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WO2002046235A1 - Anticorps monoclonal humain dirige contre le virus influenza ou un fragment de celui-ci - Google Patents

Anticorps monoclonal humain dirige contre le virus influenza ou un fragment de celui-ci Download PDF

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Publication number
WO2002046235A1
WO2002046235A1 PCT/FR2001/003883 FR0103883W WO0246235A1 WO 2002046235 A1 WO2002046235 A1 WO 2002046235A1 FR 0103883 W FR0103883 W FR 0103883W WO 0246235 A1 WO0246235 A1 WO 0246235A1
Authority
WO
WIPO (PCT)
Prior art keywords
monoclonal antibody
fragment
influenza virus
antibody according
ref
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Ceased
Application number
PCT/FR2001/003883
Other languages
English (en)
Inventor
Jacques Noury
Hervé Bazin
Dominique Latinne
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Technopharm SARL
Original Assignee
Technopharm SARL
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Technopharm SARL filed Critical Technopharm SARL
Priority to AU2002217213A priority Critical patent/AU2002217213A1/en
Publication of WO2002046235A1 publication Critical patent/WO2002046235A1/fr
Anticipated expiration legal-status Critical
Ceased legal-status Critical Current

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    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C07—ORGANIC CHEMISTRY
    • C07K—PEPTIDES
    • C07K16/00—Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies
    • C07K16/08—Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from viruses
    • C07K16/10—Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from viruses from RNA viruses
    • C07K16/1018—Orthomyxoviridae, e.g. influenza virus
    • A—HUMAN NECESSITIES
    • A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61K—PREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K39/00—Medicinal preparations containing antigens or antibodies
    • A61K2039/505—Medicinal preparations containing antigens or antibodies comprising antibodies
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C07—ORGANIC CHEMISTRY
    • C07K—PEPTIDES
    • C07K2317/00—Immunoglobulins specific features
    • C07K2317/50—Immunoglobulins specific features characterized by immunoglobulin fragments
    • C07K2317/52—Constant or Fc region; Isotype

Definitions

  • the present invention relates to human monoclonal antibodies directed against influenza viruses responsible for influenza in humans or fragments thereof.
  • the invention also relates to the preparation of these antibodies, the hybridomas producing them and the compositions containing them as well as their use in diagnosis or in preventive and / or curative therapy.
  • the Influenza virus is a virus of the orthomyxoviridae family whose official definition of strains dating from October 1971 describes the identity of the strain and the nature of the surface antigens by mentioning the animal species of origin.
  • Influenza represents a seasonal infectious, respiratory illness of viral origin described by Thompson in 1852 and by Creighton in 1891.
  • Monoclonal antibodies directed against an antigenic determinant have been produced by a large number of laboratories since the introduction of the cell fusion technique between a myeloma cell and a lymphoid cell of an immunized animal.
  • the first model of hybridomas secreting monoclonal antibodies developed by Kôhler and Milstein (1975, Nature, vol. 256, page 495) was a murine model.
  • Monoclonal antibodies produced by hybridomas have the advantage of being specific to influenza viruses. These antibodies are useful for curative and / or preventive therapy and diagnosis.
  • the monoclonal antibodies according to the invention are remarkable in that they are 100% human and are prepared without an intermediate phase of an antibody of a non-human animal species and in that they are active on influenza viruses.
  • the invention covers monoclonal antibodies, the variable parts of the heavy and light chains of which are truly human and the constant parts of which are from one of the different classes of human immunoglobulins or of any other substance or product. Thus, monoclonal antibodies represent a new therapeutic class in the treatment of this viral infection.
  • Human monoclonal antibodies directed against the Influenza virus have already been described (Ostberg, L. et al. Hybrydoma, vol 2, n ° 4, pages 361-367), but they are class IgG antibodies whose specificity is restricted to a single strain of the Influenza virus. In particular, the authors describe a human monoclonal antibody of class IgG1 neutralizing against the strain AH3 of the influenza virus.
  • the present invention however relates to new human monoclonal antibodies having neutralizing properties with respect to the Influenza virus and more particularly to strains A and B whatever the nature of the seasonal strains.
  • the absence of narrow specificity for the different strains of virus of the antibodies of the invention is particularly advantageous from the therapeutic point of view since these antibodies are capable of being active on different strains of virus.
  • the invention also relates to a fragment of such an antibody and more particularly to the Fab fragments and their associations.
  • the human monoclonal antibody of the invention belongs to the class of human IgM, IgD, IgE or IgA and was obtained directly without going through chimerization or humanization steps.
  • the antibody of the invention can also be modified, whatever its class, into antibodies of another class of immunoglobulin for example by techniques described in molecular biology (Lewis et al., 1992, Hum. Antibodies Hybridomas, vol. 3, pages 146-52; Lewis et al., 1993, J. Immunol., vol. 151, pages 2829-38; Hall et al., 1994, Cancer Res., vol. 54, pages 5178-85; Shepherd and Dean, "Monoclonal antibodies", Oxford university press, 2000, 479 pages).
  • the invention relates more particularly to a monoclonal antibody of IgM Lambda or Kappa class having substantially the same molecular weight in electrophoresis on polyacrylamide gel as the reference human IgM: Sigma, Ref. 18260 and exhibiting a positive reaction with an anti-human IgM antibody.
  • This monoclonal antibody is capable of protecting mice against infection by the influenza H3N2 influenza virus (Solvay pharma).
  • the invention also relates to hybridomas capable of producing monoclonal antibodies according to the invention.
  • the invention relates more particularly to the hybridoma deposited in the National Collection of Cultures of Microorganisms at the Institut Pasteur (Paris) under No. 1-2585, on November 29, 2000, this deposit having been made within the framework of the Budapest Treaty.
  • the invention also relates to any system of expression and therefore of production made from the genetic material of the hybridomas of the invention.
  • the invention also relates to a monoclonal antibody comprising a fragment of an antibody according to the invention.
  • Such antibodies can be prepared by techniques known to those skilled in the art to combine different antibody fragments.
  • the invention also relates to a method for preparing an antibody described above.
  • a preferred method for preparing an antibody according to the invention is based on the successive and combined use of various cytokines at defined times and of a non-specific activating system.
  • a preferred method for preparing human monoclonal antibodies directed against the Influenza virus or a fragment thereof or an antibody comprising such a fragment according to the invention is prepared from B lymphocytes.
  • This method comprises the following steps: a) isolation of B cells from human blood, b) differentiation of said B cells into plasma cells with at least one non-specific activator system and at least one cytokine, c) immortalization of said plasma cells by cell fusion with a line of fusion, d) the In vi tro culture of the fused cells until hybridomas are obtained, e) the purification of the monoclonal antibodies produced by the hybridomas, f) optionally the cleavage of said antibodies into fragments, and the purification of one or more of said fragments, g) optionally the association of one or more of the fragments obtained in step (f) with fragments of other antibodies.
  • step (b) of differentiating B lymphocytes comprises the following steps: i) mixing a suspension of B lymphocytes with 0.01 to 1% of a non-specific activating system and from 1 to 8, 5 ng / ml of IL2, then incubation of the mixture for 24 hours to 11 days at a temperature between 36.5 and 37.8 ° C, ii) centrifugation of the suspension obtained in (i) from 600 to 3500 rpm for 2 to 12 minutes, then removing the supernatant and resuspending the cell pellet, iii) mixing the suspension obtained in
  • step (b) of differentiating B lymphocytes comprises the following steps: i) mixing a suspension of B lymphocytes with 0.04% of a non-specific activating system and 2.5 ng / ml of IL2, then incubating the mixture for 3 days at a temperature of 37 ° C.
  • the non-specific activating system is chosen from a lipopolysaccharide or any substance capable of having an identical action in whole or in part, pansorbine, phytohemagglutinin, muramyldipeptide used alone or in combination.
  • the fusion line used for immortalizing the plasma cells in step (c) is a myeloma rodent line, preferably a myeloma rat line and most preferably a myeloma rat line of LOU strain.
  • the fusion line used for the immortalization of the plasma cells in step (c) is the myeloma rat line LOU IR 983 F / TEC deposited in the National Collection of Cultures of Microorganisms at the Institut Pasteur (Paris) under No. 1-2584, November 29, 2000. This deposit was made under the Budapest Treaty.
  • step (b) of differentiating B lymphocytes into plasma cells is carried out in the presence of an antigen specific for the Influenza virus.
  • step (a) the B lymphocytes are isolated from the blood of an individual vaccinated against the flu or recovering from an infection with the Influenza virus.
  • the specificity of the monoclonal antibodies according to the invention can be evaluated: - by an ELISA test of specificity with respect to the strains of the Influenza virus;
  • the in vivo test on a murine model is advantageously carried out by administering monoclonal antibodies according to the invention to mice infected with the Influenza virus in lethal doses at 10 days.
  • the administration of the antibodies according to the invention makes it possible to obtain a survival of the mice between 80 and 100% after 10 days compared to a placebo which does not protect the mice which die after 10 days of infection.
  • the antibodies or antibody fragments according to the invention can be used for the diagnosis of influenza or for the curative or preventive treatment of infections by strains of the Influenza virus.
  • the invention also relates to pharmaceutical compositions comprising, as active agent, an effective amount of at least one monoclonal antibody or a fragment thereof according to the invention.
  • the subject of the invention is a kit for detecting an infection with the strains of the Influenza virus, comprising at least one monoclonal antibody or a fragment thereof according to the invention.
  • AET 2-Aminoethylisothiouroniumbromide
  • IL2 Recombinant human interleukin 2 (R and D, ref:
  • IL6 Recombinant human interleukin 6 (R and D, ref .:
  • IL10 Recombinant human interleukin 10 (R & D, ref .: 217 IL025)
  • HEPES 1M Life Technology, ref .: 15630-056
  • PEG Polyethylene glycol 4000 (Fisher Sci., Ref:
  • Aminopterin 100X (Life Technology, ref .: 11362-019)
  • Thymidine 50X Hypoxantine Supplement (Life Technology, Ref: 41065-012) 2) Method, a) First step.
  • the blood was taken from volunteers vaccinated with an influenza vaccine or recovering from an influenza infection. Samples are taken 0, 8, 15 or 21 days after vaccination.
  • Human blood from EDTA tubes is diluted in the same volume of PBS.
  • the diluted blood is placed in a 50 ml centrifuge tube containing the lymphocyte separation medium (1/3 of medium for 2/3 of blood). After centrifugation at 3000 rpm without brake for 20 min, the ring of lymphocytes is recovered at the interface using a 10 ml pipette.
  • the pipette is emptied into a 15 ml centrifuge tube and complete RPMI culture medium, RPMI culture medium containing 1% L-glutamine, 0.1% gentamicin, 50 ⁇ M 2-mercaptoethanol and 10% serum. fetal calf, is added qs 15 ml.
  • the cell pellet is resuspended in 10 ml of complete RPMI culture medium. After centrifugation at 1300 rpm with brake for 6 min, the supernatant is removed. The cell pellet is resuspended in complete RPMI medium so as to have from 1 to 2.10 th cells per ml.
  • the cell suspension is placed in culture flasks at a rate of 10 ml per 50 ml flask.
  • the monocytes are removed by adhesion by incubating the bottles horizontally in an oven at 37 ° C. and 5% of CO 2 overnight.
  • NaOH NaOH
  • 10 ml of distilled water The solution is filtered on a 0.22 ⁇ m filter in a 10 ml tube. Twelve ml of defibrinated sheep blood is placed in a 15 ml centrifuge tube. After centrifugation at 2100 rpm for 10 min, the supernatant is removed and the pellet of red blood cells is resuspended in 10 ml of HBSS. After centrifugation at 2100 rpm for 10 min, the supernatant is removed. Two ml of red blood cells and 8 ml of AET solution are mixed in a 15 ml centrifuge tube. After a one hour incubation at 37 ° C, 5 ml of PBS is added.
  • the cell suspension of the vials is recovered.
  • An equal volume of cell suspension and 4% solution of sheep red blood cells- ET is put in a 50 ml tube.
  • Half a volume of fetal calf serum is added.
  • the whole is mixed gently and centrifuged 5 min at 800 rpmi / min.
  • the mixture with the supernatant is incubated for 1 hour in ice.
  • the supernatant is removed and the pellet is resuspended and then placed in a 15 ml centrifuge tube containing the lymphocyte separation medium, 1/3 of medium for 2/3 of pellet. After centrifugation at 3000 rpm without brake for 20 min, the ring of lymphocytes is recovered at the interface using a pipette.
  • the pipette is emptied into a 15 ml centrifuge tube and complete RPMI culture medium is added to 15 ml. After centrifugation at 1300 rpm with brake for 6 min, the supernatant is removed. The cell pellet is resuspended in 10 ml of complete RPMI culture medium. After one centrifugation at 1300 rpm with brake for 6 min, the supernatant is removed. The cell pellet is resuspended in complete RPMI medium and the cell suspension is placed in culture flasks at a rate of 10 ml per 50 ml flask.
  • the cell suspension is put in a 15 ml centrifuge tube and the IR 983 F / TEC cells in another tube.
  • the tubes are centrifuged for 6 min at 1200 rpm.
  • the supernatants are removed and the cells are resuspended in 10 ml of complete MEM REGA 3 medium, MEM REGA 3 medium containing 1% of HEPES and 0.1% of genta icine, at 37 ° C.
  • a count of the two cell types is carried out.
  • the tubes are centrifuged for 6 min at 1200 rpm.
  • the supernatants are removed and the cells are re 'suspended in 10 ml of MEM Rega 3 complete at 37 ° C.
  • the cells are mixed in a 50 ml centrifuge tube in a ratio of 1 IR 983 F / TEC for a plasma cell. After centrifugation at 1200 rpm for 6 min, the supernatants are removed and the pellet is resuspended in the last drop.
  • a PEG solution is obtained by heating 5 g of PEG 4000 in 7 ml of PBS and 1 ml of DMSO to 50 ° C. and then filtering the solution on a 0.2 ⁇ M filter. A ml of PEG solution is added to the pellet over 1 min 30 sec by shaking the tube.
  • the cell suspension is distributed on 96-well culture plates containing 100 ⁇ l of peritoneal cells, the suspension is distributed at the rate of 100 ⁇ l per well.
  • the plates are incubated for 7 days in an oven at 37 ° C and 5% C0 2 .
  • the culture medium of the plates is removed and are then placed, per well, 200 ⁇ l of complete DMEM medium containing 2% of hypoxanthine-thymidine and 2.5 ng / ml of IL6.
  • the culture medium of the plates is removed and are then placed, per well, 200 ⁇ l of complete DMEM medium containing 2.5 ng / ml of IL6.
  • the plates are incubated in an oven at 37 ° C and 5% C0 2 , the culture medium is changed in the same way until the appearance of the clones.
  • the hybridomas obtained are tested for the production of human immunoglobulins (Ig) by the ELISA technique using antibodies to human anti-IgG and anti-IgM rats. Table 1 summarizes the results obtained (number of clones and production of Ig).
  • the immunoglobulins are recovered from the culture supernatants of the 9 clones FAL 11 and of the clone FAL 8. They are purified by affinity chromatography on a Sepharose column coupled with anti-human Ig antibodies which are the LO-hK antibody -3 (anti-human Ig Kappa, ref: TEC 146, Technophar -France) and the antibody LO-hL-2 (anti-human Ig lambda, ref: TEC 147, Technopharm-France). The immunoglobulin concentration is evaluated by an ELISA test in comparison with a standard (human IgM at 1 mg / ml, ref: 18260, Sigma).
  • H3N2 Influenza virus viral antigens: A / Sidney / 5/97 (H3N2) -like lot: HVR 13-1, A / Beijing / 262/95 (H1N1) -like lot: HXH 19-4, B / Beijing / 184 / 93 (H3N2) -like lot: HHA 06-5,
  • the antigens diluted to a concentration of 5 to 10 ⁇ g / ml in carbonate bicarbonate buffer at pH 9.5 are distributed at the rate of 100 ⁇ l per well in 96-well plates. These plates are incubated overnight at 4 ° C. The plates are then washed 3 times with
  • PBS containing 2% Tween 20 The plates are saturated with PBS containing 2% Tween 20 and 5% skimmed milk at the rate of 200 ⁇ l per well and incubated for one hour at 37 ° C. The plates are then washed 3 times with PBS containing 2% Tween 20.
  • the immunoglobulin samples at different dilutions are distributed in the plates at a rate of 10 ⁇ l per well. These plates are incubated for 2 hours at 37 ° C. The plates are then washed 6 times with PBS containing 2% Tween 20.
  • the antibodies coupled to the peroxidase are diluted in PBS containing 2% of Tween 20 (0.5 ⁇ l / ml) and deposited in the plates at the rate of 100 ⁇ l per well. The plates are incubated for one hour at 37 ° C. The plates are washed 6 times with PBS containing 2% of Tween 20.
  • An OPD tablet (0 Phenylenediamine, ref:
  • ELISA tests are therefore carried out in order to test the specificity of the immunoglobulins on the viral antigens A (H3N2), A (H1N1) and B of the strains of winter 1998/99 (Table 2). The tests were positive for 2 FAL 11 clones (3D2 and 2C3) and for the FAL 8 clone (1G4).
  • Table 2 Result of the ELISA test for specificity on the different clones.
  • mice 5-week-old female BALB / c mice are grouped in batches of 6. They are housed in an autonomous enclosure in cages covered with a filtering cap.
  • the Scotland strain influenza A virus [A / Scotland / 74 (H3N2)] is adapted to mice by successive pulmonary passages.
  • the viral stock is stored in crushed lungs at -80 ° C.
  • the dilution in PBS buffer for the experimental infection is carried out temporarily.
  • Antibodies Human total immunoglobulins (Ivlg) stored at -80 ° C and then diluted to the desired concentration immediately before use (500 ⁇ g / 50 ⁇ l) are used as control.
  • the purified antibodies AB1, AB2, AB9 and AB10 stored at 4 ° C are adjusted to an equivalent concentration for each antibody (1 ⁇ g / 50 ⁇ l).
  • mice are lightly anesthetized according to a protocol described in the specialized books and receive 50 ⁇ l of suspension of antibody (AB1, AB2, AB9, AB10 or total human Ig: Ivlg) or physiological serum intra-nasally (controls ). The next day, after anesthesia, they receive 50 ⁇ l of the lethal viral suspension in 10 days.
  • mice are monitored daily. Protection effectiveness is measured in survival / lethality. iii) Results.
  • mice receiving the physiological saline died from Jll; - that mice receiving type antibodies
  • Ig M lambda from lot AB2 are all alive on D15;
  • mice receiving antibodies of the Ig M lambda type from batch AB9 all died at Jll;
  • mice receiving the total immunoglobulins at a dose of 500 ⁇ g are all alive on D15.
  • Table 3 Test for protection of a viral infection in mice using human antibodies (expressed in number of survivors per group of 6).

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Abstract

La présente invention concerne un anticorps monoclonal humain caractérisé en ce qu'il présente des propriétés neutralisantes vis-à-vis du virus Influenza et plus particulièrement des souches A et B quelle que soit la nature des souches saisonnières, ou un fragment de celui-ci. L'invention concerne aussi les hybridomes le produisant, les compositions le contenant et leur utilisation en thérapeutique préventive et/ou curative ou en diagnostic.

Description

ANTICORPS MONOCLONAL HUMAIN DIRIGÉ CONTRE LE VIRUS INFLUENZA OU UN FRAGMENT DE CELUI-CI.
La présente invention concerne des anticorps monoclonaux humains dirigés contre les virus Influenza responsables de la grippe chez l'homme ou des fragments de ceux-ci. L'invention concerne aussi la préparation de ces anticorps, les hybridomes les produisant et les compositions les contenant ainsi que leur utilisation en diagnostic ou en thérapeutique préventive et/ou curative.
Le virus Influenza est un virus de la famille des orthomyxoviridae dont la définition officielle des souches datant d'octobre 1971 décrit l'identité de la souche et la nature des antigènes de surface en mentionnant l'espèce animale d'origine.
La grippe représente une maladie saisonnière infectieuse, respiratoire d'origine virale décrite par Thompson en 1852 et par Creighton en 1891.
Les anticorps monoclonaux dirigés contre un déterminant antigênique sont produits par un grand nombre de laboratoires depuis l'introduction de la technique de fusion cellulaire entre une cellule myélomateuse et une cellule lymphoïde d'un animal immunisé. Le premier modèle d' hybridomes sécrétant des anticorps monoclonaux développé par Kôhler et Milstein (1975, Nature, vol. 256, page 495) fut un modèle murin.
Les anticorps monoclonaux produits par des hybridomes présentent l'intérêt d'être spécifiques des virus de la grippe. Ces anticorps sont utiles pour la thérapeutique curative et/ou préventive et le diagnostic. Les anticorps monoclonaux selon l'invention sont remarquables en ce qu'ils sont 100% humains et sont préparés sans phase intermédiaire d'un anticorps d'une espèce animale non humaine et en ce qu'ils sont actifs sur les virus de la grippe. L'invention couvre les anticorps monoclonaux dont les parties variables des chaînes lourdes et légères sont véritablement humaines et les parties constantes sont d'une des différentes classes d' immunoglobulines humaines ou de toute autre substance ou produit. Ainsi, les anticorps monoclonaux représentent une nouvelle classe thérapeutique dans le traitement de cette infection virale.
Des anticorps monoclonaux humains dirigés contre le virus Influenza ont déjà été décrits, (Ostberg, L. et al. Hybrydoma, vol 2, n° 4, pages 361-367), mais il s'agit des anticorps de classe IgG dont leur spécificité est restreinte à une seule souche du virus Influenza. En particulier, les auteurs décrivent un anticorps monoclonal humain de classe IgGl neutralisant vis-à-vis de la souche AH3 du virus Influenza.
La présente invention concerne cependant des nouveaux anticorps monoclonaux humains présentant des propriétés neutralisantes vis-à-vis du virus Influenza et plus particulièrement des souches A et B quelle que soit la nature des souches saisonnières. L'absence de spécificité étroite pour les différentes souches de virus des anticorps de l'invention est particulièrement intéressante sur le plan thérapeutique car ces anticorps sont capables d'être actifs sur différentes souches de virus. L'invention concerne aussi un fragment d'un tel anticorps et plus particulièrement les fragments Fab et leurs associations. L'anticorps monoclonal humain de l'invention appartient à la classe des IgM, IgD, IgE ou IgA humaines et a été obtenu directement sans passer par des étapes de chimérisation ou d'humanisation. L'anticorps de l'invention peut être aussi modifié, quelle que soit sa classe, en anticorps d'une autre classe d' immunoglobuline par exemple par des techniques décrites de biologie moléculaire (Lewis et al . , 1992, Hum. Antibodies Hybridomas, vol. 3, pages 146-52 ; Lewis et al . , 1993, J. Immunol . , vol. 151, pages 2829-38 ; Hall et al . , 1994, Cancer Res . , vol. 54, pages 5178-85 ; Shepherd et Dean, « Monoclonal antibodies », Oxford university press, 2000, 479 pages) .
L'invention concerne plus particulièrement un anticorps monoclonal de classe IgM Lambda ou Kappa présentant sensiblement le même poids moléculaire en électrophorèse sur gel de polyacrylamide que l'IgM humaine de référence : Sigma, Réf. 18260 et présentant une réaction positive avec un anticorps anti-IgM humaine.
Cet anticorps monoclonal est capable de protéger des souris contre l'infection par le virus Influenza H3N2 de la grippe (Solvay pharma) .
L'invention se rapporte également aux hybridomes capables de produire des anticorps monoclonaux selon l'invention. L'invention concerne tout particulièrement l'hybridome déposé à la Collection Nationale de Cultures de Micro-organismes à l'Institut Pasteur (Paris) sous le No. 1-2585, le 29 novembre 2000, ce dépôt ayant été réalisé dans le cadre du Traité de Budapest. L'invention se rapporte aussi à tout système d' expression et donc de production fait à partir du matériel génétique des hybridomes de l'invention.
L'invention se rapporte également à un anticorps monoclonal comprenant un fragment d'un anticorps selon l'invention. De tels anticorps peuvent être préparés par des techniques connues de l'homme du métier pour associer des fragments d'anticorps différents.
L'invention concerne aussi un procédé de préparation d'un anticorps décrit ci -dessus. Un procédé préféré de préparation d'un anticorps selon l'invention est basé sur l'utilisation successive et combinée de diverses cytokines à des temps définis et d'un système activateur non spécifique.
Un procédé préféré de préparation d'anticorps monoclonaux humains dirigés contre le virus Influenza ou un fragment de ceux-ci ou un anticorps comprenant un tel fragment selon l'invention est préparé à partir de lymphocytes B. Ce procédé comprend les étapes suivantes : a) l'isolement de lymphocytes B à partir de sang humain, b) la différenciation desdits lymphocytes B en cellules plasmocytaires avec au moins un système activateur non spécifique et au moins une cytokine, c) l' immortalisation desdites cellules plasmocytaires par fusion cellulaire avec une lignée de fusion, d) la culture In vi tro des cellules fusionnées jusqu'à l'obtention d' hybridomes, e) la purification des anticorps monoclonaux produits par les hybridomes, f) éventuellement le clivage desdits anticorps en fragments, et la purification d'un ou plusieurs desdits fragments, g) éventuellement l'association d'un ou plusieurs des fragments obtenu (s) à l'étape (f) avec des fragments d'autres anticorps.
On entend par « cellules plasmocytaires » à l'étape (b) des lymphocytes B modifiés produisant des immunoglobulines et aptes à être fusionnés avec une autre cellule pour donner un hybridome sécrétant des immunoglobulines. Ce' type de lymphocytes B modifiés est parfois appelé « lymphocytes B activés ». Avantageusement, l'étape (b) de differentiation des lymphocytes B comprend les étapes suivantes : i) le mélange d'une suspension de lymphocytes B avec de 0,01 à 1 % d'un système activateur non spécifique et de 1 à 8,5 ng/ml d'IL2, puis l'incubation du mélange pendant 24 heures à 11 jours à une température comprise entre 36,5 et 37,8°C, ii) la centrifugation de la suspension obtenue en (i) de 600 à 3500 rpm pendant 2 à 12 minutes, puis le retrait du surnageant et la remise en suspension du culot cellulaire, iii) le mélange de la suspension obtenue en
(ii) avec de 1 à 8,5 ng/ml d' IL2 et de 10 à 350 ng/ml d'ILlO, puis l'incubation du mélange pendant 48 heures à 15 jours à une température comprise entre 36,5 et 37,8°C.
Ainsi, à titre d'exemple préféré, l'étape (b) de différentiation des lymphocytes B comprend les étapes suivantes : i) le mélange d'une suspension de lymphocytes B avec 0,04 % d'un système activateur non spécifique et 2,5 ng/ml d'IL2, puis l'incubation du mélange pendant 3 jours à une température de 37°C sous 5% de C0 , ii) la centrifugation de la suspension obtenue en (i) à 1300 rpm pendant 6 minutes, puis le retrait du surnageant et la remise en suspension du culot cellulaire, iii) le mélange de la suspension obtenu en (ii) avec 2,5 ng/ml d' IL2 et 100 ng/ml d'ILlO, puis l'incubation du mélange pendant 5 jours à une température de 37°C sous 5% de C02.
Le système activateur non spécifique est choisi parmi un lipopolysaccharide ou toute substance susceptible d'avoir une action identique en tout ou partie, la pansorbine, la phytohémagglutinine, le muramyldipeptide utilisés seuls ou en association.
La lignée de fusion utilisée pour 1' immortalisation des cellules plasmocytaires à l'étape (c) est une lignée myélomateuse de rongeur, de préférence une lignée myélomateuse de rat et tout préférentiellement une lignée myélomateuse de rat de souche LOU.
Selon une forme de réalisation toute particulière du procédé de l'invention, la lignée de fusion utilisée pour l' immortalisation des cellules plasmocytaires à l'étape (c) est la lignée myélomateuse de rat LOU IR 983 F/ TEC déposée à la Collection Nationale de Cultures de Micro-organismes à l'Institut Pasteur (Paris) sous le No. 1-2584, le 29 novembre 2000. Ce dépôt a été réalisé dans le cadre du Traité de Budapest . Selon une première forme de mise en œuvre préférée du procédé de l'invention, l'étape (b) de différenciation des lymphocytes B en cellules plasmocytaires est effectuée en présence d'un antigène spécifique du virus Influenza.
Selon une seconde forme de mise en œuvre préférée du procédé de l'invention, à l'étape (a) les lymphocytes B sont isolés de sang d'un individu vacciné contre la grippe ou en convalescence d'une infection par le virus Influenza.
La spécificité des anticorps monoclonaux selon l'invention peut être évaluée : - par un test ELISA de spécificité vis-à-vis des souches du virus Influenza ;
- par un test d'inhibition d'hémagglutination avec les antigènes des souches du virus Influenza ;
- ou par un test In vivo sur un modèle animal de protection vis-à-vis des souches du virus Influenza.
Le test in vivo sur un modèle murin est avantageusement réalisé en administrant des anticorps monoclonaux selon l'invention à des souris infectées par le virus Influenza à des doses létales à 10 jours. L'administration des anticorps selon l'invention permet d'obtenir une survie des souris entre 80 et 100% après 10 jours comparativement à un placebo ne protégeant pas les souris qui meurent après 10 jours d'infection.
Les anticorps ou fragments d'anticorps selon l'invention peuvent être utilisés pour le diagnostic de la grippe ou pour le traitement curatif ou préventif d'infections par les souches du virus Influenza. L'invention se rapporte encore à des compositions pharmaceutiques comprenant à titre d'agent actif une quantité efficace d'au moins un anticorps monoclonal ou un fragment de celui-ci selon l'invention. Ainsi, l'invention a pour objet un kit de détection d'une infection par les souches du virus Influenza, comprenant au moins un anticorps monoclonal ou un fragment de celui-ci selon l'invention.
D'autres avantages et caractéristiques de l'invention apparaîtront de la description qui suit rapportant des exemples de préparation d'anticorps monoclonaux et leur propriété.
I- Isolement des lymphocytes B humains.
1) Matériel.
Tubes EDTA (CML, réf : T200QS)
Seringues 20 ml (Fisher Sci . , réf : A14669625)
Filtres Minisart 0,22 μM (CML, réf : 17597K) Plaques de culture 96 puits (Life Technologies, réf :
167008A)
Flacons de culture à bouchons ventilés (Fisher Sci., réf :
A12078050)
Pipettes stériles 10 ml (CML, réf : P1051 B) Tubes à centrifugation 50 ml (Fisher Sci., réf : A12832506)
Tubes centrifugeurs 15 ml (Fisher Sci., réf : A12832163)
Tubes 12 ml stériles ml (Fisher Sci., réf : A12926183)
Cellule à numération (CML, réf :KOVAS)
Bleu de trypan (Sigma, réf : T-8154) Milieu de culture DMEM (Biowhittaker, réf : M12914F)
Milieu de culture RPMI 1640 (Biowhittaker, réf : M12115F)
Sérum de veau fœtal (Labconsul, réf : P30-0702)
Sérum de cheval (Labconsul, réf : 17-905C) L-glutamine 200 mM (Biowhittaker, réf : 17-905C)
Gentamicine 50 mg/ml (Life Technologies, réf : 15750-045)
NEAA 100X (Biowhittaker, réf : BE13-114E)
Pyruvate de sodium 100 mM (Biowhittaker, réf : 13-115E) 2-mercaptoéthanol (Sigma, réf. : M7522)
Milieu de séparation des lymphocytes (Biowhittaker, réf. :
MI 7829E)
Sang de mouton défibriné (Eurobio, réf. : 905705)
HBSS (Life Technology, réf. : 14025-050) PBS (Biowhittaker, réf. : MI 7512F)
AET : 2-Aminoethylisothiouroniumbromide (Sigma, réf. :
A5879)
Eau distillée
NaOH (Fisher Sci., réf : A43211977) IL2 : Interleukine 2 humaine recombinante (R et D, réf. :
202 IL050)
IL6 : Interleukine 6 humaine recombinante (R et D, réf. :
206 IL050)
IL10 : Interleukine 10 humaine recombinante (R et D, réf. : 217 IL025)
Pansorbine (France Biochem SA, réf. : 507851)
Milieu de fusion MEM REGA 3 (Life Technology, réf. : 19993-
013)
HEPES 1M (Life Technology, réf. : 15630-056) PEG : Polyéthylène glycol 4000 (Fisher Sci., réf :
A48691512)
DMSO : Diméthylsuifoxyde (Fisher Sci., réf : A43320281)
Aminoptérine 100X (Life Technology, réf. : 11362-019)
Supplément d' hypoxantine thymidine 50X (Life Technology, réf. : 41065-012) 2) Méthode, a) Première étape.
Le sang a été prélevé sur des volontaires vaccinés par un vaccin antigrippal ou en convalescence d'une infection grippale. Les prélèvements sont réalisés à 0, 8, 15 ou 21 jours après la vaccination.
Le sang humain provenant de tubes EDTA est dilué dans le même volume de PBS . Le sang dilué est déposé dans un tube à centrifuger de 50 ml contenant le milieu de séparation des lymphocytes (1/3 de milieu pour 2/3 de sang) . Après une centrifugation à 3000 rpm sans frein pendant 20 min, l'anneau de lymphocytes est récupéré à l'interface à l'aide d'une pipette de 10 ml. La pipette est vidée dans un tube à centrifuger de 15 ml et du milieu de culture complet RPMI, milieu de culture RPMI contenant 1% de L-glutamine, 0,1% de gentamicine, 50μM de 2- mercaptoéthanol et 10% de sérum de veau fœtal, est ajouté qsp 15 ml. Après une centrifugation à 1300 rpm avec frein pendant 6 min, le surnageant est enlevé. Le culot cellulaire est remis en suspension dans 10 ml de milieu de culture complet RPMI. Après une centrifugation à 1300 rpm avec frein pendant 6 min, le surnageant est enlevé. Le culot cellulaire est remis en suspension dans du milieu complet RPMI de façon à avoir de 1 à 2.10e cellules par ml. La suspension cellulaire est mise dans des flacons de culture à raison de 10 ml par flacon de 50 ml. Les monocytes sont enlevés par adhérence en incubant les flacons à l'horizontale dans une étuve à 37°C et 5% de C02 pendant une nuit . Une solution à 0,4 g de AET, pH 9 ajusté avec
NaOH, est préparée pour 10 ml d'eau distillée. La solution est filtrée sur filtre 0,22 μm dans un tube de 10 ml. Douze ml de sang de mouton défibriné sont mis dans un tube à centrifuger de 15 ml . Après une centrifugation à 2100 rpm pendant 10 min, le surnageant est enlevé et le culot de globules rouges est remis en suspension dans 10 ml de HBSS . Après une centrifugation à 2100 rpm pendant 10 min, le surnageant est enlevé. Deux ml de globules rouges et 8 ml de solution d'AET sont mélangés dans un tube à centrifuger de 15 ml . Après une incubation d'une heure à 37°C, 5 ml de PBS sont ajoutés. Le surnageant est enlevé après une centrifugation de 10 min à 1300 rpm. Deux ml du culot constitué de globules rouges et d'AET sont mis dans un tube à centrifuger de 50 ml contenant 48 ml de milieu complet RPMI. Une incubation est réalisée toute une nuit à 4°C. b) Deuxième étape .
La suspension cellulaire des flacons est récupérée. Un volume égal de suspension cellulaire et de solution à 4% de globules rouges de mouton- ET sont mis dans un tube de 50 ml. Un demi-volume de sérum de veau fœtal est ajouté. Le tout est mélangé doucement et centrifugé 5 min à 800 rpmi/min. Le mélange avec le surnageant est incubé 1 heure dans la glace. Le surnageant est enlevé et le culot est remis en suspension puis déposé dans un tube à centrifuger de 15 ml contenant le milieu de séparation des lymphocytes, 1/3 de milieu pour 2/3 de culot. Après une centrifugation à 3000 rpm sans frein pendant 20 min, l'anneau de lymphocytes est récupéré à l'interface à l'aide d'une pipette. La pipette est vidée dans un tube à centrifuger de 15 ml et du milieu de culture complet RPMI est ajouté qsp 15 ml. Après une centrifugation à 1300 rpm avec frein pendant 6 min, le surnageant est enlevé. Le culot cellulaire est remis en suspension dans 10 ml de milieu de culture complet RPMI. Après une centrifugation à 1300 rpm avec frein pendant 6 min, le surnageant est enlevé. Le culot cellulaire est remis en suspension dans du milieu complet RPMI et la suspension cellulaire est mise dans des flacons de culture à raison de 10 ml par flacon de 50 ml.
II- Différenciation en cellules plasmocytaires. Sont ajoutés à la suspension cellulaire 0,04% de pansorbine et 2,5 ng/ml d' IL2. La suspension cellulaire est incubée pendant 3 jours dans une étuve à 37°C et 5% de C02 avant d'être centrifugée 6 min à 1300 rpm. Le surnageant est enlevé et le culot cellulaire est remis en suspension dans du milieu complet RPMI. La suspension cellulaire est mise dans des flacons de culture à raison de 10 ml par flacon de 50 ml. Sont ajoutés à la suspension cellulaire 2,5 ng/ml d'IL2 et 100 ng/ml d'ILlO. La suspension cellulaire est incubée pendant 5 jours dans une étuve à 37°C et 5% de C02.
III- Fusion cellulaire.
La suspension cellulaire est mise dans un tube à centrifuger de 15 ml et les cellules IR 983 F/ TEC dans un autre tube. Les tubes sont centrifugés pendant 6 min à 1200 rpm. Les surnageants sont enlevés et les cellules sont remises en suspension dans 10 ml de milieu MEM REGA 3 complet, milieu MEM REGA 3 contenant 1% d'HEPES et 0,1% de genta icine, à 37°C. Après une centrifugation à 1200 rpm pendant 6 min, les surnageants sont enlevés et les cellules sont remises en suspension dans 10 ml de milieu MEM REGA 3 complet à 37°C. Un comptage des deux types cellulaires est effectué. Les tubes sont centrifugés pendant 6 min à 1200 rpm. Les surnageants sont enlevés et les cellules sont remises en ' suspension dans 10 ml de milieu MEM REGA 3 complet à 37°C. Les cellules sont mélangées dans un tube à centrifuger de 50 ml suivant un rapport de 1 IR 983 F/ TEC pour une cellule plasmocytaire. Après une centrifugation à 1200 rpm pendant 6 min, les surnageants sont enlevés et le culot est remis en suspension dans la dernière goutte. Une solution de PEG est obtenue en chauffant à 50°C 5 g de PEG 4000 dans 7 ml de PBS et 1 ml de DMSO puis en filtrant la solution sur filtre 0,2 μM. Un ml de solution de PEG est ajouté au culot en 1 min 30 sec en agitant le tube. On laisse reposer 30 sec. Sont ajoutés 1 ml de MEM REGA 3 à 37°C en 1 min 30 sec en agitant le tube puis 20 ml de MEM REGA 3 à 37°C en 4 min en agitant le tube. Après une centrifugation à 1200 rpm pendant 6 min, les surnageants sont enlevés et le culot est remis en suspension dans du milieu complet DMEM avec 1% d' aminoptérine et 2% d' hypoxantine-thymidine de façon à avoir 1.106 cellules par ml. Le milieu complet DMEM contient 1% de L-glutamine, 1% de NEAA, 1% de pyruvate de sodium, 0,1% de gentamicine, 50 μM de 2-mercaptoethanol, 5% de sérum de veau fœtal et 5% de sérum de cheval. La suspension cellulaire est répartie sur des plaques de culture 96 puits contenant 100 μl de cellules péritonéales, la suspension est répartie à raison de 100 μl par puits. Les plaques sont incubées 7 jours dans une étuve à 37°C et 5% de C02.
IV- Entretien des plaques de fusion. Sept jours après la fusion, le milieu de culture des plaques est enlevé. Par puits, sont ajoutés 200 μl de milieu complet DMEM contenant 1% d' minoptérine et 1% d'hypoxanthine-thymidine. Les plaques sont incubées pendant 5 jours dans une étuve à 37°C et 5% de C02. Le milieu de culture des plaques est enlevé puis sont mis, par puits, 200 μl de milieu complet DMEM contenant 2% d'hypoxanthine- thymidine. Après une incubation de 4 jours dans une étuve à 37°C et 5% de C02, le milieu de culture des plaques est enlevé puis sont mis, par puits, 200 μl de milieu complet DMEM contenant 2% d' hypoxanthine-thymidine et 2,5 ng/ml d'IL6. Après une incubation de 4 jours dans une étuve à 37°C et 5% de C02, le milieu de culture des plaques est enlevé puis sont mis, par puits, 200 μl de milieu complet DMEM contenant 2,5 ng/ml d'IL6. Les plaques sont mises à incuber dans une étuve à 37°C et 5% de C02, le milieu de culture est changé de la même manière jusqu'à l'apparition des clones .
V- Résultats des différentes fusions réalisées.
Les lymphocytes B (LcB) provenant de volontaires vaccinés par un vaccin anti-grippal et prélevés 0, 8, 15 ou 21 jours après la vaccination ont été fusionnés avec la lignée IR 983 F/ TEC suivant le protocole décrit ci-dessus. Les lymphocytes B d'un donneur X ont servi de contrôle. Les hybridomes obtenus sont testés pour la production d' immunoglobulines (Ig) humaines par la technique ELISA en utilisant des anticorps de rats anti-Ig G et anti-Ig M humaines. Le tableau 1 récapitule les résultats obtenus (nombre de clones et production d'Ig).
Tableau 1 : Résultats obtenus pour chaque fusion.
Figure imgf000015_0001
VI- Purification des immunoglobulines.
Les immunoglobulines sont récupérées à partir des surnageants de culture des 9 clones FAL 11 et du clone FAL 8. Elles sont purifiées par chromatographie d'affinité sur une colonne de Sépharose couplée à des anticorps anti- Ig humaines qui sont l'anticorps LO-hK-3 (anti-Ig humaines Kappa, réf : TEC 146, Technophar -France) et l'anticorps LO-hL-2 (anti-Ig humaines lambda, réf : TEC 147, Technopharm-France) . La concentration en immunoglobulines est évaluée par un test ELISA en comparaison avec un étalon (IgM humaine à 1 mg/ml, réf : 18260, Sigma) .
VII- Activité des anticorps . 1) Test ELISA de spécificité. i) Matériel .
- Antigènes viraux du virus Influenza : A/Sidney/5/97 (H3N2) -like lot : HVR 13-1, A/Beijing/262/95 (H1N1) -like lot : HXH 19-4, B/Beijing/184/93 (H3N2) -like lot : HHA 06-5,
Hémagglutinine Influenza (réf : 12149, Sigma)
- Anticorps monoclonaux LO-HK-3 lot : 5330 et LO-HL-2 lot : 4451 marqués à la péroxydase .
ii) Protocole.
Les antigènes dilués à une concentration de 5 à 10 μg/ml dans du tampon carbonate bicarbonate au pH de 9,5 sont répartis à raison de 100 μl par puits dans des plaques 96 puits. Ces plaques sont incubées une nuit à 4°C. Les plaques sont ensuite lavées 3 fois avec du
PBS contenant 2% de Tween 20. Les plaques sont saturées avec du PBS contenant 2% de Tween 20 et 5% de lait écrémé à raison de 200 μl par puits et incubées une heure à 37°C. Les plaques sont ensuite lavées 3 fois avec du PBS contenant 2% de Tween 20.
Les échantillons d' immunoglobulines à différentes dilutions sont répartis dans les plaques à raison de 10 μl par puits. Ces plaques sont incubées 2 heures à 37°C. Les plaques sont ensuite lavées 6 fois avec du PBS contenant 2% de Tween 20.
Les anticorps couplés à la péroxydase sont dilués dans du PBS contenant 2% de Tween 20 (0,5 μl/ml) et déposés dans les plaques à raison de 100 μl par puits. Les plaques sont incubées une heure à 37°C. Les plaques sont lavées 6 fois avec du PBS contenant 2% de Tween 20. Une pastille d'OPD (0 Phénylenediamine, réf :
P8787, Sigma) est dissoute dans le tampon de révélation
(tampon citrate phosphate au pH de 5,5) avec du peroxyde d'oxygène. La solution est déposée sur les plaques à raison de 100 μl par puits. Les plaques sont incubées de 10 à 20 minutes à l'obscurité. La réaction enzymatique est arrêtée par l'ajout de 50 μl par puits de H2S0 à 2M. Les résultats sont lus à 490 nm au lecteur de plaques.
iii) Résultats . Des tests ELISA sont donc réalisés afin de tester la spécificité des immunoglobulines sur les antigènes viraux A(H3N2) , A(H1N1) et B des souches de l'hiver 1998/99 (Tableau 2) . Les tests se sont révélés positifs pour 2 clones FAL 11 (3D2 et 2C3) et pour le clone FAL 8 (1G4) .
On constate l'absence de spécificité étroite pour une des 3 souches de virus, ce qui rend effectivement ces anticorps particulièrement intéressants sur le plan thérapeutique dans le sens où ces anticorps sont capables d'être actifs sur différentes souches de virus.
Tableau 2 : Résultat du Test ELISA de spécificité sur les différents clones .
Figure imgf000018_0001
2) Test de protection d'une infection virale chez la souris à l'aide d'anticorps humains, i) Matériel .
- Souris : Des souris BALB/c femelles de 5 semaines sont groupées par lot de 6. Elles sont hébergées dans une enceinte autonome dans des cages recouvertes d'une cape filtrante.
- Virus : Le virus Influenza A souche Scotland [A/Scotland/74 (H3N2)] est adapté à la souris par passages pulmonaires successifs. Le stock viral est conservé en broyats pulmonaires à -80°C. La dilution en tampon PBS pour l'infection expérimentale est effectuée extemporanément .
Anticorps : Des immunoglobulines totales humaines (Ivlg) conservées à -80°C puis diluées à la concentration souhaitée extemporanément (500 μg/ 50 μl) sont utilisées comme contrôle. Les anticorps purifiés AB1, AB2, AB9 et AB10 conservés à 4°C sont ajustés à une concentration équivalente pour chaque anticorps (1 μg/ 50 μl) .
ii) Protocole.
Les souris sont anesthésiées légèrement suivant un protocole décrit dans les ouvrages spécialisés et reçoivent par voie intra-nasale 50 μl de suspension d'anticorps (AB1, AB2 , AB9, AB10 ou d'Ig totales humaines : Ivlg) ou de sérum physiologique (Témoins) . Le lendemain, après anesthesie, elles reçoivent 50 μl de la suspension virale létale en 10 jours.
Les souris sont surveillées chaque jour. L'efficacité de la protection est mesurée en survie/ létalité. iii) Résultats .
Les résultats (Tableau 3) montrent : que les souris recevant le sérum physiologique sont mortes dès Jll ; - que les souris recevant des anticorps de type
Ig M lambda du lot AB2 sont toutes vivantes à J15 ;
- que les souris recevant des anticorps de type Ig M lambda du lot AB9 sont toutes mortes à Jll ;
- que 5 des 6 souris recevant des anticorps de type Ig M Kappa du lot AB1 sont mortes à J15 ;
- que les souris recevant les immunoglobulines totales à la dose de 500 μg sont toutes vivantes à J15.
Les résultats montrent que les anticorps monoclonaux IgM lambda sécrétés par le clone FAL 11 2C3 protègent les souris de l'infection mortelle par le virus A/Scotland/74 (H3N2) de la grippe à la dose de 1 μg dans 50 μl de PBS comparativement à des immunoglobulines humaines totales à la dose de 500 μg dans 50 μl de PBS qui protègent également les souris de l'infection respiratoire mortelle par le même virus de la grippe.
Figure imgf000020_0001
Tableau 3 : Test de protection d'une infection virale chez la souris à l'aide d'anticorps humains (exprimé en nombre de survivants par groupe de 6) .
Figure imgf000021_0001

Claims

REVENDICATIONS
1) Anticorps monoclonal humain à l'exclusion des anticorps de classe IgG neutralisant vis-à-vis du virus Influenza et plus particulièrement des souches A et B quelle que soit la nature des souches saisonnières, ou un fragment de celui-ci.
2) Anticorps monoclonal humain selon la revendication 1 de classe IgM, IgD, IgE ou IgA neutralisant vis-à-vis du virus Influenza et plus particulièrement des souches A et B quelle que soit la nature des souches saisonnières, ou un fragment de celui-ci.
3) Anticorps monoclonal selon la revendication
1 ou 2, caractérisé en ce que qu'il appartient à la classe IgM Lambda ou Kappa, qu'il présente sensiblement le même poids moléculaire en électrophorèse sur gel de polyacrylamide que l'IgM humaine de référence : Sigma, Réf. 18260 et qu'il présente une réaction positive avec un anticorps anti-IgM humaine.
4) Anticorps monoclonal selon l'une quelconque des revendications 1 à 3, caractérisé en ce qu'il est capable de protéger des souris contre l'infection par le virus Influenza H3N2 de la grippe.
5) Hybridome produisant un anticorps monoclonal selon l'une quelconque des revendications 1 à 4.
6) Hybridome selon la revendication 5 déposé à la Collection Nationale de Cultures de Micro-organismes à l'Institut Pasteur (Paris) sous le No. 1-2585. 7) Anticorps monoclonal comprenant un fragment d'un anticorps selon l'une quelconque des revendications 1 à 4.
8) Compositions pharmaceutiques comprenant à titre d'agent actif une quantité efficace d'au moins un anticorps monoclonal selon l'une quelconque des revendications 1 à 4 ou un fragment de celui-ci ou encore un anticorps selon la revendication 7.
9) Kit de détection d'une infection par les souches du virus Influenza, comprenant au moins un anticorps monoclonal selon l'une quelconque des revendications 1 à 4 ou un fragment de celui-ci ou encore un anticorps selon la revendication 7.
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