[go: up one dir, main page]

RU2563172C1 - METHOD FOR DETERMINING CCR5 delta 32 ALLELE POLYMORPHISM - Google Patents

METHOD FOR DETERMINING CCR5 delta 32 ALLELE POLYMORPHISM Download PDF

Info

Publication number
RU2563172C1
RU2563172C1 RU2014145497/15A RU2014145497A RU2563172C1 RU 2563172 C1 RU2563172 C1 RU 2563172C1 RU 2014145497/15 A RU2014145497/15 A RU 2014145497/15A RU 2014145497 A RU2014145497 A RU 2014145497A RU 2563172 C1 RU2563172 C1 RU 2563172C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
pcr
polymorphism
ccr5
delta
ccr5 delta
Prior art date
Application number
RU2014145497/15A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Иван Александрович Пирожков
Александр Борисович Смолянинов
Алёна Александровна Котелевская
Original Assignee
Общество с ограниченной ответственностью "Покровский банк стволовых клеток"
государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Северо-Западный государственный медицинский университет им. И.И. Мечникова" Министерства здравоохранения Российской Федерации
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Общество с ограниченной ответственностью "Покровский банк стволовых клеток", государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Северо-Западный государственный медицинский университет им. И.И. Мечникова" Министерства здравоохранения Российской Федерации filed Critical Общество с ограниченной ответственностью "Покровский банк стволовых клеток"
Priority to RU2014145497/15A priority Critical patent/RU2563172C1/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2563172C1 publication Critical patent/RU2563172C1/en

Links

Images

Landscapes

  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

FIELD: medicine.
SUBSTANCE: DNA is recovered from cryopreserved umbilical blood. A polymerase chain reaction (PCR) is conducted with using specific primers. The presence of specific DNA fragments is stated after electrophoretic separation of the PCR amplified mixture and ethydium bromide staining. A normal gene version is accompanied by the PCR fragment length making 224 base pairs. In CCR5 delta 32 allele polymorphism, the PCR fragment length is 192 base pairs.
EFFECT: invention provides the specific detection of CCR5 delta 32 allele polymorphism in the umbilical blood sample and can be used for screening assay.
1 dwg, 1 tbl, 1 ex

Description

Изобретение относится к области медицины, а именно генетике, гематологии, и может использоваться для определения аллельного полиморфизма CCR5 delta 32 при скрининговом обследовании образцов пуповинной крови, поступающих в банк пуповинной крови.The invention relates to medicine, namely genetics, hematology, and can be used to determine the CCR5 delta 32 allelic polymorphism in a screening examination of cord blood samples entering a cord blood bank.

Вирус иммунодефицита человека (ВИЧ) проникает в клетки посредством связывания гликопротеина вирусной оболочки gp 120 с мембранными рецепторами CD4 и CCR5. Одновременная экспрессия рецепторов CD4 и CCR5 встречается на T-лимфоцитах, моноцитах, макрофагах и дендритных клетках. Белок CCR5 кодируется геном CCR5, расположенным на коротком плече хромосомы 3 в позиции 21 (3p21). Существует полиморфизм CCR5 delta 32, представляющий из себя делецию 32 пар нуклеотидов в кодирующей области гена CCR5. В результате экспрессии мутантного гена в гомозиготном состоянии транслируется укороченный, функционально неактивный белок CCR5. Вследствие этого гомозиготные носители этого полиморфизма обладают практически полной резистентностью к инфицированию ВИЧ. Гомозиготными носителями делеционного аллеля являются около 1% белого населения [1, 2]. Известен успешный случай трансплантации гемопоэтических стволовых клеток (ТГСК) периферической крови в 2007 году в Германии ВИЧ-инфицированному пациенту с острым миелоидным лейкозом от донора, гомозиготного носителя полиморфизма CCR5 delta 32 [3, 4]. Однако несмотря на успешность проведенного лечения, это был лишь единичный случай и в последующем ни одной ТГСК для лечения ВИЧ-инфекции не было проведено вследствие редкой встречаемости полиморфизма CCR5 delta 32 и строгими условиями подбора образцов костного мозга и периферической крови по системе HLA. В то же время гемопоэтические стволовые клетки (ГСК) пуповинной крови с генотипом CCR5 delta 32/delta 32 могли бы со значительно большей вероятностью быть использованы для проведения трансплантации при ВИЧ-инфекции в связи со значительно менее строгими требованиями подбора образца по системе HLA [5].Human Immunodeficiency Virus (HIV) penetrates cells by binding the gp 120 viral envelope glycoprotein to CD4 and CCR5 membrane receptors. Simultaneous expression of CD4 and CCR5 receptors is found on T-lymphocytes, monocytes, macrophages and dendritic cells. The CCR5 protein is encoded by the CCR5 gene located on the short arm of chromosome 3 at position 21 (3p21). There is a CCR5 delta 32 polymorphism, which is a deletion of 32 nucleotide pairs in the coding region of the CCR5 gene. As a result of expression of the mutant gene in a homozygous state, a truncated, functionally inactive CCR5 protein is translated. As a result, homozygous carriers of this polymorphism have almost complete resistance to HIV infection. About 1% of the white population are homozygous carriers of the deletion allele [1, 2]. A successful case of transplantation of hematopoietic stem cells (HSCT) of peripheral blood in 2007 in Germany to an HIV-infected patient with acute myeloid leukemia from a donor, a homozygous carrier of CCR5 delta 32 polymorphism, is known [3, 4]. However, despite the success of the treatment, this was only an isolated case, and subsequently not a single HSCT for the treatment of HIV infection was carried out due to the rare occurrence of CCR5 delta 32 polymorphism and strict conditions for the selection of bone marrow and peripheral blood samples using the HLA system. At the same time, umbilical cord blood hematopoietic stem cells (HSCs) with the genotype CCR5 delta 32 / delta 32 could be much more likely to be used for transplantation during HIV infection due to significantly less stringent requirements for sample selection using the HLA system [5] .

В настоящее время в Российской Федерации представлено незначительное количество тест-систем для детекции мутации CCR5 delta 32. Доступные диагностические тест-системы обладают высокой стоимостью, для проведения исследований требуется наличие дорогостоящего оборудования. Кроме того, на данные диагностические тест-системы не получены сертификаты соответствия, что предполагает применение этих наборов только для научных целей и не допускает использование этих наборов в любых видах диагностических процедур. Пример - комплект реагентов «АмплиСенс CCR5del32-скрин» для определения полиморфизма CCR5 delta 32 методом пиросеквенирования.Currently, a small number of test systems for the detection of CCR5 delta 32 mutations are presented in the Russian Federation. Available diagnostic test systems are expensive, expensive equipment is required for research. In addition, certificates of conformity were not received for these diagnostic test systems, which implies the use of these sets only for scientific purposes and does not allow the use of these sets in any types of diagnostic procedures. An example is AmpliSens CCR5del32-screen reagent kit for determining CCR5 delta 32 polymorphism by pyrosequencing.

Существуют способы определения аллельного полиморфизма CCR5 delta 32 методом аллель-специфичной ПЦР в реальном времени [5, 6].There are methods for determining allelic polymorphism of CCR5 delta 32 by real-time allele-specific PCR [5, 6].

В качестве прототипа можно рассматривать способ определения аллельного полиморфизма CCR5 delta 32, основанный на использовании метода ПЦР с рестрикционным анализом продуктов амплификации (ПЦР-ПДРФ) [7].As a prototype, we can consider a method for determining allelic polymorphism CCR5 delta 32, based on the use of PCR with restriction analysis of amplification products (PCR-RFLP) [7].

К недостаткам способа, выбранного нами в качестве прототипа, а также вышеуказанных аналогов, можно отнести то, что данные способы отличаются необходимостью использования дополнительных этапов анализа, реагентов и оборудования для проведения исследования, что увеличивает себестоимость метода, трудоемкость и время проведения анализа и не позволяет использовать данный метод для проведения скринингового обследования.The disadvantages of the method that we have chosen as a prototype, as well as the above analogues, include the fact that these methods are characterized by the need to use additional stages of analysis, reagents and equipment for the study, which increases the cost of the method, the complexity and time of the analysis and does not allow the use of this method for screening.

Техническим результатом изобретения является упрощение способа определения аллельного полиморфизма CCR5 delta 32, сокращение времени его проведения и снижение его себестоимости, что обеспечит возможность проведения скринингового обследования.The technical result of the invention is to simplify the method for determining allelic polymorphism CCR5 delta 32, reducing the time it takes and reducing its cost, which will provide the opportunity for screening.

Технический результат изобретения достигается тем, что способ определения аллельного полиморфизма CCR5 delta 32 заключается в выделении ДНК, проведении ПЦР, детекции продукта реакции с использованием электрофореза, при этом ДНК выделяют из криоконсервированной пуповинной крови, а при проведении ПЦР используют следующие праймеры:The technical result of the invention is achieved by the fact that the method for determining allelic polymorphism CCR5 delta 32 consists in the isolation of DNA, PCR, detection of the reaction product using electrophoresis, while DNA is isolated from cryopreserved umbilical cord blood, and the following primers are used for PCR:

F: TGTGTTTGCGTCTCTCCCAF: TGTGTTTGCGTCTCTCCCA

R: CTCTTCTTCTCATTTCGACACCG,R: CTCTTCTTCTCATTTCGACACCG,

ПЦР проводят при 94°C в течение 5 мин, затем проводят 35 циклов, каждый из которых состоит из 3-х этапов: 94°C - 30 с, 56°C - 40 с, 72°C - 40 с. После чего проводят ПЦР при 72°C - 10 мин и 15°C - 5 мин. Детекцию полиморфизма осуществляют в 8% полиакриламидном геле с применением вертикального электрофореза. Наличие специфических ДНК-фрагментов определяют после электрофоретического разделения ПЦР-амплификационной смеси и окрашивания геля бромистым этидием с помощью трансиллюминатора. Длина ПЦР фрагментов составляет 224 п.н. при нормальном варианте гена и 192 п.н. при аллельном полиморфизме CCR5 delta 32.PCR is carried out at 94 ° C for 5 min, then 35 cycles are carried out, each of which consists of 3 stages: 94 ° C - 30 s, 56 ° C - 40 s, 72 ° C - 40 s. Then, PCR is carried out at 72 ° C for 10 minutes and 15 ° C for 5 minutes. The polymorphism is detected in an 8% polyacrylamide gel using vertical electrophoresis. The presence of specific DNA fragments is determined after electrophoretic separation of the PCR amplification mixture and staining the gel with ethidium bromide using a transilluminator. The length of the PCR fragments is 224 bp in the normal version of the gene and 192 bp with allelic polymorphism CCR5 delta 32.

Способ осуществляется следующим образом:The method is as follows:

Перед постановкой реакции криоконсервированную при -70°C пуповинную кровь в микропробирках типа Эппендорф размораживают при комнатной температуре в течение 20-40 мин. Геномную ДНК выделяют из 0,9-1,0 мл пуповинной крови с использованием коммерческих наборов Protrans (Германия) или Axygen (США). Скрининговое исследование образцов на CCR5 delta 32 аллель проводят методом ПЦР. ДНК амплифицируют в конечном объеме реакционной смеси 20 мкл. Реакционная смесь содержит 10-кратный буфер для Taq-полимеразы, 2 мМ MgCl2, 2 мМ каждого дезоксинуклеозидтрифосфата (dNTP), прямой и обратный праймеры (по 30 нг каждого), 0,1 Ед Taq-полимеразы, 40-120 нг исследуемой геномной ДНК. Используют следующие праймеры, фланкирующие делеционный сайт:Prior to the reaction, cryopreserved umbilical cord blood at -70 ° C is thawed in Eppendorf type microtubes at room temperature for 20–40 min. Genomic DNA is isolated from 0.9-1.0 ml of umbilical cord blood using commercial kits Protrans (Germany) or Axygen (USA). Screening of samples for CCR5 delta 32 allele is carried out by PCR. DNA is amplified in a final volume of the reaction mixture of 20 μl. The reaction mixture contains a 10-fold buffer for Taq polymerase, 2 mm MgCl 2 , 2 mm each deoxynucleoside triphosphate (dNTP), direct and reverse primers (30 ng each), 0.1 Units Taq polymerase, 40-120 ng of the studied genomic DNA The following primers flanking the deletion site are used:

F: TGTGTTTGCGTCTCTCCCAF: TGTGTTTGCGTCTCTCCCA

R: CTCTTCTTCTCATTTCGACACCG.R: CTCTTCTTCTCATTTCGACACCG.

ПЦР проводят в амплификаторе Biorad My Cycler Version 1.065. Условия реакции: 94°C - 5 мин; далее 94°C - 30 с, 56°C - 40 с, 72°C - 40 с в течение 35 циклов; затем 72°C - 10 мин и 15°C - 5 мин. Детекцию полиморфизма осуществляют в 8% полиакриламидном геле с применением вертикального электрофореза. Наличие специфических ДНК-фрагментов определяют после электрофоретического разделения ПЦР-амплификационной смеси и окрашивания геля бромистым этидием с помощью трансиллюминатора. Длина ПЦР фрагментов составляет 224 п.н. при нормальном варианте гена и 192 п.н. при аллельном полиморфизме CCR5 delta 32.PCR is carried out in a Biorad My Cycler Version 1.065 thermocycler. Reaction conditions: 94 ° C - 5 min; further 94 ° C - 30 s, 56 ° C - 40 s, 72 ° C - 40 s for 35 cycles; then 72 ° C for 10 minutes and 15 ° C for 5 minutes. The polymorphism is detected in an 8% polyacrylamide gel using vertical electrophoresis. The presence of specific DNA fragments is determined after electrophoretic separation of the PCR amplification mixture and staining the gel with ethidium bromide using a transilluminator. The length of the PCR fragments is 224 bp in the normal version of the gene and 192 bp with allelic polymorphism CCR5 delta 32.

Электрофореграмма продуктов амплификации представлена на Фиг. 1:An electrophoregram of amplification products is shown in FIG. one:

1 - гетерозиготное носительство полиморфизма CCR5 delta 32;1 - heterozygous carriage of polymorphism CCR5 delta 32;

2 - нормальный тип гена CCR5;2 - normal type of CCR5 gene;

3 - полиморфизм CCR5 delta 32 в гомозиготном состоянии.3 - polymorphism CCR5 delta 32 in the homozygous state.

Существенными отличительными признаками заявляемого способа являются:Salient features of the proposed method are:

- при проведении ПЦР используют следующие праймеры:- when conducting PCR, the following primers are used:

F: TGTGTTTGCGTCTCTCCCAF: TGTGTTTGCGTCTCTCCCA

R: CTCTTCTTCTCATTTCGACACCG;R: CTCTTCTTCTCATTTCGACACCG;

- ПЦР проводят при 94°C в течение 5 мин, затем проводят 35 циклов, каждый из которых состоит из 3-х этапов: 94°C - 30 с, 56°C -40 с, 72°C - 40 с; после чего проводят ПЦР при 72°C - 10 мин и 15°C - 5 мин;- PCR is carried out at 94 ° C for 5 min, then 35 cycles are carried out, each of which consists of 3 stages: 94 ° C - 30 s, 56 ° C -40 s, 72 ° C - 40 s; then carry out PCR at 72 ° C for 10 minutes and 15 ° C for 5 minutes;

- длина ПЦР фрагментов составляет 224 п.н. при нормальном варианте гена;- the length of the PCR fragments is 224 bp in the normal version of the gene;

- аллельный полиморфизм CCR5 delta 32 определяется при наличии ПЦР-фрагментов размером 192 п.н.- allelic polymorphism CCR5 delta 32 is determined in the presence of PCR fragments of 192 bp in size.

Причинно-следственная связь между существенными отличительными признаками и достигаемым результатом:A causal relationship between the salient features and the result:

Дизайн специфичных праймеров разработан с использованием биоинформационной базы данных NCBI (http://www.ncbi.nlm.). Подобраны оптимальные условия для прохождения ПЦР - длина праймеров, температура отжига, длина ДНК-амплификата, соотношение нуклеотидов. Произведена проверка пары праймеров на возможность образования димеров, дуплексов, шпилек. Результаты подтверждены прямым секвенированием с использованием секвенатора CEQ 8800 (Beckman Coulter, США).The design of specific primers was developed using the NCBI bioinformation database (http://www.ncbi.nlm.). Optimum conditions for PCR were selected — length of primers, annealing temperature, length of DNA amplification, nucleotide ratio. A pair of primers was tested for the possibility of the formation of dimers, duplexes, studs. The results were confirmed by direct sequencing using a CEQ 8800 sequencer (Beckman Coulter, USA).

Пример конкретного выполнения способа:An example of a specific implementation of the method:

Пример 1Example 1

Амплификация проводилась в объеме 18 мкл. Состав реакционной смеси: 14,5 мкл бидистиллированной воды, 2 мкл буфера для полимеразы (Taq буфер, 10-кратный, pH 8.6, без Mg2+), 1,2 мкл 25 мМ MgCl2, 2 мкл смеси прямого и обратного праймеров (50 нг каждого праймера), 0,4 мкл смеси дезоксинуклеозидтрифосфатов (10 mM dNTP), 0,1 мкл Taq-полимеразы (1 единица активности), 2 мкл анализируемой геномной ДНК (40-120 нг). ПЦР проводилась в амплификаторе Biorad My Cycler Version 1.065. Условия реакции: 94°C - 5 мин; далее 94°C - 30 с, 56°C - 40 с, 72°C - 40 с в течение 35 циклов; затем 72°C - 10 мин и 15°C - 5 мин. Детекция полиморфизма осуществлялась в 8% полиакриламидном геле с применением вертикального электрофореза. Наличие специфических ДНК-фрагментов определяли после электрофоретического разделения ПЦР-амплификационной смеси и окрашивания геля бромистым этидием с помощью трансиллюминатора. Длина ПЦР фрагментов составляла 224 п. н. при нормальном варианте гена и 192 п.н. при аллельном полиморфизме CCR5 delta 32.Amplification was carried out in a volume of 18 μl. Composition of the reaction mixture: 14.5 μl bidistilled water, 2 μl polymerase buffer (Taq buffer, 10-fold, pH 8.6, without Mg2 +), 1.2 μl 25 mM MgCl 2, 2 μl direct and reverse primer mixture (50 ng each primer), 0.4 μl of a mixture of deoxynucleoside triphosphates (10 mM dNTP), 0.1 μl of Taq polymerase (1 unit of activity), 2 μl of the analyzed genomic DNA (40-120 ng). PCR was performed in a Biorad My Cycler Version 1.065 amplifier. Reaction conditions: 94 ° C - 5 min; further 94 ° C - 30 s, 56 ° C - 40 s, 72 ° C - 40 s for 35 cycles; then 72 ° C for 10 minutes and 15 ° C for 5 minutes. The polymorphism was detected in an 8% polyacrylamide gel using vertical electrophoresis. The presence of specific DNA fragments was determined after electrophoretic separation of the PCR amplification mixture and the gel was stained with ethidium bromide using a transilluminator. The length of the PCR fragments was 224 bp in the normal version of the gene and 192 bp with allelic polymorphism CCR5 delta 32.

Длины фрагментов, получаемые при генотипировании аллельного полиморфизма:Fragment lengths obtained by genotyping of allelic polymorphism:

Figure 00000001
Figure 00000001

В процессе скринингового исследования детекции аллельного полиморфизма CCR5 delta32 обследовано 2960 образцов пуповинной крови общественного регистра. В результате исследования выявлен 31 образец с генотипом CCR5 delta 32/delta 32, что составило 1,05%. В 534 образцах аллельный полиморфизм CCR5 delta 32 присутствовал в гетерозиготном состоянии (18,04%).During the screening study of the detection of CCR5 delta32 allelic polymorphism, 2960 public register cord blood samples were examined. The study revealed 31 samples with the genotype CCR5 delta 32 / delta 32, which amounted to 1.05%. In 534 samples, the allelic polymorphism CCR5 delta 32 was present in the heterozygous state (18.04%).

Таким образом, заявляемый способ определения аллельного полиморфизма CCR5 delta 32 методом ПЦР по сравнению с прототипом снижает трудоемкость и сокращает время проведения исследования, уменьшает себестоимость анализа за счет отсутствия дополнительного этапа исследования (этапа рестрикционного анализа продуктов амплификации), при этом не возникает необходимости в приобретении дополнительных реагентов, в частности дорогостоящей рестриктазы. Данный метод может быть использован для проведения скринингового обследования на носительство аллельного полиморфизма CCR5 delta 32.Thus, the inventive method for determining allelic polymorphism CCR5 delta 32 by PCR compared with the prototype reduces the complexity and the time of the study, reduces the cost of the analysis due to the absence of an additional stage of the study (stage restriction analysis of amplification products), without the need to purchase additional reagents, in particular expensive restrictase. This method can be used for screening for carriage of allelic polymorphism CCR5 delta 32.

Источники информацииInformation sources

1. Deng, Н. Identification of a major co-receptor for primary isolates of HIV-1 / H. Deng, R. Liu, W. Ellmeier [et al.] // Nature. - 1996. - Vol. 381. - P. 661-666.1. Deng, H. Identification of a major co-receptor for primary isolates of HIV-1 / H. Deng, R. Liu, W. Ellmeier [et al.] // Nature. - 1996. - Vol. 381. - P. 661-666.

2. Dragic, T. HIV-1 entry into CD4+ cells is mediated by the chemokine receptor CC-CKR-5 / T. Dragic, V. Litwin, G.P. Allaway [et al.] // Nature. - 1996. - Vol. 381. - P. 667-673.2. Dragic, T. HIV-1 entry into CD4 + cells is mediated by the chemokine receptor CC-CKR-5 / T. Dragic, V. Litwin, G.P. Allaway [et al.] // Nature. - 1996. - Vol. 381. - P. 667-673.

3. Hutter, G. Long-Term Control of HIV by CCR5 Delta32/Delta32 Stem-Cell Transplantation / G. Hutter, D. Nowak, M. Mossner // N. Engl. J. Med. - 2009. - Vol. 360. - P. 692-698.3. Hutter, G. Long-Term Control of HIV by CCR5 Delta32 / Delta32 Stem-Cell Transplantation / G. Hutter, D. Nowak, M. Mossner // N. Engl. J. Med. - 2009. - Vol. 360. - P. 692-698.

4. Alters, K. Evidence for the cure of HIV infection by CCR5Δ32/Δ32 stem cell transplantation / K. Allers, G. Hütter, J. Hofmann // Blood. - 2011. - Vol. 117, №10. - P. 2791-2799.4. Alters, K. Evidence for the cure of HIV infection by CCR5Δ32 / Δ32 stem cell transplantation / K. Allers, G. Hütter, J. Hofmann // Blood. - 2011 .-- Vol. 117, No. 10. - P. 2791-2799.

5. Petz, L.D. Hematopoietic Cell Transplantation with Cord Blood for Cure of HIV Infections / L.D. Petz, I. Redei, Y. Bryson [et al.] // Biol. Blood Marrow Transplant. - 2013. - Vol. 19, №3. - P. 393-397.5. Petz, L.D. Hematopoietic Cell Transplantation with Cord Blood for Cure of HIV Infections / L.D. Petz, I. Redei, Y. Bryson [et al.] // Biol. Blood Marrow Transplant. - 2013 .-- Vol. 19, No. 3. - P. 393-397.

6. Кофиади И.А. Распределение аллелей генов CCR5, CCR2 и SDF1, ассоциированных с устойчивостью к ВИЧ-инфекции, в Российских популяциях / И.А. Кофиади, Д.В. Ребриков, Д.Ю. Трофимов [и др.] // Доклады академии наук. - 2007. - Т. 415, №6. - С. 842-845.6. Kofiadi I.A. Distribution of alleles of CCR5, CCR2 and SDF1 genes associated with resistance to HIV infection in Russian populations / I.A. Kofiadi, D.V. Rebrikov, D.Yu. Trofimov [et al.] // Reports of the Academy of Sciences. - 2007. - T. 415, No. 6. - S. 842-845.

7. Патент RU 2249619 C2, 23.04.2003 г. Способ одновременного определения мутаций CCR5del32 и CCR5M303 в гене CCR5 человека, обуславливающих генетическую устойчивость обследуемых к инфицированию вирусом иммунодефицита человека первого типа (ВИЧ1). Рахманалиев Э.Р., Апрятин С.А., Николаева И.А., Климов Е.А., Сулимова Г.Е., Сидорович И.Г7. Patent RU 2249619 C2, 04/23/2003. A method for the simultaneous determination of mutations CCR5del32 and CCR5M303 in the human CCR5 gene, which determine the genetic resistance of the examined to infection with the human immunodeficiency virus of the first type (HIV1). Rakhmanaliev E.R., Apryatin S.A., Nikolaeva I.A., Klimov E.A., Sulimova G.E., Sidorovich I.G.

Claims (1)

Способ определения аллельного полиморфизма CCR5 delta 32, заключающийся в выделении ДНК, проведении полимеразной цепной реакции (ПЦР), детекции продукта реакции с использованием электрофореза, отличающийся тем, что ДНК выделяют из криоконсервированной пуповинной крови, а при проведении ПЦР используют следующие праймеры:
F: TGTGTTTGCGTCTCTCCCA
R: CTCTTCTTCTCATTTCGACACCG
и ПЦР проводят при 94°C в течение 5 мин, затем проводят 35 циклов, каждый из которых состоит из 3-х этапов: 94°C - 30 с, 56°C - 40 с, 72°C - 40 с, после чего проводят ПЦР при 72°C - 10 мин и 15°C - 5 мин; детекцию полиморфизма осуществляют в 8% полиакриламидном геле с применением вертикального электрофореза; наличие специфических ДНК-фрагментов определяют после электрофоретического разделения ПЦР-амплификационной смеси и окрашивания геля бромистым этидием с помощью трансиллюминатора, длина ПЦР фрагментов составляет 224 п.н. при нормальном варианте гена и 192 п.н. при аллельном полиморфизме CCR5 delta 32.
The method for determining the allelic polymorphism CCR5 delta 32, which consists in the isolation of DNA, polymerase chain reaction (PCR), detection of the reaction product using electrophoresis, characterized in that the DNA is isolated from cryopreserved umbilical cord blood, and the following primers are used for PCR:
F: TGTGTTTGCGTCTCTCCCA
R: CTCTTCTTCTCATTTCGACACCG
and PCR is carried out at 94 ° C for 5 min, then 35 cycles are carried out, each of which consists of 3 stages: 94 ° C - 30 s, 56 ° C - 40 s, 72 ° C - 40 s, after which PCR is performed at 72 ° C for 10 minutes and 15 ° C for 5 minutes; polymorphism is detected in an 8% polyacrylamide gel using vertical electrophoresis; the presence of specific DNA fragments is determined after electrophoretic separation of the PCR amplification mixture and staining the gel with ethidium bromide using a transilluminator; the length of the PCR fragments is 224 bp in the normal version of the gene and 192 bp with allelic polymorphism CCR5 delta 32.
RU2014145497/15A 2014-11-12 2014-11-12 METHOD FOR DETERMINING CCR5 delta 32 ALLELE POLYMORPHISM RU2563172C1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2014145497/15A RU2563172C1 (en) 2014-11-12 2014-11-12 METHOD FOR DETERMINING CCR5 delta 32 ALLELE POLYMORPHISM

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2014145497/15A RU2563172C1 (en) 2014-11-12 2014-11-12 METHOD FOR DETERMINING CCR5 delta 32 ALLELE POLYMORPHISM

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2563172C1 true RU2563172C1 (en) 2015-09-20

Family

ID=54147707

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2014145497/15A RU2563172C1 (en) 2014-11-12 2014-11-12 METHOD FOR DETERMINING CCR5 delta 32 ALLELE POLYMORPHISM

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2563172C1 (en)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2748998C1 (en) * 2020-10-27 2021-06-02 Федеральное государственное автономное образовательное учреждение высшего образования "Российский национальный исследовательский медицинский университет имени Н.И. Пирогова" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ФГАОУ ВО РНИМУ им. Н.И. Пирогова Минздрава России) Kit for determining ccr5delta32 mutations in human genome

Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2001021832A1 (en) * 1999-09-23 2001-03-29 Isis Innovation Limited Susceptibility gene for inflammatory bowel disease
RU2249619C2 (en) * 2003-04-23 2005-04-10 Рахманалиев Элиан Рустаналиевич Method for simultaneous detection of ccr5del32 and ccr5m303 mutations in humane ccr5 gene causing gene resistance of subjects to infection by human immunodeficiency virus of type 1 (hiv1)
US20050220772A1 (en) * 2001-11-29 2005-10-06 Sterncyte, Inc. Stem cell screening and transplantation therapy for hiv infection

Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2001021832A1 (en) * 1999-09-23 2001-03-29 Isis Innovation Limited Susceptibility gene for inflammatory bowel disease
US20050220772A1 (en) * 2001-11-29 2005-10-06 Sterncyte, Inc. Stem cell screening and transplantation therapy for hiv infection
RU2249619C2 (en) * 2003-04-23 2005-04-10 Рахманалиев Элиан Рустаналиевич Method for simultaneous detection of ccr5del32 and ccr5m303 mutations in humane ccr5 gene causing gene resistance of subjects to infection by human immunodeficiency virus of type 1 (hiv1)

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
LIM J.K. et al. CCR5 deficiency is a risk factor for early clinical manifestations of West Nile virus infection but not for viral transmission. J Infect Dis. 2010 Jan 15; 201(2): 178-185 [Найдено 25.05.2015] [он-лайн]. Найдено из Интернет: URL: http://jid.oxfordjournals.org/content/201/2/178.full.pdf. *

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2748998C1 (en) * 2020-10-27 2021-06-02 Федеральное государственное автономное образовательное учреждение высшего образования "Российский национальный исследовательский медицинский университет имени Н.И. Пирогова" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ФГАОУ ВО РНИМУ им. Н.И. Пирогова Минздрава России) Kit for determining ccr5delta32 mutations in human genome

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Fitness et al. Large-scale candidate gene study of tuberculosis susceptibility in the Karonga district of northern Malawi.
Reddy et al. APOBEC3G expression is dysregulated in primary HIV-1 infection and polymorphic variants influence CD4+ T-cell counts and plasma viral load
Hou et al. Killer cell immunoglobulin-like receptors (KIR) typing by DNA sequencing
Argiropoulos et al. Linkage of Meis1 leukemogenic activity to multiple downstream effectors including Trib2 and Ccl3
CN101928776B (en) Reagent for PCR-SBT method for HLA genotyping
Voevodin et al. Frequencies of SDF‐1 chemokine, CCR‐5, and CCR‐2 chemokine receptor gene alleles conferring resistance to human immunodeficiency virus type 1 and AIDS in Kuwaitis
Zhang et al. Killer cell immunoglobulin-like receptor gene polymorphisms in patients with leukemia: possible association with susceptibility to the disease
Lazaros et al. Retrotransposon expression and incorporation of cloned human and mouse retroelements in human spermatozoa
Houtchens et al. High-throughput killer cell immunoglobulin-like receptor genotyping by MALDI-TOF mass spectrometry with discovery of novel alleles
RU2563172C1 (en) METHOD FOR DETERMINING CCR5 delta 32 ALLELE POLYMORPHISM
Fernández-Torres et al. The ancestry of the HLA–DRB1∗ 15 allele predisposes the Mexican mestizo to the development of aplastic anemia
Zhang et al. Association of polymorphisms in PATE1 gene with idiopathic asthenozoospermia in Sichuan, China
US10407727B2 (en) Donor KIR3DL1 and HLA-B subtypes and leukemia control in HLA-compatible allogenic hematopoietic stem cell transplantation
CN117925802B (en) Primer composition for HLA-I and HPA multiplex PCR, application and genotyping method
Ma et al. Distribution of CCR2-64I and SDF1-3′ A alleles and HIV status in 7 ethnic populations of Cameroon
Marcé et al. A thirty-five nucleotides BCR-ABL1 insertion mutation of controversial significance confers resistance to imatinib in a patient with chronic myeloid leukemia (CML)
US9963742B2 (en) KIR3DL1 allele classification kit and method
Gonzalez et al. Identification and frequency of CCR5Δ32/Δ32 HIV‐resistant cord blood units from Houston area hospitals
Sorokina et al. Detection of CCR5Δ32 Mutant Alleles in Heterogeneous Cell Mixtures Using Droplet Digital PCR
US11453908B2 (en) Methods and kits for typing KIR2DL alleles
Nishi et al. Detection of a novel X-chromosomal short tandem repeat marker in Xq28 in four ethnic groups
Horio et al. The recipient CCR5 variation predicts survival outcomes after bone marrow transplantation
RU2804111C1 (en) Set of oligonucleotide primers for determining methylation of human ccr5 gene promoter in samples of biological material that has undergone preliminary bisulfite conversion using pyrosequencing
Wu et al. Allele frequencies of seven X-linked STR loci in Chinese Han population from Zhejiang Province
Bogunia-Kubik et al. Beneficial effect of the CXCL12-3′ A variant for patients undergoing hematopoietic stem cell transplantation from unrelated donors

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A The patent is invalid due to non-payment of fees

Effective date: 20161113

NF4A Reinstatement of patent

Effective date: 20180316