SU1686000A1 - Strain of bacteria bacillus stearothermophilus - a producer of restrictase bss ti - Google Patents
Strain of bacteria bacillus stearothermophilus - a producer of restrictase bss ti Download PDFInfo
- Publication number
- SU1686000A1 SU1686000A1 SU894768118A SU4768118A SU1686000A1 SU 1686000 A1 SU1686000 A1 SU 1686000A1 SU 894768118 A SU894768118 A SU 894768118A SU 4768118 A SU4768118 A SU 4768118A SU 1686000 A1 SU1686000 A1 SU 1686000A1
- Authority
- SU
- USSR - Soviet Union
- Prior art keywords
- bss
- strain
- restrictase
- buffer
- producer
- Prior art date
Links
- 108091008146 restriction endonucleases Proteins 0.000 title claims description 18
- 241000193385 Geobacillus stearothermophilus Species 0.000 title 1
- 241000193830 Bacillus <bacterium> Species 0.000 claims description 2
- 230000001580 bacterial effect Effects 0.000 claims 1
- FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M Sodium chloride Chemical compound [Na+].[Cl-] FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 14
- 239000000872 buffer Substances 0.000 description 14
- 108090000790 Enzymes Proteins 0.000 description 10
- 102000004190 Enzymes Human genes 0.000 description 10
- 229940088598 enzyme Drugs 0.000 description 10
- 239000002609 medium Substances 0.000 description 8
- 239000002028 Biomass Substances 0.000 description 7
- 239000011780 sodium chloride Substances 0.000 description 7
- PEDCQBHIVMGVHV-UHFFFAOYSA-N Glycerine Chemical compound OCC(O)CO PEDCQBHIVMGVHV-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 5
- 230000000694 effects Effects 0.000 description 4
- 239000007788 liquid Substances 0.000 description 4
- 244000005700 microbiome Species 0.000 description 3
- 239000002773 nucleotide Substances 0.000 description 3
- 125000003729 nucleotide group Chemical group 0.000 description 3
- 235000015097 nutrients Nutrition 0.000 description 3
- ROWKJAVDOGWPAT-UHFFFAOYSA-N Acetoin Chemical compound CC(O)C(C)=O ROWKJAVDOGWPAT-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- SRBFZHDQGSBBOR-IOVATXLUSA-N D-xylopyranose Chemical compound O[C@@H]1COC(O)[C@H](O)[C@H]1O SRBFZHDQGSBBOR-IOVATXLUSA-N 0.000 description 2
- KCXVZYZYPLLWCC-UHFFFAOYSA-N EDTA Chemical compound OC(=O)CN(CC(O)=O)CCN(CC(O)=O)CC(O)=O KCXVZYZYPLLWCC-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- SIKJAQJRHWYJAI-UHFFFAOYSA-N Indole Chemical compound C1=CC=C2NC=CC2=C1 SIKJAQJRHWYJAI-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- PXIPVTKHYLBLMZ-UHFFFAOYSA-N Sodium azide Chemical compound [Na+].[N-]=[N+]=[N-] PXIPVTKHYLBLMZ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 229920004890 Triton X-100 Polymers 0.000 description 2
- 239000013504 Triton X-100 Substances 0.000 description 2
- PYMYPHUHKUWMLA-UHFFFAOYSA-N arabinose Natural products OCC(O)C(O)C(O)C=O PYMYPHUHKUWMLA-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- SRBFZHDQGSBBOR-UHFFFAOYSA-N beta-D-Pyranose-Lyxose Natural products OC1COC(O)C(O)C1O SRBFZHDQGSBBOR-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 229940041514 candida albicans extract Drugs 0.000 description 2
- 235000011187 glycerol Nutrition 0.000 description 2
- 239000006916 nutrient agar Substances 0.000 description 2
- 239000008057 potassium phosphate buffer Substances 0.000 description 2
- UCSJYZPVAKXKNQ-HZYVHMACSA-N streptomycin Chemical compound CN[C@H]1[C@H](O)[C@@H](O)[C@H](CO)O[C@H]1O[C@@H]1[C@](C=O)(O)[C@H](C)O[C@H]1O[C@@H]1[C@@H](NC(N)=N)[C@H](O)[C@@H](NC(N)=N)[C@H](O)[C@H]1O UCSJYZPVAKXKNQ-HZYVHMACSA-N 0.000 description 2
- 239000012138 yeast extract Substances 0.000 description 2
- RYAUSSKQMZRMAI-YESZJQIVSA-N (S)-fenpropimorph Chemical compound C([C@@H](C)CC=1C=CC(=CC=1)C(C)(C)C)N1C[C@H](C)O[C@H](C)C1 RYAUSSKQMZRMAI-YESZJQIVSA-N 0.000 description 1
- QKNYBSVHEMOAJP-UHFFFAOYSA-N 2-amino-2-(hydroxymethyl)propane-1,3-diol;hydron;chloride Chemical compound Cl.OCC(N)(CO)CO QKNYBSVHEMOAJP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 241000251468 Actinopterygii Species 0.000 description 1
- 102000002260 Alkaline Phosphatase Human genes 0.000 description 1
- 108020004774 Alkaline Phosphatase Proteins 0.000 description 1
- GUBGYTABKSRVRQ-XLOQQCSPSA-N Alpha-Lactose Chemical compound O[C@@H]1[C@@H](O)[C@@H](O)[C@@H](CO)O[C@H]1O[C@@H]1[C@@H](CO)O[C@H](O)[C@H](O)[C@H]1O GUBGYTABKSRVRQ-XLOQQCSPSA-N 0.000 description 1
- 241000894006 Bacteria Species 0.000 description 1
- 108010053835 Catalase Proteins 0.000 description 1
- 102100035882 Catalase Human genes 0.000 description 1
- FBPFZTCFMRRESA-KVTDHHQDSA-N D-Mannitol Chemical compound OC[C@@H](O)[C@@H](O)[C@H](O)[C@H](O)CO FBPFZTCFMRRESA-KVTDHHQDSA-N 0.000 description 1
- GUBGYTABKSRVRQ-WFVLMXAXSA-N DEAE-cellulose Chemical compound OC1C(O)C(O)C(CO)O[C@H]1O[C@@H]1C(CO)OC(O)C(O)C1O GUBGYTABKSRVRQ-WFVLMXAXSA-N 0.000 description 1
- 230000007064 DNA hydrolysis Effects 0.000 description 1
- RWSOTUBLDIXVET-UHFFFAOYSA-N Dihydrogen sulfide Chemical compound S RWSOTUBLDIXVET-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 229930182566 Gentamicin Natural products 0.000 description 1
- CEAZRRDELHUEMR-URQXQFDESA-N Gentamicin Chemical compound O1[C@H](C(C)NC)CC[C@@H](N)[C@H]1O[C@H]1[C@H](O)[C@@H](O[C@@H]2[C@@H]([C@@H](NC)[C@@](C)(O)CO2)O)[C@H](N)C[C@@H]1N CEAZRRDELHUEMR-URQXQFDESA-N 0.000 description 1
- WQZGKKKJIJFFOK-GASJEMHNSA-N Glucose Natural products OC[C@H]1OC(O)[C@H](O)[C@@H](O)[C@@H]1O WQZGKKKJIJFFOK-GASJEMHNSA-N 0.000 description 1
- GUBGYTABKSRVRQ-QKKXKWKRSA-N Lactose Natural products OC[C@H]1O[C@@H](O[C@H]2[C@H](O)[C@@H](O)C(O)O[C@@H]2CO)[C@H](O)[C@@H](O)[C@H]1O GUBGYTABKSRVRQ-QKKXKWKRSA-N 0.000 description 1
- 229930195725 Mannitol Natural products 0.000 description 1
- 102000016943 Muramidase Human genes 0.000 description 1
- 108010014251 Muramidase Proteins 0.000 description 1
- 108010062010 N-Acetylmuramoyl-L-alanine Amidase Proteins 0.000 description 1
- 102000004316 Oxidoreductases Human genes 0.000 description 1
- 108090000854 Oxidoreductases Proteins 0.000 description 1
- 229930182555 Penicillin Natural products 0.000 description 1
- JGSARLDLIJGVTE-MBNYWOFBSA-N Penicillin G Chemical compound N([C@H]1[C@H]2SC([C@@H](N2C1=O)C(O)=O)(C)C)C(=O)CC1=CC=CC=C1 JGSARLDLIJGVTE-MBNYWOFBSA-N 0.000 description 1
- 241000831652 Salinivibrio sharmensis Species 0.000 description 1
- 229930006000 Sucrose Natural products 0.000 description 1
- CZMRCDWAGMRECN-UGDNZRGBSA-N Sucrose Chemical compound O[C@H]1[C@H](O)[C@@H](CO)O[C@@]1(CO)O[C@@H]1[C@H](O)[C@@H](O)[C@H](O)[C@@H](CO)O1 CZMRCDWAGMRECN-UGDNZRGBSA-N 0.000 description 1
- 239000004098 Tetracycline Substances 0.000 description 1
- 239000002253 acid Substances 0.000 description 1
- WQZGKKKJIJFFOK-PHYPRBDBSA-N alpha-D-galactose Chemical compound OC[C@H]1O[C@H](O)[C@H](O)[C@@H](O)[C@H]1O WQZGKKKJIJFFOK-PHYPRBDBSA-N 0.000 description 1
- 229910021529 ammonia Inorganic materials 0.000 description 1
- 229960000723 ampicillin Drugs 0.000 description 1
- AVKUERGKIZMTKX-NJBDSQKTSA-N ampicillin Chemical compound C1([C@@H](N)C(=O)N[C@H]2[C@H]3SC([C@@H](N3C2=O)C(O)=O)(C)C)=CC=CC=C1 AVKUERGKIZMTKX-NJBDSQKTSA-N 0.000 description 1
- 239000003242 anti bacterial agent Substances 0.000 description 1
- 229940088710 antibiotic agent Drugs 0.000 description 1
- PYMYPHUHKUWMLA-WDCZJNDASA-N arabinose Chemical compound OC[C@@H](O)[C@@H](O)[C@H](O)C=O PYMYPHUHKUWMLA-WDCZJNDASA-N 0.000 description 1
- 230000000721 bacterilogical effect Effects 0.000 description 1
- WQZGKKKJIJFFOK-VFUOTHLCSA-N beta-D-glucose Chemical compound OC[C@H]1O[C@@H](O)[C@H](O)[C@@H](O)[C@@H]1O WQZGKKKJIJFFOK-VFUOTHLCSA-N 0.000 description 1
- 230000015572 biosynthetic process Effects 0.000 description 1
- 229960003669 carbenicillin Drugs 0.000 description 1
- FPPNZSSZRUTDAP-UWFZAAFLSA-N carbenicillin Chemical compound N([C@H]1[C@H]2SC([C@@H](N2C1=O)C(O)=O)(C)C)C(=O)C(C(O)=O)C1=CC=CC=C1 FPPNZSSZRUTDAP-UWFZAAFLSA-N 0.000 description 1
- 238000005119 centrifugation Methods 0.000 description 1
- 229960005091 chloramphenicol Drugs 0.000 description 1
- WIIZWVCIJKGZOK-RKDXNWHRSA-N chloramphenicol Chemical compound ClC(Cl)C(=O)N[C@H](CO)[C@H](O)C1=CC=C([N+]([O-])=O)C=C1 WIIZWVCIJKGZOK-RKDXNWHRSA-N 0.000 description 1
- 238000003776 cleavage reaction Methods 0.000 description 1
- 238000001514 detection method Methods 0.000 description 1
- 238000000502 dialysis Methods 0.000 description 1
- 238000002474 experimental method Methods 0.000 description 1
- 239000012634 fragment Substances 0.000 description 1
- 238000013467 fragmentation Methods 0.000 description 1
- 238000006062 fragmentation reaction Methods 0.000 description 1
- 229930182830 galactose Natural products 0.000 description 1
- 238000010353 genetic engineering Methods 0.000 description 1
- 229960002518 gentamicin Drugs 0.000 description 1
- 239000008103 glucose Substances 0.000 description 1
- 229910000037 hydrogen sulfide Inorganic materials 0.000 description 1
- 230000007062 hydrolysis Effects 0.000 description 1
- 238000006460 hydrolysis reaction Methods 0.000 description 1
- GFAZHVHNLUBROE-UHFFFAOYSA-N hydroxymethyl propionaldehyde Natural products CCC(=O)CO GFAZHVHNLUBROE-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- PZOUSPYUWWUPPK-UHFFFAOYSA-N indole Natural products CC1=CC=CC2=C1C=CN2 PZOUSPYUWWUPPK-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- RKJUIXBNRJVNHR-UHFFFAOYSA-N indolenine Natural products C1=CC=C2CC=NC2=C1 RKJUIXBNRJVNHR-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 239000002054 inoculum Substances 0.000 description 1
- 238000002955 isolation Methods 0.000 description 1
- 239000008101 lactose Substances 0.000 description 1
- 229960000274 lysozyme Drugs 0.000 description 1
- 239000004325 lysozyme Substances 0.000 description 1
- 235000010335 lysozyme Nutrition 0.000 description 1
- 239000000594 mannitol Substances 0.000 description 1
- 235000010355 mannitol Nutrition 0.000 description 1
- -1 monomitsinin Natural products 0.000 description 1
- 230000000877 morphologic effect Effects 0.000 description 1
- 229960000210 nalidixic acid Drugs 0.000 description 1
- MHWLWQUZZRMNGJ-UHFFFAOYSA-N nalidixic acid Chemical compound C1=C(C)N=C2N(CC)C=C(C(O)=O)C(=O)C2=C1 MHWLWQUZZRMNGJ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 150000002823 nitrates Chemical class 0.000 description 1
- 238000010899 nucleation Methods 0.000 description 1
- 229960001019 oxacillin Drugs 0.000 description 1
- UWYHMGVUTGAWSP-JKIFEVAISA-N oxacillin Chemical compound N([C@@H]1C(N2[C@H](C(C)(C)S[C@@H]21)C(O)=O)=O)C(=O)C1=C(C)ON=C1C1=CC=CC=C1 UWYHMGVUTGAWSP-JKIFEVAISA-N 0.000 description 1
- 230000001717 pathogenic effect Effects 0.000 description 1
- 230000007918 pathogenicity Effects 0.000 description 1
- 229940049954 penicillin Drugs 0.000 description 1
- 229940080469 phosphocellulose Drugs 0.000 description 1
- 239000000049 pigment Substances 0.000 description 1
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 description 1
- 238000000746 purification Methods 0.000 description 1
- 230000007017 scission Effects 0.000 description 1
- 239000013049 sediment Substances 0.000 description 1
- 239000002689 soil Substances 0.000 description 1
- 238000003756 stirring Methods 0.000 description 1
- 229960005322 streptomycin Drugs 0.000 description 1
- 239000005720 sucrose Substances 0.000 description 1
- FRGKKTITADJNOE-UHFFFAOYSA-N sulfanyloxyethane Chemical compound CCOS FRGKKTITADJNOE-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 239000006228 supernatant Substances 0.000 description 1
- 230000002194 synthesizing effect Effects 0.000 description 1
- 229960002180 tetracycline Drugs 0.000 description 1
- 229930101283 tetracycline Natural products 0.000 description 1
- 235000019364 tetracycline Nutrition 0.000 description 1
- 150000003522 tetracyclines Chemical class 0.000 description 1
- 229940099259 vaseline Drugs 0.000 description 1
Landscapes
- Enzymes And Modification Thereof (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Description
Изобретение относитс к биот хноло- гии и генной инженерии, в частности к обна- ружению микроорганизма, способного синтезировать сайт-специфическую рестриктазу , узнающую и расщепл ющую последовательность нуклеотидов СС (A/T)(A/T)GG и названную Bss Tl.The invention relates to biothography and genetic engineering, in particular to the detection of a microorganism capable of synthesizing a site-specific restriction enzyme that recognizes and cleaves the nucleotide sequence CC (A / T) (A / T) GG and called Bss Tl.
Целью изобретени вл етс вы вление штамма продуцента Bacillus stearothermophllus, обеспечивающего получение рестриктазы Bss Tl с более высоким выходом.The aim of the invention is to identify the producer strain Bacillus stearothermophllus, providing Bss Tl restriction enzyme with a higher yield.
Штамм бактерий В. stearothermophllus получен в результате поиска и отбора приThe strain of bacteria B. stearothermophllus obtained as a result of the search and selection at
экстремальных услови х культивировани (68-70°С) продуцентов рестриктаэ среди почвенных микроорганизмов.extreme cultivation conditions (68-70 ° C) of restriction thai producers among soil microorganisms.
Штамм депонирован в ВКПМ ВНИИ генетики под редакционным номером В-4893 (коллекционный номер депозитора 360), а продуцируема им эндонуклеаза рестрикции названа Bss Tl.The strain was deposited in the VKPM All-Union Scientific Research Institute of Genetics under the editorial number B-4893 (collection number of depositor 360), and the restriction endonuclease produced by it is called Bss Tl.
Морфолого-культуральные признаки. Клетки, выращенные в жидкой питательной среде, представл ют тонкие, с закругленными концами грамположительные подвижные палочки, одиночные или в коротких цепочках. Размер клеток 3-4-0,5-1,0 мкм.Morphological and cultural signs. Cells grown in a liquid nutrient medium are thin, with rounded ends, gram-positive motile rods, single or in short chains. The cell size is 3-4-0.5-1.0 microns.
О 00About 00
о о о оoh oh oh
Через 18-24 ч на плотной крахмало-аммиач- ной среде клетки образуют терминально расположенные овальные споры, расшир ющие ее тело. На рыбном питательном агаре - плоские округлые с неровным краем беспигментные колонии, 2,0-2,5 мм в диаметре , легко снимаютс бактериологической петлей. Водорастворимый, пигмент в среде не обнаружен.After 18-24 hours on a dense starch-ammonia medium, the cells form terminally located oval spores, expanding its body. On fish nutrient agar, flat pigment-free colonies with a rough edge, 2.0-2.5 mm in diameter, are easily removed by a bacteriological loop. Water-soluble pigment in the environment is not detected.
Строгий аэроб. Клетки в жидкой среде растут диффузно, без образовани пленки и осадка. Температурные границы роста 40- 70°С. Растет в присутствии 5% хлористого натри , при 10% - не растет. Рост отсутствует также в средах с 0,001% лизоцима и 0,02% азида натри . Тесты на каталазу и оксидазу положительные, на индол, сероводород и ацетоин отрицательные. Восстанавливает нитраты, синтезирует щелочную фосфатазу. Усваивает глюкозу и галактозу с образованием кислоты. Не ферментирует арабинозу, лактозу, сахарозу, ксилозу, ман- нит и глицерин.Strict aerobic. Cells in a liquid medium grow diffusely, without film formation and sediment. Temperature limits of growth 40-70 ° С. It grows in the presence of 5% sodium chloride, with 10% it does not grow. Growth is also absent in media with 0.001% lysozyme and 0.02% sodium azide. Tests for catalase and oxidase positive, for indole, hydrogen sulfide and acetoin negative. Restores nitrates, synthesizes alkaline phosphatase. Absorbs glucose and galactose to form acid. Does not ferment arabinose, lactose, sucrose, xylose, mannitol and glycerin.
Штамм чувствителен к пенициллину, ампициллину, мономицину, тетрациклину, стрептомицину, левомицетину, оксацилли- ну, карбеницилину, гентамицину, устойчив к налидиксовой кислоте. Штамм не патогенен .The strain is sensitive to penicillin, ampicillin, monomitsinin, tetracycline, streptomycin, chloramphenicol, oxacillin, carbenicillin, gentamicin, resistant to nalidixic acid. Strain is not pathogenic.
Культивирование провод т в питательной среде, содержащей 1 % бактотриптока, 0,5% дрожжевого экстракта, 1 % натри хлористого , рН 7,0 в колбах на качалке со скоростью перемешивани 200-250 об/мин при 68-70°С. Выход биомассы 3,0-3,5 г влажных клеток на 1 л среды. Выход фермента Bss TI не менее 10000 ед. акт,/г влажной биомассы.The cultivation is carried out in a nutrient medium containing 1% bactotrytok, 0.5% yeast extract, 1% sodium chloride, pH 7.0 in flasks on a shaker with a stirring speed of 200-250 rpm at 68-70 ° C. Biomass yield 3.0-3.5 g of wet cells per 1 liter of medium. The output of the Bss TI enzyme is not less than 10,000 units. act, / g wet biomass.
Полученна рестриктаза BssTI характеризуетс следующими свойствами: узнает и специфически расщепл ет последовательность нуклеотидов CC(A/TXA/T)GG, оптимальное значение рН дл действи рестриктазы 7,5-8.0, оптимальна температура действи 50-55°С, оптимальна концентраци NaCI 50 мМ.The resulting BssTI restrictase has the following properties: it recognizes and specifically cleaves the nucleotide sequence CC (A / TXA / T) GG, the optimum pH value for restrictase is 7.5-8.0, the optimal temperature is 50-55 ° C, the optimal concentration of NaCl is 50 mM .
Определ ющие отличи предлагаемого штамма В. stearothermophlliis (360) В-4893: высокое содержание рестриктазы Bss TI, составл ющей 10000 ед.акт./г влажной биомассы (в 5 раз выше), отсутствие патоген- ности штамма, использование дл культивировани микроорганизмов простой дешевой среды.The defining differences of the proposed strain B. stearothermophlliis (360) B-4893: a high content of Bss TI restriction enzyme of 10,000 units of act. / G of wet biomass (5 times higher), the absence of the pathogenicity of the strain, the use of simple microorganisms cheap environment.
П р и м е р 1. Получение биомассы.PRI me R 1. Obtaining biomass.
Клетки В. stearotnermophllus (360), хран щиес подслоем вазелинового масла при 4°С, высевают на скошенный питательный агар и инкубируют при 68-70°С в течение 18ч. Затем клетки внос т в колбу с 50 млB. stearotnermophllus cells (360), stored under a layer of vaseline oil at 4 ° C, are seeded on stubble nutrient agar and incubated at 68-70 ° C for 18 hours. The cells are then introduced into a flask with 50 ml.
жидкой питательной среды и выращивают инокул т на качалке со скоростью вращени 200-250 об/мин при 68-70°С 18-20 ч. Полученную культуру из расчета 5-10% исполь .зуют дл засева 250 мл среды, содержащей 1% бактотриптона, 0,5% дрожжевого экстракта , 1% натри хлористого. Дальнейшее культивирование провод т 16-18 ч на качалке в этих же услови х. Биомассу собираютliquid nutrient medium and inoculum is grown on a rocking chair with a rotation speed of 200-250 rpm at 68-70 ° C for 18-20 h. The resulting culture at the rate of 5-10% uses 250 ml of medium containing 1% bactotrypton for seeding , 0.5% yeast extract, 1% sodium chloride. Further cultivation was carried out for 16-18 hours on a rocking chair under the same conditions. Biomass collected
центрифугированием в течение 30 мин при 5000 об/мин на центрифуге Mistral.by centrifuging for 30 minutes at 5000 rpm in a Mistral centrifuge.
Выход сырой биомассы 3,5 г/л культу- ральной жидкости.Crude biomass yield of 3.5 g / l culture liquid.
П р и м е р 2. Выделение и очисткаPRI mme R 2. Isolation and purification
рестриктазы Bss TI.restrictase Bss TI.
10 г клеток суспендируют в 30 мг 0,02 М трис-HCI буфера, рН 7,5, содержащего 1х10 3М/ -меркаптоэтанола и 0,1 % тритона Х-100, разрушают на ультразвуковом дезинтеграторе . Обломки клеток удал ют центрифугированием и надосадочную жидкость нанос т на колонку с биогелем А-0,5 М объемом 500 мл, уравновешенную 0,02 М калий- фосфатным буфером, содержащим 1x10 М10 g of cells are suspended in 30 mg of 0.02 M Tris-HCl buffer, pH 7.5, containing 1x10 3M / -mercaptoethanol and 0.1% Triton X-100, destroyed in an ultrasonic disintegrator. Cell debris is removed by centrifugation and the supernatant is applied to a 500 ml A-0.5 M biogel column, equilibrated with 0.02 M potassium phosphate buffer containing 1 x 10 M
/ -меркаптоэтанола, 5x10 М ЭДТА, 0,8 М NaCI, 0,1% тритона Х-100 (буфер А). Фермент элюируют тем же буфером со скоростью 20 мл/ч. Фракции объемом 10 мл собирают и анализируют на присутствие/ -mercaptoethanol, 5x10 M EDTA, 0.8 M NaCI, 0.1% Triton X-100 (buffer A). The enzyme is eluted with the same buffer at a rate of 20 ml / h. Fractions of 10 ml are collected and analyzed for the presence of
фермента. Фракции, содержащие ректрик- тазную активность, объедин ют и диализу- ют против 2 л 0,02 М ка-лий-фосфатного буфера, рН 7,5, содержащего М /3- меркаптоэтанолаибхЮ М ЭДТА (буфер В),enzyme. The fractions containing the recryctase activity are combined and dialyzed against 2 liters of 0.02 M potassium phosphate buffer, pH 7.5, containing M / 3-mercapto ethanol and M EDTA (buffer B),
мен буфер дважды. Диализат нанос т на колонку объемом 50 мл с ДЕАЕ-целлюлозой, уравновешенную буфером В. Колонку промывают буфером В и адсорбированный фермент элюируют 500 мл градиента NaCIchange buffer twice. Dialysate was applied to a 50 ml column with DEAE cellulose, equilibrated with buffer B. The column was washed with buffer B and the adsorbed enzyme was eluted with 500 ml of NaCI gradient
(0,1-ОМ) в буфере В. Колонку промывают буфером В и адсорбированный фермент элюируют 500 мл градиента NaCI (0,1-ОМ) в буфере В. Фракции, элюированные при 0,40-0,55 М NaCI, содержащие рестриктазу,(0,1-OM) in buffer B. The column is washed with buffer B and the adsorbed enzyme is eluted with 500 ml of NaCI gradient (0.1-OM) in buffer B. Fractions eluted at 0.40-0.55 M NaCI containing restrictase ,
объедин ют и диализуют против 2 л буфера В, мен его дважды. Фермент после диализа нанос т на колонку с фосфоцеллюлозой Р-11 объемом 20 мл, уравновешенную буфером В. Элюацию фермента провод т 300 млcombine and dialyze against 2 L of buffer B, changing it twice. The enzyme after dialysis is applied to a 20 ml phosphocellulose P-11 column, equilibrated with buffer B. The enzyme is eluted with 300 ml
градиента NaCI (0-1,ОМ) в буфере В. Фракции , содержащие максимальную активность рестриктазы, элюируемые при 0,66-0,7 М NaCI, объедин ют и диализуют против буфера В, содержащего 0,1 М NaCI и 50% глицерина ,NaCl gradient (0-1, OM) in buffer B. Fractions containing the maximum activity of restrictase, eluted at 0.66-0.7 M NaCl, are combined and dialyzed against buffer B containing 0.1 M NaCl and 50% glycerol ,
За единицу активности принимают минимальное количество фермента, необходимого дл полного расщеплени 1 мкг ДНК фага А в течение 1 ч при 50°С. ФерментныйPer unit of activity, the minimum amount of enzyme necessary for complete cleavage of 1 µg of phage A DNA for 1 hour at 50 ° C is taken. Enzyme
препарат хранитс при -20°С. Выход фермента 10000 ед./r биомассы, активность 10000 ед./мл.the preparation is stored at -20 ° C. The output of the enzyme is 10,000 units / r of biomass, the activity is 10,000 units / ml.
Дл определени последовательности нуклеотидов, узнаваемой рестриктазой Bss TI, провод т гидролиз ДНК фага ре- стриктазами Bss TI и Sty I по отдельности, а также совместный гидролиз этими рестрик- тазами. Наблюдаема картина полного совпадени фрагментов, полученных при гидролизе ДНК рестриктазами Bss TI и Sty I порознь и совместно, указывает на то, что рестриктаэа Bss TI вл етс изомером Sty I, узнает и расщепл ет последовательность CC(A/TXA/T)GG,.To determine the sequence of nucleotides recognized by the Bss TI restriction enzyme, the DNA of the phage is restricted by the Bss TI and Sty I restriction enzymes separately, as well as the joint hydrolysis with these restrictases. The observed picture of the complete coincidence of fragments obtained during DNA hydrolysis with Bss TI and Sty I restriction enzymes separately and together indicates that the Bss TI restriction enzyme is an isomer of Sty I, recognizes and cleaves the CC sequence (A / TXA / T) GG ,.
00
Полученный штамм обладает следующими преимуществами по сравнению с известным: растет на более доступной, дешевой среде без антибиотиков, обеспечивает повышенный выход рестриктазы BssTI.The resulting strain has the following advantages compared with the known one: it grows on a more affordable, cheap medium without antibiotics, provides an increased yield of BssTI restrictase.
Поскольку рестриктаза Bss TI имеет сайт узнавани CC(A/TXA/T)GG, идентичный сайту узнавани Sty I, она может заменить Sty I в экспериментах по фрагментации ДНК А по этим сайтам.Since the Bss TI restriction enzyme has a CC (A / TXA / T) GG recognition site, identical to the Sty I recognition site, it can replace Sty I in DNA fragmentation experiments on these sites.
Claims (1)
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| SU894768118A SU1686000A1 (en) | 1989-12-11 | 1989-12-11 | Strain of bacteria bacillus stearothermophilus - a producer of restrictase bss ti |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| SU894768118A SU1686000A1 (en) | 1989-12-11 | 1989-12-11 | Strain of bacteria bacillus stearothermophilus - a producer of restrictase bss ti |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| SU1686000A1 true SU1686000A1 (en) | 1991-10-23 |
Family
ID=21484142
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| SU894768118A SU1686000A1 (en) | 1989-12-11 | 1989-12-11 | Strain of bacteria bacillus stearothermophilus - a producer of restrictase bss ti |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| SU (1) | SU1686000A1 (en) |
-
1989
- 1989-12-11 SU SU894768118A patent/SU1686000A1/en active
Non-Patent Citations (1)
| Title |
|---|
| Roberts R.T. Restrictions enzymes and their isoschlzomers. - Nucl. Acids Res., 1988, v. 16, p. 271-313. Mfse K. and NakaJIma K. Purification of a new restriction endonuclease, Sty I, from Escherlchla coll carrejlng hsd mlnlplasmid, - Jene, 1985, v. 33, p. 357-361. * |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| US4774179A (en) | Process for preparing a 7-aminocephalosporanic acid compound | |
| US5702939A (en) | Glucosamine-6-phosphate deaminase and process for producing the same | |
| SU1686000A1 (en) | Strain of bacteria bacillus stearothermophilus - a producer of restrictase bss ti | |
| SU1124889A3 (en) | Method of obtaining n-carbamyl phenylglycine derivatives | |
| US4425432A (en) | Propagation of microbial cells on single carbon products | |
| JP3235904B2 (en) | Thermostable mannose isomerase, method for producing the same, and method for producing mannose using the same | |
| DK158316B (en) | METHOD FOR PREPARING 3-SUBSTITUTED 7-AMINO-3-CEPHEM-4-CARBOXYLIC ACID DERIVATIVES | |
| SU1645300A1 (en) | Streptomyces fradiae strain: producer of restrictase sfr 1 | |
| US3826715A (en) | Novel amylase and process for preparing the same | |
| SU1645293A1 (en) | Strain bacteria streptococcus faecalis - is a producer of restrictase sfa n | |
| SU1659480A1 (en) | Strain of bacterium klebsiella pneumoniae - a producer of restrictase kpn 378 1 | |
| SU1689400A1 (en) | Strain of bacteria flavobacterium balustinum - a producer of restrictase fbei | |
| IL112506A (en) | Enzymatic acylation of 3-hydroxy-methylcephalosporins | |
| CA1159783A (en) | Process for producing 6-aminopenicillanic acid and 6-aminopenicillanic acid s-oxide | |
| JPH08275776A (en) | Novel chitinase and method for producing the same | |
| RU2077577C1 (en) | Strain of bacterium deleya marina - a producer of alkaline phosphatase and a method of alkaline phosphatase preparing | |
| SU1650697A1 (en) | The strain of bacteria BacILLUS LI сННI FоrmIS - producing restrictase B @ 13I | |
| US5731184A (en) | Process for producing N-acetyl-D-glucosamine deacetylase | |
| JPS6243677B2 (en) | ||
| SU1449583A1 (en) | Strain of bacillus subtilis bacteria as producer of restriction endonuclease bsu 151 | |
| SU1724689A1 (en) | Method for preparation of restriction endonuclease, recognizing and splitting the nucleotide sequence 5ъtgatca3ъ | |
| SU1631080A1 (en) | Strain of bacteria bacilius megaterium - producer of restrictase bme 361 i | |
| SU1705347A1 (en) | Strain of bacteria escherichia coli for @@@-deoxyadenosine preparation | |
| SU1440919A1 (en) | Strain of kurthia zopfii bacteria as producer of restrictive endonuclease | |
| RU2001952C1 (en) | Strain of bacterium rhizobium leguminosarum - a producer of restriction endonuclease rle 691 |