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WO2006054449A1 - 生体分子の相互作用試験装置、生体分子の相互作用試験方法、生体分子の融解温度測定方法、核酸の配列検知方法、生体分子を相互作用させる方法、および、生体分子を移動させる方法 - Google Patents

生体分子の相互作用試験装置、生体分子の相互作用試験方法、生体分子の融解温度測定方法、核酸の配列検知方法、生体分子を相互作用させる方法、および、生体分子を移動させる方法 Download PDF

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WO2006054449A1
WO2006054449A1 PCT/JP2005/020295 JP2005020295W WO2006054449A1 WO 2006054449 A1 WO2006054449 A1 WO 2006054449A1 JP 2005020295 W JP2005020295 W JP 2005020295W WO 2006054449 A1 WO2006054449 A1 WO 2006054449A1
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WO
WIPO (PCT)
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biomolecule
microarray
substrate
counter electrode
conductive material
Prior art date
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PCT/JP2005/020295
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English (en)
French (fr)
Inventor
Hideo Tashiro
Yasumitsu Kondoh
Satoru Hatakeyama
Tikara Koike
Takayuki Shimamura
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RIKEN
Original Assignee
RIKEN
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
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Priority claimed from JP2004336333A external-priority patent/JP4610309B2/ja
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Priority to US11/791,072 priority Critical patent/US20100256004A1/en
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    • B01L3/502Containers for the purpose of retaining a material to be analysed, e.g. test tubes with fluid transport, e.g. in multi-compartment structures
    • B01L3/5027Containers for the purpose of retaining a material to be analysed, e.g. test tubes with fluid transport, e.g. in multi-compartment structures by integrated microfluidic structures, i.e. dimensions of channels and chambers are such that surface tension forces are important, e.g. lab-on-a-chip

Definitions

  • Biomolecule interaction test apparatus biomolecule interaction test method, biomolecule melting temperature measurement method, nucleic acid sequence detection method, biomolecule interaction method, and biomolecule transfer method
  • the present invention relates to an apparatus and an interaction test method capable of testing the interaction between a target biomolecule and a probe biomolecule easily and quickly. Furthermore, the present invention relates to a method for measuring a melting temperature of a biomolecule and a method for detecting the sequence of a nucleic acid using the above method. Furthermore, the present invention relates to a method for allowing a biomolecule immobilized on a substrate to interact with a biomolecule contained in a solution, and a method for selectively moving a biomolecule contained in a solution in one direction.
  • Hybridization of a probe nucleic acid and a target nucleic acid is used for the purpose of detecting certain nucleic acids (target nucleic acids) such as genetic diagnosis, identification of pathogenic bacteria, or detection of single nucleotide polymorphisms. ing.
  • target nucleic acids such as genetic diagnosis, identification of pathogenic bacteria, or detection of single nucleotide polymorphisms.
  • DNA chips and DNA microarrays in which a large number of probe nucleic acids are immobilized on a substrate have come into practical use and are used for detection of target nucleic acids.
  • DNA immobilization for example, a method of fixing a single-stranded DNA whose end has been modified with a metal to, for example, a gold substrate is employed. Then, the target DNA, which is the analyte, is allowed to act on the immobilized DNA, and the presence or absence of hybridization is detected. The presence or absence of hybridization can be detected, for example, by measuring the fluorescence of the spot of the immobilized DNA hybridized with the fluorescently labeled target DNA using a fluorescence method.
  • Japanese National Publication No. 10-505410 discloses a bioarray chip reactor in which an array in which DNA is immobilized is enclosed in a chamber. ing.
  • This apparatus has a structure capable of feeding a solution into the chamber.
  • document 2 describes that the substrate or cover of this device can be transparent. According to such an apparatus described in Document 2, it is considered that the formation of the hybrid can be observed in real time from the transparent substrate side or the cover side while feeding the solution into the chamber. Escaped.
  • the first object of the present invention is that a large amount of sample and a lot of time and labor are not required, and an interaction between biomolecules can be rapidly formed. It is to provide a means that can be detected in real time.
  • the second object of the present invention is to promote interaction and reaction in a biomolecule microarray. It is an object of the present invention to provide means capable of achieving high speed and high sensitivity.
  • the first aspect of the present invention for achieving the first object is as follows.
  • counter electrode t is a biomolecule interaction test apparatus, wherein the apparatus is a non-conductive spacer between the microarray (1) and the counter electrode (2).
  • the microarray (1) has a conductive material surface (6) on at least a part of a surface on which a biomolecule is immobilized, and has two through holes (5) leading to the cavity (4).
  • the above-mentioned device wherein one through-hole is a hole for injecting the solution into the cavity, and the other through-hole is a hole for discharging the solution with the cavity force.
  • the substrate further includes a conductive member (7) at least partially in contact with the surface of the conductive material (6) on the microarray (1) and not in contact with the counter electrode (2).
  • the conductive material constituting the conductive member (7) is gold, nickel, platinum, silver, titanium, aluminum, stainless steel, copper, conductive oxide, or conductive plastic. [3] The device described in 1.
  • the non-conductive spacer (3) is arranged so that a distance between the microarray (1) and the counter electrode (2) is uniform, [1] to [5] The device described in 1.
  • the conductive material constituting the surface of the conductive material on the microarray is gold, nickel, platinum, silver, titanium, aluminum, stainless steel, copper, chromium, conductive oxide, or conductive plastic.
  • the substrate has a biomolecule immobilization spot (hereinafter referred to as "protruding spot portion”) protruding from the substrate surface and having a spot plane on the top,
  • At least the protruding spot portion has a conductive material surface
  • Biomolecules are immobilized on the surface of the spot conductive material, and the substrate can be electrically connected to the surface of the conductive material of the protruding spot portion on the surface other than the protruding spot portion on the substrate.
  • the surface other than the protruding spot portion on the substrate has a conductive material coating layer, and the terminal is included in the conductive material coating layer or is electrically connected to the conductive material coating layer.
  • the surface other than the protruding spot portion on the substrate has a conductive material coating layer, and the conductive material coating layer and the conductive material surface of the protruding spot portion are an integral conductive material coating layer.
  • the device described in 1. [18] The apparatus according to [17], wherein the substrate surface around the protruding spot portion forms a substantially V-shaped bottom surface.
  • the substrate is a substrate in which adjacent projecting spot portions are adjacent to each other by a projecting spot portion side surface, and at least the projecting spot portion side surface and the spot flat surface have a conductive material force.
  • the device according to any one of [14] to [16].
  • the biomolecule is at least one selected from DNA, RNA, PNA, protein, polypeptide, sugar compound, lipid, natural low molecule, and group power that also has a synthetic low molecular force.
  • the device according to any of the above.
  • the microarray (1) has a conductive material surface (6) on at least a part of a surface on which a biomolecule is immobilized,
  • An electric field is applied between the microarray (1) and the counter electrode (2), and a solution containing the target biomolecule and a solution containing Z or the target biomolecule are sent to the cavity (4).
  • a solution containing the target biomolecule and a solution containing Z or the target biomolecule are sent to the cavity (4).
  • a device having a non-conductive spacer (3) and having a cavity (4) formed by the microarray (1), the spacer (3), and the counter electrode (2) is used.
  • the microarray (1) has a conductive material surface (6) on at least a part of a surface on which a biomolecule is immobilized,
  • the method wherein the interaction between the biomolecule on the microarray and the target biomolecule is optically detected through the counter electrode during holding or discharging of the solution.
  • biomolecule fixed to the microarray and Z or the target biomolecule are fluorescently labeled, and the interaction between the biomolecule on the microarray and the target biomolecule is detected by fluorescence.
  • An electric field is applied between the microarray (1) and the counter electrode (2), and the cavity (4) while feeding a solution containing the target biomolecule and a solution containing no Z or target biomolecule. Detecting the interaction between the biomolecule on the microarray and the target biomolecule through the counter electrode with a confocal detector.
  • the protruding spot on the surface of the microarray The method according to any one of [33] to [36], wherein the protruding spot portion on the microarray is detected as a reflected image based on a difference in reflected light intensity due to a difference in height and z or shape of the outer portion. .
  • the solution force containing the target biomolecule includes at least one buffer substance selected from the group force consisting of ferulalanin, histidine, carnosine, and arginine force, according to any one of [24] to [41] Method.
  • a method for measuring a melting temperature of a biomolecule comprising using the method according to any one of [24] to [42].
  • a method for detecting the sequence of a nucleic acid comprising using the method according to any one of [24] to [42].
  • the second aspect of the present invention for achieving the second object is as follows.
  • a target biomolecule between a biomolecule microarray having one or more spots with biomolecules immobilized on the substrate surface and an electrode facing the substrate surface (hereinafter referred to as “counter electrode”).
  • a solution comprising a biomolecule immobilized on the substrate surface and a target biomolecule interacting with each other, comprising:
  • the microarray has a conductive material surface on at least a part of a surface on which a biomolecule is immobilized
  • a voltage of 0.01 to LOHz is applied between the surface of the conductive material and the counter electrode. And promoting the interaction.
  • the conductive substance is any one of [45] to [53], which is gold, nickel, platinum, silver, titanium, aluminum, stainless steel, copper, chromium, conductive oxide, or conductive plastic. The method described.
  • the counter electrode is formed of gold, nickel, platinum, silver, titanium, aluminum, stainless steel, copper, chromium, a conductive oxide, or a conductive plastic card, or the substrate.
  • a conductive material coating layer made of gold, nickel, platinum, silver, titanium, aluminum, stainless steel, copper, chromium, conductive oxide, or conductive plastic on the surface opposite to the conductive material surface of [45] ] To [54].
  • the biomolecule is at least one selected from DNA, RNA, PNA, protein, polypeptide, sugar compound, lipid, natural low molecule, and group power that also has a synthetic low molecular force.
  • interactions between biomolecules can be formed rapidly, and the interaction between biomolecules can be detected in real time.
  • the melting temperature of a biomolecule it is possible to measure the melting temperature of a biomolecule and detect the sequence of a nucleic acid, for example, to detect a single nucleotide polymorphism.
  • FIG. 1 is a schematic diagram of the apparatus of the present invention.
  • the biomolecule interaction test apparatus of the present invention is provided so as to face a biomolecule microarray (1) in which a biomolecule is immobilized on a substrate, and a surface of the microarray on which the biomolecule is immobilized.
  • a cavity (4) is formed by the spacer (3) and the counter electrode (2), and the microarray (1) is electrically conductive to at least a part of a surface on which a biomolecule is immobilized.
  • the microarray (1) is electrically conductive to at least a part of a surface on which a biomolecule is immobilized.
  • the biomolecule may be at least one kind selected from DNA, RNA, PNA, protein, polypeptide, sugar compound, lipid, natural low molecule, and synthetic low molecular force. Can be selected accordingly.
  • examples of the sugar compound include monosaccharides, oligosaccharides, polysaccharides, sugar chain complexes, glycoproteins, glycolipids, and derivatives thereof.
  • lipids examples include fatty acids, phospholipids, glycolipids, glycerides and the like.
  • natural small molecules include hormone molecules, antibiotics, poisons, vitamins, physiologically active substances, secondary metabolites, and the like.
  • Examples of the synthetic small molecule include natural low-molecular synthetic products and derivatives thereof.
  • the biomolecule interaction that can be tested by the device of the present invention includes, for example, hybridization between a probe nucleic acid and a target nucleic acid, antigen-antibody interaction, receptor-monoligand interaction, protein Protein interaction and DNA protein interaction can be listed.
  • the microarray (1) is produced by immobilizing a biomolecule on a substrate, and has a conductive material surface (6) on at least a part of the surface on which the biomolecule is immobilized.
  • the conductive material constituting the surface of the conductive material (6) is, for example, metal (for example, gold, nickel, platinum, silver, titanium, aluminum, stainless steel, copper, chromium), conductive oxide (for example, In O ZSnO) and conductive plastics (e.g. polyacetylene).
  • the conductive material is selected from materials having a property of reflecting light.
  • the conductive substance is selected from metals having a bond with a thiol group.
  • the substrate has a biomolecule-fixing spot (protruding spot portion) that protrudes from the substrate surface and has a spot plane on the top, and at least the protruding spot portion has a conductive material surface.
  • biomolecules are immobilized on the surface of the spot conductive material, and the substrate can be electrically connected to the surface of the conductive material of the protruding spot portion on the surface other than the protruding spot portion on the substrate. It can have a simple terminal.
  • the surface other than the protruding spot portion on the substrate may have a conductive material coating layer, and the terminal is included in the conductive material coating layer or can be energized with the conductive material coating layer. Can be. Furthermore, it is preferable that the conductive material coating layer and the conductive material surface of the protruding spot portion are provided as an integral conductive material coating layer.
  • a substrate at least the substrate surface around the protruding spot portion, the side surface of the protruding spot portion, and the plane for spot are made of a conductive material (hereinafter referred to as substrate I), or adjacent protruding spots.
  • substrate I a conductive material
  • the portion is adjacent to the side surface of the protruding spot portion, and can include at least the side surface of the protruding spot portion and a substrate made of a conductive material for planar force (hereinafter referred to as a substrate ⁇ ).
  • the biomolecule immobilization spot is provided on the top surface of the protruding spot portion.
  • the spot plane on the top of the protruding spot portion spot for biomolecule immobilization is located one step higher than the substrate surface around the protruding spot portion, and there is a difference in height between the two. .
  • a confocal detector that can be used for a biomolecule interaction test, as described later, uses reflected light or fluorescence from a focal plane on a sample to form an image of an optical system. Detect through a pinhole placed on the surface.
  • FIG. 2 shows a schematic diagram of the optical system of the confocal detector 40.
  • the solid line a in Fig. 2 represents the incident light.
  • a solid line b represents reflected light or fluorescence from the focal plane, and a broken line represents reflected light or fluorescence from the non-focal plane.
  • the reflected light that also reflects the focal plane force on the microarray 41 and the fluorescence emitted from the focal plane on the sample enter the beam splitter 43 through the objective lens 42 and enter the beam splitter 43.
  • the optical path is corrected by the splitter 43 so as to enter the detection lens 44 perpendicularly, and the light enters the imaging plane 45 through the detection lens 44.
  • the confocal detector 40 is designed so as to be focused on the focal force imaging plane on the sample. Therefore, the light from the focal plane on the sample is The image is focused on the image plane 45, passes through the pinhole 46, and is detected by the detection unit 47.
  • the light from the non-focal plane on the sample is not focused on the imaging plane 45, and most of the light does not pass through the pinhole 46 and is not detected by the detection unit 7.
  • the confocal detector the light from the focal plane can be selectively detected.
  • the difference in height between the surface of the substrate around the protruding spot portion and the flat surface for spot (spot for biomolecule fixation) on the top of the protruding spot portion is the difference between the biomolecule and the target biomolecule. If the depth of focus is greater than the depth of focus of the confocal detector used for detecting the interaction, the focal point of the confocal detector is adjusted to the height of the spot plane on the top of the protruding spot. It is possible to detect the fluorescent light and reflected light having a planar force for the spot on the top of the protruding spot portion with higher intensity than the fluorescent light and reflected light from the substrate surface around the portion.
  • the apparatus of the present invention including the microarray in which the biomolecule is fixed on the spot plane on the top of the protruding spot portion of the substrate I, information on the spot, for example, whether there is an interaction with the target biomolecule, Can be detected with high sensitivity
  • the substrate II is adjacent to each other by an adjacent protruding spot portion force protruding spot portion side surface, and at least the protruding spot portion side surface and the spot plane are made of a conductive substance.
  • An example of substrate II is shown in FIG.
  • an angle formed by a spot plane on the top of the protruding spot portion and a side surface of the protruding spot portion is 90 degrees or more. Preferably, it is 90 to 135 degrees.
  • FIG. 4 (a) is a cross-sectional view of a part of such a substrate.
  • “the angle between the spot plane on the top of the protruding spot and the side surface of the protruding spot” refers to the angle ⁇ in FIG. 4 (a).
  • the angle ⁇ can be obtained by, for example, cutting the protruding spot portion perpendicularly to the substrate surface around the protruding spot portion and obtaining the cross-sectional force thereof.
  • the angle formed by the spot plane on the top of the protruding spot part and the side surface of the protruding spot part is 90 degrees or more, that is, the size of the bottom surface of the protruding spot part. Since the force is larger than the size of the spot plane on the top of the protruding spot portion, there is an advantage that the position and size of the spot for fixing biomolecules can be specified by automatically performing the grinding. This point will be described in detail below. [0024] As shown in Fig.
  • the reflected light is reflected using a confocal detector.
  • the reflected light of the side force of the protruding spot is incident on the light irradiated from the direction perpendicular to the spot plane on the top of the protruding spot (light represented by the arrow in Fig. 4 (a)). It does not reflect in the same direction as the light.
  • the reflected light from the spot plane on the top of the protruding spot part is reflected in the same direction as the incident light.
  • the reflection image obtained in this way is obtained as an image 1S reflection image corresponding to the spot plane on the top of the protruding spot portion, and the portion corresponding to the side surface of the protruding spot portion appears as a black border because almost no reflected light is detected. .
  • the inside of the black border corresponds to a biomolecule spot, so the size and position of the spot can be specified by this reflection image. According to the present invention, automatic glitting can be performed based on such a principle.
  • the confocal detector is focused on the top of the protruding spot portion. Therefore, the reflected light from the substrate surface force around the protruding spot will be out of focus, so it will be much weaker than the reflected light from the spot plane on the top of the protruding spot. The force is not detected. In the present invention, it is also possible to perform automatic grating using this height difference.
  • the portion corresponding to the side surface of the protruding spot portion in the reflected image If appears as a black border, it is possible to determine the size and position of the spot.
  • the height of the protruding spot portion is used for detecting the interaction. If the depth of focus is greater than the focal depth of the confocal detector, the position and size of the spot plane are determined by the reflected image using the difference in height between the spot plane and the substrate surface around the protruding spot. Can be identified and automatically gridded.
  • the protruding spot is
  • the shape of the nut portion can be, for example, a columnar shape or a prismatic shape.
  • an angle formed by the spot plane on the top of the protruding spot portion and the side surface of the protruding spot portion is 90 degrees or more, and the substrate surface force around the protruding spot is approximately V-shaped.
  • It can also be a substrate on which a mold bottom is formed. In such a substrate, the reflected light intensity from the spot plane detected by the confocal detector is stronger than the reflected light intensity from the part other than the spot plane on the substrate.
  • the position and size of the spot plane can be specified.
  • FIG. 5 is an enlarged view of a part of a substrate having a “substantially V-shaped bottom surface”.
  • the “substantially V-shaped bottom surface” means, for example, a substantially V-shape formed as shown in FIG. 5 in which the substrate surface around the protruding spot portion between adjacent protruding spot portions is not a plane. That's it.
  • the substrate I at least the substrate surface around the protruding spot portion, the side surface of the protruding spot portion, and the plane for spot are made of a conductive material.
  • the substrate I has a conductive material force on the substrate surface other than the periphery of the protruding spot.
  • the substrate II is made of a conductive material at least on the side surface of the protruding spot portion and the flat surface of the protruding spot portion.
  • the substrate I at least the substrate surface around the protruding spot portion, the protruding spot portion side surface, and the spot plane are at least the protruding spot portion side surface and spot.
  • the working plane is made of a conductive material
  • an electrode facing the microarray (1) produced by fixing biomolecules on the substrate is provided on the substrate, and an electric field is applied.
  • the interaction between the biomolecule immobilized on the spot plane and the target biomolecule can be promoted. For example, even when the concentration of the target biomolecule is low, a good interaction result can be obtained, and when the concentration is the same, a predetermined interaction result can be obtained in a shorter time.
  • the size and position of the biomolecule-immobilized spot are specified by the reflected light, and automatically. Glitting can be performed. This point will be described later.
  • the height of the protruding spot portion can be appropriately set so as to be higher than the depth of focus of the confocal detector used for detecting the interaction.
  • the height of the protruding spot portion can be set to 10 to 500 m, for example.
  • the protruding spot portion Even if the height is smaller than the depth of focus of the confocal detector used to detect the interaction, automatic glitching is possible. This point will be described later.
  • the height of the protruding spot portion it is necessary to consider the diameter of a needle used for biomolecule spot formation (stamping) and the spot amount of a biomolecule solution such as a probe nucleic acid. is there. For example, when spotting a biomolecule using a dollar of about 130m in diameter against a circular projecting spot with a diameter of 100m, if the height force S of the projecting spot is 15m or more, the surface tension Therefore, it is preferable because the biomolecule is immobilized only on the fixation spot where the biomolecule solution does not flow out of the spot plane on the top of the protruding spot portion.
  • the shape of the spot plane on the top of the protruding spot portion may be any shape as long as it can hold the spotted biomolecule. And can be square.
  • the size of the spot plane can be appropriately set according to the amount used for a spot—one dollar or a spotted biomolecule solution, and can be, for example, 10 to 500 / ⁇ ⁇ .
  • the “size of the spot plane” means, for example, the diameter when the shape of the spot plane is circular, and the length of one side when the shape of the spot plane is square. .
  • FIG. 4 (b) is a schematic view of the protruding spot portion on the substrate having the protruding spot portion.
  • the shape of the bottom surface of the protruding spot portion means the shaded portion in FIG. 4 (b).
  • the spot plane on the top of the protruding spot portion may be roughened.
  • the spot plane on the top of the protruding spot portion has unevenness with a depth within the depth of focus of the confocal detector used for detecting the interaction in the depth direction and substantially in the horizontal direction.
  • Figure 6 shows an example (partially enlarged view) of a roughened spot plane. Roughened
  • a spot plane having a lattice shape of several / zm square as shown in FIG. 6 can be cited.
  • the method for roughening the spot plane is not particularly limited.
  • the substrate used in the present invention is a plastic molded substrate
  • the base material etched by photolithography is transferred by anti-transfer by the electroplating method.
  • the microfabricated mold it is possible to manufacture a substrate having a rough spot plane.
  • the entire substrate may have a conductive material force, or may have a conductive material coating layer on the substrate surface.
  • the conductive substance is selected from metals having a bond with a thiol group.
  • Examples of the substrate having a conductive material coating layer include glass, quartz, silicon, plastic, and specifically, a surface of a substrate such as polypropylene coated with the conductive material. it can.
  • the thickness of the conductive material coating layer on the substrate is not particularly limited, and force f can be set to 0.1 to: LO / z m in the f row.
  • the substrate of the present invention can be obtained by pouring and melting the molten metal into a bowl having a recess corresponding to the protruding spot portion of a desired shape. it can.
  • a metal substrate can also be obtained by press molding.
  • the substrate of the present invention may be a substrate made of a metal cover and coated with a conductive substance.
  • the substrate of the present invention has a conductive material coating on a silicon or plastic substrate
  • a mold having a recess corresponding to a protruding spot portion of a desired shape is used. Mold silicon or plastic and use the silicon or plastic.
  • the substrate of the present invention can be obtained by coating a conductive substrate with a conductive material by vapor deposition, plating, or the like.
  • the substrate having the protruding spot portion can be manufactured by forming the protruding spot portion by etching or the like after coating the conductive coating layer on the flat substrate.
  • substrate which does not have a protrusion spot part can be manufactured by a well-known method, and there exists a thing available as a commercial item.
  • chromium is vapor-deposited on the surface of the slide glass by a vacuum vapor deposition apparatus, and then gold is vapor-deposited thereon.
  • a positive resist is applied onto the gold-deposited slide glass with a spin coater, and baked in an oven at 60 ° C for 1 hour, for example.
  • the slide glass is irradiated with ultraviolet rays through a photomask by an ultraviolet exposure device.
  • a photomask having a pattern corresponding to a protruding spot portion having a desired shape is used. If development is performed with a developer after irradiation with ultraviolet rays, a resist pattern can be formed on the gold-deposited slide glass surface.
  • the gold surface around the resist pattern is etched with a gold etchant.
  • etching is further performed with an etchant and cleaned with ultrapure water in order to remove chromium deposited under the gold.
  • etching is further performed with an etchant and cleaned with ultrapure water in order to remove chromium deposited under the gold.
  • the substrate is immersed in hydrofluoric acid, and the exposed glass surface is etched.
  • concentration and immersion time of hydrofluoric acid used at this time can be appropriately set according to the height of the desired protruding spot portion.
  • the piranha solution after etching gold, chromium, and the like, the piranha solution and In addition, the substrate can be washed with ultrapure water to obtain a glass substrate having a protruding spot portion having a desired shape.
  • chromium is vapor-deposited on this glass substrate, and then gold is vapor-deposited, whereby a substrate having a protruding portion and having a gold coating can be obtained.
  • the size of the entire substrate, the number of protruding spot portions on the substrate, and the degree of integration are not particularly limited, and can be set as appropriate.
  • a substrate having about 10 to 50,000 protruding spot portions on a substrate having a size of 10 to 20, OOO mm 2 can be used.
  • the probe nucleic acid is placed on the substrate.
  • a solution containing a nucleic acid having a group reactive at one end with the metal constituting the conductive material surface (6) on the substrate can be used as a spotting solution.
  • groups can include thiol groups. Immobilization of a nucleic acid chain having a thiol group to a metal surface can be performed by a known method. For example, J. Am. Chem. Soc. 1998, 120, 9787-9792 can be referred to.
  • a method for immobilizing DNA on a metal surface a method of performing the following treatment on a metal (a surface oxide film that has been activated to present a hydroxyl group) can also be used.
  • Biotin DNA is immobilized on the surface of the substrate that has been sequentially treated with aminosilane, maleimide-piotine, and avidin.
  • Aminated DNA is immobilized on the surface of a substrate treated with aminosilane and then with dartalaldehyde.
  • Biomolecules other than DNA can also be immobilized via UV irradiation or functional groups such as thiol groups, amino groups, carboxyl groups, and phosphate groups as described above. It is.
  • Spotting of the biomolecule solution onto the surface of the conductive substance (6) can be performed by a conventional method.
  • the biomolecule solution is held at the tip of the biomolecule solution on the substrate surface.
  • spotting of a biomolecule can be performed by bringing the substrate into contact with a spot plane on the top of the protruding spot portion.
  • Examples of the spotting device used here include the devices described in JP-A-2001-46062 and JP-A-2003-57236.
  • the amount of the spot can be adjusted as appropriate.
  • the substrate has a protruding spot portion
  • the plane force for the spot The size of the spot plane and the height of the protruding spot portion are prevented so that the biomolecule solution does not flow out. It can be set appropriately according to the situation.
  • the device of the present invention includes a transparent electrode (2) (counter electrode) so as to face the surface of the microarray where biomolecules are immobilized.
  • a transparent electrode (2) counter electrode
  • the electric field density is increased between the plane on which the biomolecule is immobilized and the plane of the counter electrode facing the plane.
  • the target biomolecule is concentrated in the vicinity of the spot where the biomolecules are immobilized by electrophoresis (when using a DC power supply) or dielectrophoresis (when using an AC power supply).
  • electrophoresis when using a DC power supply
  • dielectrophoresis when using an AC power supply
  • the counter electrode is not particularly limited as long as it is transparent and can apply an electric field between the biomolecule microarray and the counter electrode.
  • a transparent electrode By using a transparent electrode in this way, the reflected light and Z or fluorescence can be detected with the confocal detector while the solution is being transferred or held in the cavity, and the concentric detector can detect the biological component. Child interaction can be detected in real time.
  • the counter electrode can be a transparent conductive material, for example, a conductive oxide, conductive plastic, etc., and has a conductive material coating layer on the surface facing the microarray. It can also be a substrate.
  • the counter electrode may preferably have a conductive oxide strength such as ITO (indium tin oxide) or tin oxide.
  • the power source for applying an electric field between the microarray (1) and the counter electrode (2) may be a DC power source or an AC power source. More preferably, an AC power source is used.
  • a direct current power source there is a concern that when a high voltage is applied, the target biomolecule solution is electrolyzed due to the high voltage and bubbles are likely to be generated. Therefore, it is preferable to use a low voltage.
  • DNA is used as the target biomolecule, DNA is negatively charged. Therefore, when a DC power supply is used, it is preferable to apply an electric field so that the protruding spot side force is positive.
  • the frequency can be, for example, 10 ⁇ to 1 ⁇ .
  • the device of the present invention includes a non-conductive spacer (3) between the microarray (1) and the counter electrode (2), and the microarray (1) and the spacer (3 ) And the counter electrode (2) form a cavity (4).
  • the microarray (1) has two through holes (5) communicating with the cavity (4).
  • One through hole is a hole for injecting the solution into the cavity, and the other through hole is a hole for discharging the cavity solution.
  • the apparatus of the present invention has the above-described configuration, so that liquid can be fed into the cavity (4). This makes it possible to test the interaction of biomolecules in real time through the transparent electrode (2) while delivering a solution containing the target biomolecule. Also, while changing the concentration of the target biomolecule in the solution, It is possible to observe the state of interaction of biomolecules in the cavity while not feeding molecules!
  • the non-conductive spacer for example, a sheet made of polyethylene terephthalate (PET), polyethylene naphthalate (PEN), and a silicon film is formed so that holes corresponding to the cavity (4) are formed. In addition, it can be produced by punching into a desired shape.
  • the material of the non-conductive spacer is not limited to the above, and can be appropriately selected in consideration of ease of processing.
  • the distance between the microarray (1) and the counter electrode (2) can be controlled by the thickness of the non-conductive spacer (3).
  • the biomolecules of the microarray (1) of the microarray (1) and the microarray (1) of the counter electrode (2) were immobilized.
  • the distance between the surface and the opposing surface is preferably 10 to 300 m.
  • the thickness of the non-conductive spacer (3) is such that the biomolecule of the microarray (1) of the microarray (1) and the surface of the microarray (1) of the counter electrode (2) are immobilized.
  • the distance can be appropriately set in consideration of the distance between the surface and the opposite surface, and can be set to 10 to 300 m, for example.
  • the non-conductive spacer 1 may have an adhesive layer on both sides thereof.
  • the non-conductive spacer can be bonded to the microarray (1) and the counter electrode (2) by this adhesive layer.
  • the microarray (1) is bonded to one surface of the non-conductive spacer (3) and the counter electrode (2) is bonded to the other surface, so that the hole portion provided in the above-mentioned spacer seal is provided.
  • a cavity (4) is formed.
  • the device of the present invention having the cavity (4) formed by the microarray (1), the non-conductive spacer (3), and the counter electrode (2) can be configured.
  • the adhesive of the adhesive layer preferably contains a photocurable resin. Since the photocurable resin is cured by irradiating light and loses its adhesive strength, if the adhesive contains the photocurable resin, the non-conductive spacer (3) Can remove the microarray (1) and the counter electrode (2).
  • a photocurable resin for example, a known photocurable resin such as an ultraviolet curable resin can be used.
  • the device of the present invention has a conductive property on the microarray (1) from the side of the microarray (1).
  • the device of the present invention has two through-holes (5) communicating with the cavity (4) in the microarray (1), and liquid can be fed through these through-holes.
  • the liquid feeding / electric field can be applied anyway. Since it can also be performed from the microarray (1) side, the observation can be performed smoothly without anything that interferes with the observation of the interaction of biomolecules with the counter electrode (2) side force.
  • At least a part of the surface of the conductive material (6) on the microarray (1) is in contact, and It further has a conductive member (7) that is not in contact with the counter electrode (2), and the conductive material surface (6) on the substrate is connected to an external power source via the conductive member (7).
  • An apparatus having the configuration described above can be given.
  • the conductive material constituting the conductive member (7) include gold, nickel, platinum, silver, titanium, aluminum, stainless steel, copper, chromium, conductive oxide (for example, In O ZS
  • conductive plastics for example polyacetylene
  • the conductive material is applied to the microarray (1).
  • a through-hole (8) that communicates with the active material (7) and a through-hole (9) that communicates with the counter electrode (2) are provided. Through these through-holes (8) and (9), the microarray (1) Connect the surface of the conductive material (6), the counter electrode (2) and the external power supply! ⁇ .
  • the above-described through-hole can be provided at the time of molding, for example, when a microarray substrate is molded.
  • the through hole can also be provided by die cutting or the like.
  • the apparatus of the present invention preferably further includes temperature control means such as a heater.
  • the interaction can be further promoted by controlling the environment around the biomolecule to a temperature suitable for the interaction by the temperature control means.
  • the temperature control means is preferably provided on the microarray side. This makes it possible to perform temperature control without hindering observation from the counter electrode (2) side.
  • test method I One aspect of the biomolecule interaction test method of the present invention is as follows: A biomolecule microarray (1) having biomolecules immobilized on a substrate and a transparent electrode (2) (counter electrode) provided to face the surface on which the biomolecules of the microarray are immobilized. A non-conductive spacer (3) between the microarray (1) and the counter electrode (2); the microarray (1), the spacer (3), and the counter electrode; (2) The cavity (4) is formed by the biomolecule interaction test method using the apparatus,
  • the microarray (1) has a conductive material surface (6) on at least a part of a surface on which a biomolecule is immobilized,
  • An electric field is applied between the microarray (1) and the counter electrode (2), and a solution containing the target biomolecule and a solution containing Z or the target biomolecule are sent to the cavity (4). Detecting the interaction between the biomolecule on the microarray and the target biomolecule optically through the counter electrode while immersing.
  • test method II Another aspect of the biomolecule interaction test method of the present invention (hereinafter also referred to as “test method II”) is a biomolecule microarray (1) in which biomolecules are immobilized on a substrate and the bioarray biomolecules. It has a transparent electrode (2) (counter electrode) provided so as to face the surface on which molecules are immobilized, and a non-conductive spacer is interposed between the microarray (1) and the counter electrode (2). A cavity (3), and a cavity (4) is formed by the microarray (1), the spacer (3), and the counter electrode (2)!
  • An action test method comprising:
  • the microarray (1) has a conductive material surface (6) on at least a part of a surface on which a biomolecule is immobilized,
  • the interaction between the biomolecule on the microarray and the target biomolecule is optically detected through the counter electrode during holding or discharging of the solution.
  • test method I an electric field is applied between the microarray (1) and the counter electrode (2), and a solution containing a target biomolecule and Z or target are applied to the cavity (4).
  • the method includes optically detecting the interaction between the biomolecule on the microarray and the target biomolecule through the counter electrode while feeding a biomolecule-free! / Salt solution.
  • an electric field is applied between the microarray (1) and the counter electrode (2) to promote the interaction of biomolecules, while the biomolecules interact with each other while feeding the solution. The action can be observed in real time through the counter electrode (2).
  • a solution containing a target biomolecule is first sent to interact the biomolecule on the microarray with the target biomolecule, and then the solution containing no target biomolecule is sent. While the inside of the cavity is washed by liquefaction, the state of interaction of the biomolecules in the cavity during that time can also be observed through the counter electrode. Furthermore, the interaction of biomolecules can be observed while sequentially changing the concentration of target biomolecules in the solution to be fed into the cavity.
  • Test Method II an electric field is applied between the microarray (1) and the counter electrode (2), and the cavity (4) is filled with a solution containing a target biomolecule. Discharging the solution after holding for a predetermined time, and optically detecting the interaction between the biomolecule on the microarray and the target biomolecule through the counter electrode during or after holding the solution. To do.
  • an electric field is applied between the microarray (1) and the counter electrode (2) while filling the cavity (4) with the solution containing the target biomolecule and holding it for a predetermined time. The interaction of biomolecules can be promoted by observing and the interaction can be observed through the counter electrode (2) during the retention or discharge of the target biomolecule.
  • Test Method II after the solution containing the target biomolecule is discharged or discharged, the solution containing the target biomolecule and the solution that does not contain Z or the target biomolecule are newly filled in the cavity. The solution in the cavity can also be exchanged.
  • a voltage is applied between the microarray (1) and the counter electrode (2).
  • the electric field can be appropriately set within a range in which the effect of concentrating the target biomolecules by electrophoresis or dielectrophoresis can be obtained while taking into account the distance between the microarray (1) and the counter electrode (2). , 0.01-: LOMVZm.
  • the conductive material surface (6) and the counter electrode (2) on the microarray (1) are connected to an external power source, and the microarray ( It is preferable to apply an electric field between 1) and the counter electrode (2).
  • the biomolecular interaction test apparatus of the present invention having the through hole (8) leading to the conductive member (7) and the through hole (9) leading to the counter electrode (2), The conductive member (7) and the counter electrode (2) are connected to the terminal of the external power source through the through hole (8) leading to the conductive member (7) and the through hole (9) leading to the counter electrode (2).
  • the conductive material surface (6) and the counter electrode (2) on the microarray (1) are connected to an external power source, and the microarray (1) and the counter electrode (2) are connected to each other.
  • An electric field can be applied between the two.
  • the solution is injected into the cavity through the through-hole (5) communicating with the cavity of the microarray (1), and Z Alternatively, the solution can be discharged from the above-mentioned cavity.
  • the counter electrode (2) side can observe the interaction of biomolecules with the counter electrode (2) side force. Since there is no obstacle, observation can be performed smoothly.
  • the above-described solution containing the target biomolecule (hereinafter, also referred to as "target biomolecule solution”! Can contain a buffer.
  • Preferred buffers used for the target biomolecule solution include those having a dissociation constant (pKa) of about 6-8.
  • pKa dissociation constant
  • the pH is in the neutral range, so use a buffer that has a buffer capacity in the neutral range. It is preferable.
  • buffers containing the following buffer substances include ferulalanin, carnosine, arginine, histidine, MES (2- (N-morpholine) Ethanesulfonic acid), maleic acid, 3,3-dimethyldaltaric acid, carbonic acid, 4-hydroxymethylimidazole, citrate, dimethylaminoethylamine, prophosphoric acid, glycerol-2-phosphate, PIPES (piperazine- ⁇ ⁇ , ⁇ '-bis (2-ethanesulfonic acid)), ethylenediamine, imidazole, MOPS (3- (N-morpholine) propanesulfonic acid), phosphoric acid, TES (N-tris (hydroxymethyl) methyl-2-amino Ethanesulfonic acid), 4-methylimidazole, HEPES (N-2-hydroxychetylpiperazine-N'-2-ethanesulfonic acid), N-ethyl morpholine, triethanolamine, tris (tris (
  • the conductivity of the buffer used in the target biomolecule solution is excessively high, the concentration effect of the target biomolecule may be reduced due to the movement of ions in the buffer. Therefore, in the present invention, it is preferable to use a buffer having a conductivity of 10 to 500 ⁇ —, and it is more preferable to use a buffer having a conductivity of 10 to: L00 ⁇ _1 ⁇ . If the conductivity of the buffer is within the above range, the interaction of biomolecules can be favorably promoted. Further, it is preferable to adjust the concentration of the koffer as appropriate so that the conductivity within the above range can be obtained.
  • the buffer include buffers containing phenylalanine, histidine, carnosine, and arginine as buffer substances.
  • a target biomolecule solution containing phenylalanin particularly high hybridization signal intensity can be obtained.
  • fluoranin is a buffer substance that is particularly effective in the present invention that promotes the interaction of biomolecules by applying an electric field.
  • the electric field applied between the microarray and the electrode is preferably set as appropriate according to the buffer to be used so that a high biomolecule interaction promoting effect can be obtained.
  • the buffer to be used For example, when pheralin is used as a buffer, 0.5 to 1.0 MV / m, for histidine, 0.5 to 1. OMV / m, for carnosine, 0.25 to In the case of 0.75 MV Zm and arginine, it is preferable to apply an electric field in the range of 0.1 to 0.3 MVZm.
  • Test Methods I and II the interaction between the biomolecule on the microarray (1) and the target biomolecule is optically detected through the counter electrode (2).
  • the optical detection method examples include a method using a fluorescence detector, a confocal detector, a confocal laser fluorescence microscope, and a fluorescence microscope.
  • the target biomolecule is preferably fluorescently labeled in order to detect interaction between biomolecules by detecting fluorescence with a confocal detector. Fluorescent labeling of the target biomolecule can be performed by a known method.
  • the biomolecule immobilized on the microarray (1) may be fluorescently labeled. Fluorescent labeling of biomolecules immobilized on the microarray can also be performed by a known method.
  • the biomolecule interaction test apparatus of the present invention having a protruding spot on the substrate can be used.
  • the interaction between the biomolecule on the microarray and the target biomolecule can be detected by the confocal detector through the counter electrode.
  • the principle of detection of reflected light and fluorescence by the confocal detector is as described above.
  • a spot is reflected by a reflection image using a confocal detector and the principle described above. By specifying the size and position, automatic glitting can be performed.
  • the protruding spot on the microarray can be detected as a reflected image due to the difference in reflected light intensity due to the height and Z or shape difference between the protruding spot on the surface of the microarray and the other part.
  • the focus of the confocal detector is adjusted to the height of the spot plane on the top of the protruding spot on the microarray, , That is, fluorescently labeled biomolecules (biomolecules immobilized on the spot and Z or target biomolecules) force on the spot plane is selectively detected and a fluorescent image corresponding to the spot is obtained.
  • an interaction on the microarray can be identified, and a spot can be identified, and the degree of interaction can be measured by the fluorescence intensity.
  • an intercalator is used by using a fluorescent intercalator that specifically stains a double-stranded nucleic acid. Interactions can also be detected by measuring fluorescence from scratch.
  • a confocal fluorescence scanner that can detect reflected light and fluorescence simultaneously.
  • An example of such a device is shown in FIG.
  • the excitation light generated from the excitation light source (laser) 21 is irradiated to the sample (microarray) 25 through the mirror 22, the dichroic mirror one mirror 23, the mirror 26, and the objective lens 24.
  • Reflected light is reflected through objective lens 24, mirror 26, dichroic mirror 23 (transmits part of the reflected light (less than a few percent)), dichroic mirror 27, neutral density filter 28, detection lens 29, and pinhole 30 Guided to the light detection unit 31.
  • the fluorescence passes through the two dichroic mirrors 23 and 27, is reflected by the mirror 32, and is guided to the fluorescence detection unit 36 through the cut filter 33, the detection lens 34, and the pinhole 35.
  • the projected spot on the microarray is detected as a reflected image due to the difference in reflected light intensity due to the difference in height and Z or shape between the projected spot on the surface of the microarray and the other part, and at the same time, By detecting the fluorescence from the spot, the interaction of biomolecules can be detected.
  • the present invention further relates to a method for measuring the melting temperature of a biomolecule, characterized by using the biomolecule interaction test method of the present invention described above.
  • Biomolecules such as nucleic acids undergo significant changes in the three-dimensional structure at a certain temperature when heated, and changes in force that correspond to phase transitions are observed.
  • the temperature at this time is called the melting temperature.
  • the biomolecule melting temperature measurement method of the present invention for example, when the biomolecule is a nucleic acid, a solution containing the target nucleic acid and the double-stranded detection reagent is held in the cavity, and the probe nucleic acid and the target nucleic acid on the microarray are retained.
  • the free state of the probe nucleic acid force of the target nucleic acid in the cavity is detected in real time. Can be observed, whereby the melting temperature of the nucleic acid can be measured.
  • a double-stranded detection reagent ethidium bromide can be used, and as a commercial product, for example, SYBR (trademark) Green I manufactured by Takara Bio Inc. can be used.
  • melting can be achieved by using fluorescently labeled target DNA molecules without using double-stranded nucleic acid detection reagents. The temperature can also be measured.
  • the present invention further relates to a nucleic acid sequence detection method characterized by using the aforementioned biomolecule interaction test method of the present invention.
  • the temperature in the cavity is increased after the target nucleic acid and the probe nucleic acid are neutralized using the biomolecule interaction test method of the present invention,
  • the melting behavior of the target nucleic acid from the probe nucleic acid in the cavity can be observed, and based on this, the sequence of the target nucleic acid can be detected.
  • the nucleic acid sequence detection method of the present invention it is possible to detect a nucleotide sequence difference from a completely complementary sequence, for example, a single nucleotide polymorphism (SNP).
  • SNP single nucleotide polymorphism
  • the second aspect of the present invention is:
  • a solution containing a target biomolecule is disposed between a biomolecule microarray having one or more spots with biomolecules immobilized on the substrate surface and an electrode (counter electrode) facing the substrate surface, A method of causing a biomolecule immobilized on a substrate surface to interact with a target biomolecule,
  • the microarray has a conductive material surface on at least a part of a surface on which a biomolecule is immobilized
  • the method is characterized in that a voltage is applied at a frequency of 0.01 to: LOHz between the surface of the conductive material and the counter electrode to promote the interaction.
  • the biomolecule microarray used in the second aspect of the present invention is produced by immobilizing a biomolecule on a substrate, and is electrically conductive on at least a part of the surface on which the biomolecule is immobilized. It has an active substance surface.
  • the substrate may be a substrate in which the entire substrate is a conductive material or a substrate having a conductive material coating layer on the substrate surface.
  • the conductive substance is, for example, a metal (eg, gold, nickel, platinum, silver, titanium, aluminum, stainless steel, copper, chromium), a conductive oxide (eg, In 2 O 3 / SnO 2), or a conductive material.
  • a metal eg, gold, nickel, platinum, silver, titanium, aluminum, stainless steel, copper, chromium
  • a conductive oxide eg, In 2 O 3 / SnO 2
  • It can be an electrically conductive plastic (eg, polyacetylene).
  • a metal force capable of binding to thiol as the conductive material, probe nucleic acid immobilization can be performed using the bond between the metal and thiol.
  • the conductive material can be selected from materials that reflect light.
  • the substrate is a substrate having a conductive material coating layer
  • such a substrate is formed on the surface of a substrate such as glass, quartz, silicon, plastic, specifically, polypropylene.
  • a substrate such as glass, quartz, silicon, plastic, specifically, polypropylene.
  • covered the active substance can be mentioned.
  • the thickness of the conductive material coating layer on the substrate is not particularly limited, and can be, for example, 0.1 to: LO / z m.
  • Such a substrate can be produced by a known method, and some of the substrates are commercially available.
  • the substrate used in the second embodiment can be a substrate having a flat surface.
  • the substrate used in the second aspect has a biomolecule-fixing spot (protruding spot portion) that protrudes from the surface of the substrate and has a spot plane on the top, and at least the protruding spot portion is conductive.
  • the surface other than the protruding spot portion on the substrate may have a conductive material coating layer, and the terminal can be energized with the force contained in the conductive material coating layer or with the conductive material coating layer. be able to.
  • the conductive material coating layer and the conductive material surface of the protruding spot are preferably provided as an integral conductive material coating layer.
  • a substrate examples include the aforementioned substrates I and II. The details are as described above. Further, the immobilization of the biomolecule on the substrate in the second aspect is as described in the first aspect.
  • an electrode (counter electrode) is arranged so as to face the substrate surface on which the biomolecule is immobilized.
  • the target biomolecule contained in the solution disposed between the substrate and the counter electrode is It selectively moves to the substrate side and is concentrated near the substrate surface.
  • the counter electrode is not particularly limited as long as it can generate an electric field between the biomolecule microarray and the counter electrode.
  • the counter electrode may be one in which the entire electrode is made of gold, nickel, platinum, silver, titanium, aluminum, stainless steel, copper, chromium, conductive oxide, or conductive plastic force.
  • the counter electrode may be formed on a surface of the substrate facing the surface of the conductive material, such as gold, nickel, platinum, silver, titanium, aluminum, stainless steel, copper, chromium, a conductive oxide, or a conductive material. It can have a conductive material coating layer that also has plastic strength.
  • the counter electrode is a transparent electrode such as ITO (indium tin oxide) or tin oxide
  • a fluorescence detector is simultaneously formed on the transparent electrode during the interaction of biomolecules. Etc. can be used to detect the interaction of biomolecules in real time.
  • the substrate constituting the biomolecule microarray is a transparent conductive coating layer on a light-transmitting glass or plastic, or the entire substrate is made of a transparent conductive material. Similarly, the interaction can be detected in real time.
  • a voltage is applied at a frequency of 0.01 to LOHz between the surface of the conductive material and the counter electrode.
  • the frequency of the voltage applied between the surface of the conductive material of the substrate and the counter electrode is 0.01 to LOLOHz. If the frequency is less than 0.01 Hz, the number of times the target biomolecule is concentrated in the vicinity of the substrate surface within a certain time is reduced, and the effect of promoting the interaction is reduced. If the frequency exceeds 10 Hz, the solution containing the target biomolecule may be electrolyzed to generate bubbles.
  • the frequency is preferably 0.01 to 1 Hz.
  • the voltage applied between the surface of the conductive material of the substrate and the counter electrode is preferably 0.1 to 4V. When the voltage is within the above range, the interaction of biomolecules can be promoted without electrolysis or heat generation.
  • the voltage is preferably 1 to 3V.
  • the solution containing the target biomolecule preferably contains a cation. This is due to the following reasons.
  • the present inventors apply a voltage at a frequency of 0.01 to: LOHz between the conductive material surface of the substrate and the counter electrode to generate an electric field, so that even when the solution contains cations.
  • the target biomolecules can be selectively moved to the substrate side and concentrated to increase the reaction efficiency of the interaction.
  • EAF electroosmotic flow
  • a hybridization solution is used to increase the interaction between the biomolecules, that is, the efficiency of hybridization between the target nucleic acid and the probe nucleic acid. It is preferable that a cation is contained in. This is a cachi This is because the negative charge of the phosphate group of the nucleic acid is canceled out by the positive positive charge, and the reactivity between the probe nucleic acid and the target nucleic acid is increased. Therefore, if a cation is added to the target nucleic acid solution, the hybridization efficiency can be further enhanced by the effect of the cation in addition to the effect of promoting the hybridization by applying a voltage.
  • the voltage used in the method is not particularly limited, and a sine wave AC voltage, a rectangular wave AC voltage, a standing wave DC voltage, a pulse wave DC voltage, or the like can be used.
  • a pulse wave DC voltage is preferably used.
  • the voltage is preferably applied so as to include at least a period in which the voltage is applied so that the substrate surface is negatively charged.
  • an electric field is applied so that the substrate side is negatively charged. Preferred.
  • the cations contained in the solution are attracted to the substrate side, so that the target biomolecule can be selectively moved to the substrate side by the solution flow generated by the movement of the cations.
  • the method it is preferable to perform an operation of stirring the solution containing the target biomolecule while no voltage is applied between the surface of the conductive material and the counter electrode.
  • the solution can be stirred during the period of voltage application (while no voltage is applied).
  • the target biomolecule can be selectively moved to the substrate side with the movement of the cation diffused in the solution.
  • the target biomolecules can be sequentially moved to the substrate side and efficiently concentrated near the substrate surface.
  • Examples of the stirring method of the solution include a method in which the entire reaction vessel is rotated with a rotary oven, a liquid feeding port connected to the inside of the chamber is provided, and a pump such as a peristaltic pump and a rotary pump is connected with a tube to connect the chamber. It is possible to use a method in which the solution inside is reciprocally stirred.
  • the cation includes sodium ion, potassium ion, lithium ion, magnesium ion
  • the group force consisting of lanthanum, calcium ions, and aluminum ions can also be at least one selected. Among the above cations, sodium ions and magnesium ions are preferable.
  • the concentration of the cation in the solution is preferably set to an optimum concentration for the interaction in consideration of the type and frequency of the voltage to be applied. For example, 1 to: LOOOmM, preferably 10 to 50 OmM It can be.
  • the solution containing the target biomolecule can contain a buffer. It is preferable to use a buffer having a neutral pH buffering capacity, but is not limited thereto. Specifically, for example, a Tris-HC1 buffer can be used as the buffer.
  • the temperature of the solution containing the target biomolecule is preferably set to a temperature suitable for interaction, for example, normal temperature (for example, about 20 ° C) to 70 ° C.
  • temperature control means such as a heater can also be used. If an excessively high voltage is used, the solution temperature becomes high due to heat generation, so that it may be necessary to strictly control the temperature.
  • the method of the first aspect has an advantage that it can be carried out without using a strict temperature control means because an interaction promoting effect can be obtained by a relatively low voltage.
  • a spacer having a non-conductive material force can be sandwiched between the substrate and the counter electrode so that the region where the biomolecules are immobilized is not covered.
  • the non-conductive spacer is disposed between the substrate and the counter electrode, and the target biomolecule is contained in the space surrounded by the substrate, the counter electrode, and the non-conductive spacer.
  • the solution can be filled.
  • the non-conductive material include silicon, rubber, glass, and plastic.
  • the distance between the substrate and the counter electrode can be set by the thickness of the spacer. The distance between the substrate and the counter electrode can be appropriately set within a range in which the effect of promoting the interaction of biomolecules by applying an electric field can be obtained, and can be set to 30 to 500 ⁇ m, for example.
  • the non-conductive spacer can have an adhesive layer on both surfaces thereof, and the substrate and the counter electrode can be bonded to each other by the adhesive layer.
  • the adhesive of the adhesive layer is It is preferable to contain a photocurable resin.
  • the photocurable resin is cured by irradiating light and loses its adhesive force. Therefore, if the adhesive contains the photocurable resin, if it is irradiated with light, the substrate can be removed from the non-conductive spacer. And the counter electrode can be removed.
  • the photocurable resin for example, a known photocurable resin such as an ultraviolet curable resin can be used.
  • the interaction can be detected in real time through the counter electrode when the counter electrode is a transparent electrode.
  • the substrate constituting the microarray is a substrate in which a transparent conductive coating layer is provided on light-transmitting glass or plastic, or the entire substrate also has a transparent conductive material force.
  • real-time detection of substrate power is possible.
  • the interaction detection method include a method using a fluorescence detector, a confocal detector, a confocal laser fluorescence microscope, and a fluorescence microscope.
  • the target biomolecule is preferably fluorescently labeled. Fluorescent labeling of the target biomolecule can be performed by a known method.
  • the biomolecule immobilized on the substrate surface may be fluorescently labeled. Fluorescent labeling of biomolecules immobilized on the substrate can also be performed by a known method.
  • a confocal detector when a substrate having a protruding spot portion is used, an interaction between biomolecules can be detected by a confocal detector.
  • the principle of detection of reflected light and fluorescence by the confocal detector is as described above.
  • automatic glitting can be performed by using a confocal detector and specifying the size and position of the spot from the reflected image according to the principle described above. The details are as described above.
  • a confocal fluorescence scanner that can simultaneously detect reflected light and fluorescence.
  • the details are as described above.
  • a method of transferring biomolecules contained in a solution disposed between a substrate having a conductive material surface at least partially and an electrode (counter electrode) facing the conductive material surface A method of moving the biomolecule toward the substrate or the counter electrode by applying a voltage at a frequency of 0.01 to LOHz between the surface of the conductive material and the counter electrode.
  • the details of the substrate, the counter electrode, the biomolecule, the applied electric field, etc. used in the method are as described above for the method of interacting the biomolecule.
  • the above-described method of moving a biomolecule can be used to selectively move the biomolecule to the substrate side and concentrate it in the vicinity of the substrate surface, or selectively select the biomolecule to the counter electrode side. It can be used to move and concentrate near the surface of the counter electrode.
  • the above-described method for transferring a biomolecule can be used to detect the sequence of a nucleic acid.
  • the target nucleic acid that is completely complementary to the probe nucleic acid strongly interacts with the probe nucleic acid.
  • a target nucleic acid whose sequence is mismatched with the probe nucleic acid has a weak interaction with the probe nucleic acid. Therefore, when an electric field is applied in the opposite direction, it moves away from the probe nucleic acid and moves to the counter electrode side.
  • a difference in base sequence from a completely complementary sequence for example, a monobasic polymorphism (SNP) can be detected.
  • SNP monobasic polymorphism
  • a mold having a concave portion corresponding to the protruding spot portion formed on the substrate was manufactured.
  • an array part made of polycarbonate was produced by injection molding.
  • the height of the protruding spot is 200 m
  • the spot plane is a square with a side of 90 m.
  • the angle with the surface was 95 °.
  • a cross-sectional view of the protruding spot portion is shown in FIG.
  • chromium was deposited at a rate of 0.08 nmZs to a thickness of 50 nm, and then gold was deposited at a rate of 0.5 nmZs to a thickness of 500 nm.
  • the array part shown in FIG. 8 was produced by the above method.
  • a 45-mer oligo DNA probe solution 120 M in lx microspotting solution (Telechem) + 0.1% Tween 20 was stamped onto the spot plane on the top of the protruding spot of the array part by DNA arrayer.
  • the tip of stamp gold + was a circular one with a diameter of 130 m.
  • probe DNA As the probe DNA, the following 11 gene sequences, 45mer oligo DNA, were used.
  • beta-actin TTTTGTCCCCCCAACTTGATGTATGAAGGCTTTGGTCTCCCTGGG
  • GAPDH GCAGTGGCAAAGTGGAGATTG GCCATCAACGACCCCTTCATTG
  • a PEN sheet with an adhesive layer containing 90-nm thick UV-curing grease on both sides was punched out with a mold, and the non-conductive strip shown in Fig. 9 was removed.
  • a pacer was produced.
  • a polycarbonate cover part was produced by injection molding.
  • Figure 10 shows a schematic diagram of the cover pad.
  • the cover part is provided with a recessed part (fitting the counter electrode) for fitting the counter electrode, a hole part (observation window) for observing the inside of the cavity through the counter electrode, and a conductive member (copper made of copper).
  • the material was silver-plated
  • Cy3-labeled cDNA prepared by labeling mouse brain-derived mRNA with Amersham's Cyscribe cDNA post labeling kit was used as the target DNA.
  • Hybridization of this mouse brain-derived Cy3-labeled cDNA target prepared in a 50 mM L-histidine solution at concentrations of 5 ng / 1, 0.5 ng / 1 and 0.05 ng / 1 respectively. Used as a solution.
  • This hybridization solution was heat-denatured at 95 ° C. for 2 minutes, and then rapidly cooled at 4 ° C. for 2 minutes, and then used for hybridization.
  • Hybridization was performed under the condition of applying a high-frequency AC electric field of 1 MHz 30 Vp-p and with strong force. The results are shown in FIG. As shown in Fig. 11, when the electric field was applied, the detection sensitivity was improved by more than 10 times compared to when the electric field was not applied.
  • Example 2 Melting temperature measurement, SNP detection
  • PM (20 mer of the completely complementary strand; sequence GGACATGG AGTTCCGCGACC), MM (20 mer with one central base different from PM; sequence GG ACATGGAGATCCGCGACC) Went.
  • a 21mer (sequence: G GTCGCGGAACTCCATGTCC) complementary to PM labeled with Cy3 at the 5 ′ end was used.
  • the melting temperature of MM is about 59 ° C
  • a DNA microarray substrate coated with gold is attached to the surface of the substrate so that the nucleic acid solution enters, and the center of the double-sided adhesive film is affixed to the substrate surface, and the ITO electrode is placed on the surface so that the electrode surface faces the substrate. Pasted.
  • the part into which the solution enters is made so as to be the one in the chamber, so that the solution can be injected even with a partial force of the adhesive film.
  • Figure 14 shows a schematic diagram of the equipment. As a nucleic acid solution to be filled in the chamber of the apparatus shown in FIG. 14, 0. Cy3-labeled oligo DNA (45mer), 40 mM Tris—HC1 (pH 8.3), 4 mM EDTA, 400 mM NaCl were used.
  • This nucleic acid solution is filled in the above chamber, the substrate surface and the ITO electrode are connected to the terminals of the respective electrodes of the AC voltage generator, A sine wave AC voltage was applied at a voltage of 3Vp-p while changing the frequency from 10Hz to 0.01Hz.
  • the positions of the arrows indicate the respective frequencies! ], Or the point at which the frequency is changed.
  • the curve in the graph is obtained by measuring the amount of nucleic acid molecules in the vicinity of the array surface as the fluorescence intensity of the fluorescent label with a confocal laser fluorescence microscope. Higher fluorescence intensity means that nucleic acid molecules are concentrated near the surface of the array. Under these conditions, particularly at frequencies of 0.1 Hz and 0.01 Hz, an increase in fluorescence intensity in accordance with the applied voltage period, ie, nucleic acid concentration was observed.
  • Example 3 the waveform pattern of the applied voltage was changed to a sine wave and a rectangular wave, and the relationship between the voltage curve and nucleic acid concentration was examined.
  • 0.1 / z M Cy3-labeled oligo DNA (45mer), 40 mM Tris—HC1 (pH 8.3), 4 mM EDTA, 400 mM NaCl were used as the nucleic acid solution.
  • the applied voltage was 3 Vp-p, and an alternating voltage was applied as a sine wave and a rectangular wave.
  • Figure 16 shows the results. As shown in FIG. 16, an increase in fluorescence intensity corresponding to the voltage waveform was observed for both waveforms. This makes it possible to efficiently concentrate nucleic acids near the substrate surface by applying a voltage, and when the substrate surface is negatively charged regardless of the type of waveform, the nucleic acids gather near the substrate surface and are concentrated. Turned out to be.
  • Terminal Cy 3 fluorescently labeled oligo DNA (sequence complementary to GAPDH; 40 mM Tris HCl (pH 8.3), 4 mM EDTA, 400 mM NaCl) was used as the solution.
  • Hybridization was performed using the same apparatus and the same voltage application conditions as in Example 5. As a comparison, hybridization was performed even when no voltage was applied.
  • Figure 19 shows the results of real-time measurement of changes in fluorescence intensity on the spot during the hybridization reaction using a confocal laser fluorescence microscope.
  • the GAPDH spot containing the probe DNA having a sequence complementary to the target DNA shows a rapid increase in fluorescence intensity when voltage is applied compared to when no voltage is applied, and the speed of the hybridization reaction.
  • the fluorescence intensity increased about 13 times when the voltage was applied, compared with the case where the voltage was not applied. This indicates that the hybridization reaction has been made highly sensitive by applying a voltage. Furthermore, after a 10-minute reaction by applying a voltage, the fluorescence intensity increased about 6 times compared to the case of reacting for 16 hours without applying a voltage. Thus, the high speed and high sensitivity of the hybridization reaction were achieved by the method of the present invention.
  • Example 3 the concentration of protein molecules by applying a low-frequency AC voltage was examined.
  • the protein molecule solution used was: LM Cy3-labeled streptavidin, 40 mM Tris-HCl (pH 8.3), 4 mM EDTA, 400 mM NaCl.
  • the applied voltage was 3 Vp-p, and an alternating voltage of 0.1 Hz was applied.
  • FIG. As shown in Fig. 21, even when protein molecules are used as biomolecules, the fluorescence intensity increases according to the voltage waveform, and it is confirmed that protein molecules are concentrated near the substrate surface by voltage application. It was done. Also in this example, migration and concentration of protein molecules were observed when the substrate side was negatively charged.
  • the interaction of biomolecules can be tested in real time while promoting the interaction of biomolecules. Furthermore, according to the present invention, measurement of the melting temperature of biomolecules and detection of mutations such as single nucleotide polymorphisms can be performed easily and rapidly. According to the second aspect of the present invention, it is possible to achieve high speed and high sensitivity of interaction of biomolecules.
  • FIG. 5 shows an enlarged view of a part of a substrate having a substantially V-shaped bottom surface.
  • FIG. 6 Shows an example (partially enlarged view) of a roughened spot plane.
  • FIG. 7 A schematic diagram of the optical system of a confocal fluorescence scanner that can detect reflected light and fluorescence simultaneously is shown.
  • Example 1 A schematic view of the non-conductive spacer produced in Example 1 is shown.
  • FIG. 10 A schematic view of the cover parts produced in the example is shown.
  • FIG. 11 shows the results obtained in Example 1 (scatter diagram of the hybridization intensity of dielectric hybridization and non-dielectric hybridization).
  • FIG. 12 shows a melting curve obtained in Example 2.
  • FIG. 13 shows a cross-sectional view of the protruding spot portion on the array part produced in Example 1.
  • FIG. 15 shows the results (relationship between applied voltage frequency and nucleic acid concentration) obtained in Example 3.
  • FIG. 16 shows the results (relationship between applied voltage waveform and nucleic acid concentration) obtained in Example 4.
  • FIG. 17 shows the results obtained in Example 5.
  • FIG. 18 shows the results obtained in Example 5.
  • FIG. 19 shows the results obtained in Example 6.
  • FIG. 20 shows an image obtained by the microarray array scanner obtained in Example 6.
  • FIG. 21 shows the results obtained in Example 7.

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Description

明 細 書
生体分子の相互作用試験装置、生体分子の相互作用試験方法、生体分 子の融解温度測定方法、核酸の配列検知方法、生体分子を相互作用させる方 法、および、生体分子を移動させる方法
技術分野
[0001] 本発明は、簡便かつ迅速に、ターゲット生体分子とプローブ生体分子との相互作用 を試験し得る装置、および相互作用試験方法に関する。更に、本発明は、前記方法 を用いる、生体分子の融解温度測定方法および核酸の配列検知方法に関する。 更に、本発明は、基板上に固定化された生体分子と溶液に含まれる生体分子とを 相互作用させる方法、および、溶液に含まれる生体分子を一方向に選択的に移動さ せる方法に関する。
背景技術
[0002] 遺伝子診断や病原菌の特定、あるいは一塩基多型の検出等、ある種の核酸 (ター ゲット核酸)を検出する目的で、プローブ核酸とターゲット核酸とのハイブリダィゼーシ ヨンが利用されている。近年、多数のプローブ核酸を基板に固定した DN Aチップや DNAマイクロアレイが実用化されるようになり、ターゲット核酸の検出に使用されてい る。
[0003] DNAチップや DNAマイクロアレイの作製においては、基板に DNAを多数スポット として整列させて固定ィ匕する必要がある。 DNAの固定化には、例えば、末端をチォ ール修飾した一本鎖 DNAを、例えば、金基板に固定ィ匕する方法が取られている。そ して、固定ィ匕された DNAに被検体であるターゲット DNAを作用させ、ハイブリダィゼ ーシヨンの有無を検出する。ハイブリダィゼーシヨンの有無は、例えば、蛍光法を用い て、蛍光標識したターゲット DNAとハイブリダィズした固定化 DNAのスポットの蛍光 を測定することによって検出することができる。
[0004] 基板上に固定化されたプローブ DNAと試料ターゲット DNAをハイブリダィゼーショ ンさせるためには、例えば、プローブ DNAを固定化した DNAマイクロアレイ上に、タ 一ゲット DNAを含むハイブリダィゼーシヨン溶液を滴下し、溶液が乾かな ヽように力 バーガラスをかけて密閉した湿箱に入れ、ターゲット DNAおよびプローブ DNAに合 わせた適温でハイブリッド形成反応を行う方法が用いられている(特開 2003— 1564 42号公報 (以下、「文献 1」という)参照)。しかし、このような方法では、ハイブリッド形 成をリアルタイムで観察することはな力つた。
[0005] それに対し、特表平 10— 505410号公報(以下、「文献 2」という)には、 DNAが固 定ィ匕されたアレイをチャンバ一内に封入したバイオアレイチップ反応装置が開示され ている。この装置は、チャンバ一内へ溶液の送液が可能な構造を有している。更に、 文献 2には、この装置の基板またはカバーが透明であり得ることが記載されている。こ のような文献 2に記載の装置によれば、チャンバ一内へ溶液を送液しつつ、透明な基 板側またはカバー側から、ハイブリッド形成をリアルタイムで観察することが可能であ ると考免られる。
[0006] し力し、プローブ DNAとターゲット DNAをハイブリダィゼーシヨンさせるためには、 通常、十数時間を要し、し力も、多量の試料ターゲット DNAが必要とされる。そのた め、文献 2に記載の装置において、ハイブリッド形成をリアルタイムで観察することが できるとしても、ハイブリッド形成には長時間を要するため、迅速な観察を行うことは 困難である。し力も、プローブ DNAとターゲット DNAをハイブリダィゼーシヨンさせる ためには、多量の試料を調製しなければならな 、。
[0007] また、プローブ DNAとターゲット DNAをハイブリダィゼーシヨンさせるためには、通 常、十数時間を要し、し力も、多量の試料ターゲット DNAが必要とされる。そのため、 前述の文献 1に記載の方法では、ハイブリッド形成には長時間を要するため、迅速な 観察を行うことは困難である。し力も、プローブ DNAとターゲット DNAをハイブリダィ ゼーシヨンさせるためには、多量の試料を調製しなければならない。
発明の開示
発明が解決しょうとする課題
[0008] 本発明の第一の目的は、多量の試料および多くの時間と労力を必要とせず、生体 分子間の相互作用を迅速に形成することができ、し力も、生体分子の相互作用をリア ルタイムで検出することができる手段を提供することである。
本発明の第二の目的は、生体分子マイクロアレイにおける相互作用を促進し、反応 の高速ィ匕および高感度化が可能な手段を提供することである。
課題を解決するための手段
上記第一の目的を達成するための本発明の第一の態様は、以下の通りである。
[1] 基板上に生体分子が固定化された生体分子マイクロアレイ(1)、および、前記マ イクロアレイの生体分子が固定化された面に対向するように設けられた透明電極 (2)
(以下、「対向電極」 t 、う)を有する生体分子の相互作用試験装置であって、 前記装置は、前記マイクロアレイ(1)と対向電極(2)との間に、非導電性スぺーサ 一(3)を有し、前記マイクロアレイ(1)、前記スぺーサー(3)、および前記対向電極(2
)によってキヤビティ (4)が形成されており、
前記マイクロアレイ(1)は、生体分子が固定化された面の少なくとも一部に導電性 物質表面(6)を有し、かつ、前記キヤビティ (4)に通じる貫通孔(5)を 2つ有し、一方 の貫通孔はキヤビティへ溶液を注入するための孔であり、他方の貫通孔はキヤビティ 力も溶液を排出するための孔である、前記装置。
[2] 前記マイクロアレイ(1)の側から、前記マイクロアレイ(1)上の導電性物質表面( 6)および対向電極 (2)と外部電源とを接続するための手段を有する、 [1]に記載の装 置。
[3] 前記マイクロアレイ(1)上の導電性物質表面 (6)と少なくとも一部が接触し、かつ 、前記対向電極 (2)とは接触しない導電性部材 (7)を更に有し、前記基板上の導電 性物質表面 (6)は、前記導電性部材 (7)を介して外部電源と接続される、 [2]に記載 の装置。
[4] 前記導電性部材 (7)を構成する導電性物質は、金、ニッケル、白金、銀、チタン 、アルミニウム、ステンレス、銅、導電性酸化物、または導電性ブラスチックである、 [3] に記載の装置。
[5] 前記マイクロアレイは、前記導電性部材(7)に通じる貫通孔(8)および前記対向 電極(2)に通じる貫通孔(9)を有する、 [3ほたは [4]に記載の装置。
[6] 前記非導電性スぺーサー(3)は、前記マイクロアレイ(1)と対向電極(2)との間 隔が均一になるように配置される、 [1]〜[5]のいずれかに記載の装置。
[7] 前記マイクロアレイ(1)の生体分子が固定化された面と前記対向電極 (2)の前 記マイクロアレイ(1)の生体分子が固定化された面と対向する表面との距離が、 10〜 300 μ mである、 [1]〜[6]のいずれかに記載の装置。
[8] 前記マイクロアレイ上の導電性物質表面を構成する導電性物質が、金、ニッケ ル、白金、銀、チタン、アルミニウム、ステンレス、銅、クロム、導電性酸化物、または導 電性プラスチックである [1]〜[7]のいずれかに記載の装置。
[9] 前記基板は、基板全体が導電性物質からなるか、または、基板表面に導電性物 質被覆層を有する、 [1]〜[8]のいずれかに記載の装置。
[10] 前記導電性被覆層を有する基板が、ガラス、石英、金属、シリコン、またはブラ スチック力もなる [9]に記載の装置。
[11] 前記非導電性スぺーサー(3)は、その両面に接着剤層を有する、 [1]〜[10]の いずれかに記載の装置。
[12] 前記接着剤は、光硬化性榭脂を含む、 [11]に記載の装置。
[13] 温度制御手段を更に有する、 [1]〜[12]のいずれかに記載の装置。
[14] 前記基板は、基板表面から突出し、かつ頂上にスポット用平面を有する生体分 子固定化用スポット(以下、「突出スポット部」と 、う)を有し、
少なくとも前記突出スポット部は導電性物質表面を有し、
前記スポット用平面の導電性物質表面に生体分子が固定化されており、かつ 前記基板は、前記基板上の突出スポット部以外の表面に、前記突出スポット部の導 電性物質表面と通電可能な端子を有する、 [1]〜[13]のいずれかに記載の装置。
[15] 前記基板上の突出スポット部以外の表面は、導電性物質被覆層を有し、前記 端子は、前記導電性物質被覆層に含まれるか、または、前記導電性物質被覆層と通 電可能である、 [14]に記載の装置。
[16] 前記基板上の突出スポット部以外の表面は、導電性物質被覆層を有し、前記 導電性物質被覆層と突出スポット部の導電性物質表面とは、一体の導電性物質被 覆層として設けられている、 [14]または [15]に記載の装置。
[17] 前記基板が、少なくとも、前記突出スポット部周辺の基板表面、突出スポット部 側面、およびスポット用平面が、導電性物質力もなる基板である、 [14]〜[16]のいず れかに記載の装置。 [18] 前記突出スポット部周辺の基板表面が、略 V字型底面を形成する、 [17]に記 載の装置。
[19] 前記基板が、隣り合う突出スポット部が、突出スポット部側面によって隣接して おり、かつ、少なくとも、前記突出スポット部側面およびスポット用平面が、導電性物 質力もなる基板である、 [14]〜[16]のいずれかに記載の装置。
[20] 前記突出スポット部の高さ力 10〜500 111でぁる、[14]〜[19]のぃずれかに 記載の装置。
[21] 前記突出スポット部頂上のスポット用平面と前記突出スポット部側面とのなす角 が、 90度以上である、 [14]〜[20]のいずれかに記載の装置。
[22] 前記生体分子固定ィ匕用スポットが粗面化されている、 [14]〜[21]のいずれか に記載の装置。
[23] 前記生体分子は、 DNA、 RNA、 PNA、蛋白、ポリペプチド、糖化合物、脂質 、天然低分子、および合成低分子力もなる群力も選ばれる少なくとも一種である、 [1] 〜[22]の 、ずれかに記載の装置。
[24] 基板上に生体分子が固定化された生体分子マイクロアレイ(1)と前記マイクロ アレイの生体分子が固定化された面に対向するように設けられた透明電極 (2) (以下 、「対向電極」という)を有し、前記マイクロアレイ(1)と対向電極(2)との間に、非導電 性スぺーサー(3)を有し、前記マイクロアレイ(1)、前記スぺーサー(3)、および前記 対向電極(2)によってキヤビティ (4)が形成されている装置を用いる、生体分子の相 互作用試験方法であって、
前記マイクロアレイ(1)は、生体分子が固定化された面の少なくとも一部に導電性 物質表面 (6)を有し、
前記マイクロアレイ(1)と対向電極 (2)との間に電界を印加すること、および、 前記キヤビティ (4)へ、ターゲット生体分子を含む溶液および Zまたはターゲット生 体分子を含まな ヽ溶液を送液しながら、前記マイクロアレイ上の生体分子と前記ター ゲット生体分子との相互作用を前記対向電極を通して光学的に検出すること、 を含む、前記方法。
[25] 基板上に生体分子が固定化された生体分子マイクロアレイ(1)と前記マイクロ アレイの生体分子が固定化された面に対向するように設けられた透明電極 (2) (以下 、「対向電極」という)を有し、前記マイクロアレイ(1)と対向電極(2)との間に、非導電 性スぺーサー(3)を有し、前記マイクロアレイ(1)、前記スぺーサー(3)、および前記 対向電極(2)によってキヤビティ (4)が形成されている装置を用いる、生体分子の相 互作用試験方法であって、
前記マイクロアレイ(1)は、生体分子が固定化された面の少なくとも一部に導電性 物質表面 (6)を有し、
前記マイクロアレイ(1)と対向電極 (2)との間に電界を印加すること、および 前記キヤビティ (4)に、ターゲット生体分子を含む溶液を充填し、所定時間保持した 後、前記溶液を排出することを含み、
前記溶液の保持中または排出後に、前記マイクロアレイ上の生体分子と前記ター ゲット生体分子との相互作用を前記対向電極を通して光学的に検出する、前記方法
[26] 前記溶液を排出した後、または排出しながら、前記キヤビティ内にターゲット生 体分子を含む溶液および Zまたはターゲット生体分子を含まない溶液を新たに充填 することを含む、 [25]に記載の方法。
[27] 前記マイクロアレイ(1)の側から、前記マイクロアレイ(1)上の導電性物質表面 (6)および対向電極 (2)と外部電源とを接続し、前記マイクロアレイ(1)と対向電極 (2 )との間に電界を印加する、 [24]〜[26]のいずれかに記載の方法。
[28] 前記装置が、請求項 1〜23のいずれか 1項に記載の装置である、 [24]〜[27] のいずれかに記載の方法。
[29] 前記マイクロアレイ(1)が有する前記キヤビティに通じる貫通孔(5)を通して、 前記キヤビティへ溶液を注入し、および Zまたは、前記キヤビティカゝら溶液を排出す る、 [28]に記載の方法。
[30] 前記装置が、 [5]〜[23]のいずれかに記載の装置であり、前記導電性部材 (7) に通じる貫通孔(8)および対向電極 (2)に通じる貫通孔(9)を通して、前記導電性部 材 (7)および対向電極 (2)と外部電源の端子とを接続する、 [24]〜[27]のいずれか に記載の方法。 [31] 前記マイクロアレイ(1)が有する前記キヤビティに通じる貫通孔(5)を通して、 前記キヤビティへ溶液を注入し、および Zまたは、前記キヤビティカゝら溶液を排出す る、 [30]に記載の方法。
[32] 前記マイクロアレイに固定された生体分子および Zまたは前記ターゲット生体 分子が蛍光標識されており、かつ、前記マイクロアレイ上の生体分子とターゲット生体 分子との相互作用を、蛍光によって検出する、 [24] [31]のいずれかに記載の方法
[33] [14] [23]のいずれかに記載の装置を用いる、生体分子の相互作用試験方 法であって、
前記マイクロアレイ(1)と対向電極 (2)との間に電界を印加すること、および、 前記キヤビティ (4) ターゲット生体分子を含む溶液および Zまたはターゲット生 体分子を含まな 溶液を送液しながら、前記マイクロアレイ上の生体分子と前記ター ゲット生体分子との相互作用を前記対向電極を通して共焦点型検出器によって検出 することを含む、前記方法。
[34] [14] [23]のいずれかに記載の装置を用いる、生体分子の相互作用試験方 法であって、
前記マイクロアレイ(1)と対向電極 (2)との間に電界を印加すること、および 前記キヤビティ (4)に、ターゲット生体分子を含む溶液を充填し、所定時間保持した 後、前記溶液を排出することを含み、
前記溶液の充填中または排出後に、前記マイクロアレイ上の生体分子と前記ター ゲット生体分子との相互作用を前記対向電極を通して共焦点型検出器によって検出 する、前記方法。
[35] 前記溶液を排出した後、または排出しながら、前記キヤビティ内にターゲット生 体分子を含む溶液および Zまたはターゲット生体分子を含まない溶液を新たに充填 することを含む、 [34]に記載の方法。
[36] 前記マイクロアレイ上の生体分子および Zまたは前記ターゲット生体分子が蛍 光標識されて 、る、 [33] [35]の 、ずれかに記載の方法。
[37] 前記共焦点型検出器によって、マイクロアレイ表面の突出スポット部とそれ以 外の部分の高さおよび zまたは形状の差による反射光強度の相違から、マイクロアレ ィ上の前記突出スポット部を反射像として検出する、 [33]〜[36]のいずれかに記載 の方法。
[38] 前記反射像として検出された突出スポット部力 の蛍光を検出することによって 、生体分子の相互作用を検出する、 [37]に記載の方法。
[39] 前記マイクロアレイ(1)が有する前記キヤビティに通じる貫通孔(5)を通して、 前記キヤビティへ溶液を導入し、および Zまたは、前記キヤビティカゝら溶液を排出す る、 [33]〜[38]のいずれかに記載の方法。
[40] 前記導電性部材(7)に通じる貫通孔(8)および対向電極 (2)に通じる貫通孔( 9)を通して、前記導電性部材 (7)および対向電極 (2)と外部電源の端子とを接続す る、 [33]〜[39]のいずれかに記載の方法。
[41] 前記マイクロアレイ(1)と対向電極(2)との間に印加される電界力 0. 01-10 MVZmである、 [24]〜[40]のいずれかに記載の方法。
[42] 前記ターゲット生体分子を含む溶液力 フエ-ルァラニン、ヒスチジン、カルノ シン、およびアルギニン力 なる群力 選ばれる少なくとも 1つのバッファー物質を含 む、 [24]〜[41]のいずれかに記載の方法。
[43] [24]〜[42]のいずれかに記載の方法を用いることを特徴とする、生体分子の 融解温度測定方法。
[44] [24]〜[42]のいずれかに記載の方法を用いることを特徴とする、核酸の配列 検知方法。
上記第二の目的を達成するための本発明の第二の態様は、以下の通りである。
[45] 基板表面に生体分子が固定化されたスポットを 1つ以上有する生体分子マイク ロアレイと、前記基板表面と対向する電極 (以下、「対向電極」という)との間にターゲ ット生体分子を含む溶液を配置し、前記基板表面に固定化された生体分子とターゲ ット生体分子とを相互作用させる方法であって、
前記マイクロアレイは、生体分子が固定化された面の少なくとも一部に導電性物質 表面を有し、
前記導電性物質表面と対向電極との間に、周波数 0. 01〜: LOHzで電圧を印加し て、前記相互作用を促進することを特徴とする、前記方法。
[46] 少なくとも一部に導電性物質表面を有する基板と、前記導電性物質表面と対 向する電極 (以下、「対向電極」という)との間に配置された溶液に含まれる生体分子 を移動させる方法であって、
前記導電性物質表面と対向電極との間に、周波数 0. 01〜: LOHzで電圧を印加し て、前記基板または対向電極に向けて前記生体分子を移動させることを特徴とする 方法。
[47] 前記電圧が 0. 1〜4Vである、 [45]または [46]に記載の方法。
[48] 前記溶液は、カチオンを含む、 [45]〜[47]のいずれかに記載の方法。
[49] 前記カチオンは、ナトリウムイオン、カリウムイオン、リチウムイオン、マグネシゥ ムイオン、カルシウムイオン、およびアルミニウムイオン力 なる群力 選ばれる少なく とも一種である、 [48]に記載の方法。
[50] 前記溶液中のカチオン濃度は、 1〜: LOOOmMの範囲である、 [48]または [49] に記載の方法。
[51] 前記電圧は、パルス直流電圧である、 [45]〜[50]のいずれかに記載の方法。
[52] 少なくとも前記基板表面が負に帯電するように電圧を印加することを含む、 [45 ]〜[51]のいずれかに記載の方法。
[53] 前記基板は、基板全体が導電性物質からなるか、または、基板表面に導電性 物質被覆層を有する、 [45]〜[52]のいずれかに記載の方法。
[54] 前記導電性物質は、金、ニッケル、白金、銀、チタン、アルミニウム、ステンレス 、銅、クロム、導電性酸化物、または導電性プラスチックである、 [45]〜[53]のいずれ かに記載の方法。
[55] 前記対向電極は、電極全体が、金、ニッケル、白金、銀、チタン、アルミニウム、 ステンレス、銅、クロム、導電性酸化物、または導電性プラスチックカゝらなるカゝ、または 、前記基板の導電性物質表面と対向する表面に、金、ニッケル、白金、銀、チタン、 アルミニウム、ステンレス、銅、クロム、導電性酸化物、または導電性プラスチックから なる導電性物質被覆層を有する、 [45]〜[54]のいずれか〖こ記載の方法。
[56] 前記対向電極は、透明電極である、 [45]〜[55]のいずれかに記載の方法。 [57] 前記基板と対向電極との間に非導電性スぺーサーを配置し、前記基板、対向 電極、および非導電性スぺーサ一によつて囲まれた空間に、前記溶液を充填する、 [ 45]〜[56]の!、ずれかに記載の方法。
[58] 前記導電性物質表面と対向電極との間に電圧が印加されない間、前記溶液を 攪拌することを含む、 [57]に記載の方法。
[59] 前記生体分子は、 DNA、 RNA、 PNA、蛋白、ポリペプチド、糖化合物、脂質 、天然低分子、および合成低分子力もなる群力も選ばれる少なくとも一種である、 [45 ]〜[58]の 、ずれかに記載の方法。
発明の効果
[0011] 本発明の第一の態様によれば、多量の試料および多くの時間と労力を必要とせず
、生体分子間の相互作用を迅速に形成することができ、し力も、生体分子の相互作 用をリアルタイムで検出することができる。
更に、本発明の第一の態様によれば、生体分子の融解温度の測定および核酸の 配列検知、例えば、一塩基多型の検出を行うことができる。
[0012] 本発明の第二の態様によれば、アレイ表面近傍にターゲット生体分子を濃縮し、生 体分子の相互作用の高速化と高感度化を実現することができる。
発明を実施するための最良の形態
[0013] [第一の態様]
以下、本発明の第一の態様について更に詳細に説明する。
[生体分子の相互作用試験装置]
本発明の生体分子の相互作用試験装置について、図 1に基づいて説明する。図 1 は、本発明の装置の概略図である。
本発明の生体分子の相互作用試験装置は、基板上に生体分子が固定化された生 体分子マイクロアレイ(1)、および、前記マイクロアレイの生体分子が固定ィ匕された面 に対向するように設けられた透明電極 (2) (対向電極)を有し、前記マイクロアレイ(1) と対向電極(2)との間に、非導電性スぺーサー(3)を有し、前記マイクロアレイ(1)、 前記スぺーサー(3)、および前記対向電極 (2)によってキヤビティ (4)が形成されて おり、前記マイクロアレイ(1)は、生体分子が固定化された面の少なくとも一部に導電 性物質表面(6)を有し、かつ、前記キヤビティ (4)に通じる貫通孔(5)を 2つ有し、一 方の貫通孔はキヤビティへ溶液を注入するための孔であり、他方の貫通孔はキヤビテ イカ 溶液を排出するための孔である。
[0014] 前記生体分子は、 DNA、 RNA、 PNA、蛋白、ポリペプチド、糖化合物、脂質、天 然低分子、および合成低分子力 なる群力 選ばれる少なくとも一種であることがで き、目的に応じて選択することができる。
ここで、糖ィ匕合物としては、例えば、単糖、オリゴ糖、多糖、糖鎖複合体、糖蛋白質 、糖脂質、およびそれら誘導体などを挙げることができる。
脂質としては、例えば、脂肪酸、リン脂質、糖脂質、グリセリドなどを挙げることができ る。
天然低分子としては、例えば、ホルモン分子や抗生物質、毒物、ビタミン類、生理 活性物質、二次代謝産物などを挙げることができる。
合成低分子としては、例えば、天然低分子の合成物、およびそれら誘導体などを挙 げることができる。
[0015] 本発明の装置によって試験され得る生体分子の相互作用としては、例えば、プロ一 ブ核酸とターゲット核酸とのハイブリダィゼーシヨン、抗原 抗体相互作用、レセプタ 一一リガンド相互作用、タンパクータンパク相互作用、 DNA タンパク相互作用を挙 げることができる。
[0016] 前記マイクロアレイ(1)は、基板上に生体分子を固定化することによって作製される ものであり、生体分子が固定化された面の少なくとも一部に導電性物質表面 (6)を有 する。前記導電性物質表面 (6)を構成する導電性物質は、例えば、金属 (例えば、 金、ニッケル、白金、銀、チタン、アルミニウム、ステンレス、銅、クロム)、導電性酸ィ匕 物(例えば、 In O ZSnO )および導電性プラスチック (例えば、ポリアセチレン)であ
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ることができる。なお、後述するように、前記基板が突出スポット部を有するものであり 、反射像によって自動グリツティングを行う場合には、前記導電性物質は、光を反射 する性質を有する物質から選択する。
また、金属とチオール基との結合を利用して、プローブ核酸の固定化を行う場合は 、前記導電性物質は、チオール基と結合性を有する金属から選択する。 [0017] 前記基板は、基板表面から突出し、かつ頂上にスポット用平面を有する生体分子 固定ィ匕用スポット(突出スポット部)を有し、少なくとも前記突出スポット部は導電性物 質表面を有し、前記スポット用平面の導電性物質表面に生体分子が固定化されてお り、かつ前記基板は、前記基板上の突出スポット部以外の表面に、前記突出スポット 部の導電性物質表面と通電可能な端子を有するものであることができる。前記基板 上の突出スポット部以外の表面は、導電性物質被覆層を有することができ、前記端 子は、前記導電性物質被覆層に含まれるか、または、前記導電性物質被覆層と通電 可能であることができる。更に、この導電性物質被覆層と突出スポット部の導電性物 質表面とは、一体の導電性物質被覆層として設けられていることが好ましい。そのよう な基板としては、少なくとも、前記突出スポット部周辺の基板表面、突出スポット部側 面、およびスポット用平面が、導電性物質からなる基板 (以下、基板 Iという)、または、 隣り合う突出スポット部は、突出スポット部側面によって隣接しており、かつ、少なくと も、前記突出スポット部側面およびスポット用平面力 導電性物質からなる基板 (以下 、基板 Πという)を挙げることができる。
[0018] 基板 Iおよび Πでは、生体分子固定化用スポットが、突出スポット部の頂上の平面に 設けられている。そのため、基板 Iおよび Πでは、前記突出スポット部頂上のスポット用 平面(生体分子固定ィ匕用スポット)は、前記突出スポット部周辺の基板表面より一段 高い位置にあり、両者間に高低差が生じる。
[0019] 一方、本発明において、後述するように生体分子の相互作用の試験に用いられ得 る共焦点型検出器は、試料上の焦点面からの反射光や蛍光を、光学系の結像面に 置かれたピンホールに通して検出する。図 2に、共焦点型検出器 40の光学系の概略 図を示す。図 2の実線 aは、入射光を表す。実線 bは、焦点面からの反射光または蛍 光を表し、破線は、非焦点面からの反射光または蛍光を表す。共焦点型検出器 40 では、マイクロアレイ 41上の焦点面力も反射した反射光、および、試料上の焦点面か ら放出された蛍光は、対物レンズ 42を通ってビームスプリツター 43へ入射し、ビーム スプリツター 43によって、検出レンズ 44へ垂直に入射するように光路が修正され、検 出レンズ 44を経て、結像面 45へ入射する。共焦点型検出器 40は、試料上での焦点 力 結像面でも焦点となるように設計されている。よって、試料上の焦点面からの光は 、結像面 45で焦点を結び、ピンホール 46を通過して、検出部 47で検出される。一方 、試料上の非焦点面からの光は、結像面 45で焦点を結ばないため、大部分がピンホ ール 46を通過せず、検出部 7において検出されない。このように、共焦点型検出器 によれば、焦点面からの光を、選択的に検出することができる。
[0020] 前記基板 Iでは、前記突出スポット部周辺の基板表面と、前記突出スポット部頂上 のスポット用平面 (生体分子固定ィ匕用スポット)との高低差が、生体分子とターゲット 生体分子との相互作用の検出において使用する共焦点型検出器の焦点深度以上 であれば、共焦点型検出器の焦点を、突出スポット部頂上のスポット用平面の高さに 合わせることにより、検出器において、突出部周辺の基板表面からの蛍光や反射光 よりも、突出スポット部頂上のスポット用平面力もの蛍光や反射光を、より高い強度で 検出することができる。従って、基板 Iの突出スポット部頂上のスポット用平面に生体 分子を固定ィ匕したマイクロアレイを含む本発明の装置によれば、スポット上の情報、 例えば、ターゲット生体分子との相互作用の有無を、高感度で検出することができる
[0021] 前記基板 IIは、隣り合う突出スポット部力 突出スポット部側面によって隣接しており 、かつ、少なくとも、前記突出スポット部側面およびスポット用平面が、導電性物質か らなることを特徴とする。基板 IIの一例を、図 3に示す。
[0022] 前記基板 Iおよび Πにおいて、前記突出スポット部頂上のスポット用平面と前記突出 スポット部側面とのなす角は、 90度以上であることが好ましい。好ましくは、 90〜135 度である。図 4 (a)は、そのような基板の一部の断面図である。ここで、「突出スポット 部頂上のスポット用平面と突出スポット部側面とのなす角」とは、図 4 (a)における角 度 Θをいう。角度 Θは、例えば、突出スポット部を、突出スポット部周辺の基板表面に 対して垂直に切断し、その断面力 求めることができる。
[0023] このように、基板 Iおよび Πにおいて、突出スポット部頂上のスポット用平面と突出ス ポット部側面とのなす角が 90度以上であることにより、即ち、突出スポット部底面の大 きさ力 突出スポット部頂上のスポット用平面の大きさ以上であることにより、グリツティ ングを自動で行って、生体分子固定ィ匕用スポットの位置および大きさを特定すること ができるという利点がある。以下に、この点について、詳述する。 [0024] 図 4 (a)に示すように、突出スポット部頂上のスポット用平面と突出スポット部側面と のなす角が 90度以上である場合、共焦点型の検出器を使用して反射光を検出する 際に、突出スポット部頂上のスポット用平面に対して垂直な方向から照射した光(図 4 (a)に矢印で表される光)に対する突出スポット部側面力 の反射光は、入射光と同 一方向には反射しない。一方、突出スポット部頂上のスポット用平面からの反射光は 、入射光と同一方向に反射する。このため、共焦点型検出器では、突出スポット部頂 上のスポット用平面からの反射光のみが検出され、側面からの反射光は検出されな い。こうして得られた反射像には、突出スポット部頂上のスポット用平面に相当する像 1S 反射像として得られ、突出スポット部側面に相当する部分は、反射光がほとんど 検出されないので黒色の縁取りとして表れる。この反射像では、黒い縁取りの内部が 生体分子スポットに相当するため、この反射像により、スポットの大きさおよび位置を 特定することができる。本発明では、このような原理により、自動グリツティングを行うこ とが可能である。
[0025] また、基板 Iにおいて、突出スポット部の高さが相互作用の検出に使用する共焦点 型検出器の焦点深度以上である場合は、共焦点型検出器の焦点を、突出スポット部 頂上のスポット用平面の高さに合わせれば、突出スポット部周辺の基板表面力 の反 射光は、焦点が合わないため、突出スポット部頂上のスポット用平面からの反射光よ りもはるかに弱い強度でし力、検出されない。本発明では、この高低差を利用して自 動グリツティングを行うことも可能である。但し、前記突出スポット部の高さが相互作用 の検出に使用する共焦点型検出器の焦点深度より小さい場合であっても、前述のよ うに、反射像において、突出スポット部側面に相当する部分が黒色の縁取りとして表 れれば、スポットの大きさおよび位置を特定することが可能である。
[0026] また、基板 Iでは、前記突出スポット部頂上のスポット用平面と突出スポット部側面と のなす角が 90度未満であっても、突出スポット部の高さが相互作用の検出に使用す る共焦点型検出器の焦点深度以上である場合は、スポット用平面と、突出スポット部 周辺の基板表面との高低差を利用して、反射像によって、スポット用平面の位置およ び大きさを特定し、 自動でグリツティングを行うことができる。前記突出スポット部頂上 のスポット用平面と突出スポット部側面とのなす角が 90度である場合、前記突出スポ ット部の形状は、例えば、円柱状または角柱状であることができる。
[0027] さらに、基板 Iは、前記突出スポット部頂上のスポット用平面と前記突出スポット部側 面とのなす角が、 90度以上であり、かつ、前記突出スポット周辺の基板表面力 略 V 字型底面を形成する基板であることもできる。このような基板では、共焦点型検出器 で検出されるスポット用平面からの反射光強度力 基板上のスポット用平面以外の部 分からの反射光強度より強くなるため、この反射光強度の違いにより、スポット用平面 の位置および大きさを特定することができる。図 5は、「略 V字型底面」を有する基板 の一部の拡大図である。本発明において、「略 V字型底面」とは、例えば、隣り合う突 出スポット部間の突出スポット部周辺の基板表面が平面ではなぐ図 5に示すように、 略 V字を形成して 、ることを 、う。
[0028] 更に、基板 Iは、少なくとも、前記突出スポット部周辺の基板表面、突出スポット部側 面、およびスポット用平面が、導電性物質からなる。製造の容易さや製造コストを考慮 すれば、基板 Iは、基板上の、前記突出スポット周辺以外の基板表面も、導電性物質 力もなるものであることが好ましい。また、基板 IIは、少なくとも突出スポット部側面およ び突出スポット部平面が、導電性物質からなる。
[0029] 本発明では、基板 Iにおいては、少なくとも、突出スポット部周辺の基板表面、突出 スポット部側面、およびスポット用平面が、基板 II〖こおいては、少なくとも、突出スポッ ト部側面およびスポット用平面が、導電性物質からなることにより、後述するように、基 板上に生体分子を固定ィ匕することによって作製されたマイクロアレイ(1)に対向する 電極を設け、電界を印加することによって、スポット用平面に固定化された生体分子 とターゲット生体分子との相互作用を促進することができる。例えば、ターゲット生体 分子の濃度が低い場合でも、良好な相互作用結果を得ることができ、また、濃度が同 一の場合には、より短時間で所定の相互作用結果を得ることができる。
[0030] また、第一の態様では、前記導電性物質が、光を反射する性質を有するものであ れば、反射光によって、生体分子固定化スポットの大きさおよび位置を特定し、自動 でグリツティングを行うことができる。この点については後述する。
[0031] 本発明において、前記突出スポット部の高さは、相互作用の検出において使用す る共焦点型検出器の焦点深度以上の高さになるように、適宜設定することができる。 通常の共焦点型検出器の焦点深度を考慮すると、前記突出スポット部の高さは、例 えば、 10〜500 mとすることができる。但し、前述のように、基板上の突出スポット 部頂上のスポット用平面とそれ以外の部分との形状の差による反射光強度の相違を 検出することによって自動グリツティングを行う場合は、前記突出スポット部の高さが 相互作用の検出に使用する共焦点型検出器の焦点深度より小さくても、自動グリツテ イングが可能である。この点については、後述する。
[0032] また、前記突出スポット部の高さを決定する際は、生体分子のスポット形成 (スタンピ ング)に使用するニードルの直径や、プローブ核酸等の生体分子溶液のスポット量も 考慮する必要がある。例えば、直径 100 mの円形の突出スポット部に対して直径 1 30 m程度の-一ドルを用いて生体分子をスポットする場合、突出スポット部の高さ 力 S 15 m以上であれば、表面張力のため、突出スポット部頂上のスポット用平面から 生体分子溶液が流れ出すことなぐ固定ィ匕用スポットのみに、生体分子が固定化され るため、好ましい。
[0033] 突出スポット部を有する基板において、突出スポット部頂上のスポット用平面の形状 は、スポットされた生体分子を保持し得る形状であれば、いずれの形状であることもで き、例えば、円形や正方形であることができる。前記スポット用平面の大きさは、スポッ トに用いる-一ドルやスポットする生体分子溶液の量に応じて適宜設定することがで き、例えば、 10〜500 /ζ πιとすることができる。ここで、「スポット用平面の大きさ」とは 、例えば、スポット用平面の形状が円形の場合は、その直径をいい、スポット用平面 の形状が正方形の場合は、その一辺の長さをいう。
突出スポット部底面の形状は、特に限定されないが、製造の容易さ等を考慮すれ ば、スポット用平面と同様の形状であることが好ましい。図 4 (b)は、突出スポット部を 有する基板上の突出スポット部の概略図である。ここで、「突出スポット部底面の形状 」とは、図 4 (b)の斜線部をいう。
[0034] 前記突出スポット部頂上のスポット用平面は、粗面化されていてもよい。例えば、前 記突出スポット部頂上のスポット用平面は、深さ方向と略水平方向に、相互作用の検 出において使用する共焦点型検出器の焦点深度以内の深さの凹凸を有していても よい。図 6に、粗面化されたスポット用平面の一例 (部分拡大図)を示す。粗面化され たスポット用平面の一例としては、図 6に示すような、数/ z m角の格子状の形状を設 けたスポット用平面を挙げることができる。このように、スポット用平面が粗面化されて いることにより、後述するように、電気泳動または誘電泳動によるターゲット生体分子 の濃縮効果を得る場合に、凹凸の角(エッジ)部分に強電界が生じ、相互作用が更 に促進されると 、う利点がある。
[0035] スポット用平面の粗面化方法は特に限定されず、例えば、本発明で使用される基 板がプラスチック成型基板の場合、フォトリソグラフィ一によりエッチングした母材を、 電铸法により反転写した微細加工金型を用いることにより、スポット用平面が粗面化さ れた基板を製作することができる。
[0036] 前記基板は、全体が導電性物質力もなるものであることができ、または、基板表面 に導電性物質被覆層を有するものであることができる。また、金属とチオール基との 結合を利用して、プローブ核酸の固定ィ匕を行う場合は、前記導電性物質は、チォー ル基と結合性を有する金属から選択する。
[0037] 導電性物質被覆層を有する基板としては、ガラス、石英、シリコン、プラスチック、具 体的には、ポリプロピレン等の基板の表面に、前記導電性物質を被覆したものを挙 げることができる。基板上の導電性物質被覆層の厚さは、特に限定されるものではな く、 f列えば、 0. 1〜: LO /z mとすること力 Sできる。
[0038] 前記基板が、前述のように、基板表面から突出し、かつ頂上にスポット用平面を有 する生体分子固定ィ匕用スポット (突出スポット部)を有するものである場合の基板の製 造方法について説明する。
前記基板が金属力 なるものである場合は、所望の形状の突出スポット部に対応し た凹部を有する铸型に、熔融した金属を注入して铸造することにより、本発明の基板 を得ることができる。また、プレス成形によって、金属製基板を得ることもできる。本発 明の基板は、金属カゝらなる基板の上に、導電性物質を被覆したものであることもでき る。
本発明の基板が、シリコンまたはプラスチック製の基板上に導電性物質の被覆を有 するものである場合は、例えば、所望の形状の突出スポット部に対応した凹部を有す る成形型を用いてシリコンまたはプラスチックを成形し、そのシリコンまたはプラスチッ ク製の基板上に、導電性物質を、蒸着、メツキ等によって被覆することにより、本発明 の基板を得ることができる。
また、突出スポット部を有する基板は、平板状の基板上に導電性被覆層を被覆した 後に、エッチング等により突出スポット部を形成することによって製造することもできる
また、突出スポット部を有さない基板は、公知の方法で製造することができ、また、 市販品として入手可能なものもある。
[0039] 次に、突出スポット部を有する本発明の基板が、ガラス基板上に金被覆層を有する ものである場合の、基板の製造方法の一例を説明する。但し、本発明はこの態様に 限定されるものではない。
まず、スライドガラスの表面に、真空蒸着装置により、クロムを蒸着し、次いで、その 上に金を蒸着する。この金蒸着スライドガラス上に、ポジ型レジストをスピンコーター で塗布し、例えば 60°Cでオーブンにより 1時間べ一キングする。
次いで、紫外線露光装置により、フォトマスクを通してスライドガラスに紫外線を照射 する。このとき、フォトマスクとしては、所望の形状の突出スポット部に対応したパター ンを有するものを使用する。紫外線照射後、現像液によって現像を行えば、金蒸着ス ライドガラス表面に、レジストパターンを形成することができる。
[0040] 次いで、レジストパターン周辺の金表面を、金エツチャントによってエッチングする。
金エッチング後の基板を超純水によって洗浄した後、金の下に蒸着されたクロムを除 去するために、エツチャントにより更にエッチングを行い、超純水によって洗浄する。 アセトン等によってレジストを溶解した後、超純水によって洗浄し、更に残っている レジストを完全に除去するために、ピラニア溶液 (硫酸:過酸化水素 = 1: 1)に 10分 間漬けて、超純水で洗浄する。これにより、フォトマスクに対応した金パターンを有す るガラス基板を得ることができる。
[0041] 次に、上記基板を、フッ化水素酸に浸漬し、露出しているガラス表面をエッチングす る。このときに使用するフッ化水素酸の濃度および浸漬時間は、所望の突出スポット 部の高さに応じて適宜設定することができる。
[0042] 次に、前述と同様に、金およびクロム等のエッチングを行った後、ピラニア溶液およ び超純水によって基板を洗浄し、所望の形状の突出スポット部を有するガラス基板を 得ることができる。
このガラス基板に、前述と同様に、クロムを蒸着し、次いで、金を蒸着することによつ て、突出部を有し、かつ、金被覆を有する基板を得ることができる。
[0043] 前述の基板全体の大きさ、基板上の突出スポット部の数および集積度は特に限定 されず、適宜設定することができる。例えば、本発明では、 10〜20, OOOmm2の大き さの基板上に、突出スポット部を、 10〜50, 000個程度有する基板を用いることがで きる。
[0044] 本発明では、基板上に固定化された生体高分子が核酸であり、かつ、前記導電性 物質表面 (6)を構成する導電性物質が金属である場合、プローブ核酸を基板上に 固定化するために、基板上の導電性物質表面 (6)を構成する金属と反応性を有する 基を一端に有する核酸を含む溶液を、スポッティング溶液として用いることができる。 そのような基としては、チオール基を挙げることができる。チオール基を有する核酸鎖 の金属表面への固定化は、公知の方法によって行うことができ、例えば、 J.Am.Chem .Soc.1998,120,9787- 9792を参照することができる。
[0045] 金属表面への DNAの固定ィ匕方法としては、金属(表面酸化被膜を活性化させ水 酸基を提示させたもの)に対して以下の処理を行う方法を用いることもできる。
(1)アミノシラン処理した基板表面に、 UV照射することにより、 DNAを固定ィ匕する。
(2)アミノシラン、 NHS (N-ヒドロキシスクシンイミド) -ピオチン、アビジンによって j噴次 処理した基板表面に、ピオチンィ匕 DNAを固定ィ匕する。
(3)アミノシラン、マレイミド-ピオチン、アビジンによって順次処理した基板表面に、ビ ォチンィ匕 DNAを固定ィ匕する。
(4)アミノシラン、次いでダルタルアルデヒドによって処理した基板表面に、アミノ化 D NAを固定化する。
(5)アミノシラン、次いでカルポジイミドによって処理した基板表面に、アミノ化 DNAを 固定化する。
(6)アミノシラン処理した基板表面に、カルボキシ化 DNAを固定ィ匕する。
(7)アミノシラン処理した基板表面に、リン酸化 DNAを固定化する。 (8)アミノシラン、次いで NHS—マレイミドィ匕合物によって処理した基板表面に、チォ ール化 DNAを固定化する。
(9)エポキシシラン処理した基板表面に、アミノ化 DNAを固定ィ匕する。
(10)チオールシラン処理した基板表面に、チオール化 DNAを固定ィ匕する。
[0046] また、 DNA以外の生体分子についても、上記のような、 UV照射による固定ィ匕や、 チオール基、アミノ基、カルボキシル基、リン酸基などの官能基を介しての固定化が 可能である。
[0047] 前記導電性物質表面(6)への生体分子溶液のスポッティングは、常法により行うこ とができ、例えば、先端に生体分子溶液を保持した-一ドルを、基板表面の生体分 子を固定化させたい位置に接触させることにより行うことができる。ここで、前記基板 が突出スポット部を有する場合は、突出スポット部頂上のスポット用平面に接触させる ことにより、生体分子のスポッティングを行うことができる。ここで使用されるスポッティ ング用装置としては、例えば、特開 2001— 46062号公報および特開 2003— 5723 6号公報に記載の装置を挙げることができる。スポット量は、適宜調整することができ 、前記基板が突出スポット部を有する場合は、スポット用平面力 生体分子溶液が流 れ出さないように、スポット用平面の大きさや、突出スポット部の高さに応じて、適宜設 定することができる。
[0048] 本発明の装置には、前記マイクロアレイの生体分子が固定ィ匕された面に対向する ように、透明電極(2) (対向電極)が備えられている。本発明では、マイクロアレイと対 向電極との間に電界を印加することにより、生体分子が固定化された平面と、対向電 極の前記平面と対向する面との間で電界密度が高まり、溶液中のターゲット生体分 子が、電気泳動(直流電源を使用した場合)または誘電泳動(交流電源を使用した場 合)によって、生体分子が固定化されたスポット近傍に濃縮される。これにより、基板 上に固定化された生体分子と、ターゲット生体分子との相互作用を促進することがで きる。この効果は、前述の突出スポット部を有する基板を使用した場合に顕著である 。特に、生体分子が固定化されたスポット平面が粗面化されている場合、例えば、ス ポット平面に、共焦点型検出器の焦点深度以内で深さ方向と略水平方向に凹凸を 有する場合は、凹凸の角(エッジ)部分に強電界が生じ、相互作用が更に促進される という利点がある。
[0049] 前記対向電極は、透明であり、かつ、前記生体分子マイクロアレイと対向電極との 間に電界を印加することができるものであれば、特に制限はない。このように透明電 極を用いることにより、キヤビティ内に溶液を送液または保持しながら、透明電極の上 力も共焦点型検出器で反射光および Zまたは蛍光の検出を行うことができ、生体分 子の相互作用をリアルタイムで検出することができる。
本発明において、対向電極は、透明な導電性物質、例えば、導電性酸化物、導電 性プラスチック等力もなる基板であることができ、また、マイクロアレイと対向する面に 、導電性物質被覆層を有する基板カゝらなるものであることもできる。前記対向電極は 、好ましくは、 ITO (酸化インジウムスズ)、酸化スズなどの導電性酸ィ匕物力もなるもの であることができる。
[0050] また、本発明の装置において、マイクロアレイ(1)と対向電極(2)との間に電界を印 加するための電源は、直流電源でも、交流電源でもよい。より好ましくは、交流電源が 用いられる。直流電源を使用する場合は、高電圧をかけると、ターゲット生体分子溶 液が高電圧により電気分解し、気泡等が発生しやすいという懸念があるため、低電圧 を使用することが好ましい。ターゲット生体分子として DNAを使用する場合には、 D NAがマイナスに荷電されているため、直流電源を使用する場合は、突出スポット部 側力 プラスになるように電界を印加することが好ましい。交流電源を使用する場合 は、その周波数は、例えば 10Ηζ〜1ΜΗζとすることができる。
[0051] 本発明の装置は、前記マイクロアレイ(1)と対向電極(2)との間に、非導電性スぺ ーサー(3)を有し、前記マイクロアレイ(1)、前記スぺーサー(3)、および前記対向電 極(2)によってキヤビティ (4)が形成されている。前記マイクロアレイ(1)は、前記キヤ ビティ (4)に通じる 2つの貫通孔(5)を有する。一方の貫通孔はキヤビティへ溶液を注 入するための孔であり、他方の貫通孔はキヤビティカ 溶液を排出するための孔であ る。本発明の装置は、以上の構成を有することにより、キヤビティ (4)内への送液が可 能になる。これにより、生体分子の相互作用を、ターゲット生体分子を含む溶液を送 液しながら透明電極(2)を通してリアルタイムで試験することが可能になる。また、溶 液中のターゲット生体分子の濃度を変えながら送液しながら、または、ターゲット生体 分子を含まな!/、溶液を送液して洗浄しながら、キヤビティ内の生体分子の相互作用 の状態を観察することもできる。
[0052] 前記非導電性スぺーサ一は、例えば、ポリエチレンテレフタレート(PET)、ポリェチ レンナフタレート(PEN)、シリコンフィルムからなるシートを、キヤビティ(4)に相当す る空孔が形成されるように、所望の形状に型抜きすることによって作製することができ る。但し、非伝導性スぺーサ一の材質は上記のものに限定されず、加工の容易性等 を考慮して適宜選択することができる。
[0053] 本発明の装置では、マイクロアレイ(1)と対向電極(2)との距離は、非導電性スぺ ーサー(3)の厚さによって制御することができる。電界印加によって生体分子の相互 作用を促進するためには、前記マイクロアレイ(1)の生体分子が固定化された面と前 記対向電極 (2)のマイクロアレイ(1)の生体分子が固定化された面と対向する表面と の距離は、 10〜300 mとすること力好ましい。非導電性スぺーサー(3)の厚さは、 前記マイクロアレイ(1)の生体分子が固定ィ匕された面と前記対向電極(2)のマイクロ アレイ(1)の生体分子が固定化された面と対向する表面との距離を考慮して適宜設 定することができ、例えば、 10〜300 mとすることができる。
[0054] 前記非導電性スぺーサ一は、その両面に接着剤層を有することができる。非導電 性スぺーサ一は、この接着剤層によって、マイクロアレイ(1)と対向電極(2)と張り合 わせることができる。このように非導電性スぺーサー(3)の一方の面にマイクロアレイ( 1)を張り合わせ、他方の面に対向電極(2)を張り合わせることによって、前述のスぺ ーサーシールに設けた空孔部分に、キヤビティ (4)が形成される。これにより、マイク ロアレイ(1)、非導電性スぺーサー(3)、および対向電極(2)とによって形成されたキ ャビティ (4)を有する、本発明の装置を構成することができる。
[0055] 前記接着剤層の接着剤は、光硬化性榭脂を含むことが好ま ヽ。光硬化性榭脂は 、光を照射することによって硬化して接着力を失うため、前記接着剤が光硬化性榭脂 を含むことにより、光照射すれば、非導電性スぺーサー(3)からマイクロアレイ(1)と 対向電極 (2)とをはずすことができる。光硬化性榭脂としては、例えば紫外線硬化型 榭脂などの公知の光硬化性榭脂を用いることができる。
[0056] 本発明の装置は、マイクロアレイ(1)の側から、前記マイクロアレイ(1)上の導電性 物質表面 (6)および対向電極 (2)と外部電極とを接続するための手段を有する。 本発明の装置は、前述のように、マイクロアレイ(1)にキヤビティ (4)に通じる 2つの 貫通孔(5)を有し、それら貫通孔を通して送液することができる。更に、上記のように マイクロアレイ側からマイクロアレイ(1)上の導電性物質表面(6)と対向電極 (2)との 間に電界を印加できる構成を有することにより、送液 ·電界の印加をいずれもマイクロ アレイ( 1)側から行うことができるため、対向電極 (2)側力もの生体分子の相互作用 の観察を妨げるものがなぐスムーズに観察を行うことができる。
[0057] そのような手段を有する装置の具体例としては、図 1に示すように、前記マイクロア レイ(1)上の導電性物質表面 (6)と少なくとも一部が接触し、かつ、前記対向電極 (2 )とは接触しな ヽ導電性部材 (7)を更に有し、前記基板上の導電性物質表面 (6)は、 前記導電性部材 (7)を介して外部電源と接続される構成を有する装置を挙げること ができる。前記導電性部材 (7)を構成する導電性物質としては、金、ニッケル、白金、 銀、チタン、アルミニウム、ステンレス、銅、クロム、導電性酸ィ匕物(例えば、 In O ZS
2 5 ηθ )および導電性プラスチック (例えば、ポリアセチレン)を挙げることができる。
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[0058] 上記の構成を有する装置において、マイクロアレイ(1)と対向電極(2)との間に電 界を印加するためには、図 1に示すように、前記マイクロアレイ(1)に、前記導電性部 材(7)に通じる貫通孔(8)および前記対向電極 (2)に通じる貫通孔(9)を設けて、こ れら貫通孔 (8)、 (9)を通して、マイクロアレイ(1)上の導電性物質表面 (6)と対向電 極 (2)と外部電源とを接続すればよ!ヽ。
[0059] 前述の貫通孔は、例えばマイクロアレイ用基板を金型成形する場合には、成形時 に設けることができる。また、貫通孔は型抜き等により設けることもできる。
[0060] 本発明の装置は、ヒーター等の温度制御手段を更に有することが好ましい。温度制 御手段によって、生体分子周辺の環境を、相互作用に適した温度に制御することに より、相互作用を更に促進することができる。特に、温度制御手段は、マイクロアレイ 側に設けることが好ましい。これにより、対向電極 (2)側からの観察を妨げることなぐ 温度制御を行うことができる。
[0061] [生体分子の相互作用試験方法]
本発明の生体分子の相互作用試験方法の一態様 (以下、「試験方法 I」ともいう)は 、基板上に生体分子が固定化された生体分子マイクロアレイ(1)と前記マイクロアレ ィの生体分子が固定化された面に対向するように設けられた透明電極 (2) (対向電 極)を有し、前記マイクロアレイ(1)と対向電極(2)との間に、非導電性スぺーサー(3 )を有し、前記マイクロアレイ(1)、前記スぺーサー(3)、および前記対向電極(2)に よってキヤビティ (4)が形成されて!、る装置を用いる、生体分子の相互作用試験方法 であって、
前記マイクロアレイ(1)は、生体分子が固定化された面の少なくとも一部に導電性 物質表面 (6)を有し、
前記マイクロアレイ(1)と対向電極 (2)との間に電界を印加すること、および、 前記キヤビティ (4)へ、ターゲット生体分子を含む溶液および Zまたはターゲット生 体分子を含まな ヽ溶液を送液しながら、前記マイクロアレイ上の生体分子と前記ター ゲット生体分子との相互作用を前記対向電極を通して光学的に検出すること、 を含む、前記方法である。
本発明の生体分子の相互作用試験方法の別の態様 (以下、「試験方法 II」ともいう) は、基板上に生体分子が固定化された生体分子マイクロアレイ(1)と前記マイクロア レイの生体分子が固定化された面に対向するように設けられた透明電極 (2) (対向電 極)を有し、前記マイクロアレイ(1)と対向電極(2)との間に、非導電性スぺーサー(3 )を有し、前記マイクロアレイ(1)、前記スぺーサー(3)、および前記対向電極(2)に よってキヤビティ (4)が形成されて!、る装置を用いる、生体分子の相互作用試験方法 であって、
前記マイクロアレイ(1)は、生体分子が固定化された面の少なくとも一部に導電性 物質表面 (6)を有し、
前記マイクロアレイ(1)と対向電極 (2)との間に電界を印加すること、および 前記キヤビティ (4)に、ターゲット生体分子を含む溶液を充填し、所定時間保持した 後、前記溶液を排出することを含み、
前記溶液の保持中または排出後に、前記マイクロアレイ上の生体分子と前記ター ゲット生体分子との相互作用を前記対向電極を通して光学的に検出する、前記方法 である。 [0063] 試験方法 I、試験方法 IIの 、ずれにお 、ても、前述の本発明の生体分子の相互作 用試験装置を用いることができる。
[0064] 試験方法 Iは、前記マイクロアレイ(1)と対向電極(2)との間に電界を印加すること、 および、前記キヤビティ (4)へ、ターゲット生体分子を含む溶液および Zまたはターゲ ット生体分子を含まな!/ヽ溶液を送液しながら、前記マイクロアレイ上の生体分子と前 記ターゲット生体分子との相互作用を前記対向電極を通して光学的に検出すること を含む。このように、試験方法 Iによれば、マイクロアレイ(1)と対向電極(2)との間に 電界を印加して生体分子の相互作用を促進しつつ、溶液を送液しながら生体分子 の相互作用を、対向電極(2)を通してリアルタイムで観察することができる。また、電 界を印加しながら、最初にターゲット生体分子を含む溶液を送液してマイクロアレイ 上の生体分子とターゲット生体分子とを相互作用させ、次 、でターゲット生体分子を 含まな 、溶液を送液することによりキヤビティ内を洗浄しながら、その間のキヤビティ 内の生体分子の相互作用の状態を、対向電極を通して観察することもできる。更に は、キヤビティ内に送液する溶液のターゲット生体分子の濃度を順次変更しながら、 生体分子の相互作用の観察を行うこともできる。
[0065] 一方、試験方法 IIは、前記マイクロアレイ(1)と対向電極(2)との間に電界を印加す ること、および、前記キヤビティ (4)に、ターゲット生体分子を含む溶液を充填し、所定 時間保持した後、前記溶液を排出することを含み、前記溶液の保持中または排出後 に、前記マイクロアレイ上の生体分子と前記ターゲット生体分子との相互作用を前記 対向電極を通して光学的に検出する。このように、試験方法 IIによれば、キヤビティ (4 )内にターゲット生体分子を含む溶液を充填して所定時間保持しながら、マイクロアレ ィ(1)と対向電極 (2)との間に電界を印カロして生体分子の相互作用を促進することが でき、その相互作用を、ターゲット生体分子の保持中または排出後に、対向電極 (2) を通して観察することができる。また、試験方法 IIでは、ターゲット生体分子を含む溶 液を排出した後、または排出しながら、前記キヤビティ内にターゲット生体分子を含む 溶液および Zまたはターゲット生体分子を含まな 、溶液を新たに充填して、キヤビテ ィ内の溶液を交換することもできる。
[0066] 試験方法 Iおよび IIにおいて、マイクロアレイ(1)と対向電極(2)との間に印加される 電界は、マイクロアレイ(1)と対向電極 (2)との間の距離を考慮しつつ、電気泳動また は誘電泳動によるターゲット生体分子の濃縮の効果が得られる範囲で適宜設定する ことができ、例えば、 0. 01〜: LOMVZmとすることができる。また、後述するように、タ 一ゲット生体分子溶液に用いるバッファーの種類に応じて、高い相互作用促進効果 が得られるように、印加電界を適宜設定することが好まし ヽ。
[0067] 試験方法 Iおよび IIでは、マイクロアレイ(1)の側から、前記マイクロアレイ(1)上の導 電性物質表面(6)および対向電極(2)と外部電源とを接続し、前記マイクロアレイ(1 )と対向電極(2)との間に電界を印加することが好ましい。前記導電性部材(7)に通 じる貫通孔(8)および前記対向電極(2)に通じる貫通孔(9)を有する、本発明の生 体分子相互作用試験装置を使用する場合、前記導電性部材 (7)に通じる貫通孔 (8 )および対向電極 (2)に通じる貫通孔(9)を通して、前記導電性部材(7)および対向 電極 (2)と外部電源の端子とを接続することにより、マイクロアレイ(1)の側から、前記 マイクロアレイ(1)上の導電性物質表面 (6)および対向電極 (2)と外部電源とを接続 し、前記マイクロアレイ(1)と対向電極 (2)との間に電界を印加することができる。 また、試験方法 Iおよび IIにおいて、本発明の生体分子相互作用試験装置を使用 する場合、マイクロアレイ(1)が有する前記キヤビティに通じる貫通孔(5)を通して、 前記キヤビティへ溶液を注入し、および Zまたは、前記キヤビティカゝら溶液を排出す ることがでさる。
このように、送液および外部電源との接続を、いずれもマイクロアレイ(1)側力も行う と、対向電極 (2)側には、対向電極 (2)側力もの生体分子の相互作用の観察を妨げ るものがないため、スムーズに観察を行うことができる。
[0068] 前述のターゲット生体分子を含む溶液 (以下、「ターゲット生体分子溶液」とも!、う) はバッファーを含むことができる。ターゲット生体分子溶液に用いるバッファ一として、 好ましいものとしては、約 6〜8付近の解離定数 (pKa)を有するものが挙げられる。プロ ーブ核酸とターゲット核酸とのノ、イブリダィゼーシヨンを効率よく起こさせるためには、 pHが中性域であることが好ま 、ため、中性域で緩衝能を有するバッファーを使用 することが好ましい。具体的には、以下のバッファー物質を含むバッファーが挙げら れる;フエ-ルァラニン、カルノシン、アルギニン、ヒスチジン、 MES (2-(N-モルホリン) エタンスルホン酸)、マレイン酸、 3,3-ジメチルダルタル酸、炭酸、 4-ヒドロキシメチル イミダゾール、クェン酸、ジメチルアミノエチルァミン、プロリン酸、グリセロール- 2-リン 酸、 PIPES (ピペラジン- Ν,Ν'-ビス (2-エタンスルホン酸))、エチレンジァミン、イミダゾ ール、 MOPS (3- (N-モルホリン)プロパンスルホン酸)、リン酸、 TES (N-トリス (ヒドロキシ メチル)メチル -2-アミノエタンスルホン酸)、 4-メチルイミダゾール、 HEPES (N- 2-ヒドロ キシェチルピペラジン- N'-2-エタンスルホン酸)、 N-ェチルモルホリン、トリエタノール ァミン、トリス (トリス (ヒドロキシメチル)ァミノメタン)。
[0069] ターゲット生体分子溶液に用いるバッファーの伝導率が過度に高いと、バッファー 中のイオンの移動により、ターゲット生体分子の濃縮効果が低減するおそれがある。 そこで、本発明では、伝導率が 10〜500 Ω— のバッファーを用いることが好ま しぐ伝導率が 10〜: L00 Ω_1Ζπιのバッファーを用いることが更に好ましい。バッフ ァ一の伝導率が上記範囲内であれば、生体分子の相互作用を良好に促進すること ができる。また、ノ ッファーの濃度は、上記範囲内の伝導度が得られるように、適宜調 整することが好ましい。
[0070] 以上の観点から、好まし 、バッファーの具体例としては、バッファー物質として、フエ 二ルァラニン、ヒスチジン、カルノシン、アルギニンを含むバッファーを挙げることがで きる。プローブ核酸とターゲット核酸とのハイブリダィゼーシヨンを、フエ二ルァラニン を含有するターゲット生体分子溶液を用いて行うと、特に高 、ハイブリダィゼーシヨン シグナル強度を得ることができ、し力も、電界印加により、電界を印加しない場合と比 ベて、例えば 2倍以上のハイブリダィゼーシヨンシグナル強度を得ることができる。こ のように、フ 二ルァラニンは、電界を印加することにより生体分子の相互作用を促進 する本発明にお 、て、特に効果を発揮するバッファー物質である。
[0071] なお、マイクロアレイと電極との間に印加する電界は、高い生体分子相互作用促進 効果が得られるように、使用するバッファーに応じて適宜設定することが好ましい。例 えば、フエ-ルァラニンをバッファ一として用いる場合には、 0. 5〜1. 0MV/m、ヒ スチジンの場合は、 0. 5〜1. OMV/m,カルノシンの場合は、 0. 25〜0. 75MV Zm、アルギニンの場合は、 0. 1〜0. 3MVZm、の範囲の電界を印加することが好 ましい。 [0072] 試験方法 Iおよび IIでは、マイクロアレイ(1)上の生体分子とターゲット生体分子との 相互作用を、対向電極(2)を通して光学的に検出する。光学的な検出方法としては 、蛍光検出器、共焦点検出器、共焦点レーザ蛍光顕微鏡、蛍光顕微鏡を用いる方 法を挙げることができる。中でも、共焦点検出器によって蛍光を検出することにより生 体分子間の相互作用を検出するために、ターゲット生体分子は、蛍光標識されてい ることが好ましい。ターゲット生体分子の蛍光標識は、公知の方法で行うことができる 。また、本発明では、マイクロアレイ(1)上に固定化される生体分子が、蛍光標識され ていてもよい。マイクロアレイに固定される生体分子の蛍光標識も、公知の方法で行 うことができる。
[0073] 更に、本発明の生体分子の相互作用試験方法では、前述の、基板上に突出スポッ ト部を有する本発明の生体分子相互作用試験装置を使用することもできる。この場合 、前記マイクロアレイ上の生体分子と前記ターゲット生体分子との相互作用を前記対 向電極を通して共焦点型検出器によって検出することができる。共焦点型検出器に よる反射光および蛍光の検出原理については、前述の通りである。本発明の相互作 用試験において、基板上に突出スポット部を有する本発明の生体分子相互作用試 験装置を使用する場合、共焦点型検出器を用いて、前述の原理で反射像によってス ポットの大きさおよび位置を特定することで、自動グリツティングを行うことができる。即 ち、マイクロアレイ表面の突出スポット部とそれ以外の部分の高さおよび Zまたは形 状の差による反射光強度の相違から、マイクロアレイ上の突出スポット部を、反射像と して検出することができる。更に、共焦点型検出器によって、マイクロアレイからの蛍 光を検出するときに、マイクロアレイ上の突出スポット部頂上のスポット平面の高さに、 共焦点型検出器の焦点を合わせれば、突出スポット部からの蛍光、即ち、スポット平 面上の蛍光標識された生体分子 (スポットに固定化された生体分子および Zまたは ターゲット生体分子)力 の蛍光を選択的に検出して、スポットに対応する蛍光像を 得ることができる。本発明では、こうして得られた反射像と蛍光像を重ね合わせること によって、マイクロアレイ上の相互作用が起こって 、るスポットを特定することができ、 その蛍光強度により、相互作用の程度を測定することができる。なお、本発明では、 二本鎖核酸を特異的に染色する蛍光インターカレーターを用いて、インターカレータ 一からの蛍光を測定することによって相互作用を検出することもできる。
[0074] 特に、本発明では、反射光と蛍光とを同時に検出することができる共焦点型蛍光ス キヤナーを用いることが好ましい。そのような装置の一例を、図 7に示す。図 7に示す 装置では、励起光源 (レーザー) 21から発生した励起光はミラー 22、ダイクロックミラ 一ミラー 23、ミラー 26、対物レンズ 24、を介して試料 (マイクロアレイ) 25に照射され る。反射光は対物レンズ 24、ミラー 26、ダイクロックミラー 23 (反射光の一部を透過( 数パーセント以下))、ダイクロックミラー 27、減光フィルター 28、検出レンズ 29、ピン ホール 30を介して反射光検出部 31に導かれる。蛍光は 2つのダイクロックミラー 23、 27を透過し、ミラー 32にて反射しカットフィルター 33、検出レンズ 34、ピンホール 35 を介して蛍光検出部 36に導かれる。このような装置によれば、マイクロアレイ表面の 突出スポット部とそれ以外の部分の高さおよび Zまたは形状の差による反射光強度 の相違から、マイクロアレイ上の突出スポット部を反射像として検出し、同時に、その スポットからの蛍光を検出することによって、生体分子の相互作用を検出することがで きる。
[0075] [生体分子の融解温度測定方法]
本発明は、更に、前述の本発明の生体分子の相互作用試験方法を用いることを特 徴とする、生体分子の融解温度測定方法に関する。
生体分子、例えば核酸は、加熱していくとある温度で立体構造に大きな変化が起こ り、あた力も相転移に相当するような変化が観察される。このときの温度を融解温度と いう。本発明の生体分子の融解温度測定方法では、例えば、生体分子が核酸である 場合、キヤビティ内にターゲット核酸と二本鎖検出試薬を含む溶液を保持してマイク ロアレイ上のプローブ核酸とターゲット核酸とを相互作用させ、キヤビティ内の温度を 上昇させていき、対向電極を通して二本鎖検出試薬力もの蛍光を検出することによつ て、キヤビティ内のターゲット核酸のプローブ核酸力 の遊離状態をリアルタイムで観 察することができ、これにより、核酸の融解温度を測定することができる。二本鎖検出 試薬としては、ェチジゥムブロマイドを用いることができ、市販品としては、例えばタカ ラバイオ株式会社製 SYBR (商標) Green Iを用いることができる。また、二本鎖核酸 検出試薬を用いずに、蛍光標識したターゲット DNA分子を使用することにより、融解 温度を測定することもできる。
[0076] [核酸の配列検知方法]
本発明は、更に、前述の本発明の生体分子の相互作用試験方法を用いることを特 徴とする、核酸の配列検知方法にも関する。
ターゲット核酸と完全相補性のプローブ核酸を基板上に固定ィ匕して、ターゲット核 酸とプローブ核酸とをハイブリダィズさせた後に温度を上昇させた場合に観察される 核酸の融解挙動は、ターゲット核酸と完全相補のプローブ核酸を用いた場合と、一 部の塩基配列が異なるプローブ核酸とを用いた場合とで異なる。そこで、本発明では 、この違いを利用して、本発明の生体分子の相互作用試験方法を用いて、ターゲット 核酸とプローブ核酸とをノヽイブリダィズさせた後に、キヤビティ内の温度を上昇させて いき、対向電極を通して、例えば蛍光を観察することによって、そのキヤビティ内での ターゲット核酸のプローブ核酸からの融解の挙動を観察し、それに基づ 、てターゲッ ト核酸の配列を検知することができる。このような本発明の核酸の配列検知方法によ れば、完全相補配列からの塩基配列の違い、例えば、一塩基多型 (SNP)を検出する ことができる。
[0077] [第二の態様]
次に、本発明の第二の態様について更に詳細に説明する。
本発明の第二の態様は、
基板表面に生体分子が固定化されたスポットを 1つ以上有する生体分子マイクロア レイと、前記基板表面と対向する電極 (対向電極)との間にターゲット生体分子を含 む溶液を配置し、前記基板表面に固定化された生体分子とターゲット生体分子とを 相互作用させる方法であって、
前記マイクロアレイは、生体分子が固定化された面の少なくとも一部に導電性物質 表面を有し、
前記導電性物質表面と対向電極との間に、周波数 0. 01〜: LOHzで電圧を印加し て、前記相互作用を促進することを特徴とする、前記方法
に関する。
[0078] 前記生体分子および前記相互作用については、先に第一の態様について説明し た通りである。
本発明の第二の態様において使用される生体分子マイクロアレイは、基板上に生 体分子を固定ィ匕することによって作製されるものであり、生体分子が固定化された面 の少なくとも一部に導電性物質表面を有する。前記基板は、基板全体が導電性物質 カゝらなる基板であるか、または、基板表面に導電性物質被覆層を有する基板であるこ とがでさる。
[0079] 前記導電性物質は、例えば、金属(例えば、金、ニッケル、白金、銀、チタン、アルミ ユウム、ステンレス、銅、クロム)、導電性酸化物(例えば、 In O /SnO )、または導
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電性プラスチック (例えば、ポリアセチレン)であることができる。なお、前記導電性物 質をチオールと結合性を有する金属力 選択することにより、金属とチオールとの結 合を利用して、プローブ核酸の固定ィ匕を行うことができる、また、後述するように、前 記基板が突出スポット部を有するものであり、反射像によって自動グリツティングを行 う場合には、前記導電性物質は、光を反射する物質から選択することができる。
[0080] 前記基板が、導電性物質被覆層を有する基板である場合、そのような基板は、ガラ ス、石英、シリコン、プラスチック、具体的には、ポリプロピレン等の基板の表面に、前 記導電性物質を被覆したものを挙げることができる。基板上の導電性物質被覆層の 厚さは、特に限定されるものではなぐ例えば、 0. 1〜: LO /z mとすることができる。こ のような基板は、公知の方法で作製することができ、また、市販品として入手可能なも のもある。
[0081] 更に、第二の態様において使用される基板は、平らな表面を有する基板であること ができる。また、第二の態様において使用される基板は、基板表面から突出し、かつ 頂上にスポット用平面を有する生体分子固定ィ匕用スポット(突出スポット部)を有し、 少なくとも前記突出スポット部は導電性物質表面を有し、前記スポット用平面の導電 性物質表面に生体分子が固定化されており、かつ前記基板は、前記基板上の突出 スポット部以外の表面に、前記突出スポット部の導電性物質表面と通電可能な端子 を有するものであることもできる。前記基板上の突出スポット部以外の表面は、導電 性物質被覆層を有することができ、前記端子は、前記導電性物質被覆層に含まれる 力 または、前記導電性物質被覆層と通電可能であることができる。更に、この導電 性物質被覆層と突出スポット部の導電性物質表面とは、一体の導電性物質被覆層と して設けられていることが好ましい。そのような基板としては、前述の基板 I、 IIを挙げる ことができる。その詳細は、先に説明した通りである。また、第二の態様における基板 上への生体分子の固定ィ匕についても、先に第一の態様について説明した通りである
[0082] 第二の態様の生体分子を相互作用させる方法では、前記生体分子が固定化され た基板表面に対向するように、電極 (対向電極)を配置する。前記方法では、基板の 導電性物質表面と対向電極との間に電圧を印加して電界を生じさせることにより、基 板と対向電極との間に配置された溶液に含まれるターゲット生体分子が、基板側に 選択的に移動して基板表面近傍に濃縮される。このようにターゲット生体分子を基板 表面近傍に濃縮することにより、基板上に固定化された生体分子と、ターゲット生体 分子との相互作用を促進することができる。
[0083] 前記対向電極は、前記生体分子マイクロアレイと対向電極との間に電界を生じさせ ることができるものであれば、特に制限はない。前記対向電極は、電極全体が、金、 ニッケル、白金、銀、チタン、アルミニウム、ステンレス、銅、クロム、導電性酸化物、ま たは導電性プラスチック力もなるものであることができる。または、前記対向電極は、 前記基板の導電性物質表面と対向する表面に、金、ニッケル、白金、銀、チタン、ァ ルミ-ゥム、ステンレス、銅、クロム、導電性酸化物、または導電性プラスチック力もな る導電性物質被覆層を有するものであることができる。本発明では、特に、前記対向 電極が、例えば、 ITO (酸化インジウムスズ)、酸化スズなどの透明電極であれば、生 体分子の相互作用中に、同時に、透明電極の上から、蛍光検出器等を用いて、生体 分子の相互作用をリアルタイムで検出することができる。また、前記生体分子マイクロ アレイを構成する基板が、光透過性のガラスやプラスチック上に、透明の導電性被覆 層を設けたものである場合や、基板全体が透明の導電性物質カゝらなる場合も、同様 に、相互作用をリアルタイムで検出することができる。
[0084] 前記方法では、前記導電性物質表面と対向電極との間に、周波数 0. 01〜: LOHz で電圧を印加する。このように電圧を印加して導電性物質表面と対向電極との間に 電界を発生させることによって、溶液中のターゲット生体分子が基板側に選択的に移 動して濃縮され、生体分子間の反応効率が高まり、生体分子の相互作用を促進する ことができる。
[0085] 前記方法において、基板の導電性物質表面と対向電極との間に印加する電圧の 周波数は、 0. 01〜: LOHzである。周波数が 0. 01Hz未満であると、一定時間内のタ 一ゲット生体分子を基板表面近傍に濃縮する回数が少なくなり、相互作用を促進さ せる効果が低下する。また、周波数が 10Hzを超えると、ターゲット生体分子を含む溶 液が電気分解して気泡が発生するおそれがある。前記周波数は、好ましくは 0. 01〜 1Hzである。
[0086] 基板の導電性物質表面と対向電極との間で印加する電圧は、 0. 1〜4Vであること が好ましい。電圧が上記範囲内であれば、電気分解や発熱の問題なぐ生体分子の 相互作用を促進することができる。前記電圧は、好ましくは 1〜3Vである。
[0087] 前記ターゲット生体分子を含む溶液は、カチオンを含むことが好ま 、。これは、以 下の理由による。
高周波交流電圧の印加による誘電泳動によって、溶液中の生体分子を一方向に 選択的に移動させようとする場合、溶液にカチオンが含まれていると、電圧印加によ りカチオンが優先的に移動して生体分子が移動しな 、。
それに対して、本発明者らは、基板の導電性物質表面と対向電極との間に周波数 0. 01〜: LOHzで電圧を印加して電界を生じさせることにより、溶液がカチオンを含む 場合でも、ターゲット生体分子を基板側に選択的に移動させて濃縮し、相互作用の 反応効率を高めることができることを見出した。このように、溶液がカチオンを含む場 合には、いわゆる電気浸透流 (Electroosmotic Flow: EOF)により、溶液中でターゲット 生体分子が移動すると考えられる。即ち、溶液がカチオンを含む場合には、電圧印 加により溶液中のカチオンが移動し、そのカチオンの移動により生じた溶液の流れに 伴いターゲット生体分子が移動することにより、ターゲット生体分子を基板側に選択 的に移動させることができると考えられる。
[0088] 更に、例えば、生体分子として核酸を用いる場合、生体分子間の相互作用、即ち、 ターゲット核酸とプローブ核酸とのハイブリダィゼーシヨンの効率を高めるためには、 ハイブリダィゼーシヨン溶液にカチオンが含まれていることが好ましい。これは、カチ オンの正の電荷により、核酸のリン酸基の負の電荷が打ち消され、プローブ核酸とタ 一ゲット核酸との反応性が高まるためである。よって、ターゲット核酸溶液にカチオン を添加すれば、電圧印加によるハイブリダィゼーシヨン促進効果に加えて、カチオン の効果によりハイブリダィゼーシヨン効率を更に高めることができる。
[0089] 前記方法において使用される電圧は、特に限定されず、サイン波交流電圧、矩形 波交流電圧、定常波直流電圧、パルス波直流電圧などを用いることができる。直流 電圧としては、パルス波直流電圧を用いることが好ましい。パルス波直流電圧を用い ることにより、電圧の周期に合わせて周期的にターゲット生体分子を移動させ、生体 分子の相互作用を効率的に促進することができる。電圧印加は、少なくとも基板表面 が負に帯電するように電圧を印加する期間を含むように行うことが好ましく、直流電圧 を使用する場合には、基板側が負に帯電するように電界を印加することが好ま 、。 これにより、溶液に含まれるカチオンが基板側に引き寄せられるため、カチオンの移 動により生じた溶液流によって、ターゲット生体分子を基板側に選択的に移動させる ことができる。
[0090] 前記方法は、前記導電性物質表面と対向電極との間に電圧が印加されていない 間、ターゲット生体分子を含む溶液を攪拌する操作を行うことが好ましい。例えば、パ ルス直流電圧を印加する場合、電圧印加の周期の間(電圧印加が行われていない 間)に溶液を攪拌することができる。このように、電圧を印カロしない間に溶液を攪拌す ることにより、電圧印加により基板側に移動したカチオンを溶液内に拡散させることが できる。その後、次の電圧印加が行われれば、溶液内に拡散したカチオンの移動に 伴い、ターゲット生体分子を基板側に選択的に移動させることができる。このように、 電圧の印加と溶液の攪拌を繰り返すことによって、ターゲット生体分子を基板側へ順 次移動させて基板表面近傍に効率的に濃縮することができる。
溶液の攪拌方法としては、例えば、反応槽全体をロータリーオーブンで回転させる 方法、チャンバ一内につながる送液口を設け、送液口とペリスタポンプ、ロータリーポ ンプ等のポンプをチューブでつなぎ、チャンバ一内の溶液を往復攪拌する方法を用 いることがでさる。
[0091] 前記カチオンは、ナトリウムイオン、カリウムイオン、リチウムイオン、マグネシウムィォ ン、カルシウムイオン、およびアルミニウムイオンからなる群力も選ばれる少なくとも一 種であることができる。上記カチオンの中で好ましいものは、ナトリウムイオンおよびマ グネシゥムイオンである。
[0092] 溶液中のカチオン濃度は、印加する電圧の種類や周波数等を考慮して、相互作用 に最適な濃度に設定することが好ましぐ例えば、 1〜: LOOOmM、好ましくは 10〜50 OmMとすることができる。
[0093] ターゲット生体分子を含む溶液は、バッファーを含むことができる。バッファ一として は、中性域の pHの緩衝能を有するものを用いることが好ましいが、これに限定される ものではない。具体的には、バッファ一としては、例えば、 Tris— HC1バッファーを用 いることがでさる。
[0094] ターゲット生体分子を含む溶液の温度は、相互作用に適した温度にすることが好ま しぐ例えば、常温 (例えば 20°C程度)〜 70°Cとすることができる。ターゲット生体分 子を含む溶液の温度を制御するために、ヒーター等の温度制御手段を用いることも できる。なお、過度に高い電圧を使用すると、発熱により溶液温度が高温になるため 、温度制御を厳密に行う必要が生じる場合がある。それに対し、第一の態様の方法 は、比較的低電圧により相互作用促進効果が得られるため、厳密な温度制御手段を 使用しなくても実施できるという利点がある。
[0095] 前記基板と対向電極との間には、生体分子が固定化された領域が覆われないよう に、非導電性材料力もなるスぺーサーを挟むことができる。このように、基板と対向電 極との間に非導電性スぺーサーを配置し、基板、対向電極、および非導電性スぺー サ一によつて囲まれた空間に、ターゲット生体分子を含む溶液を充填することができ る。前記非導電性材料としては、例えば、シリコン、ゴム、ガラス、プラスチックを挙げ ることができる。本発明では、このスぺーサ一の厚さにより、基板と対向電極との距離 を設定することができる。前記基板と対向電極との距離は、電界印加による生体分子 の相互作用促進効果が得られる範囲で適宜設定することができ、例えば、 30-500 μ mとすることができる。
[0096] 前記非導電性スぺーサ一は、その両面に接着剤層を有することができ、接着剤層 によって、基板と対向電極とを張り合わせることができる。前記接着剤層の接着剤は 、光硬化性榭脂を含むことが好ましい。光硬化性榭脂は、光を照射することによって 硬化して接着力を失うため、前記接着剤が光硬化性榭脂を含むことにより、光照射 すれば、非導電性スぺーサ一から基板と対向電極をはずすことができる。光硬化性 榭脂としては、例えば紫外線硬化型榭脂などの公知の光硬化性榭脂を用いることが できる。
[0097] 前記相互作用は、対向電極が透明電極である場合には、対向電極を通してリアル タイムで検出することができる。また、前述のように、マイクロアレイを構成する基板が 、光透過性のガラスやプラスチック上に、透明の導電性被覆層を設けた基板である場 合や、基板全体が透明の導電性物質力もなる場合には、基板側力ものリアルタイム 検出も可能である。相互作用の検出方法としては、蛍光検出器、共焦点検出器、共 焦点レーザ蛍光顕微鏡、蛍光顕微鏡を用いる方法を挙げることができる。蛍光検出 器により生体分子間の相互作用を検出するために、ターゲット生体分子は、蛍光標 識されていることが好ましい。ターゲット生体分子の蛍光標識は、公知の方法で行うこ とができる。また、本発明では、基板表面に固定化されている生体分子が、蛍光標識 されていてもよい。基板に固定される生体分子の蛍光標識も、公知の方法で行うこと ができる。
[0098] 更に、前述のように、突出スポット部を有する基板を用いる場合には、生体分子間 の相互作用を、共焦点型検出器によって検出することができる。共焦点型検出器に よる反射光および蛍光の検出原理については、前述の通りである。突出スポット部を 有する基板を用いる場合、共焦点型検出器を用いて、前述の原理で反射像によって スポットの大きさおよび位置を特定することで、自動グリツティングを行うことができる。 その詳細は、先に説明した通りである。
[0099] 特に、本発明では、反射光と蛍光とを同時に検出することができる共焦点型蛍光ス キヤナーを用いることが好ましい。その詳細は、先に説明した通りである。
[0100] 更に、本発明の第二の態様は、
少なくとも一部に導電性物質表面を有する基板と、前記導電性物質表面と対向す る電極 (対向電極)との間に配置された溶液に含まれる生体分子を移動させる方法で あって、 前記導電性物質表面と対向電極との間に、周波数 0. 01〜: LOHzで電圧を印加し て、前記基板または対向電極に向けて前記生体分子を移動させることを特徴とする 方法
に関する。
前記方法において使用される基板、対向電極、生体分子、印加電界等の詳細は、 先に生体分子を相互作用させる方法について述べた通りである。
[0101] 前述の生体分子を移動させる方法は、基板側に生体分子を選択的に移動させて 基板表面近傍に濃縮するために用いることができ、または、対向電極側に生体分子 を選択的に移動させて対向電極表面近傍に濃縮するために用いることができる。
[0102] 更に、前述の生体分子を移動させる方法は、核酸の配列を検知するために用いる ことができる。例えば、前述の生体分子を相互作用させる方法を用いて生体分子を 相互作用させると、プローブ核酸と完全相補のターゲット核酸は、プローブ核酸と強 固に相互作用する。それに対し、例えば、プローブ核酸と一部の配列がミスマッチな ターゲット核酸は、プローブ核酸との相互作用が弱いため、逆向きに電界を印加する と、プローブ核酸から離れて対向電極側に移動する。このようにして、前述の生体分 子を移動させる方法によれば、完全相補配列からの塩基配列の違い、例えば、一塩 基多型 (SNP)を検出することができる。
実施例
[0103] 以下、本発明を実施例によりさらに詳細に説明する。
第一の餱
[実施例 1]
誘電ハイブリダィゼーシヨン
(1)突出スポット部を有するマイクロアレイの作製
(i)アレイパーツの作製
フォトリソグラフィ一とマイクロミーリング技術を利用して、基板上に形成する突出ス ポット部に対応する凹部を有する金型を製作した。この金型を用いて、射出成形によ つて、ポリカーボネート製のアレイパーツを作製した。突出スポット部の高さは 200 m、スポット用平面は一辺 90 mの正方形であり、スポット用平面と突出スポット部側 面とのなす角度は 95° であった。突出スポット部の断面図を図 13に示す。
作成したアレイパーツを真空蒸着装置 (型番 KS— 807RK型、株式会社ケーサイ エンス製)のベルジャーにセットし、 10x10— 4 Pa以下にベルジャー内を真空にした後
、クロムを 0. 08nmZsの速度で、 50nm厚まで蒸着し、引き続き、金を 0. 5nmZsの 速度で、 500nm厚まで蒸着した。
以上の方法で、図 8に示すアレイパーツを作製した。
(ii) DNAスタンビング
45mer オリゴ DNAプローブ溶液(120 M in lx マイクロスポッティング溶液( テレケム社) +0. 1% Tween 20)を、 DNAアレイヤーにより、アレイパーツの突出 スポット部頂上のスポット用平面へスタンプした。スタンプ金+の先端は、直径 130 m の円形のものを利用した。
プローブ DNAとしては、以下の 11種類の遺伝子配列である 45merオリゴ DNAを用いた
[化 1]
beta-actin, TTTTGTCCCCCCAACTTGATGTATGAAGGCTTTGGTCTCCCTGGG
NF-L, GGCCGTTCTGCTTACAGTGGCTTGCAGAGCAGCTCCTACTTGATG
Ubiquitin 2e, GTACCMCATTGCCTCCTAGCAGAGAAGTGTGTGTGTGAGMGCC
hsc70, CCTATGGTGCAGCTGTCCAGGCAGCCATTCTATCTGGAGACMGT
rpL3, GGTGAGGTGACCAATGACTTCATCATGCTCAAAGGCTGTGTGGTG
Akt, GCTGGACAAGGACGGGCACATCAAGATAACGGACTTCGGGCTGTG
Transthyretin, ACCATCGCAGCCCTGCTCAGCCCATACTCCTACAGCACCACGGCT
rpS5, CATTGCTGTGAAGGAGAAGTATGCCAAGTACCTGCCCCACAGTGC
HCN1, GTGCCACAGCGTGTCACCTTGTTCAGACAGATGTCCTCGGGAGCC
GAPDH, GCAGTGGCAAAGTGGAGATTG GCCATCAACGACCCCTTCATTG
LhblB2, ACTCAAGTTATCCTCATGGGAGCTGTTGMGGCTACAGAGTCGCC
[0104] (2)非導電性スぺーサ一の作製
90 m厚で両面に紫外線硬化性榭脂を含む接着剤層 (接着層は剥離シートで力 バーした)を有する PEN製のシートを、びく型により型抜きし、図 9に示す非導電性ス ぺーサ一を作製した。
[0105] (3)対向電極の作製 ITOガラスを所定の寸法に切断して、対向電極を作製した。
[0106] (4)カバーパーツの作製
射出成形により、ポリカーボネート製カバーパーツを作製した。図 10に、カバーパ ーッの概略図を示す。カバーパーツには、対向電極をはめ込むために、くぼませた 部分 (対向電極はめ込み部)、対向電極を通してキヤビティ内を観察するための空孔 部 (観察窓)を設け、更に、導電性部材 (銅製部材に銀メツキを施した)をはめ込んだ
[0107] (5)生体分子の相互作用試験装置の組み立て
非導電性スぺーサ一の片側の剥離シートを剥がし、非導電性スぺーサ一の空孔内 に、生体分子が固定ィ匕されたスポットおよびアレイパーツに設けられた 2つの送液用 の貫通孔が収まり、かつ、アレイパーツ 2つの導通用貫通孔と、非導電性スぺーサー に設けられた 2つの貫通孔がそれぞれ一致するように、アレイパーツと非伝導性スぺ 一サーを貼り付けた。カバーパーツの対向電極はめ込み部に対向電極をはめ込ん だ。非導電性スぺーサ一の他方の剥離シートを剥がして、カバーパーツと非導電性 スぺーサ一とを貼り付け、図 1に示す装置を作製した。この装置において、対向電極 表面と DNAが固定ィ匕された面との間には、 30 mのギャップが形成された。
[0108] (6)誘電ハイブリダィゼーシヨン
マウス脳由来の mRNAをアマシャム社の Cyscribe cDNA post labeling kitにより標識し た Cy3標識 cDNAをターゲット DNAとして用いた。このマウス脳由来 Cy3標識 cDNAタ 一ゲットを、それぞれ 5 ng/ 1、 0.5 ng/ 1、 0.05 ng/ 1の濃度になるように、 50 mM L -ヒスチジン溶液に調製したものをハイブリダィゼーシヨン溶液として用いた。このハイ ブリダィゼーシヨン溶液は、 95°Cで 2分間熱変性させ、続いて 4°Cで 2分間急冷した後 、ハイブリダィゼーシヨンに用いた。ハイブリダィゼーシヨンは、 1MHz 30Vp-pの高周 波交流電場を印加した条件と、印カロしな力 た条件で行った。結果を図 11に示す。 図 11からわ力るように、電場を印加した場合、電場を印加しな力つた場合と比べて 10 倍以上の検出感度の向上が見られた。
[0109] [実施例 2]
融解温度の測定、 SNPの検出 実施例 1で作製したマイクロアレイに、 PM (完全相補鎖の 20mer;配列 GGACATGG AGTTCCGCGACC)、 MM (PMに対して中央の 1塩基が異なっている 20mer;配列 GG ACATGGAGATCCGCGACC)の DNAプローブをスタンプおよび固定処理を行った。 ターゲット DNAとして、 5'末端に Cy3標識された PMに対して相補鎖の 21mer (配列; G GTCGCGGAACTCCATGTCC)を用いた。
ハイブリダィゼーシヨン溶液は、 0.5 μ Μターゲット DNA, 50mMヒスチジンを用いた
1MHz, 30Vp-p (lMV/m)の交流電場を印加しながら、室温で 10分間ハイブリダィゼ ーシヨンを行った後、室温にて、洗浄液 2xSSC/0.1% SDSを、マイクロアレイに設けた 送液口から注入し、 3回洗浄を行った。 キヤビティ内に洗浄液が入っている状態で、 蛍光顕微鏡下で室温力 68°Cまでキヤビティ内の溶液を加熱しながら、カバーパー ッに設けた観察窓から、対向電極を通してリアルタイムでノヽイブリツドシグナルを検出 し、 DNAハイブリッドの融解曲線を求めた。融解曲線を、図 12に示す。融解温度とは 、二本鎖 DNAが 50%解離している温度を指す。図 12に示す融解曲線求めた PMの 融解温度は約 61°Cであり、 MMの融解温度は約 59°Cであり、 PMと MMとの間で、融 解温度に約 2°Cの差があった。この融解温度の違いを利用すれば、例えば一塩基多 型などの変異を検出することができる。
第二の餱様
[実施例 3]
印加電圧の周波数と核酸濃縮との関係
表面に金をコートした DNAマイクロアレイ基板に、核酸溶液が入るように、両面接 着性フィルムの中央をカットしたものを基板表面に貼付し、その上に ITO電極を電極 面が基板と対向するように、貼り付けた。溶液が入る部分は、チャンバ一となるように 作製してあり、接着性フィルムの一部力も溶液が注入できるようになつている。装置の 概略図を図 14に示す。図 14に示す装置のチャンバ一に充填する核酸溶液として、 0 . Cy3標識オリゴ DNA (45mer)、 40 mM Tris— HC1 (pH 8. 3)、4 mM EDTA、400 mM NaClを用いた。この核酸溶液を上記のチャンバ一内に 充填し、基板表面と ITO電極を交流電圧発生装置のそれぞれの極の端子と接続し、 3Vp— pの電圧で、サイン波の交流電圧を 10Hzから、 0. 01Hzまで周波数を変えな がら、印加した。図 15のグラフで、矢印の位置が、それぞれの周波数を印力!]、または 周波数を変えたポイントである。グラフのカーブは、共焦点レーザ蛍光顕微鏡により、 アレイ表面近傍の核酸分子の量を蛍光標識の蛍光強度として測定したものである。 蛍光強度が強いほど、アレイ表面近傍に核酸分子が濃縮されたことを意味する。本 条件下では、特に、周波数 0. 1 Hz、 0. 01 Hzの場合に、印加電圧の周期に合わ せた蛍光強度の増加、即ち、核酸の濃縮が観察された。
[0111] [実施例 4]
印加電圧の波形と核酸濃縮との関係
次に実施例 3と同様の装置を用いて、印加電圧の波形パターンをサイン波および 矩形波にして、電圧のカーブと核酸濃縮との関係を調べた。実施例 3と同様に、核酸 溶液として、 0. 1 /z M Cy3標識オリゴ DNA (45mer)、 40 mM Tris— HC1 (p H 8. 3)、4 mM EDTA、 400 mM NaClを用いた。印加電圧は、 3Vp— pとし 、サイン波および矩形波で交流電圧を印加した。図 16に結果を示す。図 16に示すよ うに、どちらの波形でも、電圧波形に応じた蛍光強度の増加が観察された。これによ り、電圧印加により基板表面近傍に核酸が効率的に濃縮でき、また、波形の種類に よらず、基板表面が負電荷を帯びたときに、核酸が基板表面近傍に集まり、濃縮され ることが判明した。
[0112] [実施例 5]
パルス直流電圧による核酸の濃縮
次に実施例 3と同様の装置を用いて、アレイ表面が負電荷を帯びるように、パルス 直流電圧を印加した。核酸溶液は、実施例 3と同様のものを用いた。—2Vの電圧を 0. 1Hzの周期で、 1秒間ずつ印加した。図 17に結果を示す。図 17に示すように、電 圧の周期に合わせて蛍光強度の増加が見られた。これにより、パルス直流電圧の印 加により、電圧の周期に合わせて核酸が濃縮されることが確認された。また、この結 果によっても、負電荷をアレイ表面に印加することにより、ターゲット核酸が濃縮され ることが示された。さらに、 2Vの電圧を 0. lHz (ls印加)、 1Ηζ (0. Is 印カロ)、 10 Hz (0. 01s 印カロ)の周期で印カロして、核酸濃縮の様子を観察した。その結果、図 1 8に示すように、いずれの場合にも、電圧の周期に合わせて蛍光強度が増加した(図 18中、矢印の位置は電圧印加開始点である)。これにより、電圧印加によって負に帯 電した基板側へ核酸が移動して基板表面近傍に核酸が濃縮されることが確認された 。また、周波数 0. 1 Hzの場合に最も蛍光強度が強ぐ周波数が高くなるにつれ、蛍 光強度は低くなつた。これにより、本条件下では、周波数 0. 1Hzの場合に、核酸濃 縮効果が最も顕著に得られることがわかる。
[実施例 6]
パルス直流電圧印加によるハイブリダィゼーシヨンの促進
実施例 3で用いた DNAマイクロアレイ基板に、 2種のプローブ DNA(GAPDH、 be ta-actin)溶液を等濃度でそれぞれ 10点ずつスタンプし、スタンプ後処理として基 板を 600mj/cm2で UV照射し、 MQWで 5分間 2回洗浄した後乾燥させた。プロ一 ブ DNAは、 5 '側にアレイ用リンカ一 (日清紡績 (株))修飾を施したものを使用した。 以下、 GAPDH由来のプローブ DNAをスタンプしたスポットを、 GAPDHスポット、 b eta— actin由来のプローブ DNAをスタンプしたスポットを、 beta— actinスポットと呼 ターゲット DNA溶液として、 0. 01 μ Μの濃度の 5,末端 Cy 3蛍光標識 オリゴ D NA(GAPDHと相補的な配列;溶液は、 40mM Tris HCl (pH 8. 3)、4 mM EDTA、400 mM NaCl)を用いた。実施例 5と同様の装置、同様の電圧印加条 件にて、ハイブリダィゼーシヨンを行った。比較として、電圧を印加しない条件でもハ イブリダィゼーシヨンを行った。共焦点レーザ蛍光顕微鏡により、ハイブリダィゼーショ ン反応の過程でのスポット上の蛍光強度の変化をリアルタイムに計測した結果を、図 19に示す。ターゲット DNAと相補的な配列を有するプローブ DNAを含む GAPDH スポットは、電圧を印加した場合、非印加の場合に比べ、蛍光強度が急激に増加し、 ノ、イブリダィゼーシヨン反応の速度力 20倍以上に促進された。それに対して、ター ゲット DNAと相補的な配列を有するプローブ DNAを含まない beta— actinスポット では、経時的な蛍光強度の増加は観察されな力つた。これは、 beta— actingポット では、電圧を印カロしても非特異的な吸着が起こらなかったことを示している。 10分間 ノヽイブリダイゼーシヨン反応を行った後、 2xSSC + 0. 1% Tween20、 lxSSC、 0. 2xSSCで順次洗浄を行い、その後、マイクロアレイスキャナーで画像を取得した(図 20)。比較のために、 16時間電圧を印加せずにハイブリダィゼーシヨンを行い、同様 にスキャナーで画像を取得した。その結果、 10分間反応させた場合、電圧を印加し た場合には、電圧を印加しなカゝつた場合と比べて、約 13倍蛍光強度が増加した。こ れは、電圧印加によりハイブリダィゼーシヨン反応が高感度化されたことを示す。さら に、電圧印加による 10分間の反応後、電圧を印加せずに 16時間反応させた場合と 比べても、約 6倍蛍光強度が増加した。このように、本発明の方法により、ハイブリダィ ゼーシヨン反応の高速ィヒおよび高感度化が達成された。
実施例 6において使用した 2種のプローブ DNAの配列を以下に示す。
[0114] [表 1]
Figure imgf000045_0001
[0115] [実施例 7]
低周波交流電圧印加によるタンパク分子の濃縮
実施例 3と同様の装置を用いて、低周波交流電圧印加によるタンパク分子の濃縮 について調べた。タンパク分子溶液として、: L M Cy 3標識ストレプトアビジン、 40 mM Tris-HCl (pH 8. 3)、4mM EDTA、 400mM NaClを用いた。印加電 圧は、 3Vp— pとして 0. 1Hzの交流電圧を印加した。結果を図 21に示す。図 21に示 すように、生体分子としてタンパク分子を用いた場合にも、電圧波形に応じた蛍光強 度の増加を示し、電圧印加によりタンパク分子が基板表面近傍に濃縮されることが確 認された。また、本実施例でも、基板側が負に帯電したときに、タンパク分子の移動、 濃縮が観察された。
産業上の利用可能性
[0116] 本発明の第一の態様によれば、生体分子の相互作用を促進しつつ、生体分子の 相互作用をリアルタイムで試験することができる。更に、本発明によれば、生体分子 の融解温度の測定、一塩基多型などの変異の検出を容易かつ迅速に行うことができ る。 本発明の第二の態様によれば、生体分子の相互作用の高速化、高感度化を達成 することができる。
図面の簡単な説明
圆 1]本発明の装置の概略図を示す。
圆 2]共焦点型検出器の光学系の概略図を示す。
圆 3]本発明にお 、て使用される基板の一例を示す。
圆 4]基板上の突出スポット部の概略図を示す。
[図 5]略 V字型底面を有する基板の一部の拡大図を示す。
[図 6]粗面化されたスポット用平面の一例 (部分拡大図)を示す。
圆 7]反射光と蛍光とを同時に検出することができる共焦点型蛍光スキャナーの光学 系の概略図を示す。
圆 8]実施例 1で作製したアレイパーツの概略図を示す。
圆 9]実施例 1で作製した非導電性スぺーサ一の概略図を示す。
[図 10]実施例で作製したカバーパーツの概略図を示す。
[図 11]実施例 1で得られた結果 (誘電ハイブリダィゼーシヨンおよび非誘電ハイブリダ ィゼーシヨンのハイブリダィゼーシヨン強度の散布図)を示す。
[図 12]実施例 2で得られた融解曲線を示す。
[図 13]実施例 1で作製したアレイパーツ上の突出スポット部の断面図を示す。
圆 14]実施例 3で使用した装置の概略図を示す。
[図 15]実施例 3で得られた結果 (印加電圧の周波数と核酸濃縮との関係)を示す。
[図 16]実施例 4で得られた結果 (印加電圧の波形と核酸濃縮との関係)を示す。
[図 17]実施例 5で得られた結果を示す。
[図 18]実施例 5で得られた結果を示す。
[図 19]実施例 6で得られた結果を示す。
[図 20]実施例 6で得られたマイクロアレイアレイスキャナーによる画像を示す。
[図 21]実施例 7で得られた結果を示す。

Claims

請求の範囲
[1] 基板上に生体分子が固定化された生体分子マイクロアレイ(1)、および、前記マイク ロアレイの生体分子が固定化された面に対向するように設けられた透明電極 (2) (以 下、「対向電極」 t 、う)を有する生体分子の相互作用試験装置であって、
前記装置は、前記マイクロアレイ(1)と対向電極(2)との間に、非導電性スぺーサ 一(3)を有し、前記マイクロアレイ(1)、前記スぺーサー(3)、および前記対向電極(2 )によってキヤビティ (4)が形成されており、
前記マイクロアレイ(1)は、生体分子が固定化された面の少なくとも一部に導電性 物質表面(6)を有し、かつ、前記キヤビティ (4)に通じる貫通孔(5)を 2つ有し、一方 の貫通孔はキヤビティへ溶液を注入するための孔であり、他方の貫通孔はキヤビティ 力も溶液を排出するための孔である、前記装置。
[2] 前記マイクロアレイ(1)の側から、前記マイクロアレイ(1)上の導電性物質表面(6)お よび対向電極(2)と外部電源とを接続するための手段を有する、請求項 1に記載の 装置。
[3] 前記マイクロアレイ(1)上の導電性物質表面 (6)と少なくとも一部が接触し、かつ、前 記対向電極 (2)とは接触しな!ヽ導電性部材 (7)を更に有し、前記基板上の導電性物 質表面 (6)は、前記導電性部材 (7)を介して外部電源と接続される、請求項 2に記載 の装置。
[4] 前記導電性部材 (7)を構成する導電性物質は、金、ニッケル、白金、銀、チタン、ァ ルミ-ゥム、ステンレス、銅、導電性酸化物、または導電性ブラスチックである、請求 項 3に記載の装置。
[5] 前記マイクロアレイは、前記導電性部材(7)に通じる貫通孔(8)および前記対向電極
(2)に通じる貫通孔(9)を有する、請求項 3または 4に記載の装置。
[6] 前記非導電性スぺーサー(3)は、前記マイクロアレイ(1)と対向電極(2)との間隔が 均一になるように配置される、請求項 1〜5のいずれか 1項に記載の装置。
[7] 前記マイクロアレイ(1)の生体分子が固定化された面と前記対向電極 (2)の前記マイ クロアレイ(1)の生体分子が固定ィ匕された面と対向する表面との距離が、 10〜300 μ mである、請求項 1〜6のいずれ力 1項に記載の装置。
[8] 前記マイクロアレイ上の導電性物質表面を構成する導電性物質が、金、ニッケル、白 金、銀、チタン、アルミニウム、ステンレス、銅、クロム、導電性酸化物、または導電性 プラスチックである請求項 1〜 7の 、ずれ力ゝ 1項に記載の装置。
[9] 前記基板は、基板全体が導電性物質からなるか、または、基板表面に導電性物質被 覆層を有する、請求項 1〜8のいずれ力 1項に記載の装置。
[10] 前記導電性被覆層を有する基板が、ガラス、石英、金属、シリコン、またはプラスチッ タカ なる請求項 9に記載の装置。
[11] 前記非導電性スぺーサー(3)は、その両面に接着剤層を有する、請求項 1〜10のい ずれか 1項に記載の装置。
[12] 前記接着剤は、光硬化性榭脂を含む、請求項 11に記載の装置。
[13] 温度制御手段を更に有する、請求項 1〜12のいずれか 1項に記載の装置。
[14] 前記基板は、基板表面から突出し、かつ頂上にスポット用平面を有する生体分子固 定化用スポット(以下、「突出スポット部」と 、う)を有し、
少なくとも前記突出スポット部は導電性物質表面を有し、
前記スポット用平面の導電性物質表面に生体分子が固定化されており、かつ 前記基板は、前記基板上の突出スポット部以外の表面に、前記突出スポット部の導 電性物質表面と通電可能な端子を有する、請求項 1〜13のいずれか 1項に記載の 装置。
[15] 前記基板上の突出スポット部以外の表面は、導電性物質被覆層を有し、前記端子は
、前記導電性物質被覆層に含まれるか、または、前記導電性物質被覆層と通電可能 である、請求項 14に記載の装置。
[16] 前記基板上の突出スポット部以外の表面は、導電性物質被覆層を有し、前記導電性 物質被覆層と突出スポット部の導電性物質表面とは、一体の導電性物質被覆層とし て設けられている、請求項 14または 15に記載の装置。
[17] 前記基板が、少なくとも、前記突出スポット部周辺の基板表面、突出スポット部側面、 およびスポット用平面が、導電性物質力もなる基板である、請求項 14〜16のいずれ 力 1項に記載の装置。
[18] 前記突出スポット部周辺の基板表面が、略 V字型底面を形成する、請求項 17に記載 の装置。
[19] 前記基板が、隣り合う突出スポット部が、突出スポット部側面によって隣接しており、 かつ、少なくとも、前記突出スポット部側面およびスポット用平面力 導電性物質から なる基板である、請求項 14〜16のいずれか 1項に記載の装置。
[20] 前記突出スポット部の高さ力 10〜500 μ mである、請求項 14〜19のいずれ力 1項 に記載の装置。
[21] 前記突出スポット部頂上のスポット用平面と前記突出スポット部側面とのなす角が、 9
0度以上である、請求項 14〜20の 、ずれか 1項に記載の装置。
[22] 前記生体分子固定ィ匕用スポットが粗面化されている、請求項 14〜21のいずれか 1 項に記載の装置。
[23] 前記生体分子は、 DNA、 RNA、 PNA、蛋白、ポリペプチド、糖化合物、脂質、天然 低分子、および合成低分子力もなる群力も選ばれる少なくとも一種である、請求項 1 〜22の!、ずれか 1項に記載の装置。
[24] 基板上に生体分子が固定化された生体分子マイクロアレイ(1)と前記マイクロアレイ の生体分子が固定化された面に対向するように設けられた透明電極 (2) (以下、「対 向電極」という)を有し、前記マイクロアレイ(1)と対向電極(2)との間に、非導電性ス ぺーサ一(3)を有し、前記マイクロアレイ(1)、前記スぺーサー(3)、および前記対向 電極(2)によってキヤビティ (4)が形成されている装置を用いる、生体分子の相互作 用試験方法であって、
前記マイクロアレイ(1)は、生体分子が固定化された面の少なくとも一部に導電性 物質表面 (6)を有し、
前記マイクロアレイ(1)と対向電極 (2)との間に電界を印加すること、および、 前記キヤビティ (4)へ、ターゲット生体分子を含む溶液および Zまたはターゲット生 体分子を含まな ヽ溶液を送液しながら、前記マイクロアレイ上の生体分子と前記ター ゲット生体分子との相互作用を前記対向電極を通して光学的に検出すること、 を含む、前記方法。
[25] 基板上に生体分子が固定化された生体分子マイクロアレイ(1)と前記マイクロアレイ の生体分子が固定化された面に対向するように設けられた透明電極 (2) (以下、「対 向電極」という)を有し、前記マイクロアレイ(1)と対向電極(2)との間に、非導電性ス ぺーサ一(3)を有し、前記マイクロアレイ(1)、前記スぺーサー(3)、および前記対向 電極(2)によってキヤビティ (4)が形成されている装置を用いる、生体分子の相互作 用試験方法であって、
前記マイクロアレイ(1)は、生体分子が固定化された面の少なくとも一部に導電性 物質表面 (6)を有し、
前記マイクロアレイ(1)と対向電極 (2)との間に電界を印加すること、および 前記キヤビティ (4)に、ターゲット生体分子を含む溶液を充填し、所定時間保持した 後、前記溶液を排出することを含み、
前記溶液の保持中または排出後に、前記マイクロアレイ上の生体分子と前記ター ゲット生体分子との相互作用を前記対向電極を通して光学的に検出する、前記方法
[26] 前記溶液を排出した後、または排出しながら、前記キヤビティ内にターゲット生体分 子を含む溶液および Zまたはターゲット生体分子を含まない溶液を新たに充填する ことを含む、請求項 25に記載の方法。
[27] 前記マイクロアレイ(1)の側から、前記マイクロアレイ(1)上の導電性物質表面(6)お よび対向電極(2)と外部電源とを接続し、前記マイクロアレイ(1)と対向電極(2)との 間に電界を印加する、請求項 24〜26のいずれか 1項に記載の方法。
[28] 前記装置が、請求項 1〜23のいずれ力 1項に記載の装置である、請求項 24〜27の いずれか 1項に記載の方法。
[29] 前記マイクロアレイ(1)が有する前記キヤビティに通じる貫通孔(5)を通して、前記キ ャビティへ溶液を注入し、および Zまたは、前記キヤビティカゝら溶液を排出する、請求 項 28に記載の方法。
[30] 前記装置が、請求項 5〜23のいずれ力 1項に記載の装置であり、前記導電性部材( 7)に通じる貫通孔(8)および対向電極 (2)に通じる貫通孔(9)を通して、前記導電 性部材(7)および対向電極(2)と外部電源の端子とを接続する、請求項 24〜27の いずれか 1項に記載の方法。
[31] 前記マイクロアレイ(1)が有する前記キヤビティに通じる貫通孔(5)を通して、前記キ ャビティへ溶液を注入し、および zまたは、前記キヤビティカゝら溶液を排出する、請求 項 30に記載の方法。
[32] 前記マイクロアレイに固定された生体分子および Zまたは前記ターゲット生体分子が 蛍光標識されており、かつ、前記マイクロアレイ上の生体分子とターゲット生体分子と の相互作用を、蛍光によって検出する、請求項 24〜31のいずれか 1項に記載の方 法。
[33] 請求項 14〜23のいずれか 1項に記載の装置を用いる、生体分子の相互作用試験 方法であって、
前記マイクロアレイ(1)と対向電極 (2)との間に電界を印加すること、および、 前記キヤビティ (4)へ、ターゲット生体分子を含む溶液および Zまたはターゲット生 体分子を含まな ヽ溶液を送液しながら、前記マイクロアレイ上の生体分子と前記ター ゲット生体分子との相互作用を前記対向電極を通して共焦点型検出器によって検出 することを含む、前記方法。
[34] 請求項 14〜23のいずれか 1項に記載の装置を用いる、生体分子の相互作用試験 方法であって、
前記マイクロアレイ(1)と対向電極 (2)との間に電界を印加すること、および 前記キヤビティ (4)に、ターゲット生体分子を含む溶液を充填し、所定時間保持した 後、前記溶液を排出することを含み、
前記溶液の充填中または排出後に、前記マイクロアレイ上の生体分子と前記ター ゲット生体分子との相互作用を前記対向電極を通して共焦点型検出器によって検出 する、前記方法。
[35] 前記溶液を排出した後、または排出しながら、前記キヤビティ内にターゲット生体分 子を含む溶液および Zまたはターゲット生体分子を含まない溶液を新たに充填する ことを含む、請求項 34に記載の方法。
[36] 前記マイクロアレイ上の生体分子および Zまたは前記ターゲット生体分子が蛍光標 識されて!/、る、請求項 33〜35の 、ずれか 1項に記載の方法。
[37] 前記共焦点型検出器によって、マイクロアレイ表面の突出スポット部とそれ以外の部 分の高さおよび Zまたは形状の差による反射光強度の相違から、マイクロアレイ上の 前記突出スポット部を反射像として検出する、請求項 33〜36のいずれか 1項に記載 の方法。
[38] 前記反射像として検出された突出スポット部からの蛍光を検出することによって、生 体分子の相互作用を検出する、請求項 37に記載の方法。
[39] 前記マイクロアレイ(1)が有する前記キヤビティに通じる貫通孔(5)を通して、前記キ ャビティへ溶液を導入し、および Zまたは、前記キヤビティカゝら溶液を排出する、請求 項 33〜38の!、ずれ力 1項に記載の方法。
[40] 前記導電性部材(7)に通じる貫通孔(8)および対向電極 (2)に通じる貫通孔(9)を 通して、前記導電性部材 (7)および対向電極 (2)と外部電源の端子とを接続する、 請求項 33〜39の!、ずれ力 1項に記載の方法。
[41] 前記マイクロアレイ(1)と対向電極(2)との間に印加される電界力 0. 01〜: LOMV
Zmである、請求項 24〜40のいずれ力 1項に記載の方法。
[42] 前記ターゲット生体分子を含む溶液力 フエ-ルァラニン、ヒスチジン、カルノシン、 およびアルギニン力もなる群力 選ばれる少なくとも 1つのバッファー物質を含む、請 求項 24〜41のいずれ力 1項に記載の方法。
[43] 請求項 24〜42のいずれか 1項に記載の方法を用いることを特徴とする、生体分子の 融解温度測定方法。
[44] 請求項 24〜42のいずれか 1項に記載の方法を用いることを特徴とする、核酸の配列 検知方法。
[45] 基板表面に生体分子が固定化されたスポットを 1つ以上有する生体分子マイクロアレ ィと、前記基板表面と対向する電極 (以下、「対向電極」という)との間にターゲット生 体分子を含む溶液を配置し、前記基板表面に固定化された生体分子とターゲット生 体分子とを相互作用させる方法であって、
前記マイクロアレイは、生体分子が固定化された面の少なくとも一部に導電性物質 表面を有し、
前記導電性物質表面と対向電極との間に、周波数 0. 01〜: LOHzで電圧を印加し て、前記相互作用を促進することを特徴とする、前記方法。
[46] 少なくとも一部に導電性物質表面を有する基板と、前記導電性物質表面と対向する 電極 (以下、「対向電極」という)との間に配置された溶液に含まれる生体分子を移動 させる方法であって、
前記導電性物質表面と対向電極との間に、周波数 0. 01〜: LOHzで電圧を印加し て、前記基板または対向電極に向けて前記生体分子を移動させることを特徴とする 方法。
[47] 前記電圧が 0. 1〜4Vである、請求項 45または 46に記載の方法。
[48] 前記溶液は、カチオンを含む、請求項 45〜47の 、ずれか 1項に記載の方法。
[49] 前記カチオンは、ナトリウムイオン、カリウムイオン、リチウムイオン、マグネシウムィォ ン、カルシウムイオン、およびアルミニウムイオンからなる群力も選ばれる少なくとも一 種である、請求項 48に記載の方法。
[50] 前記溶液中のカチオン濃度は、 1〜: LOOOmMの範囲である、請求項 48または 49に 記載の方法。
[51] 前記電圧は、パルス直流電圧である、請求項 45〜50のいずれ力 1項に記載の方法
[52] 少なくとも前記基板表面が負に帯電するように電圧を印加することを含む、請求項 45
〜51のいずれ力 1項に記載の方法。
[53] 前記基板は、基板全体が導電性物質からなるか、または、基板表面に導電性物質被 覆層を有する、請求項 45〜52のいずれ力 1項に記載の方法。
[54] 前記導電性物質は、金、ニッケル、白金、銀、チタン、アルミニウム、ステンレス、銅、 クロム、導電性酸化物、または導電性プラスチックである、請求項 45〜53のいずれ 力 1項に記載の方法。
[55] 前記対向電極は、電極全体が、金、ニッケル、白金、銀、チタン、アルミニウム、ステ ンレス、銅、クロム、導電性酸化物、または導電性プラスチックカゝらなるカゝ、または、前 記基板の導電性物質表面と対向する表面に、金、ニッケル、白金、銀、チタン、アル ミニゥム、ステンレス、銅、クロム、導電性酸化物、または導電性プラスチック力もなる 導電性物質被覆層を有する、請求項 45〜54のいずれ力 1項に記載の方法。
[56] 前記対向電極は、透明電極である、請求項 45〜55のいずれ力 1項に記載の方法。
[57] 前記基板と対向電極との間に非導電性スぺーサーを配置し、前記基板、対向電極、 および非導電性スぺーサ一によつて囲まれた空間に、前記溶液を充填する、請求項
45〜56の!、ずれ力 1項に記載の方法。
[58] 前記導電性物質表面と対向電極との間に電圧が印加されない間、前記溶液を攪拌 することを含む、請求項 57に記載の方法。
[59] 前記生体分子は、 DNA、 RNA、 PNA、蛋白、ポリペプチド、糖化合物、脂質、天然 低分子、および合成低分子力もなる群力も選ばれる少なくとも一種である、請求項 45
〜58の!ヽずれか 1項に記載の方法。
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