SU1204197A1 - Method of recovery of nerve trunk - Google Patents
Method of recovery of nerve trunk Download PDFInfo
- Publication number
- SU1204197A1 SU1204197A1 SU843772135A SU3772135A SU1204197A1 SU 1204197 A1 SU1204197 A1 SU 1204197A1 SU 843772135 A SU843772135 A SU 843772135A SU 3772135 A SU3772135 A SU 3772135A SU 1204197 A1 SU1204197 A1 SU 1204197A1
- Authority
- SU
- USSR - Soviet Union
- Prior art keywords
- nerve
- vessel
- lumen
- fibers
- trunk
- Prior art date
Links
- 210000005036 nerve Anatomy 0.000 title claims description 48
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims description 21
- 238000011084 recovery Methods 0.000 title description 2
- 230000008929 regeneration Effects 0.000 claims description 9
- 238000011069 regeneration method Methods 0.000 claims description 9
- 239000003292 glue Substances 0.000 claims description 8
- 239000012528 membrane Substances 0.000 claims description 2
- 210000004126 nerve fiber Anatomy 0.000 description 16
- 241001465754 Metazoa Species 0.000 description 8
- 238000002054 transplantation Methods 0.000 description 7
- 239000012981 Hank's balanced salt solution Substances 0.000 description 6
- 230000015572 biosynthetic process Effects 0.000 description 6
- 210000002808 connective tissue Anatomy 0.000 description 6
- 239000000835 fiber Substances 0.000 description 6
- 241000700159 Rattus Species 0.000 description 5
- 210000004027 cell Anatomy 0.000 description 4
- 230000001172 regenerating effect Effects 0.000 description 4
- 210000003497 sciatic nerve Anatomy 0.000 description 4
- 210000000709 aorta Anatomy 0.000 description 3
- 210000003007 myelin sheath Anatomy 0.000 description 3
- RTZKZFJDLAIYFH-UHFFFAOYSA-N Diethyl ether Chemical compound CCOCC RTZKZFJDLAIYFH-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 102000006386 Myelin Proteins Human genes 0.000 description 2
- 108010083674 Myelin Proteins Proteins 0.000 description 2
- BQCADISMDOOEFD-UHFFFAOYSA-N Silver Chemical compound [Ag] BQCADISMDOOEFD-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 208000027418 Wounds and injury Diseases 0.000 description 2
- 210000000577 adipose tissue Anatomy 0.000 description 2
- 210000002376 aorta thoracic Anatomy 0.000 description 2
- 210000002565 arteriole Anatomy 0.000 description 2
- 210000001736 capillary Anatomy 0.000 description 2
- 239000006285 cell suspension Substances 0.000 description 2
- 230000006378 damage Effects 0.000 description 2
- 238000010494 dissociation reaction Methods 0.000 description 2
- 230000005593 dissociations Effects 0.000 description 2
- 210000002257 embryonic structure Anatomy 0.000 description 2
- 238000002474 experimental method Methods 0.000 description 2
- 210000003414 extremity Anatomy 0.000 description 2
- 230000001744 histochemical effect Effects 0.000 description 2
- 210000003090 iliac artery Anatomy 0.000 description 2
- 238000005470 impregnation Methods 0.000 description 2
- 210000005012 myelin Anatomy 0.000 description 2
- 210000003666 myelinated nerve fiber Anatomy 0.000 description 2
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 description 2
- 230000008439 repair process Effects 0.000 description 2
- 229910052709 silver Inorganic materials 0.000 description 2
- 239000004332 silver Substances 0.000 description 2
- 210000002460 smooth muscle Anatomy 0.000 description 2
- 239000000243 solution Substances 0.000 description 2
- 230000002792 vascular Effects 0.000 description 2
- 210000000264 venule Anatomy 0.000 description 2
- ZCYVEMRRCGMTRW-UHFFFAOYSA-N 7553-56-2 Chemical compound [I] ZCYVEMRRCGMTRW-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 206010002091 Anaesthesia Diseases 0.000 description 1
- 102000009123 Fibrin Human genes 0.000 description 1
- 108010073385 Fibrin Proteins 0.000 description 1
- BWGVNKXGVNDBDI-UHFFFAOYSA-N Fibrin monomer Chemical compound CNC(=O)CNC(=O)CN BWGVNKXGVNDBDI-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 239000004677 Nylon Substances 0.000 description 1
- 241000283973 Oryctolagus cuniculus Species 0.000 description 1
- YCUVUDODLRLVIC-UHFFFAOYSA-N Sudan black B Chemical compound C1=CC(=C23)NC(C)(C)NC2=CC=CC3=C1N=NC(C1=CC=CC=C11)=CC=C1N=NC1=CC=CC=C1 YCUVUDODLRLVIC-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 206010046996 Varicose vein Diseases 0.000 description 1
- 230000001154 acute effect Effects 0.000 description 1
- 230000037005 anaesthesia Effects 0.000 description 1
- 238000010171 animal model Methods 0.000 description 1
- 210000003050 axon Anatomy 0.000 description 1
- 210000004204 blood vessel Anatomy 0.000 description 1
- 210000003461 brachial plexus Anatomy 0.000 description 1
- 230000001413 cellular effect Effects 0.000 description 1
- 239000004020 conductor Substances 0.000 description 1
- 230000003247 decreasing effect Effects 0.000 description 1
- 230000007547 defect Effects 0.000 description 1
- 238000010586 diagram Methods 0.000 description 1
- 230000004069 differentiation Effects 0.000 description 1
- 239000003814 drug Substances 0.000 description 1
- 210000004177 elastic tissue Anatomy 0.000 description 1
- 210000002889 endothelial cell Anatomy 0.000 description 1
- 210000003195 fascia Anatomy 0.000 description 1
- 210000003191 femoral vein Anatomy 0.000 description 1
- 229950003499 fibrin Drugs 0.000 description 1
- 230000035784 germination Effects 0.000 description 1
- 210000004907 gland Anatomy 0.000 description 1
- 239000011521 glass Substances 0.000 description 1
- PCHJSUWPFVWCPO-UHFFFAOYSA-N gold Chemical compound [Au] PCHJSUWPFVWCPO-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 229910052737 gold Inorganic materials 0.000 description 1
- 239000010931 gold Substances 0.000 description 1
- 210000004209 hair Anatomy 0.000 description 1
- 230000008595 infiltration Effects 0.000 description 1
- 238000001764 infiltration Methods 0.000 description 1
- 230000002757 inflammatory effect Effects 0.000 description 1
- 208000014674 injury Diseases 0.000 description 1
- 229910052740 iodine Inorganic materials 0.000 description 1
- 239000011630 iodine Substances 0.000 description 1
- 210000000629 knee joint Anatomy 0.000 description 1
- 210000002540 macrophage Anatomy 0.000 description 1
- 239000011700 menaquinone-7 Substances 0.000 description 1
- 230000023105 myelination Effects 0.000 description 1
- 235000015097 nutrients Nutrition 0.000 description 1
- 229920001778 nylon Polymers 0.000 description 1
- 210000001428 peripheral nervous system Anatomy 0.000 description 1
- 150000003904 phospholipids Chemical class 0.000 description 1
- 238000004321 preservation Methods 0.000 description 1
- 230000008569 process Effects 0.000 description 1
- ABBQGOCHXSPKHJ-WUKNDPDISA-N prontosil Chemical compound NC1=CC(N)=CC=C1\N=N\C1=CC=C(S(N)(=O)=O)C=C1 ABBQGOCHXSPKHJ-WUKNDPDISA-N 0.000 description 1
- 210000000329 smooth muscle myocyte Anatomy 0.000 description 1
- 230000002269 spontaneous effect Effects 0.000 description 1
- 230000000638 stimulation Effects 0.000 description 1
- 239000000758 substrate Substances 0.000 description 1
- 229950008188 sulfamidochrysoidine Drugs 0.000 description 1
- 238000001356 surgical procedure Methods 0.000 description 1
- 230000007704 transition Effects 0.000 description 1
- 210000000689 upper leg Anatomy 0.000 description 1
- 208000027185 varicose disease Diseases 0.000 description 1
- 238000005303 weighing Methods 0.000 description 1
Landscapes
- Materials For Medical Uses (AREA)
- Prostheses (AREA)
Description
1one
Изобретение относитс к меди1щне, а именно к нейрохирургии, и может быть использовано при леч ении травм периферической нервной системы.The invention relates to medicament, namely neurosurgery, and can be used in the treatment of injuries of the peripheral nervous system.
Целью изобретени вл етс ускоре- ниё восстановлени целостности поврежденного нервного ствола и достижение полноты регенерации его нервных волокон.The aim of the invention is to accelerate the restoration of the integrity of the damaged nerve trunk and to achieve complete regeneration of its nerve fibers.
На чертеже представлена схема методики соединени концов нерва с трансплантат ом.The drawing shows a diagram of the procedure for connecting the nerve ends to the transplant ohm.
Сущность предлагаемого способа, заключаетс в следующем.The essence of the proposed method is as follows.
Предварительно, перед операцией, приготовл ют гомогенат леммоцитов из нервных стволов от эмбриональных или взрослых животных. У животного донора выдел ют аорту, из нее вырезают кусочки сосудов, соответствующие по калибру диаметру оперируемого нервного ствола, и до операции помещают в питательную среду. У оперированного животного удал ют кусочек нерва, создава тем самым дефект . Один из концов нерва вт гивают в просвет подготовленного дл трансплантации сосуда и фиксируют клеем, а в противоположное отверс- .тие транплантата ввод т предварительно приготовленный гомогенат леммоцитов . После этого другой конец поврежденного нерва ввод т в транс- гшантированньш сосуд и тоже фиксируют клеем.Before surgery, a homogenate of lemmocytes was prepared from nerve trunks from embryonic or adult animals. The aorta is isolated from the animal donor, pieces of vessels are cut out from it, corresponding to the caliber of the diameter of the operated nerve trunk, and placed in a nutrient medium before the operation. In the operated animal, a piece of nerve is removed, thereby creating a defect. One of the ends of the nerve is drawn into the lumen of the vessel prepared for transplantation and fixed with glue, and a previously prepared homogenate of lemmocytes is introduced into the opposite opening of the transplant. Thereafter, the other end of the damaged nerve is inserted into a transgendered vessel and also fixed with glue.
Благодар тому, что в качестве трансплантата используют артериальный сосуд, обладающий достаточной эластичностью и толстой гладкомы- шечной с тенкой, его просвет сохран етс и диаметр остаетс равномерным на всем прот жении, что способствует свободному и беспреп тственному росту нервных волокон от проксимального до дистального конца. Соответствие диаметра просвета сосуда калибру нервного ствола обеспечивает также полноту восстановлени нервного ствола . Как показали исследовани , наличие в просвете артериального сосуда гомогената леммоцитов ускор ет формирование леммоцит-аксонных взаимоотношений и стимулирует более быстрое образование нервных волокон. Отсутствие шва продотвращает образование микроневром, а также ускор ет рост регенерирующих нервных волокон по просвету сосуда.Due to the fact that an arterial vessel with sufficient elasticity and a thick musculoskeletal gland with a teat is used as a graft, its lumen is maintained and the diameter remains uniform throughout, which promotes free and unhindered growth of nerve fibers from the proximal to the distal end. Correspondence of the diameter of the vessel lumen to the caliber of the nerve trunk also ensures complete restoration of the nerve trunk. Studies have shown that the presence of a lemmocyte homogenate in the arterial lumen accelerates the formation of lemmocyte-axon relationships and stimulates the faster formation of nerve fibers. The absence of a suture promotes the formation of microneurus, and also accelerates the growth of regenerating nerve fibers along the lumen of the vessel.
1204197212041972
Пример, Дл успешного выполнени способа необходимо приготовить гомогенат леммоцитов и артериальные сосуды дл трансплантации, а такжеExample, For the successful implementation of the method, it is necessary to prepare a homogenate of lemmocytes and arterial vessels for transplantation, as well as
5 иметь методику бесшовного соединени концов поврежденного нерва с трансплантированным сосудом,5 to have the technique of seamless connection of the ends of the damaged nerve with the transplanted vessel,
Гомогенат леммоцитов приготавливают следующим образом. ВыделенныеLemmocyte homogenate is prepared as follows. Highlighted
10 нервные стволы от 20-дневных эмбрионов или от новорожденных животных (линейные или беспородные крысы) помещали в стерильных услови х в небольшой объем (1 мл) раствора Хенкса10 nerve trunks from 20-day embryos or from newborn animals (linear or outbred rats) were placed under sterile conditions in a small volume (1 ml) of Hanks solution.
15 или среду Игла на часовом стекле и подвергали механической диссоциации. Под бинокул рным микроскопом МБС-1 с помощью двух тонких т нцет-ов и двух разломанных под острым углом безопас20 ных бритв размельчали нервы до мелких конгломератов, а затем производили многократное пипетирование до получени клеточной суспензии,15 or Wednesday Needle on the watch glass and subjected to mechanical dissociation. Under a MBS-1 binocular microscope, the nerves were divided into two small thin toothpipes and two safety razors broken at an acute angle, and then the nerves were crushed to small conglomerates, and then multiple pipetting was performed to obtain a cell suspension.
Дл этой же цели в другом случаеFor the same purpose in another case
25 в стерильных услови х брали нервные стволы плечевого сплетени и седалищные нервы от новорожденных животных , культивировали их в течение 4-6 сут на фибриновой подложке в25 under sterile conditions, the nerve trunks of the brachial plexus and the sciatic nerves from newborn animals were taken, cultivated for 4-6 days on a fibrin substrate in
30 среде Игла при 37°С, а затем описан-. ,ным механическим способом диссоциации размельчали их до клеточной суспензии и оставл ли в термостате при30 medium Needle at 37 ° C, and then described. mechanically, the dissociation was crushed to a cell suspension and left in a thermostat at
3535
4040
37 С в небольшом объеме раствора Хенкса или среды Игла до начала операции .37 C in a small volume of Hanks solution or Eagle's medium before the operation.
. Дл приготовлени артериальных сосудов дл трансплантации нисход щую часть аорты от 1-2 крыс-доноров препарировали вплоть до подвздошных артерий , . помещали в раствор Хенкса в чашки Петри и очищали там от адвен- тациальной оболочки (при достаточном опыте с помощью 2 пинцетов последн легко снимаетс чулком). После этого очищенную от рьпшой соединительной ткани и жировой кл етчатки аорту переносили в свежий раствор Хенкса, где она рассекалась на 3-4 части длиной. For the preparation of arterial vessels for transplantation, the descending aorta from 1-2 donor rats was prepared up to the iliac arteries,. placed in Hanks solution in Petri dishes and cleaned from the adventitia sheath there (with sufficient experience with 2 tweezers, the latter can be easily removed with a stocking). After that, the aorta, cleaned of rye connective tissue and adipose tissue, was transferred to Hanks fresh solution, where it was dissected into 3-4 parts
- 1,0-1,5 см. Чем больше зыделенных кусочков, тем легче при операции подобрать из них сосуд нужного диаметра , соответствующий диаметру седалищного нерва, что важно дл успеш55 кого выполнени способа и получени хороших результатов. Подготовленные таким образом дл трансплантации сосуды до операции оставались в раст- 1.0-1.5 cm. The larger the separated pieces, the easier it is for the operation to select from them a vessel of the desired diameter corresponding to the diameter of the sciatic nerve, which is important for successful implementation of the method and obtaining good results. The vessels prepared in this way for transplantation remained in growth until the operation.
37 С в небольшом объеме раствора Хенкса или среды Игла до начала операции .37 C in a small volume of Hanks solution or Eagle's medium before the operation.
. Дл приготовлени артериальных сосудов дл трансплантации нисход щую часть аорты от 1-2 крыс-доноров препарировали вплоть до подвздошных артерий , . помещали в раствор Хенкса в чашки Петри и очищали там от адвен- тациальной оболочки (при достаточном опыте с помощью 2 пинцетов последн легко снимаетс чулком). После этого очищенную от рьпшой соединительной ткани и жировой кл етчатки аорту переносили в свежий раствор Хенкса, где она рассекалась на 3-4 части длиной. For the preparation of arterial vessels for transplantation, the descending aorta from 1-2 donor rats was prepared up to the iliac arteries,. placed in Hanks solution in Petri dishes and cleaned from the adventitia sheath there (with sufficient experience with 2 tweezers, the latter can be easily removed with a stocking). After that, the aorta, cleaned of rye connective tissue and adipose tissue, was transferred to Hanks fresh solution, where it was dissected into 3-4 parts
1,0-1,5 см. Чем больше зыделенных кусочков, тем легче при операции подобрать из них сосуд нужного диаметра , соответствующий диаметру седалищного нерва, что важно дл успешкого выполнени способа и получени хороших результатов. Подготовленные таким образом дл трансплантации сосуды до операции оставались в растворе Хенкса или среде Игла в термо- стате. Сосуды дл трансплантации использовались не только от линейны и беспородных крыс, но и от кроликов . Во всех случа х были получены положительные результаты.1.0-1.5 cm. The more pieces that have been isolated, the easier it is for the operation to select from them a vessel of the desired diameter corresponding to the diameter of the sciatic nerve, which is important for successful implementation of the method and obtaining good results. The vessels prepared in this way for transplantation remained in the Hanks solution or the Eagle medium in the thermostat before the operation. Transplants were used not only from linear and outbred rats, but also from rabbits. In all cases, positive results were obtained.
Методика бесшовного соединени концов поврежденного нерва с трансплантированным сосудом следующа .The technique of seamless connection of the ends of the damaged nerve with the transplanted vessel is as follows.
У животного-реципиента под намбу- таловым наркозом с правой стороны конечности , вьше одной трети от коленного сустава, производили эпил цию и разрез кожи. Тупой стороной скальпел раздвигали соединительнотканые фасции и мьшцы бедра, огол ли седалищный нерв и лезвием безопасной бритвы экстирпировали его кусочек длиной 5-8 мм. Секци производилась на ровной поверхности пастеровской дерев нной палочки, подведенной под нерв. Далее осуществл ли бесшовное соединение концов поврежденного нервного ствола с помощью трансплантированного артериального сосуда донора по отработанной методике.In a recipient animal, under numbutal anesthesia on the right side of the limb, more than one third of the knee joint, epilation and skin incision were made. The blunt side of the scalpel was moved apart by connective tissue fascias and thighs, the sciatic nerve was exposed and a safety razor was extirpated with a 5–8 mm long razor blade. The section was made on a flat surface of a Pasteur wooden rod, connected under the nerve. Next, a seamless connection of the ends of the damaged nerve trunk was carried out using a transplanted blood vessel of the donor according to an established procedure.
К проксимальному концу нерва прив зывали одним узлом тонкую нейлоновую нитку с пр мой иглой, продевали ее через просвет сосуда и вт гива надевали полностью сосуд на прокси- мальньй отрезок так, что его конец с ниткой высовывалс с противоположной стороны. Отрезали этот маленький кусочек вместе с узелком, подт гивал и сосуд наружу у так чтобы в его просвете оставалс только кончик нерва 1,5-2,0 мм длиной.Остальна часть просвета была свободной, и в этот открытый конец сосуда с помощью пипетки или шприцом вводили гомогенат леммоцитов, вьщеленньк из нервов. Затем нитку с иглой прив зывали (только слегка) к дистально- му отрезку нерва, прокалывали иглой стенку сосуда у самого кра и, протаскива нитку, вт гивали дисталь- ный конец нерва в просвет. После нат жени нитка легко разв зывалась и вытаскивалась через стенку без какого-либо повреждени последней. Таким образом, небольшие концы нерва по 1,5-2,0 мм оказывались загспю- ченными с обех сторон в просвете сосуда. Рассто ние между ними было 5-8 мм. Во избежание самопроизвольного выпадени или выхода концов из трансплантированного сосуда кра стенки сосуда фиксироваши с эпиневральньгмл оболочками хирургическим цианакриловым клеем МК-7. Важно, чтобы клей не втекал внутрь просвета сосуда. Поэтому необходимо заранее подбирать сосуды с диаметром , соответствующим диаметру оперируемого нерва. Клей непосредственно из тюбика наносили на место соединени в небольшом количестве (1-2 маленькие капли). Дл высыхани кле требуетс 1-2 мин, после чего рану послойно зашивали, поверхность ее обрабатывали йодом и засыпали стрептоцидом .A thin nylon thread with a straight needle was threaded to the proximal end of the nerve, passed through the lumen of the vessel and retractedly put the vessel on the proximal segment so that its end was sticking out from the opposite side. This small piece was cut off along with the bundle, and the vessel was pulled out so that only the tip of the nerve 1.5-2.0 mm in length remained in its lumen. The rest of the lumen was free, and into this open end of the vessel with a pipette or syringe. lemmocyte homogenate injected from all nerves. Then the thread with the needle was tied (only slightly) to the distal segment of the nerve, the needle was pierced through the wall of the vessel near the rim, and, pulling the thread, the distal end of the nerve was pulled into the lumen. After tensioning, the thread was easily broken and pulled out through the wall without any damage to the latter. Thus, the small ends of the nerve 1.5-2.0 mm each turned out to be constricted from both sides in the lumen of the vessel. The distance between them was 5-8 mm. In order to avoid spontaneous loss or exit of the ends from the transplanted vessel, the edges of the vessel wall are fixed with epineural membranes with surgical cyanacrylate glue MK-7. It is important that the glue does not flow into the lumen of the vessel. Therefore, it is necessary to select in advance vessels with a diameter corresponding to the diameter of the operated nerve. Glue was applied directly from the tube to the joint in a small amount (1-2 small drops). It takes 1-2 minutes to dry the glue, after which the wound was stitched in layers, treated with iodine and covered with streptocide.
Опыты проведены на .150 крысах- самцах Вистар и беспородных живот- массой 150-250 г. Подопытных животных умервщп ли этиловым эфиромThe experiments were carried out on .150 rats - Wistar males and outbreds with animals weighing 150-250 g. Experimental animals were killed with ethyl ether
в сроки 20,30,90, 180 и 270 днейin terms of 20.30, 180, and 270 days
после операции. Нервы вместе с трансплантированным сосудами извлекали и исследовали с помощью нейрогисто- логических и общегистологическихafter operation. The nerves, together with the transplanted vessels, were removed and examined with the help of neurohistological and general histological
методик (импрегнаци серебром по Бильшовскому-Грос, гематоксилин- эозин, азур 11-эозин). Дл вы влени миелиновых оболочек, отражающих степень зрелости и уровень дифференцировки нервных волокон, примен ли гистохимические методики на фосфолипиды: метод Беккера и Судан черньй.methods (silver impregnation according to Bilshovsky-Gros, hematoxylin-eosin, azure 11-eosin). Histochemical techniques for phospholipids were used to detect the myelin sheaths, reflecting the degree of maturity and the level of differentiation of nerve fibers: the method of Becker and Sudan Cherni.
Результаты исследований показали, что регенераци нервов по трансплантированным артериальным сосудам в отличие от венозных по известному способу проходила иначе и значительно быстрее. Через 20 дней между соResearch results showed that nerve regeneration through transplanted arterial vessels, in contrast to venous ones, according to a known method, proceeded differently and much faster. After 20 days between
судистым трансплантатом и нервными культ ми наблюдалс непрерывный переход .формирунщейс соединительной ткани с поверхности нерва на поверхность стенки сосуда. Гистологический анализ показал в большинстве случаев хорошую сохранность гладкомышечной стенки сосуда и отсутствие в ней воспалительных элементов. Незначительна инфильтраци лимфоидными элементами обнаруживалась в основном только в местах соединени нерва с трансплантатом, где был во врем операции апплицирован клей. В просвете сосуда наблюдалось большое коли- чество разнообразных клеточных элементов (леммоцитов, макрофагов, эн- дотелиальных клеток). 1аиболее хоро шо идентифицировались леммоциты,A continuous transition of the forming connective tissue from the surface of the nerve to the surface of the vessel wall was observed by the suft transplant and the nerve cults. Histological analysis in most cases showed good preservation of the smooth muscle wall of the vessel and the absence of inflammatory elements in it. Minor lymphoid infiltration of the elements was detected mainly only in the places where the nerve and the graft were connected, where glue was applied during the operation. A large number of various cellular elements (lemmocytes, macrophages, endothelial cells) were observed in the lumen of the vessel. The most well-known lemmocytes,
5120451204
которые находились в просвете сосу- да между проксимальным и дистальным концами нерва в виде толСтых и тонких т жей и сетей.Среди массы клеток, ближе к сосудистой стенке, встреча- 5 лись вновь образованные с широкими просветами капилл ры синусоидного типа. С помощью импрегнации серебром в этот срок внутри т жей леммо- цитов вьивл лось -большое количест- Юwhich were located in the lumen of the vessel between the proximal and distal ends of the nerve in the form of thick and thin wires and nets. Among the cell masses, closer to the vascular wall, there were 5 newly formed capillary sinusoidal cells with wide gaps. With the help of silver impregnation, within this period, within the shells of lemocytes, there was a large amount of gold.
зо тонких б езм котных диффузно распоa lot of fine baseballs are diffusely distributed
ложенных регенерирующих нервных волокон диаметром 0,5-1,0 мкм. Многие из них ориентированы вдоль просвета сосуда. Часть волокон дихотомически 15 делилась. По ходу некоторых проводников вы вл лись варикозные расширени ,, характерные дл растущих молодых волокон.Плотность регенерируклцих нервных волокон в просвете сосуда не- 20 одинакова и уменьшалась в дисталь- ном направлении. Уже на этом раннем строке часть тонких пучков безм котных- нервных волокон прорастала через весь просвет трансплантата и, вступа в 5 ди стальный ствол, прослеживалась в нем на некотором прот жении (по известному способу через 20 дней рост нервнь1х волокон отсутствовал )30regenerated nerve fibers with a diameter of 0.5-1.0 microns. Many of them are oriented along the vessel lumen. Part of the fibers dichotomously 15 shared. In the course of some conductors, varicose veins, characteristic of growing young fibers, were revealed. The density of regenerated nerve fibers in the lumen of the vessel is not the same and decreased in the distal direction. Already on this early line, part of the thin bundles of cordless-nerve fibers germinated through the entire lumen of the graft and, entering the 5th distal trunk, was traced in it for some time (by a known method after 20 days there was no growth of nervous fibers)
Через 30 сут трансплантированный сосуд имел такой же диаметр, что и до операции, и не спадалс . В его стенке отчетливо различались жизнеспособные гладкомьшечные клетки и 35 эластические волокна. В просвете равномерно, на всем прот жении от проксимального до дистального участков нерва располагались многочисленные , разреженные пучки нервных воло- 40 кон,- часть из которых росла по спирали , а часть - в пр молинейном направлении . Между пучками имелись уже тонкие новообразованные сосуды: ар- териолы, венулы и капилл ры. Диаметр основной массы нервных волокон в этот период по сравнению с предьщу- а(им сроком увеличилс до 1,5- 2,0 мкм за счет начала образовани вокруг аксонов миелиновых оболочек, которые четко вы вл лись с помощью гистохимических методик по Беккеру и Суданом черным. Тонкие миелини-зи- рованные нервные волокна наблюдались на значительном прот жении в р;истальном отрезке нервного ствола (по известному способу в этот срок наблюдалось только начало ростаAfter 30 days, the transplanted vessel had the same diameter as before the operation and did not subside. In its wall, viable smooth cone cells and 35 elastic fibers were clearly distinguished. In the lumen, evenly, along the entire length from the proximal to the distal parts of the nerve, there were numerous, rarefied bundles of nerve hairs — a con — some of which grew in a spiral, and some in a straight line. Between the bundles, there were already thin newly formed vessels: arterioles, venules, and capillaries. The diameter of the main mass of nerve fibers during this period as compared to the previous one (it increased to 1.5-2.0 µm due to the onset of formation of myelin sheaths around axons, which were clearly revealed using histochemical methods according to Becker and Sudan black Thin myelinated nerve fibers were observed for a considerable period in p; the true segment of the nerve trunk (by a known method, only the beginning of growth
4545
5 five
5 five
0 5 00 5 0
5 0 50
5five
19761976
нервных волокон, а миелинизаци еще полностью отсутствовала).nerve fibers, and myelination still completely absent).
Через 90 дней после операции внутри трансплантированного сосуда наблюдалось продолжение процессов регенерации. Весь просвет сосуда от проксимального до дистального концов нерва заполнен массой миелиновых волоконJ Диаметр их составл л 2-4 мкм. Как показали микроскопические исследовани , нервные волокна собраны в многочисленные пучки, которые ближе к стенке сосуда расположены по спирали, а в центральной части сосуда - в пр мом направлении. Между пучками миелиновых волокон в этот срок имелись еще широкие пространства , что свидетельствовало о недостаточной полноте регенерации.90 days after the operation, continued regeneration processes were observed inside the transplanted vessel. The entire lumen of the vessel from the proximal to the distal end of the nerve is filled with a mass of myelin fibers. Their diameter was 2–4 µm. As shown by microscopic studies, the nerve fibers are collected in numerous bundles that are located closer to the vessel wall in a spiral, and in the central part of the vessel - in the forward direction. Between the bundles of myelin fibers during this period there were still wide spaces, which indicated a lack of completeness of regeneration.
Через 180 дней после операции масса регенерирующих нервных пучков резко возросла и значительно уплотнилась как за счет образовани новых и миелинизированных нервных волокон, так и за счет увеличени диаметра формирующихс миелиновых оболочек, подавл ющее число которых достигло 4 мкм (в известном способе така структурна организаци регенерата наблюдалась только на 10-й мес.).180 days after the operation, the mass of regenerating nerve bundles increased dramatically and significantly condensed due to the formation of new and myelinated nerve fibers, as well as due to the increase in the diameter of the forming myelin sheaths, the overwhelming number of which reached 4 µm ( only on the 10th month.).
Через 270 дней (что соответствует 9 мес.после операции) весь объем просвета трансплантированного сосуда настолько плотно заполнилс многочисленными пучками толстых миелини- : зированньсх нервных волокон, что между ними светооптически было трудно вы вить свободные пространства, какие имели место на ранних сроках.After 270 days (which corresponds to 9 months after the operation), the entire volume of the lumen of the transplanted vessel is so densely filled with numerous bunches of thick myelinated: nerve fibers that between them were optically difficult to detect the free spaces that occurred in the early stages.
Между пучками часто встречались хорошо.развитые капилл ры, артерио- лы и венулы, что свидетельствовало о хорошей васкул риз.ации регенерата нерва. Макроскопически регенерат представл л собой органическое единство с проксимальным и дистальным концами. Нервный ствол и регенерат стали единым целым. Таким образом, к 9-му мес целостность поврежденного нервного ствола восстановилась полностью . Однако при микроскопическом, гистологическом изучении и - срок вы вились определенные структурные различи между участками проксимального и дистального ствола и регенератов в просвете сосуда. Они заключались в том, что в проксимальном и дистальном стволах мнеBetween the bundles, well-developed capillaries, arterioles, and venules were often encountered, which indicated good vascular repair of nerve regeneration. Macroscopically, the regenerate was an organic unity with proximal and distal ends. The nerve trunk and regenerate became one. Thus, by the 9th month, the integrity of the damaged nerve trunk was fully restored. However, microscopic, histological, and study revealed certain structural differences between the areas of the proximal and distal stem and the regenerates in the lumen of the vessel. They consisted in the fact that in the proximal and distal trunks to me
иновые нервные волокна имели харак-, тарный дл нормы слегка волнообразный параллельный ход, в то врем , как регенерат имел пучковое строение: многочисленные миелинизирован- j ные волокйа собраны в отдельные плотные пучки, располагающиес в виде плетеной косы. Однако тот акт, что после выхода из трансплантата вс эта масса пучков в дисталь- 10The new nerve fibers had a slightly wavy parallel course, characteristic of the norm, while the regenerate had a beam structure: the numerous myelinated jas were collected in separate dense bundles arranged in the form of a braided spit. However, the act is that after leaving the graft, all this mass of beams in the distal 10
ном участке нерва объединилась в единый ствол с характерным волокнистым строением, как и в норме, вилс убедительным доказательством успешной регенерации и восстановлени 15 целостности всего нерва.The nerve segment of the nerve united into a single trunk with a characteristic fibrous structure, as was normal, with convincing evidence of successful regeneration and restoration of the integrity of the entire nerve.
Трансплантированньй артериальньш сосуд, в просвете которого происходила регенераци нервных волокон, не рассасывалась и не гибла даже 20 через 9 мес после пересадки. В большей части его стенки вы вл лись жизнеспособные гладкомьппечные клетки и эластическа строма. Начина с 3-го месу трансплантированный сосуд окру- 25 жалс эпителиоморфной выстилкой, сходной с периневральной оболочкойThe transplanted arterial vessel, in the lumen of which the regeneration of nerve fibers occurred, did not resolve and did not die even 20 months after transplantation. In most of its walls, viable smooth-muscle cells and an elastic stroma were revealed. Starting from the 3rd month the transplanted vessel is surrounded by an epitheliomorphic lining similar to the perineural envelope.
HepBa. В поздние сроки в этой обоочке образовьшались тонкие венозные и артериальные сосуды, которые одна- 30 ко в гладкомьшечную стенку не проникали .HepBa. In the later periods, thin venous and arterial vessels, which did not penetrate into the smooth muscle wall one or 30 ka, were formed in this obochka.
Сравнива полученные результаты с данными известного способа, отмечаетс , что регенераци поврежденно- 35 го нерва в просвете трансплантированного артериального сосуда в отличие от аутотрансплантированного Comparing the obtained results with the data of a known method, it is noted that the regeneration of the injured 35th nerve in the lumen of a transplanted arterial vessel, in contrast to autotransplanted
нозного сосуда происходит значительно быстрее и достигает более полного восстановлени . В результате спадени стенок венозного аутотрансплантата диаметр регенерата по сравнению с проксимальным и дистальным стволами значительно меньше, что ограничивает Полноту восстановлени целостности нерва. При использовании предлагаемого способа в результате устойчивости к неспадению стенки артериального сосуда диаметр нерва и просвет сосуда остаютс одинаковыми , что и обеспечивает полноту восстановлени целостности нервного ствола. Кроме того, используетс бесшовное соединение, которое не вызывает образование микроневром в просвете артериального сосуда. Дл ускорени и регул ции направлени роста регенерирующих нервных волокон в экспериментах в, Трансплантированньй сосуд вводилс гомогенат клекто-леммоцитов, выделенных от эмбрионов и новорожденных животных, что также способствовало стимул ции регенераторного процесса. При вое-становлении нерва оконечности с помощью аутотрансплантата бедренной вены начало роста регенерирующих нервных волокон по просвету сосуда наблюдали только через мес ц, в то врем как результаты исследований по предложенному способу показали прорастание нервных волокон через весь просвет артериального сосуда от проксимальногодо дистальногоконца уже через 20 сутпосле операции.The nasal vessel occurs much faster and achieves more complete recovery. As a result of the collapse of the walls of the venous autograft, the diameter of the regenerate compared with the proximal and distal trunks is much smaller, which limits the completeness of the restoration of the integrity of the nerve. When using the proposed method, as a result of resistance to failure of the arterial vessel wall, the diameter of the nerve and the lumen of the vessel remain the same, which ensures the complete restoration of the integrity of the nerve trunk. In addition, a seamless connection is used which does not cause the formation of a microneurus in the lumen of the arterial vessel. In order to accelerate and regulate the direction of growth of regenerating nerve fibers in experiments, the Transplanted vessel was injected with a homogenate of cells of the lemmocytes isolated from embryos and newborn animals, which also contributed to the stimulation of the regenerative process. When the nerve of the extremity is formed using autograft of the femoral vein, the beginning of the growth of regenerating nerve fibers through the lumen of the vessel was observed only after a month, while the results of studies using the proposed method showed germination of the nerve fibers through the entire lumen of the arterial vessel from the proximal to the distal end after 20 operations.
TfTTTffTTfTfTTTffTTf
Claims (1)
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| SU843772135A SU1204197A1 (en) | 1984-07-19 | 1984-07-19 | Method of recovery of nerve trunk |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| SU843772135A SU1204197A1 (en) | 1984-07-19 | 1984-07-19 | Method of recovery of nerve trunk |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| SU1204197A1 true SU1204197A1 (en) | 1986-01-15 |
Family
ID=21131285
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| SU843772135A SU1204197A1 (en) | 1984-07-19 | 1984-07-19 | Method of recovery of nerve trunk |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| SU (1) | SU1204197A1 (en) |
-
1984
- 1984-07-19 SU SU843772135A patent/SU1204197A1/en active
Non-Patent Citations (1)
| Title |
|---|
| Григорович К.А. Хирургическое лечение поврежденных нервов. М.; Медицина, 1981. Rosen J.M. Kapfan E.N. Jewtt D.L. Suture and suturefess methods of repairing experimenta P nerve injuries. In: Nerve Repair and Regeneration: its cfinica and experimental basis. Ed D.L. Jewett H.Ret- ton Me Carrotf Jr. The Mosfyc. V.Company, 1980, p.235-242. Громова E.A. Регенераци периферического нерва при замещении его дефекта у кролика свежим и консервированным гомо- и гетеротранс- плантатами. Заболевание, лечение и выздоровление. Труды АМН СССР, 1952, М., с.49-76. Chin D.T.W., Janecka 1., Kri- zek T..J., Wolff M., Lovetase R.E. Autogenous vein graft as conduit for nerve regeneration. - Surgery, ;1982, v .91, № 2, p.226-233. * |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| Seckel et al. | Target-specific nerve regeneration through a nerve guide in the rat | |
| US4759764A (en) | Peripheral nerve regeneration | |
| Sanders et al. | The degeneration and re-innervation of grafted nerves | |
| Owens et al. | Biofabrication and testing of a fully cellular nerve graft | |
| CA1306416C (en) | Stimulation of hair growth | |
| US9820747B2 (en) | Use of epineural sheath grafts for neural regeneration and protection | |
| Das | Neural tranplantation in the spinal cord of adult rats: Conditions, survival, cytology and connectivity of the transplants | |
| Politis et al. | An in vivo assay of neurotropic activity | |
| Glasby et al. | The repair of large peripheral nerves using skeletal muscle autografts: a comparison with cable grafts in the sheep femoral nerve | |
| Weiss et al. | Histomechanical analysis of nerve reunion in the rat after tubular splicing | |
| Abernethy et al. | Neurotropic influence of the distal stump of transected peripheral nerve on axonal regeneration: absence of topographic specificity in adult nerve | |
| Zhan et al. | Tissue engineering by intrinsic vascularization in an in vivo tissue engineering chamber | |
| Pollard et al. | Fresh and predegenerate nerve allografts and isografts in trembler mice | |
| Hoff et al. | Ultrastructural changes of large rabbit blood vessels following mild mechanical trauma | |
| Restrepo et al. | Fascicular nerve graft using an empty perineurial tube: an experimental study in the rabbit | |
| Baumgarten | Infarction in the heart | |
| Galasko et al. | Intrasarcolemmal proliferation of the VX2 carcinoma | |
| Mcgeachie et al. | Vein‐to‐artery grafts: the long‐term development of neo‐intimal hyperplasia and its relationship to vasa vasorum and sympathetic innervation | |
| SU1204197A1 (en) | Method of recovery of nerve trunk | |
| Anderson et al. | Axonal regeneration through arterial grafts | |
| De La Torre et al. | Increased blood flow enhances axon regeneration after spinal transection | |
| Faulkner et al. | Revascularization of skeletal muscle transplanted into the hamster cheek pouch: intravital and light microscopy | |
| Karagoz et al. | Comparison of regeneration results of prefabricated nerve graft, autogenous nerve graft, and vein graft in repair of nerve defects | |
| Rodríguez et al. | Improvement of regeneration with predegenerated nerve transplants in silicone chambers | |
| Costa et al. | Combined polyglycolic acid tube and autografting versus autografting or polyglycolic acid tube alone. A comparative study of peripheral nerve regeneration in rats |