RU2535411C2 - Method of modelling enteroenteroanastomosis in small laboratory animals - Google Patents
Method of modelling enteroenteroanastomosis in small laboratory animals Download PDFInfo
- Publication number
- RU2535411C2 RU2535411C2 RU2012153031/14A RU2012153031A RU2535411C2 RU 2535411 C2 RU2535411 C2 RU 2535411C2 RU 2012153031/14 A RU2012153031/14 A RU 2012153031/14A RU 2012153031 A RU2012153031 A RU 2012153031A RU 2535411 C2 RU2535411 C2 RU 2535411C2
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- small intestine
- stomach
- enteroenteroanastomosis
- ball
- tube
- Prior art date
Links
Images
Landscapes
- Surgical Instruments (AREA)
- Materials For Medical Uses (AREA)
Abstract
Description
Изобретение относится к области медицины, биологии, а именно к экспериментальной хирургии желудочно-кишечного тракта на мелких лабораторных животных, и может быть использовано для изучения процессов всасывания и моторной функции желудочно-кишечного тракта (ЖКТ).The invention relates to the field of medicine, biology, namely to experimental surgery of the gastrointestinal tract in small laboratory animals, and can be used to study the processes of absorption and motor function of the gastrointestinal tract (GIT).
Исследование процесса всасывания различных веществ является одной из актуальных проблем физиологии и медицины. Это связано как с теоретическими аспектами, так и с практическими запросами медицины, например оптимизацией нутритивной поддержки больных с различной патологией, изучения всасывания различных фармакологических препаратов.The study of the absorption of various substances is one of the urgent problems of physiology and medicine. This is due both to theoretical aspects and to the practical demands of medicine, for example, optimization of nutritional support for patients with various pathologies, study of the absorption of various pharmacological preparations.
Известен способ формирования энтероэнтероанастомоза в эксперименте на животных, включающий формирование анастомоза путем сшивания участков тонкого кишечника «конец в конец» или «конец в бок» (1). Недостатком этого способа является то, что он применим для крупных животных с развитой и толстой стенкой тонкого кишечника. Однако, очень часто в экспериментальных исследованиях необходимо формирование энтероэнтероанастомоза и изолированного участка кишки у мелких лабораторных животных. Это связано с экономической целесообразностью (меньшая стоимость животных и их содержания, меньший расход субстрата для изучения функций кишечника).A known method of forming enteroenteroanastomosis in an animal experiment, including the formation of an anastomosis by suturing sections of the small intestine "end to end" or "end to side" (1). The disadvantage of this method is that it is applicable to large animals with developed and thick walls of the small intestine. However, very often in experimental studies, the formation of enteroenteroanastomosis and an isolated section of the intestine in small laboratory animals is necessary. This is due to economic feasibility (lower cost of animals and their maintenance, lower consumption of substrate for studying intestinal functions).
При формировании энтероэнтероанастомоза способом «конец в конец» у мелких лабораторных животных с использованием известных технологий существуют трудности во время выполнения операции наложения кишечных швов, что в последующем приводит к формированию стеноза кишечника и гибели животного.When forming endoenteroanastomosis by the end-to-end method in small laboratory animals using known technologies, there are difficulties during the operation of intestinal suture, which subsequently leads to the formation of intestinal stenosis and death of the animal.
Наиболее близким к предлагаемому является способ моделирования энтероанастомоза у мелких лабораторных животных (2), включающий формирование анастомоза тонкого кишечника методом «конец в конец» с использованием крахмального стержня, введенного в просвет тонкого кишечника. Оперативное вмешательство проводят на фоне нембуталового наркоза (3,5 мг на 100 г массы тела животного). Соблюдая правила асептики, вскрывают брюшную полость по средней линии живота и изолируют отрезок тонкой кишки длиной 10-30 см. Перед рассечением кишки перевязывают сосуды, питающие соответствующие участки кишки. В оба конца изолированного отрезка тонкой кишки вставляют фистулы. Для предупреждения выпадения фистул и развития околосвищевых ходов дополнительно используют нейлоновые или капроновые сетки для внешнего крепления фистульных трубок. Эти сетки не препятствовали прорастанию тканей. Фистульные трубки выводят сбоку через узкие отверстия в мышцах и коже на 2-3 см латеральное средней линии живота. На концы фистульных трубок с наружной стороны накладывают фиксирующие повязки из бинта, которые через 3-4 дня снимают. Непрерывность пищеварительной трубки восстанавливают с помощью энтероанастомоза по типу «конец в конец». При наложении швов в концы сшиваемых отделов тонкой кишки вводят специальную рассасывающуюся крахмальную пробку для уменьшения трудоемкости наложения швов на кишку мелких лабораторных животных.Closest to the proposed one is a method for modeling enteroanastomosis in small laboratory animals (2), including the formation of an anastomosis of the small intestine using the end-to-end method using a starch rod introduced into the lumen of the small intestine. Surgery is performed against a background of nembutal anesthesia (3.5 mg per 100 g of animal body weight). Observing the rules of asepsis, open the abdominal cavity along the midline of the abdomen and isolate a segment of the small intestine 10-30 cm long. Before dissection of the intestine, the vessels feeding the corresponding sections of the intestine are ligated. Fistulas are inserted at both ends of an isolated section of the small intestine. To prevent fistula prolapse and the development of near-fistulous passages, nylon or kapron nets are additionally used for external attachment of fistula tubes. These nets did not interfere with tissue germination. Fistula tubes are removed laterally through narrow openings in the muscles and skin, 2-3 cm lateral of the midline of the abdomen. Fixing bandages from a bandage are applied to the ends of fistula tubes from the outside, which are removed after 3-4 days. The continuity of the digestive tube is restored using enteroanastomosis type "end to end". When suturing, the ends of stitched sections of the small intestine are injected with a special absorbable starch plug to reduce the laboriousness of suturing the intestines of small laboratory animals.
Недостатком известного способа является использование крахмала, материала мягкого по плотности, и поэтому не гарантирующего сохранение просвета тонкого кишечника при наложении и завязывании кишечных швов, который у мелких лабораторных животных очень мал, что может привести к развитию кишечной непроходимости, а также невозможность интраоперационно проверить герметичность сфомированного кишечного анастомоза, что приводит к гибели животного.The disadvantage of this method is the use of starch, a material of soft density, and therefore does not guarantee the preservation of the lumen of the small intestine during the application and tying of intestinal sutures, which is very small in small laboratory animals, which can lead to the development of intestinal obstruction, as well as the inability to intraoperatively check the tightness of the somage intestinal anastomosis, which leads to the death of the animal.
Исходя из того, что существующие способы формирования энтероэнтероанастамоза имеют указанные недостатки, была поставлена задача: обеспечить более простое и качественное получение модели энтероэнтероанастомоза, сохраняющей нормальный просвет тонкой кишки у мелких лабораторных животных, возможность проверки герметичности сформированного энтероэнтероанастомоза интраоперационно, что позволяет более длительно сохранить созданную модель для изучения функций тонкого кишечника.Based on the fact that the existing methods for the formation of enteroenteroanastamosis have the indicated drawbacks, the task was set: to provide a simpler and better quality model of enteroenteroanastomosis that maintains the normal lumen of the small intestine in small laboratory animals, the ability to check the tightness of the formed enteroenteroanastomosis intraoperatively, which allows for a longer preservation of the created model to study the functions of the small intestine.
Поставленную задачу решают следующим образом.The problem is solved as follows.
Моделирование энтероэнтероанастомоза у мелких лабораторных животных включает следующие манипуляции: вскрытие брюшной полости, изоляцию отрезка тонкой кишки, формирование фистул на концах изолированного отрезка тонкой кишки и восстановление непрерывности пищеварительной трубки по типу «конец в конец» с использованием наполнителя просвета тонкой кишки. Новым в решении поставленной задачи является то, что при вскрытии брюшной полости выполняют на передней поверхности желудка кисетный шов в виде круга, в центре которого рассекают стенку желудка, через полость желудка в просвет тонкого кишечника вводят катетер-проводник с шариком на конце до места формирования энтероэнтероанастомоза. Затем пересекают тонкую кишку с брыжейкой, выделяют изолированный участок тонкой кишки, закрепляют на катетере-проводнике с шариком на конце болюс-трубку и формируют энтероэнтероанастомоз между проксимальным и дистальным концами тонкой кишки на болюсе-трубке. Восстанавливают целостность кишечника и его герметичность накладыванием однорядных узловых серозно-мышечно-подслизистых швов. Катетер-проводник с шариком на конце и болюс-трубку удаляют через отверстие в желудке, ограниченное кисетным швом, проверяют герметичность и состоятельность энтероэнтероанастомоза, на проксимальном и дистальном концах изолированного участка тонкой кишки закрепляют фистульные трубки.Modeling of enteroenteroanastomosis in small laboratory animals involves the following manipulations: opening the abdominal cavity, isolating a segment of the small intestine, forming fistulas at the ends of an isolated segment of the small intestine and restoring the continuity of the digestive tube of the end-to-end type using a small intestine lumen filler. New in solving this problem is that when opening the abdominal cavity, a purse string suture is made on the front surface of the stomach in the form of a circle in the center of which the stomach wall is cut, a catheter guide with a ball at the end to the site of the formation of enteroenteroanastomosis is inserted into the lumen of the small intestine. . Then the small intestine with the mesentery is crossed, an isolated portion of the small intestine is isolated, a bolus tube is fixed on a catheter guide with a ball at the end, and enteroenteroanastomosis is formed between the proximal and distal ends of the small intestine on the bolus tube. Restore the integrity of the intestine and its tightness by applying single-row nodular serous-muscular-submucosal sutures. A catheter guide with a ball at the end and a bolus tube are removed through an opening in the stomach limited by a purse string suture, the tightness and consistency of enteroenteroanastomosis are checked, and fistula tubes are fixed at the proximal and distal ends of the isolated section of the small intestine.
Поясняем существенные отличительные признаки предлагаемого «Способа моделирования энтероэнтероанастомоза у мелких лабораторных животных».We explain the significant distinguishing features of the proposed "Method for modeling enteroenteroanastomosis in small laboratory animals."
При вскрытии брюшной полости на передней поверхности желудка накладывают кисетный шов в виде круга, в ицентре которого рассекают стенку желудка, что позволяет в дальнейшем провести катетер-проводник с шариком на конце в выбранный участок тонкого кишечника и после формирования энтероэнтероанастомоза атравматично удалить его вместе с болюсом-трубкой. До введения катетера-проводника с шариком на конце через полость желудка в просвет тонкого кишечника вводят полиэтиленовый катетер, соединенный со шприцем, наполненным изотоническим раствором хлорида натрия, продвигают катетер в начальную часть 12-перстной кишки и вводят 1,0 мл раствора. Это позволяет в дальнейшем атравматично провести катетер-проводник с шариком на конце по кишке и извлечь болюс-трубку на более позднем этапе операции.When opening the abdominal cavity on the anterior surface of the stomach, a purse string suture is made in the form of a circle in the center of which the stomach wall is cut, which allows you to further conduct a catheter guide with a ball at the end into a selected area of the small intestine and after the formation of enteroenteroanastomosis, it is non-invasively removing it together with a bolus- the tube. Before the introduction of a catheter guidewire with a ball at the end, a polyethylene catheter connected to a syringe filled with an isotonic sodium chloride solution is inserted into the lumen of the small intestine through the stomach cavity, the catheter is advanced into the initial part of the duodenum and 1.0 ml of solution is introduced. This allows you to further conduct atraumatic catheter guide with a ball at the end of the intestine and remove the bolus tube at a later stage of the operation.
После проведения катетера-проводника с шариком на конце до места формирования энтероэнтероанастомоза и выделения изолированного участка кишки, на катетере закрепляют плотную полиэтиленовую болюс-трубку длиной 10 мм и диаметром 4 мм. На болюс-трубке формируют энтероэнтероанастомоз между проксимальным и дистальным участками тонкой кишки, затем накладывают однорядные узловые серозно-мышечно-подслизистые швы с шагом 1,5 мм. Использование достаточно плотной болюс-трубки, позволяет избежать стенозирования просвета тонкой кишки при формировании энтероэнтероанастомоза, а значит и последующего развития кишечной непроходимости и гибели животного. Наличие шарика на конце катетера-проводника позволяет уменьшить повреждение слизистой желудка и кишечника при продвижении катетера-проводника до места формирования энтероэнтероанастомоза.After conducting a catheter guide with a ball at the end to the place of formation of enteroenteroanastomosis and isolation of an isolated area of the intestine, a dense polyethylene bolus tube 10 mm long and 4 mm in diameter is fixed on the catheter. Enteroenteroanastomosis is formed on the bolus tube between the proximal and distal sections of the small intestine, then single-row nodular serous-muscular-submucosal sutures with a step of 1.5 mm are applied. The use of a sufficiently dense bolus tube allows avoiding stenosis of the lumen of the small intestine during the formation of enteroenteroanastomosis, and hence the subsequent development of intestinal obstruction and death of the animal. The presence of a ball at the end of the catheter guide allows you to reduce damage to the mucous membrane of the stomach and intestines while moving the catheter guide to the place of formation of enteroenteroanastomosis.
Последующее введение через отверстие, сформированное на передней поверхности желудка, полиэтиленового катетера, надетого на шприц, продвижение катетера в 12-перстную кишку и введение 1 мл изотонического раствора хлорида натрия позволяет проверить герметичность и состоятельность кишечного энтероэнтероанастомоза. Возможность проверки герметичности анастомоза является важным преимуществом предлагаемого способа, так как позволяет избежать еще одного грозного осложнения - несостоятельности энтероэнтероанастомоза с последующим развитием перитонита, что также приводит к гибели животного.Subsequent introduction through the hole formed on the front surface of the stomach, a polyethylene catheter, put on a syringe, the advancement of the catheter into the duodenum and the introduction of 1 ml of isotonic sodium chloride solution allows you to check the tightness and viability of intestinal enteroenteroanastomosis. The ability to check the tightness of the anastomosis is an important advantage of the proposed method, as it allows to avoid another formidable complication - the failure of enteroenteroanastomosis with the subsequent development of peritonitis, which also leads to the death of the animal.
На заключительном этапе операции на проксимальном и дистальном концах изолированной петли тонкого кишечника закрепляют фистульные трубки, дистальные концы которых выводят наружу на 4 мм выше поверхности кожи, что позволяет в дальнейшем проводить исследования различных функций тонкого кишечника.At the final stage of the operation, fistula tubes are fixed at the proximal and distal ends of the isolated loop of the small intestine, the distal ends of which are brought out 4 mm above the surface of the skin, which allows further studies of various functions of the small intestine.
Проведенные патентные исследования по классу G09B 23/28 и анализ научно-медицинской информации, отражающие существующие способы формирования энтероэнтероанастомоза у мелких лабораторных животных, не выявили идентичных технологий. Таким образом, предлагаемый способ моделирования энтероэнтероанастомоза является новым.Conducted patent studies in class G09B 23/28 and analysis of scientific and medical information, reflecting the existing methods for the formation of enteroenteroanastomosis in small laboratory animals, did not reveal identical technologies. Thus, the proposed method for modeling enteroenteroanastomosis is new.
Взаимодействие и взаимосвязь отличительных приемов в осуществлении предлагаемого способа формирования энтероэнтероанастомоза позволяют достичь решения поставленной задачи, а именно: разработать более простой и эффективный способ, который позволяет сохранить нормальный просвет тонкой кишки при формировании энтероэнтероанастомоза «конец в конец» у мелких лабораторных животных. Модель энтероэнтероанастомоза сохраняет свои свойства длительный срок и тем самым возможность исследования различных функций тонкого кишечника в эксперименте. Таким образом, предлагаемый способ имеет изобретательский уровень.The interaction and interconnection of the distinctive techniques in the implementation of the proposed method for the formation of enteroenteroanastomosis allow to achieve the solution of the problem, namely: to develop a simpler and more effective method that allows you to maintain a normal lumen of the small intestine during the formation of endoenteroanastomosis in small laboratory animals. The model of enteroenteroanastomosis retains its properties for a long time and thereby the possibility of studying various functions of the small intestine in an experiment. Thus, the proposed method has an inventive step.
Предлагаемый способ моделирования энтнроэнтероанастомоза прост в исполнении и может широко, многократно применяться в экспериментальной практике, дает возможность уменьшить количество использованных животных в эксперименте, так как имеет почти 100% получение положительного результата. А также проводить длительный хронический эксперимент на мелких лабораторных животных (1 месяц) и, тем самым, получать более значимые сведения о физиологии и патологии процессов всасывания и моторики тонкого кишечника.The proposed method for modeling entroenteroanastomosis is simple to implement and can be widely, repeatedly used in experimental practice, makes it possible to reduce the number of animals used in the experiment, since it has almost 100% positive result. And also to conduct a long chronic experiment on small laboratory animals (1 month) and, thereby, receive more significant information about the physiology and pathology of the processes of absorption and motility of the small intestine.
Сущность предлагаемого способа поясняется следующими иллюстрациями:The essence of the proposed method is illustrated by the following illustrations:
Фиг.1 - схематичное изображение начальных этапов операции: а) формирование гастростомы, б) введение жировой эмульсии на изотоническом растворе хлорида натрия через гастростому, в) проведение катетера-проводника с шариком на конце в просвете тонкого кишечника;Figure 1 - a schematic representation of the initial stages of the operation: a) the formation of a gastrostomy, b) the introduction of a fat emulsion on an isotonic sodium chloride solution through the gastrostomy, c) the conduct of a catheter guide with a ball at the end in the lumen of the small intestine;
Фиг.2 - схематичное изображение последующих этапов операции: а) выделение изолированного участка тонкой кишки, б) введение болюса-трубки в дистальный участок тонкой кишки, в) сформированный энтероэнтероанастомоз на болюс-трубке;Figure 2 - a schematic representation of the subsequent stages of the operation: a) the allocation of an isolated portion of the small intestine, b) the introduction of a bolus tube into the distal portion of the small intestine, c) the formed enteroenteroanastomosis on the bolus tube;
Фиг.3 - сформированный энтероэнтероанастомоз тонкой кишки на болюс-трубке;Figure 3 - formed enteroenteroanastomosis of the small intestine on a bolus tube;
Фиг.4 - таблица 1 - результат изучения функции всасывания тонкого кишечника, пример №1;Figure 4 - table 1 is the result of studying the function of absorption of the small intestine, example No. 1;
Фиг.5 - таблица 2 - результаты использования модели энтероэнтероанастомоза при изучении функции всасывания в тонком кишечнике группы экспериментальных животных.Figure 5 - table 2 - the results of using the model of enteroenteroanastomosis when studying the function of absorption in the small intestine of a group of experimental animals.
Сущность предлагаемого «Способа моделирования энтероэнтероанастомоза у мелких лабораторных животных» заключается в следующем.The essence of the proposed "Method for modeling enteroenteroanastomosis in small laboratory animals" is as follows.
Операцию по формированию модели энтероэнтероанастомоза на изолированном участке тонкой кишки проводят в стерильных условиях. В качестве экспериментальных животных использованы крысы. Эксперимент проведен в соответствии с правилами, принятыми Европейской конвенцией по защите позвоночных животных, используемых для экспериментальных и иных целей (Страсбург, 1986).The operation to form a model of enteroenteroanastomosis in an isolated area of the small intestine is performed under sterile conditions. Rats were used as experimental animals. The experiment was carried out in accordance with the rules adopted by the European Convention for the Protection of Vertebrate Animals used for experimental and other purposes (Strasbourg, 1986).
Экспериментальное исследование выполнено в лаборатории кафедры нормальной физиологии ГБОУ ВПО «Иркутский государственный медицинский университет» МЗ РФ при свободном доступе к пище и воде на рационе питания, соответствующем нормативам ГОСТа. При выполнении исследования выполнялись все биоэтические нормы работы с экспериментальными животными согласно приказа Министерства здравоохранения СССР от 12.08.1977 г. N755.An experimental study was performed in the laboratory of the Department of Normal Physiology, SBEI HPE “Irkutsk State Medical University” of the Ministry of Health of the Russian Federation with free access to food and water on a diet that complies with GOST standards. When performing the study, all bioethical norms of working with experimental animals were carried out according to the order of the Ministry of Health of the USSR dated 08/12/1977 N755.
Масса подопытных крыс составила 220-250 г. Под общей анастезией (тиопентал натрия из расчета 20 мг/кг внутрибрюшинно) вскрывают брюшную полость разрезом 4 см по белой линии от мечевидного отростка. Отступив на 1 см проксимальнее от луковицы 12-перстной кишки, на передней поверхности дна желудка ближе к большой кривизне на участке, свободном от кровеносных сосудов, накладывают кисетный шов в виде круга диаметром 5 мм, захватывая только серозно-мышечную оболочку желудка. Рассекают стенку желудка в центре круга (см. приложение к описанию, фиг.1а).The weight of the experimental rats was 220-250 g. Under general anesthesia (sodium thiopental at a rate of 20 mg / kg intraperitoneally), the abdominal cavity was opened with a section of 4 cm along the white line from the xiphoid process. Retreating 1 cm proximal to the duodenal bulb, on the anterior surface of the fundus of the stomach closer to the greater curvature in the area free of blood vessels, apply a purse string suture in the form of a circle with a diameter of 5 mm, capturing only the serous-muscular membrane of the stomach. Dissect the wall of the stomach in the center of the circle (see the appendix to the description, figa).
В случае наличия содержимого в желудке отсасывают его шприцем. В сформированное отверстие желудка вводят полиэтиленовый катетер, соединенный со шприцем, наполненным изотоническим раствором хлорида натрия, продвигают катетер в начальную часть 12-перстной кишки и вводят 1,0 мл указанного раствора (см. приложение к описанию, фиг.1б). Извлекают катетер, при этом строго следят, чтобы раствор не поступал ретроградно в полость желудка. Катетер извлекают и в отверстие желудка вводят катетер-проводник длиной 20 см и диаметром 0,7 мм из полумягкого тефлона с шариком на конце (диаметр шарика 2 мм), слабо затягивают кисетный шов, осторожно продвигают катетер-проводник с шариком на конце по кишечнику ввинчивающими движениями (см. приложение к описанию, фиг.1в). Особо осторожно проводят катетер-проводник с шариком на конце через двенадцатиперстно-тощий изгиб. После прохождения указанного ранее изгиба продвигают катетер-проводник с шариком на конце на 5-7 см по тонкой кишке. Выбирают участок брыжейки тонкой кишки, свободный от кровеносных сосудов, поперечно пересекают тонкую кишку, обрабатывают асептическим раствором слизистую тонкой кишки в месте разреза. Дистальный конец тонкой кишки временно перевязывают лигатурой, из проксимального просвета тонкой кишки выводят катетер-проводник с шариком на конце и фиксируют на нем болюс-трубку длиной 10 мм и диаметром 4 мм, изготовленную, например, из плотного полиэтилена и вводят болюс-трубку в проксимальный просвет тонкой кишки. Затягивают кисетный шов на желудке. Выделяют участок тонкой кишки, равный примерно 20 см от дистально перевязанного просвета кишки, находят участок брыжейки тонкой кишки, свободный от кровеносных сосудов, и повторно поперечно пересекают тонкую кишку, выделяя изолированный участок тонкой кишки, у которого сохранен сосудисто-нервный пучок брыжейки, обрабатывают асептическим раствором слизистую кишечника в месте разреза. Другой конец болюс-трубки вводят в просвет дистального участка тонкой кишки (см. приложение к описанию, фиг.2а), и накладывают однорядные узловые серозно-мышечно-подслизистые швы с шагом 1,5 мм, которые восстанавливают целостность кишечника и герметизируют его полость (см. приложение к описанию, фиг.2б, фиг.3). Развязывают и ослабляют кисетный шов на желудке, вытягивают катетер-проводник с шариком на конце и болюсом-трубкой из просвета тонкой кишки через отверстие в желудке. Вводят в отверстие желудка полиэтиленовый катетер, надетый на шприц, продвигают в 12-перстную кишку, вводят 1 мл изотонического раствора хлорида натрия для проверки герметичности и состоятельности кишечного энтероэнтероанастомоза. Выводят катетер, обрабатывают слизистую желудка в области сформированного отверстия асептическим раствором и плотно завязывают кисетный шов на желудке. В просветы дистального и проксимального концов изолированного участка тонкой кишки вводят фистулы из фторопласта, на кишку накладывают кисетные швы и стягивают их вокруг фистулы. Дистальные концы фистул выводят наружу на 4 мм над поверхностью кожи, в которой предварительно делают отверстия, отступив по 1 см в стороны от белой линии живота.If there is contents in the stomach, it is sucked off with a syringe. A polyethylene catheter connected to a syringe filled with an isotonic sodium chloride solution is inserted into the formed opening of the stomach, the catheter is advanced into the initial part of the duodenum and 1.0 ml of this solution is introduced (see the appendix to the description, fig. 1b). A catheter is removed, while strictly monitoring that the solution does not enter retrograde into the cavity of the stomach. The catheter is removed and a catheter guide with a length of 20 cm and a diameter of 0.7 mm is inserted from the semi-soft Teflon with a ball at the end (ball diameter 2 mm), the purse string suture is loosely tightened, the catheter guide with a ball at the end is carefully screwed into the intestines with a screw movements (see the appendix to the description, figv). Especially carefully conduct a catheter guidewire with a ball at the end through a twelve-skinny bend. After passing the previously specified bend, a catheter guidewire with a ball at the end 5-7 cm in the small intestine is advanced. A portion of the mesentery of the small intestine that is free of blood vessels is selected, the small intestine is transversely crossed, the mucous membrane of the small intestine is treated with an aseptic solution at the incision site. The distal end of the small intestine is temporarily ligated, a catheter guide with a ball at the end is removed from the proximal lumen of the small intestine and a bolus tube 10 mm long and 4 mm in diameter is fixed on it, made of, for example, dense polyethylene and a bolus tube is inserted into the proximal lumen of the small intestine. Tighten the purse string suture on the stomach. A small intestine section of approximately 20 cm from the distally ligated intestinal lumen is isolated, a small intestine mesentery section is found that is free of blood vessels, and the small intestine is re-transversely transected to isolate an isolated small intestine section in which the neurovascular bundle of the mesentery is preserved and treated with aseptic a solution of the intestinal mucosa at the incision site. The other end of the bolus tube is inserted into the lumen of the distal part of the small intestine (see the appendix to the description, figa), and single-row nodular serous-muscular-submucosal sutures with a step of 1.5 mm are applied, which restore the integrity of the intestine and seal its cavity ( see the appendix to the description, figb, fig.3). The purse string suture on the stomach is untied and weakened, a catheter guide with a ball at the end and a bolus tube is pulled out of the lumen of the small intestine through an opening in the stomach. A polyethylene catheter mounted on a syringe is inserted into the opening of the stomach, promoted into the duodenum, 1 ml of isotonic sodium chloride solution is injected to check the tightness and viability of the intestinal enteroanastomastosis. A catheter is removed, the gastric mucosa is treated in the area of the formed hole with an aseptic solution, and the purse string suture on the stomach is tightly tied. Fistulas from ftoroplast are introduced into the gaps of the distal and proximal ends of an isolated section of the small intestine, purse string sutures are placed on the intestine and tighten them around the fistula. The distal ends of the fistulas are brought out 4 mm above the surface of the skin, in which holes are preliminarily made, departing 1 cm to the sides of the white line of the abdomen.
Рану брюшной полости зашивают послойно. Послеоперационное ведение животного - обычное. Животное начинают поить через 1 сутки после операции, на 2 сутки осторожно промывают изолированный участок кишки изотоническим раствором хлорида натрия. С 3 дня начинают предварительную перфузию изолированного участка тонкой кишки. Для перфузии используют, например, раствор глюкозы или глутаминовой кислоты. Регулярная нагрузка изолированного участка кишки позволяет избежать атрофии этого участка тонкой кишки (3). В течение экстеримента (не менее 30 дней). Животное используют в опыте на 7-8 день после операции, то есть модель энтероэнтероанастомоза создана и возможно исследование различных функций тонкого кишечника (см. приложение к описанию, фиг.3).The abdominal wound is sutured in layers. Postoperative management of the animal is common. The animal begins to drink 1 day after the operation; on day 2, the isolated section of the intestine is carefully washed with an isotonic solution of sodium chloride. From 3 days begin preliminary perfusion of an isolated area of the small intestine. For perfusion, for example, a solution of glucose or glutamic acid is used. Regular loading of an isolated section of the intestine avoids atrophy of this section of the small intestine (3). During the extirment (at least 30 days). The animal is used in the experiment 7-8 days after the operation, that is, a model of enteroenteroanastomosis has been created and it is possible to study various functions of the small intestine (see the appendix to the description, Fig. 3).
Сущность предлагаемого «Способа моделирования энтероэнтероанастомоза у мелких лабораторных животных» поясняется примером моделирования энтнроэнтероанастомоза и использования модели для исследования функции всасывания кишечника.The essence of the proposed "Method for modeling enteroenteroanastomosis in small laboratory animals" is illustrated by an example of modeling of enteroenteroanastomosis and the use of a model to study intestinal absorption function.
ПримерExample
Подопытная крыса, возраст 5 месяцев, вес 250 г. За сутки до операции животное было отсажено в отдельную клетку, в течение этих суток крыса была лишена пищи, за 12 часов до операции исключено потребление жидкости. Крыса была зафиксирована, внутрибрюшинно введен тиопентал натрия из расчета 20 мг/кг. Через 7 минут крыса была фиксирована на операционном столе. На передней поверхности живота выстрижена шерсть, операционное поле дважды обработано 5% спиртовым раствором йода. Сделан кожный разрез длиной 5 см вертикально от мечевидного отростка. Брюшная полость вскрыта разрезом длиной 4 см по белой линии живота вниз от мечевидного отростка. В рану извлечен дистальный отдел желудка с начальным отделом 12-перстной кишки. На 1 см проксимальнее от луковицы 12-перстной кишки, на передней поверхности желудка ближе к большой кривизне на участке, свободном от кровеносных сосудов, наложен кисетный шов в виде круга диаметром 5 мм, захватывая только серозно-мышечную оболочку желудка. Рассекли стенку желудка в центре круга, ограниченного кисетным швом. Содержимое желудка удалено шприцем, соединенным с полиэтиленовым катетером. В сформированное отверстие желудка введен полиэтиленовый катетер диаметром 2 мм, длиной 7 см, соединенный со шприцем, наполненным изотоническим раствором хлорида натрия. Катетер проведен в начальную часть 12-перстной кишки и через катетер введено 1,0 мл указанного раствора. Катетер извлечен и в отверстие желудка введен проводник-катетер длиной 20 см и диаметром 0,7 мм из тефлона с шариком на конце (диаметр шарика 2 мм). Слабо затянули кисетный шов, чтобы содержимое желудка не попало в брюшную полость. Катетер-проводник с шариком на конце продвинут по кишечнику ввинчивающими движениями в тонкую кишку. Выбран участок брыжейки тонкой кишки, свободный от кровеносных сосудов, и поперечно пересечена тонкая кишка. Слизистая тонкой кишки обработана в месте разреза антисептическим раствором. Дистальный конец тонкой кишки временно перевязан лигатурой. Из проксимального просвета тонкой кишки выведен катетер-проводник с шариком на конце и на нем зафиксирована болюс-трубка длиной 10 мм и диаметром 4 мм, изготовленная из плотного полиэтилена. Болюс-трубку ввели в проксимальный просвет тонкой кишки, плотно затянули кисетный шов на желудке. Был выделен участок тонкой кишки длиной около 20 см от дистально перевязанного просвета кишки, найден участок брыжейки кишки, свободный от кровеносных сосудов, и повторно поперечно пересечена тонкая кишка. Выделен изолированный участок тонкой кишки, у которого сохранен сосудисто-нервный пучок брыжейки, обработана слизистая кишечника в месте разреза асептическим раствором. Другой конец болюс-трубки введен в просвет дистального участка тонкой кишки и наложены однорядные узловые серозно-мышечно-подслизистые швы с шагом 1,5 мм на тонкую кишку, которые восстановили целостность кишечника и герметизировали его полость.The experimental rat, age 5 months, weight 250 g. The animal was placed in a separate cage the day before the operation, during this day the rat was deprived of food, and 12 hours before the operation, liquid intake was excluded. The rat was fixed, sodium thiopental was administered intraperitoneally at the rate of 20 mg / kg. After 7 minutes, the rat was fixed on the operating table. The hair is trimmed on the front surface of the abdomen, the surgical field is twice treated with 5% alcohol solution of iodine. A skin incision 5 cm long was made vertically from the xiphoid process. The abdominal cavity was opened with a 4 cm section along the white line of the abdomen down from the xiphoid process. The distal stomach with the initial part of the duodenum was extracted into the wound. 1 cm proximal from the bulb of the duodenum, on the front surface of the stomach closer to the greater curvature in the area free of blood vessels, a purse string suture in the form of a circle with a diameter of 5 mm was applied, capturing only the serous-muscular membrane of the stomach. Dissected the wall of the stomach in the center of the circle, limited by a purse string suture. The contents of the stomach are removed by a syringe connected to a polyethylene catheter. A polyethylene catheter with a diameter of 2 mm, a length of 7 cm, connected to a syringe filled with an isotonic sodium chloride solution was inserted into the formed opening of the stomach. A catheter was inserted into the initial part of the duodenum and 1.0 ml of the indicated solution was introduced through the catheter. The catheter was removed and a catheter guide 20 cm long and 0.7 mm in diameter was inserted from the Teflon with a ball at the end (ball diameter 2 mm). The purse string suture was loosely tightened so that the contents of the stomach did not enter the abdominal cavity. A catheter guide with a ball at the end is advanced through the intestines with screwing movements into the small intestine. A portion of the mesentery of the small intestine, free of blood vessels, was selected, and the small intestine was transversely crossed. The mucosa of the small intestine is treated at the incision site with an antiseptic solution. The distal end of the small intestine is temporarily ligated. A catheter guidewire with a ball at the end was removed from the proximal lumen of the small intestine and a bolus tube 10 mm long and 4 mm in diameter made of dense polyethylene was fixed on it. A bolus tube was inserted into the proximal lumen of the small intestine, a purse string suture was tightly tightened on the stomach. A section of the small intestine about 20 cm long from the distally tied lumen of the intestine was isolated, a section of the mesentery of the intestine free of blood vessels was found, and the small intestine was re-transversely crossed. An isolated section of the small intestine was isolated, in which the neurovascular bundle of the mesentery was preserved, and the intestinal mucosa was treated with an aseptic solution at the incision site. The other end of the bolus tube was inserted into the lumen of the distal part of the small intestine and single-row nodular serous-muscular-submucosal sutures with a step of 1.5 mm were placed on the small intestine, which restored the integrity of the intestine and sealed its cavity.
Ослабили кисетный шов на желудке, удалили катетер-проводник с шариком на конце и болюсом-трубкой из просвета тонкой кишки через отверстие в желудке. Затем в отверстие желудка введен полиэтиленовый катетер, соединенный со шприцем. Катетер продвинули в 12-перстную кишку и ввели 1 мл изотонического раствора хлорида натрия для проверки герметичности и состоятельности кишечного энтероэнтероанастомоза. Энтероэнтероанастомоз состоятелен и герметичен. Катетер выведен, слизистая желудка обработана асептическим раствором в области сформированного отверстия, и плотно завязан кисетный шов на желудке. В просветы проксимального и дистального концов изолированного участка тонкой кишки введены фистулы из фторопласта (длина фистулы 6 мм, внешний диаметр 4 мм, внутренний диаметр 2 мм, длина «ушек» для фиксации 3 мм), на кишку наложены кисетные швы и стянуты вокруг фистул. Изолированный участок тонкой кишки промыт изотоническим раствором хлорида натрия. Дистальные концы фистул выведены наружу на 4 мм над поверхностью кожи, в которой предварительно сделаны отверстия, отступив 1 см в стороны от белой линии живота. Рана брюшной полости послойно ушита. Модель энтероэнтероанастомоза тонкой кишки создана.We loosened the purse string suture on the stomach, removed the catheter guide with a ball at the end and a bolus tube from the lumen of the small intestine through an opening in the stomach. Then, a polyethylene catheter connected to a syringe was inserted into the opening of the stomach. The catheter was advanced into the duodenum and 1 ml of isotonic sodium chloride solution was injected to check the tightness and viability of the intestinal enteroanastomastosis. Enteroenteroanastomosis is consistent and leakproof. The catheter is removed, the gastric mucosa is treated with an aseptic solution in the area of the formed hole, and a purse string suture on the stomach is tightly tied. Fluoroplastic fistulas (
Созданная модель энтероэнтероанастомоза использована для исследования функции всасывания кишечника у данного животного. В 1-е сутки после операции крыса была лишена пищи и питья, состояние соответствовало тяжести перенесенной операции. На 2-е сутки крыса активна, состояние ближе к удовлетворительному, дана жидкость для питья. Изолированный участок тонкой кишки осторожно промыт изотоническим раствором хлорида натрия, получен кишечный секрет. Во время манипуляции животное достаточно спокойно в руках экспериментатора. На 3-й сутки состояние удовлетворительное, крыса активна, проведена пробная перфузия изолированного участка тонкой кишки раствором глюкозы 25 мМ в течение 15 минут. Дана пища. 4-6 сутки после операции - состояние без изменений, крыса активна, проводятся ежедневные пробные перфузии раствором 25 мМ глюкозы.The created model of enteroenteroanastomosis was used to study the intestinal absorption function in this animal. On the 1st day after the operation, the rat was deprived of food and drink, the condition corresponded to the severity of the operation. On the 2nd day, the rat is active, the condition is closer to satisfactory, given liquid for drinking. The isolated section of the small intestine was carefully washed with an isotonic sodium chloride solution, and intestinal secretion was obtained. During the manipulation, the animal is calm enough in the hands of the experimenter. On the 3rd day, the condition is satisfactory, the rat is active, a test perfusion of an isolated portion of the small intestine with a 25 mM glucose solution was carried out for 15 minutes. Dana food. 4-6 days after surgery - the state is unchanged, the rat is active, daily test perfusion with a solution of 25 mm glucose is carried out.
На 7 сутки сняты швы, крыса взята в эксперимент по изучению функции всасывания кишечника. В качестве субстрата была использована глюкоза концентрацией 40 мМ, так как содержание глюкозы в полости тонкой кишки в физиологических условиях не превышает 50 мМ (4). Перфузию изолированного участка кишки осуществляли с помощью перистальтического насоса "Infusens" (tipe 5188, Hungary) со скоростью 0,5 мл/мин. В дни, когда забор проб для биохимического исследования не производился, для поддержания функциональных характеристик и уменьшения атрофии изолированного участка тонкой кишки проводилась перфузия раствором глюкозы 25 мМ со скоростью 0,5 мл/мин.On day 7, the sutures were removed, the rat was taken in an experiment to study the function of intestinal absorption. A glucose concentration of 40 mM was used as a substrate, since the glucose content in the small intestine cavity under physiological conditions does not exceed 50 mM (4). Perfusion of an isolated section of the intestine was carried out using an Infusens peristaltic pump (tipe 5188, Hungary) at a rate of 0.5 ml / min. On days when sampling was not performed for biochemical studies, perfusion was performed with a glucose solution of 25 mM at a rate of 0.5 ml / min to maintain functional characteristics and reduce atrophy of an isolated section of the small intestine.
Раствор глюкозы подогревали до 38°C с использованием теплообменника, подключенного к ультратермостату. Биохимическое определение концентрации глюкозы в исходном растворе и оттекающем перфузате проводили в 1 сутки опыта (7 сутки после операции), 10 сутки опыта (17 сутки после операции) и 30 сутки опыта (37 сутки после операции). Исследование функции всасывания тонкой кишки проводили в утренние часы в одно и то же время для устранения влияния циркадных ритмов на всасывание (3). После предварительной 15-минутной перфузии раствором глюкозы 40 мМ для достижения стационарного состояния, отбирали 4 пробы с интервалом 15 минут, т.е. исследовали динамику скорости всасывания глюкозы за 1 час опыта.The glucose solution was heated to 38 ° C using a heat exchanger connected to an ultra-thermostat. Biochemical determination of glucose concentration in the initial solution and effluxing perfusate was carried out on the 1st day of the experiment (7 days after the operation), 10 days of the experiment (17 days after the operation) and 30 days of the experiment (37 days after the operation). The study of the function of absorption of the small intestine was performed in the morning at the same time to eliminate the effect of circadian rhythms on absorption (3). After a preliminary 15-minute perfusion with a 40 mM glucose solution, in order to achieve a steady state, 4 samples were taken at intervals of 15 minutes, i.e. investigated the dynamics of glucose absorption rate for 1 hour of experiment.
Определение концентрации глюкозы в исходном растворе и в оттекающем перфузате проводили гексокиназным методом (5). Скорость всасывания свободной глюкозы в тонкой кишке вычисляли по формуле, предложенной Л.В. Громовой и А.А. Грузковым (б):The glucose concentration in the initial solution and in the effluent perfusate was determined by the hexokinase method (5). The absorption rate of free glucose in the small intestine was calculated by the formula proposed by L.V. Gromovoy and A.A. Gruzkov (b):
j=Cвх × Vвх/15 - Cвых × Vвых/15, j = Cin × Vin / 15 - Cout × Vout / 15,
где Cвх и Cвых - концентрация глюкозы в исходном и оттекающем перфузате (т.е. на входе и на выходе) (мМ);where Cin and Cout is the concentration of glucose in the initial and flowing perfusate (i.e., at the inlet and outlet) (mm);
Vвх и Vвых - объемы перфузионного раствора, поступающего в изолированную петлю и вытекающего из нее за 15-минутный интервал (мл).Vin and Vout are the volumes of the perfusion solution entering the isolated loop and flowing out of it in a 15-minute interval (ml).
Результаты проведенного исследования скорости всасывания глюкозы (мкмоль/мин) в тонком кишечнике у данной крысы представлены в таблице 1 (см. приложение к описанию, фиг.4). Скорость всасывания за 1 час опыта в мкмоль/мин составила в 1 сутки опыта 13,13(12,21-13,74), 10 сутки опыта 12,48(11,74-13,63), 30 сутки опыта - 12,48(12,23-12,52) в виде медианы и интерквартильного интервала. Скорость всасывания глюкозы при завершении эксперимента мало отличалась от данных, полученных в начале эксперимента, что говорит о жизнеспособности созданной модели. Эти результаты соответствуют данным, полученным другими авторами (3, 6).The results of the study of the rate of absorption of glucose (μmol / min) in the small intestine of this rat are presented in table 1 (see the appendix to the description, figure 4). The absorption rate for 1 hour of the experiment in µmol / min was 13.13 (12.21-13.74) on the 1st day of the experiment, 12.48 (11.74-13.63) on the 10th day of the experiment, 12 on the 30th day of the experiment, 48 (12.23-12.52) as a median and interquartile range. The glucose absorption rate at the end of the experiment did not differ much from the data obtained at the beginning of the experiment, which indicates the viability of the created model. These results are consistent with data obtained by other authors (3, 6).
Проведены хронические опыты по изучению процесса всасывания веществ на 13 белых крысах, оперированных по предлагаемому способу моделирования энтероэнтероанастомоза, условия проведенного исследования по изучению функции всасывания кишечника соответствовали вышеизложенному примеру. Эксперимент проведен в соответствии с правилами, принятыми Европейской конвенцией по защите позвоночных животных, используемых для экспериментальных и иных целей (Страсбург, 1986) и требованиями «Правил проведения работ с использованием лабораторных животных» (приложение к Приказу МЗ СССР от 12.08.1977, №755). В качестве субстрата была использована глюкоза концентрацией 40 мМ, так как содержание глюкозы в полости кишки в физиологических условиях не превышает 50 мМ (4). Предварительную перфузию изолированного участка кишки начинали на 3 сутки после операции, а опытную перфузию и забор проб для анализа проводили через 7-8 сутки после операции. В дни, когда забор проб для биохимического исследования не производился, для поддержания функциональных характеристик и уменьшения атрофии изолированного участка тонкой кишки, проводилась перфузия раствором глюкозы (25 мМ) с той же скоростью.Chronic experiments were carried out to study the absorption of substances in 13 white rats operated on by the proposed method for modeling enteroenteroanastomosis, the conditions of the study on the study of intestinal absorption function were consistent with the above example. The experiment was carried out in accordance with the rules adopted by the European Convention for the Protection of Vertebrate Animals Used for Experimental and Other Purposes (Strasbourg, 1986) and the requirements of the "Rules for the Work Using Laboratory Animals" (Appendix to the Order of the Ministry of Health of the USSR dated 08/12/1977, No. 755 ) A glucose concentration of 40 mM was used as a substrate, since the glucose content in the intestinal cavity under physiological conditions does not exceed 50 mM (4). Preliminary perfusion of an isolated section of the intestine began on the 3rd day after the operation, and experimental perfusion and sampling for analysis were performed 7-8 days after the operation. On days when sampling for biochemical studies was not performed, to maintain functional characteristics and reduce atrophy of an isolated portion of the small intestine, perfusion was performed with a glucose solution (25 mM) at the same speed.
Результаты проведенного исследования скорости всасывания глюкозы (мкмоль/мин) в тонком кишечнике крыс представлены в следующей таблице №2 (см. приложение к описанию, фиг.5) в виде медианы и интерквартильного интервала.The results of the study of glucose absorption rate (μmol / min) in the small intestine of rats are presented in the following table No. 2 (see the appendix to the description, figure 5) in the form of median and interquartile range.
Скорость всасывания глюкозы за час в 1, 10 и 30 сутки опыта по нашим данным составила 12,65(12,28-13,51), 13,03(12,31-13,49) и 12,57(12,07-13,48) мкмоль/мин. Эти результаты соответствуют данным, полученным другими авторами (3, 6). Незначительная разница наших результатов в абсолютных данных и данных цитируемых авторов находится в пределах допустимых ошибок. Отмечаем, что результаты скорости всасывания глюкозы на 30 сутки опыта, т.е. после операции на 37-38 сутки, практически не отличаются от результатов, полученных после 2-3 недель после операции. Эти данные однозначно указывают, что оперированные по нашему способу животные могут быть использованы в течение не менее одного месяца эксперимента и при этом полностью сохраняется жизнеспособность изолированного участка тонкой кишки, что позволяет применять предлагаемую модель энтероэнтероанастомоза для изучения функции всасывания кишечника при использовании других веществ.According to our data, the glucose absorption rate per hour on
Таким образом, предлагаемый «Способ моделирования энтероэнтероанастомоза у мелких лабораторных животных» по сравнению с другими известными технологиями позволил разработать более простой и эффективный способ, который обеспечивает сохранение нормального просвета тонкой кишки при формировании энтероэнтероанастомоза «конец в конец» у мелких лабораторных животных. Модель энтероэнтероанастомоза сохраняет свои свойства длительный срок и тем самым создает возможность исследования различных функций тонкого кишечника в эксперименте.Thus, the proposed "Method for modeling enteroenteroanastomosis in small laboratory animals" in comparison with other known technologies has allowed to develop a simpler and more effective method that ensures the preservation of the normal lumen of the small intestine during the formation of endo-endoenteroanastomosis in small laboratory animals. The model of enteroenteroanastomosis retains its properties for a long time and thereby creates the opportunity to study various functions of the small intestine in the experiment.
Источники информацииInformation sources
1. Лопухин Ю.М. Экспериментальная хирургия/Ю.М. Лопухин. -Москва: Медицина, 1971. - С.30-37, 60-64.1. Lopukhin Yu.M. Experimental Surgery / Yu.M. Lopukhin. -Moscow: Medicine, 1971.- P.30-37, 60-64.
2. Уголев A.M. Методические приемы для изучения мембранного пищеварения и всасывания в тонкой кишке в условиях хронического эксперимента на крысах и некоторых других животных/Уголев A.M., Зарипов Б.З.//Физиологический журнал СССР. - 1979. - №12. -С.1850-1854.2. Ugolev A.M. Methodological methods for studying membrane digestion and absorption in the small intestine in the conditions of a chronic experiment on rats and some other animals / Ugolev A.M., Zaripov B.Z. // Physiological Journal of the USSR. - 1979. - No. 12. -C. 1850-1854.
3. Мембранный гидролиз и транспорт. Новые данные и гипотезы/A.M. Уголева [и др.]; под ред. A.M. Уголева. - Ленинград: Наука, 1986. -С.73-85, 139-159.3. Membrane hydrolysis and transport. New data and hypotheses / A.M. Ugolev [and others]; under the editorship of A.M. Ugoleva. - Leningrad: Nauka, 1986, p. 73-85, 139-159.
4. Diamond J.M. Evolutionary design of intestinal nutrient absorption: enough but not too much/Diamond J.M.//News Physiol. Sci. - 1991. - Vol.6 - P. 92-96.4. Diamond J.M. Evolutionary design of intestinal nutrient absorption: enough but not too much / Diamond J.M.//News Physiol. Sci. - 1991. - Vol.6 - P. 92-96.
5. Камышников B.C. Справочник по клинико-биохимической лабораторной диагностике/Камышников B.C. - Минск, 2000.- С.17-18.5. Kamyshnikov B.C. Handbook of clinical and biochemical laboratory diagnostics / Kamyshnikov B.C. - Minsk, 2000.- P.17-18.
6. Громова Л.В. Относительная роль различных механизмов всасывания глюкозы в тонкой кишке при физиологических условиях./ Громова Л.В., Груздков А.А.//Физиологический журнал им. И.М.Сеченова. - 1993. - №6. - С.65-72.6. Gromova L.V. The relative role of various mechanisms of glucose absorption in the small intestine under physiological conditions./ Gromova L.V., Gruzdkov A.A. // Physiological Journal. I.M.Sechenova. - 1993. - No. 6. - S. 65-72.
Claims (1)
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| RU2012153031/14A RU2535411C2 (en) | 2012-12-07 | 2012-12-07 | Method of modelling enteroenteroanastomosis in small laboratory animals |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| RU2012153031/14A RU2535411C2 (en) | 2012-12-07 | 2012-12-07 | Method of modelling enteroenteroanastomosis in small laboratory animals |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| RU2012153031A RU2012153031A (en) | 2014-06-20 |
| RU2535411C2 true RU2535411C2 (en) | 2014-12-10 |
Family
ID=51213480
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| RU2012153031/14A RU2535411C2 (en) | 2012-12-07 | 2012-12-07 | Method of modelling enteroenteroanastomosis in small laboratory animals |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| RU (1) | RU2535411C2 (en) |
Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2650595C1 (en) * | 2017-06-15 | 2018-04-16 | федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Башкирский государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации | Method of modeling duodenal fistula in rabbits |
Citations (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2173103C1 (en) * | 2000-02-09 | 2001-09-10 | Оренбургская государственная медицинская академия | Method for performing entero-enteroanastomosis |
-
2012
- 2012-12-07 RU RU2012153031/14A patent/RU2535411C2/en not_active IP Right Cessation
Patent Citations (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2173103C1 (en) * | 2000-02-09 | 2001-09-10 | Оренбургская государственная медицинская академия | Method for performing entero-enteroanastomosis |
Non-Patent Citations (2)
| Title |
|---|
| ЛОПУХИН Ю.М. Экспериментальная хирургия. Москва: Медицина, 1971. - С.30-37, 60-64. * |
| УГОЛЕВ A.M. Методические приемы для изучения мембранного пищеварения и всасывания в тонкой кишке в условиях хронического эксперимента на крысах и некоторых других животных. Физиологический журнал СССР. - 1979. - N12. -С.1850-1854. УГОЛЕВ A.M. Мембранный гидролиз и транспорт. Новые данные и гипотезы. Ленинград: Наука, 1986.-С.73-85., 139-159. DIAMOND J.M. Evolutionary design of intestinal nutrient absorption: enough but not too much. News Physiol. Sci. - 1991. - Vol.6 - P. 92-96 * |
Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2650595C1 (en) * | 2017-06-15 | 2018-04-16 | федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Башкирский государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации | Method of modeling duodenal fistula in rabbits |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| RU2012153031A (en) | 2014-06-20 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| Tripodi et al. | Experimental transplantation of the pancreas into the stomach | |
| de Matos et al. | Emergency and critical care of small psittacines and passerines | |
| Meylan | Surgery of the bovine large intestine | |
| RU2535411C2 (en) | Method of modelling enteroenteroanastomosis in small laboratory animals | |
| RU2400820C2 (en) | Method of creating experimental model of pancreatic necrosis in rats | |
| Adamantos et al. | Emergency care of the cat with multi‐trauma | |
| Dicks et al. | The use of an angularis oris axial pattern flap in a dog after resection of a multilobular osteochondroma of the hard palate | |
| Carrel | Concerning visceral organisms | |
| RU2355436C1 (en) | Method of surgical liver echinococcosis treatment | |
| RU2388063C2 (en) | Method for simulation of pancreonecrosis in rats | |
| Dalto et al. | The net portal appearance approach–a tool to monitor the real-time bioavailability of nutrients in pigs | |
| RU2424581C1 (en) | Method of jejunum fistula creation in pigs | |
| Fullagar | Gastric dilatation-volvulus: It doesnt have to make your stomach turn | |
| RU2843431C1 (en) | Method for prediction of pyoinflammatory wound complications in patients with acute abdominal surgical pathology or abdominal trauma after on-demand relaparotomy | |
| Proios et al. | Duodenal volvulus of the sigmoid flexure in five cows. A retrospective study | |
| Zatloukal et al. | Perioperative goal directed therapy—current view | |
| RU2545449C2 (en) | Method of dynamic endovideocontrol of enteric anastomosis consistency in patients with acute abdominal surgical pathology | |
| Rutledge et al. | Assessment and support of hydration and nutrition status and care | |
| Díaz-Archundia et al. | Effects of jejunal manipulation during surgical laparotomy techniques and its evaluation using physical, clinical, and echographic parameters in horses | |
| Sodhi et al. | Surgical management of gut-tie in a cow | |
| Dutra et al. | Intravascular access in Chelonia mydas and Dermochelys coriacea using the Seldinger technique ultrasound-guided | |
| Doneley et al. | The exploratory coeliotomy | |
| Iman | Case Study of Traumatic Diaphragmatic Hernia Repair in a Cat at Pet First Veterinary Centre, Kuala Lumpur, Malaysia | |
| Da Conceição et al. | Cecocolic intussusception and cecal torsion in cattle | |
| Mestry et al. | Intestinal Obstruction in Bovines and its Surgical management-A Clinical report of 12 cases |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20141208 |