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WO2007123179A1 - バイオセンサ - Google Patents

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Publication number
WO2007123179A1
WO2007123179A1 PCT/JP2007/058527 JP2007058527W WO2007123179A1 WO 2007123179 A1 WO2007123179 A1 WO 2007123179A1 JP 2007058527 W JP2007058527 W JP 2007058527W WO 2007123179 A1 WO2007123179 A1 WO 2007123179A1
Authority
WO
WIPO (PCT)
Prior art keywords
biosensor
reagent layer
electrode
sample solution
reagent
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Ceased
Application number
PCT/JP2007/058527
Other languages
English (en)
French (fr)
Inventor
Junko Nakayama
Yoshifumi Takahara
Eriko Yamanishi
Yoshihiro Itoh
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Panasonic Corp
Panasonic Holdings Corp
Original Assignee
Panasonic Corp
Matsushita Electric Industrial Co Ltd
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Panasonic Corp, Matsushita Electric Industrial Co Ltd filed Critical Panasonic Corp
Priority to CN2007800139987A priority Critical patent/CN101427128B/zh
Priority to US12/297,676 priority patent/US20090065356A1/en
Priority to KR1020087028231A priority patent/KR101139104B1/ko
Priority to JP2008512148A priority patent/JP5325574B2/ja
Priority to EP07741963A priority patent/EP2017608A4/en
Priority to CA002658036A priority patent/CA2658036A1/en
Publication of WO2007123179A1 publication Critical patent/WO2007123179A1/ja
Anticipated expiration legal-status Critical
Ceased legal-status Critical Current

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Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12QMEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/001Enzyme electrodes
    • C12Q1/005Enzyme electrodes involving specific analytes or enzymes
    • C12Q1/006Enzyme electrodes involving specific analytes or enzymes for glucose
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N27/00Investigating or analysing materials by the use of electric, electrochemical, or magnetic means
    • G01N27/26Investigating or analysing materials by the use of electric, electrochemical, or magnetic means by investigating electrochemical variables; by using electrolysis or electrophoresis
    • G01N27/28Electrolytic cell components
    • G01N27/30Electrodes, e.g. test electrodes; Half-cells
    • G01N27/327Biochemical electrodes, e.g. electrical or mechanical details for in vitro measurements
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N27/00Investigating or analysing materials by the use of electric, electrochemical, or magnetic means
    • G01N27/26Investigating or analysing materials by the use of electric, electrochemical, or magnetic means by investigating electrochemical variables; by using electrolysis or electrophoresis
    • G01N27/416Systems
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/66Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving blood sugars, e.g. galactose

Definitions

  • the present invention relates to a biosensor that analyzes a specific component in a sample, and particularly relates to a reagent configuration that constitutes a reagent layer of a biosensor.
  • a biosensor is a sensor that uses a biological material as a molecular identification element by utilizing the molecular recognition ability of biological materials such as microorganisms, enzymes, and antibodies.
  • the immobilized biological material uses the reaction that occurs when the specific component of interest is recognized, the consumption of oxygen due to the respiration of microorganisms, the enzymatic reaction, and luminescence.
  • an enzyme sensor for glucose is used for monitoring the pathology of diabetes.
  • an enzyme sensor for glucose for example, a biosensor as proposed in Patent Document 1 is disclosed.
  • an electrode layer composed of a measurement electrode, a counter electrode, and a detection electrode is formed on an insulating substrate, and an enzyme that specifically reacts with a specific component in a sample solution on these electrode layers, etc.
  • a reagent layer containing is formed.
  • the enzyme contained in the reagent layer glucose dehydrogenase (hereinafter referred to as PQQ-GDH) using pyrroloquinoline quinone as a coenzyme is used.
  • PQQ-GDH glucose dehydrogenase
  • the reagent layer contains an electron acceptor such as ferricyanide.
  • the enzyme PQQ—GDH reacts with gnolecose in the blood to generate gnoreconatatone and electrons, and the generated electricity.
  • the ferricyan ion which is an electron acceptor, is reduced to a ferrocyanic ion by the child.
  • a certain voltage is applied thereto, and the ferrocyan ion is again oxidized to ferricyanide ion. From the current value generated at this time, the glucose concentration (blood glucose level) in the blood can be obtained.
  • Patent Document 1 Japanese Unexamined Patent Publication No. 2000-171428
  • Patent Document 2 JP 2001-343350 A Patent Document 3: Japanese Patent Laid-Open No. 2002-207022
  • the enzyme PQQ-GDH used in the above-described conventional biosensor also reacts with saccharides other than the substrate such as maltose, which is obtained only with dalcose. Therefore, when a patient who is receiving an infusion containing icodextrin, maltose, etc., measures blood glucose using this biosensor, the blood glucose level is higher than the actual blood glucose level. Based on these measurements, excessive doses of insulin can lead to medical accidents.
  • the present invention has been made in order to solve the above-described problems, and is a biomaterial capable of measuring with high accuracy that has excellent substrate specificity for glucose and can avoid the action on saccharides other than glucose.
  • An object is to provide a sensor.
  • a biosensor according to claim 1 of the present invention has a reagent layer containing a reagent that specifically reacts with a specific component in a sample solution, and the specific component in the sample solution
  • the reagent layer includes glucose dehydrogenase using flavin adenine dinutaleide as a coenzyme and an organic acid having at least one carboxynole group in the molecule or a salt thereof. It is characterized by that.
  • the biosensor according to claim 2 of the present invention is the biosensor according to claim 1, wherein the concentration of the specific component in the sample solution is at least formed on the insulating substrate. It measures using the electrode which consists of a pole and a counter electrode, It is characterized by the above-mentioned.
  • the biosensor according to claim 3 of the present invention is the biosensor according to claim 2, wherein the reagent layer includes an electron carrier and is formed on the electrode.
  • the biosensor according to claim 4 of the present invention is the biosensor according to claim 2, wherein the reagent layer includes an electron carrier, and the reagent of the reagent layer is dissolved in the sample solution. It is formed so that an electrode may be arrange
  • the biosensor according to claim 5 of the present invention is the biosensor according to claim 1, wherein the organic acid is an aliphatic carboxylic acid, a carbonic ring carboxylic acid, or a heterocyclic carboxylic acid. It is an acid or a substituted product or derivative thereof.
  • the biosensor according to claim 6 of the present invention is the biosensor according to claim 5, wherein the organic acid is any one of citrate, citrate, phthalic acid, and phthalate. Or a combination thereof.
  • a biosensor according to claim 7 of the present invention has a reagent layer containing a reagent that specifically reacts with a specific component in a sample solution, and measures the concentration of the specific component in the sample solution.
  • the reagent layer includes a gnolecose dehydrogenase using flavin adenine dinucleotide as a coenzyme, and an organic acid having at least one amino group or carbonyl group in the molecule, or a salt thereof. It is characterized by that.
  • the biosensor according to claim 8 of the present invention is the biosensor according to claim 7, wherein the concentration of the specific component in the sample liquid is at least formed on the insulating substrate. It measures using the electrode which consists of a pole and a counter electrode, It is characterized by the above-mentioned.
  • the biosensor according to claim 9 of the present invention is the biosensor according to claim 8, wherein the reagent layer includes an electron carrier and is formed on the electrode.
  • the biosensor according to claim 10 of the present invention is the biosensor according to claim 8, wherein the reagent layer includes an electron carrier, and the reagent of the reagent layer is dissolved in the sample solution. It is formed so that an electrode may be arrange
  • the biosensor according to claim 11 of the present invention is the biosensor according to claim 7, characterized in that the organic acid is an amino acid, a substituted product thereof, or a derivative thereof. .
  • a biosensor according to claim 12 of the present invention is the biosensor according to claim 11, characterized in that the organic acid is taurine.
  • the biosensor according to claim 13 of the present invention has a reagent layer containing a reagent that specifically reacts with a specific component in the sample solution, and measures the concentration of the specific component in the sample solution.
  • the reagent layer is characterized in that the reagent layer contains glucose dehydrogenase using flavin adenine dinucleotide as a coenzyme and a sugar alcohol.
  • a biosensor according to claim 14 of the present invention is the biosensor according to claim 13.
  • the concentration of the specific component in the sample solution is measured using an electrode formed on an insulating substrate and including at least a working electrode and a counter electrode.
  • the biosensor according to claim 15 of the present invention is the biosensor according to claim 14, wherein the reagent layer includes an electron carrier and is formed on the electrode. To do.
  • the biosensor according to claim 16 of the present invention is the biosensor according to claim 14, wherein the reagent layer includes an electron carrier, and the reagent of the reagent layer is dissolved in the sample solution.
  • the electrode is formed so as to be disposed in a diffusion area that diffuses.
  • the biosensor according to claim 17 of the present invention is the biosensor according to claim 13, wherein the sugar alcohol is a chain polyhydric alcohol, a cyclic sugar alcohol, or a substitution thereof. It is a body or a derivative.
  • the biosensor according to claim 18 of the present invention is the biosensor according to claim 17, characterized in that the sugar alcohol is maltitol, latathitol, or both. .
  • the biosensor according to claim 19 of the present invention has a reagent layer including a reagent that specifically reacts with a specific component in a sample solution, and measures the concentration of the specific component in the sample solution.
  • the reagent layer includes a glucose dehydrogenase using flavin adenine dinucleotide as a coenzyme and a solubilized protein.
  • the biosensor according to claim 20 of the present invention is the biosensor according to claim 19, wherein the concentration of the specific component in the sample solution is at least formed on an insulating substrate. It measures using the electrode which consists of a working electrode and a counter electrode, It is characterized by the above-mentioned.
  • the biosensor according to claim 21 of the present invention is the biosensor according to claim 20, wherein the reagent layer includes an electron carrier and is formed on the electrode. To do.
  • the biosensor according to claim 22 of the present invention is the biosensor according to claim 20, wherein the reagent layer includes an electron transfer pair, and the reagent of the reagent layer is dissolved in the sample solution.
  • the electrode is formed so as to be disposed in a diffusion area that diffuses.
  • the biosensor according to claim 23 of the present invention is the biosensor according to claim 19.
  • the solubilized protein is ushi serum albumin, ovalbumin, gelatin, or collagen.
  • the biosensor according to claim 24 of the present invention has a reagent layer including a reagent that specifically reacts with a specific component in a sample solution, and measures the concentration of the specific component in the sample solution.
  • the reagent layer comprises a glucose dehydrogenase using flavin adenine dinucleotide as a coenzyme, an organic acid or salt thereof having at least one carboxyl group in the molecule, and at least one amino group in the molecule. Or an organic acid having a carbonyl group or a salt thereof, a sugar alcohol, and at least two additives of a solubilized protein.
  • the biosensor according to claim 25 of the present invention is the biosensor according to claim 24, wherein the concentration of the specific component in the sample solution is at least formed on an insulating substrate. It measures using the electrode which consists of a working electrode and a counter electrode, It is characterized by the above-mentioned.
  • the biosensor according to claim 26 of the present invention is the biosensor according to claim 25, wherein the reagent layer includes an electron carrier and is formed on the electrode. To do.
  • the biosensor according to claim 27 of the present invention is the biosensor according to claim 25, wherein the reagent layer includes an electron carrier, and the reagent of the reagent layer is dissolved in the sample solution.
  • the electrode is formed so as to be disposed in a diffusion area that diffuses.
  • the biosensor of the present invention since at least an organic acid or organic acid salt having a force carboxyl group is added to the reagent layer containing FAD-GDH, the enzyme reaction and the like are inhibited. It is possible to suppress the blank current value immediately and to suppress unnecessary reactions with various contaminants present in the blood, so that the linearity is good and the individual sensor It is possible to realize a biosensor capable of highly accurate measurement with little variation and excellent substrate specificity for glucose.
  • the biosensor of the present invention at least an organic acid or an organic acid salt having an amino group or a carbonyl group is added to the reagent layer containing FAD-GDH.
  • the reagent layer can be formed densely and homogeneously, and the sensor glucose concentration Therefore, it is possible to realize a biosensor capable of dramatically improving the responsiveness and capable of measuring with high accuracy and excellent in substrate specificity for glucose.
  • the biosensor of the present invention since sugar alcohol is added to the reagent layer containing FAD-GDH, the blank current value that does not inhibit the enzyme reaction or the like is suppressed. Therefore, it is possible to realize a biosensor capable of high-accuracy measurement with excellent linearity and little variation in individual sensors, excellent substrate specificity for gnolecose and storage stability.
  • the solubilized protein is added to the reagent layer containing FAD-GDH, the effect of hematocrit and the environment without inhibiting the enzyme reaction or the like.
  • the effect of temperature can be mitigated, unnecessary reactions with various contaminants present in the blood can be suppressed, and the storage stability and substrate specificity for glucose are high.
  • a biosensor capable of measuring accuracy can be realized.
  • FIG. 1 is a diagram showing a configuration example of a biosensor of the present invention.
  • FIG. 2 is a diagram showing another configuration example of the biosensor of the present invention.
  • FIG. 3 is a graph showing sensor response characteristics when maltose is added as a sample solution.
  • FIG. 4 is a graph showing the sensor response characteristics when gnorlecose is added as a sample solution.
  • FIG. 5 (a) shows a blank value when purified water is used as a sample solution
  • FIG. 5 (b) shows a case where an organic acid is used as a reagent and purified water is added as a sample solution
  • Fig. 5 (c) is a diagram showing sensor response characteristics when glucose concentration is added as a sample solution.
  • Fig. 6 is a diagram showing response characteristics of current values due to addition of taurine, which is an example of an amino acid, in a sensor using whole blood as a sample solution.
  • FIG. 7 is a diagram showing current response characteristics.
  • Fig. 8 shows the effect of hematocrit on sensor response characteristics when whole blood is used as the sample solution, and Fig. 8 (b) shows the case where BSA is added to the reagent layer. It is a figure which shows the influence of a hematocrit with respect to the sensor response characteristic.
  • FIG. 1 is a diagram showing a configuration example of a three-electrode biosensor according to the first embodiment.
  • a three-electrode biosensor shown in Fig. 1 includes an insulating substrate 1 having an electrically conductive layer formed on the surface thereof, a reagent layer 5, a spacer 6 having a notch 6a, an air And a force bar 8 having a hole 9.
  • Examples of the material of the insulating substrate 1 include polyethylene terephthalate, polycarbonate, and polyimide.
  • Examples of the material for the electrically conductive layer include simple materials such as noble metals such as gold, platinum and palladium and carbon, and composite materials such as carbon paste and noble metal paste.
  • Examples of the material of the spacer 6 and the cover 8 include polyethylene terephthalate, polycarbonate, polyimide, polybutylene terephthalate, polyamide, polyvinyl chloride, polyvinylidene chloride, and nylon.
  • a slit is provided using a laser or the like, whereby a working electrode 2, a counter electrode 3, and a detection electrode 4 are provided.
  • the detection electrode 4 can also be used as a part of a reference electrode or a counter electrode that functions not only as an electrode for detecting a shortage of the sample amount.
  • reagent layer 5 containing dalcos dehydrogenase (hereinafter referred to as FAD-GDH) using flavin adenine dinucleotide as a coenzyme, an electron carrier, and an additive is provided.
  • FAD-GDH dalcos dehydrogenase
  • the spacer 6 and the cover 8 are bonded onto the reagent layer 5 and the electrodes 2, 3, 4 to form the cavity 7 to which the sample solution is supplied.
  • the sample solution supply to the biosensor is realized by capillary action.
  • the cover 8 with air holes 9 for releasing the air inside the cavity 7 to the outside of the biosensor, the capillary action is promoted and the sample is supplied.
  • the liquid can be supplied smoothly.
  • the sample liquid is supplied into the cavity 7 by capillary action from the entrance of the cavity 7, and when it reaches the position of the reagent layer 5, a specific component in the sample solution reacts with the reagent contained in the reagent layer 5. To do.
  • the amount of change in current caused by this reaction is read by an external measuring device connected through each of the lead parts 10, 11, and 12 of the working electrode 2, the counter electrode 3, and the sensing electrode 4, and a specific component in the sample liquid is detected. Quantify.
  • FAD-GDH is employed as the enzyme included in the reagent layer 5.
  • FIG. 3 shows the sensor response characteristics when manolethose was added in the concentration range of 0 to 200 mg / dL in the presence of a glucose concentration of 80 mg / dL.
  • the vertical axis represents the action of PQQ-GDH and FAD—GDH on maltose (degree of deviation from maltose Omg / dL sensitivity (%)), and the horizontal axis represents the added maltose concentration (mg / dL). I'm going.
  • PQQ— GDH is an enzyme used in conventional biosensors, and its sensor response value increases in proportion to the amount of maltose added.
  • FAD-GDH is an enzyme used in the biosensor of Embodiment 1, and even if the amount of maltose added is increased, the sensor response value remains the same as when no maltose is added. This shows that the action on maltose is low.
  • FIG. 4 shows sensor response characteristics in the case where gnolecose is added as a sample solution.
  • the vertical axis represents the sensor response value (current value A))
  • the horizontal axis represents the glucose concentration (mg / d L).
  • the enzyme FAD-GDH employed in Embodiment 1 has substantially the same substrate specificity for glucose as the enzyme PQQ-GDH employed in the conventional biosensor, It can be seen that its action on maltose is low. [0060] Therefore, in the first embodiment, by adopting FAD-GDH as an enzyme, it has excellent substrate specificity to darcos and has low activity against maltose, that is, has a good correlation with dalcos. It is possible to realize an excellent biosensor that is not affected by maltose.
  • an organic acid having at least one carboxyl group in the molecule or an organic acid salt is used as an additive to be added to the reagent layer 5.
  • An organic acid or an organic acid salt having at least one carboxyl group in the molecule is a functional group having a high reactivity that exists in an oxidized electron carrier and an enzyme protein contained in the reagent. It acts to prevent the electron carrier from being denatured (reduced) from the oxidized form to the reduced form upon contact with the group.
  • the FAD contained in the reagent layer 5 can be contained under the presence of heat or moisture.
  • the noise current generated by the reduction reaction between GDH and electron carrier can be suppressed, the deterioration of biosensor performance can be prevented, and the storage stability can be improved.
  • unnecessary reactions with various contaminants present in the blood, especially blood cells can be suppressed at the same time, so that variations in individual sensors are suppressed, and good linearity is achieved. Can be measured with high accuracy and high intercept
  • Examples of the organic acid or organic acid salt having at least one carboxynole group in the molecule include aliphatic carboxylic acid, carbocyclic carboxylic acid, heterocyclic carboxylic acid, and salts thereof.
  • examples of the aliphatic carboxylic acid include malonic acid, succinic acid, gnoretaric acid, adipic acid, maleic acid, fumaric acid, and salts thereof.
  • the strength of the effect is particularly preferable as the longer straight chain and the higher molecular weight have three or more hydrocarbon chains.
  • a reagent having more hydrophilic functional groups in the molecular structure is more preferable.
  • Examples of the carbocyclic carboxylic acid include benzoic acid, phthalic acid, isophthalic acid, and terephthalic acid. And salts thereof, and the same effects as described above can be obtained by using these salts.
  • heterocyclic carboxylic acid examples include 2-funoleic acid, nicotinic acid, and isonicotinic acid, and salts thereof. By using these, the same effects as described above can be obtained. .
  • organic acids or organic acid salts the most preferable ones are dartaric acid, adipic acid, phthalic acid, and benzoic acid.
  • the addition amount of these organic acid or organic acid salt is suitably in the range of 0.0005 to: OOmM as the reagent solution concentration with respect to the enzyme solution concentration of 500 to 2500 U / ml.
  • FAD-GDH having excellent substrate specificity for gnolecose and an organic acid or organic compound having at least a carboxynole group are used. Since it contains acid salts, it can suppress the blank current value that does not inhibit enzyme reactions, etc., and also includes unnecessary reactions with various contaminants present in the blood. Since it can suppress, the substrate specificity and storage stability with respect to glucose can be improved, and a highly accurate measurement can be performed.
  • the reagent layer 5 shown in Fig. 1 has FAD-GDH, an electron carrier, and an organic compound having at least one amino group or carbonyl group in the molecule. It contains an acid or an organic acid salt.
  • the other components are the same as those of the biosensor according to the first embodiment, and the description thereof is omitted.
  • an organic acid having at least one amino group or carbonyl group in the molecule or an organic acid salt is used as an additive to be added to the reagent layer 5.
  • an organic acid having at least one amino group or carbonyl group in the molecule, or The organic acid salt can form the surface of the reagent layer 5 very smoothly and uniformly.
  • the reagent layer 5 contains an inorganic salt such as ferricyanium potassium used as an electron carrier, the reagent layer is easily crystallized in the drying process of the reagent solution, but in the reagent layer 5, By containing an organic acid or organic acid salt having at least one amino group or carbonyl group in the molecule, the growth of the inorganic salt crystal can be inhibited.
  • an inorganic salt such as ferricyanium potassium used as an electron carrier
  • the inorganic salt whose crystal growth is inhibited is present in the reagent layer 5 in a fine particle state, it can come into close contact with the enzyme molecule in a close and uniform manner. A reagent layer state with good transfer efficiency can be realized. In addition, since the solubility of the reagent layer can be increased, the sensitivity and linearity of the sensor can be dramatically increased.
  • the organic acid or organic acid salt having at least one amino group or carbonyl group in the molecule includes glycine, alanine, norin, leucine, isoleucine, serine, threonine, methionine, asparagine, Examples include glutamine, arginine, lysine, histidine, phenylalanine, tryptophan, proline and the like, salts thereof, amino acids such as sarcosine, betaine, and taurine, or substitutes or derivatives thereof and salts thereof.
  • these amino acids, substitution products, derivatives, and salts thereof glycine, serine, proline, threonine, lysine, and taurine are particularly preferable because of their high crystallization inhibitory effects.
  • addition amount of these amino acids, or their substitutes or derivatives and salts thereof is suitably 10-: OOmM as the reagent solution concentration with respect to the enzyme solution concentration of 500-2500 U / ml.
  • the reagent layer 5 has an organic substance having at least an amino group or a carbonyl group, and FAD-GDH having excellent substrate specificity for gnolecose. Since the acid or organic acid salt is included, the reagent layer can be formed densely and homogeneously, and the responsiveness of the sensor to the gno-lecose concentration can be dramatically improved. It can be carried out.
  • the biosensor according to Embodiment 3 is characterized in that the reagent layer 5 shown in Fig. 1 includes FAD-GDH, an electron carrier, and a sugar alcohol.
  • the other components are the same as those of the biosensor according to the first embodiment, and the description thereof is omitted.
  • sugar alcohol is used as an additive to be added to reagent layer 5.
  • the sugar alcohol is produced by contacting an oxidized electron carrier with a part of the functional group rich in reactivity present in the enzyme protein contained in the reagent, so that the electron carrier is changed from an oxidized form to a reduced form. It has the function of suppressing denaturation (reduction).
  • the addition of sugar alcohol to the reagent layer 5 causes a reduction reaction between the FAD-GDH contained in the reagent layer 5 and the electron carrier in the presence of heat or moisture.
  • the noise current generated can be suppressed, so that the performance of the biosensor can be prevented from deteriorating.
  • unnecessary reactions with various contaminants present in blood, particularly blood cells can be suppressed together, the linearity is good, and variations in individual sensors can be suppressed. it can.
  • sugar alcohol examples include sonolebitonore, maltitol, xylitol, mannito nore, latathitol, reduced palatinose, arabinitol, glycerol, ribitonor, galactitol, sedheptitol, persitol, boremitonole, sflytol, polygalitol, Examples thereof include chain polyhydric alcohols such as iditol, taritorenole, alitol, isilitol, reduced starch saccharified product, and isilitol, and cyclic sugar alcohols.
  • sugar alcohols are stereoisomers, substituents, or derivatives.
  • maltitol and latathitol are the most suitable materials because they are relatively easy to obtain due to their comparatively low unit cost of materials, and because they are extremely effective in suppressing noise current. I can say that.
  • the addition amount of these sugar alcohols is suitably 0.:! To 50 mM as the reagent solution concentration with respect to the enzyme solution concentration of 500 to 2500 UZml.
  • the reagent layer 5 contains FAD-GDH having excellent substrate specificity for gnolecose and a sugar alcohol. It can suppress the blank current value that does not inhibit the reaction, etc. Since unnecessary reactions with various contaminants present can also be suppressed, the substrate specificity and storage stability for glucose can be increased, and highly accurate measurement can be performed.
  • the biosensor according to Embodiment 4 is characterized in that the reagent layer 5 shown in FIG. 1 includes FAD_GDH, an electron transmitter, and a solubilized protein.
  • the other components are the same as those of the biosensor according to the first embodiment, and the description thereof is omitted.
  • Embodiment 4 a solubilized protein is used as an additive to be added to the reagent layer 5.
  • the solubilized protein has a variety of functions such as a transporting action of a drug and the like without inhibiting an enzyme reaction, maintenance of osmotic pressure, and maintenance of electrolyte balance.
  • solubilized proteins examples include ushi serum albumin (BSA), egg albumin, gelatin, collagen, and the like.
  • the addition amount of these solubilized proteins is suitably 0.01 to 1. OOwt% with respect to the enzyme solution concentration of 500 to 2500 U / ml.
  • the reagent layer 5 includes FAD-GDH having excellent substrate specificity for gnolecose and a solubilized protein, The effect of hematocrit and the influence of environmental temperature can be alleviated without inhibiting the enzyme reaction, etc., and the storage stability and the substrate specificity for gnolecose can be improved, enabling high-precision measurement.
  • the additive added to the reagent layer 5 is an organic acid or organic acid salt having at least one carboxyl group in the molecule, and at least one in the molecule.
  • an organic acid or organic acid salt having an amino group or a carbonyl group, an organic acid salt, a sugar alcohol, or a solubilized protein was added has been described. It is also possible to combine them.
  • the electron carrier contained in the reagent includes potassium ferricyanide, p-benzoquinone and derivatives thereof, phenazine methosulfate, methylene blue, pheucose and its Derivatives and the like can be used.
  • the reagent layer 5 has been described as being provided on the electrode. Specifically, the reagent layer 5 is provided on the entire surface or a part of the electrode. In addition, within the range that does not deteriorate the performance of the biosensor, that is, in the diffusion area where the reagent in the reagent layer dissolves and diffuses in the sample solution.
  • the reagent layer 5 may be arranged so that an electrode is provided.
  • Embodiments 1 to 4 the three-electrode biosensor has been described. However, a two-electrode biosensor may be manufactured. Figure 2 shows an example of the configuration of this two-electrode biosensor.
  • the two-electrode biosensor shown in FIG. 2 includes an insulating substrate 101, a reagent layer 105, a spacer 106, and a cover 108.
  • the material of each component can be the same as in Figure 1.
  • a working electrode 102 and a counter electrode 103 are formed by providing slits using a laser or the like.
  • a reagent layer 105 containing FAD-GDH, an electron carrier, and an additive is formed on this electrode.
  • the spacer 107 having the notch 106a and the cover 108 are bonded onto the reagent layer 105 and the electrodes 102 and 103, thereby forming the cavity 107 to which the sample liquid is supplied.
  • the sample liquid is supplied into the cavity 7 by capillary action from the entrance of the cavity 107, and when reaching the position of the reagent layer 5, a specific component in the sample liquid reacts with the reagent contained in the reagent layer 105. .
  • the amount of change in current caused by this reaction is read by an external measuring device connected through the lead portions 110 and 111 of the working electrode 102 and the counter electrode 103, and a specific component in the sample liquid is quantified.
  • Example 1 On the insulating substrate 101 made of polyethylene terephthalate, a working electrode 102, a counter electrode 103, and a powerful electrode layer are provided by screen printing. On the electrode layer, it contained an enzyme (FAD- GDH: 600-1500 U / ml), an electron carrier (potassium ferricyanide), an amino acid (taurine: 50-85 mM), and a sugar alcohol (maltitol: 1-3 mM). Reagent layer 105 is formed. On top of that, a spacer 106 made of polyethylene terephthalate and a cover 108 made of polyethylene terephthalate are provided. In this way, a two-electrode blood glucose level measurement sensor was produced.
  • FAD- GDH 600-1500 U / ml
  • an electron carrier potassium ferricyanide
  • amino acid taurine
  • maltitol 1-3 mM
  • the sensor response value (blank current value) when purified water is used as a sample solution is measured for the blood glucose level measurement sensor produced above.
  • the results are shown in Fig. 5 (a).
  • PQQ-GDH is used as an enzyme.
  • the sensor response characteristics of a conventional biosensor to which maltitol 1 to 3 mM was added were shown.
  • the blank current value of the biosensor using the conventional PQQ- GDH is about 0.03 / i A, whereas the FAD- GDH of the present invention.
  • the blank current value of the biosensor using A is as high as 0.40 / iA. If the blank current value is high, glucose cannot be accurately quantified, so it is necessary to suppress the blank current value.
  • an organic acid having a function of suppressing noise current was added to the reagent layer.
  • the phthalate concentration was adjusted to 0.05 mM and the citrate concentration was adjusted to 0.08 mM.
  • the blank current value became smaller than when no additive was added.
  • the phthalate concentration was adjusted to 0.115 mM and the citrate concentration was adjusted to 0.24 mM and added, the blank current value became smaller.
  • FIG. 5 (c) shows the sensor response current value with respect to the glucose concentration at this time. As shown in Fig. 5 (c), even when the organic acid prepared as described above is added to FAD-GDH, it has substrate specificity to glucose that is almost the same as PQQ-GDH. Understand
  • the biosensor of Example 2 was produced by the same procedure as in Example 1 above. Then, taurine, which is an example of an amino acid, was further added to the reagent layer 105 of the biosensor.
  • FIG. 6 shows the current response characteristics when taurine is added to the reagent layer 105 at OmM, 15 mM, and 85 mM.
  • the biosensor of Example 3 was manufactured by the same procedure as in Example 1 above. Then, maltitol or lactitol, which is an example of a sugar alcohol, was further added to the reagent layer 105 of the biosensor. Also, use 7 whole blood samples with glucose concentration of 80 mg / dl as the sample solution.
  • Figure 7 (a) shows the storage characteristics in a high-temperature, high-humidity environment (temperature 40 ° C, humidity 80%) when maltitol or latathitol is added to reagent layer 5 in OmM, 5 mM, or lOmM, respectively. Indicates.
  • Fig. 7 (b) shows a high-temperature and high-humidity environment (temperature 40 ° C, humidity 80%) when maltitol or latathitol was added to the reagent layer 105 at 0 mM, 5 mM, or 10 mM, respectively.
  • the response characteristic of the background current is shown.
  • FIG. 7 (c) shows the current response characteristics when maltitol or latathitol is added to the reagent layer 105 at OmM, 5 mM, and 1 OmM, respectively.
  • FIG. 8 (a) is a graph showing the effect of hematocrit on the sensor response characteristics when whole blood containing a glucose concentration of 350 mg / dL is used as the sample solution.
  • the vertical axis shows the deviation from the sensitivity of the hematocrit value 45%
  • the horizontal axis shows the hematocrit value.
  • the sensor response characteristics when FAD-GDH is used as an enzyme are more susceptible to hematocrit, especially in the low hematocrit concentration range, than when PQQ-GHH is used. Therefore, a biosensor with excellent storage stability that is not easily affected by hematocrit is desired.
  • FIG. 8 (b) shows the effect of hematocrit on the sensor response characteristics when BSA is added to the reagent layer.
  • the effect of the hematocrit could be suppressed to the same extent as PQQ-GDH in the low hematocrit concentration range.
  • the biosensor according to the present invention can be used as an enzyme sensor for glucose, which is excellent in substrate specificity for glucose and enables highly accurate measurement.

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Abstract

本発明のバイオセンサは、液体試料中のグルコースを測定するバイオセンサにおいて、絶縁性基板上に設けられた、フラビンアデニンジヌクレオチドを補酵素としたグルコースデヒドロゲナーゼを含む試薬層中に、分子内に少なくとも一つのカルボキシル基を有する有機酸もしくは有機酸塩、分子内に少なくとも一つのアミノ基もしくはカルボニル基を有する有機酸あるいは有機酸塩、糖アルコール、あるいは可溶化蛋白質の何れか、またはそれらの組み合わせた添加剤を添加した。  これにより、グルコースに対する基質特異性及び保存安定性を高めることができ、また、グルコース以外の糖類への作用を回避することができる。

Description

明 細 書
バイオセンサ
技術分野
[0001] 本発明は、試料中の特定成分を分析するバイオセンサに関し、特に、バイオセンサ の試薬層を構成する試薬構成に関するものである。
背景技術
[0002] バイオセンサは、微生物、酵素、抗体等の生物材料の分子認識能力を利用し、生 物材料を分子識別素子として応用したセンサである。すなわち、固定化された生物 材料が、 目的の特定成分を認識したときに起こる反応、微生物の呼吸による酸素の 消費、酵素反応、発光などを利用したものである。
[0003] バイオセンサの中でも酵素センサの実用化は進んでおり、特に、グルコース用の酵 素センサは、糖尿病の病状監視に利用されている。グルコース用の酵素センサの一 例として、例えば、特許文献 1で提案されたようなバイオセンサが開示されている。
[0004] このバイオセンサは、絶縁性基板上に、測定電極、対電極および検知電極からなる 電極層を形成し、これら電極層上に、試料液中の特定成分と特異的に反応する酵素 などを含む試薬層を形成してなるものである。上記試薬層に含まれる酵素として、ピ ロロキノリンキノンを補酵素としたグルコースデヒドロゲナーゼ(以下、 PQQ— GDHと 呼ぶ)を用いている。さらに試薬層には、酵素 PQQ— GDH以外に、フェリシアン化力 リウムなどの電子受容体が含まれている。
[0005] このような構成のバイオセンサに血液を添加すると、試薬層では、酵素 PQQ— GD Hが、血液中のグノレコースと反応して、グノレコノラタトンと電子を生成し、該生成した電 子によって電子受容体であるフェリシアンィ匕イオンがフヱロシアンィ匕イオンに還元され る。そこに一定の電圧をかけ、フエロシアンィ匕イオンを再度フェリシアン化イオンに酸 化させる。この時に生じる電流値から血液中のグルコース濃度(血糖値)を求めること ができる。
特許文献 1 :特開 2000— 171428号公報
特許文献 2:特開 2001— 343350号公報 特許文献 3:特開 2002— 207022号公報
発明の開示
発明が解決しょうとする課題
[0006] し力 ながら、上記従来のバイオセンサで使用している酵素 PQQ— GDHは、ダル コースだけでなぐマルトースなど基質以外の糖類にも反応してしまう。そのため、ィコ デキストリン、マルトース等を含む輸液を投与中の患者が、このバイオセンサを使用し て血糖値を測定すると、実際の血糖値より高い値を示すことになる。このような測定値 をもとに、過剰のインスリン投与を行うと、医療事故にもつながる恐れがある。
[0007] 本発明は、上記問題点を解決するためになされたものであり、グルコースに対する 基質特異性に優れ、グルコース以外の糖類への作用を回避することができる高精度 の測定が可能なバイオセンサを提供することを目的とする。
課題を解決するための手段
[0008] 上記課題を解決するために、本発明の請求項 1にかかるバイオセンサは、試料液 中の特定成分と特異的に反応する試薬を含む試薬層を有し、試料液中の特定成分 の濃度を計測するバイオセンサであって、前記試薬層は、フラビンアデニンジヌタレ ォチドを補酵素としたグルコースデヒドロゲナーゼと、その分子内に少なくとも 1つの カルボキシノレ基を有する有機酸もしくはその塩とを含む、ことを特徴とする。
[0009] また、本発明の請求項 2にかかるバイオセンサは、請求項 1に記載のバイオセンサ において、前記試料液中の特定成分の濃度を、絶縁性基板上に形成された、少なく とも作用極と対極とからなる電極を用いて計測する、ことを特徴とする。
[0010] また、本発明の請求項 3にかかるバイオセンサは、請求項 2に記載のバイオセンサ において、前記試薬層は、電子伝達体を含み、前記電極上に形成される、ことを特 徴とする。
[0011] また、本発明の請求項 4にかかるバイオセンサは、請求項 2に記載のバイオセンサ において、前記試薬層は、電子伝達体を含み、当該試薬層の試薬が試料液に溶解 して拡散する拡散エリア内に電極が配置されるよう形成される、ことを特徴とする。
[0012] また、本発明の請求項 5にかかるバイオセンサは、請求項 1に記載のバイオセンサ において、前記有機酸は、脂肪族カルボン酸、炭酸環カルボン酸、複素環カルボン 酸、もしくはそれらの置換体、あるいは誘導体である、ことを特徴とする。
[0013] また、本発明の請求項 6にかかるバイオセンサは、請求項 5に記載のバイオセンサ において、前記有機酸は、クェン酸、クェン酸塩もしくはフタル酸、フタル酸塩のいず れカ またはそれらの組み合わせである、ことを特徴とする。
[0014] また、本発明の請求項 7にかかるバイオセンサは、試料液中の特定成分と特異的に 反応する試薬を含む試薬層を有し、試料液中の特定成分の濃度を計測するバイオ センサであって、前記試薬層は、フラビンアデニンジヌクレオチドを補酵素としたグノレ コースデヒドロゲナーゼと、その分子内に少なくとも 1つのアミノ基、もしくはカルボ二 ル基を有する有機酸、あるいはその塩とを含む、ことを特徴とする。
[0015] また、本発明の請求項 8にかかるバイオセンサは、請求項 7に記載のバイオセンサ において、前記試料液中の特定成分の濃度を、絶縁性基板上に形成された、少なく とも作用極と対極とからなる電極を用いて計測する、ことを特徴とする。
[0016] また、本発明の請求項 9にかかるバイオセンサは、請求項 8に記載のバイオセンサ において、前記試薬層は、電子伝達体を含み、前記電極上に形成される、ことを特 徴とする。
[0017] また、本発明の請求項 10にかかるバイオセンサは、請求項 8に記載のバイオセンサ において、前記試薬層は、電子伝達体を含み、当該試薬層の試薬が試料液に溶解 して拡散する拡散エリア内に電極が配置されるよう形成される、ことを特徴とする。
[0018] また、本発明の請求項 11にかかるバイオセンサは、請求項 7に記載のバイオセンサ において、前記有機酸は、アミノ酸、もしくはそれらの置換体、あるいは誘導体である 、ことを特徴とする。
[0019] また、本発明の請求項 12にかかるバイオセンサは、請求項 11に記載のバイオセン サにおいて、前記有機酸は、タウリンである、ことを特徴とする。
[0020] また、本発明の請求項 13にかかるバイオセンサは、試料液中の特定成分と特異的 に反応する試薬を含む試薬層を有し、試料液中の特定成分の濃度を計測するバイ ォセンサであって、前記試薬層は、フラビンアデニンジヌクレオチドを補酵素としたグ ルコースデヒドロゲナーゼと、糖アルコールとを含む、ことを特徴とする。
[0021] また、本発明の請求項 14にかかるバイオセンサは、請求項 13に記載のバイオセン サにおいて、前記試料液中の特定成分の濃度を、絶縁性基板上に形成された、少 なくとも作用極と対極とからなる電極を用いて計測する、ことを特徴とする。
[0022] また、本発明の請求項 15にかかるバイオセンサは、請求項 14に記載のバイオセン サにおいて、前記試薬層は、電子伝達体を含み、前記電極上に形成される、ことを 特徴とする。
[0023] また、本発明の請求項 16にかかるバイオセンサは、請求項 14に記載のバイオセン サにおいて、前記試薬層は、電子伝達体を含み、当該試薬層の試薬が試料液に溶 解して拡散する拡散エリア内に電極が配置されるよう形成される、ことを特徴とする。
[0024] また、本発明の請求項 17にかかるバイオセンサは、請求項 13に記載のバイオセン サにおいて、前記糖アルコールは、鎖状の多価アルコール、もしくは環式糖アルコー ノレ、あるいはそれらの置換体もしくは誘導体である、ことを特徴とする。
[0025] また、本発明の請求項 18にかかるバイオセンサは、請求項 17に記載のバイオセン サにおいて、前記糖アルコールは、マルチトール、ラタチトールのいずれか、または 両方である、ことを特徴とする。
[0026] また、本発明の請求項 19にかかるバイオセンサは、試料液中の特定成分と特異的 に反応する試薬を含む試薬層を有し、試料液中の特定成分の濃度を計測するバイ ォセンサであって、前記試薬層は、フラビンアデニンジヌクレオチドを補酵素としたグ ルコースデヒドロゲナーゼと、可溶化蛋白質とを含む、ことを特徴とする。
[0027] また、本発明の請求項 20にかかるバイオセンサは、請求項 19に記載のバイオセン サにおいて、前記試料液中の特定成分の濃度を、絶縁性基板上に形成された、少 なくとも作用極と対極とからなる電極を用いて計測する、ことを特徴とする。
[0028] また、本発明の請求項 21にかかるバイオセンサは、請求項 20に記載のバイオセン サにおいて、前記試薬層は、電子伝達体を含み、前記電極上に形成される、ことを 特徴とする。
[0029] また、本発明の請求項 22にかかるバイオセンサは、請求項 20に記載のバイオセン サにおいて、前記試薬層は、電子伝達対を含み、当該試薬層の試薬が試料液に溶 解して拡散する拡散エリア内に電極が配置されるよう形成される、ことを特徴とする。
[0030] また、本発明の請求項 23にかかるバイオセンサは、請求項 19に記載のバイオセン サにおいて、前記可溶化蛋白質は、ゥシ血清アルブミン、卵アルブミン、ゼラチン、あ るいはコラーゲンである、ことを特徴とする。
[0031] また、本発明の請求項 24にかかるバイオセンサは、試料液中の特定成分と特異的 に反応する試薬を含む試薬層を有し、試料液中の特定成分の濃度を計測するバイ ォセンサであって、前記試薬層は、フラビンアデニンジヌクレオチドを補酵素としたグ ルコースデヒドロゲナーゼと、その分子内に少なくとも 1つのカルボキシル基を有機酸 もしくはその塩、その分子内に少なくとも 1つのアミノ基もしくはカルボ二ル基を有する 有機酸あるいはその塩、糖アルコール、および可溶化蛋白質のうちの少なくとも 2つ 以上の添加剤とを含む、ことを特徴とする。
[0032] また、本発明の請求項 25にかかるバイオセンサは、請求項 24に記載のバイオセン サにおいて、前記試料液中の特定成分の濃度を、絶縁性基板上に形成された、少 なくとも作用極と対極とからなる電極を用いて計測する、ことを特徴とする。
[0033] また、本発明の請求項 26にかかるバイオセンサは、請求項 25に記載のバイオセン サにおいて、前記試薬層は、電子伝達体を含み、前記電極上に形成される、ことを 特徴とする。
[0034] また、本発明の請求項 27にかかるバイオセンサは、請求項 25に記載のバイオセン サにおいて、前記試薬層は、電子伝達体を含み、当該試薬層の試薬が試料液に溶 解して拡散する拡散エリア内に電極が配置されるよう形成される、ことを特徴とする。 発明の効果
[0035] 本発明のバイオセンサによれば、 FAD— GDHを含む試薬層中に、少なくとも力ノレ ボキシル基を有する有機酸、もしくは有機酸塩を添加するようにしたので、酵素反応 等を阻害することなぐブランク電流値を抑えることができ、また、血液中に存在する 様々な夾雑物質との不必要な反応をも併せて抑制することができるため、直線性が 良好で、かつ、センサ個々のバラツキの少ない、グルコースに対する基質特異性に 優れた、高精度の測定が可能なバイオセンサを実現することができる。
[0036] また、本発明のバイオセンサによれば、 FAD— GDHを含む試薬層中に、少なくと もァミノ基、もしくはカルボ二ル基を有する有機酸あるいは有機酸塩を添加するように したので、試薬層を緻密かつ均質に形成することができ、センサのグルコース濃度に 対する応答性を飛躍的に高めることができる、グルコースに対する基質特異性に優 れた、高精度の測定が可能なバイオセンサを実現することができる。
[0037] また、本発明のバイオセンサによれば、 FAD— GDHを含む試薬層中に、糖アルコ ールを添加するようにしたので、酵素反応等を阻害することなぐブランク電流値を抑 えることができるため、直線性が良好で、かつ、センサ個々のバラツキの少ない、グノレ コースに対する基質特異性及び保存安定に優れた、高精度の測定が可能なバイオ センサを実現することができる。
[0038] また、本発明のバイオセンサによれば、 FAD— GDHを含む試薬層中に、可溶化 蛋白質を添加するようにしたので、酵素反応等を阻害することなぐへマトクリットの影 響および環境温度の影響を緩和することができる、血液中に存在する様々な夾雑物 質との不必要な反応をも併せて抑制することができる、保存安定性及びグルコースに 対する基質特異性に優れた高精度の測定が可能なバイオセンサを実現することがで きる。
図面の簡単な説明
[0039] [図 1]図 1は、本発明のバイオセンサの構成例を示す図である。
[図 2]図 2は、本発明のバイオセンサの他の構成例を示す図である。
[図 3]図 3は、試料液としてマルトースを添加した場合のセンサ応答特性を示す図で ある。
[図 4]図 4は、試料液としてグノレコースを添カ卩した場合のセンサ応答特性を示す図で ある。
[図 5]図 5 (a)は、試料液として精製水を用いた場合のブランク値を示す図、図 5 (b) は、試薬として有機酸を用い、試料液として精製水を添加した場合のブランク値を示 す図、図 5 (c)は、試料液としてグルコース濃度を添加した場合のセンサ応答特性を 示す図である。
[図 6]図 6は、試料液として全血を用いた場合のセンサにおいて、アミノ酸の一例であ るタウリンの添加による電流値の応答特性を示す図である。
[図 7]図 7 (a)は、試料液として全血を用い、試薬層に糖アルコールを添加した場合の 高温高湿環境下での保存特性を示す図、図 7 (b)は、ノ ックグラウンド電流の応答特 性を示す図、図 7 (C)は、電流の応答特性を示す図である。
[図 8]図 8 (a)は、試料液として全血を用いた場合のセンサ応答特性に対するへマトク リットの影響を示す図、図 8 (b)は、試薬層中に BSAを添加した場合のセンサ応答特 性に対するへマトクリットの影響を示す図である。
符号の説明
[0040] 1 基板
2 作用極
3 対極
検知電極
5 試薬層
6 スぺーサ
6a 切り欠き部
7 キヤビティ
8 カバー
9 空気孔
10、 11、 12 リード部
101 基板
102 作用極
103 対極
105 試薬層
106 スぺーサ
106a 切り欠き咅
107 キヤビティ
108 カバー
109 空気孔
110、 111 リード咅
発明を実施するための最良の形態
[0041] 以下に、本発明の実施の形態について図面を参照しながら説明する。 [0042] (実施の形態 1)
以下に、本発明の実施の形態 1によるバイオセンサについて説明する。
[0043] 図 1は、本実施の形態 1による 3電極方式のバイオセンサの構成例を示す図である
[0044] 図 1に示す 3電極方式のバイオセンサは、その表面に電気伝導層が形成された絶 縁性基板 1と、試薬層 5と、切り欠き部 6aを有するスぺーサ 6と、空気孔 9を有する力 バー 8とを備えたものである。
[0045] 上記絶縁性基板 1の材料としては、ポリエチレンテレフタレート、ポリカーボネート、 ポリイミドなどがある。
[0046] 上記電気伝導層の材料としては、金、白金、パラジウムなどの貴金属やカーボンな どの単体材料、あるいは、カーボンペーストや貴金属ペーストなどの複合材料があげ られる。
[0047] 上記スぺーサ 6およびカバー 8の材料としては、ポリエチレンテレフタレート、ポリ力 ーボネート、ポリイミド、ポリブチレンテレフタレート、ポリアミド、ポリ塩化ビニル、ポリ塩 化ビニリデン、ナイロンなどがあげられる。
[0048] このような構成のバイオセンサの作製方法にっレ、て説明する。
[0049] 絶縁性の基板 1上に、電気伝導層をスパッタリング蒸着法やスクリーン印刷法など によって形成後、レーザなどを用いてスリットを設けることにより、作用極 2、対極 3、お よび検知電極 4を形成する。検知電極 4とは、検体量の不足を検知するための電極と して機能するだけでなぐ参照電極あるいは対極の一部として用いることも可能であ る。
[0050] そして、電極 2、 3、 4上に、フラビンアデニンジヌクレオチドを補酵素とするダルコ一 スデヒドロゲナーゼ(以下、 FAD— GDHと呼ぶ)、電子伝達体、および添加剤を含む 試薬層 5を形成する。その後、試薬層 5及び電極 2、 3、 4上に、スぺーサ 6と、カバー 8とを貼り合わせることにより、試料液が供給されるキヤビティ 7を形成する。なお、バイ ォセンサへの試料液供給は、毛細管現象により実現されるが、キヤビティ 7内の空気 をバイオセンサ外部へ逃がすための空気孔 9をカバー 8に設けることで、毛細管現象 を促進し、試料液の供給をスムーズに行うことができる。 [0051] 試料液は、キヤビティ 7の入り口から毛細管現象によりキヤビティ 7内に供給され、試 薬層 5の位置に到達すると、試料液中の特定成分が、試薬層 5に含まれる試薬と反 応する。この反応により生じる電流の変化量を、作用極 2、対極 3、検知電極 4のそれ ぞれのリード部 10、 11、 12を通じて接続された外部の測定装置により読み取り、試 料液中の特定成分を定量する。
[0052] 以下に、試薬層 5中に含まれる試薬構成について説明する。
[0053] まず、酵素について説明する。
[0054] 本実施の形態 1では、試薬層 5中に含む酵素として FAD— GDHを採用している。
以下に、 FAD— GDHを採用した理由について、図 3及び図 4を用いて説明する。
[0055] 図 3に、グルコース濃度 80mg/dLの存在下で、マノレトースを 0〜200mg/dLの 濃度範囲で添加した場合のセンサ応答特性を示す。図 3において、縦軸は、 PQQ- GDH及び FAD— GDHのマルトースに対する作用性(マルトース Omg/dL感度から の乖離度(%) )を、横軸は、添加マルトース濃度 (mg/dL)を表してレ、る。
[0056] PQQ— GDHは、従来のバイオセンサで使用している酵素であり、マルトースの添 加量に比例してセンサ応答値が上昇している。一方、 FAD— GDHは、本実施の形 態 1のバイオセンサで採用している酵素であり、マルトースの添加量を増加させても、 センサ応答値は、マルトース無添加の時と変わらず低い値を示しており、マルトース への作用性が低レ、ことが分かる。
[0057] 図 4に、試料液としてグノレコースを添加した場合のセンサ応答特性を示す。図 4に おいて、縦軸は、センサ応答値(電流値 A) )を、横軸は、グルコース濃度 (mg/d L)を表している。
[0058] PQQ— GDHを酵素として用いた場合、グルコース濃度に比例してセンサ応答値 が上昇している。また、 FAD— GDHを酵素として用いた場合、 PQQ— GDHを用い た場合と同様、グルコース濃度に比例してセンサ応答値が上昇している。したがって 、両酵素のグルコースに対する作用性はほぼ同じである。
[0059] 以上のことから、本実施の形態 1で採用している酵素 FAD— GDHは、従来のバイ ォセンサで採用されている酵素 PQQ— GDHとほぼ同じグルコースに対する基質特 異性を有しながら、マルトースに対する作用性は低いことがわかる。 [0060] 従って、本実施の形態 1では、酵素として FAD— GDHを採用することで、ダルコ一 スに対する基質特異性に優れ、マルトースに対する作用性の低い、つまり、ダルコ一 スとの相関がよぐマルトースの影響を受けない、優れたバイオセンサを実現すること ができる。
[0061] 次に、添加剤について説明する。
[0062] 本実施の形態 1では、試薬層 5中に添加する添加剤として、分子内に少なくとも一 つのカルボキシル基を有する有機酸、もしくは有機酸塩を用いた。
[0063] この分子内に少なくとも一つのカルボキシル基を有する有機酸、もしくは有機酸塩 は、酸化型の電子伝達体と、試薬中に含まれる酵素蛋白に存在する反応性に富ん だ一部の官能基とが接触して、電子伝達体が酸化型から還元型に変性する(還元さ れる)ことを抑制する働きがある。
[0064] そのため、試薬層 5中に、分子内に少なくとも一つのカルボキシル基を有する有機 酸、もしくは有機酸塩を添加することで、熱や水分の介在下において、試薬層 5に含 まれる FAD— GDHと電子伝達体との還元反応により発生するノイズ電流を抑制し、 バイオセンサの性能が悪化するのを防ぎ、保存安定性を高めることができる。さらに、 血液中、特には血球に存在する様々な夾雑物質との不必要な反応をも併せて抑制 することができるため、センサ個々のバラツキを抑え、良好な直線性を実現、つまり、 回帰式の傾きが大きく切片が小さくすることができ、高精度の測定を行うことができる
[0065] なお、分子内に少なくとも一つのカルボキシノレ基を有する有機酸もしくは有機酸塩 としては、脂肪族カルボン酸、炭素環カルボン酸、複素環カルボン酸等や、それらの 塩が挙げられる。
[0066] 例えば、脂肪族カルボン酸としては、マロン酸、コハク酸、グノレタル酸、アジピン酸、 マレイン酸、フマル酸などや、それらの塩があげられる。効果の度合いは、直鎖が長 く分子量の大きいものほど大きぐ炭化水素鎖が 3つ以上あるもの力 特に好ましい。 また、ノ ォセンサに用レ、る試薬としては、水に対する溶解性が高いことが求められ るため、分子構造中に、より多くの親水性官能基を持つものがより好ましい。
[0067] 炭素環カルボン酸としては、安息香酸、フタル酸、イソフタル酸、テレフタル酸など や、それらの塩があげられ、これらを用いることでも前記と同様の効果を得ることがで きる。
[0068] 複素環カルボン酸としては、 2—フノレ酸、ニコチン酸、イソニコチン酸などや、それら の塩があげられ、これらを用レ、ることでも、前記と同様の効果を得ることができる。
[0069] 上述の脂肪族ならびに炭素環カルボン酸、複素環を有するカルボン酸もしくはカル ボン酸塩以外にも、カルボン酸ならびにカルボン酸塩の一部の官能基が別の官能基 に置き換えられた、例えばリンゴ酸、ォキサ口酢酸、クェン酸、ケトグルタル酸などや それらの塩においても前記と同様の効果を得ることができる。
[0070] これらの有機酸もしくは有機酸塩のなかで最も好適なものは、ダルタル酸、アジピン 酸、フタル酸、安息香酸である。
[0071] なお、これらの有機酸もしくは有機酸塩の添カ卩量は、酵素溶液濃度 500〜2500U /mlに対し、試薬溶液濃度として 0. 0005〜: !OOmM範囲が適当である。
[0072] このような実施の形態 1のバイオセンサによれば、試薬層 5中に、グノレコースに対す る基質特異性の優れた FAD— GDHと、少なくともカルボキシノレ基を有する有機酸も しくは有機酸塩とを含ませるようにしたので、酵素反応等を阻害することなぐブランク 電流値を抑えることができ、また、血液中に存在する様々な夾雑物質との不必要な反 応をも併せて抑制することができるため、グルコースに対する基質特異性及び保存 安定性を高めることができ、高精度の測定を行うことができる。
[0073] (実施の形態 2)
以下に、本発明の実施の形態 2によるバイオセンサについて説明する。
[0074] 本実施の形態 2によるバイオセンサは、図 1で示した試薬層 5が、 FAD-GDH,電 子伝達体、および、分子内に少なくとも一つのアミノ基もしくはカルボ二ル基を有する 有機酸または有機酸塩を含むことを特徴とする。なお、他の構成要素は、上記実施 の形態 1によるバイオセンサと同様であるため説明を省略する。
[0075] 以下、添加剤について説明する。
[0076] 本実施の形態 2では、試薬層 5に添加する添加剤として、分子内に少なくとも一つ のァミノ基もしくはカルボ二ル基を有する有機酸、または有機酸塩を用いた。
[0077] 分子内に少なくとも一つのアミノ基、もしくはカルボ二ル基を有する有機酸、または 有機酸塩は、試薬層 5の表面状態を極めて平滑、且つ均質に形成することができる。
[0078] 特に、試薬層 5中に電子伝達体として用いられるフェリシアンィ匕カリウムなどの無機 塩を含む場合には、試薬溶液の乾燥過程において試薬層が結晶化しやすいが、試 薬層 5中に、分子内に少なくとも一つのアミノ基、あるいはカルボ二ル基を有する有機 酸、もしくは有機酸塩が含まれることにより、当該無機塩の結晶の成長を阻害すること ができる。
[0079] そして、結晶の成長を阻害された無機塩は、微少な粒子状態で試薬層 5中に存在 するため、酵素分子と密に、均一に接触することが可能となり、酵素分子との電子伝 達効率が良好な試薬層状態が実現できる。また、試薬層の溶解性を高めることがで きるため、センサの感度、ならびに直線性を飛躍的に高めることが可能となる。
[0080] なお、分子内に少なくとも一つのアミノ基、あるいはカルボ二ル基を有する有機酸、 もしくは有機酸塩としては、グリシン、ァラニン、ノ リン、ロイシン、イソロイシン、セリン、 トレオニン、メチォニン、ァスパラギン、グルタミン、アルギニン、リシン、ヒスチジン、フ ェニルァラニン、トリプトファン、プロリンなどや、それらの塩、あるいはサルコシン、ベ タイン、タウリンなどのアミノ酸、もしくはそれらの置換体あるいは誘導体及びその塩が 挙げられる。また、これらのアミノ酸もしくは置換体、あるいは誘導体、及びその塩の 中でも、グリシン、セリン、プロリン、トレオニン、リシン、タウリンは、特に結晶化阻害の 効果が高く好適である。
[0081] なお、これらのアミノ酸、もしくはそれらの置換体あるいは誘導体及びその塩の添カロ 量は、酵素溶液濃度 500〜2500U/mlに対し、試薬溶液濃度として 10〜: !OOmM が適当である。
[0082] このような実施の形態 2のバイオセンサによれば、試薬層 5中に、グノレコースに対す る基質特異性の優れた FAD— GDHと、少なくともアミノ基もしくはカルボ二ル基を有 する有機酸、あるいは有機酸塩とを含ませるようにしたので、試薬層を緻密かつ均質 に形成することができるとともに、センサのグノレコース濃度に対する応答性を飛躍的 に高めることができ、高精度の測定を行うことができる。
[0083] (実施の形態 3)
以下、本発明の実施の形態 3によるバイオセンサについて説明する。 [0084] 本実施の形態 3によるバイオセンサは、図 1で示した試薬層 5が、 FAD— GDH、電 子伝達体、及び糖アルコールを含むことを特徴とする。なお、他の構成要素は、上記 実施の形態 1によるバイオセンサと同様であるため説明を省略する。
[0085] 以下、添加剤について説明する。
[0086] 本実施の形態 3では、試薬層 5に添加する添加剤として、糖アルコールを用いた。
[0087] 糖アルコールは、酸化型の電子伝達体と、試薬中に含まれる酵素蛋白に存在する 反応性に富んだ一部の官能基が接触して、電子伝達体が酸化型から還元型に変性 する(還元される)ことを抑制する働きがある。
[0088] そのため、試薬層 5中に、糖アルコールを添加することで、熱や水分の介在下にお レ、て、試薬層 5に含まれる FAD - GDHと電子伝達体との還元反応が生じることによ り発生するノイズ電流を抑制することができるため、バイオセンサの性能が悪化するこ とを防ぐことができる。また、血液中、特には血球に存在する様々な夾雑物質との不 必要な反応をも併せて抑制することができるため、直線性が良好で、かつ、センサ個 々のバラツキを抑制することができる。
[0089] なお、糖アルコールとしては、ソノレビトーノレ、マルチトール、キシリトール、マンニトー ノレ、ラタチトール、還元パラチノース、ァラビ二トール、グリセロール、リビトーノレ、ガラク チトール、セドヘプチトール、ペルセィトール、ボレミトーノレ、スチラシトール、ポリガリト ール、イジトール、タリトーノレ、ァリトール、イシリトール、還元澱粉糖化物、イシリトール などの鎖状の多価アルコールや、環式糖アルコールがあげられる。また、これらの糖 アルコールの立体異性体、置換体、または誘導体であっても、同様の効果を得ること ができる。なお、これらの糖アルコールの中でも、マルチトール、ラタチトールは、比較 的材料単価が安ぐ容易に入手もでき、また、ノイズ電流を抑制する効果が飛躍的に 高いため、最も好適な材料であると言える。
[0090] なお、これら糖アルコールの添加量は、酵素溶液濃度 500〜2500UZmlに対し、 試薬溶液濃度として 0.:!〜 50mMが適当である。
[0091] このような実施の形態 3のバイオセンサによれば、試薬層 5中に、グノレコースに対す る基質特異性の優れた FAD— GDHと、糖アルコールとを含ませるようにしたので、 酵素反応等を阻害することなぐブランク電流値を抑えることができ、また、血液中に 存在する様々な夾雑物質との不必要な反応をも併せて抑制することができるため、グ ルコースに対する基質特異性及び保存安定性を高めることができ、高精度の測定を 行うことができる。
[0092] (実施の形態 4)
以下、本発明の実施の形態 4によるバイオセンサについて説明する。
[0093] 本実施の形態 4によるバイオセンサは、図 1で示した試薬層 5が、 FAD_GDH、電 子伝達体、及び可溶化蛋白質を含むことを特徴とする。なお、他の構成要素は、上 記実施の形態 1によるバイオセンサと同様であるため説明を省略する。
[0094] 以下、添加剤について説明する。
[0095] 本実施の形態 4では、試薬層 5に添加する添加剤として、可溶化蛋白質を用いた。
[0096] 可溶化蛋白質は、酵素反応等を阻害することなぐ薬剤等の運搬作用、浸透圧の 維持、電解質バランスの維持など多彩な働きを有する。
[0097] そのため、試薬層 5中に、可溶化蛋白質を添加することで、酵素反応等を阻害する ことなく、グルコース電極近傍への供給を制限することができ、へマトクリットの影響、 および環境温度の影響を低減することができる。
[0098] なお、可溶化蛋白質としては、ゥシ血清アルブミン(BSA)、卵アルブミン、ゼラチン 、コラーゲン等があげられる。
[0099] なお、これら可溶化蛋白質の添加量は、酵素溶液濃度 500〜2500U/mlに対し 、 0. 01〜: 1. OOwt%が適当である。
[0100] このような実施の形態 4のバイオセンサによれば、試薬層 5中に、グノレコースに対す る基質特異性の優れた FAD— GDHと、可溶化蛋白質とを含ませるようにしたので、 酵素反応等を阻害することなぐへマトクリットの影響、および環境温度の影響を緩和 することができ、保存安定性、かつグノレコースに対する基質特異性を高め、高精度の 測定を行うことができる。
[0101] なお、上記実施の形態 1から 4では、上記試薬層 5中に添加する添加剤として、分 子内に少なくとも一つのカルボキシル基を有する有機酸もしくは有機酸塩、分子内に 少なくとも一つのアミノ基もしくはカルボ二ル基を有する有機酸あるいは有機酸塩、糖 アルコール、可溶化蛋白質をそれぞれ添加した例を説明したが、さらにはそれらを組 み合わせることも可能である。
[0102] また、上記実施の形態 1から 4において、試薬中に含まれる電子伝達体としては、フ エリシアン化カリウム、 p—べンゾキノンおよびその誘導体、フエナジンメトサルフェート 、メチレンブルー、フエ口センおよびその誘導体などを用いることができる。
[0103] また、上記実施の形態 1から 4では、試薬層 5が、電極上に設けられるものとして説 明をしたが、具体的には、電極上の全面、もしくは一部に、試薬層 5を配置することが でき、また、それ以外にも、バイオセンサの性能を悪化させることのない範囲内、すな わち、試薬層中の試薬が試料液に溶解して拡散する拡散エリア内に電極が設けられ るよう、試薬層 5を配置してもよい。
[0104] また、上記実施の形態 1から 4では、 3電極方式のバイオセンサについて示したが、 2電極方式のバイオセンサを作製しても良レ、。この 2電極方式のバイオセンサの構成 例を図 2に示す。
[0105] 図 2に示す 2電極方式のバイオセンサは、絶縁性基板 101と、試薬層 105と、スぺ ーサ 106と、カバー 108とを有する。各構成要素の材料は、図 1と同様のものが考え られる。
[0106] このようなバイオセンサの作製方法について説明する。
[0107] 絶縁性の基板 101上に、電気伝導層をスパッタリング蒸着法やスクリーン印刷法な どにより形成後、レーザなどを用いてスリットを設けることにより作用極 102、および対 極 103を形成する。この電極上に、 FAD— GDH、電子伝達体、および添加剤を含 む試薬層 105を形成する。そして、試薬層 105及び電極 102、 103上に、切り欠き部 106aを有するスぺーサ 106とカバー 108とを貼り合わせることにより、試料液が供給 されるキヤビティ 107が形成される。
[0108] 試料液は、キヤビティ 107の入り口から毛細管現象によりキヤビティ 7内に供給され 、試薬層 5の位置に到達すると、試料液中の特定成分が、試薬層 105に含まれる試 薬と反応する。この反応により生じる電流の変化量を、作用極 102、対極 103のそれ ぞれのリード部 110、 111を通じて接続された外部の測定装置により読み取り、試料 液中の特定成分を定量する。
[0109] (実施例 1) ポリエチレンテレフタレートからなる絶縁基板 101上に、スクリーン印刷により作用極 102と、対極 103と、力 なる電極層を設ける。その電極層上に、酵素(FAD— GDH : 600〜1500U/ml)、電子伝達体(フェリシアン化カリウム)、アミノ酸(タウリン: 50〜 85mM)、および糖アルコール(マルチトール: l〜3mM)を含んだ試薬層 105を形 成する。その上に、ポリエチレンテレフタレートからなるスぺーサ 106と、同じくポリエ チレンテレフタレートからなるカバー 108とを設ける。このようにして 2電極方式の血糖 値測定センサを作製した。
[0110] 上記作製した血糖値測定センサに、試料液として精製水を用いた場合のセンサ応 答値 (ブランク電流値)を計測する。その結果を、図 5 (a)に示す。ここでは比較のた め、酵素として PQQ— GDHを用レ、、試薬層中に、酵素溶液濃度 1000〜: 1500U/ mlに対して、 0. 05〜0.15mMのクェン酸塩、タウリン 50〜85mM、マルチトール 1 〜3mMが添加された従来のバイオセンサのセンサ応答特性を示した。
[0111] この図 5 (a)から分かるように、従来の PQQ— GDHを用いたバイオセンサのブラン ク電流値は、約 0. 03 /i Aであるのに対し、本発明の FAD— GDHを用いたバイオセ ンサのブランク電流値は、 0. 40 /i Aと高い値を示している。ブランク電流値が高いと 、グルコースの正確な定量ができなくなるため,ブランク電流値を抑える必要がある。
[0112] そこで、ノイズ電流を抑制する働きのある有機酸を試薬層に添加した。具体的には 、 FAD— GDH酵素溶液濃度 1500U/mlに対し、フタル酸塩の濃度を 0. 05mM、 クェン酸塩の濃度を 0· 08mMとなるよう調製して添加したところ、図 5 (b)に示すよう に、無添加時に比べ、ブランク電流値が小さくなつた。また、フタル酸塩の濃度を 0. 0 15mM、クェン酸塩の濃度を 0. 24mMに調製し添加した場合には、ブランク電流値 力 り小さくなつた。
[0113] このときのグルコース濃度に対するセンサ応答電流値を、図 5 (c)に示す。図 5 (c) に示すように、 FAD— GDHに、上述したように調製した有機酸を添カ卩しても、 PQQ — GDHとほぼ同程度の、グルコースに対する基質特異性を有していることが分かる
[0114] 以上のように、試薬層中に有機酸を添加することで、ブランク電流値が小さぐダル コースに対する基質特異性が高い、高精度の測定が可能なバイオセンサを作製する こと力 Sできる。
[0115] (実施例 2)
次に、試薬層 105にアミノ酸を添加した場合のセンサ応答特性について説明する。
[0116] 本実施例 2のバイオセンサは、上記実施例 1と同様の手順により作製した。そして、 該バイオセンサの試薬層 105に、アミノ酸の一例であるタウリンをさらに添カ卩した。
[0117] 図 6に、試薬層 105中にタウリンを OmM、 15mM、 85mM添加した場合の電流の 応答特性を示す。
[0118] 図 6を見て判るように、タウリンの添力卩量を多くするほど、センサ応答特性は飛躍的 に向上していることがわかる。
[0119] したがって、試薬層 105にタウリンを添加することで、グルコースに対する基質特異 性に優れ、高精度の測定が可能なバイオセンサを実現することができる。
[0120] (実施例 3)
次に、試薬層 105に糖アルコールを添加した場合のセンサ応答特性について説明 する。
[0121] 本実施例 3のバイオセンサは、上記実施例 1と同様の手順により作製した。そして、 該バイオセンサの試薬層 105に、糖アルコールの一例であるマルチトールあるいはラ クチトールをさらに添加した。また、試料液として、グルコース濃度 80mg/dlを含む全 血を用い 7こ。
[0122] 図 7 (a)は、試薬層 5中にマルチトールあるいはラタチトールをそれぞれ OmM、 5m M、 lOmM添加した場合の高温高湿環境下(温度 40°C、湿度 80%)での保存特性 を示す。
[0123] 図 7 (a)を見て判るように、マルチトールまたはラタチトールを添カ卩した場合の方が、 高温高湿度環境による電流値上昇を抑制することができ、センサの保存特性は明ら かに向上する。
[0124] また、図 7 (b)は、試薬層 105中にマルチトールあるいはラタチトールをそれぞれ 0 mM、 5mM、 lOmM添加した場合の高温高湿環境下(温度 40°C、湿度 80%)での バックグラウンド電流の応答特性を示す。
[0125] 図 7 (b)を見て判るように、マルチトールまたはラタチトールを添加することで、高温 高湿環境下でのバックグラウンド電流値の上昇を抑制することができ、センサの保存 特性が向上する。
[0126] 図 7 (c)は、試薬層 105中にマルチトールあるいはラタチトールをそれぞれ OmM, 5 mM, 1 OmM添加した場合の電流の応答特性を示している。
[0127] 図 7 (c)を見て判るように、マルチトールまたはラタチトールを添加しても、センサの グノレコース濃度に対する応答特性を低下させることなく良好な直線性を維持すること ができる。
[0128] 以上のことから、糖アルコールであるマルチトールまたはラタチトールを添加するこ とで、直線性が良好で、保存安定性に優れた、高精度の測定が可能なバイオセンサ を実現すること力 Sできる。
[0129] (実施例 4)
次に、へマトクリットの影響について説明する。
[0130] 図 8 (a)は、試料液として、グルコース濃度 350mg/dLを含有する全血を用いた場 合のセンサ応答特性に対するへマトクリットの影響を示すグラフである。図 8において 、縦軸は、へマトクリット値 45%感度からの乖離を示し、横軸は、へマトクリット値を示 す。
[0131] PQQ— GDHを用いた場合のセンサ応答特性と、 FAD— GDHを用いた場合のセ ンサ応答特性を比較すると、へマトクリット値が約 25〜75%の範囲では、へマトクリツ トの影響によるセンサ応答特性の差異は見られなかった。へマトクリット値が 25%以 下の低濃度範囲では、へマトクリットの影響に顕著な差異が見られ、 FAD— GDHを 用いた場合の方に特にへマトクリットの影響が大きいことが認められた。
[0132] このように、酵素として FAD— GDHを用いた場合のセンサ応答特性は、 PQQ-G DHを用いた場合に比べ、特に、低へマトクリット濃度範囲において、へマトクリットの 影響を受けやすい。そのため、へマトクリットの影響を受けにくい、保存安定性に優れ たバイオセンサが望まれる。
[0133] そこで、試料層 105に、可溶化蛋白質である BSAを添加した。図 8 (b)は、試薬層 中に BSAを添加した場合のセンサ応答特性に対するへマトクリットの影響を示す図 である。 [0134] 0.1wt%の BSAを試薬層 105に添加したところ、低へマトクリット濃度範囲において 、 PQQ— GDHと同程度にまでへマトクリットの影響を抑えることができた。
[0135] このように、従来の PQQ— GDHを用いたバイオセンサと同程度にまでへマトクリット の影響を抑え、保存安定性、かつグルコースに対する基質特異性に優れたバイオセ ンサを作製することができた。
産業上の利用可能性
[0136] 本発明によるバイオセンサは、グルコースに対する基質特異性に優れた高精度の 測定が可能なグルコース用酵素センサとして、利用可能である。

Claims

請求の範囲
[1] 試料液中の特定成分と特異的に反応する試薬を含む試薬層を有し、試料液中の 特定成分の濃度を計測するバイオセンサであって、
前記試薬層は、フラビンアデニンジヌクレオチドを補酵素としたグルコースデヒドロ ゲナーゼと、その分子内に少なくとも 1つのカルボキシノレ基を有する有機酸もしくはそ の塩とを含む、
ことを特徴とするバイオセンサ。
[2] 請求項 1に記載のバイオセンサにおいて、
前記試料液中の特定成分の濃度を、絶縁性基板上に形成された、少なくとも作用 極と対極とからなる電極を用いて計測する、
ことを特徴とするバイオセンサ。
[3] 請求項 2に記載のバイオセンサにおいて、
前記試薬層は、電子伝達体を含み、前記電極上に形成される、
ことを特徴とするバイオセンサ。
[4] 請求項 2に記載のバイオセンサにおいて、
前記試薬層は、電子伝達体を含み、当該試薬層の試薬が試料液に溶解して拡散 する拡散エリア内に電極が配置されるよう形成される、
ことを特徴とするバイオセンサ。
[5] 請求項 1に記載のバイオセンサにおいて、
前記有機酸は、脂肪族カルボン酸、炭酸環カルボン酸、複素環カルボン酸、もしく はそれらの置換体、あるいは誘導体である、
ことを特徴とするバイオセンサ。
[6] 請求項 5に記載のバイオセンサにおいて、
前記有機酸は、クェン酸、クェン酸塩もしくはフタル酸、フタル酸塩のいずれ力 \ま たはそれらの組み合わせである、
ことを特徴とするバイオセンサ。
[7] 試料液中の特定成分と特異的に反応する試薬を含む試薬層を有し、試料液中の 特定成分の濃度を計測するバイオセンサであって、 前記試薬層は、フラビンアデニンジヌクレオチドを補酵素としたグルコースデヒドロ ゲナーゼと、その分子内に少なくとも 1つのアミノ基、もしくはカルボ二ル基を有する有 機酸、あるいはその塩とを含む、
ことを特徴とするバイオセンサ。
[8] 請求項 7に記載のバイオセンサにおいて、
前記試料液中の特定成分の濃度を、絶縁性基板上に形成された、少なくとも作用 極と対極とからなる電極を用いて計測する、
ことを特徴とするバイオセンサ。
[9] 請求項 8に記載のバイオセンサにおいて、
前記試薬層は、電子伝達体を含み、前記電極上に形成される、
ことを特徴とするバイオセンサ。
[10] 請求項 8に記載のバイオセンサにおいて、
前記試薬層は、電子伝達体を含み、当該試薬層の試薬が試料液に溶解して拡散 する拡散エリア内に電極が配置されるよう形成される、
ことを特徴とするバイオセンサ。
[11] 請求項 7に記載のバイオセンサにおいて、
前記有機酸は、アミノ酸、もしくはそれらの置換体、あるいは誘導体である、 ことを特徴とするバイオセンサ。
[12] 請求項 11に記載のバイオセンサにぉレ、て、
前記有機酸は、タウリンである、
ことを特徴とするバイオセンサ。
[13] 試料液中の特定成分と特異的に反応する試薬を含む試薬層を有し、試料液中の 特定成分の濃度を計測するバイオセンサであって、
前記試薬層は、フラビンアデニンジヌクレオチドを補酵素としたグルコースデヒドロ ゲナーゼと、糖アルコールとを含む、
ことを特徴とするバイオセンサ。
[14] 請求項 13に記載のバイオセンサにおいて、
前記試料液中の特定成分の濃度を、絶縁性基板上に形成された、少なくとも作用 極と対極とからなる電極を用いて計測する、
ことを特徴とするバイオセンサ。
[15] 請求項 14に記載のバイオセンサにぉレ、て、
前記試薬層は、電子伝達体を含み、前記電極上に形成される、
ことを特徴とするバイオセンサ。
[16] 請求項 14に記載のバイオセンサにぉレ、て、
前記試薬層は、電子伝達体を含み、当該試薬層の試薬が試料液に溶解して拡散 する拡散エリア内に電極が配置されるよう形成される、
ことを特徴とするバイオセンサ。
[17] 請求項 13に記載のバイオセンサにおいて、
前記糖アルコールは、鎖状の多価アルコール、もしくは環式糖アルコール、あるい はそれらの置換体もしくは誘導体である、
ことを特徴とするバイオセンサ。
[18] 請求項 17に記載のバイオセンサにおいて、
前記糖アルコールは、マルチトール、ラタチトールのいずれか、または両方である、 ことを特徴とするバイオセンサ。
[19] 試料液中の特定成分と特異的に反応する試薬を含む試薬層を有し、試料液中の 特定成分の濃度を計測するバイオセンサであって、
前記試薬層は、フラビンアデニンジヌクレオチドを補酵素としたグルコースデヒドロ ゲナーゼと、可溶化蛋白質とを含む、
ことを特徴とするバイオセンサ。
[20] 請求項 19に記載のバイオセンサにおいて、
前記試料液中の特定成分の濃度を、絶縁性基板上に形成された、少なくとも作用 極と対極とからなる電極を用いて計測する、
ことを特徴とするバイオセンサ。
[21] 請求項 20に記載のバイオセンサにおいて、
前記試薬層は、電子伝達体を含み、前記電極上に形成される、
ことを特徴とするバイオセンサ。
[22] 請求項 20に記載のバイオセンサにおいて、
前記試薬層は、電子伝達対を含み、当該試薬層の試薬が試料液に溶解して拡散 する拡散エリア内に電極が配置されるよう形成される、
ことを特徴とするバイオセンサ。
[23] 請求項 19に記載のバイオセンサにおいて、
前記可溶化蛋白質は、ゥシ血清アルブミン、卵アルブミン、ゼラチン、あるいはコラ 一ゲンである、
ことを特徴とするバイオセンサ。
[24] 試料液中の特定成分と特異的に反応する試薬を含む試薬層を有し、試料液中の 特定成分の濃度を計測するバイオセンサであって、
前記試薬層は、フラビンアデニンジヌクレオチドを補酵素としたグルコースデヒドロ ゲナーゼと、その分子内に少なくとも 1つのカルボキシノレ基を有機酸もしくはその塩、 その分子内に少なくとも 1つのアミノ基もしくはカルボ二ル基を有する有機酸あるいは その塩、糖アルコール、および可溶化蛋白質のうちの少なくとも 2つ以上の添加剤と を含む、
ことを特徴とするバイオセンサ。
[25] 請求項 24に記載のバイオセンサにぉレ、て、
前記試料液中の特定成分の濃度を、絶縁性基板上に形成された、少なくとも作用 極と対極とからなる電極を用いて計測する、
ことを特徴とするバイオセンサ。
[26] 請求項 25に記載のバイオセンサにおいて、
前記試薬層は、電子伝達体を含み、前記電極上に形成される、
ことを特徴とするバイオセンサ。
[27] 請求項 25に記載のバイオセンサにおいて、
前記試薬層は、電子伝達体を含み、当該試薬層の試薬が試料液に溶解して拡散 する拡散エリア内に電極が配置されるよう形成される、
ことを特徴とするバイオセンサ。
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