WO2007091919A1 - Method for treating chronic illnesses (variants), method for producing a biograft (variants) and a biograft (variants) - Google Patents
Method for treating chronic illnesses (variants), method for producing a biograft (variants) and a biograft (variants) Download PDFInfo
- Publication number
- WO2007091919A1 WO2007091919A1 PCT/RU2007/000013 RU2007000013W WO2007091919A1 WO 2007091919 A1 WO2007091919 A1 WO 2007091919A1 RU 2007000013 W RU2007000013 W RU 2007000013W WO 2007091919 A1 WO2007091919 A1 WO 2007091919A1
- Authority
- WO
- WIPO (PCT)
- Prior art keywords
- cells
- mononuclear
- autologous
- patient
- tissue
- Prior art date
- Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
- Ceased
Links
Classifications
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K35/00—Medicinal preparations containing materials or reaction products thereof with undetermined constitution
- A61K35/12—Materials from mammals; Compositions comprising non-specified tissues or cells; Compositions comprising non-embryonic stem cells; Genetically modified cells
- A61K35/28—Bone marrow; Haematopoietic stem cells; Mesenchymal stem cells of any origin, e.g. adipose-derived stem cells
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K40/00—Cellular immunotherapy
- A61K40/10—Cellular immunotherapy characterised by the cell type used
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K40/00—Cellular immunotherapy
- A61K40/20—Cellular immunotherapy characterised by the effect or the function of the cells
- A61K40/22—Immunosuppressive or immunotolerising
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
- A61K40/00—Cellular immunotherapy
- A61K40/40—Cellular immunotherapy characterised by antigens that are targeted or presented by cells of the immune system
- A61K40/41—Vertebrate antigens
- A61K40/418—Antigens related to induction of tolerance to non-self
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61P—SPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
- A61P37/00—Drugs for immunological or allergic disorders
- A61P37/02—Immunomodulators
- A61P37/04—Immunostimulants
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
- C12N5/00—Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
- C12N5/06—Animal cells or tissues; Human cells or tissues
- C12N5/0602—Vertebrate cells
- C12N5/0634—Cells from the blood or the immune system
- C12N5/0645—Macrophages, e.g. Kuepfer cells in the liver; Monocytes
Definitions
- a method for the treatment of chronic diseases (options), a method for producing a biograft (options), a biograft (options).
- the invention relates to medicine and can be used to treat chronic diseases.
- Fetal cells are allogeneic material, the effectiveness of which is gradually reduced due to immune rejection.
- This method eliminates the possibility of bone tissue appearing in the cell injection zone due to cultivation.
- the use of bone marrow cells taken from patients with chronic diseases does not significantly increase the effectiveness of the method, because the suspension used consists of cells with a reduced regenerative potential and almost does not contain cells having a tissue-specific orientation of the regenerative effect on the corresponding damaged organ.
- the latter is due to the fact that in case of chronic organ damage in the blood and bone marrow, the content of tissue-specific cell clones is reduced due to the total decrease in it of viable functioning tissue capable of producing tissue-specific clones. This explains why the effectiveness of the method used does not exceed 60-70% (V.I. Shumakov et al. VestRAMN 2004, Ns9, p. 44-47).
- the claimed inventions are aimed at eliminating the above disadvantages and achieving a technical result, which consists in increasing the regeneration potential of autologous mononuclear cells, which in turn provides an increase in the effectiveness of treatment of a wide range of chronic diseases.
- the technical result is achieved due to the fact that in a method for the treatment of chronic diseases, including the collection of cellular material from a patient with subsequent isolation of mononuclear autologous cells containing stem cells from it, culturing mononuclear autologous cells to obtain biograft and subsequent transplantation of the latter to the patient, cultivation is carried out with the addition of tissue-specific antigen corresponding to the damaged organ.
- the stimulation index is determined as the ratio of the total production of reactive oxygen species by blood cells treated with a cAMP-phosphodiesterase inhibitor to the total production of reactive oxygen species by intact cells.
- the method for producing a biograft which includes taking cellular material from a patient with subsequent isolation of mononuclear autologous cells containing stem cells from it, culturing mononuclear autologous cells in a growth medium in a growth medium at a tissue-specific antigen corresponding to the damaged organ is added to the culture.
- biograft which includes isolated mononuclear autologous cells, contains stem cells that were previously cultured with a tissue-specific antigen corresponding to the damaged organ.
- biograft including the isolated autologous mononuclear cells, contains lymphoid and / or dendritic cells, previously cultured with the addition of tissue-specific antigen corresponding to the damaged organ.
- the claimed methods of treating chronic diseases eliminate the above disadvantages of analogues due to the fact that even before the collection of autologous mononuclear cells (AMK) in a patient, the immune status is examined and immunocorrection is carried out under the control of the “blood cell stimulation index”, which can significantly increase the regenerative potential of these cells.
- ANK autologous mononuclear cells
- FIG. 2. - a graph for predicting a favorable result of the introduction of autologous cells to a patient with a stimulation index> 1.0.
- FIG. 3. - graph for predicting an unfavorable result of the introduction of autologous cells to the patient with a stimulation index ⁇ 1.0.
- FIG. 4. - graph for predicting an unfavorable result of the introduction of KKM of patient M with a stimulation index ⁇ 1.0.
- FIG. 5. Schedule of individual selection of immunocorrectors by chemiluminescence.
- FIG. 6. - graph for predicting a favorable outcome for the administration of AMK to patient M with a stimulation index> 1.0.
- FIG. 7. the dynamics of changes in the cellular composition of AMK depending on cultivation conditions (without and by the addition of TA).
- FIG. 8. quantitative assessment of regional changes in perfusion according to standard projections of static myocardial scintigraphy with Tc-99m in patient JI. before and after 1 month. after administration of AMK (cultivation with
- the proposed method includes: immunological examination of patients and immunocorrection under the control of “stimulation index)) of mononuclear cells from the blood of patients (normalization of which indicates the restoration of immunological homeostasis); autologous cell collection (bone marrow, blood); isolating from them fractions of nucleus-containing cells, culturing cells in a growth medium in the presence of a tissue-specific antigen (TA) identical to the damaged organ for 1-15 days and transplanting the prepared cell culture into a patient with a chronic disease of internal organs.
- stimulation index a tissue-specific antigen
- Evaluation of the stimulation index of cells of the immune system includes the following steps:
- the determination of the stimulation index was carried out as follows.
- control and experimental cells were introduced with 40 * 10 3 cells.
- An interferon inducer containing a cAMP-phosphodiesterase inhibitor, a derivative of acridonoacetic acid (10-carboxymethyl-9-acridanone) and N-methylglucamine was additionally added to the experimental cuvette.
- Hanks solution was added to the control cuvette.
- the control and experimental cuvettes were incubated in a thermostat for 60 min at 37 ° C.
- chemiluminescent cell response curves were recorded in the control and experimental cuvettes using a Xelum-2001 01/01 chemiluminometer ( Russia) in combination with an IBM computer -PC at the temperature of the counting chamber 37 0 C 5 for 15 minutes
- Luminol (5-amino-2,3-dihydro-l, 4-phthalazinedione, Sigma) at a final concentration of 10 3 M was used as a luminescence enhancer
- PMA forbol-12- myristate-13-acetate, Sigma
- ROS reactive oxygen species
- Stimulation index ⁇ 1.0 predicts an unfavorable result of the introduction of autologous cells in this patient.
- a stimulation index> 1.0 predicts a favorable result of the introduction of autologous cells to a given patient (Fig. 2), a stimulation index ⁇ 1.0 predicts an unfavorable result of the introduction of autologous cells to a given patient (Fig. 3).
- Neovir Splenopid Reaferon Roferon Roncoleukin T-activin Timogen Cycloferon
- the course of immunocorrection with a stimulation index below 1.0 is 14 days.
- a re-determination of the stimulation index is carried out.
- Cellular material is taken in patients only with a stimulation index greater than 1.0.
- ANK autologous mononuclear cells
- Bone marrow is taken under operating conditions, subject to the same aseptic rules, as with other surgical interventions. Pain sensations during bone marrow harvesting are mainly associated with a high sensitivity of the periosteum when piercing with a needle and require adequate pain relief.
- the choice between general, spinal, epidural or local anesthesia for analgesia depends on both the medical condition and the preferences of the donor and anesthetist. In 95% of cases, adequate analgesia by local anesthesia is possible.
- the donor is hospitalized in the morning on the eve of the fence and, in the absence of complications, can be discharged in the afternoon of the fence with the appointment of analgesics, recommendations for changing the dressing at the injection site.
- a puncture of the skin and subcutaneous fat is made, through which needles for aspiration are inserted.
- the cortical plate of the iliac crest is pierced and the bone marrow is aspirated from the spongy bone.
- the skin and subcutaneous fat are moved with an aspiration needle.
- Classical technology requires aspirating the bone marrow from each injection in small portions (3-5) ml into a 20-ml syringe. After filling the syringe, the doctor disconnects it from the needle and passes it to the nurse, who transfers the contents of the syringe into a polymer container with an anticoagulant.
- a bandage is applied in the area of skin puncture, and the CM is immediately sent to the laboratory for further processing in a special container with an anticoagulant at + 4C °.
- the volume of KM taken should be 150-200 ml.
- An aspirate of bone marrow suspension of cells is placed in 50 ml tubes and centrifuged. Plasma and interphase with nucleated cells are collected and centrifuged again. Plasma is removed, and a lysing solution is added to the resulting pellet to eliminate red blood cells. The tube is closed and shaken vigorously, then centrifuged. The precipitate was resuspended in DMEM growth medium containing fetal serum, insulin, gentamicin and a tissue-specific antigen (for obtaining, see below). Cells are plated on Petri dishes and cultured at 37 ° C in an atmosphere containing 5% CO 2 and at 95% humidity for 1-15 days. The biograft is the remaining mononuclear cells after cultivation and centrifugation at 1500 rpm for 5 minutes Hanks solution (5 ml) was added to the resulting pellet and transplanted to the recipient.
- DMEM growth medium containing fetal serum, insulin, gentamicin and a tissue-specific antigen (for obtaining, see
- a leukocyte fraction of blood cells containing lymphocytes and monocytes is isolated from the patient’s blood, which is then cultured with a tissue-specific antigen. After cultivation, the leukocyte fraction containing lymphocytes and monocytes is washed from the tissue-specific antigen by centrifugation. The obtained leukocyte cells are added to the isolated autologous mononuclear cells containing stem cells and cultured at 37 ° C. in an atmosphere containing 5% CO 2 and at 95% humidity for 1-15 days. The remaining mononuclear cells after cultivation were centrifuged at 1500 rpm for 5 min, Hanks solution (5 ml) was added and transplanted to the recipient.
- tissue-specific antigen freshly isolated organ tissue identical to the damaged one was taken. Allogeneic or xenogenic tissue can be used as a source, and biopsy material can be used if possible.
- the fabric is mechanically homogenized into fragments of not more than 0.5 mm 3 .
- the resulting homogenate is poured with a Hanks solution 1: 1 and placed in the freezer for 1 hour, then the fabric is thawed, this cycle is repeated 3 times. Then the homogenate is centrifuged at 2000 rpm for 10 minutes. The supernatant is taken and filtered through a filter with a pore diameter of 0.22 ⁇ m to ensure sterility of the solution.
- the protein concentration in the solution is determined by the Lowry method and should be in the range from 0.5 to 1 mg / ml.
- the groups of patients did not differ from each other in medians of such parameters as age, duration of heart failure, and the number of myocardial infarctions.
- the parameters of intracardiac hemodynamics were determined in these patients before and after transplantation of autologous mononuclear cells: the final systolic volume of the left ventricle (KCO JDK), the final diastolic volume of the left ventricle (KDO JDK), the final systolic size of the left ventricle (KCP JDK), the final diastolic size of the left ventricle (JDK CDD), left ventricular expulsion fraction (PI JDK), and the growth of these indicators was calculated, which were designated as ( ⁇ ).
- preliminary immunocorrection increases the functional activity of AMK and significantly positively affects the processes of LV remodeling in patients with CH.
- a cell was performed using AMK cultured with and without the addition of TA. Tissue-specific antigen was obtained from the liver of healthy guinea pigs using the technology described above. TA was added to the bone marrow mononuclear cell culture and cultured on average for 7 days (1 to 15 days). Then the cells were washed with Hanks solution and transplanted into animals. As controls used animals that transplanted autologous bone marrow cultured without TA (control 2) and animals that were injected with saline (Control 1).
- the area of necrosis after cryodestruction with respect to the total area of the left LV wall was 25.1 ⁇ 3.6% on the epicardial side and 23.0 ⁇ 4.2% on the endocardial side.
- the area of transmural necrosis after cryodestruction with respect to the total area of the free wall of the LV was 11.4 ⁇ 0.7% from the side of the epicardium and 6.4 ⁇ 2.5% from the side of the endocardium.
- the morphometry of macro preparations of the damaged heart made it possible to establish a significant decrease in LV muscle mass, which would inevitably lead to a decrease in its contractile activity.
- Tissue-specific antigen was obtained from the heart of intact rats according to the technology described above. TA was added to the culture mononuclear cells of the bone marrow and cultivation was carried out on average for 7 days (from 3 to 15 days). Then the cells were washed with Hanks solution and transplanted into animals. As a control, we used animals that were transplanted with autologous bone marrow cultured without TA, and animals that were injected with saline.
- Concomitant diseases GB 2 tbsp. Type 2 diabetes mellitus, moderate to severe. Condition after cholecystectomy (February 2005). ICD. Erosive gastritis.
- ECG sinus rhythm
- HCC 69.
- LCA LEFT CORONARY ARTERY
- LCA trunk grade 3 stenosis at the mouth with a clearance of about 2 mm.
- Anterior ventricular branch (LAD) extended stenosis of 2-3 degrees in the proximal third, subocclusion in the middle third, stenosis of 3 degrees on the border of the middle and distal third, two consecutive stenosis of 1-2 degrees in the distal third.
- Diagonal branch (DV) grade 3 stenosis at the mouth.
- Envelope branch (OB) long stenosis 2–3 degrees from the mouth.
- RIGHT CORONARY ARTERY (SC A) Two consecutive stenosis of 3 degrees in the middle third, stenosis of 1 degree in the distal third.
- the patient was diagnosed with coronary heart disease: unstable (progressive) angina pectoris. PEAKS. HK 2a. GB 2 tbsp. Type 2 diabetes mellitus, moderate to severe. Chronic erosive gastritis without exacerbation.
- the patient Due to the severity of coronary artery disease and the clinic of unstable angina, the patient, according to vital signs, underwent surgery of aortocoronary bypass surgery of the anterior interventricular branch, diagonal branch and right coronary artery under conditions of cardiopulmonary bypass and pharmacological cold cardioplegia. During the operation, a biopsy of the ear of the right atrium was taken before the IR sectional method.
- the early postoperative period was uneventful. Extubation in the operating room. The patient was transferred from the intensive care unit to the department the next day. In the department, paroxysms of MA were noted (December 3, 2005 and December 23, 2005), hemodynamically insignificant, stopped by potassium preparations and cordarone. Due to the low hemoglobin level (up to 7.8 g / dl) in the postoperative period, two eruptions were performed. masses (December 3, 2005 and December 5, 2005).
- the patient was included in the scientific-clinical program for the transplantation of autologous stem cells of the bone marrow into the myocardium. 12/16/2005, bone marrow was collected with further separation of KKM. Autologous mononuclear cells were cultured for 5 days with tissue-specific antigen obtained from biopsy material during surgery. 12/22/2005 their intracoronary and systemic (descending aortic section) administration was performed. No complications.
- the blood glucose level for the entire observation period is from 5.1 to 8.9 (12/26/2005: 9-7.5, 12-7.9, 15-8.1, 18-6.7, 21-7.5) .
- Total cholesterol is 7.1.
- the patient is discharged under the supervision of a cardiologist at the place of residence.
- coronary heart disease condition after AKHI permanent residence, DV and PKA from 30.11.2005. PEAKS. HK 1. GB 2 tbsp. condition after transplantation of autologous bone marrow stem cells from 12.22.2005. Type 2 diabetes mellitus, moderate to severe. Chronic erosive gastritis without exacerbation.
- This drug was prescribed to the patient according to the scheme: 7 injections, 1st day 12 mg IM, then every other day 6 mg IM.
- an analysis was repeated to determine the stimulation index (Fig.6), which showed the restoration of the IS to normal values.
- the patient underwent bone marrow sampling, AMK were isolated, and their co-cultivation was performed with TA obtained from biopsy material.
- the phenotypic composition of cultured cells changes as compared with the outcome and those cells that were cultured without TA (Fig. 7).
- the claimed invention allows to treat any chronic diseases. This is ensured by the formation of tissue-specific orientation of the regenerative potential of cells intended for cell therapy. Clinical and experimental studies confirm the high efficiency of cell transplantation when a tissue-specific antigen identical to the organ whose regeneration must be restored in the patient's body is introduced at the stage of cultivation into the growth medium.
Landscapes
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Immunology (AREA)
- Veterinary Medicine (AREA)
- Public Health (AREA)
- Animal Behavior & Ethology (AREA)
- Epidemiology (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Zoology (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Cell Biology (AREA)
- Hematology (AREA)
- Gastroenterology & Hepatology (AREA)
- Developmental Biology & Embryology (AREA)
- Pharmacology & Pharmacy (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- Virology (AREA)
- Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
- General Chemical & Material Sciences (AREA)
- Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
- Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
- Materials For Medical Uses (AREA)
Abstract
Description
Способ лечения хронических заболеваний (варианты), способ получения биотрансплантата (варианты), биотрансплантат (варианты). A method for the treatment of chronic diseases (options), a method for producing a biograft (options), a biograft (options).
Уровень техникиState of the art
Изобретение относится к медицине и может быть использовано для лечения хронических заболеваний.The invention relates to medicine and can be used to treat chronic diseases.
Известны способы лечения заболеваний сердца (Ю.Л.Шевченко, «Kлeтoчныe технологии в кардиологии)), Вестник РАМН , N°l l, 2003r, стр. 6-10), основанные на получении взвеси фетальных клеток из абортивного донорского материала, содержащих стволовые и прогениторные клетки, и введении их в миокард. Недостатками указанного аналога являются:Known methods for treating heart disease (Yu.L. Shevchenko, “Cellular technologies in cardiology)), Vestnik RAMS, N ° ll, 2003r, p. 6-10), based on the suspension of fetal cells from abortive donor material containing stem and progenitor cells, and their introduction into the myocardium. The disadvantages of this analogue are:
1. Нелегитивность использования фетального материала, который не может быть применен в клинике у больных.1. The illegitimacy of the use of fetal material, which cannot be used in a clinic in patients.
2. Опасность заражения реципиента нераспознанными инфекциями, содержащимися в донорском материале.2. The risk of infection of the recipient with unrecognized infections contained in the donor material.
3. Фетальные клетки представляют собой аллогенный материал, эффективность применения которого постепенно снижается из-за иммунного отторжения.3. Fetal cells are allogeneic material, the effectiveness of which is gradually reduced due to immune rejection.
Известен другой аналог (BeI А., Меssаs E., Аgbulut О., еt аl. Transplantation оf аutоlоgоus frеsh bопе mаrrоw iпtо iпfаrсtеd mуосаrdium: А wоrd оf саutiоп. // Сirсulаtiоп. - 2003. - 108. - P. П-247), предложенный для лечения заболеваний сердца методом клеточной терапии. Этот метод основан на получении аутологичного свежевыделенного костного мозга, содержащего клетки гемопоэтического и стромального ряда, и возвращении их в миокард или коронарное русло пациенту. Преимущество этого метода перед известным, заключается в отсутствии правовых и этических проблем; отсутствии риска привнесения инфекции в организм реципиента.Another analogue is known (BeI A., Mess. E., Agbulut O., et al. Transplantation of autologous frès frope maropowt muosardium: A ward of cautiop. // Sirculiop. - 2003.-24. ), proposed for the treatment of heart disease by cell therapy. This method is based on obtaining an autologous freshly isolated bone marrow containing hematopoietic and stromal cells and returning them to the myocardium or coronary bed. The advantage of this method over the well-known one is the absence of legal and ethical problems; no risk of introducing infection into the recipient's body.
К недостаткам этого аналога, снижающим эффективность восстановительных процессов в поврежденном органе с помощью клеточной терапии относятся:The disadvantages of this analogue, which reduce the effectiveness of restoration processes in a damaged organ with the help of cell therapy include:
1. Развитие костной ткани в зоне введения клеток, из-за дифференцировки стромальных клеток по остеогенному пути (BeI А., Меssаs E., Аgbulut О., еt аl. Transplantation оf аutоlоgоus frеsh bопе mаrrоw iпtо iпfаrсtеd mуосаrdium: А wоrd оf саutiоп. // Сirсulаtiоп. - 2003. - 108. - P. П-247)1. The development of bone tissue in the area of cell introduction, due to the differentiation of stromal cells along the osteogenic pathway (BeI A., Mess. E., Agbulut O., et al. Transplantation of autologous frèsh fropom ipofartud muosardium: autopodium. // Sirculatiop. - 2003. - 108. - P. P-247)
2. Исходно сниженный регенерационный потенциал клеточной взвеси, т.к. источником клеток является сам больной, регенерационный потенциал клеток которого (в том числе и клеток костного мозга) снижен из-за болезни.2. The initially reduced regenerative potential of cell suspension, because the source of the cells is the patient himself, whose regenerative potential (including bone marrow cells) is reduced due to the disease.
3. Отсутствие или резкое снижение в клеточной взвеси тканеспецифических клонов клеток (лимфоидных), способствующих регенерации соответствующего хронически поврежденного органа и этот недостаток, в еще большой степени снижает регенерационный потенциал используемой клеточной взвеси, и тем самым существенно ослабляет эффективность метода.3. The absence or a sharp decrease in tissue suspension of tissue-specific cell clones (lymphoid) that contribute to the regeneration of the corresponding chronically damaged organ, and this drawback, to a still greater extent reduces the regeneration potential of the used cell suspension, and thereby significantly reduces the effectiveness of the method.
Наиболее близким аналогом заявляемого изобретения является работа, проведенная в институте трансплантологии (В.И.Шумаков и соавт., Тезисы доклада на 11-ом Всероссийском съезде сердечно-сосудистых хирургов, Москва, 23-26 октября 2005 г., стр. 296; Автореферат кандидатской диссертации А.В. Берсенева, «Tpaнcплaнтaция клеток эмбриональной печени и стволовых клеток костного мозга для коррекции дислипидемии и ранних стадий aтepoгeнeзa», Москва, 2003г.), в которой для лечения хронических заболеваний внутренних органов используются культивируемые аутолоrичные мононуклеарные клетки, содержащие стволовые и прогениторные клетки, полученные из костного мозга больного.The closest analogue of the claimed invention is the work carried out at the Institute of Transplantology (V.I.Shumakov et al., Abstracts at the 11th All-Russian Congress of Cardiovascular Surgeons, Moscow, October 23-26, 2005, p. 296; Abstract A. Bersenev’s PhD thesis, “Transplantation of embryonic liver cells and bone marrow stem cells for the correction of dyslipidemia and early stages of atherogenesis”, Moscow, 2003), in which for the treatment of chronic diseases of internal of organs, cultured autologous mononuclear cells containing stem and progenitor cells obtained from the patient’s bone marrow are used.
Данный метод позволяет исключить возможность появления костной ткани в зоне введения клеток за счет культивирования. Однако, использование клеток костного мозга, забираемых у больных с хроническими заболеваниями, не позволяет существенно повысить эффективность метода, т.к. используемая взвесь состоит из клеток со сниженным регенерационным потенциалом и почти не содержит клеток, имеющих тканеспецифицескую направленность регенерационного воздействия, на соответствующий поврежденный орган. Последнее обусловлено тем, что при хроническом повреждении органа в крови и костном мозге снижено содержание тканиспецифических клонов клеток из-за суммарного снижения в нем жизнеспособной функционирующей ткани, способной обеспечить выработку тканеспецифических клонов. Именно этим объясняется, что эффективность используемого метода не превышает 60-70% (В.И. Шумаков и др. ВестРАМН 2004г., Ns9, стр. 44- 47).This method eliminates the possibility of bone tissue appearing in the cell injection zone due to cultivation. However, the use of bone marrow cells taken from patients with chronic diseases does not significantly increase the effectiveness of the method, because the suspension used consists of cells with a reduced regenerative potential and almost does not contain cells having a tissue-specific orientation of the regenerative effect on the corresponding damaged organ. The latter is due to the fact that in case of chronic organ damage in the blood and bone marrow, the content of tissue-specific cell clones is reduced due to the total decrease in it of viable functioning tissue capable of producing tissue-specific clones. This explains why the effectiveness of the method used does not exceed 60-70% (V.I. Shumakov et al. VestRAMN 2004, Ns9, p. 44-47).
Заявляемые изобретения направлены на устранение перечисленных выше недостатков и достижение технического результата, заключающегося в повышении регенерационного потенциала аутологичных мононуклеарных клеток, что в свою очередь обеспечивает повышение эффективности лечения большого спектра хронических заболеваний.The claimed inventions are aimed at eliminating the above disadvantages and achieving a technical result, which consists in increasing the regeneration potential of autologous mononuclear cells, which in turn provides an increase in the effectiveness of treatment of a wide range of chronic diseases.
Технический результат достигается за счет того, что в способе лечения хронических заболеваний, включающем забор у больного клеточного материала с последующим выделением из него мононуклеарных аутологичных клеток, содержащих стволовые клетки, культивирование мононуклеарных аутологичных клеток с получением биотрансплантата и последующую трансплантацию последнего больному, культивирование осуществляют с добавлением тканеспецифического антигена, соответствующего поврежденному органу.The technical result is achieved due to the fact that in a method for the treatment of chronic diseases, including the collection of cellular material from a patient with subsequent isolation of mononuclear autologous cells containing stem cells from it, culturing mononuclear autologous cells to obtain biograft and subsequent transplantation of the latter to the patient, cultivation is carried out with the addition of tissue-specific antigen corresponding to the damaged organ.
А также тем, что в способе лечения хронических заболеваний, включающем забор у больного клеточного материала с последующим выделением из него мононуклеарных аутологичных клеток, содержащих стволовые клетки, культивирование мононуклеарных аутологичных клеток с получением биотрансплантата и последующую трансплантацию последнего больному к выделенным мононуклеарным аутологичным клеткам перед культивированием добавляют лимфоидные и/или дендритные клетки, предварительно культивированные с добавлением тканеспецифического антигена, соответствующего поврежденному органу.And also by the fact that in a method of treating chronic diseases, including collecting cellular material from a patient with subsequent isolation of mononuclear autologous cells containing stem cells from it, culturing mononuclear autologous cells to produce a biotransplant and subsequent transplantation of the latter to the patient, add mononuclear autologous cells to the isolated cells before culturing lymphoid and / or dendritic cells, previously cultured with the addition of tissue-specific antigen, The appropriate organ damage.
А также за счет того, что в способе лечения хронических заболеваний предварительно, до забора клеточного материала, больному существляют иммуннокоррекцию.And also due to the fact that in the method of treating chronic diseases previously, before the collection of cellular material, the patient has immunocorrection.
А также за счет того, что в способе лечения хронических заболеваний для осуществления иммунокоррекции определяют индекс стимуляции, как отношение суммарной продукции активных форм кислорода клетками крови, обработанными ингибитором цАМФ- фосдиэстеразы к суммарной продукции активных форм кислорода интактными клетками.And also due to the fact that in the method of treating chronic diseases for immunocorrection, the stimulation index is determined as the ratio of the total production of reactive oxygen species by blood cells treated with a cAMP-phosphodiesterase inhibitor to the total production of reactive oxygen species by intact cells.
А также за счет того, что в способе получения биотрансплантата, включающем забор у больного клеточного материала с последующим выделением из него мононуклеарных аутологичных клеток, содержащих стволовые клетки, культивирование мононуклеарных аутологичных клеток в ростовой среде в ростовую среду при культивировании добавляют тканеспецифической антиген, соответствующий поврежденному органу.And also due to the fact that in the method for producing a biograft, which includes taking cellular material from a patient with subsequent isolation of mononuclear autologous cells containing stem cells from it, culturing mononuclear autologous cells in a growth medium in a growth medium at a tissue-specific antigen corresponding to the damaged organ is added to the culture.
А также за счет того, что в способе получения биотрансплантата, включающий забор у больного клеточного материала с последующим выделением из него мононуклеарных аутологичных клеток, содержащих стволовые клетки, культивирование мононуклеарных аутологичных клеток в ростовой среде к выделенным мононуклеарным аутологичным клеткам перед культивированием добавляются лимфоидные и/или дендритные клетки, предварительно культивированные с добавлением тканеспецифического антигена, соответствующего поврежденному органу.And also due to the fact that in the method for producing a biograft, including sampling cellular material from a patient with subsequent isolation of mononuclear autologous cells containing stem cells from it, culturing mononuclear autologous cells in a growth medium, lymphoid and / or are added to the isolated mononuclear autologous cells before cultivation dendritic cells, previously cultured with the addition of tissue-specific antigen corresponding to the damaged organ.
А также за счет того, что биотрансплантат, включающий выделенные мононуклеарные аутологичные клетки, содержит в своем составе стволовые клетки, предварительно культивированные с тканеспецифическим антигеном, соответствующим поврежденному органу.And also due to the fact that the biograft, which includes isolated mononuclear autologous cells, contains stem cells that were previously cultured with a tissue-specific antigen corresponding to the damaged organ.
А также за счет того, что биотрансплантат, включающий выделенные мононуклеарные аутологичные клетки, содержит в своем составе лимфоидные и/или дендритные клетки, предварительно культивированные с добавлением тканеспецифического антигена, соответствующего поврежденному органу.And also due to the fact that the biograft, including the isolated autologous mononuclear cells, contains lymphoid and / or dendritic cells, previously cultured with the addition of tissue-specific antigen corresponding to the damaged organ.
Заявляемые способы лечения хронических заболеваний устраняют перечисленные недостатки аналогов в силу того, что еще до забора аутологичных мононуклеарных клеток (AMK) у больного проводится исследование иммунного статуса и осуществляется иммунокоррекция под контролем «индeкca стимуляции клеток кpoви», что позволяет существенно повысить регенерационный потенциал этих клеток. Для обеспечения формирования тканиспецифической направленности регенерационного потенциала клеток, предназначенных для клеточной терапии, на стадии их культивирования в ростовую среду вводится тканеспецифический антиген идентичный тому органу, регенерацию которого необходимо восстановить в организме больного.The claimed methods of treating chronic diseases eliminate the above disadvantages of analogues due to the fact that even before the collection of autologous mononuclear cells (AMK) in a patient, the immune status is examined and immunocorrection is carried out under the control of the “blood cell stimulation index”, which can significantly increase the regenerative potential of these cells. To ensure the formation of tissue of a specific orientation the regenerative potential of cells intended for cell therapy, at the stage of their cultivation, a tissue-specific antigen identical to the organ whose regeneration must be restored in the patient’s body is introduced into the growth medium.
В результате использования заявляемых изобретений наступает быстрое и почти стопроцентное улучшение функционирования поврежденных органов при их хроническом повреждении (на примере миокарда).As a result of using the claimed inventions, a quick and almost one hundred percent improvement in the functioning of damaged organs occurs during their chronic damage (for example, myocardium).
Изобретения поясняются следующими иллюстрациями. Фиг. 1.- график расчета индекса стимуляции.The invention is illustrated by the following illustrations. FIG. 1.- graph for calculating the stimulation index.
Фиг. 2. - график прогноза благоприятного результата введения аутологичных клеток больному при индексе стимуляции >1.0. Фиг. 3. - график прогноза неблагоприятного результата введения аутологичных клеток больному при индексе стимуляции <1.0.FIG. 2. - a graph for predicting a favorable result of the introduction of autologous cells to a patient with a stimulation index> 1.0. FIG. 3. - graph for predicting an unfavorable result of the introduction of autologous cells to the patient with a stimulation index <1.0.
Фиг. 4. - график прогноза неблагоприятного результата введения KKM больной M при индексе стимуляции <1.0.FIG. 4. - graph for predicting an unfavorable result of the introduction of KKM of patient M with a stimulation index <1.0.
Фиг. 5. - график индивидуального подбора иммунокорректоров методом хемилюминесценции.FIG. 5. - Schedule of individual selection of immunocorrectors by chemiluminescence.
Фиг. 6. - график прогноза благоприятного результата введения AMK больной M при индексе стимуляции >1.0.FIG. 6. - graph for predicting a favorable outcome for the administration of AMK to patient M with a stimulation index> 1.0.
Фиг. 7. - динамика изменения клеточного состава AMK в зависимости от условий культивирования (без и добавлением ТА).FIG. 7. - the dynamics of changes in the cellular composition of AMK depending on cultivation conditions (without and by the addition of TA).
Фиг. 8. - количественная оценка региональных изменений перфузии по стандартным проекциям статической сцинтиграфии миокарда с Tc-99м у больной JI. до и через 1 мес. после введения AMK (культивирование сFIG. 8. - quantitative assessment of regional changes in perfusion according to standard projections of static myocardial scintigraphy with Tc-99m in patient JI. before and after 1 month. after administration of AMK (cultivation with
ТА). Сущность изобретения.TA). SUMMARY OF THE INVENTION
Предлагаемый способ включает: иммунологическое обследование больных и проведение иммунокорекции под контролем «индeкca стимуляции)) мононуклеарных клеток из крови больных (нормализация которого свидетельствует о восстановлении иммунологического гомеостаза); забор аутологичных клеток (костный мозг, кровь); выделение из них фракции ядросо держащих клеток, культивирование клеток в ростовой среде в присутствии тканеспецифического антигена (ТА), идентичного поврежденному органу, в течение 1-15 дней и трансплантацию подготовленной культуры клеток в организм больного с хроническим заболеванием внутренних органов.The proposed method includes: immunological examination of patients and immunocorrection under the control of “stimulation index)) of mononuclear cells from the blood of patients (normalization of which indicates the restoration of immunological homeostasis); autologous cell collection (bone marrow, blood); isolating from them fractions of nucleus-containing cells, culturing cells in a growth medium in the presence of a tissue-specific antigen (TA) identical to the damaged organ for 1-15 days and transplanting the prepared cell culture into a patient with a chronic disease of internal organs.
Оценку иммунного статуса больных проводили на взвеси ядросодержащих клеток из крови до и после проведения иммунокоррекции.Evaluation of the immune status of patients was carried out by suspension of nucleated cells from the blood before and after immunocorrection.
Оценка индекса стимуляции клеток иммунной системы включает следующие этапы:Evaluation of the stimulation index of cells of the immune system includes the following steps:
Для получения ядросодержащих клеток 2 мл гепаринизированной крови смешивали с 1 мл подогретого до 370C 3% раствора желатина и инкубировали в термостате при 370C в течение 30 мин. После оседания эритроцитов слой плазмы, обогащенный лейкоцитами, отбирали в пластиковые пробирки и отмывали 10-кратным объемом фосфатно- солевого буфера (pH=7,4). Затем лейкоциты центрифугированием в течение 10 мин при 1000 об/мин ресуспендировали в растворе Хенкса без Ca2+ и Mg2+. После подсчета числа ядросодержащих клеток концентрацию последних доводили до 10 кл/мл.To obtain nucleated cells, 2 ml of heparinized blood was mixed with 1 ml of a 3% gelatin solution heated to 37 ° C and incubated in an incubator at 37 ° C for 30 minutes. After erythrocyte sedimentation, the plasma layer enriched in leukocytes was taken into plastic tubes and washed with a 10-fold volume of phosphate-saline buffer (pH = 7.4). Then the leukocytes by centrifugation for 10 min at 1000 rpm were resuspended in a Hanks solution without Ca 2+ and Mg 2+ . After counting the number of nucleated cells, the concentration of the latter was brought to 10 cells / ml.
Определение индекса стимуляции осуществляли следующим образом.The determination of the stimulation index was carried out as follows.
В 2-е кюветы контрольную и опытную вносили по 40*103 клеток. В опытную кювету дополнительно вносили препарат индуктор интерферона, содержащий ингибитор цАМФ-фосдиэстеразы производную акридонуксусной кислоты (10-кapбoкcимeтил-9- акриданон) и N-метилглюкамин. В контрольную кювету вносили раствора Хэнкса. Контрольную и опытную кюветы инкубировали в термостате в течение 60 мин при 370C. После инкубации клеток с проводили запись кривых хемилюминесцентной реакции клеток в контрольной и опытной кюветах с использованием хемилюминометра «Xeлюм-2001 01/01» (Россия) в комплексе с компьютером IBM-PC при температуре счетной камеры 370C5 в течение 15 мин. В качестве усилителя свечения использовали люминол (5-aминo-2,3-дигидpo-l,4- фталазиндион, «Sigma») в конечной концентрации 10'3M, а в качестве активатора образования активных форм кислорода - PMA (фopбoл-12- миристат- 13 -ацетат, «Sigma») в концентрации 10" M.In the 2nd cuvette, the control and experimental cells were introduced with 40 * 10 3 cells. An interferon inducer containing a cAMP-phosphodiesterase inhibitor, a derivative of acridonoacetic acid (10-carboxymethyl-9-acridanone) and N-methylglucamine was additionally added to the experimental cuvette. Hanks solution was added to the control cuvette. The control and experimental cuvettes were incubated in a thermostat for 60 min at 37 ° C. After cells were incubated, the chemiluminescent cell response curves were recorded in the control and experimental cuvettes using a Xelum-2001 01/01 chemiluminometer (Russia) in combination with an IBM computer -PC at the temperature of the counting chamber 37 0 C 5 for 15 minutes Luminol (5-amino-2,3-dihydro-l, 4-phthalazinedione, Sigma) at a final concentration of 10 3 M was used as a luminescence enhancer, and PMA (forbol-12- myristate-13-acetate, Sigma) at a concentration of 10 " M.
Затем, вычисляли суммарную продукцию активных форм кислорода (АФК), как площадь под кривой хемилюминесцентной реакции. Рассчитывался индекс стимуляции (ИС) используемого препарата как отношение площади хемилюминесцентной реакции в контроле и опыте (фиг.l).Then, the total production of reactive oxygen species (ROS) was calculated as the area under the chemiluminescent reaction curve. The stimulation index (IS) of the drug used was calculated as the ratio of the area of the chemiluminescent reaction in the control and experiment (Fig. 1).
Индекс стимуляции <1.0 прогнозирует неблагоприятный результат введения аутологичных клеток данному больному. Индекс стимуляции >1.0 прогнозирует благоприятный результат введения аутологичных клеток данному больному (фиг. 2), индекс стимуляции <1.0 прогнозирует неблагоприятный результат введения аутологичных клеток данному больному (фиг. 3).Stimulation index <1.0 predicts an unfavorable result of the introduction of autologous cells in this patient. A stimulation index> 1.0 predicts a favorable result of the introduction of autologous cells to a given patient (Fig. 2), a stimulation index <1.0 predicts an unfavorable result of the introduction of autologous cells to a given patient (Fig. 3).
Затем больному проводится иммунокоррекция одним из ниже перечисленных препаратов, используемых в терапевтических дозах: Полиоксидоний ИмунофанThen the patient is immunocorrection with one of the following drugs used in therapeutic doses: Polyoxidonium Imunofan
Неовир Спленопид Реаферон Роферон Ронколейкин Т-активин Тимоген ЦиклоферонNeovir Splenopid Reaferon Roferon Roncoleukin T-activin Timogen Cycloferon
Курс иммунокоррекции при индексе стимуляции ниже 1.0 составляет 14 дней. Для контроля эффективности иммунокоррекции у больных с исходным индексом стимуляции меньше 1.0 проводится повторное определение индекса стимуляции. Забор клеточного материала осуществляют у больных только с индексом стимуляции больше 1.0.The course of immunocorrection with a stimulation index below 1.0 is 14 days. To control the effectiveness of immunocorrection in patients with an initial stimulation index less than 1.0, a re-determination of the stimulation index is carried out. Cellular material is taken in patients only with a stimulation index greater than 1.0.
Получение аутологичных мононуклеарных клеток (AMK), содержащих стволовые и прогениторные клетки, из костного мозга (или периферической крови) для трансплантации больному осуществляют следующим образом.Obtaining autologous mononuclear cells (AMK) containing stem and progenitor cells from bone marrow (or peripheral blood) for transplantation to a patient is as follows.
Для забора костного мозга используют доступ из заднего гребня подвздошной кости. Забор костного мозга проводится в условиях операционной при соблюдении тех же правил асептики, как и при других оперативных вмешательствах. Болевые ощущения при заборе костного мозга главным образом связаны с высокой чувствительностью надкостницы при прокалывании иглой и требуют проведения адекватного обезболивания. Выбор между общей, спинальной, эпидуральной или местной анестезией для обезболивания зависит как от медицинских показаний, так и от предпочтений донора и анестезиолога. В 95% случаев возможно адекватное обезболивание методом местной анестезии. Донор госпитализируется утром накануне забора и при отсутствии осложнений может быть выписан во второй половине дня забора с назначением анальгетиков, рекомендациями смены повязки в местах инъекций.For bone marrow collection, access from the posterior iliac crest is used. Bone marrow is taken under operating conditions, subject to the same aseptic rules, as with other surgical interventions. Pain sensations during bone marrow harvesting are mainly associated with a high sensitivity of the periosteum when piercing with a needle and require adequate pain relief. The choice between general, spinal, epidural or local anesthesia for analgesia depends on both the medical condition and the preferences of the donor and anesthetist. In 95% of cases, adequate analgesia by local anesthesia is possible. The donor is hospitalized in the morning on the eve of the fence and, in the absence of complications, can be discharged in the afternoon of the fence with the appointment of analgesics, recommendations for changing the dressing at the injection site.
После обработки кожи йодсодержащими растворами в области задних гребней делают прокол кожи и подкожно-жировой клетчатки, через который вставляют иглы для аспирации. После чего прокалывают кортикальную пластинку гребня подвздошной кости и аспирируют костный мозг из губчатого вещества кости. Для забора 50-150 мл костного мозга необходимо сделать несколько проколов кортикальной пластинки кости, для этого кожу и подкожно-жировую клетчатку перемещают аспирационной иглой. Классическая технология требует аспирировать костный мозга из каждого вкола малыми порциями (3-5) мл в 20-миллилитpoвый шприц. После наполнения шприца врач отсоединяет его от иглы и передает медсестре, которая переносит содержимое шприца в полимерный контейнер с антикоагулянтом.After treating the skin with iodine-containing solutions in the area of the posterior crests, a puncture of the skin and subcutaneous fat is made, through which needles for aspiration are inserted. After that, the cortical plate of the iliac crest is pierced and the bone marrow is aspirated from the spongy bone. For the collection of 50-150 ml of bone marrow, it is necessary to make several punctures of the cortical plate of the bone, for this the skin and subcutaneous fat are moved with an aspiration needle. Classical technology requires aspirating the bone marrow from each injection in small portions (3-5) ml into a 20-ml syringe. After filling the syringe, the doctor disconnects it from the needle and passes it to the nurse, who transfers the contents of the syringe into a polymer container with an anticoagulant.
После окончания забора в области прокола кожи накладывают повязку, а КМ сразу же отправляют в лабораторию для дальнейшей обработки в специальном контейнере с антикоагулянтом при +4C°. Объем забираемого KM должен составлять 150-200 мл.After the end of the fence, a bandage is applied in the area of skin puncture, and the CM is immediately sent to the laboratory for further processing in a special container with an anticoagulant at + 4C °. The volume of KM taken should be 150-200 ml.
Аспират костномозговой взвеси клеток помещают в пробирки объемом 50 мл и центрифугируют. Плазму и интерфазу с ядросодержащими клетками собирают и осуществляют повторное центрифугирование. Плазму убирают, а к полученному осадку добавляют лизирующий раствор для элиминации эритроцитов. Пробирку закрывают и энергично встряхивают, затем центрифугируют. Осадок ресуспендируют в ростовой среде DMEM, содержащей эмбриональную сыворотку, инсулин, гентамицин и тканеспецифический антиген (получение см. ниже). Клетки высевают на чашки Петри и культивируют при 37° С в атмосфере, содержащей 5% CO2 и при 95% влажности, в течение 1-15 суток. Биотрансплантат представляет собой оставшиеся мононуклеарные клетки после культивирования и центрифугирования при 1500 об/мин в течении 5 мин. К полученному осадку добавляли р-р Хенкса (5мл) и трансплантировали реципиенту.An aspirate of bone marrow suspension of cells is placed in 50 ml tubes and centrifuged. Plasma and interphase with nucleated cells are collected and centrifuged again. Plasma is removed, and a lysing solution is added to the resulting pellet to eliminate red blood cells. The tube is closed and shaken vigorously, then centrifuged. The precipitate was resuspended in DMEM growth medium containing fetal serum, insulin, gentamicin and a tissue-specific antigen (for obtaining, see below). Cells are plated on Petri dishes and cultured at 37 ° C in an atmosphere containing 5% CO 2 and at 95% humidity for 1-15 days. The biograft is the remaining mononuclear cells after cultivation and centrifugation at 1500 rpm for 5 minutes Hanks solution (5 ml) was added to the resulting pellet and transplanted to the recipient.
Получение другого варианта биотрансплантата осуществляется следующим образом.Obtaining another version of the biograft is as follows.
Из крови больного выделяется фракция лейкоцитарная фракция клеток крови, содержащая лимфоциты и моноциты, которая затем культивируется с тканеспецифическим антигеном. После культивирования лейкоцитарная фракция, содержащая лимфоциты и моноциты, отмывается от тканеспецифического антигена методом центрифугирования. Полученные лейкоцитарные клетки добавляют к выделенным аутологичным мононуклеарным клеткам, содержащим стволовые клетки, и культивируют при 370C в атмосфере, содержащей 5% CO2 и при 95% влажности, в течение 1-15 суток. Оставшиеся мононуклеарные клетки после культивирования центрифугировали при 1500 об/мин в течении 5 мин, добавляли р-р Хенкса (5мл) и трансплантировали реципиенту.A leukocyte fraction of blood cells containing lymphocytes and monocytes is isolated from the patient’s blood, which is then cultured with a tissue-specific antigen. After cultivation, the leukocyte fraction containing lymphocytes and monocytes is washed from the tissue-specific antigen by centrifugation. The obtained leukocyte cells are added to the isolated autologous mononuclear cells containing stem cells and cultured at 37 ° C. in an atmosphere containing 5% CO 2 and at 95% humidity for 1-15 days. The remaining mononuclear cells after cultivation were centrifuged at 1500 rpm for 5 min, Hanks solution (5 ml) was added and transplanted to the recipient.
Для получения тканеспецифичекого антигена брали свеже выделенную ткань органа, идентичного поврежденному. В качестве источника может быть использована аллогенная или ксеногенная ткань, при возможности используется биопсийный материял.To obtain tissue-specific antigen, freshly isolated organ tissue identical to the damaged one was taken. Allogeneic or xenogenic tissue can be used as a source, and biopsy material can be used if possible.
Ткань механически гомогенизируется на фрагменты не более 0,5 мм3. Полученный гомогенат заливается раствором Хенкса 1 :1 и помещается в морозильную камеру на 1 час, затем ткань размораживают, данный цикл повторяют 3 раза. Затем гомогенат центрифугирую при 2000 об/мин 10 мин. Супернатант отбирают и фильтруют через фильтр с диаметром пор 0,22мкм для обеспечения стерильности раствора. Концентрация белка в растворе определяется методом Лоури и должна находиться в диапазоне от 0,5 до 1 мг/мл.The fabric is mechanically homogenized into fragments of not more than 0.5 mm 3 . The resulting homogenate is poured with a Hanks solution 1: 1 and placed in the freezer for 1 hour, then the fabric is thawed, this cycle is repeated 3 times. Then the homogenate is centrifuged at 2000 rpm for 10 minutes. The supernatant is taken and filtered through a filter with a pore diameter of 0.22 μm to ensure sterility of the solution. The protein concentration in the solution is determined by the Lowry method and should be in the range from 0.5 to 1 mg / ml.
Настоящее изобретение поясняется описанием конкретных, но не исчерпывающих его, примеров реализации.The present invention is illustrated by a description of specific, but not exhaustive, examples of implementation.
Были проанализированы результаты лечения 80 больных, которым проводилась трансплантация аутологичных мононуклеарных клеток при лечении сердечно-сосудистой патологии.The results of treatment of 80 patients who underwent transplantation of autologous mononuclear cells in the treatment of cardiovascular pathology were analyzed.
Реципиенты аутологичных мононуклеарных клеток, были разделены на 2 группы, в зависимости от исходной функциональной активности аутологичных мононуклеарных клеток: группа пациентов с ИС >1.0 (n=40) и группа больных с ИС <1.0 (n=15). Группы больных не отличались между собой по медианам таких параметров, как возраст, длительность сердечной недостаточности, количество перенесенных инфарктов миокарда. У этих больных до и после трансплантации аутологичных мононуклеарных клеток определяли значения параметров внутрисердечной гемодинамики: конечный систолический объем левого желудочка (KCO JDK), конечный диастолический объем левого желудочка (КДО JDK), конечный систолический размер левого желудочка (KCP JDK), конечный диастолический размер левого желудочка (КДР JDK), фракция изгнания левого желудочка (ФИ JDK) и рассчитывали прирост этих показателей, которые обозначали в виде (Δ).Recipients of autologous mononuclear cells were divided into 2 groups, depending on the initial functional activity of autologous mononuclear cells: a group of patients with IS> 1.0 (n = 40) and a group of patients with IS <1.0 (n = 15). The groups of patients did not differ from each other in medians of such parameters as age, duration of heart failure, and the number of myocardial infarctions. The parameters of intracardiac hemodynamics were determined in these patients before and after transplantation of autologous mononuclear cells: the final systolic volume of the left ventricle (KCO JDK), the final diastolic volume of the left ventricle (KDO JDK), the final systolic size of the left ventricle (KCP JDK), the final diastolic size of the left ventricle (JDK CDD), left ventricular expulsion fraction (PI JDK), and the growth of these indicators was calculated, which were designated as (Δ).
Были обнаружены статистически значимые различия в таких показателях, как дельта уменьшения КДО JDK, KCO JDK, KCP JDK, КДР ЛЖ и ФИ через 1 мес. (таб.l) и 6 мес. (тaб.2) после клеточной терапии по данным ЭхоКГ.Statistically significant differences were found in indicators such as delta reduction in BWW JDK, KCO JDK, KCP JDK, KDR LV and FI after 1 month. (tab. 1) and 6 months. (tab. 2) after cell therapy according to echocardiography.
Таблица 1 Сравнение параметров внутрисердечной гемодинамики у пациентов с ИC<1.0 и ИO1.0 через 1 месяц после клеточной терапии (по данным ЭхоКГ).Table 1 Comparison of the parameters of intracardiac hemodynamics in patients with IC <1.0 and IO1.0 1 month after cell therapy (according to echocardiography).
""-достоверно по отношению к группе с ИC<1.0 (p<0.05)"" -reliable with respect to the group with IC <1.0 (p <0.05)
Таблица 2 Сравнение параметров внутрисердечной гемодинамики у пациентов с ИC<1.0 и ИC>1.0 через 6 месяцев после клеточной терапии (по данным ЭхоКГ).Table 2 Comparison of the parameters of intracardiac hemodynamics in patients with IC <1.0 and IC> 1.0 6 months after cell therapy (according to echocardiography).
^-достоверно по отношению к группе с ИC<1.0 (p<0.05) Как видно из таблицы I5 в группе где ИС >l,0 уже через месяц происходит достоверно выраженное благоприятное уменьшение КДО, KCO, КДР и KCP и увеличение ФИ по сравнению с группой реципиентов у которых ИС <l,0. Эти данные свидетельствовали о позитивном изменение гемодинамике с группе с ИC>1.0 и об отсутствие позитивного клинического эффекта при использование клеток c ИC<1.0.^ -reliable in relation to the group with IC <1.0 (p <0.05) As can be seen from table I 5 in the group where IP> l, 0, after a month there is a significantly pronounced favorable decrease in BWW, KCO, KDR and KCP and an increase in FI compared with the group of recipients in which IP <l, 0. These data indicated a positive change in hemodynamics with a group with IC> 1.0 and the absence of a positive clinical effect when using cells with IC <1.0.
Из таблицы 2 видно, через 6 месяцев наблюдения отмеченные позитивные тенденции при использовании клеток с ИC>1.0 не только сохраняются, но по некоторым показателям (KCO, KCP, ФИ) становятся более выраженными.From table 2 it can be seen that after 6 months of observation, the noted positive trends when using cells with IC> 1.0 not only persist, but according to some indicators (KCO, KCP, FI) become more pronounced.
Таким образом сравнительный анализ показал, что клинический эффект клеточной трансплантации напрямую зависит от исходного значения показателя индекса стимуляции.Thus, a comparative analysis showed that the clinical effect of cell transplantation directly depends on the initial value of the index of stimulation index.
Проводя иммунокоррекцию, перед забором костного мозга удалось повысить эффективность проводимой клеточной терапии, т.к у всех больных исходно перед AMK ИС стал >1.0. Группа без иммунокоррекции включала в себя пациентов с ИС >l,0 и ИС <1.0. Как видно из таблицы 3 в группе пациентов, которым проводили иммунокоррекцию до забора AMK через 6 месяцев после трансплантации клинический эффект был достоверно более выражен по сравнению с группой больных без иммунокоррекции. Таблица 3. Сравнение параметров внутрисердечной гемодинамики у пациентов без и с предварительной иммунокоррекцией через 6 месяцев после клеточной терапии (по данным ЭхоКГ).Carrying out immunocorrection, before harvesting the bone marrow, it was possible to increase the effectiveness of the conducted cell therapy, because in all patients initially, before AMK, IP became> 1.0. The group without immunocorrection included patients with IP> l, 0 and IP <1.0. As can be seen from table 3 in the group of patients who underwent immunocorrection before taking AMK 6 months after transplantation, the clinical effect was significantly more pronounced compared with the group of patients without immunocorrection. Table 3. Comparison of the parameters of intracardiac hemodynamics in patients without and with preliminary immunocorrection 6 months after cell therapy (according to echocardiography).
* -достоверно по отношению к группе без иммунокоррекции (p<0.05)* -reliable in relation to the group without immunocorrection (p <0.05)
Таким образом, предварительная иммунокоррекция повышает функциональную активность AMK и достоверно позитивно влияет на процессы ремоделирования ЛЖ у больных с CH.Thus, preliminary immunocorrection increases the functional activity of AMK and significantly positively affects the processes of LV remodeling in patients with CH.
Необходимость добавления ТА была изучена в опытах с моделированием дислипидемического повреждения печени у морских свинок и криогенного повреждения миокарда крыс.The need to add TA was studied in experiments with modeling dyslipidemic liver damage in guinea pigs and cryogenic damage to rat myocardium.
1. На морских свинках с хронической дислипидемией в течение 4 месяцев развивается жировая дистрофия печени и резко нарушается морфометрическая характеристика гепатоцитов (таблица 4). Для ускорения восстановительных процессов в печени была проведена клеточная с использованием AMK прокультивированных с и без добавления ТА. Тканеспецифичесий антиген получали из печени здоровых морских свинок по выше описанной технологии. ТА добавляли к культуре мононуклеарных клеток костного мозга и проводили культивирование в среднем в течение 7 суток (от 1 до 15 суток). Затем клетки отмывали раствором Хенкса и трансплантировали животным. В качестве контролей использовали животных, которым трансплантировали аутологичный костный мозг культивированный без ТА (контроль 2) и животных, которым проводили инъекцию физиологического раствора (Контроль 1).1. In guinea pigs with chronic dyslipidemia, fatty degeneration of the liver develops within 4 months and the morphometric characteristics of hepatocytes are sharply violated (table 4). To accelerate the recovery processes in the liver, a cell was performed using AMK cultured with and without the addition of TA. Tissue-specific antigen was obtained from the liver of healthy guinea pigs using the technology described above. TA was added to the bone marrow mononuclear cell culture and cultured on average for 7 days (1 to 15 days). Then the cells were washed with Hanks solution and transplanted into animals. As controls used animals that transplanted autologous bone marrow cultured without TA (control 2) and animals that were injected with saline (Control 1).
Таблица 4. Влияние трансплантации AMK и AMK культивированных с ТА на регенерацию гепатоцитов, поврежденной печени.Table 4. The effect of transplantation of AMK and AMK cultured with TA on the regeneration of hepatocytes and damaged liver.
QпιяАuαifШШМ ПМР.Т Как видно из представленных данных трансплантация мононуклеарных стволовых клеток повышала регенерационную способность гепатоцитов, при жировой дистрофии печени. Однако данный эффект был недостаточно выражен. Совместное культивирование аутологичных мононуклеарных клеток с ТА резко повышает эффект клеточной трансплантации и приводит к достоверному повышению процессов регенерации гепатоцитов в печени экспериментальных животных.QпιяАuαif ШШМ ПМР.Т As can be seen from the data presented, transplantation of mononuclear stem cells increased the regenerative capacity of hepatocytes in case of fatty degeneration of the liver. However, this effect was not sufficiently pronounced. Co-cultivation of autologous mononuclear cells with TA dramatically increases the effect of cell transplantation and leads to a significant increase in the hepatocyte regeneration processes in the liver of experimental animals.
2. На модели повреждения миокарда методом крио деструкции (КД) крыс. На 30 сутки в зоне повреждения JDK происходило формирование рубцовой ткани округлой формы диаметром 6-7 мм. со стороны эпикарда и 3 мм. со стороны эндокарда; толщина стенки ЛЖ в центре рубца не превышала 1 мм. Как видно из таблицы 7, убыль относительной массы ЛЖ (на единицу массы тела) после криодеструкции составила примерно 13%, а для свободной стенки ЛЖ этот показатель составил 17%.2. On the model of myocardial damage by rat cryodestruction (CD). On day 30, rounded scar tissue with a diameter of 6-7 mm was formed in the JDK damage zone. from the side of the epicardium and 3 mm. from the endocardium; LV wall thickness in the center of the scar did not exceed 1 mm. As can be seen from table 7, the decrease in the relative mass of the left ventricle (per unit mass) after cryodestruction was approximately 13%, and for the free wall of the left ventricle this indicator was 17%.
Площадь некроза после криодеструкции по отношению к общей площади свободной стенки ЛЖ составила со стороны эпикарда 25.1±3.6%, со стороны эндокарда - 23.0±4.2%. Площадь трансмурального некроза после криодеструкции по отношению к общей площади свободной стенки ЛЖ составила со стороны эпикарда 11.4±0.7%, со стороны эндокарда - 6.4±2.5%.The area of necrosis after cryodestruction with respect to the total area of the left LV wall was 25.1 ± 3.6% on the epicardial side and 23.0 ± 4.2% on the endocardial side. The area of transmural necrosis after cryodestruction with respect to the total area of the free wall of the LV was 11.4 ± 0.7% from the side of the epicardium and 6.4 ± 2.5% from the side of the endocardium.
Таким образом, проведенная морфометрия макропрепаратов поврежденного сердца позволила установить достоверное снижение мышечной массы ЛЖ, что неизбежно должно было бы привести к снижению его сократительной активности.Thus, the morphometry of macro preparations of the damaged heart made it possible to establish a significant decrease in LV muscle mass, which would inevitably lead to a decrease in its contractile activity.
Тканеспецифичесий антиген (ТА) получали из сердца интактных крыс по выше описанной технологии. ТА добавляли к культуре мононуклеарных клеток костного мозга и проводили культивирование в среднем в течение 7 суток (от 3 до 15 суток). Затем клетки отмывали раствором Хенкса и трансплантировали животным. В качестве контролен использовали животных, которым трансплантировали аутологичный костный мозг культивированный без ТА, и животных, которым проводили инъекцию физиологического раствора.Tissue-specific antigen (TA) was obtained from the heart of intact rats according to the technology described above. TA was added to the culture mononuclear cells of the bone marrow and cultivation was carried out on average for 7 days (from 3 to 15 days). Then the cells were washed with Hanks solution and transplanted into animals. As a control, we used animals that were transplanted with autologous bone marrow cultured without TA, and animals that were injected with saline.
При введении в миокард животным с КД аутологичных мононуклеарных клеток культивируемых в течение 3-10 дней нами было отмечено увеличение массы миокарда, улучшение сократительной способности сердца, однако ни в одном из проведенных опытов не было получено полного восстановления сердечной мышцы. В группе животных с КД, которым вводили AMK прокультивирурованные с ТА нами было отмечено достоверно более полная регенерация поврежденного органа. Следует отметить, что масса левого желудочка у крыс с КД, которым вводили АМК+ТА достоверно не отличалась от массы миокарда интактных животных (таблица 5).When autologous mononuclear cells cultured for 3-10 days were introduced into the myocardium in animals with CD, we observed an increase in myocardial mass, an improvement in the contractility of the heart, however, in none of the experiments we obtained a complete restoration of the heart muscle. In the group of animals with CD, which were injected with AMK, cultured with TA, we noted significantly more complete regeneration of the damaged organ. It should be noted that the mass of the left ventricle in rats with CD administered with AMA + TA did not significantly differ from the myocardial mass of intact animals (table 5).
Таблица 5. Сравнение массы интактных сердец и сердец после КД без и при введении AMK и АМК+ТА.Table 5. Comparison of the mass of intact hearts and hearts after CD without and with the introduction of AMK and AMK + TA.
Масса Масса свободной стенки Масса ЛЖ (мг) / масса животного, ЛЖ, (мг) / масса животного (г) г животного (г)Mass Free wall mass LV mass (mg) / animal mass, LV, (mg) / animal mass (g) g animal (g)
Интакные животныеIntact animals
356.7±5.8 1.70Ш.031 2.298±0.062356.7 ± 5.8 1.70Sh.031 2.298 ± 0.062
Животные после криодеструкции и введения физ. раствораAnimals after cryodestruction and the introduction of physical. solution
366.7±28.9 1.395±0.125 * 2.004±0.066 *366.7 ± 28.9 1.395 ± 0.125 * 2.004 ± 0.066 *
Животные < г криодеструкцией после введения AMKAnimals <g cryodestruction after administration of AMK
360.0±20.5 1.450±0.O8* 2.120±0.02*360.0 ± 20.5 1.450 ± 0.O8 * 2.120 ± 0.02 *
Животные с ι криодеструкцией после введения AMK культивируемых с ТАAnimals with v cryodestruction after administration of AMK cultivated with TA
352 .3±12 .2 1.650±0.02+ 2. 188±0 .08+352 .3 ± 12 .2 1.650 ± 0.02 + 2.188 ± 0 .08+
• *- достоверны по отношению к группе интактных животных, p<0.05• * - significant in relation to the group of intact animals, p <0.05
• +- достоверно по отношению к группе с AMK5 p<0.05 Проведенные нами эксперименты на животных продемонстрировали целесообразность предварительного культивирование AMK с ТА, в результате чего повышалась эффективность клеточной терапии.• + - reliably in relation to the group with AMK 5 p <0.05. Our experiments on animals demonstrated the feasibility of pre-culturing AMK with TA, which increased the efficiency of cell therapy.
Пример осуществления заявляемого способа лечения. Клинический пример эффективности трансплантации аутологичных мононуклеарных клеток KMAn example implementation of the proposed method of treatment. A clinical example of the efficiency of transplantation of autologous mononuclear cells KM
Пациентка Л., 67 лет, поступила в отделение коронарной хирургии и трансплантации сердца с жалобами на жгучие боли за грудиной при минимальной физической нагрузке, редко в покое; одышку.Patient L., 67 years old, was admitted to the department of coronary surgery and heart transplantation with complaints of burning pains behind the sternum with minimal physical exertion, rarely at rest; shortness of breath.
Из анамнеза: ангинозный анамнез более 3-х лет. Ухудшение состояния с июля 2005 года, когда был диагностирован острый не Q- образующий ИМ в области ПС JDK. Более 10-ти лет страдает артериальной гипертонией. Поступила для проведения коронарографии и определения дальнейшей тактики лечения.From the anamnesis: anginal history of more than 3 years. Deterioration since July 2005, when an acute non-Q-forming MI was diagnosed in the area of PS JDK. More than 10 years suffering from arterial hypertension. Received for coronary angiography and determine further treatment tactics.
Сопутствующие заболевания: ГБ 2 ст. Сахарный диабет 2-го типа, средне-тяжелого течения. Состояние после холецистэктомии (февраль 2005 года). МКБ. Эрозивный гастрит.Concomitant diseases: GB 2 tbsp. Type 2 diabetes mellitus, moderate to severe. Condition after cholecystectomy (February 2005). ICD. Erosive gastritis.
Аллергоанамнез - не отягощен.Allergic history - not burdened.
При поступлении: общее состояние средней тяжести, повышенного питания, отеков нет. Над общими сонными и бедренными артериями шумов нет. В лёгких дыхание жесткое, проводится во все отделы, хрипов нет, ЧДД-16 в 1 мин. Границы сердца расширены влево, верхушечный толчок разлитой. Тоны сердца приглушены, ритм правильный, акцентAt admission: general condition of moderate severity, increased nutrition, no edema. There is no noise over the common carotid and femoral arteries. In the lungs, harsh breathing is carried out in all departments, no wheezing, NPV-16 in 1 min. The borders of the heart are extended to the left, apical push spilled. Heart sounds are muffled, rhythm is correct, accent
2-го тона на JIA, ЧСС - 68 в 1 мин, АД- 140/80 мм рт. ст. Живот при пальпации мягкий, б/б, печень не пальпируется. Дизурии нет, симптом поколачивания отрицательный с обеих сторон. Отёков нет. ЦНС - без грубой патологии.2nd tone on JIA, heart rate - 68 in 1 min, blood pressure - 140/80 mm RT. Art. The abdomen on palpation is soft, b / w, the liver is not palpable. There is no dysuria, the shocking symptom is negative on both sides. No swelling. CNS - without gross pathology.
Обследование в отделении: данные общеклинических анализов крови и мочи в пределах нормы. При R-графии органов гр. кл. патологии не выявлено.Examination in the department: data from general clinical blood and urine tests within normal limits. With R-graph organs gr. class pathology is not revealed.
АНАЛИЗЫ НА ВИЧ, PB, ГЕПАТИТЫ В и С - отрицательные.ANALYSIS ON HIV, PB, HEPATITIS B and C are negative.
ЭКГ: ритм синусовый, ЧCC=69. Диффузное снижение амплитуды зубца «T».ECG: sinus rhythm, HCC = 69. Diffuse decrease in the amplitude of the tooth "T".
ЭХОКГ: Ao-3,4, ЛП-4,2, ПЖ-3,1, ЛЖ: KДP-4,6, KДO-95, KCP-3,1, KCO-36, УO-59, ФИ-62%. Объемные характеристики ЛЖ не увеличены. Локальная сократимость не нарушена. Клапанный аппарат интактен. ДЛА 12 мм рт. ст.ECHOKG: Ao-3,4, LP-4,2, PZh-3,1, LV: KDP-4,6, KDO-95, KCP-3,1, KCO-36, UO-59, FI-62% . LV volumetric characteristics are not increased. Local contractility is not impaired. The valve apparatus is intact. DLA 12 mmHg Art.
КГ: Тип коронарного кровоснабжения: правый тип. ЛЕВАЯ КОРОНАРНАЯ АРТЕРИЯ (ЛКА): Отмечаются выраженные диффузные изменения в виде неровности контуров. Ствол ЛКА: стеноз 3 степени в устье с сохранением просвета около 2 мм. Передняя межжелудочковая ветвь (ПМЖВ): протяженный стеноз 2-3 степени в проксимальной трети, субокклюзия в средней трети, стеноз 3 степени на границе средней и дистальной трети, два последовательных стеноза 1-2 степени в дистальной трети. Диагональная ветвь (ДВ): стеноз 3 степени в устье. Огибающая ветвь (OB): протяженный стеноз 2- 3 степени от устья. ПРАВАЯ КОРОНАРНАЯ АРТЕРИЯ (ПК А): Два последовательных стеноза 3 степени в средней трети, стеноз 1 степени в дистальной трети.KG: Type of coronary blood supply: right type. LEFT CORONARY ARTERY (LCA): Marked diffuse changes in the form of uneven contours. LCA trunk: grade 3 stenosis at the mouth with a clearance of about 2 mm. Anterior ventricular branch (LAD): extended stenosis of 2-3 degrees in the proximal third, subocclusion in the middle third, stenosis of 3 degrees on the border of the middle and distal third, two consecutive stenosis of 1-2 degrees in the distal third. Diagonal branch (DV): grade 3 stenosis at the mouth. Envelope branch (OB): long stenosis 2–3 degrees from the mouth. RIGHT CORONARY ARTERY (SC A): Two consecutive stenosis of 3 degrees in the middle third, stenosis of 1 degree in the distal third.
На основании данных обследования больному определен диагноз: ИБС: нестабильная (прогрессирующая) стенокардия. ПИКС. HK 2а. ГБ 2 ст. Сахарный диабет 2-го типа, средне-тяжелого течения. Хронический эрозивный гастрит вне обострения.Based on the examination data, the patient was diagnosed with coronary heart disease: unstable (progressive) angina pectoris. PEAKS. HK 2a. GB 2 tbsp. Type 2 diabetes mellitus, moderate to severe. Chronic erosive gastritis without exacerbation.
В связи с тяжестью поражения коронарных артерий и клиникой нестабильной стенокардии, больной по жизненным показаниям 30 ноября 2005 года выполнена операция аортокоронарного шунтирования передней межжелудочковой ветви, диагональной ветви и правой коронарной артерии в условиях искусственного кровообращения и фармакохолодовой кардиоплегии. Во время операции перед ИК секционным методом взята биопсия ушка правого предсердия.Due to the severity of coronary artery disease and the clinic of unstable angina, the patient, according to vital signs, underwent surgery of aortocoronary bypass surgery of the anterior interventricular branch, diagonal branch and right coronary artery under conditions of cardiopulmonary bypass and pharmacological cold cardioplegia. During the operation, a biopsy of the ear of the right atrium was taken before the IR sectional method.
Ранний послеоперационный период протекал без осложнений. Экстубация в операционной. Пациентка переведена из реанимационного блока в отделение на следующие сутки. В отделении отмечались пароксизмы MA (03.12.2005 и 23.12.2005), гемодинамически не значимые, купировавшиеся препаратами калия и кордароном. В связи с низким уровнем гемоглобина (до 7,8 г/дл) в послеоперационном периоде были проведены два переливания эр. массы (03.12.2005 и 05.12.2005).The early postoperative period was uneventful. Extubation in the operating room. The patient was transferred from the intensive care unit to the department the next day. In the department, paroxysms of MA were noted (December 3, 2005 and December 23, 2005), hemodynamically insignificant, stopped by potassium preparations and cordarone. Due to the low hemoglobin level (up to 7.8 g / dl) in the postoperative period, two eruptions were performed. masses (December 3, 2005 and December 5, 2005).
Пациентка была включена в научно-клиническую программу трансплантации аутологичных стволовых клеток костного мозга в миокард. 16.12.2005 произведен забор костного мозга с дальнейшей сепарацией KKM. Аутологичные мононуклеарные клетки в течение 5 дней культивировались с тканеспецифицеским антигеном, полученным из биопсийного материала во время операции. 22.12.2005 произведено их интракоронарное и системное (нисходящий отдел аорты) введение. Без осложнений.The patient was included in the scientific-clinical program for the transplantation of autologous stem cells of the bone marrow into the myocardium. 12/16/2005, bone marrow was collected with further separation of KKM. Autologous mononuclear cells were cultured for 5 days with tissue-specific antigen obtained from biopsy material during surgery. 12/22/2005 their intracoronary and systemic (descending aortic section) administration was performed. No complications.
При контрольной коронаро-шунтографии: в месте субокклюзии ПМЖВ зафиксирована окклюзия артерии. Шунт к ПМЖВ проходим, хорошо контрастируются дистальные и проксимальные участки ПМЖВ. Шунт в ДВ хорошо проходим, через шунт заполняется вся система ЛКА за исключением ПМЖВ, окклюзированой в проксимальной трети. Шунт к ПКА хорошо проходим, заполнение всей ПКА и крупной ветви острого края.During the control coronary-shuntography: in the place of subocclusion of the permanent pancreas, artery occlusion was recorded. We pass the shunt to the LAD, the distal and proximal sections of the LAD are well contrasted. The shunt in the Far East is well traversed, the entire LCA system is filled through the shunt, with the exception of the MAD, which is occluded in the proximal third. Shunt to PKA pass well, filling the entire PKA and a large branch of the sharp edge.
В отделение состояние оставалось стабильным. На серии контрольных ЭКГ и ЭхоКГ без отрицательной динамики. Послеоперационные раны заживали первичным натяжением, швы внутрикожные.In the ward, the condition remained stable. On a series of control ECGs and echocardiography without negative dynamics. Postoperative wounds healed by primary intention, intradermal sutures.
Уровень глюкозы крови за все время наблюдения от 5,1 до 8,9 (26.12.2005: 9-7,5, 12-7,9, 15-8,1, 18-6,7, 21-7,5). Общий холестерин - 7,1. Гб -9,3. В остальных анализах без особенностей.The blood glucose level for the entire observation period is from 5.1 to 8.9 (12/26/2005: 9-7.5, 12-7.9, 15-8.1, 18-6.7, 21-7.5) . Total cholesterol is 7.1. GB -9.3. In the remaining analyzes without features.
В удовлетворительном состоянии пациентка выписывается под наблюдение кардиолога по месту жительства.In satisfactory condition, the patient is discharged under the supervision of a cardiologist at the place of residence.
Диагноз заключительный: ИБС: состояние после AKHI ПМЖВ, ДВ и ПКА от 30.11.2005. ПИКС. HK 1. ГБ 2 ст. состояние после трансплантации аутологичных стволовых клеток костного мозга от 22.12.2005. Сахарный диабет 2-го типа, средне-тяжелого течения. Хронический эрозивный гастрит вне обострения.The diagnosis is final: coronary heart disease: condition after AKHI permanent residence, DV and PKA from 30.11.2005. PEAKS. HK 1. GB 2 tbsp. condition after transplantation of autologous bone marrow stem cells from 12.22.2005. Type 2 diabetes mellitus, moderate to severe. Chronic erosive gastritis without exacerbation.
До забора был определен индекс стимуляции, который был меньше 1.0 (фиг.4)Before the fence was determined by the stimulation index, which was less than 1.0 (figure 4)
Для повышения клинического эффекта больной был проведен индивидуальный подбор иммунокорректоров (фиг.5.). Из представленного рисунка видно, что таким препаратом являлся ПОЛИОКСИДОЕЕDЙ.To increase the clinical effect of the patient, an individual selection of immunocorrectors was performed (Fig. 5). From the presented figure it can be seen that such a drug was POLYOXIDOID.
Данный препарат был назначен пациентке по схеме: 7 инъекций, 1-й день 12 мг в/м, затем через день по 6 мг в/м. По окончанию курса был повторно проведен анализ по определению индекса стимуляции (фиг.6), который показал восстановление ИС до нормальных значений. Затем у больной был проведен забор костного мозга, выделены AMK и проведена сокультивация их с ТА полученным из биопсийного материала. При культивировании AMK с добавлением ТА в течение 5 суток происходит изменение фенотипического состава культивируемых клеток по сравнению с исходом и теми клетками, которые культивировались без ТА (фиг. 7). Как видно из представленного рисунка в культуре AMK после добавления антигена происходит увеличение доли T-лимфoцитoв5 особенно Т-хелперов (CD4), которые, поданным литературы (А.Г.Бабаева, Сепаративные процессы и иммунитет)), Известия АН, серия «Биoлoгичecкaя)) 1999, N°3, стр. 261-269), определяют эффективность регенерационных процессов, в поврежденном органе.This drug was prescribed to the patient according to the scheme: 7 injections, 1st day 12 mg IM, then every other day 6 mg IM. At the end of the course, an analysis was repeated to determine the stimulation index (Fig.6), which showed the restoration of the IS to normal values. Then, the patient underwent bone marrow sampling, AMK were isolated, and their co-cultivation was performed with TA obtained from biopsy material. When culturing AMK with TA addition for 5 days, the phenotypic composition of cultured cells changes as compared with the outcome and those cells that were cultured without TA (Fig. 7). As can be seen from the presented figure, in the AMK culture, after the addition of antigen, there is an increase in the proportion of T-lymphocytes of 5 especially T-helpers (CD4), which are served by literature (A.G. Babayeva, Separative processes and immunity)), Izvestia AN, Biological Series )) 1999, N ° 3, pp. 261-269), determine the effectiveness of regeneration processes in a damaged organ.
На контрольном обследовании через 1 месяц после трансплантации клеток было установлено выраженное повышение показателей гемодинамики ( ΔКДО -10%, ΔКСО -8,5%, ΔФИ 12%) и перфузии миокарда (фиг.8), что может быть обусловлено улучшением микроциркуляции за счет неоангиогенеза. Где а. - перфузия миокарда до введения AMK; б. - через один месяц после введения AMK; в. - исходные данные перфузии миокарда в % по сегментам левого желудочка; г. - данные перфузии миокарда левого желудочка по сегментам в % через месяц после интракоронарного введения AMK. Стрелками указаны сегменты с приростом перфузии миокарда более чем на 5%A follow-up examination 1 month after cell transplantation showed a pronounced increase in hemodynamics (ΔKDO -10%, ΔKSO -8.5%, ΔFI 12%) and myocardial perfusion (Fig. 8), which may be due to improved microcirculation due to neoangiogenesis . Where a. - myocardial perfusion before the introduction of AMK; b. - one month after the introduction of AMK; at. - initial myocardial perfusion data in% for segments of the left ventricle; G. - data on perfusion of the myocardium of the left ventricle by segments in% a month after intracoronary administration of AMK. Arrows indicate segments with an increase in myocardial perfusion of more than 5%
Заявляемые изобретения позволяют лечить любые хронические заболевания. Это обеспечивается формированием тканиспецифической направленности регенерационного потенциала клеток, предназначенных для клеточной терапии. Проведенные клинические и экспериментальные исследования подтверждают высокую эффективность клеточной трансплантации при введении на стадии культивирования в ростовую среду тканеспецифический антиген идентичный тому органу, регенерацию которого необходимо восстановить в организме больного. The claimed invention allows to treat any chronic diseases. This is ensured by the formation of tissue-specific orientation of the regenerative potential of cells intended for cell therapy. Clinical and experimental studies confirm the high efficiency of cell transplantation when a tissue-specific antigen identical to the organ whose regeneration must be restored in the patient's body is introduced at the stage of cultivation into the growth medium.
Claims
Applications Claiming Priority (2)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| RU2006103865 | 2006-02-09 | ||
| RU2006103865/14A RU2322248C2 (en) | 2006-02-09 | 2006-02-09 | Method for treating chronic diseases (variants), method for obtaining a biotransplant (variants), a biotransplant (variants) |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| WO2007091919A1 true WO2007091919A1 (en) | 2007-08-16 |
| WO2007091919A8 WO2007091919A8 (en) | 2007-12-06 |
Family
ID=38345426
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| PCT/RU2007/000013 Ceased WO2007091919A1 (en) | 2006-02-09 | 2007-01-15 | Method for treating chronic illnesses (variants), method for producing a biograft (variants) and a biograft (variants) |
Country Status (2)
| Country | Link |
|---|---|
| RU (1) | RU2322248C2 (en) |
| WO (1) | WO2007091919A1 (en) |
Families Citing this family (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| FR2925218B1 (en) * | 2007-12-13 | 2010-03-12 | Photonis France | IMAGE INTENSIFIER TUBE WITH REDUCED SIZE AND NIGHT VISION SYSTEM EQUIPPED WITH SUCH A TUBE |
| RU2430746C2 (en) * | 2009-09-29 | 2011-10-10 | Учреждение Российской академии медицинских наук Научный центр сердечно-сосудистой хирургии им. А.Н. Бакулева РАМН | Biological material for prostheses |
| RU2418607C1 (en) * | 2009-12-25 | 2011-05-20 | Учреждение Российской академии медицинских наук Научный центр сердечно-сосудистой хирургии имени А.Н. Бакулева РАМН | Biological material for prostheses |
| RU2488356C1 (en) * | 2012-02-28 | 2013-07-27 | Федеральное государственное бюджетное учреждение "Научный центр реконструктивной и восстановительной хирургии" Сибирского отделения Российской академии медицинских наук (ФГБУ "НЦРВХ" СО РАМН) | Method of correcting immune disorders |
Citations (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU94042209A (en) * | 1994-11-24 | 1996-09-20 | Научно-производственному объединению "Иммунопрепарат" | Method of producing biologically active peptides of animal raw material |
| RU2268061C1 (en) * | 2004-06-04 | 2006-01-20 | ЗАО "РеМеТэкс" | Biotransplant, method for its obtaining (variants) and method for treating ischemic cardiac disease |
Family Cites Families (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2250772C1 (en) * | 2004-07-16 | 2005-04-27 | Центральный научно-исследовательский рентгено-радиологический институт МЗ РФ (ЦНИРРИ) | Method for treating the cases of non-operable cardiologic patients |
-
2006
- 2006-02-09 RU RU2006103865/14A patent/RU2322248C2/en not_active IP Right Cessation
-
2007
- 2007-01-15 WO PCT/RU2007/000013 patent/WO2007091919A1/en not_active Ceased
Patent Citations (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU94042209A (en) * | 1994-11-24 | 1996-09-20 | Научно-производственному объединению "Иммунопрепарат" | Method of producing biologically active peptides of animal raw material |
| RU2268061C1 (en) * | 2004-06-04 | 2006-01-20 | ЗАО "РеМеТэкс" | Biotransplant, method for its obtaining (variants) and method for treating ischemic cardiac disease |
Non-Patent Citations (3)
| Title |
|---|
| DATABASE MEDLINE [online] BENGEL F.M. ET AL.: "Cell-based therapies and imaging in cardiology", XP003016544, Database accession no. (NLM16205898) * |
| EUR. J. NUCL. MED. MOL. IMAGING, vol. 32, no. SUPPL. 2, December 2005 (2005-12-01), pages S404 - S416 * |
| SHUMAKOV V.I. ET AL.: "Transplantatsya autologichnykh kletok kostnogo mozga kak biologichesky most k transplantatsii serdtsa", 13 November 2005 (2005-11-13), pages 1 - 2, Retrieved from the Internet <URL:http://www.hghltd.yandex.com/yandbtm?url=http%?A%2F%2Fwww.stem-cell.ru%2Fnews> * |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| RU2006103865A (en) | 2007-08-20 |
| WO2007091919A8 (en) | 2007-12-06 |
| RU2322248C2 (en) | 2008-04-20 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| US8142993B1 (en) | Method of preparing neutrophil-depleted platelet-rich plasma | |
| US20070110732A1 (en) | Use of Synovium and Omentum for Tissue Engineering | |
| JP2012505239A (en) | Platelet-rich plasma preparation for heart treatment | |
| RU2312141C2 (en) | Medium for culturing autologous human stem cell-precursors and methods for their using | |
| JP2015129180A (en) | Activated leukocyte composition | |
| WO2007091919A1 (en) | Method for treating chronic illnesses (variants), method for producing a biograft (variants) and a biograft (variants) | |
| US20150284687A1 (en) | Cell therapy: a method and a composition for treating diabetes | |
| RU2126260C1 (en) | Cell suspension-based immunocorrecting drug and using this drug in a method of treating diabetes mellitus | |
| WO2022247848A1 (en) | Preparation method for and application of hair follicle mesenchymal stem cell | |
| CN114984219B (en) | Use of PD1 inhibitors in the preparation of cardiac fibroblast transdifferentiation inhibitors | |
| US20160015756A1 (en) | Cell therapy: a method and a composition for treating diabetes | |
| RU2325934C1 (en) | Method of chronic cardiac insufficiency medical treatment | |
| RU2822010C1 (en) | Method of treating cardiovascular disease | |
| RU2421160C1 (en) | Method of treating purulent wounds of soft tissues | |
| WO2008121027A1 (en) | Growth stimulating and cell regenerating composition and a method for carrying out said method | |
| CN112920997A (en) | Preparation method and application of clinical regeneration antibody autologous blood immune cells | |
| CN116098922A (en) | A kind of autologous bone marrow stem cell preparation and its preparation method for treating type I and type II diabetes | |
| CN113425731A (en) | Medicine for treating myocardial infarction by synergistic stem cells and application thereof | |
| Filgueira et al. | 1 Transcription of Lymphokine Genes by Tumor-Infiltrating Lymphocytes (TIL): A Polymerase Chain Reaction (PCR) Study in Human Renal Cell Carcinoma (RCC) and Melanoma Biopsies | |
| MXPA06013269A (en) | Use of mother cells in heart failure by a total intramyocardial implant. | |
| HK1127086B (en) | Cell therapy: a method and a composition for treating diabetes |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| 121 | Ep: the epo has been informed by wipo that ep was designated in this application | ||
| NENP | Non-entry into the national phase |
Ref country code: DE |
|
| 122 | Ep: pct application non-entry in european phase |
Ref document number: 07716005 Country of ref document: EP Kind code of ref document: A1 |