TW202113062A

TW202113062A - 腎間質細胞的製造方法

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Publication number: TW202113062A
Application number: TW109119500A
Authority: TW
Inventors: 池谷真; 上谷大介
Original assignee: 國立大學法人京都大學; 日商武田藥品工業股份有限公司
Priority date: 2019-06-11
Filing date: 2020-06-10
Publication date: 2021-04-01
Also published as: JPWO2020250913A1; EP3985104A4; WO2020250913A1; US20220313733A1; EP3985104A1; JP7541700B2

Abstract

就用於供給腎間質細胞之技術而言，本發明提供一種腎間質細胞的製造方法，其包含在含有源自血小板之成長因子受體促效劑的培養基中，培養腎間質前驅細胞，得到腎間質細胞的步驟(3)。此製造方法可進一步包含從神經脊細胞誘導腎間質前驅細胞的步驟(2)，及在包含GSK3 β阻礙劑、TGF β阻礙劑、及視黃酸及/或其衍生物之培養基中培養多能性幹細胞，誘導神經脊細胞的步驟(1)。

Description

腎間質細胞的製造方法

本發明係關於用於製造腎間質細胞的方法及培養基，以及使用腎間質細胞製造腎臟類器官(organoid)的方法。

由慢性腎臟病及急性腎疾病等所引起的腎纖維化，伴隨腎功能之明顯降低，以致對於患者，導入透析或腎移植成為必要。近年，紅血球生成素(EPO)產生細胞及纖維母細胞等腎間質細胞(Renal stromal cell：RSC)參與腎纖維化變得明確。使用腎間質細胞的試驗系統被認為在解明腎纖維化之機制，及確立預防方法及治療方法上有用。

在非專利文獻1中，記載從人工多能性幹細胞(induced pluripotent stem cell：iPSC)誘導EPO產生細胞。其誘導方法包含於含有激活素A(activin A)、CHIR99021(GSK3 β阻礙劑)及Y-27632(ROCK阻礙劑)之培養基中培養iPSC的步驟等。藉由非專利文獻1記載之方法所得到的EPO產生細胞，為肝細胞系列(Hepatic lineage)，與腎間質細胞相異。

又，非專利文獻2記載從iPSC誘導腎前驅細胞(Renal progenitors)。其誘導方法包含於含有激活素A及CHIR99021(GSK3 β阻礙劑)之培養基中培養iPSC的步驟等。

在試管中(in vitro)，從iPSC等多能性幹細胞誘導腎間質細胞的技術迄今尚未報導。

[先前技術文獻]

[非專利文獻]

[非專利文獻1]"源自人類多能性幹細胞之紅血球生成素產生細胞改善小鼠的腎性貧血(Human pluripotent stem cell-derived erythropoietin-producing cells ameliorate renal anemia in mice)", Science Translational Medicine, 2017, Vol. 9, Issue 409,eaaj2300

[非專利文獻2]"使用源自人工多能性幹細胞之腎前驅細胞的細胞療法減輕小鼠之腎臟損傷(Cell Therapy Using Human Induced Pluripotent Stem Cell-Derived Renal Progenitors Ameliorates Acute Kidney Injury in Mice)", STEM CELLS TRANSLATIONAL MEDICINE 2015;4:980-992

[非專利文獻3]"誘導人類ENS細胞系列以赫普隆氏症的細胞治療及藥物開發(Deriving human ENS lineages for cell therapy and drug discovery in Hirschsprung disease)", Nature, 2016, 531, 105-109

[非專利文獻4]"經由使用小分子化合物及限定之培養基的神經脊細胞系列，從多能性幹細胞誘導間質基質細胞(Derivation of mesenchymal stromal cells from pluripotent stem cells through a neural crest lineage using small molecule compounds with defined media)", PLoS One, 2014, 9, 12

[非專利文獻5]”用於誘導人工多能性幹細胞的新穎有效無飼養層培養基系統(A novel efficient feeder-free culture system for the derivation of human induced pluripotent stem cells)”, Scientific Reports, 2014, 4, 3594

[非專利文獻6]"從人類多能性幹細胞產生腎臟類器官(Generation of kidney organoids from human pluripotent stem cells)", Nature Protocols volume 2016, 11, 1681-1692

[非專利文獻7]"使用人類多能性幹細胞之定向分化以製造腎臟類器官(Making a Kidney Organoid Using the Directed Differentiation of Human Pluripotent Stem Cells)", Methods in Molecular Biology, 2017, 1597, 195-206

為了使用腎間質細胞之試驗系統的構築等，尋求供給腎間質細胞的技術。

為解決上述問題，本發明提供以下之[1]至[31]。

[1]一種腎間質細胞之製造方法，其包含在含有源自血小板之成長因子受體促效劑的培養基中培養腎間質前驅細胞，得到腎間質細胞的步驟(3)。

[2]如[1]之製造方法，其中前述培養基進一步含有鹼性纖維母細胞成長因子及/或纖維母細胞成長因子9。

[3]如[1]或[2]之製造方法，其進一步包含從神經脊(neural crest)細胞誘導腎間質前驅細胞的步驟(2)。

[4]如[1]至[3]中任一項之製造方法，其進一步包含在含有GSK3 β阻礙劑、TGF β阻礙劑、以及視黃酸及/或其衍生物的培養基中培養多能性幹細胞，誘導神經脊細胞的步驟(1)。

[4a]如[4]之製造方法，其中前述多能性幹細胞為人工多能性幹細胞。

[4b]如[4]或[4a]之製造方法，其中GSK3 β阻礙劑為CHIR98014(N6-[2-[[4-(2,4-二氯苯基)-5-(1H-咪唑-1-基)-2-嘧啶基]胺基]乙基]-3-硝基-2,6-吡啶二胺)。

[4c]如[4]至[4b]中任一項之製造方法，其中TGF β阻礙劑為SB431542(4-[4-(1,3-苯并二氧雜環戊烯-5-基)-5-(2-吡啶基)-1H-咪唑-2-基]-苄醯胺)。

[5]如[3]至[4c]中任一項之製造方法，其中前述神經脊細胞為後腦神經脊細胞。

[6]如[1]至[5]中任一項之製造方法，其中前述腎間質細胞於低氧條件下產生紅血球生成素(erythropoietin)。

[7]如[1]至[6]中任一項之製造方法，其中前述源自血小板之成長因子受體促效劑為源自血小板之成長因子(PDGF)。

[8]一種腎間質細胞製造用培養基，其包含源自血小板之成長因子受體促效劑。

[9]如[8]之培養基，其進一步包含鹼性纖維母細胞成長因子及/或纖維母細胞成長因子9。

[10]如[8]或[9]之培養基，其中前述源自血小板之成長因子受體促效劑為源自血小板之成長因子(PDGF)。

[11]一種腎臟類器官之製造方法，其包含將腎間質細胞或腎間質前驅細胞與中間中胚葉進行共培養的步驟。

[12]如[11]之製造方法，其中腎間質細胞或腎間質前驅細胞為藉由包含步驟(3)的腎間質細胞之製造方法所得到者，其中該腎間質細胞之製造方法的步驟(3)包含在含有源自血小板之成長因子受體促效劑的培養基中培養腎間質前驅細胞而得到腎間質細胞，或腎間質細胞或腎間質前驅細胞為藉由從神經脊細胞誘導腎間質前驅細胞的步驟(2)所得到者。

[13]一種篩選腎纖維症之預防或治療用物質的方法，其包含：

將藉由[1]至[7]中任一項之製造方法所得到的腎間質細胞，於誘導該細胞之纖維化的物質存在下培養，提供包含纖維化腎間質細胞之細胞集團的程序；

於受驗物質存在下及不存在下培養前述細胞集團的程序；

測定各前述細胞集團中的細胞之纖維化程度的程序；及

將於前述受驗物質存在下所培養的細胞集團中，與在前述受驗物質不存在下所培養的細胞集團相比，使細胞之纖維化程度降低之受驗物質予以選擇的程序。

[13a]如[13]之方法，其中誘導纖維化之物質為TGF β(轉化生長因子β)。

[14]一種方法，其為決定腎纖維症之生物標記的方法，其包含

鑑定包含於前述細胞集團之培養液中之物質的程序；及

將所鑑定之物質與罹患腎纖維症之哺乳動物的體液中所含之物質做比較，特定出一致之物質的程序。

[14a]如[14]之方法，其中誘導纖維化之物質為TGF β。

[15]一種製造方法，其為含有腎間質前驅細胞之腎障礙之預防或治療用醫藥的製造方法，其包含從神經脊細胞誘導腎間質前驅細胞的步驟(2)。

[16]一種製造方法，其為含有腎間質細胞之腎障礙之預防或治療用醫藥的製造方法，其包含在含有源自血小板之成長因子受體促效劑的培養基中，培養腎間質前驅細胞，得到腎間質細胞的步驟(3)。

[17]如[15]或[16]之製造方法，其進一步包含在含有GSK3 β阻礙劑、TGF β阻礙劑、以及視黃酸及/或其衍生物的培養基中，培養多能性幹細胞，誘導神經脊細胞的步驟(1)。

[18]一種醫藥，其包含源自多能性幹細胞的腎間質前驅細胞及/或源自多能性幹細胞的腎間質細胞。

[18a]如[18]之醫藥，其係用於腎障礙之預防或治療。

[19]一種腎障礙之預防劑或治療劑，其包含源自多能性幹細胞的腎間質前驅細胞及/或源自多能性幹細胞的腎間質細胞。

[20]一種腎障礙之預防或治療方法，其包含將源自多能性幹細胞之腎間質前驅細胞及/或源自多能性幹細胞之腎間質細胞投與至對象的程序。

[21]一種源自多能性幹細胞的腎間質前驅細胞及/或源自多能性幹細胞的腎間質細胞，其係用於腎障礙之預防或治療。

[22]一種源自多能性幹細胞的腎間質前驅細胞及/或源自多能性幹細胞的腎間質細胞之用途，其係用於腎障礙之預防或治療用醫藥的製造。

[23]一種腎間質細胞，其係在包含源自血小板之成長因子受體促效劑的培養基中，培養腎間質前驅細胞而得到。

[23a]如[23]之腎間質細胞，其中前述源自血小板之成長因子受體促效劑為源自血小板之成長因子(PDGF)。

[23b]如[23]或[23a]之腎間質細胞，其中前述培養基進一步包含鹼性纖維母細胞成長因子及/或纖維母細胞成長因子9。

[23c]如[23]至[23b]中任一項之腎間質細胞，其係表現CD73及PDGFRβ，於低氧條件下產生紅血球生成素(erythropoietin)。

[23d]如[23c]之腎間質細胞，其進一步表現肌間線蛋白(desmin)及波形蛋白(vimentin)。

[24]一種腎間質前驅細胞，其係在包含StemPro(註冊商標)MSC SFM Xenofree的培養基中，培養神經脊細胞而得到。

[24a]如[24]之腎間質前驅細胞，其表現FOXD1、CD73及PDGFRβ，不產生紅血球生成素。

[25]一種腎臟類器官，其包含如[23]至[24a]中任一項之腎間質細胞及/或腎間質前驅細胞。

[26]一種腎間質細胞分化誘導劑，其包含源自血小板之成長因子受體促效劑。

[26a]如[26]之腎間質細胞分化誘導劑，其中前述源自血小板之成長因子受體促效劑為源自血小板之成長因子(PDGF)。

[27]一種源自人工多能性幹細胞之腎間質前驅細胞。

[28]一種腎間質前驅細胞之製造方法，其包含從神經脊細胞誘導腎間質前驅細胞的步驟(2)。

[29]一種源自人工多能性幹細胞之腎間質細胞。

[30]一種腎間質細胞分化誘導劑，其包含STEMdiff APEL2培養基(STEMCELL Technologies，ST-05275)。

[31]一種腎間質細胞之製造方法，其包含在STEMdiff APEL2培養基(STEMCELL Technologies，ST-05275)中培養腎間質前驅細胞的步驟。

[定義]

在本發明中，「源自血小板之成長因子受體促效劑」意指結合於源自血小板之成長因子受體(Platelet derived growth factor receptor(PDGFR))，可媒介以該受體之磷酸化為起點之信號傳達的物質。

「源自血小板之成長因子受體(Platelet derived growth factor receptor (PDGFR)」中，存在PDGFR α及PDGFR β之二種亞型。PDGFR藉由與源自血小板之成長因子(Platelet derived growth factor(PDGF))等配體之結合，形成二聚體，該二聚體中，存在PDGFR-α α、PDGFR-α β、PDGFR-β β之三種組合。藉由配體與PDGFR結合，PDGFR之酪胺酸殘基接受自身磷酸化，成為與具有SH2結構域之信號傳達分子(PLC-γ、Grb2、PI3K等)的結合部位，向下游傳達信號。

源自血小板之成長因子受體促效劑，可為抗體、肽、低分子化合物等，較佳為PDGF。

「腎間質細胞(Renal Stromal Cell：RSC)」意指CD73陽性且PDFGR β陽性之細胞，可產生紅血球生成素(以下，在本說明書中稱為「EPO」；若未特別限定，「EPO」意指紅血球生成素蛋白質)。

腎間質細胞之「纖維化」，意指非α SMA陽性之腎間質細胞成為α SMA陽性之細胞。又，腎間質細胞成為α SMA陽性，意指彼等分化為肌纖維母細胞(myofibroblast)。該分化可藉由腎間質細胞之TGF β 1刺激而誘導。該分化有伴隨細胞之肥大化的情況。肌纖維母細胞為α SMA陽性。

「腎間質前驅細胞(Renal Stromal Precursor：RSP)」意指FOXD1陽性、CD73陽性且PDGFR β陽性之細胞，不產生EPO。

「神經脊細胞(Neural Crest Cell：NCC)」，意指在發育初期，從神經板形成神經管時，於神經外胚葉與表皮外胚葉之間產生的細胞，具有分化為神經細胞、神經膠細胞、間葉系間質細胞、骨細胞、軟骨細胞、角膜細胞及色素細胞等多種細胞的多潛能性(multipotency)及自身增殖能力。神經脊細胞為SOX10陽性。

「後腦神經脊細胞(hindbrain NCC：hNCC)」意指後方化之NCC，具有為神經脊細胞標記的SOX10陽性、NGFR陽性、HOXB4陽性、紅血球生成素(EPO)陽性。

「後方化」為將發育期的體軸之頭尾(Anterior-Posterior Axis)偏向較尾側(Posterior)，在本發明中，意指將從多能性幹細胞分化之中腦神經脊細胞(midbrain NCC)誘導成後腦神經脊細胞(hindbrain NCC)。

「中間中胚葉(intermediate mesoderm)」意指在個體之發育中，從中胚葉發育的胚之一種，為可分化成前腎、中腎、中腎管、後腎、副腎皮質及生殖腺的細胞，為OSR1(odd-skipped related 1)陽性。

「腎臟類器官」意指包含構成活體內之腎臟組織的至少1種以上之細胞集團的3次元構造體。

「TGF β阻礙劑」意指對TGF β(轉化生長因子β)具有阻礙活性的物質。TGF β為結合於2種絲胺酸/蘇胺酸蛋白質激酶型受體的細胞激素，經由以Smad(R-Smad)之活化為主的信號傳達，控制細胞增殖、細胞分化及細胞死亡等。就具有TGF β阻礙活性之物質而言，可列舉阻礙TGF β與其受體之結合的物質，或阻礙TGF β與受體結合後之下游信號的物質。就該下游信號而言，可例示由TGF β II型受體所導致的TGF β I型受體之磷酸化、由磷酸化TGF β I型受體所導致的Smad之磷酸化等。本發明中所用之「TGF β阻礙劑」，只要具有TGF β阻礙活性，無特別限定。

「GSK3 β阻礙劑」意指對GSK3 β(糖原合成酶激酶3 β)具有阻礙活性的物質。GSK3(糖原合成酶激酶3)為絲胺酸/蘇胺酸蛋白質激酶之一種，參與糖原之產生、細胞凋亡、幹細胞之維持等相關的多個信號途徑。GSK3存在α及β之2個同功型(isoform)。本發明中所用的「GSK3 β阻礙劑」，只要具有GSK3 β阻礙活性，無特別限定，亦可為兼具GSK3 β阻礙活性合併GSK3 α阻礙活性的物質。

「培養」意指使細胞於試管(in vitro)環境中維持，並使其增殖(成長)、及/或分化。「進行培養」意指在組織外或體外，例如，於細胞培養皿或燒瓶中維持細胞、使其增殖(成長)、及/或分化。

「細胞集團」意指相同種類或相異種類之2個以上細胞。「細胞集團(population)」亦意指相同種類或相異種類之細胞的一塊(mass)。

「附著培養」意指將細胞以附著於容器之狀態，例如於適當培養基存在下，將細胞以附著於滅菌塑膠(或塗覆之塑膠)之細胞培養皿或燒瓶的狀態進行培養。

「懸浮培養」意指將細胞以不附著於容器，以分散於適當培養基中的狀態進行培養。

「維持培養(Sustain)」意指將期望之細胞集團維持彼等之數目同時進行培養。細胞數目之維持，可為藉由細胞在不增殖下生存而達到者，亦可為藉由細胞之增殖所造成的增數與死滅所造成的減數互相抵消而達到者。細胞數目之維持，未必需要使細胞之數目維持完全相同，只要依照本發明之目的，使細胞之數目維持實質上相同即可。

「擴大培養(Expand)」意指以使期望之細胞集團增殖，使細胞數增加為目的而進行培養。細胞數之增加，只要藉由細胞之增殖所造成的增數超過死滅所造成的減數而達成者即可，未必需要細胞集團之全部細胞均增殖。細胞數目之增加，與擴大培養之開始前相比，可為1.1倍、1.2倍、1.5倍、2倍、3倍、4倍、5倍、6倍、7倍、8倍、9倍、10倍、15倍、20倍、30倍以上。

「多能性(pluripotency)」意指可分化成具有各種相異之型態或功能的組織或細胞，亦能分化成3胚葉之任何系統之細胞的能力。「多能性(pluripotency)」，無法分化成胚盤，因此從「無法形成個體之能力」的觀點而言，與可分化成身體之所有組織-包含胚盤-的「全能性(totipotency)」有所區別。

「多潛能性(multipotency)」意指可分化成複數個限定數目之系統之細胞的能力。例如，間葉系幹細胞、造血幹細胞、神經幹細胞為多潛能性(multipotency)，而非多能性(pluripotency)。ENP具有分化成神經細胞及神經膠細胞的多潛能性(multipotency)。

「標記」意指為「標記蛋白質」或「標記基因」，在設定之細胞類型中，於細胞表面、細胞質內及/或核內等特異地表現的蛋白質或其基因。標記可為陽性選擇標記或陰性選擇標記。較佳之標記為細胞表面標記，尤其若藉由細胞表面陽性選擇標記，實施生存細胞之濃縮、單離、及/或檢測將成為可能。

標記蛋白質之檢測，可採用使用該標記蛋白質特異性抗體的免疫學檢定，例如，ELISA、免疫染色、流式細胞術(flow cytometry)等而進行。就標記蛋白質特異性抗體而言，可使用與標記蛋白質中特定之胺基酸序列或結合於標記蛋白質之特定糖鏈等結合的抗體。又，在細胞內表現，而未出現於細胞表面之標記蛋白質(例如轉錄因子或其亞單元(subunit)等)的情況，使報告蛋白質(reporter protein)與該標記蛋白質一起表現，藉由檢測該報告蛋白質，可檢測為對象的標記蛋白質(例如，非專利文獻4)。此方法較佳用於適當的細胞表面標記尚未被認定的情況。標記基因之檢測，可利用該領域中周知之核酸擴增方法及/或核酸檢測方法，例如，RT-PCR、微陣列(microarray)、生物晶片及RNAseq等而進行。

「表現(expression)」可被定義為由細胞內之啟動子(promotor)所驅動的特定核苷酸序列之轉錄及/或轉譯。

「陽性(positive)」或「表現」，意指蛋白質或基因藉由該領域中周知之手法，以可檢測之量表現。蛋白質之檢測可採用使用抗體之免疫學檢定，例如，ELISA、免疫染色、流式細胞術而進行。又，在細胞內表現，而於細胞表面未表現之蛋白質(例如轉錄因子或其亞單元等)的情況，使報告蛋白質與該蛋白質一起表現，藉由檢測該報告蛋白質，可檢測為對象之蛋白質。基因之檢測，例如，可利用RT-PCR、微陣列、生物晶片及RNAseq等之核酸擴增方法及/或核酸檢測方法而進行。

「陰性(negative)」或「無表現」意指蛋白質或基因之表現量，藉由如上述之周知手法之全部或任一種，均未達檢測下限值。蛋白質或基因之表現的檢測下限值，隨各種手法而異。

「紅血球生成素(Erythropoietin)」(以下，在本說明書中，稱為「EPO」；又，若未特別限定，「EPO」意指紅血球生成素蛋白質。)為促進紅血球之產生的造血因子之一，由165個胺基酸構成。分子量為約34000。EPO在胎兒及新生兒時期，係從肝臟細胞分泌，然而從妊娠後期至成人時期，係從腎間質細胞分泌(非專利文獻1)。

「CD73」亦稱為5’-核苷酸酶(5’-NT)，為藉由NT5E基因編碼的膜蛋白質。70kDa之亞單元形成二聚體，錨定(anchored)在GPI，存在於細胞表面。CD73主要表現於間葉系幹細胞，亦可見表現於T細胞、B細胞等免疫系細胞，或上皮細胞及內皮細胞之一部分。具有5'-核苷酸酶之酵素活性，催化嘌呤及嘧啶之核糖、去氧核糖核苷一磷酸之形成對應核苷的脫磷酸化。

「肌間線蛋白(desmin)」為屬於細胞質內之蛋白質性纖維系統之一的中間絲蛋白III類之蛋白質。在肌細胞等中為構造完整性及生存所必需的因子。

「波形蛋白(vimentin)」為細胞質內之蛋白質性纖維系統之一的中間絲蛋白III類之蛋白質，表現於纖維母細胞、血管內皮細胞、平滑肌細胞、橫紋肌細胞、骨/軟骨細胞、神經鞘細胞等間葉系細胞。

「Forkhead box D：FOXD1」為重新編程(reprogramming)控制因子之一，係在已進行重新編程(reprogramming)之細胞中表現上升時期的特異性標記。在多能性幹細胞中則不表現。

「SOX10」，於全部神經脊細胞中皆可見到表現。另一方面，SOX10在腎間質前驅細胞及腎間質細胞中不表現。

「神經成長因子受體(Nerve growth factor receptor：NGFR)」為結合神經成長因子(Nerve growth factor：NGF)的受體。

「HOXB4」為Antp同源匣(homeobox)蛋白質之一，由同源匣B基因簇內之HOXB4基因編碼。HOXB4蛋白質具有同源匣DNA結合區域，在個體發育時有作為特異轉錄因子的功能。

「類神經EGFL因子2(Neural EGFL Like 2：NELL2)」為具有類表皮生長因子(epidermal growth factor)(EGF)重複單元的蛋白質激酶C結合蛋白，於身體內，在中樞神經之表現高，亦表現在包含腎間質細胞的各種間質細胞之細胞質內。

「配對盒蛋白-7(Paired box protein-7：PAX7)」為神經脊之發育及分化所必要的轉錄因子，與該神經脊之發育及分化所必要的PAX3形成雜二聚體，並與DNA結合。在身體中，亦表現在肌衛星細胞或腎間質細胞。

「Nik相關激酶(Nik Related Kinase：NRK)」為絲胺酸/蘇胺酸激酶之一，在TNF-JNK信號傳遞途徑(signaling pathway)之磷酸化具有功能。基因存在於X染色體，在身體中，亦表現在睪丸或卵巢等生殖器或腎間質細胞。

「包含~(comprise(s)或comprising)」意指雖表示包含該語句後續之要素，然而並非限定於此等。因此，雖暗示包含該語句後續之要素，然而並非暗示排除其他任何要素。

「約」或「大概」，表示相對於基準值，分別為正或負至30%、25%、20%、15%、10%、8%、6%、5%、4%、3%、2%或1%而變動的值。較佳而言，「約」或「大概」之術語，表示相對於基準值，分別為正或負15%、10%、5%、或1%之範圍。

依照本發明，可提供用來供給腎間質細胞的技術。

圖1係展示在從人工多能性幹細胞誘導的神經脊細胞中，EPO及SOX10之表現的免疫組織化學染色圖。

圖2係展示在將RA濃度調成0μM(-)、1μM(低)及3μM(高)之情況，於各培養日數測定從神經脊細胞分泌至培養基中之EPO蓄積量之結果的圖。縱軸表示EPO濃度(mIU/ml)。橫軸表示培養日數(Day6-21)，「iPSC」表示作為陰性對照之人工多能性幹細胞的測定值。

圖3係展示低氧刺激(FG2216或FG4592)後方化之神經脊細胞，測定EPO分泌量之結果的圖。縱軸表示EPO濃度(mIU/ml)。

圖4係展示測定在從人工多能性幹細胞誘導之後腦神經脊細胞中之HOXB4表現量之結果的圖。縱軸係將後腦神經脊細胞中的HOXB4之表現量，該表現量以人工多能性幹細胞株(「iPSC」)之表現量當作1時的相對值來表示。橫軸表示視黃酸之濃度。

圖5係展示在將RA濃度調成0-10μM之情況，測定從後腦神經脊細胞分泌至培養基中之EPO蓄積量之結果的圖。縱軸表示EPO濃度(mIU/ml)。橫軸表示視黃酸之濃度。「iPSC」表示作為陰性對照之人工多能性幹細胞的測定值。

圖6係展示測定敲入(knock-in)EPO-emGFP基因之人類人工多能性幹細胞株(「iPSC」)、揀選(sorting)前之後腦神經脊細胞(「not sort」)、GFP陰性後腦神經脊細胞(「GFP-sort」)及GFP陽性後腦神經脊細胞(「GFP+sort」)中之EPO mRNA表現量之結果的圖。縱軸係將EPO mRNA表現量以敲入(knock-in)EPO-emGFP基因之人類人工多能性幹細胞株(「iPSC」)之表現量當作1時的相對值來表示。

圖7係展示測定後腦神經脊細胞(「NCC D18」)、腎間質前驅細胞(「RSP D39」)、腎間質細胞(「APEL D15」)及經低氧刺激之腎間質細胞(「+FG4592」)之EPO mRNA表現量之結果的圖。縱軸係將EPO mRNA表現量以敲入EPO-emGFP基因之人類人工多能性幹細胞株(「iPSC」)之表現量當作1時的相對值來表示。

圖8係展示從腎間質前驅細胞誘導之腎間質細胞中之低氧回應性EPO蛋白質之表現的免疫組織化學染色圖。紅色表示EPO蛋白質，藍色表示細胞核。

圖9係展示於bFGF、FGF9及PDGF-BB存在下，誘導之腎間質細胞的細胞增殖(A)及EPO分泌量(B)之測定結果圖。

圖10係展示測定低氧刺激之腎間質細胞之腎間質細胞標記(肌間線蛋白(desmin)、波形蛋白(vimentin)、CD73、PDGFR β)之表現量之結果的圖。縱軸係將mRNA表現量以人工多能性幹細胞株之表現量當作1時的相對值來表示。

圖11係展示藉由TGF β 1刺激，從腎間質細胞分化之肌纖維母細胞中之α SMA及FOXD1表現的免疫組織化學染色圖。

圖12係展示經TGF β 1刺激之腎間質細胞分化為肌纖維母細胞之比例的圖。縱軸表示tdTomato染色細胞之面積相對於培養細胞之全體面積的比例(%)。

圖13將培養第4日(D4)之RSC，以TGF β 1(1ng/ml)處置9日後(D13 TGF)，以含有TGF β 1之培養基(D25 TGF+)或不含TGF β 1之培養基(D25 TGF-)進一步培養12日。表示D13及D25的tdTomato染色細胞之面積相對於培養細胞之全體面積的比例(%)。「D25 Cont」表示陰性對照(無TGF β 1處置)。

圖14將培養第4日(D4)之RSC，以TGF β 1(10ng/ml)處置9日後(D13 TGF)，以含有TGF β 1之培養基(D25 TGF+)或不含之培養基(D25 TGF-)進一步培養12日。表示D13及D25的tdTomato染色細胞之面積相對於培養細胞之全體面積的比例(%)。「D25 Cont」表示陰性對照(無TGF β 1處置)。

圖15將培養第4日(D4)之RSC，以TGF β 1(10ng/ml)處置9日後(D13)，以不含TGF β 1之培養基進一步培養2日(D15)。在D15之細胞之培養基中添加SB431542(3、10、30μM)，進一步培養9日(D24)。表示D15、D17、D20、D22及D24的tdTomato染色細胞之面積。「Cont」表示陰性對照(不添加SB)。

圖16為腎臟類器官之顯微鏡像。

圖17為表示測定人工多能性幹細胞株(「iPSC」)、中間中胚葉(「IM(D7)」)、腎臟類器官(Mini-kidney：「IM+RSP(D25)」)、不含腎間質前驅細胞之腎臟類器官(「KiO(D25)」)及低氧條件下之腎臟類器官(Mini-kidney：「IM+RSP(D25)+FG4592」)的EPO mRNA表現量之結果的圖。縱軸係將EPO mRNA表現量以人工多能性幹細胞株之表現量當作時1的相對值來表示。

圖18係展示測定人工多能性幹細胞株(「iPSC」)、中間中胚葉(「IM(D7)」)、腎臟類器官(Mini-kidney：「IM+RSP(D25)」)、不含腎間質前驅細胞之腎臟類器官(「KiO(D25)」)及低氧條件下之腎臟類器官(Mini-kidney：「IM+RSP(D25)+FG4592」)中的腎間質細胞標記(肌間線蛋白(desmin)、波形蛋白(vimentin)、CD73、PDGFR β)之表現量之結果的圖。縱軸係將mRNA表現量藉由以人工多能性幹細胞株之表現量當作1時的相對值來表示。

圖19係展示腎臟類器官(Mini-kidney)中的絲球體細胞標記(WT1)及腎小管細胞標記(LTL)之表現的免疫組織化學染色圖。

圖20係展示包含RSP之腎臟類器官(IM+RSP(D25)、右)及不含RSP之腎臟類器官(KiO(D25)、左)之細胞集團的T-SNE plot。

圖21係將源自EPO-emGFP/GAPDH-tdTomato(GAPDH-tdT)雙基因敲入(dual knock-in)人類iPS細胞株之RSP細胞塊移植至免疫不全NOG小鼠之腎後，摘出之腎臟之實體顯微鏡下的螢光像。其展示藉由GAPDH-tdT之螢光觀察結果，細胞從移植之細胞塊游走，於腎內生著。

圖22係展示將細胞塊於腎移植後，摘出的包含腎臟之RSP(GAPDH-tdTomato陽性細胞)生著部位之組織片的螢光像，及在移植之RSP之一部分細胞中，檢測藉由EPO-emGFP之表現所產生的螢光。

[發明之詳細說明]

以下，說明實施本發明之較佳型態。再者，以下所說明之實施型態，係表示本發明之代表性實施型態之一例，不能藉此狹隘地解釋本發明之範圍。

1.腎間質細胞之製造方法

根據本發明之腎間質細胞的製造方法，包含以下之步驟(3)，並任意地包含步驟(2)及/或步驟(1)。

步驟(3)：在包含源自血小板之成長因子受體促效劑的培養基培養腎間質前驅細胞，得到腎間質細胞的步驟。

步驟(2)：從神經脊細胞誘導腎間質前驅細胞的步驟。

步驟(1)：在包含GSK3 β阻礙劑、TGF β阻礙劑、及視黃酸及/或其衍生物之培養基培養多能性幹細胞，誘導神經脊細胞的步驟。

1-1.步驟(3)

本步驟中，於包含源自血小板之成長因子受體促效劑的培養基，培養腎間質前驅細胞，得到腎間質細胞。源自血小板之成長因子受體促效劑，可見到具有將腎間質前驅細胞分化誘導成腎間質細胞的活性，而有作為腎間質細胞誘導劑之功能。就源自血小板之成長因子受體促效劑而言，以源自血小板之成長因子(PDGF)為較佳。

腎間質前驅細胞，可為藉步驟(2)得到者，又，亦可為商業上購入之細胞，亦可為從活體內分離的離體(ex vivo)細胞。

在使用從人工多能性幹細胞誘導之腎間質前驅細胞的情況，可於本步驟中製造源自人工多能性幹細胞之腎間質細胞。

培養基(腎間質細胞製造用培養基)，包含源自血小板之成長因子受體促效劑，較佳進一步包含鹼性纖維母細胞成長因子(bFGF)或纖維母細胞成長因子9(FGF9)，更佳包含bFGF及FGF9。

就基礎培養基而言，無特別限定，例如較佳可使用STEMdiff APEL2培養基(STEMCELL Technologies，ST-05275)、TeSR1培養基以及化學合成培養基 (Chemically Defined Medium(CDM))。此外，亦可使用BME培養基、BGJb培養基、CMRL 1066培養基、Glasgow MEM培養基、改良MEM(IMEM)培養基、改良MDM(IMDM)培養基、Medium 199培養基、Eagle MEM培養基、α MEM培養基、DMEM培養基(高葡萄糖、低葡萄糖)、DMEM/F12培養基、Ham’s培養基、RPMI 1640培養基、Fischer's培養基、及此等之混合培養基等。

就CDM培養基而言，無特別限定，例如，可使用從伊斯科夫改良型杜氏培養基(Iscove’s modified Dulbecco’s medium(GE Healthcare公司製))調製的培養基。

在基礎培養基中，可添加Ham’s F-12營養混合物、人類血清白蛋白等白蛋白、聚乙烯醇(PVA)、脫離子BSA、亞麻油酸、次亞麻油酸、膽固醇、胰島素、原轉鐵蛋白(apotransferrin)、硒、乙醇胺、單硫代甘油、無蛋白質融合瘤混合物II(Protein-free hybridoma mixture II)(PFHMII)、抗壞血酸、L-丙胺醯基-L-麩醯胺酸及/或抗生素等通常使用於細胞培養的物質。

FGF及FGF9，只要依據所培養之腎間質前驅細胞之來源動物種類，選用適當的來源動物種類即可，較佳使用源自與腎間質前驅細胞之來源動物種類相同之動物的因子。

PDGF為參與纖維母細胞等間葉系細胞之游走及增殖等之調節的增殖因子之一。PDGF，存在4種：PDGF-A、PDGF-B、PDGF-C及PDGF-D。其中，A鏈及B鏈藉由形成二硫鍵而成為均或雜二聚體構造，因此具有PDGF-AA、PDGF-AB及PDGF-BB三種同功型。C鏈及D鏈分別形成均二聚體(PDGF-CC及PDGF-DD)。在本發明中，以PDGF-BB為較佳。就PDGF-BB而言，無特別限定，例如，可使用PEPROTECH公司製#100-14B等。

就PDGF、bFGF及FGF9而言，可使用全長肽或其受體結合片段。

PDGF、bFGF及FGF9可從市售者購入而使用。就bFGF及FGF9而言，無特別限定，例如，可分別使用富士薄膜和光純藥股份有限公司製品編號#068-04544及製品編號#AF-100-23等。

PDGF於培養基中之添加濃度，可依據所用的PDGF之亞型而適宜調整，例如，為0.05ng/ml至1μg/ml。較佳為0.1至500ng/ml，更佳為1至100ng/ml。在使用PDGF-BB之情況，例如為0.1ng/ml至1μg/ml。較佳為1至300ng/ml，更佳為3至100ng/ml，特佳為約10ng/ml。

bFGF於培養基中之添加濃度，例如為0.1ng/ml至1μg/ml。較佳為1至500ng/ml，更佳為10至300ng/ml，特佳為約40ng/mL。

FGF9於培養基中之添加濃度，例如為0.1ng/ml至1μg/ml。較佳為1至500ng/ml，更佳為10至300ng/ml，特佳為約200ng/mL。

在將源自血小板之成長因子受體促效劑，作為使腎間質前驅細胞分化成腎間質細胞之誘導劑使用的情況，該誘導劑除源自血小板之成長因子受體促效劑外，亦可包含bFGF、FGF9、視黃酸(RA)等。

本步驟之培養期間，只要為足以使腎間質前驅細胞分化成腎間質細胞的期間即可，無特別限定，例如為7至24日，較佳為10至20日，更佳為12至18日，特佳為約15日。

本步驟以藉由附著培養為較佳，然而亦可為懸浮培養。

附著培養方面，可使用培養皿、燒瓶、微培養盤、及OptiCell(製品名)(Nunc公司)等細胞培養片等培養容器。

附著培養所用的容器，可進行使與細胞之接著性(親水性)提高用的表面處理，或以膠原、明膠、聚-L-離胺酸、聚-D-離胺酸、層黏連蛋白(laminin)、纖連蛋白(fibronectin)、基質膠(matrigel)、玻連蛋白(vitronectin)等細胞接著用基質塗覆，不過以使用不進行此等表面處理或塗覆的容器為更佳。

懸浮培養方面，係使細胞分散於培養基中，藉由攪拌或振盪，使培養基成分及培養基內氧濃度均勻化，同時形成細胞凝集塊。較佳之攪拌速度，雖隨細胞密度及培養容器之大小而適宜設定，然而過度之攪拌或振盪對細胞賦予物理性應力，阻礙細胞凝集塊形成。因此，以能將培養基成分及培養基內氧濃度均勻化，且不阻礙細胞凝集塊形成的方式，控制攪拌或振盪速度。亦可不進行攪拌或振盪，而以靜置方式進行懸浮培養。

懸浮培養方面，以使用Prime surface(製品名，住友電木公司)等低接著塗層之容器為較佳。

培養溫度無特別限定，於30至40℃(例如，37℃)進行。又，培養容器中之二氧化碳濃度為例如約5%。

腎間質細胞之生成的確認，例如，可列舉測定標記蛋白質或標記基因之表現的方法。若所得到之細胞表現EPO基因及/或蛋白質、CD73及PDGFR β，較佳為進一步表現肌間線蛋白(desmin)及波形蛋白(vimentin)，可判斷該細胞為腎間質細胞。

標記蛋白質之檢測，可利用使用對該標記蛋白質特異之抗體的免疫學檢定，例如，ELISA、免疫染色、流式細胞術等而進行。標記基因之檢測，可利用該領域中周知之核酸擴增方法及/或核酸檢測方法，例如，RT-PCR、微陣列、生物晶片等而進行。

本步驟中所得到之腎間質細胞，尤其具備於低氧條件下產生EPO的功能(低氧回應性)。低氧回應性可藉由以使HIF信號活化之化合物對細胞處置，檢測EPO之mRNA量(level)或蛋白質量之表現上升而確認。就使HIF信號活化之化合物而言，可使用例如FG-2216(Selleck，#18382)及FG-4592(Selleck，#S1007)。

低氧回應性亦可藉由將為對象之細胞於低氧濃度之條件下培養而確認。低氧濃度之條件下的氧濃度，可調成可於活體內環境中產生之低氧狀態的氧濃度。就氧濃度而言，例如，可調成20%以下，即可調成20至10%、10至5%、5至1%。

由於有報導指出腎纖維症係因具有EPO產生能力之腎間質細胞纖維化所致，因此具有EPO產生能力的腎間質細胞，在開發腎纖維症治療藥，作為模擬活體之腎纖維化模型之構築用材料上有用。又，具有EPO產生能力之腎間質細胞，亦特別可用於以腎性貧血之治療或預防為目的之對腎障礙的細胞醫療。

本發明亦提供包含依照本步驟所得到之腎間質細胞的凍結儲備液。

凍結儲備液可藉由將所得到之腎間質細胞離心，從培養基分離，懸浮於凍結保存液中、凍結而製造。凍結保存液方面，只要使用先前凍結保存細胞用的試藥即可。例如，市售之Cryostem Freezing Medium(商品名)及CELLBANKER(註冊商標)等。

凍結儲備液可被用於製作，例如，以腎間質細胞作為構成要素的組織模型(腎臟類器官)。

1-2.步驟(2)

在本步驟中，從神經脊細胞誘導腎間質前驅細胞。

本發明提供從神經脊細胞製造腎間質前驅細胞的方法。

神經脊細胞可為步驟(1)中所得到者，又，亦可為從商業上購入之細胞，亦可為從活體內分離的離體(ex vivo)細胞。

就市售之神經脊細胞而言，例如，可列舉人類毛囊外毛根鞘細胞(Cosmo Bio公司製)、O9-1小鼠顱骨神經脊細胞株(Merck Millipore公司製)等。

又，據報導神經脊細胞存在於受精後30日前後之人類胚的神經管、胎生第9日前後之小鼠胚的神經管、人類、豬及齧齒類之成體的皮膚等(Betters et al.,Developmental biology,2010,344(2)：578-592、Jiang et al.,Development,2000,127(8)：1607-1616、Dupin et al.,Developmental biology,2012,366(1)：83-95、Nagoshi et al.,Cell Stem Cell 2,April 2008,392-403)。亦可使用周知之方法(例如，Motohashi et al.,Biology open,2016,5：311-322、Pfaltzgraffet al.,Journal of Visualized Experiments,2012,64：4134)，採集此種神經脊細胞，在適宜後方化後，提供於本步驟。

神經脊細胞方面，以使用後腦神經脊細胞(hindbrain NCC：hNCC)為較佳。

在使用從人工多能性幹細胞誘導之神經脊細胞的情況，於本步驟中製造源自人工多能性幹細胞之腎間質前驅細胞。

藉由將神經脊細胞於間葉系間質細胞誘導用培養基中培養，得到腎間質前驅細胞。在間葉系間質細胞誘導用培養基方面，例如，可使用StemPro MSC無異種成分(xeno-free)培養基(ThermoFisher：A1067501)。

本步驟之培養期間，只要為神經脊細胞足以分化成腎間質前驅細胞之期間即可，無特別限定，例如為10至90日，較佳為20至50日，更佳為30至40日，特佳為30至35日。

本步驟以藉由附著培養為較佳，亦可藉由懸浮培養。

附著培養所用的容器，可進行使與細胞之接著性(親水性)提高用的表面處理，或以膠原、明膠、聚-L-離胺酸、聚-D-離胺酸、層黏連蛋白、纖連蛋白、基質膠、玻連蛋白等細胞接著用基質塗覆，而以使用不進行此等表面處理或塗覆的容器為更佳。

懸浮培養方面，係使細胞分散於培養基中，藉由攪拌或振盪，使培養基成分及培養基內氧濃度均勻化，同時形成細胞凝集塊。較佳之攪拌速度，雖隨細胞密度及培養容器之大小而適宜設定，然而過度之攪拌或振盪對細胞賦予物理性應力，阻礙細胞凝集塊形成。因此，以能將培養基成分及培養基內氧濃度均勻化，且不阻礙細胞凝集塊形成的方式，控制攪拌或振盪速度。亦可不進行攪拌或振盪，在靜置下進行懸浮培養。

懸浮培養方面，以使用Prime surface(製品名，住友電木公司)等低接著塗層的容器為較佳。

以下，在本說明書中，將細胞凝集塊簡稱為「細胞塊」。

腎間質前驅細胞之生成的確認，例如，可藉由確認細胞之分化誘導成腎間質細胞之能力而進行。

又，腎間質前驅細胞之生成的確認，例如，可列舉測定標記蛋白質或標記基因之表現的方法。若所得到之細胞表現FOXD1、CD73及PDGFR β，而不表現紅血球生成素，可判斷該細胞為腎間質前驅細胞。

本發明亦提供包含依照本步驟所得到之包含腎間質前驅細胞的凍結儲備液。

凍結儲備液可藉由將所得到之腎間質前驅細胞藉由離心，從培養基分離，懸浮於凍結保存液中、凍結而製造。凍結保存液方面，只要使用先前細胞之凍結保存所用的試藥即可。例如，市售之Cryostem Freezing Medium(商品名)及CELLBANKER(註冊商標)等。

凍結儲備液可被利用以作為例如從腎間質前驅細胞，得到腎間質細胞的起始材料。又，凍結儲備液可被用於製作以腎間質前驅細胞作為構成要素的組織模型(腎臟類器官)。

1-3.步驟(1)

本步驟係於包含GSK3 β阻礙劑、TGF β阻礙劑、及視黃酸及/或其衍生物之培養基中，培養多能性幹細胞(尤其，人工多能性幹細胞)，誘導神經脊細胞(較佳為後腦神經脊細胞)。

從多能性幹細胞分化誘導成各種神經脊細胞，可依照文獻周知(例如，非專利文獻3、4)之方法進行。在從人類人工多能性幹細胞分化誘導成神經脊細胞的情況，將人工多能性幹細胞播種於培養皿等，進行附著培養後，於包含TGF β阻礙劑及GSK3 β阻礙劑之培養基進行附著培養，然後在進一步添加視黃酸及/或其衍生物的培養基進行附著培養，使其分化成神經脊細胞。

在本發明中可使用之「多能性幹細胞(pluripotent stem cell)」，意指可分化成活體之具有各種相異型態或功能的組織或細胞，亦具有能分化成3胚葉(內胚葉、中胚葉、外胚葉)之任何系統之細胞之能力的幹細胞。在此方面，無特別限定，例如，可列舉胚性幹細胞(ESC)、藉由核移植所得到的源自純株胚之胚性幹細胞、精子幹細胞、胚性生殖細胞、人工多能性幹細胞(本說明書中，亦稱為「iPSC」)等。又，在本發明中可使用之「多潛能性幹細胞(multipotent stem cell)」，意指具有能分化成複數個限定數目之系統之細胞的能力的幹細胞。就本發明中可使用之「多潛能性幹細胞(multipotent stem cell)」而言，例如，可列舉齒髓幹細胞、源自口腔黏膜之幹細胞、毛囊幹細胞、源自培養纖維母細胞或骨髓幹細胞之體性幹細胞等。較佳之多能性幹細胞(pluripotent stem cell)為ESC及iPSC。

就「ESC」而言，若為小鼠ESC，可利用inGenious targeting laboratory公司理研(理化學研究所)等所建立的各種小鼠ESC株，若為人類ESC，可利用威斯康辛大學、NIH、理研、京都大學、國立成育醫療研究中心及Cellartis公司等所建立的各種人類ESC株。例如，就人類ESC株而言，可利用ESI Bio公司分讓之CHB-1至CHB-12株、RUES1株、RUES2株、HUES1至HUES28株等，WiCell Research分讓之H1株、H9株等，理研分讓之KhES-1株、KhES-2株、KhES-3株、KhES-4株、KhES-5株、SSES1株、SSES2株、SSES3株等。

「人工多能性幹細胞」意指藉由將特定之因子(核初期化因子)導入哺乳動物體細胞或未分化幹細胞，再重新編程所得到的細胞。現今，「人工多能性幹細胞」方面有各式各樣者，除了依照山中氏等，藉由將4因子：Oct3/4、Sox2、Klf4、c-Myc導入小鼠纖維母細胞所建立的iPSC(Takahashi K,Yamanaka S.,Cell,(2006)126：663-676)之外，亦可使用：將同樣之4因子導入人類纖維母細胞所建立的源自人類細胞之iPSC(Takahashi K,Yamanaka S.,et al.Cell,(2007)131：861-872)；上述4因子導入後，以Nanog之表現作為指標篩選所建立的Nanog-iPSC(Okita,K.,Ichisaka,T.,and Yamanaka,S.(2007).Nature 448,313-317)；以不含c-Myc之方法所製作的iPSC(Nakagawa M,Yamanaka S.,et al.Nature Biotechnology,(2008)26,101-106)；以無病毒法導入6因子所建立的iPSC(Okita K et al.Nat.Methods 2011 May；8(5)：409-12、Okita K et al.Stem Cells.31(3)：458-66)等。又，亦可使用依照Thomson氏等製作之導入4因子：OCT3/4、SOX2、NANOG、LIN28所建立的人工多能性幹細胞(Yu J.,Thomson JA.et al.,Science(2007)318：1917-1920)、依照Daley氏等所製作的人工多能性幹細胞(Park IH,Daley GQ.et al.,Nature(2007)451：141-146)、依照櫻田氏所製作的人工多能性幹細胞(日本特開2008-307007號)等。

此外，亦可使用公開之所有論文(例如，ShiY.,Ding S.,et al.,Cell Stem Cell,(2008)Vol3,Issue 5,568-574；Kim JB.,Scholer HR.,et al.,Nature,(2008)454,646-650；Huangfu D.,Melton,DA.,et al.,Nature Biotechnology,(2008)26,No 7,795-797)、或專利(例如，日本特開2008-307007號、特開2008-283972號、US2008-2336610、US2009-047263、WO2007-069666、WO2008-118220、WO2008-124133、WO2008-151058、WO2009-006930、WO2009-006997、WO2009-007852)中所記載的該領域中周知之人工多能性幹細胞之任一種。

就人工多能性幹細胞株而言，可利用NIH、理研、京都大學等所建立的各種iPSC株。例如，若為人類iPSC株，可列舉理研之HiPS-RIKEN-1A株、HiPS-RIKEN-2A株、HiPS-RIKEN-12A株、Nips-B2株等，京都大學之253G1株、201B7株、409B2株、454E2株、606A1株、610B1株、648A1株、1231A3株、Ff-I14s04株、QHJ I14s04株等，以1231A3株為較佳。

培養基包含GSK3 β阻礙劑、TGF β阻礙劑、及視黃酸及/或其衍生物。就視黃酸之衍生物而言，可使用視黃醇、視黃醛、維甲酸、異維甲酸、阿利維甲酸(alitretinoin)、阿維A酯(atretinate)、阿曲汀(acitretin)、他札羅汀 (tazarotene)、貝沙羅汀(bexarotene)、阿達帕林(adapalene)。此等亦可將2種以上組合而使用。以下，將「視黃酸及/或其衍生物」簡稱為「視黃酸等」。

基礎培養基無特別限定，例如較佳可使用將StemFit AK03之A液、B液及C液混合者、TeSR1培養基以及Chemically Defined Medium(CDM)培養基。此外，亦可使用BME培養基、BGJb培養基、CMRL 1066培養基、Glasgow MEM培養基、改良MEM(IMEM)培養基、改良MDM(IMDM)培養基、Medium 199培養基、Eagle MEM培養基、α MEM培養基、DMEM培養基(高葡萄糖、低葡萄糖)、DMEM/F12培養基、Ham’s培養基、RPMI 1640培養基、Fischer's培養基、及此等之混合培養基等。

就CDM培養基而言，無特別限定，例如，可使用從伊斯科夫改良型杜氏培養基(GE Healthcare公司製)調製的培養基。

基礎培養基方面，可添加原轉鐵蛋白(apotransferrin)、單硫代甘油、牛血清白蛋白(BSA)、胰島素及/或抗生素等通常細胞培養所用的物質。

就TGF β阻礙劑而言，可列舉SB431542(4-[4-(1,3-苯并二氧雜環戊烯-5-基)-5-(2-吡啶基)-1H-咪唑-2-基]-苄醯胺)、A83-01(3-(6-甲基-2-吡啶基)-N-苯基-4-(4-喹啉基)-1H-吡唑-1-甲硫醯胺)、LDN193189(4-[6-[4-(1-哌

基)苯基]吡唑并[1,5-a]嘧啶-3-基]-喹啉)、Wnt3a/BIO(Wnt Family Member 3A/(2Z,3E)-6’-溴-3-(羥基亞胺基)-[2,3’-二吲哚啉亞甲基]-2’-酮)、BMP4(骨形成蛋白質4)、GW788388(4-[4-[3-(2-吡啶基)-1H-吡唑-4-基]-2-吡啶基]-n-(四氫-2H-哌喃-4-基)-苄醯胺)、SM16(4-[4-(1,3-苯并二氧雜環戊烯-5-基)-5-(6-甲基-2-吡啶基)-1H-咪唑-2-基]-雙環[2.2.2]辛-1-甲醯胺)、IN-1130(3-[[5-(6-甲基-2-吡啶基)-4-(6-喹喏啉基)-1H-咪唑-2-基]甲基]-苄醯胺)、GW6604(2-苯基-4-[3-(吡啶-2-基)-1H-吡唑-4-基]吡啶)及SB505124(2-[4-(1,3-苯并二氧雜環戊烯-5-基)-2-(1,1-二甲基乙基)-1h-咪唑-5-基]-6-甲基-吡啶)等。此等，亦可將2種以上組合使用。

TGF β阻礙劑於培養基中之添加濃度，可依據所添加之TGF β阻礙劑的種類而適宜調整，例如為0.1至50μM，較佳為1至20μM。

在使用SB431542(4-[4-(1,3-苯并二氧雜環戊烯-5-基)-5-(2-吡啶基)-1H-咪唑-2-基]-苄醯胺)的情況，添加濃度為例如1至100μM，較佳為5至20μM，特佳可為約10μM。

就GSK3 β阻礙劑而言，可列舉CHIR98014(N6-[2-[[4-(2,4-二氯苯基)-5-(1H-咪唑-2-基)-2-嘧啶基]胺基]乙基]-3-硝基-2,6-吡啶二胺)、CHIR99021(6-{2-[4-(2,4-二氯-苯基)-5-(5-甲基-1H-咪唑-2-基)-嘧啶-2-基胺基]-乙基胺基}-菸鹼甲腈)、CP21R7(CP21R7)、LY2090314(3-[9-氟-1,2,3,4-四氫-2-(1-哌啶基羰基)吡咯并[3,2,1-jk][1,4]苯并二氮呯-7-基]-4-咪唑并[1,2-a]吡啶-3-基-1H-吡咯-2,5-二酮)、TDZD-8(2-甲基-4-(苯基甲基)-1,2,4-噻二唑啶-3,5-二酮)、SB216763(3-(2,4-二氯苯基)-4-(1-甲基-1H-吲哚-3-基)-1H-吡咯-2,5-二酮)、TWS-119(3-[[6-(3-胺基苯基)-7H-吡咯并[2,3-d]嘧啶-4-基]氧基]酚)、肯帕羅酮(Kenpaullone)、1-氮雜肯帕羅酮(1-azakenpaullone)、SB415286([3-[(3-氯-4-羥基苯基)胺基]-4-(2-硝基苯基)-1H-吡咯-2,5-二酮])及AR-A0144-18(1-[(4-甲氧基苯基)甲基]-3-(5-硝基-1,3-噻唑-2-基)脲)、CT99021、CT20026、BIO((2'Z,3'E)-6-溴靛玉紅-3'-肟)、BIO-丙酮肟、吡啶并咔唑-環戊二烯基釕複合體、OTDZT、α-4-二溴乙醯苯、鋰等。此等，亦可將2種以上組合使用。

GSK3 β阻礙劑不以此等為限，亦可使用針對GSK3 β之mRNA的反義寡核苷酸或siRNA、與GSK3 β結合之抗體、顯性負性(dominant negative)GSK3 β變異體等作為GSK3 β阻礙劑，此等可從商業上購入，或依照周知之方法合成。

GSK3 β阻礙劑於培養基中之添加濃度，隨所添加之GSK3 β阻礙劑之種類而適宜調整，例如為0.1至10μM，較佳為0.5至2μM。

在使用CHIR99021之情況，添加濃度可為例如0.1至10μM，較佳為0.5至2μM，特佳為約1μM。

視黃酸及/或其衍生物於培養基之添加濃度，隨所添加之化合物之種類而適宜調整，例如為0.001至50μM，較佳為0.1至10μM。

在使用視黃酸誘導後腦神經脊細胞(hNCC)的情況，添加濃度可為例如0.1至10μM，較佳為1-5μM，特佳為約3μM。

於包含TGF β阻礙劑及GSK3 β阻礙劑之培養基的培養期間，為例如0至24日，特佳為約18日。於進一步添加視黃酸等之培養基的培養期間，為例如3-24日，特佳為約12日。

本步驟以藉由附著培養為較佳，然而亦可為懸浮培養。

懸浮培養方面，以使用Opticel(製品名，住友電木公司)等低接著塗層的容器為較佳。

本步驟中所得到之神經脊細胞，可藉由例如磁活性細胞分選(FACS)或磁細胞分選(MACS)等周知手段分離。藉由從包含神經脊細胞之細胞集團，將設定之表面標記(例如，CD271、CD49D、HNK-1)的表現陽性細胞分離，可於細胞集團中富化神經脊細胞。

本步驟所得到之神經脊細胞及/或富化之神經脊細胞，於供給步驟(2)之前，可進行一定期間之維持培養及/或擴大培養(以下，在本說明書中，稱為「步驟(1B)」)。

1-4.步驟(1B)

神經脊細胞可藉由在包含GSK3 β阻礙劑、TGF β阻礙劑、EGF及bFGF之培養基進行懸浮培養而維持及擴大。

基礎培養基無特別限定，較佳可使用例如將StemFit AK03之A液及B液混合者、TeSR1培養基以及化學合成培養基(Chemically Defined Medium(CDM))培養基。此外，亦可使用BME培養基、BGJb培養基、CMRL 1066培養基、Glasgow MEM培養基、改良MEM(IMEM)培養基、改良MDM(IMDM)培養基、Medium 199培養基、Eagle MEM培養基、α MEM培養基、DMEM培養基(高葡萄糖、低葡萄糖)、DMEM/F12培養基、Ham’s培養基、RPMI 1640培養基、Fischer's培養基、及此等之混合培養基等。

就CDM培養基而言，無特別限定，例如，可使用從伊斯科夫改良型杜氏培養基[Iscove’s modified Dulbecco’s medium(GE Healthcare公司製)]調製的培養基。

基礎培養基方面，可添加原轉鐵蛋白(apotransferrin)、單硫代甘油、牛血清白蛋白(BSA)、胰島素及/或抗生素等通常使用於細胞培養的物質。

TGF β阻礙劑於培養基中之添加濃度，隨所添加的TGF β阻礙劑之種類而適宜調整，而為例如0.1至50μM，較佳為1至20μM。

GSK3 β阻礙劑於培養基中之添加濃度，隨所添加之GSK3 β阻礙劑的種類而適宜調整，例如為0.1至10μM，較佳為0.5至5μM。

在使用CHIR99021的情況，添加濃度可為例如0.1至10μM，較佳為0.5至5μM，特佳為約3μM。

bFGF之添加濃度無特別限定，例如為10至200ng/ml，較佳為20至40ng/ml。

EGF之添加濃度無特別限定，例如為5至100ng/ml，較佳為20至40ng/ml。

本步驟中的培養期間，只要足以形成細胞塊的期間即可，可適宜調整。較佳為24小時至7日，更佳為3至5日，特佳為約3日。

其間，可進行適宜之細胞繼代。繼代例如於播種後每5至8日進行。繼代間隔，以係足以使細胞凝集塊擴大的期間，但比細胞凝集塊變得過大，氧或養分變得難以到達細胞凝集塊內部細胞之期間短的期間為較佳。

2.腎臟類器官之製造方法

根據本發明的腎臟類器官之製造方法，包含將腎間質細胞或腎間質前驅細胞與中間中胚葉進行共培養的步驟。

腎間質細胞可為步驟(3)中所得到者，又，亦可為從商業上購入之細胞，亦可為從活體內分離的離體(ex vivo)細胞。

腎間質前驅細胞可為步驟(2)所得到者，又，亦可為從商業上購入之細胞，亦可為從活體內分離的離體(ex vivo)細胞。

中間中胚葉可為從多能性幹細胞(例如，人工多能性幹細胞)誘導者。

從多能性幹細胞誘導成中間中胚葉，及從中間中胚葉及腎間質細胞或腎間質前驅細胞誘導成腎臟類器官，可根據文獻周知之手法(非專利文獻6及非專利文獻7)而進行。

具體而言，首先，藉由將人類人工多能性幹細胞於包含GSK3 β阻礙劑之培養基培養後，於包含FGF9及肝素的培養基培養，得到中間中胚葉。

GSK3 β阻礙劑於培養基中之添加濃度，為例如0.1至10μM，較佳為1至10μM，更佳為3至9μM，特佳為約8μM。

FGF9於培養基中之添加濃度，為例如0.1ng/ml至1μg/ml，較佳為1至500ng/ml，更佳為10至300ng/ml，特佳為約200ng/ml。

肝素於培養基中之添加濃度，為例如0.01至100μg/ml，較佳為0.1至10μg/ml，特佳為約1μg/ml。

在包含GSK3 β阻礙劑之培養基的培養期間，為例如2至6日，特佳為約4日。

在包含FGF9及肝素之培養基的培養期間，為例如2至6日，特佳為約3日。

繼而，使中間中胚葉分散，與腎間質細胞或腎間質前驅細胞混合，製成細胞塊(pellet)。

從中間中胚葉分散之細胞與腎間質細胞或腎間質前驅細胞的混合比率，相對於前者1，後者為例如1至0.002，較佳為0.02至0.6，更佳為0.2-0.4。

藉由將細胞塊(pellet)以包含GSK3 β阻礙劑及肝素之培養基處理後，於包含FGF9及肝素的培養基培養，進一步於包含肝素的培養基培養，得到腎臟類器官。

GSK3 β阻礙劑於培養基中之添加濃度，為例如0.1至10μM，較佳為1至10μM，更佳為3至7μM，特佳為約5μM。

包含GSK3 β阻礙劑及肝素之培養基的處理時間，為例如0.5至2小時，特佳為約1小時。

在包含FGF9及肝素之培養基的培養期間，為例如3至7日，特佳為約5日。

在包含肝素之培養基的培養期間，為例如7至30日，特佳為約21日。

就基礎培養基而言，無特別限定，例如較佳可使用STEMdiff APEL2培養基(STEMCELL Technologies，ST-05275)、TeSR1培養基以及化學合成培養基(CDM)。此外，亦可使用BME培養基、BGJb培養基、CMRL 1066培養基、Glasgow MEM培養基、改良MEM(IMEM)培養基、改良MDM(IMDM)培養基、培養基199、Eagle MEM培養基、α MEM培養基、DMEM培養基(高葡萄糖、低葡萄糖)、DMEM/F12培養基、Ham’s培養基、RPMI 1640培養基、Fischer's培養基、及此等之混合培養基等。

在基礎培養基中，可添加Ham’s F-12營養混合物、人類血清白蛋白等白蛋白、聚乙烯醇(PVA)、脫離子BSA、亞麻油酸、次亞麻油酸、膽固醇、胰島素、原轉鐵蛋白(apotransferrin)、硒、乙醇胺、單硫甘油、無蛋白質融合瘤混合物II (Protein-free hybridoma mixture II)(PFHMII)、抗壞血酸、L-丙胺醯基-L-麩醯胺酸及/或抗生素等通常使用於細胞培養的物質。

本步驟以藉由附著培養為較佳，然而亦可為懸浮培養。

附著培養所用的容器，可進行使與細胞之接著性(親水性)提高用的表面處理，或藉由膠原、明膠、聚-L-離胺酸、聚-D-離胺酸、層黏連蛋白、纖連蛋白、基質膠、玻連蛋白等細胞接著用基質塗覆，而以使用不進行此等表面處理或塗覆的容器為更佳。

懸浮培養方面，係使細胞分散於培養基中，藉由攪拌或振盪，使培養基成分及培養基內氧濃度均勻化，同時形成細胞凝集塊。較佳之攪拌速度，雖隨細胞密度及培養容器之大小而適宜設定，然而過度之攪拌或振盪對細胞賦予物理性應力，阻礙細胞凝集塊形成。因此，以能將培養基成分及培養基內氧濃度均勻化，且不阻礙細胞凝集塊形成的方式，控制攪拌或振盪速度。亦可不進行攪拌或振盪，於靜置下進行懸浮培養。

中間中胚葉及腎臟類器官之生成的確認，例如，可列舉測定標記蛋白質或標記基因之表現的方法。

若所得到之細胞塊表現OSR1，可判斷該細胞塊為中間中胚葉。

若所得到之細胞塊具有於低氧條件下之EPO產生能力，能表現腎間質、絲球體及腎小管之標記，可判斷為腎臟類器官。就腎間質細胞標記而言，如FOXD1、PDGFR β、CD73。就絲球體標記而言，如WT1、NPHS1。就腎小管標記而言，如LTL、CUBN、E-鈣黏蛋白(E-cadherin)。

又，中間中胚葉之生成的確認，例如，亦可藉由確認細胞分化誘導成絲球體或腎小管的能力而進行。

3.應用

依照本發明之製造方法所得到的腎間質細胞及腎間質前驅細胞以及腎臟類器官，可使用於腎疾病之病態解析，又，亦可適用於腎疾病之新藥篩選或腎毒性之評價試驗等。

3-1.腎纖維症之預防或治療用物質的篩選方法

本發明亦提供腎纖維症之預防或治療用物質的篩選方法，其包含以下之程序。

(1)將藉由上述之製造方法所得到的腎間質細胞，於誘導該細胞之纖維化的物質存在下培養，提供包含纖維化腎間質細胞之細胞集團的程序。

(2A)於受驗物質存在下及不存在下，培養前述細胞集團的程序。

(3A)測定各前述細胞集團中的細胞之纖維化程度的程序。

(4A)將在前述受驗物質存在下培養之細胞集團中，與在前述受驗物質不存在下培養之細胞集團相比，使細胞之纖維化程度降低之受驗物質予以選擇的程序。

程序(1)中，藉由將上述之腎間質細胞的製造方法之步驟(3)所得到的腎間質細胞，於培養基中添加纖維化誘導物質進一步培養，可得到包含纖維化腎間質細胞的細胞集團。

使用於篩選之腎間質細胞之細胞集團的細胞密度無特別限定，在藉由附著培養之情況，例如，可為5,000至500,000細胞/cm²，較佳為10,000至200,000細胞/cm²，更佳為20,000至100,000細胞/cm²，特佳為50,000細胞/cm²。在藉由懸浮培養之情況，例如，可為5至500細胞/μL，較佳為20至200細胞/μL，特佳為50至100細胞/μL。

誘導腎間質細胞之纖維化的物質(纖維化誘導物質)，例如可為TGF β家族，較佳為TGF β，其中特佳之同功型為TGF β 1。

纖維化誘導物質之濃度及培養期間，可隨所用之物質而適宜設定，而在例如使用TGF β 1的情況，濃度為0.1至100ng/ml，較佳為1至30ng/ml，特佳為約10ng/ml，培養期間為2至20日，較佳為4至14日，特佳為約9日。

再者，在本發明中，TGF β 1若以1ng/ml以下濃度於纖維化誘導後從培養基中除去，則纖維化之腎間質細胞回復無纖維化之狀態，變得明顯。由於藉由以10ng/ml以上濃度的TGF β 1誘導纖維化，即使TGF β 1從培養基中除去後，亦能維持腎間質細胞之纖維化，故可進行改善持續性纖維化狀態之物質的篩選。

程序(2A)中所用的受驗物質及其濃度，可適宜選擇。本程序中，可使用能使腎間質細胞之纖維化程度降低的周知物質作為陽性對照。在陽性對照方面，可使用例如TGF受體阻礙劑(SB431542等)。

程序(3A)中之細胞纖維化程度的測定，例如，可藉由在2次元或3次元之一定區域中，決定纖維化之細胞所佔的面積或體積之比例而進行。

在受驗物質存在下所培養的細胞集團中，與受驗物質不存在下所培養之細胞集團相比，細胞之纖維化程度受到抑制的情況，該受驗物質可能對於改善腎纖維化為有用者。

纖維化之細胞之比例的決定，例如，可藉由在管家(Housekeeping)基因(例如，GAPDH)之啟動子控制下，使報告蛋白(例如，tdTomato)表現，將細胞全體進行螢光標識，藉由螢光之檢測，測定細胞之面積或體積而進行。已知為腎臟之間質的纖維母細胞，藉由纖維化促進增殖，一個個細胞之面積及體積亦肥大化。腎間質細胞之纖維化程度，可基於細胞之面積或體積的增加而測定。

螢光標識之細胞之面積及體積的測定，可依照周知之方法進行。例如，藉由將螢光攝影之該細胞圖像變換為8bit，並進行2值化，可測定細胞面積。螢光攝影之圖像的解析，例如，可使用圖像解析軟體Image J(NIH)等。藉由決定為測定對象的一定面積中之報告蛋白陽性細胞之面積的比例，可評價纖維化之程度。

纖維化之程度，例如，可藉由在孔內以一定數目播種腎間質細胞，添加受驗物質進行培養後，將該孔內之細胞面積，與未添加受驗物質之孔內的細胞面積比較而測定。例如，若添加受驗物質之孔的細胞面積比未添加受驗物質之孔的細胞面積小，可評價為該受驗物質使纖維化程度降低。又，若添加受驗物質之孔的細胞面積比未添加受驗物質之孔的細胞面積大，可評價為該受驗物質使纖維化之程度上升。細胞面積之縮小率及增大率，可藉由「(受驗物質存在下之細胞面積)/(受驗物質不存在下之細胞面積)×100(%)」算出。

又，藉由使用針對α SMA之抗體，進行免疫染色，決定細胞集團中的α SMA陽性細胞之比例，亦可測定細胞之纖維化程度。α SMA陽性細胞之比例可依照周知之方法進行。

3-2.腎纖維症之生物標記的決定方法

本發明亦提供決定腎纖維症之生物標記的方法，其包含以下之程序。

(1)將依照上述之製造方法所得到的腎間質細胞，於誘導該細胞之纖維化的物質存在下培養，提供包含纖維化腎間質細胞之細胞集團的程序。

(2B)鑑定前述細胞集團之培養液中所含之物質的程序。

(3B)將所鑑定之物質，與罹患腎纖維症之哺乳動物之體液中所含的物質做比較，特定一致之物質的程序。

程序(1)與前項之篩選方法的程序(1)相同。

程序(2B)中之培養液中所含的物質之鑑定，例如可藉由將上清液之蛋白質成分藉由丙酮沉澱等回收，用胰蛋白酶等蛋白酶處理，決定所得到之肽片段的胺基酸序列而進行。肽片段之胺基酸序列，可藉由液體層析質量分析法而決定。上清液之蛋白質成分，以在丙酮沉澱前，除去主要蛋白質成分(白蛋白、IgG、IgA等)為較佳。

用於程序(3B)之罹患腎纖維症的哺乳動物(疾病個體)之體液中所含之物質相關的資料，可從日本腎臟學會(JSN)及日本醫療資料學會(JAMI)提供的綜合慢性腎臟病數據庫(J-CKD-DB)等數據庫獲得。就體液而言，可使用尿、血液、血清、血漿、唾液、汗、淋巴液、組織液、細胞外液、細胞內液等。又，該資料亦可藉由病患個體之尿、生檢(biopsy)(活體組織採樣檢查)、血液、血清或血漿等之蛋白質組(proteome)解析而獲得。

被分泌於纖維化腎間質細胞之培養液中，且病患個體之體液中亦含有的物質，可利用作為腎纖維症之生物標記。

3-3.醫藥

再者，依照本發明之製造方法所得到的腎間質細胞及腎間質前驅細胞以及腎臟類器官，可被製成用於腎疾病之預防或治療的細胞製劑。

亦即，本發明亦提供包含源自多能性幹細胞之腎間質前驅細胞及/或源自多能性幹細胞之腎間質細胞及/或腎臟類器官的醫藥及其製造方法。

根據本發明的醫藥之製造方法，可包含本發明之腎間質細胞之製造方法之步驟(1)至(3)。

就腎疾病而言，可列舉急性絲球體腎炎、慢性絲球體腎炎、急速進行性絲球體腎炎、糖尿病性腎症、腎性貧血等。

醫藥含有之腎間質細胞、腎間質前驅細胞或腎臟類器官，例如可為將培養中之細胞剝離而回收的細胞，亦可為在凍結保存液中凍結的細胞。

醫藥可隨用途或型態，依照常法，含有藥學上容許之載劑或添加物等其他成分。就載劑或添加物而言，例如，可列舉等張化劑、增黏劑、糖類、糖醇類、防腐劑(保存劑)、殺菌劑或抗菌劑、pH調節劑、安定化劑、螯合劑、油性基劑、凝膠基劑、界面活性劑、懸浮化劑、流動化劑、分散劑、緩衝劑、抗氧化劑等。

藉由醫藥，提供一種腎疾病之預防或治療方法，其包含將該醫藥之治療有效量投與至對象。

治療有效量意指在將醫藥對患者投與之情況，與未投與之對照組比較，可對上述疾病得到治療效果的量。就具體之治療有效量而言，可依據醫藥之投與型態、投與方法、使用目的及患者之年齡、體重、症狀等而適宜設定。人類(例如成人)每1次之治療的有效量，例如以細胞數計算，為200,000至1,00,000,000個/公斤體重。此等細胞可為以單一細胞之狀態分散者，亦可成為複數個細胞集合的細胞塊(sphere)，亦可為此等混合者。

就醫藥之投與方法而言，例如，可列舉腹腔內注射、藉由開腹對腎之直接注射、使含有細胞之片狀裝置附著於腎臟周圍等。

本發明亦提供一種包含上述之製造方法所得到的腎間質細胞、腎間質前驅細胞或腎臟類器官的凍結儲備液。

凍結儲備液可藉由將所得到之腎間質細胞、腎間質前驅細胞或腎臟類器官藉由離心而從培養基分離，再懸浮於凍結保存液中，凍結而製造。凍結保存液方面，只要使用先前細胞之凍結保存所用的試藥即可。例如，市售之Cryostem Freezing Medium(商品名)及Stemcell Banker GMP Grade(日本全藥工業股份有限公司)等。

腎間質前驅細胞之凍結儲備液，可被利用作為用於使腎間質前驅細胞分化，得到腎間質細胞及腎臟類器官的起始材料。又，腎間質細胞及腎臟類器官之凍結儲備液，可利用於以腎間質細胞及腎臟類器官作為構成要素的組織模型之製作。

[實施例]

[實施例1：從iPSC向hNCC之誘導]

實施例1-1：從人工多能性幹細胞(iPSC)向神經脊細胞(NCC)之誘導

從人類iPSC向NCC之誘導，依照非專利文獻4記載之方法，於無異種成分(xeno-free)之條件下進行。

人類iPSC方面，使用1231A3株(參照非專利文獻5)。

在塗覆有層黏連蛋白-511(Laminin-511(iMatrix-511 Silk，Nippi股份有限公司，#387-10131))(0.5g/cm²)之10cm培養皿中，將人類iPSC以2×10⁵細胞/培養皿播種，並於添加10μM Y-27632(富士薄膜和光純藥股份有限公司，#034-24024)之StemFit AK03N(A+B+C)培養基(味之素股份有限公司)進行24小時預備培養。

將培養基交換成不含Y-27632之培養基，培養人類iPSC4日，形成群體(colony)(第-4至0日)。

將形成群體(colony)之人類iPSC，於添加10μM SB431542(富士薄膜和光純藥股份有限公司，#035-24294)及1μM CHIR99021(Axon Medchem，#1386)的StemFit AK03N(A+B)培養基進行10日培養(Day 0至10)，得到SOX10陽性之NCC。

實施例1-2：藉由視黃酸(RA)的NCC之後方化(hNCC之誘導)

於實施例1-1之培養的第6日，為了NCC之後方化，將1μM RA添加於培養基中，進行培養，至第14日(第0至14日)。在第14日，藉由mRNA量(level)及蛋白質量確認紅血球生成素(EPO)之表現。

從mRNA量及蛋白質量二者，均確認EPO之表現。將EPO及SOX10之免疫組織化學染色圖示於圖1。

實施例1-3：分化誘導期間之檢討

除將添加於培養基的RA濃度調成0、1或3μM外，依照與實施例1-1及1-2同樣之方法，進行朝向神經脊細胞之誘導及後方化。定量於各RA濃度(0、1或3μM)之條件下，於誘導期間EPO分泌至培養基中的量(EPO ELISA Kit，Sigma，#1693417)。

將分化誘導開始後培養基中EPO之蓄積量隨時間的變化示於圖2。EPO分泌至培養基中，係從第9日(Day 9)起被確認，蓄積量於第18日(Day 18)達到最大。雖未觀察到該傾向係依存於RA濃度，然而在RA濃度為3μM之條件下，EPO之分泌量最多。

實施例1-4：經後方化之NCC(hNCC)之低氧回應性的確認

已知EPO產生細胞於低氧環境下回應HIF信號，進行EPO之產生及分泌。使用使HIF信號活化的2種化合物(FG-2216：Selleck #18382及FG-4592：Selleck #S1007，各100μM)，確認於實施例1-3製作的第18日之hNCC的低氧回應性。定量FG-2216或FG-4592添加後第1日於培養基中之EPO的分泌量，將其結果示於圖3。回應低氧刺激，於培養基中的EPO分泌為增加。

實施例1-5：RA濃度之檢討

除了將添加於培養基之RA濃度條件變更為0至10μM之範圍，及將培養期間從第10日延長至第21日，依照與實施例1-1及1-2同樣之方法，進行從iPSC向NCC之誘導及後方化。將為後腦之標記的HOXB4之表現，藉由mRNA濃度確認。又，測定於培養基中的EPO分泌量。

將第10日的HOXB4之表現量之測定結果示於圖4。HOXB4之表現量以依存於RA濃度之方式增加。將第18日的EPO分泌量之測定結果示於圖5。EPO之分泌量在RA濃度為3μM之條件為最多。

[實施例2：hNCC向RSP之誘導]

實施例2-1：EPO-emGFP基因敲入(knock-in)型人類iPS細胞株之建立

在EPO啟動子之控制下，製作以雙順反子方式(cistronically)表現EPO及GFP(emGFP)的EPO-emGFP基因敲入(knock-in)型人類iPS細胞株。

將EPO基因之終止密碼子部位置換成F2A-emGFP的供者載體(donor vector)、標的序列之sgRNA表現質體及SpCas9 D10A切口酶表現質體(富士薄膜和光純藥股份有限公司)，使用Neon轉染系統(Life Technologies)共導入1231A3株中。

藉由使用遺傳黴素(Geneticin)(Invitrogen：#10131035)之藥劑選擇及PCR，選擇目標基因被導入染色體的EPO-emGFP株。

再者，使用Excision only piggyBAC transposase(Transposagen：#PBx-m)，除去EPO-emGFP株之藥劑選擇部分的序列，得到EPO-emGFP基因敲入(knock-in)型人類iPS細胞株。

實施例2-2：使用EPO-emGFP基因敲入(knock-in)型人類iPS細胞株揀選產生EPO的hNCC

使用實施例2-1所建立的EPO-emGFP基因敲入(knock-in)型人類iPS細胞株，依照實施例1記載之方法，誘導hNCC。使用第18日之hNCC，利用細胞分選儀(cell sorter)(BD，FACSAria II)分離(揀選)出EPO表現細胞。具體而言，將單細胞化之hNCC懸浮於包含2% BSA(SIGMA，A8806-5G)之HBSS溶液(富士薄膜和光純藥股份有限公司)中，分離DAPI(Invitrogen：D1306)陰性(表示活細胞)且emGFP之螢光陽性的細胞。圖6中，展示對於PO-emGFP基因敲入(knock-in)型人類iPS細胞株(誘導前)、揀選前之hNCC(圖中「not sort」)、GFP陰性hNCC(「GFP-sort」)及GFP陽性hNCC(「GFP+sort」)，測定EPO mRNA表現量的結果。圖中，縱軸係將EPO mRNA表現量以EPO-emGFP基因敲入(knock-in)型人類iPS細胞株(誘導前)之表現量當作1時的相對值來表示。在GFP陽性hNCC中，可確認EPO mRNA之高表現。

實施例2-3：hNCC向腎間質前驅細胞(RSP)之誘導

將實施例2-2中所得到之hNCC(GFP陽性細胞)，於PrimeSurface培養盤96V(住友電木股份有限公司，MS-9096V)中，以10,000細胞/孔之量播種，並於添加10μM SB431542、3μM CHIR99021、40ng/ml bFGF(富士薄膜和光純藥股份有限公司，#068-04544)、40ng/ml EGF(富士薄膜和光純藥股份有限公司，#053-07871)的StemFit AK03N(A+B)培養基中，懸浮培養3日(第18日至第21日)。

將所得到之細胞塊，以1細胞塊/孔之量播種於塗覆有纖連蛋白(fibronectin)(MERCK，FC010-10MG)之6孔培養盤中，並於StemPro MSC SFM XenoFree培養基(ThermoFisher，#A1067501)培養34日(第21日至第55日)，得到CD73/PDGFR β/FOXD1陽性之RSP。

[實施例3：RSP向腎間質細胞(RSC)之誘導]

實施例3-1：向RSC之分化誘導

將實施例2中所得到之RSP，以2×10⁵細胞/孔之量播種在塗覆有纖連蛋白(fibronectin)之6孔培養盤中，並於STEMdiff APEL2培養基(STEMCELL Technologies，ST-05275)中培養15日，得到RSC(第55日至第70日)。

對於所得到之RSC，確認低氧回應性之EPO產生能力。

已知EPO產生細胞於低氧環境下回應HIF信號，進行EPO之產生及分泌。以使HIF信號活化之化合物(FG-4592、Selleck、#S1007、100μM)處置RSC。

圖7中，展示對於第18日之細胞(hNCC，圖中「NCC D18」))、第39日之細胞(RSP，「RSPD39」)、於STEMdiff APEL2培養基中培養第15日(Day 70)之細胞(RSC，「APEL2 D15」)及低氧刺激之RSC(「+FG4592」)，測定EPO mRNA表現量的結果。圖中，縱軸係將EPO mRNA表現量以EPO-emGFP基因敲入(knock-in)型人類iPS細胞株(誘導前)之表現量當作1時的相對值來表示。又，將低氧條件下之RSC的EPO之免疫組織化學染色圖示於圖8。可見到回應低氧刺激，EPO之mRNA濃度(level)及蛋白質濃度的表現。

實施例3-2：bFGF、FGF9、PDGF-BB對於朝向RSC之分化的影響

在實施例3-1之誘導條件下，將40ng/ml bFGF、200ng/ml FGF9(富士薄膜和光純藥股份有限公司，#AF-100-23)、10ng/ml PDGF-BB(PEPROTECH，#100-14B)分別以單獨或組合之方式添加於培養基，測定在此等情況中所得到之細胞數目及培養基中之EPO分泌量。培養基中之EPO係藉由ELISA測定。

將結果示於圖9。在添加PDGF-BB之情況，EPO分泌量增加，在添加bFGF之情況，促進細胞之增殖。再者，藉由使此等因子任一種包含於培養基中，可見細胞之增殖及EPO分泌量之增加。

實施例3-3：腎間質細胞標記表現之評價

將實施例3-2中所得到之RSC進行低氧刺激(100μM，FG-4592)，藉由mRNA量確認腎間質細胞標記(肌間線蛋白(desmin)、波形蛋白(vimentin)、CD73、PDGFR β)之表現。可見到任一者之表現(參照圖10)。圖中，「NHMC」表示在市售之正常人類腎系膜細胞(Normal human mesangial cells)中的表現量，「Kindey」表示在市售之腎cDNA庫(library)中的表現量。

實施例3-4：TGF β 1回應性之評價

已知活體內之腎間質細胞回應TGF β 1刺激，引起朝向α SMA陽性之肌纖維母細胞(myofibroblast)之分化及肥大化(所謂纖維化(fibrosis))。從後述之實施例4-2中所得到的EPO-emGFP/GAPDH-tdTomato(GAPDH-tdT)雙基因敲入(dual knock-in)型人類iPS細胞株，依照實施例1、實施例2及實施例3-1記載之方法，得到RSC。在實施例1記載之方法中，RA濃度成為3μM。將培養第4日(D4)之RSC，藉由TGF β 1(0.01至10ng/ml)處置9日(D13)，使用圖像解析軟體Image J(NIH)，決定tdTomato陽性細胞之比例，評價纖維化之程度。具體而言，將螢光攝影之圖像變換為8bit，並進行2值化，將全體之面積分為「細胞之面積」及「其他之面積(不存在細胞的面積)」。比例係以「細胞之面積」/「全體之面積」算出。

將結果示於圖11及圖12。藉由TGF β 1刺激，可見到分化成α SMA陽性肌纖維母細胞及細胞之肥大化。又，細胞之肥大化係以TGF β 1濃度依賴性之方式引起，藉由TGF受體阻礙劑(SB431542)之共處置而予以抑制(參照圖12)。

實施例3-5：腎纖維症之預防或治療藥之篩選

於實施例3-4中，顯示RSC回應TGF β 1而纖維化。再者，藉由1ng/ml之TGF β 1而誘導纖維化的RSC，藉由將TGF β 1從培養基除去，回復為無纖維化之RSC(圖13)。與此相對地，以10ng/ml之TGF β 1誘導纖維化的RSC，即使將TGF β 1從培養基除去，仍維持纖維化狀態(圖14)。利用此RSC之纖維化的性質，構築改善持續纖維化狀態之化合物的篩選系統。

將RSP以3000細胞/孔之量播種於384-孔培養盤，在STEMdiff APEL2培養基(STEMCELL Technologies，ST-05275)啟動向RSC之誘導。於培養第4日(D4)添加10ng/ml TGF β 1，誘導纖維化。培養期間中，每3日交換包含TGF β 1的培養液。培養第13日(D13)從培養基除去TGFβ1，進一步繼續培養2日(D15)。在D15之細胞培養基中，添加為TGF受體阻礙劑的SB431542(SB)，作為受驗物質，進一步培養9日後(D24)，決定tdTomato陽性細胞之面積。

將結果示於圖15。在SB不添加群(Cont)中，可見D15以後纖維化之增強。另一方面，在SB添加群(SB+)中，可確認纖維化受到顯著抑制。可確認本篩選系統在篩選具有改善腎纖維化之活性的化合物上有用。

實施例3-6：關於腎纖維症之生物標記探索法

藉由分析經誘導纖維化之RSC之培養上清液的成分，探索關於腎纖維症之生物標記。

將RSP以2×10⁶細胞/培養皿之量播種於10cm培養皿，在STEMdiff APEL2培養基(STEMCELL Technologies，ST-05275)開始朝向RSC之誘導。於培養第7日(D7)添加10ng/ml TGF β 1，進一步培養9日，誘導纖維化。

回收培養上清液，除去白蛋白、IgG、IgA後，進行丙酮沉澱及胰蛋白酶消化，得到肽片段。藉由LC/MS分析，決定肽片段之胺基酸序列。

結果，周知為纖維化標記之纖連蛋白(Fibronectin)(FN1)的肽片段被檢測出，在進一步進行TGF β 1處置之細胞的培養上清中，與無處置之細胞之培養上清相比，驗出約10倍之FN1。

[實施例4：腎臟類器官(Mini-kidney)之製作]

實施例4-1：從iPSC向中間中胚葉(intermediate mesoderm：IM)之分化誘導

從iPSC分化誘導成IM，及從IM與實施例2中所得到之RSP分化誘導成腎臟類器官，係參考非專利文獻6及非專利文獻7而進行。

人類iPSC方面，係使用1231A3株。

將人類iPSC以5.76×10⁵細胞/孔之量播種於塗覆有層黏連蛋白-511(Laminin-511)的6孔培養盤，在添加10μM Y-27632的StemFit AK03N(A+B+C)培養基進行24小時預備培養。

藉由在添加5% PFHM-II(Thermo Fisher，#1204007)之APEL2培養基(以下，亦稱為「IM誘導基本培養基」)添加8μM CHIR99021的培養基，培養4日。繼而，以在IM誘導基本培養基添加200ng/ml FGF9及1μg/ml肝素(heparin)(富士薄膜和光純藥股份有限公司，#081-00136)的培養基培養3日，得到IM(第7日)。

實施例4-2：EPO-emGFP/GAPDH-tdTomato(GAPDH-tdT)雙基因敲入(dual knock-in)型人類iPS細胞株之建立

在實施例2-1所建立的EPO-emGFP基因敲入(knock-in)人類iPS細胞株中，進一步將於GAPDH啟動子之控制下表現的GAPDH及tdTomato之融合蛋白質(GAPDH-tdT)進行基因敲入(knock-in)。

在EPO-emGFP基因敲入(knock-in)型人類iPS細胞株中，使用Neon轉染系統(Life Technologies)共導入GAPDH基因之終止密碼子部位置換成F2A-tdT的供者載體(donor vector)、標的序列之sgRNA(Integrated DNA Technologies)及SpCas9 D10A切口酶蛋白質(Integrated DNA Technologies，#1081062)的複合體。

藉由tdT之螢光進行細胞之篩選，藉由PCR，得到目標基因被插入染色體之細胞，即EPO-emGFP/GAPDH-tdT雙基因敲入(dual knock-in)型人類iPS細胞株。

實施例4-3：RSP與IM之共培養

將實施例4-1中第7日之IM藉由Accutase(細胞消化液)(Innovative Cell Technologies，AT104)分離。又，依照實施例1及實施例2記載之方法，從實施例4-2中製作的EPO-emGFP/GAPDH-tdT雙基因敲入(dual knock-in)型人類iPS細胞株誘導RSP。

將IM與RSP(tdT-labeled)混合，製成細胞塊(pellet)，播種在Transwell(Corning，#3450)上，進行共培養。相對於5×10⁵細胞/團之IM，將1/5量(1×10⁵細胞/團)或1/25量(2×10⁴細胞/團)之RSP混合。

將細胞塊(pellet)在添加5μM CHIR99021及1μg/ml肝素(heparin)之IM誘導基本培養基處理1小時後，於添加200ng/ml FGF9及1μg/ml肝素(heparin)的IM誘導基本培養基培養5日。然後，將培養基以添加1μg/ml肝素(heparin)的IM誘導基本培養基交換，進一步進行約3週之培養，得到腎臟類器官(Mini-kidney)。腎臟類器官之顯微鏡照片示於圖16。

實施例4-4：Mini-kidney於低氧條件下之EPO產生能力的評價

從實施例4-3所得到的共培養開始第25日之腎臟類器官(Mini-kidney，IM+RSP(D25))及不含RSP之腎臟類器官(KiO(D25))萃取RNA，並藉由Ion AmpliSeq^TM轉錄組人類基因表現套組(Ion AmpliSeq^TM Transcriptome Human Gene Expression Kit(ThermoFisher，#A26326))，製作轉錄組(Transcriptome)解析用數據庫。將所製作之數據庫，使用Ion 54^TM Chip Kit(ThermoFisher，#A27765)，藉由序列解析(Ion S5 XL定序儀(sequencer)，ThermoFisher)定量EPO mRNA之表現量。

將結果示於圖17。不含iPS細胞株、IM、及RSP之腎臟類器官(KiO(D25))中，任一者均未能見到EPO mRNA之顯著的表現。與此相對地，Mini-kidney(IM+RSP(D25))方面，可確認EPO mRNA之顯著表現。又，依照與實施例1-4同樣之方法，確認Mini-kidney之低氧回應性時，藉由低氧刺激(100μM FG-4592)，EPO表現量增加(IM+RSP(D25)+FG4592)。

實施例4-5：Mini-kidney之腎間質細胞標記的評價

藉由實施例4-4中製成的轉錄組用數據庫之序列解析，定量腎間質細胞標記(肌間線蛋白(desmin)、波形蛋白(vimentin)、PDGFR β、CD73)的mRNA表現量。

將結果示於圖18。在Mini-kidney(IM+RSP(D25))中，任一腎間質細胞標記均被確認表現。又，依照與實施例1-4同樣之方法，確認Mini-kidney(IM+RSP(D25))之低氧回應性時，藉由低氧刺激(100μM FG-4592)，肌間線蛋白(desmin)及CD73之表現量減少(IM+RSP(D25)+FG4592)。

實施例4-6：腎臟類器官(Mini-kidney)之絲球體標記及腎小管標記的評價

將為絲球體細胞標記的WT1及為腎小管細胞標記的LTL之表現，藉由免疫染色檢測。確認WT1陽性細胞及LTL陽性細胞彼此相鄰而存在(參照圖19)。

實施例4-7：Mini-kidney之細胞群體(cell population)的評價

將實施例4-3中所得到之從共培養開始第25日的腎臟類器官(Mini-kidney，IM+RSP(D25))及不含RSP之腎臟類器官(KiO(D25))分離成單細胞。利用單細胞解析平台(Chromium Controller：10X Genomics：#1000202)，進行cDNA數據庫之製作、鹼基序列之決定及T-SNE plot之生成。

將T-SNE plot示於圖20。包含RSP之腎臟類器官(IM+RSP(D25)，圖右)，與不含RSP之腎臟類器官(KiO(D25)，圖左)相比，除RSP之群體外，RSC之群體亦增加，表示藉由與IM之共培養，促進從RSP分化成RSC。再者，RSC之群體方面，可確認NELL2、PAX7、NGFR及NRK之表現上升。

[實施例5：RSP之活體內(in vivo)移植實驗]

為確認RSP於活體內之功能，將RSP移植至免疫不全NOG小鼠(In-Vivo Science)之腎皮膜下。

使用實施例4-2中所建立的EPO-emGFP/GAPDH-tdTomato(GAPDH-tdT)雙基因敲入(dual knock-in)型人類iPS細胞株，依照實施例1、2記載之方法，誘導RSP。藉由將RSP以30,000細胞/孔之量播種於PrimeSurface 96-孔V底培養盤(住友電木#MS-9096V)，進行3日培養，使細胞塊形成。將細胞塊移植至NOG小鼠之左腎皮膜下。35日後，將移植有細胞塊之腎臟取出，藉由實體顯微鏡(Leica，MZ10F)進行GAPDH-tdT之螢光觀察。

結果，確認細胞從移植之細胞塊游走，生著於腎內(參照圖21)。再者，藉由使用螢光顯微鏡(Keyence，BZ-700)的螢光觀察，移植之RSP(GAPDH-tdT陽性細胞)的一部分，確認EPO-emGFP之螢光(參照圖22)。

Claims

一種腎間質細胞之製造方法，其包含在含有源自血小板之成長因子受體促效劑的培養基中培養腎間質前驅細胞，得到腎間質細胞的步驟(3)。
如請求項1所述之製造方法，其中該培養基進一步包含鹼性纖維母細胞成長因子及/或纖維母細胞成長因子9。
如請求項1或2所述之製造方法，其進一步包含從神經脊細胞誘導腎間質前驅細胞的步驟(2)。
如請求項1至3中任一項所述之製造方法，其進一步包含在含有GSK3 β阻礙劑、TGF β阻礙劑、以及視黃酸及/或其衍生物之培養基，培養多能性幹細胞，誘導神經脊細胞的步驟(1)。
如請求項3或4所述之製造方法，其中該神經脊細胞為後腦神經脊細胞。
如請求項1至5中任一項所述之製造方法，其中該腎間質細胞於低氧條件下，產生紅血球生成素。
如請求項1至6中任一項所述之製造方法，其中該源自血小板之成長因子受體促效劑為源自血小板之成長因子(PDGF)。
一種腎間質細胞製造用培養基，其包含源自血小板之成長因子受體促效劑。
如請求項8所述之腎間質細胞製造用培養基，其進一步包含鹼性纖維母細胞成長因子及/或纖維母細胞成長因子9。
如請求項8或9所述之腎間質細胞製造用培養基，其中該源自血小板之成長因子受體促效劑為源自血小板之成長因子(PDGF)。
一種腎臟類器官之製造方法，其包含將腎間質細胞或腎間質前驅細胞與中間中胚葉進行共培養的步驟。
如請求項11所述之製造方法，

其中腎間質細胞或腎間質前驅細胞為藉由腎間質細胞之製造方法所得到者，其中該製造方法包含在含有源自血小板之成長因子受體促效劑的培養基中培養腎間質前驅細胞而得到腎間質細胞之步驟(3)，

或腎間質細胞或腎間質前驅細胞為藉由從神經脊細胞誘導腎間質前驅細胞的步驟(2)所得到者。
一種腎纖維症之預防或治療用物質的篩選方法，

其包含將藉由如請求項1至7中任一項所述之製造方法所得到的腎間質細胞，於誘導該細胞之纖維化的物質存在下培養，提供包含纖維化腎間質細胞之細胞集團的程序；

於受驗物質存在下及不存在下培養該細胞集團的程序；

測定各該細胞集團中之細胞之纖維化程度的程序；及

將於該受驗物質存在下所培養的細胞集團中，與前述受驗物質不存在下所培養的細胞集團相比，使細胞之纖維化程度降低之受驗物質予以選擇的程序。
一種決定腎纖維症之生物標記的方法，其包含

將藉由如請求項1至7中任一項所述之製造方法所得到的腎間質細胞，於誘導該細胞之纖維化的物質存在下培養，提供包含纖維化腎間質細胞之細胞集團的程序；

鑑定包含於前述細胞集團之培養液中之物質的程序；及

將所鑑定之物質與罹患腎纖維症之哺乳動物的體液中所含之物質做比較，特定出一致之物質的程序。
一種製造方法，其為含有腎間質前驅細胞之腎障礙之預防或治療用醫藥的製造方法，其包含從神經脊細胞誘導腎間質前驅細胞的步驟(2)。
一種製造方法，其為含有腎間質細胞之腎障礙之預防或治療用醫藥的製造方法，其包含在含有源自血小板之成長因子受體促效劑的培養基中培養腎間質前驅細胞，得到腎間質細胞的步驟(3)。
如請求項15或16所述之製造方法，其進一步包含在含有GSK3 β阻礙劑、TGF β阻礙劑、以及視黃酸及/或其衍生物之培養基中，培養多能性幹細胞，誘導神經脊細胞的步驟(1)。
一種醫藥，其包含源自多能性幹細胞的腎間質前驅細胞及/或源自多能性幹細胞的腎間質細胞。
一種腎障礙之預防劑或治療劑，其包含源自多能性幹細胞的腎間質前驅細胞及/或源自多能性幹細胞的腎間質細胞。
一種腎障礙之預防或治療方法，其包含將源自多能性幹細胞的腎間質前驅細胞及/或源自多能性幹細胞的腎間質細胞投與至對象的程序。
一種源自多能性幹細胞的腎間質前驅細胞及/或源自多能性幹細胞的腎間質細胞，其係用於腎障礙的預防或治療。
一種源自多能性幹細胞的腎間質前驅細胞及/或源自多能性幹細胞的腎間質細胞之用途，其係用於製造腎障礙之預防或治療用醫藥。