[go: up one dir, main page]

SU162294A1 - - Google Patents

Info

Publication number
SU162294A1
SU162294A1 SU807406A SU807406A SU162294A1 SU 162294 A1 SU162294 A1 SU 162294A1 SU 807406 A SU807406 A SU 807406A SU 807406 A SU807406 A SU 807406A SU 162294 A1 SU162294 A1 SU 162294A1
Authority
SU
USSR - Soviet Union
Prior art keywords
solution
added
protein
vitamins
sodium
Prior art date
Application number
SU807406A
Other languages
Russian (ru)
Publication of SU162294A1 publication Critical patent/SU162294A1/ru

Links

Description

Известно применение питательных безбелковых поддерживающих сред дл  животных клеток , выращиваемых in vitro, содержащих белковый гидролизат, солевой раствор и витамины . Указанные среды обеспечивают удовлетворительный срок переживани  клеток лишь в случае регул рного (два раза в неделю) обновлени  среды.It is known to use nutrient protein-free supporting media for animal cells grown in vitro, containing protein hydrolyzate, saline and vitamins. These media provide a satisfactory cell survival time only in the case of regular (twice weekly) medium renewal.

Дл  увеличени  сроков переживани  клеток в питательную безбелковую среду ввод т пуклеиновокислый натрий. Дл  приготовлени  предлагаемой питательной безбелковой поддерживающей среды асептически смешивают солевой раствор (89,88-89,84%), белковый гидролизат (10,0%), раствор витаминов (0,05%-пый раствор фолиевой кислоты) и раствор нуклеиновокислого натри  (0,02- 0,06%).In order to increase the cell survival time, nucleated sodium is introduced into the protein-free nutrient medium. For the preparation of the proposed nutrient-free protein supportive medium, the salt solution (89.88-89.84%), the protein hydrolyzate (10.0%), the solution of vitamins (0.05% folic acid solution), and sodium nucleic acid (0 , 02- 0.06%).

В качестве солевого раствора используют любой из обычно примен емых дл  культивировани  клеток, например солевой раствор Хенкса или Эрла. В качестве белкового гидролизата можпо использовать стерильные жидкие белковые гидролизаты, примен емые дл  парентерального питани  больных. Не исключаетс  также применение раствора гидролизата лактальбумина и других белковых гидролизатов , если только они содержат все необходимые дл  роста клеток аминокислоты.As a saline solution, any of the cells commonly used for culturing is used, for example, Hanks or Earl saline solution. Sterile liquid protein hydrolysates used for parenteral nutrition of patients can be used as a protein hydrolyzate. The use of a solution of lactalbumin hydrolyzate and other protein hydrolysates is also not excluded, as long as they contain all the amino acids necessary for cell growth.

Пример 1. Дл  приготовлени  раствора Витаминов к 10 мл обессоленной воды добавл ют 2 мл концентрированной сол ной кислоты и 10 мл рибофлавина. Дл  полного растворени  рибофлавина смесь нагревают на кип ш ,ей вод ной бане. Охлажденный раствор довод т до 100 мл обессоленной водой и добавл ют по 100 мг пиридоксииа (или пиридоксал ), пантотената кальци  (или пантотеновой кислоты),тиамина, пиацина и хлорида холина и 200 мезоинзита. После полного растворени  всех компонентов раствора его объем довод т до 198 мл химически чистым или перегнанным глицерином и приливают 2 мл 1,7%-ного раствора нистатина в 70%-ном эталоне. Хран т раствор в светонепроницаемой посуде при 15°С. Срок годности 6 мес цев. Употребл ть раствор можно не ранее, чем через 5 дней после его изготовлени .Example 1. To prepare a solution of vitamins, 2 ml of concentrated hydrochloric acid and 10 ml of riboflavin are added to 10 ml of desalted water. To completely dissolve the riboflavin, the mixture is heated in a boiling water bath. The cooled solution is made up to 100 ml with desalted water and 100 mg of pyridoxia (or pyridoxal), calcium pantothenate (or pantothenic acid), thiamine, pyacin and choline chloride and 200 mesoinzite are added. After complete dissolution of all components of the solution, its volume is brought to 198 ml with chemically pure or distilled glycerol and 2 ml of a 1.7% solution of nystatin in a 70% standard are added. Store the solution in an opaque dish at 15 ° C. Shelf life 6 months. The solution can be consumed no earlier than 5 days after its manufacture.

Пример 2. Дл  приготовлени  раствора фолиевой кислоты к 90 мл обессоленной воды приливают 10 мл 7,5%-ного раствора бикарбоната натри  и добавл ют 100 мг фолиевой кислоты , после растворени  которой добавл ют 80 мг хлоргидрата тетрациклина. Объем раствора довод т до 198 мл химически чистым глицерином и приливают 2 мл 1,7%-ного раствора нистатина в 70%-ном эталоне. Услови  хранени , срок годности и длительности выдерживани  перед употреблением те же, что п дл  раствора витаминов.Example 2. To prepare a folic acid solution, 10 ml of a 7.5% sodium bicarbonate solution are added to 90 ml of desalted water and 100 mg of folic acid is added, after which 80 mg of tetracycline hydrochloride is added. The volume of the solution is made up to 198 ml with chemically pure glycerol and 2 ml of a 1.7% solution of nystatin in a 70% standard are added. The storage conditions, shelf life and shelf life before consumption are the same as for vitamins.

ПримерЗ. Дл  приготовлени  раствора нуклеиновокислого натри  к 10 мл обессоленной воды прибавл ют 2000 мг соли, после растворени  которой довод т объем до 18 мл химически чистым глицерином, и приливают 2 мл раствора нистатина. Услови  хранени , срокExample To prepare a solution of nucleic acid sodium, 2000 mg of salt are added to 10 ml of desalted water, after dissolving which the volume is brought to 18 ml with chemically pure glycerin, and 2 ml of nystatin solution is added. Storage conditions, term

годности и длительность выдерживани  перед употреблением те же, что и дл  раствор-а витаминов .The shelf life and durability before use are the same as for the solution of vitamins.

При испытании культуральных свойств предлагаемой поддерживающей среды с использованием в качестве тест-объектов перманентных клеток СОЦ, перманентных клеток амниона человека и первично трипсинизированных клеток эмбриона человека сроки переживани  составили соответственно 14-18, 14-17 и 16-21 день. В случае отсутстви  в описываемой поддерживаюш,ей среде иуклиеновокислого патри  клетки переживали не более 7 дней.When testing the cultural properties of the proposed supportive environment using as a test object of permanent cells of SOC, permanent cells of human amnion and primary trypsinized cells of a human embryo, the periods of experience were 14-18, 14-17 and 16-21 days, respectively. In case of absence in the described support, her environment and the acid-acidic patri cell survived no more than 7 days.

Предмет изобрете 1и The subject invention 1i

Питательна  безбелкова  поддерживающа  среда дл  животных клеток, выращиваемых in vitro, состо ща  из белкового гидролизата, солевого раствора, витаминов, отличающа с  тем, что, с целью удлинени  сроков переживани  клеток, в ее состав ввод т нуклеиновокислый натрий.A nutrient-free protein-free support for animal cells grown in vitro, consisting of protein hydrolyzate, saline, vitamins, characterized in that nucleic sodium is introduced into its composition in order to prolong the cell survival time.

SU807406A SU162294A1 (en)

Publications (1)

Publication Number Publication Date
SU162294A1 true SU162294A1 (en)

Family

ID=

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US8986957B2 (en) 2010-04-26 2015-03-24 Novartis Ag Cell culture medium

Cited By (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US8986957B2 (en) 2010-04-26 2015-03-24 Novartis Ag Cell culture medium
RU2563353C2 (en) * 2010-04-26 2015-09-20 Новартис Аг Improved cell culture medium
US9243224B2 (en) 2010-04-26 2016-01-26 Novartis Ag Cell culture medium

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Weiss Growth and physiology of rickettsiae
Morgan et al. Nutrition of animal cells in tissue culture. I. Initial studies on a synthetic medium.
Eagle Amino acid metabolism in mammalian cell cultures
Van Winkle et al. Glycine protects preimplantation mouse conceptuses from a detrimental effect on development of the inorganic ions in oviductal fluid
Redondo‐Müller et al. In vitro maturation of the potential for movement of carp spermatozoa
Hazel Thermal adaptation in biological membranes: is homeoviscous adaptation the explanation?
US6730315B2 (en) Medium and matrix for long-term proliferation of cells
US8071281B2 (en) Media solutions and methods for cryopreservation and thawing of in vitro fertilization specimens
ES2197140T3 (en) PHYSIOLOGICAL ENVIRONMENT FOR THE PERFUSION, CONSERVATION AND STORAGE OF SAMPLES OF CELLS, FABRICS AND ISOLATED ORGANS.
Brinster In vitro culture of mammalian embryos
SU162294A1 (en)
EP0082974B1 (en) Method for the cultivation of normal diploid cells and cultivation medium used therefor
Pace et al. Effects of oxygen on growth in several established cell lines
Tiruppathi et al. Constitutive expression of the taurine transporter in a human colon carcinoma cell line
Zigman et al. A cold precipitable protein in the lens
Krayushkina et al. Osmotic and ion regulation in different species of acipenserids (Acipenseriformes, Acipenseridae)
Metzgar Jr et al. Separation of Growth Promoting Activity from Horse Serum by Dialysis.
Mitsuhashi Continuous cultures of insect cell lines in media free of sera
Luh et al. The effects of hyperosmolarity on the viability and function of endothelial cells
Popp Comparative metabolism of blastocysts, extraembryonic membranes, and uterine endometrium of the mouse
Murad et al. Serum stimulation of lysyl hydroxylase activity in cultured human skin fibroblasts
de Bruyn LYMPHOSARCOMA MB (T86157) WITHOUT TYPICAL
CN114836373A (en) Oocyte activation culture medium and culture method and application thereof
Lawson Growth of cariogenic streptococci in chemically defined medium
ES2250223T3 (en) ADHERENT ANIMAL CELL PRODUCTION METHOD.