WO2006080434A1 - 間葉系幹細胞を含む細胞シート - Google Patents
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Definitions
- the present invention relates to a method for treating a cardiovascular disease and a cell sheet used in the method.
- MSCs Mesenchymal stem cells
- Mesenchymal stem cells are somatic stem cells that are present in the bone marrow and are most likely to be capable of functioning (Makino, S. et al "J. Clin. Invest. 103, 697-705 (1999)). Pittenger, MF et al, Science 284, 143-147 (1999)) Mesenchymal stem cells are not only osteoblasts, chondrocytes, neural cells, and skeletal muscle cells, but also vascular endothelial cells (Reyes, M et al, J. Clin. Invest.
- cardiomyocytes (Toma, C, Pittenger, MR, Cahill, KS, Byrne BJ & Kessler, PD, Circulation 105, 93—98 ( Wang, JS et al "J. Thorac. Cardiovasc. Surg. 120, 999-1005 (2000); Jiang, Y. et al., Nature 41S, 41-49 (2002)) Can do. Unlike hematopoietic cells, mesenchymal stem cells have adherence and can be easily cultured and proliferated.
- mesenchymal stem cells also separated adipose tissue strength (Rangappa, S., Fen, C, Lee, EH, Bongso, A. & Wei, ES, Ann. Thorac. Surg. 75 , 775-779 (2003); Zuk, PA et al., Mol. Biol. Cell. 13, 4279-4295 (2002); Gaustad, KG, Boquest, AC, Anderson, BE, Gerdes, AM & Collas, P. , Biochem. Biophys. Res. Commun. 314, 420-427 (2004); Planat— Benard, V. et al., Circulation 109, 656-663 (2004)).
- adipose tissue is only a burden for obese patients with cardiovascular disease, mesenchymal stem cells that have also separated their own adipose tissue strength are treated. If it can be used for regenerative medicine of patients, it is considered to be extremely beneficial clinically.
- Non-Patent Document l Toma, C, Pittenger, M.R, Cahill, K.S., Byrne B.J. & Kessler,
- Non-Patent Document 2 Wang, J.S. et al., J. Thorac. Cardiovasc. Surg. 120, 999-1005
- Non-Patent Document 3 Jiang, Y. et al., Nature 41S, 41-49 (2002)
- An object of the present invention is to provide a new method for treating heart failure.
- the present invention provides a cell sheet for transplantation containing mesenchymal stem cells.
- the mesenchymal stem cells are derived from bone marrow or adipose tissue.
- the stem cells on the cell sheet are grown in situ to form a layer of 100 m or greater thickness.
- the stem cells on the cell sheet grow in situ to induce myocardium and new blood vessels.
- the stem cells on the cell sheet differentiate into myocardium, vascular endothelium and vascular smooth muscle cells in situ.
- the present invention provides a method for treating heart failure in a patient, comprising transplanting a cell sheet for transplantation containing mesenchymal stem cells into the heart of the patient.
- FIG. 1 shows a comparison of cell surface strength between mesenchymal stem cells derived from adipose thread and tissue and mesenchymal stem cells derived from bone marrow.
- Figure 1 shows adipose tissue-derived mesenchymal stem cells cultured on a temperature-responsive culture dish
- Fig. 3-1 shows the establishment and growth of mesenchymal stem cell sheets.
- Fig. 3-2 shows the establishment and growth of mesenchymal stem cell sheets.
- FIG. 4 shows the differentiation of mesenchymal stem cells in the grown transplanted mesenchymal tissue.
- FIG. 5 shows the structure and function of the heart after transplantation of the mesenchymal stem cell sheet.
- Fig. 6 shows the survival curve of heart failure rats treated with untreated and mesenchymal stem cell sheet transplantation.
- mesenchymal stem cell sheet transplantation is useful for the treatment of heart failure after myocardial infarction.
- the “mesenchymal stem cell sheet” refers to a cell sheet obtained by growing mesenchymal stem cells on a culture dish.
- the mesenchymal stem cell sheet of the present invention in addition to mesenchymal stem cells grown in an undifferentiated state, the mesenchymal stem cells have differentiated fibroblasts, stromal cells, adipocytes, vascular endothelium.
- vascular endothelial progenitor cells smooth muscle cells, SP cells and cardiomyocytes
- stromal cells fibroblasts, adipocytes, vascular endothelial cells, blood vessels mixed when collecting mesenchymal stem cells
- endothelial progenitor cells smooth muscle cells, SP cells and cardiomyocytes
- stromal cells fibroblasts, adipocytes, vascular endothelial cells, blood vessels mixed when collecting mesenchymal stem cells
- Cells such as endothelial progenitor cells, smooth muscle cells, SP cells and cardiomyocytes may be included.
- Mesenchymal stem cells are somatic stem cells that are present in the bone marrow and are likely to have a tonic ability.
- Mesenchymal stem cells can be easily prepared by collecting bone marrow, adipose tissue, and other tissue-powered cells from the patient to be transplanted and culturing them by conventional methods.
- Mesenchymal stem cells preferably also collect bone marrow or adipose tissue strength.
- somatic stem cells that have the property of self-growth and can differentiate into cardiomyocytes and vascular endothelial cells are desirable.
- Patient autologous stem cells are particularly desirable from the perspective of histocompatibility during transplantation and the risk of infection.
- a-MEM or DMEM supplemented with 10-15% autologous serum or fetal bovine serum (FBS) and antibiotics can be used.
- growth factors such as fibroblast growth factor (bFGF) and adrenomedullin may be included. Cultivation can be performed under any conditions suitable for mammalian cell culture. In general, culture is performed at 37 ° C and 5% CO for several days, and the medium is changed as necessary.
- Mesenchymal stem cells are culture substrate
- mesenchymal stem cells can be easily identified by cell surface markers such as CD29, CD44, CD71, CD90, and CD105.
- cultured mesenchymal stem cells can be cryopreserved using conventional methods.
- the mesenchymal stem cells separated and cultured as described above are subcultured several times, and a cell suspension is obtained by trypsin treatment, and a conventional culture such as polystyrene is used. Seed on a dish or collagen sheet. After culturing until confluent, a mesenchymal stem cell sheet can be prepared by peeling mesenchymal stem cells from the bottom of the culture dish using a laser blade or tweezers.
- the IPAAm monomer solution is spread on a polystyrene culture dish and irradiated with an electron beam to immobilize IPAAm on the bottom of the culture dish.
- the PIPAAm graft surface is masked with a square glass force burst, and an acrylamide (AAm) monomer solution is spread on the surface.
- it is cleaned by irradiating with an electron beam.
- the square area of the culture dish is grafted with PIPAAm (temperature responsiveness) and the surrounding area is grafted with poly AAm (cell non-adhesive).
- PIPAAm temperature responsiveness
- poly AAm cell non-adhesive
- This PIPAAm-drafted surface is hydrophobic under 37 ° C culture conditions and reversibly becomes hydrophilic at 32 ° C. Therefore, the cultured cells attached to the surface of the culture dish can be peeled off naturally from the graft surface by changing the temperature. After seeding mesenchymal stem cells in this temperature-responsive culture dish and culturing until confluent, the temperature of the culture dish can be changed to 37 ° C force 32 ° C or less, so that the cell culture force can be easily increased.
- the mesenchymal stem cell sheet can be prepared by peeling.
- the mesenchymal stem cell sheet produced as described above can be transplanted to the heart of a patient by applying it to the epicardial surface of the heart during thoracotomy.
- mesenchymal stem cells derived from adipose tissue are cultured according to the present invention to produce a mesenchymal stem cell sheet, and the mesenchymal stem cell sheet is used as a rat myocardial infarction.
- mesenchymal stem cells When applied to the surface of the infarct in an induced chronic heart failure model, mesenchymal stem cells readily engraft on the heart surface, gradually grow in situ, and grow thick with angiogenesis ( About 600 / zm).
- the grown mesenchymal tissue was also composed of newly formed blood vessels, cardiomyocytes, and unsatisfactory mesenchymal cell forces.
- the grown mesenchymal tissue contains many vascular structures, and it was found that mesenchymal stem cells can induce neovascularization in the sheet. This suggests that a thick organization can be constructed.
- transplantation of mesenchymal stem cell sheets according to the present invention is considered to be a novel therapeutic method for myocardial tissue regeneration.
- Advantages of transplanting a mesenchymal stem cell sheet are as follows. First, due to the self-growth nature in situ, a thick layer is formed on the scarred myocardial wall. Second, mesenchymal stem cells probably have the ability to secrete site force-in that promotes angiogenesis in addition to the ability to secrete to cardiomyocytes. Angiogenesis occurs.
- transplanted tissue a substantial part of the transplanted tissue is undivided mesenchymal cells, which inhibit the progress of remodeling.
- mesenchymal cells By building a thick myocardial tissue with new blood vessels, left ventricular wall stress is reduced and cardiac function after myocardial infarction is improved.
- the MSC group was transplanted with a mesenchymal stem cell sheet in front of the scarred heart.
- the other two groups underwent thoracotomy without transplantation. Cardiac catheterization, echocardiography, and histological evaluation were performed 4 or 8 weeks after coronary artery ligation.
- adipose tissue was collected from each rat.
- the adipose tissue was shredded with a spatula and shaken with a type 1 collagenase solution (0.1 mg / ml) in a 37 ° C water bath for 1 hour. After filtration through a mesh filter (Costar 3480) and centrifugation at 2000 rpm for 8 minutes, the separated cells were suspended in a-MEM supplemented with 10% FCS and antibiotics. This was seeded on a 100 mm culture dish and cultured in a humid environment of 5% CO 2 and 37 ° C.
- Rat adipose tissue-derived mesenchymal stem cells are cultured in standard polystyrene culture dishes or collagen After culturing until confluent on the sheet, it was collected as a mesenchymal stem cell sheet from the bottom of the culture dish using a laser blade or tweezers.
- IPAAm monomer solution on a polystyrene culture dish, irradiate the electron beam (0.25MGy) to immobilize IPAAm on the surface, rinse with distilled water, and dry in nitrogen gas.
- the PIPAAm graft surface is then masked with a square glass cover slip (24x24mm).
- AAm acrylamide
- the surface of the culture dish is irradiated with an electron beam and cleaned.
- the rectangular area of each culture dish is grafted with PIPAAm (temperature responsiveness), and the surrounding area is grafted with polyAAm (cell non-adhesive).
- the surface grafted with PIPA Am is hydrophobic under 37 ° C culture conditions, and becomes reversibly hydrophilic under 32 ° C. Therefore, cultured cells attached to the dish surface are collected without enzyme treatment. After mesenchymal stem cells are seeded on this temperature-responsive culture dish and cultured until confluent, the mesenchymal stem cell sheet can be prepared by changing the culture temperature to 37 ° C force or less than 32 ° C. it can.
- adipose tissue-derived mesenchymal stem cells as a cell suspension by trypsinization and the temperature-responsive culture dish 60mm were seeded at a cell density 7Xl0 5 cells / dish, and cultured at 37 ° C for .
- confluent mesenchymal stem cells were cultured at 20 ° C on a temperature-responsive culture dish.
- the mesenchymal stem cells spontaneously detached and floated in the culture medium as a mesenchymal stem cell sheet. Thereafter, the mesenchymal stem cell sheet was gently sucked into the pipette tip and transferred onto the plastic sheet.
- rats Four weeks after coronary artery ligation, rats were anesthetized with sodium pentobarbital, the heart was carefully exposed under left thoracotomy, and a mesenchymal stem cell sheet was slid from the plastic sheet and placed on the scar in front of the heart. It was. The chest was closed 20 minutes after transplantation. For the untreated group and the sham group, the same operation was performed without grafting.
- Echocardiography was performed 4 and 8 weeks after coronary artery ligation. M-mode images of the papillary muscle level were obtained using an echocardiographic system equipped with a 7.5MHz transducer. Expansion Before and after systole, posterior wall thickness, left ventricular end diastolic and end systolic diameter, and left ventricular leading-edge method of the American society for Echocardiography were also measured. Left ventricular wall stress is 0.344x left ventricular pressure x ⁇ left ventricular diameter / (1 + posterior wall thickness Z left ventricular diameter) ⁇ (Douglas, PS et al. J. Am. Coll. Cardiol. 9, 945-95 1 (1987)).
- mesenchymal stem cells were labeled with a red fluorescent dye (PKH26), a mesenchymal stem cell sheet was prepared, and transplanted 4 weeks after coronary artery ligation.
- PHL26 red fluorescent dye
- the heart was removed, embedded in OCT, frozen in liquid nitrogen, and sectioned. Fluorescent immunostaining was performed using polyclonal rabbit anti-von Willebrand factor antibody, monoclonal mouse anti-a SMA, anti-desmin, anti-vimentin, anti-troponin and anti-type 1 collagen antibody.
- GFP-expressing mesenchymal stem cells obtained from subcutaneous adipose tissue of GFP transgenic rats were used.
- Plasma ANF concentration was measured by the antibody method.
- concentration of VEGF and HGF in the culture was measured 24 hours after the medium change by the enzyme immunoassay.
- adherent cells After culturing the minced adipose tissue for 4 days, spindle-shaped adherent cells were observed. 3-4 After one generation, most adherent cells expressed CD29 and CD90. In contrast, the majority of adherent cells were negative for CD34 and CD45. A few adherent cells expressed c-Kit ( Figure la). Bone marrow-derived mesenchymal stem cells were also CD29 and CD90 positive and CD34 and CD45 negative ( Figure lb). These results suggest that the characteristics of adherent cells (mesenchymal stem cells) derived from adipose tissue are similar to bone marrow-derived mesenchymal stem cells.
- Rat adipose tissue-derived mesenchymal stem cells were cultured until they became confluent on a normal polystyrene culture dish or collagen sheet, and then the culture dish bottom force was also collected as a mesenchymal stem cell sheet using a laser blade or tweezers.
- Data are average ⁇ s. E. M. *, P for control group; 0.05; ⁇ , P for treatment before 0.05.
- AWT left ventricular anterior wall thickness
- PWT left ventricular posterior wall thickness
- FIG. 2 shows cultured mesenchymal stem cells 2 days after seeding (a) and 3 days (b).
- Mesenchymal stem cells proliferated only in the PIPAAm-grafted region (24x24mm), but the cells were vigorous outside this region.
- the culture temperature was lowered from 37 ° C to 20 ° C, the cells were easily detached from the bottom of the culture dish (c) and became 12x12 mm mesenchymal stem cell sheets (d).
- the mesenchymal stem cell sheet was transferred to a plastic sheet and spread by pipetting. After peeling, the cells remained vigorous on the PIPAAm-graft surface.
- ac skeleno reno, 100 ⁇ m
- d skeleno reno, 50 mm.
- the transplanted mesenchymal stem cell sheet settled well in the scar region of the anterior wall (Fig. 3).
- A, b Transplanted mesenchymal tissue (GFP, green) and DNA (DAPI, blue).
- DAPI DNA
- c, d Hematoxylin-eosin staining (serial sections of a, b).
- E Time course of growth of GFP positive mesenchymal tissue. *, There is a significant difference in the thickness of GFP-positive mesenchymal tissue in the first week (P 0.05).
- mesenchymal stem cells labeled with a red fluorescent dye were confirmed as a thick layer on the host myocardial tissue ( Figure 4).
- the grown mesenchymal tissue contained numerous vascular structures positive for von Willebrand factor (green) and a SMA (green). The majority of mesenchymal stem cells that were not involved in angiogenesis were negative for a SMA, a marker for myofibroblasts.
- SMA a marker for myofibroblasts.
- Some mesenchymal stem cells in the grown mesenchymal tissue were positive for cardiac markers troponin T and desmin (green).
- the grown mesenchymal tissue contains a large number of undifferentiated mesenchymal cells.
- the grown mesenchymal tissue was composed of newly formed blood vessels, cardiomyocytes, and undifferentiated mesenchymal cells!
- the cocoon thin sheet While being transplanted, the cocoon thin sheet has 11 heart structures;
- FIG. 5 shows the structure and function of the heart after transplantation of the mesenchymal stem cell sheet.
- A-c Strength This is a parameter obtained by Tethel examination.
- D-f Echocardiographic findings.
- G Atrial natriuretic factor (ANF) concentration in plasma.
- LVEDP left ventricular end-diastolic pressure
- AWT anterior wall thickness
- LVDD left ventricular end-diastolic diameter
- % FS left ventricular shortening rate.
- * Significantly different from the sham group (P 0.05); ⁇ , Significantly different from the untreated group (P 0.05); ⁇ , Significantly different from the previous treatment (0.05).
- Echocardiography showed that the diastolic wall thickness of the anterior wall infarcted by mesenchymal stem cell sheet transplantation was significantly increased (Fig. 5d). However, there was no significant difference in the rear wall (Table 4). The rate of wall thickness increase in the front and rear walls was significantly higher in the MSC group than in the untreated group (Table 4). The left ventricular end-diastolic diameter did not change in the MSC group, but tended to increase in the untreated group (Fig. 5e). As a result, the left ventricular end diastolic diameter after 8 weeks was significantly smaller in the MSC group than in the untreated group. Transplantation of mesenchymal stem cell sheets significantly increases left ventricular shortening rate! ] (Fig. 5f).
- Diastolic left ventricular wall stress was significantly lower in the MSC group than in the untreated group (Table 4).
- Plasma atrial natriuretic factor (ANF) levels in the untreated group were significantly elevated 8 weeks after myocardial infarction ( Figure 5g).
- transplantation of mesenchymal stem cell sheets suppressed the increase in plasma ANF.
- the Kaplan-Meier survival curve showed that the survival rate at 4 weeks after coronary artery ligation was not significantly different between the untreated group and the SC group ( Figure 6). However, the rats did not die after transplantation of the mesenchymal stem cell sheet.
- the survival rate after transplantation in the MSC group was significantly higher than that in the untreated group (100% vs. 100%). 64%, survival rate 4 weeks after transplantation, log-rank test, P 0.01). As a result, the 8-week survival rate after coronary artery ligation was 67% in the MSC group and 5% in the untreated group.
- the mesenchymal stem cell sheet transplantation method according to the present invention is a novel acupuncture treatment that regenerates myocardial tissue and reduces the progression of heart failure by simply attaching a mesenchymal stem cell sheet.
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Abstract
間葉系幹細胞は,心筋細胞および血管内皮細胞に分化することができる多分化能を持った細胞である。本発明においては,間葉系幹細胞シートが,その多分化能およびin situで自己成長しうる性質のため,高度に障害を受けた心臓の治療剤としての可能性を有していることを示す。脂肪組織由来の間葉系幹細胞を培養して間葉系幹細胞シートを作製した。ラットに心筋梗塞を作製し,その4週間後に間葉系幹細胞シートを心臓に移植した。間葉系幹細胞シートは瘢痕化した心筋表面に容易に定着し,in situで徐々に成長し,4週間で厚い層(約600μm)を形成した。成長した移植間葉系組織は,新たに形成された血管,心筋細胞および未分化な間葉系細胞を含んでいた。定着した間葉系幹細胞は,心筋梗塞をもつラットにおいて,瘢痕領域の心筋壁の菲薄化を抑制し,心機能および生存率を改善した。すなわち,間葉系幹細胞シート移植は,心筋組織再生のための新規な治療方法でありうる。
Description
明 細 書
間葉系幹細胞を含む細胞シート 技術分野
[0001] 本発明は心血管疾患を治療するための方法およびこの方法に用いる細胞シートに 関する。
背景技術
[0002] 医学および外科手術の進歩にもかかわらず,うつ血性心不全はなお心血管疾患の 罹患率および死亡率の主な原因である(Cohn, JN.. N. Engl. J. Med. 335, 490 -498 (1996))。心不全の主な原因である心筋梗塞は,心筋組織の喪失および左室 機能の障害につながる。したがって,瘢痕化した心筋を修復することが,心不全治療 には望ましい。心筋組織再生のために骨髄細胞を針で心筋内に注入することはこれ までも行われているが(Liu, J. et al" Am. J. Physiol. Heart Circ. Physiol. 28 7, H501-511 (2004); Reinlib, L. & Field, L., Circulation 101, El 82-187 ( 2000); Schuster, M.D. et al" Am. J. Physiol. Heart Circ. Physiol. 287, H 525-532 (2004); Kocher, A.A. et al., Nat. Med. 7,430-436 (2001); Bel, A. et al" Circulation 108, 11247-252 (2003); Ishida, M. et al" J. Heart Lun g Transplant. 23, 436-445 (2004)) ,心筋梗塞後に薄くなつた瘢痕領域において 十分な厚みを持った組織を再生することは困難である。
[0003] 骨格筋芽細胞,胎児心筋細胞,および胚性幹細胞は,心筋組織再生における移 植可能な細胞ソースであると考えられてきた(Herreros, J. et al., Eur. Heart. J.
24, 2012-2020 (2003); Skobel, E. et al" Tissue Eng. 10, 849-864 (2004) ; Hodgson, D.M. et al., Am. J. Physiol. Heart. Circ. Physiol. 287, H471— 479 (2004)) oしかし,これらの細胞では血管網の形成がないために,多層の組織を 構築することができない。
[0004] 心不全患者の治療法として,注射針を用いた細胞移植による心筋組織再生が行わ れるようになってきた。しかし,この方法は,厚みのある心筋糸且織を再生することがで きない。厚みのある心筋組織の再生には,細胞シートの多層構造体が必要であると
考えられる。最近,岡野らは,温度応答性培養皿を用いた細胞シートを開発した。細 胞シートは,トリプシンのような酵素処理が必要でないため,細胞と細胞との結合およ び接着蛋白が保持される(Shimizu, T. et al" Circ. Res. 90, e40- 48 (2002); Kushida, A. et al., J. Biomed. Mater. Res. 51, 216—223 (2000); Kushida, A. et al" J. Biomed. Mater. Res. 45, 355—362 (1999); Shimizu, T., Yamat o, M., Kikuchi, A. & Okano, T., Tissue Eng. 7, 141-151 (2001); Shimizu, T et al" J. Biomed. Mater. Res. 60,110—117(2002); Harimoto, M. et al" J. Biomed. Mater. Res. 62, 464-470 (2002))。このような細胞シート製造技術 は,心筋組織の再生に有用であると期待される。ただし,これまでの細胞シートでは 血管網の形成ができな 、ため,十分な厚みのある組織の再生は困難であった (Shimi zu, T et al" J. Biomed. Mater. Res. 60,110—117(2002); Shimizu, T., Yamat o, M., Kikuchi, A. & Okano, T., Biomaterials 24, 2309—2316 (2003))。
間葉性幹細胞 (MSC)とは,骨髄中に存在し,多分ィ匕能をもつ体性幹細胞である(M akino, S. et al" J. Clin. Invest. 103, 697—705 (1999); Pittenger, M.F. et al, Science 284, 143-147 (1999))。間葉系幹細胞は,骨芽細胞,軟骨細胞,神 経細胞,および骨格筋細胞のみならず,血管内皮細胞(Reyes, M. et al, J. Clin . Invest. 109; 337-346 (2002))および心筋細胞(Toma, C, Pittenger, M.R, C ahill, K.S., Byrne B.J. & Kessler, P.D., Circulation 105, 93—98 (2002); Wa ng, J.S. et al" J. Thorac. Cardiovasc. Surg. 120, 999—1005 (2000); Jiang, Y. et al., Nature 41S, 41-49 (2002))にも分化することができる。間葉系幹細胞 は,造血性細胞とは異なり,付着能を持ち,容易に培養増殖させることができる。最 近,間葉系幹細胞が脂肪組織力も分離されることが見出された (Rangappa, S., Fen, C, Lee, E.H., Bongso, A. & Wei, E.S., Ann. Thorac. Surg. 75, 775—779 (2003); Zuk, P.A. et al., Mol. Biol. Cell. 13, 4279-4295 (2002); Gaustad, K.G., Boquest, A.C., Anderson, B.E., Gerdes, A.M. & Collas, P., Bioche m. Biophys. Res. Commun. 314, 420-427 (2004); Planat— Benard, V. et al., Circulation 109, 656-663(2004))。脂肪組織は心血管疾患を有する肥満患者にと つては重荷にすぎな 、ため,患者自身の脂肪組織力も分離した間葉系幹細胞を疾
患の再生医療に用いることができれば,臨床上極めて有益であると考えられる。
[0006] 非特許文献 l :Toma, C, Pittenger, M.R, Cahill, K.S., Byrne B.J. & Kessler,
P.D., Circulation 105, 93—98 (2002)
非特許文献 2 : Wang, J.S. et al., J. Thorac. Cardiovasc. Surg. 120, 999-1005
(2000)
非特許文献 3 : Jiang, Y. et al., Nature 41S, 41-49 (2002)
発明の開示
発明が解決しょうとする課題
[0007] 本発明は,心不全の新たな治療方法を提供することを目的とする。
課題を解決するための手段
[0008] 本発明は,間葉系幹細胞を含む移植用の細胞シートを提供する。好ましくは,間葉 系幹細胞は骨髄または脂肪組織に由来するものである。好ましくは,細胞シート上の 幹細胞は in situで成長して 100 mまたはそれ以上の厚さの層を形成する。また好ま しくは,細胞シート上の幹細胞は in situで成長して心筋および新生血管を誘導する 。また好ましくは,細胞シート上の幹細胞は, in situで心筋,血管内皮および血管平 滑筋細胞に分化する。
[0009] 別の観点においては,本発明は,患者において心不全を治療する方法であって, 患者の心臓に間葉系幹細胞を含む移植用の細胞シートを移植することを含む方法 を提供する。
図面の簡単な説明
[0010] [図 1]図 1は,脂肪糸且織由来間葉系幹細胞と骨髄由来間葉系幹細胞の細胞表面マ 一力一の比較を示す。
[図 2]図 1は, 温度応答性培養皿上で培養した脂肪組織由来間葉系幹細胞を示す
[図 3-1]図 3— 1は間葉系幹細胞シートの定着と成長を示す。
[図 3-2]図 3— 2は間葉系幹細胞シートの定着と成長を示す。
[図 4]図 4は,成長した移植間葉系組織中の間葉系幹細胞の分化を示す。
[図 5]図 5は,間葉系幹細胞シートの移植後の心臓の構造および機能を示す。
[図 6]図 6は,未治療および間葉系幹細胞シート移植を施行した心不全ラットの生存 曲線を示す。
発明を実施するための最良の形態
[0011] 本発明においては,間葉性幹細胞シート移植が心筋梗塞後の心不全治療に有用 であることが見出された。本明細書において, 「間葉系幹細胞シート」とは,間葉系幹 細胞を培養皿上で増殖させて得られる細胞シートをいう。本発明の間葉系幹細胞シ ートには,未分化の状態を保ったまま増殖した間葉系幹細胞に加え,間葉系幹細胞 が分化した線維芽細胞,間質細胞,脂肪細胞,血管内皮細胞,血管内皮前駆細胞, 平滑筋細胞, SP細胞および心筋細胞などの他の細胞や,間葉系幹細胞を採取する 際に混入した間質細胞,線維芽細胞,脂肪細胞,血管内皮細胞,血管内皮前駆細 胞,平滑筋細胞, SP細胞および心筋細胞などの細胞が含まれていてもよい。
[0012] 間葉性幹細胞とは,骨髄中に存在し,多分ィ匕能をもつ体性幹細胞である。間葉系 幹細胞は,移植を受けるべき患者の骨髄,脂肪組織,その他の組織力 細胞を採取 し,慣用の方法により培養することにより,容易に調製することができる。間葉性幹細 胞は好ましくは骨髄または脂肪組織力も採取する。細胞のソースとしては, 自己成長 する性質を有し,かつ心筋細胞および血管内皮細胞に分化しうる体性幹細胞が望ま しい。また,移植の際の組織適合性および感染のリスクの観点から,患者の自己体性 幹細胞が特に望ましい。
[0013] 培養液としては, 10〜15%の自己血清または牛胎児血清 (FBS)および抗生物質を 補充した a -MEMや DMEMを用いることができる。必要に応じて線維芽細胞増殖因 子 (bFGF)やアドレノメデュリンなどの成長因子をカ卩えることがある。培養は,哺乳動 物の細胞の培養に適する任意の条件で実施することができるが,一般的には 37°C, 5 % COで数日間培養し,必要に応じて培地を交換する。間葉系幹細胞は培養基材
2
に接着して増殖する性質を有するため,浮遊して増殖する造血性幹細胞と容易に分 離することができる。間葉系幹細胞は, CD29, CD44, CD71, CD90, CD105等の細 胞表面マーカーにより容易に確認することができる。また,培養した間葉系幹細胞は ,慣用の方法を用いて凍結保存することが可能である。
[0014] 間葉系幹細胞シートを作製するためには,上述のようにして分離'培養した間葉系 幹細胞を数代継代し,トリプシン処理により細胞浮遊液とし,ポリスチレン製等の慣用 の培養皿またはコラーゲンシート上に播種する。コンフルェントになるまで培養した後 ,レーザーブレードまたはピンセット等を用いて培養皿底面から間葉系幹細胞を剥が すことにより,間葉系幹細胞シートを作製することができる。
[0015] 温度応答性培養皿を用いて間葉系幹細胞シートを作製するためには,例えば, Shi mizu, T. et al., Circ. Res. 90, e40— 48 (2002); Kushida, A. et al., J. Bio med. Mater. Res. 51, 216—223 (2000); Kushida, A. et al" J. Biomed. Mat er. Res. 45, 355—362 (1999); Shimizu, T., Yamato, M., Kikuchi, A. & Oka no, T., Tissue Eng. 7, 141—151 (2001); Shimizu, T et al., J. Biomed. Mat er. Res. 60,110—117(2002); Harimoto, M. et al" J. Biomed. Mater. Res. 62 , 464-470 (2002))等に記載されている方法に従うことができる。簡単には, IPAAm モノマー溶液をポリスチレン性の培養皿上に広げ,電子線を照射して, IPAAmを培養 皿底面で不動化させる。次に, PIPAAmグラフト表面を四角形のガラスの力バースリツ プでマスクし,その表面にアクリルアミド (AAm)モノマー溶液を広げる。次に,電子線 を照射して洗浄する。その結果,培養皿の四角形の領域は PIPAAmでグラフトされ( 温度応答性),周囲はポリ AAmでグラフトされる(細胞非接着性)。この PIPAAmでダラ フトした表面は 37°Cの培養条件では疎水性であり, 32°Cで可逆的に親水性となる。し たがって,培養皿表面に付着した培養細胞は,温度を変化させることにより,グラフト 表面から自然にはがれる。間葉系幹細胞をこの温度応答性培養皿に播種し,コンフ ルェントになるまで培養した後,培養温度を 37°C力 32°C以下に変化させることによ り,細胞を培養皿力も容易に剥がして,間葉系幹細胞シートを作製することができる。
[0016] 上記のようにして作製した間葉系幹細胞シートは,開胸術中に心臓の心外膜面に 貼付することにより,患者の心臓に移植することができる。
[0017] 下記の実施例に示されるように,本発明にしたがって脂肪組織由来の間葉系幹細 胞を培養して間葉系幹細胞シートを作製し,この間葉系幹細胞シートをラット心筋梗 塞誘発慢性心不全モデルの梗塞巣表面に貼付したところ,間葉系幹細胞は容易に 心表面に生着し, in situで徐々に成長し,血管新生を伴いながら厚みのある組織(
およそ 600 /z m)を形成した。成長した間葉系組織は,新たに形成された血管,心筋 細胞,および未分ィ匕な間葉系細胞力も構成されていた。特に,成長した間葉系組織 は多数の血管構造を含んでおり,間葉系幹細胞がシート中で新生血管形成を誘導 しうることが見いだされた。このことにより,厚みのある組織の構築が可能となったと考 えられる。これらの結果は,シート中の間葉系幹細胞が in situで成長して心筋および 新生血管を誘導するとともに,心筋,血管内皮および血管平滑筋細胞に分化するこ とを示す。
[0018] 本発明の間葉系幹細胞シートを移植したラットでは,瘢痕領域の心筋壁の菲薄化 が抑制されており,心機能および生存率が改善した。すなわち,本発明にしたがう間 葉系幹細胞シートの移植は,心筋組織再生のための新規な治療方法であると考えら れる。間葉系幹細胞シート移植の利点は以下のとおりである。第 1に, in situで自己 成長する性質のため,瘢痕化した心筋壁の上に厚い層が形成される。第 2に,間葉 系幹細胞は多分ィ匕能に加えて血管新生を促進するサイト力インの分泌能力を有する ため,心筋細胞へ分ィ匕するだけでなく,成長した間葉系組織内に血管形成が起こる 。第 3に,移植された組織の実質的な部分は未分ィ匕な間葉系細胞であり,これはリモ デリングの進行を阻害する。新生血管を有する厚い心筋組織が構築されることで,左 室壁応力が低下し,心筋梗塞後の心機能が改善される。
[0019] 本明細書において明示的に引用される全ての特許および参考文献の内容は全て 本明細書の一部としてここに引用する。また,本出願が有する優先権主張の基礎とな る出願である日本特許出願 2005— 019802号および 2005— 212236号の明細書 および図面に記載の内容は全て本明細書の一部としてここに引用する。
[0020] 以下に実施例により本発明をより詳細に説明するが,これらの実施例は本発明の 範囲を制限するものではな 、。
実施例
[0021] 述
心不全モデノレ
すべ飞のプロトコノレ ίま, The National Cardiovascular Research Institute, The Animal Care Ethics Committieのガイドラインにしたがって行われた。体重 185- 220
gのラットを用いた。心筋梗塞モデルは左冠動脈の結紮術により作成した。ベントバル ピタールナトリウム (30mg/kg)でラットを全身麻酔した後,人工呼吸下に左開胸切開 を行い,心臓を露出させた。次に肺動脈円錐と左心房との間,つまり左冠動脈起始 部から 2-3mmの部位を 6-0プロリンで結紮した。シャムコントロール群には, 同様の開 胸および心臓露出を行ったが,冠動脈結紮は行わな力 た。手術後,ラットは標準的 な餌および環境で飼育した。
[0022] 実験プロトコル
間葉系幹細胞シート移植を施行した心不全ラット (MSC群: η=14) ,移植を行わな!/ヽ 心不全ラット(未治療群: η=14) ,および移植を行わな 、シャムコントロールラット(シャ ム群: n=10)の 3群を用意した。左室全体の 25%以上の梗塞サイズを有するラットのみ を慢性心不全モデルとして用いた。冠動脈結紮術の 4週間後, MSC群には瘢痕化し た心臓前面に間葉系幹細胞シート移植を行った。他の 2群には,移植操作を伴わな い開胸術を施行した。冠動脈結紮術の 4または 8週間後に心カテーテル検査,心ェコ 一,および組織学的評価を行った。
[0023] H旨) からの 細qの >¾l:feよび焙着
冠動脈結紮術の直後に,各ラットから 0.9— 1.2gの皮下脂肪組織を右風径部力 採 取した。鋏で脂肪組織を細断し,タイプ 1コラゲナーゼ溶液 (0.1mg/ml)で 37°Cの温浴 槽で 1時間震盪した。メッシュフィルター(Costar 3480)で濾過し, 2000rpmで 8分間 遠心した後,分離した細胞を 10%FCSおよび抗生物質を加えた a -MEMに浮遊させた 。これを 100mmの培養皿に播種し, 5%CO , 37°Cの湿潤環境で培養した。
2
[0024] フローサイトメトリー
培養付着細胞をフローサイトメトリーで分析した。細胞をラット CD34 (ICO- 115) , CD 45 (OX- 1) ,および CD90 (OX- 7)に対する FITC付カ卩マウスモノクローナル抗体ととも に 4°Cで 30分間インキュベートした。 FITC付加ノヽムスター抗ラット CD29モノクローナ ル抗体 (Ha2/5)およびゥサギ抗ラット c-Kitポリクローナル抗体 (C-19)を用いた。コン トールとして,同じアイソタイプの抗体を用いた。
[0025] 間 系榦細朐シートの調製
ラット脂肪組織由来の間葉系幹細胞を通常のポリスチレン製培養皿またはコラーゲ
ンシート上にコンフルェントになるまで培養した後,レーザーブレードまたはピンセット を用いて培養皿底面から間葉系幹細胞シートとして回収した。
[0026] 温度 答件焙着 I を用いた間 榦細朐シートの作製
IPAAmモノマー溶液をポリスチレン培養皿上に広げ,電子線 (0.25MGy)を照射して IPAAmを表面に不動化させた後,蒸留水ですすぎ,窒素ガス中で乾燥させる。次に , PIPAAmグラフト表面を四角形のガラスカバースリップ(24x24mm)でマスクする。マ スクした培養皿表面にアクリルアミド (AAm)モノマー溶液を広げる。次に,培養皿表 面を電子線照射し,洗浄する。その結果,各培養皿の矩形領域は PIPAAmでグラフト され (温度応答性),その周囲はポリ AAmでグラフトされる(細胞非接着性)。この PIPA Amでグラフトした表面は 37°Cの培養条件では疎水性であり, 32°C以下で可逆的に親 水性となる。したがって,ディッシュ表面に付着した培養細胞は,酵素処理なしで回 収される。間葉系幹細胞をこの温度応答性培養皿に播種し,コンフルェントになるま で培養した後,培養温度を 37°C力 32°C以下に変化させることにより間葉系幹細胞 シートを作製することができる。
[0027] 3から 4継代した脂肪組織由来間葉系幹細胞をトリプシン処理により細胞浮遊液とし , 60mmの温度応答性培養皿に細胞密度 7xl05個/ dishで播種し, 37°Cで培養した。 3 日後,温度応答性培養皿上でコンフルェントとなった間葉系幹細胞を 20°Cで培養し た。 40分以内に間葉系幹細胞は自然に剥がれ,間葉系幹細胞シートとして培養液中 に浮遊した。この後,間葉系幹細胞シートをピペットチップ内に穏やかに吸引し,ブラ スチックシート上に移した。
[0028] 間 榦細朐シートの移植
冠動脈結紮術の 4週間後,ラットをペントバルビタールナトリウムで麻酔し,左開胸 下に心臓を注意深く露出させた後,間葉系幹細胞シートをプラスチックシート上から すべらせ,心前面の瘢痕上に置いた。移植 20分後に閉胸した。未治療群およびシャ ム群につ ヽては,グラフトなしで同じ手術操作を行った。
[0029] 心エコー檢杳
心エコー検査は,冠動脈結紮術の 4および 8週間後に行った。 7.5MHzトランスデュ ーサを備えた心エコーシステムを用いて,乳頭筋レベルの Mモード画像を得た。拡張
末期および収縮末期の前,後壁厚,左室拡張末期および収縮末期径,および左室 the American society for Echocardiographyの leading— edge method【こ より, 3回の連続心サイクル力も測定した。左室壁応力は, 0.344x左室圧 x{左室径 / ( 1 +後壁厚 Z左室径)} (Douglas, P.S. et al. J. Am. Coll. Cardiol. 9, 945-95 1 (1987))とした。
[0030] 心カテーテル檢杳
心カテーテル検査は,冠動脈結紮術の 8週間後, 2回目の心エコーの後に行った。 ペントバルビタールナトリウムで麻酔後, 1.5Fのマイクロマノメータカテーテルを,右総 頸動脈を通して左心室に進め,圧を測定した。その後,左右心室および肺を切除し, 重量を測定した。梗塞のサイズは,既存の手法を用いて(Chien, Y.W et al. Am. J. Physiol. 254, R185-191 (1988)) ,全左室面積に対する百分率として求めた(各 群 n=5) 0
[0031] 糸 ¾平
心筋の線維化を検出するために,左室心筋 (各群 n=5)を 10%ホルマリンで固定後, パラフィン包埋し,マッソン染色を施行した。また,新たに 5匹のラットを用いて,移植さ れた間葉系幹細胞が血管内皮細胞および心筋細胞に分ィ匕する力否かを調べた。間 葉系幹細胞を赤色蛍光色素 (PKH26)で標識し,間葉系幹細胞シートを作製,冠動 脈結紮術の 4週間後に移植した。移植 4週間後に心臓を取り出し, OCTに包埋後, 液体窒素中で凍結させ,切片を作成した。蛍光免疫染色は,ポリクローナルゥサギ抗 フォンビルブラント因子抗体,モノクローナルマウス抗 a SMA,抗デスミン,抗ビメンチ ン,抗トロポニン Τおよび抗タイプ 1コラーゲン抗体を用いて行った。
[0032] 間葉系幹細胞の in vivoでの成長度を調べる為に, GFP遺伝子組換えラットの皮下 脂肪組織から得た GFP発現間葉系幹細胞を用いた。 GFPを発現する間葉系幹細胞 シートを,冠動脈結紮術の 4週間後にラットに移植した (n=9)。このラットから移植 4週 間後まで毎週凍結切片を作製し, GFP陽性間葉系組織の厚さを蛍光顕微鏡下で測 し 7こ。
[0033] サイト力インおよびホルモンの測定
冠動脈結紮術の 4および 8週間後に尾静脈力 血液サンプルを採取し,酵素免疫
抗体法により血漿 ANF濃度を測定した。間葉系幹細胞シートからの血管新生因子産 生量を調べるために,培地交換の 24時間後に,培養液中の VEGFおよび HGFの濃 度を酵素免疫抗体法により測定した。
[0034] 生存率
間葉系幹細胞シート移植が予後に及ぼす影響を調べるために, 43匹のラットを無 作為に 2群に分けた (MSC群, n=21 ; 未治療群, n=22) G生存率は,冠動脈結紮術 の日力もラットの死亡または 8週間後までを評価した。
[0035] 統 f 学的分析
データは平均士標準誤差で示した。 3群間の多重比較は,一元配置分散分析 New man-Keul検定を施行した。反復を伴う多重比較には,二元配置分散分析と Newman- Keul検定を施行した。 2群間の比較は t検定により行った。 P値が 0.05未満を有意差あ りとした。
[0036] ¾
H旨) ^ fe f¾H 糸田 の rM^J 分析
細断した脂肪組織を 4日間培養した後,紡錘形の付着細胞が観察された。 3-4 1 代した後,ほとんどの付着細胞は CD29および CD90を発現していた。これに対し,付 着細胞の大部分は CD34および CD45につ 、て陰性であった。わずかの付着細胞が c -Kitを発現していた(図 la)。骨髄由来間葉系幹細胞もまた, CD29および CD90陽性 であり, CD34および CD45は陰性であった(図 lb)。これらの結果は,脂肪組織由来 の付着細胞 (間葉系幹細胞)の特徴が骨髄由来間葉系幹細胞と類似していることを 示唆する。
[0037] 間 榦細朐シートの作製
ラット脂肪組織由来の間葉系幹細胞を通常のポリスチレン製培養皿またはコラーゲ ンシート上にコンフルェントになるまで培養した後,レーザーブレードまたはピンセット 等を用いて培養皿底面力も間葉系幹細胞シートとして回収した。
[0038] この間葉系幹細胞シートをラット心筋梗塞誘発慢性心不全モデルの梗塞巣表面に 貼付したところ,間葉系幹細胞は容易に心表面に生着し,血管新生を伴いながら厚 みのある組織を形成,移植細胞の一部は心筋細胞に分ィ匕した。
[0039] 移植後 4週間目に心機能を評価したところ,未治療群に比して有為に血行動態の 改善を認めた。 MSC群は未治療群に比して有為な体重増力 tl,右室および肺重量の 低下を認めており,心不全の進行が軽減していると考えられた。また,左室収縮力の 指標である max LV dP/dtを増加させた。間葉系幹細胞シート移植は左室拡大およ び左室拡張末期圧の上昇を抑制し,梗塞により菲薄化した左室前壁を厚くして収縮 能を改善することが明らかとなった。
[0040] [表 1] 表 1 .心筋梗塞誘発ラツト慢性心不全 (CHF)モデルにおける間葉系幹細胞 ( SC)シート移植の循環生理に及ぼす効果
治療前,心筋梗塞作製 4週間後:
治療後,移植 4週間後 (心筋梗塞作製 8週間後)。
[0041] [表 2] 表 2.心エコー検査に見られた MSCシート移植の効果
デ一タは平均 ± s. e. m。 *,対照群に対して Pく 0. 05 ; †,治療前に対して Pぐ 0. 05。
AWT,左室前壁厚; PWT,左室後壁厚;治療前,心筋梗塞作製 4週間後; 治療後,移植 4週間後(心筋梗塞作製 8週間後)。
[0042] 温度^容件焙尊 mi 用いた間蔞 鈿胞シートの作
脂肪組織由来間葉系幹細胞を温度応答性培養皿でコンフルェントとなるまで 3日 間培養した。図 2は,播種の 2日後(a)および第 3日(b)における培養間葉系幹細胞 を示す。間葉系幹細胞は PIPAAmをグラフトした領域(24x24mm)においてのみ増殖 したが,この領域の外では細胞は認められな力つた。培養温度を 37°Cから 20°Cに下 げると,細胞は培養皿底面から容易に剥離し (c) , 12x12mmの間葉系幹細胞シートと なった (d)。ピペット操作により間葉系幹細胞シートをプラスチックシートに移して広げ た。剥がした後, PIPAAm—グラフト表面に細胞は残っていな力つた。図中, a-c,ス ケーノレノ一, 100 ^ m;d,スケーノレノ一, 50 mm。
[0043] 間葉系榦細朐シートからの血管新牛.闵子の分泌
24時間の培養中に,間葉系幹細胞シートは大量の血管新生因子および抗アポト 一シス因子,例えば血管内皮成長因子 (VEGF=562±70 pg/ml)および肝細胞増殖 因子 (HGF=834士 54 pg/ml)を培養液中に分泌した。一方, 10%FCSを補充した培 養液自体にはこれらのいずれも 5 pg/ml未満しか含まれていなかった。これらの結果 は,間葉系幹細胞自身が内皮細胞に分ィ匕する能力によるのみならず,成長因子によ るパラクライン効果によっても,シート中で新生血管形成を誘導することを示唆する。 移植された細胞の生存率が低いことが細胞移植による心筋再生治療の主要な問題 点の 1つであることを考慮すると,間葉系幹細胞による新生血管形成が厚みのある組 織の構築に寄与して 、ると考えられる。
[0044] の定羞: よび
移植された間葉系幹細胞シートは,前壁の瘢痕領域に良好に定着した(図 3)。(a, b)移植された間葉系組織 (GFP,緑)および DNA(DAPI,青)。 (c, d)へマトキシリン —ェォシン染色 (a, bの連続切片)。(e) GFP陽性間葉系組織の成長の経時変化。 * ,第 1週における GFP陽性間葉系組織の厚さに対して有意差有り(Pく 0.05)。 (f, g) 写真は未治療群および MSC群の心筋組織切片マッソン染色像を示す。成長した間 葉系組織中で多数の血管 (黒小矢印)および心筋構造(白小矢印)が認められる。(h , i)間葉系幹細胞シートの移植により左室拡大が抑制された。 a— d, f, g, xlOO ;h, i, x5。 E,心外膜側; I,心内膜側。大きい矢印は移植された間葉系組織の厚さを示 す。
[0045] 蛍光顕微鏡で観察したところ, GFP発現間葉系幹細胞シートは in situで徐々に成 長し, 4週間でホスト組織の上に約 600 μ mまでの厚い層として確認された(図 3a— e) 。マッソン染色では,成長した間葉系組織が多数の血管および若干の心筋構造を含 むことを示した (図 3g)。定着した間葉系組織は,心臓の前壁厚を増加させ,心筋梗 塞後の左室拡大を抑制した(図 3f— i)。ただし,梗塞サイズは未治療群と MSC群との 間で有意な差は認めなかった (表 3)。
[0046] 心筋組織の再構築
移植 4週間後,赤色蛍光色素で標識した間葉系幹細胞は,ホスト心筋組織の上に 厚い層として確認された (図 4)。(a—c)赤く蛍光標識された MSCが,心外膜側に厚 い層として示される。成長した間葉系組織は,フォンビルブラント因子 (緑色)および a SMA (緑色)陽性の多数の血管構造を含んでいた。血管形成に関与しなかった間 葉系幹細胞の大部分は,筋線維芽細胞のマーカーである a SMAが陰性であった。 ( d, e)成長した間葉系組織中のいくつかの間葉系幹細胞は,心筋マーカーであるトロ ポニン Tおよびデスミンが陽性であった (緑色)。これらの結果は,間葉系幹細胞が間 葉系組織中で分化して心筋細胞となったことを示唆する。 (f)成長した間葉系組織の ほとんどは,未分ィ匕な間葉系細胞のマーカーであるビメンチン (緑色)陽性であった。 (g)ほとんどの間葉系幹細胞は,タイプ 1コラーゲン (緑色)が陰性で,成長した間葉 系組織の最外側縁においてのみ検出された。スケールバー, 100 m。 E,心外膜側 ;1,心内膜側。大きい矢印は,定着した間葉系組織の厚さを示す。
[0047] これらの結果は,成長した間葉系組織が多数の未分ィ匕な間葉系細胞を含むことを 示唆する。すなわち,成長した間葉系組織は,新たに形成された血管,心筋細胞, および未分化な間葉系細胞から構成されて!、た。
[0048] 移植された間 榦細朐シートが心 11蔵の構; ί告および機能に ぼす影響
間葉系幹細胞シートの移植後の心臓の構造および機能を図 5に示す。(a— c)心力 テーテル検査により得られたパラメータ。 (d— f)心エコー所見。 (g)血漿中の心房性 ナトリウム利尿因子 (ANF)濃度。 LVEDP,左室拡張末期圧; AWT,前壁厚; LVDD, 左室拡張末期径;%FS,左室短縮率。治療前,冠動脈結紮術の 4週間後;治療後,移 植手術の 4週間後 (冠動脈結紮術の 8週間後)。データは平均士標準誤差で表示。
* ,シャム群に対して有意差有り(Pく 0.05) ;†,未治療群に対して有意差あり(Pく 0.05 ) ; ί,治療前に対して有意差あり(Ρく 0.05)。
[0049] 左室拡張末期圧の増加および maximumおよび minimum LV dP/dtの低下によつ て示されるように,冠動脈結紮術の 8週間後に慢性心不全が発症した。しかし,間葉 系幹細胞シート移植は左室拡張末期圧を有意に低下させた(図 5a)。さらに, max L V dP/dtおよび min LV dP/dtは MSC群において有意に改善された(図 5b, c)。 M SC群は,移植の 4週間後に未治療群より有意に体重が増力!]していた (表 3)。平均動 脈圧は, MSC群が未治療群より有意に高く,右心室および肺の重量は, MSC群が未 治療群よりも有意に低力つた (表 3)。これらの結果は,慢性心不全ラットにおいて間 葉系幹細胞シートが血行動態の改善効果を持つことを示唆する。
[0050] 心エコー検査では,間葉系幹細胞シート移植により梗塞を起こした前壁の拡張期 壁厚を有意に増カロさせたことを示した(図 5d)。ただし,後壁については有意な相違 はな力つた (表 4)。前壁および後壁の壁厚増加率は, MSC群において未治療群より 有意に高力つた (表 4)。左室拡張末期径は MSC群では変化しな力つたが,未治療群 においては増加する傾向にあった(図 5e)。その結果, 8週間後の左室拡張末期径は MSC群が未治療群よりも有意に小さかった。間葉系幹細胞シート移植は左室短縮率 を有意に増力!]させた(図 5f)。拡張期左室壁応力は MSC群が未治療群よりも顕著に 低力つた (表 4)。未治療群における血漿中の心房性ナトリウム利尿因子 (ANF)濃度 は心筋梗塞の 8週間後に顕著に上昇した(図 5g)。しかし,間葉系幹細胞シート移植 は血漿 ANFの増加を抑制した。
[0051] [表 3]
表 3 動物の特徴
シャム:第 1回および第 2回の手術で擬似手術を受けたラット;未治療,第 2回の手術で疑 似手術を受けた CHFラット: MSC,単層 MSCを移植したラツト;治療前,冠動脈結紮術の 4 週間後;治療後,移植の 4週間後(冠動脈結紮術の 8週間後)。データは平均 ± s. e. m. で示される。 * ,シャム群に対して Pく 0. 05 ;†,未治療群に対して Pく 0. 05。 4]
表 4 心エコーのデータ
AWT,前壁厚; AW,前壁: PWT,後壁厚; PW,後壁;治療前,冠動脈結紮術の 4週間後: 治療後,移植の4週間後(冠動脈結紮術の 8週間後)。データは平均士 s. e. m。 * ,シャ ム群に対して Pく 0. 05 ;†,未治療群に対して Ρ<0. 05 ; φ,治療前に対して Ρ<0. 05。 心筋特異的トロポニン Τの免疫組織学的染色に示されるように,全体的な移植細胞 の増殖と比較して心筋への分ィ匕はごくわずかであったにもかかわらず,間葉系幹細 胞シートの移植により,心機能の顕著な改善が得られた。これらの結果は,梗塞領域 の壁の厚さが増加し,これが壁応力の低下につながつたためであると考えられる。
[0053] 生存分析
キャプラン ·マイヤー生存曲線は,冠動脈結紮術後 4週間の生存率は未治療群と Μ SC群との間で有意に相違しなレ、ことを示した(図 6)。しかし,間葉系幹細胞シートの 移植後にラットは死ななかった。
[0054] したがって, MSC群の移植後の生存率は,未治療群より顕著に高かった(100% 対
64%,移植の 4週間後の生存率,対数順位 (log-rank)検定, Pく 0.01)。この結果,冠動 脈結紮術後の 8週間生存率は, MSC群が 67%であり,未治療群力 5%であった。 産業上の利用可能性
本発明に従う間葉系幹細胞シート移植法は,間葉系幹細胞シートを貼付するのみ で心筋組織を再生し,心不全の進行を軽減させる新 ゝ治療法である。
Claims
[1] 間葉系幹細胞を含む移植用の細胞シート。
[2] 前記細胞が骨髄または脂肪組織の由来である,請求項 1記載の細胞シート。
[3] 前記幹細胞が in situで成長して 100 mまたはそれ以上の厚さの層を形成する,請 求項 1記載の細胞シート。
[4] 前記幹細胞が in situで成長して心筋および新生血管を誘導する,請求項 1記載の 細胞シート。
[5] 前記幹細胞が in situで心筋,血管内皮および血管平滑筋細胞に分化する,請求項 1記載の細胞シート。
[6] 患者において心不全を治療する方法であって,前記患者の心臓に間葉系幹細胞を 含む移植用の細胞シートを移植することを含む方法。
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