[go: up one dir, main page]

RU2439156C2 - Method of obtaining ribonucleic acid - Google Patents

Method of obtaining ribonucleic acid Download PDF

Info

Publication number
RU2439156C2
RU2439156C2 RU2009143035/10A RU2009143035A RU2439156C2 RU 2439156 C2 RU2439156 C2 RU 2439156C2 RU 2009143035/10 A RU2009143035/10 A RU 2009143035/10A RU 2009143035 A RU2009143035 A RU 2009143035A RU 2439156 C2 RU2439156 C2 RU 2439156C2
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
solution
rna
parts
solution containing
units
Prior art date
Application number
RU2009143035/10A
Other languages
Russian (ru)
Other versions
RU2009143035A (en
Inventor
Владимир Иванович Евтушенко (RU)
Владимир Иванович Евтушенко
Original Assignee
Федеральное Государственное Учреждение Российский Научный Центр Радиологии И Хирургических Технологий Министерства Здравоохранения И Социального Развития Российской Федерации
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Федеральное Государственное Учреждение Российский Научный Центр Радиологии И Хирургических Технологий Министерства Здравоохранения И Социального Развития Российской Федерации filed Critical Федеральное Государственное Учреждение Российский Научный Центр Радиологии И Хирургических Технологий Министерства Здравоохранения И Социального Развития Российской Федерации
Priority to RU2009143035/10A priority Critical patent/RU2439156C2/en
Publication of RU2009143035A publication Critical patent/RU2009143035A/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2439156C2 publication Critical patent/RU2439156C2/en

Links

Images

Landscapes

  • Saccharide Compounds (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
  • Medicinal Preparation (AREA)

Abstract

FIELD: medicine.
SUBSTANCE: to 1 part of water solution, which contains 1 mg/ml of plasmid DNA, added are 10 parts of water and 1 part of suspension, containing 4 g/ml of superparamagnetic parts of magnetite. After that into obtained solution added is 1 part of buffer solution with pH 7.5, 2 parts of 0.005 M solution of ribonucleotidetriphpsphates, 2 parts of 0.1 M of dithiotreitole, 1 part of solution, containing 2 mg/ml of bovine serum albumin, 1 part of solution, which contains 10 units of RNAase inhibitor and 1 part of solution, which contains 10 units of PNA-polymerase of T3 or T7 or SP6 bacteriophage. Obtained mixture is incubated for not less than 1 hour at temperature +37°C and placed into magnetic field with intensity not less than 0.2 T for 1-3 minutes. After that water phase, containing target RNA is decanted.
EFFECT: RNA, obtained by claimed method, is of high quality and is suitable for molecular-biological studies of gene structure and functions, as well as for diagnostic and therapeutic purposes in medical practice.
2 cl, 1 dwg, 1 ex

Description

Изобретение относится к медицине, а именно к молекулярной генетике, и может найти применение в диагностике и терапии бактериальных и вирусных инфекций.The invention relates to medicine, namely to molecular genetics, and may find application in the diagnosis and treatment of bacterial and viral infections.

В клетках живых организмов рибонуклеиновая кислота (РНК) выполняет исключительно важную роль посредника в передаче генетической информации от ДНК к белку. На матрице геномной ДНК клеточные РНК-полимеразы синтезируют информационную РНК, которая в свою очередь является матрицей для синтеза молекулы белка на рибосомах. Так осуществляется синтез РНК in vivo. Большим достижением молекулярной генетики является разработка системы синтеза РНК in vitro, которая позволяет получать в препаративных количествах информационную РНК индивидуальных генов. В основе получения РНК in vitro лежит способность очищенных РНК-полимераз бактериофагов Т3, Т7 и SP6 синтезировать индивидуальную РНК на матрице рекомбинантной ДНК, содержащей промотор полимеразы и клонированный ген [Anal. Biochem., 1991, v.195, 207-213]. Метод получения РНК in vitro лег в основу создания высокочувствительных способов диагностики бактериальных и вирусных инфекции, таких как NASBA (nucleic acid-based amplification) [Anal. Biochem., 1991, v.195, 207-213] и ТМА (transcription-mediated amplification) [Hepatology, 2006, v.44, 360-367].In the cells of living organisms, ribonucleic acid (RNA) plays an extremely important role as a mediator in the transfer of genetic information from DNA to protein. On a genomic DNA matrix, cellular RNA polymerases synthesize messenger RNA, which in turn is a matrix for the synthesis of a protein molecule on ribosomes. So is the synthesis of RNA in vivo. A great achievement of molecular genetics is the development of an in vitro RNA synthesis system that allows the preparation of informational RNA of individual genes in preparative quantities. In vitro RNA production is based on the ability of purified RNA polymerases of bacteriophages T3, T7 and SP6 to synthesize individual RNA on a recombinant DNA matrix containing the polymerase promoter and the cloned gene [Anal. Biochem., 1991, v. 195, 207-213]. The in vitro method of obtaining RNA formed the basis for the creation of highly sensitive methods for the diagnosis of bacterial and viral infections, such as NASBA (nucleic acid-based amplification) [Anal. Biochem., 1991, v. 195, 207-213] and TMA (transcription-mediated amplification) [Hepatology, 2006, v. 44, 360-367].

В настоящее время получение РНК in vitro осуществляют как с помощью стандартных лабораторных методик [Molecular Cloning, A Laboratory Manual, 3d Edition. 2001. CSHL Press], так и с помощью коммерческих наборов, таких как MEGAscript (Ambion), Riboprobe (Promega), MiniV (Epicentre), HiScrine (New England Biolabs) и других, в состав которых входит стандартный набор реагентов: реакционный буфер, смесь четырех рибонуклеотидтрифосфатов, РНК-полимераза фага Т3, или Т7, или SP6, контрольная плазмидная ДНК, а также фермент ДНКаза 1 для удаления плазмидной ДНК из конечной реакционной смеси, содержащей синтезированную in vitro РНК. Общим недостатком всех известных на сегодняшний день способов получения РНК in vitro является необходимость удаления ДНК по окончании реакции, поскольку ДНК мешает последующему использованию полученной РНК. Для удаления ДНК применяют ферментативную обработку смеси ДНКазой 1 с последующей термической инактивацией ДНКазы 1 при +60°С или удалением ДНКазы 1 из реакционной смеси экстракцией ее смесью фенола и хлороформа 1:1. Оба способа инактивации ДНКазы 1 усложняют процедуру получения РНК и делают ее достаточно продолжительной. Кроме того, любая термическая обработка крайне нежелательна РНК, так как она является термолабильным веществом. Экстракция ДНКазы 1 смесью фенола и хлороформа приводит к уменьшению выхода РНК из-за ее потерь в органическом и промежуточном слоях. При этом даже малейшие примеси фермента РНКазы в препаратах в коммерческих препаратах ДНКазы 1, используемых для этой цели, приводят к частичной деградации полученной РНК, что существенно снижает ее качество.Currently, in vitro RNA production is carried out using standard laboratory techniques [Molecular Cloning, A Laboratory Manual, 3 d Edition. 2001. CSHL Press], and using commercial kits such as MEGAscript (Ambion), Riboprobe (Promega), MiniV (Epicentre), HiScrine (New England Biolabs) and others, which include a standard set of reagents: reaction buffer, a mixture of four ribonucleotide triphosphates, RNA polymerase of phage T3, or T7, or SP6, a control plasmid DNA, and a DNase 1 enzyme to remove plasmid DNA from the final reaction mixture containing in vitro synthesized RNA. A common drawback of all currently known in vitro RNA production methods is the need to remove DNA at the end of the reaction, since DNA interferes with subsequent use of the resulting RNA. To remove DNA, an enzymatic treatment of the mixture with DNase 1 is used followed by thermal inactivation of DNase 1 at + 60 ° C or removal of DNase 1 from the reaction mixture by extraction with a 1: 1 mixture of phenol and chloroform. Both methods of inactivation of DNase 1 complicate the procedure for obtaining RNA and make it quite long. In addition, any heat treatment is highly undesirable RNA, as it is a thermolabile substance. Extraction of DNase 1 with a mixture of phenol and chloroform leads to a decrease in the yield of RNA due to its loss in the organic and intermediate layers. Moreover, even the smallest impurities of the RNase enzyme in preparations in commercial DNase 1 preparations used for this purpose lead to partial degradation of the resulting RNA, which significantly reduces its quality.

В качестве прототипа нами выбран способ получения РНК с помощью лабораторной методики [Molecular Cloning, A Laboratory Manual, 3d Edition. 2001. CSHL Press]. Способ заключается в том, что к 1 мкл водного раствора, содержащего 1 мг/мл плазмидной ДНК, добавляют 10 мкл воды, 1 мкл буферного раствора с рН 7,5, 2 мкл 0,005 М раствора рибонуклеотидтрифосфатов, 2 мкл 0,1 М раствора дитиотреитола, 1 мкл раствора, содержащего 2 мг/мл бычьего сывороточного альбумина, 1 мкл раствора, содержащего 10 единиц ингибитора РНКазы и 1 мкл раствора, содержащего 10 единиц РНК-полимеразы бактериофага Т3, или Т7, или SP6, после чего инкубируют полученную смесь 1 час при температуре +37°С. По окончании инкубации в смесь добавляют 1 мкл раствора, содержащего 10 мг/мл ДНКазы 1, инкубируют 15 мин при температуре +37°С, затем добавляют 100 мкл воды и 120 мкл смеси фенола и хлороформа 1:1 и полученную суспензию экстрагируют, после чего водную и органическую фазы разделяют центрифугированием при 16000 g в течение 10 мин. Водную фазу декантируют и РНК из водной фазы осаждают добавлением 30 мкл 10 М раствора ацетата аммония и 250 мкл этанола и последующей инкубацией смеси во льду в течение 30 минут, после чего осадок РНК собирают центрифугированием при 16000 g в течение 10 мин. Осадок РНК растворяют в 100 мкл воды и таким образом получат раствор искомой РНК в очищенном виде.As a prototype, we have chosen a method for producing RNA using a laboratory technique [Molecular Cloning, A Laboratory Manual, 3 d Edition. 2001. CSHL Press]. The method consists in the fact that to 1 μl of an aqueous solution containing 1 mg / ml of plasmid DNA, add 10 μl of water, 1 μl of a buffer solution with a pH of 7.5, 2 μl of a 0.005 M solution of ribonucleotide triphosphates, 2 μl of a 0.1 M solution of dithiothreitol , 1 μl of a solution containing 2 mg / ml bovine serum albumin, 1 μl of a solution containing 10 units of an RNase inhibitor and 1 μl of a solution containing 10 units of RNA polymerase of the bacteriophage T3, or T7, or SP6, after which the resulting mixture is incubated for 1 hour at a temperature of + 37 ° C. At the end of the incubation, 1 μl of a solution containing 10 mg / ml DNase 1 was added to the mixture, incubated for 15 min at a temperature of + 37 ° С, then 100 μl of water and 120 μl of a 1: 1 mixture of phenol and chloroform were added and the resulting suspension was extracted, after which the aqueous and organic phases are separated by centrifugation at 16,000 g for 10 minutes. The aqueous phase is decanted and RNA is precipitated from the aqueous phase by adding 30 μl of a 10 M solution of ammonium acetate and 250 μl of ethanol, followed by incubation of the mixture in ice for 30 minutes, after which the RNA precipitate is collected by centrifugation at 16,000 g for 10 minutes. The RNA pellet was dissolved in 100 μl of water and thus a solution of the desired RNA was obtained in purified form.

Прототип представляет, таким образом, сложный и длительный процесс получения РНК, пригодной для молекулярно-биологических целей. В частности, для очистки РНК используют обработку реакционной смеси ферментом ДНКазой 1 для удаления плазмидной ДНК с последующим удалением этого фермента из реакционной смеси экстракцией смесью фенола и хлороформа, осаждением полученной РНК, центрифугированием и растворением ее в воде. Все это значительно усложняет способ получения РНК и удлиняет его.The prototype is, therefore, a complex and lengthy process for producing RNA suitable for molecular biological purposes. In particular, RNA purification uses the treatment of the reaction mixture with DNase 1 enzyme to remove plasmid DNA, followed by removal of this enzyme from the reaction mixture by extraction with a mixture of phenol and chloroform, precipitation of the resulting RNA, centrifugation and dissolution in water. All this greatly complicates the method of obtaining RNA and lengthens it.

Технический результат настоящего изобретения состоит в упрощении и ускорении получения РНК за счет иммобилизации плазмидной ДНК на суперпарамагнитных частицах магнетита и последующего удаления связанной ДНК посредством воздействия магнитного поля.The technical result of the present invention is to simplify and accelerate the production of RNA by immobilizing plasmid DNA on superparamagnetic particles of magnetite and subsequent removal of the bound DNA by means of a magnetic field.

Этот результат достигается тем, что в известном способе получения РНК, включающем добавление к 1 части водного раствора, содержащего 1 мг/мл плазмидной ДНК, 10 частей воды и 1 части буферного раствора с рН 7,5, 2 частей 0,005 М раствора рибонуклеотидтрифосфатов, 2 частей 0,1 М раствора дитиотреитола, 1 части раствора, содержащего 2 мг/мл бычьего сывороточного альбумина, 1 части раствора, содержащего 10 единиц ингибитора РНКазы, 1 части раствора, содержащего 10 единиц РНК-полимеразы бактериофага Т3, или Т7, или SP6, и последующую инкубацию реакционной смеси не менее 1 часа при температуре +37°С, согласно изобретению перед добавление буферного раствора с рН 7,5 к водному раствору плазмидной ДНК добавляют 1 часть суспензии, содержащей 4 г/мл суперпарамагнитных частиц магнетита, а после инкубации реакционную смесь помещают в магнитное поле напряженностью не менее 0,2 Тл на 1-3 минуты, после чего декантируют водную фазу, которая содержит искомую РНК.This result is achieved by the fact that in the known method of producing RNA, comprising adding to 1 part of an aqueous solution containing 1 mg / ml plasmid DNA, 10 parts of water and 1 part of a buffer solution with a pH of 7.5, 2 parts of a 0.005 M solution of ribonucleotide triphosphates, 2 parts of a 0.1 M solution of dithiothreitol, 1 part of a solution containing 2 mg / ml bovine serum albumin, 1 part of a solution containing 10 units of an RNase inhibitor, 1 part of a solution containing 10 units of RNA polymerase of the bacteriophage T3, or T7, or SP6, and subsequent incubation of the reaction mixture n less than 1 hour at a temperature of + 37 ° C, according to the invention, before adding a buffer solution with a pH of 7.5 to the aqueous solution of plasmid DNA add 1 part of a suspension containing 4 g / ml of superparamagnetic magnetite particles, and after incubation, the reaction mixture is placed in a magnetic field of intensity not less than 0.2 T for 1-3 minutes, after which the aqueous phase that contains the desired RNA is decanted.

Целесообразно в качестве буферного раствора с рН 7,5 использовать раствор, содержащий 0,4 М Трис (2-Амино-2-(гидроксиметил)-1,3-пропандиол), 0,06 М хлористого магния, 0,05 М хлористого натрия, 0,02 М спермидина.It is advisable as a buffer solution with a pH of 7.5 to use a solution containing 0.4 M Tris (2-amino-2- (hydroxymethyl) -1,3-propanediol), 0.06 M magnesium chloride, 0.05 M sodium chloride , 0.02 M spermidine.

Добавление суперпарамагнитных частиц магнетита к водному раствору плазмидной ДНК обеспечивает быстрое и эффективное связывание ее суперпарамагнитными частицами, в результате чего она сохраняет свои функциональные свойства, а именно - способность синтеза РНК. Поскольку плазмидная ДНК оказывается в связанном с суперпарамагнитными частицами состоянии, это дает возможность при последующем подведении к реакционной смеси магнитного поля быстро и полностью удалить ее из смеси. Это в свою очередь позволяет исключить из схемы получения РНК стадию ферментативной обработки смеси ДНКазной 1 с последующим ее удалением из реакционной смеси экстракцией смесью фенола и хлороформа. Все это значительно упрощает и сокращает процедуру получения РНК.Adding superparamagnetic particles of magnetite to an aqueous solution of plasmid DNA provides fast and efficient binding of its superparamagnetic particles, as a result of which it retains its functional properties, namely, the ability of RNA synthesis. Since plasmid DNA is in a state bound to superparamagnetic particles, this makes it possible to quickly and completely remove it from the mixture upon subsequent addition of a magnetic field to the reaction mixture. This, in turn, makes it possible to exclude from the RNA preparation scheme the stage of enzymatic treatment of the DNase 1 mixture with its subsequent removal from the reaction mixture by extraction with a mixture of phenol and chloroform. All this greatly simplifies and shortens the procedure for obtaining RNA.

Полученная таким образом РНК обладает высоким качеством и пригодна, как нами показано, для молекулярно-биологических исследований структуры и функций генов, а также в медицинской практике для диагностических и терапевтических целей.The RNA thus obtained is of high quality and is suitable, as we have shown, for molecular biological studies of the structure and functions of genes, as well as in medical practice for diagnostic and therapeutic purposes.

Сущность способа поясняется примеромThe essence of the method is illustrated by example.

ПримерExample

К 1 мкл водного раствора, содержащего 1 мкг плазмидной ДНК pTRI-Xef (Ambion), содержащей вставку кДНК фактора элонгации 1 из X. leavis размером 1700 пар оснований, добавляют 10 мкл воды и 1 мкл суспензии (4 г/мл) суперпарамагнитных частиц магнетита Fе3O4 [Fе2О3*FeO] размером 10-300 нм и встряхивают в течение 1-2 минут при температуре +20°С, после чего к смеси добавляют 1 мкл буферного раствора с рН 7,5 состава 0,4 М Трис (2-Амино-2-(гидроксиметил)-1,3-пропандиол), 0,06 М хлористого магния, 0,05 М хлористого натрия, 0,02 М спермидина, 2 мкл 0,005 М раствора рибонуклеотидтрифосфатов, 2 мкл 0,1 М раствора дитиотреитола, 1 мкл раствора, содержащего 2 мг/мл бычьего сывороточного альбумина, 1 мкл раствора, содержащего 10 единиц ингибитора РНКазы, 1 мкл раствора, содержащего 10 единиц РНК-полимеразы бактериофага Т3, или Т7, или SP6, и инкубируют 1 час при температуре +37°С. По окончании инкубации смесь помещают в магнитное поле напряженностью 0,4 Тл на 3 минуты, после чего водную фазу декантируют и определяют качество полученной РНК. Для этого проводят электрофорез аликвоты раствора в 1% агарозном геле (NuSieve GTG, FMC), содержащем стандартный трис-боратный буфер и 0,03 мг/мл бромистого этидия. Электрофорез проводят в течение 1 часа при постоянном напряжении 10 В/см. Затем осуществляют фотодокументацию и анализ геля в проходящем ультафиолетовом свете с длиной волны 312 нм (трансиллюминатор ЕСХ-15.М, Vibler Lourmat) с помощью цифровой системы EDAS 290 и программы 1D Image Analysis version 3.5 (Kodak Digital Science). Результаты представлены на чертеже, из которого видно, что количество и электрофоретический профиль РНК, полученной с использованием контрольной плазмидной ДНК pTRI-Xef (Ambion) в растворе (дорожка 1), и профиль РНК, полученной предлагаемым нами способом (дорожка 2), не отличаются, что свидетельствует о высоком качестве полученной РНК. Таким образом, полученная нами РНК пригодна для молекулярно-биологических исследований структуры и функций генов, а также в медицинской практике для диагностических и терапевтических целей.To 1 μl of an aqueous solution containing 1 μg of pTRI-Xef plasmid DNA (Ambion) containing an insertion of the elongation factor cDNA 1 from X. leavis with a size of 1700 base pairs, 10 μl of water and 1 μl of a suspension (4 g / ml) of superparamagnetic magnetite particles are added Fe 3 O 4 [Fe 2 O 3 * FeO] 10-300 nm in size and shaken for 1-2 minutes at a temperature of + 20 ° C, after which 1 μl of a buffer solution with a pH of 7.5 composition 0.4 M Tris (2-amino-2- (hydroxymethyl) -1,3-propanediol), 0.06 M magnesium chloride, 0.05 M sodium chloride, 0.02 M spermidine, 2 μl of a 0.005 M ribonucleotide triphosphate solution, 2 μl 0 ,one M solution of dithiothreitol, 1 μl of a solution containing 2 mg / ml bovine serum albumin, 1 μl of a solution containing 10 units of RNase inhibitor, 1 μl of a solution containing 10 units of RNA polymerase of bacteriophage T3, or T7, or SP6, and incubated for 1 hour at a temperature of + 37 ° C. At the end of the incubation, the mixture is placed in a magnetic field of 0.4 T for 3 minutes, after which the aqueous phase is decanted and the quality of the obtained RNA is determined. For this, an electrophoresis of an aliquot of the solution is carried out in a 1% agarose gel (NuSieve GTG, FMC) containing standard tris-borate buffer and 0.03 mg / ml ethidium bromide. Electrophoresis is carried out for 1 hour at a constant voltage of 10 V / cm. The gel is then photographed and analyzed in transmitted ultraviolet light at a wavelength of 312 nm (ECX-15M transilluminator, Vibler Lourmat) using the EDAS 290 digital system and 1D Image Analysis version 3.5 (Kodak Digital Science). The results are presented in the drawing, which shows that the amount and electrophoretic profile of RNA obtained using the control plasmid DNA pTRI-Xef (Ambion) in solution (lane 1) and the RNA profile obtained by our method (lane 2) do not differ , which indicates the high quality of the obtained RNA. Thus, the RNA we obtained is suitable for molecular biological studies of the structure and functions of genes, as well as in medical practice for diagnostic and therapeutic purposes.

Предлагаемый способ получения РНК по сравнению с известными имеет ряд существенных преимуществ.The proposed method for producing RNA in comparison with the known has several significant advantages.

1. Упрощает и ускоряет процедуру за счет иммобилизации плазмидной ДНК на суперпарамагнитных частицах магнетита и последующего удаления связанной ДНК посредством воздействия магнитного поля и таким образом исключения при очистке стадии РНК обработки реакционной смеси ферментом ДНКазной 1 и последующего удаления этого фермента из реакционной смеси экстракцией смесью фенола и хлороформа.1. Simplifies and accelerates the procedure by immobilizing plasmid DNA on superparamagnetic magnetite particles and subsequent removal of the bound DNA by means of a magnetic field and thus eliminating the purification of the RNA stage by treatment of the reaction mixture with DNase 1 enzyme and subsequent removal of this enzyme from the reaction mixture by extraction with a phenol mixture and chloroform.

2. Обеспечивает высокое качество получаемой РНК.2. Provides high quality RNA obtained.

Способ разработан в лаборатории генной инженерии ФГУ «РНЦРХТ». Получаемая РНК используется в дальнейшем для наработки РНК-стандарта при молекулярной диагностике гепатита С методом полимеразной цепной реакции с положительным результатом.The method was developed in the laboratory of genetic engineering of FGU "RSCRHT". The resulting RNA is used in the future to produce the RNA standard for the molecular diagnosis of hepatitis C by polymerase chain reaction with a positive result.

Claims (2)

1. Способ получения рибонуклеиновой кислоты (РНК), включающий добавление к 1 части водного раствора, содержащего 1 мг/мл плазмидной ДНК, 10 частей воды и 1 части буферного раствора с рН 7,5, 2 частей 0,005 М раствора рибонуклеотидтрифосфатов, 2 частей 0,1 М раствора дитиотреитола, 1 части раствора, содержащего 2 мг/мл бычьего сывороточного альбумина, 1 части раствора, содержащего 10 единиц ингибитора РНКазы, 1 части раствора, содержащего 10 единиц РНК-полимеразы бактериофага Т3, или Т7, или SP6, и последующую инкубацию реакционной смеси не менее 1 ч при температуре 37°С, отличающийся тем, что перед добавлением буферного раствора с рН 7,5 к водному раствору плазмидной ДНК добавляют 1 часть суспензии, содержащей 4 г/мл суперпарамагнитных частиц магнетита, а после инкубации реакционную смесь помещают в магнитное поле напряженностью не менее 0,2 Тл на 1-3 мин, после чего декантируют водную фазу, которая содержит искомую РНК.1. The method of producing ribonucleic acid (RNA), including adding to 1 part of an aqueous solution containing 1 mg / ml plasmid DNA, 10 parts of water and 1 part of a buffer solution with a pH of 7.5, 2 parts of a 0.005 M solution of ribonucleotide triphosphates, 2 parts 0 , 1 M solution of dithiothreitol, 1 part solution containing 2 mg / ml bovine serum albumin, 1 part solution containing 10 units of an RNase inhibitor, 1 part solution containing 10 units of RNA polymerase of the bacteriophage T3, or T7, or SP6, and the subsequent incubation of the reaction mixture for at least 1 h at a temperature round 37 ° С, characterized in that before adding a buffer solution with a pH of 7.5 to the aqueous solution of plasmid DNA add 1 part of a suspension containing 4 g / ml of superparamagnetic magnetite particles, and after incubation, the reaction mixture is placed in a magnetic field of at least 0 , 2 T for 1-3 minutes, after which the aqueous phase that contains the desired RNA is decanted. 2. Способ по п.1, отличающийся тем, что буферный раствор с рН 7,5 содержит 0,4 М трис(2-амино-2-(гидроксиметил)-1,3-пропандиол), 0,06 М хлористого магния, 0,05 М хлористого натрия, 0,02 М спермидина. 2. The method according to claim 1, characterized in that the buffer solution with a pH of 7.5 contains 0.4 M Tris (2-amino-2- (hydroxymethyl) -1,3-propanediol), 0.06 M magnesium chloride, 0.05 M sodium chloride; 0.02 M spermidine.
RU2009143035/10A 2009-11-24 2009-11-24 Method of obtaining ribonucleic acid RU2439156C2 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2009143035/10A RU2439156C2 (en) 2009-11-24 2009-11-24 Method of obtaining ribonucleic acid

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2009143035/10A RU2439156C2 (en) 2009-11-24 2009-11-24 Method of obtaining ribonucleic acid

Publications (2)

Publication Number Publication Date
RU2009143035A RU2009143035A (en) 2011-05-27
RU2439156C2 true RU2439156C2 (en) 2012-01-10

Family

ID=44734507

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2009143035/10A RU2439156C2 (en) 2009-11-24 2009-11-24 Method of obtaining ribonucleic acid

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2439156C2 (en)

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2555551C2 (en) * 2013-03-18 2015-07-10 Закрытое акционерное общество "Научно-производственная фирма ДНК-Технология" Method of extracting dna from blood cells
RU2777282C2 (en) * 2017-10-11 2022-08-02 Гринлайт Байосайенсис, Инк. Methods and compositions for the production of nucleoside triphosphate and ribonucleic acid

Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US20070148651A1 (en) * 2003-12-12 2007-06-28 Uwe Michelsen Method and kit for the isolation of rna

Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US20070148651A1 (en) * 2003-12-12 2007-06-28 Uwe Michelsen Method and kit for the isolation of rna

Non-Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
SAMBROOK J. ет al. Molecular Cloning // A Laboratory Manual (Third Edition)", 2001, изд-во Cold Spring Harbor Laboratory press. BERENSMEIER S. ет al. Magnetic particles for the separation and purification of nucleic acids // Appi Microbiol Biotechnol, 2006, v. 73, p.495-504. PALADICHUK A. et al. Isolating RNA: Pure and simple", 1999, The scientist 13[16]:20, найдено в интернете по адресу <URL: http://mcbl.iisc.ernet.in/Welcome%20to%20MCBL/Facultv/Parag/microarray%20workshop%20details/RNA%20isolation%20Kits.html. 21.07.2010. *
ПЕРШИНА А.Г. и др. Наноразмерный оксид олова - эффективный сорбент нуклеиновых кислот // Инновации РАН-2009. Материалы ежегодной научно-практической конференции. - 2009, стр.431-437. *

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2555551C2 (en) * 2013-03-18 2015-07-10 Закрытое акционерное общество "Научно-производственная фирма ДНК-Технология" Method of extracting dna from blood cells
RU2777282C2 (en) * 2017-10-11 2022-08-02 Гринлайт Байосайенсис, Инк. Methods and compositions for the production of nucleoside triphosphate and ribonucleic acid

Also Published As

Publication number Publication date
RU2009143035A (en) 2011-05-27

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US10858647B2 (en) Removal of DNA fragments in mRNA production process
Henderson et al. Cap 1 messenger RNA synthesis with co‐transcriptional cleancap® analog by in vitro transcription
US10711315B2 (en) Method for producing RNA
Wang et al. A synthetic molecular system capable of mirror-image genetic replication and transcription
ES2470621T3 (en) Procedure to obtain short RNA as well as kit for it
DK2588609T3 (en) METHOD AND KIT FOR SEQUENTIAL ISOLATION OF NUCLEOTIDE SPECIES FROM A SAMPLE
US20160032273A1 (en) Characterization of mrna molecules
CN120082614A (en) Enzymatic RNA capping method
US20030022230A1 (en) Molecule assigning genotype to phenotype and use thereof
CN112888794A (en) Compositions, methods and systems for processing or analyzing a multi-species nucleic acid sample
JP2002539801A (en) Detection of mutations in genes by specific LNA primers
WO2013118878A1 (en) Cyclic rna and protein production method
Hertler et al. Synthesis of point-modified mRNA
CA3114892A1 (en) Methods and compositions for increasing capping efficiency of transcribed rna
US4401759A (en) Detection and isolation of glucagon mRNA using a synthetic oligodeoxynucleotide
JP5733784B2 (en) Efficient synthesis of cDNA / mRNA-protein conjugates
RU2439156C2 (en) Method of obtaining ribonucleic acid
CN119677859A (en) Capped RNA and method for producing the same, device for producing protein, and method for producing protein
CN116375781A (en) A kind of cap analogue modified by TNA and its preparation method and application
CN103293314A (en) Method for separating and identifying nucleotidyl modified protein
JP6781883B2 (en) Aptamer selection method
RU2422532C2 (en) Method of recovery low-molecular nuclear ribonucleoproteids (rnp) from tissues and organs of mammals
Gaston et al. OXOPAP assay: for selective amplification of aminoacylated tRNAs from total cellular fractions
WO2024116901A1 (en) Gene analysis method
Jagga Structural and Mechanistic Basis for Nucleocytoplasmic Shuttling of SOX Transcription Factors

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A The patent is invalid due to non-payment of fees

Effective date: 20151125