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WO2013161679A1 - 有核細胞捕捉フィルターまたはこれを利用した有核細胞調製法 - Google Patents

有核細胞捕捉フィルターまたはこれを利用した有核細胞調製法 Download PDF

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Publication number
WO2013161679A1
WO2013161679A1 PCT/JP2013/061533 JP2013061533W WO2013161679A1 WO 2013161679 A1 WO2013161679 A1 WO 2013161679A1 JP 2013061533 W JP2013061533 W JP 2013061533W WO 2013161679 A1 WO2013161679 A1 WO 2013161679A1
Authority
WO
WIPO (PCT)
Prior art keywords
cell
filter
nucleated
cells
inlet
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Ceased
Application number
PCT/JP2013/061533
Other languages
English (en)
French (fr)
Inventor
伸好 梅田
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Kaneka Corp
Original Assignee
Kaneka Corp
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Kaneka Corp filed Critical Kaneka Corp
Priority to JP2014512512A priority Critical patent/JP6143746B2/ja
Priority to EP13781442.2A priority patent/EP2843035B1/en
Publication of WO2013161679A1 publication Critical patent/WO2013161679A1/ja
Priority to US14/523,405 priority patent/US9746453B2/en
Anticipated expiration legal-status Critical
Ceased legal-status Critical Current

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    • G—PHYSICS
    • G01—MEASURING; TESTING
    • G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/483—Physical analysis of biological material
    • G01N33/487—Physical analysis of biological material of liquid biological material
    • G01N33/49—Blood
    • G01N33/491—Blood by separating the blood components
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61M—DEVICES FOR INTRODUCING MEDIA INTO, OR ONTO, THE BODY; DEVICES FOR TRANSDUCING BODY MEDIA OR FOR TAKING MEDIA FROM THE BODY; DEVICES FOR PRODUCING OR ENDING SLEEP OR STUPOR
    • A61M1/00—Suction or pumping devices for medical purposes; Devices for carrying-off, for treatment of, or for carrying-over, body-liquids; Drainage systems
    • A61M1/34—Filtering material out of the blood by passing it through a membrane, i.e. hemofiltration or diafiltration
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N5/00—Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
    • C12N5/0081—Purging biological preparations of unwanted cells
    • C12N5/0087—Purging against subsets of blood cells, e.g. purging alloreactive T cells
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N5/00—Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
    • C12N5/06—Animal cells or tissues; Human cells or tissues
    • C12N5/0602—Vertebrate cells
    • C12N5/0634—Cells from the blood or the immune system
    • C12N5/0642—Granulocytes, e.g. basopils, eosinophils, neutrophils, mast cells

Definitions

  • the present invention relates to a cell separation filter capable of efficiently recovering a nucleated cell fraction from a cell-containing solution, and a nucleated cell preparation method using the same.
  • hematopoietic stem cell transplantation for the treatment of leukemia and solid cancer is one of them, removing red blood cells from bone marrow and peripheral blood, and isolating and purifying only cells that are effective for treatment (nucleated cells including hematopoietic stem cells). It has come to be administered to patients.
  • nucleated cells are separated and purified for the purpose of preventing red blood cell hemolysis due to cryopreservation.
  • bone marrow, umbilical cord blood or peripheral blood-derived mononuclear cell transplantation therapy has been clinically applied in ischemic disease areas such as cerebral infarction, myocardial infarction and limb ischemia.
  • mononuclear cell fractions contain abundant stem cells such as mesenchymal stem cells, hematopoietic stem cells, and vascular endothelial progenitor cells. The stem cells promote therapeutic angiogenesis and nerve regeneration.
  • granulocytes are thought to cause side effects such as inflammation and reduce the therapeutic effect. Therefore, granulocytes are removed from bone marrow and peripheral blood, and cells that are effective for treatment (mononuclear cells including stem cells) Only separated and purified and administered to patients.
  • Non-Patent Document 1 Shows that it is possible to effectively treat Buerger's disease by transplanting bone marrow mononuclear cells containing CD34 positive cells to patients with Beerger's disease, which is a peripheral arterial occlusive disease, and promoting angiogenesis.
  • Non-Patent Document 2 it has been reported that bone marrow-derived mononuclear cell transplantation treatment is effective for patients with acute ischemic disease or ischemic heart disease including cerebral infarction.
  • centrifugation or density gradient centrifugation using a specific gravity liquid typified by Ficoll liquid is generally used.
  • density gradient centrifugation requires a large physical load on the cells, is complicated to operate, requires an open system, and requires a large cell processing center (CPC) to perform cell therapy. There is a problem such as.
  • Patent Document 1 a method for separating nucleated cells by a device using a nonwoven fabric is disclosed as a closed cell separation method that is easy to operate.
  • Patent Document 2 a method of removing white blood cells using a device in which a nonwoven fabric processed with a specific hole area ratio is laminated between two different filters.
  • Patent Document 3 granule A method of efficiently recovering mononuclear cells using a cell separation filter that selectively captures only spheres has been disclosed (Patent Document 3).
  • the nonwoven fabric is poor in versatility, in this method, it is necessary to design a nonwoven fabric suitable for the target cell in order to improve the recovery rate and suppress the mixing rate of unnecessary cells.
  • a separation method using a cell separation filter in which nonwoven fabrics are laminated is preferable, but the performance of the nonwoven fabrics is to be improved. Then, it becomes a cell separation filter suitable only for specific cells, and it becomes poor in versatility, and there is a problem that a nonwoven fabric must be developed for each cell type, and a solution has not yet been found It is.
  • An object of the present invention is to solve problems in a method for separating nucleated cells from a cell-containing solution using a cell separation filter. Specifically, it is possible to reduce the mixing ratio of unnecessary cells into the nucleated cell fraction without designing a nonwoven fabric suitable for the cell type to be collected, and the cell separation filter.
  • a cell preparation method using a filter is provided. Furthermore, the present invention provides a cell separation filter that improves the recovery rate of nucleated cells and a cell preparation method using the cell separation filter.
  • the inventor paid attention to the structure of the filter for cell separation, and as a result of intensive studies to solve the above problems, surprisingly, a nonwoven fabric was laminated in a container having an inflow port and an outflow port.
  • a partition that separates the nonwoven fabric it is possible to improve the recovery rate of nucleated cells and reduce the mixing rate of unnecessary cells without optimizing the nonwoven fabric, and change the nonwoven fabric according to the cell type in a timely manner.
  • the present invention has been completed by finding that it does not have to be rich in versatility.
  • the present invention comprises a container having an inlet and an outlet, a nonwoven fabric laminated in the container, and a partition wall having a partition inlet that separates the nonwoven fabric.
  • the present invention relates to a cell separation filter characterized by being partitioned.
  • the value of (S1) / (S2) is preferably 0.006 or more and 0.44 or less.
  • (S1) is 1.2 to 625 mm 2 and / or (S2) is 75 to 2500 mm 2 .
  • the value of (T) / (R) is preferably (r) / (R) or more and 0.79 or less.
  • the present invention also includes (a) a step of introducing a cell-containing liquid from the inlet of the cell separation filter and bringing it into contact with the nonwoven fabric, and (b) a step of recovering a nucleated cell fraction from the cell separation filter,
  • the present invention relates to a method for preparing nucleated cells.
  • step (b) it is preferable to recover the nucleated cell fraction by introducing a recovery solution from the inlet of the filter.
  • step (b) it is preferable to recover the nucleated cell fraction by introducing a recovery solution from the outlet of the filter.
  • the nucleated cell fraction is preferably a mononuclear cell fraction.
  • granulocytes are selectively removed from the cell-containing solution.
  • the value of (M) / (G) is preferably 5.3 or more.
  • the liquid passing speed in the cell separation filter is reduced, the contact time between the cell-containing liquid and the nonwoven fabric is increased, and the cells to be captured by the nonwoven fabric are As a result of a decrease in the probability of leaking from the outlet through the end of the container without passing through the nonwoven fabric, the nucleated cell fraction can be efficiently captured and recovered from the cell-containing liquid. Since the nucleated cell recovery rate is improved, a necessary amount of nucleated cell fraction can be efficiently prepared from a small amount of cell-containing solution, and the burden on the donor patient is expected to be reduced.
  • the cell separation filter having the above-described structure in which a non-woven fabric for capturing granulocytes is laminated, a mononuclear cell fraction having a higher granulocyte removal rate than before can be recovered.
  • a nonwoven fabric is laminated in a container having an inlet and an outlet as shown in FIG.
  • the form and size of the container are not particularly limited. Examples of the shape of the container include a cylinder, a quadrangular column, an elliptical column, and a rhombus.
  • the container used for the filter for cell separation can be produced using arbitrary structural materials.
  • the structural material of the container include a non-reactive polymer, a biocompatible metal, an alloy, and glass.
  • Non-reactive polymers include acrylonitrile polymers such as acrylonitrile butadiene styrene terpolymers; polytetrafluoroethylene, polychlorotrifluoroethylene, copolymers of tetrafluoroethylene and hexafluoropropylene, halogenated polymers such as polyvinyl chloride; polyamides and polyimides , Polysulfone, polycarbonate, polyethylene, polypropylene, polyvinyl chloride acrylic copolymer, polycarbonate acrylonitrile butadiene styrene, polystyrene, polymethylpentene and the like.
  • acrylonitrile polymers such as acrylonitrile butadiene styrene terpolymers
  • halogenated polymers such
  • biocompatible metal and alloy examples include stainless steel, titanium, platinum, tantalum, gold, and alloys thereof, as well as gold-plated alloy iron, platinum-plated alloy iron, cobalt chromium alloy, and titanium nitride-coated stainless steel.
  • polypropylene, polyvinyl chloride, polyethylene, polyimide, polycarbonate, polysulfone, polymethylpentene, and the like are preferable as the structural material of the container.
  • the material of the nonwoven fabric is not particularly limited, but from the viewpoint of sterilization resistance and cell safety, polyethylene terephthalate, polybutylene terephthalate, polyethylene, high density polyethylene, low density polyethylene, polyvinyl alcohol, vinylidene chloride, rayon.
  • one fiber may be a fiber made of different components, or may be a split fiber in which different components are separated from each other. Moreover, the form which compounded the fiber which consists of materials of different components, respectively may be sufficient.
  • composite as used herein is not particularly limited, and examples thereof include a configuration composed of a state in which two or more kinds of fibers are mixed, or a configuration in which a configuration composed of a single material is bonded to each other.
  • molecules having affinity for specific cells such as proteins, peptides, amino acids, and sugars, may be immobilized.
  • hydrophilic treatment suppresses non-specific capture of cells other than nucleated cells, and body fluids and biological tissue treatment solutions pass through the cell separation filter without bias, improving performance and recovering required cells And the like can be imparted.
  • water-soluble polyhydric alcohol, or a polymer having a hydroxyl group, a cation group, or an anion group, or a copolymer thereof for example, hydroxyethyl methacrylate, dimethylaminoethyl methacrylate, or a copolymer thereof
  • a copolymer thereof for example, hydroxyethyl methacrylate, dimethylaminoethyl methacrylate, or a copolymer thereof
  • a method of adsorbing a water-soluble polymer (polyethylene glycol, polyvinyl pyrrolidone, polyvinyl alcohol, etc.); a method of immobilizing a hydrophilic polymer on a hydrophobic membrane; a method of irradiating a cell separation filter with electrons; Method of crosslinking and insolubilizing hydrophilic polymer by irradiating filter for cell separation; Method of sulfonating surface of hydrophobic membrane; Method of forming membrane from mixture of hydrophilic polymer and hydrophobic polymer dope ; Hydrophilic on the membrane surface by alkaline aqueous solution treatment (NaOH, KOH, etc.) A method in which a hydrophobic porous membrane is immersed in alcohol, then treated with a water-soluble polymer aqueous solution, dried, and then insolubilized by heat treatment or radiation; a method in which a substance having a surface active action is adsorbed, etc. It is done.
  • the saccharide to be fixed to the nonwoven fabric is not particularly limited as long as it is a saccharide having affinity for cells, but examples thereof include polysaccharides such as cellulose, chitin and chitosan, and oligosaccharides such as mannose, glucose, galactose and fucose. .
  • the material, basis weight (g / m 2 ), maximum pore diameter (m), fiber diameter ( ⁇ m), and air permeability (mL / cm 2 / sec) are determined for each of the rooms partitioned by the partition wall.
  • Different nonwoven fabrics can be laminated.
  • the maximum pore size (unit: m) of the nonwoven fabric used for the filter for cell separation is set on the filter disk bubble point measuring device, ethanol is poured from the upper part to a certain level, and then pressurized with compressed air from the lower part.
  • the pressure can be obtained by converting into a formula of unit: Pa).
  • ⁇ (unit: rad) is a smooth film made of a polymer compound that is the main constituent of the nonwoven fabric, and in a horizontal state, droplets are formed on it using a microinjector, and the contact is made.
  • the angle can be determined by measuring at room temperature.
  • a high molecular compound can be melt
  • dissolving a high molecular compound a cast film can be produced on a flat plate using a solution, and a contact angle can also be measured.
  • the air permeability of the nonwoven fabric in the present invention is the pressure indicated by the vertical barometer at that time after setting the nonwoven fabric on the Frazier type air permeability tester and adjusting the suction fan so that the inclined barometer exhibits a pressure of 125 Pa.
  • the amount of air passing through the test piece that is, the air permeability, can be obtained from the type of air hole used and the table attached to the tester.
  • the fiber diameter of the nonwoven fabric in the present invention is to take a photograph of the nonwoven fabric with a scanning electron microscope, measure any 30 points or more, and average the calculated value of the fiber diameter obtained from the scale described in the photograph. Can be obtained.
  • the cell separation filter captures nucleated cells efficiently, so that the following (1) to (3): (1) A partition as shown in FIGS. 1 to 3 is provided to separate the nonwoven fabric in the filter. (2) The partition has one or a plurality of partition inlets, and (3) the partition is partitioned into two or more spaces by the partition.
  • the partition walls in the present invention are arranged in a direction perpendicular to the flow direction of the treatment liquid and are made of a material that does not allow cells to permeate. Therefore, even if a cell contacts with the said partition, it is not capture
  • any structural material or film-like sheet may be used as long as it is a material that does not allow cells to permeate.
  • the partition wall is deformed or damaged by the pressure when the cell-containing liquid and the recovery liquid are passed through.
  • entrance may be sufficient.
  • Examples of the structural material constituting the partition include non-reactive polymers, biocompatible metals, alloys, and glass.
  • Non-reactive polymers include acrylonitrile polymers such as acrylonitrile butadiene styrene terpolymers; polytetrafluoroethylene, polychlorotrifluoroethylene, copolymers of tetrafluoroethylene and hexafluoropropylene, halogenated polymers such as polyvinyl chloride; polyamides and polyimides , Polysulfone, polycarbonate, polyethylene, polypropylene, polyvinyl chloride acrylic copolymer, polycarbonate acrylonitrile butadiene styrene, polystyrene, polymethylpentene and the like.
  • acrylonitrile polymers such as acrylonitrile butadiene styrene terpolymers
  • halogenated polymers such
  • biocompatible metal and alloy examples include stainless steel, titanium, platinum, tantalum, gold, and alloys thereof, as well as gold-plated alloy iron, platinum-plated alloy iron, cobalt chromium alloy, and titanium nitride-coated stainless steel.
  • polypropylene, polyvinyl chloride, polyethylene, polyimide, polycarbonate, polysulfone, polymethylpentene, and the like are preferable as the structural material constituting the partition.
  • the material of the film-like sheet is preferably sterilization resistant polypropylene, polyvinyl chloride, polyethylene, polyimide, polycarbonate, polysulfone, polymethylpentene or the like.
  • the partition wall is provided with one or more partition inlets for allowing cells to pass therethrough.
  • the partition inlet is preferably located at the center of the partition from the viewpoint of cell capture efficiency.
  • (S1) shown in FIGS. 2 and 3 is the area of the partition wall inlet, and (S2) is the filter cross-sectional area.
  • the area (S1) of the partition inlet can be obtained from the radius when the inlet is circular, and from the length of the side or the distance from the center to the apex when the inlet is a polygon.
  • the area of each partition inlet is calculated as described above, and the sum of the areas is (S1).
  • (S1) is preferably at 1.2 mm 2 or more 625 mm 2 or less, more preferably 1.6 mm 2 or more 575 mm 2 or less, and more preferably 2.8 mm 2 or more 525 mm 2 or less. Is less than 1.2 mm 2, when the liquid permeability of cell-containing liquid or the recovery liquid, high pressure is generated in the vicinity of the partition wall inlet, tends to damage the cells. When it exceeds 625 mm 2 , the partition inlet is too large and the recovery rate of nucleated cells tends to decrease.
  • the filter cross-sectional area (S2) is the cross-sectional area of the filter cross-section on the surface where the partition inlet is located. If the filter cross-section is circular, it is determined by the radius, and if the filter cross-section is a polygon, the side length or the distance from the center to the apex Can be sought.
  • (S2) is preferably 75 mm 2 or more 2500 mm 2 or less, more preferably 100 mm 2 or more 2300 mm 2 or less, still more preferably 175mm 2 or more 2100 mm 2 or less. If it is less than 75 mm 2 , when passing the cell-containing liquid or the recovery liquid, a high pressure is generated in the vicinity of the partition inlet, and the cells tend to be damaged. When it exceeds 2500 mm 2 , the volume of the container increases, and thus the recovery rate of nucleated cells tends to decrease.
  • the relationship between (S1) and (S2) is such that the value of (S1) / (S2) is preferably 0.006 or more and 0.44 or less, and preferably 0.01 or more and 0.3 or less. More preferably, it is 0.016 or more and 0.25 or less.
  • the value of (S1) / (S2) is less than 0.006, when passing the cell-containing liquid or the recovery liquid, a high pressure is generated in the vicinity of the partition inlet, and the cells tend to be damaged. On the other hand, when it exceeds 0.44, the recovery rate of nucleated cells tends to decrease.
  • the shortest distance from the center of the filter cross section to the end of the container is (R)
  • the distance from the center of the filter cross section to the farthest point from the center of the filter cross section of the partition inlet is (T)
  • (r) is the shortest distance from the center of the partition wall inlet to the partition wall inlet end
  • the value of (T) / (R) is not less than (r) / (R) and 0 .79 or less is preferable.
  • the shortest distance from the center of the partition inlet closest to the center of the cross section to the end of the partition inlet is (r).
  • the upper limit of the value of (T) / (R) is more preferably 0.70 or less, and further preferably 0.64 or less.
  • the upper limit of the value of (T) / (R) exceeds 0.79, when the end of the partition inlet is located near the end of the container or when there are a plurality of partition inlets, the partition inlet Is localized at the end of the container, so that a drift tends to occur when the cell-containing liquid or the recovery liquid passes through the nonwoven fabric, and the cell capture efficiency tends to decrease because it does not reach the entire filter.
  • the shape of the filter cross section is not particularly limited, and examples thereof include a circle, a rectangle, and a square.
  • the shortest distance (R) from the center of the filter cross section to the edge of the container is the radius of the filter cross section when the filter cross section is circular, and half the length of the short side of the filter cross section when the filter cross section is rectangular.
  • the length is half of one side of the filter cross section.
  • the (R) is preferably 5 mm or more and 25 mm or less, and more preferably 7.5 mm or more and 22.5 mm or less.
  • (R) is less than 5 mm, when the value of (S1) / (S2) is 0.44 or less at the same time, the partition wall inlet area becomes too small, and the cell-containing solution or the recovery solution is passed through. High pressure is generated near the partition inlet and tends to damage cells.
  • (R) exceeds 25 mm, the volume of the container increases, and the cell recovery rate tends to decrease.
  • the shape of the partition inlet is not particularly limited, and examples thereof include a circle, a rectangle, a square, and an ellipse.
  • the shortest distance (r) from the center of the bulkhead inlet to the bulkhead inlet end is the radius when the bulkhead inlet is circular, and half the length of the short side when the bulkhead inlet is rectangular. If is square, it is half the length of one side.
  • the area (S1) of the partition inlet is also limited by the filter cross-sectional area (S2), (r) is preferably 0.4 mm or more and 16 mm or less, and preferably 0.5 mm or more and 14 mm or less. More preferably, it is 0.7 mm or more and 12 mm or less.
  • (T) Since the distance (T) from the center of the filter cross section to the farthest point from the center of the filter cross section among the partition wall inlets is limited by the values of (R) and (r), it can be suitably used (R) When calculated from the values of and (r), (T) is preferably 0.4 mm or more and 19 mm or less, and more preferably 0.7 mm or more and 17 mm or less.
  • the shortest distance (R) from the center of the filter cross section to the end of the container, the farthest distance (T) from the center of the filter cross section to the partition inlet end, and the center of the partition inlet to the partition inlet end can be measured by using a ruler, a caliper, or the like to measure the distance from the center of the filter cross section on the surface with the partition inlet or the center of the partition inlet on the surface with the partition inlet. Alternatively, it can be measured by using drawing software such as CAD or illustrator.
  • the number of partition inlets is not particularly limited.
  • the number of partition walls in the cell separation filter is not particularly limited, but is preferably 15 or less, more preferably 10 or less, and even more preferably 5 or less.
  • Cell capture efficiency improves as the number of partition walls increases and the space is divided into multiple spaces, but the cell recovery rate after recovery tends to decrease, so the number of partition walls is optimized according to the purpose of the cell separation filter It is preferable to do.
  • the granulocyte removal performance can be improved by increasing the number of partition walls.
  • the mononuclear cell recovery rate tends to be greatly reduced. Is preferably set to 15 or less.
  • the nucleated cell preparation method of the present invention includes the following steps (a) and (b). (A) a step of introducing a cell-containing liquid from the inlet of the cell separation filter and bringing it into contact with the nonwoven fabric; and (b) a step of recovering a nucleated cell fraction from the cell separation filter.
  • the cell-containing liquid in the present invention is a body fluid containing cells such as peripheral blood, bone marrow, umbilical cord blood, menstrual blood, and tissue extract, or these body fluids are physiological saline, divalent cations such as calcium ions and magnesium ions.
  • the animal species is not particularly limited as long as it is a mammal, and examples thereof include humans, cows, mice, rats, pigs, monkeys, dogs and cats.
  • the type of anticoagulant is not limited.
  • heparin low molecular weight heparin
  • fusan nafamostat methyl acid
  • EDTA EDTA
  • ACD acid-citrate-dextrose
  • citrate anticoagulation such as CPD (citrate-phosphate-dextrose) solution. If there is no influence depending on the purpose of use, the storage conditions of the cell-containing solution are not limited.
  • the nucleated cell in the present invention is not particularly limited as long as it contains a nucleus.
  • mononuclear cells leukocytes, granulocytes, neutrophils, eosinophils, basophils, erythroblasts, bone marrow Blast, promyelocyte, myelocyte, retromyelocyte, lymphocyte, monocyte, macrophage, T lymphocyte, B lymphocyte, NK cell, NK / T cell, dendritic cell, multinucleated giant cell, epithelial cell, endothelium
  • Examples include cells, mesenchymal cells, mesenchymal stem cells, hematopoietic stem cells, ES cells, iPS cells, and stem cells.
  • the nucleated cell fraction refers to a fraction containing nucleated cells
  • the mononuclear cell fraction refers to a fraction containing mononuclear cells
  • the stem cell in this invention means the cell which is isolate
  • granulocytes are cells containing nuclei, but when transplanted to a patient, they are thought to cause side effects such as inflammation and reduce the therapeutic effect, so the concentration of granulocytes in the nucleated cell fraction Is preferably low.
  • the mesenchymal stem cells in the present invention are osteoblasts, chondrocytes, vascular endothelial cells, cardiomyocytes, or fat, periodontal tissue constituent cells such as cement blasts and periodontal ligament fibroblasts by adding differentiation-inducing factors. It is a cell that differentiates into the same.
  • Hematopoietic stem cells are cells that differentiate blood cells such as leukocytes, lymphocytes, neutrophils, eosinophils, basophils, granulocytes, monocytes, macrophages, erythrocytes, platelets, megakaryocytes, and dendritic cells. It is.
  • the step of recovering the nucleated cell fraction from the cell separation filter in the present invention is a step of recovering a fraction containing a large amount of nucleated cells obtained by passing through the filter, depending on the properties of the cell separation filter. Thus, it is sufficient that the nucleated cell fraction can be collected.
  • the cell-containing solution is introduced from the filter inlet and the non-woven fabric and the cell-containing solution are brought into contact with each other.
  • the nucleated cell fraction can be collected from the outlet.
  • Examples of cells to be removed include granulocytes, monocytes, platelets, B lymphocytes, lymphocytes having a specific subclass, and the like. Specifically, there is a method in which granulocytes are captured by a filter and removed, and a mononuclear cell-containing fraction is collected.
  • the non-woven fabric laminated in the filter has affinity with the nucleated cells to be collected, introduce the cell-containing solution from the filter inlet and discharge the cells and contaminants to be removed from the outlet. Then, the nucleated cell fraction can be collected from the inlet.
  • the recovery liquid from the outlet of the filter and recover the nucleated cell fraction from the inlet. Examples of cells to be removed include erythrocytes, T lymphocytes, lymphocytes having a specific subclass, and the like. Specifically, a method of allowing unnecessary cells to pass through and collecting stem cells captured by a filter can be mentioned.
  • washing liquid when recovering the nucleated cell fraction by introducing the recovery liquid from the filter outlet, introducing the washing liquid from the inlet of the filter prior to recovery enables more efficient removal.
  • Cells and impurities can be discharged from the outlet.
  • the washing solution is not particularly limited as long as only the cells and impurities to be removed can be washed away.
  • a physiological buffer for example, a physiological buffer, Ringer's solution, a medium used for cell culture, a general buffer solution such as a phosphate buffer, or a solution thereof.
  • a solution to which serum or protein is added may be mentioned.
  • the operation of removing the partition or increasing the area of the inlet of the partition is performed. After that, it is expected that the recovery rate of nucleated cells can be improved by recovering the nucleated cell fraction.
  • the recovered liquid is preferably used for the purpose of recovering nucleated cells trapped in the filter or mononuclear cells remaining in the filter.
  • the recovered solution is not particularly limited, and examples thereof include liquids containing divalent cations such as magnesium ions and calcium ions, saccharides, serum, and proteins, buffer solutions, culture media, plasma, and liquids containing them in addition to physiological saline. .
  • the viscosity of the recovered solution may be increased.
  • the substance added to the recovered solution for increasing the degree of viscosity is not particularly limited, and examples thereof include albumin, fibrinogen, globulin, dextran, hydroxyethyl starch, hydroxyl cellulose, collagen, hyaluronic acid, gelatin and the like.
  • the speed and method of passing the cell-containing solution and the recovery solution are not particularly limited, and for example, the method of passing using gravity, the method of passing while maintaining a constant flow rate using a roller clamp or a syringe pump, high A method of applying a pressure and passing through the solution at once is exemplified.
  • a method in which the recovered liquid is passed at a stretch by applying a high pressure is preferable.
  • the collected liquid is passed through the syringe at a constant flow rate from the viewpoint of granulocyte removal efficiency.
  • a method of passing the liquid at a flow rate of 2.5 mL / min or less using a syringe pump is more preferable because a mononuclear cell fraction can be collected while more granulocytes are captured by the nonwoven fabric.
  • FIG. 4 shows an example of a circuit for isolating cells closed using the cell separation filter of the present invention.
  • means for containing the cell-containing liquid is arranged on the inlet side of the filter, and means for containing the cell-containing liquid that has passed through the filter is arranged on the outlet side.
  • a means for storing the recovered liquid or a means for storing the recovered liquid that has passed through the filter is disposed on the inlet side or the outlet side of the filter. Depending on the direction in which the recovered liquid flows, it is possible to determine whether the means for storing the recovered liquid or the means for storing the recovered liquid that has passed through the filter is arranged on the inlet or outlet side.
  • the inlet side of the filter or A means for storing the priming solution or a means for storing the priming solution that has passed through the filter is disposed on the outlet side. It should be noted that depending on the direction in which the priming solution flows, it is possible to determine whether the means for storing the priming solution or the means for storing the priming solution that has passed through the filter is arranged on the inlet or outlet side.
  • the means for storing the priming solution and the means for storing the priming solution that has passed through the filter may be arranged with a circuit separately from the means for storing the cell-containing solution, or may be used in place of these. Is possible.
  • Each of these means is connected to the filter by opening and closing each stopcock according to each step of the nucleated cell preparation method.
  • the circuit preferably includes a three-way stopcock, a roller clamp, a clamp and the like in order to control the flow of the liquid.
  • the mononuclear cell recovery rate ratio according to the nucleated cell preparation method of the present invention can be calculated by dividing the mononuclear cell recovery rate (M) by the granulocyte recovery rate (G).
  • the mononuclear cell recovery rate (M) refers to the recovery rate of mononuclear cells recovered from the raw material cell-containing liquid into the nucleated cell fraction.
  • Granulocyte recovery rate (G) refers to the recovery rate of granulocytes recovered from the cell-containing liquid of the raw material into the nucleated cell fraction. The higher the mononuclear cell recovery ratio, the higher the granulocyte removal performance.
  • the filter for cell separation of the present invention By using the filter for cell separation of the present invention, the efficiency of capturing granulocytes in the nonwoven fabric is improved, and it becomes possible to efficiently obtain a mononuclear cell fraction while reducing the mixing of granulocytes, It is preferable that granulocytes are selectively removed from the cell-containing solution.
  • the mononuclear cell recovery rate ratio is preferably 5.3 or more, more preferably 8.3 or more, and further preferably 25.2 or more. When the mononuclear cell recovery rate ratio is less than 5.3, granulocytes are mixed to the same extent as in conventional cell separation filters and tend to cause side effects when administered to patients.
  • the upper limit of the mononuclear cell recovery ratio is not particularly limited because it affects not only the cell separation filter structure but also the performance of the nonwoven fabric, but it is preferably 100 or less.
  • Example 1 Height (inner dimension) 16 mm, radius (R) 9 mm, filter cross-sectional area (S2) 254 mm 2 and an inlet having a diameter of 3 mm (shortest distance (r) 1 from the center of the partition inlet to the end of the partition inlet) .5 mm inlet) is a container (partition wall inlet area (S1) 7.1 mm 2 ) that is evenly partitioned into two chambers by a partition wall that is open at one location in the center, the distance from the center of the cross section to the farthest partition wall inlet Nylon 6 non-woven fabric (air permeability 40 mL / cm 2 / sec, thickness 0.30 mm, fiber diameter 16.0 ⁇ m) is laminated in each chamber 16 pieces in (T) (1.5 mm container same as (r)) A cell separation filter was prepared by packing in a state.
  • porcine bone marrow fluid (pig bone marrow fluid anticoagulated with 50 IU / mL heparin sodium and passed through a 70 ⁇ m cell strainer to remove aggregates) was placed in a 20 mL syringe, and the syringe and filter flow through the pore tube.
  • the inlet was connected and attached to a syringe pump.
  • 10 mL of porcine bone marrow fluid was introduced into the filter at a flow rate of 0.625 mL / min over 16 minutes, and 10 mL of nucleated cells derived from the outlet side were accommodated in a collection container.
  • the white blood cell concentration of 20 mL of the collected nucleated cells and the bone marrow fluid before treatment were measured with a blood cell counter (Sysmex, K-4500).
  • the pre-treatment bone marrow fluid and post-recovered nucleated cells were hemolyzed with FACS Pharmlyse, and the abundance ratio of granulocytes and mononuclear cells was measured with a flow cytometer (BD, FACSCanto). From the obtained leukocyte concentration and the abundance ratio of granulocytes and mononuclear cells, the total number of mononuclear cells was determined by the following formula.
  • the mononuclear cell recovery rate was 48%.
  • the total number of granulocytes in the nucleated cells after recovery was calculated in the same manner, and the granulocyte recovery rate [%] was calculated as (number of granulocytes in the recovered nucleated cells) / (number of granulocytes in bone marrow before treatment) ) ⁇ 100.
  • the granulocyte recovery rate was 2%.
  • the mononuclear cell recovery rate ratio was calculated as (mononuclear cell recovery rate) / (granulocyte recovery rate). As a result, the mononuclear cell recovery rate ratio was 25.2.
  • the time required from the passage of the priming solution to the recovery of nucleated cells by the passage of the recovery solution was 40 minutes.
  • the mononuclear cell recovery rate, granulocyte recovery rate, and mononuclear cell recovery rate ratio of 20 mL of the obtained nucleated cells were calculated, and the results are shown in Table 1.
  • the time required from the passage of the priming solution to the recovery of nucleated cells by the passage of the recovery solution was 40 minutes.
  • the mononuclear cell recovery rate, granulocyte recovery rate, and mononuclear cell recovery rate ratio of 20 mL of the obtained nucleated cells were calculated, and the results are shown in Table 1.
  • the time required from the passage of the priming solution to the recovery of nucleated cells by the passage of the recovery solution was 40 minutes.
  • the mononuclear cell recovery rate, granulocyte recovery rate, and mononuclear cell recovery rate ratio of 20 mL of the obtained nucleated cells were calculated, and the results are shown in Table 1.
  • the time required from the passage of the priming solution to the recovery of nucleated cells by the passage of the recovery solution was 40 minutes.
  • the mononuclear cell recovery rate, granulocyte recovery rate, and mononuclear cell recovery rate ratio of 20 mL of the obtained nucleated cells were calculated, and the results are shown in Table 1.
  • the time required from the passage of the priming solution to the recovery of nucleated cells by the passage of the recovery solution was 40 minutes.
  • the mononuclear cell recovery rate, granulocyte recovery rate, and mononuclear cell recovery rate ratio of 20 mL of the obtained nucleated cells were calculated, and the results are shown in Table 1.
  • the mononuclear cell recovery rate and granulocyte recovery rate are substantially the same as in Example 2, but it takes time for the centrifugation operation, the operation is complicated, and the variation among workers is large. There is a problem that an operation in an open system is necessary.
  • the present invention requires only half the time than when collecting cells using a centrifugal operation, and the recovery rate and unnecessary cell contamination rate are equal to or greater than, It was confirmed that nucleated cells can be efficiently and efficiently collected in a closed system.

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Description

有核細胞捕捉フィルターまたはこれを利用した有核細胞調製法
本発明は、細胞含有液から有核細胞分画を効率良く回収することが可能な細胞分離用フィルターと、それを用いた有核細胞調製法に関する。
近年、末梢血・骨髄・臍帯血・組織抽出物をはじめとする細胞含有液のうち、治療に有効な細胞分画のみを分離して患者に投与し、必要ない分画は投与せず、治療効果をより高め、副作用をより抑制する治療スタイルが広く普及している。例えば、白血病や固形癌治療に向けた造血幹細胞移植がその１つであり、骨髄や末梢血から赤血球を除去し、治療に有効な細胞（造血幹細胞を含む有核細胞）のみを分離・純化して患者に投与するようになってきた。臍帯血バンキングにおいても使用時まで細胞を凍結保存する必要があるため、凍結保存による赤血球溶血を防ぐことを目的に有核細胞は分離・純化されている。さらに、脳梗塞、心筋梗塞および肢虚血等の虚血性疾患領域において骨髄、臍帯血または末梢血由来の単核球移植療法が臨床応用されている。これらの単核球分画には間葉系幹細胞、造血幹細胞、血管内皮前駆細胞に代表される幹細胞が豊富に含まれており、幹細胞が血管新生や神経再生を促進することによって治療効果が得られると考えられている。一方で、顆粒球は炎症等の副作用を引き起こして治療効果を低減させると考えられているため、骨髄や末梢血から顆粒球を除去し、治療に有効な細胞（幹細胞を含む単核球群）のみを分離・純化して患者に投与している。
例えば、田口らは、末梢動脈閉塞性疾患であるＢｅｕｒｇｅｒ病患者に、ＣＤ３４陽性細胞を含む骨髄単核球を移植し、血管新生を促進することによってＢｕｅｒｇｅｒ病を効果的に治療可能であることを見出している（非特許文献１）。また、脳梗塞をはじめとする急性虚血性疾患または虚血性心疾患患者に対する骨髄由来単核球の移植治療が有効であると報告されている（非特許文献２）。
これら有核細胞あるいは単核球を分離・純化する方法としては、遠心分離またはＦｉｃｏｌｌ液に代表される比重液を使用した密度勾配遠心法が一般的に用いられている。しかし、密度勾配遠心法は細胞に与える物理的な負荷が大きい、操作が煩雑である、および、開放系での操作が必要であり細胞治療を行う上では大型のセルプロセッシングセンター（ＣＰＣ）が必須である、等の問題がある。
そこで、操作が簡便で、且つ閉鎖系の細胞分離法として、不織布を用いたデバイスによる有核細胞の分離方法が開示されている（特許文献１）。また、不織布の目詰まりを抑制するために、特定の穴面積率で加工した不織布を、２種類の異なるフィルターの間に積層したデバイスを用いて白血球を除去する方法や（特許文献２）、顆粒球のみが選択的に捕捉される細胞分離用フィルターを用いて、単核球を効率良く回収する方法等が開示されている（特許文献３）。しかし、不織布は汎用性に乏しいので、当該方法においては、回収率の向上や不要な細胞の混入率の抑制のために、目的とする細胞に適した不織布を設計する必要が生じる。
上記のように、遠心操作による細胞への負荷、操作の煩雑さ、コンタミネーションのリスク等を鑑みると、不織布を積層させた細胞分離用フィルターによる分離方法が好ましいが、不織布の性能を上げようとすると特定細胞のみに適した細胞分離用フィルターとなり汎用性に乏しくなるとともに、細胞種ごとに不織布を開発しなければならないという問題点が挙げられ、その解決方法は未だ見出されていないのが現状である。
特開２００４－３２９０３４号公報 特開２００４－２１５８７５号公報 国際公開第０６／０９３２０５号パンフレット
Ａ．Ｔａｇｕｃｈｉ．ｅｔ　ａｌ．，Ｅｕｒ．Ｊ．Ｖａｓｃ．Ｅｎｄｏｖａｓｃ．Ｓｕｒｇ．２００３，２５，２７６－２７８ Ａ．Ｔａｇｕｃｈｉ．ｅｔ　ａｌ．，Ｓｔｅｍ　Ｃｅｌｌｓ．２０１０，２８，１２９２－１３０２
本発明の目的は、細胞分離用フィルターを用いて細胞含有液から有核細胞を分離する方法における問題点を解決することを課題とする。具体的には、回収目的の細胞種に適した不織布を設計することなく、有核細胞分画への不要な細胞の混入割合を減少させることが可能な、細胞分離用フィルターおよび当該細胞分離用フィルターを用いた細胞調製方法を提供する。さらに、本発明は有核細胞の回収率を向上させる細胞分離用フィルターおよび当該細胞分離用フィルターを用いた細胞調製方法を提供する。
本発明者は、細胞分離用フィルターの構造に着目し、前記課題を解決すべく鋭意検討を重ねた結果、驚くべきことに流入口と流出口を有する容器内に不織布を積層し、フィルター内に不織布を区分する隔壁を設置することによって、不織布を最適化しなくても有核細胞の回収率向上や不要な細胞の混入割合を減少させることができ、且つ不織布を適時細胞種に応じて変更しなくてもよく汎用性に富むことを見出し、本発明を完成するに至った。
すなわち、本発明は、流入口と流出口を有する容器、前記容器内に積層された不織布、および、前記不織布を区分する、隔壁流入口を有する隔壁からなり、前記隔壁により２室以上の空間に仕切られていることを特徴とする細胞分離用フィルターに関する。
隔壁流入口の面積を（Ｓ１）、フィルター断面積を（Ｓ２）としたとき、（Ｓ１）／（Ｓ２）の値が０．００６以上０．４４以下であることが好ましい。
（Ｓ１）が１．２～６２５ｍｍ２であり、および／または（Ｓ２）が７５～２５００ｍｍ２であることが好ましい。
フィルター断面の中心から容器の端までの最短距離を（Ｒ）、フィルター断面の中心から隔壁流入口端までの最遠距離を（Ｔ）、隔壁流入口の中心から隔壁流入口端までの最短距離を（ｒ）としたとき、（Ｔ）／（Ｒ）の値が（ｒ）／（Ｒ）以上であり、かつ０．７９以下であることが好ましい。
また、本発明は、（ａ）前記細胞分離用フィルターの流入口から細胞含有液を導入し不織布と接触させる工程、および（ｂ）前記細胞分離用フィルターから有核細胞分画を回収する工程、を含む有核細胞調製法に関する。
前記工程（ｂ）において、回収液をフィルターの流入口から導入し有核細胞分画を回収することが好ましい。
前記工程（ｂ）において、回収液をフィルターの流出口から導入し有核細胞分画を回収することが好ましい。
有核細胞分画が単核球分画であることが好ましい。
細胞含有液から顆粒球が選択的に除去されることが好ましい。
単核球の回収率を（Ｍ）、顆粒球の回収率を（Ｇ）としたときに、（Ｍ）／（Ｇ）の値が５．３以上であることが好ましい。
本発明によれば、細胞分離フィルターに隔壁を設けることによって細胞分離フィルター内での通液速度が遅くなり、細胞含有液と不織布との接触時間が長くなるうえ、不織布の捕捉対象となる細胞が不織布を通らず容器の端を通過して流出口より漏れ出る確率が低下する結果、細胞含有液から有核細胞分画を効率良く捕捉、回収することが可能となる。有核細胞回収率が向上するため、少量の細胞含有液から効率的に必要量の有核細胞分画を調製することが可能となり、ドナー患者の負担低減が期待される。また、顆粒球捕捉用の不織布を積層した前記構造の細胞分離用フィルターを用いることで、従来よりも顆粒球除去率の高い単核球分画を回収することもできる。
隔壁を備えた細胞分離用フィルターの縦断面図 流入口が１個の隔壁を備えた細胞分離用フィルターの横断面図 流入口が複数個の隔壁を備えた細胞分離用フィルターの横断面図 細胞分離用フィルターを備えた回路
以下、本発明を詳細に説明する。まず、本発明における細胞分離用フィルターは、図１に示すように流入口と流出口を有する容器内に不織布が積層されている。容器の形態・大きさは特に限定されない。容器の形態としては、例えば、円柱、四角柱、楕円柱、ひし形柱等が挙げられる。
また、細胞分離用フィルターに用いられる容器は任意の構造材料を使用して作製することができる。当該容器の構造材料としては具体的には、非反応性ポリマー、生物親和性金属、合金、ガラス等が挙げられる。
非反応性ポリマーとしては、アクリロニトリルブタジエンスチレンターポリマー等のアクリロニトリルポリマー；ポリテトラフルオロエチレン、ポリクロロトリフルオロエチレン、テトラフルオロエチレンとヘキサフルオロプロピレンのコポリマー、ポリ塩化ビニル等のハロゲン化ポリマー；ポリアミド、ポリイミド、ポリスルホン、ポリカーボネート、ポリエチレン、ポリプロピレン、ポリビニルクロリドアクリルコポリマー、ポリカーボネートアクリロニトリルブタジエンスチレン、ポリスチレン、ポリメチルペンテン等が挙げられる。
生物親和性金属および合金としては、ステンレス鋼、チタン、白金、タンタル、金、およびそれらの合金、並びに金メッキ合金鉄、白金メッキ合金鉄、コバルトクロミウム合金、窒化チタン被覆ステンレス鋼等が挙げられる。
滅菌耐性を有する点から、当該容器の構造材料として、ポリプロピレン、ポリ塩化ビニル、ポリエチレン、ポリイミド、ポリカーボネート、ポリスルホン、ポリメチルペンテン等が好ましい。
本発明において不織布の材質は特に制限されないが、滅菌耐性や細胞への安全性の観点からは、ポリエチレンテレフタート、ポリブチレンテレフタレート、ポリエチレン、高密度ポリエチレン、低密度ポリエチレン、ポリビニルアルコール、塩化ビニリデン、レーヨン、ビニロン、ポリプロピレン、アクリル（ポリメチルメタクリレート、ポリヒドロキシエチルメタクリレート、ポリアクリルニトリル、ポリアクリル酸、ポリアクリレート）、ナイロン、ポリイミド、アラミド（芳香族ポリアミド）、ポリアミド、キュプラ、カーボン、フェノール、ポリエステル、パルプ、麻、ポリウレタン、ポリスチレン、ポリカーボネート等の合成高分子、アガロース、セルロース、セルロースアセテート、キトサン、キチン等の天然高分子、ガラス等の無機材料や金属等が挙げられる。好ましくは、細胞捕捉能が高いポリエチレンテレフタレート、ポリブチレンテレフタレート、ポリプロピレン、アクリル、ナイロン、ポリウレタンである。さらに好ましくは、有核細胞捕捉能が高いポリエチレンテレフタレート、ナイロンである。２種以上の材質を組み合わせて繊維とする場合の繊維の形態としては、１本の繊維が異成分同士の材質よりなる繊維でもよく、異成分同士が剥離分割した分割繊維でもよい。また異成分同士の材質よりなる繊維をそれぞれ複合化した形態でもよい。ここでいう複合化とは、特に制限は無く、２種以上の繊維が混在した状態より構成される形態、あるいは単独の材質よりなる形態をそれぞれ張り合わせたもの等が挙げられる。さらに、蛋白質、ペプチド、アミノ酸、糖類等のように、特定の細胞に親和性のある分子を固定してもよい。
また、不織布に親水化処理を施すことが好ましい。親水化処理により、有核細胞以外の細胞の非特異的な捕捉が抑制され、体液や生体組織の処理液が偏りなく細胞分離用フィルター中を通過するので、性能の向上、必要細胞の回収率の向上等を付与することができる。親水化処理としては、水溶性多価アルコール、または水酸基やカチオン基、アニオン基を有するポリマー、あるいはその共重合体（例えば、ヒドロキシエチルメタクリレート、ジメチルアミノエチルメタクリレート、あるいはその共重合体等）を吸着させる方法；水溶性高分子（ポリエチレングリコール、ポリビニルピロリドン、ポリビニルアルコール等）を吸着させる方法；疎水性膜に親水性高分子を固定化する方法；細胞分離用フィルターに電子照射する方法；含水状態で細胞分離用フィルターに放射線を照射することで親水性高分子を架橋不溶化する方法；疎水性膜の表面をスルホン化する方法；親水性高分子と、疎水性ポリマードープとの混合物から膜をつくる方法；アルカリ水溶液処理（ＮａＯＨ、ＫＯＨ等）により膜表面に親水基を付与する方法；疎水性多孔質膜をアルコールに浸漬した後、水溶性ポリマー水溶液で処理、乾燥後、熱処理や放射線等で不溶化処理する方法；界面活性作用を有する物質を吸着させる方法等が挙げられる。親水性高分子としては、ポリビニルピロリドン、ポリビニルアルコール、ポリエチレングリコール、エチレン―ビニルアルコール共重合体、水溶性多価アルコール等が挙げられる。
不織布に固定するタンパク質としては、特定の細胞に親和性のあるタンパク質であれば特に限定されないが、具体的にはフィブロネクチン、ラミニン、ビトロネクチン、コラーゲン等が挙げられる。また、不織布に固定する糖類としては、細胞に親和性のある糖類であれば特に限定されないが、セルロース、キチン、キトサン等の多糖類やマンノース、グルコース、ガラクトース、フコース等のオリゴ糖等が挙げられる。
また、本発明において隔壁を挟んで仕切られた各室毎に、素材や目付け（ｇ／ｍ２）、最大孔径（ｍ）、繊維径（μｍ）、通気度（ｍＬ／ｃｍ２／ｓｅｃ）が異なる不織布を積層することもできる。
細胞分離用フィルターに用いられる不織布の最大孔径（単位：ｍ）は、フィルタディスクバブルポイント測定装置に不織布をセットし、上部より一定レベルまでエタノールを注いだ後、下部より圧縮空気で加圧し、不織布表面よりエタノール層を通じて最初の気泡が出たときの圧力（バプルポイント圧）をデジタルマノメーターから読み取り、（最大孔径）＝４×（エタノールの表面張力、単位：Ｎ／ｍ）×ｃｏｓθ／（バブルポイント圧、単位：Ｐａ）の式に換算することで求めることができる。ここでいうθ（単位：ｒａｄ）は、不織布の主たる構成成分である高分子化合物よりなる平滑なフィルムを作製し、水平な状態でその上に微量注射器を用いて液滴を形成し、その接触角を室温で測定することにより求めることができる。また、高分子化合物が有機溶媒に溶解可能な場合は、高分子化合物を溶解後、溶解液を用いて平板上にキャストフィルムを作製して、接触角を測定することもできる。
また、本発明における不織布の通気度は、フラジール型通気試験機に不織布をセットし、傾斜型気圧計が１２５Ｐａの圧力を示すように吸い込みファンを調節した後、その時の垂直型気圧計が示す圧力および使用した空気孔の種類から、試験機に付属の表を参照し、試験片を通過する空気量、すなわち通気度を求めることができる。また、本発明における不織布の繊維径は、不織布を走査型電子顕微鏡にて写真撮影し、任意の３０ポイント以上を測定し、写真に記載されたスケールから求めた繊維径の計算値を平均することにより、求めることができる。
本発明において細胞分離用フィルターは有核細胞を効率良く捕捉するために、以下（１）～（３）；
（１）フィルター内に不織布を区分する、図１～３に示すような隔壁が設置されていること、
（２）前記隔壁が１または複数の隔壁流入口を有していること、および
（３）前記隔壁により２室以上の空間に仕切られていること
の特徴を有する。
本発明における隔壁は、処理液の流れ方向に対して垂直方向に配置され、細胞が透過しない材質から構成される。したがって、細胞は当該隔壁と接触しても隔壁に捕捉されることはない。隔壁には１個または複数個の隔壁流入口が設けられているので、細胞は隔壁流入口へと移動し、区分された別室に移動する。
本発明における隔壁としては、細胞が透過しない材質であれば任意の構造材料やフィルム状のシートを使用してよいが、細胞含有液および回収液を通液する際の圧によって隔壁が変形あるいは破損しない点で、剛性の高い構造材料あるいはシートを使用することが好ましい。また、細胞分離用フィルターからフィルター内の液体の漏出を防ぎながら隔壁のみを取り外すことができる構造や、隔壁流入口の面積を変えることができるような構造であってもよい。
当該隔壁を構成する構造材料としては、例えば非反応性ポリマー、生物親和性金属、合金、ガラス等が挙げられる。
非反応性ポリマーとしては、アクリロニトリルブタジエンスチレンターポリマー等のアクリロニトリルポリマー；ポリテトラフルオロエチレン、ポリクロロトリフルオロエチレン、テトラフルオロエチレンとヘキサフルオロプロピレンのコポリマー、ポリ塩化ビニル等のハロゲン化ポリマー；ポリアミド、ポリイミド、ポリスルホン、ポリカーボネート、ポリエチレン、ポリプロピレン、ポリビニルクロリドアクリルコポリマー、ポリカーボネートアクリロニトリルブタジエンスチレン、ポリスチレン、ポリメチルペンテン等が挙げられる。
生物親和性金属および合金としては、ステンレス鋼、チタン、白金、タンタル、金、およびそれらの合金、並びに金メッキ合金鉄、白金メッキ合金鉄、コバルトクロミウム合金、窒化チタン被覆ステンレス鋼等が挙げられる。
また、滅菌耐性を有する点から、当該隔壁を構成する構造材料として、ポリプロピレン、ポリ塩化ビニル、ポリエチレン、ポリイミド、ポリカーボネート、ポリスルホン、ポリメチルペンテン等が好ましい。また、フィルム状シートの材質としては、滅菌耐性を有するポリプロピレン、ポリ塩化ビニル、ポリエチレン、ポリイミド、ポリカーボネート、ポリスルホン、ポリメチルペンテン等が好ましい。
本発明において、隔壁には細胞を通過させるための隔壁流入口が１または複数個設置される。隔壁流入口は、細胞捕捉効率の点から隔壁の中央部に位置していることが好ましい。図２および図３に示す（Ｓ１）は、隔壁流入口の面積であり、（Ｓ２）はフィルター断面積である。隔壁流入口の面積（Ｓ１）は、流入口が円形の場合は半径より、多角形の場合は辺の長さまたは中心から頂点までの距離により求めることができる。隔壁流入口が複数個ある場合は、各隔壁流入口の面積を上記により算出し、それら面積の和を（Ｓ１）とする。（Ｓ１）は、１．２ｍｍ２以上６２５ｍｍ２以下であることが好ましく、１．６ｍｍ２以上５７５ｍｍ２以下であることがより好ましく、２．８ｍｍ２以上５２５ｍｍ２以下であることがさらに好ましい。１．２ｍｍ２未満では、細胞含有液あるいは回収液を通液する際、隔壁流入口付近に高圧が生じ、細胞にダメージを与える傾向がある。６２５ｍｍ２を超えると、隔壁流入口が大きすぎ、有核細胞の回収率が減少する傾向がある。
フィルター断面積（Ｓ２）は、隔壁流入口がある面におけるフィルター断面の断面積であり、フィルター断面が円形の場合は半径より、多角形の場合は辺の長さまたは中心から頂点までの距離により求めることができる。（Ｓ２）は、７５ｍｍ２以上２５００ｍｍ２以下であることが好ましく、１００ｍｍ２以上２３００ｍｍ２以下であることがより好ましく、１７５ｍｍ２以上２１００ｍｍ２以下であることがさらに好ましい。７５ｍｍ２未満では、細胞含有液あるいは回収液を通液する際、隔壁流入口付近に高圧が生じ、細胞にダメージを与える傾向がある。２５００ｍｍ２を超えると、容器の体積が大きくなるために、有核細胞の回収率が減少する傾向がある。
本発明において（Ｓ１）と（Ｓ２）の関係は、（Ｓ１）／（Ｓ２）の値が０．００６以上０．４４以下であることが好ましく、０．０１以上０．３以下であることがより好ましく、０．０１６以上０．２５以下であることがさらに好ましい。（Ｓ１）／（Ｓ２）の値が０．００６未満の場合、細胞含有液あるいは回収液を通液する際、隔壁流入口付近に高い圧が生じ、細胞にダメージを与える傾向がある。一方で、０．４４を超えると有核細胞の回収率が減少する傾向がある。
図２および図３に示すように、フィルター断面の中心から容器の端までの最短距離を（Ｒ）、フィルター断面の中心から、隔壁流入口のうちフィルター断面の中心から最も遠い地点までの距離を（Ｔ）、隔壁流入口の中心から隔壁流入口端までの最短距離を（ｒ）としたときに、（Ｔ）／（Ｒ）の値が（ｒ）／（Ｒ）以上であり、かつ０．７９以下であることが好ましい。ここで、隔壁流入口が複数ある場合は、断面の中心から最も近接した隔壁流入口の中心から隔壁流入口端までの最短距離を（ｒ）とする。（Ｔ）／（Ｒ）の値の上限は０．７０以下であることがより好ましく、０．６４以下であることがさらに好ましい。（Ｔ）／（Ｒ）の値の上限が０．７９を超えると、隔壁流入口の端が容器の端に近い場所に位置し、或いは隔壁流入口が複数個ある場合においては、隔壁流入口が容器の端に局在するため、細胞含有液あるいは回収液が不織布を通過する際に偏流が起こりやすく、フィルター全体に行き渡らないために細胞捕捉効率が低下する傾向がある。
フィルター断面の形状は特に限定されず、例えば円形、長方形、正方形が挙げられる。フィルター断面の中心から容器の端までの最短距離（Ｒ）は、フィルター断面が円形の場合はフィルター断面の半径であり、フィルター断面が長方形の場合はフィルター断面の短辺の長さの半分であり、フィルター断面が正方形の場合はフィルター断面の一辺の半分の長さになる。
前記（Ｒ）は５ｍｍ以上２５ｍｍ以下であることが好ましく、７．５ｍｍ以上２２．５ｍｍ以下であることがより好ましい。（Ｒ）が５ｍｍ未満の場合は、同時に（Ｓ１）／（Ｓ２）の値が０．４４以下となる場合に隔壁流入口面積が小さくなりすぎて、細胞含有液あるいは回収液を通液する際、隔壁流入口付近に高圧が生じ、細胞にダメージを与える傾向がある。（Ｒ）が２５ｍｍを超えると、容器の体積が大きくなるために、細胞回収率が低下する傾向がある。
隔壁流入口の形状は特に限定されず、例えば円形、長方形、正方形、楕円形が挙げられる。隔壁流入口の中心から隔壁流入口端までの最短距離（ｒ）は、隔壁流入口が円形の場合はその半径、隔壁流入口が長方形の場合はその短辺の長さの半分、隔壁流入口が正方形の場合はその一辺の半分の長さになる。隔壁流入口の面積（Ｓ１）は前記フィルター断面積（Ｓ２）によっても限定されるので、（ｒ）は、０．４ｍｍ以上１６ｍｍ以下であることが好ましく、０．５ｍｍ以上１４ｍｍ以下であることがより好ましく、０．７ｍｍ以上１２ｍｍ以下であることがさらに好ましい。（ｒ）が０．４ｍｍ未満の場合は、隔壁流入口面積が小さくなりすぎて、細胞含有液あるいは回収液を通液する際、隔壁流入口付近に高圧が生じ、細胞にダメージを与える傾向がある。（ｒ）が１６ｍｍを超えると、隔壁流入口面積が大きすぎて、隔壁流入口の端が容器の端に近い場所に位置し、細胞含有液あるいは回収液が不織布を通過する際に偏流が起こりやすく、フィルター全体に行き渡らないために細胞捕捉効率が低下する傾向がある。
フィルター断面の中心から、隔壁流入口のうちフィルター断面の中心から最も遠い地点までの距離（Ｔ）は、（Ｒ）および（ｒ）の値により限定されるので、好適に使用可能な（Ｒ）および（ｒ）の値から計算すると、（Ｔ）は０．４ｍｍ以上１９ｍｍ以下であることが好ましく、０．７ｍｍ以上１７ｍｍ以下であることがより好ましい。
なお、本発明におけるフィルター断面の中心から容器の端までの最短距離（Ｒ）、フィルター断面の中心から隔壁流入口端までの最遠距離（Ｔ）、および隔壁流入口の中心から隔壁流入口端までの最短距離（ｒ）は、隔壁流入口がある面におけるフィルター断面の中心あるいは隔壁流入口がある面における隔壁流入口の中心からの距離を、定規やノギス等を使用して実測することができ、あるいはＣＡＤやイラストレータ等の描画ソフトを使用することにより測定することができる。
隔壁流入口の数は特に限定されない。細胞分離用フィルター内における隔壁の数も特に限定されないが、１５以下が好ましく、１０以下がより好ましく、５以下がさらに好ましい。隔壁の数が多く、多空間に仕切られているほど細胞捕捉効率が向上するが、回収後の細胞回収率は低下する傾向にあるため、細胞分離用フィルターの目的に応じて隔壁数を最適化することが好ましい。例えば顆粒球除去用途では、隔壁の数を増やすことで、顆粒球除去性能を向上させることができるが、隔壁数が１５を超えると単核球回収率が大きく低下する傾向があるため、隔壁数を１５以下に設定することが好ましい。
次に、本発明の有核細胞調製法は、下記の（ａ）および（ｂ）工程を含むことを特徴とする。
（ａ）細胞分離用フィルターの流入口から細胞含有液を導入し不織布と接触させる工程、および
（ｂ）細胞分離用フィルターから有核細胞分画を回収する工程
本発明における細胞含有液とは、末梢血、骨髄、臍帯血、月経血、組織抽出物等の細胞を含有する体液、あるいはこれらの体液を生理食塩液、カルシウムイオンやマグネシウムイオン等の２価カチオンを含むリンゲル液、細胞培養に使用するＲＰＭＩ、ＭＥＭ、ＩＭＥＭ、ＤＭＥＭ等の培地、ＰＢＳ等のリン酸緩衝液で希釈したもの、あるいは体液から細胞を粗分離したものであっても構わない。また動物種も、哺乳動物であれば特に限定されず、例えばヒト、ウシ、マウス、ラット、ブタ、サル、イヌ、ネコ等が挙げられる。細胞含有液が抗凝固剤を含有する場合も、抗凝固剤の種類は限定されず、例えばヘパリン、低分子ヘパリン、フサン（メチル酸ナファモスタット）、ＥＤＴＡ、ＡＣＤ（ａｃｉｄ－ｃｉｔｒａｔｅ－ｄｅｘｔｒｏｓｅ）液、ＣＰＤ（ｃｉｔｒａｔｅ－ｐｈｏｓｐｈａｔｅ－ｄｅｘｔｒｏｓｅ）液等のクエン酸抗凝固が挙げられる。使用する目的に応じて影響がなければ、細胞含有液の保存条件も限定されない。
本発明における有核細胞とは、核を含有する細胞であれば特に限定されず、例えば、単核球、白血球、顆粒球、好中球、好酸球、好塩基球、赤芽球、骨髄芽球、前骨髄球、骨髄球、後骨髄球、リンパ球、単球、マクロファージ、Ｔリンパ球、Ｂリンパ球、ＮＫ細胞、ＮＫ／Ｔ細胞、樹状細胞、多核巨細胞、上皮細胞、内皮細胞、間葉系細胞、間葉系幹細胞、造血幹細胞、ＥＳ細胞、ｉＰＳ細胞および幹細胞等が挙げられる。本発明における有核細胞分画とは、有核細胞を含む分画をいい、単核球分画とは、単核球を含む分画をいう。なお、本発明における幹細胞とは、体液中から分離され、多分化能および自己複製能を有する細胞をいう。ここで、顆粒球は核を含有する細胞であるが、患者に移植した場合に炎症等の副作用を引き起こし、治療効果を低減させると考えられているため、有核細胞分画における顆粒球の濃度は低いことが好ましい。
本発明における間葉系幹細胞は、分化誘導因子の添加により骨芽細胞、軟骨細胞、血管内皮細胞、心筋細胞、あるいは、脂肪、歯周組織構成細胞であるセメント芽細胞、歯周靭帯繊維芽細胞等へ分化する細胞である。また、造血幹細胞は、白血球、リンパ球、好中球、好酸球、好塩基球、顆粒球、単球、マクロファージ、赤血球、血小板、巨核球、樹状細胞等の血球系細胞を分化する細胞である。
本発明における細胞分離用フィルターから有核細胞分画を回収する工程は、フィルターを通過して得られる有核細胞を多く含有する分画を回収する工程であり、細胞分離用フィルターの性質に応じて、有核細胞分画を回収できればよい。
フィルター内に積層された不織布が、除去目的とする細胞や夾雑物と親和性を持つ場合は、フィルターの流入口から細胞含有液を導入し、不織布と細胞含有液を接触させる工程の後、流出口から有核細胞分画を回収することができる。フィルターの流出口から有核細胞分画を回収する際に、回収液をフィルターの流入口から導入して有核細胞分画を流出口から回収することが好ましい。除去目的の細胞としては、例えば顆粒球、単球、血小板、Ｂリンパ球、特定のサブクラスを有するリンパ球等が挙げられる。具体的には、顆粒球をフィルターに捕捉して除去し、単核球含有分画を回収する方法が挙げられる。
フィルター内に積層された不織布が、回収目的とする有核細胞と親和性を持つ場合は、フィルターの流入口から細胞含有液を導入して、除去目的とする細胞や夾雑物を流出口より流出させた後、流入口から有核細胞分画を回収することができる。フィルターの流入口から有核細胞分画を回収する際に、回収液をフィルターの流出口から導入し有核細胞分画を流入口から回収することが好ましい。除去目的の細胞としては、例えば赤血球、Ｔリンパ球、特定のサブクラスを有するリンパ球等が挙げられる。具体的には、不要な細胞を通過させ、フィルターに捕捉された幹細胞を回収する方法が挙げられる。
また、回収液をフィルターの流出口から導入して有核細胞分画を回収する場合には、回収の前に、洗浄液をフィルターの流入口から導入することで、より効率的に、除去目的とする細胞や夾雑物を流出口より流出させることができる。洗浄液は除去目的とする細胞や夾雑物のみを洗い流すことができれば特に限定されず、例えば生理食塩水、リンゲル液、細胞培養に用いる培地、リン酸緩衝液等の一般的な緩衝液、あるいはこれら溶液に血清やタンパクを添加した溶液が挙げられる。
さらに、フィルターの流入口から細胞含有液あるいは洗浄液を導入して、除去目的とする細胞や夾雑物を流出口より流出させる工程に次いで、隔壁を取り除く、あるいは隔壁流入口面積を大きくする操作を行った後で、有核細胞分画を回収することで、有核細胞の回収率が向上することが期待できる。
回収液はフィルター内に捕捉された有核細胞、あるいはフィルター内に残留する単核球を回収する目的で好適に使用される。回収液は特に限定されず、例えば生理食塩水の他、マグネシウムイオンやカルシウムイオン等の２価カチオン、糖類、血清、蛋白質を含む液体、緩衝液、培地、血漿やそれらを含む液体等が挙げられる。フィルターに捕捉された有核細胞の回収率を上げるために、回収液の粘張度を上げても良い。粘張度を上げるために回収液に添加する物質は特に限定されず、例えばアルブミン、フィブリノーゲン、グロブリン、デキストラン、ヒドロキシエチルスターチ、ヒドロキシルセルロース、コラーゲン、ヒアルロン酸、ゼラチン等が挙げられる。
細胞含有液および回収液を通液する速度およびその方法は特に制限されず、例えば重力を利用して通液する方法、ローラークレンメやシリンジポンプを用いて流速を一定にしながら通液する方法、高い圧力をかけて一気に通液する方法が挙げられる。フィルター内に捕捉された有核細胞を回収する目的には、有核細胞回収効率の点から、回収液を高い圧力をかけて一気に通液する方法が好ましい。また、顆粒球をフィルター内に捕捉したまま、フィルター内に残留する単核球を回収する目的には、顆粒球除去効率の点から、シリンジポンプを用いて流速を一定にして回収液を通液する方法が好ましい。シリンジポンプを用いて２．５ｍＬ／ｍｉｎ以下の流速で通液する方法が、より多くの顆粒球が不織布に捕捉されたまま、単核球分画を回収することができる点でより好ましい。
本発明の細胞分離用フィルターを用いて閉鎖的に細胞を分離する回路の例を図４に示す。当該回路を用いる場合は、通常、フィルターの流入口側に細胞含有液を収容する手段が配置され、流出口側にフィルターを通過した細胞含有液を収容する手段が配置される。また、フィルターの流入口側、或いは流出口側に、回収液を収容する手段、或いはフィルターを通過した回収液を収容する手段が配置される。なお、回収液を流す方向に応じて、回収液を収容する手段、或いはフィルターを通過した回収液を収容する手段を、それぞれ流入口または流出口側のいずれに配置するか決定することができる。
また、細胞分離用フィルター内のエアーを除去する目的、細胞捕捉効率を向上する目的、および血液流路を確保する目的で、プライミングする工程を実施する場合は、通常、フィルターの流入口側、或いは流出口側に、プライミング溶液を収容する手段、或いはフィルターを通過したプライミング溶液を収容する手段が配置される。なお、プライミング溶液を流す方向に応じて、プライミング溶液を収容する手段、或いはフィルターを通過したプライミング溶液を収容する手段を、それぞれ流入口または流出口側のいずれに配置するか決定することができる。プライミング溶液を収容する手段、およびフィルターを通過したプライミング溶液を収容する手段は、細胞含有液を収容する手段とは別個に回路を設けて配置しても良いし、これらと差し替えて使用することも可能である。これらの各手段は、有核細胞調製方法の各工程に応じて各活栓等の開閉によりフィルターと接続される。回路は液の流れを制御するために、三方活栓、ローラークレンメ、クランプ等を備えていることが好ましい。
本発明の有核細胞調製法による単核球回収率比は、単核球回収率（Ｍ）を顆粒球回収率（Ｇ）で割ることにより算出できる。ここで、単核球回収率（Ｍ）は、原料の細胞含有液から有核細胞分画へと回収された単核球の回収率を指す。顆粒球回収率（Ｇ）は、原料の細胞含有液から有核細胞分画へと回収された顆粒球の回収率を指す。単核球回収率比の値が高いほど顆粒球除去性能が高いことを示す。本発明の細胞分離用フィルターを用いることにより、顆粒球の不織布への捕捉効率が向上し、顆粒球の混入を低下したまま効率的に単核球分画を得ることが可能になることから、細胞含有液から顆粒球が選択的に除去されることが好ましい。単核球回収率比は５．３以上であることが好ましく、８．３以上であることがより好ましく、２５．２以上であることがさらに好ましい。単核球回収率比が５．３未満の場合は、顆粒球が従来の細胞分離用フィルターと同程度混入しており、患者に投与した場合に副作用をもたらす傾向がある。単核球回収率比の上限は、細胞分離用フィルター構造だけではなく、不織布の性能も影響することから特に制限されないが、１００以下であることが好ましい。
以下、実施例において本発明に関して詳細に述べるが、本発明は以下の実施例のみに限定されるものではない。
（実施例１）
高さ（内寸）１６ｍｍ、半径（Ｒ）９ｍｍ、フィルター断面積（Ｓ２）２５４ｍｍ２であって、直径３ｍｍの流入口（隔壁流入口の中心から隔壁流入口端までの最短距離（ｒ）１．５ｍｍの流入口）が中央に１箇所開いた隔壁により２室に均等に仕切られた容器（隔壁流入口面積（Ｓ１）７．１ｍｍ２、断面の中心から隔壁流入口最遠部までの距離（Ｔ）が（ｒ）と同じ１．５ｍｍの容器）に、ナイロン６製不織布（通気度４０ｍＬ／ｃｍ２／ｓｅｃ、厚さ０．３０ｍｍ、繊維径１６．０μｍ）を各室１６枚ずつ積層状態で充填し、細胞分離用フィルターを作製した。
次に５０ｍＬシリンジにプライミング溶液として生理食塩水４５ｍＬを入れ、メスロックコネクターを介してシリンジとフィルターの流入口を接続し、ゆっくりシリンジのブランジャーを押して生理食塩水４５ｍＬを通液した。
続いて、ブタ骨髄液１０ｍＬ（５０ＩＵ／ｍＬヘパリンナトリウムで抗凝固し、７０μｍのセルストレーナーに通して凝集物を除去したブタ骨髄液）を２０ｍＬシリンジに入れ、ポアロンチューブを介してシリンジとフィルター流入口を接続し、シリンジポンプに取り付けた。ブタ骨髄液１０ｍＬを流速０．６２５ｍＬ／ｍｉｎで１６分かけてフィルター内に導入し、出口側より導出した有核細胞１０ｍＬを回収容器に収容した。
最後に、２０ｍＬシリンジに０．１％硫酸マグネシウムおよび０．１％塩化カルシウムを添加した生理食塩水（回収液）１０ｍＬを装填し、ポアロンチューブを介してシリンジとフィルター流入口を接続し、シリンジポンプを用いて流速０．６２５ｍＬ／ｍｉｎで１６分かけてフィルター内に導入し、流出口より導出した有核細胞１０ｍＬを回収容器に収容した。プライミング溶液の通液から、回収液の通液による有核細胞の回収までに要した時間は４０分間であった。
回収された有核細胞２０ｍＬ、および処理前骨髄液の白血球濃度を血球カウンター（シスメックス、Ｋ－４５００）により測定した。また、処理前骨髄液、回収後有核細胞をＦＡＣＳ　ＰｈａｒｍＬｙｓｅで溶血後、フローサイトメーター（ＢＤ、ＦＡＣＳＣａｎｔｏ）により顆粒球および単核球の存在比率を測定した。得られた白血球濃度と顆粒球および単核球の存在比率から、総単核球数を以下の式により求めた。
（処理前骨髄液１０ｍＬ中の総単核球数）＝（処理前骨髄液の白血球濃度）×（処理前骨髄液における白血球中の単核球存在比率）×１０［ｍＬ］
（回収後有核細胞２０ｍＬ中の総単核球数）＝（回収後有核細胞の白血球濃度）×（回収後有核細胞における白血球中の単核球存在比率）×２０［ｍＬ］
これら処理前後の総単核球数より、単核球回収率［％］を（回収後有核細胞中の単核球数）／（処理前骨髄液中の単核球数）×１００として算出した。その結果、単核球回収率は４８％であった。また、回収後有核細胞中の総顆粒球数についても同様に算出し、顆粒球回収率［％］を（回収後有核細胞中の顆粒球数）／（処理前骨髄液の顆粒球数）×１００として算出した。その結果、顆粒球回収率は２％であった。さらに、単核球回収率および顆粒球回収率より、単核球回収率比を、（単核球回収率）／（顆粒球回収率）として算出した。その結果、単核球回収率比は２５．２であった。
（実施例２）
高さ（内寸）１４ｍｍ、半径（Ｒ）９ｍｍ、フィルター断面積（Ｓ２）２５４ｍｍ２であって、一辺が２ｍｍの正方形に開けられた流入口（ｒ＝１ｍｍ）が中央に１箇所設置された隔壁により２室に均等に仕切られた容器（Ｓ１＝４ｍｍ２、Ｔ＝１．４ｍｍ）を用いて、実施例１と同様の処理を行った（ただしブタｎ＝１個体）。プライミング溶液の通液から、回収液の通液による有核細胞の回収までに要した時間は４０分間であった。得られた有核細胞２０ｍＬの単核球回収率、顆粒球回収率、単核球回収率比を算出し、結果を表１に示した。
（実施例３）
高さ（内寸）１４ｍｍ、半径（Ｒ）９ｍｍ、フィルター断面積（Ｓ２）２５４ｍｍ２であって、一辺が６ｍｍの正方形に開けられた隔壁流入口（ｒ＝３ｍｍ）が中央に１箇所設置された隔壁により２室に均等に仕切られた容器（Ｓ１＝３６ｍｍ２、Ｔ＝４．２ｍｍ）を用いて、実施例１と同様の処理を行った（ただしブタｎ＝１個体）。プライミング溶液の通液から、回収液の通液による有核細胞の回収までに要した時間は４０分間であった。得られた有核細胞２０ｍＬの単核球回収率、顆粒球回収率、単核球回収率比を算出し、結果を表１に示した。
（実施例４）
高さ（内寸）１４ｍｍ、半径（Ｒ）９ｍｍ、フィルター断面積（Ｓ２）２５４ｍｍ２であって、一辺が８ｍｍの正方形に開けられた隔壁流入口（ｒ＝４ｍｍ）が中央に１箇所設置された隔壁により２室に均等に仕切られた容器（Ｓ１＝６４ｍｍ２、Ｔ＝５．７ｍｍ）を用いて、実施例１と同様の処理を行った（ただしブタｎ＝１個体）。プライミング溶液の通液から、回収液の通液による有核細胞の回収までに要した時間は４０分間であった。得られた有核細胞２０ｍＬの単核球回収率、顆粒球回収率、単核球回収率比を算出し、結果を表１に示した。
（実施例５）
高さ（内寸）１４ｍｍ、半径（Ｒ）９ｍｍ、フィルター断面積（Ｓ２）２５４ｍｍ２であって、一辺が２ｍｍの正方形に開けられた隔壁流入口（ｒ＝１ｍｍ）が中心から半径５．８ｍｍ以内の場所に４箇所設置された隔壁により２室に均等に仕切られた容器（Ｓ１＝１６ｍｍ２、Ｔ＝５．８ｍｍ）を用いて、実施例１と同様の処理を行った（ただしブタｎ＝１個体）。プライミング溶液の通液から、回収液の通液による有核細胞の回収までに要した時間は４０分間であった。得られた有核細胞２０ｍＬの単核球回収率、顆粒球回収率、単核球回収率比を算出し、結果を表１に示した。
（比較例１）
高さ（内寸）１６ｍｍ、直径（内径）１８ｍｍ（Ｒ＝９ｍｍ、Ｓ２＝２５４ｍｍ２）であって、隔壁がない容器を用いて、実施例１と同様の処理を行った。プライミング溶液の通液から、回収液の通液による有核細胞の回収までに要した時間は４０分間であった。得られた有核細胞２０ｍＬの単核球回収率、顆粒球回収率、単核球回収率比を算出し、結果を表１に示した。
（比較例２）フィコールパック分画法による単核球の調製方法
ヘパリン抗凝固の新鮮ブタ骨髄液２ｍＬを、生理食塩液２ｍＬと混合して希釈した。次に、容量１５ｍＬの遠沈管に、Ｆｉｃｏｌｌ　Ｐａｑｕｅ－Ｐｌｕｓ（ＧＥヘルスケア）溶液を３ｍＬ添加し、該Ｆｉｃｏｌｌ溶液の上層に、上述の通り希釈した骨髄液を重層した。遠心分離機にて、回転数４００ｇで３０分間遠心分離することにより、得られた単核球分画層を回収した。Ｆｉｃｏｌｌ溶液を除去する目的で、回収した単核球分画層に生理食塩液を１０ｍＬ添加し、遠心分離機にて、回転数４５０ｇで１０分間遠心分離した。上清を除いた後、再度生理食塩液を１０ｍＬ添加し、回転数４５０ｇで５分間遠心分離した。再び上清を除き、生理食塩水を液量が１ｍＬになるように加えた。実施例１と同様の方法で回収液の単核球回収率、顆粒球回収率、および単核球回収率比を算出し、結果を表１に示した。なお、該単核球回収率および顆粒球回収率は実施例２とほぼ同じであるが、遠心操作等に時間を要すること、操作が煩雑であること、作業者間でのバラツキが大きいこと、開放系での操作が必要である等の問題がある。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000001
表１に示すように、フィルター内に不織布を区分する隔壁を設置することによって、不織布が同一の設計にもかかわらず、有核細胞の回収率が向上し、かつ不要な細胞の混入率が減少することが明らかとなった。また、比較例２に示すように遠心操作を用いて細胞を回収する場合よりも、本発明は半分の時間しか要さず、回収率および不要な細胞の混入率は同等以上であることから、閉鎖系でかつ簡便に有核細胞を効率的に回収できることを確認した。
１０　細胞分離用フィルター
１１　容器
１２　隔壁
１３　流入口
１４　隔壁流入口
１５　流出口
１６　不織布
１７　フィルター断面の中心
１８　容器の端
１９　隔壁流入口のうちフィルター断面の中心から最も遠い地点
２０　隔壁流入口の中心
３１　チャンバー
３２　細胞分離用フィルターを通過したプライミング溶液を収容する手段
３４　細胞含有液を収容するための手段
３５　回収液を収容するための手段
３６　プライミング溶液を収容する手段
３７　細胞分離用フィルターを通過した細胞含有液および回収液を収容する手段
３８～４０　三方活栓
４１～４９　回路

Claims (10)

  1. 流入口と流出口を有する容器、
    前記容器内に積層された不織布、および
    前記不織布を区分する、隔壁流入口を有する隔壁からなり、
    前記隔壁により２室以上の空間に仕切られている
    ことを特徴とする細胞分離用フィルター。
  2. 隔壁流入口の面積を（Ｓ１）、フィルター断面積を（Ｓ２）としたとき、（Ｓ１）／（Ｓ２）の値が０．００６以上０．４４以下である、請求項１に記載の細胞分離用フィルター。
  3. （Ｓ１）が１．２～６２５ｍｍ２であり、かつ／または（Ｓ２）が７５～２５００ｍｍ２である、請求項２に記載の細胞分離用フィルター。
  4. フィルター断面の中心から容器の端までの最短距離を（Ｒ）、フィルター断面の中心から隔壁流入口端までの最遠距離を（Ｔ）、隔壁流入口の中心から隔壁流入口端までの最短距離を（ｒ）としたとき、（Ｔ）／（Ｒ）の値が（ｒ）／（Ｒ）以上であり、かつ０．７９以下である、請求項１～３のいずれか１項に記載の細胞分離用フィルター。
  5. （ａ）請求項１～４のいずれか１項に記載の細胞分離用フィルターの流入口から細胞含有液を導入し不織布と接触させる工程、および
    （ｂ）前記細胞分離用フィルターから有核細胞分画を回収する工程、
    を含む有核細胞調製法。
  6. 前記工程（ｂ）において、回収液をフィルターの流入口から導入し有核細胞分画を回収する、請求項５に記載の有核細胞調製法。
  7. 前記工程（ｂ）において、回収液をフィルターの流出口から導入し有核細胞分画を回収する、請求項５に記載の有核細胞調製法。
  8. 有核細胞分画が単核球分画である、請求項５～７のいずれか１項に記載の有核細胞調製法。
  9. 細胞含有液から顆粒球が選択的に除去される、請求項５～８のいずれか１項に記載の有核細胞調製法。
  10. 単核球の回収率を（Ｍ）、顆粒球の回収率を（Ｇ）としたときに、（Ｍ）／（Ｇ）の値が５．３以上である、請求項９に記載の有核細胞調製法。
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