[go: up one dir, main page]

RU2319132C2 - Усовершенствованный способ выявления клеточных структур в хрусталике глаза экспериментальных животных - Google Patents

Усовершенствованный способ выявления клеточных структур в хрусталике глаза экспериментальных животных Download PDF

Info

Publication number
RU2319132C2
RU2319132C2 RU2005126715/15A RU2005126715A RU2319132C2 RU 2319132 C2 RU2319132 C2 RU 2319132C2 RU 2005126715/15 A RU2005126715/15 A RU 2005126715/15A RU 2005126715 A RU2005126715 A RU 2005126715A RU 2319132 C2 RU2319132 C2 RU 2319132C2
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
lens
lenticular
eosin
solution
hematoxylin
Prior art date
Application number
RU2005126715/15A
Other languages
English (en)
Other versions
RU2005126715A (ru
Inventor
Надежда Витальевна Корсакова
Валентина Ефремовна Сергеева
Original Assignee
Надежда Витальевна Корсакова
Валентина Ефремовна Сергеева
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Надежда Витальевна Корсакова, Валентина Ефремовна Сергеева filed Critical Надежда Витальевна Корсакова
Priority to RU2005126715/15A priority Critical patent/RU2319132C2/ru
Publication of RU2005126715A publication Critical patent/RU2005126715A/ru
Application granted granted Critical
Publication of RU2319132C2 publication Critical patent/RU2319132C2/ru

Links

Images

Landscapes

  • Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)

Abstract

Способ относится к области медицины. Способ включает предварительную витально-суправитальную обработку тканей экспериментальных животных при помощи раствора метиленового синего, которая предшествует общегистологической окраске срезов хрусталика гематоксилин-эозином. При осуществлении способа готовят необходимое разведение раствора красителя, который для достижения витального окрашивания вводят в кровеносное русло экспериментального животного, а с целью суправитального докрашивания хрусталика его покрывают раствором красителя и помещают в термостат, далее готовят парафиновые срезы и проводят общегистологическую окраску гематоксилин-эозином. Способ позволяет с большей достоверностью проводить детальное выявление структурных элементов клеток хрусталика глаза. 1 табл., 4 ил.

Description

Изобретение относится к медицине, в частности к гистологии и офтальмологии, и нацелено на использование в практике научно-исследовательских работ с использованием экспериментальных животных.
Катаракта (помутнение хрусталика) относится к числу заболеваний, для которых у современной практической медицины нет надежных способов профилактики и лечения. Истинная причина, инициирующая процесс катарактогенеза, до настоящего времени не установлена. В последние годы появилась тенденция к изучению обменных процессов хрусталика с точки зрения структурной и функциональной организации мембран его клеток - рецепторное обеспечение, кальциевая проницаемость и механизмы ее регулирования, закономерности пространственной организации клеточных мембран. Принимая во внимание крайнюю малодоступность интактного материала тканей человеческого хрусталика, наиболее ценным источником тканей хрусталика по-прежнему остаются лабораторные животные.
Цель: значительно повысить качество морфологических исследований хрусталика глаза экспериментальных животных.
Сущность предлагаемого способа заключается в предварительной витально-суправитальной обработке тканей экспериментальных животных при помощи раствора метиленового синего, которая предшествует общегистологической окраске срезов хрусталика гематоксилин-эозином.
Положительный эффект: упрощение условий исследования, снижение затрат денежных средств и рабочего времени в повседневных научно-исследовательских работах, значительное повышение качества морфологических исследований хрусталика глаза.
Наиболее близким к предложенному способу является гистологический способ выявления межклеточных границ в двухмерных тканях (Кондаков И.К. // Патент RU № 2092841, МПК 6 G01N 33/48). Прототип заключается в следующем: образцы исследуемой ткани иссекают, отмывают и предварительно фиксируют в смеси, состоящей из 40%-ной глюкозы и 10%-ного формалина в соотношении 1:12, в течение 1 часа. Затем проводят импрегнацию межклеточных границ в 0,1% растворе азотнокислого серебра (1 мин), вторично фиксируют образцы ткани в 10% растворе нейтрального формалина (12 часов) и отмывают проточной водой (1 час). Выявление продукта импрегнации осуществляют с помощью фотоматериалов (в стандартном фотопроявителе с последующим закреплением в фотофиксаже).
Известный способ выявления межклеточных границ в двухмерных тканях, упомянутый выше, не может получить широкое распространение в повседневных исследовательских работах с использованием экспериментальных животных в связи с его значительной дороговизной (азотнокислое серебро, фотопроявители, фотофиксаторы), трудоемкостью (многоэтапность, многокомпонентность) и большими затратами рабочего времени (свыше 12 часов).
Следующим наиболее распространенным методом окраски тканей глаза, в том числе хрусталика, является метод общегистологической окраски гематоксилином и эозином (Микроскопическая техника: Руководство // Под ред. Д.С.Саркисова и Ю.Л. Перова. - М.: Медицина, 1996. - 544 с.: ил.), который заключается в следующем: срез хрусталика полностью покрывают раствором гематоксилина на 5 мин, отмывают лишний краситель проточной водой 1-2 мин под контролем микроскопа, излишки влаги удаляют фильтровальной бумагой, затем покрывают срез хрусталика раствором эозина на 1 мин, вновь промывают проточной водой 1-2 мин, высушивают, монтируют через спирты, карбол-ксилол, ксилол, бальзам).
Этот метод, имея такие преимущества, как дешевизна и простота использования, не может удовлетворить требования современных морфологических исследований, так как срезы хрусталика, окрашенные по этой методике, демонстрируют недостаточную информативность - выявляют лишь отдельные детали строения ядра клеток хрусталика, в то время как клеточные мембраны совершенно не визуализируются (фиг.1, 2).
Задача изобретения: разработать не дорогой, не трудоемкий и простой в использовании способ гистологической окраски, который позволит значительно повысить качество изображения клеточных структур на срезах хрусталика глаза экспериментальных животных.
Предложен способ предварительной витально-суправитальной обработки тканей хрусталика глаза экспериментальных животных при помощи раствора метиленового синего, которая предшествует общегистологической окраске срезов хрусталика гематоксилин-эозином. При осуществлении способа готовят необходимое разведение раствора красителя, который для достижения витального окрашивания вводят в кровеносное русло экспериментального животного, а с целью суправитального докрашивания хрусталика его покрывают раствором красителя и помещают в термостат, далее готовят парафиновые срезы и проводят общегистологическую окраску гематоксилин-эозином.
Предлагаемый способ позволяет упростить условия исследования, снизить затраты денежных средств и рабочего времени в повседневных научно-исследовательских работах с использованием экспериментальных животных, а также значительно повысить качество морфологических исследований хрусталика глаза.
Изобретение обладает новизной, соответствует требованиям изобретательского уровня и может найти широкое применение в практике повседневных научных исследований с использованием экспериментальных животных.
Предложенный способ осуществляется следующим образом:
- готовят 1% концентрированный раствор метиленовой сини с использованием жидкости Рингера-Локка;
- для окраски разводят приготовленный концентрированный 1% раствор метиленовой сини жидкостью Рингера-Локка в следующем соотношении: 1,5 ml 1% раствора метиленовой сини на 100 ml жидкости Рингера-Локка;
- производят инъекцию разведенного раствора красителя в кровеносное русло экспериментального животного в течение 40-50 мин - в результате происходит витальная окраска тканей хрусталика;
- под наркозом проводят энуклеацию глазного яблока экспериментального животного;
- для суправитального докрашивания хрусталик энуклеированного глазного яблока помещают в чашке Петри на 1 час в термостат при температуре +37°С; в течение указанного времени на поверхность хрусталика каплями наносят разведенный раствор метиленовой сини;
- далее хрусталик фиксируют в 10% растворе формалина;
- готовят парафиновые срезы и проводят общегистологическую окраску гематоксилином и эозином по стандартной, упомянутой выше, методике.
Предлагаемый способ иллюстрируется следующими фотографиями. Срезы хрусталика, окрашенные гематоксилин-эозином без предварительного применения данного метода, демонстрируют недостаточную информативность, так как выявляют лишь детали строения ядра клетки, в то время как клеточные мембраны совершенно не визуализируются (фиг.1, 2).
Срезы, полученные с предварительным использованием описываемой методики, демонстрируют детально окрашенные хрусталиковые эпителиальные клетки и клетки-волокна (фиг.3, 4). Интенсивное окрашивание клеток сочетается с отчетливым выявлением их структурных элементов. Четко контурируются клеточные мембраны, что позволяет с большей достоверностью проводить исследования рецепторной обеспеченности хрусталика, особенностей его цитоархитектоники, изменений морфологического и функционального состояния клеток хрусталика в процессе его эмбрионального развития и в условиях катарактогенеза. Предлагаемый способ позволяет более детально характеризовать морфофункциональное состояние клеточного ядра в связи с тем, что срезы четко демонстрируют контуры ядра, форму и величину ядрышка, степень конденсации хроматина и количество ядерного сока. Между периферическим и околоядрышковым хроматином хорошо видны довольно крупные глыбки конденсированного хроматина, разбросанные в обильно представленном ядерном соке. В экваториальных эпителиальных клетках хрусталика более четко просматриваются фигуры митоза (зона роста хрусталика), что значительно повышает качество и достоверность исследований, направленных на изучение процессов роста хрусталика в условиях его нормы (эмбриогенез) и патологии (катарактогенез).
В таблице приведены преимущества использования предложенного способа по сравнению с известными.
Таблица
Контрольные показатели Способ Кондакова Способ окраски гем.-эозином Способ предлагаемый
Затраты денежных средств +++++
(максимальные)
+
(минимальные)
++
Трудоемкость (затраты рабочего времени) +++++
(свыше 12 часов)
+
(около 30 мин.)
++
(2 часа)
Качество изображения на гистологических срезах +++
(хорошее)
+
(неудовлетв.)
+++++
(отличное)
Целесообразность применения на лабораторных животных -
(не целесообразно)
+++ +++++
ПОДПИСИ К чертежам
Фиг.1. Сагиттальный срез глазного яблока. Окраска гематоксилин-эозином.
1 - отростки цилиарного тела; 2 - хрусталик; 3 - ядра переднего эпителия хрусталика; 4 - ядра экваториальных клеток-волокон. Ув.: об. 20, ок. 15.
Фиг.2. Сагиттальный срез хрусталика. Окраска гематоксилин-эозином.
1 - капсула хрусталика; 2 - ядра эпителиальных клеток хрусталика; 3 - ядра экваториальных клеток-волокон. Ув.: об. 90, ок. 15.
Фиг.3. Сагиттальный срез хрусталика. Окраска гематоксилин-эозином с предварительным использованием витально-суправитального окрашивания метиленовой синью.
1 - капсула хрусталика; 2 - эпителиальные клетки хрусталика (зона роста); 3 -хрусталиковые клетки-волокна. Ув.: об. 40, ок. 15.
Фиг.4. Сагиттальный срез хрусталика. Окраска гематоксилин-эозином с предварительным использованием витально-суправитального окрашивания метиленовой синью.
1 - капсула хрусталика; 2 - эпителиальные клетки хрусталика (зона роста); 3 - периферические безъядерные отделы клеток-волокон. Ув.: об. 90, ок. 15.

Claims (1)

  1. Способ выявления межклеточных границ и клеточных структур хрусталика глаза лабораторных животных путем последовательной обработки срезов хрусталика гематоксилином и эозином, отличающийся тем, что предварительно производят прижизненную окраску хрусталика введением в кровеносное русло животного раствора метиленовой сини в течение 40-45 мин с последующим докрашиванием хрусталика, извлеченного из глаза, в течение 1 ч раствором метиленовой сини при температуре +37°С в условиях термостата.
RU2005126715/15A 2005-08-24 2005-08-24 Усовершенствованный способ выявления клеточных структур в хрусталике глаза экспериментальных животных RU2319132C2 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2005126715/15A RU2319132C2 (ru) 2005-08-24 2005-08-24 Усовершенствованный способ выявления клеточных структур в хрусталике глаза экспериментальных животных

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2005126715/15A RU2319132C2 (ru) 2005-08-24 2005-08-24 Усовершенствованный способ выявления клеточных структур в хрусталике глаза экспериментальных животных

Publications (2)

Publication Number Publication Date
RU2005126715A RU2005126715A (ru) 2007-02-27
RU2319132C2 true RU2319132C2 (ru) 2008-03-10

Family

ID=37990467

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2005126715/15A RU2319132C2 (ru) 2005-08-24 2005-08-24 Усовершенствованный способ выявления клеточных структур в хрусталике глаза экспериментальных животных

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2319132C2 (ru)

Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2092841C1 (ru) * 1992-09-24 1997-10-10 Украинский научно-исследовательский институт терапии Способ выявления межклеточных границ в двухмерных тканях
RU2142292C1 (ru) * 1995-09-05 1999-12-10 Уфимский научно-исследовательский институт глазных болезней Препарат для диагностики заболеваний и травм роговой оболочки глаза
US6670397B1 (en) * 1999-07-29 2003-12-30 Steven Baranowitz Methods for transdifferentiation of body tissues

Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2092841C1 (ru) * 1992-09-24 1997-10-10 Украинский научно-исследовательский институт терапии Способ выявления межклеточных границ в двухмерных тканях
RU2142292C1 (ru) * 1995-09-05 1999-12-10 Уфимский научно-исследовательский институт глазных болезней Препарат для диагностики заболеваний и травм роговой оболочки глаза
US6670397B1 (en) * 1999-07-29 2003-12-30 Steven Baranowitz Methods for transdifferentiation of body tissues

Non-Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Korsakova N.V. Morphological and functional characteristics of the lens histamine-containing structures at the early stages of chemical irritation of the eye. Morfologiia. 2004; 126(6):37-9. PMID: 15839249 (реферат), [он-лайн] [03.10.2006.] найдено из БД PubMed. *
Под ред. Д.С.САРКИСОВА и др. Микроскопическая техника. Руководство. М. 1996. с.344. *

Also Published As

Publication number Publication date
RU2005126715A (ru) 2007-02-27

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Pierce The development of basement membranes of the mouse embryo
Lee et al. ACT-PRESTO: Rapid and consistent tissue clearing and labeling method for 3-dimensional (3D) imaging
Henning et al. EyeCi: Optical clearing and imaging of immunolabeled mouse eyes using light-sheet fluorescence microscopy
Sharman Tannic acid and iron alum with safranin and orange G in studies of the shoot apex
CN106323708A (zh) 一种透明化试剂、生物组织透明化成像方法及其应用
CN111492223A (zh) 组织样品制备系统
CN103808550B (zh) 一种便于形态学观察的粘孢子虫染色封存方法
CN111610078B (zh) 生物组织透明化试剂及生物组织透明化方法
Deitch et al. The Nissl Substance of Living and Fixed Spinal Ganglion Cells: I. A Phase Contrast Study
CN108445206A (zh) 生物组织器官透明化处理液、处理方法和免疫标记方法
RU2319132C2 (ru) Усовершенствованный способ выявления клеточных структур в хрусталике глаза экспериментальных животных
CN103091140A (zh) 一种虾类生殖细胞染色体的制备方法
Kennedy Basic methods of specimen preparation in parasitology
Bento et al. Ovarian development in swimming crabs: Comparative histochemistry and ultrastructure of Callinectes ornatus and Arenaeus cribrarius (Brachyura, Portunidae)
CN107022350A (zh) 一种荧光造影材料及其制备方法与应用
Michaelsen-Preusse et al. Analysis of actin turnover and spine dynamics in hippocampal slice cultures
CN105548569A (zh) 一种肾癌患者外周血vegf的检测方法
RU2429462C2 (ru) Способ оптического просветления образцов биологических тканей
RU2716216C1 (ru) Способ окрашивания нервной клетки
US3440317A (en) Cell coloring process and composition for cytological examination
CN112284861B (zh) 用于真姬菇担孢子显微观察的固定液、制备方法、固定方法及应用
KR102151128B1 (ko) 질소 가스 가압식 조직 투명화 및 항체 침투 증진용 장치
Bonelli et al. Development and optimization of an ex vivo model of corneal epithelium damage with 1-heptanol: Investigating the influence of donor clinical parameters and MSC-sEV treatment on healing capacity
RU2689171C2 (ru) Способ исследования архитектоники структурных элементов органов у мелких животных
RU2666256C2 (ru) Способ одновременного выявления нейронов и астроцитов на гистологических препаратах нервной ткани

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A The patent is invalid due to non-payment of fees

Effective date: 20110825