[go: up one dir, main page]

RU2469084C2 - Штамм микроорганизма corynebacterium ammoniagenes, продуцирующий инозин, и способ получения инозина с его использованием - Google Patents

Штамм микроорганизма corynebacterium ammoniagenes, продуцирующий инозин, и способ получения инозина с его использованием Download PDF

Info

Publication number
RU2469084C2
RU2469084C2 RU2010132638/10A RU2010132638A RU2469084C2 RU 2469084 C2 RU2469084 C2 RU 2469084C2 RU 2010132638/10 A RU2010132638/10 A RU 2010132638/10A RU 2010132638 A RU2010132638 A RU 2010132638A RU 2469084 C2 RU2469084 C2 RU 2469084C2
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
inosine
strain
medium
corynebacterium ammoniagenes
microorganism
Prior art date
Application number
RU2010132638/10A
Other languages
English (en)
Other versions
RU2010132638A (ru
Inventor
Чул Ха КИМ
Дзонг Соо ЧОИ
Дзеонг Хван КИМ
Хуонг Сеок КИМ
Дзюн Гюн КВОН
Тэ Мин АХН
Соо Уон ХВАНГ
Дзэ ИК СИМ
Мин Дзи БЭК
На Ра КВОН
Хуе Дзин ЧОИ
Original Assignee
СиДжей ЧЕЙЛЧЕДАНГ КОРП.
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by СиДжей ЧЕЙЛЧЕДАНГ КОРП. filed Critical СиДжей ЧЕЙЛЧЕДАНГ КОРП.
Publication of RU2010132638A publication Critical patent/RU2010132638A/ru
Application granted granted Critical
Publication of RU2469084C2 publication Critical patent/RU2469084C2/ru

Links

Images

Classifications

    • HELECTRICITY
    • H02GENERATION; CONVERSION OR DISTRIBUTION OF ELECTRIC POWER
    • H02BBOARDS, SUBSTATIONS OR SWITCHING ARRANGEMENTS FOR THE SUPPLY OR DISTRIBUTION OF ELECTRIC POWER
    • H02B1/00Frameworks, boards, panels, desks, casings; Details of substations or switching arrangements
    • H02B1/01Frameworks
    • H02B1/014Corner connections for frameworks
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12PFERMENTATION OR ENZYME-USING PROCESSES TO SYNTHESISE A DESIRED CHEMICAL COMPOUND OR COMPOSITION OR TO SEPARATE OPTICAL ISOMERS FROM A RACEMIC MIXTURE
    • C12P19/00Preparation of compounds containing saccharide radicals
    • C12P19/26Preparation of nitrogen-containing carbohydrates
    • C12P19/28N-glycosides
    • C12P19/38Nucleosides
    • C12P19/40Nucleosides having a condensed ring system containing a six-membered ring having two nitrogen atoms in the same ring, e.g. purine nucleosides
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N9/00Enzymes; Proenzymes; Compositions thereof; Processes for preparing, activating, inhibiting, separating or purifying enzymes
    • C12N9/14Hydrolases (3)
    • C12N9/24Hydrolases (3) acting on glycosyl compounds (3.2)
    • C12N9/2497Hydrolases (3) acting on glycosyl compounds (3.2) hydrolysing N- glycosyl compounds (3.2.2)
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12YENZYMES
    • C12Y302/00Hydrolases acting on glycosyl compounds, i.e. glycosylases (3.2)
    • C12Y302/02Hydrolases acting on glycosyl compounds, i.e. glycosylases (3.2) hydrolysing N-glycosyl compounds (3.2.2)
    • C12Y302/02001Purine nucleosidase (3.2.2.1)
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12YENZYMES
    • C12Y302/00Hydrolases acting on glycosyl compounds, i.e. glycosylases (3.2)
    • C12Y302/02Hydrolases acting on glycosyl compounds, i.e. glycosylases (3.2) hydrolysing N-glycosyl compounds (3.2.2)
    • C12Y302/02008Ribosylpyrimidine nucleosidase (3.2.2.8)

Landscapes

  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Power Engineering (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Saccharide Compounds (AREA)
  • Plural Heterocyclic Compounds (AREA)
  • Prostheses (AREA)

Abstract

Представленные изобретения относятся к области биотехнологии и касаются штамма Corynebacterium ammoniagenes, продуцирующего инозин и способа получения инозина при использовании такого штамма. Описанный штамм депонирован в КССМ под номером 10905 и имеет блокированный каскад реакций катаболизма инозина, вследствие инактивации генов, кодирующих рибонуклеозид-гидролазу 1 и 2. Способ получения инозина включает культивирование такого штамма с последующим извлечением. Представленная группа изобретений позволяет получать инозин с высоким выходом и в высокой концентрации. 2 н.п. ф-лы, 2 ил., 2 табл., 4 пр.

Description

Область техники, к которой относится изобретение
Настоящее изобретение относятся к продуцирующим инозин микроорганизмам, принадлежащим к роду Corynebacterium, и способу получения инозина, включающему культивирование микроорганизмов, продуцирующих инозин.
Предшествующий уровень техники
Инозин является жизненно важным веществом, участвующим в химическом синтезе и катализируемом ферментами синтеза 5'-инозиновой кислоты, который привлекает усиленное внимание как острая приправа. Кроме того, инозин, который является промежуточным соединением в каскаде реакций биосинтеза нуклеиновой кислоты, играет физиологически значимую роль в организмах животных и растений и широко используется в различных областях, включая пищевую и медицинскую промышленность.
Инозин обычно получают ферментацией с использованием микроорганизмов, таких как Bacillus (Agric. Biol. Chem., 46, 2347 (1992); патент Кореи №27280) или Corynebacterium ammoniagenus (Agric. Biol. Chem., 42, 399 (1978)), или термическим разложением 5'-инозиновой кислоты (патентная публикация с открытой выкладкой №43-3320, Япония). Однако в случае термического разложения 5'-инозиновой кислоты для разложения 5'-инозиновой кислоты требуется большое количество тепла, и поэтому такой способ трудно применять на практике. Для прямой ферментации разработаны и исследованы различные штаммы Е.coli (Biosci. Biotechnol. Biochem., 2001, Mar, 65(3): 570-8). Однако титр продуцирующих инозин штаммов низкий, и поэтому затраты на получение инозина являются высокими. Кроме того, поиск путей получения инозина сосредоточен на штаммах Bacillus и Е.coli.
Таким образом, все еще существует потребность в создании штаммов микроорганизмов, способных продуцировать инозин с высоким выходом и накапливать инозин в высокой концентрации, и способе получения инозина с использованием таких штаммов.
Поэтому авторы продолжили исследование способа получения инозина с высоким выходом/в высокой концентрации, сконцентрировавшись на прямой ферментации с использованием микроорганизмов, и в результате как настоящее изобретение создали микроорганизм, продуцирующий инозин с высоким выходом/в высокой концентрации.
Сущность изобретения
Одно или несколько воплощений настоящего изобретения относятся к микроорганизму рода Corynebacterium, который продуцирует инозин с высоким выходом/в высокой концентрации, в котором путь катаболизма инозина блокируется, и микроорганизм является «текучим» (leaky) ауксотрофом по аденину и также текучим ауксотрофом по гуанину.
Одно или несколько воплощений настоящего изобретения относятся к способу получения инозина с высоким выходом/в высокой концентрации, включающему культивирование микроорганизма.
Краткое описание фигур
Вышеуказанные и другие особенности и преимущества настоящего изобретения станут более явными из подробного описания примеров его воплощения со ссылкой на прилагаемые чертежи, из которых:
на фиг.1 показана схема конструирования вектора pDZmrih1 для разрыва структуры гена, кодирующего рибонуклеозид-гидролазу 1; и
на фиг.2 показана схема конструирования вектора pDZmrih2 для разрыва структуры гена, кодирующего рибонуклеозид-гидролазу 2.
Подробное описание изобретения
Теперь настоящее изобретение будет описываться подробно со ссылками на прилагаемые чертежи.
Настоящее изобретение относится к микроорганизму рода Corynebacterium, имеющему способность продуцировать инозин с высоким выходом/в высокой концентрации, в котором путь катаболизма инозина блокируется, и микроорганизм имеет текучий ауксотрофный фенотип по аденину. Микроорганизм также может иметь текучий ауксотрофный фенотип по гуанину.
В микроорганизме рода Corynebacterium, продуцирующем инозин, каскад реакций катаболизма инозина блокируется генетической рекомбинацией. Иными словами, ген, кодирующий рибонуклеозид-гидролазу (rih) 1, и ген, кодирующий rih 2, инактивируются вариацией последовательности, вызванной встраиванием, делецией или заменой основания. В то же время микроорганизм рода Corynebacterium может иметь текучий ауксотрофный фенотип по аденину и/или текучий ауксотрофный фенотип по гуанину, отобранные искусственным мутагенезом.
Примеры микроорганизма рода Corynebacterium включают Corynebacterium glutamicum, Corynebacterium efficiens, Corynebacterium diphtheriae и Corynebacterium ammoniagenes. Предпочтительно микроорганизм рода Corynebacterium может представлять собой Corynebacterium ammoniagenes, предпочтительнее, Corynebacterium ammoniagenes CN04-0027, происходящий от Corynebacterium ammoniagenes ATCC 6872. Родительский штамм Corynebacterium ammoniagenes ATCC 6872, который является штаммом Corynebacterium ammoniagenes дикого типа, предоставляемым Американской коллекцией типовых культур, не продуцирует инозин.
Corynebacterium ammoniagenes CN04-0027 (KCCM 10905) может накапливать инозин в высокой концентрации с высоким выходом непосредственно в культуре, так как он имеет разорванный ген rih1, кодирующий rih1, и ген rih2, кодирующий rih2, причем посредством этого блокируется путь, разрушающий инозин, и в то же время имеет текучий ауксотрофный фенотип по аденину и текучий ауксотрофный фенотип по гуанину.
Среда, используемая для культивирования микроорганизма рода Corynebacterium, которая описана в подробном описании, включающем примеры, может представлять собой питательную среду, минимальную среду, посевную среду или среду для ферментации в колбах, и пример состава такой среды показан ниже в таблице 1. Однако состав среды не ограничивается примерами, приведенными в таблице 1, и может соответствовать любой среде для культивирования, подходящей для использования при культивировании микроорганизма рода Corynebacterium, которую можно использовать.
Таблица 1
Состав среды
Тип среды Состав среды
Питательная 1% пептона, 1% мясного экстракта, 0,25% хлорида натрия, 1% дрожжей, 2% глюкозы, 0,3% сульфата натрия, 0,1% KH2PO4, 0,3% K2HPO4, 0,3% MgSO4, 10 мг/л сульфата железа, 1 мг/л ZnSO4, 3,6 мг/л MnCl2, 20 мг/л L-цистеина, 10 мг/л пантотената кальция, 5 мг/л гидрохлорида тиамина, 30 мкг/л биотина, 20 мг/л аденина, 20 мг/л гуанина, 2% агара, рН 7,2
Посевная среда 5% глюкозы, 0,5% пептона, 0,5% мясного экстракта, 0,25% хлорида натрия, 1% дрожжевого экстракта, 100 мг/л аденина, 100 мг/л гуанина, рН 7,2
Среда для ферментации в колбах 0,1% глутамата натрия, 1% хлорида аммония. 1,2% MgSO4, 0,01% CaCl2, 20 мг/л сульфата железа, 20 мг/л MgSO4, 20 мг/л ZnSO4, 5 мг/л CuSO4, 23 мг/л L-цистеина, 24 мг/л аланина, 8 мг/л никотиновой кислоты, 45 мкг/л биотина, 5 мг/л гидрохлорида тиамина, 50 мг/л аденина, 30 мг/л гуанина, 1,9% - 85% фосфорной кислоты, 6% редуцирующего сахара, полученного смешиванием фруктозы, глюкозы и мелассы, рН 7,2
Микроорганизм рода Corynebacterium может представлять собой мутантный штамм с усиленной продуктивностью инозина, полученный способом, в котором структуры генов rih1 и rih2, которые кодируют, соответственно, rih1 и rih2, разорваны с целью блокирования пути катаболизма инозина и накопления инозина в культуре организма; к микроорганизму применяют искусственный мутагенез для того, чтобы отобрать текучий ауксотроф по аденину, и затем подтверждают текучий ауксотроф по гуанину.
Микроорганизм рода Corynebacterium может представлять собой рекомбинантный штамм Corynebacterium ammoniagenes ATCC 6872, который получают трансформацией с помощью рекомбинантного вектора, несущего гены rih1 и rih2, которые уже опубликованы одним из специалистов в данной области техники, которым принадлежит настоящее изобретение, с преждевременной мутацией терминации, созданной встраиванием, делецией или заменой основания, где трансляция генов rih1 и rih2 осуществлена не должным образом, что ведет к инактивации рибонуклеозид-гидролазы 1 и рибонуклеозид-гидролазы 2, ферменты rih1 и rih2 инактивируются, и таким образом блокируется путь катаболизма инозина.
В рекомбинантном штамме, в котором каскад реакций катаболизма инозина блокирован, гены rih1 и rih2, которые инактивированы из-за вариации последовательностей, могут иметь последовательность, показанную SEQ ID NO:9 и SEQ ID NO:10, соответственно.
В воплощении настоящего изобретения, кроме того, к рекомбинантному штамму, в котором каскад реакций разрушения инозина блокирован текучим ауксотрофным фенотипом по аденину, можно применить рентгеновское или УФ-излучение или химический мутаген, такой как N-метил-N-нитроN-нитрозогуанин, диэтилсульфид или этиламин. После обработки рекомбинантного штамма химическим мутагеном штамм высевают на минимальную среду состава, показанного в таблице 1, и отбирают отдельные колонии, показывающие текучий ауксотрофный фенотип по аденину, которые растут в среде без аденина, но растут быстрее в среде, включающей аденин. Затем каждую отдельную колонию культивируют в питательной среде с последующим культивированием в посевной среде в течение 24 часов и затем культивируют в среде для ферментации в течение 5-6 суток, и из полученных штаммов штамм с наивысшей продуктивностью по инозину, накопленному в ферментационной культуре, можно отобрать как текучий ауксотрофный штамм по аденину, в котором путь катаболизма инозина блокирован.
Кроме того, отобранный штамм с текучим ауксотрофным фенотипом по аденину можно подвергнуть мутагенезу, описанному выше, в котором штамм обрабатывают химическим мутагеном, причем отбирают штаммы, показывающие текучий ауксотрофный фенотип по гуанину, каждый штамм культивируют в питательной среде, посевной среде и среде для ферментации, и затем штамм с наивысшей продуктивностью по инозину, накопленному в ферментационной культуре, отбирают как продуцирующий инозин микроорганизм с текучим ауксотрофным фенотипом по аденину и гуанину, в котором блокирован путь катаболизма инозина.
Настоящее изобретение также относится к способу получения инозина, который включает культивирование микроорганизма рода Corynebacterium, в котором блокирован путь катаболизма инозина, и который имеет текучий ауксотрофный фенотип по аденину и гуанину и продуцирует инозин в высокой концентрации с высоким выходом, для получения инозина в микроорганизме или культуре; и извлечение инозина из микроорганизма или культуры.
В способе получения инозина микроорганизм рода Corynebacterium могут представлять собой Corynebacterium ammoniagenes CN04-0027 (KCCM 10905).
Способ получения инозина включает культивирование микроорганизма рода Corynebacterium для получения инозина в микроорганизме или культуре.
При культивировании микроорганизма рода Corynebacterium штамм Corynebacterium культивируют в типичной среде, содержащей соответствующие количества источника углерода, источника азота, аминокислоту, витамин или другие питательные вещества, при регулируемых температуре и рН в аэробных условиях.
В этом отношении источник углерода может представлять собой углевод, такой как глюкоза или стерилизованная предварительно обработанная меласса (т.е. меласса, превращенная в редуцирующий сахар), источник азота может представлять собой любой неорганический источник азота, такой как аммиак, хлорид аммония или сульфат аммония; или органический источник азота, такой как пептон, NZ-амин, мясной экстракт, дрожжевой экстракт, кукурузный экстракт, гидролизат казеина, рыба или продукты ее разложения или обезжиренный соевый жмых или продукты его разложения. В качестве минералов можно использовать KH2PO4, K2HPO4, сульфат магния, сульфат железа, сульфат марганца или карбонат кальция (СаСО3), и если желательно, можно добавлять витамины и основания, которые требуются для ауксотрофа.
Культивирование можно осуществлять в аэробных условиях, например, при встряхивании культуры или аэрированном перемешивании культуры при температуре в интервале 28-36°С. Во время процесса культивирования можно поддерживать рН среды при рН 6 - рН 8. Культивирование можно осуществлять в течение 5-6 суток, и инозин, накопленный прямой ферментацией, можно анализировать HPLC.
Одно или несколько воплощений настоящего изобретения теперь будут описываться полнее с обращением к следующим далее примерам. Однако указанные примеры приводятся только в целях пояснения и не предназначены для ограничения объема настоящего изобретения.
Сведения, подтверждающие возможность осуществления изобретения
Пример 1. Создание штамма, в котором структура гена rih разорвана с использованием вектора pDZ для встраивания в хромосому
Для того чтобы гены, кодирующие rih1 и rih2, инактивировать, вызывая изменение последовательности в генах путем встраивания, замены или делеции так, что блокируется путь разрушения инозина, в качестве рекомбинантного вектора используют вектор pDZ, образованный от вектора pACYC177 (New England Biolab, GenBank, инвентарный №X06402), плазмидный клонирующий вектор Е.coli (публикация патента Кореи №07-94433).
На фиг.1 показана схема конструирования вектора pDZmrih1 для разрыва структуры гена, кодирующего rih1. Фиг.2 отображает процесс конструирования вектора pDZmrih2 для разрыва структуры гена, кодирующего rih2.
Для того чтобы амплифицировать ген, кодирующий rih1, и ген, кодирующий rih2, сначала осуществляют ПЦР (PCR) с использованием хромосомной ДНК Corynebacterium ammoniagenes ATCC 6872 в качестве матрицы и праймеров, имеющих последовательности SEQ ID NO:1-4, и праймеров, имеющих последовательности SEQ ID NO:5-8, соответственно.
Подробнее, осуществляют ПЦР гена, кодирующего rih1, с использованием хромосомной ДНК Corynebacterium ammoniagenes ATCC 6872 в качестве матрицы и праймеров, имеющих последовательности SEQ ID NO:1 и 2, и праймеров, имеющих последовательности SEQ ID NOs:3 и 4, соответственно, и получают фрагмент rih1-А и фрагмент rih1-В. Затем осуществляют ПЦР с использованием полученных фрагментов rih1-А и rihl-В в качестве матрицы и использованием праймеров SEQ ID NO:1 и 4, и получают фрагмент мутантного гена с вариацией последовательности, т.е. mrih1. Кроме того, для того, чтобы получить фрагмент мутантного гена mrih2 с изменением последовательности в rih2, осуществляют ПЦР гена, кодирующего rih2, с использованием хромосомной ДНК Corynebacterium ammoniagenes ATCC 6872 в качестве матрицы, и праймеров SEQ ID NO:5 и 6 и праймеров SEQ ID NO:7 и 8, соответственно, и получают фрагмент rih2-А и фрагмент rih2-B, и осуществляют ПЦР с использованием полученных фрагментов rih2-A и rih2-B в качестве матрицы и использованием праймеров SEQ ID NO: 5 и 8. Условия ПЦР, осуществляемой для получения фрагментов rih1-A, rih1-B, rih2-A и rih2-B, следующие: начальная денатурация при 94°С в течение 5 минут; 20 циклов денатурации при 94°С в течение 30 секунд, отжиг при 52°С в течение 30 секунд, и наращивание при 72°С в течение 1 минуты: и заключительное наращивание при 72°С в течение 7 минут. Условия ПЦР, осуществляемой для получения фрагментов мутантных генов путем комбинирования фрагментов rih1 А и В и фрагментов rih2 А и В, соответственно, следующие: начальная денатурация при 94°С в течение 5 минут; 25 циклов денатурации при 94°С в течение 30 секунд, отжиг при 50°С в течение 30 секунд, и наращивание при 72°С в течение 1 минуты: и заключительное наращивание при 72°С в течение 7 минут. Амплифицированные mrih1, mrih2 и вектор pDZ гидролизуют с рестриктазой Xbal и затем для получения рекомбинантного вектора pDZmrih1 и pDZmrih2 лигируют вместе лигазой Т4.
Для того чтобы мутировать последовательность гена rih2 на хромосоме Corynebacterium путем делеции основания, используют сконструированный вектор pDZmrih2 для трансформации Corynebacterium ammoniagenes ATCC 6872 дикого типа посредством электропорации (способ трансформации, раскрытый в Appl. Microbiol. Biotechnol. (1999), 52: 541-545). Затем трансформированные штаммы, в которых вектор pDZmrih2 встроен в хромосому посредством гомологичной рекомбинации с геном rih2, отбирают в среде для отбора, содержащей 25 мг/л канамицина. Успешное встраивание вектора pDZmrih2 в хромосому подтверждают путем оценки того, показывают ли колонии синее окрашивание на твердой среде, содержащей X-gal (5-бром-4-хлор-3-индолил-β-D-галактозид). Каждый штамм, в котором в хромосому посредством гомологичной рекомбинации встроен вектор pDZmrih2, культивируют при встряхивании в питательной среде при 30°С в течение 8 часов, и культивированный штамм серийно разводят от 10-4 до 10-10, и затем разведенную культуру высевают на твердую среду, содержащую X-gal. Большинство колоний показывают синий цвет, но также на небольшом уровне существуют белые колонии. В связи с этим, посредством отбора белых колоний отбирают штаммы, в которых последовательность вектора pDZmrih2 удалена из хромосомы при втором кроссинговере. В результате получают штамм, в котором делетирован 262-ой G гена rih2 в хромосоме Corynebacterium ammoniagenes ATCC 6872. Затем, для того, чтобы мутировать последовательность гена rih1 путем замены основания, используют вектор pDZmrih2 для трансформации штамма, полученного выше, который имеет делецию в последовательности гена rih2, и осуществляют процесс отбора с использованием того же способа, который использовали при отборе мутантного штамма гена rih2, и получают Corynebacterium ammoniagenes CN04-0092, в котором 148-ой G гена rih1 заменен на Т, посредством чего блокируется путь разрушения инозина. Отобранный штамм окончательно идентифицируют испытанием на чувствительность к канамицину и анализом последовательности гена методом ПЦР. Мутированные ген rih1 и ген rih2 штамма соответственно имеют последовательности SEQ ID NO:9 и SEQ ID NO:10.
Пример 2. Отбор мутантного штамма CN04-0093, имеющего текучий ауксотрофный фенотип по аденину
Corynebacterium ammoniagenes CN04-0092, полученный в примере 1, суспендируют в фосфатном буфере (рН 7,0) или цитратном буфере (рН 5,5) в концентрации 107-108 клеток/мл, к полученной суспензии добавляют N-метил-N-ниро-N-нитрозогуанин до конечной концентрации 10-50 мкг/мл, и полученную смесь выдерживают при комнатной температуре или 30-32°С в течение 40-90 минут для того, чтобы вызвать мутацию. Клетки, полученные после центрифугирования, промывают три раза 0,85% солевым раствором, полученные клетки соответствующим образом разводят в минимальной среде состава, показанного в таблице 1, содержащей 2% агара, высевают и культивируют при 30-34°С в течение 4-5 суток, и получают колонии. Полученные колонии переносят в среду без аденина и среду, содержащую 100 мг/л аденина, соответственно, и культивируют в указанных средах в течение 3-4 суток, и затем отбирают колонии, которые растут в среде без аденина и быстрее растут в среде, содержащей 100 мг/л аденина. После того как отобранные колонии идентифицированы как штаммы, имеющие текучий ауксотрофный фенотип по аденину, каждую полученную колонию культивируют в питательной среде, состав которой показан в таблице 1, культивируют в посевной среде в течение 24 часов и культивируют в среде для ферментации в течение 5-6 суток. Через процесс культивирования отбирают штамм, имеющий наивысшую продуктивность по инозину, и называют его Corynebacterium ammoniagenes CN04-0093.
Пример 3. Отбор мутантного штамма CN04-0027 (KCCM 10905), имеющего ликовый гуанинауксотрофный фенотип
Corynebacterium ammoniagenes CN04-0093, полученный в примере 2, суспендируют в фосфатном буфере (рН 7,0) или цитратном буфере (рН 5,5) в концентрации 107-108 клеток/мл, к полученной суспензии добавляют N-метил-N-ниро-N-нитрозогуанин до конечной концентрации 10-50 мкг/мл и выдерживают при комнатной температуре или 30-32°С в течение 40-90 минут для того, чтобы вызвать мутацию. Клетки, полученные после центрифугирования, промывают три раза 0,85% солевым раствором, полученные клетки соответствующим образом разводят в минимальной среде состава, показанного в таблице 1, содержащей 2% агара, высевают и затем культивируют при 30-34°С в течение 4-5 суток, и получают колонии. Полученные колонии переносят в среду без гуанина и среду, содержащую 100 мг/л гуанина, соответственно, и культивируют в указанных средах в течение 3-4 суток, и затем отбирают колонии, которые растут в среде без гуанина и быстрее растут в среде, содержащей 100 мг/л гуанина. Каждую полученную колонию культивируют в питательной среде, состав которой показан в таблице 1, культивируют в посевной среде в течение 24 часов и культивируют в среде для ферментации в течение 5-6 суток. Через процесс культивирования отбирают штамм, имеющий наивысшую продуктивность по инозину. Отобранный Corynebacterium ammoniagenes, в котором блокирован путь разрушения инозина, и который имеет текучий ауксотрофный фенотип по аденину и гуанину и продуцирует инозин в высокой концентрации с высоким выходом, называют Corynebacterium ammoniagenes CN04-0027. Corynebacterium ammoniagenes CN04-0027 депонирован 20 декабря 2007 по Будапештскому договору в Корейском центре культур микроорганизмов, расположенном в Hongje 1-dong, Seodaemun-gu, Seoul, под инвентарным № KCCM 10905.
Пример 4. Титр после ферментации в колбе Эрленмейера
Каждые 3 мл посевной среды состава, указанного в таблице 1, помещают в пробирки диаметром 18 мм каждая и стерилизуют под давлением при 120°С в течение 10 минут. Затем Corynebacterium ammoniagenes ATCC 6872, Corynebacterium ammoniagenes CN04-0092, в котором разорваны гены rih1 и rih2, и который имеет текучий ауксотрофный фенотип по аденину, и Corynebacterium ammoniagenes CN04-0027, в котором разорваны гены rih1 и rih2, и который имеет текучий ауксотрофный фенотип по аденину и гуанину, соответственно вносят в пробирки, и каждый штамм культивируют при встряхивании при 37°С в течение 24 часов для использования в качестве культуры для посева. Каждые 27 мл среды для ферментации состава, указанного в таблице 1, распределяют в 250-мл колбы Эрленмейера и стерилизуют под давлением при 120°С в течение 10 минут, и каждые 3 мл культуры для посева вносят в 250-мл колбы Эрленмейера и культивируют в них при встряхивании в течение 5-6 суток. Число оборотов используемой встряхивающей камеры составляет 220 об/мин, и встряхивающую камеру доводят до температуры 32°С и рН 7,2. В результате культивирования количество инозина, накопленного в среде исходного штамма Corynebacterium ammoniagenes ATCC 6872, составляет 0 г/л, и количество инозина, накопленного в среде Corynebacterium ammoniagenes CN04-0092, составляет 1 г/л. Кроме того, количество инозина, накопленного в среде Corynebacterium ammoniagenes CN04-0093 с текучим ауксотрофным фенотипом по аденину, составляет примерно на 2 г/л больше, чем в случае Corynebacterium ammoniagenes CN04-0092, и Corynebacterium ammoniagenes CN04-0027 с текучим ауксотрофным фенотипом по аденину и гуанину продуцирует примерно 5 г/л инозина, что примерно на 2 г/л больше, чем в случае Corynebacterium ammoniagenes CN04-0093. Продуктивность каждого штамма по инозину приводится ниже в таблице 2.
Таблица 2
Штамм Инозин (г/л) Показатель повышения концентрации (%) относительно CN04-0092
АТСС 6872 0 -
CN04-0092 0,9 -
CN04-0093 2.9 220%
CN04-0027 5,1 460%
Как описано выше, согласно одному или нескольким воплощениям настоящего изобретения, когда инозин получают с использованием Corynebacterium ammoniagenes CN04-0027 (КССМ 10905), высокую концентрацию инозина с высоким выходом можно получить прямой ферментацией, и затраты на получение могут быть снижены из-за снижения расхода сахаров.
Хотя настоящее изобретение определенно показано и описано с обращением к примерам его воплощения, специалистам в данной области техники будет понятно, что можно осуществить различные изменения в их форме и деталях без отхода от сущности и объема настоящего изобретения, определенных приведенной далее формулой изобретения.

Claims (2)

1. Штамм микроорганизма Corynebacterium ammoniagenes CN04-0027 (KCCM 10905), продуцирующий инозин.
2. Способ получения инозина, включающий культивирование микроорганизма по п.1 или 2 для получения инозина в микроорганизме или культуре и извлечение инозина из микроорганизма или культуры.
RU2010132638/10A 2008-01-04 2009-01-02 Штамм микроорганизма corynebacterium ammoniagenes, продуцирующий инозин, и способ получения инозина с его использованием RU2469084C2 (ru)

Applications Claiming Priority (3)

Application Number Priority Date Filing Date Title
KR1020080001441A KR100959662B1 (ko) 2008-01-04 2008-01-04 이노신 생산능을 갖는 코리네박테리움속 미생물 및 이를이용한 이노신의 생산 방법
KR10-2008-0001441 2008-01-04
PCT/KR2009/000017 WO2009088184A2 (en) 2008-01-04 2009-01-02 Microorganism of the genus corynebacterium having the ability to produce inosine, and an inosine production method using the same

Publications (2)

Publication Number Publication Date
RU2010132638A RU2010132638A (ru) 2012-02-10
RU2469084C2 true RU2469084C2 (ru) 2012-12-10

Family

ID=40853574

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2010132638/10A RU2469084C2 (ru) 2008-01-04 2009-01-02 Штамм микроорганизма corynebacterium ammoniagenes, продуцирующий инозин, и способ получения инозина с его использованием

Country Status (9)

Country Link
US (1) US8551736B2 (ru)
EP (1) EP2233563B1 (ru)
JP (1) JP5377514B2 (ru)
KR (1) KR100959662B1 (ru)
CN (1) CN101939413B (ru)
BR (1) BRPI0906487B1 (ru)
MX (1) MX2010007429A (ru)
RU (1) RU2469084C2 (ru)
WO (1) WO2009088184A2 (ru)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2723038C1 (ru) * 2017-12-15 2020-06-08 СиДжей ЧеилДжеданг Корпорейшн Продуцирующий IMP микроорганизм и способ получения IMP с его использованием

Families Citing this family (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPWO2012157699A1 (ja) 2011-05-18 2014-07-31 味の素株式会社 動物用免疫賦活剤、それを含む飼料及びその製造方法
KR101916611B1 (ko) * 2017-12-15 2018-11-07 씨제이제일제당 (주) 신규 폴리펩타이드 및 이를 이용한 imp 생산방법

Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2002051984A1 (en) * 2000-12-26 2002-07-04 Cheil Jedang Corporation Microorganism producing 5'-inosinic acid and process for producing 5'-inosinic acid using the same

Family Cites Families (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
TWI222464B (en) * 1999-02-08 2004-10-21 Kyowa Hakko Kogyo Kk Process for producing purine nucleotides
KR100397322B1 (ko) * 2000-12-30 2003-09-06 씨제이 주식회사 엘-라이신의 제조방법
KR100505925B1 (ko) * 2002-12-11 2005-08-03 씨제이 주식회사 5’-크산틸산을 생산하는 미생물
KR100882418B1 (ko) 2007-01-15 2009-02-05 씨제이제일제당 (주) 이노신을 생산하는 미생물 및 그를 이용한 이노신 제조방법

Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2002051984A1 (en) * 2000-12-26 2002-07-04 Cheil Jedang Corporation Microorganism producing 5'-inosinic acid and process for producing 5'-inosinic acid using the same

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
HYUN-SOO KIM et al., Genes encoding ribonucleoside hyrolase 1 and 2 from Corynebacterium ammoniagenes, Microbiology, 2006, Vol.152, p.p.1169-1177. *

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2723038C1 (ru) * 2017-12-15 2020-06-08 СиДжей ЧеилДжеданг Корпорейшн Продуцирующий IMP микроорганизм и способ получения IMP с его использованием

Also Published As

Publication number Publication date
US8551736B2 (en) 2013-10-08
WO2009088184A2 (en) 2009-07-16
BRPI0906487B1 (pt) 2018-11-13
JP2011508599A (ja) 2011-03-17
EP2233563A4 (en) 2011-08-17
BRPI0906487A2 (pt) 2015-08-04
CN101939413A (zh) 2011-01-05
MX2010007429A (es) 2010-11-30
KR100959662B1 (ko) 2010-05-26
CN101939413B (zh) 2012-06-13
EP2233563B1 (en) 2013-11-13
RU2010132638A (ru) 2012-02-10
KR20090075548A (ko) 2009-07-08
EP2233563A2 (en) 2010-09-29
US20110003342A1 (en) 2011-01-06
WO2009088184A3 (ko) 2009-09-17
JP5377514B2 (ja) 2013-12-25

Similar Documents

Publication Publication Date Title
KR101166027B1 (ko) 5'-이노신산 생산성이 향상된 코리네박테리움 속 미생물 및 이를 이용한 핵산의 생산방법
CN103243042B (zh) 具有增强的l-赖氨酸产率的棒状杆菌属微生物以及使用所述微生物生产l-赖氨酸的方法
US8058036B2 (en) Microorganism of Corynebacterium genus having enhanced L-lysine productivity and a method of producing L-lysine using the same
CN100529060C (zh) 具有提高l-赖氨酸生产能力的棒状杆菌属微生物及使用其生产l-赖氨酸的方法
RU2276688C2 (ru) БАКТЕРИЯ, ПРИНАДЛЕЖАЩАЯ К РОДУ Escherichia,- ПРОДУЦЕНТ L-ГИСТИДИНА И СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ L-ГИСТИДИНА
CN101583709B (zh) 产生肌苷的微生物以及使用其生产肌苷的方法
CN100519740C (zh) 具有改善的l-赖氨酸生产力的棒杆菌属微生物和利用棒杆菌微生物生产l-赖氨酸的方法
RU2469084C2 (ru) Штамм микроорганизма corynebacterium ammoniagenes, продуцирующий инозин, и способ получения инозина с его использованием
KR101049023B1 (ko) 5'-이노신산 생산능이 향상된 코리네박테리움암모니아게네스 및 그를 이용한 5'-이노신산의 생산방법
KR101056872B1 (ko) 핵산계 물질의 생산성이 향상된 코리네박테리움 속 미생물 및 그를 이용한 핵산계 물질의 생산 방법
RU2312140C2 (ru) Штамм corynebacterium ammoniagenes - продуцент 5'-ксантиловой кислоты и способ получения 5'-ксантиловой кислоты
JPH0584067A (ja) 発酵法によるイノシンの製造法
KR100547586B1 (ko) ushA 유전자가 불활성화된 재조합 에스케리키아속 미생물 및 이를 이용한 5'-구아닐산 합성효소를 배지 중에 축적시키는 방법
KR100694427B1 (ko) 코리네박테리움 속 미생물 및 이를 이용한 5'-이노신산의제조 방법
KR100964078B1 (ko) 5'-이노신산 생산능이 향상된 코리네박테리움암모니아게네스 및 그를 이용한 5'-이노신산 생산 방법
KR100789272B1 (ko) L-라이신 생산능이 향상된 코리네박테리움 속 미생물 및그를 이용하여 l-라이신을 생산하는 방법
KR20100038639A (ko) 변형된 purC 유전자를 가진 미생물 및 이를 이용한 이노신의 생산방법
KR20100088906A (ko) 향상된 이노신 생산성을 갖는 미생물 및 이를 이용한 이노신의 생산방법