[go: up one dir, main page]

SK181498A3 - Method for producing therapeutic dna, application of plasmid dna for producing a pharmaceutical composition - Google Patents

Method for producing therapeutic dna, application of plasmid dna for producing a pharmaceutical composition Download PDF

Info

Publication number
SK181498A3
SK181498A3 SK1814-98A SK181498A SK181498A3 SK 181498 A3 SK181498 A3 SK 181498A3 SK 181498 A SK181498 A SK 181498A SK 181498 A3 SK181498 A3 SK 181498A3
Authority
SK
Slovakia
Prior art keywords
dna
plasmid
methylated
dinucleotides
plasmid dna
Prior art date
Application number
SK1814-98A
Other languages
English (en)
Inventor
Joel Crouzet
Beatrice Cameron
Original Assignee
Rhone Poulenc Rorer Sa
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Rhone Poulenc Rorer Sa filed Critical Rhone Poulenc Rorer Sa
Publication of SK181498A3 publication Critical patent/SK181498A3/sk

Links

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/10Transferases (2.)
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/10Transferases (2.)
    • C12N9/1003Transferases (2.) transferring one-carbon groups (2.1)
    • C12N9/1007Methyltransferases (general) (2.1.1.)
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K48/00Medicinal preparations containing genetic material which is inserted into cells of the living body to treat genetic diseases; Gene therapy
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09Recombinant DNA-technology
    • C12N15/10Processes for the isolation, preparation or purification of DNA or RNA
    • C12N15/1003Extracting or separating nucleic acids from biological samples, e.g. pure separation or isolation methods; Conditions, buffers or apparatuses therefor

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Crystallography & Structural Chemistry (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Plant Pathology (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
  • Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)
  • Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)

Description

Vynález sa týka prípravy DNA, osobitne plazmidovej DNA. Konkrétne sa týka prípravy DNA bakteriálnych plazmidov, ktoré sa môžu použiť v génovej terapii, ako je plazmid v nadzávitnicovej, relaxovanej kruhovej alebo lineárnej forme, pričom imunogénne vlastnosti takej DNA sú znížené alebo úplne odstránené. Vynález sa týka tiež mikroorganizmov, ktoré sa môžu použiť na prípravu DNA a ďalej sa týka aj farmaceutických prípravkov.
Doterajší stav techniky
Génová terapia spočíva v náprave nedostatku alebo abnormality zavedením genetickej informácie do ovplyvnenej bunky alebo orgánu. Genetická informácia sa môže zaviesť buď in vitro do bunky extrahovanej z orgánu a potom vloženej do tela, alebo in vivo priamo do cieľového tkaniva. Keďže je molekula DNA negatívne nabitá a má vysokú molekulovú hmotnosť, preniká spontánne iba ťažko cez fosfolipidovú bunkovú membránu. Používajú sa preto rôzne vektory, ale tiež prirodzené alebo syntetické chemické alebo biochemické vektory. Vírusové vektory (retrovírusy, adenovírusy, adenoasociované vírusy a pod.) sú veľmi účinné osobitne pri prechode membránou, ale s nimi spojený rad rizík, ako sú patogénne vlastnosti, rekombinácia, replikácia, imunogénne vlastnosti, atď.. Chemické alebo biochemické vektory umožňujú vyhnúť sa týmto rizikám (prehľady pozri Behr 1993, Cotton a Wagner 1993). K takýmto vektorom patria napríklad katióny (fosforečnan vápenatý, DEAE-dextrán, atď.), ktoré pôsobia tak, vytvárajú s DNA zrazeninu, ktorá môže byť potom pohltená bunkou (prostredníctvom fagocytózy). Ďalej sú tu lipozómy, do ktorých je inkorporovaná DNA a ktoré fúzujú s plazmatickou membránou.
Syntetické vektory na prenos génov sú obyčajne katiónové lipidy alebo polyméry, ktoré vytvárajú komplexy s DNA a tvoria tak častice nesúce kladné povrchové náboje. Takéto častice sú schopné interagovať s negatívne nabitou bunkovou membránou a sú schopné ňou prechádzať. Ako príklady takýchto vektorov možno uviesť dioktadecylamidoglycylspermin (DOGS, Transfectam™) alebo N-[1-2,
3-dioleyloxy)propyl]-N,N,N-trimetylamoniumchlorid (DOTMA, Lipofectin™) . Vyvinuli sa tiež chimérne proteíny, ktoré obsahujú polykatiónovú časť, ktorá kondenzuje DNA, spojenú s ligandom, ktorý sa viaže na membránový receptor a umožňuje vznik komplexu v bunke prostredníctvom endocytózy. Takže je aspoň teoreticky možné zacieliť určité tkanivo alebo bunkovú populáciu a tým zlepšiť in vivo biologickú dostupnosť prenášaného génu.
Plazmidy používané v súčasnosti na génovú terapiu obsahujú zvyčajne
I) replikačný počiatok
II) markerový gén ako je napr. gén rezistencie voči antibiotikám (kanamycín, ampicilín a pod.)
III) jeden alebo niekoľko transgénov so sekvenciami nevyhnutnými na ich expresiu (enhancer (t.j. zosilňovač), promótor, polyadenylačný signál, atď.).
Takýto typ plazmidu sa v súčasnosti používa napr. v génovej terapii v klinických štúdiách liečenia melanómu (Nabel a kol. 1992) alebo v iných experimentálnych štúdiách.
Použitie plazmidovej DNA v génovej terapii je však spojené s radom problémov.
Osobitne sa to týka možnosti pripraviť veľké množstvo DNA vo farmakologickej čistote. Pri týchto terapeutických technikách je liečivom v podstate samotná DNA a je preto nevyhnutné vyrobiť DNA v dostatočnom množstve a s takými vlastnosťami, aby bola vhodná na liečebné použitie pre človeka. V tejto súvislosti sa už opísali rôzne spôsoby prípravy alebo purifikácie, umožňujúce zlepšiť kvalitu plazmidovej
FR96/03519).
DNA (pozri PCT/FR95/01468,
Použitie DNA, ktorá nesie gény rezistencie voči antibiotikám alebo funkčné replikačné počiatky môže mať tiež určité nevýhody spojené s možnosťou rozšírenia po celom tele. Vyvinuli sa rôzne spôsoby na obmedzenie týchto nevýhod (pozri PCT/FR96/00274, FR95/102825).
Ďalšia nevýhoda plazmidov spočíva v ich pôvode. Plazmidy sú v podstate molekuly prokaryotických organizmov (baktérií) alebo nižších eukaryotických organizmov (kvasiniek), ktoré nesú motívy, ktoré môžu byť potenciálne imunogénne pre človeka. Pričom imunologické vlastnosti DNA sú v podstate doteraz neznáme. Je známe, že bakteriálna DNA v myši
I) spôsobuje syntézu protilátok, ktoré rozpoznávajú dvojvláknovú a jednovláknovú bakteriálnu DNA, ktorá imunizáciu spôsobila, ale nereagujú s cicavčou dvoj vláknovou DNA, a
II) stimulujú makrofágy a
Immunologic Properties of produkciu cytokínov (D. Pisetsky,
DNA, J. Immunol, 156, 1996, 1).
The
Teda molekuly DNA sú spôsobiť stimuláciu imunogénna (napr. cudzie teleso, sprostredkovanú bunkami). Prvé vyvoláva imunitnú odpoveď Immunol. 147, 1759). Ukázali, i imunogénne. Avšak imunitného makromolekula môže nie pričom sama imunitnú odpoveď bakteriálna DNA systému, ktoré vyvolá dôkazy, že opísali Pisetsky a že DNA z troch bakteriálnych druhov kol. (1991,
J.
môže stimulovať proliferáciu myšacích lymfocytov, zatial čo DNA extrahovaná z troch živočíšnych druhov nespôsobovala takúto stimuláciu. Neskoršie Yamamoto a kol. (1992, Microbiol. Immunol 36, 983) pozorovali, že bakteriálna DNA zo šiestich druhov spôsobovala v bunkách sleziny myši BALB/C zvýšenie aktivity NK (natural killer) buniek a indukciu tvorby interferónu. Avšak DNA izolovaná z desiatich druhov stavovcov nevyvolala žiadnu z týchto odpovedí. Okrem toho Krieg a kol. opísali v r. 1995 (Náture 374, 546), že fragment genómovej DNA z E. coli indukuje
B-buniek sekréciu in vitro proliferáciu myšacích imunoglobulínov IgM, zatiaľ čo tá istá bakteriálna DNA opracovaná in vitro CpG metylázou neindukovala takúto odpoveď. Krieg a kol. tiež ukázali, že v prítomnosti nemetylovanej DNA je vytváraný interf erón-γ, stimuluj úci) B-bunkami zistilo, ktorý pôsobí ako faktor súčasne stimulujúci (kodiferenciáciu B-buniek tým, (Krieg a kol., 1996, J.
že oligonukleotidy na svojom 5'-konci obklopené pyrimidínmi spôsobujú in vivo že moduluje tvorbu IL-6 Immunol., 156, 558). Ďalej sa s nemetylovanými CpG motívmi, 2 purínmi a na svojom 3'-konci 2 koordinovanú sekréciu interleukínu a interleukínu 12 interferónu-γ, v NK-bunkách (IFN-γ), Bbunkách (IL-6 a IL-12) a kol., 1996, Proc. Natl.
T-lymfocytoch CD4+ (IL-6 a IFN-γ)
USA 93, 2879) .
Acad. Sci.
(Krieg
Plazmidová DNA používaná dnes v génovej terapii je zásadne produkovaná prokaryotickými bunkami a teda má metylačný profil, ktorý porovnateľný s bakteriálnou genómovou DNA. Navyše sa ukázalo, že plazmidová DNA, ktorá sa injikovala do svalu alebo pečene a potom sa izolovala, ponechala si svoj prokaryotický metylačný profil (Wolf a kol., 1992, Hum. Mol. Genet. 1, 29903, Malone a kol., 1995, J. Biol. Chem. 269, 29903): možno teda zhrnúť, že používaná DNA bakteriálnych plazmidov má značný potenciál na stimuláciu imunitného systému.
Bolo teda mimoriadne výhodné mať k dispozícii plazmidovú DNA, ktorá by mala také vlastnosti, že jej imunogenicita by bola redukovaná alebo dokonca úplne odstránená. Bolo tiež mimoriadne výhodné mať k dispozícii spôsob, ktorý by umožňoval pripravovať takú plazmidovú DNA v meradle, ktoré je vhodné na priemyselné využitie.
Podstata vynálezu
Predkladaný vynález poskytuje riešenie týchto otázok. Prihlasovateľ sa zaoberal imunogénnymi vlastnosťami bakteriálnej DNA a vynašiel spôsob prípravy plazmidovej DNA farmaceutickej čistoty, potenciálne bez nežiaducich imunogénnych vlastnosti.
Prihlasovateľ tiež ukázal, že metylácia určitých zvyškov DNA umožňuje redukovať imunogénny potenciál plazmidových DNA bez toho aby sa ovplyvnila ich kapacita transfekovať bunky a exprimovať v nich požadovanú nukleovú kyselinu.
Jedným aspektom predkladaného vynálezu je príprava DNA, terapeutickou kvalitou. Ďalší týka použitia dinukleotidoch predkladaného plazmidovej
5'-CG-3' vynálezu na sa aspekt
DNA s konkrétne plazmidových DNA s predkladaného vynálezu sa metylovanými cytozínmi v terapiu. Tretí aspekt farmaceutického prípravku obsahujúceho metylované plazmidové Predkladaný vynález sa tým, že sa exprimuje vynálezu sa týkajú mikroorganizmov, ktoré terapeutických prípravkov a génovú týka DNA.
vivo tiež týka spôsobu metylácie DNA in metyláza. Ďalšie aspekty predkladaného expresných kaziet a hostiteľských môžu použiť na metyláciu, prípravy spôsobov prenosu génov.
sa
Prvý predmet vynálezu ktorá sa môže použiť v génovej terapii a bunkách obsahujúcich kazetu na expresiu ktorá sa preto týka spôsobu prípravy DNA, ktorá sa pripravuje v DNA metyltransferázy, umožňuje metyláciu cytozínových zvyškov v dinukleotidoch 5'-CG-37.
Predkladaný vynález sa preto týka prípravy DNA, osobitne plazmidovej DNA, ktorá je metylovaná na cytozínových zvyškoch v dinukleotidoch 5'-CG-3'.
Metylácia plazmidovej DNA in vitro je uvedená v literatúre (Adams a kol. 1992, FEBS Lett. 309, 97, Doerfler 1994, FEBS Lett. 344, 251, Komura a kol. 1995, Biochim. Biophys. Acta 1260, 73). Ale s týmto typom metylácie nie možné rátať na priemyselnú prípravu plazmidovej DNA, ktorá by bola vhodná na použitie v génovej terapii. Takýto spôsob prípravy plazmidovej DNA musí umožňovať reprodukovateľnú prípravu veľkého množstva homogénnej DNA a táto DNA sa potom musí čistiť spôsobmi prijateľnými na farmaceutické použitie. Je úplne jasné, že DNA metylovaná in vitro sa viac či menej líši súbor od súboru (Doerfler 1994, FEBS
Lett. 344, 251) a že takto pripravované množstvo je veľmi obmedzené.
Predkladaný vynález teraz ukazuje, že je možné metylovať požadovaný plazmid priamo v priebehu prípravy, konkrétne tým, že sa v hostiteľskej bunke koexprimuje (súčasne exprimuje) gén kódujúci metylázu. Predkladaný vynález tiež ukazuje, že takto možno pripraviť veľké a homogénne množstvo plazmidu a že metylovaná plazmidová DNA sa môže purifikovať už známymi spôsobmi. Prihlasovateľ tiež ukázal, že takto metylovaná DNA si výhodne ponecháva kapacitu transfekcie cieľových buniek a prípadne tam, kde je to vhodné, sa v nich replikovať. Osobitne je treba zdôrazniť, že prihlasovateľ ďalej ukázal, že plazmidová DNA takto metylovaná môže exprimovať požadovanú nukleovú kyselinu.
Mnohé štúdie podporujú myšlienku, že hypermetylácia má nejaký vzťah k inhibícii alebo inaktivácii promótorov a že teda aktívne transkribované promótory sú často nedostatočne metylované (hypometylované) alebo vôbec nie sú metylované. Napr. v prípade vírusových promótorov, ak neskorý promótor E2A adenovírusu s genómom typu 2 je v transformovaných škrečacích bunkách HE1 plne metylovaný v dinukleotidoch 5'-CG-3' a v transformovaných škrečacích bunkách HE1 je nemetylovaný, potom tento gén E2A je v bunkách HE1 umlčaný, zatiaľ čo v bunkách HE2 je transkribovaný (W. Doerfler 1995, Curr. Top. Microbiol. Immunol. 197, 209). Ďalší príklad opísali Kohn a kol. (Proc Natl. Acad. Sci. USA 91, 2567), ktorí ukázali, že neprítomnosť expresie z LTR retrovírusového vektora transdukovaného v hematopoetických kmeňových bunkách je spojená s metyláciou in vivo. Opísala sa tiež inhibícia expresie reportérového génu riadeného vírusovým promótorom, keď bol tento gén vnesený prechodnou transfekciou prostredníctvom plazmidu metylovaného in 1992, FEBS Lett. 309, 97, Doerfler
Komura a kol. Biochim. Biophys. Acta vitro (Adams a kol.
1994,
1260, a kol. (2oc. cit.) ukázali, že
FEBS
73) .
Lett.
Okrem
344, toho
251,
Razin kódujúceho promótor typ I a myšací gén kódujúci génu tymidinkinázu vírusu herpes simplex metalotioneín sú inaktívne počas prechodnej expresie v myšacích
L-bunkách a bunkách myšacieho teratokarcinómu F9, pokiaľ sú ich promótory metylované na dinukleotidoch 5'-CG-3'.
Predkladaný vynález teda opisuje prvý krát spôsob, ktorý umožňuje pripravovať metylovanú plazmidovú DNA, ktorá je homogénna a kompatibilná s priemyselným použitím a ukazuje možnosť použiť takýto typ plazmidov na expresiu génov in vitro, ex vivo alebo in vivo a osobitne potom na použitie v génovej terapii.
Spôsob podľa predkladaného vynálezu sa môže uskutočňovať v rôznych typoch hostiteľských buniek. To znamená osobitne v akýchkoľvek bunkách okrem ludských, ktoré vôbec neobsahujú systém na metyláciu cytozínu v dinukleotidoch 5'-CG-3'. Neprítomnosť metylácie môže byť dôsledkom neprítomnosti vhodného enzýmu, alebo nedostatočnou expresiou zodpovedajúceho génu, alebo je dôsledkom neprítomnosti takého génu. Výhodne sa môžu použiť prokaryotické alebo jednotlivé eukaryotické bunky.
Výhodne je hostiteľskou bunkou baktéria. Výhodnejšie ide o baktérie E. coli, B. subtilis, rod Streptomyces, rod Pseudomonas (P. putida, P. aeruginosa) f Rhizobium melioti, Agrobacterium tumefaciens, Staphylococcus aureus, Streptomyces pristinaespiralis, Enterococcus faecium alebo rod Clostridium. Môžu sa tiež použiť baktérie ako napr. Salmonella typhimurium, Klebsiella pneumoniae, Enterobacter aerogenes, Erwinia carotovora alebo 'Serratia marcescens. Výhodne sú hostiteľské bunky z nepatogénneho organizmu a umožňujú prípravu veľkého a homogénneho množstva plazmidovej DNA. Osobitne výhodným príkladom je použitie E. coli.
Spôsob podľa predkladaného vynálezu dovoluje prípravu DNA terapeutickej kvality.
DNA môže byť lineárna alebo kruhová, jednovláknová alebo dvojvláknová molekula, v replikatívnej alebo integratívnej forme alebo plazmid v nadzávitnicovej forme alebo v uvoľnenej kruhovej alebo lineárnej forme. V ďalšom texte tu sa bude DNA tiež označovať ako GT plazmidová DNA alebo GT plazmid (v prípade plazmidu vhodného na génovú terapiu).
GT plazmidy všeobecne používané v génovej terapii nevyhnutne obsahuj ú
I) replikačný počiatok
II) jednu alebo niekoľko požadovaných nukleových kyselín (t. j. terapeutických génov) so sekvenciami nevyhnutnými na ich expresiu (enhancer, promótor, polyadenylačný signál, atď.)
III) markerový gén
Výber replikačného počiatku závisí predovšetkým na hostiteľských bunkách použitých na prípravu. Môže to byť replikačný počiatok pochádzajúci z plazmidu s inkompatibilitou skupiny P (napr. pRK290), ktorý umožňuje replikáciu v kmeňoch E. coli polA. Úplne všeobecne to môže byť akýkoľvek replikačný počiatok pochádzajúci z plazmidu, ktorý sa replikuje v prokaryotických alebo nižších eukaryotických bunkách. Takýto plazmid je napríklad pBR322 (Bolivar a kol., Gene 2, 1977, 95), derivát pUC (Vieira a Messing, Gene 19, 1982, 259) alebo ďalšie plazmidy odvodené z rovnakej inkompatibilnej skupiny, napr. ColEl alebo pMBl. Ale môžu sa vybrať aj plazmidy z iných inkompatibilných skupín, ktoré sa replikujú v E. coli. Možnými plazmidmi sú plazmidy patriace napr. do skupín inkompatibility A, B, El, FII, FIII, Hl, Hli, II, 12, J, K, L, N, OF, P, Q, T, U, W, Y, Z alebo 9. Môžu sa tiež použiť iné plazmidy, ktoré sa nereplikujú v E. coli, ale replikujú sa v iných hostiteľoch, ako je napr. B. subtilis, Streptomyces, P. putida, P. aeruginosa, Rhizobium melioti, Agrobacterium tumefaciens, Staphylococcus aureus, Streptomyces pristinaespiralis, Enterococcus faecium alebo Clostridium. Výhodné je použitie replikačné počiatku z plazmidov, ktoré sa replikujú v E. coli. V závislosti na konkrétnom variante, replikačný počiatok môže byť tzv. Podmieneného pôvodu, t. j. taký replikačný počiatok, ktorého aktivita závisí na prítomnosti faktora pôsobiaceho v trans. Použitie takéhoto replikačného počiatku zabraňuje replikácii plazmidovej DNA po podaní, napr.. človeku (FR95/10825).
Z markerových génov je nutné uviesť gény rezistencie, osobitne potom rezistencie voči antibiotikám (ako je napr. ampicilín, kanamycín, geneticín, hygromycín a pod.), alebo to môže byť akýkoľvek gén poskytujúci bunke vlastnosť, ktorú sama už nemá (napr. gén odstránený z chromozómu alebo inaktivovaný) a ktorú gén v plazmide obnoví.
V konkrétnom uskutočnení vynálezu plazmidová DNA obsahuje sekvencie, ktoré umožňujú, aby všetky úseky, ktoré nemajú terapeutickú funkciu (replikačný počiatok, markerový gén a pod.) boli po produkčnej fáze odstránené. Osobitne výhodný spôsob prípravy na prípravu molekúl takého typu (tzv. minikruhová molekula) sa opísal v prihláške vynálezu PCT/FR95/00274.
Plazmid podľa predkladaného vynálezu je výhodne dvojvláknová molekula DNA obsahujúca jednu alebo niekoľko požadovaných nukleových kyselín spoločne so sekvenciami nevyhnutnými na ich expresiu. Vo výhodnom uskutočnení vynálezu je použitá replikatívna alebo integratívna molekula. Výhodne plazmidová DNA obsahuje nevyhnutne jednu alebo niekoľko požadovaných nukleových kyselín spoločne so sekvenciami nevyhnutnými na ich expresiu (tzv. miniplazmid).
Požadovaná nukleová kyselina (t. j. ktorá má byť prenesená) môže byť akákoľvek nukleová kyselina (cDNA, gDNA, syntetická alebo polosyntetická DNA, a pod.), ktorej transkripcia, prípadne translácia v bunke podmieňuje vznik produktov, ktoré majú terapeutický, očkovací, poľnohospodársky alebo veterinárny význam.
K nukleovým kyselinám s terapeutickými vlastnosťami patria predovšetkým gény kódujúce enzýmy, krvné deriváty, hormóny, lymfokíny, osobitne interleukíny, interferóny, TNF a pod. (pozri FR92/03120), rastové faktory, nervové prenášače a ich prekurzory alebo syntetické enzýmy, trofické faktory, konkrétne BDNF, CNTF,
NGF, IGF, konkrétne dystrofin nádory ako gény kódujúce faktory VII, pre celú časť
GMF, aFGF, bFGF, NT3, NT5 a pod., ApoAI, ApoAIV, ApoE a pod. (pozri alebo minidistrofin (FR91/11947), gény k-rev a pod.
sa na koagulácii, sebevražedné gény, konkrétne a pod., alebo alternatívne prirodzeného alebo umelého imunoglobulínu alebo jej ScFv a pod.) alebo ligand génom môže byť antisense (s normálnej transkripcie) gén alebo cieľovej bunke umožňuje mRNA. Takáto (FR91/11947), je p53, Rb, RaplA, DCC, faktory zúčastňujúce VIII, IX a pod., tzv.
tymidínkinázu, cytozíndeaminázu molekulu apolipoproteíny,
FR93/05125), potláčajúce (FR93/04745), konkrétne (WO91/19813), atď.
orientáciou proti sekvencia, ktorých kontrolovať expresiu alebo sekvencia sa môže (Fab,
Terapeutickým zmyslu expresia v transkripciu bunkovej transkribovať v cieľovej mRNA, ktorá potom blokuje patente EP 140308.
bunke do RNA komplementárna k bunkovej transláciu na proteín, čo sa opísalo v
Požadovaná nukleová kyselina môže byť tiež vakcinačný (očkovací) gén, t. j. taký gén, ktorý kóduje antigénny peptid, schopný vyvolať imunitnú odpoveď v človeku alebo zvierati, s ohľadom na tvorbu vakcín. Takýto antigénny peptid môže byť napr. špecifický pre vírus Epstein-Barrovej, vírus HIV, vírus hepatitídy B (pozri EP 185573) alebo vírus pseudorabies, alebo to tiež môžu byť nádorovo špecifické peptidy (EP 259212).
Všeobecne je v plazmidoch s génmi terapeuticky, vakcinačne, poľnohospodársky alebo veterinárne významnou nukleovou kyselinou tiež promótor transkripcie, ktorý je funkčný v cieľovej bunke alebo organizme (t. j. v cicavcovi a osobitne v človeku) a tiež úsek lokalizovaný na 3'-konci, ktorý špecifikuje terminačný signál transkripcie a polyadenylačné miesto.
Pokial sa týka promótorového úseku, môže to byť promótorový úsek prirodzene zodpovedajúci za expresiu požadovaného génu, pokiaľ je takýto promótorový úsek schopný funkcie v hostiteľskej bunke alebo organizme. Promótorove úseky rôzneho pôvodu (zodpovedajúce za expresiu iných proteínov, alebo dokonca syntetické úseky) sú ďalšie možnosti. Promótorové úseky môžu byť osobitne promótorové sekveňcie eukaryotických alebo vírusových génov, napr. to môžu byť promótorové sekveňcie pochádzajúce z genómu cieľovej bunky. Z eukaryotických promótorov je možné použiť akýkoľvek promótor alebo odvodenú sekvenciu, ktorý stimuluje alebo potláča transkripciu génu špecificky alebo nešpecifický, indukovatelne alebo neindukovateľne, silne alebo slabo. K možným promótorom patria všeobecne rozšírené promótory (HPRT, PGF, α-aktin, tubulín, a pod.), promótory intermediárnych vláken (promótory génov pre GFAP, desmín, vimentín, neurofilament, keratín, a pod.), promótory terapeutických génov (ako je napr. promótor génu MDR, CFTR, faktora VIII, ApoAI a pod.), tkanivové špecifické promótory (ako napr. promótory génov pre pyruvátkinázu, vilin, intestinálny proteín viažuci mastné kyseliny, α-aktín v hladkých svaloch a ďalšie) alebo pripadne promótory, ktoré odpovedajú na určitý stimul (receptory steroidných hormónov, receptor kyseliny retinovej a pod.), podobne môžu byť promótorové sekveňcie pochádzajúce z vírusového genómu, ako sú napr. promótory adenovírusových génov E1A a MLP, skorý promótor CMV alebo prípadne promótor LTR RSV alebo LTR MMTV a ďalšie. Navyše tieto promótorové úseky môžu byť modifikované tým, že sa pridajú aktivačné alebo regulačné sekveňcie, alebo sekveňcie umožňujúce tkanivovo špecifickú alebo prevládajúcu expresiu.
Okrem toho požadované gény môžu tiež obsahovať signálnu sekvenciu, ktorá smeruje syntetizovaný produkt do sekrečnej dráhy cieľovej bunky. Takáto signálna sekvencia môže byť prirodzená signálna sekvencia syntetizovaného produktu, ale môže to byť tiež iná funkčná signálna sekvencia alebo umelá signálna sekvencia.
V závislosti od toho, akú nukleovú kyselinu požadujeme, metylovaná DNA podľa predkladaného vynálezu sa môže použiť na liečenie alebo prevenciu mnohých chorôb, vrátane genetických porúch (ako je napr. dystrofia, cystická fibróza atď.), neurodegeneratívnych chorôb (Alzheimerova alebo Parkinsonova choroba, ALS a pod.), rakoviny, chorôb spojených s vírusovou infekciou (hepatitída, AIDS a pod.), alebo sa môže použiť v poľnohospodárstve alebo veterinárnom lekárstve.
Metylovaná plazmidová DNA podľa predkladaného vynálezu je osobitne výhodná na liečenie chorôb, keď je potrebná trvalá expresia bez imunologickej reakcie, osobitne teda v genetike a v odbore neurodegeneratívnych a kardiovaskulárnych porúch a chorôb.
Ako sa už uviedlo v predchádzajúcom texte, spôsob podľa predkladaného vynálezu používa hostiteľskú bunku obsahujúcu kazetu na expresiu DNA metyltransferázy, ktorá umožňuje, že sa metylujú cytozínové zvyšky v dinukleotidoch 5'-CG-3'.
Po syntéze DNA sú niektoré puríny alebo pyrimidíny modifikované chemicky, napr. metyláciou. Tak napr. niektoré DNA obsahujú 5-metylcytozin alebo N6-metyladenín. Tieto modifikácie sa uskutočňujú prostredníctvom DNA metyltransferáz, udržiavacích alebo de novo enzýmov, ktoré prenášajú metylovú skupinu s Sadenozyl-L-metioninu na adenínový alebo cytozínový zvyšok, ktoré môžu byť umiestnené v špecifických polohách sekvencie. Tak napr. sú dobre známe dve metyltransferázy z E. coli, DNA metyltransferáza dam, ktorá metyluje adenozínový zvyšok ležiaci vo vnútri sekvencie 5'-GATC-3' a DNA metyltransferáza dcm, ktorá metyluje druhý cytidinový zvyšok v sekvencii 5'-CCA/TGG-3'. Ďalšie metylázy sa skúmali v baktériách, kde metylujú zvyšky nachádzajúce sa v rozpoznávacích miestach pre reštrikčné enzýmy. Napr. enzým M.Hpalľ metyluje cytozínový zvyšok v sekvencii 5'CCGG-3'.
Väčšina jednoduchých eukaryotických organizmov a väčšina bezstavovcov obsahujú relatívne málo metylcytozínu a N6-metyladenínu. Avšak metylácia báz u stavovcov je omnoho častejšia a v takom prípade je najčastejšou metylovanou bázou 5-metylcytozín. Viac ako 95% metylových skupín v DNA stavovcov sa objavuje na C zvyškoch nie veľmi hojného dinukleotidu 5'-CG~3' (frekvencia výskytu dinukleotidu 5'-CG-3' je v cicavčích sekvenciách veľmi nízka, je 0,8%, aj keď zastúpenie GC párov je omnoho vyššie, v priemere 40% a pritom náhodné usporiadanie by malo viesť k 4% frekvencii dinukleotidu 5'-CG-3'. Pritom viac ako 50% všetkých dinukleotidov môže byť metylovaných. Existencia radu dôkazov vedie k predstave, že stupeň metylácie niektorých sekvencii obsahujúcich dinukleotid 5'-CG-3' by mohol byť rozhodujúci faktor v regulácii expresie určitých génov v cicavcoch, na inaktiváciu X chromozómu, v onkogenéze (1993, DNA Methylation: Molecular Biology and Biological Significance, Ed. Jost a Saluz) a tiež pre dedičné choroby (Bates a kol. 1994, BioEssays 16, 277).
Predkladaný vynález používa kazetu na expresiu metyltransferázy, ktorá umožňuje, že cytozínové zvyšky v dinukleotidoch 5'-CG-3' sú metylované. Výsledkom je metylovaná DNA, čo v zmysle predkladaného vynálezu špecificky znamená DNA metylovanú na cytozínových zvyškoch v dinukleotidoch 5'-CG-3' . Výhodne použitá DNA metyltransferáza metyluje cytozínové zvyšky v dinukleotidoch 5'-CG-3', takže vôbec neovplyvňuje adenínové zvyšky alebo cytozínové zvyšky ležiace v inom kontexte ako v dinukleotidoch 5'-CG-3'. Výhodne metylovaná DNA je plazmidová DNA, v ktorej je viac ako 50% cytozínových zvyškov ležiacich v dinukleotidoch 5'-CG-3' metylovaných. Výhodnejšie je metylovaných aspoň 80% a najvýhodnejšie je metylovaných 90% uvedených zvyškov.
Metylácia plazmidovej DNA sa môže overiť rôznymi spôsobmi. Metylácia sa môže overiť štiepením izolovanej plazmidovej DNA s reštrikčnými enzýmami, ktoré nie sú schopné štiepiť, pokial štiepne miesto obsahuje cytozínový zvyšok v dinukleotidoch 5'-CG3' , ktorý je metylovaný. Je potrebné napr. uviesť enzýmy Hpall, AatlI a BstBI. Metylácia môže byť tiež stanovená chromatograficky. Napr. množstvo nemetylovaného plazmidu v preparáte metylovaného plazmidu sa stanovilo nasledovným spôsobom: 1% alebo 5% nemetylovaného plazmidu úplne štiepeného s Hpall sa pridalo k neštiepenému nemetylovanému plazmidu. Tieto vzorky spoločne s metylovaným plazmidom štiepeným s Hpall sa analyzovali anexovou kvapalinovou chromatografiou s detekciou pri 260 nm, čo umožnilo oddeliť nenaštiepenú DNA od štiepenej DNA a kvantifikovať ju. Zistilo sa, že metylovaný plazmid obsahoval menej ako 5% nemetylovanej plazmidovej DNA, inými slovami, viac ako 95% plazmidovej DNA sa metylovalo.
Výhodný spôsob podľa predkladaného vynálezu sa vyznačuje tým, že DNA metyltransferáza prednostne metyluje cytozinové zvyšky v dinukleotidoch 5'-CG-3'.
Výhodne pri spôsobe podľa predkladaného vynálezu je v ako 50% cytozinových zvyškov ležiacich v 5'-CG-3' metylovaných. Výhodnejšie je metylovaných a najvýhodnejšie je metylovaných viac zvyškov ležiacich v dinukleotidoch plazmidovej DNA viac dinukleotidoch viac ako 80% ako 90% cytozinových plazmidovej DNA.
5'-CG-3'
Niekoľko cicavčích DNA metyltransferáz, ktoré metyláciu cytozínového zvyšku ležiaceho v dinukleotide charakterizovalo a zodpovedajúce .gény sa klonovali,
Mol. Biol. 203, 971) sa už umožňujú
5'-CG-3', ako napr.
alebo enzým z myši (Bestor a kol. 1988, J. človeka (Yen a kol. 1992, Nucl. Acids enzýmy majú molekulovú hmotnosť medzi 135 hemimetylovanú DNA zrejme znamená, že Progress in Nucleic
Homologický enzým v metyláza M.SssI zo cytozinové zvyšky porovnateľnou rýchlosťou, bez ohľadu na to, hemimetylovaný alebo nemetylovaný (Razin a kol. 313, 243, Baker a kol.
Res. 20, 2287). Tieto a 1.75 kDa. Metylujú nemetylovanú DNA, čo (Smith omnoho rýchlejšie ako o udržiavacie metylázy
Research and Molecular Biology coli neexistuje. Na rozdiel
Spiroplasma metyluje výhradne v akomkoľvek dinukleotide ide
Acid
49,
1994,
E.
od toho úplne
5'-CG-3' či je
1992 substrát
FEBS Lett
Tento enzým enzýmu je 42 a kol. 1990 sa z kmeňa kDa a
Nucl.
1993, Biochim. Biophys.
sp. MQ1. Molekulová hmotnosť a exprimoval v E. coli (Razin 1145, EP 0412676A1 Derwent
Acta 196, 864).
91045812) .
Výhodne sa
Spiroplasma sa klonoval gén
Acids Res. 18,
DNA metyltransferáza vyberie zo skupiny obsahujúcej metylázu M.Sssľ, myšaciu metylázu a ľudskú metylázu. Výhodnejšie sa použije metyláza M.Sssľ.
Kazeta na expresiu DNA metyltransferázy všeobecne obsahuje nukleovú kyselinu kódujúcu DNA metyltransferázu, ktorá umožňuje metyláciu cytozínového zvyšku ležiaceho v dinukleotide 5'-CG-3', a ktorá je riadená promótorom. Promótor použitý na tento účel môže byť akýkoľvek promótor, ktorý je funkčný vo vybranej hostiteľskej bunke. Môže to teda byť promótor definovaný už v prechádzajúcom texte. V prípade prokaryotickej hostiteľskej bunky je treba uviesť osobitne promótor laktózového operónu (Plač) a tryptofánového operónu (Ptrp), hybridný promótor Plac/Ptryp, promótory PL alebo PR bakteriofága lambda alebo promótor génu tetA (Vectors 1988, 179, Rodriguez a Denhardt, eds.) a ďalšie.
Vo výhodnom uskutočnení predkladaného vynálezu sa použije promótor, ktorý sa líši od promótora, ktorý je zodpovedný za expresiu požadovanej nukleovej kyseliny v plazmidovej DNA. Je osobitne výhodné použiť indukovatelný promótor, ktorý umožňuje riadiť expresiu metylázy. Takýto indukovatelný promótor môže byť napr. promótor z bakteriofága T7 alebo promótor Plač.
Výhodne obsahuje expresná kazeta tiež terminačný signál transkripcie (transkripčný terminátor) ako je napr. terminátor ribozómu.
Kazeta na expresiu DNA metyltransferázy môže byť nesená replikatívnym vektorom alebo sa môže integrovať do genómu hostiteľa.
V prípade replikatívneho vektora je výhodné použiť vektor, ktorý je kompatibilný s GT plazmidom, čiže ktorý je schopný koexistencie v rovnakej bunke. Dva odlišné plazmidy sa môžu replikovať v rovnakej bunke, ak replikácia každého plazmidu je riadená odlišným spôsobom. Takže v tomto zmysle kompatibilné plazmidy patria do dvoch inkompatibilných skupín. Teraz je známych asi 30 inkompatibilných skupín plazmidov, ktoré sa replikujú v enterobaktériách (Maas a kol. 1988, Microbiol·. Rev. 52, 375). Existuje teda mnoho možností na replikáciu dvoch plazmidov v tej istej bunke a v literatúre sa doteraz opísalo niekoľko príkladov. Ako príklad je možné uviesť súčasnú replikáciu (koreplikáciu) plazmidov odvodených z ColEl spoločne s plazmidmi, ktoré majú replikón R6K alebo pl5A alebo RSF1010 alebo RK2, ďalej koreplikáciu plazmidov odvodených z RK2 s plazmidmi odvodenými z R6K alebo RSF1010 alebo pSa alebo ColEl (Vectors 1988, Rodriguez a Denhardt, eds.). Tento zoznam nie je obmedzujúci a ďalšie príklady sú opísané v publikácii Vectors, 1988, Rodriguez a Denhardt. Výhodne použitý replikatívny vektor sa počtom kópií v hostitelskej bunke odlišuje od GT plazmidov. Teda vektor nesúci gén kódujúci metylázu, ktorej expresia je indukovatelná, je vektor s nízkym počtom kópií (odvodený napr. z vektorov pACYC184 alebo RK2) , zatiaľ čo GT plazmid je plazmid s vysokým počtom kópií (odvodený od ColEl) . Je tiež možné klonovať do GT plazmidu sekvenciu, ktorá umožní vytvorenie trojzávitnice sekvencie s vhodným oligonukleotidom, takže GT plazmid sa potom môže oddeliť od druhého plazmidu afinitnou purifikáciou.
Kazeta na expresiu DNA metyltransferázy sa môže tiež integrovať do genómu hostiteľskej bunky. Integrácia sa môže uskutočniť homologickou rekombináciou za predpokladu, že expresná kazeta je obklopená priľahlými fragmentmi neesenciálneho génu hostiteľského genómu a že je klonovaná do plazmidu, ktorý sa nemôže replikovať v danom hostiteľovi. Takýto plazmid môže byť:
I) derivát ColEl v kmeni E. coli polAts (Gutterson a kol. 1983, Proc. Natl. Acad. Sci. USA 80, 4894),
II) teplotné citlivý derivát pSCIOl a akokoľvek kmeni E. coli (Kushner a kol. 1989, J. Bacteriol. 171, 4617),
III) sebevražedný vektor ako je M13mpl0 v kmeni E. coli sup+ (Blum a kol. 1989, J. Bacteriol. 171, 538) alebo
IV) plazmid obsahujúci počiatok g z R6K a akomkoľvek kmeni neobsahujúcom gén pir (Filutowicz a kol 1994, Prog. Nucl. Acid Res. and Mol. Biol. 48, 239).
Expresná kazeta môže byť vnesená do hostiteľskej bunky pred plazmidovou DNA, po nej alebo súčasne s ňou. V prípade integratívnej kazety sa všeobecne vnáša dopredu a bunky obsahujúce uvedenú kazetu sa potom selektujú a použijú na prípravu plazmidovej DNA.
Zvláštnym aspektom predkladaného vynálezu je expresia génu kódujúceho metylázu M.SssI v bakteriálnych bunkách (osobitne v E. coli) obsahujúcom GT plazmid. Ako je ukázané v príkladoch, uvedený plazmid má potom metylované cytozíny v dinukleotidoch 5'CG-3' . Konkrétnejšie je GT plazmid transformovaný do kmeňa E. coli mcrA mcrM D(mcrC-mrr) ktorý už obsahuje plazmid nesúci gén, ktorý kóduje metylázu M.Ssil a ktorý je kompatibilný s GT plazmidom. Počas rastu baktérie obidva plazmidy koexistujú, replikujú sa a sú metylované (Gottschlich a kol., J'. Bacteriol. 173, 5793).
Plazmidová DNA alebo expresná kazeta sa môžu vniesť do hostiteľskej bunky ľubovoľnou technikou známou odborníkovi (transformáciou, transfekciou, konjugáciou, elektroporáciou, pulznou metódou, precipitáciou a pod.). Transformácia sa môže uskutočniť osobitne spôsobom pomocou CaC12 (Dagert a Ehrlich, Gene 6, 1979, 23) alebo spôsobom, ktorý vyvinuli Hanahan a kol. (J. Mol. Biol. 166, 1983, 557) alebo akýmkoľvek ďalším spôsobom odvodených z predchádzajúcich (Sambrook a kol., Molecular Cloning: A Laboratory Manual, Cold Spring Harbor Laboratory, Cold Spring Harbor, NY, 1989) a tiež elektrotransformáciou (Wirth a kol., Mol. Gen. Genet. 216, 1989, 175) alebo pomocou TSB (transformation and storage buffer, Chung a kol., 1988, Nucl. Acids Res. 16, 3580). Pozri tiež všeobecné techniky v molekulovej genetike uvedené v ďalšom texte.
Metylovaná plazmidová DNA môže purifikovať ktoroukoľvek (precipitáciou, chromatografiou, pod.). V zvláštnom prípade, ak sa expresiu metyltransferázy, vynálezu sa odborníkovi dialýzou a podľa predkladaného z metód známych centrifugáciou, použije replikatívny vektor na musí sa GT plazmid navyše oddeliť od uvedeného vektora. Na to sa môžu použiť viaceré spôsoby, založené na rozdiele vo veľkosti alebo hmotnosti uvedených dvoch plazmidov alebo v tom, že sa štiepi vektor v reštrikčných miestach prítomných iba vo vektore a nie v GT plazmide.
Osobitne výhodný spôsob purifikácie je založený na afinite medzi špecifickou sekvenciou prítomnou v GT plazmide a imobilizovaným oligonukleotidom. Takýto spôsob purifikácie využívajúci trojzávitnicové štruktúry sa podrobne opísal v prihláškach FR96/03519 a FR94/15162, na ktoré sa týmto odvolávame.
Osobitne to, vynálezu je vynálezu vedie promótorom, aká plazmidom. Takáto imunitnú stimuláciu spojenú s bakteriálnou DNA výhodným že sa výsledkom plazmidová DNA rovnako dobrej uskutočnenia metylovaná expresii dosahuje s rovnakým metylovaná plazmidová DNA ale predkladaného spôsobom podlá génu riadenej nemetylovaným nemala vyvolať by a predstavuje teda výhodu na použitie v nevírusovej génovej terapii.
Metylovaná plazmidová DNA podľa predkladaného vynálezu sa môže použiť na akékoľvek očkovanie alebo génovú terapiu s akýmkoľvek génom, na prenos génu do tela, tkaniva alebo určitej bunky. Osobitne sa môže použiť na priame podávanie in vivo alebo na modifikácie buniek in vitro alebo ex vivo na ich implantáciu pacientovi. V tejto súvislosti molekuly podľa predkladaného vynálezu sa môžu použiť také ako sú (vo forme nahej DNA), alebo v kombinácii s rôznymi syntetickými alebo prirodzenými chemickými alebo biochemickými vektormi. K vhodným vektorom patria zvlášť katióny (fosforečnan vápenatý, DEAE-dextrán a pod.), ktoré pôsobia tak, že vytvárajú s DNA zrazeninu, ktorá môže byť fagocytózou pohltená do bunky. K ďalším vektorom patria lipozómy, do ktorých je molekula DNA vložená a ktoré fúzujú s plazmatickou membránou. Syntetické vektory na prenos génov sú zvyčajne všeobecne katiónové lipidy alebo polyméry, ktoré vytvárajú komplexy s DNA a vytvárajú tak častice, ktoré nesú na povrchu pozitívny náboj. Tieto častice sú schopné interagovať s negatívnymi nábojmi na povrchu bunkovej membrány, ktorou sú potom schopné prejsť. Ako príklady takýchto vektorov možno uviesť DOGS (Transfectam™) alebo DOTMA (Lipofectin™).
Pripravili sa tiež chimérne proteíny: skladajú sa z polykatiónovéj časti, ktorá kondenzuje DNA a táto časť je spojená s ligandom, ktorý sa viaže na membránový receptor a umožňuje vznik komplexu v bunkách prostredníctvom endocytózy. Molekuly DNA podlá vynálezu sa tiež môžu použiť na prenos génov do buniek fyzikálnymi metódami transfekcie, ako je napr. bombardovanie mikročasticami, elektroporácia a pod.
Navyše sa môžu molekuly terapeutickým použitím prípadne štiepením.
podľa vynálezu pred ich linearizovať, napr. enzýmovým vynálezu sa týka akéhokoľvek obsahuje metylovanú plazmidovú Táto DNA môže
Ďalší predmet predkladaného farmaceutického prípravku, ktorý DNA, ktorá bola definovaná v predchádzajúcom texte, byť buď nahá alebo kombinovaná s chemickým alebo biochemickým vektorom na transfekciu. Farmaceutické prípravky podľa vynálezu parenterálne, subkutánne, Výhodne je , ktorú možno sa môžu formulovať na topické, perorálne, ] intravenózne, intramuskulárne, transdermálne a ďalšie podávanie, injikovatelnej forme alebo vo forme, sa zmiešať s akýmkoľvek farmaceutický injekčné miesta, ktoré sa má izotonický sterilný prípravok, ktorý po roztoku umožní vytvorenie roztoku na injekciu, konkrétne pufre obsahujúci Tris alebo PBS glukózy alebo chloridu sodného. Priama kyseliny do zasiahnutej oblasti je výhodná, terapeutický účinok nukleovej kyseliny, rôznych faktoroch vektore, liečenia.
intranazálne, intraokulárne, molekula DNA v aplikovať. Môže nosičom na prijateľným podávanie, osobitne na priame injikovanie do' ošetriť. Takýmto nosičom je konkrétne napr. roztok, alebo suchý, konkrétne lyofilizovaný pridaní sterilnej vody alebo fyziologického K príkladom patria nariedené v roztoku injekcia nukleovej pretože umožňuje, aby bol koncentrovaný v príslušnom tkanive. Dávky ktoré sa použijú sa upravia v závislosti na a osobitne v závislosti na použitom géne, spôsobe podávania, liečenom stave a požadovanom čase
Predkladaný vynález je podrobnejšie a úplnejšie opísaný pomocou nasledujúcich príkladov, ktorých funkcia je ilustrovať vynález a vôbec ho neobmedzovať.
Prehľad obrázkov na výkresoch
Obr. 1. Mapa plazmidu pXL2784
Obr. 2. Reštrikčná mapa plazmidu pXL2784
Obr. 3. Profil štiepenia plazmidov:
- pXL2784
- metylovaný pXL2784
- metylovaný pXL2784 + metylovaný pAIT2
- metylovaný pAIT2, štiepený enzýmami:
A-AatlI,
B-BstBI
C-HindlII
D-Hpall
E-EcoRI (M je 1 kb rebríkový marker molekulovej hmotnosti).
Niektoré všeobecné techniky molekulovej biológie a klonovania
Štandardné metódy molekulovej biológie, ako je napr. centrifugácia plazmidovej DNA v gradiente chloridu cézneho a etídiumbromide, štiepenie reštrikčnými enzýmami, gélová elektroforéza, elektroelúcia fragmentov DNA z agarózového gélu, transformácia E. coli, precipitácia nukleových kyselín a ďalšie, sú opísané v odbornej literatúre (Maniatis a kol. 1989, Ausubel a kol. 1987) .
Nukleotidové sekvencie sa stanovili terminačnou metódou podlá protokolu, ktorý publikovali Ausubel a kol. (1987).
Použité reštrikčné enzýmy sa kúpili od firiem New England Biolabs (Biolabs), Bethesda Research Laboratories (BRL) alebo Amersham Ltd. (Amersham).
Na ligáciu sa fragmenty DNA oddelili podlá veľkosti v 0,7% agarózovom géli alebo v 8% akrylamidovom géli, purifikovali elektroforézou a potom elektroelúciou, extrahovali fenolom, zrážali etanolom a potom inkubovali v 50mM Tris-HCl, pH 7,4 s lOmM MgCl2, lOmM DTT, 2mM ATP v prítomnosti T4 DNA ligázy (Biolabs).
Oligonukleotidy sa syntetizovali fosforamiditovou technológiou, pričom fosforamiditové deriváty sa chránili v βpolohe kyanoetylovou skupinou (Sinha a kol 1984, Giles 1985) pomocou automatického syntetizačného zariadenia DNA/RNA Synthetizer Applied Biosystems 394 podľa odporučenia výrobcu.
V bakteriologickej práci sa použili médiá LB a 2xTY (Maniatis a kol. 1989).
Plazmidové DNA sa purifikovali tiež pomocou alkalickej lýzy (Maniatis a kol. 1989).
Príklady uskutočnenia vynálezu
Príklad 1
Opis GT plazmidu
Odborníkom je známy rad kaziet na eukaryotickú expresiu, ktoré sú nesené plazmidmi replikujúcimi sa v baktérii E. coli. Takéto kazety môžu exprimovať reportérové gény, ako je napr. gén E. coli kódujúci β-galaktozidázu alebo gén pre chloramfenikolacetyltransferázu z transpozónu Tn9, alebo gén pre luciferázu, alebo gény vhodné na génovú terapiu. Tieto kazety obsahujú promótor, ktorý je vírusového alebo eukaryotického pôvodu. Takéto expresné systémy sú buď tkanivovo špecifické, alebo sa môžu exprimovať všeobecne. Kazeta použitá v tomto príklade obsahuje gén luc, kódujúci luciferázu z Photinus pyralis a promótor CMV, intermediátny promótor/enhancer ľudského cytomegalovírusu. Gén luc obsahuje 4,78% dinukleotidu 5'-CG-3' a vírusový promótor pCMV ich obsahuje 5%. Avšak toto zastúpenie je relatívne vysoké vzhľadom na nízku frekvenciu dinukleotidov 5'-CG-3' v sekvenciách cicavcov, kde je 0,8%. V prítomnosti metylázy (ako je napr. metyláza M.SssI alebo CpG metyláza, ktoré sú endogénne pre cicavce) promótor pCMV a gén luc sa môžu vysoko metylovať. Táto expresná kazeta sa klonovala do plazmidu pXL2784, ktorý sa replikuje v E. coli a ktorého mapa je uvedená na obr. 1. Tento plazmid má veľkosť 6390 bp a obsahuje 5,8% dinukleotidov 5'-CG3'.Plazmid pXL2784 sa konštruoval z vektora pXL2675 (2,513 kb) , minimálneho replikónu ColEl z plazmidu Bluescript (Ori) a má ako selektovateľný marker gén kódujúci rezistenciu voči kanamycinu z transpozónu Tn5. Plazmid pXL2784 tiež obsahuje TH sekvenciu (GAA)i7, ktorá sa môže viazať k oligoméru (CTT)n, kde n=l až 17, čím sa vytvára lokálna trojzávitnicová štruktúra, ktorá umožňuje afinitnú purifikáciu. Plazmid pXL2784 má lokus cer (382 bp) pochádzajúci z ColEl, tento lokus cer obsahuje miestne-špecifickú sekvenciu pre rekombinázu XerC/XerD a vedie k rozlíšeniu plazmidových dimérov (Summers a kol. 1988, EMBO J. 7, 851).
Transgén klonovaný do tohto plazmidu pXL2784 je expresná kazeta (3,3 kb) pre gén luc kódujúci luciferázu z Photinus pyralis (pochádzajúci z plazmidu Promega pGL2 basic) riadená jednotkou promótor/enhancer ľudského cytomegalovírusu pCMV (pochádzajúci z plazmidu Invitrogen pcDNA3).
Príklad 2
Konštrukcia kazety na expresiu DNA metylázy
Tento príklad opisuje štruktúru kazety na expresiu metylázy
M.SssI zo Spiroplasma sp. MQ1. Je samozrejmé, že podľa rovnakého princípu by sa postupovalo pri konštrukcii kazety na expresiu ktoréhokoľvek enzýmu podľa predkladaného vynálezu.
Expresná kazeta obsahuje gén zo Spiroplasma sp. MQ1 kódujúci metylázu M.SssI, ktorej expresia je riadená promótorom Plač. Takže v prítomnosti IPTG (Izopropyl^-D-tiogalaktozid) je metyláza syntetizovaná a je aktívna (Gottschlich a kol. 1991, J. Bacteriol 173, 5793) .
Táto kazeta je prítomná v plazmide pAIT2, ktorý má replikón pACYC184 a navyše nesie gén z transpozónu Tn903 kódujúci rezistenciu voči lividomycínu, ktorý umožňuje selekciu transformovaných hostiteľských buniek.
Príklad 3
Príprava plazmidu pXL2784 s metylovanými cytozínovými zvyškami dinukleotidov 5'-CG-3'.
Metylázou M.SssI zo Spiroplasma Sp. MQ1 sú metylované všetky cytozínové zvyšky v dinukleotidoch 5'-CG-3' plazmidu pXL2784. Spôsob metylácie podľa predkladaného vynálezu využíva tento enzým z plazmid je metylovaný v priebehu prípravy v baktérii.
Na tento účel sa kmeň E. coli ER 1821, ktorý má genotyp F’ľ endAl thil supE44 mcrA5 D(mrr-hsdRMS-mcrB)1-::IS10 a nesie plazmid pAIT2, transformovaný TSB metódou (transformation and storage buffer, Chung a kol. 1988, Nucleic Acids Research 16, 3580) plazmidom pXL2784. Transformanty sa selektovali na médiu LB obsahujúcom 50 mg/1 kanamycínu a 100mg/l lividomycínu, aby sa selektovali pXL2784 nesúci gén rezistencie voči kanamycínu z transpozónu Tn5 a pAIT2 nesúci gén rezistencie voči lividomycínu z transpozónu Tn903. Keď sa transformanty ER1821 pAIT2 pXL2784 kultivovali v médiu LB s 50 mg/1 kanamycínu a 100mg/l lividomycínu a 2,5mM IPTG pri 37 °C 15 hodín, extrahovaný plazmid bol metylovaný.
Metylácia sa overila štiepením izolovanej plazmidovej DN s reštrikčnými enzýmami Hpall, AatlI a BstBI. Integrita a prítomnosť obidvoch plazmidov sa overila štiepením preparátu DNA reštrikčnými enzýmami HindlII a EcoRI, ako je uvedené na obr. 2. Reštrikčné enzýmy Hpall, AatlI a BstBI sú tri enzýmu, ktoré nie sú schopné štiepiť, ak cytozínové zvyšky v dinukleotidoch 5'-CG3' nachádzajúcich v štiepnom mieste sú metylované. V promótore pCMV podlá mapy existujú štyri rozpoznávacie miesta AatlI, v géne luc sú dve miesta pre BstBI a jedenásť rozpoznávacích miest Hpal, pričom tento enzým Hpal štiepi plazmid pXL2784 na 30 fragmentov. Na fotografii agarózového gélu zafarbeného s etídiumbromidom (obr. 3) je vidieť, že v prípade metylovaného plazmidu pXL2784 purifikovaného afinitnou chromatografiou (pozri príklad 4) nedochádza k žiadnemu štiepeniu enzýmami Hpall. AatlI a BstBI, zatiaľ čo štiepenie enzýmami HindlII a EcoRI poskytuje profil, ktorý možno očakávať podľa reštrikčnej mapy. Kontrolné štiepenie plazmidu pXL2784 enzýmami Hpall, AatlI a BstBI poskytlo tiež profil, ktorý možno očakávať podľa reštrikčnej mapy.
Výsledky jasne ukazujú, že extrahovaná plazmidová DNA je metylovaná na cytozínových zvyškoch v dinukleotidoch 5'-CG-3'. Výsledky navyše ukazujú, že metylácia ovplyvňuje viac ako 90% takýchto cytozínových zvyškoch.
Príklad 4
Použitie metylovaných plazmidov na prenos genetického materiálu
Tento príklad ukazuje, že metylovaná plazmidová DNA podľa predkladaného vynálezu si uchová svoju kapacitu transfekovať bunky, replikovať sa v nich a exprimovať v nich požadovaný gén.
A. Protokol na prípravu roztokov na transfekciu
V porovnávacej štúdii sa použili dve skupiny plazmidov:
a) pXL2784
b) metylovaný pXL2784
Metylovaný pXL2784 sa získal vo forme zmesi s pAIT2, ktorý spôsoboval jeho metyláciu po kotransformácii baktérií. Uskutočnila sa frakcionácia afinitná chromatografia, aby bol požadovaný plazmid vyčistený. Použitý spôsob čistenia sa opísal v prihláške FR94/15162. Uskutočnil sa krok, kde sa uskutočňuje dialýza proti 0,15M NaCl aby sa odstránil pufor tvoriaci elučnú fázu v kolóne.
Pokiaľ sa plazmid pXL2784 použil ako referenčný, purifikoval sa rovnakým spôsobom, ako je opísané vyššie.
V tomto príklade sa ako vektor použil, katiónový lipid RPR120535A, ktorý je opísaný v prihláške FR95/13490. Pritom je samozrejmé, že je možné na prenos použiť akýkoľvek iný chemický alebo biochemický vektor.
Transfekčné roztoky sa pripravili zo zmesi rovnakých objemov DNA s koncentráciou 30 μς/ml a 90μΜ vodného roztoku katiónového lipidu RPR1200535A, takže pomer katiónový lipid/DNA bol 3 nmol katiónového lipidu/1 μς DNA. Po homogenizácii vortexom a aspoň 15 minútovej inkubácii pri teplote miestnosti sa roztok DNA/lipofektant distribuoval v pomere 4,8% (objemových) do jamiek, kde boli bunky opláchnutí médiom bez proteínu (t. j. bez séra) a potom sa ponechali rásť počas transfekcie v médiu bez séra.
B. Transfekčný protokol
Vzorky obsahujúce lxlO5 buniek (NIH3T3, t. j. myšacích fibroblastov a HeLa, t.j. buniek ľudského karcinómu maternice) v exponenciálnej fáze rastu na 2 cm2 (500 μΐ média bez séra na jamku) sa ošetrili 25 μΐ transfekčného roztoku, čo zodpovedalo 0,375 μg DNA na lx 105 buniek. Po 2 hodinovej inkubácii pri 37 °C vo zvlhčovanej atmosfére s 5% C02 sa do rastového média pridalo teľacie fetálne sérum, takže jeho výsledná koncentrácia bola 8% (objemová).
hodín po transfekcii sa bunky opláchli s PBS a lyžovali pufrom obsahujúcim 1% TritonX-100 a 2mM DTT. Aktivita exprimovanej luciferázy sa merala 10 sekúnd ako emisia svetla (RLU - relatívna jednotka svetla) v prítomnosti luciferínu, koenzýmu A a ATP a vyjadrená na mg proteínu extrahovaného lyzovacím pufrom.
C. Výsledky
Výsledky získané postupmi opísanými v predchádzajúcich odsekoch sú uvedené v nasledovnej tabuľke.
Bunky Bunky NIH 3T3 Bunky HeLa
Plazmid pXL2784 PXL2784CH3 pXL2784 PXL2784CH3
Purifikované afinitnou 2 x 1O10 2,2 x 1O10 3,1 x 1O10 1,7 x 1O10
chromatografiou + /- 4% +/- 10% +/- 15% +/- 11%
Purifikované dialýzou 2,3 x 1O10 3,1 x 1O10 3,8 x 1O10 2,4 x 1O10
+/- 21% +/- 10% +/- 14% + /- 7%
Enzýmová aktivita je vyjadrená v RLU/10 sekúnd/mg proteínu s variačným koeficientom v %, každý výsledok reprezentujú tri transfekčné pokusy.
Ak si uvedomíme význam koeficientu rozptylu v takomto type pokusu, je z výsledkov možno uzavrieť, že nie je žiadny významný rozdiel v expresii u dvoch použitých plazmidoch pri rovnakých podmienkach transfekcie. Okrem toho je luciferázová aktivita získaná s obidvoma purifikačnými postupmi rovnakého poriadku.
1. Postup prípravy DNA na použitie v génovej terapii, vyznačujúci sa tým, že uvedená DNA sa pripravuje v bunke obsahujúcej kazetu na expresiu DNA metyltransferázy, ktorá umožňuje metyláciu cytozínových zvyškov v dinukleotidoch
5'-CG-3'.

Claims (17)

  1. PATENTOVÉ NÁROKY
  2. 2. Spôsob podľa nároku 1, vyznačujúci sa tým, že bunka je prokaryotická bunka.
  3. 3. Spôsob podľa nároku 2, vyznačujúci sa tým, že bunka je baktéria.
  4. 4. Spôsob podľa nárokov 1 až 3, vyznačujúci sa tým, že expresná kazeta je nesená replikatívnym vektorom.
  5. 5. Spôsob podľa nárokov 1 až 3, vyznačujúci sa tým, že expresná kazeta je integrovaná v genóme bunky.
  6. 6. Spôsob podľa ktoréhokoľvek z predchádzajúcich nárokov, vyznačujúci sa tým, že expresná kazeta obsahuje nukleovú kyselinu kódujúcu DNA metyltransferázu, ktorá umožňuje aby cytozínové zvyšky v dinukleotidoch 5'-CG-3' boli metylované pod kontrolou promótora.
  7. 7. Spôsob podľa nároku 6, vyznačujúci sa tým, že promótor je indukovateľný promótor.
  8. 8. Spôsob podľa nároku 1, vyznačujúci sa tým, že DNA metyltransferáza prednostne metyluje cytozínové zvyšky v dinukleotidoch 5'-CG-3'.
  9. 9. Spôsob podľa nároku 8, vyznačujúci sa tým, že DNA metyltransferáza je vybraná zo skupiny obsahujúcej metylázu M.SssI, myšaciu metylázu a ľudskú metylázu.
  10. 10. Spôsob podľa nároku 1, vyznačujúci sa tým, že viac ako 50% cytozinových zvyškov v dinukleotidoch 5'-CG-3' plazmidovej DNA je metylovaných.
  11. 11. Spôsob podľa nároku 1, vyznačujúci sa tým, že viac ako 80% cytozinových zvyškov v dinukleotidoch δ'-ΟΘ-β'' plazmidovej DNA je metylovaných.
  12. 12. Spôsob podľa nároku 1, vyznačujúci sa tým, že viac ako 90% cytozinových zvyškov v dinukleotidoch 5'-CG-3' plazmidovej DNA je metylovaných.
  13. 13. Použitie plazmidovej DNA na prípravu farmaceutického prípravku na terapeutické alebo diagnostické použitie na ľudskom alebo zvieracom tele, keď viac ako 50% cytozinových zvyškov v dinukleotidoch 5'-CG-3' plazmidovej DNA je metylovaných.
  14. 14. Použitie plazmidovej DNA na prípravu farmaceutického prípravku na terapeutické alebo diagnostické použitie na ľudskom alebo zvieracom tele, keď viac ako 80% cytozinových zvyškov v dinukleotidoch 5'-CG-3' plazmidovej DNA je metylovaných.
  15. 15. Použitie plazmidovej DNA na prípravu farmaceutického prípravku na terapeutické alebo diagnostické použitie na ľudskom alebo zvieracom tele, keď viac ako 90% cytozinových zvyškov v dinukleotidoch 5'-CG-3' plazmidovej DNA je metylovaných.
  16. 16. Spôsob prípravy farmaceutického prípravku, na terapeutické alebo diagnostické použitie na ľudskom alebo zvieracom tele, vyznačujúci sa tým, že obsahuje kroky, keď sa
    - pripraví DNA tak, že sa kultivujú bunky obsahujúce uvedenú DNA a kazetu na expresiu DNA metyltransferázy, ktorá umožňuje aby cytozínové zvyšky v dinukleotidoch 5'-CG-3' boli metylované,
    - získa uvedená DNA a
    - uvedená DNA obalí s farmaceutický prijateľným nosičom.
    17 . Spôsob podľa nároku 16, v y z n a č u j ú c i sa tým, že DNA je plazmidová DNA obsahujúca nukleovú kyselinu s terapeutickým významom. 18. Spôsob podľa nároku 16, v y z n a č u j ú c i sa tým, že DNA je mini kruhová DNA obsahuj úca nukleovú kyselinu s terapeutickým významom.
  17. 19. Prípravok, vyznačujúci sa tým, že obsahuje bakteriálnu DNA, v ktorej je aspoň 50% cytozinových zvyškov v dinukleotidoch 5'-CG-3' metylovaných.
SK1814-98A 1996-07-04 1997-06-24 Method for producing therapeutic dna, application of plasmid dna for producing a pharmaceutical composition SK181498A3 (en)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
FR9608327A FR2750704B1 (fr) 1996-07-04 1996-07-04 Procede de production d'adn therapeutique
PCT/FR1997/001116 WO1998001540A1 (fr) 1996-07-04 1997-06-24 Procede de production d'adn therapeutique

Publications (1)

Publication Number Publication Date
SK181498A3 true SK181498A3 (en) 1999-07-12

Family

ID=9493705

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SK1814-98A SK181498A3 (en) 1996-07-04 1997-06-24 Method for producing therapeutic dna, application of plasmid dna for producing a pharmaceutical composition

Country Status (14)

Country Link
US (2) US6410273B1 (sk)
EP (1) EP0914418A1 (sk)
JP (1) JP2000514293A (sk)
KR (1) KR20000022488A (sk)
AU (1) AU722909B2 (sk)
BR (1) BR9710173A (sk)
CA (1) CA2258792A1 (sk)
CZ (1) CZ438298A3 (sk)
FR (1) FR2750704B1 (sk)
IL (1) IL127620A0 (sk)
NO (1) NO986177L (sk)
SK (1) SK181498A3 (sk)
WO (1) WO1998001540A1 (sk)
ZA (1) ZA975959B (sk)

Families Citing this family (19)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US7026468B2 (en) 1996-07-19 2006-04-11 Valentis, Inc. Process and equipment for plasmid purification
US7807822B2 (en) 1996-08-01 2010-10-05 Robert Bridenbaugh Methods for purifying nucleic acids
US7026155B2 (en) * 1999-02-02 2006-04-11 Regents Of The University Of California Method of reducing bacterial proliferation
AU2001290984A1 (en) * 2000-09-18 2002-04-02 Genzyme Corporation Expression vectors containing hybrid ubiquitin promoters
GB0025913D0 (en) * 2000-10-23 2000-12-06 Guldberg Per Materials and methods relating to nucleic acid amplification and profiling
US20030152950A1 (en) * 2001-06-27 2003-08-14 Garner Harold R. Identification of chemically modified polymers
US8765408B2 (en) 2002-01-23 2014-07-01 Wisconsin Alumni Research Foundation Prophage element-free bacteria
US6989265B2 (en) * 2002-01-23 2006-01-24 Wisconsin Alumni Research Foundation Bacteria with reduced genome
US8119365B2 (en) * 2002-01-23 2012-02-21 Wisconsin Alumni Research Foundation Insertion sequence-free bacteria
US8039243B2 (en) * 2002-01-23 2011-10-18 Wisconsin Alumni Research Foundation Insertion sequence-free bacteria
US20060270043A1 (en) * 2002-01-23 2006-11-30 Blattner Frederick R Bacteria with reduced genome
US7303906B2 (en) 2002-09-06 2007-12-04 Wisconsin Alumni Research Foundation Competent bacteria
US20090191218A1 (en) 2005-05-11 2009-07-30 Fengchun Li DNA Vaccines And Methods For The Prevention Of Transplantation Rejection
DE602006015373D1 (de) * 2005-05-11 2010-08-19 Univ Loma Linda Zusammensetzungen und Verfahren zur Prävention und Behandlung von immunvermittelten Entzündungskrankheiten
CA2663026C (en) * 2006-09-28 2013-04-16 Loma Linda University Apoptotic cell-mediated transfection of mammalian cells with interfering rna
GB0701253D0 (en) 2007-01-23 2007-02-28 Diagnostics For The Real World Nucleic acid amplification and testing
EP3760226A1 (en) 2011-09-23 2021-01-06 Loma Linda University Bacterial strains expressing methylase genes and uses thereof
US11680273B2 (en) 2011-09-23 2023-06-20 Loma Linda University Treatment of autoimmune diseases
EP3921416A1 (en) * 2019-02-06 2021-12-15 Fred Hutchinson Cancer Research Center Minicircle producing bacteria engineered to differentially methylate nucleic acid molecules therein

Family Cites Families (14)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5703055A (en) 1989-03-21 1997-12-30 Wisconsin Alumni Research Foundation Generation of antibodies through lipid mediated DNA delivery
US5693622A (en) 1989-03-21 1997-12-02 Vical Incorporated Expression of exogenous polynucleotide sequences cardiac muscle of a mammal
US5491060A (en) * 1989-05-01 1996-02-13 The University Of Maryland Mutant strain of E. coli for detection of methyltransferase clones
EP0412676B1 (en) * 1989-08-07 1995-06-07 Yissum Research Development Company Of The Hebrew University Of Jerusalem Method for producing the spiroplasma SP. DNA methylase
US5405760A (en) * 1992-04-30 1995-04-11 New England Biolabs, Inc. Process for producing recombinant McrBC endonuclease and cleavage of methylated DNA
US5470740A (en) * 1993-11-04 1995-11-28 Life Technologies, Inc. Cloned NsiI restriction-modification system
US5587305A (en) * 1993-12-06 1996-12-24 The United States Of America As Represented By The Department Of Agriculture Pasteurella haemolytica transformants
FR2714830B1 (fr) 1994-01-10 1996-03-22 Rhone Poulenc Rorer Sa Composition contenant des acides nucléiques, préparation et utilisations.
CA2560114A1 (en) * 1994-07-15 1996-02-01 The University Of Iowa Research Foundation Immunomodulatory oligonucleotides
FR2730637B1 (fr) 1995-02-17 1997-03-28 Rhone Poulenc Rorer Sa Composition pharmaceutique contenant des acides nucleiques, et ses utilisations
FR2739292B1 (fr) 1995-09-28 1997-10-31 Rhone Poulenc Rorer Sa Composition pharmaceutique utile pour la transfection d'acides nucleiques et ses utilisations
FR2741066B1 (fr) 1995-11-14 1997-12-12 Rhone Poulenc Rorer Sa Nouveaux agents de transfection et leurs applications pharmaceutiques
FR2754272B1 (fr) 1996-10-08 1998-11-13 Rhone Poulenc Rorer Sa Procede de preparation de compositions pour le transfert d'acides nucleiques
US6060245A (en) 1996-12-13 2000-05-09 Stratagene Methods and adaptors for generating specific nucleic acid populations

Also Published As

Publication number Publication date
WO1998001540A1 (fr) 1998-01-15
JP2000514293A (ja) 2000-10-31
ZA975959B (en) 1998-01-30
KR20000022488A (ko) 2000-04-25
AU722909B2 (en) 2000-08-17
NO986177L (no) 1999-02-15
US6410273B1 (en) 2002-06-25
IL127620A0 (en) 1999-10-28
US20020187527A1 (en) 2002-12-12
CZ438298A3 (cs) 1999-04-14
FR2750704A1 (fr) 1998-01-09
CA2258792A1 (fr) 1998-01-15
AU3447597A (en) 1998-02-02
FR2750704B1 (fr) 1998-09-25
EP0914418A1 (fr) 1999-05-12
BR9710173A (pt) 1999-08-10
NO986177D0 (no) 1998-12-29

Similar Documents

Publication Publication Date Title
SK181498A3 (en) Method for producing therapeutic dna, application of plasmid dna for producing a pharmaceutical composition
Mayrhofer et al. Use of minicircle plasmids for gene therapy
JP4756014B2 (ja) 条件複製起点をもつ環状dna分子、それらの製造方法、及び、遺伝子治療におけるそれらの使用
Mairhofer et al. Rational vector design for efficient non-viral gene delivery: challenges facing the use of plasmid DNA
JPH11500618A (ja) Dna分子、その製造及び遺伝子治療における使用
FI120046B (fi) Menetelmä yhdistelmä-DNA-adenovirusgenomin valmistamiseksi
CN112154208A (zh) 产生改进的病毒和非病毒纳米质粒载体
EP1272625A2 (en) CpG REDUCED PLASMIDS AND VIRAL VECTORS
CN115768487A (zh) 用于面肩肱型肌营养不良症的crispr抑制
Tan et al. Overcoming the inflammatory toxicity of cationic gene vectors
Schakowski et al. Minimal size MIDGE vectors improve transgene expression in vivo
MX2007003214A (es) Formulaciones liquidas estables de adn plasmidico.
JP4451842B2 (ja) 遺伝子治療に用いるための製品
US20170096679A1 (en) Eukaryotic expression vectors resistant to transgene silencing
US6323003B1 (en) Compositions and methods for activating genes of interest
US9816077B2 (en) Use of integrase for targeted gene expression
MXPA98010328A (en) Terapeut dna production procedure
Tolmachov et al. Minimized, CpG‐Depleted, and Methylated DNA Vectors: Towards Perfection in Nonviral Gene Therapy
Bigey et al. Optimization of plasmid backbone for gene expression in mammalian cells