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WO1999039714A1 - Medicaments destines a des troubles neurologiques - Google Patents

Medicaments destines a des troubles neurologiques Download PDF

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WO1999039714A1
WO1999039714A1 PCT/JP1999/000502 JP9900502W WO9939714A1 WO 1999039714 A1 WO1999039714 A1 WO 1999039714A1 JP 9900502 W JP9900502 W JP 9900502W WO 9939714 A1 WO9939714 A1 WO 9939714A1
Authority
WO
WIPO (PCT)
Prior art keywords
group
neuropathy
prostaglandin
therapeutic agent
above formula
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Ceased
Application number
PCT/JP1999/000502
Other languages
English (en)
French (fr)
Inventor
Yorimasa Suwa
Noboru Yoshioka
Yoshihiko Sumi
Takami Arai
Katsutoshi Sakurai
Toshitaka Nabeshima
Kiyofumi Yamada
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Teijin Ltd
Original Assignee
Teijin Ltd
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Teijin Ltd filed Critical Teijin Ltd
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Priority to AU22994/99A priority patent/AU753080B2/en
Priority to CA002321257A priority patent/CA2321257A1/en
Priority to EP99902840A priority patent/EP1053748A4/en
Publication of WO1999039714A1 publication Critical patent/WO1999039714A1/ja
Anticipated expiration legal-status Critical
Ceased legal-status Critical Current

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    • A61K31/00Medicinal preparations containing organic active ingredients
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    • A61P25/00Drugs for disorders of the nervous system
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    • A61P25/00Drugs for disorders of the nervous system
    • A61P25/28Drugs for disorders of the nervous system for treating neurodegenerative disorders of the central nervous system, e.g. nootropic agents, cognition enhancers, drugs for treating Alzheimer's disease or other forms of dementia
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P43/00Drugs for specific purposes, not provided for in groups A61P1/00-A61P41/00

Definitions

  • the present invention relates to a therapeutic agent for neuropathy. More specifically, the present invention relates to a therapeutic agent for neuropathy containing a prostaglandin having a specific structure as an active ingredient.
  • nerve cells extend their processes (axons or dendrites), form networks between nerve cells via synapses, or communicate with muscle cells, skin cells, etc. It is possible for the first time to fulfill its function. In addition, communication between cells via such protrusions allows the cells to exchange mediators and trophic factors, thereby maintaining the survival of the cells.
  • a drug having an effect of repairing neurite damage is considered to be extremely effective in many diseases caused by neuropathy, nerve damage due to trauma, and the like.
  • Alzheimer's dementia Diseases caused by neuropathy include Alzheimer's dementia, Parkinson's disease, multiple sclerosis, lateral sclerosis, and diabetic peripheral neuropathy (dueupathy). Above all, with the aging society, the increase in Alzheimer's dementia patients has become a serious social problem.
  • Cerebral circulatory metabolism enhancers are originally drugs for cerebrovascular disorders and their sequelae, and do not directly repair neuropathy, and have low efficacy for dementia symptoms.
  • Activators were developed based on the pathological findings of significant acetilcholine nervous system disorders in Alzheimer's disease patients, and are currently the only approved drugs for the treatment of Alzheimer's-type dementia. It has been shown that in type 1 dementia, only the acetylcholine nervous system is affected, and its effects are considered to be limited.
  • drug evaluation systems that have been used to search for therapeutic agents for dementia include in vitro systems that measure the inhibitory activity of neurotransmitter-degrading enzymes such as acetylcholinesterase, and neurological samples that use brain slices.
  • the main system is a system for measuring a transmitter increasing activity, or a system for measuring neurite outgrowth promotion or nerve cell death inhibitory activity using dorsal root ganglion cells or PC1 cells.
  • Scopolamine is an in vivo system. Acetylcholine nervous system, such as cerebral ischemia or hypoxic stress caused by carbon dioxide. .
  • evaluation systems are reasonable as evaluation systems for acetylcholine nervous system activators and cerebral circulation metabolism activators, but actual dementia, especially Alzheimer-type dementia, is pathological and pathological. There is a large gap between them, and they are not enough to evaluate new drugs for treating dementia.
  • a system that measures neurite outgrowth-promoting activity is present not only in the nerve cells that extend the processes but also in the cells on the recipient side that communicate with the extended processes via synapses, and around the nerve cells. Glial cells are present, and the rate and direction of elongation of projections are thought to be determined by various factors produced and released from these cells. Of compound activity on protrusion elongation It is not enough to be worth it.
  • Alzheimer's disease is characterized by the formation of senile plaques in the brain, which is the main component of senile plaques.
  • 3 protein aggregates in the brain to form amyloid and deposits on brain tissue With this, there is accumulating evidence that neurotoxicity is a major cause of Alzheimer's dementia. Focusing on this point, the present inventors succeeded in creating a model that impairs learning and memory ability by implanting an osmotic pump subcutaneously in the back of the rud and continuously administering / 3 protein into the ventricle. (See Neu rosci enc e Letters, vol. 170, pp. 63-66, 1994).
  • the neural axon outgrowth and regeneration system using brain tissue culture and the continuous intracerebroventricular infusion model described above are extremely reasonable systems for evaluating Alzheimer-type dementia in humans from a pathological and etiological point of view. It is. At the same time, it is a suitable system for evaluating the activity of drugs for treating nerve damage caused by neurological disorders in general or trauma.
  • prostaglandins have been shown to have various activities such as platelet aggregation suppression, vasodilatory hypotension, gastric acid secretion suppression, smooth muscle contraction, cell protection, and diuresis.
  • Prostaglandins and their derivatives with chemical or biological stability have also been developed as pharmaceuticals, particularly in the obstetrics and gynecology, gastrointestinal, cardiovascular and ophthalmic fields .
  • prostaglandins have an effect of repairing neurite disorders and have a potential as a therapeutic drug for Alzheimer-type dementia.
  • An object of the present invention is to provide a therapeutic agent for nerve damage due to a disease or trauma caused by a neuropathy.
  • diseases caused by neuropathy include neurodegenerative diseases associated with dementia or motor dysfunction, such as Alzheimer's type 1 dementia, Parkinson's disease, multiple sclerosis, lateral sclerosis, diabetic peripheral neuropathy (dueupathy). And cerebral dysfunction due to cerebral infarction and stroke.
  • the present inventor has newly created a method for measuring the degree of acceleration of nerve axon distraction using a brain tissue culture system, By using an Alzheimer-type dementia animal model by injection as an evaluation system, the present inventors have found that prostaglandins having a specific structure can achieve the above object, and have completed the present invention.
  • R 1 is a hydrogen atom, It represents an alkyl group or one equivalent of cation;
  • R 2 is a hydrogen atom, a methyl group or a vinyl group;
  • a therapeutic agent for neuropathy comprising as an active ingredient a prostaglandin represented by the formula:
  • FIG. 1 is a schematic illustration of an example of a horizontal slice of an SD rat brain.
  • FIG. 2 is a diagram illustrating the preparation of a culture sample for evaluating the activity of promoting axonal outgrowth using a horizontally sliced SD rat brain.
  • R 1 is a hydrogen atom. Represents an alkyl group or one equivalent of a cation.
  • Alkyl groups include, for example, methyl, ethyl, n-propyl, iso-propyl, n-butyl, sec-butyl, tert-butyl, n-pentyl, n-hexyl, n-heptyl , N-octyl, n-nonyl, n-decyl group Can be mentioned. Particularly, a ( ⁇ -3 alkyl group is preferable, and a methyl group is particularly preferable.
  • sodium, potassium, lithium, rubidium, cesium, 12 calcium, 12 magnesium, and 1 Z 3 aluminum are preferable. Of these, lithium and sodium are preferred.
  • 3 is a straight-chain or branched-chain C 3 ⁇ C i Q alkyl group, a linear or branched C 3 ⁇ C i
  • Cycloalkyl group, optionally substituted phenyl group, optionally substituted phenoxy group, or (optionally substituted phenyl group, substituted Optionally substituted phenoxy group or substituted Represents a straight-chain or branched-chain alkyl group substituted with a cycloalkyl group).
  • Such linear or branched C 3 -C i Q alkyl group for example, n - propyl le, n- butyl, hexyl n- pentyl, n-, n- heptyl, n- Okuchiru, n- decyl, 1- Examples include methylpentyl, 1-methylhexyl, 1,1-dimethylpentyl, 2-methylpentyl, 2-methylhexyl, 5-methylhexyl, and 2,5-dimethylhexyl.
  • a methylhexyl group is preferred.
  • alkenyl groups include 2-butenyl, 2-pentenyl, 3-pentenyl, 2-hexenyl, 4-hexenyl, 2-methyl-4-hexenyl, and 2,6-dimethyl-15-heptenyl group. No.
  • alkynyl group examples include 2-butynyl, 2-pentynyl, 3-pentynyl, 2-hexynyl, 3-hexynyl, 4-hexynyl, 2-octynyl, 5-decynyl, 1-methyl-3-pentynyl, 1-me Tyl-3-hexynyl and 2-methyl-4-hexynyl groups.
  • a C 5 -C 7 alkynyl group is preferable, and among them, a 3-pentynyl, 1-methyl-3-pentynyl, 3-hexynyl, and 1-methyl-3-hexynyl group are preferable.
  • Examples of the cycloalkyl group moiety of the optionally substituted C 3 -C 1 Q cycloalkyl group include cyclopropyl, cyclobutyl, cyclopentyl, cyclohexyl, cycloheptyl, and cyclooctyl groups.
  • Examples of the group portion include an alkyl group and a halogen atom. A plurality of such substituents may be present.
  • cycloalkyl groups include cyclopropyl, cyclobutyl, cyclopentyl, cyclohexyl, cycloheptyl, cyclooctyl, (( ⁇ ⁇ (: alkylcyclopentyl, ( hexyl E ⁇ Ji Arukirushiku port, dimethyl cyclopentyl, cyclohexyl dimethylcyclopentadienyl, Kuroroshikuro pentyl, hexyl Buromoshikuro, ® over de cyclopentyl, include key sill group to Furuoroshikuro. particularly cycloalkyl group c 5 to c 6 are preferred, Of these, a cyclopentyl group and a cyclohexyl group are preferred.
  • Examples of the substituent of the phenyl group which may be substituted and the phenoxy group which may be substituted include, for example, a halogen atom, a hydroxyl group, a c 2 to c 7 acyloxy group, and a substituent which may be substituted with a halogen atom ( ⁇ to (: 4 alkyl group, C port Gen atoms optionally substituted c 1 even though to c 4 alkoxyl group, a nitrile group, a carboxyl group or a (C i C e) alkoxy Cal Poni Le group such a halogen atom.
  • a fluorine, chlorine or bromine atom is preferable, and a fluorine or chlorine atom is particularly preferable.
  • the c 2 -c 7 alkoxy group include, for example, acetoxy, propionyloxy, n-butylyloxy, iso-butylyloxy, n-valeryloxy, iso—List valeryloxy, hydroxypropyl, enantholoxy or benzoyloxy groups
  • C ⁇ C ⁇ alkyl groups which may be substituted with a halogen atom include methyl, ethyl, n-propyl, iso_propyl, n-butyl, chloromethyl, dichloromethyl, trifluoromethyl
  • a methyl group may be mentioned as a preferable one, and even if it is substituted by a halogen atom,
  • Preferable C 1 to C 4 alkoxy groups include, for example, methoxy, ethoxy, n-propoxy, iso-
  • the substituted phenyl group or substituted phenoxy group can have from 1 to 3, preferably 1, substituents as described above.
  • phenyl group optionally substituted phenoxy group or optionally substituted C 3 -C 2 cycloalkyl group
  • the phenyl group which may be substituted and the phenoxy group which may be substituted may be the same as those described above.
  • C g C i As the cycloalkyl group, those described above can be suitably used as they are.
  • the substituent is also the same as the substituent of the above-mentioned substituted phenyl / substituted phenoxy group.
  • straight-chain or branched-chain ⁇ to ( 6 alkyl groups include methyl, ethyl, propyl, iso-propyl, butyl, iso-butyl, sec-butyl, t-butyl, pentyl, hexyl, etc.
  • the substituent may be bonded at any position.
  • R 1 R 2 , R 3 , and n have the same definitions as in the above formula (I),
  • the prostaglandins represented by and z or an optical isomer thereof are preferred.
  • A represents — ⁇ CH 2 _
  • X represents —CH (NH 2 ) —CH 2 — or 1 C (NH 2 ). Those having a carbon atom bonded to a cyclopentane ring are preferred.
  • prostaglandins used as the active ingredient in the present invention are as follows.
  • optical isomers of the above-listed compounds or a mixture of the above compound and the optical isomer in any ratio can also be used.
  • This method is a method for evaluating biological activity, which is based on the promotion of nerve axon elongation when a brain or nerve tissue piece is cultured.It uses postnatal mammalian brain or nerve tissue as a material and has a medium. The part and the part where the tissue piece is present are spatially separated, and cultured on the upper surface of the support that allows the medium to penetrate into the tissue piece, and in the area where the support allows nerve axons to elongate. This is a method for evaluating physiological activity, which is characterized in that it is also an area to be observed.
  • brain or nerve tissue piece means a part of the brain and nervous system extracted from a living animal, which contains nerve cells capable of extending a nerve axon. Its size is preferably a slice with a maximum diameter of 2 cm or less and a thickness of 0.5 mm or less. Preferably, the maximum diameter is 2 mm or less.
  • This evaluation method measures the length of the axon itself extending from the cell body of neurons in culture, or a parameter that reflects this.
  • the method of measurement is based on visualizing the structures contained in the brain or nerve tissue, especially the axons.
  • a method using an optical imaging apparatus including a microscope or the like, or a method using an optical imaging apparatus after performing tissue staining on a cultured tissue piece can be used.
  • a method using a labeling compound transported along the axon or a method using an antibody such as an anti-oral filament antibody.
  • the term “mammal” refers to laboratory animals in general, but rodents, especially rats, are preferably used.
  • the “postnatal mammal” is preferably an animal 7 days old or later.
  • the term “support” refers to a material that is spatially separated from a liquid medium for culture and a tissue piece to be cultured, and is designed so that an active ingredient contained in the medium permeates the tissue piece.
  • a gel-like collagen layer having an appropriate thickness can be used.
  • a perforated membrane of an appropriate size such as a membrane filter made of poly-polypropylene, which can physically support the collagen layer. Good.
  • the lower surface of the membrane to which the collagen layer is attached is immersed in the medium, and the tissue piece is placed on the upper surface of the gel-like collagen layer and cultured.
  • This evaluation system consists of co-culturing a combination of tissue pieces containing cells of the entorhinal cortex and tissue pieces containing hippocampal cells.
  • the distance between both tissue pieces is 0.1 mm More than lmm is good.
  • the method of preparing the tissue piece is preferably a method in which the brain is sliced once and a necessary portion is cut out.
  • the above-mentioned culture of brain or nerve tissue pieces is performed under serum-free conditions.
  • Such media include DMEM: F12 (1: 1) media with reduced or no glutamic acid and aspartic acid, and include transferrin, insulin, hydrid cortisone, sodium selenide, progesterone, and glutamine. It is better to add.
  • the concentration is preferably less than 7 mg ZL, less than 6.5 mg ZL, 10-20 Omg / L, 1-2 Omg / L, 2-100 nM, 2-100 nM, 2-100 nM, l_20 mM, respectively, for glutamic acid and below.
  • the subject to which the therapeutic agent for neuropathy of the present invention is applied is not particularly limited.
  • the agent of the present invention is particularly useful for mammals, and is particularly suitably used for livestock, experimental animals, pets, and humans.
  • the therapeutic agent for neuropathy of the present invention can be used for treating animal or human diseases.
  • the target disease is not particularly limited, as long as it is caused by neuropathy.
  • dementia or dyskinesia such as degenerative diseases of the brain or nervous system, such as Alzheimer's disease, Parkinson's disease, multiple sclerosis, lateral sclerosis, or diabetic peripheral neuropathy (neuropathy). It is a degenerative disease of the brain or nervous system, or cerebral infarction, cerebral dysfunction due to stroke, and can also be used for nerve damage due to trauma.
  • the administration method is not particularly limited, but preferably includes oral administration, transdermal administration, nasal administration, intravenous injection, intraperitoneal administration, rectal administration, or intraventricular administration.
  • the prostaglandins as an active ingredient are composed of a pharmaceutically acceptable carrier such as a solid or a liquid. It is preferable to prepare a pharmaceutical composition by adding a diluent, that is, excipients, stabilizers, and other additives as necessary. Injectable formulations of the prostaglandins of the invention to be used for therapeutic administration usually must be sterile. Sterilization is pore size 0.2
  • the ratio of the active ingredient to the carrier component can be varied, for example, between 0.01% and 90% W / W.
  • the therapeutically effective dose varies depending on the administration method, age, target disease, etc., but can be 0.01 g to 100 o mg per day, preferably 0.01 g to 10 Og. mgZ days Z people. For each route of administration, it is desirable to determine the absorption efficiency of each compound individually into the body by methods well known in pharmacy.
  • the dosage form and administration form may be orally administered in the form of granules, fine granules, powders, pills, tablets, capsules or liquids, or suppositories, aerosols, or ointments.
  • parenteral administration in the form of topical preparations such as skin patches.
  • Injectables may be administered intravenously, intraarterially, intramuscularly, or subcutaneously. It may also be prepared as a powder for injection at the time of use.
  • nasal administration, intraperitoneal administration, rectal administration or intracerebroventricular administration can be used.
  • compositions suitable for oral, enteral or parenteral administration can be used to prepare the prostaglandins of the present invention as pharmaceutical preparations. .
  • Representative carriers or diluents that can be incorporated into tablets, capsules, and the like include binders such as acacia, corn starch or gelatin, excipients such as microcrystalline cellulose, disintegrants such as corn starch and alginic acid, stearic acid. Lubricants such as magnesium and sweeteners such as sucrose and lactose can be mentioned.
  • a liquid carrier such as a fatty oil.
  • Various types of other substances may be used as coatings or as agents to improve the physical form of the dosage unit.
  • Sterile compositions for injection can be formulated according to conventional pharmaceutical methods.
  • the active compound in an excipient such as water or natural vegetable oils and in a synthetic fat excipient such as ethyl oleate.
  • Buffers such as citrate, acetate, and phosphate, and antioxidants, such as ascorbic acid, can also be incorporated in accordance with accepted pharmaceutical methods.
  • excipients such as lactose, starch, microcrystalline cellulose, etc .; carboxymethylcellulose, methylcellulose, polyvinylpyrrolidone, etc.
  • a binder can be formed by a usual method using a disintegrating agent such as sodium alginate, sodium bicarbonate, sodium lauryl sulfate and the like.
  • pills, powders, and granules can be formed by an ordinary method using the above-mentioned excipients and the like.
  • Solutions and suspensions are formed by a usual method using, for example, glycerin esters such as tricaprylin and triacetin, and alcohols such as ethanol.
  • Capsules are formed by filling granules, powders, liquids, or the like, into capsules such as gelatin.
  • the prostaglandins according to the present invention can also be converted into cyclodextrin inclusion compounds.
  • the clathrate is prepared by adding a solution of cyclodextrin dissolved in water and / or an organic solvent that is easily mixed with water, and a solution of prosid devicesdines dissolved in an organic solvent that is easily mixed with water. You. After heating the mixture, the desired cyclodextrin clathrate is isolated by concentration under reduced pressure, or filtration of the product under cooling or decantation to separate the product. The ratio of organic solvent to water depends on the solubility of the starting material and product. The temperature during the preparation of the cyclodextrin clathrate should not exceed 70. Hi,] 3- or arcyclodextrin or a mixture thereof can be used for preparing a cyclodextrin inclusion compound. Prostaglandins can increase their stability by converting them to cyclodextrin inclusion compounds.
  • Examples of dosage forms for subcutaneous, intramuscular, and intravenous administration include injections in the form of aqueous or non-aqueous solutions.
  • aqueous solution for example, physiological saline is used.
  • non-aqueous solution for example, propylene glycol, polyethylene glycol, olive oil, ethyl oleate and the like are used, and if necessary, a preservative, a stabilizer and the like are added.
  • the injection is sterilized by appropriate treatment, such as filtration through a bacteria-retaining filter and combination of a bactericide.
  • Examples of dosage forms for transdermal administration include ointments and creams.
  • Ointments are oils and fats such as castor oil and olive oil; vaseline and the like; creams are fatty oils; diethylene glycol and sorbitan monofatty acid Uses emulsifiers such as esters And formed by a usual method.
  • Formulations for parenteral administration can also be administered as emulsions. That is, water is added to a homogeneous solution of a vegetable oil such as soybean oil, a phospholipid such as lecithin, and the isopotassium basin according to the present invention. Fatty emulsions that have been converted can also be used as injections.
  • the activity of the prostaglandins represented by the above (I), (m) or (IV) and / or its optical isomer for treating neuropathy Use as an ingredient and (I), (m) or
  • a method for treating a neuropathy which comprises administering a prostaglandin represented by the formula (IV) and Z or an optical isomer thereof to a patient having the neuropathy in an amount effective to treat the neuropathy. It will be appreciated that they are provided as well.
  • a 7-day-old SD rat brain is cut horizontally to obtain a plane containing both the entorhinal cortex and the hippocampus (hereinafter referred to as a “horizontal slice”; see Fig. 1.
  • a represents the postnatal rat.
  • Figure 3b is a view of the cerebral hemisphere and surroundings, b is part of a horizontal section and C is the part containing the hippocampus in the entorhinolary cortex. ing) .
  • a slice fragment of the entorhinal cortex and a slice fragment of the hippocampal dentate gyrus are prepared.
  • the hippocampal dentate gyrus slice and the entorhinal area slice are cultured on a gel-like collagen layer using a medium containing 5% FCS so that the distance between both slices is about 500 m.
  • the collagen layer is prepared by coating collagen gel on a polyethylene terephthalate membrane with fine holes in a commercially available support frame (see Fig. 2). 24 hours after the start of the culture, replace the medium with the serum-free medium containing the test substance, and further culture for 1 or 4 days.
  • the biocytin crystal powder is then placed on the entorhinal slice and cultured for an additional day. (By such culture, the axons of the nerve cells in the slice extend into the collagen layer.
  • the added biocytin is taken up by neurons in the entorhinal cortex, is antegrade transported in the axon, and is present throughout the axon).
  • the slice is fixed with paraformaldehyde, and the axon (the portion where bioctin is present) is stained with labeled aVidin.
  • the method is performed according to the method of Morris (Morris) (Journalof Neuroscicenc Me d hods, Vol. 11, pp. 47-60, 1984).
  • the maximum observation time per trial is 90 seconds, 2 trials per day, and 5 consecutive days (total 10 trials).
  • a working memory test is performed for three days from the next day. Using a video camera installed on the pool, the time from when the rat is put into water until it reaches the platform (escape latency) is measured. On the first day of the working memory test, the position of the platform is moved 180 degrees to the left from the place at the time of training (second quadrant). As in the memory acquisition trial, the head of the rat is placed in the pool with the head facing the pool wall, and the escape latency is measured. If they stay on the platform for 15 seconds, return the rat to its home cage (1sttrial). One minute later, the rats are put into the pool again, the escape latency is measured, and the rats are allowed to stay on the platform for 15 seconds and then returned to the home cage.
  • Rat input points are at the center of each of the three quadrants of the first, third and fourth quadrants, and at five points at the boundaries of the first and fourth quadrants and the third and fourth quadrants.
  • Working memory test On the second day, move the platform by 90 degrees (the first quadrant) from the position at the time of training and on the third day, move the platform by 270 degrees (the third quadrant), and measure in the same way. The maximum observation time for each trial is 90 seconds. Perform 5 trials a day for a total of 3 days (15 trials in total), and use the average escape latency of 2 to 5 trials as an index of working memory.
  • the experimental equipment uses a step-through passive avoidance reactor consisting of two chambers separated by a guillotine door.
  • one room is a bright room (floor 15 cm x 25 cm, height 15 cm) made of transparent acrylic board, and the other is a dark room (same size) made of black acrylic board.
  • a stainless steel grid with a diameter of 4 thighs will be provided on the floor of the room at intervals of 15 rows, and the dalid will be connected to a device (shock generator scrambler) for applying electric shock.
  • ⁇ -amyloid protein 4040
  • ⁇ -amyloid protein ⁇ 42
  • the control group is connected to a pump injected with ⁇ -amyloid protein (40-1).
  • ⁇ -amyloid protein 40-1
  • pentobarbital 50 mg / kg, ip
  • the osmotic pump is implanted under the back.
  • the nerve axon elongation promoting activity was measured by the evaluation method of Reference Example 1.
  • biocytin was added after the test substance was added and cultured for 1 day.
  • bi0cytin was added after the test substance was added and cultured for 4 days.
  • Example 2 Compared to the effect of CNTF of Reference Example 3, axon elongation was detected even in the case of culture for 1 day after addition, so the effect of this compound is due to the direct promotion of axon elongation It was considered likely.
  • Example 2 Compared to the effect of CNTF of Reference Example 3, axon elongation was detected even in the case of culture for 1 day after addition, so the effect of this compound is due to the direct promotion of axon elongation It was considered likely.
  • Test compound (16S) — 15-dexoxy 16-hydroxy-16-methyl — 9 (O) — methanol 6 ( 9 ⁇ ) — prostaglandin IL
  • the axon elongation measurement method of Reference Example 2 used in this example is a method for measuring the degree of axon elongation more accurately than the measurement method of Reference Example 1. Therefore, the results of this example were considered to more surely indicate that the present compound has an axonal outgrowth promoting effect.
  • Test compound 9 (O) —Methanolau ⁇ 6 ( 9 ⁇ ) —Prostaglandin I i (isocarpacycline)
  • Test compound 9 ( ⁇ ) ⁇ 1 ⁇ ⁇ ⁇ 6 (9 ⁇ ) — methyl ester of prostaglandin I (isocarbacycline)
  • the results are shown below.
  • the area ratio occupied by nerve axons extending on the collagen layer was calculated assuming that the control (1.16 mm 2 ) was 1.
  • the compound was found to have an axonal outgrowth promoting effect (significant level: P ⁇ 0.05).
  • Test compound (16 S) — 15-Doxy-16-Hydroxy-16-Methyl —9 ( ⁇ ) 1 Methanol ⁇ 6 ( 9 1 Prostaglandin I ⁇
  • Example 5 By the evaluation methods of Reference Examples 3 and 5, the effect of improving learning and memory impairment was measured.
  • the test compound was dissolved in phosphate buffered saline and injected using an osmotic pump in the same way as B-amyloid protein was injected.
  • ⁇ -amyloid was added to the right ventricle of the rat.
  • Protein (40-1) or ⁇ -amyloid protein (Table 40) was injected into the left ventricle, and a test compound solution was injected into the left ventricle.
  • Test compound (16S) —15-Doxy-16-hydroxy-16_methyl —9 ( ⁇ ) One methanol 6 ( 9 ⁇ ) —Prostaglandin I ⁇
  • Test compound The substance was dissolved in ⁇ -amyloid protein solution and injected simultaneously with ⁇ -amyloid protein using an osmotic pump.
  • Test compound (16 S) — 15-Doxy— 16-Hydroxy— 16_Methyl-9 ( ⁇ ) One Methanol ⁇ 6 ( 9a ) —Prostaglandin I ⁇
  • test compound was dissolved in a ⁇ -amyloid protein solution and injected simultaneously with the ⁇ -amyloid protein using an osmotic pump.
  • ⁇ -amyloid protein (1-42)
  • ⁇ -amyloid protein (1-42)
  • the present compound showed a dose-dependent improving effect on learning and memory disorders.
  • the drug of the present invention is useful for treating brain or dementia or dyskinesia such as Alzheimer's dementia, Parkinson's disease, multiple sclerosis, lateral sclerosis, diabetic peripheral neuropathy (dueupathy) and the like. It may be a therapeutic agent for neurodegenerative diseases. It can also be used as a drug to improve cerebral dysfunction due to cerebral infarction and stroke. It can also be a therapeutic agent for nerve damage due to trauma.
  • dementia or dyskinesia such as Alzheimer's dementia, Parkinson's disease, multiple sclerosis, lateral sclerosis, diabetic peripheral neuropathy (dueupathy) and the like. It may be a therapeutic agent for neurodegenerative diseases. It can also be used as a drug to improve cerebral dysfunction due to cerebral infarction and stroke. It can also be a therapeutic agent for nerve damage due to trauma.

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Description

明 細 書 神経障害治療剤 技術分野
本発明は、 神経障害治療剤に関する。 さらに詳しくは、 特定の構造を持つプロ ス夕グランジン類を活性成分として含有する神経障害治療剤に関する。
従来の技術
神経系においては、 神経細胞が突起 (軸索あるいは樹状突起) を伸ばし、 シナ ブスを介して、 神経細胞間でネットワークを形成したり、 あるいは筋肉細胞、 皮 膚細胞等と連絡することによって、 初めてその機能を果たすことが可能となる。 また、 このような突起を介した細胞間の連絡によって、 互いに伝達物質や栄養 因子をやりとりすることにより、 細胞の生存そのものも維持されている。
このため、 神経細胞そのものは致命的な障害を受けていない場合でも、-神経突 起が障害を受けると、 神経機能は低下し、 さらには神経細胞自体も死に至る。 外 傷等により軸索が切断される場合だけでなく、 神経障害に起因する多くの疾患の 初期や、 障害を受けた部位の周囲においても、 このような神経突起の障害がまず 起こっているものと考えられる。
したがって、 神経突起の障害を修復するような作用を有する薬剤は、 神経障害 に起因する多くの疾患や、 外傷による神経の損傷等において極めて有効であるも のと考えられる。
神経障害に起因する疾患としては、 アルツハイマー型痴呆、 パーキンソン病、 多発性硬化症、 側索硬化症、 糖尿病性末梢神経障害 (二ユートパシー) などが挙 げられる。 その中でも、 高齢化社会を迎えて、 アルツハイマー型痴呆患者の増加 が深刻な社会問題になっている。
従来、 アルツハイマー型痴呆の治療に用いられてきた薬剤は、 脳循環代謝賦活 薬に分類されるものと、 アセチルコリン神経系賦活薬に分類されるものに大別で さる。 脳循環代謝賦活薬は、 元来、 脳血管の障害とその後の後遺症に対する薬剤であ つて、 神経障害を直接的に修復するものではなく、 痴呆症状に対する有効性は低 レ^ また、 アセチルコリン神経系賦活薬は、 アルツハイマー病患者でァセチルコ リン神経系の障害が著しいという病理的所見に基づいて開発され、 アルッハイマ —型痴呆治療薬として現在唯一使用が認められているものであるが、 実際のアル ッハイマ一型痴呆では、 障害を受けるのはァセチルコリン神経系のみではないこ とが明らかになつており、 その効果には限界があると考えられている。
このような現状から、 新規薬効に基づくアルツハイマー型痴呆の治療薬開発が 強く望まれており、 とりわけ、 前述した神経突起の障害を修復するような作用を 有する薬剤は、 もし実用化されればアルツハイマー型痴呆の治療において最も高 い有効性を示すであろうことが期待されている。
従来、 痴呆症治療薬の探索に用いられてきた薬物評価系は、 in vi tro の系と しては、 ァセチルコリンエステラーゼ等の神経伝達物質分解酵素の阻害活性測定 系、 脳切片を用いた神経伝達物質増加活性の測定系、 あるいは後根神経節細胞や PC1 細胞等を用いた神経突起の伸長促進あるいは神経細胞死抑制活性の測定系 が主なものであり、 in vivo の系としては、 スコポラミンを投与したり、 電気的 に破壊する等の方法でァセチルコリン神経系を特異的に障害するモデル、 脳虚血 あるいは二酸化炭素により低酸素ストレスを与えて障害を惹起するモデルが主な ものであった。
これらの評価系の多くは、 ァセチルコリン神経系賦活薬や脳循環代謝賦活薬の 評価系としては合理的なものであるが、 実際の痴呆症、 特にアルツハイマー型痴 呆とは病因的にも病理的にも大きな隔たりがあり、 新規の痴呆症治療薬の評価を 行うのに十分なものではない。
神経突起の伸長促進活性を測定する系についても、 生体内では、 突起を伸ばす 側の神経細胞のみでなく、 伸びてきた突起とシナプスを介して連絡する受け手側 の細胞、 神経細胞の周囲に存在するグリア細胞等が存在し、 これらの細胞から産 生、 放出される種々の因子によつて突起の伸長の速度や方向性が決定されると考 えられることから、 従来の系は、 神経細胞の突起伸長に及ぼす化合物の活性を評 価する系としては、 十分なものではない。
アルツハイマー型痴呆患者の脳内では、 皮質内嗔野の神経細胞の脱落が、 最も 初期の病変として起こっている。 本発明者らはこれに着目し、 幼弱ラットの脳か ら皮質内嗅野と海馬を含む部分の組織を切り出して、 シャーレ内で培養すること により、 切り出す時に切断された内嗅野細胞の軸索を再び伸長させ、 脳内に存在 するのと同様な海馬歯状回への神経投射を再生させることに成功している (Eu r ope an J ou rna l o f Neu r o s c i enc e, vo l. 6, . 1026-1037参照) 。
また、 アルツハイマー型痴呆は脳内に老人斑が形成されることが大きな特徴で あり、 この老人斑の主成分である )3蛋白が、脳内で凝集してアミロイドを形成し、 脳組織に沈着するのに伴って、 神経毒性を発揮することが、 アルツハイマー型痴 呆の主たる原因であると考えられる証拠が蓄積してきている。 本発明者らはこの 点に着目し、 浸透圧ポンプをラッドの背部皮下に埋め込んで、 /3蛋白を脳室内に 持続投与することにより、 学習記憶能が低下するモデルを作成することに成功し ている (Neu r o s c i enc e Le t t e r s, vo l. 170, pp. 63— 66、 1994参照) 。
上記の、 脳組織培養を用いた神経軸索伸長再生系、 および 蛋白脳室内持続注 入モデルは、 病理的および病因的な観点からヒトのアルツハイマー型痴呆治療薬 の評価系として極めて合理的なものである。 また、 それと同時に、 神経障害に起 因する疾患全般あるいは外傷による神経損傷の治療薬の活性を評価するのにも 適した系でもある。
一方、 プロスタグランジン類は、 従来より、 血小板凝集抑制、 血管拡張性血圧 降下、 胃酸分泌抑制、 平滑筋収縮、 細胞保護、 利尿等の多彩な活性を有すること が明らかになつており、 天然のプロスタグランジン類および、 化学的あるいは生 物学的安定性を付与したその誘導体は、 特に、 産婦人科領域、 消化器領域、 循環 器領域、 および眼科領域において医薬品としての開発も行われてきた。
脳および神経領域に関しては、 これまで医薬品として開発された例はないが、 特定のプロスタグランジン類が、 脳の神経細胞保護作用を示すことが報告されて る ( Ne u r o s c i enc e Le t t e r s, vo l. 160, pp. 106、 1993および特開平 8-245498号公報参照) 。
しかしながら、 プロスタグランジン類が神経突起の障害を修復する作用を有す ること、 およびアルツハイマー型痴呆治療薬としての可能性を有することは、 こ れまで知られていない。
発明の開示
本発明の目的は、神経障害に起因する疾患あるいは外傷による神経損傷に対す る治療薬を提供することにある。 神経障害に起因する疾患としては、 ァルツハイ マ一型痴呆、 パーキンソン病、 多発性硬化症、 側索硬化症、 糖尿病性末梢神経障 害 (二ユートパシー) などの痴呆あるいは運動不全を伴う神経変性疾患、 および 脳梗塞や脳卒中による脳機能障害があげられる。
本発明者は、 このような目的達成のために鋭意研究を重ねた結果、 脳組織培養 系を用いた神経軸索伸延促進度の測定方法を新規に作成し、 該測定方法および 蛋白脳室内持続注入によるアルツハイマー型痴呆動物モデルを評価系として用 いることにより、 特定の構造を有するプロスタグランジン類が上記目的を達成し 得ることを知見して本発明を完成するに至つた。
すなわち、 本発明は下記式 (I) 、
Figure imgf000006_0001
[ここで、 R1は水素原子、
Figure imgf000006_0002
アルキル基または 1当量のカチオン を表し; R2は水素原子、 メチル基またはビニル基を表し; R3は直鎖もし くは分岐鎖 C 3〜 C i 0アルキル基、 直鎖もしくは分岐鎖 C 3〜 C i 0アルケニ ル基、 直鎖もしくは分岐鎖 C3〜Clt)アルキニル基、 置換されていてもよい c3〜c10シクロアルキル基、 置換されていてもよいフエニル基、 置換され ていてもよいフエノキシ基、 または(置換されていてもよいフエニル基、置 換されていてもよいフエノキシ基、 もしくは置換されていてもよい c3〜c 10シクロアルキル基) で置換されている直鎖もしくは分岐鎖 〜(:6アル キル基を表し; nは 0または 1を表し Aは — CH2— CH2—、 -CH = CH—または一 O— CH2—を表し; Xは— CH2— CH2—、 — CH ( H 2) — CH2—、 _CH = CH—、 — C (NH2) =CH—または _C≡C 一を表し;結合
Figure imgf000007_0001
Figure imgf000007_0002
を表す。 但し、 Aが—〇— CH2—であるときおよび Xが— CH (NH2) _CH2—または— CH (NH2) =CH—であるとき、 統合方向は逆であ つてもよい、
下記式 (ΙΠ) 、
Figure imgf000007_0003
ここで、 R R2、 R3、 Xおよび nの定義は上記式 (I) に同じであり、 そして A1は _CH2— CH2—または— CH=CH—を表す。 但し、 Xが— CH (NH2) — CH2—または一 C (NH2) =CH_であるとき、 結合方 向は逆であってもよい、
または下記式 (IV)
Figure imgf000008_0001
ここで、 尺1、 R2、 R A、 Xおよび nの定義は、 但し書きも含めて上記 式 (I) に同じである、
で表されるプロスタグランジン類およびノまたはその光学異性体を活性成分と して含有する神経障害治療剤である。
図面の簡単な説明
図 1は、 SDラット脳の水平断スライスの一例の概略説明図である。
図 2は、 SDラット脳の水平断スライスを用いる、 神経軸索伸長促進活性の評 価のための、 培養試料作成の説明図である。
発明の好ましい実施の形態
上記式 (I) 、 上記式 0Π) および上記式 (IV) 中、 R1は水素原子、 じェ〜じ i。アルキル基または 1当量のカチオンを表す。
かかる(^〜(^。アルキル基としては、 例えばメチル、 ェチル、 n—プロピル、 i s o—プロピル、 n—ブチル、 s e c—ブチル、 t e r t—ブチル、 n—ペン チル、 n—へキシル、 n—ヘプチル、 n—ォクチル、 n—ノニル、 n—デシル基 を挙げることができる。 特に (^〜 3アルキル基が好ましく、 なかでもメチル基 が好ましい。
また、 1当量のカチオンとしては、 例えばナトリウム、 カリウム、 リチウム、 ルビシゥム、 セシウム、 1 2カルシウム、 1 2マグネシウム、 1 Z 3アルミ ニゥムが'好ましい。 なかでもリチウムやナトリウムが好ましい。
R 2は水素原子、 メチル基またはビニル基を表す。 特に、 n = 0の場合は水素 原子が、 n = lの場合はメチル基が好ましい。
3は直鎖もしくは分岐鎖 C 3〜 C i Qアルキル基、直鎖もしくは分岐鎖 C 3〜 C i
。アルケニル基、直鎖もしくは分岐鎖
Figure imgf000009_0001
。アルキニル基、置換されていても よい ^〜(^。シクロアルキル基、 置換されていてもよいフエニル基、 置換され ていてもよいフエノキシ基、 または (置換されていてもよいフエニル基、 置換さ れていてもよいフエノキシ基もしくは置換されていてもよい
Figure imgf000009_0002
。シクロア ルキル基) で置換されている直鎖もしくは分岐鎖 〜 アルキル基を表す。 かかる直鎖もしくは分岐鎖 C 3〜C i Qアルキル基としては、 例えば n -プロピ ル、 n—ブチル、 n—ペンチル、 n—へキシル、 n—ヘプチル、 n—ォクチル、 n—デシル、 1—メチルペンチル、 1—メチルへキシル、 1, 1一ジメチルペン チル、 2—メチルペンチル、 2—メチルへキシル、 5—メチルへキシル、 2 , 5 —ジメチルへキシル基が挙げられる。 なかでも n—プチル、 n—ペンチル、 n— へキシル、 (R) —もしくは (S ) —もしくは (R S ) —1—メチルペンチル、 (R) 一もしくは (S ) —もしくは (R S ) - 2—メチルへキシル基が好ましい。 特に c 3〜c 6のアルキル基が好ましく、なかでもブチル基やペンチル基が好まし い。
直鎖もしくは分岐鎖
Figure imgf000009_0003
。アルケニル基の例としては、 2—ブテニル、 2 —ペンテニル、 3—ペンテニル、 2—へキセニル、 4—へキセニル、 2—メチル —4—へキセニル、 2, 6—ジメチル一 5—ヘプテニル基等が挙げられる。
直鎖もしくは分岐鎖 C 3〜Cェ。アルキニル基としては、 例えば 2—プチニル、 2—ペンチニル、 3—ペンチニル、 2—へキシニル、 3—へキシニル、 4—へキ シニル、 2—ォクチニル、 5—デシニル、 1一メチル—3—ペンチニル、 1ーメ チル—3 _へキシニル、 2—メチル—4—へキシニル基が挙げられる。 特に C 5 〜C 7のアルキニル基が好ましく、 なかでも 3—ペンチニル、 1一メチル _ 3— ペンチニル、 3 _へキシニル、 1一メチル— 3—へキシニル基が好ましい。
置換されていてもよい C 3〜C 1 Qシクロアルキル基のシクロアルキル基部分と しては、 例えばシクロプロピル、 シクロブチル、 シクロペンチル、 シクロへキシ ル、 シクロへプチル、 シクロォクチル基が挙げられ、 その置換基部分としては、 例えば 〜 アルキル基、 ハロゲン原子を挙げることができる。 かかる置換基 は複数個存在していてもよい。
置換されていてもよい (^〜(:ェ。シクロアルキル基の例としては、 シクロプロ ピル、 シクロブチル、 シクロペンチル、 シクロへキシル、 シクロへプチル、 シク ロォクチル、 ((^〜(: アルキルシクロペンチル、 (じェ〜じ アルキルシク 口へキシル、 ジメチルシクロペンチル、 ジメチルシクロへキシル、 クロロシクロ ペンチル、 ブロモシクロへキシル、 ョードシクロペンチル、 フルォロシクロへキ シル基が挙げられる。 特に c 5〜c 6のシクロアルキル基が好ましく、 なかでもシ クロペンチル基ゃシクロへキシル基が好ましい。
置換されていてもよいフエニル基、 置換されていてもよいフエノキシ基の置換 基としては、 例えばハロゲン原子、 ヒドロキシル基、 c 2〜c 7ァシルォキシ基、 ハロゲン原子で置換されていてもよい (^〜(: 4アルキル基、ハ口ゲン原子で置換 されていてもよい c 1〜c4アルコキシル基、 二トリル基、 カルボキシル基または (C i C e) アルコキシカルポニル基が挙げられる。 かかるハロゲン原子として は、 フッ素、 塩素または臭素原子が好ましく、 特にフッ素または塩素原子が好ま しい。 また、 c 2〜c 7ァシルォキシ基としては、 例えばァセトキシ、 プロピオ二 ルォキシ、 n—プチリルォキシ、 i s o—プチリルォキシ、 n—バレリルォキシ、 i s o—バレリルォキシ、 力プロィルォキシ、 ェナンチルォキシまたはべンゾィ ルォキシ基を挙げることができる。 さらに、 ハロゲン原子で置換されていてもよ い C^ C^アルキル基としては、 メチル、 ェチル、 n—プロピル、 i s o _プロ ピル、 n—プチル、 クロロメチル、 ジクロロメチル、 トリフルォロメチル基を好 ましいものとして挙げることができる。 また、 ハロゲン原子で置換されていても よい C i〜C 4アルコキシ基としては、 例えばメトキシ、 エトキシ、 n—プロボキ シ、 i s o—プロポキシ、 n—ブトキシ、 クロロメトキシ、 ジクロロメトキシ、 トリフルォロメトキシ基を好ましいものとして挙げることができる。 また、 (c ェ〜じ^ アルコキシカルボニル基としては、 例えばメトキシカルボニル、 ェトキ シカルボニル、 ブトキシカルボニル、 へキシルォキシカルボ二ル基を挙げること ができる。
置換フエニル基または置換フエノキシ基は、 上記した置換基を 1〜 3個、 好ま しくは 1個持つことができる。
(置換されていてもよいフエニル基、 置換されていてもよいフエノキシ基もし くは置換されていてもよい C 3〜C 2。シクロアルキル基) で置換されている直鎖 もしくは分岐鎖 (^〜 :6アルキル基のうちで、置換されていてもよいフエニル基、 置換されていてもよいフエノキシ基としては前記のものをそのまま好適に挙げ ることができる。
また、 C g C i。シクロアルキル基としても前記のものをそのまま好適に挙げ ることができる。 そしてその置換基も、 上記した置換フエニルゃ置換フエノキシ 基の置換基と同様のものが挙げられる。 また、 直鎖もしくは分岐鎖 ^〜( 6アル キル基としては、 メチル、 ェチル、 プロピル、 i s o—プロピル、 プチル、 i s o—ブチル、 s e c—ブチル、 t 一ブチル、 ペンチル基、 へキシル基などを挙げ ることができる。 置換基はその任意の位置に結合していてもよい。
上記式 (I ) で表されるプロスタグランジン類および Zまたはその光学異性体 のなかでも、
Figure imgf000011_0001
—で、 R 1 R 2、 R 3、 および nの定義は上記式 (I ) に同じである, で表されるプロスタグランジン類および zまたはその光学異性体が好ましい。 上記式 (I) および上記式 (IV) 中、 Aが—〇一 CH2_を表す場合には、 そ のメチレン基 (_CH2—) が力ルポキシル基 (一 COOR1) に結合したものが 好ましい。 また、 上記式 (I) 、 上記式 (m) 、 および上記式 ay) 中、 Xが— CH (NH2) — CH2—または一 C (NH2). =CH—を表す場合、 ァミノ基が 結合した炭素原子がシクロペンタン環に結合したものが好ましい。
本発明で活性成分として用いられるプロスタグランジン類を具体的に挙げる と、 以下のようになる。
(1) 9 (〇) 一メタノー Δ6 (9 a)—プロスタグランジン I i (イソ力ルバサイ クリン)
(2) 20—メチル一9 (〇) 一メタノ一 Δ6 (9 α)—プロスタグランジン I i
(3) 16—メチル一9 (〇) 一メタノ一 Δ6 (9 α) —プロスタグランジン I
(4) 16, 16—ジメチル一 9 (〇) 一メタノ一 Δ6 (9α) —プロスタグラン ジン Iェ
(5) 17—メチル一 9 (Ο) —メタノ一 Δ6 (9a) —プロスタグランジン I
(6) 17, 20—ジメチルー 9 (〇) 一メタノ一Δ6 (9 α) —プロスタグラン ジン Iェ
(7) (6) の (17R) —体
(8) (6) の (17 S) —体
(9) 15—メチル一 9 (Ο) —メタノ一 Δ6 (9 £t) —プロスタグランジン I i
(10) 17, 18—デヒドロ一 9 (〇) 一メタノ一 Δ6 (9a) —プロスタグラ ンジン I
(11) 20—イソプロピリデン _ 17—メチル一 9 (〇) ーメタノ一 Δ6 (9 α)—プロスタグランジン I丄
(12) 18, 18, 19, 19—テトラデヒドロー 16—メチル—9 (Ο) —メタノ一 Δ6 (9α)—プロスタグランジン I丄
(13) 18, 19—ジデヒドロ一 16—メチルー 9 (〇) ーメタノ一Δ 6 (9 α)—プロスタグランジン I丄 (14) (3) , (12) , (13) の (16 S) —体
(15) (3) , (12) , (13) の (16R) -体
(16) 16, 17, 18, 19 20—ペン夕ノル _ 15—シクロペンチル 一 9 (0) —メタノ一 Δ6 —ブロスタグランジン I
(17) 16, 17, 18, 19, 20—ペン夕ノル一 15—シクロへキシル — 9 (O) —メタノー Δ6 —プロスタグランジン I
(18) 17, 18, 19, 20—テトラノル一 16— (p—フルオロフエノ キシ) 一 9 (〇) 一メタノ一 Δ6 —プロスタグランジン I
(19) 17, 18, 19, 20—テトラノル— 16—シクロへキシルー 9 (〇) —メタノ一 Δ6 (9α)—プロスタグランジン I i
(20) 15—デォキシ一 16—ヒドロキシ一 9 (O) —メタノ一厶 6 ()— プロスタグランジン Iェ
(21) 15—デォキシ一 16—ヒドロキシ— 16—メチル一9 (〇) —メタ ノ一 Δ6 (9α)—プロスタグランジン I
(22) (20) , (21) の (16 S) —体
(23) (20) (21) の (16 R) -体
(24) (1) ' (23) のメチルエステル
(25) (1) ' (23) のェチルエステル
(26) (1) (23) のブチルエステル
(27) (1) ' (23) のナトリウム塩
(28) (1) - (23) のカリウム塩
(29) (1) ' (23) のアンモニゥム塩
(30) (1) (29) の化合物の 8位、 9位、 1 1位、 12位、 1 5位に ついての立体異性体
(31) 17, 1 8, 19, 20—テトラノル一 16 ― (m—卜リル) 一 9 (O) ーメタノ- 6 (9α) 一プロスタグランジン I
(32) 17 , 1 8, 19, 20—テトラノル一 16 - (o—卜リル) 一 9 (O) ーメタノ-一△ 6 (9 a) —プロスタグランジン I o oノ 1 7 1 o i? ^ U ァ Pノノ ノレ Ό _ 「 ノレノ ノ
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(39) (31) (35) のナトリウム塩
(40) (31) (35) のカリウム塩
(41) (31) (35) のアンモニゥム塩
(42) (5E) (16RS) 一 16—メチルー 9 (O) —メタノープロス
12
(43) (5E) (16 S) —16 20—ジメチルー 3—ォキサ— 13 L 4, 18, 8, 9 19一へキサデヒドロ一 9 (〇) 一メタノ一プロス夕
■ 2
(44) (5E) - (16R) —16, 20—ジメチル— 3—ォキサ一 13,
14, 18, 18 19, 19一へキサデヒドロ一 9 (0) —メタノープロス夕 グランジン I 2
(45) (5E) - (16RS) — 16 20—ジメチルー 3—ォキサ _ 13 14 18, 18 19, 19 キサデヒドロー 9 (〇) 一メタノープロス夕 グランジン I 2
(46) (5E) - (16 S) —16 20—ジメチル— 3—ォキサ— 13 14, 18, 18, 19, 19—へキサデヒドロ一 9 (O) ーメタノ一プロス夕 グランジン 12—トリスー (ヒドロキシメチル) 一ァミノメタン塩
(47) 16—メチルー 18, 18 19 19—テトラデヒドロー 5 , 6 7—トリノル一 4, 8—インタ一一 m—フエ二レン一プロスタグランジン I 2
(48) 16—メチルー 18, 18 19, 19—テトラデヒドロ一 5 6 7—トリノル一 4, 8一^ Γンタ一一 m—フエ二レン一プロスタグランジン I 2— メチルエステル
(49) 18, 18, 19, 19ーテトラデヒドロ一 5, 6, 7—トリノルー
4, 8—インタ m—フエ二レン一プロスタグランジン I 2
(50) 18, 18, 19, 19—テトラデヒドロー 5, 6, 7—トリノル一 4, 8—イン夕一一 m—フエ二レン一プロスタグランジン I 2—メチルエステル
(51) 20—メチル—18, 18, 19, 19—テトラデヒドロー 5 , 6, 7—トリノル _4, 8—インタ—— m—フエ二レン一プロスタグランジン I 2
(52) 20—メチルー 18, 18, 19, 19—テトラデヒド 'ロー 5 , 6, 7—トリノル一 4, 8—イン夕一一 m—フエ二レン一プロスタグランジン I 2_ メチルエステル
(53) 16, 20—ジメチルー 18, 18, 19, 19—テトラデヒドロ— 5, 6, 7—トリノ^/一 4, 8—イン夕一一 m—フエ二レン一プロスタグランジ ン 12
(54) 16, 20—ジメチルー 18, 18, 19, 19—テトラデヒドロー 5, 6, 7—トリノルー 4, 8—インタ一一 m—フエ二レン一プロスタグランジ ン I 2—メチルエステル
(55) 20—ェチル—16—メチル—18, 18, 19, 19—テトラデヒ ドロー 5, 6, 7—トリノル一 4, 8—イン夕一一 m—フエ二レン一プロスタグ ランジン I 2
(56) 20—ェチルー 16—メチルー 18, 18, 19, 19ーテトラデヒ ドロ一 5, 6, 7—トリノル一 4, 8—インタ一一 m—フエ二レン一プロスタグ ランジン I 2—メチルエステル
(57) 16—メチル—2, 3, 18, 18, 19, 19—へキサデヒドロ—
5, 6, 7—トリノル一 4, 8—インタ一一 m—フエ二レン一プロスタグランジ ン I 2
(58) 16—メチル—2, 3, 18, 18, 19, 19—へキサデヒドロ— 5, 6, 7—トリノル一 4, 8—イン夕一一 m—フエ二レン一プロスタグランジ ン I。一メチルエステル (59) 2, 3, 18, 18, 19, 19一へキサデヒドロ— 5, 6, 7—ト リノル一 4, 8一インタ一一 m—フエ二レン一プロスタグランジン I 2
(60) 16—メチル— 13, 14, 18, 18, 19, 19—へキサデヒド 口一 5, 6, 7—トリノルー 4, 8—インタ一一 m—フエ二レン一プロス夕グラ ンジン 12
(61) 16—メチル— 13, 14, 18, 18, 19, 19—へキサデヒド 口一 5, 6, 7—トリノル一 4, 8—インタ一一 m—フエ二レン一プロスタグラ ンジン I 2—メチルエステル
(62) 20—メチル— 19, 19, 20, 20—テトラデヒドロー 5 , 6, 7—トリノルー 4, 8 fンタ一一 m—フエ二レン一プロスタグランジン I 2
(63) 17, 17, 18, 18—テトラデヒドロ一 5, 6, 7—トリノル一 4, 8—インタ一一 m—フエ二レン一プロスタグランジン I 2
(64) 7—ォキソ一プロスタグランジン I 2
(65) (64) と [R— (R*, S*) ] -a- [1— (メチルァミノ) ェチ ル] ベンゼンメタノールの混合物 (1 : 1)
また、 本発明においては、 上に列挙した化合物の光学異性体、 あるいは上記化 合物とその光学異性体との任意の割合の混合物を用いることもできる。
次に、 本発明において本発明者らが新規に開発した神経軸索伸長促進活性の評 価方法について説明する。
この方法は、 脳あるいは神経組織片を培養したときの神経軸索の伸長促進を指 標とする生理活性評価法であって、 生後哺乳類の脳あるいは神経組織を材料とし て用い、 培地の存在する部分と組織片の存在する部分を空間的に分け、 しかも組 織片への培地の浸透を許すような支持体の上表面で培養し、 かかる支持体が神経 軸索の伸長を許容させる領域であり、 しかも観察の対象となる領域でもあること を特徵とする生理活性評価方法である。
ここで、 「脳あるいは神経組織片」 とは生きた動物から摘出した脳および神経 系の一部であって、 神経軸索を伸ばし得る神経細胞を含んだものを意味する。 そ の大きさは、最大径 2 cm以下、厚さ 0. 5 mm以下のスライス状のものがよく、 好ましくは最大径は 2 mm以下がよい。
本評価方法は、 培養中に存在する神経細胞の細胞体から伸びている軸索の長さ そのもの、 あるいはそれを反映するパラメーターを計測するものである。 その計 測の方法は、 脳あるいは神経組織片に含まれる構造の内、 特に軸索を可視化する ことによる。 このためには、 顕微鏡などを含む光学'画像装置を用いた方法、 あ るいは培養組織片に組織染色を施したうえでの光学 ·画像装置を用いた方法を用 いることができる。
ここで、 組織染色の方法としては、
b i o c y t i n、
b i o t i n d e x t r a n>
PHA— L (Pha s e o l u s vu l g a r i s— l euc o agg 1 u t i n i n) 、
D i I (1, 1' -d i oc t ade cy l -3, 3, 3' , 3' — t e t r ame t y l i ndoc a r bo cyan i ne p e r c h l o r a t e)
などの軸索にそって輸送される標識用の化合物を使った方法、 あるいは抗ニュー 口フィラメント抗体などの抗体を用いた方法を挙げることができる。
また、 「哺乳類」 とは実験動物一般を指すが、 げっ歯類、 特にラットを用いる のがよい。そして、 「生後の哺乳類」 は生後 7日齢またはそれ以降の動物がよい。 さらに、 「支持体」 とは、 培養用の液体培地と培養する組織片とを空間的に隔 離し、 しかも培地に含まれる有効成分が組織片に浸透するようにデザィンされた ものをいう。例えば、適当な厚さのゲル状のコラーゲン層があげられる。そして、 かかるコラーゲン層は、 ポリ力一ポネ一ト製のメンブレンフィルターのような、 コラーゲン層を物理的に支持することができる、 適当な大きさの穴の開いた膜の 上に付着させるとよい。 つまり、 コラーゲン層を付着させた膜の下面を培地に浸 け、 ゲル状コラーゲン層の上表面に組織片を置いて培養することになる。
本評価系は、 内嗅野の細胞を含む組織片と、 海馬の細胞を含む組織片とを組み 合わせた共培養を行うことにより構成される。 両組織片の間の距離は 0. 1mm 以上 lmm以下がよい。 この場合の組織片の調製方法も、 脳をいつたんスライス にしてから必要部分を切り抜く方法がよい。
前述の脳あるいは神経組織片の培養は、 無血清条件下で行われる。 このような 培地としては、 DMEM : F 12 (1 : 1) 培地からグルタミン酸、 ァスパラギ ン酸を減少させたもの、 または除いたもので、 トランスフェリン、 インスリン、 ハイド口コーチゾン、 セレン化ナトリウム、 プロゲステロン、 グルタミンが添加 されたものがよい。 その場合の濃度はグルタミン酸以下各々、 7mgZL未満、 6. 5mgZL未満、 10-20 Omg/L 、 1-2 Omg/L, 2- 100 n M、 2- 100 nM, 2_100nM、 l_20mMがよい。
本発明の神経障害治療剤の適用対象については、 特に限定はない。 本発明の薬 剤は、 特に哺乳類に対して有用であり、 なかでも家畜、 実験動物、 愛玩動物、 ヒ 卜に対して好適に用いられる。
本発明の神経障害治療剤は、 動物あるいは人間の疾患の治療に用いることがで きる。 対象疾患は特に限定されず、 神経障害に起因するものであればよい。 例え ば、 脳あるいは神経系の変性性疾患、 具体的には、 アルツハイマー病、 パーキン ソン病、 多発性硬化症、 側索硬化症、 糖尿病性末梢神経障害 (ニューロパシー) などの、 痴呆あるいは運動不全を伴う脳あるいは神経系の変性性疾患、 あるいは 脳梗塞 ·脳卒中による脳機能障害であり、 また外傷による神経損傷にも用いるこ とができる。
投与方法は特には限定されないが、 好ましくは経口投与、 経皮投与、 経鼻投与、 静脈内注射、 腹腔内投与、 直腸内投与あるいは脳室内投与が挙げられる。
本発明に係るプロスタグランジン類、 またはその塩、 または包接化合物を臨床 に適応するに際しては、 有効成分としてのプロスタグランジン類を固体または液 体等の薬学的に許容される担体とからなる医薬組成物とし、 さらに必要に応じて 希釈剤、 すなわち賦形剤、 安定剤等の添加剤を加えて製剤とすることが好ましい。 治療的投与に使用すべき本発明のプロスタグランジン類の注射投与製剤は、 通常 滅菌状態でなければならない。 滅菌性は孔径 0. 2
などの滅菌濾過膜を通して濾過することによつて容易に達成される。 かかる医薬組成物において上記有効成分の担体成分に対する割合は、 例えば 0. 0 1〜9 0 %W/Wの間で変動させることができる。 治療的有効投与量は、 投与 方法、 年令、 対象疾患などにもよるが、 0 . 0 1 g〜l 0◦ O mg Z日ノ人が 可能で、 好ましくは 0. 0 1 g〜l O mgZ日 Z人である。 個々の投与経路に ついて、 薬学でよく知られている方法によって各化合物について個別に体内への 吸収効率を決定するのが望ましい。
剤形及び投与形態としては、 顆粒剤、 細粒剤、 散剤、 丸剤、 錠剤、 カプセル剤 もしくは液剤等の剤形にして経口投与してもよいし、 または、 座剤、 エアゾル剤、 あるいは軟膏及び皮膚パッチなどの局部製剤などにして非経口投与してもよい。 注射剤として静脈内投与、 動脈内投与、 筋肉内投与、 皮下投与してもよい。 また 注射用の粉末にして用時調製してもよい。 さらに、 経鼻投与、 腹腔内投与、 直腸 内投与あるいは脳室内投与とすることもできる。
経口、 経腸もしくは非経口投与に適した医薬用の有機または無機の、 固体また は液体の担体もしくは希釈剤を、 本発明に係るプロスタグランジン類を医薬製剤 として調製するために用いることができる。
錠剤、 カプセル剤などに組み込み得る代表的な担体もしくは希釈剤は、 ァカシ ァ、 トウモロコシ澱粉またはゼラチンなどの結合剤、 微結晶性セルロースなどの 賦形剤、 トウモロコシ澱粉やアルギン酸などの崩壊剤、 ステアリン酸マグネシゥ ムなどの潤滑剤、 蔗糖や乳糖などの甘味料を挙げることができる。 剤形がカプセ ルである場合には、 上記の物質に加えて脂肪油などの液体担体を含有してもよい。 様々な種類の他の物質を被覆剤として、 あるいは投与単位の物理形状の改良剤と して使用することができる。 注射用の滅菌組成物は従来の医薬的方法に従つて製 剤化することができる。 例えば水や天然の植物油などの賦形剤ゃォレイン酸ェチ ルなどの合成脂肪賦形剤に活性化合物を溶解または懸濁することが好ましい。 ク ェン酸塩、 酢酸塩、 リン酸塩などの緩衝剤、 ァスコルビン酸などの抗酸ィ匕剤を許 容されている医薬的方法に従って組み込むこともできる。
錠剤の形態にするには、例えば乳糖、デンプン、結晶セルロースなどの賦形剤; カルボキシメチルセルロース、 メチルセルロース、 ポリビニルピロリドンなどの 結合剤;アルギン酸ナトリウム、 炭酸水素ナトリウム、 ラウリル硫酸ナトリウム などの崩壊剤等を用いて通常の方法により成形することができる。
丸剤、 散剤、 顆粒剤も同様に、 上記の賦形剤等を用いて通常の方法によって成 形することができる。 液剤、 懸濁剤は、 例えばトリカプリリン、 トリァセチンな どのグリセリンエステル類、 エタノール等のアルコール類などを用いて通常の方 法によって成形される。 カプセル剤は顆粒剤、 散剤あるいは液剤などをゼラチン などのカプセルに充填することによって成形される。
経口投与の製剤として、 本発明に係るプロスタグランジン類は、 シクロデキス トリン包接化合物に変換することもできる。 包接化合物はシクロデキストリンを 水および/または水と混合しやすい有機溶媒に溶解した溶解液を、 プロス夕ダラ ンジン類を水と混合しやすい有機溶媒に溶解した溶解液に加えることにより調 製される。 混合物を熱した後、 減圧濃縮か、 あるいは冷却下でのフィルター濾過 あるいはデカンテ一ションにより生成物を分離することにより、 目的のシクロデ キストリン包接化合物が単離される。 有機溶媒と水の比率は出発物と生成物の溶 解性によって変ィ匕する。 シクロデキストリン包接化合物調製中の温度は 7 0 を 超えないことが ましい。 ひ一、 ]3—あるいはアーシクロデキストリンあるいは それらの混合物のいずれも、 シクロデキス卜リン包接化合物の調製に用いること ができる。 プロスタグランジン類は、 シクロデキストリン包接化合物へ変換する ことにより安定性を上昇させることができる。
皮下、 筋肉内、 静脈内投与の剤型としては、 水性あるいは非水性溶液剤などの 形態にある注射剤がある。 水性溶液剤は例えば生理食塩水などが用いられる。 非 水性溶液剤は、 例えばプロピレングリコール、 ポリエチレングリコール、 オリー ブ油、 ォレイン酸ェチルなどが用いられ、 これらに必要に応じて防腐剤、 安定剤 などが添加される。 注射剤はバクテリア保留フィル夕一を通す濾過、 殺菌剤の配 合等の処置を適宜行うことによって無菌化される。
経皮投与の剤型としては、 例えば軟膏剤、 クリーム剤などが挙げられ、 軟膏剤 はヒマシ油、 ォリーブ油などの油脂類;ワセリン等を用いて、 クリーム剤は脂肪 油;ジエチレングリコール、 ソルビタンモノ脂肪酸エステルなどの乳化剤等を用 いて通常の方法によって成形される。
直腸投与のためには、 ゼラチンソフトカプセルなどの通常の座剤が用いられる。 非経口投与の製剤は、 乳濁剤として投与することもできる。 すなわち、 大豆油 等の植物油と、 レシチン等のリン脂質と、 本発明に係るイソ力ルバサイクリン類 との均一溶液に水を加え、 例えば加圧噴射ホモジナイザー、 超音波ホモジナイザ 一などのホモジナイザ一により均質化を行った脂肪乳剤なども注射剤として使 用できる。
上記記述から明らかなとおり、 本発明によれば、 さらに、 上記 (I ) 、 (m) または (IV) で表されるプロスタグランジン類および またはその光学異性体の、 神経障害治療のための活性成分としての使用、 並びに上記 (I ) 、 (m) または
(IV) で表されるプロスタグランジン類および Zまたはその光学異性体を、 神経 障害を持つ患者に、 神経障害を治療するのに有効量で投与することを特徴とする 神経障害治療法、 が同様に提供されることが理解されよう。
実施例
以下、 実施例により本発明をさらに詳述する。
参考例 1
神経軸索伸長促進活性の評価方法 (1 )
生後 7日齢の S Dラット脳を水平断にて切り、 内嗅野と海馬とを共に含む平面 を得る (以下、 「水平断スライス」 という。 図 1参照。 図 1中、 aは生後ラット の大脳半球および周辺の図であり、 bは水平断の一部でありそして Cはと内嗅野 海馬を含む部分である。 内嗅野から海馬歯状回へ軸索を伸ばす神経細胞が描かれ ている) 。 このようにして作製した 3 2 5 imの厚さの水平断スライスから、 内 嗅野部分のスライス断片および海馬歯状回部分のスライス断片を調製する。 この 海馬歯状回スライスと内嗅野スライスを両スライス間の距離が 5 0 0 m程度に なるようにして、 ゲル状コラーゲン層上で、 5 % F C S入り培地を用いて培養す る。 コラーゲン層は、 市販の支持枠にはられた細かい穴の開いたポリエチレンテ レフタレ一ト製の膜の上にコラ一ゲンゲルをコートすることにより作製する (図 2参照) 。 培養を開始して 24時間後に、 被験物質を含む無血清培地に交換し、 さらに 1 日間あるいは 4日間培養する。 その後、 b i o c y t i nの結晶粉末を内嗅野ス ライスの上に乗せ、 さらに 1日間培養を行う (このような培養を行うことにより、 スライス中の神経細胞の軸索がコラーゲン層内に伸延してくる。 また、 添加した b i o c y t i nは内嗅野の神経細胞に取り込まれ、 軸索内を順行輸送されて、 軸索全体に存在するようになる) 。
培養後のスライスをパラホルムアルデヒドで固定し、 標識した a V i d i nを 用いて軸索 (b i o c y t i nの存在する部分) を染色する。
染色された標本の写真を撮り、 写真の上で内嗅野スライスからコラーゲン層に 出た軸索の占有する領域の輪郭を描き、 その描かれた輪郭に囲まれた部分の面積 を算出することにより、 軸索の伸長度を測定する。
参考例 2
神経軸索伸長促進活性の評価方法 (2)
スライスの作成、 培養および培養後の染色は参考例 1と同様にして行う。
染色された標本の写真を撮り、 コラーゲン層中の、 内嗅野スライスから一定の 距離 (200 ^m) にある一定の長さ (750 ^m) の線分を通過する軸索の本 数を数えることにより、 軸索の伸長度を測定する。
参考例 3
モーリス水迷路を用いた短期作業記憶の測定方法
モーリス (M o r r i s )の方法 (J ou rna l o f Neu r o s c i e nc e Me t hod s, Vo l. 11, pp. 47-60, 1984) に準じ て行う。
透明アクリル製のプラットホーム (直径 10cm、 高さ 25cm)とプラットホーム が水に隠れるように 27 cmの高さまで水を張った青色塩化ビニール製の円形のプ —ル (直径 140 cm、 高さ 45 cm)を用いる。 プールを 4つの象限に分割し、 その うちの第 4象限中央 (プール中央より 35 cm)にプラットホームを設置し、 また プールの周囲には空間的な手がかりとして電球や画用紙を設置する。 記憶獲得試 行として、 ラットの頭をプールの壁に向けて第 1、 2、 3象限の 3つの象限のそれ ぞれの中央、 および第 1と第 2象限、 第 1と第 3象限の境界の 5地点から不規 則にラットをプール内に入れる。 プラットホームにたどり着いてから 15秒間滞 在した場合は、 プラットホームを認識しているとし、 15秒以内に再び泳ぎだした 場合には認識していないとして測定を継続する。 1 試行あたりの最大観察時間は 90秒とし、 1日 2試行行い、 連続 5日間 (計 10試行)行う。
その翌日からの 3日間で作業記憶試験を行い、 プール上に設置したビデオカメ ラを用いて、 ラットを水中に投入してからプラットホームに到達するまでの時間 (escape l atency)を測定する。 作業記憶試験の第 1日目は、 プラットホームの位 置を学習訓練時の場所から左に 180度移動する (第 2象限)。 記憶獲得試行と同 様に、 ラットの頭をプールの壁に向けてプール内に入れ escape l at encyを測定す る。 プラットホームにたどり着いてから 15秒間滞在した場合、 ラットをホーム ケージに戻す (1s t t r i al)。 1分後、再びラットをプール内に入れ escape l at ency を測定し、プラットホームに 15秒間滞在させた後ホームケージに戻す。これを 4 回繰り返す (2nd - 5 th t r i al s)。 ラットの投入地点は第 1、 3、 4象限の 3つの 象限のそれぞれの中央、 および第 1と第 4象限、 第 3と第 4象限の境界の 5地 点とする。作業記憶試験 2日目には学習訓練時の位置から 90度 (第 1象限)、 3 日目には 270度 (第 3象限)プラットホームを移動させて同様に測定する。 なお 各試行の最大観測時間は 90秒とする。 1日 5試行で合計 3日間 (合計 15試行) 行い、 2から 5試行の平均 escape l atencyを作業記憶の指標とする。
参考例 4
ステツプスル一型受動回避試験によるラットの学習記憶能の測定方法
実験装置は、 ギロチンドアで仕切られた 2室で構成されるステップスルー型受 動的回避反応装置を使用する。 すなわち、 一方の部屋は透明アクリルボードから なる明室 (床 15 cm X 25 cm、 高さ 15 cm) で、 他方は黒色アクリルボードから なる暗室 (大きさ同じ) である。 また、 喑室の床には、 15讓間隔に直径 4腿の ステンレス製グリッドを設け、 ダリッドは電気ショックを加えるための装置 (シ ョックジェネレータースクランブラー) と接続する。
まず 1分間、 ギロチンドアを開けて装置内をラットに自由探索させた後、 ドア を閉めて、 獲得試行としてラットを明室に入れ、 30秒後にドアを開ける。 ラット の四肢が暗室に入った後にドアを閉め、 ただちに電気ショックを負荷する。 電気 ショックの強度は、 0. 5 mA、 5 sec とする。 その後、 ただちにラットを明室に入 れ、 同様の手順でギロチンドアを開けても、 120秒間明室にとどまるようになる まで、訓練を繰り返す。獲得試行の 24時間後に保持試行としてラットを明室に入 れ、 30 秒後にギロチンドアを開けてから四肢が暗室に入るまでの時間を測定 (s tep-through lat ency) する。 保持試行時の最大観察時間は 300秒とする。 参考例 5
ί3蛋白脳室内持続注入によるアルツハイマー型痴呆動物モデルの作成
7週齢の Wi s tar系雄ラット (体重 220- 250 g)を使用する (N=5- 10)。
β-アミロイド蛋白 (卜 40) あるいは β-アミロイド蛋白 (卜 42) を、 35%ァセト 二トリル /0. に溶解し、 300 pmol/day となるようにミニ浸透圧ポンプ (volume 230 μΐ, 0. 5 μΐ/hour)に注入し、 ポリエチレンチューブを介して歯科用 注射針とつなぐ。 コントロール群には、 β-アミロイド蛋白 (40-1)を注入したポ ンプをつなぐ。 ラットを pentobarbi tal (50 mg/kg, i. p. )により麻酔した後、 頭 皮を切開し、 脳図譜にしたがってマイクロドリルで頭蓋骨に穴を開け、 針の先端 が側脳室 (A = -0. 3腿, L = 1. 2讓, H = 4. 5画)内になるように注射針を揷入し、 歯科用セメントで固定する。 浸透圧ポンプは、 背部皮下に埋め込む。
ミニ浸透圧ポンプの埋め込み手術の 9日後から、水迷路試験を参考例 3に示し た方法で行うか、 あるいは 1 3、 1 4日目に受動回避試験を参考例 4に示した方 法で行うことにより、 B-アミロイド蛋白 (卜 40)あるいは β-アミロイド蛋白 (1-42)投与群では、 β-アミロイド蛋白 (40- 1)投与群に比べて、 学習記憶能が低 下していることを確認する。
実施例 1
神経軸索伸長促進活性の ff ffi ( 1 )
披験化合物: (1 6 S ) — 1 5—デォキシー 1 6—ヒドロキシ— 1 6 _メチル - 9 (〇) 一メタノ一 Δ 6 (9 α)—プロスタグランジン I i
参考例 1の評価方法で、 神経軸索伸長促進活性を測定した。 実験 1、 2および 3では被験物質を添加して 1日間培養後に b i o c y t i n を添加し、 実験 4では被験物質を添加して 4日間培養後に b i 0 c y t i nを添
Figure imgf000025_0001
いずれの実験においても軸索伸長促進作用が検出され (実験 2は、 有意水 準: p<0. 05) 、 本化合物が軸索伸長促進作用を有することが明らかになつ た。
参考例 3の CNTFの効果に比較して、 添加後 1日間培養の場合でも軸索伸長 作用が検出されたことから、 本化合物の効果は直接的に軸索伸長を促進すること によるものである可能性が高いと考えられた。 実施例 2
神経軸索伸長促進活性の評価 (2)
披験化合物: (16S) — 15—デォキシー 16—ヒドロキシー 16—メチル —9 (O) —メタノ一厶 6 ()—プロスタグランジン I L
参考例 2の評価方法を用いた (標本は実施例 1の実験 2と同じものである) 。 結果を以下に示す。
Figure imgf000026_0001
この測定方法においても被験物質の軸索伸長促進作用が検出された (有意水 準: Pく 0. 05) 。
本例に用いた参考例 2の軸索伸長測定方法は、 参考例 1の測定方法に比べ、 よ り正確に軸索伸長度を測定する方法である。 したがって、 本例の結果は、 本化合 物が軸索伸長促進作用を有することを、 より確実に示すものと考えられた。 実施例 3
神経軸索伸長促進活性の評価 (3)
被験化合物: 9 (O) —メタノー Δ6 ()—プロスタグランジン I i (イソカル パサイクリン)
参考例 1と同様の評価方法を用いた。 ただし、 海馬歯状回スライスと内嗅野ス ライスとの最接近距離を lmmにし、 また、 被験物質を添加して培養 4日目に、 化合物の濃度は同じにして、 培地交換をもう一度行い、 全体で 7日間の培養を行 つた。
結果を以下に示す。コラーゲン層上に伸長している神経軸索が占有する面積比 を、 コントロール (1. 16mm2) を 1として算出した。 平均値土標準誤差
(単位:規格化された面積) 被験化合物無添加 1. 00± 0. 36 (n=5) 被験化合物 0. 01 iM 3. 69±0. 29 (n = 5) 本化合物が軸索伸長促進作用を有することが明らかになった (有意水準: p< 0. 05) 。
実施例 4
神経軸索伸長促進活性の評価 (4)
被験化合物: 9 (〇) 一メ夕ノ一 Δ6 (9α)—プロスタグランジン Iェ (イソカル バサイクリン) のメチルエステル体
実施例 3と全く同じ方法で実験を行った。
結果を以下に示す。 コラーゲン層上に伸長している神経軸索が占有する面積比 を、 コントロール (1. 16mm2) を 1として算出した。
Figure imgf000027_0001
本化合物が軸索伸長促進作用を有することが明らかになった (有意水準: P< 0. 05) 。
実施例 5
学習記憶障害改善効果の測定 (1)
披験化合物: (16 S) — 15—デォキシ— 16—ヒドロキシ— 16—メチル —9 (〇) 一メタノー Δ6 (9 一プロスタグランジン I 丄
参考例 3および 5の評価方法で、 学習記憶障害改善作用を測定した。 披験化合 物はリン酸緩衝食塩水に溶解し、 B-アミロイド蛋白を注入するのと同様に、 浸透 圧ポンプを用いて注入した。本実施例 5では、 ラットの右側脳室に β-アミロイド 蛋白(40-1)あるいは β-アミロイド蛋白(卜 40)を、左側脳室にリン酸緩衝食塩水あ るレ ^は披験化合物溶液を注入した。
(実験 1)
Figure imgf000028_0001
すなわち、 以上の実験において、 本化合物は学習記憶障害改善作用を示した。 実施例 Θ
学習記憶障害改善効果の測定 (2)
被験化合物: (16S) —15—デォキシ— 16—ヒドロキシ— 16_メチル —9 (〇) 一メタノ一厶 6 (9α)—プロスタグランジン I丄
参考例 3および 5の評価方法で、 学習記憶障害改善作用を測定した。 披験化合 物は β_アミロイド蛋白溶液に溶解し、浸透圧ポンプを用いて、 β-アミロイド蛋白 と同時に注入した。
Figure imgf000029_0001
すなわち、本化合物は学習記憶障害改善作用を示した(有意水準: p<0. 05)。 実施例 7
学習記憶障害改善効果の測定 (3)
披験化合物: (16 S) — 15—デォキシ— 16—ヒドロキシ— 16_メチル -9 (〇) 一メタノー Δ6 (9a)—プロスタグランジン I丄
参考例 4および 5の評価方法で、 学習記憶障害改善作用を測定した。 披験化合 物は β-アミロイド蛋白溶液に溶解し、浸透圧ポンプを用いて、 β-アミロイド蛋白 と同時に注入した。
(実験 1)
保持試行時に暗室に移動した時間平均値 土標準誤差 (単位:秒) β—アミロイド蛋白(40- 1)
266.3 ± 23.6 (n=6)
300 pmol/day投与群
β -アミロイド蛋白(卜 42)
147.5 ± 54.8 (n=4)
300 pmol/day投与群
B-アミロイド蛋白(卜 42)
300 pmol/dayおよび被験化合物 12 300.0 土 0.0 (n=4)
imol/day投与群
β-アミロイド蛋白(卜 42)
300 pmol/dayおよび被験化合物 120 262.1 + 37.9 (n=7)
fmol/day投与群 (実験 2)
保持試行時に暗室に移動した時間平均値 士標準誤差 (単位:秒) β-アミロイド蛋白(40-1)
255.6 ± 29.6 (n=8)
300 pmol/day投与群
β-アミロイド蛋白(1-42)
147.6 士 38.2 (n=8)
300 Dmol/dav投与群
B -アミロイド蛋白 α - 42)
300 pmol/dayおよび被験化合物 1.2 188.1 ± 52.9 (n=7)
f i m luou 1 i / /H uav j 又" "^ 十
β -アミロイド蛋白(卜 42)
300 pmol/dayおよび被験化合物 12 244.5 ± 37.6 (n=8)
fmol/day投与群
β -アミロイド蛋白(卜 42)
00 pmol/dayおよび被験化合物 120 244.0 ± 35.8 (n=8)
fmol/day投与群
(実験 3)
保持試行時に暗室に移動した時間平均値 土標準誤差 (単位:秒) β -アミロイド蛋白(40- 1)
277.3 土 22.7 (n=3)
300 pmol/day投与群
β-アミロイド蛋白(1-42)
79.5 ± 18.0 (n=4)
300 pmol/day投与群
β -アミロイド蛋白(卜 42)
00 pmol/dayおよび被験化合物 1.2 186.0 ± 41.2 (n=4)
fmol/day投与群
β -アミロイド蛋白(卜 42)
00 pmol/dayおよび被験化合物 120 241.0 士 59.0 (n=4)
fmol/day投与群
(実験 4 )
Figure imgf000031_0001
すなわち、 以上の実験において、 本化合物は用量依存的な学習記憶障害改善作用 を示した。
発明の効果 ― 本発明の薬剤は、 例えばアルツハイマー型痴呆、 パーキンソン病、 多発性硬化 症、 側索硬化症、 糖尿病性末梢神経障害 (二ユートパシー) などの、 痴呆あるい は運動不全を伴う脳あるいは神経の変性性疾患の治療薬となりうる。 また脳梗 塞 ·脳卒中などによる脳機能障害の改善薬ともなりうるものである。 また外傷に よる神経損傷の治療薬にもなりうるものである。

Claims

請求の範囲
1. 下記式 ( I )
Figure imgf000032_0001
ここで、 R1は水素原子、 Cェ〜じ^アルキル基または 1当量のカチオンを 表し; R2は水素原子、 メチル基またはビニル基を表し; R3は直鎖もしく は分岐鎖 C 3〜 C i 0アルキル基、 直鎖もしくは分岐鎖 C 3〜 C i 0アルケニル 基、 直鎖もしくは分岐鎖 C3〜C10アルキニル基、 置換されていてもよい C 3〜C10シクロアルキル基、 置換されていてもよいフエニル基、 置換されて いてもよいフエノキシ基、 または(置換されていてもよいフエニル基、置換 されていてもよいフエノキシ基もしくは置換されていてもよい C3〜C10 シクロアルキル基) で置換されている直鎖もしくは分岐鎖 Ci Ceアルキ ル基を表し; nは 0または 1を表し; Aは — CH2— CH2—、 — CH = C H—またはー0— CH2—を表し; Xは— CH2— CH2—、 -CH (NH2) — CH2—、 一CH=CH―、 一 C (NH2) =CH—または 一 C≡C—を 表し;結合
Figure imgf000032_0002
を表す、 但し Aが—〇_CH7—であるときおよび Xが— CH (NHJ - CH2—または— C (NH2) =CH—であるとき、 結合方向は逆であって もよい、
で表されるプロスタグランジン類およびノまたはその光学異性体を活性成分と して含有する神経障害治療剤。
2. 下記式 (Π)
Figure imgf000033_0001
ここで、 R R2、 R3および nの定義は上記式 (I) に同じである、 で表されるプロスタグランジン類および Zまたはその光学異性体を活性成分と して含有する神経障害治療剤。
3. 上記式 (Π) において、 R1が水素原子またはメチル基である請求項 2に 記載の神経障害治療剤。
4. 上記式 (Π) において、 R1が水素原子またはメチル基であり、 nが 0で あり、 R 2が水素原子でありそして R 3がべンチル基である請求項 2に記載の神経
5. 上記式 (Π) において、 R1が水素原子またはメチル基であり、 nが 1で あり、 R 2がメチル基でありそして R 3がブチル基である
請求項 2に記載の神経障害治療剤。
6. 下記式 (IE)
H
Figure imgf000034_0001
ここで、 R R23, Xおよび nの定義は上記式 (I) に同じでありそ して A1は— CH2— CH2—または— CH=CH—を表す、但し Xが— CH (NH2) — CH2—または— C (NH2) =CH—であるとき結合方向は逆 であってもよい、
で表されるプロスタグランジン類および/またはその光学異性体を活性成分と して含有する神経障害治療剤。
7. 下記式 (IV)
H
Figure imgf000034_0002
ここで、 R1, R2、 R3、 A、 Xおよび nの定義は、 但し書きも含めて、 上 記式 (I) に同じである、
で表されるプロスタグランジン類および/またはその光学異性体を活性成分と して含有する神経障害治療剤。
8. 上記式 (I) 、 (ΠΙ) または (IV) で表されるプロスタグランジン類およ び zまたはその光学異性体を活性成分として含有する、 ァルツハイマ一型痴呆症、 パーキンソン病、 多発性硬化症、 側索硬化症、 糖尿病性末梢神経障害、 学習記憶 障害、 神経損傷、 脳梗塞による脳機能障害および脳卒中による脳機能障害よりな る群から選ばれる神経障害のための治療剤。
9. 上記式 ( I ) 、 (ΠΙ) または (IV) で表されるプロスタグランジン類およ び Zまたはその光学異性体の、 神経障害治療のための活性成分としての使用。
1 0 . 上記式 (I ) 、 (m) または (IV) で表されるプロスタグランジン類お よび/またはその光学異性体を、 神経障害を持つ患者に、 神経障害を治療するの に有効量で投与することを特徴とする神経障害治療法。
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