食塩液を１０μＬ投与（カテーテル内に残留するＨＧＦ溶液または溶媒を髄腔内に押し込むため）した。各投与の終了の後は、その都度カテーテル端を熱処理して閉塞させた。
　ＢＢＢスケール（２１点満点：０点（完全麻痺）～２１点（正常な後肢運動）の２１段階で評価）（Basso DM, Beattie MS, Bresnahan JC: A sensitive and reliable locomotor rating scale for open field testing in rats. J Neurotrauma 12:1-21, 1995）を用いてラットの後肢運動機能を経時的に評価し、脊髄損傷に対するＨＧＦの治療効果を検討した。脊髄損傷の翌日では、ＢＢＢスコアはすべての個体で０点であったが、脊髄損傷４週間後、ＨＧＦ投与群ではＢＢＢスコアの平均は１０点以上に回復し、溶媒投与群（対照群）のスコア（平均１０点未満）よりも有意に高値を示した。ＨＧＦの脊髄損傷に対する治療効果が確認された。なお、４週間の投与期間にわたり、溶媒投与群（対照群）、及びＨＧＦ投与群のいずれにおいても、ラットは脊髄損傷以外の異常な症状を示さなかった。また、脊髄損傷４週間後にラットを解剖したところ、ラットの脊髄において脊髄損傷を受けた部位以外に異常は認められなかった。実施例２の凍結乾燥製剤を再溶解して得たＨＧＦ溶液は脊髄損傷の治療において安全でかつ有効であることが確認された。
　本発明によれば、医薬として有用な保存安定性の優れたＨＧＦ製剤を提供できる。また、本発明のＨＧＦ注射液は、ＡＬＳ、脊髄損傷などの中枢神経疾患の治療のために、髄腔内又は脳室内、あるいは脊髄実質内又は脳実質内に投与することが可能である。従って本発明は、医療分野等で有用である。

Claims (20)

  1. 　肝細胞増殖因子（ＨＧＦ）蛋白質を有効成分とし、さらに乳糖、グリシン、塩化ナトリウム、ｐＨ緩衝剤、及び界面活性剤を含有することを特徴とするＨＧＦ製剤。
  2. 　凍結乾燥製剤である請求項１に記載のＨＧＦ製剤。
  3. 　肝細胞増殖因子（ＨＧＦ）蛋白質、乳糖、グリシン、塩化ナトリウム、ｐＨ緩衝剤、及び界面活性剤を含有する水溶液を凍結乾燥して得られる凍結乾燥製剤である請求項２に記載のＨＧＦ製剤。
  4. 　乳糖の含有量がＨＧＦ１重量部に対して０．１～５０重量部である請求項１～３のいずれか一項に記載のＨＧＦ製剤。
  5. 　水溶液における乳糖の濃度が０．１～１００ｍｇ／ｍＬである請求項３に記載のＨＧＦ製剤。
  6. 　水溶液におけるグリシンの濃度が０．０５～５０ｍｇ／ｍＬである請求項３に記載のＨＧＦ製剤。
  7. 　水溶液におけるＨＧＦ蛋白質濃度が０．０５～４０ｍｇ／ｍＬである請求項３に記載のＨＧＦ製剤。
  8. 　ｐＨ緩衝剤がクエン酸又はその水和物と、クエン酸の塩との組み合わせである請求項１に記載のＨＧＦ製剤。
  9. 　界面活性剤がポリソルベートである請求項１に記載のＨＧＦ製剤。
  10. 　注射液である請求項１に記載のＨＧＦ製剤。
  11. 　注射液が、請求項２に記載の凍結乾燥製剤を、薬学的に許容される溶媒に溶解して得られる水溶液である請求項１０に記載のＨＧＦ製剤。
  12. 　中枢神経疾患の治療用である請求項１に記載のＨＧＦ製剤。
  13. 　中枢神経疾患が、筋萎縮性側索硬化症（ＡＬＳ）、アルツハイマー病、パーキンソン病、ハンチントン舞踏病、脊髄小脳変性症、脊髄損傷、脳梗塞、脳虚血、及び多発性硬化症のいずれかである請求項１２に記載のＨＧＦ製剤。
  14. 　髄腔内、脳室内、脊髄実質内又は脳実質内に投与されるものであることを特徴とする請求項１に記載のＨＧＦ製剤。
  15. 　注射液中の乳糖の濃度が０．１～１００ｍｇ／ｍＬである請求項１０に記載のＨＧＦ製剤。
  16. 　注射液中のグリシンの濃度が０．０５～５０ｍｇ／ｍＬである請求項１０に記載のＨＧＦ製剤。
  17. 　注射液中のＨＧＦ蛋白質濃度が０．０５～４０ｍｇ／ｍＬである請求項１０に記載のＨＧＦ製剤。
  18. 　ＨＧＦ蛋白質がヒト由来のＨＧＦ蛋白質である請求項１に記載のＨＧＦ製剤。
  19. 　ＨＧＦ蛋白質が、配列番号５又は配列番号６で表されるアミノ酸配列からなる蛋白質である請求項１８に記載のＨＧＦ製剤。
  20. 　ＨＧＦ蛋白質が、配列番号５で表されるアミノ酸配列に対して８０％以上の配列同一性を有する蛋白質であって、ＨＧＦとしての生物活性を有する蛋白質である請求項１に記載のＨＧＦ製剤。
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Cited By (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN110621774A (zh) * 2016-10-14 2019-12-27 儿童医疗中心有限公司 用于治疗中枢神经系统疾病和病症的组合物和方法
JP2022500353A (ja) * 2018-07-17 2022-01-04 ヘリックスミス カンパニー， リミテッド Ｉｇｆ−１−暗号化ｄｎａ作製物及びｈｇｆ−暗号化ｄｎａ作製物を用いた神経病症治療
JP2022522941A (ja) * 2019-01-07 2022-04-21 ベイジン・ノースランド・バイオテック・カンパニー・リミテッド ヒト肝細胞増殖因子変異体およびその使用
US11548936B2 (en) 2017-01-17 2023-01-10 Children's Medical Center Corporation Compositions and methods for treating lysosomal storage diseases and disorders
US12000843B2 (en) 2017-01-17 2024-06-04 Children's Medical Center Corporation Compositions and methods for diagnosing and treating peroxisomal diseases

Families Citing this family (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP3192524B1 (en) * 2014-09-10 2021-12-29 Kringle Pharma Inc. Hgf preparation suitable for treatment of neurological disorders
KR102245539B1 (ko) * 2018-02-12 2021-04-29 주식회사 지앤피바이오사이언스 코어-쉘 구조의 마이크로 입자를 유효성분으로 포함하는 성장인자 유전자 발현 증가용 조성물
BR112023022474A2 (pt) 2021-05-14 2024-01-09 Claris Biotherapeutics Inc Composições de fator de crescimento para o tratamento de doença ocular
CA3245700A1 (en) 2022-03-11 2025-06-13 Univ Keio SPINAL CORD INJURY TREATMENT AGENT
EP4585225A1 (en) 2022-09-08 2025-07-16 Keio University Spinal cord injury therapeutic targeting from acute phase to subacute phase

Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2000072873A1 (fr) * 1999-05-31 2000-12-07 Mitsubishi Chemical Corporation Preparations lyophilisees de hgf
WO2005034985A1 (ja) * 2003-10-14 2005-04-21 Kringle Pharma Inc. 知的障害の改善剤
JP2011173916A (ja) * 2011-05-02 2011-09-08 Toshiichi Nakamura 筋萎縮性側索硬化症治療剤

Family Cites Families (21)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
NZ232813A (en) 1989-03-10 1992-08-26 Snow Brand Milk Products Co Ltd Human fibroblast glycoprotein, cell differentiation, blood vessel endothelial cell growth factor, cellular immunology inforcing factor of 78 or 74 thousand daltons plus or minus two thousand daltons
JP3680114B2 (ja) * 1993-09-17 2005-08-10 敏一 中村 脳神経障害治療剤
JP3927248B2 (ja) * 1995-07-11 2007-06-06 第一製薬株式会社 Ｈｇｆ凍結乾燥製剤
US6685940B2 (en) * 1995-07-27 2004-02-03 Genentech, Inc. Protein formulation
US20030176347A1 (en) 2003-05-14 2003-09-18 Toshikazu Nakamura Remedies for amyotrophic lateral sclerosis
JP5442173B2 (ja) 2000-09-14 2014-03-12 敏一 中村 筋萎縮性側索硬化症治療剤
HUP0400466A3 (en) * 2001-07-11 2006-01-30 Maxygen Holdings Ltd Georgetow G-csf conjugates
GB0202633D0 (en) * 2002-02-05 2002-03-20 Delta Biotechnology Ltd Stabilization of protein preparations
JP4537956B2 (ja) * 2003-03-26 2010-09-08 クリングルファーマ株式会社 喘息治療剤
US7265092B2 (en) * 2004-09-30 2007-09-04 Kai Pharmaceuticals, Inc. Pharmaceutical formulation
DK1855661T3 (da) * 2005-03-07 2011-08-15 Mondobiotech Ag Aviptadilformulering
CA2649820C (en) 2006-04-20 2017-12-05 Kringle Pharma Inc. Agent for treating polyglutamine aggregation-caused disease or suppressing onset thereof
KR20150004933A (ko) * 2006-12-18 2015-01-13 제넨테크, 인크. 항-ｎｏｔｃｈ3 길항제 항체 및 ｎｏｔｃｈ3-관련 질환의 예방 및 치료에 있어서 그의 용도
WO2008102452A1 (ja) * 2007-02-22 2008-08-28 Kringle Pharma Inc. Ｈｇｆ製剤
WO2008105088A1 (ja) 2007-02-28 2008-09-04 Keio University 脊髄損傷治療薬剤
WO2010008023A1 (ja) * 2008-07-18 2010-01-21 クリングルファーマ株式会社 骨延長促進剤
WO2010041716A1 (ja) 2008-10-10 2010-04-15 クリングルファーマ株式会社 腱骨移行部組織または靭帯骨移行部組織の再生促進剤
CN101785856B (zh) 2009-01-22 2012-06-06 齐鲁制药有限公司 稳定等渗的去氨普酶α1或其突变体制剂
HK1214961A1 (zh) 2012-12-07 2016-08-12 Shire Human Genetic Therapies, Inc. 粘多醣病iiia型的鞘內注射治療的方法和組合物
WO2014145174A1 (en) * 2013-03-15 2014-09-18 Biological Mimetics, Inc. Immunogenic human rhinovirus (hrv) compositions
EP3192524B1 (en) * 2014-09-10 2021-12-29 Kringle Pharma Inc. Hgf preparation suitable for treatment of neurological disorders

Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2000072873A1 (fr) * 1999-05-31 2000-12-07 Mitsubishi Chemical Corporation Preparations lyophilisees de hgf
WO2005034985A1 (ja) * 2003-10-14 2005-04-21 Kringle Pharma Inc. 知的障害の改善剤
JP2011173916A (ja) * 2011-05-02 2011-09-08 Toshiichi Nakamura 筋萎縮性側索硬化症治療剤

Non-Patent Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
"Japan Pharmaceutical Excipients Council", LACTOSE, MONOHYDRATE, REVISED HANDBOOK OF PHARMACEUTICAL EXCIPIENTS, 28 February 2007 (2007-02-28), pages 650 - 658, XP009500982, ISBN: 978-4-8408-0968-9 *
See also references of EP3192524A4 *
TSUTOMU ARAKAWA: "Mechanism of Stabilization of Proteins by Additives on Freezing", PROTEIN, NUCLEIC ACID AND ENZYME, vol. 37, no. 9, 1992, pages 1517 - 1523, XP009500928, ISSN: 0039-9450 *
YUTA KATO ET AL.: "A Study on the Differences in Additives between Brand-Name and Generic Injection Drugs", JAPANESE JOURNAL OF GENERIC MEDICINES, vol. 7, no. 2, 2013, pages 110 - 115, XP009500940 *

Cited By (10)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN110621774A (zh) * 2016-10-14 2019-12-27 儿童医疗中心有限公司 用于治疗中枢神经系统疾病和病症的组合物和方法
EP3526319A4 (en) * 2016-10-14 2020-07-29 Children's Medical Center Corporation COMPOSITIONS AND METHODS FOR THE TREATMENT OF DISEASES OR DISORDERS OF THE CENTRAL NERVOUS SYSTEM
US11957713B2 (en) 2016-10-14 2024-04-16 Children's Medical Center Corporation Compositions and methods for treating diseases and disorders of the central nervous system
US11548936B2 (en) 2017-01-17 2023-01-10 Children's Medical Center Corporation Compositions and methods for treating lysosomal storage diseases and disorders
US12000843B2 (en) 2017-01-17 2024-06-04 Children's Medical Center Corporation Compositions and methods for diagnosing and treating peroxisomal diseases
JP2022500353A (ja) * 2018-07-17 2022-01-04 ヘリックスミス カンパニー， リミテッド Ｉｇｆ−１−暗号化ｄｎａ作製物及びｈｇｆ−暗号化ｄｎａ作製物を用いた神経病症治療
JP7380670B2 (ja) 2018-07-17 2023-11-15 ヘリックスミス カンパニー， リミテッド Ｉｇｆ－１－暗号化ｄｎａ作製物及びｈｇｆ－暗号化ｄｎａ作製物を用いた神経病症治療
JP2022522941A (ja) * 2019-01-07 2022-04-21 ベイジン・ノースランド・バイオテック・カンパニー・リミテッド ヒト肝細胞増殖因子変異体およびその使用
JP7246494B2 (ja) 2019-01-07 2023-03-27 ベイジン・ノースランド・バイオテック・カンパニー・リミテッド ヒト肝細胞増殖因子変異体およびその使用
US12264186B2 (en) 2019-01-07 2025-04-01 Beijing Northland Biotech Co., Ltd. Human hepatocyte growth factor mutant and uses thereof

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