[go: up one dir, main page]

SU390727A1 - - Google Patents

Info

Publication number
SU390727A1
SU390727A1 SU82733A SU82733A SU390727A1 SU 390727 A1 SU390727 A1 SU 390727A1 SU 82733 A SU82733 A SU 82733A SU 82733 A SU82733 A SU 82733A SU 390727 A1 SU390727 A1 SU 390727A1
Authority
SU
USSR - Soviet Union
Prior art keywords
spores
rate
toxins
culture fluid
hydrogen peroxide
Prior art date
Application number
SU82733A
Other languages
Russian (ru)
Other versions
SU30966A1 (en
Inventor
Тосио Каназава Япони Иностранна фирма Сумитомо Кемикал Компани Лимитед Япони Иностраицы Сусуми Юцуми
Publication of SU390727A1 publication Critical patent/SU390727A1/ru
Application filed filed Critical
Application granted granted Critical
Publication of SU30966A1 publication Critical patent/SU30966A1/en

Links

Description

СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ МИКРОБНОГО ИНСЕКТИЦИДАMETHOD OF OBTAINING MICROBIAL INSECTICIDE

Изобретение относитс  к области защиты возделываемых растений от насекомых-1вредителей микробиологическим путем, более конкретно к микробиологическим способам получени  инсектицидных веществ.The invention relates to the field of protection of cultivated plants from insect-1 pests by microbiological means, and more specifically to microbiological methods for the production of insecticidal substances.

Уже известен способ получени  микробиологических црепаратов, содержащих микроорганизмы , относ щиес  к виду Bacillus thuringiensis , дл  борьбы с вредными насекомыми сада, огорода и леса, основанный на том, что протеиновые кристаллы-токсины, образующиес  в клетках спор этих мик роорганизмов, про вл ют высокую токсичность по отношению к личинкам насекомых. Гамма-эндотоксины вызывают отравление, привод щее к гибели насекомых .A method of obtaining microbiological preparations containing microorganisms belonging to the species Bacillus thuringiensis is already known for controlling harmful insects of the garden, vegetable garden and forest, based on the fact that protein crystals-toxins formed in the spore cells of these microorganisms exhibit a high toxicity to insect larvae. Gamma-endotoxins cause poisoning resulting in the death of insects.

Известные препараты оказывают аналогичное инсектицидное действие и на тутового шелкопр да. Кроме того, действие пр-епарата продолжаетс  и после опрыскивани , так как в телах убитых токсинами насекомых из-за образовани  спор возникает вторична  инфекци , котора  переноситс  на другие индивидуумы , в частности на тутового шелкопр да, ветром, дождем, движением животных и насекомых .Known drugs have a similar insecticidal effect on the silkworm. In addition, the action of the product continues even after spraying, as in the bodies of insects killed by toxins a secondary infection occurs due to the formation of spores, which is transferred to other individuals, in particular silkworm, wind, rain, animal and insect movement.

Предлагаетс  способ получени  микробного инсектицида, включающей культивированиеA method for producing a microbial insecticide is proposed, including the cultivation of

Вас. thuringiensis в жидкой питательной среде, выделение снюр и токсинов посредством центрифз гировани  и высушивание, при котором с целью исключени  вторичной инфекции споры лишают способности к размножению, сохран   их инсектицидную активность. Дл  этого культуральную жидкость обрабатывают в период минимального образовани  токсинов перекисью водорода, р-пропилактоном или ультразвуком.You. thuringiensis in a liquid nutrient medium, the release of snur and toxins by means of centrifuges and drying, in which, in order to eliminate secondary infection, spores are unable to reproduce, retaining their insecticidal activity. To this end, the culture fluid is treated during the period of minimal formation of toxins with hydrogen peroxide, p-propylactone or ultrasound.

В период минимального образовани  токсинов культивирование прерывают и к культуральной жидкости добавл ют перекись водорода из расчета 0,5-5,0 вес.%, р-пропилактон берут из расчета 0,25 вес.%. Воздействие ультразвуком провод т из расчета 20 килоциклов в течение 20 мин.During the period of minimal toxin formation, cultivation is interrupted and hydrogen peroxide is added to the culture fluid at a rate of 0.5-5.0 wt.%, P-propylactone is taken at a rate of 0.25 wt.%. The exposure to ultrasound is carried out at the rate of 20 kilocycles for 20 minutes.

Пример. Микроорганизм, относ щийс  к виду Вас. thuringiensis, выдел ют из мертвых насекомых и культивируют, а затем отбирают наиболее токсичные штаммы.Example. A microorganism belonging to the species you are. thuringiensis, are isolated from dead insects and cultured, and then the most toxic strains are selected.

В пробирку загружают 10 мл среды, состо щей из 1 мл дистиллированной воды, 10 г пептона , 10 г м сного экстракта и 3 г хлористого натри  и довод т рН до 7,2. После стерилизации среду инокулируют отобранными штаммами . Культив;фованпе провод т при взбалтывании в течение 72 час. Споры и гамма-токсины собирают путем центрифугировани  (15°С, 7000 об/мин, 10 мин) и промывают дистиллированной водой, после чего снова центрифугируют (5°С, 7000 об/мин, 10 мин) и высушивают в вакууме с сохранением способности их к размножению. Сухие вещества разбавл ют водой до концентрации 2 вес.% и после .перемешивани  распыл ют на тутовые листь , которые скармливают двадцати шелкопр дам второго дн  второго возраста дл  определени  вирулентности штамма. Полученные результаты даны в табл. 1. Таблица 1 Примечание. Общее число подопытных насекомых каждого штамма--20. Из данных табл. 1 видно, что самые сильные по вирулентности штаммы - А, Е, F. Эти штаммы выращивают в стерильной среде (500 мл при 27°С в течени-е 96 час) состава, г/л: 5 КН2РО4, 5 К2НРО4, 0,0002 хлористоводородного тиамина, 0,5 M.gSO4, 0,3 MnSO4, 0,01 FeSOi, 0,05 CaCb, 1,5 Na -NHiPOi, 3 цитрата .натри  и 10 Casamio acid. После подтверждени  с помощью фазо-контрастного микроскопа, что образовалось доТаблица 2 - обозначает зничтожена, + обозначает 60 уцелела. + эффективность токсинов слегка зменьшена по сравненлю с необработанной культуральной жидкостью; эффективность TOKCIIHOB така  же, как у необработанной жидкости.65 статочно кристаллических токсинов, культивирование прекращают и культуральную жидкость подвергают обработке дл  лишени  спор способности к размножению. В качестве обр :5атыва ощего агента добавл ют лерекись водорода из расчета 0,065; 0,125; 0,25; 0,5; 0,75; 1,0; 2,0; 3,0; 5,0, вес.%. Через 24 час берут 1 мл обработанной культуральной жидкости и инокулируют 10 Л1Л стерильной среды. Полученные результаты даны в табл. 2, из которой видно, что при добавлении к культуральной }кидкости 0,5 вес. % перекиси водорода живых спор не наблюдалось. Так как после добавлени  0,5% или более перекиси водорода выживших спор не наблюдают совсем, то каждый штамм подвергают обработке перекисью водорода из расчета 0,5 вес.% дл  лишени  способности спор к размножению, споры собирают путем центрифугировани  (5°С, 7000 об/мин, 30 мин) несколько раз промывают дистиллированной водой, высушивают под уменьшенным давлением дл  получени  сухих веществ. Затем готов т 2%-ный препарат и равномерно нанос т его на тутовые листь , которые скармливают четырем шелкопр дам. Результат подтверждает , что обработанный препарат может полностью убивать тутового шелкопр да за 2- 3 час л что токсины в клетках в активном состо нни . Такие же результаты получают с препаратами , обработанными р-пропилактоном, вз тым из расчета 0,25 вес.% или ультразвуком из расчета 20 килоциклов в течение 20 мин. Про.вод т опыты по определению инсектицидной активности препарата, полученного из штамма (табл. 1) вышеуказанным путем, на вредных насекомых. Полученные результаты приведены в табл. 3. Таблица 3 Из табл. 3 видно, что микробный инсектицид , полученный путем лишени  микроорганизма способности размножатьс , обладает инсектицидным действием дл  вредных насекомых . Кроме того, микробный инсектицид не вызывает вторичной инфекции и поэтому не оказывают вредного действи  на тутового шелкопр да. Указанные сухие клетки ввод т внутрь мышам в дозах 3 3 на 1 кг веса, отравлени  или нарушени  физиологических отправлений не происходит. 5 Предмет изобретени  1.Способ получеии  микробного инсектицида , включающий культивирование Bacillus thuringiensis в жидкой питательной среде, вы-5 деление спор и токсинов посредством центрифугировани  и высушивани , отличающийс  тем, что, с целью исключени  вторичной инфекции , споры лишают способности к размножению , сохран   их инсектицидную актив-ю ность. 2.Способ по п. 1, отличающийс  тем, что лишение спор возможности к размножению осуществл ют путем обработки культуральной 39072 , . б жидкости перекисью водорода р-пропилактоном или ультразвуком. 3. Способ по п. 2, отличающийс  тем, что перекись водорода берут дл  обработки культуральной жидкости из расчета внесени  0,5- 5,0 вее.%. 4. Способ по п. 2, отличающийс  тем, что дл  обработки культуральной жидкости берут р-пропилактон из расчета внесени  0,25вес.%. 5. Способ по п. 2, отличающийс  тем, что обработку культуральной жидкости ультразвуком производ т из расчета 20 килоциклов в течение 20 мин.10 ml of medium consisting of 1 ml of distilled water, 10 g of peptone, 10 g of meat extract and 3 g of sodium chloride are loaded into a test tube and the pH is adjusted to 7.2. After sterilization, the medium is inoculated with selected strains. Cultivate; Fovanpe is carried out with agitation for 72 hours. Spores and gamma toxins are harvested by centrifugation (15 ° C, 7000 rpm, 10 min) and washed with distilled water, then centrifuged again (5 ° C, 7000 rpm, 10 min) and dried in vacuum with retaining the ability their reproduction. The solids are diluted with water to a concentration of 2% by weight and, after stirring, sprayed onto the mulberry leaves, which feed twenty silkworms of the second day of the second age to determine the virulence of the strain. The results are given in table. 1. Table 1 Note. The total number of experimental insects of each strain is 20. From the data table. 1 shows that the strongest virulence strains are A, E, F. These strains are grown in sterile medium (500 ml at 27 ° C for 96 h) of composition, g / l: 5 KH2PO4, 5 K2HPO4, 0, 0002 hydrochloric thiamine, 0.5 M.gSO4, 0.3 MnSO4, 0.01 FeSOi, 0.05 CaCb, 1.5 Na -NHiPOi, 3 citrates of sodium and 10 Casamio acid. After confirming with a phase contrast microscope that the formation of Table 2 is formed - indicates destroyed, + indicates 60 survived. + the effectiveness of toxins is slightly reduced compared to untreated culture fluid; TOKCIIHOB's efficacy is the same as that of the untreated liquid. 65 sufficiently crystalline toxins are stopped, cultivation is stopped, and the culture fluid is processed to deplete the spores of reproduction. As a sample: 5% of the total agent, hydrogen lerexium is added at the rate of 0.065; 0.125; 0.25; 0.5; 0.75; 1.0; 2.0; 3.0; 5.0 wt.%. After 24 hours, take 1 ml of the treated culture fluid and inoculate 10 L1L sterile medium. The results are given in table. 2, from which it can be seen that, when 0.5% by weight is added to the culture liquid; % hydrogen peroxide alive spores were observed. Since after the addition of 0.5% or more of hydrogen peroxide, the surviving spores are not observed at all, each strain is treated with hydrogen peroxide at a rate of 0.5% by weight to make it impossible for the spores to multiply, the spores are harvested by centrifuging (5 ° C, 7000 rpm, 30 min) are washed several times with distilled water, dried under reduced pressure to obtain dry substances. Then a 2% preparation is prepared and evenly applied to the mulberry leaves, which are fed to four silkworms. The result confirms that the treated preparation can completely kill the silkworm in 2–3 hours and that the toxins in the cells are in an active state. The same results are obtained with preparations treated with p-propylactone taken at the rate of 0.25 wt.% Or with ultrasound at the rate of 20 kilocycles for 20 minutes. Experiments were carried out to determine the insecticidal activity of a preparation obtained from a strain (Table 1) as above, on harmful insects. The results are shown in Table. 3. Table 3 From table. 3, it can be seen that the microbial insecticide obtained by depriving the microorganism of its ability to multiply has an insecticidal effect on harmful insects. In addition, the microbial insecticide does not cause a secondary infection and therefore does not adversely affect the silkworm. These dry cells are introduced into the mice in doses of 3 3 per 1 kg of weight, and no poisoning or disturbance of physiological functions occurs. 5 Subject of the invention 1. A method for obtaining a microbial insecticide, including cultivating Bacillus thuringiensis in a liquid nutrient medium, eliminating spores and toxins by centrifuging and drying, characterized in that, in order to eliminate secondary infection, spores deprive the ability to reproduce, retain them insecticidal activity. 2. The method according to claim 1, characterized in that the deprivation of the spores of the possibility of reproduction is carried out by treating the culture with 39072,. b liquid peroxide hydrogen p-propylactone or ultrasound. 3. A method according to claim 2, characterized in that hydrogen peroxide is taken to process the culture fluid at the rate of introduction of 0.5-5.0% by weight. 4. The method of claim 2, wherein p-propylactone is taken at the rate of 0.25 weight.% For treating the culture liquid. 5. A method according to claim 2, characterized in that the treatment of the culture fluid with ultrasound is carried out at the rate of 20 kilocycles for 20 minutes.

SU82733A 1931-02-02 Machine for making caps and packing them shag SU30966A1 (en)

Publications (2)

Publication Number Publication Date
SU390727A1 true SU390727A1 (en)
SU30966A1 SU30966A1 (en) 1933-06-30

Family

ID=

Similar Documents

Publication Publication Date Title
JP2763550B2 (en) Fungicidal toxins and methods and inoculants for controlling root rot and wilt
KR101785098B1 (en) Composition for simultaneous control of both aphid and Pythium ultimum using Isaria javanica Pf185 and its culture media
JPS63273470A (en) Microorganism strain having antibacterial activity
EP0278959A1 (en) BIOLOGICAL REGULATION OF ROOT DEHYDRATION AND ROTATION, AND INOCULATION PREPARATION USED FOR THIS REGULATION.
US8076119B2 (en) Brevibacillus laterosporus strain compositions containing the same and method for the biological control of Dipters
KR101444214B1 (en) COMPOSITION FOR CONTROL OF INSECT USING Beauveria bassiana Bb08 AND ITS CULTURE EXTRACTS
EP4585677A1 (en) Novel beauveria bassiana 331r strain with insecticidal and bactericidal activity and use thereof
JP2008518977A (en) Arthrospira-based compositions and uses thereof
KR20180033774A (en) Entomopathogenic fungus, Beauveria bassiana ANU1 and microbial agent for controlling Spodoptera exigua, Plutella xylostella, Helicoverpa assulta or Phaedon brassicae using it
CN115605580A (en) Bacillus subtilis JCK-1398 strain inducing resistance in various plants, composition for controlling pine wilt disease using the same and control method
Maniania Evaluation of three formulations of Beauveria bassiana (Bals.) Vuill. for control of the stem borer Chilo partellus (Swinhoe)(Lep., Pyralidae)
CN107788014A (en) Composition and application thereof, prevention or treatment method, the method and system for producing microorganism
CN112553086B (en) Violet purpurea bacterial strain and application thereof in preventing and treating phyllotreta striolata
KR101773339B1 (en) Composition for simultaneous control of both aphid, and Pythium ultimum, or Colletotrichum acutatum using Isaria fumosorosea Pf212 and its culture media
SU390727A1 (en)
US6890545B2 (en) Fungicide and method for producing the same
KR101389975B1 (en) culture medium for preventing disease and promoting growth of plant, manufacturing method of microbial agent using the same
US7067299B2 (en) Materials and methods for in vitro production of bacteria
JPH0358904A (en) New bacillus thurinqiensis chorista
KR100319135B1 (en) Microbiological preparation inhibiting plant diseases
KR101785099B1 (en) Composition for simultaneous control of both aphid and Sclerotinia sclerotiorum using Beauveria bassiana Bb18 and its culture media
JPH02149507A (en) Inhibiting method of leaf disease due to fungous pathogen by fungcidal bacteria and novel pure culture of said fungicidal bacteria
JPS5823365B2 (en) Saikin Seisatsu Yuzai Oyobi Sono Seizou Hohou
CN110915820A (en) Method for preparing biological pesticide by novel engineering bacteria
CN110720470A (en) Application of bacillus thuringiensis in prevention and treatment of rootworm insects