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WO2000002049A1 - Immunologic test method and immunologic test kit - Google Patents

Immunologic test method and immunologic test kit Download PDF

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WO2000002049A1
WO2000002049A1 PCT/JP1999/003539 JP9903539W WO0002049A1 WO 2000002049 A1 WO2000002049 A1 WO 2000002049A1 JP 9903539 W JP9903539 W JP 9903539W WO 0002049 A1 WO0002049 A1 WO 0002049A1
Authority
WO
WIPO (PCT)
Prior art keywords
immunochemical component
labeled
stationary phase
substance
binding
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Ceased
Application number
PCT/JP1999/003539
Other languages
English (en)
French (fr)
Inventor
Keisaku Okada
Takeshi Saika
Shuji Senda
Kenjiro Mori
Ken Sato
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Nitto Denko Corp
Original Assignee
Nitto Denko Corp
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
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Priority claimed from JP18662898A external-priority patent/JP3930969B2/ja
Priority claimed from JP18662498A external-priority patent/JP3841555B2/ja
Priority claimed from JP18664098A external-priority patent/JP3930970B2/ja
Priority claimed from JP19215098A external-priority patent/JP3841558B2/ja
Priority claimed from JP10192114A external-priority patent/JP2000028611A/ja
Priority claimed from JP10192052A external-priority patent/JP2000028613A/ja
Priority claimed from JP19215198A external-priority patent/JP3841559B2/ja
Priority claimed from JP10191981A external-priority patent/JP2000028612A/ja
Priority claimed from JP11008064A external-priority patent/JP2000206114A/ja
Priority claimed from JP11024285A external-priority patent/JP2000221193A/ja
Priority claimed from JP11024286A external-priority patent/JP2000221194A/ja
Application filed by Nitto Denko Corp filed Critical Nitto Denko Corp
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Priority to EP99926868A priority patent/EP1020726A4/en
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    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10STECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10S436/00Chemistry: analytical and immunological testing
    • Y10S436/807Apparatus included in process claim, e.g. physical support structures
    • Y10S436/808Automated or kit

Definitions

  • the present invention relates to an immunological test method capable of detecting a test object in a test sample and a kit therefor. More specifically, the present invention relates to an immunochromatographic method including a step of amplifying a detection signal.
  • immunochromatography is one of the methods for quickly and easily testing the same.
  • This method generally includes the following steps. That is, from one end of a test piece composed of a water-absorbing substrate having a stationary phase on which an antibody capable of specifically binding to the test object is immobilized, a labeled antibody capable of specifically binding to the test object is applied.
  • a labeled antibody capable of specifically binding to the test object is applied.
  • the mixture with the test solution is absorbed and developed, the complex of the labeled antibody and the test object formed in the mixture is bound to the immobilized antibody and captured on the stationary phase. Therefore, the test object in the test solution can be measured by measuring the labeled antibody bound to the stationary phase.
  • Japanese Patent Application Laid-Open No. 10-062419 discloses a method using two kinds of labeled antibodies.
  • a first labeled antibody labeled with an antibody capable of specifically binding to the test object and a second labeled antibody labeled with a secondary antibody capable of specifically binding to the antibody are tested in the test strip.
  • the sample is placed (absorbed) as a labeled phase between the sample dropping portion and the stationary phase (another antibody capable of specifically binding to the test object is immobilized).
  • test object in the sample forms a complex with the first labeled antibody, and then the second labeled antibody binds to the first labeled antibody (test-first labeled antibody-second labeled antibody).
  • Antibody The immune complex is captured by the antibody immobilized on the stationary phase. Therefore, the signal amplified by the second labeled antibody on the stationary phase is detected.
  • test sample is stool, urine, blood, etc.
  • a pre-treatment step of suspending the sample in an appropriate buffer, and / or a partial purification step of separating and removing contaminants in the test sample, etc. It has the disadvantage of requiring additional operations and lacking in speed.
  • an object of the present invention is to provide an immunological test method and a kit for the immunochromatographic method, which can detect a test object more quickly and with high sensitivity. Disclosure of the invention
  • the present invention provides the following immunological test methods and kits therefor:
  • test object is purified.
  • a liquid containing a labeled immunochemical component obtained by binding a labeling substance to a second immunochemical component capable of specifically binding to the test object;
  • a first immunochemical component capable of specifically binding to the test object which is immobilized on a stationary phase provided in an arbitrary area on the surface of the water-absorbing substrate, and The second immunochemical component that can bind to the A labeled substance (first labeled substance) obtained by binding a labeling substance to a target component to form, on the stationary phase, an immune complex in which the test object in the test sample is sandwiched;
  • the labeled substance (second labeled substance) forms an immune complex bound to the third immunochemical component in the sandwich-type immunological complex via the intervening substance, and the signal of the labeled substance is formed.
  • a sandwich immunoassay in which the test substance is sandwiched by a label formed by binding the two immunochemical components to a labeling substance, a test substance is formed by forming a complex through the binding of biotin and avidin.
  • a water-absorbing substrate provided with an immobilized phase on which an immobilized first immunochemical component capable of specifically binding to the test object is provided in an arbitrary region on the surface;
  • a labeled immunochemical component formed by binding a labeling substance to a second immunochemical component capable of binding and a third immunochemical component capable of binding specifically to the second immunochemical component
  • An immunological test kit comprising a labeled immunochemical component (second labeled immunochemical component) obtained by binding a labeling substance to the immunochemical component of the above;
  • the second immunochemical component and the test object are not bound to the third immunochemical component, and the third immunochemical component is labeled with a labeled substance (first labeled substance);
  • the labeling substance binds to a fourth immunochemical component that can specifically bind to the chemical component via the intervening substance.
  • An immunological test kit comprising a labeled substance (second labeled substance), and an intermediary substance that mediates the binding of the third and fourth immunochemical components;
  • an immunological test strip having a stationary phase in which a first immunochemical component capable of binding to a test object is immobilized on a water-absorbing substrate, a second immunological test capable of binding to the test object
  • An immunological assay kit comprising a labeled substance obtained by binding a chemical component and biotin to a labeling substance, and avidin;
  • an immunological test strip having a stationary phase in which a first immunochemical component capable of binding to a test object is immobilized on a water-absorbent substrate, a second immunochemistry capable of binding to the test object A labeled substance obtained by binding a target component and avidin to a first labeling substance, and an immunological assay kit comprising a conjugate of biotin and a second labeling substance;
  • An immunological test strip having a stationary phase in which a first immunochemical component capable of binding to a test object is immobilized on a water-absorbent substrate, and a second immunological test piece capable of binding to the test object.
  • An immunoassay kit comprising a labeled substance obtained by binding a chemical component and biotin to a first labeling substance, and a conjugate of avidin and a second labeling substance.
  • FIG. 1 is a schematic diagram illustrating the principle of the immunological test method of the present invention (the embodiment of A-1).
  • Figure 1 A Immune complex formation in a mixture of test solution and first labeled immunochemical component solution
  • Figure 1 B Examination of mixed solution of test solution and first labeled immunochemical component solution
  • Figure 1C Capture of test object on stationary phase
  • FIG. 2 is a schematic diagram illustrating the principle of the immunological test method (A-2 embodiment) of the present invention.
  • Figure 2 A Immune complex formation in a mixture of test solution, first labeled immunochemical component solution and second labeled immunochemical component solution;
  • Fig. 2B Absorption and development of the mixture of the test solution, the first labeled immunochemical component solution and the second labeled immunochemical component solution on the test strip;
  • Figure 2C Capture of the analyte on the stationary phase and amplification of the detection signal.
  • FIG. 3 is a schematic diagram illustrating the principle of the immunological test method (A-3 embodiment) of the present invention.
  • Fig. 3 A Application of test sample to test piece and absorption and development of first labeled immunochemical component solution on test piece;
  • FIG. 3B Complex formation between the test object in the test sample and the first labeled immunochemical component
  • FIG. 3C Capture of the test object on the stationary phase
  • Figure 3D Absorption and development of the second labeled immunochemical component solution on the test strip
  • FIG. 4 is a schematic diagram illustrating the principle of the immunological test method (A-4 embodiment) of the present invention.
  • Fig. 4 A Application of test sample to test piece, and absorption and development of mixed solution of first labeled immunochemical component solution and second labeled immunochemical component solution on test piece;
  • Figure 4B Formation of an immune complex consisting of the test object, the first labeled immunochemical component and the second labeled immunochemical component in the test sample;
  • Figure 4C Capture of labeled immune complex on stationary phase and amplification of detection signal.
  • FIG. 5 is a schematic diagram showing the appearance of an antigen-antibody reaction in each step of measuring a human HBs antigen using the immunological test kit of the present invention (the embodiment of B-1).
  • FIG. 6 shows a human HB s antibody using the immunological test kit of the present invention (embodiment B-2). It is a schematic diagram which shows the aspect of an antigen-antibody reaction in each process of measurement of an original.
  • FIG. 7 is a schematic diagram showing a state of an antigen-antibody reaction in each step of measurement of a human HBs antigen using the immunological test kit of the present invention (embodiment of B-3).
  • FIG. 8 is a schematic diagram showing the appearance of an antigen-antibody reaction in each step of measuring a human HBs antigen using the immunological test kit of the present invention (embodiment B-4).
  • FIG. 9 is a schematic diagram showing the appearance of an antigen-antibody reaction in each step of measurement of the human HBs antigen using the immunological test kit of the present invention (embodiment B-5).
  • FIG. 10 is a schematic diagram showing one embodiment of the immunological assay method (C-1 embodiment) of the present invention.
  • FIG. 11 is a schematic diagram showing another embodiment of the immunological assay method (embodiment C-1) of the present invention.
  • FIG. 12 is a schematic diagram showing one embodiment of the immunological assay method (C-2 embodiment) of the present invention.
  • FIG. 13 is a schematic diagram showing another embodiment of the immunological assay method (embodiment C-2) of the present invention.
  • FIG. 14 is a schematic diagram showing one embodiment of the immunological measurement method (C-13 embodiment) of the present invention.
  • FIG. 15 is a schematic diagram showing another embodiment of the immunological measurement method of the present invention (the embodiment of C-3).
  • the immunological test method of the present invention has three modes (aspect A, aspect B and aspect C).
  • the terms in each embodiment shall be construed in principle as defined in each embodiment.
  • Embodiment A comprises immobilizing a first immunochemical component capable of specifically binding to a test object.
  • a liquid containing a labeled immunochemical component obtained by binding a labeling substance to a second immunochemical component capable of specifically binding to the test object;
  • test object contained in the test solution binds to the first labeled immunochemical component, and the first labeled It forms an immune complex between the immunochemical component and the test object ( Figure 1A).
  • the immune complex formed in the mixture moves in the water-absorbent substrate along with the liquid (FIG. 1B).
  • test target contained in the test solution becomes the first label. It binds to the immunochemical component, and the second labeled immunochemical component binds to the first labeled immunochemical component to form a double-labeled immune complex ( Figure 2A).
  • the immune complex formed in the mixture moves through the water-absorbent substrate with the movement of the liquid (FIG. 2B).
  • the immunocomplex that has migrated further binds to the first immunochemical component immobilized on the stationary phase on the stationary phase, and newly binds the second labeled immunochemical component to the first labeled immunochemical component.
  • a labeled immune complex consisting of component-test object-first immunochemical component is formed and captured on the stationary phase (Fig. 2C).
  • the test object that can be detected by the method of this embodiment A binds to the first immunochemical component and the second immunochemical component by an immunochemical reaction (that is, an antigen-antibody reaction) to form a sandwich immunoconjugate.
  • an immunochemical reaction that is, an antigen-antibody reaction
  • bacteria and their components toxins produced by bacteria, proteins (for example, proteins constituting microorganisms such as surface antigens), antigenic peptides in biological samples such as tumor marker antigens, viral antigens and antibodies, mycoplasma , Actinomycetes, yeasts and molds.
  • Bacteria and their constituents include, for example, E.
  • coli 157 Salmonella, Staphylococcus (including drug-resistant bacteria such as methicillin-resistant Staphylococcus aureus), Streptococcus, Campylobacter, Welsh, Vibrio parahaemolyticus Bacteria, Helicobacter pylori, Chlamydia trachomatis, and components thereof.
  • toxins produced by bacteria include verotoxin, streptotricin 0, and the like.
  • the protein include human transferrin, human albumin, human immunoglobulin, microglobulin, and C-reactive protein.
  • the virus antigens and antibodies include hepatitis B virus HBc, HBe and HBs antigens and antibodies, hepatitis C virus antigens and antibodies, human immunodeficiency virus antigens and antibodies, rotavirus antigens and antibodies and adenovirus antigens Antibodies and the like.
  • both the first immunochemical component immobilized on the stationary phase and the second immunochemical component used as the first labeled immunochemical component are the test objects by the antigen-antibody reaction.
  • the test object is an antigen (eg, a protein, peptide, hapten, etc.)
  • the first and second immunochemical components are antibodies capable of specifically binding to the antigen.
  • the antibody may be a monoclonal antibody or a polyclonal antibody.
  • An antibody is a fragment of an antibody that retains specific affinity for the test object, for example,
  • the first and second immunochemical components are an antigen capable of specifically binding to the antibody or a secondary capable of binding specifically using the antibody as an antigen. It is an antibody.
  • the first immunochemical component and the second immunochemical component may be appropriately selected from those known per se used in the sandwich method or the like according to the test object.
  • the immunochemical component can be prepared using an isolated test object as a sensitizing antigen using a known antibody production technique.
  • first, second and third immunochemical components are all antibodies, the first and second antibodies differ depending on the type of antibody used and the test object, but the same antigen determination
  • Two types of antibodies recognizing groups can be used, or two types of antibodies recognizing different antigenic determinants can be used. More preferably, those that recognize different antigenic determinants are used.
  • a third immunochemical component used as the second labeled immunochemical component is an immunochemical component that specifically binds to the second immunochemical component in the first labeled immunochemical component, and
  • the immobilized first immunochemical component is an immunochemical component that does not bind to the first immunochemical component.
  • a conventionally known component used as a secondary antibody in an indirect immunoassay can be appropriately selected.
  • the animal species from which the first and second antibodies are derived is Preferably, they are different from each other.
  • the water-absorbent substrate used in the present invention is a test sample containing a test object, for example, a solution extracted from food or a culture supernatant thereof, a stool suspension (dissolution) solution, plasma, serum, blood, A liquid sample of urine, saliva, etc., or a diluent obtained by diluting these with an appropriate buffer, or a liquid that can absorb a first labeled immunochemical component and a second labeled immunochemical component, respectively It is not particularly limited.
  • a water-absorbing material that can secure sufficient time for the test object in the test sample to react sufficiently with the labeled immunochemical component or the first immunochemical component immobilized on the stationary phase. Is preferably used.
  • the water-absorbing substrate When the water-absorbing substrate has poor water absorption, it takes a long time for the test sample to reach the stationary phase, as described later, and as a result, rapid measurement cannot be performed. On the other hand, if the water absorption of the water-absorbent substrate is too high, it is necessary for the test object in the test sample to react sufficiently with the labeled immunochemical component and the first immunochemical component of the stationary phase. It is difficult to make accurate measurements due to lack of time.
  • the preferable degree of water absorption of the water-absorbing substrate in the present invention is as follows. It is about 5 cm.
  • water-absorbing substrate of the present invention include nonwoven fabric, filter paper, glass fiber cloth, glass filter, nitrocellulose filter, and porous material. These substrates have an appropriate water absorption rate and, when the labeling substance is colored particles, have advantages such as excellent visual confirmation when the colored particles are bound and colored.
  • the surface of the substrate can be coated or impregnated with a hydrophilic polymer or a surfactant.
  • a substrate made of the same material may be used as the water-absorbing substrate, or a continuous substrate obtained by joining materials made of different materials by any bonding means is used. You can also.
  • the shape of the water-absorbing substrate is not particularly limited as long as the test sample can be developed, and is preferably, for example, a rectangular sheet shape (piece shape) or a rod shape.
  • the stationary phase means a region where a first immunological component capable of specifically binding to a test object is immobilized on a water-absorbing substrate.
  • First immunochemical component The method of immobilizing the compound on the water-absorbing substrate (the method of preparing the immobilized phase) is not particularly limited, but a conventionally known physical adsorption method or covalent bonding method is preferable. In particular, it is preferable to use the covalent bonding method in that the immunochemical component is not easily detached from the substrate.
  • the water-absorbing substrate does not have a functional group for the covalent bonding method, for example, a substrate is prepared using a polymer having an appropriate functional group, and the water-absorbing substrate is not impaired in its water absorbing property. Can be attached.
  • a solution containing the first immunochemical component and the hydrophilic polymer is applied to a water-absorbent substrate, and then immersed in a coagulation solvent for coagulating the hydrophilic polymer to prepare a stationary phase.
  • a coagulation solvent for coagulating the hydrophilic polymer to prepare a stationary phase.
  • the hydrophilic polymer include hydroxypropyl methylcellulose, polyvinyl alcohol, and hydroxyethyl cellulose.
  • acetone, ethanol, methanol, ether, or the like can be used as the coagulating solvent.
  • a liquid absorbing portion is not particularly limited, but is preferably about 1 to 6 cm, more preferably about 3 to 4 cm. If the distance is too far, there may be problems such as the test sample not reaching the stationary phase, the detection signal sensitivity being too strong, or the measurement taking a long time. On the other hand, if the distance is too short, the color of the stationary phase may not be uniform and may be sparse, or the sensitivity of the detection signal may be too low.
  • the liquid absorbing portion is not particularly limited as long as it does not hinder the movement of the test sample or the liquid containing the labeled immunochemical component to the water-absorbing substrate.
  • a nonwoven fabric or a woven fabric may be bonded to the water-absorbing substrate.
  • a stationary phase on which a first immunochemical component capable of specifically binding to a test object is immobilized, and a water-absorbing substrate having a liquid-absorbing part are hereinafter referred to as immunological techniques of the present invention. It may also be called a test strip or simply a test strip.
  • the first labeled immunochemical component in the method of the present invention specifically binds to the test object.
  • a labeling substance bound to an immunochemical component (second immunochemical component) capable of being labeled, and the second labeled immunochemical component specifically binds to the second immunochemical component.
  • a labeling substance is bound to a compatible immunochemical component (third immunochemical component).
  • the labeling substance used here may be any labeling substance commonly used in immunochemical assays, for example, colored particles, enzymes (eg, alkaline phosphatase, peroxidase, etc.), fluorescent substances (eg, FITC, rhodamine, etc.).
  • the labeling substances used for the first and second labeled immunochemical components are the same.
  • colored particles are preferably used as the labeling substance in order to perform rapid detection.
  • the colored particles are not particularly limited as long as they can be detected with the naked eye, and include, for example, colloidal particles made of a metal such as gold, silver, and copper, sdumbledosedan red IV, sudane III, oil orange, and quinizarin green. Colored latex obtained by coloring latex with a representative pigment or dye can be used.
  • colloidal gold or colored latex colored in blue, red, green or orange it is preferable to use colloidal gold or colored latex colored in blue, red, green or orange, and it is easy to adjust the dispersion stability and the detection sensitivity of the test object.
  • a colored latex made of a water-dispersible high molecular polymer colored blue, red, or the like it is more desirable to use a colored latex made of a water-dispersible high molecular polymer colored blue, red, or the like.
  • the particle size of the colored particles is not particularly limited as long as the coloration at the time of detection is good and the water-absorbing substrate has mobility in the substrate to such an extent that the water absorption of the substrate is not reduced.
  • a range of 0.5 to 0.5 m is exemplified. If the particle size is too small, the degree of coloring per particle is small, so even when combined with the stationary phase, the degree of coloring is poor and visual confirmation becomes poor. On the other hand, if the particle size is too large, only slight aggregation of the colored particles may cause clogging of the water-absorbing substrate, resulting in reduced water absorption or non-specific coloring.
  • a conventionally known method for example, a covalent bonding method, a physical adsorption method, an ionic bonding method, or the like can be used.
  • the covalent bonding method is more preferably used from the viewpoint that the colored particles are not desorbed from the dye and is stable.
  • a corresponding plurality of immunochemical components in order to detect a plurality of test objects in a test sample, can be labeled with different colored particles, respectively.
  • the colored particles may be the same color or different colors.
  • the labeling substance is an enzyme or a fluorescent substance
  • a detection means conventionally used in the EIA or the fluorescent antibody method (FIA) is appropriately selected.
  • the liquid containing the first labeled immunochemical component and the liquid containing the second labeled immunochemical component are prepared by dispersing (dissolving) each labeled immunochemical component in an appropriate dispersion medium (solvent).
  • the dispersion medium in which the labeled immunochemical component is dispersed does not inhibit the antigen-antibody reaction between the test object, the first labeled immunochemical component, and the first labeled immunochemical component and the second labeled immunochemical component.
  • a buffer having a pH and a salt concentration suitable for the antigen-antibody reaction for example, a phosphate buffer, an acetate buffer, a borate buffer, a Tris-HCl buffer, or the like is appropriately selected. Can be used.
  • the concentration of each labeled immunochemical component at the time of signal detection is in the range of 0.05 to 5%, preferably in the range of 0.01 to 0.5%. If the concentration is too low, the number of particles bound to the stationary phase will be small, resulting in poor detection sensitivity. On the other hand, if the concentration is too high, not only is it uneconomical, but also excess labeling substances remain in the non-stationary phase, causing problems such as obscuring the stationary phase signal.
  • labeled immunochemical component-containing solution is simply referred to as labeled immunochemical component solution.
  • the kit for immunological test of the present invention used in Embodiment A is the immunological test of the present invention. It can be preferably used for the method.
  • the kit includes at least the following contents.
  • a water-absorbent substrate in which a stationary phase on which a first immunochemical component capable of specifically binding to a test object is immobilized is provided in a certain area on the surface
  • kits of the present invention may contain, in addition to the contents described above, additional contents that can be preferably used in the immunological test method of the present invention.
  • additional contents that can be preferably used in the immunological test method of the present invention.
  • the above-mentioned buffer and the like preferably used for dispersing the first and second labeled immunochemical components can be mentioned.
  • the analyte and the first labeled immunochemical component are first bound to the stationary phase, and then the second labeled immunochemical component is used.
  • Binding efficiency the binding efficiency between the test object and the first immunochemical component immobilized on the stationary phase due to steric hindrance caused by the two labeled immunochemical components, i.e., immobilization of the test object Avoids potential detection problems with conventional methods, such as reduced phase capture or clogging of immunoconjugates containing two labeled immunochemical components on a water-absorbent substrate can do.
  • the test solution, the first labeled immunochemical component and the second labeled immunochemical component are preliminarily mixed and then developed on a test strip. Therefore, sufficient time is allowed for the formation of the double-labeled immune complex of (test object-first labeled immunochemical component-second labeled immunochemical component). Therefore, since the analyte is trapped on the stationary phase without double labeling, the detection signal Detection problems that can occur with conventional methods, such as insufficient amplification of nulls, can be avoided.
  • the test sample is previously absorbed or applied to the test piece, and the first labeled immunochemical component solution is first placed there.
  • the second labeled immunochemical component solution is spread on the test strip, and the second labeled immunochemical component is bound to the immune complex captured on the stationary phase. It is possible to avoid detection problems that may occur in conventional methods such as obstacles and clogging of immune complexes, and as a result, it is possible to detect a test object with higher sensitivity. Further, according to the present method, since the pretreatment of the test sample is not required, the time required for detection can be reduced as compared with the conventional method.
  • the first labeled immunochemical component and the second labeled immunochemical component are preliminarily mixed and then developed on a test piece. Sufficient time is allowed for the formation of a double-labeled immune complex of the target (the first labeled immunochemical component-the second labeled immunochemical component). Therefore, it is possible to avoid detection problems that may occur in the conventional method, such as insufficient amplification of the detection signal due to the analyte being captured on the stationary phase without being double-labeled, and as a result, higher The test object can be detected with high sensitivity. Further, according to the present method, since the pretreatment of the test sample is not required, the time required for detection can be shortened as compared with the conventional method, and the detection of the test object can be performed more quickly.
  • Embodiment B includes a first immunochemical component capable of specifically binding to the test object, which is immobilized on a stationary phase provided in an arbitrary region on the surface of the water-absorbing substrate; A second immunochemical component that can specifically bind and a third immune that does not bind the analyte
  • a labeled substance (first labeled substance) obtained by binding a labeling substance to a chemical component is used to form, on the stationary phase, an immune complex in which the test object in the test sample is sandwiched.
  • An immunological test method comprising the following steps:
  • a labeled phase that retains a labeled substance (a first labeled substance) obtained by binding a labeling substance to a third immunochemical component that does not bind in a form that can be detached by contact with water. From the one end of the water-absorbent substrate provided in the region closer to the labeled phase than the stationary phase, specifically binds to the liquid containing the test sample, the third immunochemical component via the intermediary substance.
  • test object is detected by measuring the signal of the labeling substance on the stationary phase.
  • An immunological test method comprising the following steps:
  • a test sample is supplied to an arbitrary area between one end and
  • the test object is detected by measuring the signal of the labeling substance on the stationary phase.
  • the following reaction is carried out in each step. That is, a liquid containing the test sample, a liquid containing the second label, and an intermediary that mediates the binding of the third and fourth immunochemical components from one end of the water-absorbing substrate (that is, the liquid absorbing part).
  • a mixture of liquids containing the substance in which the fourth immunochemical component of the second label and the intermediary substance specifically bind to each other in the mixture
  • each of the components moves with the movement of the liquid. Both move on the water-absorbing substrate.
  • the liquid reaches the labeled phase, the first label retained therein is released from the labeled phase by contact with water.
  • the second immunochemical component in the first label is the test object in the test sample
  • the third immunochemical component is the fourth immunochemical component in the second label via the intermediary substance.
  • Each of them binds to a chemical component and moves on a water-absorbing substrate.
  • the formed immune complex binds to the first immunochemical component immobilized on the stationary phase and is captured on the stationary phase.
  • the labeling substances constituting the first and second labels are collected and bound on the stationary phase, and the detection signal is amplified, whereby the presence of the test object can be detected with higher sensitivity. It becomes possible.
  • the sample is dropped or applied between the liquid absorbing portion and the stationary phase, and then the second labeled body is added.
  • a method of dropping a mixture of a liquid containing the compound and a liquid containing the intervening substance into the liquid absorbing portion and developing the mixture In this case, when the mixed solution reaches the area where the test sample is dropped or applied, the test object in the test sample moves on the water-absorbent substrate together with the complex of the second label and the intervening substance. Moving. When the liquid reaches the labeled phase, the -labeled substance retained there is released from the labeled phase by contact with water.
  • the second immunochemical component in the first label is the test object in the test sample
  • the third immunochemical component is the fourth immunochemical component in the second label via the intermediary substance.
  • Each of them binds to a chemical component and moves on a water-absorbing substrate.
  • the formed immune complex binds to the first immunochemical component immobilized on the stationary phase and is captured on the stationary phase.
  • An immunological test method comprising the following steps:
  • a fourth that can specifically bind to a third immunochemical component via an intermediary substance A solution containing a label (second label) obtained by binding a label to the immunochemical component of (1) is developed on the water-absorbent substrate, and the intermediary substance in the immune complex captured on the stationary phase After joining
  • the test object is detected by measuring the signal of the labeling substance on the stationary phase.
  • An immunological test method comprising the following steps:
  • a stationary phase on which a first immunochemical component capable of specifically binding to a test object is immobilized is provided between an end of a water-absorbing substrate provided in an arbitrary region on the surface and the stationary phase. Supply the test sample to any area,
  • a labeling substance is added to the second immunochemical component capable of specifically binding to the test object from the one end of the water-absorbent substrate and the third immunochemical component not binding to the test object.
  • a solution containing the labeled substance (first labeled substance) formed by binding is developed, and the immune complex of the test object and the first labeled substance formed on the water-absorbent substrate is immobilized on the stationary phase. After binding to and capturing the first immunochemical component
  • the test object is detected by measuring the signal of the labeling substance on the stationary phase.
  • the following reaction is performed in each step. That is, from one end of the water-absorbing substrate (that is, the liquid-absorbing part), the liquid containing the test sample and the first label are When a mixture with the contained liquid (the test object and the second immunological component in the first label form a complex in the mixture) is dropped and developed, the immune complex becomes As it moves, it moves on the water-absorbent substrate, and binds to the first immunochemical component immobilized on the stationary phase and is captured on the stationary phase. Then, a liquid containing an intermediary substance that mediates the binding of the third and fourth immunochemical components was dropped on the water-absorbent substrate and developed, whereby the intermediary substance was captured on the stationary phase.
  • Binds to a third immunochemical component in the immune complex Binds to a third immunochemical component in the immune complex. Furthermore, when the liquid containing the second label is dropped on the water-absorbent substrate and developed, the fourth substance in the second label is added to the mediator in the immune complex captured on the stationary phase.
  • the immunochemical components combine to form a complex of (immobilized first immunochemical component-test object-first label-intermediate-second label). In this way, the labeling substances constituting the first and second labels are collected and bound on the stationary phase to amplify the detection signal, thereby detecting the presence of the test object with higher sensitivity. Becomes possible.
  • the test sample instead of dropping the test sample from the liquid absorbing portion, the test sample is dropped or applied between the liquid absorbing portion and the stationary phase, and then contains the first labeled substance.
  • a method of dropping a liquid to be absorbed into the liquid absorbing portion and developing the liquid is described.
  • the test object in the test sample binds to the second immunochemical component in the first label.
  • an immunocomplex is formed, which moves on the water-absorbent substrate with the movement of the liquid and binds to and is captured by the first immunochemical component immobilized on the stationary phase.
  • An immunological test method comprising the following steps:
  • a test sample is contained from one end of a water-absorbing substrate provided with a stationary phase on which an immobilized first immunochemical component capable of specifically binding to a test object is provided in an arbitrary region on the surface.
  • Liquid, the second immunochemical component capable of specifically binding to the test object and the test object A solution containing a label (first label) obtained by binding a labeling substance to an unbound third immunochemical component, which can specifically bind to the third immunochemical component via an intervening substance
  • test object is detected by measuring the signal of the labeling substance on the stationary phase.
  • An immunological test method comprising the following steps:
  • the second immunochemical component capable of specifically binding to the test object and the second immunochemical component not binding to the test object, and labeling the third immunochemical component
  • the test object is detected by measuring the signal of the labeling substance on the stationary phase.
  • the following reaction is performed in each step. That is, sucking From one end of the aqueous base material (that is, the liquid-absorbing part), a solution containing the test sample, a solution containing the first label, a solution containing the second label, and the third and fourth immunochemical components A mixture of liquids containing an intermediary substance that mediates binding (the test object in the mixture is a second immunochemical component in the first label and a third immunochemical component in the first label) The test substance is combined with the fourth immunochemical component in the second label via the mediator to form an immune complex of the test object, the first label, the mediator, and the second label).
  • the immune complex When expanded, the immune complex moves on the water-absorbent substrate with the movement of the liquid, and binds to the first immunochemical component immobilized on the stationary phase and is captured on the stationary phase. .
  • the labeling substances constituting the first and second labels are collected and bound on the stationary phase, and the detection signal is amplified, thereby detecting the presence of the test object with higher sensitivity. It becomes possible.
  • the test sample instead of dropping the test sample from the liquid absorbing section, the test sample is dropped or applied between the liquid absorbing section and the stationary phase, and then the first labeled substance is contained.
  • a method of dropping and developing a mixture of a liquid, a liquid containing the second label, and a liquid containing an intermediary substance that mediates the binding of the third and fourth immunochemical components to the liquid-absorbing part can be mentioned.
  • the test object in the test sample is formed in the mixture (the first label-the intermediary substance-the second label) ) Binds to the second immunochemical component in the complex, moves on the water-absorbent substrate as the liquid moves, and binds to and captures the first immunochemical component immobilized on the stationary phase. Is done.
  • a labeling phase is provided between one end of the water-absorbent substrate and the stationary phase, the labeling phase being retained in a form in which the second labeling substance can be detached by contact with water, and the method comprises the following steps: how to:
  • test object is detected by measuring the signal of the labeling substance on the stationary phase.
  • a labeling phase is provided between one end of the water-absorbent substrate and the stationary phase, the labeling phase being retained in a form in which the second labeling substance can be detached by contact with water, and the method comprises the following steps: how to:
  • the test object is detected by measuring the signal of the labeling substance on the stationary phase.
  • the following reaction is carried out in each step. That is, a liquid containing the test sample, a liquid containing the first label, and an intermediary that mediates the binding of the third and fourth immunochemical components from one end of the water-absorbing substrate (that is, the liquid-absorbing part).
  • a mixture of liquids containing a substance in the mixture, the test object in the test sample is the second immunochemical component in the first label and the third immunochemical component in the first label)
  • the component is dropped and developed, the complex moves on the water-absorbing substrate with the movement of the liquid.
  • the liquid reaches the labeled phase, the second label retained therein is detached from the labeled phase by contact with water.
  • the second The fourth immunochemical component in the label binds to the third immunochemical component in the first label via the intermediary substance, and moves on the water-absorbing substrate. Then, the formed immune complex binds to the first immunochemical component immobilized on the stationary phase and is captured on the stationary phase. In this way, the labeling substances constituting the first and second labels are assembled and bound on the stationary phase to amplify the detection signal, thereby making it possible to detect the presence of the test object with higher sensitivity. It becomes possible.
  • the test sample instead of dropping the test sample from the liquid absorbing part, the test sample is dropped or applied between the liquid absorbing part and the stationary phase, and then the first labeled substance is contained.
  • a mixture of a liquid and a liquid containing an intervening substance is dropped into the liquid absorbing portion and developed.
  • the test object in the test sample binds to the complex of the first label and the intervening substance, and is placed on the water-absorbent substrate. To move.
  • the liquid reaches the labeled phase, the second label retained therein is detached from the labeled phase by contact with water.
  • the fourth immunochemical component in the second label binds to the third immunochemical component in the first label via an intermediary substance, and moves on the water-absorbing substrate. Then, the formed immune complex binds to the first immunochemical component immobilized on the stationary phase and is captured on the stationary phase.
  • An immunological test method comprising the following steps:
  • a stationary phase on which a first immunochemical component capable of specifically binding to the test object is immobilized, and a second immunochemical component and test object capable of specifically binding to the test object. Is a label (a first label) obtained by binding a labeling substance to a third immunochemical component that does not bind, and a fourth label that can specifically bind to the third immunochemical component via an intermediary substance.
  • test object is detected by measuring the signal of the labeling substance on the stationary phase.
  • An immunological test method comprising the following steps:
  • a stationary phase on which a first immunochemical component capable of specifically binding to the test object is immobilized, and a second immunochemical component and test object capable of specifically binding to the test object. Is a label (a first label) obtained by binding a labeling substance to a third immunochemical component that does not bind, and a fourth label that can specifically bind to the third immunochemical component via an intermediary substance.
  • a labeling phase in which a labeling substance (second labeling substance) obtained by bonding a labeling substance to the immunochemical component of the present invention is retained in a form that can be detached by contact with water is provided in an arbitrary region on the surface. Supplying the test sample to an arbitrary region between the stationary phase and the labeled phase more than the stationary phase and one end of the water-absorbing substrate,
  • the test object is detected by measuring the signal of the labeling substance on the stationary phase.
  • the following reaction is performed in each step. That is, a mixture of the liquid containing the test sample and the liquid containing the intermediary substance that mediates the binding of the third and fourth immunochemical components is dropped from one end of the water-absorbent substrate (that is, the liquid-absorbing part). Then, each component moves on the water-absorbing substrate with the movement of the liquid. Liquid is labeled phase Upon reaching, the first and second labels retained there are released from the labeled phase by contact with water. Furthermore, the second immunochemical component in the first label is the test object in the test sample, and the third immunochemical component is the fourth immunochemical component in the second label through the intermediary substance.
  • Each of them binds to an immunochemical component to form a complex, and then moves on a water-absorbing substrate. Then, the formed immune complex binds to the first immunochemical component immobilized on the stationary phase and is captured on the stationary phase. In this way, the labeling substances constituting the first and second labels are aggregated and bound on the stationary phase to amplify the detection signal, thereby detecting the presence of the test object with higher sensitivity. It is possible to do.
  • the test sample instead of dropping the test sample from the liquid absorbing part, the test sample is dropped or applied between the liquid absorbing part and the stationary phase, and then the liquid containing the intervening substance is added. Is dropped onto the liquid absorbing portion and developed.
  • the test object in the test sample moves on the water-absorbent substrate together with the intervening substance.
  • the first and second labels are retained there and detached from the labeled phase by contact with water.
  • the second immunochemical component in the first label is the test object in the test sample
  • the third immunochemical component is the fourth immunochemical component in the second label via the intermediary substance.
  • Each of them combines with a chemical component to form a complex, and then moves on a water-absorbing substrate. Then, the formed immune complex binds to the first immunochemical component immobilized on the stationary phase and is captured on the stationary phase.
  • any region between the one end of the water-absorbent substrate and the stationary phase (provided that the test sample is When supplying to an arbitrary region between the stationary phase and the stationary phase, a separated phase capable of separating the test object and other substances in the test sample is included in the region including that region and on the stationary phase side). Further, it may be provided.
  • the water-absorbing substrate is a stationary phase. Any area between the one end of the water-absorbing substrate and the other end of the water-absorbent substrate.
  • a separation phase capable of separating the test object and other substances in the test sample may be further provided in the region including the region and on the stationary phase side. In this case, for example, the separated phase is present in any region between the one end of the water-absorbent substrate and the labeled phase.
  • the test object that can be detected by the method of the embodiment B is the same as that of the embodiment A.
  • the first immunochemical component and the second immunochemical component are the same as in embodiment A.
  • the first antibody and the second antibody may be the same or different. Further, as different antibodies, two kinds of antibodies recognizing the same antigenic determinant can be used, or two kinds of antibodies recognizing different antigenic determinants can be used.
  • the third immunochemical component used as the first label and the fourth immunochemical component used as the second label are an antibody capable of specifically binding via an intermediary substance (a monoclonal antibody).
  • a fragmented antibody such as H chain, L chain, Fab, F (ab ') 2 , VH , VL, etc. or an antigen (for example, , Proteins, peptides, haptens, etc.) and have no specific affinity for the test object and the immobilized first immunochemical component.
  • these immunochemical components also have no specific affinity for the second immunochemical component.
  • the mediator of the present invention that mediates the binding of the third and fourth immunochemical components is capable of simultaneously binding to the third and fourth immunochemical components (third immunochemical component-intermediate substance).
  • the substance is not particularly limited as long as it can form a complex with the (fourth immunochemical component), but preferably can specifically bind to the third and fourth immunochemical components by an antigen-antibody reaction. It is an immunochemical component. That is, if the third immunochemical component is an antibody, the intervening substance is an antigen recognized by the antibody or a secondary antibody capable of specifically binding to the antibody, and the fourth immunochemical component is Can specifically bind to the antigen It is preferably an antibody or an antigen recognized by the secondary antibody.
  • both the third and fourth immunochemical components are antibodies, they may be the same antibody or different.
  • the third immunochemical component is an antigen
  • the mediator is an antibody that can specifically bind to the antigen
  • the fourth immunochemical component is the antigen or the antigen recognized by the antibody.
  • a secondary antibody that can specifically bind to an antibody.
  • the third and fourth immunochemical components are both antigens, they may be the same antigen or different antigens cross-reactive with the intermediary antibody.
  • known substances used in the sandwich method or the like can be appropriately selected and used.
  • the water-absorbing substrate and the stationary phase used in the method of Embodiment B are the same as those in Embodiment A.
  • the site at which absorption of the test sample-containing liquid, the first label-containing liquid, the second label-containing liquid, the intervening substance-containing liquid, and the like starts ie, the liquid absorption part
  • the liquid absorption part is the same as in the case of embodiment A Yes, there is no particular limitation as long as it does not prevent the liquid containing the test sample, the label, and the intervening substance from moving to the water-absorbing substrate.
  • the first label in the method of embodiment B comprises an immunochemical component (second immunochemical component) capable of specifically binding to the test object and a non-binding immunochemical component to the test object.
  • the second label is an immunochemical component capable of specifically binding to the third immunochemical component via an intermediary substance (the fourth label). Immunochemical component) and a labeling substance.
  • the label used here is also the same as in the case of Embodiment A, and it is preferable that the label used for the first and second labels is the same.
  • the liquid containing the first label, the liquid containing the second label, and the liquid containing the intermediate substance are prepared by dispersing (dissolving) the label or the intermediate substance in an appropriate dispersion medium (solvent).
  • the dispersion medium for dispersing the label or the intermediary substance includes the test object, the first label, and the first
  • a buffer having a pH and a salt concentration suitable for the antigen-antibody reaction For example, a phosphate buffer, an acetate buffer, a borate buffer, a Tris-HCl buffer and the like can be appropriately selected and used.
  • the concentration of each label at the time of signal detection is in the range of 0.05 to 5%, preferably in the range of 0.01 to 0.5%. If the concentration is too low, the number of particles bound to the stationary phase will be low, resulting in poor detection sensitivity. On the other hand, if the concentration is too high, not only is it uneconomical, but also excess labeling substance remains in the non-stationary phase, causing problems such as obscuring the signal of the stationary phase.
  • the labeled phase is obtained by contacting the first labeled substance and / or the second labeled substance provided between the liquid absorbing portion of the water-absorbent substrate and the stationary phase with water. It means a region that is retained in a detachable form.
  • the first labeled phase retaining the first label and the second labeled phase retaining the second label may be separately prepared, or the first and second labeled phases may be separately prepared.
  • the second label may be mixed and held in one label phase.
  • the method for preparing the labeled phase is not particularly limited.
  • a liquid containing the labeled substance is applied to an arbitrary region between the liquid absorbing portion of the water-absorbent substrate and the stationary phase, and dried under appropriate conditions.
  • the marker may be dispersed in a water-soluble polymer or sucrose solution, and the dispersion may be applied on a water-absorbing substrate and dried in the same manner.
  • the water-soluble polymer or saccharose is easily water-solubilized, and the labeled substance is quickly detached from the substrate, and the other labeled substance is passed through the test object and / or intervening substance in the test sample.
  • water-soluble polymer examples include polyvinylpyrrolidone and polyvinylalcohol. Chole, polyethylene glycol, cellulose ester (for example, methylcellulose, ethylcellulose, carboxymethylcellulose, carboxyethylcellulose, oxicetylcellulose, cyanethylcellulose, etc.), gelatin and the like are preferably used.
  • the immunological test kit of the present invention used in Embodiment B can be preferably used for the immunological test method of the present invention.
  • the kit includes a water-absorbent substrate having a stationary phase on which an immobilized first immunochemical component capable of specifically binding to a test object is provided in an arbitrary region on a surface, and a kit specifically for the test object.
  • Preferred embodiments of the water-absorbing substrate, the first and second labels, and the intervening substance are those preferably used in the method of the present invention as described above.
  • At least one of the first and second labeled bodies is provided in an arbitrary region between one end (that is, the liquid absorbing portion) and the stationary phase.
  • a further labeled phase may be provided in which the strands are retained in a form that can be detached by contact with water.
  • One preferred embodiment of the water-absorbing substrate used in the kit of the present invention is an arbitrary region between one end (that is, the liquid-absorbing portion) and the stationary phase (provided that the sample to be tested is a water-absorbing substrate).
  • the region to be inspected and the other substances in the test sample are included in that region, including that region. Examples include those further provided with a separable phase.
  • an arbitrary region between the stationary phase and one end closer to the labeled phase than the stationary phase (provided that the test sample Is supplied to an arbitrary region between the one end of the water-absorbent substrate and the stationary phase,
  • a separation phase capable of separating the test object from other substances in the test sample is further provided.
  • the separated phase exists in any region between one end of the water-absorbent substrate and the labeled phase.
  • the separated phase should have a pore size in the direction to be separated larger than the test object, each of the analytes, and the intervening substance, and smaller than other substances in the test sample to be separated and removed.
  • the separation direction may be a direction in which the marker spreads on the water-absorbing substrate, or may be a direction perpendicular to that direction. After separation from the substance, the separated phase may be removed for subsequent measurement.
  • Examples of the material of the separated phase include non-woven fabrics such as rayon and polyester, filter paper, glass fiber cloth, glass filter, nitrocellulose filter, polysulfone filter, and porous material.
  • the kit of the present invention may contain, in addition to the contents described above, additional contents that can be preferably used in the immunological test method of the present invention.
  • additional contents that can be preferably used in the immunological test method of the present invention.
  • the above-mentioned buffer which is preferably used for dispersing (dissolving) the first and second labels and the intervening substance can be used.
  • the embodiment C is a stationary phase in which a first immunochemical component capable of binding to a test object is immobilized on a water-absorbent substrate, and the first immunochemical component and the first immunochemical component are capable of binding to the test object.
  • a sandwich-type immunoassay in which the test object is sandwiched by a labeled substance obtained by binding a second immunochemical component to a labeling substance, a complex is formed through the binding of biotin and avidin. This is an immunological measurement method characterized by detecting a test object.
  • C-1 Pyotin is further bound to the labeling substance, and a complex is formed via avidin that binds to the biotin (for example, a water-absorbing substrate-the first immunochemical component-the test object-the second immunochemical component- Labeling substance-pyotin-avidin-biotin-labeling substance-second immunochemical component], and the test substance is detected by the labeling substance in the complex.
  • biotin for example, a water-absorbing substrate-the first immunochemical component-the test object-the second immunochemical component- Labeling substance-pyotin-avidin-biotin-labeling substance-second immunochemical component
  • a conjugate consisting of a second immunochemical component, a first label substance and avidin is used as a label, and a conjugate of piotin and a second label substance is further reacted with the conjugate to bind the avidin to the biotin.
  • a complex e.g., a water-absorbent substrate-the first immunochemical component-the test object-the second immunochemical component-the first labeling substance-avidin-biotin-the second labeling substance
  • An immunological measurement method comprising detecting a test object with the first and second labeling substances in the complex.
  • a conjugate consisting of a second immunochemical component, a first label substance and biotin is used as a label, and a conjugate of avidin and a second label substance is further reacted with the conjugate to bind the biotin with the avidin.
  • a conjugate of avidin and a second label substance is further reacted with the conjugate to bind the biotin with the avidin.
  • An immunological measurement method wherein the test object is detected by the first and second labeling substances in the complex.
  • the inspection object is the same as the inspection object described in aspect A.
  • the first immunochemical component and the second immunochemical component capable of binding to the test object are the same as the first immunochemical component and the second immunochemical component described in the embodiment A.
  • a substance that can specifically bind to the test object to be measured such as an antibody or an antigen (here, antigens include proteins, peptides, haptens, etc.).
  • a known material used in a sandwich method or the like is appropriately selected depending on the object. For example, when the test object is an antigen, the corresponding antibody can be used as an immunochemical component.
  • a polyclonal antibody and a monoclonal antibody can be used for the first immunochemical component immobilized on the stationary phase and the second immunochemical component used as a component of the label.
  • the chemical component is a monoclonal antibody
  • the other immunochemical component preferably recognizes a different antigenic determinant from the monoclonal antibody.
  • the test object is an antibody
  • the corresponding antigen can be used as an immunochemical component.
  • an anti-antibody (anti-immunoglobulin antibody) against the corresponding antigen and the antibody to be tested may be used as the first immunochemical component and the second immunochemical component, respectively.
  • the water-absorbing substrate in the present invention is the same as the water-absorbing substrate described in Embodiment A, and can absorb a test sample containing a test object, for example, serum, blood, urine, stool, saliva, and the like. No particular limitation is imposed as long as it absorbs a diluent obtained by diluting the test sample with a buffer, or absorbs a solution containing a target.
  • the buffer used here is not particularly limited, and examples thereof include a borate buffer, a phosphate buffer, and a Tris-HCl buffer.
  • the stationary phase, the first immunochemical component on the water-absorbent substrate It refers to the fixed area.
  • the method for immobilizing the first immunochemical component on the water-absorbing substrate is not particularly limited, but is conventionally known, such as a physical adsorption method or a common method. It is preferred to use the bonding method.
  • the amount of the first immunochemical component to be immobilized, even different forces usually the type and characteristics of the immunochemical component to be used is 0. 0 0 1 ⁇ 1 O mg Z cm 2 approximately.
  • the water-absorbent substrate is made of polyoxyethylene (20) sorbitan monolaurate (Tween TM 20), polyoxyethylene (20), in order to prevent non-specific adsorption of the test object or label.
  • the surfactant is preferably blocked with a protein such as serum albumin, skim milk, casein, or a water-soluble polymer such as polyethylene glycol, polyvinyl alcohol, or polyvinylpyrrolidone.
  • the labeled product in the present invention is a product obtained by binding the second immunochemical component to the labeling substance in the C-1 embodiment, and furthermore, the second immunochemical component in the C-12 embodiment.
  • the conjugate consisting of one labeling substance and avidin is a conjugate consisting of the second immunochemical component, the first labeling substance and biotin in the embodiment of C-13.
  • the labeling substance or the first labeling substance used here is not particularly limited, but colored particles are preferred from the viewpoint of easy detection.
  • the coloring particles are not limited as long as coloring can be detected with the naked eye, and are the same as the coloring particles described in the embodiment A.
  • the biotin is not particularly limited as long as it specifically binds to avidin, and may be biotin or a derivative thereof.
  • the derivative of biotin include biotin methyl ester, biotinol, biotinyl ⁇ -promide, biocytin, desthiobiotin, biotin L-sulfoxide and the like. Particularly, biotin and biotin are preferable.
  • Avidin is not particularly limited as long as it specifically binds to biotin. Absent. Avidin may be isolated from egg white or streptavidin isolated from Streptomyces avidini i. In particular, avidin is preferred.
  • a method for binding a second immunochemical component and biotin to the colored particles, or a method for binding the second immunochemical component and avidin to the colored particles a conventionally well-known method, For example, a covalent bonding method, a physical adsorption method, an ionic bonding method, or the like can be used, but the second immunochemical component and biotin after the binding, or the second immunochemical component and avidin are stable without elimination. From a certain point, it is preferable to employ the covalent bonding method.
  • the color of the colored particles to which the second immunochemical component and the biotin, or the second immunochemical component and the avidin are bound may be different, but are preferably the same.
  • the label thus obtained can be used after being dispersed in a buffer solution.
  • the buffer used here include a borate buffer, a phosphate buffer, a Tris-HC1 buffer, and the like.
  • a buffer having a pH and a salt concentration that does not inhibit the antigen-antibody reaction is appropriately used.
  • the amount of the label used can be appropriately set in various aspects of the present invention.
  • the concentration of the label in the buffer solution containing the label is 0.05 to 5% by weight, preferably 0.01 to 0.5% by weight. If the concentration is too low, the number of colored particles bound to the stationary phase will be small, resulting in poor color development.
  • the buffer is also called a labeled body fluid).
  • the conjugate of biotin and the second labeling substance used in the method (C-12 embodiment) of the present invention is a substance obtained by binding biotin to the same labeling substance as the first labeling substance.
  • the colors of the colored particles suitably used for the first labeling substance and the second labeling substance may be different, but are preferably the same.
  • the conjugate of avidin and the second labeling substance used in the method of the present invention (the embodiment of C-3) is obtained by binding avidin to the same labeling substance as the first labeling substance.
  • the colors of the colored particles used may be different, but are preferably the same.
  • a conventionally well-known method for example, a covalent bonding method, a physical adsorption method, a force capable of using an ionic bonding method, or the like, a method of binding biotin or avidin, It is preferable to employ a covalent bonding method from the viewpoint of stable without elimination.
  • a method for applying avidin in the embodiment C-11 a method for applying a conjugate of biotin and a second labeling substance in the embodiment C-12, or a method for applying a conjugate of avidin and a second labeling substance in the embodiment C-13 May be retained in any region between the one end on the water-absorbent substrate and the stationary phase on which the first immunochemical component is immobilized, in a state where it can be detached by contact with water, You may mix and use with a labeled body fluid. Further, it may be used by being mixed with a buffer solution.
  • the buffer used here may be the same as the one used for dispersing the label.
  • biotin and the second label are used in the embodiment C-11 so that avidin can be detached from the water-absorbing substrate by contact with water such as a test sample or a buffer in the embodiment C-11.
  • the conjugate of the substance can be detached from the water-absorbing substrate by contact with water such as the test sample or buffer, or the conjugate of avidin and the second labeling substance is detected in the C-13 embodiment. It is preferable to apply the composition on a water-absorbing substrate so that it can be detached from the water-absorbing substrate by contact with water such as a sample or a buffer solution.
  • a solution of avidin in the embodiment C-1 for example, a solution of avidin in the embodiment C-1, a solution of a conjugate of biotin and the second labeling substance in the embodiment C-12, or a solution of avidin and the second labeling substance in the embodiment C-13.
  • the solution of the conjugate After applying the solution of the conjugate to the water-absorbent substrate, it is dried under appropriate conditions. Lyophilization can also be performed as one mode of drying.
  • the labeling substance may be dispersed in a water-soluble polymer or a sacrificed loin solution, and the dispersion may be applied on a water-absorbent substrate and dried in the same manner.
  • the water-soluble polymer or saccharose is easily solubilized, and the labeling substance is quickly detached from the base material, and is separated from the test substance in the test sample and the other labeling substance via Z or the intervening substance.
  • water-soluble polymer ⁇ saccharose By adjusting the concentration, it is possible to obtain an appropriate viscosity for retaining the labeling substance in a predetermined area of the water-absorbing substrate, to prevent aggregation and denaturation of the labeling substance upon drying, and to absorb the labeling substance after drying. This is advantageous in that it is not easily detached from the conductive substrate.
  • a high affinity between the avidin and the biotin and a plurality of biotin molecules can bind to one molecule of avidin.
  • a higher-order complex is formed by binding a large number of labeled biotin-conjugated substances via avidin to the complex of the test object and the first immunochemical component.
  • the test object The binding signal between the enzyme and the first immunochemical component is amplified, so that the detection of the colored label is facilitated.
  • the conjugate according to the present invention is the simplest binding mode in the embodiment of C-11, in which a water-absorbing base material-a first immunochemical component-a test object-a second immunochemical component-a labeling substance- Piotin-avidin-Piotin-Labeling substance-Second immunochemical component can be expressed, but one biotin-Labeling substance-Second immunochemical component that binds to avidin binds to the same avidin molecule multiple times Water-absorbing base material-the first immunochemical component-the test object-the second immunochemical component-the labeling substance-Piotin-Avidin (Piotin-Labeling substance-The second immunochemical Component) n.
  • test object can be further bound to the second immunochemical component at the end of the complex
  • test object is further bound to the second immunochemical component
  • Two immunochemical components, one labeling substance, one biotin, one avidin, and one (biotin, one labeling substance, one second immunochemical component) n can also bind. That is, Water-absorbent substrate-First immunochemical component-Test object-Second immunochemical component-Labeling substance-Piotin-avidin-(Piotin-Labeling substance-Second immunochemical component) n 1 [Test Target—second immunochemical component—labeling substance—Piotin—avidin— (biotin—labeling substance—second immunochemical component) n] n
  • complexes in the present invention are merely examples, and include various complex complexes via a biotin-avidin bond.
  • the simplest binding mode is as follows: a water-absorbent substrate—the first immunochemical component—the test object—the second immunochemical component—the first labeling substance—the avidin-biotin Although it can be expressed by two labeling substances, one biotin that binds to avidin and two or more second labeling substances can bind to the same avidin molecule.
  • Component-Test object-Second immunochemical component-First labeling substance-Avidin-(Piotin-Second labeling substance) n can be expressed.
  • biotin-avidin bond is bound.
  • a variety of complex complexes are formed via In the embodiment of C-13, the simplest binding mode is as follows: water-absorbent substrate—first immunochemical component—test object—second immunochemical component—first labeling substance—biotin-avidin— It can be expressed by two labeling substances.
  • a plurality of biotin, a first labeling substance, and a second immunochemical component that bind to avidin can bind to the same avidin molecule. Since avidin is bound, avidin bound to another second labeling substance is also bound to each of the biotins, and various complex complexes are formed via the biotin-avidin bond.
  • the test sample, the labeled body fluid, and the mixture of the test sample and the labeled body fluid are used.
  • the distance between a site where liquid absorption such as a compound and a buffer solution is started (hereinafter also referred to as a dropping portion) and the stationary phase is 1 to 6 cm, preferably about 2 to 4 cm. If the distance is too long, the test object and the marker may not reach the stationary phase, the color sensitivity may be too high, and the measurement may take a long time, which is not preferable. On the other hand, if the distance is too short, the color development on the stationary phase may not be uniform, sparse, or the color sensitivity may be too low.
  • the following two embodiments are exemplified.
  • a test sample is mixed with a buffer solution containing a label 4 and avidin 8, and the mixed solution is dropped from a dropping portion 11 on a water absorbent substrate 1. Expand and move to stationary phase 3 where the first immunochemical component 2 is immobilized. During this time, the binding between the second immunological component 6 in the label 4 and the test object 9 and the binding between the biotin 7 and the avidin 8 in the label 4 occur.
  • the first immunochemical component 2 immobilized on the water-absorbent substrate 1 and the test object 9 bind, and the complex (the water-absorbent substrate-the first immunochemical Component-Test object-Second immunochemical component-Labeling substance-Biotin-Avidin-Labeling substance]
  • a test sample is developed from a drip portion 11 on a water-absorbent substrate 1 together with a buffer solution containing a label 4, and the first immunochemical Is transferred to stationary phase 3 where target component 2 is immobilized.
  • it arrives at the phase to which avidin 8 is applied (avidin phase), and avidin 8 is desorbed by contact with water.
  • the second immunochemical component 6 in the label 4 The binding to the test object 9 in the test sample and the binding between the biotin 7 in the label 4 and the avidin 8 fixed on the water-absorbent substrate 1 but detached by contact with water occur.
  • the first immunochemical component 2 immobilized on the water-absorbent substrate and the test object 9 bind to form a complex (the water-absorbent substrate-the first immunochemical Component -Test object -Second immunity Chemical component-labeling substance-biotin-avidin-labeling substance].
  • the colored particles as the labeling substance 5 constituting the immunolabeled substance are aggregated by the higher-order bond via avidin-biotin, and the color development becomes clear and can be visually confirmed.
  • a test sample is mixed with a buffer solution containing a labeled substance 4 and a conjugate 8 of a biotin and a second labeled substance, and the mixed solution is subjected to a water absorbing group. It develops from the dropping part 13 on the material 1 and moves to the stationary phase 3 on which the first immunochemical component 2 is immobilized. During this time, the binding between the second immunochemical component 6 in the label 4 and the test object 9 and the avidin 7 in the label 4 and the biotin 1 in the conjugate 8 of the biotin and the second labeling substance 8 A bond with 0 occurs.
  • the first immunochemical component 2 immobilized on the water-absorbent substrate 1 and the test object 9 bind to form a complex (the water-absorbent substrate-the first immunochemical Component-test object-second immunochemical component-first labeling substance-avidin-biotin-second labeling substance] 11
  • a dropping portion 13 on the water-absorbent substrate 1, a test sample, and a test sample are developed together with a buffer solution containing the labeled body 4, Transfer to stationary phase 3 on which immunochemical component 2 is immobilized. In the middle of this, it arrives at the labeled phase 12 on which the conjugate 8 of the biotin and the second labeling substance is applied, and the conjugate 8 of the biotin and the second labeling substance is desorbed by contact with water. Further, while moving on the water-absorbent substrate 1 and reaching the stationary phase 3 where the first immunochemical component 2 is immobilized, the second immunochemical component 6 in the label 4 is covered with the second immunochemical component 6.
  • the colored particles as the first labeling substance 5 and the second labeling substance 5 are aggregated by a higher order bond via avidin-biotin, and the color development becomes clear and can be visually confirmed. .
  • a test sample is mixed with a buffer solution containing a labeled substance 4 and a conjugate 8 of avidin and a second labeled substance, and the mixed solution is subjected to a water absorbing group. It is developed from the dropping part 13 on the material 1 and moved to the stationary phase 3 on which the second immunochemical component 2 is immobilized. During this time, the binding between the second immunochemical component 6 in the label 4 and the test object 9 and the avidin 1 in the conjugate 8 of the biotin 7 and avidin in the label 4 and the second labeling substance 8 A bond with 0 occurs.
  • the first immunochemical component 2 immobilized on the water-absorbent substrate 1 and the test object 9 bind, and the complex (the water-absorbent substrate-the first immunochemical Component 1 Test object 1 2nd immunochemical component 1 1st labeling substance 1 piotin 1 avidin-2nd labeling substance] 11 is formed.
  • the test sample is developed together with the buffer containing the labeled substance 4 from the dropping part 13 on the water-absorbent substrate 1, and the first immunochemical Is transferred to stationary phase 3 where target component 2 is immobilized.
  • the conjugate arrives at the labeled phase 12 on which the conjugate 8 of the avidin and the second labeling substance is applied, and the conjugate 8 of the avidin and the second labeling substance is desorbed by contact with water.
  • the second immunochemical component 6 in the label 4 is covered with the second immunochemical component 6.
  • the colored particles as the first labeling substance 5 and the second labeling substance 5 are aggregated by a higher order bond via avidin-biotin, and the color development becomes clear and can be visually confirmed. .
  • a water-absorbing substrate having a stationary phase on which a first immunochemical component is immobilized is also referred to as an immunological test strip of the present invention.
  • the present invention provides an immunological assay kit containing the immunological test strip, the labeled product and avidin in the C-11 embodiment.
  • an immunoassay kit comprising the immunological test strip, the label, and a conjugate of the biotin and the second label.
  • an immunoassay kit comprising the immunological test strip, the label, and a conjugate of the avidin and the second label.
  • the immunological test strip and the label contained in the kit of the present invention are as defined in the immunological measurement method of the present invention.
  • the avidin in the C-11 embodiment, the conjugate of biotin and the second labeling substance in the C-12 embodiment, and the conjugate of avidin and the second labeling substance in the C-13 embodiment, which are contained in the kit of the present invention, are: As defined in the immunological measurement method of the present invention, a state in which an arbitrary region between one end of the water-absorbent substrate of the immunological test strip and the stationary phase can be detached by contact with water. Is preferably held.
  • the present invention will be described in more detail with reference to Examples, but these Examples do not limit the scope of the present invention in any way.
  • Example A-1 Preparation of kit for immunological test
  • a nitrocellulose membrane (pore diameter 8 mm, 6 mm x 60 mm), lmg / ml ⁇ heron IgG anti-Escherichia coli 01 57: H7 antibody (Capricorn, 0.1 M phosphoric acid) 0.5 // 1 buffer solution (in pH 7.4) was applied in a line using a disperser.
  • the membrane was immersed in an aqueous solution containing 1% by weight of serum albumin and 0.1% by weight of polyoxyethylene (10) octylphenyl ether (manufactured by Wako Pure Chemical Industries, Ltd.) for 10 minutes. After 2 o'clock at 40 ° C While drying.
  • a polyester film (100 m thick) was bonded to the back side of the membrane (the side opposite to the antibody-coated surface) using a spray paste. Furthermore, a test piece was prepared by bonding a polyester nonwoven fabric (6 mm x 8 mm, thickness 2.5 mm) to a point 0 to 8 mm from the opposite end of the antibody application site.
  • E.coli 01 57:! 17 strain was dispersed in 0.1 M phosphate buffer (pH 7.4) containing 0.9% by weight of NaCl at each concentration shown in Table 8-1, to prepare a test sample solution. did.
  • the test solution was mixed with the first labeled antibody solution prepared in (1) of Example A-1 so that the solid content concentration was 0.02% by weight, and the mixture was stirred. 1 was dropped on the polyester nonwoven fabric portion of the test piece prepared in Example A-1 (3). After the mixed solution was spread on the test piece, the second labeled antibody solution prepared in (2) of Example A-1 contained 0.9% by weight of NaCl so as to have a solid concentration of 0.02% by weight.
  • E. coli ⁇ 157: H7 strain was dispersed in 0.1 M phosphate buffer (pH 7.4) containing 0.9% by weight of NaCl at each concentration shown in Table A-1 to prepare a test sample solution. .
  • the first labeled antibody solution prepared in (1) of Example A-1 and the second labeled antibody solution prepared in (2) of Example A-1 were mixed at a solid concentration of 0%.
  • the mixed solution 60i1 was added dropwise to the polyester nonwoven fabric portion of the immunological test piece prepared in (3) of Example A-1. After 20 minutes the color development on the stationary phase The presence or absence was visually observed. The results are shown in Table A-1.
  • Example A-4 Detection of Escherichia coli 01 5 7: H7 by Immunoassay Kit
  • Test samples were prepared by dispersing Escherichia coli 0157: H7 at the concentrations shown in Table A-1 in 0.1 M phosphate buffer (pH 7.4) containing 0.9 weight NaCl. .
  • the test sample 21 was absorbed on the surface of the immunological test piece prepared in (3) of Example A-1 at a portion of 12 to 2 Omm from the opposite side of the antibody application site.
  • the first labeled antibody solution prepared in (1) of Example A-1 was mixed with 0.1 M phosphate buffer containing 0.9 wt% NaCl so as to have a solid concentration of 0.02 wt%. After dilution with the solution (pH 7.4), the diluted solution 601 was dropped on the polyester nonwoven fabric part of the test piece.
  • Example A-5 Detection of Escherichia coli 01 5 7: H7 by Immunoassay Kit
  • a test sample solution was prepared by dispersing Escherichia coli 0157: H7 at a concentration shown in Table A-1 in 0.1 M phosphate buffer (pH 7.4) containing 0.9% by weight of NaCl. Prepared. This test sample 21 was absorbed on the surface side of the immunological test piece prepared in Example II-1 (3) in a portion of 12 to 2 Omm from the opposite side of the antibody application site. Next, the first labeled antibody solution prepared in (1) of Example A-1 and the second labeled antibody solution prepared in (2) of Example A-1 were mixed, and each solid content concentration was 0.02% by weight. After dilution with 0.1 M phosphate buffer (pH 7.4) containing 0.9% by weight of NaCl, the mixture was diluted.
  • the solution 600 was dropped onto the polyester nonwoven fabric portion of the immunological test piece prepared in (3) of Example A-1. After 20 minutes, the presence or absence of color development on the stationary phase was visually observed. The results are shown in Table A-1. For comparison, the measurement results when only the first labeled antibody was used without using the second labeled antibody are shown side by side.
  • stampulu 0.2 g was dissolved in 2 Oml of toluene, 0.2 g of sodium dodecyl sulfate and 100 ml of distilled water were added thereto, and the mixture was emulsified by an ultrasonic dispersing machine. To this solution was added 30 ml of the above-mentioned carrier particle dispersion (solid content concentration: 10% by weight), and the mixture was stirred at room temperature for 24 hours.
  • an anti-human HB s antibody (Egret IgG) was diluted with 0.1 M phosphate buffer (pH 7.4) and adjusted to an aqueous solution having a final concentration of lmgZml.
  • aqueous solution having a final concentration of lmgZml.
  • Apply 101 to a 50 mm site from one end of a nitrocellulose membrane filter (Toyo Filter Paper, 5 x 10 Omm), immediately stand at 37 for 1 hour, and remove the nitrocellulose membrane filter. , 0.1% Pserum albumin, 0.1% Tween 20 for 1 hour. Thereafter, the nitrocellulose membrane filter was taken out and allowed to stand at room temperature for 3 hours to obtain a nitrocellulose membrane filter having an anti-human HBs antibody.
  • a blood cell separation phase (Toyo Filter Paper No. 2, 5 x 10 mm) was provided near one end (absorbent part) of the test piece of the nitrocellulose membrane filter immobilized with the anti-human HBs antibody, and fixed.
  • a test piece consisting of a nitrocellulose membrane filter having a phase and a blood cell separation phase was obtained.
  • Example B-2 Detection of human HB s antigen using an immunoassay kit
  • Test solution 1 in which human HBs antigen was dissolved in saline solution was dropped into the blood cell separation phase of the test piece prepared in (5) of Example B-1.
  • a mixture of the hemoglobin antigen solution (protein concentration 20 Ong / ml) and the second label-containing solution (solids concentration 0.2% by weight) prepared in (3) of Example B-1 was used.
  • 001 was dropped into the liquid absorbing portion and developed. Color development on the stationary phase after 10 minutes was visually observed (FIG. 5). The results are shown in Table B-1.
  • Example IV-1 A test solution 101 in which human HBs antigen was dissolved in a physiological saline solution was dropped into the blood cell separation phase of the test piece prepared in Example IV-1 (4). Immediately thereafter, the liquid containing the first labeled substance prepared in (2) of Example B-11 (solid content concentration: 0.2 weight: 50/1) was dropped and developed. Antigen solution (protein concentration: 20 Ong / ml) was added dropwise to the liquid-absorbing part and developed, and after another 10 minutes, the second label prepared in (3) of Example B-1 Body-containing liquid (solid content concentration: 0.2 wt. 501 was dropped into the liquid absorbing portion and developed. Color development on the stationary phase after 10 minutes was visually observed. The results are shown in Table II-2. Show. Table B-2
  • a test solution 101 in which human HBs antigen was dissolved in a saline solution was dropped into the blood cell separation phase of the test piece prepared in Example IV-1 (4).
  • the first label-containing liquid (solid content concentration: 0.2% by weight) 501 prepared in (2) of Example B-11 was dropped into the liquid absorbing portion and developed.
  • a hemoglobin antigen solution (protein concentration: 200 ng / m 1) 1001 was added dropwise to the liquid-absorbing part and developed.
  • the second label-containing solution prepared in (3) of Example B-1 solid content concentration: 0.2 wt. 501 was dropped into the liquid absorbing portion and developed (FIG. 6)
  • the color development on the stationary phase after 10 minutes was visually observed and the results are shown in Table B-3.
  • Table B-3 Table B-3
  • test solution 101 in which human HBs antigen was dissolved in a saline solution was dropped into the blood cell separation phase of the test piece prepared in (4) of Example B-1.
  • liquid containing the first labeled substance prepared in (2) of Example B-11 solid content concentration: 0.2 wt. 501 was dropped into the liquid absorbing portion and developed. The color development was visually observed, and the results are shown in Table B-4.
  • Test solution 1 in which human HBs antigen was dissolved in saline solution was dropped into the blood cell separation phase of the test piece prepared in Example IV-1 (4). Immediately thereafter, the solution containing the first label (solid content: 0.2% by weight), the hemoglobin antigen solution (protein concentration: 200 ng / m 1) prepared in Example B-11 (2), and Example B A mixed solution 1001 of the second label-containing solution (solid content concentration: 0.2% by weight) prepared in (3) of item (1) -1 was dropped on the liquid absorbing portion and developed. After 10 minutes, the color development on the stationary phase was visually observed (FIG. 7). The results are shown in Table B-5. Table B-5
  • a test solution 101 in which human HBs antigen was dissolved in a saline solution was dropped into the blood cell separation phase of the test piece prepared in (4) of Example B-1.
  • the liquid containing the first label (solid content concentration: 0.2% by weight) 50/1 prepared in (2) of Example B-11 was dropped into the liquid absorbing portion and developed.
  • a hemoglobin antigen solution (protein concentration: 200 ng / m 1) 1001 was added dropwise to the liquid-absorbing part and developed.
  • the second label-containing liquid (solid content concentration: 0.2% by weight) 501 prepared in (3) of Example B-1 was dropped on the liquid absorbing portion and developed. Color development on the stationary phase after 10 minutes was visually observed.
  • Table B-6 Table B—6
  • Example B-6 Detection of human HBs antigen by immunoassay kit
  • Example B-5 To the blood cell separation phase of the test piece prepared in Example B-5, a test solution 10/1 in which human HBs antigen was dissolved in a physiological saline solution was dropped. Immediately thereafter, a mixed solution of the hemoglobin antigen solution (protein concentration of 200 ng / m 1) and the first label-containing solution (solids concentration of 0.2% by weight) prepared in (2) of Example B-1 was used. 01 was dropped into the liquid absorbing part and developed. Color development on the stationary phase after 10 minutes was visually observed (FIG. 8). as a result The c table shown in Table B- 7 B- 7
  • Example B-6 The same procedure as in Example B-6 was carried out except that only the first label prepared in (2) of Example B-1 and no hemoglobin antigen as an intervening substance were used. A measurement was made. That is, after a test solution 101 in which human HBs antigen was dissolved in a physiological saline solution was added dropwise to the blood cell separation phase of the test piece prepared in Example B-5, the liquid containing the first labeled body (solid A partial concentration of 0.2 wt. 50 ⁇ 1 was dropped into the liquid absorbing portion and developed, and the color development on the stationary phase was visually observed 10 minutes later, and the results are shown in Table B-8. Table B—8
  • Example B-8 Detection of human HB s antigen using an immunoassay kit
  • Test solution 1 in which human HBs antigen was dissolved in a physiological saline solution was added dropwise to the blood cell separation phase of the test piece prepared in Example B-7. Immediately thereafter, 1001 of a hemoglobin antigen solution (protein concentration: 200 ng / m 1) was dropped into the liquid-absorbing part and developed. Color development on the stationary phase after 10 minutes was visually observed (FIG. 9). The results are shown in Table B-9.
  • a test wave 101 in which human HBs antigen was dissolved in a physiological saline solution was dropped into the blood cell separation phase of the test piece prepared in Example I-7.
  • the liquid containing the first labeled substance prepared in (2) of Example III-1 solid content concentration: 0.2 wt. 501
  • the hemoglobin antigen The solution (protein concentration: 200 ng / l) was added dropwise to the liquid-absorbing part and developed, and after 10 minutes, containing the second label produced in (3) of Example B-1
  • the liquid (solids concentration: 0.2% by weight) 50/1 was dropped into the liquid-absorbing section and developed, and the color development on the stationary phase after 10 minutes was visually observed. Shown in Table B—10
  • the obtained polymer particle dispersion was subjected to centrifugal washing in the order of alkali, acid and distilled water, and then the solid content concentration was adjusted to 10% by weight (carrier particle dispersion).
  • 0.2 g of the sumble was dissolved in 20 ml of toluene, 0.2 g of sodium dodecyl sulfate and 100 ml of distilled water were added thereto, and the mixture was emulsified with an ultrasonic disperser.
  • the carrier particle dispersion (solid content: 10% by weight) 3 Om1 was added to the obtained emulsion, and the mixture was stirred at room temperature for 24 hours. After the toluene was removed from this solution by evaporation, the solution was centrifugally washed with a 0.01 M borate buffer (pH 7.5) to adjust the solid content to 5% by weight.
  • An anti-human HBs antibody (Egret IgG) was diluted with 0.1 M phosphate buffer (pH 7.4) to prepare an aqueous solution having a final concentration of lmgZml.
  • This aqueous solution was applied 10/1 to 2 cm from one end of one end of a nitrocellulose membrane filter (Toyo Filter Paper, 5 x 10 Omm), immediately left standing at 37 ° C for 1 hour, and The membrane filter was taken out and immersed in an aqueous solution of 0.1% serum albumin and 0.1% Tween 20 for 1 hour. Thereafter, the nitrocellulose membrane filter was taken out, and allowed to air dry at room temperature for 3 hours.
  • nitrocellulose membrane filter had a nonwoven fabric (5 mm x 1 Omm) dropping part, and immobilized with anti-human HBs antibody immobilized.
  • a nitrocellulose membrane filter (immunological test strip) having a phase was obtained.
  • An anti-human HBs antibody (Egret IgG) was diluted with a 0.1 M phosphate buffer (pH 7.4) to prepare an aqueous solution having a final concentration of 1 mg / ml.
  • aqueous solution having a final concentration of 1 mg / ml.
  • the nitrocellulose membrane filter has a non-woven (5 mm x 10 mm) drop at one end, and immobilized with anti-human HBs antibody immobilized.
  • a nitrocellulose membrane filter (immunological test strip) having a phase was obtained.
  • avidin (lmgZml) dissolved in 0.1 M phosphate buffer (pH 7.4) was applied between the stationary phase and the dropping part of the immunological test strip in 101, and immediately at 37 ° C. In 1 hour static To obtain an immunological test strip having an avidin phase.
  • Example C-11 In the same manner as in Example C-11, a nitrocellulose medium on which an anti-human HBs antibody was immobilized was used. An anti-human HB s antibody (labeled product) labeled with Sudan blue stained particles was obtained using a membrane filter.
  • stampule-stained particle-labeled avidin-anti-human HBs antibody (labeled body).
  • Glutaraldehyde aqueous solution (0.1 mg gZm 1) 1 m was added to 10 ml of the sumbled one-stained xylene diamine disaccharide particle dispersion obtained in the same manner as in Example C-11.
  • Example C Nitrocellulose having a stationary phase having a non-woven cloth (5 x 1 Omm) drip at one end of a nitrocellulose membrane fill and an immobilized anti-human HBS antibody as in Example 11 A membrane filter (immunological test strip) was obtained. [Detection of human HBs]
  • This solution 1001 was applied from one end (dropping portion) of the immunological test strip. The solution was dropped and developed, and the color of the stationary phase was observed after 20 minutes. The results are shown in Table C-13.
  • Example C-13 Sudan blue stained particle-labeled avidin-anti-human HBs antibody (labeled product) was obtained.
  • Sudan blue-stained particle-labeled biotin (combination of biotin and a second labeling substance) was obtained.
  • An anti-human HBs antibody (Egret IgG) was diluted with 0.1 M phosphate buffer (pH 7.4) to prepare an aqueous solution having a final concentration of lmgZml.
  • This aqueous solution was applied to a nitrocellulose membrane filter (Toyo filter paper, 5 x 100 mm) at 10 cm 2 from one end and immediately allowed to stand at 37 ° C for 1 hour, followed by nitrocellulose membrane. The filter was taken out and immersed in an aqueous solution of 0.1% serum albumin and 0.1% Tween TM 20 for 1 hour.
  • nitrocellulose membrane filter removes the nitrocellulose membrane filter and allow it to air-dry at room temperature for 3 hours.
  • One end of this nitrocellulose membrane filter has a non-woven (5 x 10 mm) dropping part to immobilize the anti-human HBs antibody.
  • a nitrocellulose membrane filter (immunological test strip) having the immobilized stationary phase was obtained.
  • test solution prepared by dissolving human HBs antigen in a physiological saline solution and a labeled solution (100/1 mixed solution with a solid concentration of 0.2 wt.) Were dropped on the dropping part and developed. The color development of the stationary phase was observed and the results are shown in Table C-3.
  • Table C-3
  • Glutaraldehyde aqueous solution (0.1 mg Zml) (1 ml) was added to Sudan blue-stained xylene diamine diamine surfactant particle dispersion (1 Om 1) obtained in the same manner as in Example C-11, and the mixture was reacted at room temperature for 2 hours. Thereafter, the resultant was subjected to centrifugal washing with the same buffer as in Example C-11 to prepare a dispersion having a solid content of 1% by weight.
  • 1 mg of avidin was added, and the mixture was stirred at 10 ° C for 24 hours. This is centrifuged and washed with the same buffer as above, and redispersed to a solid concentration of 1% by weight.
  • Avidin labeled with Sudan Blue stained with avidin covalently bound conjuggate of avidin and a second labeling substance
  • Example C-11 A nitrocellulose membrane filter having a nonwoven cloth (5 ⁇ 1 Omm) dropping part at one end and a stationary phase on which an anti-human HBs antibody was immobilized as in Example C-11. (Immunological test strip) was obtained. (Detection of human HBs)
  • This solution 1001 was dropped from one end (dropping portion) of the immunological test strip and developed, and the color development of the stationary phase was observed after 20 minutes, and the results are shown in Table C-14. — 6
  • Example C-5 Sudan blue stained particle-labeled biotin-anti-human HBs antibody (labeled product) was obtained.
  • Sudan blue-stained particle-labeled avidin (combination of avidin and a second labeling substance) was obtained.
  • Anti-human HB s antibody (Egret IgG) was added to 0.1M phosphate buffer (pH 7.4) To prepare an aqueous solution having a final concentration of l mg / ml. After applying this aqueous solution to a nitrocellulose membrane filter (Toyo filter paper, 5 x 100 mm) at a position 2 cm from one end, immediately place it at 37 ° C for 1 hour, and then place it on a nitrocellulose membrane. The filter was taken out and immersed in an aqueous solution of 0.1% serum albumin and 0.1% Tween TM 20 for 1 hour.
  • a nitrocellulose membrane filter Toyo filter paper, 5 x 100 mm
  • nitrocellulose membrane filter was taken out, allowed to air dry at room temperature for 3 hours, and a nonwoven fabric (5 ⁇ 10 mm) was dropped on one end of the nitrocellulose membrane filter.
  • a nitrocellulose membrane filter (immunological test strip) having an immobilized stationary phase was obtained.
  • test solution prepared by dissolving human HBs antigen in a physiological saline solution and a labeled solution (a mixed solution 1001 with a solid concentration of 0.2 wt.) was dropped on the dropping portion, and developed after 20 minutes. The color development of the stationary phase was observed and the results are shown in Table C-4.
  • the detection sensitivity of the human HBs antigen by the immunological method of the present invention was about 0.25 ng / ml. It can be seen that the immunological method of the present invention has about 40 times higher sensitivity than the method of Comparative Example C-1.
  • a quick, simple, and highly sensitive immunological test method and a kit used for the method are provided.

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Description

明 細 書 免疫学的検査方法および免疫学的検査用キット 技術分野
本発明は、 被検試料中の検査対象物の検出を行い得る免疫学的検査方法および そのためのキットに関する。 より詳細には、 本発明は検出シグナルを増幅させる 工程を含む免疫クロマトグラフ法に関する。 背景技術
生体試料等の免疫学的分析法において、 迅速且つ簡便にその検査を行う方法と して免疫クロマトグラフ法が挙げられる。 この方法は、 一般に以下のような工程 を含む。 すなわち、 検査対象物と特異的に結合し得る抗体を固定化した固定相を 有する吸水性基材からなる検査片の一端より、 該検査対象物に特異的に結合し得 る標識された抗体と被検液との混合物を吸収させて展開すると、 該混合物中で形 成された標識抗体一検査対象物複合体は固定化された抗体と結合して固定相上に 捕捉される。 したがって、 該固定相に結合した標識抗体を測定することにより被 検液中の検査対象物を測定することができる。
また、 上記免疫クロマトグラフ法の検出シグナルをより高感度で得るための方 法として、 特開平 1 0— 0 6 2 4 1 9号において、 二種の標識抗体を用いる方法 が開示されている。 つまり、 検査対象物と特異的に結合し得る抗体を標識した第 一標識抗体と、 該抗体に特異的に結合し得る二次抗体を標識した第二標識抗体と を、 検査片中の被検試料滴下部と固定相 (該検査対象物と特異的に結合し得る別 の抗体が固定化されている) の間に標識相としてそれぞれ設置した (吸収させた ) 構成である。 試料中の検査対象物は、 第一標識抗体と複合体を形成した後、 さ らに第二標識抗体が第一標識抗体に結合して (被検物 -第一標識抗体 -第二標識 抗体) の複合体を形成する。 該免疫複合体は固定相上に固定化された抗体により 捕捉される。 したがって、 固定相上で第二標識抗体により増幅させたシグナルが 検出される。
しかしながら、 上記のシグナル増幅免疫クロマトグラフ法によってもまだ十分 な検出感度が得られていないのが現状である。 さらに、 被検試料が糞便、 尿、 血 液等の場合、 前処理として試料を適当な緩衝液に懸濁する工程、 および/または 被検試料中の夾雑物質を分離除去する部分精製工程等の付加的な操作が必要とな り、 迅速性に欠けるという欠点を有する。
したがって、 本発明の目的は、 免疫クロマトグラフ法に関し、 より迅速に、 且 つ高感度で検査対象物を検出することが可能な免疫学的検査方法およびそのため のキットを提供することである。 発明の開示
本発明は下記の免疫学的検査方法およびそのためのキットを提供する :
〔 1〕 検査対象物と特異的に結合し得る第一の免疫化学的成分を固定化した固 定相を表面上の任意の領域に設けた吸水性基材を用いて該検查対象物を検出する 免疫学的検査方法であって、
(1) 該検査対象物と特異的に結合し得る第二の免疫化学的成分に標識物質を結合 してなる標識免疫化学的成分 (第一標識免疫化学的成分) を含有する液と、
(2) 該第二の免疫化学的成分と特異的に結合し得る第三の免疫化学的成分に標識 物質を結合してなる標識免疫化学的成分 (第二標識免疫化学的成分) を含有する 液とを用いることを特徴とする免疫学的検査方法;
〔2〕 吸水性基材の表面上の任意の領域に設けた固定相に固定化された、 検査 対象物と特異的に結合し得る第一の免疫化学的成分と、 検査対象物と特異的に結 合し得る第二の免疫化学的成分および検査対象物とは結合しなレ、第三の免疫化学 的成分に標識物質が結合してなる標識体 (第一標識体) とで、 被検試料中の検査 対象物をサンドィツチした免疫複合体を該固定相上に形成させて、 固定相上の標 識物質のシグナルを測定する免疫学的検査方法であつて、 該第三の免疫化学的成 分と介在物質を介して特異的に結合し得る第四の免疫化学的成分に標識物質が結 合してなる標識体 (第二標識体) が、 該介在物質を介して上記サンドイッチ型免 疫複合体中の第三の免疫化学的成分に結合した免疫複合体を形成させて標識物質 のシグナルを増幅することを特徴とする方法;
C 3 ) 検査対象物と結合しうる第一の免疫化学的成分を吸水性基材上に固定化 した固定相で、 該第一の免疫化学的成分および、 該検査対象物と結合しうる第二 の免疫化学的成分を標識物質に結合してなる標識体により該検査対象物を挟み込 むサンドィツチ型免疫学的測定方法において、 ピオチンとアビジンの結合を介し て複合体を形成して検査対象物を検出することを特徴とする免疫学的測定方法;
〔4〕 検査対象物と特異的に結合し得る第一の免疫化学的成分を固定化した固 定相を表面上の任意の領域に設けた吸水性基材、 該検査対象物と特異的に結合し 得る第二の免疫化学的成分に標識物質を結合してなる標識免疫化学的成分 (第一 標識免疫化学的成分) および該第二の免疫化学的成分と特異的に結合し得る第三 の免疫化学的成分に標識物質を結合してなる標識免疫化学的成分 (第二標識免疫 化学的成分) を含むことを特徴とする免疫学的検査用キッ ト ;
〔 5〕 検査対象物と特異的に結合し得る第一の免疫化学的成分を固定化した固 定相を表面上の任意の領域に設けた吸水性基材、 検査対象物と特異的に結合し得 る第二の免疫化学的成分および検査対象物とは結合しなレ、第三の免疫化学的成分 に標識物質が結合してなる標識体 (第一標識体) 、 該第三の免疫化学的成分と介 在物質を介して特異的に結合し得る第四の免疫化学的成分に標識物質が結合して なる標識体 (第二標識体) 、 ならびに第三および第四の免疫化学的成分の結合を 仲介する介在物質を含む免疫学的検査キット ;
〔 6〕 検査対象物と結合しうる第一の免疫化学的成分を吸水性基材上に固定化 した固定相を有する免疫学的検査片、 該検查対象物と結合しうる第二の免疫化学 的成分およびピオチンを標識物質に結合してなる標識体ならびにアビジンを含有 してなる免疫学的測定キット ;
〔 7〕 検査対象物と結合しうる第一の免疫化学的成分を吸水性基材上に固定化 した固定相を有する免疫学的検査片、 該検査対象物と結合しうる第二の免疫化学 的成分およびァビジンを第一標識物質に結合してなる標識体、 ならびにピオチン と第二標識物質の結合体を含有してなる免疫学的測定キット ;ならびに
〔 8〕 検査対象物と結合しうる第一の免疫化学的成分を吸水性基材上に固定化 した固定相を有する免疫学的検査片、 該検查対象物と結合しうる第二の免疫化学 的成分およびビォチンを第一標識物質に結合してなる標識体、 ならびにァビジン と第二標識物質の結合体を含有してなる免疫学的測定キット。 図面の簡単な説明
図 1は本発明の免疫学的検査方法 (A - 1の態様) の原理を説明する模式図で あ 0。
図 1 A:被検液と第一標識免疫化学的成分液との混合液中での免疫複合体形成; 図 1 B :被検液と第一標識免疫化学的成分液との混合液の検査片への吸収 ·展開 図 1 C :固定相上での検査対象物の捕捉;
図 1 D :第二標識免疫化学的成分液の検査片への吸収 ·展開; 図 1 E :固定相への第二標識免疫化学的成分の結合による検出シグナルの増幅。 図 2は本発明の免疫学的検査方法 (A - 2の態様) の原理を説明する模式図で める。
図 2 A:被検液、 第一標識免疫化学的成分液および第二標識免疫化学的成分液の 混合物中での免疫複合体形成;
図 2 B :被検液、 第一標識免疫化学的成分液および第二標識免疫化学的成分液の 混合物の検査片への吸収 ·展開;
図 2 C :固定相上での検査対象物の捕捉および検出シグナルの増幅。
図 3は本発明の免疫学的検査方法 (A - 3の態様) の原理を説明する模式図で める。
図 3 A:被検試料の検査片への塗布および第一標識免疫化学的成分液の検査片へ の吸収 ·展開;
図 3 B :被検試料中の検査対象物と第一標識免疫化学的成分との複合体形成; 図 3 C :固定相上での検査対象物の捕捉;
図 3 D :第二標識免疫化学的成分液の検査片への吸収 ·展開;
図 3 E :第二標識免疫化学的成分の固定相への結合および検出シグナルの増幅。 図 4は 本発明の免疫学的検査方法 (A - 4の態様) の原理を説明する模式図 でめる。
図 4 A:被検試料の検査片への塗布、 ならびに第一標識免疫化学的成分液および 第二標識免疫化学的成分液の混合液の検査片への吸収 ·展開;
図 4 B :被検試料中の検査対象物、 第一標識免疫化学的成分および第二標識免疫 化学的成分からなる免疫複合体の形成;
図 4 C :固定相上での標識免疫複合体の捕捉および検出シグナルの増幅。
図 5は、 本発明の免疫学的検査キット (B— 1の態様) を用いたヒト H B s抗 原の測定の各工程における抗原抗体反応の様子を示す模式図である。
図 6は、 本発明の免疫学的検査キット (B - 2の態様) を用いたヒト H B s抗 原の測定の各工程における抗原抗体反応の様子を示す模式図である。
図 7は、 本発明の免疫学的検査キット (B - 3の態様) を用いたヒト H B s抗 原の測定の各工程における抗原抗体反応の様子を示す模式図である。
図 8は、 本発明の免疫学的検査キット (B— 4の態様) を用いたヒト H B s抗 原の測定の各工程における抗原抗体反応の様子を示す模式図である。
図 9は、 本発明の免疫学的検査キット (B— 5の態様) を用いたヒト H B s抗 原の測定の各工程における抗原抗体反応の様子を示す模式図である。
図 1 0は、 本発明の免疫学的測定方法 (C - 1の態様) の 1つの態様を示す模 式図である。
図 1 1は、 本発明の免疫学的測定方法 (C - 1の態様) の別の態様を示す模式 図である。
図 1 2は、 本発明の免疫学的測定方法 (C - 2の態様) の 1つの態様を示す模 式図である。
図 1 3は、 本発明の免疫学的測定方法 (C - 2の態様) の別の態様を示す模式 図である。
図 1 4は、 本発明の免疫学的測定方法 (C一 3の態様) の 1つの態様を示す模 式図である。
図 1 5は、 本発明の免疫学的測定方法 (C - 3の態様) の別の態様を示す模式 図である。
尚、 図中の符号は各図毎に付されたものである。 発明を実施するための最良の形態
本発明の免疫学的検査方法には 3種の態様 (態様 A、 態様 B、 態様 C ) がある 。 各態様での用語は、 原則、 各態様で定義される意味に解釈するものとする。
C 1〕 態様 A
態様 Aは、 検査対象物と特異的に結合し得る第一の免疫化学的成分を固定化し た固定相を表面上の任意の領域に設けた吸水性基材を用いて該検査対象物を検出 する免疫学的検査方法であって、
(1) 該検査対象物と特異的に結合し得る第二の免疫化学的成分に標識物質を結合 してなる標識免疫化学的成分 (第一標識免疫化学的成分) を含有する液と、
(2) 該第二の免疫化学的成分と特異的に結合し得る第三の免疫化学的成分に標識 物質を結合してなる標識免疫化学的成分 (第二標識免疫化学的成分) を含有する 液とを用いることを特徴とする免疫学的検査方法である。
この態様の実施に際しては、 次の 4つの態様がある。
( 1 ) A— 1の態様
(1) 検査すべき被検液と第一標識免疫化学的成分含有液とを混合させると、 被 検液中に含まれる検査対象物は第一標識免疫化学的成分と結合し、 第一標識免疫 化学的成分と検査対象物の免疫複合体を形成する (図 1 A) 。 吸水性基材の一端 から上記混合物を吸収させ展開すると、 混合物中で形成された上記免疫複合体は 液の移動とともに吸水性基材中を移動する (図 1 B )。
(2) 移動してきた免疫複合体は、 固定相上で固定相に固定化された第一の免疫 化学的成分とさらに結合し、 新たに第一標識免疫化学的成分一検査対象物一第一 の免疫化学的成分からなる標識免疫複合体を形成して固定相上に捕捉される (図 1 C )
(3) 第二標識免疫化学的成分含有液を上記吸水性基材の一端から吸収させ展開 すると、 第二標識免疫化学的成分は液の移動とともに吸水性基材中を移動する ( 図 1 D) 。 固定相に到達した第二標識免疫化学的成分は、 固定相上に形成された 上記標識免疫複合体中の第一標識免疫化学的成分と結合し、 第二標識免疫化学的 成分 -第一標識免疫化学的成分 -検査対象物 -第一免疫化学的成分からなる二重 標識免疫複合体を形成する (図 1 E )。
(4) このように固定相に捕捉されることによって、 第一および第二標識免疫化 学的成分を構成する標識物質は一力所に集合、 結合して検出シグナルが増幅され 、 それによつて検査対象物の存在をより高感度に検出することが可能となる (図
1 E ) o
( 2 ) A— 2の態様
(1) 検査すべき被検液、 第一標識免疫化学的成分含有液および第二標識免疫化 学的成分含有液とを混合させると、 被検液中に含まれる検査対象物は第一標識免 疫化学的成分と結合し、 さらに第一標識免疫化学的成分に第二標識免疫化学的成 分が結合して二重標識された免疫複合体を形成する (図 2 A) 。 吸水性基材のー 端から上記混合物を吸収させ展開すると、 混合物中で形成された上記免疫複合体 は液の移動とともに吸水性基材中を移動する (図 2 B )。
(2) 移動してきた免疫複合体は、 固定相上で固定相に固定化された第一の免疫 化学的成分とさらに結合し、 新たに第二標識免疫化学的成分一第一標識免疫化学 的成分 -検査対象物 -第一の免疫化学的成分からなる標識免疫複合体を形成して 固定相上に捕捉される (図 2 C )。
(3) このように固定相に捕捉されることによって、 第一および第二標識免疫化 学的成分を構成する標識物質は一力所に集合、 結合して検出シグナルが増幅され 、 それによつて検査対象物の存在をより高感度に検出することが可能となる (図 2 C ) o
( 3 ) A— 3の態様
(1) 検査すべき被検試料を、 固定相の前方に吸収させるか塗布する (図 3 A) o
(2) 吸水性基材の一端 (固定相よりも被検試料を吸収させるか塗布した箇所に より近い方の端) から第一標識免疫化学的成分含有液を吸収させ展開すると (図 3 A) 、 第一標識免疫化学的成分は液の移動とともに吸水性基材中を移動して、 被検試料中の検査対象物と結合して免疫複合体を形成する (図 3 B )。 (3) 移動してきた免疫複合体は、 固定相上で固定相に固定化された第一の免疫 化学的成分とさらに結合し、 新たに第一標識免疫化学的成分一検査対象物一第一 の免疫化学的成分からなる免疫複合体を形成して固定相上に捕捉される (図 3 C
) 0
(4) さらに第二標識免疫化学的成分含有液を吸収させ展開すると (図 3 D) 、 第二標識免疫化学的成分は液の移動とともに吸水性基材中を移動して、 固定相上 に捕捉された免疫複合体の第一標識免疫化学的成分と結合する (図 3 E )。
(5) このように固定相に捕捉されることによって、 第一および第二標識免疫化 学的成分を構成する標識物質は一力所に集合、 結合して検出シグナルが増幅され 、 それによつて検査対象物の存在をより高感度に検出することが可能となる (図 3 E ) o
( 4 ) A - 4の態様
(1) 検査すべき被検試料を、 固定相の前方に吸収させるか塗布する (図 4 A) ο
(2) 吸水性基材の一端 (固定相よりも被検試料を吸収させるか塗布した箇所に より近い方の端) から第一標識免疫化学的成分含有液および第二標識免疫化学的 成分含有液の混合物を吸収させ展開すると (図 4 A) 、 第一および第二標識免疫 化学的成分は複合体を形成しつつ液の移動とともに吸水性基材中を移動して、 被 検試料中の検査対象物と結合して二重標識された免疫複合体を形成する (図 4 B
) o
(3) 移動してきた免疫複合体は、 固定相に固定化された第一の免疫化学的成分 とさらに結合し、 新たに第二標識免疫化学的成分 -第一標識免疫化学的成分ー検 査対象物—第一の免疫化学的成分からなる免疫複合体を形成して固定相上に捕捉 される (図 4 C )。
(4) このように固定相に捕捉されることによって、 第一および第二標識免疫化 学的成分を構成する標識物質は一力所に集合、 結合して検出シグナルが増幅され 、 それによつて検査対象物の存在をより高感度に検出することが可能となる (図
4 C ) o
この態様 Aの方法により検出され得る検査対象物は、 免疫化学的反応 (すなわ ち抗原抗体反応) により第一の免疫化学的成分および第二の免疫化学的成分と結 合してサンドィツチ免疫複合体を形成し得るものであれば特に制限されない。 例 えば、 細菌およびその構成成分、 細菌が産生する毒素、 タンパク質 (例えば、 表 面抗原などの微生物の構成タンパク質など) 、 腫瘍マーカー抗原などの生体試料 中の抗原性ペプチド、 ウィルス抗原および抗体、 マイコプラズマ、 放線菌、 酵母 ならびにかび等が挙げられる。 細菌およびその構成成分としては、 例えば、 大腸 菌〇 1 5 7、 サルモネラ菌、 ブドウ球菌 (例えば、 メチシリン耐性黄色ブドウ球 菌などの薬剤耐性菌を含む) 、 溶連菌、 カンピロバクター菌、 ウエルシュ菌、 腸 炎ビブリオ菌、 ヘリコパクター · ピロリ菌、 クラミジァ · トラコマティス菌およ びその構成成分等が挙げられる。 細菌が産生する毒素としては、 例えば、 ベロト キシン、 ストレブトリシン 0等が挙げられる。 タンパク質としては、 例えば、 ヒ トトランスフェリン、 ヒトアルブミン、 ヒト免疫グロブリン、 マイクログロブリ ンおよび C反応性タンパク質等が挙げられる。 ウィルス抗原および抗体としては 、 B型肝炎ウィルスの H B c、 H B eおよび H B s抗原ならびに抗体、 C型肝炎 ウィルス抗原および抗体、 ヒト免疫不全ウィルス抗原および抗体、 ロタウィルス 抗原および抗体ならびにアデノウイルス抗原および抗体等が挙げられる。
本発明の方法において、 固定相に固定化される第一の免疫化学的成分と、 第一 標識免疫化学的成分として用いる第二の免疫化学的成分は、 いずれも抗原抗体反 応により検査対象物と特異的に結合し得る物質であれば特に制限はない。 検査対 象物が抗原 (例えば、 蛋白質、 ペプチド、 ハプテンなど) であれば、 第一および 第二の免疫化学的成分は、 該抗原と特異的に結合し得る抗体である。 該抗体はモ ノクローナル抗体であってもポリクロ一ナル抗体であってもよい。 また本発明に おける抗体とは、 検査対象物との特異的親和性を保持する抗体の断片物、 例えば
H鎖、 L鎖、 Fab、 F (ab' ) 2 , VH VL 等も含むものとする。 一方、 検査対 象物が抗体である場合には、 第一および第二の免疫化学的成分は、 該抗体と特異 的に結合し得る抗原もしくは該抗体を抗原として特異的に結合し得る二次抗体で ある。 第一の免疫化学的成分および第二の免疫化学的成分は、 検査対象物に応じ てサンドィツチ法などで用いられる自体公知のものを適宜選択すればよい。 また 、 該免疫化学的成分が抗体であれば、 単離された検査対象物を感作抗原として、 公知の抗体作製技術を用いて調製することもできる。 第一、 第二および第三の免 疫化学的成分がいずれも抗体の場合、 第一の抗体および第二の抗体は、 用いる抗 体の種類や検査対象物によっても異なるが、 同一の抗原決定基を認識する二種の 抗体を用いることも、 また、 異なる抗原決定基を認識する二種の抗体を用いるこ ともできる。 より好ましくは、 異なる抗原決定基を認識するものが使用される。 第二標識免疫化学的成分として用いる第三の免疫化学的成分は、 第一標識免疫 化学的成分中の第二の免疫化学的成分に対して特異的に結合する免疫化学的成分 であり、 且つ固定化された第一の免疫化学的成分とは結合しなレ、免疫化学的成分 である。 第三の免疫化学的成分は、 間接免疫測定法で二次抗体として用いられる 従来公知のものを適宜選択することができる。 また、 第二の免疫化学的成分を感 作抗原として、 公知の抗体作製技術を用いて調製することもできる。 第一、 第二 および第三の免疫化学的成分がいずれも抗体であり、 第三の抗体に抗 I g G抗体 を用いる場合には、 第一の抗体と第二の抗体の由来動物種は互いに異なるもので あることが好ましい。
本発明において用いられる吸水性基材は、 検査対象物を含有する被検試料、 例 えば、 食品から抽出した溶液やその培養上清、 便懸濁 (溶解) 液、 血漿、 血清、 、 血液、 尿、 唾液などを液体試料、 あるいはこれらを適当な緩衝液によって希釈 してなる希釈液、 ならびに第一標識免疫化学的成分、 第二標識免疫化学的成分を それぞれ含有する液を吸収できるものであれば特に限定されない。 本発明におい ては、 被検試料中の検査対象物が標識免疫化学的成分や固定相に固定化された第 一の免疫化学的成分と十分な反応を行うための時間を確保できるような吸水性基 材が好ましく用いられる。
吸水性基材が吸水性に劣る場合には、 後述するように被検試料が固定相に到達 するのに長時間を要し、 その結果、 迅速な測定を行うことができない。 一方、 吸 水性基材の吸水性があまりに高すぎる場合には、 被検試料中の検査対象物が標識 免疫化学的成分や固定相の第一免疫化学的成分と十分な反応を行うために必要な 時間が不足するので、 正確な測定を行うことが困難である。
したがって、 本発明における吸水性基材の好ましい吸水性の程度は、 5 mm幅 の短冊状に裁断した吸水性基材の片端部を水に浸漬し、 1分間経過後の吸水距離 が 0 . 5〜5 c m程度である。
本発明の吸水性基材の好ましい具体例としては、 不織布、 濾紙、 ガラス繊維布 、 ガラスフィルター、 ニトロセルロースフィルタ一、 多孔質材料などが挙げられ る。 これらの基材は適度な吸水速度を有するとともに、 標識物質が着色粒子の場 合、 着色粒子が結合して発色した際の目視確認性に優れるなどの利点を有するも のである。
また、 これらの基材の吸水性を調整するために、 基材の表面に親水性重合体や 界面活性剤を被覆し、 あるいは含浸させることもできる。 さらに、 本発明におい ては吸水性基材として同一材料からなる基材を用いてもよいし、 あるいは異種の 材料からなるものを任意の接着手段によって接合して得られる連続した基材を用 いることもできる。
本発明において、 吸水性基材の形状は、 被検試料を展開できる形状であれば特 に限定されるものではなく、 例えば、 矩形のシート状 (片状) ゃロッド状などが 好ましい。
本発明において、 固定相とは、 検査対象物と特異的に結合し得る第一の免疫化 学的成分が吸水性基材上に固定化された領域を意味する。 第一の免疫化学的成分 を吸水性基材上に固定化する方法 (固定化相の作製方法) も特に限定されるもの ではないが、 従来から知られている物理吸着法や共有結合法によるのが好適であ り、 特に、 該免疫化学的成分が基材から脱離しにくいという点で共有結合法によ るのが好ましい。 吸水性基材が上記共有結合法のための官能基を有しないときは 、 例えば適当な官能基を有する重合体を用いて基材を作製し、 吸水性基材の吸水 性を阻害しない程度に付着させることができる。 また、 第一の免疫化学的成分お よび親水性重合体を含む溶液を吸水性基材に塗布した後、 上記親水性重合体を凝 固させる凝固溶剤に浸漬することで固定相を作製することもできる。 上記親水性 重合体としては、 ヒドロキシプロピルメチルセルロース、 ポリビニルアルコール 、 ヒドロキシェチルセルロースなどが用いられる。 また、 上記凝固溶剤としては 、 アセトン、 エタノール、 メタノール、 エーテルなどを用いることができる。 本発明において、 上記固定相と、 被検試料液および第一標識免疫化学的成分含 有液の混合物、 ならびに第二標識免疫化学的成分含有液の吸収が開始される部位
(以下、 吸液部という) との間の距離は特に限定されないが、 好ましくは 1〜6 c m、 より好ましくは 3〜4 c m程度である。 距離があまりに遠すぎると、 固定 相まで被検試料が到達しなかったり、 検出シグナル感度が強すぎたり、 あるいは 測定に時間がかかる等の問題を生じるおそれがある。 一方、 距離が近すぎると固 定相の発色が均一ではなくまばらになったり、 検出シグナル感度が低すぎるとい う問題を生じるおそれがある。
吸液部としては、 被検試料や標識免疫化学的成分を含有する液の吸水性基材へ の移動を妨げるものでなければ特に限定されず、 基材と兼用したものであっても 、 新たに不織布や織布等を該吸水性基材に接着させたものであってもよい。 本発 明において、 検査対象物に特異的に結合し得る第一の免疫化学的成分が固定化さ れた固定相、 ならびに吸液部を有する吸水性基材を、 以下、 本発明の免疫学的検 查片または単に検査片という場合もある。
本発明の方法における第一標識免疫化学的成分は、 検査対象物に特異的に結合 し得る免疫化学的成分 (第二の免疫化学的成分) に標識物質を結合させたもので あり、 また、 第二標識免疫化学的成分は、 該第二の免疫化学的成分と特異的に結 合し得る免疫化学的成分 (第三の免疫化学的成分) に標識物質を結合させたもの である。 ここで用いられる標識物質は、 免疫化学的測定法において常套的に使用 されるいかなる標識物質であってもよく、 例えば着色粒子、 酵素 (アルカリホス ファターゼ、 ペルォキシダーゼ等) 、 蛍光物質 (F I T C、 ローダミン等) など が挙げられるが、 効率のよい検出シグナルの増幅を達成するためには、 第一およ び第二標識免疫化学的成分に使用される標識物質は同一のものであることが好ま しい。 本発明の方法では、 迅速な検出を行う意味で、 標識物質として着色粒子が 好ましく使用される。 着色粒子は肉眼で検出可能なものであれば特に制限はなく 、 例えば、 金、 銀、 銅などの金属からなるコロイド粒子、 スダンブル一ゃスダン レッド IV、 スダン I I I 、 オイルオレンジ、 キニザリングリーン等に代表される顔 料や染料などでラテックスを着色してなる着色ラテックスなどを用いることがで きる。 目視確認性の点からは、 金コロイドや青、 赤、 綠もしくはオレンジ色に着 色した着色ラテックスの使用が好ましく、 また、 分散安定性や検査対象物の検出 感度の調節が容易であるなどの点を考慮すると、 青色、 赤色等に着色された水分 散型高分子重合体からなる着色ラテックスを使用することがさらに望ましい。 着色粒子の粒径は、 検出の際の発色がよく且つ吸水性基材の吸水性を低下させ ない程度の該基材中での移動性を有するものであれば特に制限はないが、 保存安 定性や調製が容易であるなどの点から、 好ましくは 0 . 0 l〜5 z m、 より好ま しくは 0 . 0 1〜3〃m、 さらに好ましくは 0 . 0 5〜3 m、 特に好ましくは 0 . 0 5〜0 . 5 mの範囲が例示される。 粒怪があまりに小さすぎると、 1粒 子あたりの着色の程度が少ないので、 固定相に結合しても発色の程度が悪く目視 確認性に劣るようになる。 また、 粒径が大きすぎると、 着色粒子がわずかに凝集 しただけで吸水性基材に目詰まりを起こして吸水性を低下させたり、 非特異的発 色を生じたりすることがある。 免疫化学的成分を、 このような着色粒子で標識する方法としては、 従来公知の 方法、 例えば共有結合法、 物理的吸着法、 イオン結合法等を使用することができ るが、 免疫化学的成分からの着色粒子の脱離がなく安定であるという点から共有 結合法がより好ましく用いられる。
本発明の方法において、 被検試料中の複数の検査対象物を検出するために、 対 応する複数の免疫化学的成分をそれぞれ別の着色粒子で標識することができるが 、 この際に用いられる着色粒子は同一色であっても異なる色であってもよい。 同 一色の着色粒子を用レ、る場合、 各検査対象物にそれぞれ特異的に結合し得る免疫 化学的成分を固定化した固定相を識別可能な程度に離して設置することが望まし い。
標識物質が酵素や蛍光物質の場合には、 固定相の標識物質の検出は、 E I Aや 蛍光抗体法 (F I A) で従来使用されている検出手段が適宜選択される。
第一標識免疫化学的成分含有液および第二標識免疫化学的成分含有液は、 各標 識免疫化学的成分を適当な分散媒 (溶媒) 中に分散 (溶解) させることにより調 製される。 標識免疫化学的成分を分散させる分散媒は、 検査対象物と第一標識免 疫化学的成分および第一標識免疫化学的成分と第二標識免疫化学的成分の抗原抗 体反応を阻害しないものであれば特に制限はないが、 好ましくは該抗原抗体反応 に適した p Hおよび塩濃度を有する緩衝液、 例えばリン酸緩衝液、 酢酸緩衝液、 ホウ酸緩衝液、 トリス塩酸緩衝液等を適宜選択して使用することができる。 シグ ナル検出時の各標識免疫化学的成分濃度は 0 . 0 0 5〜 5 %、 好ましくは 0 . 0 1〜0 . 5 %の範囲である。 濃度があまりに低すぎると、 固定相に結合する粒子 数が少なく検出感度が悪くなる。 また、 濃度が高すぎると、 不経済なばかりでな く過剰の標識物質が固定相以外に残留し、 固定相のシグナルを不明瞭にする等の 問題を生じる。 なお、 以下、 標識免疫化学的成分含有液を単に標識免疫化学的成 分液という。
態様 Aで用いられる本発明の免疫学的検査用キッ トは、 本発明の免疫学的検査 方法に好ましく用いることができる。 該キットは、 少なくとも下記の内容を含む ものである。
(a) 検査対象物と特異的に結合し得る第一の免疫化学的成分を固定化した固定 相を表面上のある領域に設けた吸水性基材
(b) 該検査対象物と特異的に結合し得る第二の免疫化学的成分に標識物質を結 合してなる標識免疫化学的成分 (第一標識免疫化学的成分)
(c) 該第二の免疫化学的成分と特異的に結合し得る第三の免疫化学的成分に標 識物質を結合してなる標識免疫化学的成分 (第二標識免疫化学的成分)
該吸水性基材、 第一および第二標識免疫化学的成分の好ましい態様は、 上記し たような本発明の免疫学的検査方法において好ましく用いられるものである。 本発明のキットは、 上記の内容物以外に、 本発明の免疫学的検査方法において 好ましく使用され得る付加的な内容物を含んでいてもよい。 例えば、 第一および 第二標識免疫化学的成分を分散させるのに好ましく使用される上記の緩衝液など が挙げられる。
本発明のキットを用いた免疫クロマトグラフ法は、 A— 1の態様では、 まず検 査対象物と第一標識免疫化学的成分を予め固定相に結合させた後第二標識免疫化 学的成分を結合させるので、 二種の標識免疫化学的成分による立体障害のために 検査対象物と固定相に固定化された第一の免疫化学的成分との結合効率、 すなわ ち検査対象物の固定相での捕捉率が低下したり、 あるいは吸水性基材上で二種の 標識免疫化学的成分を含む免疫複合体が目詰まりを起こすといった、 従来法にお いて起こり得る検出上の問題を回避することができる。
本発明のキットを用いた免疫クロマトグラフ法は、 A— 2の態様では、 被検液 と、 第一標識免疫化学的成分および第二標識免疫化学的成分を予め混合した後検 査片に展開するので、 (検査対象物 -第一標識免疫化学的成分 -第二標識免疫化 学的成分) の二重標識された免疫複合体の形成に十分な時間が確保される。 した がって、 二重標識されないまま検査対象物が固定相に捕捉されるために検出シグ ナルの増幅が不十分であるといった従来法において起こり得る検出上の問題を回 避することができる。
本発明のキッ トを用いた免疫クロマトグラフ法は、 A— 3の態様では、 被検試 料を予め検査片に吸収させるか塗布しておき、 そこにまず第一標識免疫化学的成 分液を展開して、 形成される検査対象物と第一標識免疫化学的成分との免疫複合 体を、 固定相に固定化された該検査対象物に特異的な免疫化学的成分で捕捉した 後、 さらに第二標識免疫化学的成分液を検査片に展開して、 固定相上に捕捉され た免疫複合体に第二標識免疫化学的成分を結合させるので、 二種の標識免疫化学 的成分による立体障害や免疫複合体の目詰まりといつた従来法において起こり得 る検出上の問題点を回避することができ、 その結果、 より高感度に検査対象物を 検出することができる。 また、 本法によれば、 被検試料の前処理を必要としない ことから、 従来よりも検出までに要する時間を短縮することができる。
本発明のキットを用いた免疫クロマトグラフ法は、 A— 4の態様では、 第一標 識免疫化学的成分および第二標識免疫化学的成分を予め混合した後検査片に展開 するので、 (検査対象物 -第一標識免疫化学的成分 -第二標識免疫化学的成分) の二重標識された免疫複合体の形成に十分な時間が確保される。 したがって、 二 重標識されないまま検査対象物が固定相に捕捉されるために検出シグナルの増幅 が不十分であるといった従来法において起こり得る検出上の問題を回避すること ができ、 その結果、 より高感度に検査対象物を検出することができる。 また、 本 法によれば、 被検試料の前処理を必要としないことから、 従来よりも検出までに 要する時間を短縮することができ、 より迅速な検査対象物の検出が可能となる。
〔2〕 態様 B
態様 Bは、 吸水性基材の表面上の任意の領域に設けた固定相に固定化された、 検査対象物と特異的に結合し得る第一の免疫化学的成分と、 検査対象物と特異的 に結合し得る第二の免疫化学的成分および検査対象物とは結合しない第三の免疫 化学的成分に標識物質が結合してなる標識体 (第一標識体) とで、 被検試料中の 検査対象物をサンドィツチした免疫複合体を該固定相上に形成させて、 固定相上 の標識物質のシグナルを測定する免疫学的検査方法であって、 該第三の免疫化学 的成分と介在物質を介して特異的に結合し得る第四の免疫化学的成分に標識物質 が結合してなる標識体 (第二標識体) 力 該介在物質を介して上記サンドイッチ 型免疫複合体中の第三の免疫化学的成分に結合した免疫複合体を形成させて標識 物質のシグナルを増幅することを特徴とする方法である。
この態様の実施に際しては、 次の 5つの態様がある。
( 1 ) B— 1の態様
以下の工程を含むことを特徴とする免疫学的検査方法:
(1) 検査対象物と特異的に結合し得る第一の免疫化学的成分を固定化した固定 相と、 検査対象物と特異的に結合し得る第二の免疫化学的成分および検査対象物 とは結合しない第三の免疫化学的成分に標識物質が結合してなる標識体 (第一標 識体) を水との接触によって脱離し得る形態で保持する標識相とを、 表面上の任 意の領域に設けた吸水性基材の、 固定相よりも標識相により近い方の一端から、 被検試料を含有する液、 第三の免疫化学的成分と介在物質を介して特異的に結合 し得る第四の免疫化学的成分に標識物質が結合してなる標識体 (第二標識体) を 含有する液および該介在物質を含有する液の混合物を展開し、
(2) 該吸水性基材上で形成される検査対象物、 第一標識体、 介在物質および第 二標識体からなる免疫複合体を固定相に固定化された第一の免疫化学的成分に結 合させて捕捉した後、
(3) 該固定相上の標識物質のシグナルを測定することにより該検査対象物を検 出"^る。
あるいは、 次のような態様が挙げられる。
以下の工程を含むことを特徴とする免疫学的検査方法:
(1) 検査対象物と特異的に結合し得る第一の免疫化学的成分を固定化した固定 相と、 検査対象物と特異的に結合し得る第二の免疫化学的成分および検査対象物 とは結合しない第三の免疫化学的成分に標識物質が結合してなる標識体 (第一標 識体) を水との接触によって脱離し得る形態で保持する標識相とを、 表面上の任 意の領域に設けた吸水性基材の、 固定相と該固定相よりも標識相により近い方の 一端との間の任意の領域に被検試料を供給し、
(2) 該吸水性基材の該一端から、 第三の免疫化学的成分と介在物質を介して特 異的に結合し得る第四の免疫化学的成分に標識物質が結合してなる標識体 (第二 標識体) を含有する液と、 該介在物質を含有する液との混合物を展開し、
(3) 該吸水性基材上で形成される検査対象物、 第一標識体、 介在物質および第 二標識体からなる免疫複合体を固定相に固定化された第一の免疫化学的成分に結 合させて捕捉した後、
(4) 該固定相上の標識物質のシグナルを測定することにより該検査対象物を検 出する。
この B— 1の態様では、 各工程において以下の反応が行われる。 すなわち、 吸 水性基材の一端 (すなわち吸液部) から、 被検試料を含有する液、 第二標識体を 含有する液、 ならびに第三および第四の免疫化学的成分の結合を仲介する介在物 質を含有する液の混合物 (該混合物中で第二標識体中の第四の免疫化学的成分と 介在物質が特異的に結合する) を滴下して展開すると、 各成分は液の移動ととも に吸水性基材上を移動する。 液が標識相に到達すると、 そこに保持されていた第 一標識体は水との接触によって標識相から脱離する。 さらに、 第一標識体中の第 二の免疫化学的成分が被検試料中の検査対象物と、 また第三の免疫化学的成分が 介在物質を介して第二標識体中の第四の免疫化学的成分とそれぞれ結合して、 さ らに吸水性基材上を移動する。 そして、 形成された免疫複合体は、 固定相に固定 化された第一の免疫化学的成分と結合して固定相上に捕捉される。 このようにし て、 第一および第二標識体を構成する標識物質が固定相上に集合、 結合して検出 シグナルが増幅され、 それによつてより高感度に検査対象物の存在を検出するこ とが可能となる。
本発明の方法の別の態様としては、 上記の方法において、 被検試料を吸液部か ら滴下する代わりに、 吸液部と固定相との間に滴下または塗布した後、 第二標識 体を含有する液と介在物質を含有する液との混合物を吸液部に滴下して展開する 方法が挙げられる。 この場合、 該混合液が被検試料を滴下または塗布した領域に 達すると、 被検試料中の検査対象物は、 第二標識体と介在物質との複合体ととも に吸水性基材上を移動する。 液が標識相に到達すると、 そこに保持されていた第 —標識体は水との接触によって標識相から脱離する。 さらに、 第一標識体中の第 二の免疫化学的成分が被検試料中の検査対象物と、 また第三の免疫化学的成分が 介在物質を介して第二標識体中の第四の免疫化学的成分とそれぞれ結合して、 さ らに吸水性基材上を移動する。 そして、 形成された免疫複合体は、 固定相に固定 化された第一の免疫化学的成分と結合して固定相上に捕捉される。
( 2 ) B - 2の態様
以下の工程を含むことを特徴とする免疫学的検査方法:
(1) 検査対象物と特異的に結合し得る第一の免疫化学的成分を固定化した固定 相を表面上の任意の領域に設けた吸水性基材の一端から、 検査対象物と特異的に 結合し得る第二の免疫化学的成分および検査対象物とは結合しない第三の免疫化 学的成分に標識物質が結合してなる標識体 (第一標識体) を含有する液と被検試 料を含有する液との混合物を展開し、 該混合物中で形成される検査対象物と第一 標識体との免疫複合体を、 固定相に固定化された該第一の免疫化学的成分に結合 させて捕捉した後、
(2) 第三および第四の免疫化学的成分の結合を仲介する介在物質を含有する液 を該吸水性基材に展開し、 固定相上に捕捉された免疫複合体中の第三の免疫化学 的成分に結合させ、
(3) さらに第三の免疫化学的成分と介在物質を介して特異的に結合し得る第四 の免疫化学的成分に標識物質が結合してなる標識体 (第二標識体) を含有する液 を該吸水性基材に展開し、 固定相上に捕捉された免疫複合体中の該介在物質に結 合させた後、
(4) 該固定相上の標識物質のシグナルを測定することにより該検査対象物を検 出^ "る。
あるいは、 次のような態様が挙げられる。
以下の工程を含むことを特徴とする免疫学的検査方法:
(1) 検査対象物と特異的に結合し得る第一の免疫化学的成分を固定化した固定 相を表面上の任意の領域に設けた吸水性基材の一端と該固定相との間の任意の領 域に被検試料を供給し、
(2) 該吸水性基材の該一端から検查対象物と特異的に結合し得る第二の免疫化 学的成分および検査対象物とは結合しない第三の免疫化学的成分に標識物質が結 合してなる標識体 (第一標識体) を含有する液を展開し、 該吸水性基材上で形成 される検査対象物と第一標識体との免疫複合体を、 固定相に固定化された該第一 の免疫化学的成分に結合させて捕捉した後、
(3) 第三および第四の免疫化学的成分の結合を仲介する介在物質を含有する液 を該吸水性基材に展開し、 固定相上に捕捉された免疫複合体中の第三の免疫化学 的成分に結合させ、
(4) さらに第三の免疫化学的成分と介在物質を介して特異的に結合し得る第四 の免疫化学的成分に標識物質が結合してなる標識体 (第二標識体) を含有する液 を該吸水性基材に展開し、 固定相上に捕捉された免疫複合体中の該介在物質に結 合させた後、
(5) 該固定相上の標識物質のシグナルを測定することにより該検査対象物を検 出"^る。
この B— 2の態様では、 各工程において以下の反応が行われる。 すなわち、 吸 水性基材の一端 (すなわち吸液部) から、 被検試料を含有する液と第一標識体を 含有する液との混合物 (該混合物中で検査対象物と第一標識体中の第二の免疫化 学的成分とが複合体を形成する) を滴下して展開すると、 該免疫複合体は液の移 動とともに吸水性基材上を移動し、 固定相に固定化された第一の免疫化学的成分 と結合して固定相上に捕捉される。 次いで、 第三および第四の免疫化学的成分の 結合を仲介する介在物質を含有する液を該吸水性基材に滴下して展開することに より、 該介在物質は固定相上に捕捉された免疫複合体中の第三の免疫化学的成分 に結合する。 さらに、 第二標識体を含有する液を該吸水性基材に滴下して展開す ると、 固定相上に捕捉された免疫複合体中の該介在物質に第二標識体中の第四の 免疫化学的成分が結合して、 (固定化された第一の免疫化学的成分 -検査対象物 —第一標識体—介在物質一第二標識体) の複合体が形成される。 このようにして 、 第一および第二標識体を構成する標識物質が固定相上に集合、 結合して検出シ グナルが増幅され、 それによつてより高感度に検査対象物の存在を検出すること が可能となる。
また、 別の好ましい一態様として、 上記の方法において、 被検試料を吸液部か ら滴下する代わりに、 吸液部と固定相との間に滴下または塗布した後、 第一標識 体を含有する液を吸液部に滴下して展開する方法が挙げられる。 この場合、 第一 標識体を含有する液が被検試料を滴下または塗布した領域に達すると、 被検試料 中の検査対象物は、 第一標識体中の第二の免疫化学的成分と結合して免疫複合体 を形成し、 液の移動とともに吸水性基材上を移動して固定相上で固定化された第 一の免疫化学的成分に結合して捕捉される。
( 3 ) B - 3の態様
以下の工程を含むことを特徴とする免疫学的検査方法:
(1) 検査対象物と特異的に結合し得る第一の免疫化学的成分を固定化した固定 相を表面上の任意の領域に設けた吸水性基材の一端から、 被検試料を含有する液 、 検査対象物と特異的に結合し得る第二の免疫化学的成分および検査対象物とは 結合しない第三の免疫化学的成分に標識物質が結合してなる標識体 (第一標識体 ) を含有する液、 該第三の免疫化学的成分と介在物質を介して特異的に結合し得 る第四の免疫化学的成分に標識物質が結合してなる標識体 (第二標識体) を含有 する液および該介在物質を含有する液の混合物を展開し、
(2) 該混合物中で形成される検査対象物、 第一標識体、 該介在物質および第二 標識体からなる免疫複合体を、 固定相に固定化された該第一の免疫化学的成分に 結合させて捕捉した後、
(3) 該固定相上の標識物質のシグナルを測定することにより該検査対象物を検 出する。
あるいは、 次のような態様が挙げられる。
以下の工程を含むことを特徴とする免疫学的検査方法:
(1) 検査対象物と特異的に結合し得る第一の免疫化学的成分を固定化した固定 相を表面上の任意の領域に設けた吸水性基材の一端と固定相との間の任意の領域 に被検試料を供給し、
(2) 該吸水性基材の該一端から、 検査対象物と特異的に結合し得る第二の免疫 化学的成分および検査対象物とは結合しなレ、第三の免疫化学的成分に標識物質が 結合してなる標識体 (第一標識体) を含有する液、 該第三の免疫化学的成分と介 在物質を介して特異的に結合し得る第四の免疫化学的成分に標識物質が結合して なる標識体 (第二標識体) を含有する液および該介在物質を含有する液の混合物 を展開し、
(3) 該吸水性基材上で形成される検査対象物、 第一標識体、 該介在物質および 第二標識体からなる免疫複合体を、 固定相に固定化された該第一の免疫化学的成 分に結合させて捕捉した後、
(4) 該固定相上の標識物質のシグナルを測定することにより該検査対象物を検 出^る。
この B— 3の態様では、 各工程において以下の反応が行われる。 すなわち、 吸 水性基材の一端 (すなわち吸液部) から、 被検試料を含有する液、 第一標識体を 含有する液、 第二標識体を含有する液ならびに第三および第四の免疫化学的成分 の結合を仲介する介在物質を含有する液の混合物 (該混合物中で検査対象物は第 一標識体中の第二の免疫化学的成分と、 第一標識体中の第三の免疫化学的成分は 該介在物質を介して第二標識体中の第四の免疫化学的成分と結合して、 検査対象 物 -第一標識体 -介在物質 -第二標識体の免疫複合体を形成する) を滴下して展 開すると、 該免疫複合体は液の移動とともに吸水性基材上を移動し、 固定相に固 定化された第一の免疫化学的成分と結合して固定相上に捕捉される。 このように して、 第一および第二標識体を構成する標識物質が固定相上に集合、 結合して検 出シグナルが増幅され、 それによつてより高感度に検査対象物の存在を検出する ことが可能となる。
また、 別の一態様として、 上記の方法において、 被検試料を吸液部から滴下す る代わりに、 吸液部と固定相との間に滴下または塗布した後、 第一標識体を含有 する液、 第二標識体を含有する液および第三および第四の免疫化学的成分の結合 を仲介する介在物質を含有する液の混合物を吸液部に滴下して展開する方法が挙 げられる。 この場合、 該混合液が被検試料を滴下または塗布した領域に達すると 、 被検試料中の検査対象物は、 混合液中に形成された (第一標識体 -介在物質 - 第二標識体) 複合体中の第二の免疫化学的成分と結合し、 液の移動とともに吸水 性基材上を移動して固定相上で固定化された第一の免疫化学的成分に結合して捕 捉される。
( 4 ) B - 4の態様
吸水性基材の一端と固定相との間に、 第二標識体が水との接触によつて脱離し 得る形態で保持される標識相が設けられ、 且つ以下の工程を含むことを特徴とす る方法:
(1) 該吸水性基材の該一端から、 被検試料を含有する液、 第一標識体を含有す る液および該介在物質を含有する液の混合物を展開し、
(2) 該吸水性基材上で形成される検査対象物、 第一標識体、 介在物質および第 二標識体からなる免疫複合体を固定相に固定化された第一の免疫化学的成分に結 合させて捕捉した後、
(3) 該固定相上の標識物質のシグナルを測定することにより該検査対象物を検 出する。
あるいは、 次のような態様が挙げられる。
吸水性基材の一端と固定相との間に、 第二標識体が水との接触によつて脱離し 得る形態で保持される標識相が設けられ、 且つ以下の工程を含むことを特徴とす る方法:
(1) 該吸水性基材の該一端と固定相との間の任意の領域に被検試料を供給し、
(2) 該吸水性基材の該一端から、 第一標識体を含有する液と該介在物質を含有 する液との混合物を展開し、
(3) 該吸水性基材上で形成される検査対象物、 第一標識体、 介在物質および第 二標識体からなる免疫複合体を固定相に固定化された第一の免疫化学的成分に結 合させて捕捉した後、
(4) 該固定相上の標識物質のシグナルを測定することにより該検査対象物を検 出 る。
この B— 4の態様では、 各工程において以下の反応が行われる。 すなわち、 吸 水性基材の一端 (すなわち吸液部) から、 被検試料を含有する液、 第一標識体を 含有する液、 ならびに第三および第四の免疫化学的成分の結合を仲介する介在物 質を含有する液の混合物 (該混合物中で被検試料中の検査対象物が第一標識体中 の第二の免疫化学的成分と、 また第一標識体中の第三の免疫化学的成分が介在物 質と特異的に結合して複合体を形成する) を滴下して展開すると、 該複合体は液 の移動とともに吸水性基材上を移動する。 液が標識相に到達すると、 そこに保持 されていた第二標識体は水との接触によって標識相から脱離する。 さらに、 第二 標識体中の第四の免疫化学的成分が介在物質を介して第一標識体中の第三の免疫 化学的成分と結合して、 さらに吸水性基材上を移動する。 そして、 形成された免 疫複合体は、 固定相に固定化された第一の免疫化学的成分と結合して固定相上に 捕捉される。 このようにして、 第一および第二標識体を構成する標識物質が固定 相上に集合、 結合して検出シグナルが増幅され、 それによつてより高感度に検査 対象物の存在を検出することが可能となる。
また、 別の態様としては、 上記の方法において、 被検試料を吸液部から滴下す る代わりに、 吸液部と固定相との間に滴下または塗布した後、 第一標識体を含有 する液と介在物質を含有する液との混合物を吸液部に滴下して展開する方法が挙 げられる。 この場合、 該混合液が被検試料を滴下または塗布した領域に達すると 、 被検試料中の検査対象物は、 第一標識体と介在物質との複合体と結合して吸水 性基材上を移動する。 液が標識相に到達すると、 そこに保持されていた第二標識 体は水との接触によって標識相から脱離する。 さらに、 第二標識体中の第四の免 疫化学的成分が介在物質を介して第一標識体中の第三の免疫化学的成分と結合し て、 さらに吸水性基材上を移動する。 そして、 形成された免疫複合体は、 固定相 に固定化された第一の免疫化学的成分と結合して固定相上に捕捉される。
( 5 ) B - 5の態様
以下の工程を含むことを特徴とする免疫学的検査方法:
(1) 検査対象物と特異的に結合し得る第一の免疫化学的成分を固定化した固定 相と、 検査対象物と特異的に結合し得る第二の免疫化学的成分および検査対象物 とは結合しない第三の免疫化学的成分に標識物質が結合してなる標識体 (第一標 識体) ならびに該第三の免疫化学的成分と介在物質を介して特異的に結合し得る 第四の免疫化学的成分に標識物質が結合してなる標識体 (第二標識体) が水との 接触によって脱離し得る形態で保持される標識相とを、 表面上の任意の領域に設 けた吸水性基材の、 固定相よりも標識相により近い方の一端から、 被検試料を含 有する液と該介在物質を含有する液との混合物を展開し、
(2) 該吸水性基材上で形成される検査対象物、 第一標識体、 介在物質および第 二標識体からなる免疫複合体を固定相に固定化された第一の免疫化学的成分に結 合させて捕捉した後、
(3) 該固定相上の標識物質のシグナルを測定することにより該検査対象物を検 出する。
あるいは、 次のような態様が挙げられる。
以下の工程を含むことを特徴とする免疫学的検査方法:
(1) 検査対象物と特異的に結合し得る第一の免疫化学的成分を固定化した固定 相と、 検査対象物と特異的に結合し得る第二の免疫化学的成分および検査対象物 とは結合しない第三の免疫化学的成分に標識物質が結合してなる標識体 (第一標 識体) ならびに該第三の免疫化学的成分と介在物質を介して特異的に結合し得る 第四の免疫化学的成分に標識物質が結合してなる標識体 (第二標識体) が水との 接触によつて脱離し得る形態で保持される標識相とを、 表面上の任意の領域に設 けた吸水性基材の、 固定相と該固定相よりも標識相により近レ、方の一端との間の 任意の領域に被検試料を供給し、
(2) 該吸水性基材の該一端から、 該介在物質を含有する液を展開し、
(3) 該吸水性基材上で形成される検査対象物、 第一標識体、 介在物質および第 二標識体からなる免疫複合体を固定相に固定化された第一の免疫化学的成分に結 合させて捕捉した後、
(4) 該固定相上の標識物質のシグナルを測定することにより該検査対象物を検 出"^る。
この B— 5の態様では、 各工程において以下の反応が行われる。 すなわち、 吸 水性基材の一端 (すなわち吸液部) から、 被検試料を含有する液と第三および第 四の免疫化学的成分の結合を仲介する介在物質を含有する液との混合物を滴下し て展開すると、 各成分は液の移動とともに吸水性基材上を移動する。 液が標識相 に到達すると、 そこに保持されていた第一および第二標識体は水との接触によつ て標識相から脱離する。 さらに、 第一標識体中の第二の免疫化学的成分が被検試 料中の検査対象物と、 また第三の免疫化学的成分が介在物質を介して第二標識体 中の第四の免疫化学的成分とそれぞれ結合して複合体を形成し、 さらに吸水性基 材上を移動する。 そして、 形成された免疫複合体は、 固定相に固定化された第一 の免疫化学的成分と結合して固定相上に捕捉される。 このようにして、 第一およ び第二標識体を構成する標識物質が固定相上に集合、 結合して検出シグナルが増 幅され、 それによつてより高感度に検査対象物の存在を検出することが可能とな る。
また、 別の態様としては、 上記の方法において、 被検試料を吸液部から滴下す る代わりに、 吸液部と固定相との間に滴下または塗布した後、 介在物質を含有す る液を吸液部に滴下して展開する方法が挙げられる。 この場合、 該混合液が被検 試料を滴下または塗布した領域に達すると、 被検試料中の検査対象物は介在物質 とともに吸水性基材上を移動する。 液が標識相に到達すると、 そこに保持されて レ、た第一および第二標識体は水との接触によつて標識相から脱離する。 さらに、 第一標識体中の第二の免疫化学的成分が被検試料中の検査対象物と、 また第三の 免疫化学的成分が介在物質を介して第二標識体中の第四の免疫化学的成分とそれ ぞれ結合して複合体を形成し、 さらに吸水性基材上を移動する。 そして、 形成さ れた免疫複合体は、 固定相に固定化された第一の免疫化学的成分と結合して固定 相上に捕捉される。
これらの B— 1〜B— 5のいずれの態様においても、 吸水性基材の該一端と該 固定相との間の任意の領域 (但し、 被検試料を該吸水性基材の該一端と固定相と の間の任意の領域に供給する場合は、 その領域を含めてそれより固定相側の領域 ) に、 検査対象物と被検試料中の他の物質とを分離し得る分離相がさらに設けら れていてもよい。
また、 B— 1、 B— 4および B— 5の態様においては、 吸水性基材が、 固定相 と該固定相よりも標識相により近い方の一端との間の任意の領域 (但し、 被検試 料を該吸水性基材の該一端と固定相との間の任意の領域に供給する場合は、 その 領域を含めてそれより固定相側の領域) に、 検査対象物と被検試料中の他の物質 とを分離し得る分離相をさらに設けたものであってもよい。 この場合、 例えば、 分離相は、 該吸水性基材の該一端と標識相との間の任意の領域に存在する。 この態様 Bの方法により検出され得る検査対象物は、 態様 Aの場合と同様であ る。 第一の免疫化学的成分、 第二の免疫化学的成分は、 態様 Aの場合と同様であ る。 第一および第二の免疫化学的成分がいずれも抗体の場合、 第一の抗体および 第二の抗体は、 同一のものであっても異なるものであってもよい。 また、 異なる 抗体としては、 同一の抗原決定基を認識する二種の抗体を用いることも、 あるい は異なる抗原決定基を認識する二種の抗体を用いることもできる。
本発明において、 第一標識体として用いる第三の免疫化学的成分、 および第二 標識体として用いる第四の免疫化学的成分は、 介在物質を介して特異的に結合し 合える抗体 (モノクローナル抗体であってもポリクローナル抗体であってもよい 。 また、 H鎖、 L鎖、 Fab、 F (ab' )2、 VH、 V L 等の断片化された抗体であつ てもよい) または抗原 (例えば、 蛋白質、 ペプチド、 ハプテンなど) であり、 且 つ検査対象物および固定化された第一の免疫化学的成分とは特異的親和性を有し ないものである。 好ましくは、 これらの免疫化学的成分は、 さらに第二の免疫化 学的成分とも特異的親和性を有しないものである。
第三および第四の免疫化学的成分の結合を仲介する本発明の介在物質は、 第三 および第四の免疫化学的成分に同時に結合して (第三の免疫化学的成分 -介在物 質一第四の免疫化学的成分) の複合体を形成し得る物質であれば特に限定されな いが、 好ましくは、 抗原抗体反応により第三および第四の免疫化学的成分と特異 的に結合し得る免疫化学的成分である。 すなわち、 第三の免疫化学的成分が抗体 であれば、 介在物質は該抗体により認識される抗原もしくは該抗体と特異的に結 合し得る二次抗体であり、 第四の免疫化学的成分は該抗原と特異的に結合し得る 抗体もしくは該二次抗体により認識される抗原であることが好ましい。 このとき 、 第三および第四の免疫化学的成分がともに抗体であれば、 それらは同一の抗体 であっても異なるものであってもよい。 一方、 第三の免疫化学的成分が抗原であ れば、 介在物質は該抗原と特異的に結合し得る抗体であり、 第四の免疫化学的成 分は該抗体により認識される抗原もしくは該抗体と特異的に結合し得る二次抗体 である。 第三および第四の免疫化学的成分がともに抗原であれば、 それらは同一 の抗原であっても、 介在物質である抗体と交叉反応性のある異なる抗原であって もよい。 第三および第四の免疫化学的成分、 ならびに介在物質は、 サンドイッチ 法等で用いられている公知のものを適宜選択して使用することができる。
この態様 Bの方法で用いる吸水性基材、 固定相については、 態様 Aの場合と同 様である。 また、 被検試料含有液、 第一標識体含有液、 第二標識体含有液、 介在 物質含有液等の吸収が開始される部位 (すなわち吸液部) についても態様 Aの場 合と同様であり、 被検試料、 標識体、 ならびに介在物質をそれぞれ含有する液の 吸水性基材への移動を妨げるものでなければ特に限定されない。
また、 この態様 Bの方法における第一標識体は、 検査対象物に特異的に結合し 得る免疫化学的成分 (第二の免疫化学的成分) および検査対象物とは結合しない 第三の免疫化学的成分に標識物質を結合させたものであり、 また、 第二標識体は 、 該第三の免疫化学的成分と介在物質を介して特異的に結合し得る免疫化学的成 分 (第四の免疫化学的成分) に標識物質を結合させたものである。 ここで用いら れる標識物についても態様 Aの場合と同様であり、 第一および第二標識体に使用 される標識物質は同一のものであることが好ましい。
第二および第三の免疫化学的成分の両方、 ならびに第四の免疫化学的成分を着 色粒子で標識する方法も、 態様 Aの場合と同様である。
第一標識体含有液、 第二標識体含有液および介在物質含有液は、 標識体または 介在物質を適当な分散媒 (溶媒) 中に分散 (溶解) させることにより調製される 。 標識体または介在物質を分散させる分散媒は、 検査対象物と第一標識体、 第一 標識体と介在物質および介在物質と第二標識体の特異的結合反応を阻害しないも のであれば特に制限はないが、 好ましくは該抗原抗体反応に適した p Hおよび塩 濃度の有する緩衝液、 例えばリン酸緩衝液、 酢酸緩衝液、 ホウ酸緩衝液、 トリス 塩酸緩衝液等を適宜選択して使用することができる。 シグナル検出時の各標識体 濃度は 0 . 0 0 5〜5 %、 好ましくは 0 . 0 1〜0 . 5 %の範囲である。 濃度が あまりに低すぎると、 固定相に結合する粒子数が少なく検出感度が悪くなる。 ま た、 濃度が高すぎると、 不経済なばかりでなく過剰の標識物質が固定相以外に残 留し、 固定相のシグナルを不明瞭にする等の問題を生じる。
この態様 Bの方法において、 標識相とは、 吸水性基材の吸液部と固定相との間 に設けられた、 第一標識体および/または第二標識体を水との接触によつて脱離 し得る形態で保持する領域を意味する。 第一および第二標識体の両方を保持する 場合、 第一標識体を保持する第一標識相と第二標識体を保持する第二標識相を別 個に作製しても、 あるいは第一および第二標識体を混合して 1つの標識相に保持 してもよい。
標識相の作製方法としては特に制限はないが、 例えば、 標識体を含有する液を 吸水性基材の吸液部と固定相との間の任意の領域に塗布し、 適当な条件下で乾燥 させる (例えば、 凍結乾燥) 方法が挙げられる。 また、 水溶性重合体もしくはサ ッカロース溶液中に標識体を分散させ、 該分散液を吸水性基材上に塗布して同様 に乾燥させてもよい。 この方法は、 水溶性重合体またはサッカロースが容易に水 溶化し、 標識体が速やかに基材から脱離して被検試料中の検査対象物および ま たは介在物質を介してもう一方の標識体と反応し得るとともに、 水溶性重合体や サッ力ロースの濃度を調整することにより吸水性基材の所定の領域に標識体を保 持させるのに適当な粘度を得ることができ、 さらに乾燥に際して標識体の凝集や 変性を防ぎ、 また乾燥後に標識体が吸水性基材から脱離しにくいという点で有利 である。
上記水溶性重合体としては、 例えば、 ポリビニルピロリ ドン、 ポリビニルアル コール、 ポリエチレングリコール、 セルロースエステル (例えば、 メチルセル口 ース、 ェチルセルロース、 カルボキシメチルセルロース、 カルボキシェチルセル ロース、 ォキシェチルセルロース、 シアンェチルセルロース等)、 ゼラチンなど が好ましく用いられる。
態様 Bで用いられる本発明の免疫学的検査用キットは、 本発明の免疫学的検査 方法に好ましく用いることができる。 該キッ トは、 検査対象物と特異的に結合し 得る第一の免疫化学的成分を固定化した固定相を表面上の任意の領域に設けた吸 水性基材、 検査対象物と特異的に結合し得る第二の免疫化学的成分および検査対 象物とは結合しない第三の免疫化学的成分に標識物質が結合してなる標識体 (第 一標識体) 、 該第三の免疫化学的成分と介在物質を介して特異的に結合し得る第 四の免疫化学的成分に標識物質が結合してなる標識体 (第二標識体) 、 ならびに 第三および第四の免疫化学的成分の結合を仲介する介在物質を含む。
吸水性基材、 第一および第二標識体、 ならびに介在物質の好ましい態様は、 上 記したような本発明の方法において好ましく用いられるものである。
本発明のキットに用いられる吸水性基材の好ましい態様の 1つとして、 その一 端 (すなわち吸液部) と固定相との間の任意の領域に、 第一および第二標識体の 少なくとも 1つが水との接触によって脱離し得る形態で保持される標識相がさら に設けられてもよい。
また、 本発明のキッ 卜に用いられる吸水性基材の好ましい態様の 1つとして、 その一端 (すなわち吸液部) と固定相との間の任意の領域 (但し、 被検試料を該 吸水性基材の一端と固定相との間の任意の領域に滴下または塗布する場合はその 領域を含めてそれより固定相側の領域) に、 検査対象物と被検試料中の他の物質 とを分離し得る分離相をさらに設けたものが挙げられる。
本発明のキットに用いられる吸水性基材の他の好ましい態様の 1つとして、 固 定相と該固定相よりも標識相により近い方の一端との間の任意の領域 (但し、 被 検試料を該吸水性基材の該一端と固定相との間の任意の領域に供給する場合は、 その領域を含めてそれより固定相側の領域) に、 検査対象物と被検試料中の他の 物質とを分離し得る分離相をさらに設けたものが挙げられる。 この場合、 分離相 は、 吸水性基材の一端と標識相との間の任意の領域に存在する。
本発明において、 分離相は、 分離しょうとする方向の孔径が検査対象物、 各標 識体、 ならびに介在物質よりも大きく、 分離除去しょうとする被検試料中の他の 物質よりも小さいことが望ましい。 また、 分離方向としては、 標識体が吸水性基 材上を展開する方向であっても、 あるいはその方向と垂直の方向であってもよく 、 さらに、 検査対象物を被検試料中の他の物質から分離した後は、 該分離相を除 去して後の測定を行ってもよい。
分離相の材質としては、 例えば、 レーヨン、 ポリエステル等の不織布、 濾紙、 ガラス繊維布、 ガラスフィルタ一、 ニトロセルロースフィル夕一、 ポリスルホン フィルター、 多孔質材料等が挙げられる。
本発明のキットは、 上記の内容物以外に、 本発明の免疫学的検査方法において 好ましく使用され得る付加的な内容物を含んでいてもよい。 例えば、 第一および 第二標識体、 ならびに介在物質を分散 (溶解) させるのに好ましく使用される上 記の緩衝液などが挙げられる。
〔3〕 態様 C
態様 Cは、 検査対象物と結合しうる第一の免疫化学的成分を吸水性基材上に固 定化した固定相で、 該第一の免疫化学的成分および、 該検査対象物と結合しうる 第二の免疫化学的成分を標識物質に結合してなる標識体により該検査対象物を挟 み込むサンドィツチ型免疫学的測定方法において、 ピオチンとアビジンの結合を 介して複合体を形成して検査対象物を検出することを特徴とする免疫学的測定方 法である。
この態様の実施に際しては、 次の 3つの態様がある。
( 1 ) C— 1の態様 標識物質にさらにピオチンが結合しており、 該ビォチンと結合するアビジンを 介して複合体 〔例えば、 吸水性基材-第一の免疫化学的成分 -検査対象物 -第二 の免疫化学的成分一標識物質一ピオチン—アビジン—ピオチン—標識物質一第二 の免疫化学的成分〕 を形成し、 該複合体中の標識物質により検査対象物を検出す ることを特徴とする免疫学的測定方法。
この場合、 アビジンが、 吸水性基材の一端と固定相との間の任意の領域に水と の接触によって脱離しうる状態で保持されているものを用いてもよい。
( 2 ) C— 2の態様
標識体として第二の免疫化学的成分、 第一標識物質およびァビジンからなる結 合体を用い、 これにさらにピオチンと第二標識物質の結合体を反応させて、 該ァ ビジンと該ビォチンとの結合を介した複合体 〔例えば、 吸水性基材ー第一の免疫 化学的成分一検査対象物一第二の免疫化学的成分 -第一標識物質一アビジンービ ォチン一第二標識物質〕 を形成し、 該複合体中の第一および第二標識物質により 検査対象物を検出することを特徴とする免疫学的測定方法。
この場合、 ピオチンと第二標識物質の結合体が、 吸水性基材の一端と固定相と の間の任意の領域に水との接触によって脱離しうる状態で保持されているものを 用いてもよい。
( 3 ) C - 3の態様
標識体として第二の免疫化学的成分、 第一標識物質およびピオチンからなる結 合体を用い、 これにさらにアビジンと第二標識物質の結合体を反応させて、 該ビ ォチンと該ァビジンとの結合を介した複合体 〔例えば、 吸水性基材ー第一の免疫 化学的成分 -検査対象物 -第二の免疫化学的成分 -第一標識物質 -ピオチン -ァ ビジン一第二標識物質〕 を形成し、 該複合体中の第一および第二標識物質により 検査対象物を検出することを特徴とする免疫学的測定方法。 この場合、 アビジンと第二標識物質の結合体が、 吸水性基材の一端と固定相と の間の任意の領域に水との接触によって脱離しうる状態で保持されているものを 用いてもよい。
この態様において検査対象物とは、 態様 Aで述べた検査対象物と同様である。 前記検査対象物と結合しうる第一の免疫化学的成分および第二の免疫化学的成 分とは、 態様 Aで述べた第一の免疫化学的成分、 第二の免疫化学的成分と同様の ものであり、 測定対象の検査対象物と特異的に結合しうる物質であり、 抗体また は抗原が挙げられ (ここで、 抗原としてはタンパク質、 ペプチド、 ハプテン等が 含まれる) 、 測定対象の検査対象物に応じて、 サンドイッチ法などで用いられる 公知のものを適宜選択する。 例えば検査対象物が抗原の場合は、 対応する抗体を 免疫化学的成分として用いることができる。 この場合、 固定相に固定化する第一 の免疫化学的成分と標識体の構成要素として用いる第二の免疫化学的成分には、 ポリクローナル抗体およびモノクローナル抗体を使用することができ、 一方の免 疫化学的成分がモノクローナル抗体である場合には、 もう一方の免疫化学的成分 は当該モノクローナル抗体とは異なる抗原決定基を認識するものが好ましい。 ま た、 検査対象物が抗体の場合は、 対応する抗原を免疫化学的成分として用いるこ とができる。 この場合、 第一の免疫化学的成分および第二の免疫化学的成分とし て、 対応する抗原および検査対象物である抗体に対する抗抗体 (抗免疫グロプリ ン抗体) をそれぞれ用いてもよい。
本発明における吸水性基材は、 態様 Aで述べた吸水性基材と同様のものであり 、 検査対象物を含有する被検試料、 例えば、 血清、 血液、 尿、 便、 唾液等を吸収 できるもの、 前記被検試料を緩衝液によって希釈した希釈液を吸収するもの、 標 識体を含有する液を吸収するものであれば特に限定されない。 ここで使用される 緩衝液としては、 特に限定されないが、 ホウ酸緩衝液、 リン酸緩衝液、 T r i s 一 H C 1緩衝液等が挙げられる。
本発明において固定相とは、 前記第一の免疫化学的成分が前記吸水性基材上に 固定化された領域をいう。 第一の免疫化学的成分を吸水性基材上に固定化する方 法 (固定相の作製方法) は、 特に限定されるものではないが、 従来から知られて レ、る物理吸着法や共有結合法によるのが好適である。
固定化する第一の免疫化学的成分の量は、 用いる免疫化学的成分の種類や特性 によっても異なる力 通常、 0 . 0 0 1〜 1 O m g Z c m 2 程度である。
また、 固定相を形成した後の吸水性基材は、 検査対象物または標識体の非特異 的吸着を防ぐために、 ポリオキシエチレン (2 0 ) ソルビタンモノラウレート ( Tw e e n TM 2 0 ) 、 ポリオキシエチレン (2 0 ) ソルビ夕ンモノォレエ一ト ( Tw e e n™8 0 ) , ポリオキシエチレン ( 1 0 ) ォクチルフエ二ルェ一テル ( T r i t 0 n TMX— 1 0 0 ) 、 ドデシルベンゼンスルホン酸ナトリゥム等の界面 活性剤ゃゥシ血清アルブミン、 スキムミルク、 カゼイン等のタンパク質や、 ポリ エチレングリコール、 ポリビニルアルコール、 ポリビニルピロリ ドン等の水溶性 高分子でプロックすることが好ましい。
本発明における標識体とは、 C - 1の態様では標識物質に前記第二の免疫化学 的成分、 さらにはピオチンを結合させたもの、 C一 2の態様では第二の免疫化学 的成分、 第一標識物質およびアビジンからなる結合体を、 C一 3の態様では第二 の免疫化学的成分、 第一標識物質およびピオチンからなる結合体をいう。 ここで 用いる標識物質あるいは第一標識物質としては特に限定されないが、 検出の簡便 性という観点から着色粒子が好ましい。 着色粒子は、 肉眼で着色が検出可能なも のであれば制限はなく、 態様 Aで述べた着色粒子と同様のものである。
ビォチンとしては、 アビジンと特異的に結合するものであれば特に限定される ものではなく、 ピオチンまたはその誘導体であってもよい。 ピオチンの誘導体と しては、 例えば、 ピオチンメチルエステル、 ピオチノ一ル、 ピオチニル ω—プロ ミ ド、 ビオシチン、 デスチオビォチン、 ピオチン L—スルホキシド等が挙げられ る。 特に、 ピオチン、 ビオシチンが好ましい。
アビジンとしては、 ピオチンと特異的に結合するものであれば、 特に限定され ない。 アビジンは、 卵白から単離したもの、 Streptomyces avidini i から単離し たストレプトアビジンでもよい。 特に、 アビジンが好ましい。
前記着色粒子に第二の免疫化学的成分およびピオチンを結合する方法、 あるい は前記着色粒子に第二の免疫化学的成分およびアビジンを結合する方法としては 、 従来からよく知られている方法、 例えば共有結合法、 物理吸着法、 イオン結合 法などを用いることができるが、 結合後の第二の免疫化学的成分およびビォチン 、 または第二の免疫化学的成分およびァビジンの脱離がなく安定である点から共 有結合法を採用することが好ましい。 第二の免疫化学的成分およびピオチン、 ま たは第二の免疫化学的成分およびアビジンが結合した着色粒子の色は異なっても 構わないが、 同一であるのが好ましい。
こうして得られた標識体は、 緩衝液に分散させて使用することができる。 ここ で使用する緩衝液としては、 ホウ酸緩衝液、 リン酸緩衝液、 T r i s— H C 1緩 衝液等が挙げられ、 抗原抗体反応を阻害しない p H及び塩濃度の緩衝液を適宜使 用する。 標識体の使用量は、 本発明の各種の態様において適宜設定することがで きる。 例えば、 標識体を含有する緩衝液中の標識体濃度は、 0 . 0 0 5〜5重量 %、 好ましくは 0 . 0 1〜0 . 5重量%の範囲とする。 濃度があまりにも低すぎ ると、 固定相に結合する着色粒子数が少なく、 発色が悪くなる。 また、 濃度が高 すぎると、 不経済なばかりでなく、 過剰の着色粒子が固定相以外に残留し、 固定 相の発色を不明瞭にする等の問題が発生する (以下、 標識体を含有する緩衝液を 標識体液ともいう) 。
本発明の方法 (C一 2の態様) に用いられるピオチンと第二標識物質の結合体 は、 前記第一標識物質と同様の標識物質にピオチンを結合したものである。 第一 標識物質および第二標識物質に好適に用いられる着色粒子の色は異なっても構わ ないが、 同一であるのが好ましい。 同様に、 本発明の方法 (C— 3の態様) に用 いられるアビジンと第二標識物質の結合体は、 前記第一標識物質と同様の標識物 質にアビジンを結合したものである。 第一標識物質および第二標識物質に好適に 用いられる着色粒子の色は異なっても構わないが、 同一であるのが好ましい。 前記着色粒子にピオチン又はアビジンを結合する方法としては、 従来からよく 知られている方法、 例えば共有結合法、 物理吸着法、 イオン結合法などを用いる ことができる力、 結合後のピオチン又はアビジンの脱離がなく安定である点から 共有結合法を採用することが好ましい。
C一 1の態様におけるアビジンの適用方法、 C一 2の態様におけるピオチンと 第二標識物質の結合体の適用方法、 あるいは C一 3の態様におけるアビジンと第 二標識物質の結合体の適用方法としては、 吸水性基材上の一端と第一の免疫化学 的成分を固定化した固定相との間の任意の領域に水との接触によつて脱離しうる 状態で保持されていてもよく、 標識体液に混合させて用いてもよい。 また、 緩衝 液に混合させて用いてもよい。 ここで用いられる緩衝液は、 前記標識体を分散さ せるのに用いられるものと同様のものが挙げられる。
本発明においては、 C一 1の態様ではアビジンを被検試料や緩衝液などの水と の接触によつて吸水性基材から脱離しうるように、 C一 2の態様ではビォチンと 第二標識物質の結合体を被検試料や緩衝液などの水との接触によつて吸水性基材 から脱離しうるように、 あるいは C一 3の態様ではァビジンと第二標識物質の結 合体を被検試料や緩衝液などの水との接触によつて吸水性基材から脱離しうるよ うに、 吸水性基材上に塗布することが好ましい。 塗布方法としては、 例えば C— 1の態様ではアビジンの溶液を、 C一 2の態様ではピオチンと第二標識物質の結 合体の溶液を、 あるいは C一 3の態様ではアビジンと第二標識物質の結合体の溶 液を吸水性基材に塗布したのち、 適当な条件にて乾燥させる。 乾燥の一態様とし て凍結乾燥させることもできる。 水溶性重合体もしくはサッ力ロース溶液中に標 識物質を分散させ、 該分散液を吸水性基材上に塗布して同様に乾燥させてもよい 。 この方法は、 水溶性重合体またはサッカロースが容易に水溶化し、 標識物質が 速やかに基材から脱離して被検試料中の検査対象物および Zまたは介在物質を介 してもう一方の標識物質と反応し得るとともに、 水溶性重合体ゃサッカロースの 濃度を調整することにより吸水性基材の所定の領域に標識物質を保持させるのに 適当な粘度を得ることができ、 さらに乾燥に際して標識物質の凝集や変性を防ぎ 、 また乾燥後に標識物質が吸水性基材から脱離しにくいという点で有利である。 本発明のサンドィッチ型免疫学的測定方法は、 前記ァビジンと前記ピオチンと の間の高いァフィニティーとアビジン 1分子に対して複数のビォチン分子が結合 し得るため、 C一 1の態様では固定相での検査対象物と第一の免疫化学的成分と の複合体に、 ピオチンの結合した標識体がァビジンを介して多数結合することに よりさらに高次の複合体が形成され、 その結果、 検査対象物と第一の免疫化学的 成分との結合シグナルが増幅され、 着色した標識体の検出が容易になるという効 果を奏する。 同様に C - 2、 3の態様では、 固定相での検査対象物と第一の免疫 化学的成分との複合体に標識体が結合する際にビォチンと第二標識物質又はァビ ジンと第二標識物質の結合体を介してさらに高次の複合体が形成され、 その結果 、 検査対象物と第一の免疫化学的成分との結合シグナルが増幅され、 着色した標 識体および第二標識物質による目視検出が容易になるという効果を奏する。 即ち、 本発明における複合体は、 最もシンプルな結合様式として C一 1の態様 では、 吸水性基材 -第一の免疫化学的成分 -検査対象物 -第二の免疫化学的成分 -標識物質—ピオチン—アビジン一ピオチン—標識物質一第二の免疫化学的成分 で表現することができるが、 アビジンに結合する一ピオチン—標識物質一第二の 免疫化学的成分は同一のアビジン分子に複数個結合することができるので、 吸水 性基材 -第一の免疫化学的成分 -検査対象物 -第二の免疫化学的成分 -標識物質 —ピオチン一アビジン一 (ピオチン—標識物質—第二の免疫化学的成分) n で表 現することができる。
また、 前記複合体の末端にある第二の免疫化学的成分には、 さらに検査対象物 が結合可能であるため、 その第二の免疫化学的成分にさらに検査対象物が結合し 、 次いで一第二の免疫化学的成分一標識物質一ピオチン一アビジン一 (ピオチン 一標識物質一第二の免疫化学的成分) n が結合することもできる。 即ち、 吸水性基材 -第一の免疫化学的成分 -検査対象物 -第二の免疫化学的成分 -標識 物質—ピオチン一アビジン— (ピオチン—標識物質一第二の免疫化学的成分) n 一 〔検査対象物一第二の免疫化学的成分一標識物質 -ピオチン一アビジン一 (ビ ォチン一標識物質一第二の免疫化学的成分) n 〕 n
のように複雑な複合体となる。
本発明におけるこれらの複合体は一例であり、 ピオチン—ァビジン結合を介し た種々の複雑な複合体が含まれる。
また、 C一 2の態様では、 最もシンプルな結合様式として、 吸水性基材—第一 の免疫化学的成分 -検査対象物 -第二の免疫化学的成分 -第一標識物質 -ァビジ ンーピオチン一第二標識物質で表現することができるが、 アビジンに結合する一 ビォチンー第二標識物質は同一のァビジン分子に複数個結合することができるの で、 例えば、 吸水性基材-第一の免疫化学的成分-検査対象物 -第二の免疫化学 的成分一第一標識物質一アビジン一 (ピオチン—第二標識物質) n で表現するこ とができる。
また、 前記複合体の末端にある第二標識物質には、 多数のピオチンが結合して おり、 そのそれぞれのビォチンにもさらに別の第一標識物質と結合したァビジン が結合し、 ピオチン—アビジン結合を介した種々の複雑な複合体が形成される。 また、 C一 3の態様では、 最もシンプルな結合様式として、 吸水性基材—第一 の免疫化学的成分 -検査対象物 -第二の免疫化学的成分 -第一標識物質 -ビォチ ンーアビジン—第二標識物質で表現することができる。 また、 アビジンに結合す るピオチン一第一標識物質一第二の免疫化学的成分は同一のアビジン分子に複数 個結合することが可能であり、 さらに、 前記第一標識物質には、 多数のピオチン が結合しているので、 そのそれぞれのピオチンにもさらに別の第二標識物質と結 合したァビジンが結合し、 ピオチン—ァビジン結合を介した種々の複雑な複合体 が形成される。
また、 本発明においては、 被検試料、 標識体液、 被検試料および標識体液の混 合物、 緩衝液などの吸液が開始される部位 (以下、 滴下部とも称する) と固定相 との間の距離は、 1〜6 c m、 好ましくは 2〜4 c m程度とする。 距離があまり に遠すぎると、 固定相まで検査対象物と標識体が到達しなかったり、 発色感度が 強すぎたり、 測定に時間がかかつたりするという問題点を生じる恐れがあり好ま しくない。 一方、 距離が近すぎると固定相での発色が均一でなく、 まばらになつ たり、 発色感度が低すぎるという問題が生じる恐れがある。
本発明の免疫学的測定方法の態様を以下に説明する。
C一 1の態様では、 次の 2つの態様が例示される。 第 1の態様は、 図 1 0に示 すように、 被検試料を、 標識体 4を含有する緩衝液およびアビジン 8と混合し、 混合液を吸水性基材 1上の滴下部 1 1から展開して、 第一の免疫化学的成分 2が 固定化されている固定相 3に移動させる。 この間に、 標識体 4中の第二の免疫化 学的成分 6と検査対象物 9との結合や、 標識体 4中のピオチン 7とアビジン 8と の結合が起こる。 固定相 3に到着すると、 吸水性基材 1上に固定化された第一の 免疫化学的成分 2と検査対象物 9とが結合し、 複合体 〔吸水性基材-第一の免疫 化学的成分 -検査対象物一第二の免疫化学的成分 -標識物質ービォチン -ァビジ ンー標識物質〕 1 0を形成する。
第 2の態様は、 図 1 1に示すように、 吸水性基材 1上の滴下部 1 1から、 被検 試料を、 標識体 4を含有する緩衝液と共に展開して、 第一の免疫化学的成分 2が 固定化されている固定相 3に移動させる。 この途中に、 アビジン 8が塗布されて いる相 (アビジン相) に到着し、 水との接触によりアビジン 8が脱離する。 さら に、 吸水性基材 1上を移動して第一の免疫化学的成分 2が固定化されている固定 相 3に到達する間に、 標識体 4中の第二の免疫化学的成分 6と被検試料中の検査 対象物 9との結合や、 標識体 4中のピオチン 7と吸水性基材 1上に固定されてい たが水との接触により脱離したァビジン 8との結合が起こる。 固定相 3に到着す ると、 吸水性基材上に固定化された第一の免疫化学的成分 2と検査対象物 9とが 結合し、 複合体 〔吸水性基材-第一の免疫化学的成分 -検査対象物 -第二の免疫 化学的成分一標識物質ービォチン一アビジン一標識物質〕 1 0を形成する。
こうして形成された複合体 1 0は、 免疫標識体を構成する標識物質 5としての 着色粒子がアビジン一ピオチンを介する高次結合により集合して発色が明瞭とな り、 目視確認することができる。
C一 2の態様では、 次の 2つの態様が例示される。 第 1の態様は、 図 1 2に示 すように、 被検試料を、 標識体 4を含有する緩衝液およびピオチンと第二標識物 質の結合体 8と混合し、 混合液を吸水性基材 1上の滴下部 1 3から展開して、 第 一の免疫化学的成分 2が固定化されている固定相 3に移動させる。 この間に、 標 識体 4中の第二の免疫化学的成分 6と検査対象物 9との結合や、 標識体 4中のァ ビジン 7とピオチンと第二標識物質の結合体 8中のピオチン 1 0との結合が起こ る。 固定相 3に到着すると、 吸水性基材 1上に固定化された第一の免疫化学的成 分 2と検査対象物 9とが結合し、 複合体 〔吸水性基材ー第一の免疫化学的成分 - 検査対象物―第二の免疫化学的成分一第一標識物質一アビジン一ピオチン—第二 標識物質〕 1 1を形成する。
第 2の態様は、 図 1 3に示すように、 吸水性基材 1上の滴下部 1 3力、ら、 被検 試料を、 標識体 4を含有する緩衝液と共に展開して、 第一の免疫化学的成分 2が 固定化されている固定相 3に移動させる。 この途中に、 ピオチンと第二標識物質 の結合体 8が塗布されている標識相 1 2に到着し、 水との接触によりピオチンと 第二標識物質の結合体 8が脱離する。 さらに、 吸水性基材 1上を移動して第一の 免疫化学的成分 2が固定化されている固定相 3に到達する間に、 標識体 4中の第 二の免疫化学的成分 6と被検試料中の検査対象物 9との結合や、 標識体 4中のァ ビジン 7と吸水性基材 1上に固定されていたが水との接触により脱離したビォチ ンと第二標識物質の結合体 8中のピオチン 1 0との結合が起こる。 固定相 3に到 着すると、 吸水性基材上に固定化された第一の免疫化学的成分 2と検査対象物 9 とが結合し、 複合体 〔吸水性基材-第一の免疫化学的成分 -検査対象物 -第二の 免疫化学的成分一第一標識物質一アビジン一ピオチン一第二標識物質〕 1 1を形 成する。
こうして形成された複合体 1 1は、 第一標識物質 5および第二標識物質 5とし ての着色粒子がァビジン一ピオチンを介する高次結合により集合して発色が明瞭 となり、 目視確認することができる。
C— 3の態様では、 次の 2つの態様が例示される。 第 1の態様は、 図 1 4に示 すように、 被検試料を、 標識体 4を含有する緩衝液およびアビジンと第二標識物 質の結合体 8と混合し、 混合液を吸水性基材 1上の滴下部 1 3から展開して、 第 —の免疫化学的成分 2が固定化されている固定相 3に移動させる。 この間に、 標 識体 4中の第二の免疫化学的成分 6と検査対象物 9との結合や、 標識体 4中のビ ォチン 7とアビジンと第二標識物質の結合体 8中のアビジン 1 0との結合が起こ る。 固定相 3に到着すると、 吸水性基材 1上に固定化された第一の免疫化学的成 分 2と検査対象物 9とが結合し、 複合体 〔吸水性基材-第一の免疫化学的成分一 検査対象物一第二の免疫化学的成分一第一標識物質一ピオチン一アビジン—第二 標識物質〕 1 1を形成する。
第 2の態様は、 図 1 5に示すように、 吸水性基材 1上の滴下部 1 3から、 被検 試料を、 標識体 4を含有する緩衝液と共に展開して、 第一の免疫化学的成分 2が 固定化されている固定相 3に移動させる。 この途中に、 アビジンと第二標識物質 の結合体 8が塗布されている標識相 1 2に到着し、 水との接触によりアビジンと 第二標識物質の結合体 8が脱離する。 さらに、 吸水性基材 1上を移動して第一の 免疫化学的成分 2が固定化されている固定相 3に到達する間に、 標識体 4中の第 二の免疫化学的成分 6と被検試料中の検査対象物 9との結合や、 標識体 4中のビ ォチン 7と吸水性基材 1上に固定されていたが水との接触により脱離したァビジ ンと第二標識物質の結合体 8中のアビジン 1 0との結合が起こる。 固定相 3に到 着すると、 吸水性基材上に固定化された第一の免疫化学的成分 2と検査対象物 9 とが結合し、 複合体 〔吸水性基材-第一の免疫化学的成分 -検査対象物 -第二の 免疫化学的成分一第一標識物質一ピオチン一アビジン—第二標識物質〕 1 1を形 成する。
こうして形成された複合体 1 1は、 第一標識物質 5および第二標識物質 5とし ての着色粒子がアビジン一ピオチンを介する高次結合により集合して発色が明瞭 となり、 目視確認することができる。
本発明において、 第一の免疫化学的成分が固定化された固定相を有する吸水性 基材を本発明の免疫学的検査片ともいう。
さらに、 本発明は、 C一 1の態様では前記免疫学的検査片、 前記標識体ならび にアビジンを含有する免疫学的測定キットを提供する。 C一 2の態様では、 前記 免疫学的検査片、 前記標識体および前記ピオチンと第二標識物質の結合体を含有 する免疫学的測定キッ トを提供する。 C - 3の態様では、 前記免疫学的検査片、 前記標識体および前記アビジンと第二標識物質の結合体を含有する免疫学的測定 キットを提供する。 これらの本発明のキットは、 本発明の免疫学的測定方法に好 適に用いられるものである。
本発明のキットに含有される免疫学的検査片および標識体は、 前記本発明の免 疫学的測定方法で定義した通りである。
本発明のキットに含有される C一 1の態様におけるアビジン、 C一 2の態様に おけるピオチンと第二標識物質の結合体、 C一 3の態様におけるアビジンと第二 標識物質の結合体は、 前記本発明の免疫学的測定方法で定義した通りであるが、 免疫学的検査片の吸水性基材の一端と固定相との間の任意の領域に水との接触に よって脱離しうる状態で保持されていることが好ましい。 以下に実施例を挙げて本発明をより詳細に説明するが、 これら実施例は本発明 の範囲を何ら限定するものではない。 実施例 A - 1 免疫学的検査用キッ 卜の作製
( 1 ) 第一標識免疫化学的成分液の作製 青色着色力ルボキシル化ポリスチレンラテックス粒子分散液 (固形分濃度 5重 量%、 平均粒子径 0. l zm、 0. 0 1Mホウ酸緩衝液 (pH8) 中) 3mlに 、 水溶性カルポジイミ ド ( 1 mg/m 1、 0. 0 1 Mホウ酸緩衝液 (pH 8) 中 ) 1 m 1および 1 mgZm 1ャギ I gG抗大腸菌◦ 1 57 : H 7抗体 (Kirkegaa rd & Perry Laboratories Inc.製、 0. 0 1Mホウ酸緩衝液 (ρΗ8) 中) lm 1を加えて 1 0°Cで 3時間反応させた後、 洗浄液としてホウ酸緩衝液 (pH8) を用いて遠心分離洗浄を行い、 青色着色ラテックス粒子標識抗大腸菌 01 57 : H 7抗体を作製した。 得られたラテックス粒子標識抗体は、 0. 0 1M—ホウ酸 緩衝液 (pH8) に、 固形分濃度 2重量%となるように懸濁した。
( 2 ) 第二標識免疫化学的成分液の作製
上記 (1) と同様にして、 青色着色カルボキシル化ポリスチレンラテックス粒 子分散液 (固形分濃度 5重量%、 平均粒子径 0. l /m、 0. 0 1Mホウ酸緩衝 液 (PH8) 中) 3mlに、 水溶性カルポジイミ ド (lmg/ml、 0. 0 1 M ホウ酸緩衝液 (PH8) 中) 1mlおよび 2mgZmlゥサギ抗ャギ I gG抗体
(Kirkegaard & Perry Laboratories In 製、 0. 0 1Mホウ酸緩衝液 (pH8 ) 中) 1mlを加えて 1 0°Cで 3時間反応させた後、 洗浄液としてホウ酸緩衝液
(pH8) を用いて遠心分離洗浄を行い、 青色着色ラテックス粒子標識抗ャギ I gG抗体を作製した。 得られたラテックス標識抗体は、 0. 0 1M—ホウ酸緩衝 液 (PH8) に、 固形分濃度 2重量%となるように懸濁した。
( 3 ) 検査片の作製
二トロセルロースメンブレン (孔径 8〃m、 6 mmx 60 mm) の一端から 3 0 mmの箇所に、 lmg/mlゥサギ I gG抗大腸菌 01 57 : H7抗体 (Capr icorn社製、 0. 1 Mリン酸緩衝液 ( p H 7. 4 ) 中) 0. 5// 1を、 ディスぺ ンサーを用いてライン状に塗布した。 このメンブレンを 1重量%ゥシ血清アルブ ミンおよび 0. 1重量%ポリオキシエチレン (1 0) ォクチルフヱニルエーテル (和光純薬工業社製) からなる水溶液中に 1 0分間浸潰させた後、 40°Cで 2時 間乾燥させた。
次いで、 このメンブレンの裏側 (抗体塗布面の反対側) に、 ポリエステルフィ ルム ( 1 0 0 m厚) をスプレー糊を用いて貼り合わせた。 さらに、 抗体塗布箇 所反対端から 0〜8 mmの箇所にポリエステル不織布 ( 6mmx 8mm, 厚さ 2 . 5mm) を貼り合わせて検査片を作製した。 実施例 A— 2 免疫学的検査用キッ トによる大腸菌 01 57 : H7の検出
0. 9重量%NaC l含有 0. 1 Mリン酸緩衝液 (pH7. 4) に大腸菌 01 5 7 : !17株を表八— 1に示した各濃度で分散させた被検試料液を調製した。 こ の被検液に、 実施例 A— 1の ( 1 ) で作製した第一標識抗体液を、 固形分濃度 0 . 02重量%となるように混合、 攪拌した後、 混合液 6 0 p.1を実施例 A— 1の (3) で作製した検査片のポリエステル不織布部に滴下した。 混合液が検査片に 展開した後、 実施例 A - 1の (2) で作製した第二標識抗体液を固形分濃度 0. 0 2重量%となるように 0. 9重量%Na C l含有 0. 1 Mリン酸緩衝液 (pH 7. 4) で希釈した液 6 0 / 1を、 上記ポリエステル不織布部に滴下し、 20分 後の固定相上での発色の有無を目視観察した。 その結果を表 A - 1に示す。 比較 として、 第二標識抗体を用いず、 第一標識抗体のみを使用した場合の測定結果を 並べて示している。 実施例 A— 3 免疫学的検査用キットによる大腸菌 01 5 7 : H7の検出
0. 9重量%NaC l含有 0. 1 Mリン酸緩衝液 (pH7. 4) に大腸菌〇 1 57 : H7株を表A— 1に示した各濃度で分散させた被検試料液を調製した。 こ の被検液に、 実施例 A— 1の ( 1 ) で作製した第一標識抗体液と実施例 A— 1の (2) で作製した第二標識抗体液とを、 各固形分濃度 0. 02重量%となるよう に混合、 攪拌した後、 該混合液 6 0 i 1を実施例 A— 1の (3) で作製した免疫 学的検査片のポリエステル不織布部に滴下した。 20分後に固定相上での発色の 有無を目視観察した。 その結果を表 A— 1に示す。 比較として、 第二標識抗体を 用いず、 第一標識抗体のみを使用した場合の測定結果を並べて示している。 実施例 A - 4 免疫学的検査用キットによる大腸菌 01 5 7 : H7の検出
0. 9重量 Na C l含有 0. 1 Mリン酸緩衝液 (pH7. 4) に大腸菌 01 5 7 : H 7株を表 A— 1に示した各濃度で分散させた被検試料を調製した。 この 被検試料 2 1を実施例 A— 1の ( 3) で作製した免疫学的検査片の表面側に、 抗体塗布箇所の反対側から 1 2〜2 Ommの部分に吸収させた。 次いで、 実施例 A— 1の ( 1 ) で作製した第一標識抗体液を、 固形分濃度 0. 0 2重量%となる ように 0. 9重量%Na C l含有 0. 1 Mリン酸緩衝液 (pH 7. 4) で希釈し た後、 該希釈液 60 1を、 検查片のポリエステル不織布部に滴下した。 第一標 識抗体液が被検試料と接触しさらに展開した後、 実施例 A— 1の (2) で作製し た第二標識抗体液を、 固形分濃度 0. 02重量%となるように 0. 9重量%Na C 1含有 0. 1 Mリン酸緩衝液 (pH7. 4) で希釈した液 6 0 1を、 上記ポ リエステル不織布部に滴下し、 20分後に固定相上での発色の有無を目視観察し た。 その結果を表 A— 1に示す。 比較として、 第二標識抗体を用いず、 第一標識 抗体のみを使用した場合の測定結果を並べて示している。 実施例 A— 5 免疫学的検査用キットによる大腸菌 01 5 7 : H7の検出
0. 9重量%Na C l含有 0. 1 Mリン酸緩衝液 (pH7. 4) に大腸菌 01 5 7 : H 7株を表 A— 1に示した各濃度で分散させた被検試料液を調製した。 こ の被検試料 2 1を実施例 Α - 1 © (3) で作製した免疫学的検査片の表面側に 、 抗体塗布箇所の反対側から 1 2〜2 Ommの部分に吸収させた。 次いで、 実施 例 A— 1の ( 1 ) で作製した第一標識抗体液と実施例 A— 1の (2) で作製した 第二標識抗体液とを混合、 各固形分濃度 0. 0 2重量%となるように 0. 9重量 %NaC l含有0. 1 Mリン酸緩衝液 (pH7. 4 ) で希釈した後、 該混合希釈 液 6 0 1を実施例 A— 1の (3 ) で作製した免疫学的検査片のポリエステル不 織布部に滴下した。 2 0分後に固定相上での発色の有無を目視観察した。 その結 果を表 A— 1に示す。 比較として、 第二標識抗体を用いず、 第一標識抗体のみを 使用した場合の測定結果を並べて示している。
表 A— 1 実施例 0 1 5 7 : H 7菌体密度 (cfu/ml)
測 定 法 108 107 106 105 104 103 102
A - 2 第一標識抗体のみ使用 + + + +
第一 ·第二標識抗体使用 + + + + +
A— 3 第一標識抗体のみ使用 + + + +
第一 ·第二標識抗体使用 + + + + +
A - 4 第一標識抗体のみ使用 + + + —
第一 ·第二標識抗体使用 + + + +
A - 5 第一標識抗体のみ使用 + + +
第一 ·第二標識抗体使用 + + + +
+ :固定相にライン上の発色が見える
一 :固定相にライン上の発色が見られない
実施例 B - 1 免疫学的検査用キット構成物の作製
( 1 ) 水分散型高分子重合体粒子からなる着色ラテックスの作製
スチレンモノマー 50 g、 アクリル酸 0. 5 g、 トリエチレングリコールジメ タクリレート 0. 2 g、 及び蒸留水 440 gを窒素気流下で温度 75°Cにて攪拌 しながら、 これに過硫酸カリウム 0. 25 gを水 1 0 gに溶解した水溶液を加え 、 1 0時間重合させて、 平均粒子径 0. 22 zmの水分散型高分子重合体粒子の 水分散液を得た。 この重合体粒子分散液をアルカリ、 酸、 蒸留水の順序にて遠心 洗浄した後、 固形分濃度 1 0重量%に調整した (担体粒子分散液) 。 スダンプル 一 0. 2 gをトルエン 2 Omlに溶解し、 これにドデシル硫酸ナトリウム 0. 2 g、 及び蒸留水 1 00mlを加え、 超音波分散機でこの混合液を乳化した。 この 液に上記担体粒子分散液 (固形分濃度 1 0重量 30mlを加え、 室温にて 2 4時間攪拌した。 この液をエバポレー夕にてトルエンを除去した後、 0. 0 1M ホウ酸緩衝液 (pH7. 5) にて遠心洗浄を行い、 固形分濃度 5重量%となるよ うに調整した。 この液 50mlに、 1ーェチルー 3— (3—ジメチルァミノプロ ピル) カルポジイミ ド塩酸塩水溶液 ( 1 Omg/m 1 ) 5ml、 及び 0. 03M m—キシレンジァミン水溶液 5 Om 1を加え、 室温にて 5時間反応させた。 こ の液を 75でにて 5時間加熱処理した後、 前記と同じ緩衝液にて遠心洗浄を行い 、 固形分濃度 1重量%となるように調整した (スダンブル一染色キシレンジアミ ンスぺーサ化粒子分散液) 。
( 2 ) 第一標識体含有液の作製
上記 (1) で調製したスダンブルー染色キシレンジァミンスべ一サ化粒子分散 液 1 Om 1にグルタルアルデヒド水溶液 (0. lmg/ml) 1 m 1を加え、 室 温にて 2時間反応させた後、 前記と同じ緩衝液にて遠心洗浄し、 固形分濃度 1重 量%の分散液に調整した。 この分散液 1 Om 1に第三の免疫化学的成分として抗 ヒトヘモグロビン抗体 (ゥサギ I gG, 1 Omg/m 1 ) を 1 m 1、 第二の免疫 化学的成分として抗ヒト HB s抗体 (ゥサギ I gG, 5mg/m 1 ) を lml、 それぞれ加え、 1 0°Cにて 24時間攪拌した。 これを前記と同じ緩衝液で遠心洗 浄し、 固形分濃度 1重量%となるように再分散させ、 共有結合で抗体を結合した スダンブルー染色粒子標識抗ヒトヘモグロビン抗体—抗ヒト HB s抗体 (第一標 識体) 含有液を得た。
( 3 ) 第二標識体含有液の作製
上記 ( 1 ) で調製したスダンブルー染色キシレンジァミンスぺーサ化粒子分散 液 1 Om 1にグルタルアルデヒド水溶液 ( 0. lmgZml) 1 m 1を加え、 室 温にて 2時間反応させた後、 前記と同じ緩衝液にて遠心洗浄し、 固形分濃度 1重 量%の分散液に調整した。 この分散液 1 Om lに、 第四の免疫化学的成分として 抗ヒトヘモグロビン抗体 (ゥサギ I gG, 1 Omg/m 1 ) 2m 1、 を加え、 1 0°Cにて 24時間攪拌した。 これを前記と同じ緩衝液で遠心洗浄し、 固形分濃度 1重量%となるように再分散させ、 共有結合で抗体を結合したスダンブル一染色 粒子標識抗ヒトヘモグロビン抗体 (第二標識体) 含有液を得た。
( 4 ) 免疫学的検査片の作製
第一の免疫化学的成分として抗ヒト HB s抗体 (ゥサギ I gG) を、 0. 1 M リン酸緩衝液 (pH 7. 4) にて希釈し、 最終濃度 lmgZmlの水溶液に調整 した。 この水溶液に、 ニトロセルロースメンブランフィルター (東洋ろ紙、 5 x 1 0 Omm) の一端から 5 0 mm部位に 1 0 1塗布した後、 直ちに 37でで 1 時間静置した後、 ニトロセルロースメンブランフィルターを取り出し、 0. 1 % ゥシ血清アルブミン、 0. 1 %Twe e n 20の水溶液に 1時間浸漬させた。 そ の後、 ニトロセルロースメンブランフィルターを取り出し、 室温で 3時間静置し 、 抗ヒト HB s抗体を有するニトロセルロースメンブランフィルターを得た。 次 に、 上記の抗ヒト HB s抗体固定化ニトロセルロースメンブランフィルターの試 験片の一端 (吸液部) の近傍に血球分離相 (東洋ろ紙 No. 2, 5 x 1 0 mm) を設け、 固定相および血球分離相を有するニトロセルロースメンブランフィルタ 一からなる検査片を得た。 (5) 標識相を設けた免疫学的検査片の作製
5重量%ポリビニルピロリ ドン (粘度平均分子量 25000 ) 水溶液 lmlに 、 実施例 B - 1の ( 2 ) で作製した第一標識体含有液 0. lmlを加えて十分混 合した後、 この溶液 1 0 1を上記検査片の固定相の位置から 20〜30mmの 位置に塗布し、 これをデシケ一夕一内で 2日間乾燥して、 標識相を設けた免疫学 的検査片を得た。 実施例 B— 2 免疫学的検査用キットによるヒト HB s抗原の検出
実施例 B— 1の (5) で作製した検査片の血球分離相に、 ヒト HBs抗原を生 理食塩水溶液に溶解させた被検液 1 を滴下した。 その後、 直ちにへモグロ ビン抗原溶液 (蛋白質濃度 20 Ong/ml) および実施例 B— 1の (3) で作 製した第二標識体含有液 (固形分濃度 0. 2重量%) の混合液 1 00 1を吸液 部に滴下して展開した。 1 0分後の固定相上での発色を目視観察した (図 5)。 その結果を表 B— 1に示す。
表 B— 1
Figure imgf000055_0001
- :発色なし 土:弱い発色 +:強い発色 比較例 Β - 1
実施例 Β - 1の (4) で作製した検査片の血球分離相に、 ヒト HB s抗原を生 理食塩水溶液に溶解させた被検液 1 0 1を滴下した。 その後、 直ちに実施例 B 一 1の (2) で作製した第一標識体含有液 (固形分濃度 0. 2重量 5 0 / 1 を吸液部に滴下して展開した。 1 0分後、 ヘモグロビン抗原溶液 (蛋白質濃度 2 0 O ng/m l ) 1 0 0〃 1を吸液部に滴下して展開した。 さらに 1 0分後、 実 施例 B - 1の (3) で作製した第二標識体含有液 (固形分濃度 0. 2重量 5 0 1を吸液部に滴下して展開した。 1 0分後の固定相上での発色を目視観察し た。 その結果を表 Β— 2に示す。 表 B— 2
Figure imgf000056_0001
一 :発色なし 土:弱い発色 + :強い発色 実施例 Β— 3 免疫学的検査用キットによるヒト HB s抗原の検出
実施例 Β— 1の (4) で作製した検査片の血球分離相に、 ヒト HB s抗原を生 理食塩水溶液に溶解させた被検液 1 0 1を滴下した。 その後、 直ちに実施例 B 一 1の (2) で作製した第一標識体含有液 (固形分濃度 0. 2重量%) 5 0 1 を吸液部に滴下して展開した。 1 0分後、 ヘモグロビン抗原溶液 (蛋白質濃度 2 0 0 n g/m 1 ) 1 0 0 1を吸液部に滴下して展開した。 さらに 1 0分後、 実 施例 B - 1の (3) で作製した第二標識体含有液 (固形分濃度 0. 2重量 5 0 1を吸液部に滴下して展開した (図 6) 1 0分後の固定相上での発色を目 視観察した。 その結果を表 B— 3に示す。 表 B— 3
Figure imgf000057_0001
一 :発色なし 土:弱い発色 +:強い発色 比較例 B— 2
実施例 B— 1の (4) で作製した検査片の血球分離相に、 ヒト HB s抗原を生 理食塩水溶液に溶解させた被検液 1 0 1を滴下した。 その後、 直ちに実施例 B 一 1の (2) で作製した第一標識体含有液 (固形分濃度 0. 2重量 5 0 1 を吸液部に滴下して展開した。 1 0分後の固定相上での発色を目視観察した。 そ の結果を表 B— 4に示す。
表 B— 4
Figure imgf000058_0001
一 :発色なし 土:弱い発色 +:強い発色 実施例 Β— 4 免疫学的検査用キットによるヒト HB s抗原の検出
実施例 Β - 1の (4) で作製した検査片の血球分離相に、 ヒト HB s抗原を生 理食塩水溶液に溶解させた被検液 1 を滴下した。 その後、 直ちに実施例 B 一 1の (2) で作製した第一標識体含有液 (固形分濃度 0. 2重量%) 、 へモグ ロビン抗原溶液 (蛋白質濃度 200 n g/m 1 ) および実施例 B - 1の (3) で 作製した第二標識体含有液 (固形分濃度 0. 2重量%) の混合液 1 00 1を吸 液部に滴下して展開した。 1 0分後の固定相上での発色を目視観察した (図 7) 。 その結果を表 B— 5に示す。 表 B— 5
Figure imgf000059_0001
- :発色なし 土:弱い発色 +:強い発色 比較例 B - 3
実施例 B - 1の (4) で作製した検査片の血球分離相に、 ヒト HB s抗原を生 理食塩水溶液に溶解させた被検液 1 0 1を滴下した。 その後、 直ちに実施例 B 一 1の (2) で作製した第一標識体含有液 (固形分濃度 0. 2重量%) 5 0 / 1 を吸液部に滴下して展開した。 1 0分後、 ヘモグロビン抗原溶液 (蛋白質濃度 2 0 0 n g/m 1 ) 1 0 0 1を吸液部に滴下して展開した。 さらに 1 0分後、 実 施例 B - 1の (3) で作製した第二標識体含有液 (固形分濃度 0. 2重量%) 5 0 1を吸液部に滴下して展開した。 1 0分後の固定相上での発色を目視観察し た。 その結果を表 B— 6に示す。 表 B— 6
Figure imgf000060_0001
一 :発色なし 土:弱い発色 +:強い発色 実施例 B 5 標識相を設けた免疫学的検査片の作製
5重量%ポリビニルピロリ ドン (粘度平均分子量 25 0 0 0 ) 水溶液 l m lに 、 実施例 B - 1の ( 3 ) で作製した第二標識体含有液 0. l m lを加えて十分混 合した後、 この溶液 1 0 / 1を実施例8— 1の (4) の検査片の固定相の位置か ら 20〜 30 mmの位置に塗布し、 これをデシケ一夕一内で 2日間乾燥して、 標 識相を設けた免疫学的検査片を得た。 実施例 B— 6 免疫学的検査用キットによるヒト HB s抗原の検出
実施例 B - 5で作製した検査片の血球分離相に、 ヒト HB s抗原を生理食塩水 溶液に溶解させた被検液 1 0 / 1を滴下した。 その後、 直ちにヘモグロビン抗原 溶液 (蛋白質濃度 20 0 n g/m 1 ) および実施例 B— 1の (2) で作製した第 一標識体含有液 (固形分濃度 0. 2重量%) の混合液 1 0 0 1を吸液部に滴下 して展開した。 1 0分後の固定相上での発色を目視観察した (図 8) 。 その結果 を表 B— 7に示す c 表 B— 7
Figure imgf000061_0001
一 :発色なし 土 :弱い発色 + :強い発色 比較例 B - 4
実施例 B - 1の (2 ) で調製した第一標識体だけを用い、 第二標識体および介 在物質であるヘモグロビン抗原を用いない以外は実施例 B— 6と同様にヒト H B s抗原の測定を行った。 すなわち、 実施例 B - 5で作製した検査片の血球分離相 に、 ヒト H B s抗原を生理食塩水溶液に溶解させた被検液 1 0 1を滴下した後 、 直ちに第一標識体含有液 (固形分濃度 0 . 2重量 5 0 ^ 1を吸液部に滴下 して展開し、 1 0分後の固定相での発色を目視観察した。 その結果を表 B— 8に 示す。 表 B— 8
Figure imgf000062_0001
一 :発色なし 土:弱い発色 +:強い発色 実施例 Β - 7 標識相を設けた免疫学的検査片の作製
5重量%ポリビニルピロリ ドン (粘度平均分子量 25 0 0 0 ) 水溶液 l m lに 、 実施例 B - 1の (2) で作製した第一標識体含有液および実施例 B - 1の (3 ) で作製した第二標識体含有液をそれぞれ 0. lm l加えて十分混合した後、 こ の溶液 1 0 1を実施例 B— 1の (4) の検査片の固定相の位置から 4 0〜5 0 mmの位置に塗布し、 これをデシケ一ター内で 2日間乾燥して、 標識相を設けた 免疫学的検査片を得た。 実施例 B— 8 免疫学的検査用キットによるヒト HB s抗原の検出
実施例 B— 7で作製した検査片の血球分離相に、 ヒト HB s抗原を生理食塩水 溶液に溶解させた被検液 1 を滴下した。 その後、 直ちにヘモグロビン抗原 溶液 (蛋白質濃度 20 0 n g/m 1 ) 1 0 0 1を吸液部に滴下して展開した。 1 0分後の固定相上での発色を目視観察した (図 9) 。 その結果を表 B - 9に示 す c 表 B— 9
Figure imgf000063_0001
一 :発色なし 土:弱い発色 + :強い発色 比較例 Β— 5
実施例 Β - 7で作製した検査片の血球分離相に、 ヒト HB s抗原を生理食塩水 溶液に溶解させた被検波 1 0 1を滴下した。 その後、 直ちに実施例 Β— 1の ( 2) で作製した第一標識体含有液 (固形分濃度 0. 2重量 5 0 1を吸液部 に滴下して展開した。 1 0分後、 ヘモグロビン抗原溶液 (蛋白質濃度 2 0 0 n g / 1 ) 1 0 0〃 1を吸液部に滴下して展開した。 さらに 1 0分後、 実施例 B— 1の (3) で作製した第二標識体含有液 (固形分濃度 0. 2重量%) 5 0 / 1を 吸液部に滴下して展開した。 1 0分後の固定相上での発色を目視観察した。 その 結果を表 B— 1 0に示す。 表 B— 1 0
Figure imgf000064_0001
一 :発色なし 土 :弱い発色 + :強い発色 実施例 C一 1
〔水分散型高分子重合体粒子の作製〕
スチレンモノマー 5 0 g、 アクリル酸 0. 5 g、 トリエチレングリコールジメ タクリレート 0. 2 g、 及び蒸留水 44 0 gを窒素気流下で温度 75°Cにて攪拌 しながら、 これに過硫酸カリウム 0. 25 gを水 1 0 gに溶解した水溶液を加え 、 1 0時間重合させて、 平均粒径 0. 22 /mの水分散型高分子重合体粒子の水 分散液を得た。
得られた重合体粒子分散液をアルカリ、 酸、 蒸留水の順序にて遠心洗浄した後 、 固形分濃度 1 0重量%に調整した (担体粒子分散液) 。
スダンブル一 0. 2 gをトルエン 20m 1に溶解し、 これにドデシル硫酸ナト リウ厶 0. 2 g及び蒸留水 1 0 0m lを加え、 超音波分散機でこの混合液を乳化 した。 得られた乳化液に前記担体粒子分散液 (固形分濃度 1 0重量%) 3 Om 1を加 え、 室温にて 24時間攪拌した。 この液をエバポレー夕にてトルエンを除去した 後、 0. 0 1 Mホウ酸緩衝液 (pH7. 5) にて遠心洗浄を行い、 固形分濃度 5 重量%に調整した。
この液 5 Om 1に 1ーェチルー 3— ( 3—ジメチルァミノプロピル) カルポジ イミ ド塩酸塩水溶液 ( 1 OmgZm 1 ) 5m 1および 0. 0 3M m—キシレン ジァミン水溶液 5 Om 1を加え、 室温にて 5時間反応させた後、 75 °Cにて 5時 間加熱処理し、 前記と同じ緩衝液にて遠心洗浄を行い、 固形分濃度 1重量%にな るように調整した (スダンブル一染色キシレンジアミンスぺ一サ化粒子分散液) ο
〔標識体の作製〕
前記スダンブル一染色キシレンジァミンスぺーサ化粒子分散液 1 Om 1にグル タルアルデヒド水溶液 ( 0. lmgZml) 1 m 1を加え、 室温にて 2時間反応 させた後、 前記と同じ緩衝液にて遠心洗浄し、 固形分濃度 1重量%の分散液に調 整した。 得られた分散液 1 Om lに、 ビオシチン lmgと抗ヒト HB s抗体 (ゥ サギ I gG、 5mg/m 1 ) 1 m 1 とを加え、 1 0 °Cにて 24時間攪拌した。 こ れを前記と同じ緩衝液で遠心洗浄し、 固形分濃度 1重量%となるように再分散さ せ、 共有結合で抗体を結合したスダンブル一染色粒子標識ビオシチン -抗ヒト H B s抗体 (標識体) を得た。
〔固定相の作製〕
抗ヒト HB s抗体 (ゥサギ I gG) を、 0. 1 Mリン酸緩衝液 (pH7. 4) にて希釈し、 最終濃度 lmgZmlの水溶液を調製した。 この水溶液をニトロセ ルロ一スメンブランフィルター (東洋濾紙、 5 x 1 0 Omm) の一端から 2 cm 部位に 1 0 / 1塗布した後、 直ちに 37 °Cで 1時間静置した後、 ニトロセル口一 スメンブランフィルターを取り出し、 0. 1 %ゥシ血清アルブミンおよび 0. 1 %Twe e n 20の水溶液に 1時間浸漬させた。 その後、 ニトロセルロースメンブランフィルターを取り出し、 室温で 3時間風 乾静置し、 ニトロセルロースメンブランフィルタ一の一端に不織布 ( 5mmx 1 Omm) の滴下部を有し、 抗ヒト HB s抗体を固定化した固定相を有するニトロ セルロースメンブランフィルター (免疫学的検査片) を得た。
〔ヒト HBsの検出〕
ヒト HB s抗原を生理食塩水溶液に溶解させた被検試料、 標識体およびアビジ ン混合溶液 (固形分濃度 0. 2重量%) を混合し、 この液 1 00 1を、 前記免 疫学的検査片の一端 (滴下部) から滴下して展開し、 20分後の固定相の発色を 観察した。 結果を表 C— 1に示す。 実施例 C一 2
実施例 C一 1と同様にして、 スダンブルー染色粒子標識ビオシチン—抗ヒト H B s抗体 (標識体) を得た。
〔固定相とアビジン相の作製〕
抗ヒト HB s抗体 (ゥサギ I gG) を、 0. 1Mリン酸緩衝液 (pH7. 4) にて希釈し、 最終濃度 1 mg/m 1の水溶液を調製した。 この水溶液に、 ニトロ セルロースメンブランフィルタ一 (東洋濾紙、 5 X 1 00 mm) の一端から 2 c m部位に 1 0〃 1塗布した後、 直ちに 37°Cで 1時間静置した後、 ニトロセル口 —スメンブランフィルターを取り出し、 0. 1 %ゥシ血清アルブミン、 0. 1% Twe e n 20の水溶液に 1時間浸漬した。
その後、 ニトロセルロースメンブランフィルターを取り出し、 室温で 3時間静 置し、 ニトロセルロースメンブランフィルタ一の一端に不織布 (5mmx 1 0m m) の滴下部を有し、 抗ヒト HB s抗体が固定化された固定相を有するニトロセ ルロ一スメンブランフィルター (免疫学的検査片) を得た。 その後、 0. 1Mリ ン酸緩衝液 (pH7. 4) に溶解したアビジン (lmgZml) を、 前記免疫学 的検査片の固定相と滴下部の間に 1 0 1塗布した後、 直ちに 37 °Cで 1時間静 置し、 アビジン相を有する免疫学的検査片を得た。
〔ヒ ト HB sの検出〕
前記免疫学的検査片のアビジン相側の一端から、 ヒト HB s抗原を生理食塩水 溶液に溶解させた被検試料と標識体 (固形分濃度 0. 2重量 の混合液 1 0 0 1を滴下部に滴下して展開し、 2 0分後の固定相の発色を観察した。
結果を表 C一 1に示す。 表 C— 1
Figure imgf000067_0001
一 :発色なし 土:弱い発色 + :強い発色 表 C一 1より、 本発明の免疫学的方法によるヒト HB s抗原の検出感度は、 約 0. 2 5 n g/m 1であった。 比較例 C一 1
実施例 C一 1と同様にして抗ヒト HB s抗体を固定化したニトロセルロースメ ンブランフィルター、 スダンブルー染色粒子標識抗ヒト HB s抗体 (標識体) を 得た。
前記ニトロセルロースメンブランフィルターからなる試験片の一端から、 ヒト HB s抗原を生理食塩水溶液に溶解させた被検試料と標識体 (固形分濃度 0. 2 重量%) の混合液 1 0 0 1を滴下させ、 20分後の固定相の発色を観察した。 結果を表 C一 2に示す。 表 C一 2
Figure imgf000068_0001
一 :発色なし 土 :弱い発色 + :強い発色
表 C一 2より、 比較例の方法によるヒト HB s抗原の検出感度は、 約 1 O n g Zm lであった。 本発明の免疫学的方法は、 従来法に比較して約 4 0倍感度が上 昇することがわかる。 実施例 C一 3 〔標識体の作製〕
実施例 C一 1と同様にして得られたスダンブル一染色キシレンジァミンスぺ一 サ化粒子分散液 1 Om 1にグルタルアルデヒド水溶液 (0. lmgノ ml) 1 m 1を加え、 室温にて 2時間反応させた後、 実施例 C一 1と同じ緩衝液にて遠心洗 浄し、 固形分濃度 1重量%の分散液に調整した。 得られた分散液 1 Omlに、 ァ ビジン 1 mgと抗ヒト HB s抗体 (ゥサギ I gG、 5mg/m 1 ) 1 m 1とを加 え、 1 0°Cにて 24時間攪拌した。 これを前記と同じ緩衝液で遠心洗浄し、 固形 分濃度 1重量 となるように再分散させ、 共有結合で抗体を結合したスダンプル 一染色粒子標識アビジン一抗ヒト HB s抗体 (標識体) を得た。
〔ピオチンと第二標識物質の結合体の作製〕
実施例 C一 1と同様にして得られたスダンブル一染色キシレンジアミンスぺ一 サ化粒子分散液 1 0mlにグルタルアルデヒド水溶液 ( 0. 1 m gZm 1 ) 1 m
1を加え、 室温にて 2時間反応させた後、 実施例 C— 1と同じ緩衝液にて遠心洗 浄し、 固形分濃度 1重量%の分散液に調整した。 この分散液 1 Omlに、 ビォチ ン lmgを加え、 1 0°Cにて 24時間攪拌した。 これを前記と同じ緩衝液で遠心 洗浄し、 固形分濃度 1重量%となるように再分散させ、 共有結合でビォチンを結 合したスダンブルー染色粒子標識ピオチン (ピオチンと第二標識物質の結合体) を得た。
〔固定相の作製〕
実施例 C一 1と同様にしてニトロセルロースメンブランフィル夕一の一端に不 織布 (5 X 1 Omm) の滴下部を有し、 抗ヒト H B s抗体を固定化した固定相を 有する二ドロセルロースメンブランフィルター (免疫学的検査片) を得た。 〔ヒ ト HB sの検出〕
ヒト HB s抗原を生理食塩水溶液に溶解させた被検試料、 標識体 (固形分濃度 0. 2重量 およびピオチンと第二標識物質の結合体 (固形分濃度 0. 2重量 %) を混合し、 この液 1 00 1を、 前記免疫学的検査片の一端 (滴下部) から 滴下して展開し、 20分後の固定相の発色を観察した。 結果を表 C一 3に示す。 実施例 C一 4
実施例 C一 3と同様にして、 スダンブルー染色粒子標識アビジンー抗ヒト HB s抗体 (標識体) を得た。 また、 実施例 C一 3と同様にして、 スダンブルー染色 粒子標識ピオチン (ピオチンと第二標識物質の結合体) を得た。
〔固定相の作製〕
抗ヒト HB s抗体 (ゥサギ I gG) を、 0. 1Mリン酸緩衝液 (pH7. 4) にて希釈し、 最終濃度 lmgZmlの水溶液を調製した。 この水溶液をニトロセ ルロ一スメンブランフィルター (東洋濾紙、 5 x 1 00 mm) の一端から 2 cm 部位に 1 0〃 1塗布した後、 直ちに 37°Cで 1時間静置した後、 ニトロセルロー スメンブランフィル夕一を取り出し、 0. 1 %ゥシ血清アルブミンおよび 0. 1 %Twe e n™20の水溶液に 1時間浸漬させた。
その後、 ニトロセルロースメンブランフィルターを取り出し、 室温で 3時間風 乾静置し、 このニトロセルロースメンブランフィルタ一の一端に不織布 (5 X 1 0 mm) の滴下部を有し、 抗ヒト HB s抗体を固定化した固定相を有するニトロ セルロースメンブランフィルター (免疫学的検査片) を得た。
〔標識相の作製〕
0. 1Mリン酸緩衝液 (pH7. 4) に溶解したピオチンと第二標識物質の結 合体 (固形分濃度 0. 02%) を前記ニトロセルロースメンブランフィルタ一の 固定相と滴下部の間 1. 5 cm部位に 1 0 1塗布した後、 直ちに 37でで1時 間静置し、 標識相をさらに有する免疫学的検査片を得た。
〔ヒト HB sの検出〕
ヒト HB s抗原を生理食塩水溶液に溶解させた被検液と標識体溶液 (固形分濃 度 0. 2重量 との混合液 1 00 / 1を、 滴下部に滴下して展開させ、 20分 後の固定相の発色を観察した。 結果を表 C - 3に示す。 表 C— 3
Figure imgf000071_0001
発色なし 土 :弱い発色 + :強い発色 表 C一 3より、 本発明の免疫学的方法によるヒト HB s抗原の検出感度は、 約 0. 2 5 n gZm lであった。 本発明の免疫学的方法は、 比較例 C— 1の方法に 比較して約 4 0倍感度が上昇することがわかる。 実施例 C一 5
〔標識体の作製〕
実施例 C一 1と同様にして得られたスダンブル一染色キシレンジアミンスぺ一 サ化粒子分散液 1 0m 1にグルタルアルデヒド水溶液 (0. l mg/m l ) 1 m 1を加え、 室温にて 2時間反応させた後、 実施例 C - 1 と同じ緩衝液にて遠心洗 浄し、 固形分濃度 1重量%の分散液に調整した。 得られた分散液 1 Om lに、 ビ ォチン l mgと抗ヒト HB s抗体 (ゥサギ I gG mg/m 1 ) 1 m 1 とを加 え、 1 0°Cにて 24時間攪拌した。 これを前記と同じ緩衝液で遠心洗浄し、 固形 分濃度 1重量%となるように再分散させ、 共有結合で抗体を結合したスダンブル —染色粒子標識ピオチン一抗ヒト HB s抗体 (標識体) を得た。
〔ァビジンと第二標識物質の結合体の作製〕
実施例 C一 1と同様にして得られたスダンブルー染色キシレンジアミンスぺ一 サ化粒子分散液 1 Om 1にグルタルアルデヒド水溶液 (0. lmgZml) 1 m 1を加え、 室温にて 2時間反応させた後、 実施例 C一 1と同じ緩衝液にて遠心洗 浄し、 固形分濃度 1重量%の分散液に調整した。 この分散液 1 Omlに、 ァビジ ン lmgを加え、 1 0°Cにて 24時間攪拌した。 これを前記と同じ緩衝液で遠心 洗浄し、 固形分濃度 1重量%となるように再分散させ、 共有結合でアビジンを結 合したスダンブルー染色粒子標識ァビジン (アビジンと第二標識物質の結合体) を得た。
〔固定相の作製〕
実施例 C一 1と同様にしてニトロセルロースメンブランフィルタ一の一端に不 織布 (5 X 1 Omm) の滴下部を有し、 抗ヒト H B s抗体を固定化した固定相を 有するニトロセルロースメンブランフィルター (免疫学的検査片) を得た。 〔ヒト HB sの検出〕
ヒト HB s抗原を生理食塩水溶液に溶解させた被検試料、 標識体 (固形分濃度 0. 2重量 およびアビジンと第二標識物質の結合体 (固形分濃度 0. 2重量 %) を混合し、 この液 1 00 1を、 前記免疫学的検査片の一端 (滴下部) から 滴下して展開し、 20分後の固定相の発色を観察した。 結果を表 C一 4に示す。 実施例 C— 6
実施例 C— 5と同様にして、 スダンブルー染色粒子標識ピオチン—抗ヒト HB s抗体 (標識体) を得た。 また、 実施例 C— 5と同様にして、 スダンブルー染色 粒子標識アビジン (アビジンと第二標識物質の結合体) を得た。
〔固定相の作製〕
抗ヒト HB s抗体 (ゥサギ I gG) を、 0. 1Mリン酸緩衝液 (pH7. 4) にて希釈し、 最終濃度 l mg/m lの水溶液を調製した。 この水溶液をニトロセ ルロースメンブランフィルター (東洋濾紙、 5 X 1 0 0 mm) の一端から 2 cm 部位に 1 0 1塗布した後、 直ちに 3 7°Cで 1時間静置した後、 ニトロセル口一 スメンブランフィルターを取り出し、 0. 1 %ゥシ血清アルブミンおよび 0. 1 %Twe e n™20の水溶液に 1時間浸漬させた。
その後、 ニトロセルロースメンブランフィルタ一を取り出し、 室温で 3時間風 乾静置し、 このニトロセルロースメンブランフィルタ一の一端に不織布 (5 X 1 0 mm) の滴下部を有し、 抗ヒト HB s抗体を固定化した固定相を有するニトロ セルロースメンブランフィルター (免疫学的検査片) を得た。
〔標識相の作製〕
0. 1 Mリン酸緩衝液 (pH7. 4) に溶解したアビジンと第二標識物質の結 合体 (固形分濃度 0. 02%) を前記ニトロセルロースメンブランフィルタ一の 固定相と滴下部の間 1. 5 cm部位に 1 0 / 1塗布した後、 直ちに 37でで1時 間静置し、 標識相をさらに有する免疫学的検査片を得た。
〔ヒト HB sの検出〕
ヒト HB s抗原を生理食塩水溶液に溶解させた被検液と標識体溶液 (固形分濃 度 0. 2重量 との混合液 1 0 0 1を、 滴下部に滴下して展開させ、 20分 後の固定相の発色を観察した。 結果を表 C - 4に示す。
表 C— 4
Figure imgf000074_0001
表 C一 4より、 本発明の免疫学的方法によるヒト HB s抗原の検出感度は、 約 0. 25 n g/m lであった。 本発明の免疫学的方法は、 比較例 C— 1の方法に 比較して約 4 0倍感度が上昇することがわかる。 産業上の利用可能性
本発明により、 迅速かつ簡便で、 高感度な免疫学的検査方法およびそれに用い られるキットが提供される。

Claims

請 求 の 範 囲
1 . 検査対象物と特異的に結合し得る第一の免疫化学的成分を固定化した固定 相を表面上の任意の領域に設けた吸水性基材を用いて該検査対象物を検出する免 疫学的検査方法であって、
(1) 該検查対象物と特異的に結合し得る第二の免疫化学的成分に標識物質を結合 してなる標識免疫化学的成分 (第一標識免疫化学的成分) を含有する液と、
(2) 該第二の免疫化学的成分と特異的に結合し得る第三の免疫化学的成分に標識 物質を結合してなる標識免疫化学的成分 (第二標識免疫化学的成分) を含有する 液とを用いることを特徴とする免疫学的検査方法。
2 . 以下の工程を含むことを特徴とする請求項 1記載の免疫学的検査方法:
(1) 検査対象物と特異的に結合し得る第一の免疫化学的成分を固定化した固定 相を表面上の任意の領域に設けた吸水性基材の一端から、 該検査対象物と特異的 に結合し得る第二の免疫化学的成分に標識物質を結合してなる標識免疫化学的成 分 (第一標識免疫化学的成分) を含有する液と被検液との混合物を吸収させて展 開し、
(2) 該混合物中で形成される検査対象物と第一標識免疫化学的成分との免疫複 合体を、 固定相に固定化された該第一の免疫化学的成分に結合させて捕捉した後
(3) 該第二の免疫化学的成分と特異的に結合し得る第三の免疫化学的成分に標 識物質を結合してなる標識免疫化学的成分 (第二標識免疫化学的成分) を含有す る液を該吸水性基材に吸収させて展開し、 該固定相上に捕捉された免疫複合体の 第一標識免疫化学的成分に第二標識免疫化学的成分を結合させ、
(4) 該固定相上の標識物質を測定することにより該検査対象物を検出する。
3 . 以下の工程を含むことを特徴とする請求項 1記載の免疫学的検査方法:
(1) 検査対象物と特異的に結合し得る第一の免疫化学的成分を固定化した固定 相を表面上の任意の領域に設けた吸水性基材の一端から、 被検液、 該検査対象物 と特異的に結合し得る第二の免疫化学的成分に標識物質を結合してなる標識免疫 化学的成分 (第一標識免疫化学的成分) を含有する液および該第二の免疫化学的 成分と特異的に結合し得る第三の免疫化学的成分に標識物質を結合してなる標識 免疫化学的成分 (第二標識免疫化学的成分) を含有する液の混合物を吸収させて 展開し、
(2) 該混合物中で形成される検査対象物、 第一標識免疫化学的成分および第二 標識免疫化学的成分からなる免疫複合体を、 固定相に固定化された該第一の免疫 化学的成分に結合させて捕捉した後、
(3) 該固定相上の標識物質を測定することにより該検査対象物を検出する。
4 . 以下の工程を含むことを特徴とする請求項 1記載の免疫学的検査方法:
(1) 検査対象物と特異的に結合し得る第一の免疫化学的成分を固定化した固定 相を表面上の任意の領域に設けた吸水性基材の一端と、 該固定相との間の任意の 領域に被検試料を吸収させるかまたは塗布し、
(2) 該吸水性基材の該一端から、 該検査対象物と特異的に結合し得る第二の免 疫化学的成分に標識物質を結合してなる標識免疫化学的成分 (第一標識免疫化学 的成分) を含有する液を吸収させて展開し、
(3) 該吸水性基材上で形成される検出対象物と第一標識免疫化学的成分との免 疫複合体を、 固定相に固定化された該第一の免疫化学的成分に結合させて捕捉し た後、
(4) 該第二の免疫化学的成分と特異的に結合し得る第三の免疫化学的成分に標 識物質を結合してなる標識免疫化学的成分 (第二標識免疫化学的成分) を含有す る液を該吸水性基材に吸収させて展開し、 該固定相上に捕捉された免疫複合体の 第一標識免疫化学的成分に第二標識免疫化学的成分を結合させ、
(5) 該固定相上の標識物質を測定することにより該検査対象物を検出する。
5 . 以下の工程を含むことを特徴とする請求項 1記載の免疫学的検査方法:
(1) 検査対象物と特異的に結合し得る第一の免疫化学的成分を固定化した固定 相を表面上の任意の領域に設けた吸水性基材の一端と、 該固定相との間の任意の 領域に被検試料を吸収させるかまたは塗布し、
(2) 該吸水性基材の該一端から、 該検査対象物と特異的に結合し得る第二の免 疫化学的成分に標識物質を結合してなる標識免疫化学的成分 (第一標識免疫化学 的成分) を含有する液および該第二の免疫化学的成分と特異的に結合し得る第三 の免疫化学的成分に標識物質を結合してなる標識免疫化学的成分 (第二標識免疫 化学的成分) を含有する液の混合物を吸収させて展開し、
(3) 該吸水性基材上で形成される検出対象物、 第一標識免疫化学的成分および 第二標識免疫化学的成分からなる免疫複合体を、 固定相に固定化された該第一の 免疫化学的成分に結合させて捕捉した後、
(4) 該固定相上の標識物質を測定することにより該検査対象物を検出する。
6 . 第一および第二標識免疫化学的成分中の標識物質が同一のものである請求 項 1〜 5いずれか記載の方法。
7 . 該標識物質が着色されたラテックス粒子である請求項 1〜6いずれか記載 の方法。
8 . 検査対象物と特異的に結合し得る第一の免疫化学的成分を固定化した固定 相を表面上の任意の領域に設けた吸水性基材、 該検査対象物と特異的に結合し得 る第二の免疫化学的成分に標識物質を結合してなる標識免疫化学的成分 (第一標 識免疫化学的成分) およぴ該第二の免疫化学的成分と特異的に結合し得る第三の 免疫化学的成分に標識物質を結合してなる標識免疫化学的成分 (第二標識免疫化 学的成分) を含むことを特徴とする免疫学的検査用キット。
9 . 第一および第二標識免疫化学的成分中の標識物質が同一のものである請求 項 8記載のキッ ト。
1 0 . 該標識物質が着色されたラテックス粒子である請求項 8または 9記載の ャッ 卜 o
1 1 . 請求項 2〜 7いずれか記載の免疫学的検査方法に使用される請求項 8〜 1 0いずれか記載のキット。
1 2 . 吸水性基材の表面上の任意の領域に設けた固定相に固定化された、 検査 対象物と特異的に結合し得る第一の免疫化学的成分と、 検査対象物と特異的に結 合し得る第二の免疫化学的成分および検査対象物とは結合しない第三の免疫化学 的成分に標識物質が結合してなる標識体 (第一標識体) とで、 被検試料中の検査 対象物をサンドィツチした免疫複合体を該固定相上に形成させて、 固定相上の標 識物質のシグナルを測定する免疫学的検査方法であつて、 該第三の免疫化学的成 分と介在物質を介して特異的に結合し得る第四の免疫化学的成分に標識物質が結 合してなる標識体 (第二標識体) 力、 該介在物質を介して上記サンドイッチ型免 疫複合体中の第三の免疫化学的成分に結合した免疫複合体を形成させて標識物質 のシグナルを増幅することを特徴とする方法。
1 3 . 該吸水性基材の一端と固定相との間に、 第二標識体が水との接触によつ て脱離し得る形態で保持される標識相が設けられ、 且つ以下の工程を含むことを 特徴とする請求項 1 2記載の方法:
(1) 該吸水性基材の該一端から、 被検試料を含有する液、 第一標識体を含有す る液および該介在物質を含有する液の混合物を展開し、
(2) 該吸水性基材上で形成される検査対象物、 第一標識体、 介在物質および第 二標識体からなる免疫複合体を固定相に固定化された第一の免疫化学的成分に結 合させて捕捉した後、
(3) 該固定相上の標識物質のシグナルを測定することにより該検査対象物を検 出^る。
1 4 . 該吸水性基材の一端と固定相との間に、 第二標識体が水との接触によつ て脱離し得る形態で保持される標識相が設けられ、 且つ以下の工程を含むことを 特徴とする請求項 1 2記載の方法:
(1) 該吸水性基材の該一端と固定相との間の任意の領域に被検試料を供給し、
(2) 該吸水性基材の該一端から、 第一標識体を含有する液と該介在物質を含有 する液との混合物を展開し、
(3) 該吸水性基材上で形成される検査対象物、 第一標識体、 介在物質および第 二標識体からなる免疫複合体を固定相に固定化された第一の免疫化学的成分に結 合させて捕捉した後、
(4) 該固定相上の標識物質のシグナルを測定することにより該検査対象物を検 出^る。
1 5 . 以下の工程を含むことを特徴とする請求項 1 2記載の免疫学的検査方法
(1) 検査対象物と特異的に結合し得る第一の免疫化学的成分を固定化した固定 相と、 検査対象物と特異的に結合し得る第二の免疫化学的成分および検査対象物 とは結合しない第三の免疫化学的成分に標識物質が結合してなる標識体 (第一標 識体) を水との接触によって脱離し得る形態で保持する標識相とを、 表面上の任 意の領域に設けた吸水性基材の、 固定相よりも標識相により近い方の一端から、 被検試料を含有する液、 第三の免疫化学的成分と介在物質を介して特異的に結合 し得る第四の免疫化学的成分に標識物質が結合してなる標識体 (第二標識体) を 含有する液および該介在物質を含有する液の混合物を展開し、
(2) 該吸水性基材上で形成される検査対象物、 第一標識体、 介在物質および第 二標識体からなる免疫複合体を固定相に固定化された第一の免疫化学的成分に結 合させて捕捉した後、
(3) 該固定相上の標識物質のシグナルを測定することにより該検査対象物を検 出する。
1 6 . 以下の工程を含むことを特徴とする請求項 1 2記載の免疫学的検査方法
(1) 検査対象物と特異的に結合し得る第一の免疫化学的成分を固定化した固定 相と、 検査対象物と特異的に結合し得る第二の免疫化学的成分および検査対象物 とは結合しない第三の免疫化学的成分に標識物質が結合してなる標識体 (第一標 識体) を水との接触によって脱離し得る形態で保持する標識相とを、 表面上の任 意の領域に設けた吸水性基材の、 固定相と該固定相よりも標識相により近い方の 一端との間の任意の領域に被検試料を供給し、
(2) 該吸水性基材の該一端から、 第三の免疫化学的成分と介在物質を介して特 異的に結合し得る第四の免疫化学的成分に標識物質が結合してなる標識体 (第二 標識体) を含有する液と、 該介在物質を含有する液との混合物を展開し、
(3) 該吸水性基材上で形成される検査対象物、 第一標識体、 介在物質および第 二標識体からなる免疫複合体を固定相に固定化された第一の免疫化学的成分に結 合させて捕捉した後、
(4) 該固定相上の標識物質のシグナルを測定することにより該検査対象物を検 出する <
1 7 . 以下の工程を含むことを特徴とする請求項 1 2記載の免疫学的検査方法
(1) 検査対象物と特異的に結合し得る第一の免疫化学的成分を固定化した固定 相を表面上の任意の領域に設けた吸水性基材の一端から、 検査対象物と特異的に 結合し得る第二の免疫化学的成分および検査対象物とは結合しない第三の免疫化 学的成分に標識物質が結合してなる標識体 (第一標識体) を含有する液と被検試 料を含有する液との混合物を展開し、 該混合物中で形成される検査対象物と第一 標識体との免疫複合体を、 固定相に固定化された該第一の免疫化学的成分に結合 させて捕捉した後、
(2) 第三および第四の免疫化学的成分の結合を仲介する介在物質を含有する液 を該吸水性基材に展開し、 固定相上に捕捉された免疫複合体中の第三の免疫化学 的成分に結合させ、
(3) さらに第三の免疫化学的成分と介在物質を介して特異的に結合し得る第四 の免疫化学的成分に標識物質が結合してなる標識体 (第二標識体) を含有する液 を該吸水性基材に展開し、 固定相上に捕捉された免疫複合体中の該介在物質に結 合させた後、
(4) 該固定相上の標識物質のシグナルを測定することにより該検査対象物を検 出する。
1 8 . 以下の工程を含むことを特徴とする請求項 1 2記載の免疫学的検査方法
(1) 検査対象物と特異的に結合し得る第一の免疫化学的成分を固定化した固定 相を表面上の任意の領域に設けた吸水性基材の一端と該固定相との間の任意の領 域に被検試料を供給し、 (2) 該吸水性基材の該一端から検査対象物と特異的に結合し得る第二の免疫化 学的成分および検査対象物とは結合しない第三の免疫化学的成分に標識物質が結 合してなる標識体 (第一標識体) を含有する液を展開し、 該吸水性基材上で形成 される検査対象物と第一標識体との免疫複合体を、 固定相に固定化された該第一 の免疫化学的成分に結合させて捕捉した後、
(3) 第三およぴ第四の免疫化学的成分の結合を仲介する介在物質を含有する液 を該吸水性基材に展開し、 固定相上に捕捉された免疫複合体中の第三の免疫化学 的成分に結合させ、
(4) さらに第三の免疫化学的成分と介在物質を介して特異的に結合し得る第四 の免疫化学的成分に標識物質が結合してなる標識体 (第二標識体) を含有する液 を該吸水性基材に展開し、 固定相上に捕捉された免疫複合体中の該介在物質に結 合させた後、
(5) 該固定相上の標識物質のシグナルを測定することにより該検査対象物を検 出^る。
1 9 . 以下の工程を含むことを特徴とする請求項 1 2記載の免疫学的検査方法
(1) 検査対象物と特異的に結合し得る第一の免疫化学的成分を固定化した固定 相を表面上の任意の領域に設けた吸水性基材の一端から、 被検試料を含有する液 、 検査対象物と特異的に結合し得る第二の免疫化学的成分および検査対象物とは 結合しない第三の免疫化学的成分に標識物質が結合してなる標識体 (第一標識体 ) を含有する液、 該第三の免疫化学的成分と介在物質を介して特異的に結合し得 る第四の免疫化学的成分に標識物質が結合してなる標識体 (第二標識体) を含有 する液および該介在物質を含有する液の混合物を展開し、
(2) 該混合物中で形成される検査対象物、 第一標識体、 該介在物質および第二 標識体からなる免疫複合体を、 固定相に固定化された該第一の免疫化学的成分に 結合させて捕捉した後、
(3) 該固定相上の標識物質のシグナルを測定することにより該検査対象物を検 出^る。
2 0 . 以下の工程を含むことを特徴とする請求項 1 2記載の免疫学的検査方法
(1) 検査対象物と特異的に結合し得る第一の免疫化学的成分を固定化した固定 相を表面上の任意の領域に設けた吸水性基材の一端と固定相との間の任意の領域 に被検試料を供給し、
(2) 該吸水性基材の該一端から、 検査対象物と特異的に結合し得る第二の免疫 化学的成分および検査対象物とは結合しなレ、第三の免疫化学的成分に標識物質が 結合してなる標識体 (第一標識体) を含有する液、 該第三の免疫化学的成分と介 在物質を介して特異的に結合し得る第四の免疫化学的成分に標識物質が結合して なる標識体 (第二標識体) を含有する液および該介在物質を含有する液の混合物 を展開し、
(3) 該吸水性基材上で形成される検査対象物、 第一標識体、 該介在物質および 第二標識体からなる免疫複合体を、 固定相に固定化された該第一の免疫化学的成 分に結合させて捕捉した後、
(4) 該固定相上の標識物質のシグナルを測定することにより該検査対象物を検 出"^る。
2 1 . 以下の工程を含むことを特徴とする請求項 1 2記載の免疫学的検査方法
(1) 検査対象物と特異的に結合し得る第一の免疫化学的成分を固定化した固定 相と、 検査対象物と特異的に結合し得る第二の免疫化学的成分および検査対象物 とは結合しない第三の免疫化学的成分に標識物質が結合してなる標識体 (第一標 識体) ならびに該第三の免疫化学的成分と介在物質を介して特異的に結合し得る 第四の免疫化学的成分に標識物質が結合してなる標識体 (第二標識体) が水との 接触によって脱離し得る形態で保持される標識相とを、 表面上の任意の領域に設 けた吸水性基材の、 固定相よりも標識相により近い方の一端から、 被検試料を含 有する液と該介在物質を含有する液との混合物を展開し、
(2) 該吸水性基材上で形成される検査対象物、 第一標識体、 介在物質および第 二標識体からなる免疫複合体を固定相に固定化された第一の免疫化学的成分に結 合させて捕捉した後、
(3) 該固定相上の標識物質のシグナルを測定することにより該検查対象物を検 出^る。
2 2 . 以下の工程を含むことを特徴とする請求項 1 2記載の免疫学的検査方法
(1 ) 検査対象物と特異的に結合し得る第一の免疫化学的成分を固定化した固定 相と、 検査対象物と特異的に結合し得る第二の免疫化学的成分および検査対象物 とは結合しない第三の免疫化学的成分に標識物質が結合してなる標識体 (第一標 識体) ならびに該第三の免疫化学的成分と介在物質を介して特異的に結合し得る 第四の免疫化学的成分に標識物質が結合してなる標識体 (第二標識体) が水との 接触によって脱離し得る形態で保持される標識相とを、 表面上の任意の領域に設 けた吸水性基材の、 固定相と該固定相よりも標識相により近い方の一端との間の 任意の領域に被検試料を供給し、
(2) 該吸水性基材の該一端から、 該介在物質を含有する液を展開し、
(3) 該吸水性基材上で形成される検査対象物、 第一標識体、 介在物質および第 二標識体からなる免疫複合体を固定相に固定化された第一の免疫化学的成分に結 合させて捕捉した後、
(4) 該固定相上の標識物質のシグナルを測定することにより該検查対象物を検 出する <
2 3 . 該吸水性基材の該一端と該固定相との間の任意の領域 (但し、 被検試料 を該吸水性基材の該一端と固定相との間の任意の領域に供給する場合は、 その領 域を含めてそれより固定相側の領域) に、 検査対象物と被検試料中の他の物質と を分離し得る分離相がさらに設けられていることを特徴とする請求項 1 2記載の 免疫学的検査方法。
2 4 . 該吸水性基材が、 固定相と該固定相よりも標識相により近い方の一端と の間の任意の領域 (但し、 被検試料を該吸水性基材の該一端と固定相との間の任 意の領域に供給する場合は、 その領域を含めてそれより固定相側の領域) に、 検 査対象物と被検試料中の他の物質とを分離し得る分離相をさらに設けたものであ ることを特徴とする請求項 1 3〜1 6、 2 1および 2 2いずれか記載の免疫学的 検査方法。
2 5 . 該分離相が、 該吸水性基材の該一端と標識相との間の任意の領域に存在 する請求項 2 4記載の免疫学的検査方法。
2 6 . 該介在物質が、 抗原抗体反応により第三および第四の免疫化学的成分と 特異的に結合する物質である請求項 1 2〜2 5いずれか記載の免疫学的検査方法
2 7 . 該標識物質が着色されたラテックス粒子である請求項 1 2〜2 6いずれ か記載の免疫学的検査方法。
2 8 . 検査対象物と特異的に結合し得る第一の免疫化学的成分を固定化した固 定相を表面上の任意の領域に設けた吸水性基材、 検査対象物と特異的に結合し得 る第二の免疫化学的成分および検査対象物とは結合しない第三の免疫化学的成分 に標識物質が結合してなる標識体 (第一標識体) 、 該第三の免疫化学的成分と介 在物質を介して特異的に結合し得る第四の免疫化学的成分に標識物質が結合して なる標識体 (第二標識体) 、 ならびに第三および第四の免疫化学的成分の結合を 仲介する介在物質を含む免疫学的検査キット。
2 9 . 該吸水性基材が、 その一端と固定相との間の任意の領域 (但し、 被検試 料を該吸水性基材の一端と固定相との間の任意の領域に供給する場合は、 その領 域を含めてそれより固定相側の領域) に、 検査対象物と被検試料中の他の物質と を分離し得る分離相をさらに設けたものであることを特徴とする請求項 2 8記載 のキット。
3 0 . 該吸水性基材の一端と固定相との間に、 第一および第二標識体の少なく とも 1つが、 水との接触によって脱離し得る形態で保持される標識相が設けられ ていることを特徴とする請求項 2 8記載のキット。
3 1 . 該吸水性基材が、 固定相と該固定相よりも標識相により近い方の一端と の間の任意の領域 (但し、 被検試料を該吸水性基材の該一端と固定相との間の任 意の領域に供給する場合は、 その領域を含めてそれより固定相側の領域) に、 検 査対象物と被検試料中の他の物質とを分離し得る分離相をさらに設けたものであ ることを特徵とする請求項 3 0記載のキッ ト。
3 2 . 該分離相が、 該吸水性基材の該一端と標識相との間の任意の領域に存在 する請求項 3 1記載のキット。
3 3 . 該介在物質が抗原抗体反応により第三および第四の免疫化学的成分と特 異的に結合する物質である請求項 2 8〜3 2いずれか記載のキッ ト。
3 4 . 該標識物質が着色されたラテックス粒子である請求項 2 8〜3 3いずれ か記載のキット。
3 5 . 請求項 1 2〜2 7いずれか記載の免疫学的検査方法に使用される請求項
2 8〜3 4いずれか記載のキット。
3 6 . 検査対象物と結合しうる第一の免疫化学的成分を吸水性基材上に固定化 した固定相で、 該第一の免疫化学的成分および、 該検査対象物と結合しうる第二 の免疫化学的成分を標識物質に結合してなる標識体により該検査対象物を挟み込 むサンドイッチ型免疫学的測定方法において、 ピオチンとアビジンの結合を介し て複合体を形成して検査対象物を検出することを特徴とする免疫学的測定方法。'
3 7 . 該標識物質にさらにピオチンが結合しており、 該ビォチンと結合するァ ビジンを介して複合体を形成し、 該複合体中の標識物質により検査対象物を検出 することを特徴とする請求項 3 6記載の免疫学的測定方法。
3 8 . アビジンが、 吸水性基材の一端と固定相との間の任意の領域に水との接 触によって脱離しうる状態で保持されている、 請求項 3 7記載の免疫学的測定方 法。
3 9 . 該標識体として第二の免疫化学的成分、 第一標識物質およびアビジンか らなる結合体を用い、 これにさらにピオチンと第二標識物質の結合体を反応させ て、 該ァビジンと該ビォチンとの結合を介した複合体を形成し、 該複合体中の第 一および第二標識物質により検査対象物を検出することを特徴とする請求項 3 6 記載の免疫学的測定方法。
4 0 . 該ビォチンと第二標識物質の結合体が、 吸水性基材の一端と固定相との 間の任意の領域に水との接触によって脱離しうる状態で保持されている、 請求項
3 9記載の免疫学的測定方法。
4 1 . 該標識体として第二の免疫化学的成分、 第一標識物質およびピオチンか らなる結合体を用い、 これにさらにアビジンと第二標識物質の結合体を反応させ て、 該ビォチンと該ァビジンとの結合を介した複合体を形成し、 該複合体中の第 一および第二標識物質により検査対象物を検出することを特徴とする請求項 3 6 記載の免疫学的測定方法。
4 2 . 該ァビジンと第二標識物質の結合体が、 吸水性基材の一端と固定相との間 の任意の領域に水との接触によって脱離しうる状態で保持されている、 請求項 4 1記載の免疫学的測定方法。
4 3 . 検査対象物と結合しうる第一の免疫化学的成分を吸水性基材上に固定化 した固定相を有する免疫学的検査片、 該検査対象物と結合しうる第二の免疫化学 的成分およびビォチンを標識物質に結合してなる標識体ならびにァビジンを含有 してなる免疫学的測定キット。
4 4 . アビジンが、 免疫学的検査片の吸水性基材の一端と固定相との間の任意 の領域に水との接触によって脱離しうる状態で保持されている、 請求項 4 3記載 の免疫学的測定キット。
4 5 . 検査対象物と結合しうる第一の免疫化学的成分を吸水性基材上に固定化 した固定相を有する免疫学的検査片、 該検査対象物と結合しうる第二の免疫化学 的成分およびァビジンを第一標識物質に結合してなる標識体、 ならびにビォチン と第二標識物質の結合体を含有してなる免疫学的測定キット。
4 6 . 該ビォチンと第二標識物質の結合体が、 免疫学的検査片の吸水性基材の 一端と固定相との間の任意の領域に水との接触によつて脱離しうる状態で保持さ れている、 請求項 4 5記載の免疫学的測定キット。
4 7 . 検査対象物と結合しうる第一の免疫化学的成分を吸水性基材上に固定化 した固定相を有する免疫学的検査片、 該検査対象物と結合しうる第二の免疫化学 的成分およびピオチンを第一標識物質に結合してなる標識体、 ならびにアビジン と第二標識物質の結合体を含有してなる免疫学的測定キット。
4 8 . 該ァビジンと第二標識物質の結合体が、 免疫学的検査片の吸水性基材の 一端と固定相との間の任意の領域に水との接触によって脱離しうる状態で保持さ れている、 請求項 4 7記載の免疫学的測定キッ ト。
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