[go: up one dir, main page]

RU2717024C1 - Method for identifying functional m1 and m2 phenotype of human macrophages generated in vitro from blood monocytes - Google Patents

Method for identifying functional m1 and m2 phenotype of human macrophages generated in vitro from blood monocytes Download PDF

Info

Publication number
RU2717024C1
RU2717024C1 RU2019118746A RU2019118746A RU2717024C1 RU 2717024 C1 RU2717024 C1 RU 2717024C1 RU 2019118746 A RU2019118746 A RU 2019118746A RU 2019118746 A RU2019118746 A RU 2019118746A RU 2717024 C1 RU2717024 C1 RU 2717024C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
macrophages
pro
cells
csf
polarized
Prior art date
Application number
RU2019118746A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Екатерина Яковлевна Шевела
Александра Александровна Янковская
Людмила Васильевна Сахно
Александр Анатольевич Останин
Елена Рэмовна Черных
Original Assignee
Федеральное государственное бюджетное научное учреждение "Научно-исследовательский институт фундаментальной и клинической иммунологии"
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Федеральное государственное бюджетное научное учреждение "Научно-исследовательский институт фундаментальной и клинической иммунологии" filed Critical Федеральное государственное бюджетное научное учреждение "Научно-исследовательский институт фундаментальной и клинической иммунологии"
Priority to RU2019118746A priority Critical patent/RU2717024C1/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2717024C1 publication Critical patent/RU2717024C1/en

Links

Images

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N5/00Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
    • C12N5/06Animal cells or tissues; Human cells or tissues
    • C12N5/0602Vertebrate cells
    • C12N5/0634Cells from the blood or the immune system
    • C12N5/0636T lymphocytes
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N5/00Undifferentiated human, animal or plant cells, e.g. cell lines; Tissues; Cultivation or maintenance thereof; Culture media therefor
    • C12N5/06Animal cells or tissues; Human cells or tissues
    • C12N5/0602Vertebrate cells
    • C12N5/0634Cells from the blood or the immune system
    • C12N5/0645Macrophages, e.g. Kuepfer cells in the liver; Monocytes
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/5005Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving human or animal cells
    • G01N33/5008Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving human or animal cells for testing or evaluating the effect of chemical or biological compounds, e.g. drugs, cosmetics
    • G01N33/5044Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving human or animal cells for testing or evaluating the effect of chemical or biological compounds, e.g. drugs, cosmetics involving specific cell types
    • G01N33/5047Cells of the immune system
    • G01N33/505Cells of the immune system involving T-cells
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/5005Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving human or animal cells
    • G01N33/5008Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving human or animal cells for testing or evaluating the effect of chemical or biological compounds, e.g. drugs, cosmetics
    • G01N33/5044Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving human or animal cells for testing or evaluating the effect of chemical or biological compounds, e.g. drugs, cosmetics involving specific cell types
    • G01N33/5047Cells of the immune system
    • G01N33/5055Cells of the immune system involving macrophages

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • Hematology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Urology & Nephrology (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Pathology (AREA)
  • General Physics & Mathematics (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • Food Science & Technology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Toxicology (AREA)
  • Tropical Medicine & Parasitology (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Gastroenterology & Hepatology (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

FIELD: biotechnology.
SUBSTANCE: invention relates to biotechnology, specifically to a method for identifying functional M1 and M2 phenotype of human macrophages generated in vitro from blood monocytes. Proposed method consists in evaluating the effect of cells produced by culturing monocytes in the presence of M1- or M2-polarizing stimuli on a proliferative response of T-lymphocytes in a mixed culture of leukocytes.
EFFECT: method enables to identify M1 and M2 human macrophages with high accuracy.
4 cl, 6 dwg, 3 ex

Description

Изобретение относится к медицине и биологии, а именно клеточной иммунологии, и касается способа идентификации функционального М1 и М2 фенотипа макрофагов человека, генерированных in vitro из моноцитов крови. Предложенный способ позволяет повысить эффективность определения макрофагов человека первого и второго типа с целью их последующего использования в фундаментальных исследованиях, а также при разработке новых клеточных технологий, в том числе в области регенеративной медицины.The invention relates to medicine and biology, in particular cellular immunology, and relates to a method for identifying the functional M1 and M2 phenotype of human macrophages generated in vitro from blood monocytes. The proposed method allows to increase the efficiency of determination of human macrophages of the first and second type for the purpose of their subsequent use in basic research, as well as in the development of new cellular technologies, including in the field of regenerative medicine.

Макрофаги (Mϕ), являясь клетками врожденного иммунитета, выполняют в организме множество функций, что обусловлено их функциональной гетерогенностью и высокой пластичностью (Gordon S., Taylor P.R. Monocyte and macrophage heterogeneity // Nat Rev Immunol. - 2005. - V. 5. - P. 953-964). Резидентные макрофаги обнаруживаются практически во всех тканях, где они могут составлять до 10-15% от общего числа клеток. Мϕ различной тканевой локализации обозначаются, как остеокласты (кости), альвеолярные макрофаги (легкие), микроглиальные клетки (ЦНС), гистиоциты (соединительная ткань), клетки Купфера (печень) и т.д. Поскольку эти популяции характеризуются специфическими транскрипционными профилями, то их можно рассматривать как множество разных и уникальных классов Мϕ (Gautier E.L., Shay Т., Miller J., et al. Gene expression profiles and transcriptional regulatory pathways that underlie the identity and diversity of mouse tissue macrophages // Nat Immunol. - 2012. - V. 13. - P. 1118-1128). С другой стороны, основные функции макрофагов универсальны. Они играют ключевую роль в развитии тканей (формируя их архитектуру), в иммунном ответе на патогены (участвуя в запуске и разрешении воспалительной реакции), в контроле и мониторинге возможных нарушений в тканях (действуя в качестве «дозорных» и эффекторных клеток), и особенно, в поддержании тканевого гомеостаза (путем фагоцитоза апоптотических или стареющих клеток, а также участвуя в процессах ремоделирования и репарации тканей).Macrophages (Mϕ), being cells of innate immunity, perform many functions in the body due to their functional heterogeneity and high plasticity (Gordon S., Taylor PR Monocyte and macrophage heterogeneity // Nat Rev Immunol. - 2005. - V. 5. - P. 953-964). Resident macrophages are found in almost all tissues, where they can make up to 10-15% of the total number of cells. Mϕ of various tissue localization are designated as osteoclasts (bones), alveolar macrophages (lungs), microglial cells (CNS), histiocytes (connective tissue), Kupffer cells (liver), etc. Since these populations are characterized by specific transcriptional profiles, they can be considered as many different and unique classes of Mϕ (Gautier EL, Shay T., Miller J., et al. Gene expression profiles and transcriptional regulatory pathways that underlie the identity and diversity of mouse tissue macrophages // Nat Immunol. - 2012 .-- V. 13. - P. 1118-1128). On the other hand, the main functions of macrophages are universal. They play a key role in the development of tissues (shaping their architecture), in the immune response to pathogens (participating in triggering and resolving the inflammatory response), in controlling and monitoring possible disorders in tissues (acting as “sentinel” and effector cells), and especially , in maintaining tissue homeostasis (by phagocytosis of apoptotic or aging cells, as well as participating in the processes of tissue remodeling and repair).

Пул резидентных Мϕ может пополняться за счет дифференцировки циркулирующих моноцитов при их попадании в ткани из кровотока. Макрофагальный колониестимулирующий фактор (M-CSF) и гранулоцитарномакрофагальный колониестимулирующий фактор (GM-CSF) являются основными регуляторами дифференцировки моноцитов в макрофаги. При этом M-CSF стимулирует дифференцировку моноцитов в Мϕ, характеризующиеся М2/противовоспалительным фенотипом (про-М2 клетки), тогда как GM-CSF индуцирует дифференцировку моноцитов в Мϕ с М1/провоспалительным фенотипом (про-М1 клетки) (Jaguin М., Houlbert N., Fardel О., Lecureur V. Polarization profiles of human M-CSF-generated macrophages and comparison of M1-markers in classically activated macrophages from GM-CSF and M-CSF origin // Cell. Immunol. - 2013. -V. 281. - P. 51-61; Fleetwood A.J., Lawrence Т., Hamilton J.A., Cook A.D. Granulocyte-macrophage colony-stimulating factor (CSF) and macrophage CSF-dependent macrophage phenotypes display differences in cytokine profiles and transcription factor activities: implications for CSF blockade in inflammation // J Immunol. - 2007. - V. 178. - P. 5245-5252).The pool of resident Mϕ can be replenished due to the differentiation of circulating monocytes when they enter the tissues from the bloodstream. Macrophage colony stimulating factor (M-CSF) and granulocyte macrophage colony stimulating factor (GM-CSF) are the main regulators of differentiation of monocytes into macrophages. In this case, M-CSF stimulates the differentiation of monocytes in Mϕ, characterized by M2 / anti-inflammatory phenotype (pro-M2 cells), while GM-CSF induces differentiation of monocytes in Mϕ with M1 / pro-inflammatory phenotype (pro-M1 cells) (Jaguin M., Houlbert N., Fardel O., Lecureur V. Polarization profiles of human M-CSF-generated macrophages and comparison of M1-markers in classically activated macrophages from GM-CSF and M-CSF origin // Cell. Immunol. - 2013. -V 281. - P. 51-61; Fleetwood AJ, Lawrence T., Hamilton JA, Cook AD Granulocyte-macrophage colony-stimulating factor (CSF) and macrophage CSF-dependent macrophage phenotypes display differences in cytokine profiles and transcription factor activities: implications for CSF blockade in inflammation // J Immunol. - 2007 .-- V. 178. - P. 5245 -5252).

Как про-М1, так и про-М2 клетки могут быть поляризованы в Мϕ 1 или 2 типа под влиянием различных факторов микроокружения (поляризующих стимулов) (Roszer Т. Understanding the mysterious М2 macrophage through activation markers and effector mechanisms // Mediators of Inflammation. - 2015. - Article ID 816460; Tarique A.A., Logan J., Thomas E., et al. Phenotypic, functional, and plasticity features of classical and alternatively activated human macrophages // Am J Respir Cell Mol Biol. - 2015. - V. 53. - P. 676-688). В культуре in vitro в качестве M1-поляризующих сигналов могут выступать различные инфекционные агенты (например, липополисахарид [ЛПС] или провоспалительные цитокины (TNF-α или IFN-γ, по отдельности или в комбинации). М1 макрофаги характеризуются in vitro фенотипом IL-12highIL-23highIL-10low; активно секретируют реактивные метаболиты кислорода и оксид азота (ROS и NO) и воспалительные цитокины (IL-1β, TNF, IL-6); участвуют в развитии Th1-опосредованных иммунных реакций, обеспечивающих устойчивость к внутриклеточным патогенам и опухолям. В качестве М2-поляризующих сигналов могут выступать Th2-цитокины (IL-4 или IL-13 по отдельности или в комбинации); иммунные комплексы, которые одновременно связываются с Fc-γ и Toll-подобными рецепторами; различные иммуносупрессорные цитокины (IL-10, TGF-β), глюкокортикоиды и витамины (дексаметазон, витамин Д3). В 2008 г было предложено М2 макрофаги, поляризованные теми или иными стимулами, обозначать как М2а (IL-4, IL-13), М2b (иммунные комплексы) и М2с (IL-10, TGF-b, дексаметазон, витамин Д3) (Martinez F.O., Sica A., Mantovani A., Locati M. Macrophage activation and polarization // Front Biosci. - 2008. - V. 13. - P. 453-461). Выделяют также M2d фенотип, который индуцируется в результате аденозин-зависимого "переключения" провоспалительных М1 макрофагов в М2 клетки с выраженными проангиогенными свойствами (Grinberg S., Hasko G., Wu D., Leibovich S.J. Suppression of PLCβ2 by endotoxin plays a role in the adenosine А2A receptor-mediated switch of macrophages from an inflammatory to an angiogenic phenotype // Am J Pathol. - 2009. - V. 175. - P. 2439-2453). Поскольку M2 поляризация Мϕ может происходить также в результате фагоцитоза апоптотических клеток, отдельно можно выделить М2апо фенотип М2 макрофагов (Fadok V.A, Bratton D.L., Konowal A., et al. Macrophages that have ingested apoptotic cells in vitro inhibit proinflammatory cytokine production through autocrine/paracrine mechanisms involving TGF-beta, PGE2, and PAF // J Clin Invest. - 1998. - V. 101. - P. 890-898; De Oliveira Fulco Т., Andrade P.R., de Mattos Barbosa M.G., et al. Effect of apoptotic cell recognition on macrophage polarization and mycobacterial persistence // Infect Immunol. - 2014. - V. 82. - P. 3968-3978).Both pro-M1 and pro-M2 cells can be polarized in M 1 or 2 types under the influence of various microenvironment factors (polarizing stimuli) (Roszer T. Understanding the mysterious M2 macrophage through activation markers and effector mechanisms // Mediators of Inflammation. - 2015. - Article ID 816460; Tarique AA, Logan J., Thomas E., et al. Phenotypic, functional, and plasticity features of classical and alternatively activated human macrophages // Am J Respir Cell Mol Biol. - 2015. - V 53. - P. 676-688). In an in vitro culture, various infectious agents (eg, lipopolysaccharide [LPS] or pro-inflammatory cytokines (TNF-α or IFN-γ, individually or in combination) can act as M1-polarizing signals. M1 macrophages are characterized in vitro by the IL-12 phenotype high IL-23 high IL-10 low ; actively secrete reactive oxygen metabolites and nitric oxide (ROS and NO) and inflammatory cytokines (IL-1β, TNF, IL-6); are involved in the development of Th1-mediated immune responses that provide resistance to intracellular pathogens and tumors.As M2-polarizing signal Th2 cytokines (IL-4 or IL-13 alone or in combination) may appear; immune complexes that simultaneously bind to Fc-γ and Toll-like receptors; various immunosuppressive cytokines (IL-10, TGF-β), glucocorticoids and vitamins (dexamethasone, vitamin D3) In 2008, M2 macrophages polarized by various stimuli were proposed to be designated as M2a (IL-4, IL-13), M2b (immune complexes) and M2c (IL-10, TGF -b, dexamethasone, vitamin D3) (Martinez FO, Sica A., Mantovani A., Locati M. Macrophage activation and polarization // Front Biosci. - 2008. - V. 13. - P. 453-461). M2d phenotype is also isolated, which is induced as a result of an adenosine-dependent "switch" of pro-inflammatory M1 macrophages into M2 cells with pronounced pro-angiogenic properties (Grinberg S., Hasko G., Wu D., Leibovich SJ Suppression of PLCβ2 by endotoxin plays a role in the adenosine A 2A receptor-mediated switch of macrophages from an inflammatory to an angiogenic phenotype // Am J Pathol. - 2009. - V. 175. - P. 2439-2453). Since M2 polarization of Mϕ can also occur as a result of phagocytosis of apoptotic cells, the M2apo phenotype of M2 macrophages can be isolated separately (Fadok VA, Bratton DL, Konowal A., et al. Macrophages that have ingested apoptotic cells in vitro inhibit proinflammatory cytokine production through autocrine / paracrine mechanisms involving TGF-beta, PGE2, and PAF // J Clin Invest. - 1998. - V. 101. - P. 890-898; De Oliveira Fulco T., Andrade PR, de Mattos Barbosa MG, et al. Effect of apoptotic cell recognition on macrophage polarization and mycobacterial persistence // Infect Immunol. - 2014 .-- V. 82. - P. 3968-3978).

В целом, M2 макрофаги характеризуются in vitro фенотипом IL-12lowIL-23lowIL-10highTGF-βhigh; как правило, высоко экспрессируют акцепторные (scavenger), маннозные и галактозные рецепторы; участвуют в развитии Th2-опосредованных иммунных реакций, в ограничении воспаления, иммунорегуляции, ремоделировании тканей и ангиогенезе (Sica A., Mantovani А. Macrophage plasticity and polarization: in vivo veritas // J Clin Invest. - 2012. - V. 122. - P. 787-795).In general, M2 macrophages are characterized by the in vitro phenotype IL-12 low IL-23 low IL-10 high TGF-β high ; as a rule, scavenger, mannose and galactose receptors are highly expressed; participate in the development of Th2-mediated immune responses, in limiting inflammation, immunoregulation, tissue remodeling, and angiogenesis (Sica A., Mantovani A. Macrophage plasticity and polarization: in vivo veritas // J Clin Invest. - 2012. - V. 122. - P. 787-795).

Развитие многих физиологических процессов невозможно без соответствующей поляризации Мϕ. Нарушение или отклонение дифференцировочной программы Мϕ может иметь потенциально опасные последствия. Например, неконтролируемая активация провоспалительных макрофагов 1 типа может вызывать деструкцию тканей, или способствовать опухолевой трансформации или нарушать метаболизм глюкозы, стимулируя резистентность к инсулину. В свою очередь, противовоспалительные макрофаги 2 типа, которые должны обеспечивать заживление ран, в условиях неконтролируемой активации и экспансии могут усиливать фиброгенез, провоцировать аллергические реакции, способствовать выживанию внутриклеточных патогенов, и опухолевой прогрессии.The development of many physiological processes is impossible without the corresponding polarization Mϕ. Violation or rejection of the differentiation program Mϕ can have potentially dangerous consequences. For example, uncontrolled activation of type 1 pro-inflammatory macrophages can cause tissue destruction, or promote tumor transformation or disrupt glucose metabolism, stimulating insulin resistance. In turn, type 2 anti-inflammatory macrophages, which should ensure wound healing, under conditions of uncontrolled activation and expansion, can enhance fibrogenesis, provoke allergic reactions, promote the survival of intracellular pathogens, and tumor progression.

В настоящее время отработаны различные протоколы генерации из моноцитов крови макрофагов 1 и 2 типа на основе использования соответствующих дифференцировочных факторов (GM-CSF или M-CSF) и/или поляризующих стимулов. Генерированные in vitro макрофаги предлагается использовать при разработке новых медицинских клеточных технологий. Так, M1-клетки могут быть использованы с целью усиления противоинфекционного, противовирусного или противоопухолевого иммунного ответа. В свою очередь, М2-клетки могут быть использованы с целью стимуляции репарации/регенерации, например, при лечении хронических, вялотекущих раневых процессов (при диабете, остеомиелите и т.д.) или для стимуляции нейрорегенерации у больных с органическими поражениями мозга, например, последствиями инсульта, хронической ишемией мозга и т.д. (RU 2637407, А61К 38/18, 2017; Останин А.А., Давыдова М.Н., Старостина Н.М., и др. Интраназальные ингаляции биоактивных факторов, продуцируемых М2 макрофагами, в лечении больных с органическими поражениями головного мозга // Мед иммунология. - 2018. - Т. 20. - С. 577-588). При этом принципиально важно, чтобы в конкретной клинической ситуации были использованы Мϕ определенного фенотипа - или М1/провоспалительного, или М2/противовоспалительного, поскольку по своим ключевым характеристикам они являются по сути оппозитными.Various protocols for generating macrophages of type 1 and 2 from blood monocytes based on the use of appropriate differentiating factors (GM-CSF or M-CSF) and / or polarizing stimuli have been developed. In vitro-generated macrophages are proposed for use in the development of new medical cell technologies. So, M1 cells can be used to enhance the anti-infectious, antiviral or antitumor immune response. In turn, M2 cells can be used to stimulate repair / regeneration, for example, in the treatment of chronic, sluggish wound processes (for diabetes, osteomyelitis, etc.) or to stimulate neuroregeneration in patients with organic brain lesions, for example, consequences of stroke, chronic cerebral ischemia, etc. (RU 2637407, А61К 38/18, 2017; Ostanin A.A., Davydova M.N., Starostina N.M., et al. Intranasal inhalations of bioactive factors produced by M2 macrophages in the treatment of patients with organic brain lesions / / Honey immunology. - 2018 .-- T. 20. - S. 577-588). At the same time, it is crucial that, in a specific clinical situation, Mϕ of a certain phenotype is used - either M1 / pro-inflammatory, or M2 / anti-inflammatory, because by their key characteristics they are essentially opposed.

Важно отметить, что разрабатываемые клеточные технологии относятся, как правило, к «персонализированной» медицине, и являются пациент-зависимыми, поскольку предполагают использование аутологичных Мϕ, генерированных in vitro из моноцитов периферической крови конкретного больного. Однако в силу различных причин (генетических особенностей, возраста, наличия сопутствующей патологии, количественных и/или функциональных нарушений в популяции циркулирующих моноцитов, и т.д.) может происходить нарушение процессов дифференцировки/поляризации Мϕ. В этом случае даже в условиях выполнения стандартов культуральных протоколов генерации и при использовании соответствующих М1 или М2 дифференцировочных/поляризующих факторов, получаемая популяция макрофагов по своим ключевым свойствам может не соответствовать ожидаемому функциональному фенотипу.It is important to note that the developed cellular technologies relate, as a rule, to “personalized” medicine, and are patient-dependent, since they involve the use of autologous Mϕ generated in vitro from peripheral blood monocytes of a particular patient. However, for various reasons (genetic characteristics, age, the presence of concomitant pathology, quantitative and / or functional disorders in the population of circulating monocytes, etc.), a differentiation / polarization process Mϕ may occur. In this case, even under the conditions of fulfilling the standards of cultural generation protocols and using the corresponding M1 or M2 differentiating / polarizing factors, the resulting macrophage population by its key properties may not correspond to the expected functional phenotype.

Очевидно, что использование таких «дефектных» Мϕ в лечебных целях может быть либо недостаточно эффективным, либо сопровождаться развитием нежелательных побочных реакций.Obviously, the use of such "defective" Mϕ for therapeutic purposes may either be insufficiently effective or be accompanied by the development of undesirable side reactions.

Вышесказанное диктует необходимость поиска маркера(-ов), позволяющих с высокой диагностической точностью идентифицировать М1 и М2 функциональные фенотипы макрофагов человека, генерированных in vitro из моноцитов крови.The above dictates the need to search for marker (s), allowing with high diagnostic accuracy to identify the M1 and M2 functional phenotypes of human macrophages generated in vitro from blood monocytes.

Известен метод идентификации типа макрофагов по экспрессии генов, который осуществляется при помощи полимеразной цепной реакции в режиме реального времени. Согласно данному методу, М1 и М2 макрофаги различаются по уровню экспрессии мРНК Arg1, Ym1, Fizz1, iNOS, CD38, Fpr2, Gpr18 (Raes G., De Baetselier P., Noe W., al. Differential expression of FIZZ1 and Ym1 in alternatively versus classically activated macrophages // J Leukoc Biol. - 2002. - V. 71. - P. 597-602; Jablonski K.A., Amici S.A., Webb L.M., et al. Novel markers to delineate murine M1 and M2 macrophages // PLoS One. - 2015. - V. 10: e0145342). Однако данный подход существенно ограничен возможностью использования для идентификации различных типов макрофагов только у мышей, поскольку у человека указанные маркеры не определяются (Raes G., Van den Bergh R., De Baetselier P., et. al. Arginase-1 and Ym1 are markers for murine, but not human, alternatively activated myeloid cells // J Immunol. - 2005. - V. 174. - P. 6561-6562).A known method for identifying the type of macrophages by gene expression, which is carried out using the polymerase chain reaction in real time. According to this method, M1 and M2 macrophages differ in the level of mRNA expression of Arg1, Ym1, Fizz1, iNOS, CD38, Fpr2, Gpr18 (Raes G., De Baetselier P., Noe W., al. Differential expression of FIZZ1 and Ym1 in alternatively versus classically activated macrophages // J Leukoc Biol. - 2002. - V. 71. - P. 597-602; Jablonski KA, Amici SA, Webb LM, et al. Novel markers to delineate murine M1 and M2 macrophages // PLoS One . - 2015. - V. 10: e0145342). However, this approach is significantly limited by the possibility of using different types of macrophages for identification only in mice, since these markers are not detected in humans (Raes G., Van den Bergh R., De Baetselier P., et. Al. Arginase-1 and Ym1 are markers for murine, but not human, alternatively activated myeloid cells // J Immunol. - 2005. - V. 174. - P. 6561-6562).

Известен метод идентификации типа макрофагов по особенностям метаболизма L-аргинина, а именно, по анализу баланса активности аргиназы и NO-синтазы (Modolell М., Corraliza I.M., Link F., et al. Reciprocal regulation of the nitric oxide synthase/arginase balance in mouse bone marrow-derived macrophages by TH1 and TH2 cytokines // Eur J Immunol. - 1995. - V. 25. - P. 1101-1104; Munder M., Eichmann K., Modolell M. Alternative metabolic states in murine macrophages reflected by the nitric oxide synthase/arginase balance: competitive regulation by CD4+ T cells correlates with Th1/Th2 phenotype // J Immunol. - 1998. - V. 160. - P. 5347-5354). Согласно этому методу, формирование М1 фенотипа сопровождается сдвигом метаболизма аргинина в сторону активации NO-синтазы (iNOS) и увеличения продукции оксида азота (NO), которому принадлежит важная роль в микробицидной активности М1-клеток. Формирование М2 фенотипа сопровождается сдвигом метаболизма аргинина в сторону активации аргиназы-1, которая конкурирует с iNOS за L-аргинин и расщепляет его до орнитина и мочевины. М2-продуцируемый орнитин стимулирует пролиферацию и восстановление клеток посредством синтеза полиамина и коллагена, фиброза и активации других функций тканевого ремоделирования. Недостатком данного способа также является возможность его использования только для определения различных типов макрофагов мышей, но не Мϕ человека.A known method for identifying the type of macrophages by the characteristics of the metabolism of L-arginine, namely, by analyzing the balance of activity of arginase and NO synthase (Modolell M., Corraliza IM, Link F., et al. Reciprocal regulation of the nitric oxide synthase / arginase balance in mouse bone marrow-derived macrophages by TH1 and TH2 cytokines // Eur J Immunol. - 1995. - V. 25. - P. 1101-1104; Munder M., Eichmann K., Modolell M. Alternative metabolic states in murine macrophages reflected by the nitric oxide synthase / arginase balance: competitive regulation by CD4 + T cells correlates with Th1 / Th2 phenotype // J Immunol. - 1998. - V. 160. - P. 5347-5354). According to this method, the formation of the M1 phenotype is accompanied by a shift in arginine metabolism towards the activation of NO synthase (iNOS) and an increase in the production of nitric oxide (NO), which plays an important role in the microbicidal activity of M1 cells. The formation of the M2 phenotype is accompanied by a shift in arginine metabolism towards activation of arginase-1, which competes with iNOS for L-arginine and breaks it down to ornithine and urea. M2-produced ornithine stimulates cell proliferation and recovery through the synthesis of polyamine and collagen, fibrosis and the activation of other tissue remodeling functions. The disadvantage of this method is the possibility of its use only to determine the different types of macrophages of mice, but not human Mϕ.

Известен метод идентификации типа Мϕ по морфологической характеристике генерируемых клеточных популяций. Так, М1-клетки преимущественно имеют округлую или овоидную форму, а М2 - преимущественно представляют собой фибробластоподобные клетки или клетки с «fried-egg» морфологией. Это сравнительно простой метод диагностики, не требующий наличия сложного оборудования и больших временных затрат (Ploeger D.T., Hosper N.A., Schipper М., et al. Cell plasticity in wound healing: paracrine factors of М1/ M2 polarized macrophages influence the phenotypical state of dermal fibroblasts // Cell Commun Signal. - 2013. - V. 11: 29). Недостатком данного способа является качественный, субъективный характер оценки и его неточность, поскольку в общей популяции генерируемых in vitro макрофагов могут содержаться клетки, различающееся по своей морфологии.A known method for identifying type Mϕ by the morphological characteristics of the generated cell populations. So, M1 cells predominantly have a round or ovoid shape, and M2 cells are predominantly fibroblast-like cells or cells with a “fried-egg” morphology. This is a relatively simple diagnostic method that does not require complex equipment and time-consuming (Ploeger DT, Hosper NA, Schipper M., et al. Cell plasticity in wound healing: paracrine factors of M1 / M2 polarized macrophages influence the phenotypical state of dermal fibroblasts // Cell Commun Signal. - 2013 .-- V. 11: 29). The disadvantage of this method is the qualitative, subjective nature of the assessment and its inaccuracy, since the general population of macrophages generated in vitro may contain cells that differ in their morphology.

Известен метод определения типа макрофагов по экспрессии различных поверхностных молекул, осуществляемый при помощи проточной цитометрии. Данный подход является одним из самых распространенных и достаточно простых методов оценки функционального фенотипа макрофагов. Так, например, показано, что М1 отличаются от М2-клеток повышенной экспрессией молекул, вовлеченных в активацию и ко-стимуляцию Т-лимфоцитов (HLA-DR, CD86, CD40), тогда как М2 макрофаги характеризуются повышенной экспрессией акцепторных scavenger-рецепторов (CD36, CD163) и маннозного CD206-рецептора (Lolmede K., Campana L, Vezzoli М., et al. Inflammatory and alternatively activated human macrophages attract vessel-associated stem cells, relying on separate HMGB1- and MMP-9-dependent pathways. J Leukoc Biol. - 2009. - V. 85. - P. 779-787). Для M2a клеток, генерированных из моноцитов под действием поляризующих стимулов IL-4/IL-13, характерным признаком является повышенная экспрессия CD200R и DC-SIGN (CD209) (Koning N., van Eijk M., Pouwels W., et al. Expression of the inhibitory CD200 receptor is associated with alternative macrophage activation. J Innate Immun. - 2010. - V. 2. - P. 195-200; Relloso M.,

Figure 00000001
Pello O.M., et al. DC-SIGN (CD209) expression is IL-4 dependent and is negatively regulated by IFN, TGF-beta, and anti-inflammatory agents. J Immunol. - 2002. - V. 168. - P. 2634-2643; Stein M., Keshav S., Harris N., Gordon S. Interleukin 4 potently enhances murine macrophage mannose receptor activity: a marker of alternative immunologic macrophage activation. J Exp Med. - 1992. - V. 176. - P. 287-292).A known method for determining the type of macrophages by expression of various surface molecules, carried out using flow cytometry. This approach is one of the most common and fairly simple methods for assessing the functional phenotype of macrophages. For example, M1 has been shown to differ from M2 cells in increased expression of molecules involved in the activation and co-stimulation of T lymphocytes (HLA-DR, CD86, CD40), while M2 macrophages are characterized by increased expression of acceptor scavenger receptors (CD36 , CD163) and mannose CD206 receptor (Lolmede K., Campana L, Vezzoli M., et al. Inflammatory and alternatively activated human macrophages attract vessel-associated stem cells, relying on separate HMGB1- and MMP-9-dependent pathways. J Leukoc Biol. - 2009. - V. 85. - P. 779-787). For M2a cells generated from monocytes under the action of polarizing stimulants IL-4 / IL-13, a characteristic feature is increased expression of CD200R and DC-SIGN (CD209) (Koning N., van Eijk M., Pouwels W., et al. Expression of the inhibitory CD200 receptor is associated with alternative macrophage activation. J Innate Immun. - 2010. - V. 2. - P. 195-200; Relloso M.,
Figure 00000001
Pello OM, et al. DC-SIGN (CD209) expression is IL-4 dependent and is negatively regulated by IFN, TGF-beta, and anti-inflammatory agents. J Immunol. - 2002. - V. 168. - P. 2634-2643; Stein M., Keshav S., Harris N., Gordon S. Interleukin 4 potently enhances murine macrophage mannose receptor activity: a marker of alternative immunologic macrophage activation. J Exp Med. - 1992. - V. 176. - P. 287-292).

Существенным недостатком данного метода является отсутствие уникальных поверхностных маркеров, высоко специфичных для определенного фенотипа Мϕ. Так, например, экспрессия маннозного рецептора CD206 считается отличительным признаком М2-клеток, однако М1 макрофаги также экспрессируют этот антиген, хотя и с меньшей интенсивностью. Кроме того, уровень экспрессии CD206 может варьировать в зависимости от используемого дифференцировочного фактора. Например, экспрессия CD206 повышается на М-CSF-дифференцированных М2 макрофагах, однако GM-CSF также индуцирует экспрессию этого антигена М1-клетками на уровне, превышающем значения GM-CSF-дифференцированных М2-макрофагов.A significant drawback of this method is the lack of unique surface markers that are highly specific for a particular Mϕ phenotype. For example, expression of the mannose receptor CD206 is considered a hallmark of M2 cells, however, M1 macrophages also express this antigen, albeit with less intensity. In addition, the level of expression of CD206 may vary depending on the differentiating factor used. For example, the expression of CD206 is increased on M-CSF-differentiated M2 macrophages, however, GM-CSF also induces the expression of this antigen by M1 cells at a level exceeding the values of GM-CSF-differentiated M2 macrophages.

Недостатком данного метода является также то, что для идентификации типа макрофагов необходима сравнительная характеристика между собой двух (или более) клеточных популяций по уровню экспрессии (больше/меньше) тех или иных молекул. При этом не определены пороговые значения экспрессии каких-либо маркеров, которые позволяли бы с высокой специфичностью (SP) и чувствительностью (SN) верифицировать М1 и М2 функциональные фенотипы генерированных in vitro макрофагов человека.The disadvantage of this method is also that the identification of the type of macrophages requires a comparative characteristic of two (or more) cell populations among themselves by the level of expression (more / less) of certain molecules. At the same time, threshold values for the expression of any markers were not determined that would allow verification of the M1 and M2 functional phenotypes of human macrophages generated in vitro with high specificity (SP) and sensitivity (SN).

Известен способ идентификации М1-подобных и М2-подобных макрофагов (поляризованных с помощью IFN-γ и IL-4, соответственно) по экспрессии поверхностных антигенов (US 2015057161, C12N5/0786, 2015). В качестве M1-специфических маркеров предлагается использовать CD120b, TLR2 и SLAMF7; в качестве М2-ассоциированных маркеров - CD1a, CD1b, CD93 и CD226. Несмотря на то, что эти паттерны поверхностных антигенов были выделены после проведения РНК-секвенирования и определения в качестве маркеров идентификации наиболее вероятных генов-кандидатов, предложенный способ имеет ряд ограничений и недостатков.A known method for identifying M1-like and M2-like macrophages (polarized using IFN-γ and IL-4, respectively) by expression of surface antigens (US 2015057161, C12N5 / 0786, 2015). As M1-specific markers it is proposed to use CD120b, TLR2 and SLAMF7; as M2-associated markers are CD1a, CD1b, CD93 and CD226. Despite the fact that these surface antigen patterns were isolated after RNA sequencing and identification of the most likely candidate genes as identification markers, the proposed method has a number of limitations and disadvantages.

Недостатком является, во-первых, то, что, для генерации М2-подобных макрофагов в качестве поляризующего стимула использовали IL-4, что является общепринятым подходом для получения М2а макрофагов. Следовательно, предлагаемый паттерн М2-ассоциированных маркеров (CD1a, CD1b, CD93, CD226) позволяет идентифицировать только одну популяцию М2 макрофагов М2а фенотипа. Эффективность предложенного метода в отношении идентификации других субпопуляций М2 макрофагов (про-М2-клеток, М2b, М2с, М2апо) не исследована. Во-вторых, в состав паттерна М1-специфических маркеров включен TLR2 (Toll-подобный рецептор бактериальных пептидогликанов), тогда как в ряде в ряде работ показано, что экспрессия TLR2 и, соответственно, способность отвечать на TLR2-агонисты (Pam3, Pam2CSK4) характерна не только для М1, но также и для М2 макрофагов (Quero L, Hanser Е., Manigold Т., Tiaden A.N., Kyburz D. TLR2 stimulation impairs anti-inflammatory activity of M2-like macrophages, generating a chimeric M1/M2 phenotype. Arthritis Res Ther. - 2017. - V. 19: 245; Schlaepfer E., Rochat M-A., Duo L, Speck R.F. Triggering TLR2, -3, -4, -5, and -8 Reinforces the Restrictive Nature of M1- and M2-Polarized Macrophages to HIV. J Virology. - 2014. - V. 88. - P. 9769-9781). Недостатком данного метода является также отсутствие установленных пороговых значений экспрессии М1- и М2-ассоциированных маркеров, а также каких-либо данных о диагностической точности (SP, SN) предложенного подхода.The disadvantage is, firstly, that, to generate M2-like macrophages, IL-4 was used as a polarizing stimulus, which is a generally accepted approach for obtaining M2a macrophages. Therefore, the proposed pattern of M2-associated markers (CD1a, CD1b, CD93, CD226) allows only one population of M2 macrophages of the M2a phenotype to be identified. The effectiveness of the proposed method in identifying other subpopulations of M2 macrophages (pro-M2 cells, M2b, M2c, M2apo) has not been studied. Second, TLR2 (Toll-like receptor of bacterial peptidoglycans) is included in the pattern of M1-specific markers, while several studies have shown that the expression of TLR2 and, accordingly, the ability to respond to TLR2 agonists (Pam3, Pam2CSK4) are characteristic not only for M1, but also for M2 macrophages (Quero L, Hanser E., Manigold T., Tiaden AN, Kyburz D. TLR2 stimulation impairs anti-inflammatory activity of M2-like macrophages, generating a chimeric M1 / M2 phenotype. Arthritis Res Ther. - 2017. - V. 19: 245; Schlaepfer E., Rochat MA., Duo L, Speck RF Triggering TLR2, -3, -4, -5, and -8 Reinforces the Restrictive Nature of M1- and M2-Polarized Macrophages to HIV. J Virology. - 2014 .-- V. 88. - P. 9769-9781). The disadvantage of this method is the lack of established threshold values for the expression of M1 and M2 associated markers, as well as any data on the diagnostic accuracy (SP, SN) of the proposed approach.

Известен метод идентификации М2с клеток по экспрессии мертирозинкиназы (MerTK), которая появляется на макрофагах в результате контакта с апоптотическими клетками и вовлекается в их фагоцитоз (Zizzo G., Hilliard В.А., Monestier М., Cohen P.L. Efficient clearance of early apoptotic cells by human macrophages requires M2c polarization and MerTK induction. J Immunol. - 2012. - V. 189. - P. 3508-3520). Было показано, что экспрессия MerTK является специфичным маркером М2с клеток, дифференцированных в присутствии M-CSF с последующей поляризацией с помощью дексаметазона, или неполяризованных про-М2-клеток, имеющих фенотип CD14+CD16+CD163+CD204+CD206+CD209-. В то же время использование про-М1 дифференцирующего фактора (GM-CSF) не сопровождается значимым усилением экспрессии MerTK, в том числе в ответ на поляризующую стимуляцию дексаметазоном.A known method for the identification of M2c cells by the expression of merthyrosine kinase (MerTK), which appears on macrophages as a result of contact with apoptotic cells and is involved in their phagocytosis (Zizzo G., Hilliard B.A., Monestier M., Cohen PL Efficient clearance of early apoptotic cells by human macrophages requires M2c polarization and MerTK induction. J Immunol. - 2012 .-- V. 189. - P. 3508-3520). It has been shown that the expression of MerTK is a specific marker of M2c cells differentiated in the presence of M-CSF followed by polarization with dexamethasone, or non-polarized pro-M2 cells having the phenotype CD14 + CD16 + CD163 + CD204 + CD206 + CD209-. At the same time, the use of pro-M1 differentiating factor (GM-CSF) is not accompanied by a significant increase in MerTK expression, including in response to polarizing stimulation with dexamethasone.

Недостатком метода является ограниченная сфера применения исключительно только в отношении M-CSF-дифференцированных М2с макрофагов, неполяризованных или поляризованных глюкортикоидами.The disadvantage of this method is the limited scope exclusively for M-CSF-differentiated M2c macrophages that are unpolarized or polarized by glucorticoids.

Известен метод идентификации типа макрофагов по характеру и уровню продукции ими цитокинов и хемокинов, которые определяются методами иммуноферментного и/или мультиплексного протеомного анализа. Согласно этому методу М1 макрофаги характеризуются продукцией TNFα, IL-1β, IFN-λ, IL-6, IL-8, IL-12, IL-23 и хемокинов CXCL9, CXCL10, CCL2, CCL3, CCL4, CCL5, CCL8, CCL9, CCL10, CCL11, CCL15, CCL19, CCL20. Для М2а макрофагов характерна продукция TGF-β, IL-4, IL-10, IL-13, IGF-1, CCL13, CCL17, CCL22, CCL23, CCL24, CCL26. М2b макрофаги продуцируют IL-1, IL-6, IL-10, TNF-α, CCL1, CCL20, CXCL1, CXCL2, CXCL3; для М2с - IL-10, TGF-β, IGF-1, PGE-2, CCL8, CCL17, CCL18, CCL22, CCL24, а M2d - IL-10, IL-12, TNFα, TGF-β, CCL5, CXCL10, CXCL16 (Mantovani A., Sica A., Sozzani S., Allavena P., Vecchi A., Locati M. The chemokine system in diverse forms of macrophage activation and polarization. Trends Immunol. - 2004. - V. 25. - P. 677-686; Verreck F.A.W., de Boer T, Langenberg D.M.L., et al. Human IL-23-producing type 1 macrophages promote but IL-10-producing type 2 macrophages subvert immunity to (myco)bacteria. Proc Natl Acad Sci USA. - 2004. - V. 101.-P. 4560-4565).A known method for identifying the type of macrophages by the nature and level of their production of cytokines and chemokines, which are determined by enzyme-linked immunosorbent and / or multiplex proteomic analysis. According to this method, M1 macrophages are characterized by the production of TNFα, IL-1β, IFN-λ, IL-6, IL-8, IL-12, IL-23 and chemokines CXCL9, CXCL10, CCL2, CCL3, CCL4, CCL5, CCL8, CCL9, CCL10, CCL11, CCL15, CCL19, CCL20. M2a macrophages are characterized by the production of TGF-β, IL-4, IL-10, IL-13, IGF-1, CCL13, CCL17, CCL22, CCL23, CCL24, CCL26. M2b macrophages produce IL-1, IL-6, IL-10, TNF-α, CCL1, CCL20, CXCL1, CXCL2, CXCL3; for M2c - IL-10, TGF-β, IGF-1, PGE-2, CCL8, CCL17, CCL18, CCL22, CCL24, and M2d - IL-10, IL-12, TNFα, TGF-β, CCL5, CXCL10, CXCL16 (Mantovani A., Sica A., Sozzani S., Allavena P., Vecchi A., Locati M. The chemokine system in diverse forms of macrophage activation and polarization. Trends Immunol. - 2004. - V. 25. - P 677-686; Verreck FAW, de Boer T, Langenberg DML, et al. Human IL-23-producing type 1 macrophages promote but IL-10-producing type 2 macrophages subvert immunity to (myco) bacteria. Proc Natl Acad Sci USA . - 2004. - V. 101.-P. 4560-4565).

Основным недостатком такого подхода является вариабельность продукции цитокинов/хемокинов, а также значительные технические сложности, связанные с необходимостью определения большого количества аналитов с использованием соответствующего оборудования и реагентики для мультиплексного анализа. Кроме того, при таком подходе опять же не определены пороговые значения уровня продукции тех или иных цитокинов/хемокинов, которые бы позволяли с высокой диагностической точностью различать секреторные паттерны, специфичные для М1 или М2 функциональных фенотипов Мϕ человека.The main disadvantage of this approach is the variability of the production of cytokines / chemokines, as well as significant technical difficulties associated with the need to determine a large number of analytes using appropriate equipment and reagents for multiplex analysis. In addition, with this approach, again, threshold values for the production level of certain cytokines / chemokines were not determined, which would make it possible to distinguish with high diagnostic accuracy secretory patterns specific for M1 or M2 functional phenotypes of human Mϕ.

Известен метод идентификации типа макрофагов по маркерам липидного метаболизма, которые оцениваются методом матричной лазерной десорбционно/ионизационной масс-спектрометрии (MALDI MSI) (Khamehgir-Silz Р., Schnitter F., Wagner А.Н., et al. Strategy for marker-based differentiation of pro- and anti-inflammatory macrophages using matrix-assisted laser desorption/ionization mass spectrometry imaging. Analyst. - 2018. - V. 143. - P. 4273-4282).A known method for identifying the type of macrophages by lipid metabolism markers, which are evaluated by matrix laser desorption / ionization mass spectrometry (MALDI MSI) (Khamehgir-Silz R., Schnitter F., Wagner A.N., et al. Strategy for marker-based differentiation of pro- and anti-inflammatory macrophages using matrix-assisted laser desorption / ionization mass spectrometry imaging. Analyst. - 2018 .-- V. 143. - P. 4273-4282).

Главным недостатком предложенного метода является то, что он не позволяет определить универсальные маркеры М1- и М2-клеток на метаболическом уровне из-за выраженной гетерогенности моноцитов/макрофагов, полученных от разных доноров. Кроме того, существенными недостатками предложенного метода являются значительная техническая сложность и, соответственно, высокая стоимость.The main drawback of the proposed method is that it does not allow us to determine universal markers of M1 and M2 cells at the metabolic level due to the pronounced heterogeneity of monocytes / macrophages obtained from different donors. In addition, significant disadvantages of the proposed method are significant technical complexity and, consequently, high cost.

Известен метод идентификации типа макрофагов на основе оценки спектральной характеристики Мϕ после их взаимодействия с органическим соединением (JP 2015006173, C12N5/0786, 2015). Особенностью данного органического соединения является то, что его окрашиваемость меняется при добавлении его к тому или иному типу Мϕ (М1 или М2), в результате чего регистрируются М1- или М2-специфичные спектральные характеристики.A known method for identifying the type of macrophages based on the assessment of the spectral characteristics of Mϕ after their interaction with an organic compound (JP 2015006173, C12N5 / 0786, 2015). A feature of this organic compound is that its colorability changes when it is added to a particular type of Mϕ (M1 or M2), as a result of which M1 or M2-specific spectral characteristics are recorded.

К недостаткам предложенного способа можно отнести значительную сложность его практического применения, связанную с необходимостью проведения спектрального анализа, а также недостаточно данных в патенте об «авторском» органическом соединении, что не позволяет оценить диагностическую точность идентификации типа макрофагов.The disadvantages of the proposed method include the significant complexity of its practical application, associated with the need for spectral analysis, as well as insufficient data in the patent on the "copyright" organic compound, which does not allow to evaluate the diagnostic accuracy of identification of the type of macrophages.

В качестве прототипа предлагаемого изобретения рассматривается способ идентификации функционального М1 и М2 фенотипа макрофагов человека, генерированных in vitro из моноцитов крови, заключающийся в оценке влияния клеток, полученных путем культивирования моноцитов периферической крови здоровых доноров в присутствии М1- или М2-поляризующих стимулов, на пролиферативный ответ Т-лимфоцитов в смешанной культуре лейкоцитов (СКЛ) (Mia S., Warnecke A., Zhang Х.-М., Malmstrom V., Harris RA. An optimized protocol for human M2 macrophages using M-CSF and IL-4/IL-10/TGF-β yields a dominant immunosuppressive phenotype. Scand J Immunol. - 2014. - V. 79. - P. 305-314). В способе-прототипе моноциты выделяют из мононуклеарных клеток (МНК) крови методом магнитной сепарации на бусах, покрытых анти-CD14-моноклональными антителами. Выделенные CD14-позитивные моноциты культивируют в течение 24 ч в присутствии поляризующих стимулов. В качестве М1-поляризующих сигналов используют комбинацию ЛПС и IFN-γ. В качестве М2-поляризующих стимулов используют 3 комбинации цитокинов: либо IL-4/IL-10, либо IL-4/IL-13, либо IL-4/IL-10/TGF-β. М1 и М2 макрофаги человека, генерированные in vitro из моноцитов крови, идентифицируют по их влиянию на пролиферативный ответ аутологичных Т-клеток в СКЛ. Для этого, генерированные М1- или М2-макрофаги со-культивируют с аутологичными МНК в соотношении 1:4-1:8 в течение 72 ч в присутствии моноклональных анти-CD3-антител. Уровень анти-CD3-стимулированного пролиферативного ответа аутологичных Т-клеток оценивают радиометрически по включению 3Н-тимидина. Согласно способу-прототипу M1(ЛПС/IFN-γ) макрофаги, генерированные из моноцитов крови здоровых доноров, усиливают пролиферацию Т-лимфоцитов, тогда как, M2(IL-4/IL-10) и M2(IL-4/IL-10/TGF-β) макрофаги снижают пролиферативный ответ аутологичных Т-клеток. Однако, М2 макрофаги, поляризованные с помощью IL-4/IL-13, значимо не влияют на интенсивность пролиферации в ауто-СКЛ. Способ-прототип был использован также для идентификации М1 и М2 макрофагов у пациентов с рассеянным склерозом (PC) и спондилоартритом (СпА). У больных с аутоиммунной патологией M2(IL-4/IL-10/TGF-β) макрофаги снижают пролиферацию аутологичных Т-клеток. Однако М1(ЛПС/IFN-γ) макрофаги больных СпА не усиливают, а у больных PC даже супрессируют пролиферацию Т-клеток в ауто-СКЛ, т.е. проявляют М2-подобные свойства. При этом какие-либо данные об эффектах двух других подтипов М2 макрофагов больных РС/СпА, поляризованных с помощью IL-4/IL-10 или IL-4/IL-13, в способе-прототипе отсутствуют.As a prototype of the present invention, a method for identifying the functional M1 and M2 phenotype of human macrophages generated in vitro from blood monocytes is examined, which consists in assessing the effect of cells obtained by culturing healthy blood donor peripheral blood monocytes in the presence of M1 or M2 polarizing stimuli on the proliferative response T-lymphocytes in mixed culture of leukocytes (SCR) (Mia S., Warnecke A., Zhang H.-M., Malmstrom V., Harris RA. An optimized protocol for human M2 macrophages using M-CSF and IL-4 / IL -10 / TGF-β yields a dominant immunosuppressive phenotype. Scand J Immunol. - 2014 .-- V. 79. - P. 305-314). In the prototype method, monocytes are isolated from blood mononuclear cells (MNCs) by magnetic separation on beads coated with anti-CD14 monoclonal antibodies. Isolated CD14-positive monocytes were cultured for 24 hours in the presence of polarizing stimuli. As M1-polarizing signals, a combination of LPS and IFN-γ is used. Three combinations of cytokines are used as M2-polarizing stimuli: either IL-4 / IL-10, or IL-4 / IL-13, or IL-4 / IL-10 / TGF-β. M1 and M2 human macrophages generated in vitro from blood monocytes are identified by their influence on the proliferative response of autologous T cells in SCR. For this, the generated M1 or M2 macrophages are co-cultured with autologous MNCs in a ratio of 1: 4-1: 8 for 72 hours in the presence of monoclonal anti-CD3 antibodies. The level of anti-CD3-stimulated proliferative response of autologous T cells is evaluated radiometrically by incorporation of 3 H-thymidine. According to the prototype method M1 (LPS / IFN-γ), macrophages generated from blood monocytes from healthy donors enhance the proliferation of T lymphocytes, while M2 (IL-4 / IL-10) and M2 (IL-4 / IL-10 / TGF-β) macrophages reduce the proliferative response of autologous T cells. However, M2 macrophages polarized using IL-4 / IL-13 do not significantly affect the proliferation rate in auto-SCR. The prototype method was also used to identify M1 and M2 macrophages in patients with multiple sclerosis (PC) and spondylitis (SpA). In patients with autoimmune pathology M2 (IL-4 / IL-10 / TGF-β), macrophages reduce the proliferation of autologous T cells. However, the M1 (LPS / IFN-γ) macrophages of patients with SpA do not enhance, and in patients with PCs they even suppress the proliferation of T cells in auto-SCR, i.e. exhibit M2-like properties. In this case, any data on the effects of two other subtypes of M2 macrophages of patients with MS / SPA polarized using IL-4 / IL-10 or IL-4 / IL-13 are absent in the prototype method.

Недостатком данного способа является сам способ генерации макрофагов человека, в котором исключен этап дифференцировки моноцитов в про-М1 или про-М2 макрофаги под влиянием GM-CSF или M-CSF, соответственно. Авторы сразу используют краткосрочную, 24-часовую инкубацию CD14-позитивных моноцитов крови с М1- (ЛПС/IFN-γ) или М2- (IL-4/IL-10; IL-4/IL-13; IL-4/IL-10/TGF-β) поляризующими стимулами. В результате в культуре in vitro генерируются скорее всего М1- и М2-подобные активированные моноциты (но не дифференцированные макрофаги), что признают и сами авторы. Кроме того, для выделения моноцитов из периферической крови не обязательно использовать относительно дорогостоящий метод магнитной сепарации. Обогащенную популяцию моноцитов можно получить также более простым способом путем адгезии МНК периферической крови на пластике. Также недостатком способа-прототипа является то, что авторы предлагают идентифицировать М1 и М2 макрофаги человека, генерированные in vitro из моноцитов крови, по их влиянию на пролиферативный ответ аутологичных Т-клеток в СКЛ. В этом случае уровень пролиферации в ауто-СКЛ будет определяться не только М1/провоспалительным или М2\противовспалительным фенотипом макрофагов, но и функциональным состоянием самих Т-лимфоцитов, что особенно актуально при какой-либо патологии. Очевидно, что именно по этой причине предложенный подход оказался малоэффективным у больных с аутоиммунными заболеваниями. Также к недостаткам способа-прототипа можно отнести то, что авторы не показали его универсальности в отношении идентификации не только про-М1 или про-М2 клеток (т.е. макрофагов, генерированных из моноцитов крови в присутствии дифференцировочных GM-CSF или M-CSF факторов), но и в отношении идентификации других подтипов М2 макрофагов, поляризованных с помощью других известных стимулов (например, дексаметазона, или в результате фагоцитоза апоптотических клеток). Наконец, существенным недостатком способа-прототипа является также отсутствие установленных пороговых значений уровня пролиферативного ответа Т-клеток в СКЛ, которые позволяли бы с высокой диагностической точностью (специфичностью и чувствительностью) верифицировать М1 и М2 функциональные фенотипы генерированных in vitro макрофагов человека.The disadvantage of this method is the very method of generating human macrophages, which excludes the stage of differentiation of monocytes into pro-M1 or pro-M2 macrophages under the influence of GM-CSF or M-CSF, respectively. The authors immediately use a short-term, 24-hour incubation of CD14-positive blood monocytes with M1- (LPS / IFN-γ) or M2- (IL-4 / IL-10; IL-4 / IL-13; IL-4 / IL- 10 / TGF-β) polarizing stimuli. As a result, in vitro culture, M1- and M2-like activated monocytes (but not differentiated macrophages) are most likely generated, which the authors themselves admit. In addition, it is not necessary to use the relatively expensive magnetic separation method to isolate monocytes from peripheral blood. An enriched population of monocytes can also be obtained in a simpler way by adhesion of peripheral blood MNCs on plastic. Another disadvantage of the prototype method is that the authors propose to identify M1 and M2 human macrophages generated in vitro from blood monocytes by their effect on the proliferative response of autologous T cells in SCR. In this case, the proliferation level in auto-SCR will be determined not only by the M1 / pro-inflammatory or M2 \ anti-inflammatory macrophage phenotype, but also by the functional state of the T-lymphocytes themselves, which is especially important for any pathology. Obviously, for this reason, the proposed approach was ineffective in patients with autoimmune diseases. The disadvantages of the prototype method include the fact that the authors did not show its universality in identifying not only pro-M1 or pro-M2 cells (i.e. macrophages generated from blood monocytes in the presence of differentiating GM-CSF or M-CSF factors), but also in relation to the identification of other subtypes of M2 macrophages polarized using other known stimuli (for example, dexamethasone, or as a result of phagocytosis of apoptotic cells). Finally, a significant drawback of the prototype method is the lack of established threshold values for the level of proliferative response of T cells in SCR, which would allow verification of the M1 and M2 functional phenotypes of human macrophages generated in vitro with high diagnostic accuracy (specificity and sensitivity).

Задачей изобретения является повышение диагностической точности способа идентификации макрофагов человека первого (М1) и второго (М2) типа.The objective of the invention is to increase the diagnostic accuracy of the method for identifying human macrophages of the first (M1) and second (M2) type.

Поставленная задача достигается тем, что в способе идентификации функционального М1 и М2 фенотипа макрофагов человека, генерированных in vitro из моноцитов крови, заключающегося в оценке влияния клеток, полученных путем культивирования моноцитов периферической крови здоровых доноров в присутствии М1- или М2-поляризующих стимулов, на пролиферативный ответ Т-лимфоцитов в смешанной культуре лейкоцитов (СКЛ), сначала генерируют про-М1 и про-М2 макрофаги в течение 5 суток в присутствии GM-CSF и M-CSF, соответственно, затем в течение 2 суток индуцируют их поляризацию в М1 фенотип с помощью липополисахаридов (ЛПС), а также в М2а, М2с и М2апо фенотип с помощью IL-4, дексаметазона и апоптотических нейтрофилов, соответственно, после чего оценивают стимуляторную активность про-М1 и про-М2, а также поляризованных М1 и М2 макрофагов в отношении аллогенных Т-клеток, полученных от 2-3 здоровых доноров.This object is achieved in that in a method for identifying the functional M1 and M2 phenotype of human macrophages generated in vitro from blood monocytes, which consists in assessing the effect of cells obtained by culturing peripheral blood monocytes from healthy donors in the presence of M1 or M2 polarizing stimuli on proliferative response of T-lymphocytes in a mixed culture of leukocytes (SCR), first pro-M1 and pro-M2 macrophages are generated for 5 days in the presence of GM-CSF and M-CSF, respectively, then they are induced for 2 days the polarization in the M1 phenotype using lipopolysaccharides (LPS), as well as in the M2a, M2c and M2apo phenotype using IL-4, dexamethasone and apoptotic neutrophils, respectively, after which the stimulatory activity of pro-M1 and pro-M2, as well as polarized M1, is evaluated and M2 macrophages in relation to allogeneic T cells obtained from 2-3 healthy donors.

Низкая стимуляторная активность про-М2 макрофагов в алло-СКЛ при значениях ИС<3,0 расч. ед. отличает их от про-М1 клеток со специфичностью 92% и чувствительностью 80%.Low stimulatory activity of pro-M2 macrophages in allo-SCR with IP values <3.0 calc. units distinguishes them from pro-M1 cells with a specificity of 92% and a sensitivity of 80%.

Низкая стимуляторная активность М2 (М2а, М2с, М2апо) макрофагов, поляризованных из GM-CSF-дифференцированных про-М1 клеток, в алло-СКЛ при значениях ИС<3,7 расч. ед. отличает их от М1 макрофагов, поляризованных из GM-CSF-дифференцированных про-М1 клеток, со специфичностью 91% и чувствительностью 80.4%.Low stimulatory activity of M2 (M2a, M2s, M2apo) macrophages polarized from GM-CSF-differentiated pro-M1 cells in allo-SCR with IP values <3.7 calc. units distinguishes them from M1 macrophages polarized from GM-CSF-differentiated pro-M1 cells with a specificity of 91% and a sensitivity of 80.4%.

Низкая стимуляторная активность М2 (М2а, М2с) макрофагов, поляризованных из M-CSF-дифференцированных про-М2 клеток, в алло-СКЛ при значениях ИС<2.95 расч. ед. отличает их от М1 макрофагов, поляризованных из M-CSF-дифференцированных про-М2 клеток, со специфичностью 89% и чувствительностью 81%.Low stimulatory activity of M2 (M2a, M2c) macrophages polarized from M-CSF-differentiated pro-M2 cells in allo-SCR with IP values <2.95 calc. units distinguishes them from M1 macrophages polarized from M-CSF-differentiated pro-M2 cells, with a specificity of 89% and a sensitivity of 81%.

По нашему мнению предлагаемый способ является новым и обладает изобретательским уровнем.In our opinion, the proposed method is new and has an inventive step.

В современной литературе отсутствуют указания на предлагаемый способ идентификации функционального М1 и М2 фенотипа макрофагов человека, генерированных in vitro из моноцитов крови, и по использованию данного способа для идентификации про-М1 и про-М2, генерированных из моноцитов крови в присутствии дифференцировочных факторов (GM-CSF и M-CSF, соответственно), а также М1 и М2 макрофагов, генерированных из про-М1 или про-М2 клеток под влиянием различных поляризующих сигналов (ЛПС для М1, и IL-4, дексаметазон, эффероцитоз для М2).There is no evidence in the modern literature on the proposed method for identifying the functional M1 and M2 phenotype of human macrophages generated in vitro from blood monocytes, and for the use of this method for identifying pro-M1 and pro-M2 generated from blood monocytes in the presence of differentiating factors (GM- CSF and M-CSF, respectively), as well as M1 and M2 macrophages generated from pro-M1 or pro-M2 cells under the influence of various polarizing signals (LPS for M1, and IL-4, dexamethasone, efferocytosis for M2).

Как в способе-прототипе, так и в способах-аналогах для идентификации М1 и М2 макрофагов предлагается оценивать те или иные отдельные фенотипические и/или функциональные параметры. Либо уровень экспрессии антигенов гистосовместимости II класса (HLA-DR), ко-стимуляторных молекул (CD86, CD40), акцепторных scavenger-рецепторов (CD36, CD163) и маннозного CD206-рецептора, либо уровень и спектр секретируемых цитокинов/хемокинов, либо уровень экспрессии и активности различных ферментативных систем. Однако, диагностическая точность таких подходов остается неопределенной, поскольку не установлены пороговые значения тех или иных параметров, которые позволяли бы с высокой специфичностью и чувствительностью верифицировать М1 и М2 функциональные фенотипы генерированных in vitro макрофагов человека.Both in the prototype method and in analogue methods for identifying macrophages M1 and M2, it is proposed to evaluate certain individual phenotypic and / or functional parameters. Either the expression level of histocompatibility class II antigens (HLA-DR), co-stimulatory molecules (CD86, CD40), acceptor scavenger receptors (CD36, CD163) and mannose CD206 receptor, or the level and spectrum of secreted cytokines / chemokines, or the expression level and the activity of various enzymatic systems. However, the diagnostic accuracy of such approaches remains uncertain, since threshold values of certain parameters have not been established that would allow verification of the M1 and M2 functional phenotypes of human macrophages generated in vitro with high specificity and sensitivity.

Нами предлагается оценивать только один параметр, а именно, выраженность стимуляторной активности макрофагов в алло-СКЛ. По нашему мнению именно этот показатель является интегративным, поскольку детерминируется совокупностью вышеперечисленных клеточных параметров. Очевидно, что макрофаги М1/провоспалительного фенотипа, которые высоко экспрессируют молекулы, вовлеченные в активацию и ко-стимуляцию Т-лимфоцитов (HLA-DR, CD86, CD40), а также активно секретируют иммунорегуляторные (IL-12, IL-23), но не иммуносупрессорные (IL-10, TGF-β) цитокины будут индуцировать более выраженный пролиферативный ответ Т-лимфоцитов на аллоантигены в СКЛ, чем макрофаги оппозитного М2/противовоспалительного фенотипа.We propose to evaluate only one parameter, namely, the severity of the stimulatory activity of macrophages in allo-SCR. In our opinion, this particular indicator is integrative, since it is determined by the totality of the above cellular parameters. Obviously, the M1 macrophages / pro-inflammatory phenotype, which highly express the molecules involved in the activation and co-stimulation of T-lymphocytes (HLA-DR, CD86, CD40), and also actively secrete immunoregulatory (IL-12, IL-23), but non-immunosuppressive (IL-10, TGF-β) cytokines will induce a more pronounced proliferative response of T-lymphocytes to alloantigens in SCR than macrophages of the opposite M2 / anti-inflammatory phenotype.

В способе-прототипе совсем не оценивают про-М1 и про-М2 клетки, генерированные из моноцитов крови в присутствии дифференцировочных GM-CSF или M-CSF факторов, а для поляризации моноцитов в М1 и М2 макрофаги используют достаточно дорогостоящие реактивы, а именно различные рекомбинантные цитокины (ЛПС/IFN-γ - для поляризации в М1-макрофаги; IL-4/IL-10/IL-13/TGF-β - для поляризации в М2-макрофаги). Предложенный способ позволяет оценивать практически все известные на сегодняшний день популяции М1 и М2 клеток, включая как про-М1 и про-М2 клетки, а также полученные из них поляризованные М1 и М2 (М2а, М2с, М2апо) макрофаги, используя при этом более доступные средства. Поляризацию про-М1 и про-М2 клеток в М1 макрофаги осуществляют с помощью ЛПС (без IFN-γ), в М2 макрофаги М2а фенотипа - с помощью IL-4, в М2с фенотипа - с помощью дексаметазона и М2апо фенотипа - с помощью апоптотических нейтрофилов.In the prototype method, pro-M1 and pro-M2 cells generated from blood monocytes in the presence of differentiating GM-CSF or M-CSF factors are not evaluated at all, and rather expensive reagents are used for polarizing monocytes in M1 and M2, namely, various recombinant cytokines (LPS / IFN-γ for polarization in M1 macrophages; IL-4 / IL-10 / IL-13 / TGF-β for polarization in M2 macrophages). The proposed method allows to evaluate almost all populations of M1 and M2 cells known to date, including both pro-M1 and pro-M2 cells, as well as the polarized M1 and M2 (M2a, M2c, M2apo) macrophages obtained from them, using the more accessible funds. The pro-M1 and pro-M2 cells are polarized in M1 macrophages using LPS (without IFN-γ), in M2 macrophages of M2a phenotype - using IL-4, in M2c phenotype - using dexamethasone and M2apo phenotype - using apoptotic neutrophils .

В способе-прототипе М1 и М2 макрофаги идентифицируют в смешанной культуре лейкоцитов (СКЛ) по их влиянию на пролиферацию аутологичных Т-клеток, т.е. тестируемые макрофаги со-культивируют с Т-лимфоцитами, полученными от одного и того же человека. Такой подход не исключает вероятности того, что уровень пролиферативного ответа в СКЛ и, соответственно, точность определения фенотипа тестируемых макрофагов будет во многом зависеть, в том числе, от функционального состояния самих Т-клеток. Наличие каких-либо Т-клеточных дисфункций может приводить к искажению результатов идентификации. В предложенном способе тестируемые макрофаги со-культивируют в СКЛ с аллогенными Т-лимфоцитами, полученными от 2-3 здоровых доноров, что исключает возможность негативного влияния функционального статуса Т-клеток на результат оценки функционального М1 и М2 фенотипа макрофагов.In the prototype method M1 and M2, macrophages are identified in a mixed culture of leukocytes (SCR) by their effect on the proliferation of autologous T cells, i.e. tested macrophages co-cultured with T-lymphocytes obtained from the same person. This approach does not exclude the likelihood that the level of proliferative response in SCR and, accordingly, the accuracy of determining the phenotype of the tested macrophages will largely depend, including on the functional state of the T cells themselves. The presence of any T-cell dysfunctions can lead to a distortion of the identification results. In the proposed method, the tested macrophages are co-cultured in SCR with allogeneic T-lymphocytes obtained from 2-3 healthy donors, which excludes the possibility of negative influence of the functional status of T-cells on the result of the assessment of the functional M1 and M2 macrophage phenotype.

На основе полученных нами данных предлагается изобретение, направленное на повышение диагностической точности идентификации макрофагов человека первого (М1) и второго (М2) типа.Based on our data, we propose an invention aimed at improving the diagnostic accuracy of identification of human macrophages of the first (M1) and second (M2) type.

Предложенный способ идентификации макрофагов человека первого (М1) и второго (М2) типа осуществляется следующим образом.The proposed method for identifying human macrophages of the first (M1) and second (M2) type is as follows.

Мононуклеарные клетки (МНК) человека получают центрифугированием гепаринизированной венозной крови (из расчета 50 Ед/мл гепарина) в градиенте плотности фиколла-верографина в течение 20 мин при 3000 об/мин. Собранные из интерфазы МНК двукратно отмывают, подсчитывают количество, и ресуспендируют в культуральной среде RPMI-1640, дополненной 0,05 мМ 2-меркаптоэтанола, 2 мМ пирувата натрия, 0,3 мг/мл L-глутамина, 1% незаменимых аминокислот, 10% фетальной телячьей сыворотки (FBS, Биолот, Россия), в присутствии рекомбинантного GM-CSF человека (для генерации про-М1 Мϕ) или рекомбинантного M-CSF человека (для генерации про-М2 Мϕ) в дозе 50 нг/мл. Затем МНК в концентрации 4×106/мл инкубируют в течение 1 часа при 37°С и 5% СО2 в стерильных пластиковых чашках Петри или флаконах площадью 25 см2 (Falcon), в зависимости от количества выделенных клеток. После удаления неприлипших к пластику клеток, адгезивные клетки, из которых не менее 90-93% экспрессируют CD14 - линейный маркер моноцитов, культивируют в полной культуральной среде в течение 7 сут при 37°С и 5% СО2.Human mononuclear cells (MNCs) are obtained by centrifugation of heparinized venous blood (at the rate of 50 U / ml heparin) in the density gradient of ficoll-verographin for 20 min at 3000 rpm. The MNCs collected from the interphase are washed twice, the amount is counted, and resuspended in RPMI-1640 culture medium supplemented with 0.05 mM 2-mercaptoethanol, 2 mM sodium pyruvate, 0.3 mg / ml L-glutamine, 1% essential amino acids, 10% fetal calf serum (FBS, Biolot, Russia), in the presence of recombinant human GM-CSF (to generate pro-M1 Mϕ) or recombinant human M-CSF (to generate pro-M2 Mϕ) at a dose of 50 ng / ml. Then, MNCs at a concentration of 4 × 10 6 / ml were incubated for 1 hour at 37 ° C and 5% CO 2 in sterile plastic Petri dishes or 25 cm 2 vials (Falcon), depending on the number of cells isolated. After removal of cells that did not adhere to the plastic, adhesive cells, of which at least 90-93% express CD14, a linear marker of monocytes, are cultured in a complete culture medium for 7 days at 37 ° C and 5% CO 2 .

Для генерации М1 и М2 макрофагов в культуры GM-CSF-дифференцированных про-М1 клеток или M-CSF-дифференцированных про-М2 клеток на 5-й день добавляют поляризующие стимулы: для генерации М1 макрофагов используют липополисахарид (ЛПС; 10 мкг/мл), для М2а -интерлейкин-4 (ИЛ-4; 20 нг/мл), для М2с - дексаметазон (Декс; 50 нг/мл).For the generation of M1 and M2 macrophages in cultures of GM-CSF-differentiated pro-M1 cells or M-CSF-differentiated pro-M2 cells, polarizing stimuli are added on the 5th day: lipopolysaccharide (LPS; 10 μg / ml) is used to generate M1 macrophages for M2a - interleukin-4 (IL-4; 20 ng / ml), for M2s - dexamethasone (Dex; 50 ng / ml).

Для генерации М2апо Мϕ к монослою GM-CSF-дифференцированных про-М1 клеток добавляют нейтрофилы, подвергшиеся спонтанному апоптозу (количество AnnexinV+PI- клеток на ранних стадиях апоптоза и AnnexinV+PI+ клеток на поздних стадиях апоптоза составляло в среднем 61 и 12%, соответственно), в количестве 1-2×106/мл (из расчета ≈ 10 нейтрофилов на макрофаг) и инкубируют в течение 60 мин при 37°С и 5% CO2.To generate M2apo Mφ to the monolayer GM-CSF-differentiated pro-M1 cells was added neutrophils subjected to spontaneous apoptosis (number AnnexinV + PI - cells in the early stages of apoptosis and AnnexinV + PI + cells in late stages of apoptosis averaged 61 and 12%, respectively), in an amount of 1-2 × 10 6 / ml (based on ≈ 10 neutrophils per macrophage) and incubated for 60 min at 37 ° C and 5% CO 2 .

По окончании срока генерации культуральную среду удаляют, а полученные про-М1 и про-М2 клетки, а также поляризованные М1 и М2 макрофаги отделяют от пластика при помощи механической диссоциации, подсчитывают количество клеток и определяют их жизнеспособность (по исключению трипанового синего).At the end of the generation period, the culture medium is removed, and the obtained pro-M1 and pro-M2 cells, as well as polarized M1 and M2 macrophages, are separated from the plastic using mechanical dissociation, the number of cells is counted and their viability is determined (with the exception of trypan blue).

Аллостимуляторную активность макрофагов определяют по их способности стимулировать пролиферацию аллогенных Т-клеток в смешанной культуре лейкоцитов (алло-СКЛ). Для этого МНК (1×105/лунку), полученные от 2-3 здоровых доноров крови, культивируют в 96-луночном круглодонном планшете в RPMI-1640, содержащей 10% инактивированной сыворотки AB(IV) группы, в отсутствие (контроль) или присутствии различных типов макрофагов (в соотношении МНК:Мϕ=10:1). Пролиферацию Т-клеток оценивают радиометрически на 5 сутки по включению [3Н]-тимидина, который вносят за 18 часов до окончания культивирования в дозе 1 мкКю/лунку. Аллостимуляторную активность Мϕ выражают в виде индекса стимуляции (ИС), который рассчитывают как отношение пролиферативного ответа МНК в присутствии Мϕ к уровню спонтанной пролиферации МНК (без макрофагов).Allostimulatory activity of macrophages is determined by their ability to stimulate the proliferation of allogeneic T cells in a mixed culture of leukocytes (allo-SCR). For this, MNCs (1 × 10 5 / well) obtained from 2-3 healthy blood donors were cultured in a 96-well round-bottom plate in RPMI-1640 containing 10% inactivated serum AB (IV) group, in the absence (control) or the presence of various types of macrophages (in the ratio of MNC: Mϕ = 10: 1). T-cell proliferation was evaluated radiometrically on day 5 by the incorporation of [3H] -thymidine, which was introduced 18 hours before the end of cultivation at a dose of 1 μC / well. Allostimulatory activity of Mϕ is expressed as a stimulation index (IS), which is calculated as the ratio of the proliferative response of MNCs in the presence of Mϕ to the level of spontaneous proliferation of MNCs (without macrophages).

Приведенные ниже примеры конкретной реализации способа иллюстрируют диагностическую точность предложенного способа идентификации функционального М1 и М2 фенотипа макрофагов человека, генерированных in vitro из моноцитов крови.The following examples of a specific implementation of the method illustrate the diagnostic accuracy of the proposed method for identifying the functional M1 and M2 phenotype of human macrophages generated in vitro from blood monocytes.

Пример 1.Example 1

Из моноцитов крови здоровых доноров генерировали GM-CSF-дифференцированные про-М1 и M-CSF-дифференцированные про-М2 макрофаги, после чего оценили их стимуляторную активность в алло-СКЛ. На рис. 1 показана аллостимуляторная активность GM-CSF-дифференцированных про-М1 и M-CSF-дифференцированных про-М2 макрофагов. Данные представлены в виде M±SEM. Видно, что по сравнению с про-М1 клетками индекс стимуляции про-М2 клеток в алло-СКЛ был в 2 раза ниже, составляя в среднем 2,28 против 4,6 расч. ед. (pU<0,05).From blood monocytes of healthy donors, GM-CSF-differentiated pro-M1 and M-CSF-differentiated pro-M2 macrophages were generated, after which their stimulatory activity in allo-SCR was evaluated. In fig. 1 shows the allostimulatory activity of GM-CSF-differentiated pro-M1 and M-CSF-differentiated pro-M2 macrophages. Data are presented as M ± SEM. It can be seen that, compared with pro-M1 cells, the stimulation index of pro-M2 cells in allo-SCR was 2 times lower, averaging 2.28 versus 4.6 calc. units (p U <0.05).

На рис. 2 представлена ROC-кривая (receiver-operator curve, ROC), иллюстрирующая отношение между чувствительностью и специфичностью для различных точек разделения индекса стимуляции GM-CSF-дифференцированных про-М1 и M-CSF-дифференцированных про-М2 макрофагов в алло-СКЛ. ROC-анализ операционных характеристик теста и построенная характеристическая ROC-кривая показали, что площадь под кривой (AUC) для данного теста составила 0.90 (95% ДИ 0,76-1,03, р=0,001). В соответствии с классификацией Swets J.A. площадь под ROC-кривой от 0,5 до 0,7 свидетельствует об относительно невысокой точности диагностического теста (Swets J.A. Measuring the accuracy of diagnostic systems. Science. - 1988. - V. 240. - P. 1285-1293). Если площадь под ROC-кривой варьирует от 0,7 до 0,9, то предложенный тест может быть использован в диагностических целях. Площадь под ROC-кривой выше 0,9 характеризует тест, обладающий наиболее высокой диагностической точностью. Поскольку в нашем случае площадь под ROC-кривой составляла 0,90, это свидетельствует о том, что оценка уровня аллостимуляторной активности Мϕ, генерированных in vitro из моноцитов крови, может быть использована для идентификации GM-CSF-дифференцированных про-М1 и M-CSF-дифференцированных про-М2 клеток.In fig. Figure 2 presents a ROC curve (receiver-operator curve, ROC) illustrating the relationship between sensitivity and specificity for different points of separation of the stimulation index of GM-CSF-differentiated pro-M1 and M-CSF-differentiated pro-M2 macrophages in allo SCR. The ROC analysis of the operational characteristics of the test and the constructed characteristic ROC curve showed that the area under the curve (AUC) for this test was 0.90 (95% CI 0.76-1.03, p = 0.001). According to Swets J.A. classification the area under the ROC curve from 0.5 to 0.7 indicates the relatively low accuracy of the diagnostic test (Swets J.A. Measuring the accuracy of diagnostic systems. Science. - 1988. - V. 240. - P. 1285-1293). If the area under the ROC curve varies from 0.7 to 0.9, then the proposed test can be used for diagnostic purposes. The area under the ROC curve above 0.9 characterizes the test with the highest diagnostic accuracy. Since in our case the area under the ROC curve was 0.90, this suggests that an assessment of the level of allostimulatory activity of Mϕ generated in vitro from blood monocytes can be used to identify GM-CSF-differentiated pro-M1 and M-CSF differentiated pro-M2 cells.

Построение характеристической ROC-кривой обеспечивает не только понимание того, что определенный тест является диагностически полезным и информативным, но позволяет также определить наиболее оптимальную точку разделения, т.е. такое пороговое значение теста, выше (или ниже) которого можно наиболее эффективно проводить диагностическую процедуру (Петри А., Сэбин К. Наглядная медицинская статистика. Москва: Издательская группа «ГЭОТАР-Медиа», 2009. - С. 108-110).The construction of the characteristic ROC curve provides not only the understanding that a certain test is diagnostically useful and informative, but also allows you to determine the most optimal separation point, i.e. such a threshold value of the test, above (or below) which it is possible to carry out the diagnostic procedure most effectively (Petri A., Sabin K. Visual medical statistics. Moscow: Publishing Group "GEOTAR-Media", 2009. - P. 108-110).

Поэтому следующим шагом в оценке построенной ROC-кривой стало определение чувствительности, специфичности и отношения правдоподобия для различных точек разделения. Для индекса стимуляции про-М1 и про-М2 клеток в алло-СКЛ точкой разделения, соответствующей максимальным показателям чувствительности (80%) и специфичности (92%) было пороговое значение <3,0 расч. ед. (отношение правдоподобия 9,60).Therefore, the next step in assessing the constructed ROC curve was to determine the sensitivity, specificity, and likelihood ratio for various separation points. For the stimulation index of pro-M1 and pro-M2 cells in allo-SCR, the separation point corresponding to the maximum sensitivity (80%) and specificity (92%) was the threshold value <3.0 calc. units (likelihood ratio 9.60).

Таким образом, низкая стимуляторная активность про-М2 макрофагов в алло-СКЛ при значениях ИС<3,0 расч. ед. отличает их от про-М1 клеток со специфичностью 92% и чувствительностью 80%.Thus, the low stimulatory activity of pro-M2 macrophages in allo-SCR with IP values <3.0 calc. units distinguishes them from pro-M1 cells with a specificity of 92% and a sensitivity of 80%.

Пример 2.Example 2

Из моноцитов крови здоровых доноров генерировали GM-CSF-дифференцированные про-М1, которые затем были поляризованы в М1 макрофаги с помощью ЛПС (М1лпс), или в М2 макрофаги с помощью или ИЛ-4 (М2а, М2ил-4), или дексаметазона (М2с, М2декс) или фагоцитоза апоптотических нейтрофилов (М2апо), после чего оценили их стимуляторную активность в алло-СКЛ. На рис. 3 показана аллостимуляторная активность М1 (М1Лпс) и М2 (М2ил-4, - М2декс, М2Апо) макрофагов, поляризованных из GM-CSF-дифференцированных про-М1 клеток. Данные представлены в виде M±SEM. Видно, что по сравнению с поляризованными М1 макрофагами индекс стимуляции всех трех субтипов поляризованных М2 макрофагов (М2ил-4, М2декс, М2апо) в алло-СКЛ был более чем в 5 раз ниже, составляя в среднем 2,25, 2,21 и 2,58 расч. ед. для М2ил-4, М2декс, М2Апо, соответственно, против 12,4 расч. ед. для М1лпс (pU<0,001).GM-CSF-differentiated pro-M1 was generated from blood monocytes of healthy donors, which were then polarized in M1 macrophages using LPS (M1 LPS ), or in M2 macrophages using either IL-4 (M2a, M2 il-4 ), or dexamethasone (M2c, M2 dex ) or phagocytosis of apoptotic neutrophils (M2 apo ), after which their stimulatory activity in allo-SCR was evaluated. In fig. Figure 3 shows the allostimulatory activity of M1 (M1 Lps ) and M2 (M2 il-4 , M2 dex , M2 Apo ) macrophages polarized from GM-CSF-differentiated pro-M1 cells. Data are presented as M ± SEM. It can be seen that, compared with polarized M1 macrophages, the stimulation index of all three subtypes of polarized M2 macrophages (M2 il-4 , M2 dex , M2 apo ) in allo-SCR was more than 5 times lower, averaging 2.25, 2, 21 and 2.58 calc. units for M2 il-4 , M2 dex , M2 Apo , respectively, against 12.4 calc. units for M1 lps (p U <0.001).

На рис. 4 представлена ROC-кривая, иллюстрирующая отношение между чувствительностью и специфичностью для различных точек разделения индекса стимуляции М1 и М2 (М2а, М2с и М2апо) макрофагов, поляризованных из GM-CSF-дифференцированных про-М1 клеток, в алло-СКЛ. ROC-анализ операционных характеристик теста и построенная характеристическая ROC-кривая показали, что площадь под кривой (AUC) для данного теста составила 0.96 (95% ДИ 0,92-0,99, p<0,0001).In fig. Figure 4 presents the ROC curve illustrating the relationship between sensitivity and specificity for different points of separation of the stimulation index M1 and M2 (M2a, M2c and M2 apo ) of macrophages polarized from GM-CSF-differentiated pro-M1 cells into allo-SCR. The ROC analysis of the operational characteristics of the test and the constructed characteristic ROC curve showed that the area under the curve (AUC) for this test was 0.96 (95% CI 0.92-0.99, p <0.0001).

Определение чувствительности, специфичности и отношения правдоподобия для различных точек разделения показало, что для индекса стимуляции в алло-СКЛ М1 и М2 (М2а, М2с, М2апо) макрофагов, поляризованных из GM-CSF-дифференцированных про-М1 клеток, точкой разделения, соответствующей максимальным показателям чувствительности (80,4%) и специфичности (91%) было пороговое значение <3,7 расч. ед. (отношение правдоподобия 9,04).The determination of the sensitivity, specificity and likelihood ratio for various separation points showed that for the stimulation index in allo-SCR M1 and M2 (M2a, M2c, M2apo) macrophages polarized from GM-CSF-differentiated pro-M1 cells, the separation point corresponding to the maximum indicators of sensitivity (80.4%) and specificity (91%) had a threshold value of <3.7 calc. units (likelihood ratio 9.04).

Таким образом, низкая стимуляторная активность М2 (М2а, М2с, М2апо) макрофагов, поляризованных из GM-CSF-дифференцированных про-М1 клеток, в алло-СКЛ при значениях ИС<3,7 расч. ед. отличает их от М1 макрофагов, поляризованных из GM-CSF-дифференцированных про-М1 клеток, со специфичностью 91% и чувствительностью 80.4%.Thus, the low stimulatory activity of M2 (M2a, M2c, M2apo) macrophages polarized from GM-CSF-differentiated pro-M1 cells in allo-SCR with IP values <3.7 calc. units distinguishes them from M1 macrophages polarized from GM-CSF-differentiated pro-M1 cells with a specificity of 91% and a sensitivity of 80.4%.

Пример 3.Example 3

Из моноцитов крови здоровых доноров генерировали M-CSF-дифференцированные про-М2, которые затем были поляризованы в М1 макрофаги с помощью ЛПС (М1Лпс), или в М2 макрофаги с помощью ИЛ-4 (М2а, М2ил-4), или дексаметазона (М2с, М2декс), после чего оценили их стимуляторную активность в алло-СКЛ.From blood monocytes of healthy donors, M-CSF-differentiated pro-M2 was generated, which were then polarized in M1 macrophages using LPS (M1 LPS ), or in M2 macrophages using IL-4 (M2a, M2 il-4 ), or dexamethasone (M2s, M2 dex ), after which their stimulatory activity in allo-SCR was evaluated.

На рис. 5 показана аллостимуляторная активность М1 (М1лпс) и М2 (М2ил-4, М2декс) макрофагов, поляризованных из M-CSF-дифференцированных про-М2 клеток. Данные представлены в виде M±SEM. Видно, что по сравнению с поляризованными М1 макрофагами индекс стимуляции М2 макрофагов, поляризованных с помощью ИЛ-4 или дексаметазона, в алло-СКЛ был почти в 3 раз ниже, составляя в среднем 2,42 и 2,41 расч. ед. для М2Ил-4 и М2ДЕкс, соответственно, против 6,56 расч. ед. для М1Лпс (pU<0.01).In fig. Figure 5 shows the allostimulatory activity of M1 (M1 LPS ) and M2 (M2 il-4 , M2 dex ) macrophages polarized from M-CSF-differentiated pro-M2 cells. Data are presented as M ± SEM. It can be seen that, compared with polarized M1 macrophages, the stimulation index of M2 macrophages polarized using IL-4 or dexamethasone in allo-SCR was almost 3 times lower, averaging 2.42 and 2.41 calculations. units for M2 IL-4 and M2 DEx , respectively, against 6.56 calc. units for M1 Lps (p U <0.01).

На рис. 6 представлена ROC-кривая, иллюстрирующая отношение между чувствительностью и специфичностью для различных точек разделения индекса стимуляции М1 и М2 (М2а и М2с) макрофагов, поляризованных из M-CSF-дифференцированных про-М2 клеток, в алло-СКЛ. ROC-анализ операционных характеристик теста и построенная характеристическая ROC-кривая показали, что площадь под кривой (AUC) для данного теста составила 0.89 (95% ДИ 0,79-0,99, р<0,0001).In fig. Figure 6 presents the ROC curve illustrating the relationship between sensitivity and specificity for different points of separation of the stimulation index M1 and M2 (M2a and M2c) of macrophages polarized from M-CSF-differentiated pro-M2 cells into allo-SCR. The ROC analysis of the operational characteristics of the test and the constructed characteristic ROC curve showed that the area under the curve (AUC) for this test was 0.89 (95% CI 0.79-0.99, p <0.0001).

Определение чувствительности, специфичности и отношения правдоподобия для различных точек разделения показало, что для индекса стимуляции в алло-СКЛ М1 и М2 (М2а, М2с) макрофагов, поляризованных из М-CSF-дифференцированных про-М2 клеток, точкой разделения, соответствующей максимальным показателям чувствительности (81%) и специфичности (89%) было пороговое значение <2,95 расч. ед. (отношение правдоподобия 7,3).The determination of the sensitivity, specificity and likelihood ratio for various separation points showed that for the stimulation index in allo-SCR M1 and M2 (M2a, M2c) macrophages polarized from M-CSF-differentiated pro-M2 cells, the separation point corresponding to the maximum sensitivity indicators (81%) and specificity (89%) had a threshold value of <2.95 calc. units (likelihood ratio 7.3).

Таким образом, низкая стимуляторная активность М2 (М2а, М2с) макрофагов, поляризованных из M-CSF-дифференцированных про-М2 клеток, в алло-СКЛ при значениях ИС<2.95 расч. ед. отличает их от М1 макрофагов, поляризованных из M-CSF-дифференцированных про-М2 клеток, со специфичностью 89% и чувствительностью 81%.Thus, the low stimulatory activity of M2 (M2a, M2c) macrophages polarized from M-CSF-differentiated pro-M2 cells in allo-SCR with IP values <2.95 calc. units distinguishes them from M1 macrophages polarized from M-CSF-differentiated pro-M2 cells, with a specificity of 89% and a sensitivity of 81%.

Приведенные примеры представлены для иллюстрации, но не для ограничения объема заявленного изобретения. Другие варианты изобретения будут полностью очевидны специалистам в данной области.The examples are presented to illustrate, but not to limit the scope of the claimed invention. Other embodiments of the invention will be readily apparent to those skilled in the art.

Данное изобретение предлагает достаточно эффективный способ идентификации функционального М1 и М2 фенотипа макрофагов человека, генерированных in vitro из моноцитов крови, который отличается высокой диагностической точностью (специфичность на уровне 89-92% и чувствительность на уровне 80-81%), а также универсальностью подхода, поскольку позволяет идентифицировать различные популяции М1 и М2 макрофагов, включая про-М1 и про-М2 клетки, а также поляризованные различными стимулами М1 и М2 макрофаги. Упрощение способа идентификации функционального М1 и М2 фенотипа макрофагов человека достигается за счет оценки только одного, интегрального параметра - индекса стимуляторной активности тестируемых макрофагов в алло-СКЛ.This invention provides a sufficiently effective method for identifying the functional M1 and M2 phenotype of human macrophages generated in vitro from blood monocytes, which is characterized by high diagnostic accuracy (specificity at the level of 89-92% and sensitivity at the level of 80-81%), as well as the universality of the approach, since it allows the identification of different populations of M1 and M2 macrophages, including pro-M1 and pro-M2 cells, as well as macrophages polarized by various stimuli M1 and M2. A simplification of the method for identifying the functional M1 and M2 phenotype of human macrophages is achieved by evaluating only one integral parameter - the index of stimulatory activity of the tested macrophages in allo-SCR.

Claims (4)

1. Способ идентификации функционального М1 и М2 фенотипа макрофагов человека, генерированных in vitro из моноцитов крови, заключающийся в оценке влияния клеток, полученных путем культивирования моноцитов периферической крови здоровых доноров в присутствии М1- или М2-поляризующих стимулов, на пролиферативный ответ Т-лимфоцитов в смешанной культуре лейкоцитов (СКЛ), и отличающийся тем, что сначала генерируют про-М1 и про-М2 макрофаги в течение 5 суток в присутствии GM-CSF и M-CSF соответственно, затем в течение 2 суток индуцируют их поляризацию в М1 фенотип с помощью липолисахаридов (ЛПС), а также в М2а, М2с и М2апо фенотипы с помощью IL-4, дексаметазона и апоптотических нейтрофилов соответственно, после чего оценивают стимуляторную активность про-М1 и про-М2 клеток, а также поляризованных М1 и М2 макрофагов в отношении аллогенных Т-клеток, полученных от 2-3 здоровых доноров.1. A method for identifying the functional M1 and M2 phenotype of human macrophages generated in vitro from blood monocytes, which consists in assessing the effect of cells obtained by culturing healthy blood donor peripheral blood monocytes in the presence of M1 or M2 polarizing stimuli on the proliferative response of T lymphocytes in mixed culture of leukocytes (SCR), and characterized in that first pro-M1 and pro-M2 macrophages are generated for 5 days in the presence of GM-CSF and M-CSF, respectively, then their polarization in M1 pheno is induced for 2 days ip using lipolysaccharides (LPS), as well as in M2a, M2c and M2apo phenotypes using IL-4, dexamethasone and apoptotic neutrophils, respectively, after which the stimulatory activity of pro-M1 and pro-M2 cells, as well as polarized M1 and M2 macrophages, is evaluated in relation to allogeneic T cells obtained from 2-3 healthy donors. 2. Способ по п. 1, отличающийся тем, что низкая стимуляторная активность про-М2 макрофагов в алло-СКЛ при значениях ИС<3,0 расч. ед. отличает их от про-М1 клеток со специфичностью 92% и чувствительностью 80%.2. The method according to p. 1, characterized in that the low stimulatory activity of pro-M2 macrophages in allo-SCR with IP values <3.0 calc. units distinguishes them from pro-M1 cells with a specificity of 92% and a sensitivity of 80%. 3. Способ по п. 1, отличающийся тем, что низкая стимуляторная активность М2 (М2а, М2с, М2апо) макрофагов, поляризованных из GM-CSF-дифференцированных про-М1 клеток, в алло-СКЛ при значениях ИС<3,7 расч. ед. отличает их от М1 макрофагов, поляризованных из GM-CSF-дифференцированных про-М1 клеток, со специфичностью 91% и чувствительностью 80.4%.3. The method according to p. 1, characterized in that the low stimulatory activity of M2 (M2a, M2s, M2apo) macrophages polarized from GM-CSF-differentiated pro-M1 cells in allo-SCR with IP values <3.7 calc. units distinguishes them from M1 macrophages polarized from GM-CSF-differentiated pro-M1 cells with a specificity of 91% and a sensitivity of 80.4%. 4. Способ по п. 1, отличающийся тем, что низкая стимуляторная активность М2 (М2а, М2с) макрофагов, поляризованных из M-CSF-дифференцированных про-М2 клеток, в алло-СКЛ при значениях ИС<2.95 расч. ед. отличает их от М1 макрофагов, поляризованных из M-CSF-дифференцированных про-М2 клеток, со специфичностью 89% и чувствительностью 81%.4. The method according to p. 1, characterized in that the low stimulatory activity of M2 (M2a, M2c) macrophages polarized from M-CSF-differentiated pro-M2 cells in allo-SCR with IP values <2.95 calc. units distinguishes them from M1 macrophages polarized from M-CSF-differentiated pro-M2 cells, with a specificity of 89% and a sensitivity of 81%.
RU2019118746A 2019-06-17 2019-06-17 Method for identifying functional m1 and m2 phenotype of human macrophages generated in vitro from blood monocytes RU2717024C1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2019118746A RU2717024C1 (en) 2019-06-17 2019-06-17 Method for identifying functional m1 and m2 phenotype of human macrophages generated in vitro from blood monocytes

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2019118746A RU2717024C1 (en) 2019-06-17 2019-06-17 Method for identifying functional m1 and m2 phenotype of human macrophages generated in vitro from blood monocytes

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2717024C1 true RU2717024C1 (en) 2020-03-17

Family

ID=69898613

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2019118746A RU2717024C1 (en) 2019-06-17 2019-06-17 Method for identifying functional m1 and m2 phenotype of human macrophages generated in vitro from blood monocytes

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2717024C1 (en)

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2739572C1 (en) * 2020-12-06 2020-12-25 Игорь Юрьевич Малышев Modified anti-inflammatory macrophage, a method for production and use thereof
RU2792602C1 (en) * 2022-04-22 2023-03-22 федеральное государственное автономное образовательное учреждение высшего образования "Российский университет дружбы народов" (РУДН) Method for obtaining primary macrophage lines with pro-inflammatory properties

Non-Patent Citations (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
BARROS M.H.M. et al. Macrophage polarisation: an immunohistochemical approach for identifying M1 and M2 macrophages, PloS one, 2013,V. 8, N. 11, p.e80908. *
MIA S. et al. An optimized protocol for human M2 macrophages using M‐CSF and IL‐4/IL‐10/TGF‐β yields a dominant immunosuppressive phenotype, Scandinavian journal of immunology, 2014, V. 79, N. 5, p.305-314. *
MIA S. et al. An optimized protocol for human M2 macrophages using M‐CSF and IL‐4/IL‐10/TGF‐β yields a dominant immunosuppressive phenotype, Scandinavian journal of immunology, 2014, V. 79, N. 5, p.305-314. BARROS M.H.M. et al. Macrophage polarisation: an immunohistochemical approach for identifying M1 and M2 macrophages, PloS one, 2013, V. 8, N. 11, p.e80908. WANG N. et al. Molecular mechanisms that influence the macrophage m1-m2 polarization balance, Frontiers in immunology, 2014, V. 5, p.614-614. НИКОНОВА А.А. и др. Особенности противовирусной активности разных типов человеческих макрофагов, Иммунология, 2016, V. 37, N. 6, с.300-305. *
WANG N. et al. Molecular mechanisms that influence the macrophage m1-m2 polarization balance, Frontiers in immunology, 2014, V. 5, p.614-614. *
НИКОНОВА А.А. и др. Особенности противовирусной активности разных типов человеческих макрофагов, Иммунология, 2016, V. 37, N. 6, с.300-305. *

Cited By (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2739572C1 (en) * 2020-12-06 2020-12-25 Игорь Юрьевич Малышев Modified anti-inflammatory macrophage, a method for production and use thereof
RU2792602C1 (en) * 2022-04-22 2023-03-22 федеральное государственное автономное образовательное учреждение высшего образования "Российский университет дружбы народов" (РУДН) Method for obtaining primary macrophage lines with pro-inflammatory properties
RU2810558C1 (en) * 2023-05-02 2023-12-27 федеральное государственное автономное образовательное учреждение высшего образования "Казанский (Приволжский) федеральный университет" (ФГАОУ ВО КФУ) Method of selecting medicinal products for pharmacological induction of mitochondrial dysfunction in macrophages for antitumor therapy

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Winkler et al. Activation of group 2 innate lymphoid cells after allergen challenge in asthmatic patients
Demedts et al. Different roles for human lung dendritic cell subsets in pulmonary immune defense mechanisms
Dzionek et al. Plasmacytoid dendritic cells: from specific surface markers to specific cellular functions
Wojtan et al. Macrophage polarization in interstitial lung diseases
Bellinghausen et al. Enhanced production of CCL18 by tolerogenic dendritic cells is associated with inhibition of allergic airway reactivity
US20190336539A1 (en) A method of treatment
Chakraborty et al. Impact of Treg on other T cell subsets in progression of fibrosis in experimental lung fibrosis
Nakajima et al. Lung transplantation: infection, inflammation, and the microbiome
Liu et al. NMAAP1 expressed in BCG-activated macrophage promotes M1 macrophage polarization
Götz et al. Oxidative stress enhances dendritic cell responses to Plasmodium falciparum
LaVoy et al. A single bout of dynamic exercise by healthy adults enhances the generation of monocyte-derived-dendritic cells
Garay et al. Crosstalk between PKA and Epac regulates the phenotypic maturation and function of human dendritic cells
IL285460B2 (en) Kits, compositions and methods for evaluating immune system status
RU2717024C1 (en) Method for identifying functional m1 and m2 phenotype of human macrophages generated in vitro from blood monocytes
Lebre et al. Aberrant function of peripheral blood myeloid and plasmacytoid dendritic cells in atopic dermatitis patients
Huang et al. Multiple sclerosis: interferon-beta induces CD123+ BDCA2− dendritic cells that produce IL-6 and IL-10 and have no enhanced type I interferon production
Talker et al. Transcriptomic signature and metabolic programming of bovine classical and nonclassical monocytes indicate distinct functional specializations
Kim et al. The role of the microbiota in myelopoiesis during homeostasis and inflammation
JP2024507587A (en) Regulatory T cell (Treg) extracellular vesicle compositions and methods
Ford et al. In vitro differentiated human cd4+ t cells produce hepatocyte growth factor
Chen et al. Modulation of glucose metabolism by 2-Deoxy-D-Glucose (2DG) promotes IL-17 producing human T cell subsets
EP4578454A1 (en) Compositions comprising platelet derived extracellular vesicles
RU2590696C2 (en) Agent for differentiation of monocyte-like cells
Al Abadey Investigating microglial responses to nalfurafine in pro-and anti-inflammatory conditions
Jamal Jameel Systemic immune pathologies in the infectious defense against respiratory viruses in different endotypes of severe asthma