RU2325183C1 - Production method of animal colibacillosis vaccine - Google Patents
Production method of animal colibacillosis vaccine Download PDFInfo
- Publication number
- RU2325183C1 RU2325183C1 RU2006143522/13A RU2006143522A RU2325183C1 RU 2325183 C1 RU2325183 C1 RU 2325183C1 RU 2006143522/13 A RU2006143522/13 A RU 2006143522/13A RU 2006143522 A RU2006143522 A RU 2006143522A RU 2325183 C1 RU2325183 C1 RU 2325183C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- cultivation
- escherichia coli
- att
- bacterial
- coli cells
- Prior art date
Links
Landscapes
- Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Abstract
Description
Изобретение относится к ветеринарной микробиологии и биотехнологии, может быть использовано при разработке средств специфической профилактики, в частности для получения вакцины против эшерихиоза животных.The invention relates to veterinary microbiology and biotechnology, can be used in the development of means of specific prophylaxis, in particular for obtaining a vaccine against escherichiosis of animals.
Известен способ получения вакцины против эшерихиоза животных, включающий культивирование эшерихий в жидкой питательной среде, с последующей инактивацией (Патент РФ №2043771, «Вакцина против эшерихиоза животных», Бюл. №26, 20.09.1995, МКИ А61К 39/108).A known method of obtaining a vaccine against animal escherichiosis, including the cultivation of Escherichia in a liquid nutrient medium, followed by inactivation (RF Patent No. 2043771, "Vaccine against animal Escherichiosis", Bull. No. 26, 09/20/1995, MKI AK61K 39/108).
Недостатком известной вакцины является низкое качество целевого продукта, выявляемое с низкой антигенной и иммуногенной активностью штаммов эшерихий, содержащих адгезивные антитела, недостаточной иммуногенностью из-за неполноты антигенного состава входящих в вакцину компонентов, а именно отсутствия иммунитета против штаммов с адгезивными антигенами Att-25, а также наличия высокотоксичных штаммов серогрупп 078, 0141 и др., предназначенных для создания иммунитета к O-антигенам, обусловливает высокое содержание балластных веществ, реактогенность и сенсибилизацию организма животных.A disadvantage of the known vaccine is the low quality of the target product, detected with low antigenic and immunogenic activity of Escherichia strains containing adhesive antibodies, insufficient immunogenicity due to incompleteness of the antigenic composition of the components of the vaccine, namely the lack of immunity against strains with Att-25 adhesive antigens, and also the presence of highly toxic strains of serogroups 078, 0141, etc., designed to create immunity to O-antigens, causes a high content of ballast substances, a reactogen spine and sensitization of animals.
Задачей заявленного технического решения является повышение качества целевого продукта за счет расширения его антигенного спектра и обогащения его основными протективными адгезивными антителами, повышения их антигенной и иммуногенной активности, которые вызывают образование антител, препятствующих адсорбции энтеропатогенных эшерихий в тонком отделе кишечника животных и ингибирующих основные процессы развития колиинфекции (эшерихиоза), а также уменьшает неспецифическую нагрузку на иммунную систему животных и снижает реактогенность.The objective of the claimed technical solution is to improve the quality of the target product by expanding its antigenic spectrum and enriching it with the main protective adhesive antibodies, increasing their antigenic and immunogenic activity, which cause the formation of antibodies that interfere with the adsorption of enteropathogenic Escherichia in the small intestine of animals and inhibit the main processes of development of coli infection (Escherichiosis), and also reduces the non-specific load on the immune system of animals and reduces reactogenic mb.
Поставленная задача решается в способе получения вакцины против эшерихиоза животных, включающем культивирование эшерихий в жидкой питательной среде, исследования физико-химических и биологических показателей в процессе роста бактериальной массы с последующим прекращением культивирования эшерихий, концентрирование их и инактивацией, отличающемся тем, что культивируют эшерихии, содержащие адгезивные антигены К 88 ab, К 88 ас, К 88 ad, K99, F-41, Att-25, 987P, во время культивирования эшерихий дополнительно определяют активность фимбриальных адгезинов в реакции пассивной гемагглютинации клеточной бактериальной массы, затем прекращение культивирования осуществляют при значении титров фимбриальных адгезинов эшерихий, содержащих адгезивные антигены К 88 ab, К 88 ас, К 88 ad, K99, F-41, Att-25, 987P, равные как 1:2048-4096; 1:1024-2048; 1:256-512; 1:1024-2056; 1:1024-2056; 1:32-64; 1:256-512 соответственно.The problem is solved in a method of obtaining a vaccine against escherichiosis of animals, including the cultivation of Escherichia in a liquid nutrient medium, the study of physico-chemical and biological indicators in the process of growth of the bacterial mass, followed by the termination of the cultivation of Escherichia, their concentration and inactivation, characterized in that they cultivate Escherichia containing adhesive antigens K 88 ab, K 88 ac, K 88 ad, K99, F-41, Att-25, 987P, during the cultivation of Escherichia, the activity of fimbrial adhesins is additionally determined in the reaction of passive hemagglutination of the bacterial cell mass, then the cultivation is terminated at titers of Escherichia fimbrial adhesins containing adhesive antigens K 88 ab, K 88 ac, K 88 ad, K99, F-41, Att-25, 987P, equal to 1 : 2048-4096; 1: 1024-2048; 1: 256-512; 1: 1024-2056; 1: 1024-2056; 1: 32-64; 1: 256-512, respectively.
Поставленная задача решается также тем, что культуральную жидкость освобождают от клеточной бактериальной массы центрифугированием при 3000-5000 об/мин в течение 20-25 минут.The problem is also solved by the fact that the culture fluid is freed from the bacterial cell mass by centrifugation at 3000-5000 rpm for 20-25 minutes.
Известно получение и использование фибриальных адгезинов для получения антисывороток (патент США №4769240, кл. А61К 39/02, 1988, патент РФ №2077337, А61К 39/02. Бюл. 11, 20.04.1997).It is known to obtain and use fibrous adhesins to obtain antisera (US patent No. 4769240, CL A61K 39/02, 1988, RF patent No. 2077337, A61K 39/02. Bull. 11, 04/20/1997).
В патентной и научно-технической литературе не известны технические решения, содержащие признаки, аналогичные заявляемым, т.е. предложение соответствует критерию «новизна».In the patent and scientific and technical literature, technical solutions are not known containing signs similar to those claimed, i.e. the proposal meets the criterion of "novelty."
Предложение осуществимо в лабораторных и промышленных условиях, направлено на решение реальной технической задачи, т.е. предложение «промышленно применимо».The proposal is feasible in laboratory and industrial conditions, aimed at solving a real technical problem, i.e. the proposal is “industrially applicable”.
Существующие вакцины против эшерихиоза животных изготавливают из бактериальной массы эшерихий, выращенной без учета протективной характеристики компонентов клетки возбудителя, функционально относящихся к факторам патогенности. Реакторное культивирование эшерихий до стационарной фазы роста бактерий проводится без учета определения максимального уровня специфической активности, сохранения этой активности и распределения в среде роста протективных фимбриальных адгезинов. Процесс культивирования проводится в неконтролируемом по факторам патогенности режиме. Нами впервые установлено, что при получении максимального выхода биомассы, как это в настоящее время принято при промышленном производстве вакцины против эшерихиоза животных, снижается качество антигенного материала, т.к. по достижении определенной фазы развития культуры под действием собственных ферментов клетки в процессе старения ее происходят деструктивные изменения части компонентов фимбриальных адгезинов, что приводит к потере иммунологически активного материала и недопустимо при производстве эффективной вакцины против эшерихиоза животных. Кроме того, нами установлено, что культивирование эшерихий, содержащих адгезивные антигены К 88 ab, К 88 ас, К 88 ad, K99, F-41, Att-25, 987P, позволяет получить вакцину, именно совпадающую с эпизоотическими штаммами возбудителя колибактериоза животных.Existing vaccines against escherichiosis in animals are made from the bacterial mass of Escherichia, grown without taking into account the protective characteristics of pathogen cell components that are functionally related to pathogenicity factors. Reactive cultivation of Escherichia to the stationary phase of bacterial growth is carried out without taking into account the determination of the maximum level of specific activity, the preservation of this activity and the distribution of protective fimbrial adhesins in the growth medium. The cultivation process is carried out in an uncontrolled mode of pathogenicity factors. We first established that when obtaining the maximum yield of biomass, as is currently customary in the industrial production of a vaccine against animal escherichiosis, the quality of antigenic material decreases, because upon reaching a certain developmental phase of the culture under the influence of the cell’s own enzymes during its aging, destructive changes occur in part of the components of fimbrial adhesins, which leads to the loss of immunologically active material and is unacceptable in the production of an effective vaccine against escherichiosis of animals. In addition, we found that the cultivation of Escherichia, containing adhesive antigens K 88 ab, K 88 ac, K 88 ad, K99, F-41, Att-25, 987P, allows to obtain a vaccine that exactly coincides with epizootic strains of the causative agent of animal colibacteriosis.
Впервые предложен способ получения вакцины против эшерихиоза животных, в котором вместо определения критерия количества клеток эшерихий по физико-химическим и биологическим показателям, а также по оценке содержания адгезивных антигенов, максимальный уровень производства антигенов определяют по уровню активности фимбриальных адгезинов эшерихий в реакции пассивной гемагглютинации в культуральной жидкости, освобожденной от клеточной бакмассы, что позволяет получить неочевидный положительный эффект - повышение качества целевого продукта и ускорение способа, т.е. предложение соответствует критериям «новизна» и «изобретательский уровень».For the first time, a method for producing a vaccine against escherichiosis of animals has been proposed, in which instead of determining the criterion for the number of Escherichia cells by physicochemical and biological indicators, as well as by assessing the content of adhesive antigens, the maximum level of antigen production is determined by the level of activity of Escherichia fimbrial adhesins in passive hemagglutination reaction in fluid freed from the cellular back mass, which allows you to get a non-obvious positive effect - improving the quality of the target Ukta and acceleration method, i.e. the proposal meets the criteria of "novelty" and "inventive step".
Способ иллюстрируется на следующих примерах.The method is illustrated in the following examples.
Пример 1.Example 1
Для получения вакцины против эшерихиоза животных отобраны семь производственных штаммов Е.coli, содержащих адгезивные антигены К 88 ab, К 88 ас, К 88 ad, K99, F-41, Att-25, 987P (штаммы №729, 661/16, 798, 957, 688/19, 4 и 745), которые выращивают в бульоне Хоттингера, содержащем аминный азот - 150 мг%, триптофан - 50 мг% при рН 7,8. Каждый штамм выращивают отдельно. В каждой культуре в процессе ее роста определяют активность фимбриальных адгезинов эшерихий, для чего в пробе культуры с помощью центрифугирования при 3000 об/мин в течение 20 мин отделяют культуральную жидкость от бактериальной массы. Бактериальную массу ресуспензируют в 2 М фосфатно-мочевинном буфере с рН 7,4, концентрацию клеток доводят до 100 млрд. микробных тел в 1 мл и прогревают при температуре 60°С в течение 20 минут. Далее взвесь микробных тел охлаждают до 5°С и центрифугируют при 13000 об/мин в течение 20 мин. Полученный супернатант используют для определения активности фимбриальных адгезинов в реакции пассивной гемагглютинации. Через 5 час культивирования при значении титров фимбриальных адгезинов эшерихий, содержащих адгезивные антигены К 88 ab, К 88 ас, К 88 ad, K99, F-41, Att-25, 987P, равные как 1:2048; 1:1024; 1:256; 1:1024; 1:1024; 1:32; 1:256 соответственно, культивирование вышеуказанных штаммов прекращают. Отделяют бактериальную массу центрифугированием при 3000 об/мин в течение 20 мин, которую ресуспензируют в 2 М фосфатно-мочевинном буфере с рН 7,4, концентрацию клеток доводят до 100 млрд. микробных тел в 1 мл и прогревают при температуре 60°С в течение 20 минут. Далее взвесь микробных тел охлаждают до 5°С и центрифугируют при 10000 об/мин в течение 20 мин. Полученные супернатанты каждого штамма в равных частях смешивают, консервируют формалином в конечной концентрации 0,3% и используют для получения целевого продукта (состав 1).Seven production strains of E. coli containing adhesive antigens K 88 ab, K 88 as, K 88 ad, K99, F-41, Att-25, 987P (strains No. 729, 661/16, 798 were selected for the vaccine against escherichiosis in animals). , 957, 688/19, 4 and 745), which are grown in Hottinger broth containing amine nitrogen - 150 mg%, tryptophan - 50 mg% at pH 7.8. Each strain is grown separately. In each culture, in the process of its growth, the activity of Escherichia fimbrial adhesins is determined, for which purpose the culture fluid is separated from the bacterial mass in a culture sample by centrifugation at 3000 rpm for 20 minutes. The bacterial mass is resuspended in 2 M phosphate-urea buffer with a pH of 7.4, the cell concentration is adjusted to 100 billion microbial cells in 1 ml and heated at a temperature of 60 ° C for 20 minutes. Next, a suspension of microbial bodies is cooled to 5 ° C and centrifuged at 13000 rpm for 20 minutes. The obtained supernatant is used to determine the activity of fimbrial adhesins in the passive hemagglutination reaction. After 5 hours of cultivation with titers of Escherichia fimbrial adhesins containing adhesive antigens K 88 ab, K 88 ac, K 88 ad, K99, F-41, Att-25, 987P, equal to 1: 2048; 1: 1024; 1: 256; 1: 1024; 1: 1024; 1:32; 1: 256, respectively, the cultivation of the above strains is stopped. The bacterial mass is separated by centrifugation at 3000 rpm for 20 min, which is resuspended in 2 M phosphate-urea buffer with a pH of 7.4, the cell concentration is adjusted to 100 billion microbial bodies in 1 ml and heated at a temperature of 60 ° C for 20 minutes. Next, a suspension of microbial bodies is cooled to 5 ° C and centrifuged at 10,000 rpm for 20 minutes. The obtained supernatants of each strain in equal parts are mixed, canned with formalin in a final concentration of 0.3% and used to obtain the target product (composition 1).
Пример 2.Example 2
Для получения вакцины против эшерихиоза животных отобраны семь производственных штаммов Е.coli, содержащих адгезивные антигены К 88 ab, К 88 ас, К 88 ad, K99, F-41, Att-25, 987P (штаммы №729, 661/16, 798, 957, 688/19, 4 и 745, которые выращивают в бульоне Хоттингера, содержащем аминный азот - 150 мг%, триптофан - 50 мг% при рН 7,8. Каждый штамм выращивают отдельно. В каждой культуре в процессе ее роста определяют активность фимбриальных адгезинов эшерихий, для чего в пробе культуры с помощью центрифугирования при 3000 об/мин в течение 20 мин отделяют культуральную жидкость от бактериальной массы. Бактериальную массу ресуспензируют в 2,1 М фосфатно-мочевинном буфере с рН 7,3, концентрацию клеток доводят до 120 млрд. микробных тел в 1 мл и прогревают при температуре 65°С в течение 25 мин. Далее взвесь микробных тел охлаждают до 4°С и центрифугируют при 15000 об/мин в течение 25 мин. Полученный супернатант используют для определения активности фимбриальных адгезинов в реакции пассивной гемагглютинации. Через 6 час культивирования при значении титров фимбриальных адгезинов эшерихий, содержащих адгезивные антигены К 88 ab, К 88 ас, К 88 ad, K99, F-41, Att-25, 987P, равные как 1:4096; 1:2048; 1:512; 1:2056; 1:2056; 1:64; 1:512 соответственно, культивирование вышеуказанных штаммов прекращают. Отделяют бактериальную массу центрифугированием при 3000 об/мин в течение 20 мин, которую ресуспензируют в 2,1 М фосфатно-мочевинном буфере с рН 7,3, концентрацию клеток доводят до 120 млрд. микробных тел в 1 мл и прогревают при температуре 65°С в течение 25 минут. Далее взвесь микробных тел охлаждают до 4°С и центрифугируют при 15000 об/мин в течение 25 мин. Полученные супернатанты каждого штамма в равных частях смешивают, консервируют формалином в конечной концентрации 0,5% и используют для получения целевого продукта (состав 2).Seven production strains of E. coli containing adhesive antigens K 88 ab, K 88 as, K 88 ad, K99, F-41, Att-25, 987P (strains No. 729, 661/16, 798 were selected for the vaccine against escherichiosis in animals). , 957, 688/19, 4 and 745, which are grown in Hottinger broth containing amine nitrogen - 150 mg%, tryptophan - 50 mg% at pH 7.8. Each strain is grown separately. In each culture, the activity is determined during its growth. Escherichia fimbrial adhesins, for which purpose the culture fluid from the bacterium is separated by centrifugation at 3000 rpm for 20 minutes Bacterial mass is resuspended in 2.1 M phosphate-urea buffer with a pH of 7.3, the cell concentration is adjusted to 120 billion microbial cells in 1 ml and heated at a temperature of 65 ° C for 25 minutes, then the suspension of microbial bodies is cooled to 4 ° C and centrifuged at 15000 rpm for 25 minutes, the resulting supernatant is used to determine the activity of fimbrial adhesins in the reaction of passive hemagglutination. After 6 hours of cultivation with titers of Escherichia fimbrial adhesins containing adhesive antigens K 88 ab, K 88 ac, K 88 ad, K99, F-41, Att-25, 987P, equal to 1: 4096; 1: 2048; 1: 512; 1: 2056; 1: 2056; 1:64; 1: 512, respectively, the cultivation of the above strains is stopped. The bacterial mass is separated by centrifugation at 3000 rpm for 20 min, which is resuspended in 2.1 M phosphate-urea buffer with a pH of 7.3, the cell concentration is adjusted to 120 billion microbial bodies in 1 ml and heated at 65 ° C. for 25 minutes. Next, a suspension of microbial bodies is cooled to 4 ° C and centrifuged at 15,000 rpm for 25 minutes. The obtained supernatants of each strain in equal parts are mixed, preserved with formalin in a final concentration of 0.5% and used to obtain the target product (composition 2).
Пример 3.Example 3
Для получения вакцины против эшерихиоза животных отобраны семь производственных штаммов Е.coli, содержащих адгезивные антигены К 88 ab, К 88 ас, К 88 ad, K99, F-41, Att-25, 987P (штаммы №729, 661/16, 798, 957, 688/19, 4 и 745, которые выращивают в бульоне Хоттингера, содержащем аминный азот - 150 мг%, триптофан - 50 мг% при рН 7,8. Каждый штамм выращивают отдельно. В каждой культуре в процессе ее роста определяют активность фимбриальных адгезинов эшерихий, для чего в пробе культуры с помощью центрифугирования при 3000 об/мин в течение 20 мин отделяют культуральную жидкость от бактериальной массы. Бактериальную массу ресуспензируют в 2,05 М фосфатно-мочевинном буфере с рН 7,35, концентрацию клеток доводят до 110 млрд. микробных тел в 1 мл и прогревают при температуре 62,5°С в течение 22,5 мин. Далее взвесь микробных тел охлаждают до 3°С и центрифугируют при 10000 об/мин в течение 22 мин. Полученный супернатант используют для определения активности фимбриальных адгезинов в реакции пассивной гемагглютинации. Через 6 часов культивирования при значении титров фимбриальных адгезинов эшерихий, содержащих адгезивные антигены К 88 ab, К 88 ас, К 88 ad, K99, F-41, Att-25, 987P, равные как 1:4096; 1:2048; 1:512; 1:2056; 1:2056; 1:64; 1:512 соответственно, культивирование вышеуказанных штаммов прекращают. Отделяют бактериальную массу центрифугированием при 3000 об/мин в течение 20 мин, которую ресуспензируют в 1,9 М фосфатно-мочевинном буфере с рН 7,35, концентрацию клеток доводят до 110 млрд. микробных тел в 1 мл и прогревают при температуре 62°С в течение 22 минут. Далее взвесь микробных тел охлаждают до 3°С и центрифугируют при 13000 об/мин в течение 20 мин. Полученные супернатанты каждого штамма в равных частях смешивают, консервируют формалином в конечной концентрации 0,4% и используют для получения целевого продукта (состав 3).Seven production strains of E. coli containing adhesive antigens K 88 ab, K 88 as, K 88 ad, K99, F-41, Att-25, 987P (strains No. 729, 661/16, 798 were selected for the vaccine against escherichiosis in animals). , 957, 688/19, 4 and 745, which are grown in Hottinger broth containing amine nitrogen - 150 mg%, tryptophan - 50 mg% at pH 7.8. Each strain is grown separately. In each culture, the activity is determined during its growth. Escherichia fimbrial adhesins, for which purpose the culture fluid from the bacterium is separated by centrifugation at 3000 rpm for 20 minutes Bacterial mass is resuspended in 2.05 M phosphate-urea buffer with a pH of 7.35, the cell concentration is adjusted to 110 billion microbial cells in 1 ml and heated at a temperature of 62.5 ° C for 22.5 minutes. a suspension of microbial bodies is cooled to 3 ° C and centrifuged at 10,000 rpm for 22 minutes, the resulting supernatant is used to determine the activity of fimbrial adhesins in the reaction of passive hemagglutination. After 6 hours of cultivation with titers of Escherichia fimbrial adhesins containing adhesive antigens K 88 ab, K 88 ac, K 88 ad, K99, F-41, Att-25, 987P, equal to 1: 4096; 1: 2048; 1: 512; 1: 2056; 1: 2056; 1:64; 1: 512, respectively, the cultivation of the above strains is stopped. The bacterial mass is separated by centrifugation at 3000 rpm for 20 min, which is resuspended in 1.9 M phosphate-urea buffer with a pH of 7.35, the cell concentration is adjusted to 110 billion microbial cells in 1 ml and heated at a temperature of 62 ° C. for 22 minutes. Next, a suspension of microbial bodies is cooled to 3 ° C and centrifuged at 13000 rpm for 20 minutes. The obtained supernatants of each strain in equal parts are mixed, preserved with formalin in a final concentration of 0.4% and used to obtain the target product (composition 3).
Пример 4.Example 4
Использовали полученные составы следующим образом. Формируют 4 группы по 100 супоросных свиноматок, подобранных по принципу аналогов. Каждому животному опытных групп вводили вакцину составов 1-3 из расчета 2,5 мл. Каждому животному контрольной группы вводили состав-прототип из расчета 6 мл. В таблице 1 приводятся технические данные вакцин, полученных согласно известному (прототип) и предлагаемому (составы 1-3) техническим решениям.Used the resulting compositions as follows. 4 groups of 100 pregnant sows are formed, selected according to the principle of analogues. Each animal of the experimental groups was administered a vaccine of compositions 1-3 at the rate of 2.5 ml. Each animal in the control group was injected with the composition of the prototype at the rate of 6 ml. Table 1 shows the technical data of the vaccines obtained according to the known (prototype) and proposed (formulations 1-3) technical solutions.
Как показали результаты экспериментальных исследований, предлагаемая вакцина против эшерихиоза животных позволяет повысить сохранность поголовья сельскохозяйственных животных на 29,6-30%.As shown by the results of experimental studies, the proposed vaccine against escherichiosis of animals can increase the safety of livestock of farm animals by 29.6-30%.
Пример 5.Example 5
Использовали полученные составы следующим образом. Формируют 4 группы по 50 стельных коров, подобранных по принципу аналогов. Каждому животному опытных групп вводили вакцину составов 1-3 из расчета 5,0 мл. Каждому животному контрольной группы вводили состав-прототип из расчета 12 мл. В таблице 2 приводятся технические данные вакцин, полученных согласно известному (прототип) и предлагаемому (составы 1-3) техническим решениям.Used the resulting compositions as follows. 4 groups of 50 pregnant cows are formed, selected according to the principle of analogues. Each animal of the experimental groups was administered a vaccine of compositions 1-3 at the rate of 5.0 ml. Each animal in the control group was injected with the composition of the prototype at the rate of 12 ml. Table 2 shows the technical data of the vaccines obtained according to the known (prototype) and proposed (formulations 1-3) technical solutions.
Как показали результаты экспериментальных исследований, предлагаемая вакцина против эшерихиоза животных позволяет повысить сохранность поголовья сельскохозяйственных животных на 6,8-9,2%.As shown by the results of experimental studies, the proposed vaccine against escherichiosis of animals can increase the safety of the livestock of farm animals by 6.8-9.2%.
Как показали результаты экспериментальных исследований, предлагаемая вакцина против эшерихиоза животных позволяет повысить сохранность поголовья сельскохозяйственных животных на 6,8-30%, а также сокращает сроки получения вакцины против эшерихиоза животных на 18-42 часа, поскольку длительность культивирования согласно известному способу составляет 24-48 часов (в предлагаемом способе - 5-6 часов).As shown by the results of experimental studies, the proposed vaccine against escherichiosis of animals can increase the safety of livestock of farm animals by 6.8-30%, and also reduces the time for receiving a vaccine against escherichiosis of animals by 18-42 hours, since the cultivation time according to the known method is 24-48 hours (in the proposed method - 5-6 hours).
Claims (1)
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| RU2006143522/13A RU2325183C1 (en) | 2006-12-08 | 2006-12-08 | Production method of animal colibacillosis vaccine |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| RU2006143522/13A RU2325183C1 (en) | 2006-12-08 | 2006-12-08 | Production method of animal colibacillosis vaccine |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| RU2325183C1 true RU2325183C1 (en) | 2008-05-27 |
Family
ID=39586500
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| RU2006143522/13A RU2325183C1 (en) | 2006-12-08 | 2006-12-08 | Production method of animal colibacillosis vaccine |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| RU (1) | RU2325183C1 (en) |
Cited By (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2708891C1 (en) * | 2018-06-19 | 2019-12-12 | Федеральное государственное бюджетное научное учреждение "Федеральный научный центр - Всероссийский научно-исследовательский институт экспериментальной ветеринарии имени К.И. Скрябина и Я.Р. Коваленко Российской академии наук" (ФГБНУ ФНЦ ВИЭВ РАН) | Vaccine for rota-, coronaviral infection and cattle colibacillosis |
| RU2753410C2 (en) * | 2020-01-14 | 2021-08-16 | Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Кубанский государственный аграрный университет имени И.Т. Трубилина" | Method for obtaining toxoid vaccine against escherichiosis of animals |
Citations (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US4769240A (en) * | 1980-09-15 | 1988-09-06 | Bactex, Inc. | Pili of neisseria and vaccine compositions containing same |
| RU2043771C1 (en) * | 1993-02-25 | 1995-09-20 | Михаил Константинович Пирожков | Vaccine against escherichiosis in animals |
| RU93009805A (en) * | 1993-02-25 | 1996-03-10 | Ю.А. Малахов | METHOD FOR OBTAINING ANTI-ADHESIVE AND ANTITOXIC SERUM AGAINST THE ESCHIROZHOZA AGRICULTURAL ANIMALS |
| RU2077337C1 (en) * | 1993-11-22 | 1997-04-20 | Научно-производственное объединение "Биопрепарат" | Method of fimbrial adhesine preparing |
Family Cites Families (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2043772C1 (en) * | 1993-02-25 | 1995-09-20 | Юрий Алексеевич Малахов | Method of preparing antiadhesive and antitoxic serum against escherichiosis in agriculture animals |
-
2006
- 2006-12-08 RU RU2006143522/13A patent/RU2325183C1/en not_active IP Right Cessation
Patent Citations (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US4769240A (en) * | 1980-09-15 | 1988-09-06 | Bactex, Inc. | Pili of neisseria and vaccine compositions containing same |
| RU2043771C1 (en) * | 1993-02-25 | 1995-09-20 | Михаил Константинович Пирожков | Vaccine against escherichiosis in animals |
| RU93009805A (en) * | 1993-02-25 | 1996-03-10 | Ю.А. Малахов | METHOD FOR OBTAINING ANTI-ADHESIVE AND ANTITOXIC SERUM AGAINST THE ESCHIROZHOZA AGRICULTURAL ANIMALS |
| RU2077337C1 (en) * | 1993-11-22 | 1997-04-20 | Научно-производственное объединение "Биопрепарат" | Method of fimbrial adhesine preparing |
Cited By (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2708891C1 (en) * | 2018-06-19 | 2019-12-12 | Федеральное государственное бюджетное научное учреждение "Федеральный научный центр - Всероссийский научно-исследовательский институт экспериментальной ветеринарии имени К.И. Скрябина и Я.Р. Коваленко Российской академии наук" (ФГБНУ ФНЦ ВИЭВ РАН) | Vaccine for rota-, coronaviral infection and cattle colibacillosis |
| RU2753410C2 (en) * | 2020-01-14 | 2021-08-16 | Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Кубанский государственный аграрный университет имени И.Т. Трубилина" | Method for obtaining toxoid vaccine against escherichiosis of animals |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| CN107569681A (en) | A kind of ox pasteurella multocida disease bivalent inactivated vaccine and preparation method thereof | |
| RU2429012C1 (en) | Method of manufacturing associated vaccine against colibacteriosis, streptococcosis and enterococcal infection of calves and piglets | |
| CN103160555A (en) | Culture medium, culture method and application of high-yield exotoxin of clostridium perfringens | |
| Rahman et al. | Development of experimental oil based inactivated HS vaccine from field Isolates of Pasteurella multocida from Cattle in Bangladesh | |
| CN107875377B (en) | Preparation method of clostridium perfringens type E toxoid vaccine | |
| RU2325183C1 (en) | Production method of animal colibacillosis vaccine | |
| RU2043771C1 (en) | Vaccine against escherichiosis in animals | |
| RU2432174C1 (en) | Method for producing colibacillosis anatoxin | |
| RU2687488C1 (en) | Poly-strain formolated vaccine against calves pneumonia streptococcal etiology | |
| RU2388489C1 (en) | Method for preparing vaccine associated against pseudomonosis and enterococcus infection of nutrias | |
| RU2340357C2 (en) | Vaccine against animal colibacillosis | |
| CN117844686A (en) | Separation, identification and application of avibacterium paragallinarum serum A strain with cross protection effect | |
| RU2649754C2 (en) | Method of manufacture of formolvaccine of hydrooxyaluminum polystammal against streptococcal diseases of large cattle | |
| RU2723580C1 (en) | Method for producing salmon fish vibriosis adsorbed vaccine | |
| RU2109519C1 (en) | Method of preparing vaccine for necrobacteriosis control in animals | |
| RU2538158C1 (en) | Method of production of vaccine associated against colibacillosis, streptococcosis and staphylococcosis of cattle | |
| RU2288002C1 (en) | Method for preparing vaccine against enterococcus infection in nutrias | |
| RU2311199C1 (en) | Vaccine against pasteurellosis in animals | |
| RU2316345C1 (en) | Method for manufacturing associated vaccione against colibacteriosis, salmonellosis, streptococcosis and enterococcal infection in nutrias | |
| RU2301078C1 (en) | Mixed vaccine against coli-bacteriosis, salmonellosis and entrococcus infection in nutria | |
| RU2301680C1 (en) | Mixed vaccine against streptococcosus and enterococcal infection in nutria | |
| RU2309767C1 (en) | Method for manufacturing vaccine against pseudomonosis in swine | |
| RU2851847C1 (en) | Method for producing salmonella enteritidis r-6 ecp-plasmi strain, salmonella enteritidis r-6 ecp-plasmi strain, vaccine based on salmonella enteritidis r-6 ecp-plasmi strain and method for its production | |
| CN103721254A (en) | Method for preparing swine A-type clostridium perfringens aluminum hydroxide inactivated vaccine | |
| RU2761379C1 (en) | Polyvalent inactivated vaccine against swine streptococcosis, method for its production and use |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| RH4A | Copy of patent granted that was duplicated for the russian federation |
Effective date: 20080915 |
|
| MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20111209 |