[go: up one dir, main page]

WO2002036800A1 - Process for producing nucleoside compound - Google Patents

Process for producing nucleoside compound Download PDF

Info

Publication number
WO2002036800A1
WO2002036800A1 PCT/JP2001/009701 JP0109701W WO0236800A1 WO 2002036800 A1 WO2002036800 A1 WO 2002036800A1 JP 0109701 W JP0109701 W JP 0109701W WO 0236800 A1 WO0236800 A1 WO 0236800A1
Authority
WO
WIPO (PCT)
Prior art keywords
reaction
nucleoside compound
salt
added
producing
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Ceased
Application number
PCT/JP2001/009701
Other languages
English (en)
French (fr)
Inventor
Tadashi Araki
Ichiro Ikeda
Katsuyuki Takahashi
Kiyoshi Ito
Tamotsu Asano
Seiya Nikumaru
Takeshi Nakamura
Hiroki Ishibashi
Kiyoteru Nagahara
Yasushi Fukuiri
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Mitsui Chemicals Inc
Original Assignee
Mitsui Chemicals Inc
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Mitsui Chemicals Inc filed Critical Mitsui Chemicals Inc
Priority to US10/415,927 priority Critical patent/US20040219646A1/en
Priority to EP01980986A priority patent/EP1338654B1/en
Priority to DE60136209T priority patent/DE60136209D1/de
Priority to KR10-2003-7006185A priority patent/KR100468979B1/ko
Publication of WO2002036800A1 publication Critical patent/WO2002036800A1/ja
Anticipated expiration legal-status Critical
Ceased legal-status Critical Current

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P19/00Preparation of compounds containing saccharide radicals
    • C12P19/26Preparation of nitrogen-containing carbohydrates
    • C12P19/28N-glycosides
    • C12P19/38Nucleosides

Definitions

  • the present invention relates to a method for producing a nucleoside compound using nucleoside phosphorylase.
  • Various nucleosides and their analog compounds are used as raw materials or drug substances for antiviral drugs, anticancer drugs and antisense drugs. Background technology
  • Nucleoside phosphorylase is a generic term for enzymes that phosphorylate N-glycosidic bonds of nucleosides in the presence of phosphoric acid, and catalyzes the reaction represented by the following formula using liponucleosides as an example.
  • Liponucleoside + Phosphate (salt)-Nucleobase + Report 1-Phosphate This enzyme, which is broadly classified into purine nucleoside phosphorylase and pyrimidine nucleoside phosphorylase, is widely distributed in the biological world, and is composed of mammals, birds, fish, etc. Present in textiles, yeast, and bacteria. This enzymatic reaction is reversible, and the synthesis of various nucleoside compounds utilizing the reverse reaction has been known for some time.
  • Phosphorylase is used to decompose into reporter monophosphate and hypoxanthine, and then from reporter monophosphate and 1,2,4-triazole-3-carboxamide isolated from ion exchange resin, also from Enterobacter aerogenes.
  • a technique for producing an antiviral agent, rivapirin, using purine nucleoside phosphorylase has been reported.
  • the problem to be solved by the present invention is to provide a method for industrially producing a nucleoside compound, in which the reaction proceeds at a high conversion rate and which is simple, and a means which contributes to reduction of raw material costs and improvement of product purity. Is to do.
  • an object of the present invention is to include a step of reacting pentose-1 monophosphate with a nucleobase or a nucleobase analog in the presence of a nucleoside phosphorylase activity, thereby improving the conversion of the nucleoside compound in the reaction. It is an object of the present invention to provide a simple and highly versatile method for producing a nucleoside compound.
  • the present inventors have conducted intensive studies to solve these problems, and as a result, when a metal cation capable of forming a sparingly water-soluble salt with phosphate ions is present in the reaction solution, phosphate ions which are by-products of the reaction are present. Was found to precipitate as a poorly water-soluble salt and was excluded from the reaction system, whereby the equilibrium of the reaction was shifted toward the synthesis of the nucleoside compound, and the conversion of the reaction was improved.
  • the present inventors have found that a metal cation capable of forming a poorly water-soluble salt with phosphoric acid is present in the reaction solution as a salt of pentose-1-phosphate, whereby the above-mentioned poorly water-soluble phosphoric acid is mixed with phosphoric acid. It has been found that an effect equivalent to the case of adding a metal cation capable of forming a salt of the above or a salt thereof is obtained.
  • the present inventors have proposed a method for producing a nucleoside compound by an exchange reaction between a phosphate group and a nucleobase or nucleobase analog in the presence of nucleoside phosphorylase in the presence of nucleoside phosphorylase.
  • a poor nucleobase analog into the reaction system as an aqueous solution of nucleosides, the concentration of the substrate during the reaction can be increased. It was found that a product was obtained.
  • a metal cation salt that is hardly soluble in water such as magnesium hydroxide
  • the salt concentration of the reaction solution does not increase.
  • the reaction rate is prevented from decreasing due to the rise of the reaction solution, and the operation of the metal cation salt is simpler than when magnesium is added as an aqueous metal solution because the entire amount of the metal cation salt can be added before the reaction.
  • the crystals of magnesium phosphate which is a poorly water-soluble phosphate obtained by the reaction, are relatively large in size and shape suitable for filtering the reaction solution.
  • the present inventors have found that there is an advantage that the reaction solution is quickly filtered after the completion of the reaction.
  • nucleoside compound in order to industrially produce a nucleoside compound, it is desirable to accumulate the nucleoside compound in the reaction solution at a high concentration because it is necessary to improve the volumetric efficiency and the recovery rate during purification.
  • a metal cation is present in the reaction solution and reacted with phosphate ions generated during the reaction to precipitate as a poorly water-soluble salt, it is necessary to obtain a high accumulation concentration of the nucleoside compound. If the amount of each component is increased, the conversion of the reaction will decrease if the pH of the reaction solution becomes too low as the phosphoric acid and the metal cation form the corresponding poorly water-soluble salt and precipitate. The decrease in reaction conversion due to the decrease in pH of the reaction solution is considered to be due to decomposition of the generated nucleoside compound and partial inactivation of enzyme activity.
  • the present inventors have found that when a charge amount for obtaining a high accumulation concentration of a nucleoside compound in a reaction solution is used, at least one selected from pentose-1-phosphate, a nucleobase or a nucleobase analog and a metal cation is used. It has been found that by adding all or part of one of the charged amounts at a predetermined time after the start of the reaction, it is possible to prevent the reaction solution from having a high viscosity or from being solidified.
  • the present invention made based on the above findings includes the following aspects.
  • Pentose-1-phosphate and nucleobases or nucleobase analogs can form poorly water-soluble salts with phosphate ions in an aqueous reaction medium in the presence of nucleoside phosphorylase activity
  • a method for producing a nucleoside compound which reacts in the presence of a metal cation to produce a nucleoside compound wherein the method comprises, after the start of the reaction, selecting from the pentose-1 monophosphate, the nucleobase or nucleobase analog, and the metal cation.
  • a method for producing a nucleoside compound, comprising adding at least one kind of component to an aqueous reaction medium in the course of a reaction.
  • the metal cation capable of forming a poorly water-soluble salt with the phosphoric acid is selected from chloride ions, nitrate ions, carbonate ions, sulfate ions, acetate ions and hydroxide ions, and To the aqueous reaction medium as a metal salt of The method for producing the nucleoside compound according to the above [3].
  • the amount to be added by the end of the reaction is divided into two or more times, or continuously and gradually.
  • the amount of the pentose-1-phosphate, the nucleobase or the nucleobase analog, and the metal cation to be added up to the completion of the reaction is such that these components are added to the aqueous reaction medium all at once.
  • the aqueous reaction medium becomes highly viscous or solidified, and part or all of the addition amount of one or more components after the start of the reaction until the end of the reaction is dividedly added after the start of the reaction.
  • nucleoside compound according to any one of [1] to [7], wherein the nucleobase or the nucleobase analog is added as an aqueous alkaline solution.
  • a metal cation forming a poorly water-soluble salt between phosphate and mononucleotide and a nucleobase or nucleobase analog in the presence of nucleoside phosphorylase activity in an aqueous reaction medium A method for producing a nucleoside compound by reacting without adjusting the pH in the presence of a salt of the metal cation, wherein the salt of the metal cation is a poorly water-soluble salt in water. Production method.
  • the metal cation salt is at least one selected from magnesium hydroxide, magnesium oxide, magnesium carbonate and basic magnesium carbonate.
  • the pentose-monophosphate in the present invention refers to polyhydroxyaldehyde or polyhydroxyketone or a derivative thereof in which phosphoric acid has an ester bond at the 1-position.
  • Representative examples include, but are not limited to, reportose monophosphate, 2'-deoxylipose monophosphate, 2 ', 3 didoxylipose 1-phosphate, and arabinose 1-phosphate. It is not done.
  • polyhydroxyaldehyde or polyhydroxyketone is derived from natural sources such as aldopentoses such as D-arabinose, L-arabinose, D-xylose, L-lixose, and D-report. , D-xylulose, L-xylulose, ketopentoses such as D-ribulose, Doxy sugars such as D-2-dexoxylipose, D-2,3-dideoxylipose, but are not limited thereto. Not something.
  • the nucleobase used in the present invention is a heterocyclic compound containing a nitrogen atom that is a compound structural element of DNA or RNA, and is a natural or natural compound selected from the group consisting of pyrimidine, purine, and base analog. Indicates non-natural nucleobases, such as halogen atoms, alkyl groups, haloalkyl groups, alkenyl groups, haloalkenyl groups, alkynyl groups, amino groups, alkylamino groups, hydroxyl groups, and hydridic bases.
  • It may be substituted by a mouth xyamino group, an aminooxy group, an alkoxy group, a mercapto group, an alkylmercapto group, an aryl group, an aryloxy group or a cyano group.
  • halogen atom as a substituent include chlorine, fluorine, iodine, and bromine.
  • alkyl group include a methyl group, an ethyl group, and a propyl group.
  • Examples are 1 to 7 alkyl groups.
  • Examples of the haloalkyl group include haloalkyl groups having an alkyl group having 1 to 7 carbon atoms, such as fluoromethyl, difluoromethyl, trifluoromethyl, bromomethyl, and bromoethyl.
  • Examples of the alkenyl group include alkenyl groups having 2 to 7 carbon atoms, such as vinyl and aryl.
  • Examples of the haloalkenyl group include haloalkenyl groups having 2 to 7 carbon atoms, such as bromovinyl and chlorovinyl.
  • Examples of the alkynyl group include alkynyl groups having 2 to 7 carbon atoms such as ethynyl and propynyl.
  • alkylamino group examples include an alkylamino group having an alkyl group having 1 to 7 carbon atoms, such as methylamino and ethylamino.
  • alkoxy group examples include alkoxy groups having 1 to 7 carbon atoms such as methoxy and ethoxy.
  • alkyl mercapto group examples include methyl mercapto, ethyl mercapto, etc.
  • Examples are alkylmercapto groups having from 7 to 7 alkyl groups.
  • Examples of the aryl group include a phenyl group; an alkylphenyl group having an alkyl group having 1 to 5 carbon atoms such as methylphenyl and ethylphenyl; and an alkoxy group having an alkoxy group having 1 to 5 carbon atoms such as methoxyphenyl and ethoxyphenyl.
  • nucleobases having a pyrimidine skeleton include cytosine, peracyl, 5-fluorocytosine, 5-fluorouracil, 5-chlorocytosine, 5-chlorouracil, 5-promocytosine, 5-bromouracil, and 5-bromouracil.
  • nucleobases having a purine skeleton include purine, 6-aminobuline (adenine), 6-hydroxypurine, 6-fluoropurine, 6-chloropurine, 6-methylaminopurine, and 6-dimethyla.
  • base analogs include 6-amino-3-dazapurine, 6-amino-8-azapurine, 2-amino-6-hydroxy-1-azapurine, 6-amino-7-dazapurine, 6-amino-1-dazapurine, 6-amino 2-azapurine and the like.
  • the nucleoside compound refers to the above-described polyhydroxyaldehyde or the like.
  • a nucleic acid base having a pyrimidine skeleton, a nucleic acid base having a purine skeleton, or a base analog of a polyhydroxyketone or a derivative thereof at the 1-position with an N-darcoside bond and specifically, thymidine, deoxycytidine, and deoxypyridine.
  • the nucleoside phosphorylase in the present invention is a general term for enzymes that decompose the N-daricoside bond of a nucleoside compound in the presence of phosphoric acid, and the reverse reaction can be used in the present invention.
  • the enzyme used in the reaction may be of any type and origin as long as it has an activity capable of producing the target nucleoside compound from the corresponding bentose-1-phosphate and a nucleobase or nucleobase analog. Absent.
  • the enzymes are broadly classified into purine-type and pyrimidine-type, and known ones include, for example, purine-type purine nucleoside phosphorylase (EC2.4.2.1), guanosine phosphorylase (EC2.4.2.15), and the like.
  • Pyrimidine types include pyrimidine nucleoside phosphorylase (EC2.4.2.2), peridine phosphorylase (EC2.4.2.3), thymidine phosphorylase (EC2.4.2.4), and deoxyperidine Phosphorylase
  • Microorganisms having nucleoside phosphorylase activity in the present invention include purine nucleoside phosphorylase (EC 2.4.2.1), guanosine phosphorylase
  • nucleoside phosphorylase (EC2.4.2.15), pyrimidine nucleoside phosphorylase (EC2.4.2.2), One or more nucleoside phosphorylases selected from the group consisting of gin phosphorylase (EC2.4.2.3), thymidine phosphorylase (EC2.4.2.4), and deoxyperidine phosphorylase (EC2.4.2.23). It is not particularly limited as long as it is an expressing microorganism.
  • microorganisms include the genera Nocardia, the genus Microbacterium, the genus Corynebacterium, the genus Brevibacterium, the genus Cellulomonas, and the genus Cellulomonas.
  • Genus (Flabobacterium), genus Kluyvere, genus Micobacterium, genus Haemophilus, genus Mycoplana, genus Prominobacter, genus Chianti (Candida), saccharomyces (Saccharorayces) ), Bacillus, Thermophilic Bacillus, Pseudomonas, Micrococcus, Hafnia, Proteus, Vibrio, Staphylococcus Genus (Staphyrococcus), genus Propionibacterium, Genus Sar Una, Genus Planococcus, Genus Escherichia, Genus Kurthia, Genus Rhodococcus, Genus Acinetobacter, Genus Xanthobacter (Streptomyces), Rhizobiuffl, Salmonel la, Klebsiel la, Enterobacter, Erwinia, Aeromonas, Citrobacta Preferred examples include microorganism strains belonging to the genera Citro
  • the gene for the protein was obtained from the microorganism strain, It is possible to construct a recombinant plasmid into which the gene and the control region necessary for expression have been inserted and introduce it into an arbitrary host to produce a genetically modified bacterium expressing the protein. It was relatively easy.
  • transgenic bacteria having such a nucleoside phosphorylase gene introduced into an arbitrary host are also included in the microorganism expressing the nucleoside phosphorylase of the present invention.
  • the control regions required for expression here include a promoter sequence (including an operator sequence that controls transcription), a ribosome binding sequence (SD sequence), and a transcription termination sequence.
  • the liposome binding sequence includes a sequence derived from Escherichia coli or Bacillus subtilis, but is not particularly limited as long as it functions in a desired host such as Escherichia coli or Bacillus subtilis.
  • a consensus sequence in which a sequence complementary to the 3 ′ terminal region of 16 S ribosomal RNA is continuous for 4 bases or more may be created by DNA synthesis and used.
  • a transcription termination sequence is not necessarily required, a P-factor independent one such as a lipoprotein terminator or a trp operon terminator can be used.
  • sequence of these control regions on the recombinant plasmid is preferably arranged in the order of the promoter sequence, the ribosome binding sequence, the gene encoding nucleoside phosphorylase, and the transcription termination sequence from the 5 'terminal side upstream.
  • plasmid examples include PBR322, pUC18, B1uescript II SK (+), PKK223-3, pSCClOl, which have a region capable of autonomous replication in E. coli, PUB110, pTZ4, pC194, pll, ⁇ 1, ⁇ 105, etc., which have autonomously replicable regions in Bacillus subtilis, can be used as vectors.
  • plasmids capable of autonomous replication in two or more types of hosts pHV14, TRp7, ⁇ £ 7, and 873 can be used as vectors.
  • any host includes Escherichia (Escherichia) as described in Examples below. coli, but not limited to E. coli, but other microorganisms such as Bacillus, such as Bacillus subtili, and yeasts and actinomycetes. included.
  • the nucleoside phosphorylase or the microorganism having the enzymatic activity in the present invention a commercially available enzyme, a microbial cell having the enzymatic activity, a treated bacterial cell, or an immobilized product thereof can be used.
  • the treated bacterial cells were prepared by, for example, acetone-dried bacterial cells, mechanical disruption, ultrasonic crushing, freeze-thaw treatment, pressure reduction, osmotic pressure treatment, autolysis, cell wall decomposition treatment, surfactant treatment, etc. It is a cell crushed product, etc., and may be used after repeated purification by ammonium sulfate precipitation, acetone precipitation, or column chromatography if necessary.
  • a metal cation capable of forming a sparingly water-soluble salt with a phosphate ion refers to a metal cation that forms a sparingly water-soluble salt with a phosphate ion by-produced in the reaction and can precipitate in a reaction solution It is not limited.
  • Such include metal cations such as sodium, potassium, calcium, magnesium, aluminum, barium, iron, cobalt, nickel, copper, silver, molybdenum, lead, zinc, lithium, and the like.
  • metal salts which are industrially high in versatility and safety and do not affect the reaction are particularly preferable, and examples of such salts include magnesium, calcium ion, barium ion and aluminum ion. Two or more metal cations may be used in combination as long as the effects of the present invention are not impaired.
  • metal cations that can form poorly water-soluble salts with phosphate ions include metal ions that can form poorly water-soluble salts with phosphoric acid, such as chloride ions, nitrate ions, carbonate ions, sulfate ions, and acetic acid. Selected from ions or hydroxyl ions
  • Aluminum, aluminum acetate, sodium bicarbonate, sodium carbonate, sodium hydroxide, hydrogen bicarbonate, carbon dioxide lime, hydroxylation lime examples thereof include lithium hydrogen carbonate, lithium carbonate, lithium hydroxide, and magnesium hydroxide.
  • the metal cation in the present invention may be present in the reaction solution as a salt of pentose-1 monophosphate. More specifically, Calcium salt of 1-phosphate-calcium salt, 2-phosphoric acid-calcium salt, 2-doxylipose-monophosphate and calcium salt, 2,3-dideoxylipo-su-1-phosphoric acid 'calcium salt, arabinose_1-phosphate' Salt, Report-1-Barium phosphate, 2-Doxylipose-1-Barium phosphate, 2,3-Dideoxylipose-1-Barium phosphate, Alappinose-1-Phosphoric acid ⁇ Barium salt, Report— 1 _Phosphate ⁇ Aluminum salt, 2—Doxylipose—Monophosphate • Aluminum salt, 2,3-Dideoxylipose—1—Phosphoric acid 'Aluminum salt, arabinose–1 monophosphate 'Aluminum salt, and the like.
  • the amount of the metal cation in the aqueous solution Is 0.5 to 20 times, preferably 1 to 4 times, the molar amount of the nucleobase or nucleobase analog.
  • the aqueous solution may be added to the reaction medium at once before the reaction, or the aqueous solution may be added. May be sequentially added to the reaction medium to cause a reaction.
  • the sequential addition means that the nucleobase or nucleobase analog is dissolved or suspended in an aqueous solution of a salt of a metal cation and divided into two or more portions or 1 minute to 24 hours, preferably 30 minutes to 24 hours. Indicates that it is continuously added to the reaction system over time.
  • bentose-monophosphate (2) nucleobase or nucleobase analog
  • the problem such as solidification can be avoided by adding at least one component selected from metal cations to the aqueous reaction medium during the reaction.
  • the initiation of the reaction means pentose-1 in the presence of nucleoside phosphorylase activity.
  • the components to be added after the start of the reaction are added in a single batch method as described above, in a batch or continuous method divided into two or more batches, or in a combination of batch and continuous methods. can do.
  • a method of dividing and adding at least one of at least one component selected from the above three components can be adopted. That is, when a plurality of components are added after the start of the reaction, an addition method can be selected for each component.
  • the amount of the aqueous solution of the metal cation salt used is 0.5 to 2 with respect to the nucleic acid base or the nucleobase analog.
  • the amount is a 0-fold molar amount, preferably a 1- to 4-fold molar amount.
  • the salts of metal cations that form poorly water-soluble salts with phosphoric acid particularly those that are poorly water-soluble in water, add the amount added to the aqueous reaction medium before the start of the reaction and before the end of the reaction. Since it is possible to adjust the pH of the reaction solution in some cases, it is suitable as the metal cation salt used in the present invention.
  • Representative examples of such metal cation salts include hydroxyl compounds of various metal cations, particularly magnesium hydroxide.
  • the aqueous reaction medium used in the method of the present invention is a reaction medium mainly composed of water, and the reaction utilizing the enzyme activity intended in the present invention proceeds, and the effect of adding a metal cation can be obtained. Anything should do.
  • Examples of such an aqueous reaction medium include water or an aqueous reaction medium obtained by adding a water-soluble organic solvent to water.
  • Examples of the organic solvent include lower alcohols such as methanol and ethanol, acetone, dimethyl sulfoxide, and mixtures thereof.
  • the amount of the solvent used is not particularly limited and may be used to the extent that the reaction proceeds favorably.
  • the amount of the water-soluble organic solvent with respect to water is preferably in the range of 0.1 to 70% by weight. Can be.
  • the reaction solution using the aqueous reaction medium can be prepared as a buffer.
  • this buffer a known buffer that can be used for the enzyme reaction according to the present invention can be used. Can be.
  • the synthesis reaction of the nucleoside compound in the present invention is carried out by the following steps: the target nucleoside compound, pentose-1-monophosphate as a substrate and a nucleic acid base, nucleoside phosphorylase as a reaction catalyst or a microorganism having the enzyme activity, and phosphorus
  • appropriate reaction conditions such as pH and temperature may be selected, but usually pH 5 to 11, preferably pH 7.
  • the temperature can be in the range of 5 to 10.0, preferably 8.0 to 10, and the temperature can be in the range of ice temperature to 80 ° C, preferably 10 to 60 ° C.
  • the conversion of the reaction may decrease due to the stability of the target substance or substrate, the decrease in enzyme activity, or the formation of poorly water-soluble salts with phosphoric acid. is there.
  • an acid such as hydrochloric acid or sulfuric acid or an alkali such as sodium hydroxide or potassium hydroxide may be added as needed.
  • a poorly water-soluble metal cation salt, particularly a metal cation hydroxide is used, it may not be necessary to adjust the pH of the reaction solution.
  • the concentration of bentose-1-phosphate and nucleobase used in the reaction is suitably about 0.1 to 100 mM, and the molar ratio between the two is determined by the ratio of nucleobase added to pentose-1-1.
  • the reaction can be carried out at 0.1 to 10 times the molar amount of phosphoric acid or a salt thereof. Considering the reaction conversion, the molar amount is preferably 0.95 times or less.
  • the reaction time varies depending on the starting material, the type of the aqueous solvent, and the reaction temperature, but is 1 minute to 78 hours, preferably 30 minutes to 24 hours.
  • the metal salt capable of forming a sparingly water-soluble salt with the phosphoric acid to be added is 0.1 to 10 times, more preferably 0.5 to 10 times, the molar amount of pentose-1-phosphate used in the reaction. It is better to add 5 times the molar amount.
  • the nucleobase of the substrate or the nucleoside compound of the product may be present in the reaction solution without being completely dissolved, but the present invention is also applied to such a case.
  • the reaction solution does not solidify at least one selected from bentose-1-phosphate, a metal cation capable of forming a poorly water-soluble salt with phosphoric acid, a salt thereof, and a nucleic acid base.
  • a metal cation capable of forming a poorly water-soluble salt with phosphoric acid, a salt thereof, and a nucleic acid base is added if not solidified.
  • Bento-1-phosphoric acid or a salt thereof and a nucleobase or nucleobase analog are batch-charged, the reaction is started, the nucleoside compound is accumulated to an appropriate concentration, and the phosphoric acid is poorly soluble in water.
  • the accumulation concentration of the nucleoside compound is preferably at least 10 mM, more preferably at least 30 mM.
  • Bento-1-phosphoric acid or a salt thereof and a nucleobase or nucleobase analog are charged at once, and after the reaction is started, phosphate is gradually or continuously adjusted to the accumulated concentration of the nucleoside compound.
  • the nucleic acid base or the nucleic acid base is added so that the reaction solution does not solidify.
  • the initial addition amount of the nucleobase or nucleobase analog is preferably 3 OmM or less, more preferably 1 OmM or less.
  • Pentose-1-monophosphate or a salt thereof after adding the nucleobase or nucleobase analog and a metal cation or a salt thereof that can form a poorly water-soluble salt with phosphoric acid at a time, so that the reaction solution does not solidify. Is added stepwise or continuously.
  • the initial addition amount of bentose-1-phosphoric acid or a salt thereof is preferably 3 O mM or less, more preferably 1 O mM or less.
  • Bento-1-monophosphate or a salt thereof, a metal cation capable of forming a poorly water-soluble salt with phosphoric acid or a salt thereof, a nucleobase or a nucleobase analog is added stepwise or continuously to the enzyme solution.
  • the addition amount of pentose-1-phosphate or a salt thereof, or a nucleobase or nucleobase analog at the start of the reaction is preferably 3 OmM or less, more preferably 1 OmM or less.
  • conventional methods such as concentration, crystallization, dissolution, electrodialysis, and adsorption / desorption with an ion exchange resin or activated carbon can be applied.
  • 2,5 mM 2'-Doxylipose 1 _ di (monocyclohexylammonium) phosphate salt (manufactured by SI GMA), 2.5 mM adenine (manufactured by Wako Pure Chemical Industries, special grade), 12 units Zm 1 purine nucleoside phosphorylase (
  • a reaction solution lm1 comprising 1 OmM calcium chloride (Wako Pure Chemical, special grade) and 1 OmM Tris-HCl buffer (pH 7.4) was reacted at 30 ° (:, 24 hours) after completion of the reaction.
  • the reaction mixture was diluted and analyzed to find that 2.40 mM deoxyadenosine had been formed, at which time the reaction yield was 96.0%.
  • Example 2 The reaction was carried out in the same procedure and under the same conditions as in Example 1 except that calcium chloride was not added. After completion of the reaction, no precipitate was formed. When the reaction solution was diluted and analyzed, 2.0 imM of deoxyadenosine was produced. At that time, the reaction yield was 80.4%.
  • Example 2 The reaction was carried out in the same procedure and under the same conditions as in Example 1 except that calcium chloride was not added. After completion of the reaction, no precipitate was formed. When the reaction solution was diluted and analyzed, 2.0 imM of deoxyadenosine was produced. At that time, the reaction yield was 80.4%.
  • Example 2 Example 2
  • the reaction was performed in the same procedure and under the same conditions as in Example 1 except that the calcium chloride concentration was changed to 2.5 mM. At the end of the reaction, a white precipitate had formed. When the reaction mixture was diluted and analyzed, 2.27 mM of deoxyadenosine was produced. At that time, the reaction yield was 90.8%.
  • the reaction was performed in the same procedure and under the same conditions as in Example 1 except that barium chloride was added instead of calcium chloride. At the end of the reaction, a white precipitate had formed. When the reaction solution was diluted and analyzed, 2.3 ImM deoxyadenosine was produced. At that time, the reaction yield was 92.4%.
  • the reaction was carried out in the same procedure and under the same conditions as in Example 4 except that the barium chloride concentration was changed to 2.5 mM. At the end of the reaction, a white precipitate had formed. The reaction mixture was diluted and analyzed, and it was found that 2.27 mM of deoxyadenosine was produced. At that time, the reaction yield was 90.2%.
  • barium 2-phosphate monophosphate was prepared.
  • the reaction solution lm1 composed of 4) was reacted at 30 ° C. for 24 hours. After the completion of the reaction, a white precipitate was formed. When the reaction solution was diluted and analyzed, 2.4 OmM Deoxyadenosine was produced. At that time, the reaction yield was 91.1%.
  • the reaction was carried out in the same procedure and under the same conditions as in Example 7 except that calcium nitrate was not added. After completion of the reaction, no precipitate was formed. When the reaction solution was diluted and analyzed, 1.88 mM thymidine was produced. At that time, the reaction yield was 75.2%.
  • Example 9 The reaction was carried out in the same procedure and under the same conditions as in Example 8 except that calcium chloride was not added. After completion of the reaction, no precipitate was formed. The reaction mixture was diluted and analyzed, which revealed that 1.54 mM of 2,6-diaminopurine liposide was produced. At that time, the reaction yield was 61.6%.
  • Example 9 The reaction was carried out in the same procedure and under the same conditions as in Example 8 except that calcium chloride was not added. After completion of the reaction, no precipitate was formed. The reaction mixture was diluted and analyzed, which revealed that 1.54 mM of 2,6-diaminopurine liposide was produced. At that time, the reaction yield was 61.6%. Example 9
  • E. coli chromosome DNA was prepared as follows. Escherichia coli UK—12 /-10 strains (31; & & 6116 companies) were inoculated into LB medium of 501111, cultured overnight at 37 ° C, collected, and contained lysozyme lmg / m1 Lysed with lysate. After the lysate was subjected to phenol treatment, DNA was precipitated by ethanol precipitation using a conventional method. The resulting DNA precipitate was collected by winding it around a glass rod, washed, and used for PCR.
  • the primers for PCR include the nucleotide sequences shown in SEQ ID NOS: 1 and 2 designed based on the nucleotide sequence of the known deoD gene of Escherichia coli (GenBank accession No. AE000508 (coding region is nucleotides 11531-12250)). Oligonucleotides (synthesized by outsourcing to Hokkaido System Science Co., Ltd.) were used. .
  • primers have EcoRI and HindIII restriction enzyme recognition sequences near the 5 'end and near the 3' end, respectively.
  • PCR PCR was performed under the conditions of a reaction cycle consisting of 55 ° (:, 1 minute, extension reaction: 74 ° (:, 1 minute) and 30 cycles.
  • the above reaction product and plasmid pUC18 (Takara Shuzo Co., Ltd.) were digested with EcoRI and HindIII, and ligated using Ligation'HI (Toyobo Co., Ltd.).
  • the plasmid was used to transform Escherichia coli DH5.
  • the transformant was cultured on an LB agar medium containing 50 ag / m 1 of ampicillin (Am) and X-G a 1 (5-promo 4-monocloth_ 3 -indolyl 1 / 3-D-galactoside). A transformant which was resistant and had a white colony was obtained.
  • a plasmid was extracted from the thus obtained transformant, and the plasmid into which the target DNA fragment was inserted was named PUC-PNP73.
  • the transformant thus obtained was named Escherichia coli E. coli MT-10905.
  • the Escherichia coli MT-10905 strain was cultured with shaking at 37 ° C for 1 ° C in 10 OmL of an LB medium containing 50 g / ml of Am.
  • the obtained culture was centrifuged at 13000 rpm at 1 Omin to collect the cells.
  • the cells were suspended in 1 OmL of 10 mM Tris-HCl buffer (PH 8.0) and disrupted by ultrasonication, and used as the enzyme source.
  • Reaction mixture consisting of 200 mM thymine (manufactured by Wako Pure Chemical Industries, special grade), 20 OmM Tris-HCl buffer (H 8.0), and 20 units / m 1 thymidine phosphorylase (manufactured by SIGMA)
  • SIGMA 20 OmM Tris-HCl buffer
  • SIGMA 20 units / m 1 thymidine phosphorylase
  • a reaction was carried out in the same manner as in Example 12, except that 0.5 mL of a 20 OmM thymine solution was added simultaneously with the addition of the enzyme source without the presence of the Tris-HCl buffer. As a result, The reaction solution solidified.
  • nucleoside compounds produced in the following examples were quantified by high performance liquid chromatography under the following analytical conditions.
  • 2-Deoxylipose 1 _ di (monocyclohexylammonium) phosphate (1 g, 2.42 mmol 1, manufactured by SI GMA) is suspended in methanol (10 g), and ammonia gas (0.62 g, 36. 5mmo 1) and stir at 50 ° C for 2 hours.
  • the resulting reaction mass was filtered at 30 ° C., washed twice with methanol (5 g), dried, and the desired 2′-dexoxylipose 1 _ di (ammonium) phosphate (0.57 g) was obtained in a yield. Obtained at 95%. '
  • Example 15 2-Doxylipose 1-di (ammonium) phosphate salt (2.0 g, 7.72 mmol 1) synthesized in Reference Example 1 was dissolved in water (47.1 g), and obtained in Example 9. Guanine (1 g, 6.62 mmol 1) was dissolved in a 5.6 wt% aqueous potassium hydroxide solution (16.5 g, 16.5 mmol 1) in the reaction solution to which the enzyme solution (0.1 ml) was added. The solution was added dropwise at 50 ° C. over 1 hour. After the reaction mass was reacted at the same temperature for 2 hours, the reaction mass was analyzed by HPLC, and the desired 2′-deoxyguanosine was obtained with a reaction yield of 79%.
  • 2-Doxylipose 1-di (ammonium) phosphate salt (2.0 g, 7.72 mmol) synthesized in Reference Example 1 was dissolved in water (47.1 g), and the enzyme solution obtained in Example 9 was dissolved in water (47.1 g). 0.1 ml) was added to the reaction solution, and guanine (1 g, 6.62 mmo 1) was dissolved in 2.4 wt% aqueous solution of lithium hydroxide (16.5 g, 16.5 mmo 1). The solution was added dropwise at 50 ° C for 1 hour. After reacting the reaction mass at the same temperature for 2 hours, the reaction mass was analyzed by HPLC, and the desired 2'-deoxyguanosine was obtained at a reaction yield of 96%.
  • Example 17 2-Doxylipose 1-di (ammonium) phosphate salt (2.0 g, 7.72 mmol) synthesized in Reference Example 1 was dissolved in water (30 g), and the enzyme obtained in Example 9 was dissolved. To the reaction solution to which the base solution (0.05 ml) was added, to 2.4 wt% lithium hydroxide aqueous solution (16.5 g, 16.5 mmo 1) and to adenine (0.89 g, 6.62 mmo 1) ) was added dropwise at 50 ° C. over 1 hour. After reacting the reaction mass at the same temperature for 2 hours, the reaction mass was analyzed by HP LC, and the desired 2, -deoxyadenosine was obtained at a reaction yield of 98%.
  • Example 1 9-Dexoxylipose monomonophosphate diammonium salt (1.67 g, 6.7 mmo 1), adenine (0.87 g, 6.4 mmo 1) and magnesium hydroxide in 9 pure water (13 g) (0.59 g, 10.lmmol) was added.
  • the enzyme solution (0.05 ml) obtained in Example 9 was added to the mass, and the mixture was reacted under stirring for 45 hours and 45 hours. After 3 hours, the reaction mass was analyzed by HP LC, and the desired 2′-deoxyadenosine was obtained with a reaction yield of 98%.
  • the pH during the reaction at this time was 8 to 10.
  • Example 20 2-Doxylipose 1-ammonium phosphate (1.67 g, 6.7 mmo 1), guanine (0.92 g, 6.1 mmo 1) and magnesium hydroxide in pure water (15 g) (0.59 g, 10.lmmol) was added.
  • the enzyme solution (0.2 ml) obtained in Example 9 was added to the mass, and the mixture was reacted at 50 ° (with stirring for 6 hours). After 6 hours, the reaction mass was analyzed by HPLC. Deoxyguanosine was obtained at a reaction yield of 98%, and the pH during the reaction was 8 to 10.
  • Example 21 2-Doxyliposite 1-phosphate diammonium salt in pure water (13 g) (1.67 g, 6.7 mmo 1), adenine (0.87 g, 6.4 mmo 1) and hydroxylated Magnesium (0.59 g, 10.lmmol) was added.
  • the enzyme solution (0.05 ml) obtained in Example 9 was added to the mass, and the mixture was reacted under stirring at 45 ° C for 3 hours while adjusting the pH to 8.5 with acetic acid. After 3 hours, the reaction mass was analyzed by HPLC, and the desired 2′-deoxyadenosine was obtained at a reaction yield of 98%.
  • Example 9 As in Example 21, the reaction pH was changed to acetic acid or ammonia, & The yield obtained when the reaction was carried out while adjusting H using ⁇ ⁇ 1 is shown in Table 7.
  • a metal salt capable of forming a poorly water-soluble salt with phosphoric acid is added.
  • the by-produced phosphoric acid is excluded from the reaction system, and an improvement in the reaction yield, which has not been achieved by the prior art, is achieved.
  • magnesium hydroxide When magnesium hydroxide is used as a metal cation salt capable of forming a poorly water-soluble salt with phosphate ions, the solubility of magnesium hydroxide in water is low, (1) Inactivation of the enzyme is prevented because the pH of the reaction solution hardly changes during the reaction. (If a water-soluble metal cation salt other than magnesium hydroxide is used, the pH of the reaction solution will increase during the reaction. It slightly changes to the strength side),
  • the metal cation can be added at a time before the reaction. Further, when magnesium ion is used as the metal cation, the filtration rate is remarkably improved in the step of filtering the reaction solution after the completion of the reaction, which is industrially very useful.

Landscapes

  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Saccharide Compounds (AREA)

Description

明 細 書 ヌクレオシド化合物の製造方法
技 術 分 野
本発明は、 ヌクレオシドホスホリラ一ゼを用いたヌクレオシド化合物の製造 方法に関する。 各種のヌクレオシド及びそのアナログ化合物は、 抗ウィルス医 薬品、 抗ガン医薬品やアンチセンス医薬品などの原料または原体として使用さ れる。 背 景 技 術
ヌクレオシドホスホリラーゼはリン酸存在下でヌクレオシドの N—グリコシ ド結合を加リン酸分解する酵素の総称であり、 リポヌクレオシドを例にすると 次式で表される反応を触媒する。
リポヌクレオシド +リン酸 (塩) —核酸塩基 +リポース 1—リン酸 プリンヌクレオシドホスホリラーゼとピリミジンヌクレオシドホスホリラー ゼに大別される該酵素は、 広く生物界に分布し、 哺乳類、 鳥類、 魚類などの組 織、 酵母、 細菌に存在する。 この酵素反応は可逆的であり、 逆反応を利用した 各種ヌクレオシド化合物の合成が以前より知られている。
例えば、 2 ' —デォキシリボース 1 _リン酸と核酸塩基 (チミン、 アデニン またはグァニン) からチミジン (特開平 0 1— 1 0 4 1 9 0号公報) 、 2 ' _ デォキシアデノシン (特開平 1 1一 1 3 7 2 9 0号公報) または 2 ' —デォキ シグアノシン (特開平 1 1一 1 3 7 2 9 0号公報) を製造する方法が知られて いる。 更に、 Agr i c. , Bi o l . , Chem. , Vol . 50 (1) . , ΡΡ. 121〜126, (1986)では、 イノシンをリン酸存在下で、 Enterobac ter aerogenes 由来のプリンヌクレオシ ドホスホリラーゼを用いた反応により、 リポース 1ーリン酸とヒポキサンチン に分解した後、 イオン交換樹脂で単離したリポース 1一リン酸と 1 , 2, 4一 トリァゾールー 3—カルボキサミドより、 同じく Enterobac ter aerogenes由来 のプリンヌクレオシドホスホリラ一ゼにより、 抗ウィルス剤であるリバピリン を製造する技術が報告されている。
しかしながら、 該酵素の逆反応を利用して、 ペントースー 1—リン酸または その塩と核酸塩基よりヌクレオシド化合物を生成させる反応は平衡反応である ため、 転化率が向上しないという技術的欠点を有していた。
発 明 の 開 示
本発明が解決すべき課題は、 工業的にヌクレオシド化合物を製造するに際し て、 高い転化率で反応を進行させ且つ簡便なる方法、 および原料コストの低減 化ならびに製品純度の向上に寄与する手段を提供することにある。
すなわち、 本発明の目的は、 ペントース— 1一リン酸と核酸塩基もしくは核 酸塩基アナログとを、 ヌクレオシドホスホリラーゼ活性の存在下に反応させる 工程を有し、 同反応におけるヌクレオシド化合物の転化率が向上している簡便 且つ汎用性の高いヌクレオシド化合物の製造方法を提供することにある。 本発明者等はこれら課題を解決するため鋭意検討した結果、 反応液にリン酸 イオンと難水溶性の塩を形成しうる金属カチオンを存在させると、 反応の副生 成物であるリン酸イオンが難水溶性の塩として沈殿し反応系外に除外されるこ とにより、 反応の平衡がヌクレオシド化合物合成方向へ移動し、 反応転化率が 向上することを見出した。
更に、 本発明者らは、 リン酸と難水溶性の塩を形成しうる金属カチオンをべ ントース— 1ーリン酸の塩として反応液中に存在させることにより、 上記のリ ン酸と難水溶性の塩を形成しうる金属カチオンまたはその塩を添加した場合と 同等の効果が得られることを見出した。
また、 本発明者らはペントースー 1ーリン酸をヌクレオシドホスホリラーゼ 存在下、 リン酸基と核酸塩基または核酸塩基アナログとの交換反応によりヌク レオシド化合物を製造する方法において、 一般的に溶解度が低く反応性の乏し い核酸塩基アナログをアル力リ金属水溶液として反応系に導入することにより、 反応時の基質濃度を向上させる事が出来るため、 高転化率でヌクレオシド化合 物が得られることを見出した。
更に、 このヌクレオシド化合物の製造に際して、 アルカリ金属水溶液として リチウムイオン或いはマグネシウムイオンを含有する金属カチオンの塩の水溶 液を用いると、 反応で生成するリン酸をリン酸リチウム或いはリン酸マグネシ ゥムとして不溶化する為に、 酵素反応の平衡がヌクレオシド化合物の合成側に 傾くことで、 従来技術では成し得なかった高選択性、 高収率でヌクレオシド化 合物が得られることを見出した。
また、 特に、 リン酸と難水溶性の塩を形成し得る金属カチオンの塩として水 酸化マグネシウム等の水に難溶性である金属カチオンの塩を用いると、 反応液 の塩濃度が上昇しないため、 反応液の上昇によってもたらされる反応速度の低 下が防止されること、 またそのような金属カチオンの塩は反応前に全量添加で きるためマグネシウムを金属水溶液として添加する場合に比して操作が簡便に なることに加えて、 得られた反応液の濾過性が顕著に向上するなどの利点があ ることも見出した。
更に、 金属カチオンの塩として水酸化マグネシウムを用いると、 反応により 得られる難水溶性のリン酸塩であるリン酸マグネシゥムの結晶が比較的反応液 のろ過に適した大きさ ·形状であるため、 反応終了後の反応液のろ過が迅速に 行われる利点があることを本発明者らは見出した。
更に、 工業的にヌクレオシド化合物を生産するためには、 容積効率や精製時 の回収率を向上させる必要から反応液中に高濃度にヌクレオシド化合物を蓄積 させることが望ましい。 上記のように反応液中に金属カチオンを存在させて反 応 進行に伴って生じるリン酸イオンと反応させて難水溶性の塩として沈殿さ せる場合に、 ヌクレオシド化合物の高蓄積濃度を得るために各成分の量を高め ると、 リン酸と金属カチオンが対応する難水溶性の塩を形成して沈殿するに従 つて反応液の p Hが低下し過ぎると反応転化率が低くなる。 この反応液の p H の低下による反応転化率の低下は生成されたヌクレオシド化合物の分解や酵素 活性の部分的な失活などによるものと考えられる。
このような場合に、 所望とする反応転化率を維持するには反応液の p Hを調 整することが好ましい。 ところが、 ヌクレオシド化合物の高蓄積濃度を得るた めに初期 (反応開始時) の仕込み量を多くすると、 反応の進行に伴って反応液 の粘度が上昇し、 さらには反応液の固化が生じる場合があった。 そして、 この ような反応液の粘度の上昇や固化が生じると上述した所望とする p H調整が困 難になる。 また、 反応液の粘度が上昇すると反応液の混合攪拌にかかる動力が 過大となり、 設備の故障の原因ともなる。
本発明者らは、 ヌクレオシド化合物の反応液中での高蓄積濃度を得るための 仕込み量を用いた場合に、 ペントース— 1—リン酸、 核酸塩基または核酸塩基 アナログ及び金属カチオンから選択された少なくとも 1種の仕込み量の全部ま たは一部を反応開始後の所定の時期に添加することで反応液の高粘度化または 固化を防止することができることを見出した。
即ち、 上記の各知見に基づいて成された本願発明には以下の各態様が含まれ る。
[ 1 ] 水性反応媒体中で、 ヌクレオシドホスホリラーゼ活性の存在下に、 ペン ト一ス— 1—リン酸と、 核酸塩基または核酸塩基アナログとを、 リン酸イオン と難水溶性の塩を形成し得る金属カチオンの存在下に反応させて、 ヌクレオシ ド化合物を生成させるヌクレオシド化合物の製造方法であって、反応開始後に、 前記ペントース— 1一リン酸、 前記核酸塩基または核酸塩基アナログ及び前記 金属カチオンから選択した少なくとも 1種の成分を反応途中の水性反応媒体中 に添加することを特徴とするヌクレオシド化合物の製造方法。
[ 2 ] 前記ベント一ス— 1一リン酸が、 リポース一 1一リン酸または 2—デォ キシリポース— 1—リン酸である上記 [ 1 ]に記載のヌクレオシド化合物の製造 方法。
[ 3 ] 前記リン酸と難水溶性の塩を形成し得る金属カチオンが、 カルシウムィ オン、 バリウムイオン、 アルミニウムイオン、 リチウムイオン及びマグネシゥ ムイオンの中から選ばれる 1 種以上である上記 [1]又は [ 2 ]に記載のヌクレオ シド化合物の製造方法。
[ 4 ] 前記リン酸と難水溶性の塩を形成しうる金属カチオンを、 塩素イオン、 硝酸イオン、 炭酸イオン、 硫酸イオン、 酢酸イオンおよび水酸化イオンの中か ら選ばれる 1種類以上のァニオンとの金属塩として水性反応媒体中に添加する 上記 [ 3 ]に記載のヌクレオシド化合物の製造方法。
[5] 前記リン酸と難水溶性の塩を形成しうる金属カチオンを、 ベント一ス— 1一リン酸の塩として水性反応媒体中に添加する上記 [3]に記載のヌクレオシ ド化合物の製造方法。
[6] 前記反応開始後に前記水性反応媒体に添加される少なくとも 1種の成分 のうちの少なくとも 1種について、 その反応終了までに添加する量を 2回以上 に分割して、 あるいは連続的に徐々に前記水性反応媒体に添加することを特徴 とする上記 [ 1 ]に記載のヌクレオシド化合物の製造方法。
[7] 前記ペントースー 1—リン酸、 前記核酸塩基または核酸塩基アナログ及 び前記金属カチオンの 3種の成分の反応終了までに添加する量が、 これら成分 を水性反応媒体に一括して添加 ·反応させた場合に水性反応媒体に高粘度化ま たは固化が生じ、 且つ前記反応開始後の一種以上の成分の反応終了までの添加 量の一部又は全部が前記反応開始後に分割添加することで該反応液の高粘度化 または固化が防止されることを特徵とする上記 [1]または [6]に記載のヌクレ オシド化合物の製造方法。
[8] 前記核酸塩基または核酸塩基アナログを、 アルカリ水溶液として加える ことを特徴とする上記 [1:]〜 [7]のいずれか一項に記載のヌクレオシド化合物 の製造方法。
[9] 前記核酸塩基または核酸塩基アナログを溶解するアルカリ水溶液が、 水 酸化リチウム、 炭酸リチウム及び炭酸水素リチウムのいずれか一つ以上を含有 する溶液であることを特徵とする上記 [8]記載のヌクレオシド化合物の製造方 法。
[10] 水性反応媒体中で、 ヌクレオシドホスホリラーゼ活性の存在下に、 ぺ ント一ス— 1一リン酸と、 核酸塩基または核酸塩基アナログとを、 リン酸と難 水溶性の塩を形成する金属カチオンの塩の存在下、 pHを調整せずに反応させ て、ヌクレオシド化合物を生成させるヌクレオシド化合物の製造方法であつて、 該金属カチオンの塩が水に難水溶性の塩であることを特徴とする製造方法。
[1 1] 金属カチオンの塩が、 水酸化マグネシウム、'酸化マグネシウム、 炭酸 マグネシウム及び塩基性炭酸マグネシウムから選択された少なくとも 1種であ る上記 [10]記載のヌクレオシド化合物の製造方法。
[12] 反応の際の水性反応媒体の pHが 7. 5から 10. 0の範囲であるこ とを特徴とする上記 [1 1]記載のヌクレオシド化合物の製造方法。
[13] 反応により得られた反応液をろ過して、 反応液中の不溶性物質を除去 し、 ヌクレオシド化合物を含有するろ液を得る工程を有することを特徴とする 上記 [ 1 1 ]に記載のヌクレオシド化合物の製造方法。 発明を実施するための最良の形態
本発明におけるペントースー 1一リン酸とは、 ポリヒドロキシアルデヒドま たはポリヒドロキシケトンおよびその誘導体の 1位にリン酸がエステル結合し たもののことである。 その代表例を挙げると、 例えばリポース 1一リン酸、 2 '—デォキシリポース 1一リン酸、 2 ', 3 ジデォキシリポース 1—リン 酸、 ァラビノース 1—リン酸などが挙げられるが、 これらに限定されるもので はない。
ここでいうポリヒドロキシアルデヒドまたはポリヒドロキシケトンとは、 天 然物由来のものとしては、 D—ァラビノース、 L—ァラビノース、 D—キシロ ース、 L一リキソ一ズ、 D—リポースのようなアルドペントース、 D—キシル ロース、 L一キシルロース、 D—リブロースのようなケトペントース、 D— 2 —デォキシリポース、 D— 2, 3—ジデォキシリポースのようなデォキシ糖類 を挙げることができるが、 これらに限定されるものではない。
これらペン! ^一スー 1—リン酸は、 ヌクレオシドホスホリラ一ゼの作用によ りヌクレオシド化合物の加リン酸分解反応を行って製造する方法 (J . B i o 1. C h em. Vo l . 184、 437、 1950) や、 ァノマー選択的な化 学合成法等によっても調製することができる。
本発明に用いられる核酸塩基とは DN Aや RN Aの化合構造形式要素となつ ている窒素原子を含む複素環式化合物であり、 ピリミジン、 プリン、 あるいは 塩基アナログからなる群から選択された天然または非天然型の核酸塩基を示し、 それら塩基はハロゲン原子、 アルキル基、 ハロアルキル基、 アルケニル基、 ハ ロアルケニル基、 アルキニル基、 アミノ基、 アルキルアミノ基、 水酸基、 ヒド 口キシァミノ基、 アミノォキシ基、 アルコキシ基、 メルカプト基、 アルキルメ ルカプト基、 ァリール基、 ァリールォキシ基またはシァノ基によって置換され ていてもよい。
置換基としてのハロゲン原子としては、 塩素、 フッ素、 ヨウ素、 臭素が例示 される。 アルキル基としては、 メチル基、 ェチル基、 プロピル基などの炭素数
1〜 7のアルキル基が例示される。ハロアルキル基としては、フルォロメチル、 ジフルォロメチル、 トリフルォロメチル、 ブロモメチル、 ブロモェチルなどの 炭素数 1〜 7のアルキル基を有するハロアルキル基が例示される。 アルケニル 基としては、ビニル、ァリルなどの炭素数 2〜 7のアルケニル基が伊 !j示される。 ハロアルケニル基としては、 プロモビニル、 クロロビニルなどの炭素数 2〜 7 のアルケニルを有するハロアルケニル基が例示される。アルキニル基としては、 ェチニル、 プロピニルなどの炭素数 2〜 7のアルキニル基が例示される。 アル キルアミノ基としては、 メチルァミノ、 ェチルァミノなどの炭素数 1〜7のァ ルキル基を有するアルキルアミノ基が例示される。 アルコキシ基としては、 メ トキシ、 エトキシなどの炭素数 1〜7のアルコキシ基が例示される。 アルキル メルカプト基としては、 メチルメルカプト、 ェチルメルカプトなどの炭素数 1
〜 7のアルキル基を有するアルキルメルカプト基が例示される。 ァリール基と しては、 フエニル基;メチルフエニル、 ェチルフエニルなどの炭素数 1〜 5の アルキル基を有するアルキルフエニル基;メトキシフエニル、 エトキシフエ二 ルなどの炭素数 1〜 5のアルコキシ基を有するアルコキシフエニル基;ジメチ ルァミノフエニル、 ジェチルァミノフエニルなどの炭素数 1〜 5のアルキルァ ミノ基を有するアルキルアミノフエ二ル基; クロ口フエニル、 ブロモフエニル などのハロゲノフエニル基などが例示される。
ピリミジン骨格を有する核酸塩基を具体的に例示すれば、 シトシン、 ゥラシ ル、 5 _フルォロシトシン、 5—フルォロウラシル、 5—クロロシ卜シン、 5 一クロロウラシル、 5—プロモシトシン、 5—ブロモウラシル、 5—ョ—ドシ トシン、 5—ョ—ドウラシル、 5—メチルシトシン、 5—メチルゥラシル (チ ミン) 、 5—ェチルシトシン、 5—ェチルゥラシル、 5—フルォロメチルシト シ.ン、 5—フルォロウラシル、 5—トリフルォロシトシン、 5—トリフルォロ ゥラシル、 5—ビニルゥラシル、 5—ブロモビニルゥラシル、 5—クロロビニ ルゥラシル、 5—ェチニルシトシン、 5—ェチニルゥラシル、 5—プロピニル ゥラシル、 ピリミジン一 2 _オン、 4—ヒドロキシァミノピリミジン一 2 —ォ ン、 4ーァミノォキシピリミジン一 2 —オン、 4—メトキシピリミジン一 2 _ オン、 4—ァセトキシピリミジン— 2 —オン、 4—フルォロピリミジン一 2— オン、 5 —フルォロピリミジン— 2—オンなどが挙げられる。
プリン骨格を有する核酸塩基を具体的に例示すれば、 プリン、 6—アミノブ リン (アデニン) 、 6—ヒドロキシプリン、 6—フルォロプリン、 6—クロ口 プリン、 6—メチルァミノプリン、 6—ジメチルァミノプリン、 6—トリフル ォロメチルァミノプリン、 6—べンゾィルァミノプリン、 6—ァセチルァミノ プリン、 6—ヒドロキシァミノプリン、 6—ァミノォキシプリン、 6—メトキ シプリン、 6—ァセトキシプリン、 6—ベンゾィルォキシプリン、 6—メチル プリン、 6—ェチルプリン、 6—トリフルォロメチルブリン、 6—フエニルプ リン、 6 _メルカプトプリン、 6—メチルメルカプトプリン、 6—ァミノプリ ン一 1—ォキシド、 6 —ヒドロキシプリン一 1 —ォキシド、 2 —アミノー 6— ヒドロキシプリン (グァニン) 、 2, 6—ジァミノプリン、 2—アミノー 6— クロ口プリン、 2 —ァミノ一 6 —ョードプリン、 2—ァミノプリン、 2—アミ ノー 6 _メルカプトプリン、 2—ァミノ一 6—メチルメルカプトプリン、 2 - アミノー 6—ヒドロキシァミノプリン、 2 —アミノー 6—メトキシプリン、 2 一アミノー 6—ベンゾィルォキシプリン、 2 —アミノー 6—ァセトキシプリン、 2 —ァミノ一 6 —メチルプリン、 2 —アミノー 6 —サイクロプロピルァミノメ チルプリン、 2 —アミノー 6 —フエニルプリン、 2 —アミノー 8 —ブロモプリ ン、 6 —シァノプリン、 6—アミノー 2—クロ口プリン(2 —クロロアデニン)、 6—アミノー 2 _フルォロプリン(2 —フルォロアデニン)などが挙げられる。 塩基アナログを具体的に例示すれば、 6—アミノー 3—デァザプリン、 6— アミノー 8—ァザプリン、 2 —ァミノ一 6—ヒドロキシ一 8—ァザプリン、 6 —アミノー 7 —デァザプリン、 6 —アミノー 1 —デァザプリン、 6—ァミノ一 2ーァザプリンなどが挙げられる。
本発明においてヌクレオシド化合物とは上述のポリヒドロキシアルデヒドま たはポリヒドロキシケトンおよびその誘導体の 1位にピリミジン骨格を有する 核酸塩基、 プリン骨格を有する核酸塩基、 あるいは塩基アナログが N—ダルコ シド結合したものであり、 具体的にはチミジン、 デォキシシチジン、 デォキシ ゥリジン、デォキシグアノシン、デォキシアデノシン、ジデォキシアデノシン、 トリフルォロチミジン、 リバビリン、 ォロチジン、 ゥラシルァラビノシド、 ァ デニンァラビノシド、 2—メチルーアデニンァラビノシド、 2—クロルーヒポ キサンチンァラビノシド、 チォグァニンァラビノシド、 2, 6—ジァミノプリ ンァラビノシド、 シトシンァラビノシド、 グァニンァラビノシド、 チミンァラ ピノシド、 エノシタビン、 ジェムシ夕ビン、 アジドチミジン、 イドクスゥリジ ン、 ジデォキシアデノシン、 ジデォキシイノシン、 ジデォキシシチジン、 ジデ ヒドロデオキシチミジン、 チアジデォキシシチジン、 ソリブジン、 5—メチル ゥリジン、 ビラゾール、 チォイノシン、 テガフール、 ドキシフルリジン、 ブレ ディニン、 ネブラリン、 ァロプリノールゥラシル、 5 _フルォロウラシル、 2 ' —アミノウリジン、 2, 一アミノアデノシン、 2 ' —ァミノグアノシン、 2、_ クロル— 2 ' —ァミノイノシンなどが挙げられる。
本発明におけるヌクレオシドホスホリラーゼとは、 リン酸存在下でヌクレオ シド化合物の N—ダリコシド結合を分解する酵素の総称であり、 本発明におい ては逆反応を利用することができる。 反応に使用する酵素は、 相当するベント ース— 1—リン酸と核酸塩基または核酸塩基アナログから目的とするヌクレオ シド化合物を生成しうる活性を有していればいかなる種類及び起源のものでも かまわない。 該酵素はプリン型とピリミジン型に大別されが、 公知なものとし ては例えば、プリン型としてプリンヌクレオシドホスホリラーゼ(EC2. 4. 2. 1)、 グアノシンホスホリラーゼ (EC2. 4. 2. 15) 、 ピリミジン型としてピリミジンヌ クレオシドホスホリラーゼ (EC2. 4. 2. 2)、ゥリジンホスホリラ一ゼ(EC2. 4. 2. 3) , チミジンホスホリラーゼ (EC2. 4. 2. 4) 、 デォキシゥリジンホスホリラーゼ
(EC2. 4. 2. 23) などが挙げられる。
本発明におけるヌクレオシドホスホリラーゼ活性を有する微生物とは、 プリ ンヌクレオシドホスホリラーゼ (EC2. 4. 2. 1 ) 、 グアノシンホスホリラーゼ
(EC2. 4. 2. 15) 、 ピリミジンヌクレオシドホスホリラーゼ (EC2. 4. 2. 2) 、 ゥリ ジンホスホリラーゼ (EC2.4.2.3) 、 チミジンホスホリラーゼ (EC2.4.2.4) 、 デォキシゥリジンホスホリラーゼ (EC2.4.2.23) からなる群から選択される一 種類以上のヌクレオシドホスホリラ一ゼを発現している微生物であれば特に限 定はされない。
このような微生物の具体例としては、 ノカルディア(Nocardia)属、 ミクロバ クテリゥム(Microbacterium)属、 コリネパクテリゥム(Corynebacterium)属、 ブ レビバクテリゥム属 (Brevibacterium) 属、 セルロモナス(Cellulomonas)属、 フラボバクテリゥム (Flabobacterium) 属、 クルイヘラ(Kluyvere)属、 ミコバ クテリウム(Micobacterium)属、 へモフィラス (Haemophilus) 属、 ミコプラナ (Micoplana)属、 プロタミノバクタ一(Pro minobacter)属、 キャンティ夕 (Candida)属、サッカロマイセス (Saccharorayces)属、バチルス(Bacillus)属、 · 好熱性のバチルス属、 シユードモナス(Pseudomonas)属、 ミクロコッカス (Micrococcus)属、 ハフニァ (Hafnia) 属、 プロテウス(Proteus)属、 ビブリオ (Vibrio)属、 スタフイロコッカス(Staphyrococcus)属、 プロピオ二バクテリウ ム ( Propionibacterium) 属、 ザリレチナ(Sar Una)属、 プラノ コッカス (Planococcus)属、 ェシエリシァ (Escherichia) 属、 クルチア(Kurthia)属、 口 ドコッッカス(Rhodococcus)属、 ァシネトバクタ一(Acinetobacter)属、 キサン トパクター(Xanthobacter)属、 ストレプ卜マイセス(Streptomyces)属、 リゾビ ゥム(Rhizobiuffl)属、 サルモネラ(Salmonel la)属、 クレブシエラ(Klebsiel la) 属、 ェンテロバクタ一(Enterobacter)属、 エルウイニァ(Erwinia)属、 エアロモ ナス(Aeromonas)属、 シトロバクタ一(Ci trobacter)属、 ァクロモバクタ一 (Achromobacter)属、 ァグロパクテリゥム(Agrobacterium)属、 アースロバクタ —属(Arthrobacter)属またはシユードノカルディア(Pseudonocardia)属に含ま れる微生物株を好適な例として挙げることができる。
近年の分子生物学および遺伝子工学の進歩により、 上述の微生物株のヌクレ オシドホスホリラーゼの分子生物学的な性質やアミノ酸配列等を解析すること により、 該蛋白質の遺伝子を該微生物株より取得し、 該遺伝子および発現に必 要な制御領域が挿入された組換えプラスミドを構築し、 これを任意の宿主に導 入し、 該蛋白質を発現させた遺伝子組換え菌を作出することが可能となり、 か つ、 比較的容易にもなつた。 かかる技術水準に鑑み、 このようなヌクレオシド ホスホリラーゼの遺伝子を任意の宿主に導入した遺伝子組換え菌も本発明のヌ クレオシドホスホリラーゼを発現している微生物に包含されるものとする。 ここでいう発現に必要な制御領域とは、 プロモーター配列 (転写を制御する オペレーター配列を含む) · リボゾーム結合配列 (SD配列) ·転写終結配列 等を示している。 プロモ一夕一配列の具体例としては、 大腸菌由来のトリブト ファンオペロンの t r ρプロモータ一 ·ラクト一スオペロンの 1 a cプロモ一 ター'ラムダファージ由来の P Lプロモーター及び P Rプロモーターや、枯草菌 由来のダルコン酸合成酵素プロモーター (gn t) ·アルカリプロテア一ゼプ ロモ—夕— (a p r) '中性プロテア一ゼプロモータ一 (np r) · α—アミ ラーゼプロモーター (amy) 等が挙げられる。 また、 t a cプロモーターの ように独自に改変 ·設計された配列も利用できる。 リポゾ一ム結合配列として は、 大腸菌由来または枯草菌由来の配列が挙げられるが、 大腸菌や枯草菌等の 所望の宿主内で機能する配列であれば特に限定されるものではない。たとえば、 16 Sリボゾーム RNAの 3 ' 末端領域に相補的な配列が 4塩基以上連続した コンセンサス配列を DN A合成により作成してこれを利用してもよい。 転写終 結配列は必ずしも必要ではないが、 P因子非依存性のもの、 例えばリポプロテ インタ一ミネ一ター · t r pオペロンターミネ一ター等が利用できる。 これら 制御領域の組換えプラスミド上での配列順序は、 5 ' 末端側上流からプロモー ター配列、 リボゾーム結合配列、 ヌクレオシドホスホリラ一ゼをコードする遺 伝子、 転写終結配列の順に並ぶことが望ましい。
ここでいうプラスミドの具体例としては、 大腸菌中での自律複製可能な領域 を有している P B R 322、 pUC 18、 B 1 u e s c r i p t I I SK( + )、 PKK223— 3、 pS C l O lや、 枯草菌中での自律複製可能な領域を有し ている pUB 1 10、 pTZ 4、 pC 194、 p l l、 φ 1、 ^ 105等をべ クタ一として利用することができる。 また、 2種類以上の宿主内での自律複製 が可能なプラスミドの例として、 pHV 14、 TRp 7、 丫£ 7及び 83 7をべクタ一として利用することができる。
ここでいう任意の宿主には、 後述の実施例のように大腸菌(Escherichia co l i)が代表例として挙げられるが、とくに大腸菌に限定されるのものではなく 枯草菌 (Bac i l lus subt i 1 i s)等のバチルス属菌、酵母や放線菌等の他の微生物菌 株も含まれる。
本発明におけるヌクレオシドホスホリラ一ゼまたは、 該酵素活性を有する微 生物としては市販の酵素、 該酵素活性を有する微生物菌体、 及び菌体処理物ま たはそれらの固定化物などが使用できる。 菌体処理物とは、 例えばアセトン乾 燥菌体ゃ機械的破壊、超音波破碎、凍結融解処理、加圧減圧処理、浸透圧処理、 自己消化、 細胞壁分解処理、 界面活性剤処理などにより調製した菌体破砕物な どであり、 また、 必要に応じて硫安沈殿やアセトン沈殿、 カラムクロマトダラ フィ一により精製を重ねたものを用いても良い。
本発明において、 リン酸イオンと難水溶性の塩を形成しうる金属カチオンと は、 反応において副生したリン酸イオンと難水溶性の塩を形成し、 反応液中に 沈殿しうるものであれば限定されない。 そのようなものとして、 ナトリウム、 カリウム、 カルシウム、 マグネシウム、 アルミニウム、 バリウム、 鉄、 コバル ト、 ニッケル、 銅、 銀、 モリブデン、 鉛、 亜鉛、 リチウムなどの金属カチオン が挙げられる。 それらのうち工業的に汎用性や安全性が高く、 反応に影響を与 えない金属塩が特に好ましく、 そのようなものの例としてマグネシウム、 カル シゥムイオン、 バリウムイオン、 または、 アルミニウムイオンが挙げられる。 金属カチオンは、 本発明の効果を損なわない範囲内で 2種以上を組み合わせて 用いてもよい。
本発明において、リン酸イオンと難水溶性の塩を形成しうる金属カチオンは、 リン酸と難水溶性の塩を形成しうる金属カチオンを、塩素イオン、硝酸イオン、 炭酸イオン、 硫酸イオン、 酢酸イオン、 または、 水酸イオンの中から選ばれる
1種類以上のァニオンとの金属塩として反応液中に添加することができる。 具 体的には、 塩化カルシウム、 硝酸カルシウム、 炭酸カルシウム、 硫酸カルシゥ ム、 酢酸カルシウム、 塩化バリウム、 硝酸バリウム、 炭酸バリウム、 硫酸バリ ゥム、 酢酸バリウム、 塩化アルミニウム、 硝酸アルミニウム、 炭酸アルミニゥ ム、 硫酸アルミニウム、 酢酸アルミニウム、 炭酸水素ナトリウム、 炭酸ナトリ ゥム、水酸化ナトリゥム、炭酸水素力リゥム、炭酸力リゥム、水酸化力リゥム、 炭酸水素リチウム、 炭酸リチウム、 水酸化リチウム、 水酸化マグネシウムなど が例示される。
本発明における金属カチオンは、 ペントース— 1一リン酸の塩として反応液 中に存在させてもよい。 具体的には、 リポース— 1—リン酸 -カルシウム塩、 2—デォキシリポース一 1一リン酸 ·カルシウム塩、 2, 3—ジデォキシリポ —スー 1—リン酸 'カルシウム塩、 ァラビノース _ 1—リン酸 'カルシム塩、 リポース一 1—リン酸 ·バリウム塩、 2—デォキシリポース一 1—リン酸 ·バ リウム塩、 2, 3—ジデォキシリポース— 1—リン酸 ·バリウム塩、 ァラピノ ース— 1—リン酸 ·バリウム塩、 リポース— 1 _リン酸 ·アルミニウム塩、 2 —デォキシリポース— 1一リン酸 ·アルミニウム塩、 2, 3—ジデォキシリポ ース— 1—リン酸 'アルミニウム塩、 ァラビノ一ス— 1一リン酸 'アルミニゥ ム塩、 などが挙げられる。
リン酸イオンと難水溶性の塩を形成しうる金属カチオンの塩を核酸塩基又は 核酸塩基アナログの水溶液中に含有させて反応媒体中へ添加する場合には、 水 溶液中の金属カチオンの添加量は、核酸塩基または核酸塩基アナログに対し 0 . 5〜2 0倍モル量、 好ましくは 1〜4倍モル量である。
金属カチオンの塩を、 核酸塩基又は核酸塩基アナログの水溶液に含有させて 反応媒体中へ添加する場合には、 当該水溶液を反応前に一括で反応媒体中に添 加してもよいし、 当該水溶液を逐次的に反応媒体へ添加して、 反応させてもよ い。 ここにおいて、 逐次的に添加とは、 核酸塩基又は核酸塩基アナログを金属 カチオンの塩の水溶液に溶解または懸濁して、 2以上に分割または 1分間〜 2 4時間、 好ましくは 3 0分間〜 2 4時間かけて連続して反応系に加えることを 示す。
なお、反応に必要な成分を一括して混合した場合に、その使用量によっては、 反応液の固化などが生じる場合があり、 このような場合には、 反応開始後に、
( 1 ) ベント一ス— 1一リン酸、 (2 ) 核酸塩基または核酸塩基アナログ及び
( 3 ) 金属カチオンから選択した少なくとも 1種の成分を反応途中の水性反応 媒体中に添加することでかかる固化などの問題を回避することができる。 ここ で反応開始とは、 ヌクレオシドホスホリラーゼ活性の存在下、 ペントースー 1 ーリン酸および核酸塩基または核酸塩基アナログの添加されるべき量の少なく とも一部が添加された状態をいう。
なお、 反応開始後に添加する成分は上記のように 1回に一括して添加する方 法、 2回以上に分けた回分法または連続法、 あるいは回分法と連続法の組合せ からなる添加方法で添加することができる。 反応開始後に添加する成分が複数 あるときは、 上記の 3成分から選択された少なくとも 1種の成分の少なくとも 1種について分割して添加する方法を採用することができる。 すなわち、 反応 開始後に添加する成分が複数のときには、各成分ごとに添加方法を選択できる。 金属カチオンの塩の水溶液を、 核酸塩基または核酸塩基アナログと混合して 用いる場合には、 金属カチオンの塩の水溶液の使用量は金属カチオンが核酸塩 基又は核酸塩基アナログに対し 0 . 5〜2 0倍モル量、 好ましくは 1〜4倍モ ル量となる量である。
リン酸と難水溶性の塩を形成する金属カチオンの塩のうち特にそれ自体水に 難水溶性であるものは、 反応開始前にその反応終了までに添加される量を水性 反応媒体に添加することが可能であり、 且つ反応液の p Hを調整する必要がな い場合があるため、 本発明において使用される金属カチオンの塩として適当で ある。 そのような金属カチオンの塩の代表的なものとして各種金属カチオンの 水酸化合物、 特に水酸化マグネシゥムが例示できる。
本発明の方法に使用される水性反応媒体は、 水を主体として構成される反応 媒体で、 本発明で目的とする酵素活性を利用した反応が進行し、 金属カチオン を添加する効果が得られるようなものであればよい。 そのような水性反応媒体 としては、 水、 または水に水溶性の有機溶剤を添加した水性反応媒体を挙げる ことができる。 この有機溶媒としては、 例えばメタノール、 エタノール等の低 級アルコール、 アセトン、 ジメチルスルホキシド及びそれらの混合物などを例 示できる。 溶媒の使用量に特に制限はなく反応が良好に進行する程度使用すれ ばよいが、 水に対する水溶性の有機溶媒の量は、 好ましくは、 0 . 1〜7 0重 量%の範囲とすることができる。 更に、 反応の安定性を確保するために、 水性 反応媒体を用いた反応液は緩衝液として調製することもできる。 この緩衝液と しては、 本発明にかかる酵素反応用として利用できる公知の緩衝液を用いるこ とができる。
本発明におけるヌクレオシド化合物の合成反応は、 目的とするヌクレオシド 化合物、 基質であるペントース— 1一リン酸と核酸塩基、 反応触媒であるヌク レオシドホスホリラ一ゼまたは該酵素活性を有する微生物、 そしてリン酸を反 応系より除外させるための金属塩の種類とその特性により、 適切な p Hや温度 などの反応条件を選べばよいが、 通常は p H 5〜 l 1、 好ましくは p H 7 . 5 〜1 0 . 0、ょり好ましくは8 . 0〜 1 0の範囲であり、温度は氷温〜 8 0 °C, 好ましくは 1 0〜6 0 °Cの範囲で行うことができる。 p Hに関して、 その管理 幅を外れた場合、 目的物や基質の安定性、 酵素活性の低下、 リン酸との難水溶 性塩の未形成などが原因で反応転化率の低下を招く可能性がある。 反応途中、 p Hの変化が生じるようであれば必要に応じて塩酸、 硫酸などの酸や水酸化ナ トリウム、 水酸化カリウムなどのアルカリを適時添加すればよい。 もちろん、 金属カチオンの塩として難水溶性のものとりわけ金属カチオンの水酸化物を使 用すれば反応液の P Hを調整する必要はない場合がある。
反応に使用するベント一ス— 1—リン酸と核酸塩基の濃度は 0 . 1〜1 0 0 0 mM程度が適当であり、 両者のモル比は添加する核酸塩基の比率をペントー ス— 1一リン酸またはその塩に対して 0 . 1〜 1 0倍モル量で行える。 反応転 化率を考えれば 0 . 9 5倍モル量以下が好ましい。
反応時間は原料、 水性溶媒の種類、 反応温度によって異なるが、 1 分から 7 8時間、 好ましくは 3 0分から 2 4時間である。
また、 添加するリン酸と難水溶性の塩を形成し得る金属塩は、 反応に使用す るペントースー 1—リン酸に対して 0 . 1〜1 0倍モル量、より好ましくは 0 . 5〜 5倍モル量添加するのが良い。 なお、 高濃度の反応においては、 基質の核 酸塩基や生成物のヌクレオシド化合物が溶解しきれずに反応液中に存在する場 合もあるが、 このような場合にも本発明は適用される。
本発明におけるベント一ス— 1—リン酸またはその塩、 リン酸と難水溶性の 塩を形成しうる金属カチオンまたはその塩、 核酸塩基の中から選ばれる 1種類 以上を反応液が固化しないように添加する方法は、 代表例として以下のような ものが挙げられる。 尚、 本発明は、 以下の例に限られたものではなく、 反応液 が固化しなければペントースー 1ーリン酸またはその塩、 リン酸と難水溶性の 塩を形成しうる金属カチオンまたはその塩、 核酸塩基の中から選ばれる 1種類 以上の添加する時期や分割する回数は特に制限されないものとする。
1 . ベント一スー 1 _リン酸またはその塩と、 核酸塩基または核酸塩基アナ ログを一括に仕込み、 反応を開始させ、 適当な濃度までヌクレオシド化合物を 蓄積させた後に、 リン酸と難水溶性の塩を形成しうる金属カチオンまたはその 塩を一括添加する方法。 この場合のヌクレオシド化合物の蓄積濃度とは、 好ま しくは 1 0 mM以上、 より好ましくは 3 O mM以上である。
2 . ベント一スー 1 _リン酸またはその塩と、 核酸塩基または核酸塩基アナ ログを一括に仕込み、 反応を開始させた後にヌクレオシド化合物の蓄積濃度に あわせて段階的または連続的にリン酸と難水溶性の塩を形成しうる金属カチォ ンまたはその塩を添加する方法。 この場合、 金属カチオンの添加は、 ヌクレオ シド化合物が好ましくは 1 0 mM以上より好ましくは 3 0 mM以上蓄積した時 に開始すればよい。
3 . ベント一ス _ 1 _リン酸またはその塩と、 リン酸と難水溶性の塩を形成 しうる金属カチオンまたはその塩を一括添加したのち、 反応液が固化しないよ うに核酸塩基または核酸塩基アナログを段階的または連続的に添加する方法。 この場合、 初発の核酸塩基または核酸塩基アナログの添加量は、 好ましくは 3 O mM以下、 より好ましくは 1 O mM以下である。
4 . 核酸塩基または核酸塩基アナログと、 リン酸と難水溶性の塩を形成しう る金属カチオンまたはその塩を一括添加したのち、 反応液が固化しないように ペントース— 1一リン酸またはその塩を段階的または連続的に添加する方法。 この場合、 初発のベント一スー 1 _リン酸またはその塩の添加量は、 好ましく は 3 O mM以下、 より好ましくは 1 O mM以下である。
5 . ベント一スー 1一リン酸またはその塩、 リン酸と難水溶性の塩を形成し うる金属カチオンまたはその塩、 核酸塩基または核酸塩基アナログを酵素溶液 中に段階的または連続的に添加する方法。 この場合、 反応開始時点のペントー スー 1ーリン酸またはその塩、 あるいは核酸塩基または核酸塩基アナログの添 加量は、 好ましくは 3 O mM以下、 より好ましくは 1 O mM以下である。 このようにして製造したヌクレオシド化合物を反応液から単離するには、 濃 縮、 晶析、 溶解、 電気透析処理、 イオン交 m樹脂や活性炭による吸脱着処理な どの常法が適用できる。
[実施例]
以下に実施例及び比較例を挙げて本発明を説明するが、 本発明はこれら実施 例等によって何等制限されるものではない。
(分析法)
生成したヌクレオシド化合物はすべて高速液体クロマトグラフィーにより定 量した。 分析条件は以下による。
カラム; YMC— P a c k OD S -A 312 1 50 X 6. 0 mm I . D.
(YMC Co. , L t d)
カラム温度; 40°C
ポンプ流速; 0. 75m l Zm i n
検出; UV 260 nm、
溶離液; 1 OmMリン酸:ァセトニトリル = 95 : 5 (V/V)
実施例 1
2, 5mMの 2 '—デォキシリポース 1 _リン酸ジ (モノシクロへキシルァ ンモニゥム)塩(S I GMA製)、 2. 5 mMのアデニン(和光純薬製、特級)、 12 u n i t s Zm 1のプリンヌクレオシドホスホリラーゼ (フナコシ製) 、 1 OmMの塩化カルシウム (和光純薬、特級) 、 1 OmMトリス塩酸緩衝液(p H7. 4)から成る反応液 lm 1を 30° (:、 24時間反応させた。反応終了後、 白色の沈殿物が生成していた。 反応液を希釈した後分析したところ、 2. 40 mMのデォキシアデノシンが生成していた。 その時の反応収率は 96. 0%で あった。
比較例 1
塩化カルシウムを添加しないこと以外はすべて実施例 1と同じ手順と条件で 反応を行った。 反応終了後、 沈殿物は生成しなかった。 反応液を希釈した後分 析したところ、 2. 0 ImMのデォキシアデノシンが生成していた。 その時の 反応収率は 80. 4%であった。 実施例 2
塩化カルシウム濃度を 2. 5 mMにする以外はすべて実施例 1と同じ手順と 条件で反応を行った。 反応終了後、 白色の沈殿物が生成していた。 反応液を希 釈した後分析したところ、 2.27 mMのデォキシアデノシンが生成していた。 その時の反応収率は 90. 8%であった。
実施例 3
塩化カルシウムの代わりに塩化アルミニウムを添加する以外はすべて実施例 1と同じ手順と条件で反 を行った。 反応終了後、 白色の沈殿物が生成してい た。 反応液を希釈した後分析したところ、 2. 3 ImMのデォキシアデノシン が生成していた。 その時の反応収率は 93. 3%であった。
実施例 4
塩化カルシウムの代わりに塩化バリゥムを添加する以外はすべて実施例 1と 同じ手順と条件で反応を行った。 反応終了後、 白色の沈殿物が生成していた。 反応液を希釈した後分析したところ、 2. 3 ImMのデォキシアデノシンが生 成していた。 その時の反応収率は 92. 4%であった。
実施例 5
塩化バリウム濃度を 2. 5 mMにする以外はすべて実施例 4と同じ手順と条 件で反応を行った。 反応終了後、 白色の沈殿物が生成していた。 反応液を希釈 した後分析したところ、 2. 27mMのデォキシアデノシンが生成していた。 その時の反応収率は 90. 2 %であった。
実施例 6
J ou r n a l o f B i o l o g c a l Ch em i s t r y、 Vo l .
184、 p p 449— 459、 1950記載の方法により 2—デォキシリポ一 ス 1一リン酸バリウム塩を調製した。 2. 5 mMの 2—デォキシリポース— 1 一リン酸バリウム塩、 2. 5mMのアデニン (和光純薬製、 特級) 、 12 un i t s/m lのプリンヌクレオシドホスホリラ一ゼ (フナコシ製) 、 1 OmM の塩化カルシウム (和光純薬、 特級) 、 1 OmMトリス塩酸緩衝液 (pH7.
4) から成る反応液 lm 1を 30°C、 24時間反応させた。 反応終了後、 白色 の沈殿物が生成していた。 反応液を希釈した後分析したところ、 2. 4 OmM のデォキシアデノシンが生成していた。 その時の反応収率は 9 1. 1 %であつ た。
実施例 7
2. 5 mMの 2—デォキシリポース— 1—リン酸ジ (モノシクロへキシルァ ンモニゥム)塩(S I GMA製) 、 2. 5mMのチミン (和光純薬製、 特級) 、 1 2 u n i t s /m 1のチミジンホスホリラーゼ (S I GMA製) 、 1 OmM の硝酸カルシウム (和光純薬、 特級) 、 1 OmMトリス塩酸緩衝液 (pH7. 4) から成る反応液 lm 1を 3 0°C、 24時間反応させた。 反応終了後、 白色 の沈殿物が生成していた。 反応液を希釈した後分析したところ、 2. 28mM のチミジンが生成していた。 その時の反応収率は 9 1. 2%であった。
比較例 2
硝酸カルシウムを添加しないこと以外はすべて実施例 7と同じ手順と条件で 反応を行った。 反応終了後、 沈殿物は生成しなかった。 反応液を希釈した後分 析したところ、 1.. 88mMのチミジンが生成していた。 その時の反応収率は 7 5. 2 %であった。
実施例 8
2. 5mMのリポ一スー 1—リン酸シクロへキシルアンモニゥム塩 (S I G MA製) 、 2. 5mMの 2, 6—ジァミノプリン (アルドリッチ製) 、 1 2 u n i t s / 1のプリンヌクレオシドホスホリラーゼ (フナコシ製) 、 1 0m Mの塩化カルシウム (和光純薬、特級)、 1 OmMトリス塩酸緩衝液(pH7. 4) から成る反応液 lm 1を 30°C、 24時間反応させた。 反応終了後、 白色 の沈殿物が生成していた。 反応液を希釈した後分析したところ、 1. 94mM の 2, 6—ジァミノプリンリボシドが生成していた。その時の反応収率は 7 7. 6 %であった。
比較例 3
塩化カルシウムを添加しないこと以外はすべて実施例 8と同じ手順と条件で 反応を行った。 反応終了後、 沈殿物は生成しなかった。 反応液を希釈した後分 析したところ、 1. 54mMの 2, 6—ジァミノプリンリポシドが生成してい た。 その時の反応収率は 6 1. 6 %であった。 実施例 9
大腸菌染色体 DN Aを次のようにして調製した。 ェシエリヒア ·コ UK— 1 2/ ー 10株(3 1; & & 6 11 6社)を501111の LB培地に接種し、 37 °Cで一夜培養した後集菌し、 リゾチーム lmg/m 1を含む溶菌液で溶菌 した。 溶菌液をフエノール処理した後、 通常の方法によりエタノール沈殿によ り DNAを沈殿させた。 生じた DNAの沈殿は、 ガラス棒に巻き付けて回収し た後、 洗浄し、 PCRに用いた。
P CR用のプライマーには、 ェシエリヒア ·コリの既知の d e oD遺伝子の 塩基配列 (GenBank accession No. AE000508 (コード領域は塩基番号 11531-12250)に基づいて設計した配列番号 1及び 2に示す塩基配列を有するォ リゴヌクレオチド (北海道システム ·サイエンス株式会社) に委託して合成し た) を用いた。 .
配列番号 1 :
gtgaattcac aaaaaggata aaacaatggc
配列番号 2 :
tcgaagct tg cgaaacacaa t tactct 11
これらのプライマーの 5' 末端付近及び 3 ' 末端付近には、 それぞれ E c o R I及び H i nd IIIの制限酵素認識配列を有する。
制限酵素 H i n d III で完全に消化した前記大腸菌染色体 DNA 6 n gZ H 1及びプライマー各 3 /xMを含む0. lm 1の P C R反応液を用いて、変性: 96°C、 1分間、 アニーリング: 55° (:、 1分間、 伸長反応: 74° (:、 1分間 からなる反応サイクルを、 30サイクルの条件で P CRを行なった。
上記反応産物及びプラスミド pUC 18 (宝酒造 (株) ) を、 Ec oR I及 び H i nd IIIで消化し、 ライゲーシヨン 'ハイ (東洋紡 (株) ) を用いて連 結した後、 得られた組換えプラスミドを用いて、 ェシエリヒア ·コリ DH 5ひ を形質転換した。 形質転換株を、 アンピシリン (Am) 50 a g/m 1及び X 一 G a 1 (5—プロモー 4一クロ口 _ 3—インドリル一 /3—D—ガラクトシド) を含む L B寒天培地で培養し、 Am耐性で且つ白色コロニ一となつた形質転換 株を得た。 このようにして得られた形質転換株よりプラスミドを抽出し、 目的の DNA 断片が挿入されたプラスミドを、 PUC— PNP 73と命名した。 こうして得 られた形質転換体を、 ェシエリヒア 'コリ MT— 1 0905と名づけた。 ェシエリヒア'コリ MT— 10905株を Am 50 g/m 1を含む LB培 地 10 OmLで 37°C · 1晚振とう培養した。 得られた培養液を 13000 r pmで 1 Om i n遠心分離し、 菌体を集めた。 菌体を 10 mMトリス塩酸緩衝 液 (PH8. 0) 1 OmLに懸濁し、 超音波により破砕したものを酵素源とし て用いた。
10 OmMの 2 'ーデォキシリボース 1ーリン酸ジ (モノシクロへキシルァ ンモニゥム) 塩 (S I GMA製) 、 10〜8 OmMのアデニン (和光純薬製、 特級) 、 100 mMのトリス塩酸緩衝液 (pH8. 0) 、 20 u n i t s Zm 1の上述のプリンヌクレオシドホスホリラ一ゼからなる反応液 1. Om lを 5 0°Cで 20時間反応させた。 反応開始 8時間後に 1 5 OmMとなるように塩化 カルシウムを添加した。 結果を表 1に示した。
表 1 (実施例 9)
Figure imgf000024_0001
比較例 4
酵素源の添加と同時に塩化カルシウムを添加し、 実施例 9と同様に反応を行 つた。 結果を表 2に示した。 表 2 (比較例 4)
Figure imgf000024_0002
比較例 5
緩衝液を添加しないで 8 OmMのアデニンの反応を実施例 9と同様に行った, 結果を表 3に示した。 表 3 (比較例 5)
アデニン濃度 反応液の状態
(mM) (mM)
80 固化 29 実施例 1 o
1 0 OmMの 2一—デォキシリポース 1ーリン酸ジ
ンモニゥム) 塩 (S I GMA製) 、 1 0〜8 OmMのチミン (和光純薬製、 特 級) 、 100 mMのトリス塩酸緩衝液 (pH8. 0) 、 20 u n i t s / 1 のチミジンホスホリラ一ゼ(S I GMA製)からなる反応液 1. Om 1を 50°C で 20時間反応させた。 反応開始 8時間後に 15 OmMと'なるように塩化カル シゥムを添加した。 結果を表 4に示した。 表 4 (実施例 10)
Figure imgf000025_0001
比較例 6
酵素源の添加と同時に塩化カルシウムを添加し、 実施例 10と同様に反応を 行った。 結果を表 5に示した。 表 5 (比較例 6)
Figure imgf000025_0002
比較例 7
緩衝液を添加しないで 8 OmMのチミンの反応を実施例 10と同様に行った < 結果を表 6に示した。 表 6 (比較例 7)
Figure imgf000026_0001
実施例 1 1
200mMのチミン (和光純薬製、 特級) 、 20 OmMのトリス塩酸緩衝液 ( H 8. 0) 、 20 u n i t s /m 1のチミジンホスホリラーゼ (S I GM A製) からなる反応液 0. 5m 1を 50°Cに保温し、 2 '—デォキシリポース 1ーリン酸ジ (モノシクロへキシルアンモニゥム) 塩 (S I GMA製) の 20 OmM溶液を酵素液添加後 1時間おきに 0. 1 mLづっ 5回に分けて添加した。 その結果、 反応液は液状のままであった。
比較例 8
トリス塩酸緩衝液を存在させないで酵素源の添加と同時に 20 OmMの 2 ' ーデォキシリポース 1 _リン酸ジ (モノシクロへキシルアンモニゥム) 塩 (S I GMA製) 0. 5mLを添加し、 実施例 1 1と同様に反応を行った。 その結 果、 反応液は固化した。
実施例 1 2
20 OmMの 2 '—デォキシリポース 1ーリン酸ジ (モノシクロへキシルァ ンモニゥム) 塩 (S I GMA製) 、 20 OmMのトリス塩酸緩衝液 (pH 8. 0) 、 20 u n 1 t s/mlのチミジンホスホリラーゼ (S I GMA製) 、 1 5 OmMの塩化カルシウムからなる反応液 0. 5m 1を 50°Cに保温し、 20 OmMのチミン (和光純薬製、 特級) 溶液を 1時間おきに 0. lmLづっ 5回 に分けて添加した。 その結果、 反応液は液状のままであった。
比較例 9
トリス塩酸緩衝液を存在させないで酵素源の添加と同時に 20 OmMのチミ ン溶液 0. 5mLを添加し、 実施例 12と同様に反応を行った。 その結果、 反 応液は固化した。
以降の実施例等で生成したヌクレオシド化合物はすべて以下の分析条件で高 速液体クロマトグラフィーにより定量した。
カラム: YMC— P a c k OD S -A 514 300 X 6. 0 mm I . D .
(YMC C o. , L t d)
カラム温度: 40°C
ポンプ流速 : 1m l /m i n
検出波長: UV 254 nm、
溶離液: 2 Ommo 1の酢酸アンモニゥム水溶液 (2700ml) にりん酸を 加え pH 3. 5に調整し、 メタノール(300m 1 ) を加え、 混合、脱気する。 内標準物質:ニコチン酸
参考例 1
2—デォキシリポース 1—リン酸ジ (アンモニゥム) 塩の合成
2—デォキシリポース 1 _リン酸ジ (モノシクロへキシルアンモニゥム) 塩 (1 g、 2. 42mmo 1、 S I GMA製) をメタノール(10 g) に懸濁し、 アンモニアガス (0. 62 g、 36. 5mmo 1 ) を吹き込み、 50°Cで 2時 間攪拌する。 得られた反応マスを 30°Cでろ過後、 メタノール (5 g) で 2回 洗浄、 乾燥し、 所望の 2 ' —デォキシリポース 1 _リン酸ジ (アンモニゥム) 塩 (0. 57 g) を収率 95 %で得た。 '
Ή-NMR (D20, 270 MHz) d 5.56 (s, 1 H), 4.03 (m, 2 H), 3.52 (dd, J = 3.3, 12.2 Hz, 1 H), 3.41 (dd, J = 5.3, 12.2 Hz, 1 H) , 2.17 (in, 1 H) , 1.87 ( d, J = 13.9 Hz, 1 H)、 MS (APCI) m/z 213 (M-H)
実施例 1 3
2 ' 一デォキシグアノシンの合成 ( 1)
2—デォキシリポース 1一リン酸ジ (モノシクロへキシルアンモニゥム) 塩
(3. 22 g、 7. 72mmo 1、 S I GMA製) を水 (47. 1 g) に溶解 し、 実施例 9で得た酵素液 (O.' lm l) を加えた反応液に、 4. 02wt % の水酸化ナトリウム水溶液(16. 45 g、 16. 5mmo 1) にグァニン(1 g、 6. 62mmo 1 ) を溶解した液を、 50 °Cで 1時間かけて滴下した。 反 応マスを同温で 2時間反応後、 反応マスを HPLCで分析した所、 所望の 2' ーデォキシグアノシンを反応収率 80%で得た。
実施例 14 参考例 1で合成した 2—デォキシリポ一ス 1一リン酸ジ (アンモニゥム) 塩 (2. 0 g、 7. 72mmo 1 ) を水 (47. 1 g) に溶解し、 実施例 9で得 た酵素液 (0. 1m l ) を加えた反応液に、 4. 02wt %の水酸化ナトリウ ム水溶液 (16. 45 g、 16. 5mmo 1 ) にグァニン (1 g、 6. 62m mo 1 ) を溶解した液を、 50°Cで 1時間かけて滴下した。 反応マスを同温で 2時間反応後、 反応マスを HPLCで分析した所、 所望の 2 ' —デォキシグァ ノシンを反応収率 81 %で得た。
実施例 1 5 参考例 1で合成した 2—デォキシリポース 1—リン酸ジ (アンモニゥム) 塩 (2. 0 g、 7. 72mmo 1 ) を水 (47. 1 g) に溶解し、 実施例 9で得 た酵素液 (0. 1m l) を加えた反応液に、 5. 6wt %の水酸化カリウム水 溶液 (16. 5 g、 16. 5mmo 1 ) にグァニン ( 1 g、 6. 62mmo 1 ) を溶解した液を、 50°Cで 1時間かけて滴下した。 反応マスを同温で 2時間反 応後、 反応マスを HPLCで分析した所、 所望の 2 ' —デォキシグアノシンを 反応収率 79 %で得た。
実施例 16
2, ーデォキシグアノシンの合成 (4)
参考例 1で合成した 2—デォキシリポース 1—リン酸ジ (アンモニゥム) 塩 (2. 0 g、 7. 72mmo 1 ) を水 (47. 1 g ) に溶解し、 実施例 9で得 た酵素液 (0. 1m l ) を加えた反応液に、 2. 4wt %の水酸化リチウム水 溶液 (16. 5 g、 16. 5mmo 1 ) にグァニン (1 g、 6. 62mmo 1 ) を溶解した液を、 50°Cで 1時間かけて滴下した。 反応マスを同温で 2時間反 応後、 反応マスを HPLCで分析した所、 所望の 2' —デォキシグアノシンを 反応収率 96 %で得た。 実施例 1 7 参考例 1で合成した 2—デォキシリポース 1—リン酸ジ (アンモニゥム) 塩 (2. 0 g、 7. 72mmo i ) を水 (30 g) に溶解し、 実施例 9で得た酵 素液 (0. 05m l ) を加えた反応液に、 2. 4w t %の水酸化リチウム水溶 液 (16. 5 g、 16. 5mmo 1 ) にアデニン (0. 89 g、 6. 62mm o 1 ) を溶解した液を、 50°Cで 1時間かけて滴下した。 反応マスを同温で 2 時間反応後、 反応マスを HP LCで分析した所、 所望の 2, ーデォキシアデノ シンを反応収率 98%で得た。
実施例 18
2 '—デォキシアデノシンの合成
純水 (1 3 g) に 2—デォキシリポース 1—リン酸 2アンモニゥム塩 (1.
67 g、 6. 7mmo 1 ) 、 アデニン (0. 87 g、 6. 4mmo 1) と水酸 化マグネシウム (0. 59 g、 10. lmmo l ) を加えた。 該マスに、 0. 05m lの酵素液を加え、 45° (:、 3時間攪拌下で反応させた。 その時の反応 収率は 98 %であった。 得られた反応マスを 70°Cに加熱し、 2 '—デォキシ アデノシンを溶解した後、 反応で生成した不溶なリン酸マグネシウムを 5 Aろ 紙を用いろ過、 水 (5 g) で洗浄し、 澄明な濾過液 (18. 2 g) を反応マス から 99 %の収率で得た。 この濾過速度は 1000 k g/m3/h rであり、 濾過ケーキへの 2 一一デォキシアデノシンのロス率は 1 %であった。 この様に して得られた濾過液を 5 °Cで 2時間晶析し、 析出した結晶を濾過、 水 (5 g) で洗浄、 減圧乾燥し、 所望の 2一—デォキシアデノシン (1. 6 g) を収率 9 3 %で得た。
比較例 Λ 0 純水 (13 g) に 2—デォキシリポース 1一リン酸 2アンモニゥム塩 (1. 6
7 g、 6. 7mmo 1 ) 、 アデニン (0. 87 g、 6. 4mmo 1 ) および 0. 05m 1の酵素液を懸濁した液に、 45°Cで塩化カルシウム 1水和物 ( 1. 4
8 g) を溶かした水溶液 (3. 7 g) および 4%水酸化ナトリウム水溶液 (2 0. 1 g) を同時に 2時間かけて滴下する。 滴下終了後、 反応マスを同温で 3 時間反応させた。 その時の反応収率は 97 %であった。 得られた反応マスを 7 0°Cに加熱し、 2 '—デォキシアデノシンを溶解した後、 反応で生成した不溶 なリン酸カルシウムを 5 Aろ紙を用いろ過、 水 (5 g) で洗浄し、 澄明な濾過 液 (28. 2 g) を反応マスから 85 %の収率で得た。 この濾過速度は 50 k g/m3/h rであり、 濾過ケーキへの 2 '—デォキシアデノシンのロス率は 1 5%であった。 この様にして得られた濾過液を 5°Cで 2時間晶析し、 析出し た結晶を濾過、 水 (5 g) で洗浄、 減圧乾燥し、 所望の 2 'ーデォキシアデノ シン (1. 3 g) を収率 75%で得た。
実施例 1 9 純水 (13 g) に 2—デォキシリポース 1一リン酸 2アンモニゥム塩 (1. 6 7 g、 6. 7mmo 1 ) 、 アデニン (0. 87 g、 6. 4mmo 1 ) と水酸化 マグネシウム (0. 59 g、 1 0. lmmo l) を加えた。 該マスに、 実施例 9で得た酵素液(0. 05m l ) を加え、 45 、 3時間攪拌下で反応させた。 3時間後に反応マスを HP LCで分析した所、 所望の 2 '—デォキシアデノシ ンを反応収率 98 %で得た。 この時の反応中の pHは 8〜 1 0を示した。 実施例 20 純水 (15 g) に 2—デォキシリポース 1—リン酸 2アンモニゥム塩 (1. 6 7 g、 6. 7mmo 1 ) 、 グァニン (0. 92 g、 6. 1 mmo 1 ) と水酸化 マグネシウム (0. 59 g、 1 0. lmmo l) を加えた。 該マスに、 実施例 9で得た酵素液 (0. 2m l) を加え、 50° ( 、 6時間攪拌下で反応させた。 6時間後に反応マスを HPLCで分析した所、 所望の 2 一デォキシグアノシ ンを反応収率 98 %で得た。 この時の反応中の pHは 8〜 1 0を示した。 実施例 21 純水 (13 g) に 2—デォキシリポ一ス 1—リン酸 2アンモニゥム塩 (1. 6 7 g、 6. 7 mmo 1 ) 、 アデニン (0. 87 g、 6. 4 mmo 1 ) と水酸化 マグネシウム (0. 59 g、 1 0. lmmo l) を加えた。 該マスに、 実施例 9で得た酵素液(0. 05ml ) を加え、酢酸で pHを 8. 5に調整しながら、 45°C、 3時間攪拌下で反応させた。 3時間後に反応マスを HPLCで分析し た所、 所望の 2 'ーデォキシアデノシンを反応収率 98%で得た。
比較例 1 1
2 'ーデォキシアデノシンの合成
純水 (13 g) に 2—デォキシリポース 1—リン酸 2アンモニゥム塩 (1.
67 g、 6. 7mmo 1 ) 、 アデニン (0. 87 g、 6. 4mmo 1 ) と塩化 マグネシウム 6水塩 (2. 05 g、 10. lmmo l) を加えた。 該マスに、 実施例 9で得た酵素液 (0. 05m l ) を加え、 45°C、 3時間攪拌下で反応 させた。 3時間後に反応マスを HPLCで分析した所、 所望の 2 '—デォキシ アデノシンを反応収率 65 %で得た。 この時の反応中の pHは 6〜7. 5を示 した。
比較例 12 純水 (15 g) に 2—デォキシリポース 1—リン酸 2アンモニゥム塩 (1. 6
7 g、 6. 7mmo 1 ) 、 グァニン (0. 92 g、 6. 1 mmo 1 ) と塩化マ グネシゥム 6水塩 (2. 05 g、 10. lmmo 1 ) を加えた。 該マスに、 実 施例 9で得た酵素液 (0. 2m l ) を加え、 50° (:、 3時間攪拌下で反応させ た。 3時間後に反応マスを HPLCで分析した所、 所望の 2 '—デォキシグァ ノシンを反応収率 65 %で得た。この時の反応中の pHは 6〜 7. 5を示した。 比較例 13 実施例 21と同様に、 反応 pHを酢酸またはアンモニア、 &〇^1を用ぃ Hを調整しながら反応を行なった時の収率を下記の表 7に示す。 結果から pH が 7. 5未満でも 10. 5以上でも収率が低下する事がわかる。 表 7 . p Hによる収率の変化
Figure imgf000032_0001
比較例 1 4 実施例 1 9、 比較例 1 1の反応方法で、 反応 p Hをアンモニアを用い 9 . 0 に調整しながら、 加える純水の量を変化させた時の反応収率の変化を下記の表 8に示す。 この表から、 塩化物の塩では、 生成する塩化アンモニゥムの影響で 反応濃度を低くしなければ収率が向上できない事がわかる。 表 8
Figure imgf000032_0002
産業上の利用可能性
本発明によれば、 ヌクレオシドホスホリラーゼまたは該酵素活性を有する微 生物を用いたペントースー 1—リン酸と核酸塩基からのヌクレオシド化合物の 製造において、 リン酸と難水溶性塩を形成しうる金属塩を添加することで副生 するリン酸が反応系から除外され、 従来技術では達成されなかった反応収率の 向上が達成される。 また、 反応液の高粘度化や固化を生じさせずにヌクレオシ ド化合物を高収率で効率的に生産することが可能となる。 これらのことは、 ェ 業的見地から本発明は大きなコストダウンに繋がり、 その意義は大きい。 核酸塩基又は核酸塩基アナログを水酸化リチウムなどのアルカリ水溶液に溶 解して添加すると反応操作が簡便になる。
リン酸イオンと難水溶性の塩を形成し得る金属カチオンの塩として水酸化マ グネシゥムを用いると、 水酸化マグネシウムの水に対する溶解度が低いため、 ( 1) 反応中に反応液の pHがほとんど変化しないので酵素の失活が防止され る (水酸水酸化マグネシウム以外の水溶性の金属カチオンの塩を用いると反応 中に反応液の p Hは若干アル力リ性側へと変化する) 、
(2) 反応に伴う反応液の塩濃度の上昇がないので、 塩濃度の上昇による反応 阻害が防止され、 加えてより高濃度の反応が可能になる、
(3) 金属カチオンを反応前に一括で添加可能である等の利点がある。 また、 金属カチオンとしてマグネシウムイオンを用いると反応終了後に反応液をろ過 する工程においてそのろ過速度が顕著に向上するため工業上非常に有用である。

Claims

請 求 の 範 囲
1 . 水性反応媒体中で、 ヌクレオシドホスホリラーゼ活性の存在下に、 ぺ ントースー 1一リン酸と、 核酸塩基または核酸塩基アナログとを、 リン酸ィォ ンと難水溶性の塩を形成し得る金属カチオンの存在下に反応させて、 ヌクレオ シド化合物を生成させるヌクレオシド化合物の製造方法であって、 反応開始後 に、 前記ペントースー 1一リン酸、 前記核酸塩基または核酸塩基アナログ及び 前記金属カチオンから選択した少なくとも 1種の成分を反応途中の水性反応媒 体中に添加することを特徴とするヌクレオシド化合物の製造方法。
2 . 前記ペントースー 1一リン酸が、 リポース一 1一リン酸または 2—デォ キシリポース一 1一リン酸である請求項 1に記載のヌクレオシド化合物の製造 方法。
3 . 前記リン酸と難水溶性の塩を形成し得る金属カチオンが、 カルシウム イオン、 バリウムイオン、 アルミニウムイオン、 リチウムイオン及びマグネシ ゥムイオンの中から選ばれる 1種以上である請求項 1又は 2に記載のヌクレオ シド化合物の製造方法。
4 . 前記リン酸と難水溶性の塩を形成しうる金属カチオンを、塩素イオン、 硝酸イオン、 炭酸イオン、 硫酸イオン、 酢酸イオンおよび水酸化イオンの中か ら選ばれる 1種類以上のァニオンとの金属塩として水性反応媒体中に添加する 請求項 3に記載のヌクレオシド化合物の製造方法。
5 . 前記リン酸と難水溶性の塩を形成しうる金属カチオンを、 ペントース 一 1ーリン酸の塩として水性反応媒体中に添加する請求項 3に記載のヌクレオ シド化合物の製造方法。
6 . 前記反応開始後に前記水性反応媒体に添加される少なくとも 1種の成 分のうちの少なくとも 1種について、 その反応終了までに添加する量を 2回以 上に分割して、 あるいは連続的に徐々に前記水性反応媒体に添加することを特 徴とする請求項 1に記載のヌクレオシド化合物の製造方法。
7 . 前記ペントースー 1一リン酸、 前記核酸塩基または核酸塩基アナログ 及び前記金属カチオンの 3種の成分の反応終了までに添加する量が、 これら成 分を水性反応媒体に一括して添加 ·反応させた場合に水性反応媒体に高粘度化 または固化が生じ、 且つ前記反応開始後の一種以上の成分の反応終了までの添 加量の一部又は全部が前記反応開始後に分割添加することで該反応液の高粘度 化または固化が防止されることを特徴とする請求項 1または 6に記載のヌクレ オシド化合物の製造方法。
8 . 前記核酸塩基または核酸塩基アナログを、 アルカリ水溶液として加え ることを特徴とする請求項 1〜 7のいずれか一項に記載のヌクレオシド化合物 の製造方法。
9 . 前記核酸塩基または核酸塩基アナログを溶解するアル力リ水溶液が、 水酸化リチウム、 炭酸リチウム及び炭酸水素リチウムのいずれか一つ以上を含 有する溶液であることを特徴とする請求項 8記載のヌクレオシド化合物の製造 方法。
1 0 . 水性反応媒体中で、 ヌクレオシドホスホリラ一ゼ活性の存在下に、 ペントース— 1一リン酸と、 核酸塩基または核酸塩基アナログとを、 リン酸と 難水溶性の塩を形成する金属カチオンの塩の存在下、 p Hを調整せずに反応さ せて、 ヌクレオシド化合物を生成させるヌクレオシド化合物の製造方法であつ て、該金属力チォンの塩が水に難水溶性の塩であることを特徴とする製造方法。
1 1 . 金属カチオンの塩が、 水酸化マグネシウム、 酸化マグネシウム、 炭 酸マグネシウム及び塩基性炭酸マグネシウムから選択された少なくとも 1種で ある請求項 1 0記載のヌクレオシド化合物の製造方法。
1 2 . 反応の際の水性反応媒体の p Hが 7 . 5から 1 0 . 0の範囲である ことを特徴とする請求項 1 1記載のヌクレオシド化合物の製造方法。
1 3 . 反応により得られた反応液をろ過して、 反応液中の不溶性物質を除 去し、 ヌクレオシド化合物を含有するろ液を得る工程を有することを特徴とす る請求項 1 1に記載のヌクレオシド化合物の製造方法。
PCT/JP2001/009701 2000-11-06 2001-11-06 Process for producing nucleoside compound Ceased WO2002036800A1 (en)

Priority Applications (4)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US10/415,927 US20040219646A1 (en) 2000-11-06 2001-11-06 Process for producing nucleoside compound
EP01980986A EP1338654B1 (en) 2000-11-06 2001-11-06 Process for producing nucleoside compound
DE60136209T DE60136209D1 (de) 2000-11-06 2001-11-06 Verfahren zur herstellung einer nukleosidverbindung
KR10-2003-7006185A KR100468979B1 (ko) 2000-11-06 2001-11-06 뉴클레오시드 화합물의 제조 방법

Applications Claiming Priority (6)

Application Number Priority Date Filing Date Title
JP2000-337715 2000-11-06
JP2000337715 2000-11-06
JP2000-380576 2000-12-14
JP2000380576 2000-12-14
JP2001082857 2001-03-22
JP2001-82857 2001-03-22

Publications (1)

Publication Number Publication Date
WO2002036800A1 true WO2002036800A1 (en) 2002-05-10

Family

ID=27345114

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PCT/JP2001/009701 Ceased WO2002036800A1 (en) 2000-11-06 2001-11-06 Process for producing nucleoside compound

Country Status (6)

Country Link
US (1) US20040219646A1 (ja)
EP (2) EP1925675B1 (ja)
KR (1) KR100468979B1 (ja)
CN (1) CN1238519C (ja)
DE (2) DE60136209D1 (ja)
WO (1) WO2002036800A1 (ja)

Families Citing this family (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN113403356A (zh) * 2021-05-25 2021-09-17 天尔生物医药(湖北)有限公司 一种高纯度核糖-1-磷酸的制备方法

Citations (7)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPS59213397A (ja) * 1983-05-20 1984-12-03 Yamasa Shoyu Co Ltd デオキシウリジン誘導体の製造法
EP0198387A2 (en) * 1985-04-08 1986-10-22 Kanegafuchi Chemical Industry Co., Ltd. 7-Hydroxyguanine compounds, process for preparing said compounds, pharmaceutical composition, and use thereof
JPH01320995A (ja) * 1988-06-22 1989-12-27 Japan Tobacco Inc ヌクレオシド化合物の製造方法
JPH09215498A (ja) * 1996-02-14 1997-08-19 Yuki Gosei Kogyo Co Ltd ヌクレオシド化合物の製造方法
EP0896065A1 (en) * 1997-08-04 1999-02-10 Yuki Gosei Kogyo Co., Ltd. Method of preparing purine nucleoside compound
JPH11137290A (ja) * 1997-11-14 1999-05-25 Ajinomoto Co Inc 2’−デオキシアデノシン、2’−デオキシグアノシンの製造法
WO2000070074A1 (fr) * 1999-05-13 2000-11-23 Mitsui Chemicals, Incorporated Procede de production de compose nucleosidique

Family Cites Families (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4292199A (en) * 1980-08-18 1981-09-29 Uop Inc. Method of preparing a support matrix
JPH0763385B2 (ja) * 1987-07-17 1995-07-12 味の素株式会社 チミジンの製造方法
US5514569A (en) * 1992-12-23 1996-05-07 Hyman; Edward D. Method for enzymatic synthesis of oligonucleotides using phosphate precipitation
US6858721B2 (en) * 2001-05-01 2005-02-22 Mitsui Chemicals, Inc. Method for producing cytosine nucleoside compounds

Patent Citations (7)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPS59213397A (ja) * 1983-05-20 1984-12-03 Yamasa Shoyu Co Ltd デオキシウリジン誘導体の製造法
EP0198387A2 (en) * 1985-04-08 1986-10-22 Kanegafuchi Chemical Industry Co., Ltd. 7-Hydroxyguanine compounds, process for preparing said compounds, pharmaceutical composition, and use thereof
JPH01320995A (ja) * 1988-06-22 1989-12-27 Japan Tobacco Inc ヌクレオシド化合物の製造方法
JPH09215498A (ja) * 1996-02-14 1997-08-19 Yuki Gosei Kogyo Co Ltd ヌクレオシド化合物の製造方法
EP0896065A1 (en) * 1997-08-04 1999-02-10 Yuki Gosei Kogyo Co., Ltd. Method of preparing purine nucleoside compound
JPH11137290A (ja) * 1997-11-14 1999-05-25 Ajinomoto Co Inc 2’−デオキシアデノシン、2’−デオキシグアノシンの製造法
WO2000070074A1 (fr) * 1999-05-13 2000-11-23 Mitsui Chemicals, Incorporated Procede de production de compose nucleosidique

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
See also references of EP1338654A4 *

Also Published As

Publication number Publication date
EP1925675A1 (en) 2008-05-28
CN1238519C (zh) 2006-01-25
EP1925675B1 (en) 2010-02-03
US20040219646A1 (en) 2004-11-04
DE60141258D1 (de) 2010-03-25
EP1338654B1 (en) 2008-10-15
EP1338654A1 (en) 2003-08-27
KR100468979B1 (ko) 2005-02-02
CN1476484A (zh) 2004-02-18
DE60136209D1 (de) 2008-11-27
EP1338654A4 (en) 2005-11-09
KR20030059225A (ko) 2003-07-07

Similar Documents

Publication Publication Date Title
KR20160030876A (ko) 약제학적 활성 성분들로써 뉴클레오시드 유사체들의 생물촉매적 생산
JP2010031037A (ja) 1−リン酸化糖誘導体のアノマーの選択的な製造法並びにヌクレオシドの製造法
US7629457B2 (en) Method for producing cytosine nucleoside compounds
JP4601060B2 (ja) アジド化アミノ糖ヌクレオチド及びその応用
WO2002031176A1 (fr) Procédé permettant la production de nucléosides
JP2003310293A (ja) ヌクレオシド化合物の製造法
CN106191172A (zh) 胞嘧啶核苷类似物的酶法制备
WO2002036800A1 (en) Process for producing nucleoside compound
EP1179598B1 (en) Process for producing nucleoside compound
JP4047574B2 (ja) ヌクレオシド化合物の製造方法
JP4593608B2 (ja) ヌクレオシド化合物の製造方法
JP5140242B2 (ja) Cmp−n−アセチルノイラミン酸の製造法
JP4469460B2 (ja) ヌクレオシド化合物の製造方法
JP4441313B2 (ja) 2’−デオキシ−5−パーフルオロアルキルウリジンの製造法
GB2403950A (en) Pyrimidine nucleosides from reaction of sugar phosphate with pyrimidine base derivative &amp; enzyme having cytosine nucleoside phosphorylase activity
JP2004313002A (ja) ヌクレオシドの製造方法
JP2003055392A (ja) 1−リン酸化糖の製造法並びにヌクレオシドの製造法
KR101818561B1 (ko) 바실러스 유래 뉴클레오시드 포스포릴라아제를 이용한 3&#39;-아미노-2&#39;,3&#39;-디데옥시아데노신의 제조 방법
JP2004024086A (ja) シトシンヌクレオシド化合物の製造法
JP3766040B2 (ja) シトシンヌクレオシド化合物の製造方法
EP1457568A1 (en) Process for producing 2 -deoxyguanosine
JP2002205996A (ja) 1−リン酸化糖誘導体のアノマーの選択的な製造法並びにヌクレオシドの製造法
JP2002191392A (ja) ヌクレオシド誘導体の製造法
KR20160123677A (ko) 시토신 뉴클레오시드 유사체의 효소적 생산

Legal Events

Date Code Title Description
DFPE Request for preliminary examination filed prior to expiration of 19th month from priority date (pct application filed before 20040101)
121 Ep: the epo has been informed by wipo that ep was designated in this application
WWE Wipo information: entry into national phase

Ref document number: 543/KOLNP/2003

Country of ref document: IN

WWE Wipo information: entry into national phase

Ref document number: 1020037006185

Country of ref document: KR

WWE Wipo information: entry into national phase

Ref document number: 10415927

Country of ref document: US

WWE Wipo information: entry into national phase

Ref document number: 018194834

Country of ref document: CN

Ref document number: 2001980986

Country of ref document: EP

WWP Wipo information: published in national office

Ref document number: 1020037006185

Country of ref document: KR

WWP Wipo information: published in national office

Ref document number: 2001980986

Country of ref document: EP

WWG Wipo information: grant in national office

Ref document number: 1020037006185

Country of ref document: KR