RU2748717C1 - Method for treatment of post-traumatic corneal inflammation - Google Patents
Method for treatment of post-traumatic corneal inflammation Download PDFInfo
- Publication number
- RU2748717C1 RU2748717C1 RU2020126426A RU2020126426A RU2748717C1 RU 2748717 C1 RU2748717 C1 RU 2748717C1 RU 2020126426 A RU2020126426 A RU 2020126426A RU 2020126426 A RU2020126426 A RU 2020126426A RU 2748717 C1 RU2748717 C1 RU 2748717C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- treatment
- corneal
- animals
- group
- cornea
- Prior art date
Links
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims abstract description 24
- 238000011282 treatment Methods 0.000 title abstract description 33
- 206010023332 keratitis Diseases 0.000 title abstract description 10
- 208000015181 infectious disease Diseases 0.000 claims abstract description 8
- 210000004087 cornea Anatomy 0.000 claims description 25
- 230000004054 inflammatory process Effects 0.000 claims description 10
- 206010061218 Inflammation Diseases 0.000 claims description 6
- 239000000126 substance Substances 0.000 abstract description 6
- 230000008929 regeneration Effects 0.000 abstract description 5
- 238000011069 regeneration method Methods 0.000 abstract description 5
- 239000003814 drug Substances 0.000 abstract description 3
- 230000000694 effects Effects 0.000 abstract description 2
- 241001465754 Metazoa Species 0.000 description 32
- 230000008595 infiltration Effects 0.000 description 15
- 238000001764 infiltration Methods 0.000 description 15
- WZUVPPKBWHMQCE-UHFFFAOYSA-N Haematoxylin Chemical compound C12=CC(O)=C(O)C=C2CC2(O)C1C1=CC=C(O)C(O)=C1OC2 WZUVPPKBWHMQCE-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 14
- 210000000265 leukocyte Anatomy 0.000 description 14
- 102000008186 Collagen Human genes 0.000 description 13
- 108010035532 Collagen Proteins 0.000 description 13
- 229920001436 collagen Polymers 0.000 description 13
- 239000000835 fiber Substances 0.000 description 13
- 210000004027 cell Anatomy 0.000 description 11
- 206010011033 Corneal oedema Diseases 0.000 description 10
- 206010030113 Oedema Diseases 0.000 description 10
- 201000004778 corneal edema Diseases 0.000 description 10
- 208000028006 Corneal injury Diseases 0.000 description 9
- 238000002347 injection Methods 0.000 description 9
- 239000007924 injection Substances 0.000 description 9
- 210000004045 bowman membrane Anatomy 0.000 description 8
- 210000001519 tissue Anatomy 0.000 description 8
- 210000002555 descemet membrane Anatomy 0.000 description 7
- 210000003038 endothelium Anatomy 0.000 description 7
- YQGOJNYOYNNSMM-UHFFFAOYSA-N eosin Chemical compound [Na+].OC(=O)C1=CC=CC=C1C1=C2C=C(Br)C(=O)C(Br)=C2OC2=C(Br)C(O)=C(Br)C=C21 YQGOJNYOYNNSMM-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 7
- 210000000981 epithelium Anatomy 0.000 description 7
- 238000010186 staining Methods 0.000 description 6
- 230000015572 biosynthetic process Effects 0.000 description 5
- 210000000795 conjunctiva Anatomy 0.000 description 5
- 231100000241 scar Toxicity 0.000 description 5
- 210000003683 corneal stroma Anatomy 0.000 description 4
- 230000006378 damage Effects 0.000 description 4
- 238000002474 experimental method Methods 0.000 description 4
- 230000003902 lesion Effects 0.000 description 4
- 210000004698 lymphocyte Anatomy 0.000 description 4
- 238000010899 nucleation Methods 0.000 description 4
- 206010023644 Lacrimation increased Diseases 0.000 description 3
- 241000191967 Staphylococcus aureus Species 0.000 description 3
- 230000001580 bacterial effect Effects 0.000 description 3
- 230000004317 lacrimation Effects 0.000 description 3
- 210000000440 neutrophil Anatomy 0.000 description 3
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 description 3
- 230000005855 radiation Effects 0.000 description 3
- 230000009467 reduction Effects 0.000 description 3
- WSFSSNUMVMOOMR-UHFFFAOYSA-N Formaldehyde Chemical compound O=C WSFSSNUMVMOOMR-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 206010034960 Photophobia Diseases 0.000 description 2
- 208000025865 Ulcer Diseases 0.000 description 2
- 230000018109 developmental process Effects 0.000 description 2
- 230000004907 flux Effects 0.000 description 2
- 201000009285 hypopyon Diseases 0.000 description 2
- 230000006872 improvement Effects 0.000 description 2
- 230000002458 infectious effect Effects 0.000 description 2
- 239000000463 material Substances 0.000 description 2
- 231100000397 ulcer Toxicity 0.000 description 2
- 241000894006 Bacteria Species 0.000 description 1
- 208000006069 Corneal Opacity Diseases 0.000 description 1
- 206010011022 Corneal infiltrates Diseases 0.000 description 1
- 206010011026 Corneal lesion Diseases 0.000 description 1
- DGAQECJNVWCQMB-PUAWFVPOSA-M Ilexoside XXIX Chemical compound C[C@@H]1CC[C@@]2(CC[C@@]3(C(=CC[C@H]4[C@]3(CC[C@@H]5[C@@]4(CC[C@@H](C5(C)C)OS(=O)(=O)[O-])C)C)[C@@H]2[C@]1(C)O)C)C(=O)O[C@H]6[C@@H]([C@H]([C@@H]([C@H](O6)CO)O)O)O.[Na+] DGAQECJNVWCQMB-PUAWFVPOSA-M 0.000 description 1
- CTQNGGLPUBDAKN-UHFFFAOYSA-N O-Xylene Chemical group CC1=CC=CC=C1C CTQNGGLPUBDAKN-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 241000700157 Rattus norvegicus Species 0.000 description 1
- 241000191940 Staphylococcus Species 0.000 description 1
- HCHKCACWOHOZIP-UHFFFAOYSA-N Zinc Chemical compound [Zn] HCHKCACWOHOZIP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 150000001298 alcohols Chemical class 0.000 description 1
- 210000002159 anterior chamber Anatomy 0.000 description 1
- 239000003242 anti bacterial agent Substances 0.000 description 1
- 230000000844 anti-bacterial effect Effects 0.000 description 1
- 239000004599 antimicrobial Substances 0.000 description 1
- 230000001174 ascending effect Effects 0.000 description 1
- 201000009310 astigmatism Diseases 0.000 description 1
- 244000052616 bacterial pathogen Species 0.000 description 1
- 230000001112 coagulating effect Effects 0.000 description 1
- 238000004590 computer program Methods 0.000 description 1
- 231100000269 corneal opacity Toxicity 0.000 description 1
- 201000010099 disease Diseases 0.000 description 1
- 208000037265 diseases, disorders, signs and symptoms Diseases 0.000 description 1
- 210000000416 exudates and transudate Anatomy 0.000 description 1
- 230000002538 fungal effect Effects 0.000 description 1
- 238000010562 histological examination Methods 0.000 description 1
- 230000002401 inhibitory effect Effects 0.000 description 1
- 208000014674 injury Diseases 0.000 description 1
- 230000002045 lasting effect Effects 0.000 description 1
- 238000005259 measurement Methods 0.000 description 1
- 230000000877 morphologic effect Effects 0.000 description 1
- 230000004660 morphological change Effects 0.000 description 1
- 230000003562 morphometric effect Effects 0.000 description 1
- 238000013425 morphometry Methods 0.000 description 1
- 230000007935 neutral effect Effects 0.000 description 1
- 239000012188 paraffin wax Substances 0.000 description 1
- 244000052769 pathogen Species 0.000 description 1
- 230000001717 pathogenic effect Effects 0.000 description 1
- 238000002428 photodynamic therapy Methods 0.000 description 1
- 239000003504 photosensitizing agent Substances 0.000 description 1
- IEQIEDJGQAUEQZ-UHFFFAOYSA-N phthalocyanine Chemical compound N1C(N=C2C3=CC=CC=C3C(N=C3C4=CC=CC=C4C(=N4)N3)=N2)=C(C=CC=C2)C2=C1N=C1C2=CC=CC=C2C4=N1 IEQIEDJGQAUEQZ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 229910052708 sodium Inorganic materials 0.000 description 1
- 239000011734 sodium Substances 0.000 description 1
- 238000000015 thermotherapy Methods 0.000 description 1
- NLVFBUXFDBBNBW-PBSUHMDJSA-N tobramycin Chemical compound N[C@@H]1C[C@H](O)[C@@H](CN)O[C@@H]1O[C@H]1[C@H](O)[C@@H](O[C@@H]2[C@@H]([C@@H](N)[C@H](O)[C@@H](CO)O2)O)[C@H](N)C[C@@H]1N NLVFBUXFDBBNBW-PBSUHMDJSA-N 0.000 description 1
- 229940035275 tobrex Drugs 0.000 description 1
- 230000000472 traumatic effect Effects 0.000 description 1
- 230000008736 traumatic injury Effects 0.000 description 1
- 230000003612 virological effect Effects 0.000 description 1
- 238000005406 washing Methods 0.000 description 1
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Substances O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 238000005303 weighing Methods 0.000 description 1
- 239000011701 zinc Substances 0.000 description 1
- 229910052725 zinc Inorganic materials 0.000 description 1
Images
Classifications
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A61—MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
- A61F—FILTERS IMPLANTABLE INTO BLOOD VESSELS; PROSTHESES; DEVICES PROVIDING PATENCY TO, OR PREVENTING COLLAPSING OF, TUBULAR STRUCTURES OF THE BODY, e.g. STENTS; ORTHOPAEDIC, NURSING OR CONTRACEPTIVE DEVICES; FOMENTATION; TREATMENT OR PROTECTION OF EYES OR EARS; BANDAGES, DRESSINGS OR ABSORBENT PADS; FIRST-AID KITS
- A61F9/00—Methods or devices for treatment of the eyes; Devices for putting in contact-lenses; Devices to correct squinting; Apparatus to guide the blind; Protective devices for the eyes, carried on the body or in the hand
Landscapes
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Ophthalmology & Optometry (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- Heart & Thoracic Surgery (AREA)
- Vascular Medicine (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Animal Behavior & Ethology (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Public Health (AREA)
- Veterinary Medicine (AREA)
- Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)
Abstract
Description
Изобретение относится к медицине, а именно к офтальмологии, и может быть использовано в лечении посттравматического воспаления роговицы. The invention relates to medicine, namely to ophthalmology, and can be used in the treatment of post-traumatic inflammation of the cornea.
В настоящее время разработаны различные методы лечения посттравматического воспаления роговицы.Currently, various methods of treating post-traumatic inflammation of the cornea have been developed.
Известны способы лечения инфекционных кератитов, включающие воздействие лазерным излучением на инфекционный очаг роговицы (RU 2352367). Фотодинамическую терапию проводят с использованием геля в качестве фотосенсибилизатора, содержащего октакатионный фталоцианин цинка в концентрации 1-3 мг/мл, который предварительно наносят на роговицу. Через 30-40 минут после аппликации гелем роговую оболочку и конъюнктивальную полость промывают, на поверхность роговицы воздействуют лазерным излучением с длиной волны 675 нм со световой дозой 20-60 Дж/
Известен способ лечения кератитов воздействием физического фактора (RU 2270704). Данный способ предусматривает лазерную инфракрасную термотерапию инфильтрата роговицы. Длина волны 810 нм, мощность излучения 1000-1250 мВт, диаметр пятна в фокальной плоскости от 2 до 3 мм, экспозиция излучения 3 секунды. Проводят 1-3 сеанса с интервалом 3-7 дней. Способ позволяет избежать выраженного астигматизма, коагулирующего эффекта и развития глубокого помутнения роговицы. Однако данный способ эффективен только в отношении вирусных кератитов и не применим для лечения кератитов бактериальной этиологии.A known method of treating keratitis by exposure to a physical factor (RU 2270704). This method provides for laser infrared thermotherapy of the corneal infiltrate. Wavelength 810 nm, radiation power 1000-1250 mW, spot diameter in the focal plane from 2 to 3 mm, radiation exposure 3 seconds. 1-3 sessions are carried out with an interval of 3-7 days. EFFECT: method allows to avoid pronounced astigmatism, coagulating effect and development of deep corneal opacity. However, this method is effective only against viral keratitis and is not applicable for the treatment of keratitis of bacterial etiology.
Наиболее близким к предлагаемому способу является способ обработки бактериальных поражений роговицы глаза путем воздействия низкотемпературной плазмы на очаг поражения (RU 2191044). Способ заключается в воздействии на область поверхности язвы потоков низкотемпературной плазмы с плотностью потока энергии 0,4-0,8 Вт/см2 с удельной экспозицией 40-50 с/см2 на площадь поверхности. Способ позволяет повысить эффективность лечения за счет подавления роста бактерий. Closest to the proposed method is a method for treating bacterial lesions of the cornea of the eye by exposure to low-temperature plasma on the lesion (RU 2191044). The method consists in exposing the ulcer surface area to low-temperature plasma flows with an energy flux density of 0.4-0.8 W / cm2 with a specific exposure of 40-50 s / cm2 per surface area. The method improves the effectiveness of treatment by inhibiting the growth of bacteria.
Согласно этому методу изъязвленное бактериальное поражение роговицы глаз диаметром до 3 мм, глубиной до средних слоев роговицы, с уровнем гипопиона до 3-4 мм, обрабатывается низкотемпературной плазмой плотностью потока энергии 0,6 Вт/см2 в течение 45 с. Обработка проводится ежедневно, до появления клинического улучшения. According to this method, an ulcerated bacterial lesion of the cornea of the eyes with a diameter of up to 3 mm, a depth of up to the middle layers of the cornea, with a hypopyon level of up to 3-4 mm, is treated with low-temperature plasma with an energy flux density of 0.6 W / cm2 for 45 s. Treatment is carried out daily until clinical improvement appears.
Результаты были оценены после двух обработок и показали, что поверхность язвы очистилась от гнойного содержимого, рассосался гипопион и «шлейф» экссудата в передней камере.The results were evaluated after two treatments and showed that the surface of the ulcer was cleared of purulent contents, the hypopyon and the "plume" of exudate in the anterior chamber were resolved.
Недостатками указанного метода являются: длительность экспозиции – на очаг поражения воздействуют потоком низкотемпературной плазмы в течение 40-50 сек., кратность применения – обработка производится ежедневно до появления клинического улучшения. The disadvantages of this method are: the duration of the exposure - the lesion is exposed to a flow of low-temperature plasma for 40-50 seconds, the frequency of application - the treatment is performed daily until clinical improvement appears.
Новой технической задачей изобретения является повышение эффективности лечения посттравматического кератита и усиление репаративной регенерации тканей роговицы.A new technical objective of the invention is to increase the effectiveness of the treatment of post-traumatic keratitis and enhance the reparative regeneration of corneal tissues.
Для решения поставленной задачи для лечения посттравматического воспаления роговицы выполняют однократное воздействие продолжительностью 10 секунд низкотемпературной плазмы атмосферного давления с напряжением 25 кВ, частотой – 5 кГц на расстоянии от очага инфекции 7 мм.To solve the set task for the treatment of post-traumatic inflammation of the cornea, a single exposure of 10 seconds to low-temperature atmospheric pressure plasma with a voltage of 25 kV, a frequency of 5 kHz is performed at a distance of 7 mm from the focus of infection.
Применение предлагаемого способа обеспечивает купирование воспалительного процесса, усиление репаративной регенерации тканей роговицы и сокращение сроков лечения посттравматического кератита, что в дальнейшем позволит успешно использовать данный метод в кабинетах неотложной офтальмологической помощи.The use of the proposed method provides relief of the inflammatory process, enhancement of reparative regeneration of corneal tissues and reduction of the treatment time for post-traumatic keratitis, which will further make it possible to successfully use this method in the ophthalmic emergency rooms.
Способ осуществляется следующим образом. The method is carried out as follows.
На область травматического повреждения однократно воздействуют потоком низкотемпературной плазмы атмосферного давления с напряжением 25 кВ и частотой – 5 кГц на расстоянии от очага инфекции не более 7 мм и продолжительностью 10 секунд. Предлагаемый способ обеспечивает купирование воспалительного процесса, усиление репаративной регенерации тканей роговицы и сокращение сроков лечения посттравматического кератита.The area of traumatic injury is once exposed to a flow of low-temperature plasma of atmospheric pressure with a voltage of 25 kV and a frequency of 5 kHz at a distance from the focus of infection no more than 7 mm and a duration of 10 seconds. The proposed method provides relief of the inflammatory process, enhancement of reparative regeneration of corneal tissues and reduction of the treatment time for post-traumatic keratitis.
Способ апробирован на 36 крысах линии Wistar- массой 230-250 гр. Каждому животному в условиях операционной моделировали корнеальное ранение с последующей обсеменением тканей роговицы Staphylococcus aureus (100000 ед/мл).The method was tested on 36 Wistar rats weighing 230-250 g. Corneal injury was simulated for each animal in the operating room, followed by seeding of corneal tissues with Staphylococcus aureus (100,000 U / ml).
Через неделю от начала эксперимента животные были поделены на следующие группы:One week after the start of the experiment, the animals were divided into the following groups:
1 группа – группа животных модели заболевания;1 group - a group of animals model of the disease
2 группа – животные, которым воздействовали на корнеальный очаг низкотемпературной плазмой атмосферного давления с напряжением 25 кВ и частотой – 5 кГц на расстоянии от очага инфекции 7 мм продолжительностью 10 секунд;Group 2 - animals that were exposed to the corneal focus with low-temperature plasma of atmospheric pressure with a voltage of 25 kV and a frequency of 5 kHz at a distance of 7 mm from the focus of infection for 10 seconds;
3 группа – контрольная группа животных, которым проводили инстилляцию роговицы антибактериальными и антисептическими средствами (Тобрекс по 1 к 3 раза в день, Сульфацил Натрия по 1 к 3 раза в день). Group 3 - a control group of animals that underwent instillation of the cornea with antibacterial and antiseptic agents (Tobrex 1 to 3 times a day, Sulfacil Sodium 1 to 3 times a day).
В ходе эксперимента проводили наружный осмотр, фоторегистрацию. Забор материалов для гистологического исследования проводили на 1, 3, 7, 10 сутки. In the course of the experiment, an external examination and photographic registration were carried out. The collection of materials for histological examination was carried out on days 1, 3, 7, 10.
Для оценки морфологических изменений энуклеированные глаза фиксировали в 12% нейтральном формалине в течение 24 часов. После 24-часового промывания в проточной воде материал обезвоживали в спиртах восходящей концентрации, просветляли в О-ксилоле и заливали в парафин. После приготовления срезов толщиной 4-6 мкм препараты окрашивали гематоксилином и эозином.To assess morphological changes, the enucleated eyes were fixed in 12% neutral formalin for 24 hours. After 24 hours of washing in running water, the material was dehydrated in alcohols of ascending concentration, clarified in O-xylene, and embedded in paraffin. After preparation of sections with a thickness of 4-6 μm, the preparations were stained with hematoxylin and eosin.
Цифровые фотографии гистологических срезов роговицы энуклеированных глаз анализировали в ходе морфометрического исследования с использованием компьютерной программы ImageJ 1.46. За единицу измерения принимали 1 мм2 роговицы и конъюнктивы. С помощью метода точечного счета Г.Г. Автандилова (1960 г.) с использованием Plugins «Grid» в гистологических препаратах рассчитывали удельный объем (%) пространств между коллагеновыми волокнами, которые расценивали как развитие отека, новообразованных сосудов и клеточной инфильтрации.Digital photographs of histological sections of the cornea of enucleated eyes were analyzed during morphometric examination using the ImageJ 1.46 computer program. The unit of measurement was taken as 1 mm 2 of the cornea and conjunctiva. Using the method of point counting G.G. Avtandilov (1960), using Plugins "Grid" in histological preparations, the specific volume (%) of spaces between collagen fibers was calculated, which was regarded as the development of edema, newly formed vessels and cell infiltration.
В ходе наружного осмотра через неделю после моделирования корнеального ранения с последующей обсеменением тканей роговицы Staphylococcus aureus и на 1-е сутки от начала лечения у всех животных наблюдались слезотечение, светобоязнь, инъекция сосудов конъюнктивы, отёчность роговицы и формирование очага в зоне повреждения роговой оболочки (фиг. 1). На 3-е сутки от начала лечения у животных второй группы сохранялась инъекция сосудов конъюнктивы, корнеальный очаг заметно уменьшился в размерах (фиг 2). У животных третьей группы наблюдались слезотечение, инъекция сосудов конъюнктивы, отечность роговицы и очаг в зоне повреждения роговой оболочки (фиг. 3). На 7-е сутки от начала лечения у животных второй группы роговица прозрачная, местами со слабо выраженным отеком, замечено формирование посттравматического рубца в зоне повреждения роговой оболочки (фиг. 4). У животных третьей группы в эти же сроки наблюдались умеренно выраженная отечность роговицы и инъекция сосудов конъюнктивы, корнеальный очаг заметно уменьшился в размерах. На 10-е сутки от начала лечения у животных второй группы роговица прозрачная со сформированным посттравматическим рубцом (фиг. 5). У животных третьей группы в эти же сроки наблюдались слабо выраженная отечность роговицы, новообразованные сосуды и формирование посттравматического рубца в зоне повреждения роговой оболочки (фиг. 6). У животных первой группы на протяжении всего эксперимента сохранялись слезотечение, светобоязнь, инъекция сосудов конъюнктивы, отёчность роговицы, очаг в зоне повреждения роговой оболочки (фиг. 7). During an external examination one week after modeling a corneal injury, followed by seeding of corneal tissues with Staphylococcus aureus, and on the 1st day from the start of treatment, all animals showed lacrimation, photophobia, injection of conjunctival vessels, corneal edema and the formation of a focus in the area of corneal injury (Fig . one). On the 3rd day from the start of treatment in the animals of the second group, the injection of the vessels of the conjunctiva was preserved, the corneal focus was noticeably reduced in size (Fig. 2). In animals of the third group, lacrimation, injection of conjunctival vessels, corneal edema and a focus in the area of corneal lesion were observed (Fig. 3). On the 7th day from the start of treatment in animals of the second group, the cornea is transparent, in places with mild edema; the formation of a post-traumatic scar in the zone of corneal injury was observed (Fig. 4). In the animals of the third group, at the same time, moderately pronounced corneal edema and injection of conjunctival vessels were observed, the corneal focus was noticeably reduced in size. On the 10th day from the start of treatment in animals of the second group, the cornea is transparent with a formed post-traumatic scar (Fig. 5). In the animals of the third group, at the same time, there was a mild corneal edema, newly formed vessels and the formation of a post-traumatic scar in the zone of corneal injury (Fig. 6). In the animals of the first group, lacrimation, photophobia, injection of conjunctival vessels, corneal edema, and a focus in the area of corneal injury persisted throughout the experiment (Fig. 7).
В ходе морфологических исследований через неделю после моделирования корнеального ранения с последующей обсеменением тканей роговицы Staphylococcus aureus передний эпителий был частично отслоен. Боуменова мембрана неравномерно визуализировалась на всем протяжении, местами утолщена. Коллагеновые волокна с повышено извитым ходом располагались рыхло, формируя щели, которые можно расценить как отек, удельным объемом 27,7%. В строме лейкоцитарная инфильтрация (удельным объемом 15,7%), более выраженная в передней 1/3 собственного вещества, представлена лимфоцитами и нейтрофилами (фиг. 8). Десцеметова мембрана визуализировалась на всем протяжении. Эндотелий был представлен одним слоем клеток, местами слущенным. In the course of morphological studies, a week after modeling a corneal injury with subsequent seeding of corneal tissues with Staphylococcus aureus, the anterior epithelium was partially detached. Bowman's membrane was imaged unevenly throughout, thickened in places. Collagen fibers with an increased crimped course were located loosely, forming cracks, which can be regarded as edema, with a specific volume of 27.7%. In the stroma, leukocyte infiltration (specific volume 15.7%), more pronounced in the anterior 1/3 of its own substance, is represented by lymphocytes and neutrophils (Fig. 8). Descemet's membrane was visualized throughout. The endothelium was represented by one layer of cells, in places desquamated.
На 3-е сутки от начала лечения у животных второй группы передний эпителий был частично отслоен. Боуменова мембрана визуализировалась на всем протяжении, местами утолщена. Коллагеновые волокна располагались рыхло, формируя щели, удельным объемом 20,8%. В строме лейкоцитарная инфильтрация (удельным объемом 14,17 %), более выраженная в передней 1/3 собственного вещества близи Боуменовой мембраны, представлена лимфоцитами (фиг. 9). Десцеметова мембрана визуализировалась на всем протяжении. Эндотелий был представлен одним слоем клеток, местами слущенным. On the 3rd day from the start of treatment in animals of the second group, the anterior epithelium was partially detached. Bowman's membrane was visualized throughout, thickened in places. Collagen fibers were located loosely, forming cracks, with a specific volume of 20.8%. In the stroma, leukocyte infiltration (specific volume 14.17%), more pronounced in the anterior 1/3 of its own substance near Bowman's membrane, is represented by lymphocytes (Fig. 9). Descemet's membrane was visualized throughout. The endothelium was represented by one layer of cells, in places desquamated.
У животных третьей группы в эти же сроки передний эпителий был также частично отслоен. Боуменова мембрана неравномерно визуализировалась на всем протяжении, местами утолщена. Коллагеновые волокна с повышено извитым ходом располагались рыхло. Отек удельным объемом 23,6%, p>0,05. В передней 1/3 стромы выраженная лейкоцитарная инфильтрация (удельным объемом 18,6%, p<0,05), представленная в большей мере лимфоцитами и нейтрофилами (фиг. 10). Десцеметова мембрана не равномерно визуализировалась, утолщена. Эндотелий был представлен одним слоем клеток, местами слущенным. In animals of the third group, at the same time, the anterior epithelium was also partially detached. Bowman's membrane was imaged unevenly throughout, thickened in places. Collagen fibers with an increased crimped course were located loosely. Edema with a specific volume of 23.6%, p> 0.05. In the anterior 1/3 of the stroma, pronounced leukocyte infiltration (specific volume 18.6%, p <0.05), represented to a greater extent by lymphocytes and neutrophils (Fig. 10). Descemet's membrane was not uniformly visualized, it was thickened. The endothelium was represented by one layer of cells, in places desquamated.
На 7-е сутки от начала лечения у животных второй группы передний эпителий был представлен пластом клеток. Боуменова мембрана визуализировалась на всем протяжении. Коллагеновые волокна с умеренно повышенным извитым ходом формировали щели, удельным объемом 14,2%. В строме слабо выраженная лейкоцитарная инфильтрация (удельным объемом 6,4%) и умеренно выраженным отеком удельным объемом 10,1% (фиг. 11). Встречались единичные тонкостенные сосуды, удельным объемом 2,2%. Десцеметова мембрана визуализировалась на всем протяжении. Эндотелий был представлен одним слоем клеток. On the 7th day from the start of treatment in animals of the second group, the anterior epithelium was represented by a layer of cells. Bowman's membrane was visualized all over. Collagen fibers with a moderately increased crimped course formed cracks, with a specific volume of 14.2%. In the stroma, a weakly expressed leukocyte infiltration (specific volume of 6.4%) and a moderately pronounced edema with a specific volume of 10.1% (Fig. 11). There were single thin-walled vessels with a specific volume of 2.2%. Descemet's membrane was visualized throughout. The endothelium was represented by one layer of cells.
У животных третьей группы в эти же сроки передний эпителий был также частично отслоен. Боуменова мембрана визуализировалась на всем протяжении, местами утолщена. Коллагеновые волокна с повышено извитым ходом располагались рыхло. Удельный объем отека составил 20,4%, p<0,05. В строме выраженная лейкоцитарная инфильтрация (удельным объемом 23,2%, p<0,05), представленная лимфоцитами и нейтрофилами (фиг. 12), и новообразованные сосуды удельным объемом 10,7%, p<0,05. Десцеметова мембрана не равномерно визуализировалась, утолщена. Эндотелий был представлен одним слоем клеток.In animals of the third group, at the same time, the anterior epithelium was also partially detached. Bowman's membrane was visualized throughout, thickened in places. Collagen fibers with an increased crimped course were located loosely. The specific volume of edema was 20.4%, p <0.05. In the stroma, pronounced leukocyte infiltration (specific volume 23.2%, p <0.05), represented by lymphocytes and neutrophils (Fig. 12), and newly formed vessels with specific volume of 10.7%, p <0.05. Descemet's membrane was not uniformly visualized, it was thickened. The endothelium was represented by one layer of cells.
На 10-е сутки от начала лечения у животных второй группы передний эпителий был представлен пластом клеток. Боуменова мембрана визуализировалась на всем протяжении. Коллагеновые волокна с умеренно повышенным ходом. В собственном веществе слабо выраженная лейкоцитарная инфильтрация (удельным объемом 5,6%) (фиг. 13). Встречались единичные тонкостенные сосуды, удельным объемом 3,1%. Десцеметова мембрана визуализировалась на всем протяжении. Эндотелий был представлен одним слоем клеток.On the 10th day from the start of treatment in animals of the second group, the anterior epithelium was represented by a layer of cells. Bowman's membrane was visualized all over. Collagen fibers with a moderately increased course. In its own substance, a weakly expressed leukocyte infiltration (specific volume 5.6%) (Fig. 13). There were single thin-walled vessels with a specific volume of 3.1%. Descemet's membrane was visualized throughout. The endothelium was represented by one layer of cells.
У животных третьей группы в эти же сроки эпителий был представлен пластом клеток. Боуменова мембрана визуализировалась на всем протяжении, местами утолщена. Коллагеновые волокна с повышено извитым ходом располагались рыхло. Удельный объем отека составил не более 13,1%, p<0,05. В строме умеренно выраженная лейкоцитарная инфильтрация удельным объемом 10,1% (p<0,05) и множественные новообразованные сосуды удельным объемом 12,6%, p<0,05 (фиг. 14). Десцеметова мембрана визуализировалась равномерно. Эндотелий был представлен одним слоем клеток.In animals of the third group, at the same time, the epithelium was represented by a layer of cells. Bowman's membrane was visualized throughout, thickened in places. Collagen fibers with an increased crimped course were located loosely. The specific volume of edema was no more than 13.1%, p <0.05. In the stroma, moderately expressed leukocyte infiltration with a specific volume of 10.1% (p <0.05) and multiple newly formed vessels with a specific volume of 12.6%, p <0.05 (Fig. 14). Descemet's membrane was visualized uniformly. The endothelium was represented by one layer of cells.
Таким образом, результаты экспериментального исследования показали, что однократная обработка области посттравматического воспаления роговицы воздействием низкотемпературной плазмы атмосферного давления с напряжением 25 кВ, частотой – 5 кГц на расстоянии от очага инфекции 7 мм продолжительностью 10 секунд снижает выраженность воспаления, ускоряет репаративную регенерацию, что приводит к сокращению сроков лечения. Thus, the results of the experimental study showed that a single treatment of the area of post-traumatic inflammation of the cornea by exposure to low-temperature plasma of atmospheric pressure with a voltage of 25 kV, a frequency of 5 kHz at a distance of 7 mm from the focus of infection for 10 seconds reduces the severity of inflammation, accelerates reparative regeneration, which leads to reduction of treatment time.
Фигура. 1. Инъекция сосудов конъюнктивы, отёчность роговицы и формирование очага воспалительного процесса в зоне травматического повреждения роговой оболочки у животного первой группы на 7-е сутки от начала экспериментаFigure. 1. Injection of conjunctival vessels, corneal edema and the formation of a focus of the inflammatory process in the area of traumatic damage to the cornea in an animal of the first group on the 7th day from the beginning of the experiment
Фигура 2. Инъекция сосудов конъюнктивы, очаг воспалительного процесса в зоне повреждения роговой оболочки у животных второй группы на 3-е сутки от начала лечения.Figure 2. Injection of the vessels of the conjunctiva, the focus of the inflammatory process in the zone of damage to the cornea in animals of the second group on the 3rd day from the start of treatment.
Фигура 3. Инъекция сосудов конъюнктивы, отечность роговицы и очаг в зоне повреждения роговой оболочки у животных третьей группы на 3-е сутки от начала лечения.Figure 3. Injection of the vessels of the conjunctiva, corneal edema and a focus in the area of damage to the cornea in animals of the third group on the 3rd day from the start of treatment.
Фигура 4. Формирование посттравматического рубца в зоне повреждения роговой оболочки у животных второй группы на 7-е сутки от начала лечения. Figure 4. Formation of a post-traumatic scar in the area of damage to the cornea in animals of the second group on the 7th day from the start of treatment.
Фигура 5. Прозрачная роговица со сформированным посттравматическим рубцом у животных второй группы на 10-е сутки от начала лечения.Figure 5. Transparent cornea with a formed post-traumatic scar in animals of the second group on the 10th day from the start of treatment.
Фигура 6. Новообразованные сосуды, слабо выраженная отечность роговицы у животных третьей группы на 10-е сутки от начала лечения.Figure 6. Newly formed vessels, mild corneal edema in animals of the third group on the 10th day from the start of treatment.
Фигура 7. Инъекция сосудов конъюнктивы, отёчность и очаг в зоне повреждения роговицы у животных первой группы на 10-е сутки от начала лечения.Figure 7. Injection of the vessels of the conjunctiva, edema and focus in the area of corneal injury in animals of the first group on the 10th day from the start of treatment.
Фигура 8. Частичная отслойка эпителия (отс), отек роговицы (о), лейкоцитарная инфильтрация стромы роговицы (инф) через неделю после моделирования корнеального ранения с последующим обсеменением тканей роговицы Staphylococcus. Окраска гематоксилином и эозином. х400.Figure 8. Partial epithelial detachment (cc), corneal edema (o), leukocyte infiltration of the corneal stroma (inf) a week after modeling corneal injury followed by seeding of corneal tissues with Staphylococcus. Staining with hematoxylin and eosin. x400.
Фигура 9. Частичная отслойка эпителия (отс), отек роговицы (о), лейкоцитарная инфильтрация (инф) в строме роговицы у животных второй группы на 3-е сутки от начала лечения. Окраска гематоксилином и эозином. х400.Figure 9. Partial epithelial detachment (cc), corneal edema (o), leukocyte infiltration (inf) in the corneal stroma in animals of the second group on the 3rd day from the start of treatment. Staining with hematoxylin and eosin. x400.
Фигура 10. Извитость коллагеновых волокон (указаны стрелками), отек в собственном веществе (о), выраженная лейкоцитарная инфильтрация (инф) в передней 1/3 стромы роговицы, у животных третьей группы на 3 сутки. Окраска гематоксилином и эозином. х400.Figure 10. Crimp collagen fibers (indicated by arrows), edema in its own substance (o), pronounced leukocyte infiltration (inf) in the anterior 1/3 of the corneal stroma, in animals of the third group on day 3. Staining with hematoxylin and eosin. x400.
Фигура 11. Извитость коллагеновых волокон (указаны стрелками), отек (о) и слабо выраженная лейкоцитарная инфильтрация в строме (инф) роговицы у животных второй группы на 7-е сутки от начала лечения. Окраска гематоксилином и эозином. х400.Figure 11. Crimp collagen fibers (indicated by arrows), edema (o) and mild leukocyte infiltration in the stroma (inf) of the cornea in animals of the second group on the 7th day from the start of treatment. Staining with hematoxylin and eosin. x400.
Фигура 12. Частичная отслойка эпителия (отс), извитость коллагеновых волокон (указаны черными стрелками), выраженная лейкоцитарная инфильтрация (инф), множественные новообразованные сосуды (указаны желтыми стрелками) в строме роговицы у животных третьей группы на 7-е сутки от начала лечения. Окраска гематоксилином и эозином. х400.Figure 12. Partial epithelial detachment (cc), crimp collagen fibers (indicated by black arrows), pronounced leukocyte infiltration (inf), multiple newly formed vessels (indicated by yellow arrows) in the corneal stroma in animals of the third group on the 7th day from the start of treatment. Staining with hematoxylin and eosin. x400.
Фигура 13. Извитость коллагеновых волокон (указаны стрелками), слабо выраженная лейкоцитарная инфильтрация в собственном веществе (инф) в роговице у животных второй группы на 10-е сутки от начала лечения. Окраска гематоксилином эозином. х400.Figure 13. Crimp collagen fibers (indicated by arrows), poorly expressed leukocyte infiltration in its own substance (inf) in the cornea in animals of the second group on the 10th day from the start of treatment. Hematoxylin eosin staining. x400.
Фигура 14. Извитость коллагеновых волокон (указаны черными стрелками), умеренно выраженная лейкоцитарная инфильтрация (инф), множественные новообразованные сосуды (указаны желтыми стрелками) у животных третьей группы на 10-е сутки от начала лечения. х400.Figure 14. Crimp collagen fibers (indicated by black arrows), moderately pronounced leukocyte infiltration (inf), multiple newly formed vessels (indicated by yellow arrows) in animals of the third group on the 10th day from the start of treatment. x400.
Claims (1)
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| RU2020126426A RU2748717C1 (en) | 2020-08-07 | 2020-08-07 | Method for treatment of post-traumatic corneal inflammation |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| RU2020126426A RU2748717C1 (en) | 2020-08-07 | 2020-08-07 | Method for treatment of post-traumatic corneal inflammation |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| RU2748717C1 true RU2748717C1 (en) | 2021-05-31 |
Family
ID=76301200
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| RU2020126426A RU2748717C1 (en) | 2020-08-07 | 2020-08-07 | Method for treatment of post-traumatic corneal inflammation |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| RU (1) | RU2748717C1 (en) |
Citations (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2191044C2 (en) * | 2000-11-27 | 2002-10-20 | Петрозаводский государственный университет | Method for treating bacteria-induced injuries of eye cornea |
| RU2270704C1 (en) * | 2004-06-22 | 2006-02-27 | Государственное учреждение Межотраслевой научно-технический комплекс "Микрохирургия глаза" им. акад. С.Н. Федорова Министерства Здравоохранения Российской Федерации | Method of treatment of deep keratitis |
| RU2352367C1 (en) * | 2007-06-21 | 2009-04-20 | Государственное учреждение Научно-исследовательский институт глазных болезней Российской академии медицинских наук(ГУ НИИГБ РАМН) | Method of infectious keratitis treatment |
-
2020
- 2020-08-07 RU RU2020126426A patent/RU2748717C1/en active
Patent Citations (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2191044C2 (en) * | 2000-11-27 | 2002-10-20 | Петрозаводский государственный университет | Method for treating bacteria-induced injuries of eye cornea |
| RU2270704C1 (en) * | 2004-06-22 | 2006-02-27 | Государственное учреждение Межотраслевой научно-технический комплекс "Микрохирургия глаза" им. акад. С.Н. Федорова Министерства Здравоохранения Российской Федерации | Method of treatment of deep keratitis |
| RU2352367C1 (en) * | 2007-06-21 | 2009-04-20 | Государственное учреждение Научно-исследовательский институт глазных болезней Российской академии медицинских наук(ГУ НИИГБ РАМН) | Method of infectious keratitis treatment |
Non-Patent Citations (3)
| Title |
|---|
| Alhabshan R. et al. Effects of In-vivo Application of Cold Atmospheric Plasma on Corneal Wound Healing in New Zealand White Rabbits. Int J Ophthalmic Pathol 2013, 2:3. * |
| Alhabshan R. et al. Effects of In-vivo Application of Cold Atmospheric Plasma on Corneal Wound Healing in New Zealand White Rabbits. Int J Ophthalmic Pathol 2013, 2:3. Leonardi A. et al. Ros Production by a New Low-temperature Plasma Source for the Treatment of Corneal Infections. Investigative Ophthalmology & Visual Science April 2009, Vol.50, 3111. * |
| Leonardi A. et al. Ros Production by a New Low-temperature Plasma Source for the Treatment of Corneal Infections. Investigative Ophthalmology & Visual Science April 2009, Vol.50, 3111. * |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| Ferrari et al. | Escherichia coli keratitis treated with ultraviolet A/riboflavin corneal cross-linking: a case report | |
| WO2018156593A1 (en) | Formulations for eye treatments | |
| RU2652078C1 (en) | Method of surgical treatment of corneal ulcer of various etiology | |
| Frantz et al. | The effect of collagen shields on epithelial wound healing in rabbits | |
| Nagy et al. | Clinical and morphological response to UV-B irradiation after excimer laser photorefractive keratectomy | |
| RU2748717C1 (en) | Method for treatment of post-traumatic corneal inflammation | |
| Geggel et al. | Anterior stromal puncture with the Nd: YAG laser. | |
| Blodi | The late effects of x-radiation on the cornea | |
| Ishikawa et al. | Corneal sensitivity and nerve regeneration after excimer laser ablation | |
| RU2346338C1 (en) | Method of mycotic keratitis stimulation in rabbits | |
| RU2269985C1 (en) | Photodynamic method for treating infectious cornea wound cases | |
| RU2709834C1 (en) | Method for modeling in the experiment recurrent erosion of cornea | |
| RU2818848C1 (en) | Method of treating pharmacoresistant forms of infectious keratitis | |
| SU929097A1 (en) | Eye cornea desease treatment method | |
| RU2765331C1 (en) | Method for treating corneal ectasia of stages i and ii in combination with an extremely thin cornea | |
| RU2269326C1 (en) | Photodynamic method for treating infectious corneal ulcers | |
| Wang et al. | The effect of high intensity focused ultrasound keratoplasty on rabbit anterior segment | |
| RU2735377C1 (en) | Method for ultraviolet corneal cross-linking taking into account topographic pachymetry and keratotopography in patients with a thin cornea | |
| RU2012299C1 (en) | Curative means | |
| RU2644701C1 (en) | Method of conservative treatment of adapted penetrating wounds of the cornea | |
| RU2039540C1 (en) | Method for healing traumatic lesions of the cornea | |
| CN113769089A (en) | Application of photosensitizer in laser excitation state in preparation of medicines for treating organism protein tissue cross-linking | |
| Vangsted | Alterations to eye structures in hairless mice by long‐term ultraviolet irradiation A histopathological study | |
| RU2844407C1 (en) | Method of treating infectious corneal damages based on modified uv cross-linking using antiseptic agent with silver nanoparticles with reparative-regenerative properties | |
| RU2811887C1 (en) | Method of early conservative treatment of mild and moderate corneal burns |