[go: up one dir, main page]

RU2234535C2 - Субстрат для определения активности интегразы вируса иммунодефицита человека - Google Patents

Субстрат для определения активности интегразы вируса иммунодефицита человека Download PDF

Info

Publication number
RU2234535C2
RU2234535C2 RU2002126506/13A RU2002126506A RU2234535C2 RU 2234535 C2 RU2234535 C2 RU 2234535C2 RU 2002126506/13 A RU2002126506/13 A RU 2002126506/13A RU 2002126506 A RU2002126506 A RU 2002126506A RU 2234535 C2 RU2234535 C2 RU 2234535C2
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
substrate
integrase
dna
activity
determination
Prior art date
Application number
RU2002126506/13A
Other languages
English (en)
Other versions
RU2002126506A (ru
Inventor
Е.А. Семенова (RU)
Е.А. Семенова
А.Г. Покровский (RU)
А.Г. Покровский
Original Assignee
Государственный научный центр вирусологии и биотехнологии "Вектор"
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Государственный научный центр вирусологии и биотехнологии "Вектор" filed Critical Государственный научный центр вирусологии и биотехнологии "Вектор"
Priority to RU2002126506/13A priority Critical patent/RU2234535C2/ru
Publication of RU2002126506A publication Critical patent/RU2002126506A/ru
Application granted granted Critical
Publication of RU2234535C2 publication Critical patent/RU2234535C2/ru

Links

Images

Landscapes

  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
  • Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)

Abstract

Субстрат предназначен для определения активности интегразы вируса иммунодефицита человека in vitro. Субстрат получают синтезом олигонуклеотидных праймеров комплементарных консервативной области наибольшего сходства геномов различных штаммов вируса иммунодефицита человека, амплификацию последовательности ДНК, комплементарной ковалентно замкнутым кольцевым формам ДНК вируса иммунодефицита, полимеразной цепной реакцией. Затем повторной амплификацией парой гнездовых праймеров получают ДНК продукт, состоящий из двух параллельно ориентированных интактных LTR-последовательностей длиной 1200-1300 п.н. Полученный ДНК продукт метится посредством фрагмента Кленова и [α-р32]ТТР для определения активности интегразы в реакции 3’-процессинга и посредством фрагмента Кленова и набора [α-p32]dNTP для определения активности интегразы в реакции встраивания. Меченный ДНК продукт используют для определения активности интегразы in vitro с дальнейшим анализом продуктов реакции в полиакриламидном геле и радиоавтографированием. Предложенный субстрат повышает быстроту проведения измерения активности интегразы in vitro при сохранении специфичности и идентичности сконструированного субстрата природному субстрату интегразы вируса иммунодефицита человека. 2 з.п. ф-лы, 3 ил.

Description

Изобретение относится к молекулярной биологии, а именно к энзимологии, и может быть использовано в вирусологии для выявления потенциальных ингибиторов интегразы вируса иммунодефицита человека.
Вирус иммунодефицита человека, относящийся к семейству ретровирусов, вызывает хроническую инфекцию чувствительных клеток, используя при этом стратегию репликации, которая выделяет его среди других животных вирусов. После связывания вируса с клеткой-мишенью вирусный геном в виде одноцепочечной РНК высвобождается в цитоплазму хозяйской клетки. В ходе репликации в клетке вирусная РНК проходит стадию обратной транскрипции, которую осуществляет вирус специфичный фермент - обратная транскриптаза, с образованием двуцепочечной ДНК с длинными концевыми повторами (LTR) [1]. В процессе репродукции вируса иммунодефицита человека образуются по крайней мере три формы ДНК провируса: линейная копия вирусного генома, которая является субстратом для интеграции [2] и две кольцевые формы с одним или двумя LTR, функциональная роль которых до сих пор остается неясной [3]. Встраивание линейной формы ДНК провируса в геном клетки-хозяина осуществляется при помощи вирусного фермента - интегразы.
Вирусная интеграза (ИН) в несколько стадий осуществляет встраивание ДНК провируса в геном клетки-хозяина. На первой стадии удаляются два нуклеотида с 3’-концов LTR вновь синтезированной провирусной ДНК. Эта сайт-специфичная эндонуклеазная активность называется реакцией 3’-процессинга. Последующие стадии интеграции происходят после проникновения комплекса из цитоплазмы в ядро. Ядерный этап интегрирования включает образование одноцепочечных разрезов в хозяйской ДНК и лигирование с процессированными 3’-ОН LTR-концами - реакция встраивания.
До настоящего времени для определения активности интегразы ретровирусов in vitro используются различные радиоактивные двуцепочечные дуплексы длиной 20-26 нуклеотидов.
Известен радиоактивный дуплекс, используемый в способе определения активности интегразы [4].
Дуплекс получают синтезом комплементарных дезоксиолигонуклеотидов, конструированием из гибридизованных комплементарных олигонуклеотидов, мечением радиоактивными изотопами. Полученный радиоактивно меченный дуплекс инкубируют с препаратом очищенной интегразы и полученные продукты анализируют в полиакриламидном геле.
Известен флуоресцентно меченный дуплекс из метода измерения активности ретровирусной интегразы [5]. Измерение активности ретровирусной интегразы в реакции 3’-процессинга происходит по возрастанию интенсивности флуоресценции при отщеплении GT-динуклеотида.
К недостаткам данных субстратов можно отнести то, что при ингибиторном анализе результаты, полученные при помощи тест-системы оценки активности интегразы in vitro на основе олигонуклеотидных дуплексов, не коррелируют с результатами, полученными в культуре ВИЧ-инфицированных клеток [6]. Это ставит вопрос об адекватной интерпретации существующих на сегодняшний день данных о функциональной роли интегразы. Вследствие этого на сегодняшний день ведутся поиски тест-системы оценки активности интегразы, основанной на использовании протяженного ДНК-субстрата фланкированного LTR-фрагментами, которые узнаются интегразой вируса иммунодефицита человека.
Наиболее близким к предлагаемому изобретению является субстрат, полученный конструированием плазмиды, содержащей концевые последовательности провирусной ДНК, известный из способа определения активности интегразы ВИЧ [7, прототип]. Субстрат получают так: проводят амплификацию концов провирусной ДНК при помощи полимеразной цепной реакции (ПЦР), в присутствии двух пар ВИЧ-специфических праймеров, клонируют в векторную плазмиду pBKRSV ("Stratagene", Канада), нарабатывают полученную плазмидную конструкцию, линеаризуют плазмиду при помощи рестриктазы, получают 5’-выступающий конец посредством нуклезы ExoIII и в дальнейшем достраивают Т7 ДНК-полимеразой с использованием радиоактивно меченных нуклеотидов. Полученный радиоактивно меченный субстрат используется для определения активности интегразы в реакции встраивания с последующим разделением продуктов реакции в полиакриламидном геле и радиоавтографированием. Для определения активности интегразы в реакции 3’-процессинга проводят рестрикцию полученной плазмидной конструкции для получения фрагмента 107 п.н. с последующим введением радиоактивной метки.
Основным недостатком данного субстрата является то, что он получается различный по длине и составу, что влияет на результаты определения активности интегразы в реакциях 3’-процессинга и встраивания. Применение данной системы для скриннинга ингибиторов интегразы для отбора потенциальных анти-ВИЧ препаратов затрудняется из-за многостадийности конструирования субстрата, использования дорогостоящих малодоступных ферментов, а также из-за дополнительной стадии наработки плазмиды в бактериальной системе Е.coli. Также из-за трудоемкости получения субстрата использование данного способа затрудняет конструирование субстратов, гомологичных различным штаммам вируса иммунодефицита человека, для исследования влияния природных нуклеотидных замен в субстрате на функциональную активность интегразы.
Технической задачей изобретения является конструирование субстрата, идентичного природному субстрату интегразы ВИЧ, позволяющего повысить быстроту проведения измерения активности интегразы in vitro и дающего возможность комплексного исследования функциональной активности интегразы в нескольких реакциях (3’-процессинга и встраивания) на одном субстрате.
Поставленная техническая задача изобретения решается выбором и синтезом олигонуклеотидных праймеров, таким образом, что амплифицируются только фрагменты ДНК, гомологичные кольцевым формам кДНК вируса иммунодефицита человека.
Субстрат для определения активности интегразы состоит из фрагмента 1200-1300 п.н. комплементарного интактным параллельно ориентированным длинным концевым повторам (LTR) ВИЧ. Субстрат является неинфекционной мини-копией вирусного генома, что позволяет изучать процесс интеграции в условиях, максимально приближенных к естественным.
Длинные концевые повторы (размер 600-650 п.н.) расположены на 5’ и 3’ концах провирусной ДНК, причем ориентация относительно друг друга параллельная. 5’ район LTR является промоторно-энхансерным районом вируса и состоит из множества функциональных элементов, осуществляющих базальную и регулируемую экспрессию вирусных генов. LTR ВИЧ делится на три области: U3, R и U5, которые содержат различные районы для связывания клеточных факторов транскрипции.
Первичная последовательность LTR играет важную роль в процессе интеграции. Оба 3’-ОН конца LTR играет важную роль в процессе интеграции. Оба 3’-ОН конца LTR несут консервативный СА-динуклеотид в позиции 3,4, с которым специфично связывается интеграза. После связывания с субстратом интеграза отщепляет два концевых динуклеотида GT с 3’-ОН конца. Полученный ДНК-продукт с гидролизованными 3’-ОН концами интеграза встраивает в геном хозяйской клетки. При использовании предлагаемого субстрата в качестве ДНК для встраивания используют избыток ДНК плазмиды.
Праймеры выбирают в консервативной области геномов различных штаммов вируса иммунодефицита человека так, что имеют 100% гомологию между различными штаммами вируса иммунодефицита человека, что позволяет амплифицировать субстрат для интегразы, гомологичный различным штаммам вируса, используя одни и те же праймеры. Первой парой праймеров амплифицируют последовательность, состоящую из двух параллельно ориентированных LTR-последовательностей, с 5’ конца части гена env и с 3’ конца части гена gag. Второй парой праймеров на внутреннюю область полученного фрагмента амплифицируется непосредственно субстрат для интегразы, содержащий на концах динуклеотид СА, в положениях 3, 4 3’-ОН конца, который специфически узнается интегразой. Далее полученный ДНК фрагмент радиоактивно метится с помощью фрагмента Кленова и используется для определения активности интегразы в реакциях 3’-процессинга и встраивания. О положительном результате реакции судили по появлению продукта, выявляемого электрофорезом в полиакриламидном геле.
Субстрат получают следующим образом.
На первом этапе выбираются и синтезируются две пары олигонуклеотидных праймеров, комплементарных консервативной области наибольшего сходства геномов различных штаммов вируса иммунодефицита человека 1-го типа. Причем ориентированность праймеров должна быть таким образом, что амплифицируется только фрагмент, комплементарный кольцевым формам ДНК (фиг.1). Например: S1–5’-GGGGTGGGAGCAGCATCTCG-3’ (на конец гена env) и S2–5’-TCTTGCCGTGCGCGCTTCAG-3’ (на начало гена gag). Затем повторным амплифицированием парой гнездовых праймеров непосредственно на концы LTR: N1-5’-ACTGGAAGGGCTAATTCACTCC-3’ и N2-5’-ACTGCTAGAGATTTTCCACACTG-3’; получают ДНК продукт, который содержит сайт - СА-динуклеотид на 3’-ОН конце для специфического узнавания интегразы и состоит из двух параллельно ориентированных интактных LTR-последовательностей длинной 1200-1300 п.н. Полученный ДНК продукт метится посредством фрагмента Кленова и [α-р32]ТТР для определения активности интегразы в реакции 3’-процессинга и посредством фрагмента Кленова и набора [α-p32]dNTP для определения активности интегразы в реакции встраивания.
Существенное отличие заявляемого субстрата от известного прототипа:
в качестве субстрата используется протяженная 1200-1300 п.н. последовательность ДНК, гомологичная кДНК вируса иммунодефицита человека, состоящая только из длинных концевых повторов, что дает возможность исследовать функциональную активность интегразы in vitro с использованием неинфекционной копии мини-генома ВИЧ.
Следовательно, можно считать заявляемое техническое решение соответствующим критерию "изобретательный уровень".
ГРАФИЧЕСКИЕ МАТЕРИАЛЫ
Фиг.1 Схематическое изображение конструирования LTR-содержащего ДНК субстрата.
Фиг.2 Зависимость накопления продукта в реакции 3’-процессинга, катализируемой интегразой, от времени: 1 - Контроль; 2-5 мин; 3-15 мин; 5-45 мин; 6-90 мин.
Фиг.3 Активность рекомбинантной интегразы ВИЧ в реакции встраивания с использованием ЛТР-содержащего ДНК субстрата. Радиоавтограф с 4%-ного полиакриламидного геля.
Сущность технического решения раскрыта в конкретных примерах осуществления способа.
Пример 1. Конструирование LTR-содержащего субстрата для определения активности интегразы на основе кольцевых форм ДНК вируса.
Операция 1. Выделение провирусной ДНК вируса иммунодефицита человека из лимфоцитов периферической крови ВИЧ-инфицированных пациентов.
Забор периферической крови пациентов для предотвращения образования тромба проводят в пробирки, содержащие 0,5 М ЭДТА рН 8,0, конечная концентрация ЭДТА - 4 мМ. Выделение лимфоцитов проводят разделением крови пациента в градиенте фиколл-верографин. Готовят 60 мл 15% раствора фиколла на деионизированной воде и при перемешивании приливают к нему 20 мл 76% раствора верографина ("Spofa", Чехословакия). Из этого раствора под контролем ареометра готовят растворы плотностью 1,097 г/мл и 1,075 г/мл. Приготовленные растворы стерилизуют автоклавированием при 121°С в течение 30 мин. На градиент, составленный из 5 мл раствора плотностью 1,097 г/мл и 5 мл раствора плотностью 1,075 г/мл, наслаивают 10 мл разведенной раствором Хенкса в соотношении 1:2 крови. Центрифугируют 40 мин при 400 g и температуре 22°С. Отбирают легкую фракцию, которая содержит лимфоциты и моноциты, отмывают, центрифугируя (2-3 мин при 400 g) раствором Хенкса.
Клетки ресуспендируют в лизирующем буфере (10 мМ трис рН 8,3; 1 мМ ЭДТА; 0,5% твин 20; 0,5% NP-40) с добавлением протеиназы К (концентрация 8 мг/мл) и инкубируют в термостате при 56°С в течение 3 часов. Затем проводят экстракцию фенолом и переосаждение ДНК этанолом.
Операция 2. Выделение суммарной клеточной ДНК из суспензии культуры клеток.
В работе используют высокочувствительную к вирусу иммунодефицита человека культуру клеток МТ-4, инфицированную штаммами ВИЧ-1/ГКВ4046, ВИЧ-1/Bru, с инфекционным титром 104-106 инфекционных единиц / мл и концентрацией 0,5×106 клеток/мл.
Клетки, предварительно отмытые раствором Хенкса или DMEM(M), ресуспендируют в лизирующем буфере (10 мМ трис рН 8,3; 1 мМ ЭДТА; 0,5% твин 20; 0,5% NP-40) с добавлением протеиназы К (концентрация 8 мг/мл) и инкубируют в термостате при 56°С в течение 3 ч. Затем проводят экстракцию фенолом и переосаждение ДНК этанолом.
Операция 3. Полимеразная цепная реакция.
ПЦР проводят в 50 мкл реакционной смеси, содержащей 1,6 мМ (NH4)2SO4, 6,7 мМ трис НСl (рН 8,8), 1,5 мМ MgCl2, 0,01% твин-20, по 0,1 мМ dATP, dGTP, dCTP, dTTP, 2 единицы Tag-полимеразы, по 2 мкМ праймера S1 и S2 и добавляют 5 мкл выделенной ДНК из инфекционного материала. Поверх реакционной смеси наслаивают 30 мкл вазелинового масла. ПЦР состоит из 30 циклов: 95°С в течение 1 мин, 55°С в течение 1,2 мин, 72°С в течение 1,5 мин. В конце реакции проводят завершающий синтез при 72°С в течении 5 мин. После завершения ПЦР отбирают водную фазу и смешивают ее с равным объемом раствора, содержащего фенол:хлороформ:изоамиловый спирт (25:25:1). После центрифугирования при 14000 об/мин в течение 30 с, водную фазу отбирают и осаждают ДНК этиловым спиртом с ацетатом натрия. Осадок растворяют в 20 мкл воды. ПЦР проводят в тех же условиях гнездовыми праймерами N1 и N2, добавляя 5 мкл раствора, полученного в результате амплификации праймерами S1 и S2.
Операция 4. Получение радиоактивно меченного ДНК субстрата для измерения активности интегразы в реакции 3’-процессинга.
Фрагмент ДНК с тупыми концами метят с помощью фрагмента Кленова путем замещения dTTP нуклеотида на 3’-гидроксильном конце.
Реакцию замещения проводят в 50 мкл реакционной смеси, содержащей 10 мМ трис НСl (рН 7,5), 5 мМ MgCl2, 7,5 мМ DTT, 33 мкМ [32р]ТТР (50 мкКи), 1,2 единицы Большого (Кленов) фрагмента ДНК-полимеразы I и 1-3 мкг ДНК субстрата, синтезированного в полимеразной цепной реакции. Смесь инкубируют в течение 1 часа при 37°С. При завершении реакции добавляют 5 мкл раствора, содержащего 0,4 М ЭДТА, 60% глицерин, 0,1% бромфеноловый синий. Очистку радиоактивно меченного субстрата проводят препаративным электрофорезом в 4% полиакриламидном геле в нативных условиях с последующей радиоавтографией.
Операция 5. Получение радиоактивно меченного ДНК субстрата для измерения активности интегразы в реакции встраивания.
Фрагмент ДНК подвергают частичному гидролизу с 3’-ОН концов за счет 3’-5’ экзонуклеазной активности фрагмента Кленова ДНК-полимеразы I Е.coli. Затем после добавления dNTP выступающие 5’-концы достраивают за счет 5’-3’ полимеразной активности фрагмента Кленова.
Реакционная смесь содержит 10 мМ трис НСl (рН 7,5), 5 мМ MgCl2, 7,5 мМ DTT, 1,2 единицы Большого (Кленов) фрагмента ДНК-полимеразы I и 1-3 мкг ДНК субстрата, синтезированного в полимеразной цепной реакции. Смесь инкубируют 30 мин при 37°С, затем добавляют по 33 мкМ dATP, dGTP, dCTP и [32p]TTP (50 мкКи). Инкубируют смесь 60 мин при 37°С. Очистку радиоактивно меченного субстрата проводят препаративным электрофорезом в 4% полиакриламидном геле в нативных условиях с последующей радиоавтографией.
Операция 6. Элюция радиоактивно меченного ДНК субстрата из полиакриламидного геля.
Полосу, соответствующую ДНК субстрату по данным радиоавтографии, вырезают из геля и добавляют к ней 1 объем элюирующего буфера, содержащего 0,5 М NН4СН3СO2, 1 мМ ЭДТА (рН 8,0). Инкубируют при вращении (100 rpm) в течение 12 ч при 37°С. Центрифугируют 10 мин при 10000 g. Собирают надосадочную жидкость и осаждают ДНК этиловым спиртом. Осадок растворяют в 50 мкл буфера 50 мМ трис-НСl (рН 8,0), 2 мМ ЭДТА (рН 8,0). Измеряют спектрофотометрически концентрацию полученного ДНК субстрата.
Пример 2. Определение скорости реакции 3’-процессинга, катализируемой ИН ВИЧ.
Активность интегразы измеряют по отщеплению радиоактивно меченного динуклеотида GT* с 3’ конца обеих цепей ДНК-субстрата. Реакционная смесь (45-50 мкл) содержит: 10 мМ HEPES, рН 7,5, 5 мМ дитиотреитол, 10 мМ MgCl2, 80 мМ NaCl, 10% PEG 6000, 70 нг рекомбинантной интегразы ВИЧ и 2 нМ радиоактивно меченного субстрата.
Реакционную смесь помещают в лед на 10 мин и затем инкубируют 60 мин при 37°С. В процессе инкубации отбирают аликвоты по 10 мкл через каждые 10-20 мин. Продукты реакции анализируют электрофоретически, используя 20% ПААГ в денатурирующих условиях (7,5 М мочевина), с последующей радиоавтографией (фиг.2). Для количественного определения продукта реакции фрагменты геля, соответствующие продукту на радиоавтографе, вырезают и измеряют радиоактивность на счетчике (Mark-III).
Пример 3. Определение кинетических параметров реакции 3’-процессинга, катализируемой интегразой.
При определении кинетических параметров реакционная смесь (45-50 мкл) для реакции 3’-процессинга содержит: 10 мМ HEPES, рН 7,5, 5 мМ дитиотреитол, 10 мМ MgCl2, 80 мМ NaCl, 10% PEG 6000, 70 нг рекомбинантной интегразы ВИЧ и варьируемые концентрации радиоактивно меченного субстрата (10-11-10-8 М).
Реакционную смесь помещают в лед на 10 мин и затем инкубируют 60 мин при 37°С. В процессе инкубации отбирают аликвоты по 10 мкл через каждые 10-20 мин. Продукты реакции анализируют, как в примере 2.
Km реакции 3’ процессинга находят по уравнению Михаэлиса-Ментен, используя программу Origin Professional 5.0 (Micrococal inc.). Все измерения проводят на линейных участках зависимостей накопления продуктов от времени и концентрации фермента. Ошибка определения констант не превышает 10-30%. Для используемой в работе рекомбинантной интегразы ВИЧ величины Км в реакции 3’-процессинга для радиоактивно меченного субстрата составляет (1,2±0,3)·10-10 М. Все измерения проводят на линейных участках зависимостей накопления продуктов от времени и концентрации фермента. Ошибка определения констант не превышает 10-30%.
Пример 4. Ингибирование рекомбинантной интегразы ВИЧ ауринтрикарбоновой кислотой в реакции 3’-процессинга с использованием ДНК субстрата.
При определении концентрации ауринтрикарбоновой кислоты, при которой относительная активность фермента составляет 50% ([I]50); реакционная смесь (45-50 мкл) содержит: 10 мМ HEPES, рН 7,5, 5 мМ дитиотреитол, 10 мМ MgCl2, 80 мМ NaCl, 10% PEG 6000, 70 нг рекомбинантной интегразы ВИЧ, 2 нМ радиоактивно меченного ДНК субстрата и ауринтрикарбоновую кислоту в различных концентрациях (10-7-10-3 М)
Реакционную смесь помещают в лед на 10 мин и затем инкубируют 60 мин при 37°С. В процессе инкубации отбирают аликвоты по 10 мкл через каждые 10-20 мин. Продукты реакции анализируют как, в примере 2.
[I]50 ауринтрикарбоновой кислоты находят графически с помощью построения экспериментальных данных в координатах зависимости концентрации АТК от относительной скорости реакции 3’-процессинга. [I]50 ауринтрикарбоновой кислоты в реакции 3’-процессинга, катализируемой интегразой, для данного ДНК-субстрата составляет (7,2±0,7)·10-7 М.
Пример 5. Измерение активности интегразы ВИЧ в реакции встраивания.
Активность интегразы в реакции встраивания оценивают по количеству встраивания радиоактивно меченного ДНК субстрата в плазмиду pUC19 (фиг.3). Реакционная смесь (45-50 мкл) содержит: 10 мМ HEPES, рН 7,5, 5 мМ дитиотреитол, 10 мМ MgCl2, 80 мМ NaCl, 10% PEG 6000, 0,5 мкг pUC19, 70 нг интегразы и 1 нМ радиоактивно меченного субстрата. Реакцию поводят при 37°С в течение 30-90 мин. Продукты реакции анализируют электрофоретически, используя 4% ПААГ в нативных условиях с последующей радиоавтографией. Для количественного определения продукта реакции фрагменты геля, соответствующие продукту на радиоавтографе, вырезают и измеряют радиоактивность на счетчике (Mark-III).
СПИСОК ЦИТИРУЕМОЙ ЛИТЕРАТУРЫ
1. Fausi A.S. // Science. 1988. V.239. Р.617-622; Weiss R.A. // Science. 1993. V.260. Р.1273-1279; De Clercq E. // Clinical Microbiology Reviews V.8, №12, P.200-239.
2. Hindmarsh P., Leis J. // Microbiology and Molecular Biology Reviews, Dec. 1999, p.836-843.
3. Гашникова Н.М. и др. // ДАН, №4, 2001 г.
4. Chow S.A. (1997) In vitro assays for activities of retroviral integrase // Methods, 12, 306-317.
5. Патент США №5763181.
6. O’Brien С. //Science. 1994. V.266. Р.1946; Sourgen F. et all // Eur. J. Biochem. V.240. P.765-73.
7. Activity of recombinant HIV-1 integrase on mini-HIV DNA. Cherepanov P., Surratt D., Toelen J., Pluymers W., Griffith J., De Clercq E. and Debyser Z. (1999) Nucleic Acids Res., 27, 2202-2210.

Claims (3)

1. Субстрат для определения активности интегразы вируса иммунодефицита человека, содержащий концевые последовательности провирусной ДНК и меченный радиоактивной меткой, отличающийся тем, что в качестве субстрата используют фрагмент провирусной ДНК ВИЧ-1, состоящий из двух параллельно ориентированных интактных LTR-последовательностей длиной 1200-1300 п.н.
2. Субстрат по п.1, отличающийся тем, что длинные концевые повторы (размер 600-650 п.н.) расположены на 5’ и 3’ концах провирусной ДНК.
3. Субстрат по п.1, отличающийся тем, что в качестве ДНК для встраивания используют избыток ДНК плазмиды.
RU2002126506/13A 2002-10-03 2002-10-03 Субстрат для определения активности интегразы вируса иммунодефицита человека RU2234535C2 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2002126506/13A RU2234535C2 (ru) 2002-10-03 2002-10-03 Субстрат для определения активности интегразы вируса иммунодефицита человека

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2002126506/13A RU2234535C2 (ru) 2002-10-03 2002-10-03 Субстрат для определения активности интегразы вируса иммунодефицита человека

Publications (2)

Publication Number Publication Date
RU2002126506A RU2002126506A (ru) 2004-03-27
RU2234535C2 true RU2234535C2 (ru) 2004-08-20

Family

ID=33413023

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2002126506/13A RU2234535C2 (ru) 2002-10-03 2002-10-03 Субстрат для определения активности интегразы вируса иммунодефицита человека

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2234535C2 (ru)

Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US5763181A (en) * 1994-12-30 1998-06-09 Georgetown University Continous fluorometric assay for detecting nucleic acid cleavage
RU2139284C1 (ru) * 1994-05-06 1999-10-10 Фармация Энд Апджон Компани 4-гидроксипиран-2-оны, циклооктил-или бензопиран-2-оны, 4-гидрокси-2н-пиран-2-оны и 4-гидрокси-циклооктапиран-2-оны

Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2139284C1 (ru) * 1994-05-06 1999-10-10 Фармация Энд Апджон Компани 4-гидроксипиран-2-оны, циклооктил-или бензопиран-2-оны, 4-гидрокси-2н-пиран-2-оны и 4-гидрокси-циклооктапиран-2-оны
US5763181A (en) * 1994-12-30 1998-06-09 Georgetown University Continous fluorometric assay for detecting nucleic acid cleavage

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Cherepanov P. et al. Activity of recombinant HIV-1 integrase on mini - HIV DNA. J. Nucleic Acids Res., 27, 27, 1999, р.2202-2210. *

Also Published As

Publication number Publication date
RU2002126506A (ru) 2004-03-27

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Guatelli et al. Nucleic acid amplification in vitro: detection of sequences with low copy numbers and application to diagnosis of human immunodeficiency virus type 1 infection
Mulder et al. Rapid and simple PCR assay for quantitation of human immunodeficiency virus type 1 RNA in plasma: application to acute retroviral infection
JP4339427B2 (ja) Hiv−1および/またはhiv−2の増幅と検出
DK175630B1 (da) Fremgangsmåde til forstærkning af et RNA-målsegment
JP5205346B2 (ja) Hiv−1の増幅及び検出試薬
US20030124514A1 (en) Methods of assessing HIV integrase inhibitor therapy
JPH02503054A (ja) 核酸配列の増幅および検出
IE69846B1 (en) Nucleic acid derivatives
JP2838084B2 (ja) Hiv−1の検出のためのプライマー
CN109196124A (zh) 同时检测及定量分析四种血源性病毒的多重Taqman探针qPCR的试剂盒及方法
Thomas et al. Determination of the ex vivo rates of human immunodeficiency virus type 1 reverse transcription by using novel strand-specific amplification analysis
EP1960554B1 (en) Methods, plasmid vectors and primers for assessing hiv viral fitness
JPH07505533A (ja) 定量的ウイルスアッセイ
US8575324B2 (en) Methods and reagents for molecular detection of HIV-1 groups M, N and O
WO2008062385A2 (en) Antiretroviral drug resistance testing
JP2004500014A (ja) Hivを検出するための新規のプライマーおよびプローブ
CN118240979B (zh) 一种可视化检测HIV的CRISPR-Cas12a系统以及检测方法
US5660979A (en) Detection of human retrovirus infection
RU2234535C2 (ru) Субстрат для определения активности интегразы вируса иммунодефицита человека
JP3351773B2 (ja) Hiv−1のサブタイプ決定法
JP2023552693A (ja) 標的遺伝子変異及びウイルスゲノムの検出システム並びにその製造及び使用の方法
Merzouki et al. Accurate and differential quantitation of HIV-1 tat, rev and nef mRNAs by competitive PCR
Hoad et al. Virus genome detection by the polymerase chain reaction (PCR)
CN120006037A (zh) 一种用于检测HBV pgRNA和HBV pgRNA剪接变体的引物组、试剂盒及其应用
Zaia et al. Confirmation of HIV infection using gene amplification

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A The patent is invalid due to non-payment of fees

Effective date: 20141004