RU2683251C1 - Method of diagnosis of clear cell renal cell carcinoma and method for prediction of metastasis based on mirna genes group - Google Patents
Method of diagnosis of clear cell renal cell carcinoma and method for prediction of metastasis based on mirna genes group Download PDFInfo
- Publication number
- RU2683251C1 RU2683251C1 RU2017138131A RU2017138131A RU2683251C1 RU 2683251 C1 RU2683251 C1 RU 2683251C1 RU 2017138131 A RU2017138131 A RU 2017138131A RU 2017138131 A RU2017138131 A RU 2017138131A RU 2683251 C1 RU2683251 C1 RU 2683251C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- mir
- dna
- pcr
- methylation
- metastasis
- Prior art date
Links
Images
Classifications
-
- G—PHYSICS
- G01—MEASURING; TESTING
- G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
- G01N33/00—Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
- G01N33/48—Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
- G01N33/50—Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
- G01N33/53—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
- G01N33/574—Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor for cancer
- G01N33/57407—Specifically defined cancers
- G01N33/57438—Specifically defined cancers of liver, pancreas or kidney
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
- C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
- C12Q1/68—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
- C12Q1/6806—Preparing nucleic acids for analysis, e.g. for polymerase chain reaction [PCR] assay
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
- C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
- C12Q1/68—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
- C12Q1/6844—Nucleic acid amplification reactions
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
- C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
- C12Q1/68—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
- C12Q1/6844—Nucleic acid amplification reactions
- C12Q1/686—Polymerase chain reaction [PCR]
-
- C—CHEMISTRY; METALLURGY
- C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
- C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
- C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
- C12Q1/68—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving nucleic acids
- C12Q1/6876—Nucleic acid products used in the analysis of nucleic acids, e.g. primers or probes
- C12Q1/6883—Nucleic acid products used in the analysis of nucleic acids, e.g. primers or probes for diseases caused by alterations of genetic material
- C12Q1/6886—Nucleic acid products used in the analysis of nucleic acids, e.g. primers or probes for diseases caused by alterations of genetic material for cancer
Landscapes
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- Organic Chemistry (AREA)
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
- Zoology (AREA)
- Immunology (AREA)
- Wood Science & Technology (AREA)
- Analytical Chemistry (AREA)
- Molecular Biology (AREA)
- Biochemistry (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Genetics & Genomics (AREA)
- Biotechnology (AREA)
- Microbiology (AREA)
- Physics & Mathematics (AREA)
- Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
- General Engineering & Computer Science (AREA)
- Biophysics (AREA)
- Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
- Pathology (AREA)
- Urology & Nephrology (AREA)
- Hematology (AREA)
- Oncology (AREA)
- Hospice & Palliative Care (AREA)
- Biomedical Technology (AREA)
- Gastroenterology & Hepatology (AREA)
- Cell Biology (AREA)
- Food Science & Technology (AREA)
- Medicinal Chemistry (AREA)
- General Physics & Mathematics (AREA)
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
Description
Заявляемая группа изобретение относится к области биомедицины, в частности молекулярной и клинической онкологии, и касается способа диагностики светлоклеточного почечно-клеточного рака (скПКР) путем оценки статуса метилирования группы из 7 генов, а также способа прогнозирования метастазирования скПКР путем оценки статуса метилирования группы из 5.The inventive group the invention relates to the field of biomedicine, in particular molecular and clinical oncology, and relates to a method for the diagnosis of clear cell renal cell carcinoma (SCCR) by assessing the methylation status of a group of 7 genes, as well as a method for predicting metastasis of scCRK by assessing the methylation status of a group of 5.
У 70-80% больных раком почки диагностируют скПКР, который характеризуется наиболее высоким уровнем смертности среди урогенитальных видов рака. Более 35% случаев скПКР обнаруживается уже на поздних стадиях с наличием метастазирования, которое снижает показатели 5-летней выживаемости до 9% [1].In 70-80% of patients with kidney cancer, they are diagnosed with SCCR, which is characterized by the highest mortality rate among urogenital cancers. More than 35% of cases of SCCR are detected already in the late stages with the presence of metastasis, which reduces the 5-year survival rate to 9% [1].
Показано, что доля генов микроРНК, регулируемых метилированием, в несколько раз выше, чем генов, кодирующих белки [2]. Однако в качестве биомаркеров используют чаще профили метилирования белок-кодирующих генов, а также профили экспрессии микроРНК, хотя для их определения требуется анализ препаратов РНК, в то время как анализ метилирования, в том числе генов микроРНК, осуществляется на препаратах ДНК, что более доступно, особенно в условиях лабораторий при клиниках.It was shown that the proportion of microRNA genes regulated by methylation is several times higher than the genes encoding proteins [2]. However, methylation profiles of protein-coding genes, as well as miRNA expression profiles, are used as biomarkers more often, although their determination requires analysis of RNA preparations, while methylation analysis, including miRNA genes, is performed on DNA preparations, which is more accessible, especially in laboratories at clinics.
Анализ метилирования более 20 генов микроРНК в образцах ДНК скПКР позволил нам идентифицировать более 10 новых гиперметилируемых при скПКР генов микроРНК, с использованием которых составлены группы маркеров для диагностики скПКР и прогноза метастазирования.An analysis of the methylation of more than 20 miRNA genes in scKPR DNA samples allowed us to identify more than 10 new miRNA genes hypermethylated in scKPR using which marker groups were compiled to diagnose scKPR and predict metastasis.
Отбор генов микроРНК, связанных с развитием опухолей и ассоциированных с CpG-островками, проводили с привлечением алгоритмов, содержащихся в базе данных miRWalk 2.0 (http://zmf.umm.uni-heidelberg.de/apps/zmf/mirwalk2/index.html), и CpGcluster (http://bioinfo2.ugr.es/CpGcluster/). Оптимальные системы маркеров выбирали по результатам анализа ROC (Receiver Operating Characteristic curve)-кривых (характеристических кривых), проведенного с помощью ресурса http://www.biosoft.hacettepe.edu.tr/easyROC/, который позволил вычислить диагностические и прогностические параметры разных наборов маркеров: площадь под ROC-кривой (AUC, area under curve), оптимальный критерий отсечения, чувствительность и специфичность.MicroRNA genes associated with the development of tumors and associated with CpG islands were selected using the algorithms contained in the miRWalk 2.0 database (http://zmf.umm.uni-heidelberg.de/apps/zmf/mirwalk2/index.html ), and CpGcluster (http://bioinfo2.ugr.es/CpGcluster/). The optimal marker systems were selected based on the analysis of ROC (Receiver Operating Characteristic curve) -curves (characteristic curves) carried out using the resource http://www.biosoft.hacettepe.edu.tr/easyROC/, which allowed us to calculate the diagnostic and prognostic parameters of different sets of markers: the area under the ROC curve (AUC, area under curve), the optimal cut-off criterion, sensitivity and specificity.
Оценка статуса метилирования 7 генов (MIR-132, MIR-125b-1, MIR-137, MIR-375, MIR-193a, MIR-1258, MIR-34b/c) в 70 образцах скПКР и в 19 образцах почки от пост-мортальных лиц без онкопатологии в анамнезе позволила на их основе определить группу маркеров для диагностики этого заболевания (панель 1). Оценка статуса метилирования 5 генов (MIR-125b-1, MIR-375, MIR-107, MIR-1258, MIR-203) в 20 образцах метастазирующего и 50 образцах неметастазирующего скПКР позволила определить группу маркеров для прогнозирования метастазирования (панель 2). В источниках информации не обнаружено сведений о выявлении гиперметилирования для 8 из 9 использованных генов при скПКР; ранее имелось только сообщение о гиперметилировании при скПКР гена MIR-34b/c [3]. Данные по гиперметилированию при скПКР 8 генов (MIR-132, MIR-125b-1, MIR-137, MIR-375, MIR-193a, MIR-107, MIR-1258 и MIR-203) сообщены впервые в этом документе.Assessment of methylation status of 7 genes (MIR-132, MIR-125b-1, MIR-137, MIR-375, MIR-193a, MIR-1258, MIR-34b / c) in 70 samples of SCCR and in 19 kidney samples from post- mortal individuals without a history of oncology have made it possible to determine on their basis a group of markers for the diagnosis of this disease (panel 1). Assessment of methylation status of 5 genes (MIR-125b-1, MIR-375, MIR-107, MIR-1258, MIR-203) in 20 samples of metastatic and 50 samples of non-metastatic scCCR allowed us to determine the group of markers for predicting metastasis (panel 2). No information was found in the sources of information on the identification of hypermethylation for 8 of the 9 genes used in SCCR; previously, there was only a report on hypermethylation in scCR of the MIR-34b / c gene [3]. Hypermethylation data for scCRD of 8 genes (MIR-132, MIR-125b-1, MIR-137, MIR-375, MIR-193a, MIR-107, MIR-1258 and MIR-203) were reported for the first time in this document.
В источниках информации не обнаружено способов диагностики или прогноза метастазирования скПКР на основе анализа статуса метилирования генов микроРНК.No information was found in the information sources for the diagnosis or prognosis of metastasis of SCCR based on an analysis of the status of methylation of miRNA genes.
Ранее в Европейской патентной базе (CN105408494 (A) ― 2016-03-16) описан способ оценки риска плохого прогноза для выживаемости пациентов с почечно-клеточным раком на основе анализа метилирования группы белок-кодирующих генов (FAM150A, GRM6, ZNF540, ZFP42, ZNF154, RIMS4 и др.) [4]. В данном документе не рассмотрен способ диагностики скПКР и способ прогнозирования метастазирования, что необходимо для коррекции лечения.Earlier, the European Patent Database (CN105408494 (A) - 2016-03-16) described a method for assessing the risk of poor prognosis for the survival of patients with renal cell cancer based on methylation analysis of a group of protein coding genes (FAM150A, GRM6, ZNF540, ZFP42, ZNF154 , RIMS4 and others) [4]. This document does not consider a method for diagnosing SCCR and a method for predicting metastasis, which is necessary for treatment correction.
В Европейской патентной базе (CN105779640 (A) ― 2016-07-20) [5] описан способ диагностики скПКР, основанный на анализе изменений уровня экспрессии 5 генов микроРНК в образцах РНК. Характеристики системы не приведены. Связь с метастазированием не рассмотрена.The European Patent Database (CN105779640 (A) - 2016-07-20) [5] describes a method for diagnosing scCCR based on an analysis of changes in the expression level of 5 miRNA genes in RNA samples. System specifications not shown. The relationship with metastasis has not been considered.
В качестве ближайшего аналога рассматривается публикация [6 - прототип], в которой предложен способ ранней диагностики рака почки, основанный на анализе изменений уровня экспрессии 5 генов микроРНК (miR-193a-3p, miR-362, miR-572, miR-28-5p, miR-378). Данный способ характеризуется чувствительностью 80%, специфичностью 71% и величиной AUC 0.807. Связь с метастазированием не рассмотрена.The publication [6 - prototype] is considered as the closest analogue, in which a method for the early diagnosis of kidney cancer is proposed based on an analysis of changes in the expression level of 5 microRNA genes (miR-193a-3p, miR-362, miR-572, miR-28-5p , miR-378). This method is characterized by a sensitivity of 80%, a specificity of 71%, and an AUC value of 0.807. The relationship with metastasis has not been considered.
Техническая проблема, разрешаемая созданием заявляемой группой изобретений – расширить арсенал клинически удобных, требующих очень малого количества (не более 100 нг) ДНК, что дает возможность использовать их для анализа метилирования ДНК в образцах малого размера, и эффективных способов диагностики и прогнозирования метастазирования светлоклеточного почечно-клеточного рака на основе группы генов микроРНК, а именно создание способа диагностики светлоклеточного почечно-клеточного рака (скПКР) на основе разработанной панели (группы) «1» из 7 генов микроРНК (MIR-132, MIR-125b-1, MIR-137, MIR-375, MIR-193a, MIR-1258, MIR-34b/c) путем выявления гиперметилирования, по крайней мере, у двух генов из этой группы; а также создания способа прогнозирования метастазирования светлоклеточного почечно-клеточного рака (скПКР) на основе разработанной панели (группы) «2» из 5 генов микроРНК (MIR-125b-1, MIR-375, MIR-107, MIR-1258, MIR-203) путем выявления гиперметилирования, у каких-либо трех генов из этой группы.The technical problem solved by the creation of the claimed group of inventions is to expand the arsenal of clinically convenient, requiring a very small amount (not more than 100 ng) of DNA, which makes it possible to use them for analysis of DNA methylation in small samples, and effective methods for diagnosing and predicting metastasis of clear cell renal cell cancer based on a group of microRNA genes, namely, the creation of a method for the diagnosis of clear cell renal cell cancer (SCCR) based on the developed panel (group) 1 ”of 7 microRNA genes (MIR-132, MIR-125b-1, MIR-137, MIR-375, MIR-193a, MIR-1258, MIR-34b / c) by detecting hypermethylation in at least two genes from this group; as well as creating a method for predicting metastasis of clear cell renal cell carcinoma (SCCR) based on the developed panel (group) “2” of 5 microRNA genes (MIR-125b-1, MIR-375, MIR-107, MIR-1258, MIR-203 ) by detecting hypermethylation in any three genes from this group.
Технический результат при использовании каждого способа заявляемой группы изобретений, связанных единым изобретательским замыслом, обеспечивающий решение указанной проблемы заключается в повышении достоверности результатов, упрощении технологии, сокращении длительности процедур и, тем самым, в увеличении производительности исследований.The technical result when using each method of the claimed group of inventions connected by a single inventive concept, providing a solution to this problem is to increase the reliability of the results, simplify the technology, reduce the duration of the procedures and, thereby, increase the productivity of research.
При этом выявление метилирования (гиперметилирования), по крайней мере, 2-х генов из группы (панели) 1 в предположительно пораженной раком ткани человека, по сравнению со здоровой тканью почки служит диагностическим признаком скПКР. Для прогноза метастазирования требуется выявление метилирования (гиперметилирования), по крайней мере, 3-х генов из группы (панели) 2 в пораженной раком ткани человека. Заявленный способ диагностики скПКР позволяет на основе группы генов микроРНК (панель 1) с высокой специфичностью и чувствительностью диагностировать скПКР. Заявленный способ прогнозирования метастазирования скПКР позволяет на основе группы генов микроРНК (панель 2) с высокой специфичностью и чувствительностью прогнозировать наличие метастазов в лимфатических узлах и/или других тканях пациента, что важно для коррекции лечения.At the same time, the detection of methylation (hypermethylation) of at least 2 genes from group (panel) 1 in the tissue of a person presumably affected by cancer, compared with healthy kidney tissue, is a diagnostic sign of SCCR. The prognosis of metastasis requires the detection of methylation (hypermethylation) of at least 3 genes from the group (panel) 2 in human tissue affected by cancer. The claimed method for diagnosing scKPR allows diagnosing scKPR based on a group of microRNA genes (panel 1) with high specificity and sensitivity. The claimed method for predicting metastasis of SCCR allows, based on a group of microRNA genes (panel 2), to predict the presence of metastases in the lymph nodes and / or other tissues of the patient with high specificity and sensitivity, which is important for treatment correction.
На фиг.1 графически изображены результаты анализа характеристических или ROC-кривых оптимальной группы маркеров для диагностики светлоклеточного почечно-клеточного рака (Панель 1). Примечания: *ДИ – доверительный интервал. Площадь под кривой (area under curve) составляет: AUC = 0,939. При оптимальном критерии отсечения (критерий отсечения >0) – достаточно выявления метилирования 1 маркера из 7 (первая строка сверху), чувствительность составила 90%, специфичность - 90%. Для усиления специфичности задана необходимость выявления метилирования минимум 2 маркеров из 7 - критерий отсечения >0,1429 (вторая строка сверху), чувствительность составила 79%, специфичность достигла 100%;Figure 1 graphically shows the results of the analysis of characteristic or ROC-curves of the optimal group of markers for the diagnosis of clear cell renal cell carcinoma (Panel 1). Notes: * CI - confidence interval. The area under the curve is: AUC = 0.939. With the optimal cut-off criterion (cut-off criterion> 0), it is enough to detect methylation of 1 marker out of 7 (the first line from the top), the sensitivity is 90%, the specificity is 90%. To enhance specificity, the need was identified for methylation of at least 2 of 7 markers - cut-off criterion> 0.1429 (second row from the top), sensitivity was 79%, specificity reached 100%;
на фиг.2 графически изображены результаты анализа характеристических или ROC-кривых оптимальной группы маркеров для прогноза метастазирования светлоклеточного почечно-клеточного рака (панель 2). Площадь под кривой (area under curve) составляет: AUC=0,945. Приведены: оптимальный критерий отсечения (> 0,4) и значения чувствительности (75%) и специфичности (94%). Согласно критерию отсечения необходимо выявление метилирования минимум 3 маркеров из 5.figure 2 graphically shows the results of the analysis of characteristic or ROC-curves of the optimal group of markers for the prognosis of metastasis of clear cell renal cell carcinoma (panel 2). The area under the curve is: AUC = 0.945. The optimal cut-off criterion (> 0.4) and the values of sensitivity (75%) and specificity (94%) are given. According to the cutoff criterion, methylation of at least 3 out of 5 markers is necessary.
Сущность изобретения в части способа диагностики светлоклеточного почечно-клеточного рака состоит в том, что у обследуемых лиц берут образцы ткани почки, производят выделение и очистку ДНК из взятых образцов и производят методом МС-ПЦР анализ метилирования фрагментов ДНК с применением праймеров, специфичных как к метилированному, так и к неметилированному аллелю, и диагностируют скПКР по наличию гиперметилирования, по крайней мере, у двух маркеров из группы генов: MIR-132, MIR-125b-1, MIR-137, MIR-375, MIR-193a, MIR-1258, MIR-34b/c.The invention in terms of a method for the diagnosis of clear cell renal cell carcinoma consists in taking kidney tissue samples from examined individuals, isolating and purifying DNA from the samples taken, and performing DNA fragment methylation analysis using MS-PCR using primers specific for methylated and to the unmethylated allele, and scKPR is diagnosed by the presence of hypermethylation in at least two markers from the gene group: MIR-132, MIR-125b-1, MIR-137, MIR-375, MIR-193a, MIR-1258 MIR-34b / c.
Предпочтительно, выделение и очистку ДНК из образцов ткани почки проводят методом фенол-хлороформенной экстракции.Preferably, the isolation and purification of DNA from kidney tissue samples is carried out by phenol-chloroform extraction.
Предпочтительно, перед проведением метилспецифичной ПЦР (МС-ПЦР) определяют качество и точную концентрацию ДНК спектрофотометрически по соотношению оптической плотности при длинах волн 260 и 280 нм, а также проводят бисульфитную конверсию ДНК.Preferably, before methyl-specific PCR (MS-PCR), the quality and exact concentration of DNA is determined spectrophotometrically by the ratio of optical density at wavelengths of 260 and 280 nm, and bisulfite DNA conversion is also carried out.
Предпочтительно, продукты, полученные методом МС-ПЦР, представляющие собой фрагменты ДНК, разделяют электрофорезом в 2% агарозном геле, либо в 10% полиакриламидном геле (при длине продукта ПЦР менее 160 п.н. (пар нуклеотидов)). и проверяют отсутствие продукта при проведении МС-ПЦР с каждой парой из указанной группы праймеров на неконвертированной ДНК.Preferably, the products obtained by MS-PCR, which are DNA fragments, are separated by electrophoresis in a 2% agarose gel, or in 10% polyacrylamide gel (with a PCR product less than 160 bp (nucleotide pairs)). and check the absence of the product when conducting MS-PCR with each pair of the specified group of primers on unconverted DNA.
Предпочтительно, в качестве контролей для неметилированных аллелей используют коммерческий препарат ДНК #G1471 (Promega, США), (www.promega.com/products/ ) причем в качестве позитивного контроля 100%-ого метилирования используют коммерческий препарат ДНК #SD1131 (Thermo Fisher Scientific, США), (https://www.thermofisher.com/us/en/home.html).Preferably, commercial DNA preparation # G1471 (Promega, USA), (www.promega.com/products/) is used as controls for unmethylated alleles, and commercial DNA preparation # SD1131 (Thermo Fisher Scientific, is used as a positive control for 100% methylation). , USA), (https://www.thermofisher.com/us/en/home.html).
Сущность изобретения в части способа прогнозирования метастазирования светлоклеточного почечно-клеточного рака состоит в том, что у обследуемых лиц берут образцы ткани почки, производят выделение и очистку ДНК из взятых образцов и производят методом МС-ПЦР анализ метилирования фрагментов ДНК с помощью праймеров, специфичных как к метилированному, так и к неметилированному аллелю, и считают подтвержденным прогноз метастазирования скПКР по наличию гиперметилирования, по крайней мере, у трёх маркеров из группы генов MIR-125b-1, MIR-375, MIR-107, MIR-1258 и MIR-203.The essence of the invention in terms of a method for predicting metastasis of clear cell renal cell carcinoma consists in taking kidney tissue samples from examined individuals, isolating and purifying DNA from the samples taken, and performing DNA fragment methylation analysis using MS-PCR using primers specific for methylated and unmethylated allele, and the prognosis of metastasis of SCCR for the presence of hypermethylation is considered confirmed to be true for at least three markers from the gene group MIR-125b-1, MIR-375, MIR-107, MIR-125 8 and MIR-203.
Предпочтительно, выделение и очистку ДНК из образцов ткани почки проводят методом фенол-хлороформенной экстракции.Preferably, the isolation and purification of DNA from kidney tissue samples is carried out by phenol-chloroform extraction.
Предпочтительно, перед проведением метилспецифичной ПЦР (МС-ПЦР) определяют качество и точную концентрацию ДНК спектрофотометрически по соотношению оптической плотности при длинах волн 260 и 280 нм, а также проводят бисульфитную конверсию ДНК. редпочтительно, продукты, полученные методом МС-ПЦР, представляющие собой фрагменты ДНК, разделяют электрофорезом в 2% агарозном геле, либо в 10% полиакриламидном геле (при длине продукта ПЦР менее 160 н.п.), и проверяют отсутствие продукта при проведении МС-ПЦР с каждой парой из указанной группы праймеров на неконвертированной ДНК.Preferably, before methyl-specific PCR (MS-PCR), the quality and exact concentration of DNA is determined spectrophotometrically by the ratio of optical density at wavelengths of 260 and 280 nm, and bisulfite DNA conversion is also carried out. preferably, products obtained by MS-PCR, which are DNA fragments, are separated by electrophoresis in 2% agarose gel, or in 10% polyacrylamide gel (with a PCR product length of less than 160 bp), and check the absence of the product when conducting MS- PCR with each pair of the indicated group of primers on unconverted DNA.
Предпочтительно, в качестве контролей для неметилированных аллелей используют коммерческий препарат ДНК #G1471 (Promega, США), причем в качестве позитивного контроля 100%-ого метилирования используют коммерческий препарат ДНК #SD1131 (Thermo Fisher Scientific, США).Preferably, the commercial DNA preparation # G1471 (Promega, USA) is used as controls for unmethylated alleles, and the commercial DNA preparation # SD1131 (Thermo Fisher Scientific, USA) is used as a positive control for 100% methylation.
Диагностику скПКР осуществляют следующим образом:Diagnosis of SCCR is as follows:
Берут образцы ткани почки у лиц, обследуемых для выявления онкологического заболевания. Выделение и очистку ДНК из образцов ткани почки проводят методом фенол-хлороформенной экстракции. Качество и точную концентрацию ДНК определяют спектрофотометрически по соотношению оптической плотности при длинах волн 260 и 280 нм. Далее проводят бисульфитную конверсию ДНК с последующей метилспецифичной ПЦР (МС-ПЦР) [3]. Для анализа метилирования генов микроРНК методом МС-ПЦР используют две пары праймеров, специфичных как к метилированному, так и к неметилированному аллелю (Таблица 1).Kidney tissue samples are taken from individuals examined for cancer. Isolation and purification of DNA from kidney tissue samples is carried out by phenol-chloroform extraction. The quality and exact concentration of DNA is determined spectrophotometrically by the ratio of optical density at wavelengths of 260 and 280 nm. Next, bisulfite DNA conversion is carried out followed by methyl-specific PCR (MS-PCR) [3]. To analyze the methylation of microRNA genes by MS-PCR, two pairs of primers are used that are specific to both methylated and unmethylated alleles (Table 1).
Предварительно, для проверки пригодности праймеров и условий МС-ПЦР, выполняется проверка секвенированием, т.е. подтверждается, что с этими прймерами и выбранными условиями МС-ПЦР продукт соответствует сиквенсу.Previously, to verify the suitability of the primers and the conditions of the MS-PCR, a sequencing check is performed, i.e. it is confirmed that with these primers and the selected conditions of MS-PCR, the product corresponds to the sequence.
Продукты МС-ПЦР, представляющие собой фрагменты ДНК, разделяют электрофорезом в 2% агарозном геле, либо в 10% полиакриламидном геле (при длине продукта ПЦР менее 160 н.п.). Проверяют отсутствие продукта при проведении МС-ПЦР с каждой парой праймеров на неконвертированной ДНК. В качестве контролей для неметилированных аллелей используют коммерческий препарат ДНК #G1471 (Promega, США). Метилирование - ковалентная модификация ДНК - осуществляется путем переноса метильной группы с S-аденозил метионина в 5-ю позицию пиримидинового кольца цитозина. Гиперметилированием называют аберрантное (аномальное) метилирование промоторных фрагментов супрессорных генов в опухолях при его отсутствии в парной гистологически нормальной ткани. В качестве позитивного контроля 100%-ого метилирования используют коммерческий препарат ДНК #SD1131 (Thermo Fisher Scientific, США). Соответствие фрагментов МС-ПЦР исследуемым генам проверяют прямым секвенированием обеих цепей продуктов МС-ПЦР.MS-PCR products, which are DNA fragments, are separated by electrophoresis in a 2% agarose gel, or in a 10% polyacrylamide gel (with a PCR product length of less than 160 bp). Check the absence of the product during the MS-PCR with each pair of primers on unconverted DNA. As controls for unmethylated alleles, a commercial DNA preparation # G1471 (Promega, USA) was used. Methylation - a covalent modification of DNA - is carried out by transferring the methyl group from S-adenosyl methionine to the 5th position of the pyrimidine ring of cytosine. Hypermethylation refers to aberrant (abnormal) methylation of the promoter fragments of suppressor genes in tumors in the absence of it in paired histologically normal tissue. As a positive control of 100% methylation, a commercial DNA preparation # SD1131 (Thermo Fisher Scientific, USA) is used. The correspondence of MS-PCR fragments to the studied genes is checked by direct sequencing of both chains of MS-PCR products.
Диагностику скПКР осуществляют по результатам выявления гиперметилирования маркеров из группы 7 генов (MIR-132, MIR-125b-1, MIR-137, MIR-375, MIR-193a, MIR-1258, MIR-34b/c). Диагноз наличия скПКР устанавливается по наличию гиперметилирования, по крайней мере, у двух маркеров из 7 указанных генов (панель 1).Diagnosis of SCCR is carried out according to the results of detecting hypermethylation of markers from a group of 7 genes (MIR-132, MIR-125b-1, MIR-137, MIR-375, MIR-193a, MIR-1258, MIR-34b / c). The diagnosis of SCCR is established by the presence of hypermethylation in at least two markers from 7 of these genes (panel 1).
Результаты, соответствующие фиг.1The results corresponding to figure 1
Прогнозирование метастазирования скПКР осуществляют следующим образом:Prediction of metastasis of SCCR is as follows:
Берут образцы ткани почки у лиц, обследуемых с установленным диагнозом. Выделение и очистку ДНК из образцов ткани почки проводят методом фенол-хлороформенной экстракции. Качество и точную концентрацию ДНК определяют спектрофотометрически по соотношению оптической плотности при длинах волн 260 и 280 нм. Далее проводят бисульфитную конверсию ДНК с последующей метилспецифичной ПЦР (МС-ПЦР) [3]. Для анализа метилирования генов микроРНК методом МС-ПЦР используют две пары праймеров, специфичных как к метилированному, так и к неметилированному аллелю (Таблица 1).Kidney tissue samples are taken from individuals examined with an established diagnosis. Isolation and purification of DNA from kidney tissue samples is carried out by phenol-chloroform extraction. The quality and exact concentration of DNA is determined spectrophotometrically by the ratio of optical density at wavelengths of 260 and 280 nm. Next, bisulfite DNA conversion is carried out followed by methyl-specific PCR (MS-PCR) [3]. To analyze the methylation of microRNA genes by MS-PCR, two pairs of primers are used that are specific to both methylated and unmethylated alleles (Table 1).
Примечания:Notes:
Праймеры подобраны авторами с использованием известных программ (Methyl Primer Express v.1.0, Vector NTI v.10.0 и др.). Условия МС-ПЦР (Тотж) подобраны экспериментально. п.н. – пары нуклеотидов.Primers are selected by the authors using well-known programs (Methyl Primer Express v.1.0, Vector NTI v.10.0, etc.). Conditions MS-PCR (T OTL ) are selected experimentally. bp - pairs of nucleotides.
Продукты МС-ПЦР, представляющие собой фрагменты ДНК, разделяют электрофорезом в 2% агарозном геле, либо в 10% полиакриламидном геле (при длине продукта ПЦР менее 160 н.п.). Проверяют отсутствие продукта при проведении МС-ПЦР с каждой парой праймеров на неконвертированной ДНК. В качестве контролей для неметилированных аллелей используют коммерческий препарат ДНК #G1471 (Promega, США). Метилирование - ковалентная модификация ДНК - осуществляется путем переноса метильной группы с S-аденозил метионина в 5-ю позицию пиримидинового кольца цитозина. Гиперметилированием называют аберрантное (аномальное) метилирование промоторных фрагментов супрессорных генов в опухолях при его отсутствии в парной гистологически нормальной ткани. В качестве позитивного контроля 100%-ого метилирования используют коммерческий препарат ДНК #SD1131 (Thermo Fisher Scientific, США). Соответствие фрагментов МС-ПЦР исследуемым генам проверяют прямым секвенированием обеих цепей продуктов МС-ПЦР.MS-PCR products, which are DNA fragments, are separated by electrophoresis in a 2% agarose gel, or in a 10% polyacrylamide gel (with a PCR product length of less than 160 bp). Check the absence of the product during the MS-PCR with each pair of primers on unconverted DNA. As controls for unmethylated alleles, a commercial DNA preparation # G1471 (Promega, USA) was used. Methylation - a covalent modification of DNA - is carried out by transferring the methyl group from S-adenosyl methionine to the 5th position of the pyrimidine ring of cytosine. Hypermethylation refers to aberrant (abnormal) methylation of the promoter fragments of suppressor genes in tumors in the absence of it in paired histologically normal tissue. As a positive control of 100% methylation, a commercial DNA preparation # SD1131 (Thermo Fisher Scientific, USA) is used. The correspondence of MS-PCR fragments to the studied genes is checked by direct sequencing of both chains of MS-PCR products.
Диагностику скПКР осуществляют по результатам выявления гиперметилирования маркеров из группы 5 генов (MIR-125b-1, MIR-375, MIR-107, MIR-1258, MIR-203). Диагноз наличия скПКР устанавливается по наличию гиперметилирования, по крайней мере, у трех маркеров из 5 указанных генов (панель 2).Diagnosis of SCCR is carried out according to the results of detecting hypermethylation of markers from group 5 genes (MIR-125b-1, MIR-375, MIR-107, MIR-1258, MIR-203). The diagnosis of SCCR is established by the presence of hypermethylation in at least three markers of the 5 indicated genes (panel 2).
Для того чтобы оценить диагностическую эффективность каждого из заявляемых способов используют характеристические кривые. Они отражают взаимную зависимость ложноположительных и истинно положительных результатов. Полное название таких кривых — «операционные характеристические кривые наблюдателя» - Receiver Operating Characteristic curve или, сокращенно, ROC-curve. Поэтому часто такие кривые называют ROC-кривыми, а выполняемые для их построения действия — ROC-анализом.In order to evaluate the diagnostic effectiveness of each of the proposed methods using characteristic curves. They reflect the mutual dependence of false positive and truly positive results. The full name of such curves is “Observer Operating Characteristic Curves” - Receiver Operating Characteristic curve or, in short, ROC-curve. Therefore, such curves are often called ROC curves, and the actions performed to construct them are called ROC analysis.
Характеристические кривые позволили количественно сопоставить диагностические эффективности различных наборов маркеров и выбрать наиболее оптимальные. С целью подбора оптимальных панелей маркеров по результатам обследования верифицированной группы больных и здоровых, данные, полученные для разных наборов генов (панелей маркеров), сводили в таблицы и по ним строили характеристические кривые — ROC-кривые. На фиг.1 и фиг.2. приведены ROC-кривые для оптимальных панелей маркеров (панель 1 и 2), для которых программа построила ROC-кривые с минимальным критерием отсечения и максимальной площадью под кривой (AUC).The characteristic curves made it possible to quantitatively compare the diagnostic efficiencies of various sets of markers and select the most optimal ones. In order to select the optimal marker panels according to the results of the examination of the verified group of patients and healthy, the data obtained for different sets of genes (marker panels) were tabulated and characteristic curves — ROC curves — were constructed from them. In figure 1 and figure 2. ROC curves are shown for optimal marker panels (panels 1 and 2), for which the program constructed ROC curves with a minimum cut-off criterion and a maximum area under the curve (AUC).
Пример 1. Анализ метилирования генов микроРНК, используемых в заявляемых способах, в образцах опухолей и онкологически здоровых тканях почки.Example 1. Analysis of methylation of microRNA genes used in the claimed methods, in tumor samples and oncologically healthy kidney tissues.
Для диагностики скПКР отобраны 7 генов: MIR-132, MIR-125b-1, MIR-137, MIR-375, MIR-193a, MIR-1258, MIR-34b/c (панель 1), для прогноза метастазирования – 5 генов: MIR-125b-1, MIR-375, MIR-107, MIR-1258 и MIR-203 (панель 2), в сумме отобраны 9 маркерных генов: MIR-132, MIR-125b-1, MIR-137, MIR-375, MIR-193a, MIR-1258, MIR-34b/c, MIR-107 и MIR-203. Для этих 9 исследуемых генов микроРНК МС-ПЦР проводили в 20 мкл реакционной смеси, содержащей 67 мМ Трис-HCl, рН 8.8, 16,7 мМ (NH4)2SO4, 0.01% Tween-20; 1,5 мМ MgCl2, 0.25 мМ каждого dNTP; 10-20 нг ДНК; 25 пмолей каждого праймера; 0,5 ед. Hot Start Taq ДНК полимеразы («СибЭнзим», Новосибирск). Амплификацию проводили по программе: 95°С, 5 мин; 35 циклов {95°С, 10 c; Тотж (см. Табл. 1), 20 с; 72°С, 30с}; 72°С, 3 мин. ПЦР проводили на амплификаторe DNA Engine Dyad Cycler фирмы Bio-Rad (США). Праймеры, температура отжига и размер продуктов МС-ПЦР приведены в Таблице 1.7 genes were selected for the diagnosis of SCCR: MIR-132, MIR-125b-1, MIR-137, MIR-375, MIR-193a, MIR-1258, MIR-34b / c (panel 1), for the prognosis of metastasis - 5 genes: MIR-125b-1, MIR-375, MIR-107, MIR-1258 and MIR-203 (panel 2), a total of 9 marker genes were selected: MIR-132, MIR-125b-1, MIR-137, MIR-375 , MIR-193a, MIR-1258, MIR-34b / c, MIR-107 and MIR-203. For these 9 studied genes, micro-RNA MS-PCR was performed in 20 μl of the reaction mixture containing 67 mM Tris-HCl, pH 8.8, 16.7 mM (NH 4 ) 2 SO 4 , 0.01% Tween-20; 1.5 mM MgCl 2 , 0.25 mM each dNTP; 10-20 ng of DNA; 25 pmoles of each primer; 0.5 units Hot Start Taq DNA polymerase (SibEnzyme, Novosibirsk). Amplification was performed according to the program: 95 ° C, 5 min; 35 cycles {95 ° C, 10 s; T otzh (see tab. 1), 20 s; 72 ° C, 30 s}; 72 ° C, 3 min. PCR was performed on a DNA Engine Dyad Cycler amplifier from Bio-Rad (USA). Primers, annealing temperature, and size of MS-PCR products are shown in Table 1.
Для 70 пациентов с морфологически установленным диагнозом – светлоклеточный почечно-клеточный рак (скПКР) и 19 доноров (умерших от неонкологических заболеваний) проведен анализ метилирования маркеров композиции 1. Данные по клинико-гистологической характеристике образцов скПКР и по метилированию маркеров: MIR-132, MIR-125b-1, MIR-137, MIR-375, MIR-193a, MIR-1258, MIR-34b/c (панель 1) и MIR-125b-1, MIR-375, MIR-107, MIR-1258 и MIR-203 (панель 2) приведены в качестве примера для 14 образцов опухолей (Таблица 2). Данные по метилированию 7 маркеров для диагностики скПКР приведены также для 19 доноров в Таблице 3. Сопоставление данных по метилированию маркеров панели 1 в образцах опухолей и доноров позволило показать применимость способа диагностики скПКР на основе этой группы маркеров и его высокую чувствительность и строгую специфичностью (см. пример 2).Methylation of markers of composition 1 was analyzed for 70 patients with a morphologically established diagnosis of clear cell renal cell carcinoma (SCCR) and 19 donors (who died from non-cancerous diseases). Data on the clinical and histological characteristics of SCCR samples and on methylation of markers: MIR-132, MIR -125b-1, MIR-137, MIR-375, MIR-193a, MIR-1258, MIR-34b / c (panel 1) and MIR-125b-1, MIR-375, MIR-107, MIR-1258 and MIR -203 (panel 2) are given as an example for 14 tumor samples (table 2). Methylation data of 7 markers for the diagnosis of scKPR are also given for 19 donors in Table 3. Comparison of the data on the methylation of panel 1 markers in samples of tumors and donors allowed us to show the applicability of the method for diagnosing scKPR based on this group of markers and its high sensitivity and strict specificity (see example 2).
Пример 2. Оценка чувствительности и специфичности заявляемого способа диагностики скПКР на основе группы генов микроРНК.Example 2. Assessment of the sensitivity and specificity of the proposed method for the diagnosis of SCCR based on a group of miRNA genes.
Важным свойством способа диагностики скПКР на основе 7 генов микроРНК (MIR-132, MIR-125b-1, MIR-137, MIR-375, MIR-193a, MIR-1258, MIR-34b/c, панель 1) является высокая клиническая чувствительность и специфичность. Наличие метилирования, по крайней мере, у одного маркера панели 1 выявлено у 63 из 70 пациентов с скПКР и у 2-х из 19 доноров (умерших от неонкологических заболеваний). В соответствии с этими данными, клиническая чувствительность и специфичность диагностики скПКР, рассчитанная методом ROC-анализа, составили 90% и 90%, соответственно, AUC - 0,939 (см. Фиг. 1). Но для повышения специфичности, мы задали требование о выявлении метилирования минимум двух генов, тогда специфичность достигла 100%, а чувствительность составляет 79%, при той же величине AUC (см. Фиг. 1, таблица под ROC-кривой). Таким образом, заявляемым способом (по выявлению метилирования 2 из 7 маркеров) можно диагностировать скПКР у пациентов истинно больных данным онкологическим заболеванием с высокой (в 79% случаев) клинической чувствительностью и строго специфично (в 100% случаев) при высокой надёжности (AUC - 0,939, что выше 0,9).An important property of the method for diagnosing scKCR based on 7 microRNA genes (MIR-132, MIR-125b-1, MIR-137, MIR-375, MIR-193a, MIR-1258, MIR-34b / c, panel 1) is a high clinical sensitivity and specificity. The presence of methylation in at least one panel 1 marker was detected in 63 of 70 patients with SCCR and in 2 of 19 donors (who died from non-cancer diseases). In accordance with these data, the clinical sensitivity and specificity of diagnosis of SCCR, calculated by the method of ROC analysis, were 90% and 90%, respectively, AUC - 0.939 (see Fig. 1). But to increase the specificity, we asked for the detection of methylation of at least two genes, then the specificity reached 100%, and the sensitivity is 79%, with the same AUC value (see Fig. 1, the table under the ROC curve). Thus, the claimed method (for the detection of methylation of 2 out of 7 markers) can diagnose SCCR in patients truly ill with this cancer with high (in 79% of cases) clinical sensitivity and strictly specific (in 100% of cases) with high reliability (AUC - 0.939 which is higher than 0.9).
Пример 3. Оценка чувствительности и специфичности заявляемого способа прогнозирования метастазирования скПКР.Example 3. Assessment of the sensitivity and specificity of the proposed method for predicting metastasis of SCCR.
В соответствии с данными по клинико-гистологической характеристике, 70 образцов скПКР разбили на две группы: без метастазирования – 50 образцов и с выявленным метастазированием в региональных лимфатических узлах или отдалённых органах – 20 образцов. В таблице 2 в качестве примеров приведены данные по метилированию для 7 образцов без метастазирования и для 7 образцов с метастазированием. С использованием комбинация 5 генов микроРНК (MIR-125b-1, MIR-375, MIR-107, MIR-1258, MIR-203, панель 2) удается различить уровень метилирования в этих двух группах и прогнозировать метастазирование у пациента с клинической чувствительностью 75% и специфичностью 94%, AUC - 0,945. Надёжность способа определена методом ROC-анализа, согласно которому для предсказания метастазирования необходимо установление метилирования 3 из 5 маркеров панели 2 (Фиг. 2).In accordance with the data on the clinical and histological characteristics, 70 samples of SCCR were divided into two groups: without metastasis - 50 samples and with detected metastasis in regional lymph nodes or distant organs - 20 samples. Table 2 shows, as examples, methylation data for 7 samples without metastasis and for 7 samples with metastasis. Using a combination of 5 microRNA genes (MIR-125b-1, MIR-375, MIR-107, MIR-1258, MIR-203, panel 2) it is possible to distinguish between the methylation level in these two groups and to predict metastasis in a patient with a clinical sensitivity of 75% and a specificity of 94%, AUC - 0.945. The reliability of the method is determined by the method of ROC analysis, according to which, to predict metastasis, it is necessary to establish methylation 3 of 5 markers of panel 2 (Fig. 2).
Заявляемая группа способов диагностики и прогноза метастазирования скПКР характеризуется тем, что:The inventive group of methods for the diagnosis and prognosis of metastasis of SCCR is characterized in that:
- они основаны на анализе метилирования генов микроРНК в образцах ДНК, что более доступно, особенно в условиях лабораторий при клиниках, чем анализ уровня микроРНК в образцах РНК, как в патенте (CN105779640 (A) ― 2016-07-20) и в публикации [6], взятой как ближайший аналог;- they are based on the analysis of methylation of miRNA genes in DNA samples, which is more accessible, especially in clinical laboratories, than the analysis of miRNA levels in RNA samples, as in the patent (CN105779640 (A) - 2016-07-20) and in the publication [ 6], taken as the closest analogue;
- способ диагностики на основе выявления метилирования не менее 2-х генов панели 1 характеризуется клинической чувствительностью 79%, специфичностью 100% и величиной AUC 0,939, что выше, чем по способу ближайшего аналога [6], который характеризуется чувствительностью 80%, специфичностью 71% и величиной AUC 0.807. Видно, что заявляемые способы обладают аналогичной чувствительностью, но значительно превосходит по специфичности и величине AUC. Кроме того, следует указать, что способ ближайшего аналога [6] основан на оценке содержания микроРНК, что относится к дорогостоящим методам в отличие от анализа метилирования генов микроРНК в образцах ДНК;- a diagnostic method based on the detection of methylation of at least 2 genes of panel 1 is characterized by a clinical sensitivity of 79%, a specificity of 100%, and an AUC of 0.939, which is higher than the method of the closest analogue [6], which is characterized by a sensitivity of 80%, specificity of 71% and an AUC value of 0.807. It can be seen that the claimed methods have similar sensitivity, but significantly superior in specificity and AUC. In addition, it should be noted that the closest analogue method [6] is based on the assessment of microRNA content, which is an expensive method in contrast to the analysis of methylation of microRNA genes in DNA samples;
- заявляемый способ с использованием маркеров панели 2 позволяет прогнозировать наличие или развитие метастазов у пациентов скПКР с клинической чувствительностью 75% и специфичностью 94% (AUC - 0,945); в источниках информации не обнаружено аналогичных систем для прогнозирования метастазирования скПКР;- the inventive method using
- заявляемый способ позволяет с применением одинаковых методологий одновременно проводить диагностику скПКР и прогнозирование метастазирования, что важно для коррекции лечения;- the inventive method allows using the same methodologies to simultaneously diagnose SCCR and predict metastasis, which is important for treatment correction;
- кривые ROC – анализа (Receiver Operating Characteristic) позволяют подтвердить высокую информативность заявляемой группы изобретений.- ROC - analysis curves (Receiver Operating Characteristic) allow us to confirm the high information content of the claimed group of inventions.
Таблица 1. Характеристика праймеров, температуры отжига и продуктов МС-ПЦР 9 маркерных генов микроРНК.Table 1. Characterization of primers, annealing temperature, and MS-PCR products of 9 microRNA marker genes.
Цитированные источники научно-технической информации:Cited sources of scientific and technical information:
Bedke J1. , Gauler T, Grünwald V, Hegele A, Herrmann E, Hinz S, Janssen J, Schmitz S, Schostak M, Tesch H, Zastrow S, Miller K. Systemic therapy in metastatic renal cell carcinoma. World J Urol. 2017, 35(2):179-188. doi: 10.1007/s00345-016-1868-5.Bedke J1. , Gauler T, Grünwald V, Hegele A, Herrmann E, Hinz S, Janssen J, Schmitz S, Schostak M, Tesch H, Zastrow S, Miller K. Systemic therapy in metastatic renal cell carcinoma. World J Urol. 2017, 35 (2): 179-188. doi: 10.1007 / s00345-016-1868-5.
2. Vrba L., Muñoz-Rodríguez J.L., Stampfer M.R., Futscher B.W. miRNA gene promoters are frequent targets of aberrant DNA methylation in human breast cancer. PLoS One. 2013, 8(1): e54398.2. Vrba L., Muñoz-Rodríguez J.L., Stampfer M.R., Futscher B.W. miRNA gene promoters are frequent targets of aberrant DNA methylation in human breast cancer. Plos one. 2013, 8 (1): e54398.
3. Береснева Е.В., Рыков С.В., Ходырев Д.С., Пронина И.В., Ермилова В.Д., Казубская Т.П., Брага Э.А., Логинов В.И. Профиль метилирования группы генов микроРНК при светлоклеточном почечноклеточном раке; связь с прогрессией рака. Генетика. 2013; 49(3): 366–375.3. Beresneva EV, Rykov SV, Khodyrev DS, Pronina IV, Ermilova VD, Kazubskaya TP, Braga EA, Loginov VI Methylation profile of a group of microRNA genes in clear cell renal cell carcinoma; association with cancer progression. Genetics. 2013; 49 (3): 366-375.
4. Европейская патентная база: CN105408494 (A) ― 2016-03-16. KANAI YAE; ARAI ERI; TIAN YING. Method for predicting prognosis of renal cell carcinoma.4. European Patent Base: CN105408494 (A) - 2016-03-16. KANAI YAE; ARAI ERI; TIAN YING. Method for predicting prognosis of renal cell carcinoma.
5. Европейская патентная база: CN105779640 (A) ― 2016-07-20. CUI XUEJUN. MiRNA biomarker and detection kit used for renal cancer diagnosis.5. European Patent Base: CN105779640 (A) - 2016-07-20. CUI XUEJUN. MiRNA biomarker and detection kit used for renal cancer diagnosis.
Wang C6. ., Hu J., Lu M., Gu H., Zhou X., Chen X., Zen K., Zhang C.Y., Zhang T., Ge J., Wang J., Zhang C. A panel of five serum miRNAs as a potential diagnostic tool for early-stage renal cell carcinoma. Sci. Rep. 2015; 5:7610. doi: 10.1038/srep07610.Wang C6. ., Hu J., Lu M., Gu H., Zhou X., Chen X., Zen K., Zhang CY, Zhang T., Ge J., Wang J., Zhang C. A panel of five serum miRNAs as a potential diagnostic tool for early-stage renal cell carcinoma. Sci. Rep. 2015; 5: 7610. doi: 10.1038 / srep07610.
Claims (10)
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| RU2017138131A RU2683251C1 (en) | 2017-11-01 | 2017-11-01 | Method of diagnosis of clear cell renal cell carcinoma and method for prediction of metastasis based on mirna genes group |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| RU2017138131A RU2683251C1 (en) | 2017-11-01 | 2017-11-01 | Method of diagnosis of clear cell renal cell carcinoma and method for prediction of metastasis based on mirna genes group |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| RU2683251C1 true RU2683251C1 (en) | 2019-03-27 |
Family
ID=65858750
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| RU2017138131A RU2683251C1 (en) | 2017-11-01 | 2017-11-01 | Method of diagnosis of clear cell renal cell carcinoma and method for prediction of metastasis based on mirna genes group |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| RU (1) | RU2683251C1 (en) |
Cited By (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CN114990220A (en) * | 2022-06-16 | 2022-09-02 | 广西医科大学 | Molecular marker group for early diagnosis of renal clear cell carcinoma |
| RU2805811C1 (en) * | 2022-06-09 | 2023-10-24 | Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Институт теоретической и экспериментальной биофизики Российской академии наук (ИТЭБ РАН) | Method of diagnosing renal cell carcinoma by presence of arrestin and recoverin visual proteins in urine |
Citations (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2545998C2 (en) * | 2012-09-27 | 2015-04-10 | Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Институт молекулярной биологи им. В.А. Энгельгардта Российской академии наук (ИМБ РАН) | Method of diagnosing clear cell renal cell carcinoma and set for its realisation |
| CN105779640A (en) * | 2016-05-21 | 2016-07-20 | 崔学俊 | miRNA biomarker and detection kit used for renal cancer diagnosis |
-
2017
- 2017-11-01 RU RU2017138131A patent/RU2683251C1/en active
Patent Citations (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2545998C2 (en) * | 2012-09-27 | 2015-04-10 | Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Институт молекулярной биологи им. В.А. Энгельгардта Российской академии наук (ИМБ РАН) | Method of diagnosing clear cell renal cell carcinoma and set for its realisation |
| CN105779640A (en) * | 2016-05-21 | 2016-07-20 | 崔学俊 | miRNA biomarker and detection kit used for renal cancer diagnosis |
Non-Patent Citations (3)
| Title |
|---|
| BERESNEVA E.V. et al. Methylation Profile of Group of miRNA Genes in Clear Cell Renal Cell Carcinoma and Their Involvement in Cancer Progression. Russian Journal of Genetics, 2013; 49(3): 320-328. * |
| BERESNEVA E.V. et al. Methylation Profile of Group of miRNA Genes in Clear Cell Renal Cell Carcinoma and Their Involvement in Cancer Progression. Russian Journal of Genetics, 2013; 49(3): 320-328. WANG C. et al. A panel of five serum miRNAs as a potential diagnostic tool for early-stage renal cell carcinoma. Sci Rep. 2015 Jan 5; 5: 7610. * |
| WANG C. et al. A panel of five serum miRNAs as a potential diagnostic tool for early-stage renal cell carcinoma. Sci Rep. 2015 Jan 5; 5: 7610. * |
Cited By (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2806432C2 (en) * | 2021-10-20 | 2023-10-31 | Федеральное государственное бюджетное научное учреждение «Медико-генетический научный центр имени академика Н.П. Бочкова» | Method of predicting metastasis of stomach cancer tumors |
| RU2805811C1 (en) * | 2022-06-09 | 2023-10-24 | Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Институт теоретической и экспериментальной биофизики Российской академии наук (ИТЭБ РАН) | Method of diagnosing renal cell carcinoma by presence of arrestin and recoverin visual proteins in urine |
| CN114990220A (en) * | 2022-06-16 | 2022-09-02 | 广西医科大学 | Molecular marker group for early diagnosis of renal clear cell carcinoma |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| US11851711B2 (en) | DNA methylation biomarkers for cancer diagnosing | |
| Hrašovec et al. | TMEM25 is a candidate biomarker methylated and down‐regulated in colorectal cancer | |
| WO2018087129A1 (en) | Colorectal cancer methylation markers | |
| WO2020020071A1 (en) | Methylation modification-based tumor marker stamp-ep1 | |
| JP2014519319A5 (en) | ||
| JP7665659B2 (en) | Multimodal analysis of circulating tumor nucleic acid molecules | |
| ES2927505T3 (en) | Methylation markers for pancreatic cancer | |
| JP2024020392A (en) | Composition for diagnosing liver cancer using CPG methylation changes in specific genes and its use | |
| Zheng et al. | Clinical applications of liquid biopsies for early lung cancer detection | |
| WO2016168174A1 (en) | Predicting the occurrence of metastatic cancer using epigenomic biomarkers and non-invasive methodologies | |
| JP6395131B2 (en) | Method for acquiring information on lung cancer, and marker and kit for acquiring information on lung cancer | |
| CA3182993A1 (en) | Detection and classification of human papillomavirus associated cancers | |
| Vad-Nielsen et al. | Cell-free Chromatin Immunoprecipitation (cfChIP) from blood plasma can determine gene-expression in tumors from non-small-cell lung cancer patients | |
| CN106676191B (en) | A molecular marker for colon adenocarcinoma | |
| US20190203298A1 (en) | Method and kit for the diagnosis of lung cancer | |
| RU2683251C1 (en) | Method of diagnosis of clear cell renal cell carcinoma and method for prediction of metastasis based on mirna genes group | |
| JP2023515482A (en) | Marker selection method using difference in nucleic acid methylation, methyl or demethylation marker, and diagnostic method using the marker | |
| Oliveira et al. | Circulating cell-free DNA as a biomarker in the diagnosis and prognosis of colorectal cancer | |
| US20130288918A1 (en) | Colorectal Cancer Screening Method | |
| TWI500770B (en) | Use of hoxa9 gene as a biomarker for detection of hepatocellular carcinoma | |
| JP2024519082A (en) | DNA methylation biomarkers for hepatocellular carcinoma | |
| JP5586164B2 (en) | How to determine cancer risk in patients with ulcerative colitis | |
| RU2703399C1 (en) | METHOD FOR DIAGNOSING OVARIAN CANCER BASED ON A GROUP OF microRNA GENES | |
| JP2015177745A (en) | Method of examining lung cancer | |
| RU2825782C1 (en) | Method for prediction of ovarian cancer metastasis based on set of genes of long non-coding rna |