[go: up one dir, main page]

RU2364077C2 - Method of visual estimation of photoinhibition and photodegradation resistance of plants - Google Patents

Method of visual estimation of photoinhibition and photodegradation resistance of plants Download PDF

Info

Publication number
RU2364077C2
RU2364077C2 RU2007135704/12A RU2007135704A RU2364077C2 RU 2364077 C2 RU2364077 C2 RU 2364077C2 RU 2007135704/12 A RU2007135704/12 A RU 2007135704/12A RU 2007135704 A RU2007135704 A RU 2007135704A RU 2364077 C2 RU2364077 C2 RU 2364077C2
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
exposure
photoinhibition
plant
resistance
light
Prior art date
Application number
RU2007135704/12A
Other languages
Russian (ru)
Other versions
RU2007135704A (en
Inventor
Ольга Николаевна Будаговская (RU)
Ольга Николаевна Будаговская
Андрей Валентинович Будаговский (RU)
Андрей Валентинович Будаговский
Original Assignee
Ольга Николаевна Будаговская
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Ольга Николаевна Будаговская filed Critical Ольга Николаевна Будаговская
Priority to RU2007135704/12A priority Critical patent/RU2364077C2/en
Publication of RU2007135704A publication Critical patent/RU2007135704A/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2364077C2 publication Critical patent/RU2364077C2/en

Links

Images

Landscapes

  • Investigating, Analyzing Materials By Fluorescence Or Luminescence (AREA)
  • Investigating Or Analysing Materials By Optical Means (AREA)

Abstract

FIELD: agriculture.
SUBSTANCE: method involves measuring of optical indexes of photosynthesizing plant and fruit tissues before and after light exposure. Notably, that exposure and measuring are carried out at the same time and light diffusion dynamic of small area - less than 0.2 cm2 of photosynthesizing plant tissue during flash exposure with the intense quasi-monochromatic optical radiation of blue and red spectra is used as an optical index. Photoinhibitionresistance of plant is determined according the value of UVR=dAcn·Tcn, where dAcn=(Imax-Imin)/Imin - relative amplitude of light diffusion intensity drop on the initial stage of flash exposure, Tcn - drop duration. Photodegradation resistance is estimated according to the value of UVD =Tn - time duration from the beginning of flash exposure till of light diffusion intensity boost.
EFFECT: decrease of labour intensity and efficiency increase of photoinhibition and photodegradation plant resistance estimation.
1 dwg, 1 tbl, 3 ex

Description

Изобретение относится к экспериментальной биологии, сельскому и лесному хозяйству и может быть использовано для оценки устойчивости растений к неблагоприятным факторам среды, в частности к избыточному освещению.The invention relates to experimental biology, agriculture and forestry and can be used to assess the resistance of plants to adverse environmental factors, in particular to excessive lighting.

Известны оптические способы определения устойчивости к фотоингибированию и фототодеструкции, основанные на регистрации флуоресценции хлорофилла до и после облучения интенсивным светом [1-5]. Недостатком известных способов с использованием флуоресценции хлорофилла является сложная и дорогостоящая аппаратура, сильная зависимость флуоресценции от температуры объекта.Optical methods are known for determining the resistance to photoinhibition and photodestruction, based on the registration of chlorophyll fluorescence before and after exposure to intense light [1-5]. A disadvantage of the known methods using chlorophyll fluorescence is a complex and expensive equipment, a strong dependence of fluorescence on the temperature of the object.

Известные методы оценки степени фотодеструктивных повреждений заключаются в экспонировании суспензии изолированных хлоропластов или целого листа, отделенного от растения, или целого растения в течение определенного времени (от единиц минут до нескольких суток) интенсивным белым светом (плотности мощности свыше 1000 Вт/м2) и последующего измерения спектров поглощения на спек-трофотометрическом оборудовании [5-9]. О степени и характере фотоповреждения судят по изменению спектров поглощения в диапазоне длин волн от 350 до 720 нм.Known methods for assessing the degree of photodestructive damage consist in exposing a suspension of isolated chloroplasts or a whole leaf separated from a plant or a whole plant for a certain time (from units of minutes to several days) with intense white light (power density above 1000 W / m 2 ) and subsequent measurements of absorption spectra on spectrophotometric equipment [5–9]. The degree and nature of photodamage is judged by the change in the absorption spectra in the wavelength range from 350 to 720 nm.

Для формирования необходимых для фотоингибирования и фотодеструкции высоких освещенностей используются мощные лампы накаливания, ртутные дуговые или галогеновые лампы со специальной конденсорной оптикой и тепловым водяным фильтром [3, 5, 6, 9]. При довольно больших энергозатратах, необходимых для того, чтобы на базе ламп накаливания сформировать потоки нужных интенсивностей, этот подход требует громоздкого оборудования и длительного времени на проведение эксперимента. Такие измерения носят повреждающий характер, объект нельзя использовать повторно. Известные методы не позволяют проводить исследования устойчивости к фотоингибированию и фотодеструкции целых растений в процессе вегетации, оценивать реакцию фотосинтетического аппарата на изменение условий обитания. Характерная для тепловых источников временная нестабильность спектрального распределения и его сложная форма вызывают дополнительные методические сложности при расчете реальных интенсивностей облучения. Невозможно также точно определить дозы оптического излучения, приводящие к фотоингибированию и/или фотодеструкции.High-intensity incandescent lamps, mercury arc or halogen lamps with special condenser optics and a heat water filter are used to form the high illumination required for photoinhibition and photodestruction [3, 5, 6, 9]. Given the rather high energy consumption required to form the flows of the required intensities on the basis of incandescent lamps, this approach requires cumbersome equipment and a long time to conduct the experiment. Such measurements are damaging in nature, the object cannot be reused. Known methods do not allow studies of resistance to photoinhibition and photodegradation of whole plants during the growing season, to evaluate the response of the photosynthetic apparatus to changes in living conditions. The temporary instability of the spectral distribution characteristic of heat sources and its complex shape cause additional methodological difficulties in calculating the actual radiation intensities. It is also impossible to accurately determine the dose of optical radiation leading to photoinhibition and / or photodegradation.

Цель изобретения - снизить трудоемкость оценок за счет сокращения длительности измерений и повысить их эффективность за счет сохранения растений для последующего изучения.The purpose of the invention is to reduce the complexity of the estimates by reducing the duration of the measurements and to increase their efficiency due to the conservation of plants for further study.

Способ осуществляют следующим образом. Регистрируют динамику светорассеяния фотосинтезирующих тканей растений или плодов (например, листьев и побегов растений, покровной ткани овощей и фруктов) в процессе длительной непрерывной засветки небольшого участка ткани (площадь засветки - менее 0,2 см2) квазимонохроматическим оптическим излучением в диапазоне максимумов поглощения хлорофилла. При этом об устойчивости к фотоингибированию судят по кинетике и амплитуде светоиндуцированного спада светорассеяния в начальной фазе засветки, а об устойчивости к фотодеструкции - по времени наступления фазы разрушения хлорофилла, выявляемого по увеличению интенсивности светорассеяния. Количественно устойчивость к фотоингибированию оценивают параметромThe method is as follows. The dynamics of light scattering of photosynthetic tissues of plants or fruits (e.g., leaves and shoots of plants, integumentary tissue of fruits and vegetables) is recorded during long-term continuous illumination of a small area of tissue (exposure area - less than 0.2 cm 2 ) by quasi-monochromatic optical radiation in the range of maximum absorption of chlorophyll. At the same time, the resistance to photoinhibition is judged by the kinetics and amplitude of the light-induced decay of light scattering in the initial illumination phase, and the resistance to photodestruction is determined by the time of the onset of the chlorophyll destruction phase, which is detected by an increase in light scattering intensity. The resistance to photoinhibition is quantified by the parameter

УФИ=dAcn·Tcn, где dAcn=(Imax-Imin)/Imin - относительная амплитуда спада интенсивности светорассеяния начального этапа засветки, Tcn, - длительность спада; а устойчивость к фотодеструкции - параметром УФД=Tn - длительность времени с начала засветки до момента подъема интенсивности светорассеяния.UVI = dA cn · T cn , where dA cn = (I max -I min ) / I min is the relative amplitude of the decrease in light scattering intensity of the initial stage of exposure, T cn , is the duration of the decline; and resistance to photodestruction, by the UVD parameter = T n, is the length of time from the beginning of exposure to the moment the light scattering intensity rises.

Пример 1. Листья цисуса ромболистного после 10 минутной темновой адаптации помещают в установку для измерения интенсивности светорассеяния и регистрируют динамику изменения светорассеяния в процессе непрерывной засветки монохроматическим оптическим излучением красной области спектра (630 нм) интенсивностью 1500 Вт/м2 при температуре +22…+25°С - это является контрольным измерением. Затем те же самые образцы выдерживают в течение 10-15 минут при температуре +55°С и проводят повторные измерения спустя 60 минут после тепловой обработки. Короткая тепловая обработка широко используется для избирательной инактивации водоокисляющего комплекса фотосистемы 2, в результате чего живая фотосинтезирующая клетка становится более чувствительной к фотоингибированию и фотодеструкции. Действительно, тепловая обработка приводит к трехкратному снижению амплитуды и десятикратному - длительности светоиндуцированного спада интенсивности светорассеяния в первые минуты засветки, а также к существенному снижению дозы облучения, приводящему к разрушению хлорофилла (фиг.1, таблица).Example 1. Leaves of rhomboid cisus after 10 minutes of dark adaptation are placed in a device for measuring light scattering intensity and the dynamics of light scattering in the process of continuous illumination by monochromatic optical radiation of the red spectrum (630 nm) with an intensity of 1500 W / m 2 at a temperature of + 22 ... + 25 is recorded ° С - this is a control measurement. Then the same samples are incubated for 10-15 minutes at a temperature of + 55 ° C and repeated measurements are carried out 60 minutes after heat treatment. Short heat treatment is widely used to selectively inactivate the water-oxidizing complex of photosystem 2, as a result of which a living photosynthetic cell becomes more sensitive to photoinhibition and photodestruction. Indeed, heat treatment leads to a three-fold decrease in the amplitude and a ten-fold decrease in the duration of the light-induced decrease in the light scattering intensity in the first minutes of exposure, as well as to a significant decrease in the radiation dose, leading to the destruction of chlorophyll (Fig. 1, table).

Пример 2. Листья светолюбивых (груши, яблони, березы) и тенеустойчивых видов растений (цисуса ромболистного, папоротника, смородины, актинидии) после 5-минутной темновой и тепловой адаптации при температуре +25°С помещают в измерительную установку и фиксируют динамику интенсивности светорассеяния в процессе непрерывной засветки монохроматическим оптическим излучением синей области спектра (470 нм) интенсивностью 860 Вт/м2. У светолюбивых видов растений наблюдаются существенно более высокие показатели параметров УФИ и УФД (таблица).Example 2. The leaves of light-loving (pear, apple, birch) and shade-resistant plant species (cicus rhombic, fern, currant, actinidia) after 5 minutes of dark and heat adaptation at a temperature of + 25 ° C are placed in a measuring unit and record the dynamics of light scattering intensity the process of continuous exposure to monochromatic optical radiation of the blue region of the spectrum (470 nm) with an intensity of 860 W / m 2 . In photophilous plant species, significantly higher parameters of UVI and UVD are observed (table).

Пример 3. Листья растений черной смородины и цисуса ромболистного, растущих при различных освещенностях, после 5-ти минутной темновой адаптации помещают в измерительную установку и оценивают амплитуду и скорость спада интенсивности светорассеяния, инициированного лазерным лучом длиной волны 650 нм интенсивностью 300 Вт/м2. Исследовали так называемых «световые» листья, сформировавшиеся в условиях 100% освещенности, и «теневые» листья, культивируемые при 50 и 25% от освещенности на открытом месте. Рассчитанный по данным измерений параметр УФИ указывает на то, что теневые листья существенно сильнее подвержены фотоингибированию, чем световые (таблица).Example 3. The leaves of blackcurrant and rhomboid cisus plants growing under different lighting conditions, after 5 minutes of dark adaptation, are placed in a measuring apparatus and the amplitude and decay rate of light scattering initiated by a 650 nm laser beam with an intensity of 300 W / m 2 are estimated. We studied the so-called “light” leaves, formed in conditions of 100% illumination, and “shadow” leaves, cultivated at 50 and 25% of the illumination in an open place. The UVI parameter calculated from the measurement data indicates that shadow leaves are much more susceptible to photoinhibition than light leaves (table).

Таким образом, новый способ позволяет адекватно оценить устойчивость растений к фотоингибированию и фотодеструкции, при этом позволяет существенно сократить время на проведение измерений. Благодаря малому размеру луча (от долей до единиц миллиметра) будет повреждаться весьма незначительная часть площади листа (доли процента), что позволит снять несколько десятков показаний с одной листовой пластинки или использовать одно и то же растение для всего цикла исследований при анализе влияния фазы развития листа или какого-либо внешнего фактора. Спектральная и энергетическая стабильность источников квазимонохроматического излучения (лазеры, светодиоды) позволяет точно оценивать дозы света, вызывающие фотоингибирующий или фотодеструктивный эффект.Thus, the new method allows to adequately assess the resistance of plants to photoinhibition and photodestruction, while significantly reducing the time for measurements. Due to the small beam size (from fractions to units of a millimeter), a very small part of the leaf area (fractions of a percent) will be damaged, which will make it possible to take several tens of readings from one leaf blade or use the same plant for the entire research cycle when analyzing the influence of the leaf development phase or any external factor. The spectral and energy stability of quasimonochromatic radiation sources (lasers, LEDs) allows you to accurately estimate the dose of light that causes a photoinhibitory or photodestructive effect.

ЛитератураLiterature

1. Веселовский В.А., Веселова Т.В. Люминесценция растений. Теоретические и практические аспекты. М.: Наука, 1990 - 200 с.1. Veselovsky V.A., Veselova T.V. Luminescence of plants. Theoretical and practical aspects. M .: Nauka, 1990 - 200 p.

2. Мерзляк М.Н., Погосян С.И. Фотодеструкция пигментов и липидов в изолированных хлоропластах. // Биологические науки. - 1986 - №3 - С.8-20.2. Merzlyak M.N., Poghosyan S.I. Photodegradation of pigments and lipids in isolated chloroplasts. // Biological sciences. - 1986 - No. 3 - S.8-20.

3. Кривошеева А.А., Дюбе С., Госселин А. Различная природа фотоингибирования фотосинтеза в листьях томатов и перцев. // Физиология растений. - 1996. - Т.43, №3. - С.467-472.3. Krivosheeva AA, Dube S., Gosselin A. The different nature of photosynthesis photosynthesis in leaves of tomatoes and peppers. // Plant Physiology. - 1996. - T. 43, No. 3. - S. 467-472.

4. Лепедуш X., Вильевач М., Цезар В., Любешич Н. Оценка функционального состояния фотосинтетического аппарата у хвои ели с признаками хлороза на слабом и сильном свету по изменениям флуоресценции хлорофилла in vivo. // Физиология растений. - 2005. - Т.52, №2. - С.191-197.4. Lepedush X., Villevach M., Cesar V., Lyubeshich N. Assessment of the functional state of the photosynthetic apparatus in spruce needles with signs of chlorosis in weak and strong light from changes in chlorophyll fluorescence in vivo. // Plant Physiology. - 2005. - T.52, No. 2. - S. 191-197.

5. Стриж И.Г., Лысенко Г.Г., Неверов К.В. Фотовосстановление молекулярного кислорода в препаратах фотосистемы 2 в условиях фотоингибирования. // Физиология растений. - 2005. - Т.52, №6. - С.814-821.5. Strizh I.G., Lysenko G.G., Neverov K.V. Photoreduction of molecular oxygen in preparations of photosystem 2 under conditions of photoinhibition. // Plant Physiology. - 2005. - T.52, No. 6. - S. 814-821.

6. Егоров С.Ю., Красновский А.А., Кулаковская Л.И. Исследование механизма фотодеструкции хлоропластов: участие триплетного состояния хлорофилла. // Физиология растений. - 1985. - Т.32, Вып.4. - С.668-673.6. Egorov S.Yu., Krasnovsky A.A., Kulakovskaya L.I. Study of the mechanism of photodestruction of chloroplasts: participation of the triplet state of chlorophyll. // Plant Physiology. - 1985.- T.32, Iss. 4. - S.668-673.

7. Naoki Y., Yoshio F., Masayoshi S. Peroxidase-mediated chlorophyll degradation in horticultural crops. // Phytochem. Rev. - 2004. - V.3, №1-2. - C.221-228.7. Naoki Y., Yoshio F., Masayoshi S. Peroxidase-mediated chlorophyll degradation in horticultural crops. // Phytochem. Rev. - 2004. - V.3, No. 1-2. - C.221-228.

8. Kumar S.P. Photoinhibition of photosynthesis and mechanism of protection against photodamage in crop plant. // Everyman's Sci. - 2002. - 36, №4. - C.237-252. 50.8. Kumar S.P. Photoinhibition of photosynthesis and mechanism of protection against photodamage in crop plant. // Everyman's Sci. - 2002. - 36, No. 4. - C.237-252. fifty.

9. Мерзляк M.H., Гительсон А.А., Погосян С.И., Чивкунова О.Б., Ленимена Л., Гарсон М., Бузулукова Н.П., Шевырева В.В., Румянцева В.Б. Спектры отражения листьев и плодов при нормальном развитии, старении и стрессе. // Физиология растений. - 1997 - Т.44, №5 - С.707-716.9. Merzlyak M.H., Gitelson A.A., Pogosyan S.I., Chivkunova O.B., Lenimena L., Garson M., Buzulukova N.P., Shevyreva V.V., Rumyantseva V.B. Reflection spectra of leaves and fruits under normal development, aging and stress. // Plant Physiology. - 1997 - T.44, No. 5 - S.707-716.

ОбъектAn object Параметры засветкиHighlight Options dAcn, от.ед.dA cn , unit Tcn, cT cn , c УФИUVI УФДUVD Цисус интактныйCisus intact 630 нм, 1500 Вт/м2 630 nm, 1500 W / m 2 0,7200.720 160160 115,20115,20 484484 Цисус, через час после 15 мин прогрева при +50°СCisus, one hour after 15 minutes of heating at + 50 ° C -//-- // - 0,2770.277 15fifteen 4,154.15 4242 ПапоротникFern 470 нм, 860 Вт/м2 470 nm, 860 W / m 2 0,6650.665 7575 49,8749.87 155155 АктинидияActinidia -//-- // - 0,4520.452 5656 25,3125.31 190190 СмородинаCurrant -//-- // - 0,8100.810 9090 72,8772.87 180180 ЯблоняApple tree -//-- // - 1,0861,086 250250 271,5271.5 450450 ГрушаPear -//-- // - 0,8730.873 480480 419,0419.0 610610 БерезаBirch -//-- // - 0,8640.864 620620 535,8535.8 21002100 Смородина черная, световые листьяBlack currant, light leaves 650 нм, 900 Вт/м2 650 nm, 900 W / m 2 0,8050.805 280280 275,4275.4 630630 Смородина черная, теневые листьяBlack currant, shadow leaves -//-- // - 0,5530.553 190190 105,7105.7 440440 Цисус ромболистный, световые листьяCisus rhomboid, light leaves 650 нм, 300 Вт/м2 650 nm, 300 W / m 2 0,7320.732 460460 336,7336.7 -- Цисус ромболистный, теневые листьяCisus rhomboid, shadow leaves -//-- // - 0,6520.652 320320 208,6208.6 --

Claims (1)

Оптический способ оценки устойчивости растений к фотоингибированию и фотодеструкции, включающий измерение оптических показателей фотосинтезирующих тканей растений и плодов до и после светового воздействия, отличающийся тем, что процесс облучения и измерения совмещают и в качестве оптического показателя используют динамику светорассеяния небольшого участка фотосинтезирующей ткани растения в процессе засветки интенсивным квазимонохроматическим оптическим излучением синей или красной области спектра, при этом об устойчивости растений к фотоингибированию судят по параметру УФИ=dAcn·Tcn, где dAcn=(Imax-Imin)/Imin - относительная амплитуда спада интенсивности светорассеяния начального этапа засветки, Tcn - длительность спада; а об устойчивости к фотодеструкции - по параметру УФД=Тn - длительность времени с начала засветки до момента подъема интенсивности светорассеяния. An optical method for assessing plant resistance to photoinhibition and photodegradation, including measuring optical parameters of photosynthetic tissues of plants and fruits before and after light exposure, characterized in that the irradiation process and measurements are combined and the light scattering dynamics of a small portion of photosynthetic plant tissue during exposure is used as an optical indicator intense quasi-monochromatic optical radiation of the blue or red region of the spectrum, while For photoinhibition, judging by the parameter UVI = dA cn · T cn , where dA cn = (I max -I min ) / I min is the relative amplitude of the decrease in light scattering intensity of the initial stage of exposure, T cn is the duration of the decline; and on the resistance to photodestruction, according to the parameter UVD = T n is the length of time from the beginning of exposure to the moment of increase in light scattering intensity.
RU2007135704/12A 2007-09-26 2007-09-26 Method of visual estimation of photoinhibition and photodegradation resistance of plants RU2364077C2 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2007135704/12A RU2364077C2 (en) 2007-09-26 2007-09-26 Method of visual estimation of photoinhibition and photodegradation resistance of plants

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2007135704/12A RU2364077C2 (en) 2007-09-26 2007-09-26 Method of visual estimation of photoinhibition and photodegradation resistance of plants

Publications (2)

Publication Number Publication Date
RU2007135704A RU2007135704A (en) 2009-04-10
RU2364077C2 true RU2364077C2 (en) 2009-08-20

Family

ID=41014362

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2007135704/12A RU2364077C2 (en) 2007-09-26 2007-09-26 Method of visual estimation of photoinhibition and photodegradation resistance of plants

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2364077C2 (en)

Cited By (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2448454C2 (en) * 2010-06-29 2012-04-27 Государственное научное учреждение Всероссийский научно-исследовательский институт садоводства им. И.В. Мичурина Россельхозакадемии (ГНУ ВНИИС) Optical method of assessment of net productivity of photosynthesis of leaves of black currant
RU2569241C2 (en) * 2013-07-02 2015-11-20 Федеральное государственное бюджетное научное учреждение "Всероссийский научно-исследовательский институт садоводства имени И.В. Мичурина" (ФГБНУ "ВНИИС им. И.В. Мичурина) Optical method to assess resistance of photosynthesising tissues of plants to photoinhibition and device for its realisation
RU2592574C2 (en) * 2014-12-03 2016-07-27 федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Мичуринский государственный аграрный университет" (ФГБОУ ВО Мичуринский ГАУ) Optical method for assessing functional state of plants
RU2688464C1 (en) * 2018-03-20 2019-05-21 Федеральное государственное бюджетное научное учреждение "Федеральный научный центр имени И.В. Мичурина" Method for non-destructive diagnostics of plant functional status ex vitro and in vitro
RU2750877C1 (en) * 2020-09-14 2021-07-05 Михаил Геннадьевич Даниловских Method for treating small agricultural areas of vegetative plants
RU2756526C2 (en) * 2020-03-24 2021-10-01 Федеральное государственное бюджетное научное учреждение "Федеральный научный центр имени И.В. Мичурина" Optical method for assessing the functional state of plants

Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2234064C1 (en) * 2003-04-04 2004-08-10 Красноярский государственный университет Method to measure an extent of spatial coherence of laser light

Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2234064C1 (en) * 2003-04-04 2004-08-10 Красноярский государственный университет Method to measure an extent of spatial coherence of laser light

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
БЕЛЯЕВА Н.Е., ЛЕБЕДЕВА Г.В. и др. Кинетическое моделирование индукции флуоресценции высших растений. 19.10.2006, найдено на www.library.biophys.msu.ru, 28.01.2009. *

Cited By (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2448454C2 (en) * 2010-06-29 2012-04-27 Государственное научное учреждение Всероссийский научно-исследовательский институт садоводства им. И.В. Мичурина Россельхозакадемии (ГНУ ВНИИС) Optical method of assessment of net productivity of photosynthesis of leaves of black currant
RU2569241C2 (en) * 2013-07-02 2015-11-20 Федеральное государственное бюджетное научное учреждение "Всероссийский научно-исследовательский институт садоводства имени И.В. Мичурина" (ФГБНУ "ВНИИС им. И.В. Мичурина) Optical method to assess resistance of photosynthesising tissues of plants to photoinhibition and device for its realisation
RU2592574C2 (en) * 2014-12-03 2016-07-27 федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Мичуринский государственный аграрный университет" (ФГБОУ ВО Мичуринский ГАУ) Optical method for assessing functional state of plants
RU2688464C1 (en) * 2018-03-20 2019-05-21 Федеральное государственное бюджетное научное учреждение "Федеральный научный центр имени И.В. Мичурина" Method for non-destructive diagnostics of plant functional status ex vitro and in vitro
RU2756526C2 (en) * 2020-03-24 2021-10-01 Федеральное государственное бюджетное научное учреждение "Федеральный научный центр имени И.В. Мичурина" Optical method for assessing the functional state of plants
RU2750877C1 (en) * 2020-09-14 2021-07-05 Михаил Геннадьевич Даниловских Method for treating small agricultural areas of vegetative plants

Also Published As

Publication number Publication date
RU2007135704A (en) 2009-04-10

Similar Documents

Publication Publication Date Title
RU2364077C2 (en) Method of visual estimation of photoinhibition and photodegradation resistance of plants
CN110769684B (en) Plant cultivation method using UV and plant cultivation system therefor
US6813024B2 (en) Non-focusing optics spectrophotometer, and methods of use
JP4887709B2 (en) Method and apparatus for increasing yield of plant polyphenols
Wang et al. A novel method for measuring photosynthesis using delayed fluorescence of chloroplast
Rakutko et al. Manifestation of effect of fluctuating asymmetry of bilateral traits of tomato growing in industrial greenhouses
Pandey et al. Study the effect of insecticide dimethoate on photosynthetic pigments and photosynthetic activity of pigeon pea: Laser-induced chlorophyll fluorescence spectroscopy
KR102432555B1 (en) Method for determining stress of plants to increase phytochemical content using image chlorophyll fluorescence
Wu et al. Updates to McCree's photosynthetically active radiation curve—55 years later
ES2261961T3 (en) METHOD AND DEVICE FOR DETERMINING THE QUALITY OF A VEGETABLE MATERIAL AND METHOD AND DEVICE FOR CLASSIFYING VEGETABLE MATERIAL.
Schapendonk et al. Chlorophyll fluorescence: a non-destructive method for detecting damage in the photosynthetic apparatus in plants
Abu-Elsaoud et al. Evaluation of chlorophyll meter method in Egyptian wheat cultivars after Photobiostimulation with Red Polarized Light
RU2746277C1 (en) Method for activating germination of soybean seeds with led monochromatic lighting
Dewez et al. Effect of the anthocyanic epidermal layer on Photosystem II and I energy dissipation processes in Tradescantia pallida (Rose) Hunt
Nesterenko et al. Effect of light intensity on the age dependence of nonphotochemical fluorescence quenching in wheat leaf
RU2790449C1 (en) Method for increasing seed germination and stress resistance of coniferous seedlings
Baroniya et al. Intraspecific variation in photosynthetic efficiency in soybean (Glycine max L.) varieties towards solar ultraviolet radiations
JP2007089445A (en) Plant body cultivating method
RU2592574C2 (en) Optical method for assessing functional state of plants
RU2688464C1 (en) Method for non-destructive diagnostics of plant functional status ex vitro and in vitro
Oliwa et al. The high red/far-red ratio supports the acclimation of fern Platycerium bifurcatum to high light
Tai-Chung et al. Stomatal blue light response is present in Marsilea crenata, an amphibious fern.
Wang et al. Aggravation of photoinhibition during variegated leaf development in Actinidia kolomikta (Rupr. & Maxim.) Maxim.
Pék et al. Effect of ultraviolet and far-red LED light added to broad spectrum white LED on lettuce production in vertical farm
Kang et al. Photosynthetic performance of strawberry acclimated to the solar spectrum modified by spectrum conversion film in greenhouses

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A The patent is invalid due to non-payment of fees

Effective date: 20090927