[go: up one dir, main page]

RU2343481C2 - Way of laser diagnostics of biotechnology cellularisation/decellularisation stages of tissue structures - Google Patents

Way of laser diagnostics of biotechnology cellularisation/decellularisation stages of tissue structures Download PDF

Info

Publication number
RU2343481C2
RU2343481C2 RU2006128966/15A RU2006128966A RU2343481C2 RU 2343481 C2 RU2343481 C2 RU 2343481C2 RU 2006128966/15 A RU2006128966/15 A RU 2006128966/15A RU 2006128966 A RU2006128966 A RU 2006128966A RU 2343481 C2 RU2343481 C2 RU 2343481C2
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
stages
decellularization
decellularisation
cellularisation
biotechnology
Prior art date
Application number
RU2006128966/15A
Other languages
Russian (ru)
Other versions
RU2006128966A (en
Inventor
Петр Михайлович Ларионов (RU)
Петр Михайлович Ларионов
Александр Михайлович Караськов (RU)
Александр Михайлович Караськов
Дмитрий Викторович Субботин (RU)
Дмитрий Викторович Субботин
Мари Михайловна Потапенко (RU)
Мария Михайловна Потапенко
Анатолий Митрофанович Оришич (RU)
Анатолий Митрофанович Оришич
Алексей Николаевич Малов (RU)
Алексей Николаевич Малов
Николай Анатольевич Маслов (RU)
Николай Анатольевич Маслов
Original Assignee
Федеральное государственное учреждение "Новосибирский научно-исследовательский институт патологии кровообращения имени академика Е.Н.Мешалкина Федерального агентства по здравоохранению и социальному развитию"
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Федеральное государственное учреждение "Новосибирский научно-исследовательский институт патологии кровообращения имени академика Е.Н.Мешалкина Федерального агентства по здравоохранению и социальному развитию" filed Critical Федеральное государственное учреждение "Новосибирский научно-исследовательский институт патологии кровообращения имени академика Е.Н.Мешалкина Федерального агентства по здравоохранению и социальному развитию"
Priority to RU2006128966/15A priority Critical patent/RU2343481C2/en
Publication of RU2006128966A publication Critical patent/RU2006128966A/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2343481C2 publication Critical patent/RU2343481C2/en

Links

Images

Landscapes

  • Laser Surgery Devices (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
  • Investigating, Analyzing Materials By Fluorescence Or Luminescence (AREA)

Abstract

FIELD: medicine.
SUBSTANCE: invention concerns medicine area. The way is intended for diagnostics of a condition of fabrics at stages decellularisation and cellularisation of tissue structures in biotechnology. For condition definition of the valve containing graffs of aorta of the person at stages of decellularisation and cellularisation of tissue biomaterials and structures are define spectrum of secondary fluorescence of fabrics under the influence of an ultra-violet pulse laser irradiation. Decellularisation is performed in 5 stages within 2.5, 5, 8, 26, 40 hours. At peak disappearance in a spectral strip from 420nm to 570nm the decellularisation is considered to be finished.
EFFECT: possibility to spend identification of biological tissues and to define condition and presence in it of changes.
4 cl, 9 dwg

Description

Изобретение относится к медицине и предназначено для диагностики состояния тканей на этапах децеллюляризации и целлюляризации тканевых конструкций в биотехнологии.The invention relates to medicine and is intended for diagnosing the state of tissues at the stages of decellularization and cellulization of tissue structures in biotechnology.

В настоящее время основное внимание тканевых инженеров в области кардиохирургии фокусируется на создании функционально идентичной копии здорового клапансодержащего графта. Это относительно новая техника в области тканевого инжиниринга и, может быть скоро, она сможет преодолеть недостатки, связанные с клиническим использованием механических и биологических ксеноклапанов [1, 2, 3, 4]. В настоящее время биотехнологический подход для создания трансплантируемых клапанов заключается в применении ацеллюлярного, натурального биоматрикса. Например, фрагмент клапансодержащего графта может быть обработан для удаления их клеточных составляющих, что уменьшает его иммуногенность и делает возможным повторное заселение клетками реципиента. Этот подход требует техники децеллюляризации, которая заключается в эллиминации клеточных элементов из структуры аорты. Однако децеллюляризация может неблагоприятно влиять на механические свойства биоматрикса и восстановление ткани in vivo [5]. В отличие от полимерных кондуитов. ацеллюлярный биоматрикс сохраняет лиганды и компоненты экстрацеллюлярного матрикса, что более физиологично для процессов восстановления функции клапана. В связи с этим возникает необходимость контроля за состоянием аллографта на этапах децеллюляризации и последующего засевания аутологичными клетками клапансодержащего графта аорты. Системы оценки качества биотехнологических этапов приготовления аутографтов на сегодняшний день нет. Для оценки графта при отработке протокола используется биопсия с последующими исследованиями образцов различными гистологическими, гистохимическими методами, флуоресцентными зондами, включая измерение механического напряжения. Перечисленные методы инвазивны для графта, их проведение требует множества дополнительных и часто длительных процедур, что делает эти методы малопривлекательными для реальной практики. Более того использование всех вышеперечисленных технологий возможно только на этапе подготовки протокола биотехнологии.Currently, the focus of tissue engineers in the field of cardiac surgery is focused on creating a functionally identical copy of a healthy valve-containing graft. This is a relatively new technique in the field of tissue engineering and, perhaps soon, it will be able to overcome the disadvantages associated with the clinical use of mechanical and biological xeno valves [1, 2, 3, 4]. Currently, the biotechnological approach for creating transplantable valves is to use an acellular, natural biomatrix. For example, a fragment of a valve-containing graft can be processed to remove their cellular components, which reduces its immunogenicity and makes it possible to repopulate recipient cells. This approach requires a technique of decellularization, which consists in the elimination of cellular elements from the structure of the aorta. However, decellularization can adversely affect the mechanical properties of biomatrix and tissue repair in vivo [5]. Unlike polymer conduits. the acellular biomatrix retains the ligands and components of the extracellular matrix, which is more physiological for the restoration of valve function. In this regard, it becomes necessary to monitor the state of the allograft at the stages of decellularization and subsequent inoculation with autologous cells of the valve-containing aortic graft. There are currently no systems for assessing the quality of biotechnological stages in the preparation of autographs. To assess the graft during the development of the protocol, a biopsy is used with subsequent examination of the samples by various histological, histochemical methods, fluorescence probes, including measurement of mechanical stress. The listed methods are invasive for the graft; their implementation requires many additional and often lengthy procedures, which makes these methods unattractive for real practice. Moreover, the use of all of the above technologies is possible only at the stage of preparation of the biotechnology protocol.

Известно, что для определения жизнеспособности тканей может быть использована лазерно-индуцированная флюоресценция (ЛИФ) [6].It is known that laser-induced fluorescence (LIF) can be used to determine tissue viability [6].

Целью изобретения является разработка способа объективной оценки состояния графта на этапах децеллюляризации-целлюляризации, методом лазерноиндуцированной флюоресценции.The aim of the invention is to develop a method for an objective assessment of the condition of the graft at the stages of decellularization-cellulization, using laser-induced fluorescence.

Указанная цель достигается путем определения спектров вторичной флюоресценции тканей под воздействием ультрафиолетового импульсного лазерного облучения.This goal is achieved by determining the spectra of secondary fluorescence of tissues under the influence of ultraviolet pulsed laser irradiation.

Способ осуществляется следующим образом.The method is as follows.

Забор фрагментов клапансодержащих графтов аорты человека производился в областном бюро судебно-медицинской экспертизы города Новосибирска. Проводилась стандартная диссекция аорты вместе с аортальным клапаном согласно протоколам европейского банка тканей. Давность наступления смерти составляла 12-24 часа. Полученные клапансодержащие графты аорты транспортировались в холодном физиологическом растворе и далее велись следующим образом.Fragments of valve-containing human aortic grafts were collected at the regional forensic examination bureau of the city of Novosibirsk. Standard aortic dissection was performed along with the aortic valve according to the protocols of the European tissue bank. The prescription of death was 12-24 hours. The obtained valve-containing aortic grafts were transported in cold saline and then carried out as follows.

Пять фрагментов клапансодержащих графтов аорт размерами 5×1 см после диссекции были сразу же погружены в холодный физиологический раствор и отправлены на анализ ЛИФ, где с каждого кусочка размерами 1×1 см со стороны эндотелия проводили исследование ЛИФ. После этого была произведена фиксация материала в формалине для дальнейшего морфологического исследования. Оставшийся материал клапансодержащих графтов аорт человека в стерильных условиях бокса биологической безопасности подвергался процессу децеллюляризации, затем проводился анализ спектров ЛИФ для оценки степени децеллюляризации во времени. Процесс децеллюляризации заключается в элиминации аутологичных клеток с сохранением структурных особенностей и организации экстрацеллюлярного матрикса, что достигается погружением клапансодержащего фрагмента аорты человека в раствор, содержащий 0,5% трипсин/0,2% ЭДТА на 0,02 М фосфатном буфере, рН=7,4. Образцы оставлены в термостате при 37°С на 40 часов в стерильном сосуде с магнитной мешалкой. Фрагменты аорт забирались на следующих этапах: этап 1-2,5; этап 11-5; этап III-8; этап IV-26; этап V-40 часов после начала процесса децеллюляризации с последующим измерением ЛИФ. После каждого измерения спектров ЛИФ, материал также фиксировался в формалине, для дальнейшего морфологического исследования.Five fragments of valve-containing aortic grafts 5 × 1 cm in size after dissection were immediately immersed in cold physiological saline and sent for LIF analysis, where LIF was examined from each piece 1 × 1 cm in size from the endothelium. After this, material was fixed in formalin for further morphological studies. The remaining material of valve-containing human aortic grafts under sterile conditions of the biological safety box was subjected to the process of decellularization, then the LIF spectra were analyzed to assess the degree of decellularization in time. The process of decellularization consists in the elimination of autologous cells while maintaining the structural features and organization of the extracellular matrix, which is achieved by immersion of the valve-containing fragment of the human aorta in a solution containing 0.5% trypsin / 0.2% EDTA in 0.02 M phosphate buffer, pH = 7, four. Samples were left in a thermostat at 37 ° C for 40 hours in a sterile vessel with a magnetic stirrer. Fragments of the aorta were taken at the following stages: stage 1-2.5; stage 11-5; stage III-8; stage IV-26; stage V-40 hours after the start of the process of decellularization with subsequent measurement of LIF. After each measurement of the LIF spectra, the material was also fixed in formalin for further morphological studies.

На фиг.1 представлены спектры с аорты (по оси OX - длина волны, по оси OY - интенсивность флюоресценции). Показано, что полный цикл децеллюляции графтов аорт (40 часов) приводит к исчезновению пика в полосе от 420 до 570 нм. Что отражает с одной стороны собственно децеллюляцию, а с другой декальцификацию аорт.Figure 1 shows the spectra from the aorta (along the OX axis - wavelength, along the OY axis - fluorescence intensity). It was shown that the complete cycle of aortic graft decellulation (40 hours) leads to the disappearance of the peak in the band from 420 to 570 nm. Which reflects, on the one hand, the actual decellulation, and on the other, the decalcification of the aorta.

Уточняя феномен исчезновения спектрального пика в полосе 420-570 нм, проведен дополнительный эксперимент с целью изучения морфологических изменений цитоархитектоники ткани аорт и степени деградации ядерного материала. Для этого фрагменты клапансодержащих графтов аорт забирались на различных этапах процесса децеллюляризации Забор образцов производился через 2,5; 5; 8; 24; 40 часов после начала процесса децеллюляризации. Далее материал фиксировался в формалине, и готовились криостатные срезы для последующего окрашивания гематоксилином-эозином, этидиумом бромидом, хлортетрациклином. Выполнялась флюориметрия образцов при температуре 24°C по стандартной схеме.Refining the phenomenon of the disappearance of the spectral peak in the band 420-570 nm, an additional experiment was conducted to study the morphological changes in the cytoarchitectonics of aortic tissue and the degree of degradation of nuclear material. For this, fragments of valve-containing aortic grafts were taken at various stages of the decellularization process. Samples were taken after 2.5; 5; 8; 24; 40 hours after the start of the process of decellularization. Further, the material was fixed in formalin, and cryostatic sections were prepared for subsequent staining with hematoxylin-eosin, ethidium bromide, and chlortetracycline. Fluorimetry of the samples was carried out at a temperature of 24 ° C according to the standard scheme.

Выявлено, что стенка аорты в процессе децеллюляризации претерпевает значительные морфологические изменения. Так гистологический анализ показал последовательное уменьшение и полное исчезновения ядросодержащих клеток в стенке аорт на этапах децеллюляции. На фиг.2 отражено начало децеллюляции графта аорты - 2,5 часа в децеллюляризирующем растворе - присутствуют ядросодержащие клетки и полное отсутствие ядросодержащих клеток в стенке аорты через 40 часов после содержания в децеллюлялизирующем растворе, фиг.3.It was revealed that the aortic wall undergoes significant morphological changes in the process of decellularization. So histological analysis showed a consistent decrease and complete disappearance of nucleated cells in the aortic wall at the stages of decellulation. Figure 2 shows the onset of aortic graft decellulation — 2.5 hours in a decellularizing solution — there are nucleated cells and the complete absence of nucleated cells in the aortic wall 40 hours after being contained in the decellularizing solution, FIG. 3.

Эти изменения, так же наблюдались при анализе изображений при окрашивании этидиумом бромидом фиг.4 начало децеллюляции - присутствие ядросодержащих клеток, умеренный межволоконный отек, и фиг.5 - конец децеллюляции. Полное отсутствие ядросодержащих клеток, набухание волокон.These changes were also observed when analyzing images when staining with ethidium bromide in Fig. 4 the beginning of decellulation - the presence of nucleated cells, moderate interfiber edema, and Fig. 5 - the end of decellulation. The complete absence of nucleated cells, fiber swelling.

На фиг.6 представлена диаграмма, демонстрирующая изменение интенсивности флюоресценции в процессе децеллюляризации по включению этидиума бромида. Нами получено статистически достоверное различие (р<0,05) по уровню интенсивности суммарной флюоресценции Ethidium bromide аорт на последних двух этапах децеллюляризации - через 24 часа и 40 часов децеллюляризации, где было определено значительное снижение уровня флюоресценции в сравнении с исходным уровнем флюоресценции нативного препарата, а также с предшествовавшими биотехнологическими этапами 2,5 часа, 5, и 8 часов децеллюляризации.FIG. 6 is a diagram showing a change in fluorescence intensity during decellularization by incorporating ethidium bromide. We obtained a statistically significant difference (p <0.05) in the level of intensity of total fluorescence of Ethidium bromide aorta at the last two stages of decellularization - after 24 hours and 40 hours of decellularization, where a significant decrease in the level of fluorescence was determined in comparison with the initial level of fluorescence of the native drug, as well as with the preceding biotechnological stages of 2.5 hours, 5, and 8 hours of decellularization.

Обзорная сканирующая микроскопия показала, что на последних этапах децеллюляризации происходит тканевая трансформация, которая проявляется выскальзыванием отдельных волокон, нарушением ритмического характера волокнистой организации стенки аорты (фиг.7), а также появлением ячеистых структур при окончании процесса децеллюляризации (фиг.8) в сравнении с контролем, нативной стенкой аорты (фиг.9), отражающим линейно-прерывистый характер ориентации депозитов.Survey scanning microscopy showed that tissue transformation occurs at the last stages of decellularization, which is manifested by the slipping of individual fibers, the violation of the rhythmic nature of the fibrous organization of the aortic wall (Fig. 7), and the appearance of cellular structures at the end of the decellularization process (Fig. 8) in comparison with control, the native wall of the aorta (Fig.9), reflecting the linearly discontinuous nature of the orientation of the deposits.

Обзорная сканирующая электронная микроскопия в режиме обратного рассеяния электронов показала ряд характерных черт на этапах получения ацеллюлярного гомографта относительно нативной аорты. Так субэндотелиальные линейно-прерывистые депозиты, ориентированные продольно аорте (по ходу крови), и апатитная минерализация, наблюдаемые во всех нативных аортах и более чем в половине препаратов, определяемые очаговые, глыбчатые депозиты размерами от 1 до 10 микрон не обнаруживались на этапе децеллюляризации 24 и 48 часов. Кроме того, обнаружена характерная трансформация тканей гомографта к поздним этапам децеллюляризации, которую мы охарактеризовали как формирование сетчато-ячеистой структуры. Более того, статистический анализ цифровых данных полученных при рентгеноспектральном изучении образцов тканей аорт, отчетливо продемонстрировал значительное снижение уровня кальция в сочетании с подъемом уровня фосфора. Потеря кальция тканями гомографтов аорт носит комбинированный характер как экстрацеллюлярный, так и внутриклеточный.Survey scanning electron microscopy in the electron backscattering mode showed a number of characteristic features at the stages of obtaining an acellular homograft relative to the native aorta. So, subendothelial linearly discontinuous deposits oriented longitudinally to the aorta (along the blood flow), and apatite mineralization observed in all native aorta and in more than half of the preparations, defined focal, cobble deposits with sizes from 1 to 10 microns were not detected at the decellularization stage 24 and 48 hours. In addition, a characteristic transformation of homograft tissues to late stages of decellularization was found, which we characterized as the formation of a mesh-cellular structure. Moreover, a statistical analysis of digital data obtained by X-ray spectral studies of aortic tissue samples clearly demonstrated a significant decrease in calcium levels in combination with an increase in phosphorus levels. The loss of calcium by aortic homograft tissues is of a combined nature, both extracellular and intracellular.

Исследование показало, что спектры ЛИФ на этапах децеллюляризации достоверно различаются от спектров тканей до начала этапа децеллюляризации. Более того, исследование показало перспективность использования УФ-лазера с λ=248 нм для диагностики состояния биологических тканей, в частности для определения степени децеллюляризации клапанно-содержащих графтов аорт. Приведенные данные доказывают перспективность применения диагностической лазериндуцированной флюоресценции, возбуждаемой эксимерными лазерами, для идентификации состава биологических тканей, регистрации их состояния и наличия изменений.The study showed that the LIF spectra at the stages of decellularization significantly differ from the spectra of tissues to the beginning of the stage of decellularization. Moreover, the study showed the promise of using a UV laser with λ = 248 nm to diagnose the state of biological tissues, in particular to determine the degree of decellularization of valve-containing aortic grafts. The data presented prove the promise of using diagnostic laser-induced fluorescence excited by excimer lasers to identify the composition of biological tissues, register their status and the presence of changes.

ЛитератураLiterature

1. Bader A, Schilling Т, Haverich A, et al. Tissue engineering of heart valves-human endothelial cell seeding of detergent acellularized porcine valves. Eur J Cardiothorac Surg. 1998; 14: 279-284.1. Bader A, Schilling T, Haverich A, et al. Tissue engineering of heart valves-human endothelial cell seeding of detergent acellularized porcine valves. Eur J Cardiothorac Surg. 1998; 14: 279-284.

2. Cebotari S., Mertsching H., et al. Construction of Autologous Human Heart Valves Based on an Acellular Allograft Matrix // Circulation. 2002, 106: 1-63.2. Cebotari S., Mertsching H., et al. Construction of Autologous Human Heart Valves Based on an Acellular Allograft Matrix // Circulation. 2002, 106: 1-63.

3. Elkins RC, Dawson PE, Goldstein S, et al. Decellularized human valve allografts. Ann ThoracSurg. 2001; 71: S428-S432.3. Elkins RC, Dawson PE, Goldstein S, et al. Decellularized human valve allografts. Ann ThoracSurg. 2001; 71: S428-S432.

4. Hoerstrup S.P., Sodian R., Daebritz S., et al. Functional living trileaflet heart valves grown in vitro. Circulation 2000; 102 (Suppl 3): III44-III49.4. Hoerstrup S.P., Sodian R., Daebritz S., et al. Functional living trileaflet heart valves grown in vitro. Circulation 2000; 102 (Suppl 3): III44-III49.

5. Steinhoff G, Mertsching H, Haverich A, et al. Tissue engineering of pulmonary heart valves on allogenic acellular matrix conduits: in vivo restoration of valve tissue. Circulation. 2000; 102: III50-5.5. Steinhoff G, Mertsching H, Haverich A, et al. Tissue engineering of pulmonary heart valves on allogenic acellular matrix conduits: in vivo restoration of valve tissue. Circulation. 2000; 102: III50-5.

6. Ларионов П.М. Лазерно-индуцированная флюоресценция сердечных тканей при поражении кальцинозом. // Журнал Прикладной спектроскопии, 1997, т.64, №4, июль-август, стр.539-541.6. Larionov P.M. Laser-induced fluorescence of cardiac tissue with calcinosis. // Journal of Applied Spectroscopy, 1997, vol. 64, No. 4, July-August, pp. 539-541.

Claims (4)

1. Способ лазерной диагностики этапов биотехнологии целлюляризации-децеллюляризации тканевых конструкций, включающий воздействие ультрафиолетового импульсного лазерного облучения, отличающийся тем, что воздействуют ультрафиолетовым импульсным лазерным облучением до и после этапа децеллюляризации, затем определяют спектры вторичной флюоресценции тканей и при исчезновении пика в спектральной полосе от 420 до 570 нм децеллюляризацию считают завершенной.1. A method for laser diagnostics of the stages of biotechnology of cellularization-decellularization of tissue structures, including exposure to ultraviolet pulsed laser irradiation, characterized in that they are affected by ultraviolet pulsed laser irradiation before and after the stage of decellularization, then the secondary fluorescence spectra of tissues are determined and when the peak in the spectral band from 420 disappears up to 570 nm, decellularization is considered complete. 2. Способ по п.1, отличающийся тем, что децеллюляризацию проводят в 5 этапов в течение 2.5, 5, 8, 26, 40 ч с последующим измерением лазерно-индуцированной флюоресценции.2. The method according to claim 1, characterized in that the decellularization is carried out in 5 stages for 2.5, 5, 8, 26, 40 hours, followed by measurement of laser-induced fluorescence. 3. Способ по п.1, отличающийся тем, что децеллюляризацию приводят при погружении клапаносодержащих фрагментов в раствор, содержащий 0,5% трипсин и 0,2% ЭДТА на 0,02 М фосфатном буфере при рН 7,4.3. The method according to claim 1, characterized in that the decellularization is carried out by immersing valve-containing fragments in a solution containing 0.5% trypsin and 0.2% EDTA in 0.02 M phosphate buffer at pH 7.4. 4. Способ по п.1, отличающийся тем, что используют ультрафиолетовый лазер с длиной волны 248 нм. 4. The method according to claim 1, characterized in that they use an ultraviolet laser with a wavelength of 248 nm.
RU2006128966/15A 2006-08-09 2006-08-09 Way of laser diagnostics of biotechnology cellularisation/decellularisation stages of tissue structures RU2343481C2 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2006128966/15A RU2343481C2 (en) 2006-08-09 2006-08-09 Way of laser diagnostics of biotechnology cellularisation/decellularisation stages of tissue structures

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2006128966/15A RU2343481C2 (en) 2006-08-09 2006-08-09 Way of laser diagnostics of biotechnology cellularisation/decellularisation stages of tissue structures

Publications (2)

Publication Number Publication Date
RU2006128966A RU2006128966A (en) 2008-02-20
RU2343481C2 true RU2343481C2 (en) 2009-01-10

Family

ID=39266791

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2006128966/15A RU2343481C2 (en) 2006-08-09 2006-08-09 Way of laser diagnostics of biotechnology cellularisation/decellularisation stages of tissue structures

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2343481C2 (en)

Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2013765C1 (en) * 1990-08-14 1994-05-30 Сидорин Василий Сергеевич Method of microscopic structure elements examining in tissue for piecemeal density and piece volume determining
US5993844A (en) * 1997-05-08 1999-11-30 Organogenesis, Inc. Chemical treatment, without detergents or enzymes, of tissue to form an acellular, collagenous matrix
RU2231997C2 (en) * 2002-07-30 2004-07-10 Научный центр сердечно-сосудистой хирургии им. А.Н. Бакулева РАМН Method for treating transplants' tissues for cardiovascular surgery

Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2013765C1 (en) * 1990-08-14 1994-05-30 Сидорин Василий Сергеевич Method of microscopic structure elements examining in tissue for piecemeal density and piece volume determining
US5993844A (en) * 1997-05-08 1999-11-30 Organogenesis, Inc. Chemical treatment, without detergents or enzymes, of tissue to form an acellular, collagenous matrix
RU2231997C2 (en) * 2002-07-30 2004-07-10 Научный центр сердечно-сосудистой хирургии им. А.Н. Бакулева РАМН Method for treating transplants' tissues for cardiovascular surgery

Non-Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
LARIONOV PM et al. Influence of mineral components on laser-induced fluorescence spectra of calcified human heart-valve tissues. Appl Ort. 2000. Aug 1; 39(22): 4031-6. PMID 18349985 найдено [он лайн] 15.04.2008 в PubMed. *
ЛАРИОНОВ П.М. и др. Лазерно-индуцированная флуоресценция сердечных тканей при поражении кальцинозом. Ж. прикладной спектроскопии. Июль-август 1997, т.64, №4, с.539-541. *

Also Published As

Publication number Publication date
RU2006128966A (en) 2008-02-20

Similar Documents

Publication Publication Date Title
König et al. Multiphoton autofluorescence imaging of intratissue elastic fibers
Schenke-Layland et al. Impact of decellularization of xenogeneic tissue on extracellular matrix integrity for tissue engineering of heart valves
Schenke-Layland et al. Two-photon microscopes and in vivo multiphoton tomographs—powerful diagnostic tools for tissue engineering and drug delivery
Schenke-Layland et al. Impact of cryopreservation on extracellular matrix structures of heart valve leaflets
Choe et al. Biomaterial characterization of off‐the‐shelf decellularized porcine pericardial tissue for use in prosthetic valvular applications
Schenke‐Layland Non‐invasive multiphoton imaging of extracellular matrix structures
Hogg et al. Development of a decellularised dermis
WO2010096821A2 (en) Method for ice-free cryopreservation of tissue
Wang et al. Second-harmonic generation microscopy for assessment of mesenchymal stem cell-seeded acellular dermal matrix in wound-healing
JPWO2005063316A1 (en) Implantable biomaterial and method for producing the same
Rieder et al. Granulocyte-based immune response against decellularized or glutaraldehyde cross-linked vascular tissue
Shaik et al. FLIm-guided Raman imaging to study cross-linking and calcification of bovine pericardium
Elagin et al. Multiparametric optical bioimaging reveals the fate of epoxy crosslinked biomeshes in the mouse subcutaneous implantation model
Gao et al. Characterization of decellularized scaffold derived from porcine meniscus for tissue engineering applications
Hogg et al. Development of a terminally sterilised decellularised dermis
Jiang et al. Decellularized-disc based allograft and xenograft prosthesis for the long-term precise reconstruction of temporomandibular joint disc
Gerson et al. Retained structural integrity of collagen and elastin within cryopreserved human heart valve tissue as detected by two-photon laser scanning confocal microscopy
Musilkova et al. Human decellularized and crosslinked pericardium coated with bioactive molecular assemblies
Wu et al. Reinforcing the function of bone graft via the Ca-P ceramics dynamic behavior-enhanced osteogenic microenvironment for optimal bone regeneration and reconstruction
Seebacher et al. Biomechanical properties of decellularized porcine pulmonary valve conduits
RU2343481C2 (en) Way of laser diagnostics of biotechnology cellularisation/decellularisation stages of tissue structures
Fonseca et al. The effects of aging on the intimal region of the human saphenous vein: insights from multimodal microscopy and quantitative image analysis
RU2564895C1 (en) Method for making biological tissue samples with implanted elements for light microscopy study
JP2008228744A (en) Treatment method for suppressing calcification of tissue for transplantation from living body and treated tissue
Jiwangga et al. Synergistic effects of SDS and H2O2 combinations on tracheal scaffold development: an in vitro study using goat trachea

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A The patent is invalid due to non-payment of fees

Effective date: 20110810