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WO2015111349A1 - 多色蛍光画像分析装置 - Google Patents

多色蛍光画像分析装置 Download PDF

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WO2015111349A1
WO2015111349A1 PCT/JP2014/084018 JP2014084018W WO2015111349A1 WO 2015111349 A1 WO2015111349 A1 WO 2015111349A1 JP 2014084018 W JP2014084018 W JP 2014084018W WO 2015111349 A1 WO2015111349 A1 WO 2015111349A1
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WO
WIPO (PCT)
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image
fluorescence
light
sample
color
Prior art date
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Ceased
Application number
PCT/JP2014/084018
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English (en)
French (fr)
Inventor
高橋　智
禎昭 杉村
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Hitachi High Tech Corp
Original Assignee
Hitachi High Technologies Corp
Hitachi High Tech Corp
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Hitachi High Technologies Corp, Hitachi High Tech Corp filed Critical Hitachi High Technologies Corp
Publication of WO2015111349A1 publication Critical patent/WO2015111349A1/ja
Anticipated expiration legal-status Critical
Ceased legal-status Critical Current

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    • G—PHYSICS
    • G01—MEASURING; TESTING
    • G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N21/00—Investigating or analysing materials by the use of optical means, i.e. using sub-millimetre waves, infrared, visible or ultraviolet light
    • G01N21/62—Systems in which the material investigated is excited whereby it emits light or causes a change in wavelength of the incident light
    • G01N21/63—Systems in which the material investigated is excited whereby it emits light or causes a change in wavelength of the incident light optically excited
    • G01N21/64—Fluorescence; Phosphorescence
    • G01N21/6428—Measuring fluorescence of fluorescent products of reactions or of fluorochrome labelled reactive substances, e.g. measuring quenching effects, using measuring "optrodes"
    • G—PHYSICS
    • G01—MEASURING; TESTING
    • G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N21/00—Investigating or analysing materials by the use of optical means, i.e. using sub-millimetre waves, infrared, visible or ultraviolet light
    • G01N21/62—Systems in which the material investigated is excited whereby it emits light or causes a change in wavelength of the incident light
    • G01N21/63—Systems in which the material investigated is excited whereby it emits light or causes a change in wavelength of the incident light optically excited
    • G01N21/64—Fluorescence; Phosphorescence
    • G01N21/645—Specially adapted constructive features of fluorimeters
    • G01N21/6456—Spatial resolved fluorescence measurements; Imaging
    • G—PHYSICS
    • G01—MEASURING; TESTING
    • G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N21/00—Investigating or analysing materials by the use of optical means, i.e. using sub-millimetre waves, infrared, visible or ultraviolet light
    • G01N21/62—Systems in which the material investigated is excited whereby it emits light or causes a change in wavelength of the incident light
    • G01N21/63—Systems in which the material investigated is excited whereby it emits light or causes a change in wavelength of the incident light optically excited
    • G01N21/64—Fluorescence; Phosphorescence
    • G01N21/6428—Measuring fluorescence of fluorescent products of reactions or of fluorochrome labelled reactive substances, e.g. measuring quenching effects, using measuring "optrodes"
    • G01N2021/6439—Measuring fluorescence of fluorescent products of reactions or of fluorochrome labelled reactive substances, e.g. measuring quenching effects, using measuring "optrodes" with indicators, stains, dyes, tags, labels, marks
    • G01N2021/6441—Measuring fluorescence of fluorescent products of reactions or of fluorochrome labelled reactive substances, e.g. measuring quenching effects, using measuring "optrodes" with indicators, stains, dyes, tags, labels, marks with two or more labels

Definitions

  • the present invention relates to an optical analysis / display device.
  • a biological material such as DNA, RNA, protein, cell, or the like is stained multiple times, and the sample is irradiated with light to detect its fluorescence, and a multicolor image is displayed.
  • the present invention relates to an optical measurement / analysis apparatus that displays or analyzes components.
  • an image is generally detected using a fluorescence microscope. From the multiple-stained sample, fluorescence having wavelength bands corresponding to a plurality of fluorescent reagents is generated. In many cases, these images are usually detected, and a plurality of measured images are combined and displayed in the RGB color image space. For example, a cell fluorescence image stained with the first phosphor is used as an R color (red) intensity image, a cell fluorescence image stained with the second phosphor is used as a G color (green), and the third phosphor. A color image is constructed by making the cell fluorescence image stained with B into B (blue) and synthesizing them.
  • Patent Document 1 discloses an apparatus for acquiring an image by switching filter sets
  • Patent Document 2 discloses, for example, that the fluorescence wavelength band is divided into four, and each of them is different almost simultaneously by four two-dimensional detectors. A method for acquiring four fluorescent images is described.
  • Patent Document 1 When measuring a multiple-stained sample, in Patent Document 1, since it is necessary to switch a plurality of filter sets to acquire an image, the time required for the measurement increases. Specifically, in addition to the exposure time of the two-dimensional camera, the movement (rotation) time when replacing the filter set (excitation filter, fluorescence detection filter, excitation / fluorescence separation dichroic mirror), time required for rest, etc. Machine operations are required, and these require time to repeat several phosphors. Therefore, it becomes difficult to simultaneously acquire a plurality of fluorescent images. Since it cannot be detected at the same timing, it is likely to be affected by changes such as fluorescence fading. It is also difficult to use for objects whose fluorescence changes over time.
  • the fluorescence wavelength band is divided into four, and four different fluorescence images are acquired almost simultaneously with four two-dimensional detectors.
  • four expensive detectors are used, and the apparatus cost is reduced. Becomes larger.
  • the filter set and the like tend to be expensive.
  • measurement is performed by dividing into a plurality of fluorescent wavelength bands, but these wavelength bands basically do not overlap, so in the case of a general phosphor whose fluorescent spectrum is spread over multiple wavelength bands In this case, only a part of the total emission intensity is detected as the detected fluorescence intensity, and detection loss is likely to occur.
  • it is difficult to separate and detect phosphors having close wavelength bands it is generally considered that there are about 3 to 4 phosphor types that can simultaneously acquire a fluorescence image.
  • the present invention provides an apparatus capable of easily and simultaneously measuring a plurality of fluorescent images of a multiple-stained sample.
  • a multi-color fluorescence image analyzer that irradiates a sample stained with a plurality of phosphors with light from a light source and detects and displays fluorescence generated from the sample, A light source for photoexcitation, An irradiation optical system that collects light from the light source and irradiates the sample, A fluorescence condensing system that collects light to detect fluorescence emitted from the sample; A separation unit that divides the collected light at different ratios; An imaging optical system for imaging each of the divided lights; A two-dimensional detector having a plurality of detection pixels for detecting each of the divided and formed images, an addition image forming processing unit for adding the respective detection images, and a ratio of one image to the added image And a data processing unit including an image formation processing unit that generates a color composite image with the ratio image intensity as a hue and the added image intensity as a brightness.
  • the present invention it is possible to provide an apparatus capable of easily and simultaneously measuring a plurality of fluorescent images of a multiple-stained sample.
  • FIG. 3 is a diagram illustrating the principle of simultaneous multicolor measurement in the first embodiment.
  • FIG. 6 is a characteristic diagram of a multi-color simultaneous detection ratio split mirror used in the first embodiment.
  • the block diagram of the measuring apparatus of Example 1 is shown in FIG.
  • the illustrated apparatus has a configuration similar to a microscope, and irradiates a fluorescently-labeled sample 2 with excitation light, detects the generated fluorescence with a two-dimensional detector, and displays data / images.
  • Normal microscope functions such as transmitted illumination, phase contrast image measurement, differential interference image measurement, ND filter, objective lens revolver, XY stage, focusing Z adjustment mechanism, eyepiece, microscope housing, various power supplies, automatic The adjustment mechanism and the like are omitted from the drawing. The same applies to the temperature control vessel heater panel used as necessary.
  • the light from the light source 10 for exciting the fluorescence is condensed by the lens 11, and the light in the necessary wavelength band is taken out by the excitation / fluorescence separation dichroic mirror unit 13 (including the excitation filter, dichroic mirror, and fluorescence filter), The light is reflected and condensed through the objective lens 12 onto the sample 2 held on the sample stage 1 and irradiated.
  • the light source 10 for exciting the fluorescence an ultra-high pressure mercury lamp, a xenon lamp, various laser devices, a high-intensity LED light source, and the like can be used. It can also be introduced via a light light guide.
  • Fluorescence emitted from the sample is collected again by the objective lens 12, the excitation light component such as scattered light is reflected by the dichroic mirror unit 13, and the fluorescence component is taken out by the fluorescence filter.
  • a normal dichroic mirror unit 13 is used. More preferably, the dichroic mirror for excitation / fluorescence separation can be excited in a plurality of wavelength bands and can detect fluorescence in a plurality of wavelength bands. Mirror units are preferred, and dual band, triple band, and quad band filter sets are used.
  • the transmitted fluorescence is transmitted through the auxiliary filter 14 and is incident on the ratio split mirror 15.
  • the two-part mirror for example, has a transmittance characteristic that the transmittance at 450 nm or less is almost 0, 700 nm or more is 100%, and there is a transmittance characteristic that changes almost linearly between them, and it is gentle over a wide wavelength range such as 50 nm to 300 nm.
  • a mirror having transmission characteristics Unlike ordinary dichroic mirrors, aiming for fluorescence from a specific phosphor, the specific wavelength band is not 100% transmitted and the others are not reflected (0% transmitted), but the fluorescence is divided into two parts. Dividing by changing the ratio.
  • fluorescence having a central wavelength of 500 nm is divided and formed into a transmitted fluorescent image having a transmittance of 20% and a reflected fluorescent image having a reflectance of 80%, and fluorescence having a central wavelength of 600 nm is transmitted with a transmittance of 60%.
  • the fluorescence having a central wavelength of 700 nm is divided into a transmitted fluorescent image with a transmittance of 100% and a reflected fluorescent image with a reflectance of 0%.
  • These transmitted fluorescent image and reflected fluorescent image are imaged on two-dimensional detectors 20 and 21 (high-sensitivity cooled two-dimensional CCD camera, cMOS camera, etc.) through imaging filters 18 and 19 through auxiliary filters 16 and 17, respectively. And detect.
  • the control PC (not shown) controls the setting of the exposure time of the two-dimensional detector, the capture timing of the fluorescence image, and the like via a camera controller (not shown).
  • the auxiliary filters 14, 15, and 16 are used as necessary. For example, a short wavelength cut filter is used to further cut out leakage of excitation light that has not been sufficiently cut.
  • the functions of a band pass filter and a long wavelength cut filter are provided.
  • an ND filter for attenuating the light intensity is inserted in order to balance the divided light intensity.
  • a broadband bandpass filter for fluorescence detection may be used.
  • a notch filter for laser removal can be inserted.
  • a cooled high-sensitivity camera or the like as a two-dimensional detector.
  • a cooled cMOS camera having a pixel size of 6.5 ⁇ 6.5 micrometers and a pixel number of 2048 ⁇ 2048 pixels is used.
  • a high sensitivity camera such as a CCD camera can be generally used.
  • CCD camera can be generally used.
  • CCD camera can be generally used.
  • CCD camera can be generally used as back-illuminated and front-illuminated CCD cameras depending on the structure, and both can be used.
  • An electron multiplying CCD camera having a signal multiplying function inside the element is also effective in achieving high sensitivity.
  • the sensor is preferably a cooling type, and by setting the temperature to about ⁇ 20 ° C. or less, dark noise of the sensor can be reduced and measurement accuracy can be improved.
  • the measured transmission fluorescence image and reflection fluorescence image are converted into a color image by the next data processing unit 22.
  • each of the transmitted fluorescent image and the reflected fluorescent image is subjected to a process such as smoothing, and then baseline correction is performed to subtract the dark noise, offset, and background light intensity of the camera.
  • Camera dark images in advance for the processing. A background light image when there is no phosphor is acquired, and processing is performed using them.
  • the exposure time or sensitivity of the two detectors are different, correct them. This is not particularly necessary when the same type of detector is used and detected with the same exposure time.
  • the processed transmission fluorescent image and the reflected fluorescent image are added for each pixel by the addition image formation processing unit.
  • the added image is an image of the sum total of the entire wavelength range of the detected fluorescent light intensity. It is not an image separated for each wavelength, but an intensity image of the entire wavelength range to be measured.
  • a ratio image is obtained from the transmitted fluorescent image and the reflected fluorescent image.
  • the ratio image is (transmission fluorescence image) / (transmission fluorescence image + reflection fluorescence image), that is, (transmission fluorescence image) / (addition image).
  • the ratio image may be (reflected fluorescent image) / (transmitted fluorescent image + reflected fluorescent image), that is, (reflected fluorescent image) / (added image).
  • the ratio image intensity is set as the hue
  • the added image intensity is set as the brightness
  • the saturation is fixed, and is developed in the HSV color space to form a color composite image.
  • the ratio (0.00 to 1.00) may be converted to a hue of 0.0 to 360.0 degrees, or may be converted to 0.0 to 240.0 degrees. If converted to 0.0 to 240.0 degrees, it is in red ⁇ orange ⁇ yellow ⁇ green ⁇ blue ⁇ purple, and the change in wavelength color and the sensation are the same, so normally it is converted at 0.0 to 240.0 degrees. Of course, even if converted from 240.0 to 0.0 degrees, the display color order is only reversed, so there is no problem.
  • FIG. 2 is a diagram for explaining the principle of multicolor simultaneous measurement according to the first embodiment.
  • FIG. 2a is a model image of the sample
  • FIG. 2b is a ratio-divided mirror characteristic
  • FIG. 2c is a detected ratio-divided image
  • FIG. 2d is a ratio image and added image obtained by the data processing unit.
  • FIG. 2e is a color image constructed by the data processing unit.
  • Fig. 2a Consider an image containing six different phosphors as a sample (Fig. 2a). When excited using a light source such as a mercury lamp, six different types of fluorescence are generated, from the left to blue, blue-green, green, yellow-green, orange, and red. These fluorescences are collected and divided by a ratio-divided mirror. As shown in Fig. 2b, the ratio of the split mirror is almost linearly gradual, with transmittance below 450nm being almost 0%, 620nm and above being almost 100%, and between 450 and 620nm from almost 0% to almost 100%. It has the transmittance characteristic to be.
  • the blue fluorescence is reflected with almost no transmission, so that the signal is weak in the transmission image and strong in the reflection image.
  • the fluorescence wavelength is slightly greener than blue
  • the signal is slightly stronger in the transmitted image than in the blue image, and slightly smaller in the reflected image.
  • the transmitted image intensity is slightly smaller than the reflected image intensity
  • the transmitted image intensity is slightly larger than the reflected image intensity. In the case of red, since it almost transmits, the reflected image becomes dark (FIG. 2c).
  • the background light intensity is subtracted, and rotation correction and trimming correction for superposition are performed to obtain an added image. Since the signals other than the six fluorescent light emitting areas are small, there is no point in calculating the ratio at that portion. Therefore, the ratio image for which the signal intensity level of the added image exceeds about 10% is calculated. Is obtained (FIG. 2d).
  • the ratio and hue correspond to each other as shown in FIG. 2f and the intensity of the added image corresponding to the lightness by the image formation processing unit, the multicolor label can be obtained from the transmitted fluorescent image and the reflected fluorescent image detected by the ratio bisection.
  • the sample image can be displayed in color.
  • Table 1 is a characteristic table showing the phosphor types used, their excitation wavelengths, and fluorescence wavelengths.
  • FIG. 3 shows the characteristics of the excitation / fluorescence separation dichroic mirror unit.
  • FIG. 3a shows the excitation light filter characteristics
  • FIG. 3b shows the fluorescence detection filter characteristics
  • FIG. 3c shows the excitation / fluorescence separation dichroic mirror characteristics.
  • the fluorescence wavelength in the sample is distributed with a width of about 300 nm from about 420 nm to about 700 nm.
  • a triple-band dichroic mirror unit was used to excite these simultaneously and detect fluorescence.
  • the ratio bisection mirror shown in FIG. 4 was used.
  • FIG. 5 shows the measured transmission fluorescence image (FIG. 5a) and reflection fluorescence image (FIG. 5b), the ratio image obtained by image processing (FIG. 5c), and the color image (FIG. 5d).
  • the color was set by setting the ratio 0.0 ⁇ 1.0 to the hue 0.0 ⁇ 240 degrees.
  • FIG. 5e shows the ratio distribution of the individual phosphors and shows that the six-color phosphors can be detected separately.
  • the ratio split mirror is not limited to the above. It is sufficient if the transmittance at a certain wavelength in the wavelength range to be measured is substantially different from the transmittance at other wavelengths.
  • the transmittance of the phosphor with the shortest wavelength is 0%, and the transmittance of the phosphor with the longest wavelength is almost 100%. That's fine.
  • the transmittance of the phosphor in the shortest wavelength region is almost 100%, and the transmittance of the phosphor in the longest wavelength region is almost 0%, and the same effect can be obtained.
  • the wavelength range may be further expanded so that the 0% transmission wavelength is shorter and the 100% transmission wavelength is longer.
  • the phosphor species that can be measured simultaneously The number of multiple colors that can be measured simultaneously can be increased.
  • the above 100% does not mean that the transmittance is exactly 100%, but means 100% when the sum of the reflectance and the transmittance is 100%, and the transmittance as an optical substrate. It is not something that restricts.
  • the transmittance as the optical substrate may be 98%, 95%, etc., for example. The same applies to the transmittance of 0%.
  • the transmittance of the phosphor in the shortest wavelength range is approximately 1%
  • the transmittance of the phosphor in the longest wavelength range is approximately 95%. There is an effect.
  • ⁇ Fluorescence in a wide wavelength range of 300 nm can be detected and identified with one type of filter set, and the cost of the optical filter can be reduced. Even if the type of phosphor is changed, the possibility of using the same filter set is hard and versatile.
  • the stability of the device is increased. Moreover, it can measure simply.
  • the apparatus can be configured inexpensively and simply.
  • the fluorescence emitted from the sample is transmitted through the dichroic mirror unit 13 and then detected by switching the total intensity between the transmission side and the reflection side, so that the total intensity can be detected without loss and high sensitivity. It is also effective for conversion.
  • the process was performed on six types of phosphors, but it can be applied to three types, four types, five types, and six or more types of phosphors, and is effective for simultaneous measurement such as multiple staining.
  • the normal fluorescence microphotometry is used.
  • all the detection methods as an image have the same effect.
  • the same effect can be obtained in the image measurement with the confocal irradiation imaging system and the evanescent illumination.
  • the multicolor simultaneous measurement apparatus in the second example shows the results in FIG.
  • Fig. 6a is a transmitted fluorescence image
  • Fig. 6b is a reflected fluorescence image
  • Fig. 6c is a color conversion image. In this way, measurement of multiple stained cell images allows simultaneous measurement of multiple phosphors, enabling simple measurement.
  • Example 2 The same effect as in Example 1 is obtained even with a multiple-stained cell sample.
  • Fig. 7 shows the configuration of another multicolor fluorescence simultaneous measurement apparatus.
  • Example 1 transmitted illumination, phase difference image measurement, differential interference image measurement, ND filter, objective lens revolver, XY stage, focus adjustment Z adjustment mechanism, eyepiece, microscope case, Various power supplies, automatic adjustment mechanisms and the like are omitted from the figure. The same applies to the temperature control vessel heater panel used as necessary.
  • a light source 10 such as an ultra-high pressure mercury lamp, xenon lamp, various laser devices, or a high-intensity LED light source for exciting fluorescence is condensed by a lens 11, and a dichroic mirror unit 13 for excitation / fluorescence separation (filter for excitation, Light including a necessary wavelength band is taken out by a dichroic mirror and a fluorescent filter), reflected, condensed, and irradiated onto the sample 2 held on the sample stage 1 through the objective lens 12.
  • a light source 10 such as an ultra-high pressure mercury lamp, xenon lamp, various laser devices, or a high-intensity LED light source for exciting fluorescence is condensed by a lens 11, and a dichroic mirror unit 13 for excitation / fluorescence separation (filter for excitation, Light including a necessary wavelength band is taken out by a dichroic mirror and a fluorescent filter), reflected, condensed, and irradiated onto the sample 2 held on the sample stage 1 through the objective lens 12.
  • the fluorescence emitted from the sample is collected again by the objective lens 12 to be converted into a parallel light beam, the excitation light component such as scattered light is reflected by the dichroic mirror unit 13, and the necessary fluorescence wavelength component is transmitted by the fluorescence filter. .
  • the transmitted fluorescence is transmitted through the auxiliary filter 14, once imaged by the imaging lens 101, again converted into parallel light by the lens 102, and incident on the ratio split mirror 103.
  • the two-part mirror for example, has a transmittance characteristic of approximately 0% at 420 nm or less, 100% at 600 nm or more, and a transmittance characteristic that changes almost linearly between them, and has a gentle transmission characteristic over the 180 nm wavelength range. It is a mirror. Similar to Example 1, it is possible to simultaneously detect multicolor fluorescence that emits fluorescence in the wavelength range of about 400 nm to 600 nm.
  • the transmitted light from the ratio-divided mirror 103 is reflected by the mirror 104 and the mirror 105 and is imaged by the lens 109 through the auxiliary filter 107.
  • the light reflected by the ratio-divided mirror 103 is reflected by the mirror 106 and imaged by the lens 109 through the auxiliary filter 108.
  • the optical axes of transmitted light and reflected light with respect to the lens 109 are arranged differently as shown in the figure. As a result, the positions of the transmitted light image and the reflected light image when formed by the lens 109 can be shifted, and the two two-dimensional detectors 110 detect both images simultaneously.
  • the measured fluorescent image is converted into a color image by the data processing unit 111.
  • the transmitted fluorescence image and the reflected fluorescence image are separated from the image of the two-dimensional detector. Thereafter, a color image is formed from the transmitted fluorescent image and the reflected fluorescent image divided into two at the same step as in the embodiment, and output and displayed on the display device 112 such as a PC monitor.
  • the measurement field of view becomes smaller than when each image is detected with separate two-dimensional detectors.
  • the number of two-dimensional detectors can be reduced to one, the cost can be reduced.
  • the configuration of the present embodiment has the same effect as described in the first embodiment.
  • Fig. 8 shows another combination in multi-color simultaneous detection.
  • FIG. 8e An example of a filter set when Qdot (R) is used as a fluorescent reagent is shown.
  • the excitation light filter characteristic diagram 8a When eight types are used as Qdot (R) as shown in FIG. 8e, the excitation light filter characteristic diagram 8a, the fluorescence detection filter characteristic diagram 8b, and the excitation / fluorescence separation dichroic mirror characteristic diagram 8c are used.
  • the ratio division filter has a transmittance around 510 nm at the short wavelength end of the transmission wavelength band of the fluorescence filter, based on the emission characteristics of Qdot (R) 525, the characteristics of the fluorescence filter, and the characteristics of the dichroic mirror.
  • the characteristics are 0% and 100% near 705 nm of the fluorescence maximum wavelength of Qdot (R) 705.
  • eight types of Qdot (R) can be simultaneously identified and detected by the same filter set. All can be detected by one exposure, and measurement can be easily performed. Since eight types can be measured simultaneously, an image can be measured at high speed, and high-speed repeated measurement can be performed even in a system that changes over time.
  • the combination of the present embodiment has the same effect as described in the first embodiment.

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Abstract

　本発明の多色蛍光画像分析装置は、光励起用の光源と、光源からの光を集め試料に照射する照射光学系と、試料から発する蛍光等を検出するために集光する蛍光集光系と、集光した光異なる比率で分割する分離部と、分割された光をそれぞれ結像する結像光学系と、分割され結像された像を各々検出するための複数の検出画素を備えた２次元検出器と、それぞれの検出像を加算する加算像形成処理部、一方の像と加算された像との比率を計算する比率像形成処理部、比率像強度を色相とし、加算像強度を明度として、カラー合成画像を生成する画像形成処理部を含むデータ処理部を具備する。

Description

多色蛍光画像分析装置
　本発明は、光分析・表示装置に関し、例えば、ＤＮＡ，ＲＮＡ、又はタンパク質，細胞等の生体関連物質を多重に染色し、該試料に光を照射してその蛍光を検出し、多色画像を表示し、または成分分析する光計測・分析装置に関する。
　多重染色した細胞等の標本を観察するには、一般に蛍光顕微鏡を使い画像検出する。多重染色された試料からは、複数の蛍光試薬に対応する波長帯を有する蛍光がそれぞれ発生する。これらを、通常は、それぞれ画像検出し、計測された複数の画像をRGBカラー画像空間に合成表示することが多い。たとえば、第１の蛍光体で染色された細胞蛍光画像をR色（赤色）の強度画像とし、第２の蛍光体で染色された細胞蛍光画像をG色（緑色）に、第３の蛍光体で染色された細胞蛍光画像をB色（青色）にし、それらを合成することで、カラー画像が構築される。複数の画像を取得するには、１台の２次元検出器を使用し、バンドパス干渉フィルタセットを切換えて、１色ずつ蛍光画像を取得する方法、または、複数の２次元検出器を用意し、それぞれ異なる波長帯を透過するバンドパス干渉フィルタセットを使って、同時に蛍光画像を取得する方法、及び、それらを組み合わせた方法がある。たとえば、特許文献１には、フィルタセットを切換えて画像を取得する装置、特許文献２には、たとえば、蛍光波長帯を４つに分け、それぞれを４台の２次元検出器にてほぼ同時に異なる４蛍光画像を取得する方法が記載されている。
特開２００５－３３１８８７号公報 特開２００８－１３９５４３号公報
　多重染色された試料を計測する場合、特許文献１では、複数のフィルタセットを切換えて画像を取得する必要があるため、測定に要する時間が大きくなる。具体的には、２次元カメラの露光時間のほか、フィルタセット（励起用フィルタ、蛍光検出用フィルタ、励起・蛍光分離用ダイクロイックミラー）を交換するときの移動（回転）時間、静止に要する時間等の機械動作が必要になり、これらが蛍光体の数繰り返す時間が必要になる。そのため、複数の蛍光画像を同時に取得することが困難になる。同一タイミングで検出できないため、たとえば、蛍光の退色等の変化の影響を受けやすくなる。また、蛍光が時間的に変化するような対象にも使いにくい。また通常、２次元カメラの露光時間に比べ、機械動作時間が大きいため、露光時間を短くしても全体的には時間短縮しにくい。また、それぞれの蛍光体に合わせたフィルタセットが必要になり、全体として装置が高価になる。
　特許文献２では、蛍光波長帯を４つに分け、それぞれを４台の２次元検出器にてほぼ同時に異なる４蛍光画像を取得するが、高価な検出器を４台使うことになり、装置コストが大きくなる。また、測定する蛍光体の特性に合わせて、ダイクロイックミラー、蛍光検出用フィルタなどをそれぞれ用意する必要があるため、フィルタセット等が高価になりやすい。また、この方式では、複数の蛍光波長帯に分割して計測するがこれらの波長帯は基本的に重ならないため、蛍光スペクトルが複数の波長帯に広がっているような一般的な蛍光体の場合には、検出される蛍光強度は全発光強度の一部しか検出されず、検出のロスが生じやすい。さらに、波長帯の近い蛍光体を分離して検出することが困難であるため、一般には、同時に蛍光画像を取得できる蛍光体種は３－４種程度と考えられる。
　本発明は、多重染色された試料の複数の蛍光画像を同時に簡便に測定できる装置を提供するものである。
　上記課題解決するために、本発明は、特許請求の範囲に記載の構成を採用する。
　ある１つの側面は、
　複数の蛍光体で染色された試料に光源からの光を照射し、該試料から生じる蛍光等を検出して表示する多色蛍光画像分析装置であって、
　光励起用の光源と、
　光源からの光を集め試料に照射する照射光学系と、
試料から発する蛍光等を検出するために集光する蛍光集光系と、
　集光した光を異なる比率で分割する分離部と、
　分割された光をそれぞれ結像する結像光学系と、
　分割され結像された像を各々検出するための複数の検出画素を備えた２次元検出器と、　それぞれの検出像を加算する加算像形成処理部、一方の像と加算された像との比率を計算する比率像形成処理部、比率像強度を色相とし、加算像強度を明度として、カラー合成画像を生成する画像形成処理部を含むデータ処理部を具備する。
　本発明によれば、多重染色された試料の複数の蛍光画像を同時に簡便に測定できる装置を提供することができる。
　上記した以外の、課題、構成および効果は、以下の実施形態の説明により明らかにされる。
本発明の第１の実施例の多色蛍光同時計測方式による計測装置の構成図。 第１の実施例での多色同時計測の原理説明図。 第１の実施例で使用した励起光・蛍光フィルタセットの特性図。 第１の実施例で使用した多色同時検出用比率二分割ミラーの特性図。 第１の実施例での６蛍光体の同時蛍光検出、同時表示結果。 本発明の第２の実施例での多色同時計測結果。 第３の実施例での別の多色蛍光同時計測装置の構成図。 第４の実施例での別の多色同時検出用比率二分割ミラーの別の例（模式図）。
　以下、本発明の新規な特徴と利益を、図面を参酌して説明する。ただし、図面は解説のためのものであって、本発明の範囲を限定するものではない。
　（装置構成）
　実施例１の計測装置の構成図を図１に示す。図示の装置は顕微鏡に類似する装置の構成であり、蛍光標識された試料２に励起光を照射し、生じる蛍光を２次元検出器で検出し、データ・画像を表示するものである。なお、通常の顕微鏡の機能である透過照明、位相差像計測、微分干渉像計測、NDフィルタ、対物レンズレボルバ、XYステージ、ピント合わせ用Z調整機構、接眼レンズ、顕微鏡筺体、種々の電源、自動調整機構部等は図より省略している。また、必要に応じて使われる温調容器ヒータパネルなども同じである。
　蛍光を励起するための光源１０の光をレンズ１１で集光し、励起/蛍光分離用ダイクロイックミラーユニット１３（励起用フィルタ、ダイクロイックミラー、蛍光用フィルタ含む）で必要な波長帯の光を取り出し、反射させ、対物レンズ１２を通して、試料台１に保持した試料２に集光して照射する。なお、蛍光を励起するための光源１０には、超高圧水銀ランプ、キセノンランプ、各種レーザ装置、高輝度LED光源などが使われ、どれも使用できる。また光ライトガイドを介して導入することもできる。
　試料から発する蛍光等は、再び対物レンズ１２で集光され、ダイクロイックミラーユニット１３により、散乱光などの励起光成分が反射され、さらに蛍光用フィルタにより、蛍光成分が取りだされる。このダイクロイックミラーユニット１３には、通常のものが使われるが、より望ましくは、複数の波長帯で励起し、複数の波長帯の蛍光を検出することのできるマルチバンドタイプの励起/蛍光分離用ダイクロイックミラーユニットが望ましく、デュアルバンド、トリプルバンド、クワッドバンドのフィルタセットを使用する。
　透過した蛍光は、補助フィルタ１４を透過させ、比率二分割ミラー１５に入射させる。二分割ミラーは、たとえば、450nm以下の透過率はほぼ０で、700nm以上が１００％、その間をほぼ線形的に変化する透過率特性を有するもので、50nm～300nmなどの広い波長範囲にわたって緩やかな透過特性を有するミラーである。通常のダイクロイックミラーと異なり、特定の蛍光体からの蛍光を狙って、特定の波長帯を１００％透過、それ以外を反射（０％透過）させるものではなく、蛍光を二分割される両方に分割比率を変えて分割するものである。たとえば、５００nmを中心波長とする蛍光は、透過率２０％の透過蛍光像と、反射率８０％の反射蛍光像に分割結像し、６００nmを中心波長とする蛍光は、透過率６０％の透過蛍光像と、反射率４０％の反射蛍光像に分割して結像、７００nmを中心波長とする蛍光は、透過率１００％の透過蛍光像と、反射率０％の反射蛍光像に分割して結像する。これら透過蛍光像と反射蛍光像は、それぞれ補助フィルタ１６，１７を通し、結像レンズ１８，１９で、２次元検出器２０，２１（高感度冷却２次元ＣＣＤカメラ、ｃＭＯＳカメラ等）に結像させ、検出する。２次元検出器の露光時間の設定，蛍光画像の取り込みタイミングなどの制御は、カメラコントローラ（図示せず）を介して制御ＰＣ（図示せず）が行う。なお、補助フィルタ１４，１５，１６は、適宜必要に応じて使用する。たとえば、十分にカットされなかった励起光のもれをさらにカットするために短波長カットフィルタを使う。また、測定範囲外の長波長成分をカットするため、バンドパスフィルタ、長波長カットフィルタの機能を持たせる。分割された光強度のバランスを整えるため、光強度を減衰させるためのNDフィルタを挿入するなどである。蛍光検出用の広帯域バンドパスフィルタとしてもよい。レーザ光を励起光とした場合には、レーザ除去用のノッチフィルタを挿入することもできる。
　２次元検出器として、冷却型の高感度カメラ等を使用する。画素サイズ，画素数に使用の際の制限などは無く、たとえば、画素サイズが６．５×６．５マイクロメータで、画素数２０４８×２０４８画素の冷却ｃＭＯＳカメラ等を使用する。なお、２次元検出器としては、ｃＭＯＳカメラの他、ＣＣＤカメラなどの高感度カメラなどを一般に使うことができる。ＣＣＤカメラにも、構造によって、背面照射型，正面照射型があり、どちらも使用できる。また、素子内部に信号の増倍機能を有する電子増倍型ＣＣＤカメラなども高感度化を図る上で有効である。また、センサは冷却型が望ましく、－２０℃程度以下にすることで、センサの持つダークノイズを低減でき、測定の精度を高めることができる。
　本実施例のように２次元検出器を２台使用する場合は、蛍光検出のための露光時間の設定を２台同じにする必要は必ずしもなく、透過蛍光像と反射蛍光像の平均強度に合わせて各々設定を変えてもよい。露光タイミングに関しては、同じにするのが望ましい。
　測定した透過蛍光像と反射蛍光像は、次のデータ処理部２２によりカラー画像化する。
　まず、透過蛍光像と反射蛍光像それぞれについて、平滑化等の処理をした後、ベースライン補正を行い、カメラのダークノイズ、オフセット、背景光強度を差し引く。その処理のため、あらかじめ、カメラダーク画像。蛍光体がないときの背景光画像を取得しておき、それらを使って処理を行う。
　次に、２台の検出器の露光時間、または感度が異なっている場合は、その補正を行う。同じ種類の検出器をつかい、同じ露光時間で検出した時は特に必要ではない。
　透過蛍光像と反射蛍光像が同じ領域の画像となるように、画像の回転、エリアのトリミングを行う。
　上記処理済みの透過蛍光像と反射蛍光像を加算像形成処理部により画素毎に加算する。加算像は、検出される蛍光光強度の全波長範囲全体の総和の画像である。波長ごとに分離された画像ではなく、計測されるべき波長範囲全体の強度画像になる。
　透過蛍光像と反射蛍光像から、比率像を得る。比率像とは（透過蛍光像）/（透過蛍光像＋反射蛍光像）つまり（透過蛍光像）/（加算像）である。この際、加算像の画素強度が小さい場合、比率精度が低下するため、一定以上の画素強度のある領域のみで比率計算されるようにする。なお、比率像は（反射蛍光像）/（透過蛍光像＋反射蛍光像）つまり（反射蛍光像）/（加算像）であってもよい。
　画像形成処理部では、比率像強度を色相とし、加算像強度を明度として、また彩度は固定で、ＨＳＶ色空間に展開し、カラー合成画像を形成する。比率（0.00～１.00）を、色相0.0～360.0度に変換してもよいし、0.0～240.0度に変換してもよい。0.0～240.0度に変換すれば、赤→橙→黄→緑→青→紫にあり、波長の色の変化と感覚が同じになるので、通常は0.0～240.0度で変換する。もちろん240.0～0.0度と変換しても表示色の順番が逆になるだけなので、問題はなく、どちらかにすればよい。
　このように比率二分割した透過蛍光像と反射蛍光像から、カラー画像を形成し、ＰＣモニタ等の表示装置２３に出力表示する。
（多色同時計測手法の説明）
　実施例１の多色同時計測の原理説明図を図２に示す。
　図２aは試料のモデルイメージ、図２bは比率二分割ミラー特性、図２cは検出される比率二分割像で透過蛍光像と反射蛍光像、 図２dはデータ処理部による得られる比率像と加算像、 図２eはデータ処理部による構築されるカラー画像である。
　試料として、６種の異なる蛍光体を含む像を考える（図２a）。水銀ランプ等の光源を使用して励起すると６種の異なる蛍光を発生し、左から青、青緑、緑、黄緑、橙、赤色の蛍光となる。これらの蛍光を集光して、比率二分割ミラーで分割する。比率二分割ミラーは図２ｂのように、450nm以下の透過率がほぼ０％、620nm以上がほぼ１００％、450～620nmの間をほぼ０％からほぼ１００％まで、ほぼ線形的に緩やかに変化する透過率特性を有するものとする。分割ミラーの特性と蛍光波長から、青色の蛍光はほとんど透過せずに反射するため、透過画像では信号が弱く、反射画像では強く検出される。蛍光波長が青よりやや大きな青緑では、青色像に対して透過像では信号がやや強くなり、反射像では少し小さくなる。同様に緑色像では、透過像強度が反射像強度よりやや小さく、黄緑像では、透過像強度が反射像強度よりやや大きくなる。赤色の場合は、ほとんど透過するため、反射像は暗くなる（図２c）。
　透過蛍光像と反射蛍光像をもとに、背景光強度を差し引き、重ね合わせのための回転補正・トリミング補正を行い、加算像を得る。６か所の蛍光発光エリア以外の信号は小さいため、その部分での比率計算には意味がないので、加算像の信号強度レベルが１０％程度を超える部分に対して、比率計算をした比率像を得る（図２d）。画像形成処理部により、比率と色相を図２fのように対応させ、加算像の強度を明度に対応させることで、比率二分割によって検出された透過蛍光像と反射蛍光像から、多色ラベルの試料像をカラー表示できる。
（多色同時計測結果）
　実施例１の多色同時計測結果を説明する。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000001
　表１は使用した蛍光体種と、その励起波長、蛍光波長を示す特性表である。図３は、励起/蛍光分離用ダイクロイックミラーユニットの特性で、図３aは励起光用フィルタ特性、図３bは蛍光検出用フィルタ特性、図３cは励起／蛍光分離用ダイクロイックミラーの特性を示す。試料中の蛍光波長が420nm程度から700nm程度まで、約３００nmの幅で分布している。これらを同時に励起し、蛍光検出するため、トリプルバンドのダイクロイックミラーユニットを使用した。これら６種の蛍光を同時に識別・検出するため、図４に示した比率二分割ミラーを使用した。
　図５は測定した透過蛍光像(図５a)と反射蛍光像(図５b)、画像処理にて得られた比率画像(図５c)、およびカラー画像(図５d)を示す。ここでは、比率0.0→1.0を　色相0.0→240度に設定してカラー化した。また図５eは、個々の蛍光体の比率分布であり、６色蛍光体が分離して検出できていることを示す。
　比率二分割ミラーとしては、上記に限定されるものではなく。測定対象としている波長範囲においてある波長での透過率が他の波長での透過率と概略異なっている特性であればよい。また、測定対象としている多種類の蛍光体のうち、蛍光波長が一番短波長域の蛍光体の透過率をほぼ０％とし、一番長波長域の蛍光体の透過率をほぼ１００％とすればよい。なお、一番短波長域の蛍光体の透過率をほぼ１００％とし、一番長波長域の蛍光体の透過率をほぼ０％と逆の特性でも同様に使用でき、同様の効果がある。また、より汎用性を高めるために、波長域をより広げて、０％透過波長をより短波長側に、１００％透過波長をより長波長にしてもよく、この場合、同時に測定できる蛍光体種を多くすることができ、同時測定可能な多色数を大きくすることができる。なお、上記１００％というのは、透過率が正確に１００％であるということではなく、反射率と透過率の和が１００％とした場合の１００％という意味で、光学基材としての透過率を制限しているものではない。光学基材としての透過率として、たとえば、９８％、９５％等であってよい。透過率0％についても同様である。また、一番短波長域の蛍光体の透過率をほぼ1％とし、一番長波長域の蛍光体の透過率をほぼ９５％でその間をほぼ線形的に緩やかに変化する特性でも使用でき、同等の効果がある。
　本実施例によれば、下記の効果がある。
　本実施例では、６種の蛍光体を含む試料に対して、比率二分割ミラーにより、透過画像と反射画像を同時に検出することで、６種の蛍光体を識別して検出することができた。そのため、複数の蛍光を含む試料をフィルタを切換えて蛍光体の種類分の蛍光画像複数枚を取得することなく、１回の画像検出で識別検出することができ、簡便に測定することができる。
　また、蛍光体の数によらず測定が１回で済むので、高速に繰り返し測定することができ、時間変化を測定することもできる。同時に測定できるので、蛍光の退色の影響なく多種蛍光体を測定することもできる。
　１種類のフィルタセットで、300nmの幅広い波長領域の蛍光を検出識別することができ、光学フィルタのコストを安くすることができる。蛍光体の種類をかえても同じフィルタセットで使える可能性が硬く、汎用性が高い。
　また、フィルタ切換え等の機械動作がないため、装置の安定性が高くなる。また、簡便に測定することができる。
　さらに、たとえば、６蛍光体を６種類のフィルタセットを使い、６台の２次元検出器を使う場合の比べ、本実施例では、フィルタセットが１種、２台の２次元検出器で測定できるので、装置を安価・簡便に構成することができる。
また、本実施例では、試料から発する蛍光は、ダイクロイックミラーユニット１３で透過した後、全強度を透過側と反射側に振り替えて検出するので、全強度をロスすることなく、検出でき、高感度化に有効でもある。
　本実施例では、６種の蛍光体に対して行ったが、３種、４種、５種、また６種以上の蛍光体にも対応でき、多重染色等の同時計測に有効である。
　なお、本実施例では、通常の蛍光顕微測光法で行っているが、画像として検出する方式すべてで同様の効果がある。共焦点方式の照射結像系、エバネッセント照明での画像計測でも同様に同等の効果がある。
　第２の実施例での多色同時計測装置　　結果を図６に示す。
　マウス胎児繊維芽細胞（培養細胞）に対して、複数の試薬で染色した試料の測定結果を示す。 培養細胞をスライドガラスに播種し、PFA固定・透過処理後、DRAQ5(R)、Phalloidin,Rhodamine X conjugated、Paclitaxel,Oregon Green(R) 488 Conjugate試薬にて染色した。３７度２０分間反応後、ＰＢＳ洗浄し封入し、実施例１と同様の装置にて蛍光測定を行った。
　図６aは透過蛍光像、図６bは反射蛍光像、図６cはカラー変換画像である。このように多重染色した細胞像の計測で、多重蛍光体を同時に測定することができ、簡便な測定が可能になる。
　多重染色した細胞試料でも実施例１と同様の効果がある。
　別の多色蛍光同時計測装置の構成図を図７に示す。
　実施例１と同様に、通常の顕微鏡の機能である透過照明、位相差像計測、微分干渉像計測、NDフィルタ、対物レンズレボルバ、XYステージ、ピント合わせ用Z調整機構、接眼レンズ、顕微鏡筺体、種々の電源、自動調整機構部等は図より省略している。また、必要に応じて使われる温調容器ヒータパネルなども同じである。
　蛍光を励起するための超高圧水銀ランプ、キセノンランプ、各種レーザ装置、高輝度LED光源等の光源１０の光をレンズ１１で集光し、励起/蛍光分離用ダイクロイックミラーユニット１３（励起用フィルタ、ダイクロイックミラー、蛍光用フィルタ含む）で必要な波長帯の光を取り出し、反射させ、対物レンズ１２を通して、試料台１に保持した試料２に集光して照射する。
　試料から発する蛍光等は、再び対物レンズ１２で集められ、平行光束とし、ダイクロイックミラーユニット１３により、散乱光などの励起光成分が反射され、さらに蛍光用フィルタにより、必要な蛍光波長成分を透過させる。
　透過した蛍光は、補助フィルタ１４を透過させ、結像レンズ１０１でいったん結像させ、再び、レンズ１０２で平行光とし、比率二分割ミラー１０３に入射させる。二分割ミラーは、たとえば、420nm以下の透過率はほぼ０％で、600nm以上が１００％、その間をほぼ線形的に変化する透過率特性を有するもので、180nm波長範囲にわたって緩やかな透過特性を有するミラーである。実施例１と同様に、波長範囲400nmから600nm程度の範囲に蛍光発光する蛍光を多色同時検出することができる。
　比率二分割ミラー１０３からの透過光はミラー１０４、ミラー１０５で反射され、補助フィルタ１０７を通してレンズ１０９で結像させる。比率二分割ミラー１０３による反射光はミラー１０６で反射させ、補助フィルタ１０８を通してレンズ１０９で結像させる。レンズ１０９に対する透過光と反射光の光軸は図のように異なるように配置する。これにより、レンズ１０９で結像させたときの透過光像と反射光像の位置をずらすことができ、１台の２次元検出器１１０にて、両方の画像を同時に検出する。
　測定した蛍光像を、データ処理部１１１によりカラー画像化する。
　まず、２次元検出器の画像から、透過蛍光像と反射蛍光像を切り分ける。そのあとは、実施例と同じ工程で比率二分割した透過蛍光像と反射蛍光像から、カラー画像を形成し、ＰＣモニタ等の表示装置１１２に出力表示する。
　本実施例によれば、透過画像と反射画像を１台の２次元検出器で両方の画像を検出することにより、それぞれ別々の２次元検出器で検出する場合に比べて、測定視野が小さくなるが、２次元検出器を１台にできるため、低コスト化することができる。
　そのほか、本実施例の構成でも、実施例１記載と同等の効果がある。
　多色同時検出における別の組み合わせを図８に図示する。
　蛍光試薬としてＱｄｏｔ（Ｒ）を使う場合のフィルタセットの例を示す。Ｑｄｏｔ（Ｒ）として、図８eのように８種を対象とする場合、励起光用フィルタ特性図８a、蛍光検出用フィルタ特性図８b、励起／蛍光分離用ダイクロイックミラーの特性図８cを使用する。比率分割フィルタは、図８dのように、Ｑｄｏt（Ｒ）５２５の発光特性と蛍光用フィルタの特性、およびダイクロイックミラーの特性から、蛍光用フィルタの透過波長帯域の短波長端の510nm近傍で透過率０％、Ｑｄｏｔ（Ｒ）７０５の蛍光極大波長の７０５nm近傍で１００％となる特性とする。これにより、Ｑｄｏｔ（Ｒ）８種を同時に同じフィルタセットで識別検出することができる。１回の露光ですべて検出でき、簡便に測定が可能になる。８種同時に測定できることから、高速に画像を測定することができ、時間変化するような系でも高速の繰り返し測定が可能になる。そのほか、本実施例の組み合わせでも、実施例１記載と同様の効果がある。
１　試料台
２　試料
１０　光源
１１　レンズ
１２　対物レンズ
１３　ダイクロイックミラーユニット
１４、１６，１７，１０７，１０８　補助フィルタ
１５，１０３　二分割ミラー　
１８，１９　結像レンズ　
２０，２１，１１０　２次元検出器　
２２，１１１　データ処理部　
２３，１１２　表示装置　
１０１、１０２，１０９　レンズ
１０４，１０５，１０６　ミラー

Claims (12)

  1. 　複数の蛍光体で染色された試料に光源からの光を照射し、該試料から生じる蛍光等を検出して表示する多色蛍光画像分析装置であって、
    　光励起用の光源と、
    　光源からの光を集め試料に照射する照射光学系と、
    　試料から発する蛍光等を検出するために集光する蛍光集光系と、
    　集光した光を異なる比率で分割する分離部と、
    　分割された光をそれぞれ結像する結像光学系と、
    　分割され結像された像を各々検出するための複数の検出画素を備えた２次元検出器と、　それぞれの検出像を加算する加算像形成処理部、一方の像と加算された像との比率を計算する比率像形成処理部、比率像強度を色相とし、加算像強度を明度として、カラー合成画像を生成する画像形成処理部を含むデータ処理部を具備する多色蛍光画像分析装置。
  2. 　請求項１に記載の多色蛍光画像分析装置であって、
    　前記分離部は、蛍光集光系にて集光した光を、測定する波長範囲において実質的に各々の波長で異なる比率で分割することを特徴とする多色蛍光画像分析装置。
  3. 　請求項１に記載の多色蛍光画像分析装置であって、
    　前記分離部は、各々の蛍光体の蛍光毎に、異なる比率で透過光と反射光に分割することを特徴とする多色蛍光画像分析装置。
  4. 　請求項１に記載の多色蛍光画像分析装置であって、
    　前記分離部は、最短波長側の蛍光体の検出波長域から、最長波長側の蛍光体の検出波長域までの範囲において実質的に各々の波長で異なる比率で分割することを特徴とする多色蛍光画像分析装置。
  5. 　請求項１に記載の多色蛍光画像分析装置であって、
    　前記分離部は、指定の波長範囲の透過率または反射率が、実質的にほぼ０からほぼ１００％までのほぼ単調増加または単調減少の特性を有する二分割ミラーであることを特徴とする多色蛍光画像分析装置。
  6. 　請求項１に記載の多色蛍光画像分析装置であって、
    　前記分離部は、50nm以上の波長範囲の幅において光を分割することを特徴とする多色蛍
    光画像分析装置。
  7. 　請求項１に記載の多色蛍光画像分析装置であって、
    　前記分離部は、100nm以上の波長範囲の幅において光を分割することを特徴とする多色蛍光画像分析装置。
  8. 　複数の蛍光体で染色された試料に光源からの光を照射し、該試料から生じる蛍光等を検出して表示する多色蛍光画像分析装置であって、
    　光励起用の光源と、
    　光源からの光を集め試料に照射する照射光学系と、
    　試料から発する蛍光等を検出するために集光する蛍光集光系と、
    　所定の波長範囲幅にわたって、ほぼ単調増加または単調減少の透過特性を有する二分割ミラーと、
    　二分割ミラーによる透過像と、反射像を同時に検出する２次元検出器と、
    　透過像と、反射像を加算する加算像形成処理部、一方の像と加算された像との比率を計算する比率像形成処理部、比率像強度を色相とし、加算像強度を明度として、カラー合成画像を生成する画像形成処理部を含むデータ処理部を具備する多色蛍光画像分析装置。
  9. 　請求項８に記載の多色蛍光画像分析装置であって、
    　前記波長範囲幅は、５０ｎｍ以上であることを特徴とする多色蛍光画像分析装置。
  10. 　請求項８に記載の多色蛍光画像分析装置であって、
    　前記波長範囲幅は、１００ｎｍ以上４００ｎｍ以下であることを特徴とする多色蛍光画像分析装置。
  11. 　複数の蛍光体で染色された試料に光源からの光を照射し、該試料から生じる蛍光等を検出して表示する多色蛍光画像分析装置であって、
    　光励起用の光源と、
    　光源からの光を集め試料に照射する照射光学系と、
    　試料から発する蛍光等を検出するために集光する蛍光集光系と、
    　蛍光が発する波長範囲幅で、ほぼ単調増加または単調減少の透過特性を有する分離部と、
    　分離部により分離される２種の像を同時に検出する２次元検出器と、
    　透過像と、反射像からカラー画像を生成するデータ処理部を具備する多色蛍光画像分析装置。
  12. 　請求項１に記載の多色蛍光画像分析装置において、
    　蛍光体３種以上を同時に検出・表示することを特徴とする多色蛍光画像分析装置。
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