[go: up one dir, main page]

RU2518304C2 - ДВУХФАЗНАЯ ПИТАТЕЛЬНАЯ СРЕДА ДЛЯ ТОНКОСЛОЙНОГО КУЛЬТИВИРОВАНИЯ Helicobacter pylori И СПОСОБ ЕГО ОСУЩЕСТВЛЕНИЯ - Google Patents

ДВУХФАЗНАЯ ПИТАТЕЛЬНАЯ СРЕДА ДЛЯ ТОНКОСЛОЙНОГО КУЛЬТИВИРОВАНИЯ Helicobacter pylori И СПОСОБ ЕГО ОСУЩЕСТВЛЕНИЯ Download PDF

Info

Publication number
RU2518304C2
RU2518304C2 RU2012125394/10A RU2012125394A RU2518304C2 RU 2518304 C2 RU2518304 C2 RU 2518304C2 RU 2012125394/10 A RU2012125394/10 A RU 2012125394/10A RU 2012125394 A RU2012125394 A RU 2012125394A RU 2518304 C2 RU2518304 C2 RU 2518304C2
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
agar
helicobacter pylori
phase
incubator
liquid
Prior art date
Application number
RU2012125394/10A
Other languages
English (en)
Other versions
RU2012125394A (ru
Inventor
Владимир Андрианович Алёшкин
Гузель Шавхатовна Исаева
Евгения Петровна Селькова
Станислав Степанович Афанасьев
Original Assignee
Федеральное бюджетное учреждение науки "Московский научно-исследовательский институт эпидемиологии и микробиологии им. Г.Н. Габричевского" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Федеральное бюджетное учреждение науки "Московский научно-исследовательский институт эпидемиологии и микробиологии им. Г.Н. Габричевского" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека filed Critical Федеральное бюджетное учреждение науки "Московский научно-исследовательский институт эпидемиологии и микробиологии им. Г.Н. Габричевского" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека
Priority to RU2012125394/10A priority Critical patent/RU2518304C2/ru
Publication of RU2012125394A publication Critical patent/RU2012125394A/ru
Application granted granted Critical
Publication of RU2518304C2 publication Critical patent/RU2518304C2/ru

Links

Landscapes

  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Abstract

Изобретение относится к области микробиологии и может быть использовано в медицине. Способ предусматривает предварительный посев исследуемого материала на Колумбия агар с добавлением 5% крови барана. Термостатируют в микроаэрофильных условиях в СО2 инкубаторе при 37°С в течение 3-5 дней при повышенной влажности. Производят отбор колоний и пересевают их на чашки Петри с шоколадным агаром и термостатируют в микроаэрофильных условиях в СО2 инкубаторе при 37°С в течение 3-5 дней при повышенной влажности. По завершении стадии термостатирования чашки Петри с шоколадным агаром заливают сверху жидкой питательной средой на основе бульона Шедлера, обогащенного 10% сывороткой крупного рогатого скота с последующим термостатированием их в СО2 инкубаторе при 37°С в течение 72 часов. 2 н. и 2 з.п. ф-лы.

Description

Изобретение относится к области микробиологии и может быть использовано в медицине.
Открытие H.pylori в 1982 году явилось отправной точкой в формировании новой концепции этиологии гастродуоденальных заболеваний. В настоящее время общепринятым фактом является роль Н. pylori в патогенезе хронического гастрита. В 1990 году эти бактерии официально включены в международную классификацию как хеликобактерный гастрит или гастрит, ассоциированный с хеликобактериозом, гастрит типа В. С инфицированием H.pylori ассоциировано около 70-80% случаев гастритов, более 70% случаев язвенной болезни желудка, 90% язвенной болезни двенадцатиперстной кишки, повышен риск развития рака желудка и B-клеточной лимфомы. В научных докладах последних лет активно обсуждается вопрос о связи H.pylori с внежелудочными проявлениями (заболеваниями кишечника, гепатобилиарной системы, поджелудочной железы), а также поражениями сердечно-сосудистой системы, опорно-двигательного аппарата, кожи и т.д.
Для правильной и своевременной постановки диагноза хеликобактериоза разработано множество методов, сгруппированных с использованием нескольких параметров для классификации. В зависимости от цели, материала, техники исполнения их подразделяют на скрининговые и подтверждающие; инвазивные и неинвазивные; прямые и косвенные. Одним из методов лабораторной диагностики H.pylori-инфекции является бактериологическое исследование - выделение, идентификация, изучение биологических свойств возбудителя. Трудоемкость и сложность выделения культуры H.pylori ограничивают применение этого метода в практике практического здравоохранения, но он остается единственным для фенотипического определения чувствительности штаммов к антибактериальным препаратам.
Для культивирования H.pylori предложены различные питательные среды, обязательными компонентами которых являются базовый агар, ростовые добавки, а для селективных - ингибиторы роста сопутствующей микрофлоры. Большинство базовых агаров удовлетворяют требованиям, предъявляемым для культивирования H.pylori, например колумбийский агар, эритрит агар, сердечно-мозговой агар. H.pylori очень прихотливый микроорганизм, требующий дополнительных факторов роста (витаминов, микроэлементов) [1]. Обязательным компонентом среды должна быть добавка 5-10% крови или сыворотки животных (лошади, барана). Использование крови человека ограничено наличием у большинства взрослого населения защитных антител, способных ингибировать рост H.pylori [2]. При этом эритроциты могут быть лизированы, чтобы ростовые вещества могли быть использованы быстрее, что достигается при применении шоколадного агара. Разработана питательная среда, не содержащая сыворотку и ткани животных -SATFM (serum - animal tissue - free medium), которая может быть использована как для выделения чистой культуры (плотная), так и для транспортировки (полужидкая) с разницей в процентном содержании агара [3]. Н.В.Сафоновой и А.Б.Жебруном (1995) предложена среда, приготовленная на основе эритрит-агара, в которую ех tempore вносят кровь, гемин и селективную добавку [4]. М.М.Меджидовым и коллегами (2000) разработан хеликобактер-агар, содержащий селективную добавку, состоящую из антибактериальных и противогрибковых препаратов, и кровь, вносимые ex tempore [5]. А.Б.Жебрун с коллективом авторов (2002) рекомендуют использовать в качестве основы питательной среды колумбийский агар или сердечно-мозговой агар с добавлением 5-7% лошадиной сыворотки или 5-7% дефибринированной лошадиной крови и 1% раствора изовиталекса [6]. Наиболее близким к заявляемому является способ культивирования H.pylori на шоколадном агаре, приготовленном на основе среды Колумбия агар с добавлением 2,5% донорской крови. Затем к охлажденной до 50°С питательной среде авторы предлагают добавлять 2,5% гемолизированной донорской крови. Способ обеспечивает более быстрое культивирование на более дешевой среде, но не лишен ряда недостатков [7]. Недостатком прототипа на взгляд авторов является использование донорской крови, что может снижать частоту высеваемости из-за наличия в донорской крови антител к H.pylori, оказывающих ингибирующее действие. Особенно остро стоит проблема при получении чистой культуры, когда после пересева изолированных колоний для выделения чистой культуры вырастают единичные колонии, и биологического материала оказывается недостаточно для идентификации и постановки антибиотикограммы.
Недостатком способов культивирования на твердых питательных средах является:
- невысокая эффективность высеваемости хеликобактеров при первичной изоляции,
- при дальнейших пересевах для получения чистых культур штаммы теряются, всхожесть ослабевает и утрачивается,
- скудность роста чистых культур приводит к невозможности определения чувствительности выделенного штамма к антибиотикам и химиопрепаратам.
Проблему накопления культуры можно решить с помощью использования жидких сред. Сходный с твердыми средами состав (основы, ростовые и селективные добавки) используется и в жидких средах, хотя процесс культивирования более трудоемок и в практических лабораториях не нашел широкого применения [8]. Предложены различные основы жидких сред: Brucella - бульон, сердечно-мозговой бульон, соевый бульон с ростовыми добавками (сыворотка, дрожжевой экстракт, циклодекстрин и другие) и антимикробными препаратами (ванкомицин, налидиксовая кислота, амфотери[9; 10]. Предложена среда, имеющая постоянный состав витаминов и микроэлементов без добавления сыворотки - serum - free Ham's F-12 [11]. При росте на жидких питательных средах бактерии имеют типичную извитую форму, подвижны и биохимически активны, полноценны в антигенном отношении [12]. H.pylori растет в микроаэрофильной атмосфере, состоящей из 5% О2, 5-10% СО2, 85-90% N2. Различные системы могут быть использованы для создания микроаэрофильных условий. Среди них - микроаэробный бокс или инкубатор, в котором адекватная атмосфера поддерживается автоматически. Такую атмосферу можно создать в микроанаэростате типа GasPac 100 или GasPac 150 Anaerobic Systems фирмы BBL с использованием газогенераторных пакетов типа СатруРас фирмы BBL или Oxoid, которые начинают продуцировать газовые смеси при добавлении воды, которая также создает необходимую для роста H.pylori влажность. Но при культивировании в жидкой среде сложность может представлять создание и поддержание микроаэрофильных условий. Эта задача может быть решена постоянным контролированием микроаэробной атмосферы в пробирках путем перемешивания на специальных платформах под углом 20° со скоростью вращения 120 оборотов в минуту [13] или культивирования во флаконах с отверстиями для доступа газов, для чего разработаны мини-биореакторы для принудительного введения в атмосферу культивирования углекислого газа через трубки, погруженные во флаконы с жидкой питательной средой [14].
Недостатки способов культивирования на жидких питательных средах:
- сложность создания и поддержания микроаэрофильных условий в жидких питательных средах,
- необходимость использования дополнительного оборудования (шейкеров, вращательных платформ, биореакторов и т.д.) для принудительного введения углекислого газа.
Задачей изобретения является разработка способа тонкослойного культивирования Helicobacter pylori с использованием двухфазной питательной среды, доступного для бактериологических лабораторий, не оснащенных специальным оборудованием. Достигаемый технический результат заключается в отсутствии необходимости использования дополнительного оборудования для поддержания микроаэрофильных условий в жидкой фазе среды, использовании стандартных питательных сред (Колумбия агара и бульона Шедлера) и в том, что происходит накопление чистой культуры H.pylori в количестве, достаточном для морфологической, биохимической идентификации и постановки антибиотикограммы.
Некоторые микроорганизмы с трудом удается выращивать на твердых или жидких питательных средах, но они гораздо более активно растут и размножаются в двухфазных питательных средах, состоящих из комбинации твердой и жидкой фаз. Возможным объяснением может быть то, что подобные питательный среды создают условия роста и размножения, приближенные к естественным, когда часть жизненного цикла микроба требует твердой питательной среды, а другие стадии жизненного цикла проходят в жидкой питательной среде. Это, в частности, свойственно эпителиальным патогенам, к которым относится H.pylori, частично размножающимся к клетках слизистых оболочек, а частично - на поверхности слизистой в просвете органа. При этом состав компонентов жидкой и твердой фазы питательной среды определяется особенностями биологии конкретного микроорганизма.
Так, патентом РФ №2272834 (15) защищена питательная двухфазная среда для выделения одноклеточных микроорганизмов - трихомонад. Патентом РФ №2412991(16) защищена двухфазная питательная среда для культивирования криптоспоридий, а патент РФ №2346052 (17) предлагает двухфазную питательную среду для выделения бруцелл.
Авторы заявляемого изобретения предлагают следующий состав питательной среды. Двухфазная питательная среда состоит из двух фаз: твердой и жидкой. Твердая фаза представляет собой шоколадный агар, приготовленный на основе Колумбия агара с 5% крови барана.
Состав Колумбия агара:
Ингредиенты грамм/лит Р
Биопептон 20,00
Триптический перевар говяжьего сердца 3,00
Крахмал кукурузный 1,00
Натрия хлорид 5,00
Агар-агар 15,00
Конечное значение рН (при 25°С) 7,3±0,2
Приготовление:
Размешать 44,0 г порошка в 1000 мл дистиллированной воды. Прокипятить для полного растворения частиц. Стерилизовать автоклавированием при 1,1 атм (121°С) в течение 15 мин. Остудить до 50°С и асептично внести стерильную дефибринированную кровь барана (5% от общего объема). Агар слегка подогревают на слабом огне, не доводя до кипения. Тщательно перемешать и разлить среду в стерильные чашки Петри по 14 мл. При приготовлении шоколадного агара следует обратить особое внимание на правильный подогрев: правильно приготовленный агар имеет светло-коричневую окраску схожую с цветом молочного шоколада. При слишком слабом подогреве агар будет иметь кирпично-красный цвет, а при сильном - темно-коричневый.
Преимущества используемой твердой фазы
Колумбия агар отличается разнообразием включенных в рецептуру среды источников белкового питания. Комбинация пептонов обеспечивает на ней быстрый и обильный рост очень прихотливых микроорганизмов. В результате приготовления шоколадного агара из эритроцитов экстрагируются гемин, НАД, и ростовые факторы гемофильными и прихотливыми бактериями, в том числе и H.pylori, используются быстрее.
Жидкая фаза представляет собой бульон Шедлера, обогащенный 10% сывороткой крупного рогатого скота.
Состав бульона Шедлера:
Ингредиенты грамм/лит Р
Гидролизат казеина 5,67
Протеозопептон 5,00
Папаиновый перевар соевой муки 1,00
Дрожжевой экстракт 5,00
Глюкоза 5,83
Натрия хлорид 1,67
Калия гидрофосфат 0,83
Трис (гидроксиметиламинометан) 3,00
L-Цистин 0,40
Гемин 0,01
Конечное значение рН (при 25°С) 7,6±0,2
Приготовление:
Размешать 28,41 г порошка в 1000 мл дистиллированной воды. Прокипятить с частым помешиванием для полного растворения частиц. Стерилизовать автоклавированием при 1,1 атм (121°С) в течение 15 мин. Остудить и асептично добавить до 10% от общего объема стерильной сыворотки крупного рогатого скота. Перед розливом среду тщательно перемешать. Избегать перегревания среды или ее окисления на свету, так как это приводит к задержке роста бактерий.
Преимущества используемой жидкой фазы:
Данная среда является прекрасной основой, в которую для выделения прихотливых анаэробных, в том числе и капнофильных бактерий, можно добавлять кровь или другие обогатительные добавки. Комбинация гидролизата казеина, протеозопептона, папаинового перевара соевой муки, дрожжевого экстракта и L-цистина обеспечивает присутствие азотистых питательных веществ, витаминов и других факторов, необходимых для роста микроорганизмов. Глюкоза является источником энергии. Гемин и витамин К стимулируют рост прихотливых микроорганизмов.
Авторы предлагают следующий способ тонкослойного культивирования H.pylori на двухфазной питательной среде.
1 этап. Первичный посев исследуемого материла (биоптаты слизистой оболочки желудка) производят на колумбийский агар с добавлением 5% крови барана. Термостатирование в микроаэрофильных условиях (СО2-инкубаторе) при 37°С в течение 3-5 дней при повышенной влажности.
2 этап. Оценка результатов посева. Выявление подозрительных колоний (мелкие, прозрачные диаметром 1-2 мм сходные с «капельками росы»). Пересев отобранной колонии на шоколадный агар для получения чистой культуры. Инкубирование в микроаэрофильных условиях при 37°С в течение 3-5 дней.
3 этап. Накопление чистой культуры. В случае скудного роста единичные колонии рассеивают петлей по поверхности плотной среды и заливают жидкой питательной средой, приготовленной на основе бульона Шедлера, обогащенным 10% сывороткой крупного рогатого скота. Оптимальное количество жидкой среды, наливаемой в чашку Петри диаметром 90 мм, составляет 3,5 мл (соотношение твердой и жидкой фаз 4:1). Инкубирование в микроаэрофильных условиях 37°С в течение 3 дней.
4 этап. Идентификация выделенной культуры, выросшей в жидкой фазе.
Изучение морфологических свойств. Из культуральной жидкости готовят фиксированные мазки, окрашивают по Граму и препарат «раздавленная» или «висячая капля» для определения подвижности.
Изучение биохимических свойств. Постановка тестов на каталазу, оксидазу, уреазу.
Постановка антибиотикограммы.
Таким образом, заявляемый авторами изобретения способ тонкослойного культивирования Helicobacter pylori предполагает использование преимущества жидкой фазы по сравнению с твердой фазой для накопления культуры, а ее тонкослойное распределение поддерживает микроаэрофильные условия в толще жидкости без дополнительного оборудования.
Литература
1. Jiang X., Doyle M.P. Growth supplements for Helicobacter pylori. // J Clin Microbiol. - 2000. - Vol.38. - P.1984-1987.
2. Westblom T.U., Madan E., Riff B.R. Improved growth of Helicobacter pylori using a liquid medium supplemented with human serum. // Ital. J. Gastroenterol. - 1991. - Vol.29(Suppl. 2). - P.48.
3. Dierikx C.M., Martodihardjo J., Kuipers E.J. et al. Serum and animal tissue free medium for transport and growth of Helicobacter pylori. // Immunol. Med. Microbiol. - 2007. - Vol.50. - P.239-243.
4. Сафонова Н.В., Жебрун А.Б. Гастрит, язвенная болезнь и хеликобактериоз. - Реком. для врачей. - Спб. - 1995.
5. Меджидов М.М., Темирханова З.У., Алиева Х.М. и др. Оценка питательной среды для выделения и культивирования Helicobacter pylori. // Журн. микробиол., эпидемиол., иммунол. - 2000. - №2. - С.25-29.
6. Жебрун А.Б., Александрова В.А., Гончарова Л.Б. др. Диагностика, профилактика и лечение заболеваний, ассоциированных с Helicobacter pylori-инфекцией. (Пособие для врачей). Спб., 2002.
7. Червинец В.М., Червинец Л.Ф. Патент на изобретение РФ №2145975 «Способ культивирования Helicobacter pylori». - 2000.
8. Shahamat M., Mai U.E., Paszko-Kolva С. et al. Evaluation of liquid media for growth of Helicobacter pylori. // J. Clin. Microbiol. - 1991. - Vol.29. - P.2835-2837.
9. Morshed M.G., Karita M., Konishi H. et al. Growth medium containing cyclodextrin and low concentration of horse serum for cultivation of Helicobacter pylori. // Microbiol. Immunol. - 1994. - Vol.38(11). - P.897-900.
10. Murano A., Miyake M., Kato J. et al. Enhancement of the growth of Helicobacter pylori in Brucella broth by hydrogen peroxide. // Microbiol. Immunol. - 1999. - 43(11). - P.1009-15.
11. Testerman T.L., McGee D.J., Mobley H.L.T. Helicobacter pylori growth and urease detection in the chemically defined medium Ham's F-12 nutrient mixture. // J. Clin. Microbiol. - 2001. - Vol.39. - P.3842-3850.
12. Lin Y.L., Lee N., Chan E.C. Determination of optimal liquid medium for enzyme expression by Helicobacter pylori. // J. Clin. Pathol. - 1996. - Vol.49. - P.818-820.
13. Xia H.X, English L., Keane C.T. et al. Enhanced cultivation of Helicobacter pylori in liquid media. // J. Clin. Pathol. - 1993. - Vol.46(8). - P.750-753.
14. Secker D.A., Tompkins D.S., Alderson G. Gas-permeable life cell tissue culture flasks give improved growth of Helicobacter pylori in a liquid medium. // J. Clin. Microbiol. - 1991. - Vol.29. - P.1060-1061.
15. Патент РФ №2272834.
16. Патентом РФ №2412991.
17. Патент РФ №2346052.

Claims (4)

1. Двухфазная питательная среда для тонкослойного культивирования Helicobacter pylori, содержащая твердую фазу, представленную шоколадным агаром, изготовленным на основе Колумбия агара с 5% крови барана, и жидкую фазу, представляющую собой бульон Шедлера, обогащенный 10% сывороткой крупного рогатого скота, отличающаяся тем, что соотношение твердой фазы к жидкой составляет 4:1 (14 мл агара и 3,5 мл бульона).
2. Двухфазная питательная среда для тонкослойного культивирования Helicobacter pylori по п.1, отличающаяся тем, что Колумбия агар содержит следующие ингредиенты в г/литр:
Ингредиенты грамм/литр Биопептон 20,00 Триптический перевар говяжьего сердца 3,00 Крахмал кукурузный 1,00 Натрия хлорид 5,00 Агар-агар 15,00 Конечное значение рН (при 25°С) 7,3±0,2
3. Двухфазная питательная среда для тонкослойного культивирования Helicobacter pylori по п.2, отличающаяся тем, что бульон Шедлера содержит следующие ингредиенты в г/литр:
Ингредиенты грамм/литр Гидролизат казеина 5,67 Протеозопептон 5,00 Папаиновый перевар соевой муки 1,00 Дрожжевой экстракт 5,00 Глюкоза 5,83 Натрия хлорид 1,67 Калия гидрофосфат 0,83 Трис (гидроксиметиламинометан) 3,00 L-Цистин 0,40 Гемин 0,01 Конечное значение рН (при 25°С) 7,6±0,2
4. Способ тонкослойного культивирования Helicobacter pylori с использованием двухфазной питательной среды по п.1, предусматривающий первичный посев исследуемого материала на Колумбия агар с добавлением 5% крови барана, термостатирование в микроаэрофильных условиях в СО2 инкубаторе при 37°С в течение 3-5 дней при повышенной влажности, пересев отобранных колоний чашки Петри с шоколадным агаром, последующее термостатирование в микроаэрофильных условиях в СО2 инкубаторе при 37°С в течение 3-5 дней при повышенной влажности, отличающийся тем, что после термостатирования чашки Петри с шоколадным агаром заливают сверху жидкой питательной средой на основе бульона Шедлера, обогащенного 10% сывороткой крупного рогатого скота согласно п.1 и окончательно термостатируют их в СО2 инкубаторе при 37°С в течение 72 часов.
RU2012125394/10A 2012-06-20 2012-06-20 ДВУХФАЗНАЯ ПИТАТЕЛЬНАЯ СРЕДА ДЛЯ ТОНКОСЛОЙНОГО КУЛЬТИВИРОВАНИЯ Helicobacter pylori И СПОСОБ ЕГО ОСУЩЕСТВЛЕНИЯ RU2518304C2 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2012125394/10A RU2518304C2 (ru) 2012-06-20 2012-06-20 ДВУХФАЗНАЯ ПИТАТЕЛЬНАЯ СРЕДА ДЛЯ ТОНКОСЛОЙНОГО КУЛЬТИВИРОВАНИЯ Helicobacter pylori И СПОСОБ ЕГО ОСУЩЕСТВЛЕНИЯ

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2012125394/10A RU2518304C2 (ru) 2012-06-20 2012-06-20 ДВУХФАЗНАЯ ПИТАТЕЛЬНАЯ СРЕДА ДЛЯ ТОНКОСЛОЙНОГО КУЛЬТИВИРОВАНИЯ Helicobacter pylori И СПОСОБ ЕГО ОСУЩЕСТВЛЕНИЯ

Publications (2)

Publication Number Publication Date
RU2012125394A RU2012125394A (ru) 2013-12-27
RU2518304C2 true RU2518304C2 (ru) 2014-06-10

Family

ID=49785766

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2012125394/10A RU2518304C2 (ru) 2012-06-20 2012-06-20 ДВУХФАЗНАЯ ПИТАТЕЛЬНАЯ СРЕДА ДЛЯ ТОНКОСЛОЙНОГО КУЛЬТИВИРОВАНИЯ Helicobacter pylori И СПОСОБ ЕГО ОСУЩЕСТВЛЕНИЯ

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2518304C2 (ru)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2678123C1 (ru) * 2017-10-13 2019-01-23 Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Институт клеточного и внутриклеточного симбиоза Уральского отделения Российской академии наук Питательная среда для восстановления численности анаэробных бактерий после низкотемпературного хранения

Families Citing this family (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN114958954A (zh) * 2018-04-18 2022-08-30 深圳市伯劳特生物制品有限公司 幽门螺杆菌药敏检测试剂盒和检测方法
CN108424867B (zh) * 2018-04-18 2021-11-26 深圳市伯劳特生物制品有限公司 组合物及含有该组合物的培养基

Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2145975C1 (ru) * 1999-07-19 2000-02-27 Тверская медакадемия Способ культивирования helicobacter pylori
US20020026035A1 (en) * 1997-04-01 2002-02-28 Harold Kleanthous Helicobacter ghpo 1360 and ghpo 750 polypeptides and corresponding polynucleotide molecules

Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US20020026035A1 (en) * 1997-04-01 2002-02-28 Harold Kleanthous Helicobacter ghpo 1360 and ghpo 750 polypeptides and corresponding polynucleotide molecules
RU2145975C1 (ru) * 1999-07-19 2000-02-27 Тверская медакадемия Способ культивирования helicobacter pylori

Non-Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
(параграф 0111). SCHAEDLER BROTH (7154), Rev 06, Nov. 2010, Acumedia. [найдено онлайн] [найдено 13.02.2013 по адресу http://www.neogen.com/Acumedia/pdf/ProdInfo/7154 PI.pdf] (весь документ). NEDENSKOV P: "Nutritional requirements for growth of Helicobacter pylori", Appl Environ Microbiol. 1994 Sep;60(9):3450-3. (стр.3452). Микробиологическая диагностика дисбактериоза кишечника. Методические рекомендации. ГУ НИИЭМ им. Н.Ф.Гамалеи РАМН. Москва-2007. [найдено онлайн] [найдено 13.02.2013 по адресу http://www.himedialabs.ru/download/%C4%E8%F1%E1%E0%EA%F2%E5%F0%E8%EE%E7.%20%D0%E5%EA%EE%EC%E5%ED%E4%E0%F6%E8%E8%20%CD%C8%C8%DD%CC%20%E8%EC.%C3%E0%EC%E0%EB%E5%E8.pdf] (стр.52). *
(цитирован в описании изобретения) *

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2678123C1 (ru) * 2017-10-13 2019-01-23 Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Институт клеточного и внутриклеточного симбиоза Уральского отделения Российской академии наук Питательная среда для восстановления численности анаэробных бактерий после низкотемпературного хранения

Also Published As

Publication number Publication date
RU2012125394A (ru) 2013-12-27

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CN101333505B (zh) 一种干酪乳杆菌在抗氧化作用方面的应用
CN104651268B (zh) 一种植物乳杆菌及其应用
CN105567669B (zh) 益生菌微胶囊制剂及其制备方法
Rouf et al. An overview of microbial cell culture
CN109321505A (zh) 一种调节水产动物肠道的复合微生物制剂
Iheukwumere et al. Exploring the impact of Lactobacillus-fermented chicken feather on organ weights and functions in albino Wistar rats
RU2518304C2 (ru) ДВУХФАЗНАЯ ПИТАТЕЛЬНАЯ СРЕДА ДЛЯ ТОНКОСЛОЙНОГО КУЛЬТИВИРОВАНИЯ Helicobacter pylori И СПОСОБ ЕГО ОСУЩЕСТВЛЕНИЯ
CN101153316B (zh) 一种益生菌乳制品中干酪乳杆菌的检测方法
Prima et al. Isolation, Characterization and Identification of Molecular Lactic Acid is Isolated from Bilih Fish (Mystacoleucuspadangensis) Lake Singkarak Potential as a Probiotic
Kusugal et al. Coculture method for in vitro cultivation of uncultured oral bacteria
RU2441907C1 (ru) Способ приготовления лечебно-профилактического препарата из живых штаммов микроорганизмов лакто- и бифидобактерий "lb-комплекс л"
WO2023273019A1 (zh) 培养基及其制备方法、用其培养脆弱拟杆菌的方法
CN112481188A (zh) 一种高效产β-葡萄糖醛酸酶混合菌剂的制备方法
CN104293879A (zh) 一种发酵乳制品中菌落总数的检测方法
RU2540022C2 (ru) Способ получения бактериального концентрата бифидобактерий в жидкой форме
Zhumakayeva et al. Microbial composition of livestock buildings is the basis for the creation of a biological preparation to stabilize the microbial background
RU2660708C1 (ru) Способ получения питательной среды для выделения гемокультуры при диагностике инфекции кровотока
TW202124705A (zh) 鏈球菌之無動物產物培養
RU2678123C1 (ru) Питательная среда для восстановления численности анаэробных бактерий после низкотемпературного хранения
CZ2018101A3 (cs) Kmeny mikroorganismů Lactobacillus plantarum LS/07 CCM 7766, výrobek obsahující tyto kmeny
Siddhi et al. Studies on Lactic Acid Bacteria Isolate Sr 13 From Bali Cattle Gastric
CN107998153A (zh) 基于乳酸菌和光合菌共生作用的微生态制剂及生产方法
CN117487664B (zh) 双歧杆菌分离培养方法
CN109355226A (zh) 用于军团菌的增菌培养和分离培养的双相培养基及其制备方法
Mousa Alobaidy et al. Comparison between the Effect of Secondary Metabolic Products of Nutrient Medium and Modified Medium of Yeast Saccharomyces boulardii Against Different Bacterial Species.