RU2431148C1 - Method for producing cultural, polyvalent epidemic haemorrhagic fever diagnosticum for indirect immunofluorescence - Google Patents
Method for producing cultural, polyvalent epidemic haemorrhagic fever diagnosticum for indirect immunofluorescence Download PDFInfo
- Publication number
- RU2431148C1 RU2431148C1 RU2010117619/15A RU2010117619A RU2431148C1 RU 2431148 C1 RU2431148 C1 RU 2431148C1 RU 2010117619/15 A RU2010117619/15 A RU 2010117619/15A RU 2010117619 A RU2010117619 A RU 2010117619A RU 2431148 C1 RU2431148 C1 RU 2431148C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- antigen
- strain
- vero
- diagnosticum
- cells
- Prior art date
Links
Landscapes
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
Description
Предлагаемое изобретение относится к области вирусологии, в частности к способу получения тест-систем, предназначенных для специфической диагностики вирусных инфекций, а именно инфекции геморрагической лихорадки с почечным синдромом.The present invention relates to the field of virology, in particular to a method for producing test systems intended for specific diagnosis of viral infections, namely, hemorrhagic fever infection with renal syndrome.
Геморрагическая лихорадка с почечным синдромом (ГЛПС) - острое, вирусное заболевание зоонозной природы, характеризующееся системным поражением мелких кровеносных сосудов, геморрагическим диатезом и своеобразным поражением почек, высоким уровнем заболеваемости, тяжелым течением (нередко с летальным исходом) и стойкой потерей трудоспособности. Отсутствие специфических средств лечения и профилактики обусловливают высокую социальную и медицинскую значимость ГЛПС как в России, так и во многих странах мира.Hemorrhagic fever with renal syndrome (HFRS) is an acute, viral disease of zoonotic nature, characterized by systemic lesions of small blood vessels, hemorrhagic diathesis and a peculiar kidney damage, high morbidity, severe course (often fatal) and persistent disability. The absence of specific treatment and prophylaxis agents determines the high social and medical significance of HFRS in Russia and in many countries of the world.
Случаи заболевания ГЛПС регистрируются в 57 административных регионах Российской Федерации и составляют ежегодно 8-10 тысяч больных, в целом по стране.Cases of HFRS disease are recorded in 57 administrative regions of the Russian Federation and make up 8-10 thousand patients annually, as a whole throughout the country.
Возбудители ГЛПС - вирусы Пуумала, Хантаан, Сеул и Добрава - относятся к роду Хантавирус (семейство Буньявириде), который включает в настоящее время более 30 различных хантавирусных серотипов или генотипов. К ним относятся не только патогенные для человека хантавирусы, но также вирусы с неустановленной к настоящему времени эпидемиологической значимостью. Переносчиками хантавирусов и источником заражения людей являются дикие мышевидные грызуны. К настоящему времени доказана этиологическая роль хантавирусов в структуре заболеваемости ГЛПС: вирусы Пуумала и Добрава вызывают заболевание у людей на территории европейской части России и в странах Европы, а вирусы Хантаан и Сеул - в российских регионах Дальнего Востока и странах Азии. То есть под одним названием «ГЛПС» регистрируются, по крайней мере, четыре этиологически самостоятельные хантавирусные инфекции. Становится все более очевидной зависимость клинических и эпидемиологических проявлений этих инфекций от их этиологической обусловленности, выражающейся принадлежностью возбудителя к определенному хантавирусному генотипу или серотипу. Кроме того, не исключено, что другие известные и еще не известные хантавирусы могут проявлять в определенных условиях вирулентные для человека свойства и вызывать новые клинические формы хантавирусной инфекции. В связи с вышеизложенным, проблема заболеваемости хантавирусными инфекциями, вызываемыми разными вирусами, приобретает особую важность для здравоохранения в плане проведения эффективной диагностики, лечения и профилактики этих инфекций. Выраженные иммунологические различия между вирусами-возбудителями хантавирусных инфекций создают трудности, связанные с их специфической диагностикой. Для решения этой проблемы необходима разработка и применение универсальных тест-систем, способных выявлять и идентифицировать не только известные к настоящему времени, но и новые, ранее неизвестные вирусы-возбудители хантавирусных инфекций у больных людей и животных.The causative agents of HFRS - the viruses Puumala, Hantaan, Seoul and Dobrava - belong to the genus Hantavirus (Bunyaviride family), which currently includes more than 30 different hantavirus serotypes or genotypes. These include not only pathogenic hantaviruses for humans, but also viruses with currently undetermined epidemiological significance. The carriers of hantaviruses and the source of human infection are wild mouse-like rodents. To date, the etiological role of hantaviruses in the structure of the incidence of HFRS has been proven: Puumala and Dobrava viruses cause disease in people in the European part of Russia and in Europe, and Hantaan and Seoul viruses in the Russian regions of the Far East and Asian countries. That is, under one name “HFRS”, at least four etiologically independent hantavirus infections are recorded. The dependence of the clinical and epidemiological manifestations of these infections on their etiological condition, expressed by the pathogen belonging to a particular hantavirus genotype or serotype, is becoming increasingly apparent. In addition, it is possible that other known and not yet known hantaviruses can exhibit properties that are virulent for humans under certain conditions and cause new clinical forms of hantavirus infection. In connection with the foregoing, the problem of the incidence of hantavirus infections caused by different viruses is of particular importance for public health in terms of the effective diagnosis, treatment and prevention of these infections. The pronounced immunological differences between the viruses that cause hantavirus infections create difficulties associated with their specific diagnosis. To solve this problem, it is necessary to develop and use universal test systems capable of detecting and identifying not only currently known, but also new, previously unknown viruses that cause hantavirus infections in sick people and animals.
В настоящее время для серологической диагностики ГЛПС фирмой PROGEN, Гейдельберг, Германия производятся антигенные препараты, которые, в отличие от предлагаемого Диагностикума ГЛПС, представляют собой моновалентные антигены 3-х хантавирусов Пуумала, Хантаан и Сеул. Существенным недостатком применения таких антигенов в сочетанных очагах циркуляции одновременно нескольких хантавирусов является необходимость использования для определения антител в одной пробе сыворотки крови больного ГЛПС параллельно трех моновалентных антигенов. 3-этапная процедура исследования приводит к значительному увеличению как числа манипуляций, так и продолжительности постановки опытов и, соответственно, повышает стоимость диагностического обследования больных. Кроме того, фирма PROGEN не выпускает диагностикум для выявления ГЛПС, вызываемой хантавирусом Добрава, который является широко распространенным возбудителем ГЛПС в европейских очагах инфекции.Currently, for the serological diagnosis of HFRS, the company PROGEN, Heidelberg, Germany produces antigenic preparations, which, in contrast to the proposed Diagnosticum HFRS, are monovalent antigens of the 3 hantaviruses Puumala, Hantaan and Seoul. A significant drawback of the use of such antigens in the combined foci of circulation of several hantaviruses at the same time is the need to use three monovalent antigens in parallel for the determination of antibodies in a single serum sample of a patient with HFRS. The 3-stage research procedure leads to a significant increase in both the number of manipulations and the duration of the experiments and, accordingly, increases the cost of a diagnostic examination of patients. In addition, PROGEN does not produce a diagnosticum for the detection of HFRS caused by the Dobrava hantavirus, which is a common causative agent of HFRS in European foci of infection.
Принцип действия предлагаемого изобретения основан на специфическом иммунохимическом взаимодействии антигенов хантавирусов с антителами к этим вирусам. Визуализация антихантавирусных антител, связавшихся с антигеном, осуществляется с помощью антивидовых антител, меченных флюоресцеинизотиоцианатом (ФИТЦ). Результат регистрируется с помощью флюоресцентного микроскопа.The principle of action of the invention is based on the specific immunochemical interaction of hantavirus antigens with antibodies to these viruses. Visualization of antichantavirus antibodies bound to the antigen is carried out using antispecies antibodies labeled with fluorescein isothiocyanate (FITC). The result is recorded using a fluorescence microscope.
Процесс получения диагностикума включает: репродуцирование хантавирусов разных серотипов в перевиваемой культуре клеток VERO, сбор клеток, содержащих антиген, нанесение таких клеток на предметное стекло и фиксирование их ацетоном. Для получения диагностикума используют штаммы хантавирусов: Пуумала (штамм ПУУ-ТКД/VERO), Добрава (штамм ДОБ-EAT-VERO), Хантаан (штамм Уссури-4590) и Сеул (штамм СК-515/Грузия-88), вызывающие ГЛПС в странах Европы и Азии.The process of obtaining a diagnosticum includes: reproducing hantaviruses of different serotypes in an inoculated culture of VERO cells, collecting cells containing antigen, applying such cells to a glass slide and fixing them with acetone. To obtain a diagnosticum, hantavirus strains are used: Puumala (PUU-TKD / VERO strain), Dobrava (DOB-EAT-VERO strain), Hantaan (Ussuri-4590 strain) and Seoul (SK-515 / Georgia-88 strain), causing HFRS in countries of Europe and Asia.
Краткое описание изобретенияSUMMARY OF THE INVENTION
Изобретение касается способа получения диагностикума для специфической диагностики геморрагической лихорадки с почечным синдромом, представляющего собой поливалентный антигенный препарат, путем репродуцирования четырех хантавирусов: Пуумала (штамм ПУУ-ТКД/VERO), Добрава (штамм ДОБ-EAT-VERO), Хантаан (штамм Уссури-4590) и Сеул (штамм СК-515/Грузия-88) в монослойной перевиваемой культуре клеток почек зеленой мартышки, линии VERO, проверки на содержание вирусспецифического антигена, получения поливалентного антигена, фиксации антигена на предметном стекле и обработки ультрафиолетовым облучением. При достижении 90% и более клеток, содержащих антиген, используют смесь суспензий клеток, инфицированных вирусами Пуумала, Добрава, Хантаан и Сеул и незараженных клеток VERO, объединенных в соотношении 2:1:1:1:1.The invention relates to a method for producing a diagnosticum for the specific diagnosis of hemorrhagic fever with renal syndrome, which is a multivalent antigenic preparation, by reproducing four hantaviruses: Puumala (PUU-TKD / VERO strain), Dobrava (DOB-EAT-VERO strain), Huntaan (Ussuri strain 4590) and Seoul (strain SK-515 / Georgia-88) in a monolayer transplantable culture of green monkey kidney cells, the VERO line, checking for virus-specific antigen, obtaining a multivalent antigen, fixing the antigen on the subject with tekle and ultraviolet treatment. When reaching 90% or more cells containing the antigen, a mixture of suspensions of cells infected with the viruses of Puumala, Dobrava, Hantaan and Seoul and uninfected VERO cells combined in a ratio of 2: 1: 1: 1: 1 is used.
Также изобретение касается набора для диагностики геморрагической лихорадки с почечным синдромом, включающего: а) поливалентный антигенный препарат, полученный путем репродуцирования четырех хантавирусов Пуумала (штамм ПУУ-ТКД/VERO), Добрава (штамм ДОБ-EAT-VERO), Хантаан (штамм Уссури-4590) и Сеул (штамм СК-515/Грузия-88) в монослойной перевиваемой культуре клеток почек зеленой мартышки, линии VERO, проверки на содержание вирусспецифического антигена, получения поливалентного антигена, фиксации антигена на предметном стекле и обработки ультрафиолетовым облучением; б) три контрольных образца, представляющих собой 2 положительных образца - по одной ампуле с сыворотками крови, содержащими антитела, взаимодействующие с антигенами хантавирусов Хантаан, Добрава и Сеул, и антитела, взаимодействующие с антигеном хантавируса Пуумала, а также 1 отрицательный образец - ампула с нормальной сывороткой, не содержащей антител к хантавирусам; в) люминисцирующую сыворотку против глобулинов человека (например, производства Института им. Н.Ф.Гамалеи), обработанную для контрастирования фона раствором Эванса голубого.The invention also relates to a kit for the diagnosis of hemorrhagic fever with renal syndrome, including: a) a polyvalent antigenic preparation obtained by reproducing four Puumala hantaviruses (PUU-TKD / VERO strain), Dobrava (DOB-EAT-VERO strain), Hantaan (Ussuri-strain 4590) and Seoul (strain SK-515 / Georgia-88) in a monolayer transplantable culture of green monkey kidney cells, VERO line, checking for virus-specific antigen, obtaining polyvalent antigen, fixing antigen on a glass slide and processing ultraviolet vym exposure; b) three control samples, which are 2 positive samples - one ampoule with blood serum containing antibodies that interact with the antigens of the hantavirus Hantaan, Dobrava and Seoul, and antibodies that interact with the antigen of the hantavirus Puumala, and 1 negative sample - an ampoule with normal serum that does not contain antibodies to hantaviruses; c) luminescent serum against human globulins (for example, produced by the NF Gamalei Institute), processed to contrast the background with Evans blue solution.
Антиген может быть нанесен на предметные стекла по 6 пятен в 2-х рядах для экспресс-диагностики спорадической заболеваемости ГЛПС, когда необходимо обследовать только одного большого или по 7 пятен в 3-х рядах при экспресс-диагностике крупных вспышек заболеваемости ГЛПС, когда необходимо обследовать одновременно многочисленную группу больных.The antigen can be applied to slides of 6 spots in 2 rows for rapid diagnosis of sporadic HFRS incidence, when it is necessary to examine only one large or 7 spots in 3 rows for rapid diagnosis of large outbreaks of HFRS, when it is necessary to examine at the same time a large group of patients.
Подробное описание изобретения.DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION
Более подробно получение диагностикума осуществляют следующим образом. Выращивают культуру клеток VERO в однолитровых роллерных бутылях в среде Игла MEM с двойным набором витаминов и аминокислот и 5% сыворотки крови плодов коров. По достижении монослоя (3-4 сутки) в бутыли вносят пул вируса, предварительно разводенного средой Игла 2МЕМ до концентрации, обеспечивающей множественность заражения 0,1-0,5 ФОЕ/кл при объеме инокулята 15 мл на 1 литровую роллерную бутыль. Для адсорбции вируса на клетки зараженные бутыли помещают в роллерную установку и инкубируют 1 час при температуре (37±1)°C. По истечении указанного времени в каждую бутыль вносят 100 мл поддерживающей рост клеток среды и снова помещают в роллерную установку в термостатную комнату с температурой (37±1)°C. Сбор клеток, содержащих вирусные антигены, проводят на 10-11 сутки. Клетки снимают со стекла смесью 0,02% версена и 0,5% трипсина, 5-кратно отмывают 0,85% раствором NaCl, готовят суспензию инфицированных клеток (450-550 тыс. кл./мл) и наносят ее по 0,005 мл на предметные стекла для иммунофлюоресценции. После высушивания стекла помещают на 20 минут в охлажденный ацетон для фиксации клеток и инактивации вируса и затем высушивают при комнатной температуре. Полученные антигенные (моновалентные, то есть приготовленные для каждого в отдельности вируса) препараты исследуют методом непрямой иммунофлюоресценции на содержание вирусного антигена, используя контрольные сыворотки переболевших ГЛПС людей, содержащие антитела к вирусам Пуумала, Добрава, Хантаан и Сеул, а также сыворотку человека, не содержащую антитела к хантвирусам. При наличии 90% и более клеток, содержащих антиген, суспензии клеток, инфицированных вирусами Пуумала, Добрава, Хантаан и Сеул, и незараженные клетки объединяют в соотношении 2:1:1:1:1. Полученную суспензию клеток (поливалентный антиген) наносят по 0,005 мл на предметные стекла для иммунофлюоресценции в два ряда по 6 капель в ряду или в 3 ряда по 7 капель. Предметные стекла выдерживают при комнатной температуре до полного высыхания суспензий, после чего препараты фиксируют в охлажденном (при температуре минус 15°C) ацетоне в течение 15-20 минут. После извлечения из ацетона препараты высушивают и обрабатывают ультрафиолетовым облучением в течение 3-х часов для полной инактивации инфекционной активности вирусов.In more detail, obtaining a diagnosticum is as follows. A VERO cell culture is grown in one-liter roller bottles in a MEM Eagle medium with a double set of vitamins and amino acids and 5% of the blood serum of cow fruits. Upon reaching the monolayer (3-4 days), a pool of the virus, previously diluted with Igla 2MEM medium, is added to the bottles to a concentration that ensures a multiplicity of infection of 0.1-0.5 IU / cell with an inoculum volume of 15 ml per 1 liter roller bottle. To adsorb the virus onto the cells, the infected bottles are placed in a roller unit and incubated for 1 hour at a temperature of (37 ± 1) ° C. After the specified time, 100 ml of the medium supporting cell growth is introduced into each bottle and again placed in a roller unit in a thermostatic room with a temperature of (37 ± 1) ° C. The collection of cells containing viral antigens is carried out on 10-11 days. The cells are removed from the glass with a mixture of 0.02% versene and 0.5% trypsin, washed with a 0.85% NaCl solution 5 times, a suspension of infected cells (450-550 thousand cells / ml) is prepared and 0.005 ml applied per slides for immunofluorescence. After drying, the glass is placed for 20 minutes in chilled acetone to fix the cells and inactivate the virus and then dried at room temperature. The resulting antigenic (monovalent, that is, prepared for each individual virus) preparations are examined by indirect immunofluorescence for the content of the viral antigen using control sera of people who have had HFRS, containing antibodies to the viruses of Puumala, Dobrava, Khantaan and Seoul, as well as human serum that does not contain antibodies to huntviruses. In the presence of 90% or more cells containing antigen, suspensions of cells infected with the viruses of Puumala, Dobrava, Hantaan and Seoul, and uninfected cells are combined in a ratio of 2: 1: 1: 1: 1. The resulting cell suspension (polyvalent antigen) is applied at 0.005 ml onto a slide for immunofluorescence in two rows of 6 drops in a row or in 3 rows of 7 drops. Slides are kept at room temperature until the suspensions are completely dry, after which the preparations are fixed in chilled (at a temperature of minus 15 ° C) acetone for 15-20 minutes. After extraction from acetone, the preparations are dried and treated with ultraviolet radiation for 3 hours to completely inactivate the infectious activity of viruses.
Для выявления специфических антител к возбудителям ГЛПС исследуемые сыворотки крови наносят на препараты с поливалентным культуральным антигеном в разведениях, начиная с 1:16 и выше. В опытах используют три контроля: положительный контрольный образец - сыворотка крови, содержащая антитела, взаимодействующие с антигенами хантавирусов Хантаан, Добрава и Сеул; положительный контрольный образец - сыворотка крови, содержащая антитела к хантавирусу Пуумала, и отрицательный контрольный образец - нормальная сыворотка, не содержащая антител к хантавирусам. Препараты помещают во влажную камеру и выдерживают при 37°C в течение 30 минут или при 4°C в течение 18-20 часов. После окончания экспозиции стекла 3-кратно по 3 минуты промывают 0,85% раствором NaCl, ополаскивают водой и подсушивают при комнатной температуре. После этого в лунки с антигеном наносят люминисцирующую сыворотку против глобулинов человека (или против глобулинов того вида животного, чью сыворотку крови исследуют) в рабочем разведении, которое определяют в предварительном опыте. Для контрастирования фона применяют Эванс голубой в конечной концентрации 1:10000. Препараты вновь инкубируют во влажной камере при температуре 37°C в течение 30 минут, промывают 0,85% раствором NaCl 3 раза по 3 минуты, ополаскивают водой, высушивают при комнатной температуре и просматривают с помощью люминесцентного микроскопа под водно-иммерсионным объективом (x60 или x65).To identify specific antibodies to HFRS pathogens, the studied blood serum is applied to preparations with a polyvalent culture antigen in dilutions starting from 1:16 and above. Three controls are used in the experiments: a positive control sample — blood serum containing antibodies that interact with the antigens of the hantaviruses Hantaan, Dobrava, and Seoul; the positive control sample is serum containing antibodies to the Puumala hantavirus, and the negative control sample is normal serum containing no antibodies to the Hantaviruses. The drugs are placed in a humid chamber and kept at 37 ° C for 30 minutes or at 4 ° C for 18-20 hours. After the exposure, the glass is washed 3 times with 3 minutes each time with a 0.85% NaCl solution, rinsed with water and dried at room temperature. After that, luminescent serum is applied to the antigen wells against human globulins (or against the globulins of the animal species whose blood serum is examined) in a working dilution, which is determined in a preliminary experiment. To contrast the background, Evans blue is used in a final concentration of 1: 10000. The preparations are again incubated in a humid chamber at a temperature of 37 ° C for 30 minutes, washed with a 0.85% NaCl solution 3 times for 3 minutes, rinsed with water, dried at room temperature and examined using a luminescent microscope under a water-immersion lens (x60 or x65).
Для хантавирусов характерна локализация флюоресцирующего антигена с четкой гранулярной структурой в цитоплазме клеток. В зависимости от стадии накопления антигена можно наблюдать как мелкие или крупные гранулы в перинуклеарной зоне, так и глыбки флюоресцирующего материала, заполняющие всю цитоплазму клетки. Яркое изумрудно-зеленое гранулярное свечение хантавирусного антигена четко просматривается на фоне от серо-бурого до темно-коричневого или кирпично-красного окрашивания структуры неинфицированных клеток. Такой же фон отмечают и на антигене с нормальной сывороткой, используемой в качестве контроля. Титром сыворотки считают ее наивысшее разведение, способное выявлять специфический антиген вируса ГЛПС.Hantaviruses are characterized by the localization of a fluorescent antigen with a clear granular structure in the cell cytoplasm. Depending on the stage of antigen accumulation, it is possible to observe both small or large granules in the perinuclear zone, as well as clumps of fluorescent material filling the entire cytoplasm of the cell. The bright emerald green granular glow of the hantavirus antigen is clearly visible against a background of gray-brown to dark brown or brick-red staining of the structure of uninfected cells. The same background is noted on antigen with normal serum, used as a control. Serum titer is considered its highest dilution, capable of detecting a specific HFRS virus antigen.
Предлагаемый способ позволяет получать диагностикум ГЛПС, обладающую следующими достоинствами:The proposed method allows to obtain diagnostic of HFRS, which has the following advantages:
1) универсальностью, проявляющейся в том, что диагностикум, содержащий антигены всех известных к настоящему времени хантавирусов, вызывающих ГЛПС на евразийском континенте, может использоваться с одинаковой эффективностью в различных эндемичных регионах, независимо от вида хантавирусов, циркулирующих на территориях этих регионов.1) universality, manifested in the fact that a diagnosticum containing antigens of all currently known hantaviruses that cause HFRS on the Eurasian continent can be used with equal efficiency in various endemic regions, regardless of the type of hantaviruses circulating in the territories of these regions.
2) высокой чувствительностью выявления антител с первых дней клинических проявлений болезни, что обеспечивает раннюю специфическую диагностику этого заболевания.2) high sensitivity of detecting antibodies from the first days of the clinical manifestations of the disease, which provides an early specific diagnosis of this disease.
Принципиальное отличие предлагаемого «Диагностикума геморрагической лихорадки с почечным синдромом культурального, поливалентного для непрямого метода иммунофлюоресценции» от разработанного ранее Диагностикума ГЛПС (Ткаченко Е.А., Дзагурова Т.К. и др. Способ получения диагностикума геморрагической лихорадки с почечным синдромом. Автор. свидет. 1365918, 1985) и выпускавшегося впоследствии согласно ФСП 42-0070592404 заключается в том, что штаммы вирусов Пуумала и Добрава заменены на более активные штаммы, адаптированные к размножению в культуре клеток VERO с высоким уровнем продуцирования внутриклеточного антигена, что в свою очередь повышает чувствительность Диагностикума ГЛПС в 2-4 раза. Активная репликация вируса в культуре способствует сокращению периода накопления антигена в клетках с 14 до 10-11 дней и, соответственно, уменьшает материальные затраты на его производство (снижается количество питательной среды, используемой для поддержания жизнедеятельности клеток, а также расход электричества для работы роллерной установки и термостатирования). Штамм вируса Пуумала CG-1820-Уфа, изолированный от рыжей полевки, заменен штаммом ПУУ-ТКД-VERO, выделенный от больного ГЛПС. Штамм вируса Добрава АР-47/Сочи-01, изолированный от кавказской лесной мыши, заменен на штамм ДОБ-EAT-VERO, выделенный от больного ГЛПС. Кроме того, предлагаемый Диагностикум ГЛПС комплектуется антигенными препаратами с дизайном предметного стекла двух видов: помимо варианта нанесения хантавирусного антигена по 7 пятен в трех рядах, в набор будут входить стекла, на которых антиген нанесен по 6 пятен в 2-х рядах. Таким обазом, количество антигенных препаратов в наборе Диагностикума возрастет с 10 до 15. Включение в набор Диагностикума антигена в виде 12 пятен на стекле создает экономию и удобство при экспресс-диагностике спорадической заболеваемости ГЛПС, когда необходимо обследовать только одного больного. Внесенные изменения позволяют повысить чувствительность диагностического теста, удешевить производство и эффективность применения Диагностикума ГЛПС по сравнению с Диагностикумом, выпускавшимся ранее по условиям ФСП 42-0070592404. Штамм ПУУ-ТКД/VERO (PUU-TKD/VERO) вируса "ПУУМАЛА" (Puumala, род Hantavirus, семейство Bunyaviridae) депонирован 24 ноября 2009 г. под №1026 в Государственной коллекции вирусов (НИИ вирусологии им. Д.И.Ивановского РАМП). Штамм ДОБ-EAT/VERO (DOB-TEA/VERO) вируса "ДОБРАВА" (Dobrava, род Hantavirus, семейство Bunyaviridae) депонирован 24 ноября 2009 г. под №1027 в Государственной коллекции вирусов (НИИ вирусологии им. Д.И.Ивановского РАМН).The fundamental difference between the proposed “Diagnosticum of hemorrhagic fever with renal syndrome of culture, multivalent for the indirect method of immunofluorescence” from the previously developed Diagnosis of HFRS (Tkachenko EA, Dzagurova TK, etc. A method for obtaining a diagnosticum of hemorrhagic fever with renal syndrome. . 1365918, 1985) and subsequently produced according to FSP 42-0070592404 is that the strains of the Puumala and Dobrava viruses are replaced by more active strains adapted for propagation in the culture of cells VERO label with a high level of intracellular antigen production, which in turn increases the sensitivity of the HFRS Diagnostic by 2-4 times. Active replication of the virus in culture helps to reduce the period of antigen accumulation in cells from 14 to 10-11 days and, accordingly, reduces the material costs of its production (the amount of nutrient medium used to maintain cell activity is reduced, as well as the electricity consumption for the operation of the roller unit and temperature control). The strain of the Puumala virus CG-1820-Ufa, isolated from the bank vole, was replaced by the strain PUU-TKD-VERO, isolated from a patient with HFRS. The strain of the Dobrava virus AR-47 / Sochi-01, isolated from the Caucasian forest mouse, was replaced by the strain DOB-EAT-VERO isolated from a patient with HFRS. In addition, the proposed HFRS Diagnosticum is completed with antigenic preparations with the design of a slide of two types: in addition to the option of applying a hantavirus antigen of 7 spots in three rows, the kit will include glasses on which the antigen is applied in 6 spots in 2 rows. In this way, the number of antigenic preparations in the Diagnosticum kit will increase from 10 to 15. The inclusion of the antigen in the form of 12 spots on the glass in the Diagnosticum kit creates savings and convenience in express diagnostics of the sporadic HFRS incidence when it is necessary to examine only one patient. The introduced changes can increase the sensitivity of the diagnostic test, reduce the cost of production and the effectiveness of the use of Diagnostic drugs HFRS compared to the Diagnostic, which was previously produced under the conditions of FSP 42-0070592404. The strain PUU-TKD / VERO (PUU-TKD / VERO) of the virus "PUMALA" (Puumala, genus Hantavirus, family Bunyaviridae) was deposited on November 24, 2009 under No. 1026 in the State Virus Collection (DI Ivanovsky RAMS Research Institute of Virology ) The strain DOB-EAT / VERO (DOB-TEA / VERO) of the virus "DOBRAVA" (Dobrava, genus Hantavirus, family Bunyaviridae) was deposited on November 24, 2009 under No. 1027 in the State Virus Collection (D.I. Ivanovsky Research Institute of RAMS )
Пример 1. Обследование парных сывороток крови больного с подозрением на ГЛПС, взятых на 2 и 5 день болезни.Example 1. Examination of paired blood serum of a patient with suspected HFRS taken on the 2nd and 5th day of illness.
Перед использованием предметное стекло с антигенным препаратом, хранившееся при температуре не выше минус 20°C, подсушивают при комнатной температуре (16-24°C).Before use, a glass slide with an antigenic preparation, stored at a temperature not exceeding minus 20 ° C, is dried at room temperature (16-24 ° C).
В лунках пластиковых панелей готовят двукратные разведения исследуемых сывороток крови на 0,85% растворе NaCl и, начиная с разведения 1:16, наносят по одной капле (5 мкл) на отдельное "пятно". На отдельное "пятно" наносят также 3 контрольные сыворотки в рабочих разведениях. Препараты с нанесенными исследуемыми и контрольными образцами помещают во влажную камеру и инкубируют при 37°C в течение 30 мин или при 2-8°C в течение 18 ч. После окончания инкубации препараты 3-кратно по 3 мин выдерживают в физиологическом растворе, промывают в течение 1 мин водой и высушивают при комнатной температуре. На каждое "пятно" наносят люминесцирующую сыворотку против глобулинов человека в рабочем разведении по 1 капле (5 мкл). Препараты инкубируют во влажной камере при температуре 37°C в течение 30 мин, после чего 3-кратно по 3 мин выдерживают в физиологическом растворе, ополаскивают водой и высушивают при комнатной температуре.Twice dilutions of the studied blood serum in a 0.85% NaCl solution are prepared in the wells of the plastic panels and, starting with a 1:16 dilution, one drop (5 μl) is applied to a separate “spot”. 3 control sera in working dilutions are also applied to a separate “spot”. Preparations with applied test and control samples are placed in a humid chamber and incubated at 37 ° C for 30 minutes or at 2-8 ° C for 18 hours. After incubation, the preparations are 3 times 3 minutes in physiological saline, washed in for 1 min with water and dried at room temperature. On each "spot" is applied luminescent serum against human globulins in a working dilution of 1 drop (5 μl). The preparations are incubated in a humid chamber at a temperature of 37 ° C for 30 minutes, after which they are kept in physiological saline for 3 times for 3 minutes, rinsed with water and dried at room temperature.
Опыт учитывают с помощью люминесцентного микроскопа ЛЮМАМ-2 или другой марки под водно-иммерсионным объективом (x60 или x65). Вначале микроскопируют лунки с контрольными сыворотками. При выявлении флюоресцирующего антигена с четкой гранулярной структурой в цитоплазме клеток в лунках с контрольными положительными сыворотками и отсутствии свечения в контроле с нормальной сывороткой приступают к просмотру исследуемых сывороток крови. Сыворотка №1 выявляет хантавирусный антиген в разведениях от 1:16 до 1:256, что определяется по характерному гранулярному изумрудно-зеленому свечению. Аналогичное свечение регистрируется в разведениях с 1:16 до 1:1024 в лунках с нанесенной сывороткой №2. Таким образом, титр сыворотки №1 - 256; сыворотки №2 - 1:1024.The experience is taken into account using a LUMAM-2 luminescent microscope or another brand under a water-immersion lens (x60 or x65). First, the wells with control sera are microscopic. Upon detection of a fluorescent antigen with a clear granular structure in the cytoplasm of cells in wells with control positive sera and the absence of luminescence in the control with normal serum, they begin to look at the studied blood sera. Serum No. 1 detects hantavirus antigen in dilutions from 1:16 to 1: 256, which is determined by the characteristic granular emerald green glow. A similar glow is recorded in dilutions from 1:16 to 1: 1024 in wells coated with serum No. 2. Thus, the titer of serum No. 1 - 256; serum No. 2 - 1: 1024.
Пример 2. По вышеописанной методике исследованы сыворотки крови больных с подозрением на ГЛПС с помощью Диагностикума (1), выпускавшегося по условиям ФСП 42-0070592404, и Диагностикума (2), предлагаемого для патентования. Результаты, представленные в таблице, показывают преимущества предлагаемого Диагностикума для ранней диагностики ГЛПС.Example 2. According to the method described above, the blood serum of patients with suspected HFRS was studied using Diagnosticum (1), produced under the terms of FSP 42-0070592404, and Diagnosticum (2), proposed for patenting. The results presented in the table show the benefits of the proposed Diagnosticum for the early diagnosis of HFRS.
Claims (4)
б) три контрольных образца, представляющих собой 2 положительных образца - сыворотки крови, содержащие антитела, взаимодействующие с антигенами хантавирусов Хантаан, Добрава и Сеул и антитела, взаимодействующие с антигеном хантавируса Пуумала, а также 1 отрицательный образец - нормальную сыворотку, не содержащую антител к хантавирусам, контрольные образцы, расфасованные в ампулы,
в) люминисцирующую сыворотку против глобулинов человека, обработанную для контрастирования фона раствором Эванса голубого.2. A kit for the diagnosis of hemorrhagic fever with renal syndrome, including: a) a polyvalent antigenic preparation obtained by reproducing the four Puumala hantaviruses, the PUU-TKD / VERO strain, the Dobrava strain DOB-EAT-VERO, the Hantaan strain Ussuri-4590 and the Seoul strain SK- 515 / Georgia-88, in a monolayer transplantable culture of green monkey kidney cells, VERO line, checking for virus-specific antigen, obtaining polyvalent antigen, fixing antigen on a glass slide and processing with ultraviolet radiation;
b) three control samples, which are 2 positive samples — blood serum, containing antibodies that interact with the Hantavirus antigens Hantaan, Dobrava and Seoul, and antibodies that interact with the Puumala hantavirus antigen, and 1 negative sample — normal serum that does not contain antibodies to hantaviruses control samples packaged in ampoules,
c) luminescent serum against human globulins, processed to contrast the background with Evans blue solution.
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| RU2010117619/15A RU2431148C1 (en) | 2010-05-05 | 2010-05-05 | Method for producing cultural, polyvalent epidemic haemorrhagic fever diagnosticum for indirect immunofluorescence |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| RU2010117619/15A RU2431148C1 (en) | 2010-05-05 | 2010-05-05 | Method for producing cultural, polyvalent epidemic haemorrhagic fever diagnosticum for indirect immunofluorescence |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| RU2431148C1 true RU2431148C1 (en) | 2011-10-10 |
Family
ID=44805160
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| RU2010117619/15A RU2431148C1 (en) | 2010-05-05 | 2010-05-05 | Method for producing cultural, polyvalent epidemic haemorrhagic fever diagnosticum for indirect immunofluorescence |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| RU (1) | RU2431148C1 (en) |
Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2484478C1 (en) * | 2012-05-11 | 2013-06-10 | Государственное бюджетное образовательное учреждение дополнительного профессионального образования "Казанская государственная медицинская академия" Министерства здравоохранения и социального развития Российской Федерации | Method for detecting hantaan virus antibodies in hantaan hemorrhagic fever, and predicting severe disease |
Citations (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2180754C2 (en) * | 2000-04-10 | 2002-03-20 | Научно-исследовательский институт эпидемиологии и микробиологии СО РАМН | Method of chanta-virus diagnosticum preparing |
| KR20070026802A (en) * | 2004-06-18 | 2007-03-08 | 노바티스 백신즈 앤드 다이아그노스틱스 인코포레이티드 | Methods and reagents for diagnosing hantavirus infection |
-
2010
- 2010-05-05 RU RU2010117619/15A patent/RU2431148C1/en not_active IP Right Cessation
Patent Citations (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2180754C2 (en) * | 2000-04-10 | 2002-03-20 | Научно-исследовательский институт эпидемиологии и микробиологии СО РАМН | Method of chanta-virus diagnosticum preparing |
| KR20070026802A (en) * | 2004-06-18 | 2007-03-08 | 노바티스 백신즈 앤드 다이아그노스틱스 인코포레이티드 | Methods and reagents for diagnosing hantavirus infection |
Non-Patent Citations (1)
| Title |
|---|
| Дзагурова Т.К., Ткаченко Е.А., Петров В.А. Эффективность применения культуральных антигенов для серодиагностики ГЛПС с помощью метода иммунофлуоресценции. Вопросы вирусологии, 1988, 1, с.71-75. * |
Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2484478C1 (en) * | 2012-05-11 | 2013-06-10 | Государственное бюджетное образовательное учреждение дополнительного профессионального образования "Казанская государственная медицинская академия" Министерства здравоохранения и социального развития Российской Федерации | Method for detecting hantaan virus antibodies in hantaan hemorrhagic fever, and predicting severe disease |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| CN102483412B (en) | Direct fluorescene immunoassay for viral antigens | |
| Kaul et al. | Respiratory syncytial virus infection: rapid diagnosis in children by use of indirect immunofluorescence | |
| Kaplowitz et al. | Correlation of rickettsial titers, circulating endotoxin, and clinical features in Rocky Mountain spotted fever | |
| Peter et al. | Measurement of antibodies to Machupo virus by the indirect fluorescent technique | |
| Rosen | Reoviruses | |
| Shyam et al. | Development of a lateral flow immuno-chromatic strip assay for the detection of nervous necrosis virus (NNV, RGNNV genotype) | |
| CN105137073A (en) | Bovine Brucella colloidal gold antibody detection test paper strip | |
| Pratelli et al. | Serological and virological detection of canine herpesvirus-1 in adult dogs with and without reproductive disorders | |
| RU2431148C1 (en) | Method for producing cultural, polyvalent epidemic haemorrhagic fever diagnosticum for indirect immunofluorescence | |
| CN113049816B (en) | Method for measuring titer of newcastle disease virus | |
| Dhar et al. | Development and validation of an in vitro titrimetric method for determination of classical swine fever viruses in PK-15 cells | |
| Al-Sadawi et al. | Viral agent that causing diarrhoea among children in Al-Najaf province, Iraq | |
| Ushimi et al. | Study of the one-step growth curve of equine infectious anemia virus by immunofluorescence | |
| Ju et al. | Spectrum detection and analysis of the epidemiological characteristics of infectious pathogens in the feline respiratory tract | |
| Abd El-Rahim et al. | An epizootic of equine influenza in Upper Egypt in 2000 | |
| Shid et al. | Hantavirus infection: An overview | |
| Smaron et al. | Diagnosis of measles by fluorescent antibody and culture of nasopharyngeal secretions | |
| CN106353496A (en) | Brucella fluorescence polarization (FPA) detection kit | |
| RU2684417C1 (en) | Method of determining specific antibodies to type i ducklings hepatitis virus | |
| RU2738900C1 (en) | Diagnostic set for detecting antibodies to avian influenza virus subtype h9 in hemagglutination inhibition reaction | |
| Leong et al. | Seroprevalence of Pteropine orthoreovirus (PRV) infection among outpatients in a clinic in Rembau, Malaysia | |
| Andoh et al. | In vitro susceptibility to tetracycline and fluoroquinolones of Japanese isolates of Coxiella burnetii | |
| Phillips et al. | Identification of encapsulated and non-encapsulated Yersinia pestis by immunofluorescence tests using polyclonal and monoclonal antibodies | |
| CN101101297A (en) | Gelatin particle-agglutination detection reagent kit suitable for 1type duck hepatitis virus antibody and its uses | |
| Rahman | Early detection of influenza virus in cell culture by means of immunofluorescence |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20130506 |
|
| NF4A | Reinstatement of patent |
Effective date: 20150627 |
|
| MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20200506 |