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WO2012153773A1 - 可溶性ｌｒ１１の免疫学的測定方法 - Google Patents

可溶性ｌｒ１１の免疫学的測定方法 Download PDF

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WO2012153773A1
WO2012153773A1 PCT/JP2012/061902 JP2012061902W WO2012153773A1 WO 2012153773 A1 WO2012153773 A1 WO 2012153773A1 JP 2012061902 W JP2012061902 W JP 2012061902W WO 2012153773 A1 WO2012153773 A1 WO 2012153773A1
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WO
WIPO (PCT)
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soluble
sample
group
carbon atoms
antibody
Prior art date
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Ceased
Application number
PCT/JP2012/061902
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English (en)
French (fr)
Inventor
耕平 田久保
海老沼　宏幸
深町　勇
英明 武城
齋藤　康
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Sekisui Medical Co Ltd
Original Assignee
Sekisui Medical Co Ltd
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
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Publication date
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Priority to KR1020137029286A priority patent/KR101894417B1/ko
Priority to CN201280022119.8A priority patent/CN103502813B/zh
Priority to JP2012532169A priority patent/JP5101758B1/ja
Priority to EP12782440.7A priority patent/EP2708893B1/en
Priority to CA2835068A priority patent/CA2835068C/en
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    • G01N33/53—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
    • G01N33/543—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor with an insoluble carrier for immobilising immunochemicals
    • G01N33/54393—Improving reaction conditions or stability, e.g. by coating or irradiation of surface, by reduction of non-specific binding, by promotion of specific binding
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Definitions

  • the present invention relates to an immunological measurement method for soluble LR11 in a biological sample.
  • LDL receptor relative with 11 ligand-binding repeats is an LDL receptor-like protein having a characteristic structure of the LDL receptor family and having a molecular weight of about 250 kD (Patent Document 1, Non-Patent Document 1), and is membrane-bound. In addition, it has been shown that soluble LR11 cleaved by protease exists (Non-patent Document 4). LR11 is hardly expressed in normal vascular wall cells, but has been reported to be specifically expressed in thickened intimal smooth muscle cells (Non-patent Document 2).
  • Non-patent Document 3 when the expression level of LR11 increases with the growth of cultured smooth muscle cells and soluble LR11 is secreted into the culture medium, or when the LR11 gene is deficient in developmental engineering in cuff disorder model mice, smooth muscle It has been reported that the intimal thickening caused by cell migration and proliferation is inhibited (Non-patent Document 3). Furthermore, the present inventors have found that the concentration of soluble LR11 in the blood of patients with arteriosclerotic diseases is significantly higher than that in healthy individuals, and the soluble LR11 present in blood is used as a new arteriosclerotic disease. It was reported that it can be used as a marker (Non-patent Document 5, Patent Document 2).
  • Soluble LR11 was measured by separating soluble LR11 from a sample using an insoluble carrier to which a chaperone molecule RAP (receptor associated protein) having affinity for LR11 was bound, followed by SDS-PAGE and Western blotting.
  • the method of performing and detecting by immunostaining with an anti-LR11 antibody is known (Non-patent Documents 5 and 6), but the process is complicated and complicated, including the step of separating soluble LR11 from a sample. When considering application, it is not a practical method.
  • the present inventors tried to establish an immunological measurement method using an anti-soluble LR11 antibody as a simple and practical method for measuring soluble LR11, but when a biological sample such as serum was used as a sample It was found that soluble LR11 cannot be accurately quantified due to the influence of an unidentified measurement interfering substance (hereinafter sometimes simply referred to as “interfering substance”) present in the sample.
  • interfering substance an unidentified measurement interfering substance
  • the present inventors have studied various means for avoiding the influence of interfering substances on the immunological measurement method.
  • a biological sample such as serum
  • a specific surfactant such as N-acyl-N-methylglucamine
  • measurement is performed by an immunological measurement method using the processed sample.
  • the inventors have found that soluble LR11 in a sample can be easily and accurately quantified while avoiding the influence of interfering substances, and previously filed a patent application (Patent Document 3).
  • a human serum sample treated with a conventional method described in Patent Document 3 (hereinafter sometimes simply referred to as “conventional method”), for example, N-acyl-N-methylglucamine, is treated with two types of anti-soluble LR11.
  • the reaction between the immobilized anti-soluble LR11 antibody and soluble LR11 (hereinafter sometimes referred to as “primary reaction”) requires room temperature and overnight. There was a problem of straddling.
  • the inventors of the present invention tried to shorten the time of the primary reaction in the conventional method, but not only the absorbance of each sample measured with the shortening of the reaction time of the primary reaction was decreased, but the reaction time was reduced in some samples.
  • an object of the present invention is to provide a more practical immunological measurement method for soluble LR11 in a biological sample, in which the measurement time is shortened without affecting the relative relationship between the samples measured by the conventional method. Is to provide.
  • the inventors of the present invention conducted an immunological measurement using a sample treated with a sulfobetaine-type or amidosulfobetaine-type amphoteric surfactant. -In the same way as in the case of acyl-N-methylglucamine, etc., while avoiding the influence of interfering substances in the sample, even when the reaction time of the primary reaction is reduced to, for example, room temperature and 1 hour, The present inventors have found that measurement results depending on the soluble LR11 concentration can be obtained without affecting the relative relationship between samples measured by the method.
  • the present invention is an immunological measurement method for soluble LR11 in a biological sample, wherein the sample is treated with one or more selected from sulfobetaine-type amphoteric surfactants and amide sulfobetaine-type amphoteric surfactants.
  • the present invention provides a method for immunologically measuring soluble LR11.
  • the present invention also provides a soluble LR11 immunoassay reagent comprising an anti-soluble LR11 antibody and at least one selected from a sulfobetaine-type amphoteric surfactant and an amide sulfobetaine-type amphoteric surfactant. Is to provide.
  • the reaction time between the anti-soluble LR11 antibody and the soluble LR11 (for example, the reaction between the solid-phased anti-soluble LR11 antibody and the soluble LR11),
  • the concentration of soluble LR11 present in a biological sample for example, a sample such as blood, can be reduced in a shorter time, easily and with high sensitivity after being significantly shortened from one night described in Patent Document 3 to one hour. Thus, it can be measured quantitatively.
  • the measurement method of the present invention is an immunological measurement method for soluble LR11 in a biological sample.
  • organisms include mammals including humans, such as humans, monkeys, horses, cows, pigs, rabbits, rats, guinea pigs, mice, and the like.
  • Samples include, for example, body fluids such as blood, plasma, serum, spinal fluid and urine; tissues such as blood vessels, organs and muscles; cells isolated from each tissue, cells such as leukocytes, and the like. Examples include solutions containing components (diluted sample solution, crushed solution, solution, extract, etc.).
  • the immunological measurement method in the present invention is not particularly limited as long as it is a method for measuring soluble LR11 using an antigen-antibody reaction, but an immune complex is formed using at least two antibodies having different antigen recognition sites.
  • a measurement method including a step is preferred.
  • a measurement method including a step of forming an immune complex using at least two kinds of antibodies having different antigen recognition sites a measurement method described later, for example, sandwich ELISA, immunoturbidimetry (TIA or LTIA (latex turbidimetry) Immunoassay)), immunochromatography and the like.
  • the anti-soluble LR11 antibody may be either a monoclonal antibody or a polyclonal antibody as long as it is an antibody that reacts with soluble LR11 in a biological sample, for example, soluble LR11 purified from mammalian serum, but a monoclonal antibody is preferably used. It is done.
  • the antibody can be prepared by a known method.
  • the term “anti-soluble LR11 antibody” is not particularly limited as long as it is an antibody that reacts with soluble LR11 in a biological sample as described above. For example, a membrane-bound LR11 antibody exists on the cell surface. Antibodies that react with LR11, antibodies that are simply described as “anti-LR11 antibodies” in the literature, and the like can also be used.
  • the animal to be immunized when preparing a polyclonal antibody for example, mouse, rat, hamster, rabbit, goat, sheep, chicken and the like can be used.
  • the anti-soluble LR11 antiserum can be obtained from blood collected after one or more administrations of an antigen subcutaneously, intradermally, or abdominally in an animal. In immunization, it is more preferable to immunize by administering the antigen as a mixture with a replacement fluid (adjuvant) having an immunostimulatory effect.
  • Monoclonal antibodies are known monoclonal antibody production methods such as Kamon Nagamune and Hiroko Terada, “Monoclonal Antibody” Yodogawa Shoten (1990), James W., et al. , Golding, “Monoclonal Antibody”, 3rd edition, Academic Press (1996). Preparation of monoclonal antibodies by DNA immunization is described in, for example, Nature 1992 Mar 12; 356, p152-154 and J. Am. It can be implemented with reference to Immunol Methods Mar 1; 249, p147-154.
  • LR11 protein or a fragment (peptide) of the protein is used as an antigen for antibody production.
  • the LR11 protein can be obtained from a culture supernatant or the like of cells (smooth muscle cells, hematopoietic tumor cells, etc.) that secrete blood, urine, or soluble LR11 to the outside of the cell, etc., if necessary.
  • hematopoietic tumor cells expressing LR11 on the cell surface can be used as antigens (WO2012 / 008595).
  • the peptide can be obtained by digesting the protein with a protease and purifying it, but a synthetic peptide can also be used.
  • the peptide etc. which have the amino acid sequence of patent document 3 are mentioned, for example.
  • the amino acid sequence of the peptide may be one in which one or several amino acids are deleted, substituted or added.
  • a vector incorporating LR11 protein or cDNA encoding a fragment (peptide) of the protein is administered to the immunized animal, and the antigen is expressed in the body of the animal.
  • the peptide include peptides having the amino acid sequence described in Patent Document 3, and the amino acid sequence of the peptide may be one in which one or several amino acids are deleted, substituted or added. .
  • a gene encoding a fragment (peptide) of the LR11 protein is inserted.
  • Vectors can also be used.
  • an animal to be immunized (mouse or mouse) using any one of various conventionally known gene transfer methods (for example, intramuscular injection, electroporation, gene gun, etc.) by mixing the above vectors alone or in combination.
  • the method can be performed by injecting subcutaneously into a rat or the like and incorporating it into cells derived from the immunized animal.
  • the method described in Patent Document 3 can be referred to, and it is preferable to use this method.
  • these anti-soluble LR11 monoclonal antibodies include A2-2-3 antibody obtained by immunizing mice with the synthetic peptide described in Patent Document 3, mouse monoclonal antibodies M3 and M5 obtained by DNA immunization, DNA Examples include rat monoclonal antibodies R14 and R23 obtained by immunization.
  • immunological measurement is performed using a sample treated with at least one of a sulfobetaine type and an amidosulfobetaine type amphoteric surfactant.
  • a sample treated with at least one of a sulfobetaine type and an amidosulfobetaine type amphoteric surfactant By this treatment, it is possible to avoid the influence of substances that interfere with the measurement of soluble LR11 in the sample. Further, even when the reaction time of the primary reaction is reduced to, for example, room temperature and 1 hour, the conventional method The measurement result depending on the soluble LR11 concentration can be obtained without affecting the relative relationship between the samples measured in (1).
  • the sulfobetaine type and amide sulfobetaine type amphoteric surfactants used in the present invention are represented by the following general formulas (1) and (2), respectively.
  • R 1 represents an alkyl group or alkenyl group having 6 to 18 carbon atoms
  • R 2 CO represents an acyl group having 6 to 18 carbon atoms or an acyl group derived from cholic acid
  • A represents an alkyl group having 2 to 5 carbon atoms
  • B represents an alkylene group having 1 to 5 carbon atoms
  • Examples of the alkyl group or alkenyl group having 6 to 18 carbon atoms represented by R 1 include a linear or branched alkyl group or alkenyl group. Among these, a linear or branched alkyl group is preferable, and a linear chain is preferable. The alkyl group is more preferable.
  • the alkyl group or alkenyl group preferably has 6 to 14 carbon atoms, more preferably 8 to 14 carbon atoms, and particularly preferably 10 to 14 carbon atoms.
  • Examples of the acyl group having 6 to 18 carbon atoms represented by R 2 CO include aliphatic acyl groups having 6 to 18 carbon atoms, such as hexanoyl group, octanoyl group, decanoyl group, dodecanoyl group, tetradecanoyl group, hexadecanoyl group, and hexadecanoyl group.
  • a noyl group, an octadecanoyl group, etc. are mentioned.
  • R 2 CO is preferably an acyl group derived from cholic acid.
  • Examples of the alkylene group having 2 to 5 carbon atoms represented by A include an ethylene group, a trimethylene group, a tetramethylene group, and a pentamethylene group, and an ethylene group or a trimethylene group is more preferable.
  • Examples of the hydroxyalkylene group having 2 to 5 carbon atoms represented by A include a hydroxytrimethylene group represented by —CH 2 CH (OH) CH 2 —.
  • Examples of the alkylene group having 1 to 5 carbon atoms represented by B include a methylene group, an ethylene group, a trimethylene group, a tetramethylene group, and a pentamethylene group.
  • the above-mentioned specific amphoteric surfactant exists in the sample before or at the time of immunoassay. It is preferable to do so, and it is preferable to mix the sample with the sample before immunoassay.
  • a method of mixing and coexisting with the sample for example, a method in which the amphoteric surfactant of the present invention is contained in a sample diluent and mixed and coexisting when the sample is diluted, a reagent containing an anti-soluble LR11 antibody
  • a reagent containing an anti-soluble LR11 antibody In which the amphoteric surfactant of the present invention is contained and mixed and coexisted in the reaction of the soluble LR11 and the anti-soluble LR11 antibody in the sample (specifically, as an enzyme label in a sandwich ELISA using a microplate)
  • an undiluted or pre-diluted sample is added), and a member to which a sample such as a sample pad used in an immunochromatographic method is placed
  • a method of mixing and coexisting when the sample passes through the member can be exemplified.
  • sample diluent refers to a test solution for adjusting (diluting) the soluble LR11 concentration in a biological sample directly or indirectly to a concentration or content suitable for an immune reaction. Any name may be used, such as “pretreatment liquid” or “first reagent (liquid)”.
  • the concentration used of the amphoteric surfactant of the present invention is the characteristics of the measurement method used, the type of amphoteric surfactant used, the soluble LR11 concentration in the sample and the amphoteric interface at the time when the amphoteric surfactant of the present invention was mixed and coexisted.
  • the concentration may be appropriately determined in consideration of the concentration ratio of the activator.
  • the concentration at the time of mixing and coexisting with a sample containing soluble LR11 is preferably 0.001 to 10% by mass, and 0.001 to 5% by mass is more preferable, and 0.05 to 5% by mass is more preferable.
  • the measurement method used is a sandwich ELISA, it is preferably 0.1 to 5% by mass, more preferably 0.5 to 5% by mass.
  • the measurement method used is LTIA, 0.001 to 3% by mass is further preferable, and 0.05 to 2% by mass is more preferable. It goes without saying that a person skilled in the art can devise the use at a concentration outside the exemplified range using the above description as an index.
  • the temperature at which the biological organism-derived sample is treated with the amphoteric surfactant of the present invention is preferably 5 to 40 ° C., more preferably 10 to 30 ° C.
  • the time for treating the biological sample with the amphoteric surfactant of the present invention can be appropriately set in consideration of the conditions such as the type and concentration of the amphoteric surfactant used and the temperature.
  • the reaction time of the soluble LR11 and the anti-soluble LR11 antibody in the biological sample is determined by a conventional method (for example, N-acyl-N-methylglucamine). Compared with the method described in Patent Document 3 to be used), the time is shorter, and according to the method of the present invention, the measurement time of soluble LR11 in a biological sample can be greatly shortened.
  • the sample can be used, for example, diluted 1 (stock solution) to 50 times.
  • the dilution may be performed with a sample diluent containing the amphoteric surfactant of the present invention, or with a buffer solution not containing the amphoteric surfactant of the present invention, but the amphoteric surfactant of the present invention may be used. It is convenient to carry out with the sample diluent contained.
  • a biological sample is diluted with a sample diluent and measured, it is preferably diluted 4 to 30 times.
  • the composition of the sample diluent is not particularly limited as long as it is a composition that is usually used in an immunological measurement method as long as the effects of the present invention are not impaired.
  • a buffer solution such as a GOOD buffer solution, a phosphate buffer solution, a glycine buffer solution, a carbonate buffer solution or a Tris buffer solution (pH is also a range used in a usual immunological measurement method)
  • a salt such as NaCl, BSA Protein components, surfactants other than the amphoteric surfactant of the present invention, commercially available non-specific reaction preventing components, and the like can be used.
  • An immunological measurement using an anti-soluble LR11 antibody may be performed by a usual means using a sample containing the specific amphoteric surfactant.
  • the immunological measurement method is not particularly limited as long as it is a method for measuring soluble LR11 using an antigen-antibody reaction, but an immune complex using at least two kinds of antibodies having different antigen recognition sites.
  • a measurement method including a step of forming is preferable.
  • a measuring method including a step of forming an immune complex using at least two kinds of antibodies having different antigen recognition sites for example, sandwich ELISA (enzyme-labeled immunosorbent assay), immunoturbidimetric method (TIA or LTIA) ), Immunochromatographic methods and the like.
  • the immunological measurement method of the present invention may be a heterogeneous system or a homogeneous system.
  • the sample treated with the amphoteric surfactant of the present invention is designed so that an antigen-antibody reaction is carried out with the anti-soluble LR11 antibody at least once.
  • the antigen-antibody reaction may be described separately as “primary reaction” and “secondary reaction”, but it is described for the explanation of the embodiment, such as a plurality of reaction steps. And is not intended to limit the invention.
  • the detection means in each measurement method is not particularly limited, and if it is a sandwich ELISA, a chromogenic substrate / coloring agent, a luminescent substrate / luminescent agent, an enzyme immunoassay using a fluorescent substrate / fluorescent agent, luminescence (chemiluminescence, biological) Luminescence) immunoassay, fluorescent immunoassay, etc., and immunoturbidimetric methods include methods of detecting turbidity resulting from immune complex formation by absorbance or scattered light, and immunochromatographic methods include colloidal metal particles And an optical detection method using colored latex particles.
  • the present invention is applicable to immunostaining (Western blotting), competitive immunoassay, etc., as long as immunological measurement using anti-soluble LR11 antibody is performed using a sample treated with the specific amphoteric surfactant. Those skilled in the art will readily understand that this is possible.
  • the soluble LR11 that reacts with the anti-soluble LR11 antibody is quantitatively or semi-quantitatively evaluated, it is preferably compared with the reference LR11.
  • the reference LR11 include serum having a known soluble LR11 concentration, soluble LR11 collected from cultured cells or culture supernatants of smooth muscle cells and neuroblast cell lines, soluble LR11 derived from urine (WO2012 / 008595), and recombinant LR11.
  • the term “quantitative” in the present invention includes both the so-called “quantitative” and “semi-quantitative” concepts, and further, the detection sensitivity is set so as to be a criterion for morbidity in clinical diagnosis. When it is set, the concept of so-called “qualitative” for detecting the presence or absence of soluble LR11 is also included.
  • sandwich ELISA will be described as an example.
  • one kind of anti-soluble LR11 monoclonal antibody is immobilized on an insoluble carrier in an appropriate buffer to form an immobilized antibody, and the second antibody is used as the second antibody.
  • the anti-soluble LR11 monoclonal antibody having a different recognition site from the anti-soluble LR11 monoclonal antibody immobilized on an insoluble carrier is labeled with an enzyme, reacted with a sample, and the activity of the enzyme labeled with the second antibody is measured.
  • the soluble LR11 in the sample can be measured.
  • a biotin-labeled anti-soluble LR11 monoclonal antibody is used as the second antibody. After reacting with the sample, the enzyme-labeled avidin is further reacted, and the activity of the labeled enzyme is measured to determine the LR11 in the sample. It can also be measured.
  • the insoluble carrier used above various synthetic polymers such as polystyrene, polyethylene, and polypropylene, glass, silicon, insoluble polysaccharides (cross-linked dextran, polysaccharides) and the like are preferable, and these carriers are in the form of spheres, rods, fine particles and the like. Alternatively, it can be used in the form of a test tube, a microplate or the like.
  • the conditions for preparing the solid-phase antibody are as follows: the antibody concentration when using a carrier in the form of a sphere, rod, test tube, or microplate is 1 to 10 ⁇ g / mL. The concentration is 1-10 mg / mL.
  • a neutral to alkaline buffer solution such as a phosphate buffer solution, a glycine buffer solution, a carbonate buffer solution, or a Tris buffer solution is used, and it is felt at 4 to 25 ° C. for 1 to 72 hours. It is preferable to prepare it.
  • the enzyme-labeled antibody to be used can be prepared by a known method. For example, according to the method of Nakane et al. (Nakane P. K et al, J. Histochem Cytochem, 22, p1084-189, 1974) or the method of Ishikawa et al. (Maleimide method: “Enzyme immunoassay 3rd edition” Medical School). An unlabeled immunoglobulin molecule is left as it is, or, if necessary, the antibody is limitedly decomposed with an appropriate protease to form F (ab ′) 2 or Fab ′, and then labeled with an enzyme to thereby enzyme-labeled antibody Can be produced.
  • Examples of the enzyme used for labeling include peroxidase, alkaline phosphatase, ⁇ -D-galactosidase, glucose oxidase and the like.
  • a biotin-labeled antibody can also be prepared by a known method, but can be more easily prepared by using a commercially available biotinylation reagent (for example, Sulfo-NHS-Biotinylation Kit manufactured by PIERCE).
  • Enzyme-labeled avidin can also be produced by a known method, but commercially available products (for example, Streptavidin, Horseradish Peroxidase Conjugated, manufactured by PIERCE) can also be used.
  • the labeling substance is an enzyme
  • a substrate and, if necessary, a color former are used for measuring the activity.
  • peroxidase hydrogen peroxide is used as a substrate, o-phenylenediamine, 3,3 ′, 5,5′-tetramethylbenzidine, 2,2′-azinodi- [3- Ethyl benzthiazoline sulfonic acid] ammonium salt and the like;
  • alkaline phosphatase is used as the enzyme, p-nitrophenyl phosphate, 3- (4-methoxyspiro ⁇ 1,2-dioxetane-3,2'-tricyclo) is used as a substrate.
  • ⁇ -D-galactosidase when used as the enzyme, ⁇ -D-galactopyrano as the substrate Sid, 4-methylumbelliferyl- ⁇ -D-galactopyranoside, etc .; glucose oxidase is used as an enzyme If that is, as a substrate in the presence of peroxidase, beta-D-glucose, may be used peroxidase color former as a color-developing agent.
  • the amphoteric surfactant of the present invention in the case of immunoturbidimetry (TIA or LTIA), the amphoteric surfactant of the present invention and a sample treated with two types of anti-soluble LR11 antibodies (in the case of LTIA, immobilized on particles such as latex) and If immunochromatography is performed sequentially or simultaneously, the sample treated with the amphoteric surfactant of the present invention is captured by one anti-soluble LR11 antibody immobilized on a membrane or the like, and a metal colloid such as a gold colloid Or the other anti-soluble LR11 antibody labeled with a colored latex.
  • TIA or LTIA immunoturbidimetry
  • the present invention can provide a soluble LR11 immunoassay reagent comprising an anti-soluble LR11 antibody and the specific amphoteric surfactant in carrying out the immunological measurement.
  • the anti-soluble LR11 antibody and the specific amphoteric surfactant can be used to produce a soluble LR11 immunoassay reagent.
  • the immunological measurement reagent contains an anti-soluble LR11 antibody and the specific amphoteric surfactant, but these components are in separate states as a sample diluent and a measurement reagent, or a first reagent and a second reagent. Or a mixed state.
  • the reagent may contain any component used for detection of soluble LR11, such as a buffer solution, a stabilizer, a reaction vessel, and the like.
  • the immunological measurement reagent include the following.
  • a sample diluent containing the amphoteric surfactant of the present invention a labeled antibody solution containing the amphoteric surfactant of the present invention, and an anti-solubility containing the amphoteric surfactant of the present invention in a dry state.
  • a microplate on which the LR11 antibody is immobilized may be mentioned.
  • examples include a test solution containing immobilized latex particles.
  • the immunochromatographic method for example, a sample diluent containing the amphoteric surfactant of the present invention, a sample pad or a strip for immunochromatography (a test strip) in which a labeled antibody-containing pad is impregnated with the surfactant of the present invention. Can do.
  • soluble LR11 immunoassay kit the above-mentioned immunoassay reagents suitable for the measurement system to be used can be used in appropriate combination, and if necessary, other kits necessary for the establishment of the measurement system can be used. Reagents or package inserts may be included.
  • Example 1 (Confirmation of effect of amphoteric surfactant of the present invention (sandwich ELISA))
  • PBS mmol / L phosphate buffer
  • M3 antibody an anti-soluble LR11 monoclonal antibody diluted in 1 ml was added and allowed to stand at room temperature for 2 hours to immobilize the M3 antibody.
  • the 96-well microplate was washed with 400 ⁇ L of PBS containing 0.05% Tween 20 (registered trademark) (hereinafter referred to as “PBST”), and then PBST containing 10% sucrose and 1% BSA (hereinafter referred to as “BSA-PBST”). 200 ⁇ L was added per well and blocked at room temperature for 2 hours. After removing the liquid in the well, it was dried overnight in a desiccator, sealed in an aluminum bag with a desiccant, and stored refrigerated until use.
  • PBS PBS containing 0.05% Tween 20 (registered trademark)
  • BSA-PBST PBST containing 10% sucrose and 1% BSA
  • biotinylated anti-soluble LR11 monoclonal antibody R14 antibody, biotinylated reagent (manufactured by PIERCE) diluted with BSA-PBST to 0.4 ⁇ g / mL. 100 ⁇ L per well was added and allowed to stand at room temperature for 4 hours (hereinafter referred to as biotin-labeled anti-soluble LR11 monoclonal antibody (R14 antibody) at this time and soluble LR11 captured on the microplate in the primary reaction. Is sometimes called "secondary reaction").
  • peroxidase-labeled streptavidin (manufactured by PIERCE) diluted to 0.2 ⁇ g / mL with BSA-PBST was added at 100 ⁇ L per well and allowed to stand at room temperature for 1 hour.
  • the microplate was washed again with PBST, and the TMB substrate solution (0.3 mg / mL 3,3′-5,5′-tetramethyl-benzidine dihydrochloride (manufactured by SIGMA), 100 mmol / L quencher containing 12 mmol / L hydrogen peroxide.
  • An acid buffer (pH 3.7)) was added at 100 ⁇ L per well and allowed to stand at room temperature for 30 minutes. Subsequently, 100 ⁇ L of 1.5N sulfuric acid was added per well to stop color development, and the absorbance at a wavelength of 450 nm was measured with a microplate reader.
  • Example 2 (Investigation of relationship between concentration of amphoteric surfactant of the present invention and measured sample absorbance) (1) Method For each of SB10, SB12, SB14, CHAPS and CHAPSO, 0.04%, 0.08%, 0.16%, 0.31%, 0.63%, 1.25%, 2.5 % Or 5.0% PBS was used as a sample diluent, and the test serum was diluted 11 times to obtain a measurement sample solution (the concentration of each surfactant in the measurement sample solution was 10/11 times the concentration). The soluble LR11 in the sample was measured in the same manner as in Example 1, starting with the primary reaction at room temperature for 16 hours.
  • Example 3 (Confirmation of reaction time shortening effect of amphoteric surfactant of the present invention) (1) Method From the results of Example 2, SB10, SB12, SB14, CHAPS, and CHAPSO are 1.5%, 0.63%, 3.6%, 5.0%, and 5.0%, respectively.
  • the added PBS was used as a sample diluent, and the test serum was diluted 11 times to obtain a measurement sample solution (the concentration of each surfactant in the measurement sample solution was 10/11 times the concentration in the sample diluent).
  • Soluble LR11 was measured in the same manner as in Example 1 except that the primary reaction was 1 hour and the secondary reaction was 2 hours.
  • soluble LR11 was measured in the same manner as described above using PBS added with MEGA-9 at 5.0% as a sample diluent.
  • Example 4 (Confirmation of relationship with measurement result by conventional method-1) (1) Method Five kinds of human sera (from TENNESSEE BLOOD SERVICES INC) were used as sample diluents with PBS added to SB10, SB12, and SB14 to 1.5%, 0.63%, and 3.6%, respectively.
  • the soluble LR11 concentration measured by the conventional method using MEGA-9 is 3.8 ng / mL, 3.9 ng / mL, 5.4 ng / mL, 8.0 ng / mL and 9.8 ng / mL.)
  • the measurement sample solution was diluted 11 times (the concentration of each surfactant in the measurement sample solution was 10/11 times the concentration in the sample dilution solution).
  • Soluble LR11 was measured in the same manner as in Example 1 except that the primary reaction was 1 hour and the secondary reaction was 2 hours.
  • soluble LR11 was measured in the same manner as described above using PBS added with MEGA-9 at 5.0% as a sample diluent. Correlation was confirmed between the results of Examples and Comparative Examples and measured values when MEGA-9 (5.0%) was used and the primary reaction was measured for 16 hours and the secondary reaction was performed for 4 hours.
  • FIG. 4 shows the correlation of the results (horizontal axis) measured by the conventional method with a primary reaction of 16 hours and a secondary reaction of 4 hours.
  • the light absorbency in a figure is displayed with the net light absorbency which subtracted the reagent blank light absorbency from the sample light absorbency.
  • the absorbance of the 9.8 ng / mL sample and the 5.4 ng / mL sample is 9.8 ng / mL was higher, but the difference was slight, and the absorbance of the 8.0 ng / mL sample was higher than that of the 9.8 ng / mL sample, 3.8 and 3.9 ng
  • the absorbance of the / mL sample was extremely lower than the absorbance of the 5.4 ng / mL sample.
  • Example 5 (confirmation of relationship with measurement result by conventional method-2) (1) Method Using 6 kinds of human serum (purchased from TENNESSEE BLOOD SERVICES INC. PBS) to which each of CHAPS and CHAPSO was added to a concentration of 5.0% as a sample dilution solution.
  • the measured soluble LR11 concentration was 3.1 ng / mL, 5.2 ng / mL, 6.7 ng / mL, 7.2 ng / mL and 8.7 ng / mL, 9.5 ng / mL.
  • a measurement sample solution was used (the concentration of each surfactant in the measurement sample solution was 10/11 times the concentration in the sample diluent).
  • Soluble LR11 was measured in the same manner as in Example 1 except that the primary reaction was 1 hour and the secondary reaction was 2 hours. Results obtained in Examples and measured values obtained by using PBS added with MEGA-9 of 5.0% as a comparative example as a sample diluent, measuring the primary reaction for 16 hours, and the secondary reaction for 4 hours. The correlation with was confirmed.
  • FIG. 5 shows the correlation of the results (horizontal axis) measured by the conventional method with a primary reaction of 16 hours and a secondary reaction of 4 hours.
  • the light absorbency in a figure is displayed with the net light absorbency which subtracted the reagent blank light absorbency from the sample light absorbency.

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Abstract

　血清等の生物由来試料から、可溶性ＬＲ１１の分離操作をすることなく、簡便かつ正確に免疫学的手段により、当該生物由来試料中の可溶性ＬＲ１１を測定する方法を提供。　生物由来試料中の可溶性ＬＲ１１の免疫学的測定方法であって、当該試料をスルホベタイン型両性界面活性剤及びアミドスルホベタイン型両性界面活性剤から選ばれる１種以上で処理することを特徴とする可溶性ＬＲ１１の免疫学的測定方法。

Description

可溶性ＬＲ１１の免疫学的測定方法
　本発明は、生物由来試料中の可溶性ＬＲ１１の免疫学的測定方法に関する。
　ＬＤＬ　ｒｅｃｅｐｔｏｒ　ｒｅｌａｔｉｖｅ　ｗｉｔｈ　１１　ｌｉｇａｎｄ－ｂｉｎｄｉｎｇ　ｒｅｐｅａｔｓ（ＬＲ１１）は、ＬＤＬ受容体ファミリーに特徴的な構造を有する分子量約２５０ｋＤのＬＤＬ受容体類似タンパク質（特許文献１、非特許文献１）であり、膜結合型の他に、プロテアーゼによって切断された可溶性ＬＲ１１が存在することが示されている（非特許文献４）。ＬＲ１１は正常血管壁細胞ではほとんど発現していないが、肥厚内膜平滑筋細胞において特異的に発現することが報告されている（非特許文献２）。また、培養平滑筋細胞の増殖に伴いＬＲ１１の発現量が亢進し、培養液中に可溶性ＬＲ１１が分泌されることや、カフ障害モデルマウスにおいてＬＲ１１遺伝子を発生工学的に機能欠損させると、平滑筋細胞の遊走及び増殖によって引き起こされる血管内膜の肥厚が阻害されることが報告されている（非特許文献３）。さらに、本発明者らは、動脈硬化性疾患患者の血中の可溶性ＬＲ１１の濃度が健常者に比べて有意に高値であることを見出し、血中に存在する可溶性ＬＲ１１を新たな動脈硬化性疾患のマーカーとして利用できることを報告した（非特許文献５、特許文献２）。
　可溶性ＬＲ１１の測定方法としては、ＬＲ１１に対して親和性を有するシャペロン分子ＲＡＰ（ｒｅｃｅｐｔｏｒ　ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ　ｐｒｏｔｅｉｎ）を結合させた不溶性担体を用いて、試料から可溶性ＬＲ１１を分離した後、ＳＤＳ－ＰＡＧＥ、ウエスタンブロットを行い、抗ＬＲ１１抗体による免疫染色で検出する方法（非特許文献５、６）が知られているが、試料から可溶性ＬＲ１１を分離する工程をはじめ、操作が多く煩雑であり、臨床検査等への適用を考えた場合には実用的な方法とはいえない。
　本発明者らは、操作が簡便で実用的な可溶性ＬＲ１１の測定方法として、抗可溶性ＬＲ１１抗体を用いる免疫学的測定方法の確立を試みたが、血清等の生物由来試料を試料として用いた場合、前記試料中に存在する未同定の測定妨害物質（以下、単に「妨害物質」ということがある）の影響により、可溶性ＬＲ１１を正確に定量できないことが判明した。
　そこで、本発明者らは、妨害物質が免疫学的測定方法に与える影響を回避する手段について種々検討した。その結果、血清等の生物由来試料をＮ－アシル－Ｎ－メチルグルカミン等の特定の界面活性剤と混合する処理を行い、当該処理した試料を用いて免疫学的測定方法で測定を行えば、妨害物質の影響を回避して試料中の可溶性ＬＲ１１を簡便かつ正確に定量できることを見出し、先に特許出願した（特許文献３）。
特開平９－１６３９８８号公報 国際公開ＷＯ２００８／１５５８９１号パンフレット 国際公開ＷＯ２００９／１１６２６８号パンフレット
Ｊ．Ｂｉｏｌ．Ｃｈｅｍ．１９９６；　２７１，　ｐ２４７６１－２４７６８ Ａｒｔｅｒｉｏｓｃｌｅｒ．Ｔｈｒｏｍｂ．Ｖａｓｃ．Ｂｉｏｌ．１９９９；　１９，　ｐ２６８７－２６９５ Ｃｉｒｃ．Ｒｅｓ．２００４；　９４；　ｐ７５２－７５８ 医学のあゆみ、Ｖｏｌ．２２１，　Ｎｏ．１３，　ｐ１２００－１２０３ Ｊ　Ｃｌｉｎ　Ｉｎｖｅｓｔ．　２００８　；　１１８，　ｐ２７３３－２７４６ 第３９回　日本動脈硬化学会総会・学術集会　プログラム・抄録集、一般演題（ポスター）１８９，　ｐ２６４
　しかしながら、特許文献３に記載された従来法（以下、単に「従来法」ということがある）、例えば、Ｎ－アシル－Ｎ－メチルグルカミンで処理したヒト血清試料を、２種類の抗可溶性ＬＲ１１抗体を使用したサンドイッチＥＬＩＳＡにより測定する方法では、固相化した抗可溶性ＬＲ１１抗体と可溶性ＬＲ１１の反応（以下「一次反応」ということがある）に室温、一晩を要するため、測定が二日にまたがってしまうという問題があった。本発明者らは、前記従来法における一次反応の時間短縮を試みたところ、一次反応の反応時間短縮に伴い測定される各試料の吸光度が低下するだけでなく、一部の試料において、反応時間短縮に伴う吸光度の低下度合いが他の試料における低下度合いと異なることがあり、そのために従来法で測定した場合と一次反応の反応時間を短縮して測定した場合とで、試料間の相対関係（可溶性ＬＲ１１濃度の高低）が異なる、すなわち従来法の測定結果と時間短縮した測定結果との相関性が低下する場合があることがわかった。
　従って、本発明の課題は、従来法で測定された試料間の相対関係に影響を与えずに、測定時間が短縮された、より実用的な生物試料中の可溶性ＬＲ１１の免疫学的測定方法を提供することである。
　本発明者らは、前記課題について鋭意検討したところ、スルホベタイン型又はアミドスルホベタイン型の両性界面活性剤により処理した試料を用いて、免疫学的測定を行えば、特許文献３に記載のＮ－アシル－Ｎ－メチルグルカミン等と同様に試料中の妨害物質の影響を回避した上で、さらに、一次反応の反応時間を、例えば、室温、１時間に短縮した場合であっても、従来法で測定された試料間の相対関係に影響を与えずに、可溶性ＬＲ１１濃度に依存した測定結果が得られることを見出し、本発明を完成した。
　すなわち、本発明は、生物由来試料中の可溶性ＬＲ１１の免疫学的測定方法であって、当該試料をスルホベタイン型両性界面活性剤及びアミドスルホベタイン型両性界面活性剤から選ばれる１種以上で処理することを特徴とする可溶性ＬＲ１１の免疫学的測定方法を提供するものである。
　また、本発明は、抗可溶性ＬＲ１１抗体と、スルホベタイン型両性界面活性剤及びアミドスルホベタイン型両性界面活性剤から選ばれる１種以上とを含むことを特徴とする可溶性ＬＲ１１免疫学的測定用試薬を提供するものである。
　本発明の免疫学的測定方法及び免疫学的測定用試薬によれば、抗可溶性ＬＲ１１抗体と可溶性ＬＲ１１の反応（例えば、固相化した抗可溶性ＬＲ１１抗体と可溶性ＬＲ１１との反応）の時間を、例えば、特許文献３記載の一晩から、１時間に大幅に短縮した上で、生物由来試料、例えば血液等の試料中に存在する可溶性ＬＲ１１の濃度を、より短時間で、簡便に、高感度で、定量的に測定することができる。
特許文献３記載の界面活性剤あるいは本発明の両性界面活性剤を用い、一次反応の時間を１６時間として可溶性ＬＲ１１を測定した結果を示す。 一次反応の時間を１６時間とし、本発明の両性界面活性剤の濃度と測定される試料吸光度との関係を検討した結果を示す。 特許文献３記載の界面活性剤あるいは本発明の両性界面活性剤を用い、一次反応の時間を１時間として可溶性ＬＲ１１を測定した結果を示す。 特許文献３記載の界面活性剤あるいは本発明の両性界面活性剤を用い、一次反応の時間を１時間として可溶性ＬＲ１１を測定した結果（縦軸）と、特許文献３記載の界面活性剤を用い、一次反応の時間を１６時間とした従来法で測定した結果（横軸）の相関性を示す。 特許文献３記載の界面活性剤あるいは本発明の両性界面活性剤を用い、一次反応の時間を１時間として可溶性ＬＲ１１を測定した結果（縦軸）と、特許文献３記載の界面活性剤を用い、一次反応の時間を１６時間とした従来法で測定した結果（横軸）の相関性を示す。
　本発明の測定方法は、生物由来試料中の可溶性ＬＲ１１の免疫学的測定方法である。ここで、生物としては、ヒトを含む哺乳動物、例えばヒト、サル、ウマ、ウシ、ブタ、ウサギ、ラット、モルモット、マウス等が挙げられる。試料としては、例えば血液、血漿、血清、髄液、尿等の体液；例えば血管、臓器、筋肉等の組織；例えば各組織から単離された細胞、白血球等の細胞；及び前記それぞれに由来する成分を含有する溶液（希釈された試料液、破砕液、溶解液、抽出液等）が挙げられる。
　本発明における免疫学的測定方法は、抗原抗体反応を利用した可溶性ＬＲ１１の測定方法であれば特に制限されないが、異なる抗原認識部位を有する、少なくとも２種の抗体を用いて免疫複合体を形成させる工程を含む測定方法が好ましい。異なる抗原認識部位を有する、少なくとも２種の抗体を用いて免疫複合体を形成させる工程を含む測定方法としては、後記する測定方法、例えばサンドイッチＥＬＩＳＡ、免疫比濁法（ＴＩＡやＬＴＩＡ（ラテックス比濁イムノアッセイ））、イムノクロマトグラフ法等が挙げられる。
　抗可溶性ＬＲ１１抗体としては、生物由来試料中の可溶性ＬＲ１１、例えば、哺乳動物の血清から精製した可溶性ＬＲ１１と反応する抗体であれば、モノクローナル抗体、ポリクローナル抗体のいずれでも良いが、モノクローナル抗体が好ましく用いられる。当該抗体は周知の方法にて作製することができる。本明細書において「抗可溶性ＬＲ１１抗体」というときには、上記したように生物由来試料中の可溶性ＬＲ１１と反応する抗体であることを限度として特に制限はなく、例えば、細胞表面に存在する膜結合型のＬＲ１１とも反応する抗体や文献等に単に「抗ＬＲ１１抗体」と記載されている抗体等も使用することができる。
　ポリクローナル抗体作製の際、免疫する動物としては、例えば、マウス、ラット、ハムスター、ウサギ、ヤギ、ヒツジ、ニワトリ等を用いることができる。抗可溶性ＬＲ１１抗血清は、抗原を動物の皮下、皮内、又は腹腔等に、一回又は複数回投与した後、採取した血液から得ることができる。免疫の際、抗原は、免疫賦活効果を有する補液（アジュバント）との混合物として投与して、免疫することがより好ましい。
　モノクローナル抗体は、公知のモノクローナル抗体作製方法、例えば、長宗香明、寺田弘共著、「単クローン抗体」廣川書店（１９９０年）や、Ｊａｍｅ　Ｗ．　Ｇｏｌｄｉｎｇ，‘‘Ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ　Ａｎｔｉｂｏｄｙ’’，３ｒｄ　ｅｄｉｔｉｏｎ，Ａｃａｄｅｍｉｃ　Ｐｒｅｓｓ（１９９６年）に従い作製することができる。また、ＤＮＡ免疫法によるモノクローナル抗体の作製は、例えばＮａｔｕｒｅ　１９９２　Ｍａｒ　１２；３５６，ｐ１５２－１５４やＪ．Ｉｍｍｕｎｏｌ　Ｍｅｔｈｏｄｓ　Ｍａｒ　１；２４９，ｐ１４７－１５４を参考に実施することができる。
　抗体作製用の抗原としては、ＬＲ１１タンパク質又は当該タンパク質の断片（ペプチド）が用いられる。前記ＬＲ１１タンパク質は、血液、尿、可溶性ＬＲ１１を細胞外に分泌する細胞（平滑筋細胞や造血器腫瘍細胞等）の培養上清等から、必要に応じて精製等して得ることができる。また、ＬＲ１１を細胞表面に発現している造血器腫瘍細胞それ自体を抗原として用いることもできる（ＷＯ２０１２／００８５９５）。前記ペプチドは、前記タンパク質をプロテアーゼで消化し、精製等して得ることができるが、合成ペプチドを使用することもできる。前記ペプチドとしては、例えば、特許文献３記載のアミノ酸配列を有するペプチド等が挙げられる。前記ペプチドのアミノ酸配列は、１もしくは数個のアミノ酸が欠失、置換もしくは付加されたものであってもよい。
　ＤＮＡ免疫法により抗体を作製する際には、ＬＲ１１タンパク質もしくは当該タンパク質の断片（ペプチド）をコードするｃＤＮＡを組み込んだベクターを、免疫する動物に投与し、当該動物の体内で抗原を発現させることにより免疫を行うことができる。前記ペプチドとしては、例えば、特許文献３記載のアミノ酸配列を有するペプチド等が挙げられ、当該ペプチドのアミノ酸配列は、１もしくは数個のアミノ酸が欠失、置換もしくは付加されたものであってもよい。
　また、ＬＲ１１の高次構造を認識するモノクローナル抗体を得るためには、ヒトＬＲ１１全長遺伝子が挿入されたベクターの使用が最適であるが、前記ＬＲ１１タンパク質の断片（ペプチド）をコードする遺伝子が挿入されたベクターも使用することができる。
　ＤＮＡ免疫法は、上記ベクターを単独又は混合して、従来公知の様々な遺伝子導入法（例えば筋肉注射、エレクトロポレーション、又は遺伝子銃等）のいずれかを用いて、免疫する動物（マウス、又はラット等）の皮下に注入し、免疫する動物由来の細胞内に取り込ませることにより実施できる。
　ペプチド抗原を用いたモノクローナル抗体の作製法及びＤＮＡ免疫法によるモノクローナル抗体の作製法は特許文献３記載の方法を参照することができ、これを使用することが好ましい。これらの抗可溶性ＬＲ１１モノクローナル抗体の例としては、特許文献３記載の合成ペプチドをマウスに免疫して得られたＡ２－２－３抗体、ＤＮＡ免疫法により得られたマウスモノクローナル抗体Ｍ３及びＭ５、ＤＮＡ免疫法により得られたラットモノクローナル抗体Ｒ１４及びＲ２３が挙げられる。
　本発明の測定方法においては、スルホベタイン型及びアミドスルホベタイン型両性界面活性剤のうち１種以上で処理した試料を用いて免疫学的測定を行う。当該処理により、試料中の可溶性ＬＲ１１の測定を妨害する物質の影響を回避することができ、さらに、一次反応の反応時間を、例えば、室温、１時間に短縮した場合であっても、従来法で測定された試料間の相対関係に影響を与えずに、可溶性ＬＲ１１濃度に依存した測定結果を得ることができる。
　本発明に用いるスルホベタイン型及びアミドスルホベタイン型両性界面活性剤としては、それぞれ次の一般式（１）及び（２）
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000003
（式中、Ｒ１は炭素数６～１８のアルキル基又はアルケニル基を示し、Ｒ２ＣＯは炭素数６～１８のアシル基又はコール酸由来アシル基を示し、Ａは炭素数２～５のアルキレン基又は炭素数２～５のヒドロキシアルキレン基を示し、Ｂは炭素数１～５のアルキレン基を示す）
で表される化合物が好ましい。
　Ｒ１で示される炭素数６～１８のアルキル基又はアルケニル基としては、直鎖又は分岐鎖のアルキル基又はアルケニル基が挙げられるが、このうち直鎖又は分岐鎖のアルキル基が好ましく、直鎖のアルキル基がより好ましい。また、当該アルキル基又はアルケニル基の炭素数は６～１４が好ましく、８～１４がより好ましく、１０～１４が特に好ましい。Ｒ１で示されるアルキル基又はアルケニル基のうち、特に好ましいものはデシル基、ドデシル基及びテトラデシル基である。
　Ｒ２ＣＯで示される炭素数６～１８のアシル基としては、炭素数６～１８の脂肪族アシル基が挙げられ、ヘキサノイル基、オクタノイル基、デカノイル基、ドデカノイル基、テトラデカノイル基、ヘキサデカノイル基、オクタデカノイル基等が挙げられる。また、Ｒ２ＣＯとしてはコール酸由来のアシル基が好ましい。
　Ａで示される炭素数２～５のアルキレン基としては、エチレン基、トリメチレン基、テトラメチレン基、ペンタメチレン基が挙げられ、エチレン基又はトリメチレン基がより好ましい。Ａで示される炭素数２～５のヒドロキシアルキレン基としては、－ＣＨ２ＣＨ（ＯＨ）ＣＨ２－で示されるヒドロキシトリメチレン基等が挙げられる。
　Ｂで示される炭素数１～５のアルキレン基としては、メチレン基、エチレン基、トリメチレン基、テトラメチレン基、ペンタメチレン基が挙げられる。
　一般式（１）で表されるスルホベタイン型両性界面活性剤の市販品としては、スルホベタイン１０（ＳＢ１０：Ｒ１＝Ｃ１０Ｈ２３、Ａ＝－（ＣＨ２）３－）、スルホベタイン１２（ＳＢ１２：Ｒ１＝Ｃ１２Ｈ２５、Ａ＝－（ＣＨ２）３－）、スルホベタイン１４（ＳＢ１４：Ｒ１＝Ｃ１４Ｈ２９、Ａ＝－（ＣＨ２）３－）（以上、ＡＭＲＥＳＣＯ社製）等が挙げられ、本発明に好適に使用される。また、一般式（２）で表されるアミドスルホベタイン型両性界面活性剤の市販品としては、３－［（３－コラミドプロピル）ジメチルアンモニオ］プロパンスルホネート（ＣＨＡＰＳ：Ｒ２ＣＯ＝コール酸由来アシル、Ａ＝－（ＣＨ２）３－）、Ｂ＝－（ＣＨ２）３－）、３－［（３－コラミドプロピル）ジメチルアンモニオ］－２－ヒドロキシプロパンスルホネート（ＣＨＡＰＳＯ：Ｒ２ＣＯ＝コール酸由来アシル、Ａ＝－ＣＨ２ＣＨ（ＯＨ）ＣＨ２－、Ｂ＝－（ＣＨ２）３－）（以上、同仁化学研究所社製）等が挙げられ、本発明に好適に使用される。
　生物由来試料をスルホベタイン型及びアミドスルホベタイン型両性界面活性剤から選ばれる１種以上で処理する手段としては、免疫測定前又は測定時の試料中に、上記特定の両性界面活性剤が存在するようにすればよく、免疫測定前に試料と混合し、共存させることが好ましい。前記試料との混合・共存の方法としては、例えば、本発明の両性界面活性剤を試料希釈液に含有させておき、試料希釈の際に混合・共存させる方法、抗可溶性ＬＲ１１抗体を含有する試薬に本発明の両性界面活性剤を含有させておき、試料中の可溶性ＬＲ１１と抗可溶性ＬＲ１１抗体との反応の際に混合・共存させる方法（具体例として、マイクロプレートを用いたサンドイッチＥＬＩＳＡにおいて酵素標識した抗可溶性ＬＲ１１抗体溶液が充填されているウェル中に無希釈あるいは予め希釈された試料が添加される場合などが挙げられる）、イムノクロマトグラフ法に用いられるサンプルパッドのような試料を投入する部材に含有させておき、試料が当該部材を通過する際に混合・共存させる方法を例示することができる。
　なお、本明細書における「試料希釈液」とは、生物由来試料中の可溶性ＬＲ１１の濃度を免疫反応に好適な濃度又は含量に、直接又は間接的に調整（希釈）するための試液をいう。「前処理液」又は「第一試薬（液）」など、名称の如何を問わない。
　本発明の両性界面活性剤の使用濃度は、用いる測定方法の特性、用いる両性界面活性剤の種類、本発明の両性界面活性剤が混合・共存した時点での試料中の可溶性ＬＲ１１濃度と両性界面活性剤の濃度の比等を勘案して適宜決定すれば良いが、例えば、可溶性ＬＲ１１を含有する試料と混合・共存させた時点の濃度として０．００１～１０質量％が好ましく、０．００１～５質量％がより好ましく、０．０５～５質量％がさらに好ましい。用いる測定方法がサンドイッチＥＬＩＳＡである場合には、さらに０．１～５質量％が好ましく、０．５～５質量％がより好ましい。用いる測定方法がＬＴＩＡである場合には、さらに０．００１～３質量％が好ましく、０．０５～２質量％がより好ましい。なお当業者であれば、前記の記載を指標に、例示された範囲以外の濃度での使用を工夫しうることはいうまでもない。 生物由来試料を本発明の両性界面活性剤で処理する際の温度は、５～４０℃、特に１０～３０℃が好ましい。生物由来試料を本発明の両性界面活性剤で処理する時間は、使用する両性界面活性剤の種類や濃度、また温度等の条件を考慮し、適宜設定することができる。本発明の両性界面活性剤で生物由来試料を処理した場合の、生物由来試料中の可溶性ＬＲ１１と抗可溶性ＬＲ１１抗体との反応時間は、従来法（例えば、Ｎ－アシル－Ｎ－メチルグルカミンを使用する特許文献３記載の方法）に比べて短時間でよく、本発明の方法によれば、生物由来試料中の可溶性ＬＲ１１の測定時間を大幅に短縮できる。
　また、測定系の設計（検出感度や反応時間等）にあわせ、試料は、例えば、１（原液）～５０倍に希釈して使用することができる。前記希釈は、本発明の両性界面活性剤を含有する試料希釈液により行っても、本発明の両性界面活性剤を含有しない緩衝液等により行ってもよいが、本発明の両性界面活性剤を含有する試料希釈液により行うと簡便である。生物由来試料を試料希釈液で希釈して測定する場合には、４～３０倍に希釈することが好ましい。試料希釈液の組成としては、本発明の効果を損なわないことを限度として通常免疫学的測定方法に使用される組成であれば特に制限はない。例えば、ＧＯＯＤ緩衝液、リン酸緩衝液、グリシン緩衝液、炭酸緩衝液、トリス緩衝液等の緩衝液（ｐＨも通常の免疫学的測定方法に使用される範囲）、ＮａＣｌ等の塩、ＢＳＡ等のタンパク成分、本発明の両性界面活性剤以外の界面活性剤、市販の非特異反応防止成分等が使用可能である。
　上記特定の両性界面活性剤を含む試料を用いて、通常の手段により抗可溶性ＬＲ１１抗体を用いた免疫学的測定を行えばよい。
　免疫学的測定方法としては、前記したように、抗原抗体反応を利用した可溶性ＬＲ１１の測定方法であれば特に制限されないが、異なる抗原認識部位を有する、少なくとも２種の抗体を用いて免疫複合体を形成させる工程を含む測定方法が好ましい。異なる抗原認識部位を有する、少なくとも２種の抗体を用いて免疫複合体を形成させる工程を含む測定方法としては、例えば、サンドイッチＥＬＩＳＡ（酵素標識免疫吸着測定法）、免疫比濁法（ＴＩＡやＬＴＩＡ）、イムノクロマトグラフ法等が挙げられる。前記例示した態様から明らかなように、本発明の免疫学的測定方法は、ヘテロジーニアス系であってもホモジーニアス系であってもよい。要は、本発明の両性界面活性剤で処理した試料が、一度以上、抗可溶性ＬＲ１１抗体との間で抗原抗体反応が行われるように設計されていればよい。
　本明細書において、抗原抗体反応を「一次反応」、「二次反応」のように区別して記載する場合があるが、それは、反応ステップが複数ある等、その実施態様の説明のために記載したものであって、本発明を限定することは意図していない。
　前記各測定方法における検出手段も、特に制限されず、サンドイッチＥＬＩＳＡであれば、発色基質・発色剤、発光基質・発光剤、蛍光基質・蛍光剤等を利用したエンザイムイムノアッセイ、発光（化学発光、生物発光）イムノアッセイ、蛍光イムノアッセイ等が挙げられ、免疫比濁法であれば、免疫複合体形成により生じる濁度を吸光度や散乱光で検出する方法が挙げられ、イムノクロマトグラフ法であれば、金属コロイド粒子や着色ラテックス粒子を用いた光学的検出法が挙げられる。上記特定の両性界面活性剤で処理した試料を用いて、通常の手段により抗可溶性ＬＲ１１抗体を用いた免疫学的測定を行う限り、免疫染色（ウエスタンブロット）や競合イムノアッセイ等にも本発明が適用可能であることは当業者には容易に理解されよう。
　抗可溶性ＬＲ１１抗体と反応する可溶性ＬＲ１１を、定量又は半定量的に評価する場合、基準となるＬＲ１１と比較することが好ましい。基準となるＬＲ１１としては、例えば、可溶性ＬＲ１１濃度既知の血清、平滑筋細胞や神経芽細胞株の培養細胞もしくは培養上清より回収した可溶性ＬＲ１１、尿由来の可溶性ＬＲ１１（ＷＯ２０１２／００８５９５）、リコンビナントＬＲ１１、又は抗体作製において免疫原として使用した合成ペプチド等を使用することが好ましい。
　前記したように、本発明において「定量」の語は、いわゆる「定量」と「半定量」の両方の概念を含み、また、さらに、臨床診断における疾病罹患の判断基準になるように検出感度が設定されている場合等には、可溶性ＬＲ１１存在の有無を検出する、いわゆる「定性」の概念も包含している。
　上記免疫学的測定において、サンドイッチＥＬＩＳＡを例にして説明すれば、例えば抗可溶性ＬＲ１１モノクローナル抗体の１種を適当な緩衝液中で不溶性担体に固定化して固相化抗体とし、第二の抗体として、不溶性担体に固定化した抗可溶性ＬＲ１１モノクローナル抗体とは認識部位の異なる抗可溶性ＬＲ１１モノクローナル抗体を酵素で標識し、これらを試料と反応させ、第二の抗体を標識した酵素の活性を測ることにより、試料中の可溶性ＬＲ１１を測定することができる。また、例えば、第二の抗体として、ビオチン標識した抗可溶性ＬＲ１１モノクローナル抗体を用い、試料との反応後にさらに酵素標識したアビジンを反応させ、該標識酵素の活性を測ることにより、試料中のＬＲ１１を測定することもできる。
　上記で使用する不溶性担体としては、ポリスチレン、ポリエチレン、ポリプロピレン等の各種合成高分子、ガラス、シリコン、不溶性多糖（架橋デキストラン、ポリサッカライド）等が好ましく、これらの担体は球状、棒状、微粒子等の形状、あるいは試験管、マイクロプレート等の形態で用いることができる。固相化抗体の作成の条件としては、球状、棒状、試験管、マイクロプレートの形態の担体を用いる場合の抗体濃度は各々１～１０μｇ／ｍＬであり、微粒子の形態の担体を用いる場合の抗体濃度は１～１０ｍｇ／ｍＬである。また、緩衝液は、リン酸緩衝液、グリシン緩衝液、炭酸緩衝液、トリス緩衝液等のｐＨ７～１０の中性～アルカリ性の緩衝液を用い、４℃～２５℃で１時間～７２時間感作して調製することが好ましい。
　使用する酵素標識抗体は、公知の方法によって作製することができる。例えば、中根らの方法（Ｎａｋａｎｅ　Ｐ．Ｋ　ｅｔ　ａｌ，Ｊ．Ｈｉｓｔｏｃｈｅｍ　Ｃｙｔｏｃｈｅｍ，２２，　ｐ１０８４－１０８９，　１９７４）あるいは石川らの方法（マレイミド法：「酵素免疫測定法　第３版」医学書院）等に従い、断片化していない免疫グロブリン分子をそのままか、あるいは必要に応じて抗体を適当なプロテアーゼで限定分解してＦ（ａｂ’）２、又はＦａｂ’とした後、酵素で標識することにより酵素標識抗体を作製できる。標識に使用する酵素としては、例えば、ペルオキシダーゼ、アルカリホスファターゼ、β－Ｄ－ガラクトシダーゼ、グルコースオキシダーゼ等が挙げられる。
　ビオチン標識抗体も公知の方法によって作製できるが、市販のビオチン化試薬（例えば、ＰＩＥＲＣＥ社製、Ｓｕｌｆｏ－ＮＨＳ－Ｂｉｏｔｉｎｙｌａｔｉｏｎ　Ｋｉｔ）を用いることでさらに容易に作製することができる。
　酵素標識アビジンも公知の方法によって作製できるが、市販品（例えば、ＰＩＥＲＣＥ社製、ＳｔｒｅｐｔＡｖｉｄｉｎ，　Ｈｏｒｓｅｒａｄｉｓｈ　Ｐｅｒｏｘｉｄａｓｅ　Ｃｏｎｊｕｇａｔｅｄ）を使用することもできる。
　また、標識物質が酵素である場合には、その活性を測定するために基質、及び必要により発色剤が用いられる。酵素としてペルオキシダーゼを用いる場合には、基質として過酸化水素を用い、発色剤としてｏ－フェニレンジアミン、３，３′，５，５′－テトラメチルベンチジン、２，２′－アジノジ－〔３－エチルベンズチアゾリンスルホン酸〕アンモニウム塩等；酵素としてアルカリフォスファターゼを用いる場合には、基質として、ｐ－ニトロフェニルフォスフェート、３－（４－メトキシスピロ｛１，２－ジオキセタン－３，２′－トリシクロ－〔３．３．１．１３，７〕デカン｝－４－イル）フェニルフォスフェート：ＡＭＰＰＤ等；酵素としてβ－Ｄ－ガラクトシダーゼを用いる場合には、基質として、β－Ｄ－ガラクトピラノシド、４－メチルウンベリフェリル－β－Ｄ－ガラクトピラノシド等；酵素としてグルコースオキシダーゼを用いる場合には、ペルオキシダーゼの共存下で基質として、β－Ｄ－グルコース、発色剤としてペルオキシダーゼの発色剤を用いることができる。
　免疫比濁法（ＴＩＡやＬＴＩＡ）であれば、本発明の両性界面活性剤と処理した試料を２種類の抗可溶性ＬＲ１１抗体（ＬＴＩＡの場合にはラテックス等の粒子に固定化されている）と順次あるいは同時に反応させ、イムノクロマトグラフ法であれば、本発明の両性界面活性剤と処理した試料を、メンブレン等に固定化されている一方の抗可溶性ＬＲ１１抗体に捕捉させ、金コロイド等の金属コロイドや着色ラテックスで標識されたもう一方の抗可溶性ＬＲ１１抗体で検出することにより行うことができる。
　血清等の免疫反応等を妨害する物質を含む生物由来試料であっても、上記の両性界面活性剤で処理した後、可溶性ＬＲ１１と反応する抗体にて免疫学的測定を行なえば、前記試料中の可溶性ＬＲ１１を簡便かつ正確に定量することができる。よって、本発明は、前記免疫学的測定を実施するにあたって、抗可溶性ＬＲ１１抗体と、上記特定の両性界面活性剤とを含む、可溶性ＬＲ１１免疫学的測定用試薬を提供することができる。 また、抗可溶性ＬＲ１１抗体及び上記特定の両性界面活性剤を、可溶性ＬＲ１１免疫学的測定用試薬を製造するために使用することができる。
　当該免疫学的測定用試薬は、抗可溶性ＬＲ１１抗体と、上記特定の両性界面活性剤とを含むが、これら成分が、試料希釈液と測定試薬、あるいは第一試薬と第二試薬として別々の状態、又は混合された状態であってもよい。また、当該試薬には、可溶性ＬＲ１１の検出に用いる任意の構成要素、例えば緩衝液、安定化剤や反応容器等を含んでいてもよい。
　免疫学的測定用試薬の具体例としては、以下が挙げられる。
　サンドイッチＥＬＩＳＡの場合、例えば、本発明の両性界面活性剤を含有する試料希釈液、本発明の両性界面活性剤を含有する標識抗体液、本発明の両性界面活性剤を乾燥状態で含有する抗可溶性ＬＲ１１抗体が固定化されたマイクロプレートが挙げられる。ＬＴＩＡの場合、例えば、本発明の両性界面活性剤を含有するが抗可溶性ＬＲ１１抗体が固定化されたラテックス粒子を含有しない試液、本発明の両性界面活性剤を含有し、かつ抗可溶性ＬＲ１１抗体が固定化されたラテックス粒子を含有する試液が挙げられる。イムノクロマトグラフ法の場合、例えば、本発明の両性界面活性剤を含有する試料希釈液、サンプルパッドあるいは標識抗体含有パッドに本発明の界面活性剤を含浸させたイムノクロマト用ストリップ（試験片）を挙げることができる。
　また、可溶性ＬＲ１１免疫学的測定用キットとしては、使用する測定系に即した前記免疫学的測定用試薬を適宜組み合わせて使用することができ、必要であれば測定系の成立に必要な他の試薬あるいは添付文書なども含むことがある。
　以下、実施例により、本発明を具体的に説明する。但し、本発明はこれらの実施例に限定されるものではない。
実施例１（本発明の両性界面活性剤の効果確認（サンドイッチＥＬＩＳＡ））
（１）サンドイッチＥＬＩＳＡ用マイクロプレートの作製
　９６穴マイクロプレート（ＮＵＮＣ社製）に、１５０ｍｍｏｌ／Ｌ　ＮａＣｌ含有２０ｍｍｏｌ／Ｌ　リン酸緩衝液（以下、「ＰＢＳ」という）（ｐＨ７．２）で１０μｇ／ｍＬに希釈した抗可溶性ＬＲ１１モノクローナル抗体（Ｍ３抗体）を１ウェル当たり１００μＬ添加し、室温で２時間静置し、Ｍ３抗体を固相化した。９６穴マイクロプレートを４００μＬの０．０５％Ｔｗｅｅｎ２０（登録商標）含有ＰＢＳ（以下、「ＰＢＳＴ」という）で洗浄後、１０％スクロース、１％ＢＳＡ含有ＰＢＳＴ（以下、「ＢＳＡ－ＰＢＳＴ」という）を１ウェル当たり２００μＬ添加し、室温で２時間ブロッキングした。ウェル内の液を除去後、デシケーター内で一晩乾燥し、乾燥剤と共にアルミ袋に密封して使用まで冷蔵保存した。
（２）サンドイッチＥＬＩＳＡを用いた可溶性ＬＲ１１測定
　下記する界面活性剤を、それぞれ５．０％となるよう添加したＰＢＳを試料希釈液として用い、ヒト血清（ＴＥＮＮＥＳＳＥＥ　ＢＬＯＯＤ　ＳＥＲＶＩＣＥＳ　ＩＮＣ社より購入。ＭＥＧＡ－９を使用する従来法で測定した可溶性ＬＲ１１濃度は　３．９ｎｇ／ｍＬ。以下、当該ヒト血清を「試験血清」ということがある）を１１倍希釈して測定試料液とした（測定試料液中の界面活性剤の濃度は、試料希釈液中の濃度の１０／１１倍濃度）。各測定試料液を（１）で作製したマイクロプレートに１ウェル当たり１００μＬ添加して室温で１６時間静置した（前記したように、このときの固相化抗可溶性ＬＲ１１抗体と測定試料中の可溶性ＬＲ１１との抗原抗体反応を、「一次反応」ということがある）。
＜使用した界面活性剤＞
（比較例：Ｎ－アシル－Ｎ－メチルグルカミンとして）
・ＭＥＧＡ－９：カタログ番号Ｍ０１５、同仁化学研究所社製
（実施例）
・ＳＢ１０：カタログ番号Ｄ４２６６、ＳＩＧＭＡ－ＡＬＤＲＩＣＨ社製
・ＳＢ１２：カタログ番号Ａ１４６０、Ａｐｐｌｉｃｈｅｍ社製
・ＳＢ１４：カタログ番号Ａ１１６２、Ａｐｐｌｉｃｈｅｍ社製
・ＣＨＡＰＳ：カタログ番号Ｃ００８、同仁化学研究所社製
・ＣＨＡＰＳＯ：カタログ番号Ｃ０２０、同仁化学研究所社製
　マイクロプレートの各ウェルを４００μＬのＰＢＳＴで３回洗浄した後、ＢＳＡ－ＰＢＳＴで０．４μｇ／ｍＬに希釈したビオチン標識抗可溶性ＬＲ１１モノクローナル抗体（Ｒ１４抗体。ビオチン化試薬（ＰＩＥＲＣＥ社製）にてビオチン標識した。）を１ウェル当たり１００μＬ添加して、室温で４時間静置した（以下、このときのビオチン標識抗可溶性ＬＲ１１モノクローナル抗体（Ｒ１４抗体）と一次反応でマイクロプレート上に捕捉された可溶性ＬＲ１１との反応を「二次反応」ということがある）。マイクロプレートをＰＢＳＴで洗浄後、ＢＳＡ－ＰＢＳＴで０．２μｇ／ｍＬに希釈したぺルオキシダーゼ標識ストレプトアビジン（ＰＩＥＲＣＥ社製）を１ウェル当たり１００μＬ添加し、室温で１時間静置した。再度マイクロプレートをＰＢＳＴで洗浄し、ＴＭＢ基質液（０．３ｍｇ／ｍＬ　３，３′－５，５′－Ｔｅｔｒａｍｅｔｈｙｌ－ｂｅｎｚｉｄｉｎｅ　ｄｉｈｙｄｒｏｃｈｌｏｒｉｄｅ（ＳＩＧＭＡ社製）、１２ｍｍｏｌ／Ｌ　過酸化水素を含む１００ｍｍｏｌ／Ｌ　クエン酸緩衝液（ｐＨ３．７））を１ウェル当たり１００μＬ添加して、室温で３０分間静置した。続いて１．５Ｎ　硫酸を１ウェルあたり１００μＬ添加して発色を停止し、マイクロプレートリーダーで波長４５０ｎｍの吸光度を測定した。
（３）結果
　ＳＢ１０、ＳＢ１２、ＳＢ１４、ＣＨＡＰＳ、ＣＨＡＰＳＯのいずれを使用した場合においても、ＭＥＧＡ－９と同様又はそれ以上の吸光度が得られた（図１。なお、図中の吸光度は試料吸光度より試薬ブランク吸光度を差し引いた正味吸光度で表示している）。以上より、本発明の両性界面活性剤は、妨害物質の影響を回避して生物由来試料中の可溶性ＬＲ１１の測定が可能であることがわかった。
実施例２（本発明の両性界面活性剤の濃度と測定される試料吸光度との関係検討）
（１）方法
　ＳＢ１０、ＳＢ１２、ＳＢ１４、ＣＨＡＰＳ及びＣＨＡＰＳＯ、それぞれについて、０．０４％、０．０８％、０．１６％、０．３１％、０．６３％、１．２５％、２．５％、または５．０％となるよう添加したＰＢＳを試料希釈液として用い、試験血清を１１倍希釈して測定試料液とした（測定試料液中の各界面活性剤の濃度は試料希釈液中の濃度の１０／１１倍濃度）。一次反応を室温、１６時間とすることをはじめ、実施例１と同様の操作により試料中の可溶性ＬＲ１１の測定を行った。
（２）結果
　ＳＢ１０（□）では、０．６３％付近の濃度から測定された試料吸光度と試薬ブランク吸光度との差が明瞭になり、１．２５％付近から５．０％まで、吸光度がほぼ一定になった。
　ＳＢ１２（◇）では、０．１６％付近の濃度から測定された試料吸光度と試薬ブランク吸光度との差が明瞭になり、０．６３％付近で吸最大の吸光度に達し、０．６３％から付近から５．０％まで吸光度がほぼ一定になった。
　ＳＢ１４（△）では、０．０８％付近の濃度から測定された試料吸光度と試薬ブランク吸光度との差が明瞭になり、１．２５％付近から５．０％まで、吸光度がほぼ一定になった。
　ＣＨＡＰＳ（■）及びＣＨＡＰＳＯ（▲）では、０．６３％付近の濃度から測定された試料吸光度と試薬ブランク吸光度との差が明瞭になり、２．５％付近から５．０％まで、吸光度がほぼ一定になった（図２。なお、図中の吸光度は試薬ブランク吸光度を差し引く前の吸光度で表示している）。
　以上より、本発明の両性界面活性剤は、いずれも広い濃度範囲で可溶性ＬＲ１１の免疫学的測定に使用可能であることが確認された。
実施例３（本発明の両性界面活性剤の反応時間短縮効果の確認）
（１）方法
　実施例２の結果より、ＳＢ１０、ＳＢ１２、ＳＢ１４、ＣＨＡＰＳ、ＣＨＡＰＳＯが、それぞれ１．５％、０．６３％、３．６％、５．０％、５．０％になるよう添加したＰＢＳを試料希釈液として用い、試験血清を１１倍希釈して測定試料液とした（測定試料液中の各界面活性剤の濃度は試料希釈液中の濃度の１０／１１倍濃度）。一次反応を１時間とし、二次反応を２時間とした以外は実施例１と同様の方法で可溶性ＬＲ１１の測定を行った。比較例として、ＭＥＧＡ－９が５．０％となるように添加したＰＢＳを試料希釈液として用い、前記と同様の操作にて可溶性ＬＲ１１の測定を行った。
（２）結果
　いずれの両性界面活性剤を用いた場合でも、ＭＥＧＡ－９を用いた比較例の吸光度よりも大きい吸光度を示した。以上より、本発明の両性界面活性剤を用いれば、一次反応を室温、１時間に短縮した場合であっても、ＭＥＧＡ－９を使用する従来法と比較して、可溶性ＬＲ１１をより高感度に検出することが可能であることがわかった（図３。なお、図中の吸光度は試料吸光度より試薬ブランク吸光度を差し引いた正味吸光度で表示している）。
実施例４（従来法による測定結果との関係確認－１）
（１）方法
　ＳＢ１０、ＳＢ１２、ＳＢ１４をそれぞれ１．５％、０．６３％、３．６％となるよう添加したＰＢＳを試料希釈液として用い、５種類のヒト血清（ＴＥＮＮＥＳＳＥＥ　ＢＬＯＯＤ　ＳＥＲＶＩＣＥＳ　ＩＮＣ社より購入。ＭＥＧＡ－９を使用する従来法で測定した可溶性ＬＲ１１濃度は、３．８ｎｇ／ｍＬ、３．９ｎｇ／ｍＬ、５．４ｎｇ／ｍＬ、８．０ｎｇ／ｍＬ及び９．８ｎｇ／ｍＬ。）を１１倍希釈して測定試料液とした（測定試料液中の各界面活性剤の濃度は試料希釈液中の濃度の１０／１１倍濃度）。一次反応を１時間とし、二次反応を２時間とした以外は実施例１と同様の方法で可溶性ＬＲ１１の測定を行った。
　比較例として、ＭＥＧＡ－９が５．０％となるように添加したＰＢＳを試料希釈液として用い、前記と同様の操作にて可溶性ＬＲ１１の測定を行った。
　実施例、および比較例の結果と、ＭＥＧＡ－９（５．０％）を使用し、一次反応を１６時間、二次反応を４時間として測定したときの測定値との相関性を確認した。
（２）結果
　ＭＥＧＡ－９（比較例）あるいは本発明の両性界面活性剤を用い、一次反応：１時間、二次反応：２時間として可溶性ＬＲ１１を測定した結果（縦軸）と、ＭＥＧＡ－９を用い、一次反応：１６時間、二次反応：４時間とした従来法で測定した結果（横軸）の相関性を図４に示した。なお、図中の吸光度は試料吸光度より試薬ブランク吸光度を差し引いた正味吸光度で表示している。
　比較例である、５．０％　ＭＥＧＡ－９、一次反応：１時間、二次反応：２時間の条件（■）では、９．８ｎｇ／ｍＬの試料と５．４ｎｇ／ｍＬの試料の吸光度は、９．８ｎｇ／ｍＬの方が高かったもののその差は僅かであり、８．０ｎｇ／ｍＬの試料の吸光度は、９．８ｎｇ／ｍＬの試料の吸光度よりも高く、３．８及び３．９ｎｇ／ｍＬの試料の吸光度は、５．４ｎｇ／ｍＬの試料の吸光度より極端に低かった。
　これに対して、本発明の両性界面活性剤を用い、一次反応：１時間、二次反応：２時間として可溶性ＬＲ１１を測定したところ、いずれの両性界面活性剤（ＳＢ１０（◇）、ＳＢ１２（□）、ＳＢ１４（△））を用いた場合でも、測定された各血清試料の吸光度は従来法の測定値の高低の順に一致しており、濃度依存的な結果であった（図４）。
実施例５（従来法による測定結果との関係確認－２）
（１）方法
　ＣＨＡＰＳ、ＣＨＡＰＳＯそれぞれを、５．０％となるよう添加したＰＢＳを試料希釈液として用い、６種類のヒト血清（ＴＥＮＮＥＳＳＥＥ　ＢＬＯＯＤ　ＳＥＲＶＩＣＥＳ　ＩＮＣ社より購入。ＭＥＧＡ－９を使用する従来法で測定した可溶性ＬＲ１１濃度は、３．１ｎｇ／ｍＬ、５．２ｎｇ／ｍＬ、６．７ｎｇ／ｍＬ、７．２ｎｇ／ｍＬ及び８．７ｎｇ／ｍＬ、９．５ｎｇ／ｍＬ。）を１１倍希釈して測定試料液とした（測定試料液中の各界面活性剤の濃度は試料希釈液中の濃度の１０／１１倍濃度）。一次反応を１時間とし、二次反応を２時間とした以外は実施例１と同様の方法で可溶性ＬＲ１１の測定を行った。
　実施例の結果と、比較例としてＭＥＧＡ－９が５．０％となるように添加したＰＢＳを試料希釈液として用い、一次反応を１６時間、二次反応を４時間として測定したときの測定値との相関性を確認した。
（２）結果
　ＭＥＧＡ－９（比較例）あるいは本発明の両性界面活性剤を用い、一次反応：１時間、二次反応：２時間として可溶性ＬＲ１１を測定した結果（縦軸）と、ＭＥＧＡ－９を用い、一次反応：１６時間、二次反応：４時間とした従来法で測定した結果（横軸）の相関性を図５に示した。なお、図中の吸光度は試料吸光度より試薬ブランク吸光度を差し引いた正味吸光度で表示している。
　本発明の両性界面活性剤を用い、一次反応：１時間、二次反応：２時間として可溶性ＬＲ１１を測定したところ、いずれの両性界面活性剤（ＣＨＡＰＳ（◆）、ＣＨＡＰＳＯ（□））を用いた場合でも、測定された各血清試料の吸光度は従来法の測定値の高低の順に一致しており、濃度依存的な結果であった（図５）。
　実施例４，５の成績より、本発明の両性界面活性剤により処理した試料を用いて、免疫学的測定を行えば、特許文献３に記載のＮ－アシル－Ｎ－メチルグルカミン等と同様に試料中の妨害物質の影響を回避した上で、さらに、一次反応の反応時間を、室温、１時間に短縮した場合であっても、従来法で測定された試料間の相対関係に影響を与えずに、可溶性ＬＲ１１濃度に依存した測定結果が得られることが確認された。

Claims (7)

  1. 　生物由来試料中の可溶性ＬＲ１１の免疫学的測定方法であって、当該試料をスルホベタイン型両性界面活性剤及びアミドスルホベタイン型両性界面活性剤から選ばれる１種以上で処理することを特徴とする可溶性ＬＲ１１の免疫学的測定方法。
  2. 　スルホベタイン型両性界面活性剤及びアミドスルホベタイン型両性界面活性剤が、それぞれ次の一般式（１）及び（２）
    Figure JPOXMLDOC01-appb-C000001
     （式中、Ｒ１は炭素数６～１８のアルキル基又はアルケニル基を示し、Ｒ２ＣＯは炭素数６～１８のアシル基又はコール酸由来アシル基を示し、Ａは炭素数２～５のアルキレン基又は炭素数２～５のヒドロキシアルキレン基を示し、Ｂは炭素数１～５のアルキレン基を示す）
    で表される化合物である請求項１記載の免疫学的測定方法。
  3. 　生物由来試料が、血液、血漿、血清、髄液又は尿である請求項１又は２記載の免疫学的測定方法。
  4. 　免疫学的測定方法が、抗原認識部位の異なる、少なくとも２種の抗体を用いて免疫複合体を形成させる工程を含むものである請求項１～３のいずれか１項記載の免疫学的測定方法。
  5. 　抗可溶性ＬＲ１１抗体と、スルホベタイン型両性界面活性剤及びアミドスルホベタイン型界面活性剤から選ばれる１種以上とを含むことを特徴とする可溶性ＬＲ１１免疫学的測定用試薬。
  6. 　スルホベタイン型両性界面活性剤及びアミドスルホベタイン型両性界面活性剤が、それぞれ次の一般式（１）及び（２）
    Figure JPOXMLDOC01-appb-C000002
     （式中、Ｒ１は炭素数６～１８のアルキル基又はアルケニル基を示し、Ｒ２ＣＯは炭素数６～１８のアシル基又はコール酸由来アシル基を示し、Ａは炭素数２～５のアルキレン基又は炭素数２～５のヒドロキシアルキレン基を示し、Ｂは炭素数１～５のアルキレン基を示す）
    で表される化合物である請求項５記載の免疫学的測定用試薬。
  7. 　請求項５または６に記載の免疫学的測定用試薬を含む可溶性ＬＲ１１の免疫学的測定用キット。
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