[go: up one dir, main page]

RU2232584C1 - Способ получения миелопида - Google Patents

Способ получения миелопида Download PDF

Info

Publication number
RU2232584C1
RU2232584C1 RU2003105516/15A RU2003105516A RU2232584C1 RU 2232584 C1 RU2232584 C1 RU 2232584C1 RU 2003105516/15 A RU2003105516/15 A RU 2003105516/15A RU 2003105516 A RU2003105516 A RU 2003105516A RU 2232584 C1 RU2232584 C1 RU 2232584C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
chloride
acid
supernatant
bone marrow
incubation
Prior art date
Application number
RU2003105516/15A
Other languages
English (en)
Other versions
RU2003105516A (ru
Inventor
нов С.А. Гурь (RU)
С.А. Гурьянов
Л.А. Фонина (RU)
Л.А. Фонина
А.А. Михайлова (RU)
А.А. Михайлова
Е.А. Кирилина (RU)
Е.А. Кирилина
Р.В. Петров (RU)
Р.В. Петров
Original Assignee
Гурьянов Сергей Алексеевич
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Гурьянов Сергей Алексеевич filed Critical Гурьянов Сергей Алексеевич
Priority to RU2003105516/15A priority Critical patent/RU2232584C1/ru
Application granted granted Critical
Publication of RU2232584C1 publication Critical patent/RU2232584C1/ru
Publication of RU2003105516A publication Critical patent/RU2003105516A/ru

Links

Landscapes

  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)

Abstract

Изобретение относится к медицине, а именно к способам получения биологически активных препаратов из костного мозга животных. Способ включает приготовление суспензии клеток костного мозга, их инкубирование в питательной среде, отделение супернатанта и последующее выделение из него целевого продукта, при этом для суспендирования и инкубирования клеток используют неокрашенную среду, а выделение целевого продукта осуществляют путем пропускания супернатанта через биоспецифический сорбент Адан и экстрагирования адсорбированного материала 50-80% раствором этилового спирта в 0,1% водном растворе уксусной кислоты. Приведен состав предпочтительного варианта питательной среды. Способ позволяет увеличить выход целевого продукта при упрощении технологии производства и сокращении трудозатрат. 1 з.п. ф-лы, 1 табл.

Description

Изобретение относится к технологии получения иммуномодулирующего препарата из костного мозга животных.
Известен способ получения Миелопида, включающий приготовление суспензии клеток костного мозга в окрашенной 199 среде, их инкубирование в той же среде, отделение супернатанта и выделение из него целевого продукта путем последовательного проведения ультрафильтрации, лиофильной сушки, растворения в стерильной воде, стерильной фильтрации и гель-хроматографического разделения на сефадексе G-25 с использованием фосфатного буфера (RU 2041716 С1, 20.08.1995).
Недостатками этого способа являются высокая трудоемкость и сложность технологии, связанные с необходимостью очистки целевого продукта от используемого при суспендировании и инкубировании клеток красителя фенолового красного, входящего в состав 199 среды, и низкий выход целевого продукта, составляющий 250-300 доз из 1·1010 клеток.
Техническим результатом изобретения является сокращение трудозатрат, упрощение технологии и увеличение выхода целевого продукта.
Этот результат достигается тем, что в способе получения Миелопида, включающем приготовление суспензии клеток костного мозга, их инкубирование в питательной среде, отделение супернатанта и последующее выделение из него целевого продукта, согласно изобретению для суспендирования и инкубирования клеток используют неокрашенную среду, а выделение целевого продукта осуществляют путем пропускания супернатанта через биоспецифический сорбент Адан и экстрагирования адсорбированного материала водным раствором этилового спирта в уксусной кислоте.
Предпочтительным вариантом воплощения настоящего изобретения предусмотрено использование для суспендирования и инкубирования среды, содержащей следующие компоненты, мг/дм3:
CaCl2 200
Fe(NO3)2·9H2O 0,1
KCl 400
MgSO4·7Н2O 200
NaCl 6800
NaHCO3 2200
NaH2PO4·H2O 140
Аденин 10
Натриевая соль аденинтрифосфата 10
Адениновая кислота 0,2
Холестерол 0,2
2-деоксирибоза 0,5
Глюкоза 1000
Глутатион 0,05
Гуанин хлорид 0,3
Гипоксантин 0,3
Рибоза 0,5
Ацетат натрия 50
Тимин 0,3
Твин 80 20
Урацил 0,3
Ксантин 0,3
DL-аланин 50
L-аргинин хлорид 70
DL-аспарагиновая кислота 50
L-цистеин хлорид 0,1
L-цистидин 20
L-глутамин 100
DL-глутаминовая кислота·H2O 150
Глицин 50
L-гистидин хлорид 20
L-гидроксипролин 10
DL-изолейцин 40
DL-лейцин 120
L-лизин хлорид 70
DL-фенилаланин 50
DL-метионин 50
L-пролин 40
DL-серин 50
DL-треонин 60
DL-триптофан 20
L-тирозин 40
DL-валин 50
р-аминобензойная кислота 0,05
Аскорбиновая кислота 0,05
Биотин 0,01
Кальциферол 0,1
Холин хлорид 0,5
Фолиевая кислота 0,01
i-инозитол 0,05
Менадион 0,01
Никотинамид 0,025
Никотиновая кислота 0,025
Натриевая соль пантотеновой кислоты 0,01
Пиридоксал хлорид 0,025
Пиридоксин хлорид 0,025
Рибофлавин 0,01
Тиамин хлорид 0,01
п-токоферолфосфат натрия 0,01
Витамин А 0,1
Другим предпочтительным вариантом предусмотрено использование 50-80% раствора этилового спирта в 0,1% водном растворе уксусной кислоты.
Способ реализуется следующим образом.
Клетки костного мозга извлекают из измельченных костей животных путем суспендирования в жидкой неокрашенной среде с последующей фильтрацией, центрифугированием и разбавлением неокрашенной питательной средой, содержащей смесь витаминов, аминокислот и компонентов нуклеиновых кислот в солевом растворе Хенкса, предпочтительно в указанном выше соотношении компонентов. Затем осуществляют инкубирование клеток при традиционных параметрах процесса и отделяют супернатант центрифугированием. Из супернатанта выделяют целевой продукт путем его адсорбции на биоспецифическом сорбенте Адан (ТУ 6-02-98-94) с последующим экстрагированием водным раствором этилового спирта в уксусной кислоте, предпочтительно с концентрацией этилового спирта 50-80% по объему в 0,1% по объему водном растворе уксусной кислоты. Использование названного состава экстрагента позволяет минимизировать его расход, последующие трудо- и энергозатраты на выделение целевого продукта и потери его активных компонентов, что увеличивает выход целевого продукта.
Пример 1.
8 кг зачищенных реберных костей свиней измельчают в стерильных условиях. К ним добавляют 3 л стерильной жидкой питательной среды описанного выше состава. Суспензию встряхивают на шейкере при 37°С в течение 1 часа для вымывания клеток костного мозга. Клетки отделяют фильтрацией и отмывают центрифугированием в той же питательной среде при 4°С. Полученные клетки разбавляют той же средой, доводя их концентрацию до 1·109 клеток/дм3, и инкубируют в течение 18-20 часов при 37°С. Далее отделяют супернатант центрифугированием при 5000 об/мин и температуре 4°С. Супернатант пропускают через колонку, заполненную биоспецифическим сорбентом Адан. Адсорбированный материал экстрагируют при 6°С, используя в качестве экстрагента 50-80% раствор этилового спирта в 0,1% водном растворе уксусной кислоты. При концентрации выше указанной экстракция не происходит. При концентрации ниже указанной резко увеличивается расход экстрагента, что при последующей лиофильной сушке препарата приводит к увеличению времени сушки и энергетических затрат, а также к снижению активности препарата. Выход продукта с коэффициентом стимуляции 1,8 колеблется от около 40000 доз препарата при граничных значениях концентрации экстрагента до 50000 при концентрации этилового спирта в экстрагенте 60% по объему.
Биологический эффект целевого продукта оценивают по стимуляции антителообразования на пике вторичного иммунного ответа к эритроцитам барана (Jerne N.K., Nordin A.A.// Science, 1983, v. 140, р. 405), добавляя тестируемый материал в культуру клеток лимфатических узлов, полученных от мышей на четвертые сутки после повторной иммунизации. Коэффициент стимуляции рассчитывают как отношение количества антителообразующих клеток (АОК) в культуре с тестируемым образцом к количеству АОК в контроле. Результаты испытаний приведены в таблице.
Figure 00000001
Таким образом, при упрощенной технологии и сниженных трудозатратах предлагаемый способ позволяет увеличить выход Миелопида.
Пример 2.
Препарат готовят по примеру 1, но с использованием питательной среды, содержащей следующие компоненты, мг/дм3:
CaCl2 200
Fе(NО3)3·9Н2O 0,1
KCl 400
MgSO4·7H2O 200
NaCl 5400
NаНСО3 3700
NaH2PO4·H2O 124
Глюкоза 4600
Пируват натрия 110
Гептамицин 15
L-аргинин хлорид 84
L-цистидин 48
L-глутамин 780
Глицин 30
L-гистидин хлорид водный 42
L-изолейцин 105
L-лейцин 105
L-лизин хлорид 146
L-метионин 30
L-фенилаланин 86
L-серин 42
L-треонин 85
L-триптофан 18
L-тирозин 72
L-валин 94
Холин хлорид 4
Фолиевая кислота 4
i-инозитол 7,2
Никотинамид 4
Натриевая соль пантотеновой кислоты 4
Пиридоксал хлорид 4
Рибофлавин 0,4
Тиамин хлорид 4
Выход продукта с коэффициентом стимуляции 1,8 колеблется от 20000 до 32000 доз препарата при различной концентрации этилового спирта в экстрагенте.
Пример 3.
Препарат готовят по примеру 1, но с использованием питательной среды, содержащей следующие компоненты, мг/дм3:
Са(NО3)2·4Н2O 100
KCl 400
МgSO4·7Н2O 100
NaCl 6000
NaHCO3 2000
Na2HPO4 801
Глюкоза 2000
Глутатион 1
Гептамицин 15
L-аргинин хлорид 342
L-аспарагин 50
L-аспарагиновая кислота 20
L-цистидин 50
L-глутамин 500
L-глутаминовая кислота 20
Глицин 10
L-гистидин хлорид 18,2
L-гидроксипролин 20
L-изолейцин 50
L-лейцин 50
L-лизин хлорид 50
L-метионин 15
L-фенилаланин 15
L-пролин 20
L-серин 30
L-треонин 25
L-триптофан 5
L-тирозин 20
L-валин 20
р-аминобензойная кислота 1
Биотин 0,2
Холин хлорид 3
фолиевая кислота 1
i-инозитол 36
Никотинамид 1
Натриевая соль пантотеновой кислоты 0,75
Пиридоксал хлорид 1
Рибофлавин 0,2
Тиамин хлорид 1
Витамин B12 0,008
Выход продукта с коэффициентом стимуляции 1,8 колеблется от 12000 до 25000 доз препарата при различной концентрации этилового спирта в экстрагенте.

Claims (2)

1. Способ получения Миелопида, включающий приготовление суспензии клеток костного мозга, их инкубирование в питательной среде, отделение супернатанта и последующее выделение из него целевого продукта, отличающийся тем, что для суспендирования и инкубирования клеток используют неокрашенную среду, а выделение целевого продукта осуществляют путем пропускания супернатанта через биоспецифический сорбент Адан и экстрагирования адсорбированного материала 50-80%-ным раствором этилового спирта в 0,1%-ном водном растворе уксусной кислоты.
2. Способ по п.1, отличающийся тем, что для суспендирования и инкубирования клеток костного мозга используют среду, содержащую следующие компоненты, мг/дм3:
СаСl2 200
Fe(NO3)2·9H2O 0,1
КСl 400
MgSO4·7H2O 200
NaCl 6800
NaHCO3 2200
NaH2PO4·H2O 140
Аденин 10
Натриевая соль аденинтрифосфата 10
Адениновая кислота 0,2
Холестерол 0,2
2-Деоксирибоза 0,5
Глюкоза 1000
Глутатион 0,05
Гуанин хлорид 0,3
Гипоксантин 0,3
Рибоза 0,5
Ацетат натрия 50
Тимин 0,3
Твин 80 20
Урацил 0,3
Ксантин 0,3
DL-аланин 50
L-аргинин хлорид 70
DL-аспарагиновая кислота 50
L-цистеин хлорид 0,1
L-цистидин 20
L-глутамин 100
DL-глутаминовая кислота·Н2О 150
Глицин 50
L-гистидин хлорид 20
L-гидроксипролин 10
DL-изолейцин 40
DL-лейцин 120
L-лизин хлорид 70
DL-фенилаланин 50
DL-метионин 50
L-пролин 40
DL-серин 50
DL-треонин 60
DL-триптофан 20
L-тирозин 40
DL-валин 50
р-Аминобензойная кислота 0,05
Аскорбиновая кислота 0,05
Биотин 0,01
Кальциферол 0,1
Холин хлорид 0,5
Фолиевая кислота 0,01
i-Инозитол 0,05
Менадион 0,01
Никотинамид 0,025
Никотиновая кислота 0,025
Натриевая соль пантотеновой кислоты 0,01
Пиридоксаль хлорид 0,025
Пиридоксин хлорид 0,025
Рибофлавин 0,01
Тиамин хлорид 0,01
п-Токоферолфосфат натрия 0,01
Витамин А 0,1
RU2003105516/15A 2003-02-27 2003-02-27 Способ получения миелопида RU2232584C1 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2003105516/15A RU2232584C1 (ru) 2003-02-27 2003-02-27 Способ получения миелопида

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2003105516/15A RU2232584C1 (ru) 2003-02-27 2003-02-27 Способ получения миелопида

Publications (2)

Publication Number Publication Date
RU2232584C1 true RU2232584C1 (ru) 2004-07-20
RU2003105516A RU2003105516A (ru) 2004-08-27

Family

ID=33414036

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2003105516/15A RU2232584C1 (ru) 2003-02-27 2003-02-27 Способ получения миелопида

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2232584C1 (ru)

Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4540574A (en) * 1979-11-22 1985-09-10 Cellena (Cell Engineering) A.G. Water soluble fraction capable of controlling the immune reactions of a host against allogenic cells or tissue, the pharmaceutical compositions containing said fraction and a process for preparing the latter
RU2000789C1 (ru) * 1981-10-13 1993-10-15 Научно-исследовательский институт традиционных методов лечени "Обезболивающее средство "Миелопид""
RU2041716C1 (ru) * 1993-01-05 1995-08-20 Рэм Викторович Петров Способ получения миелопида

Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4540574A (en) * 1979-11-22 1985-09-10 Cellena (Cell Engineering) A.G. Water soluble fraction capable of controlling the immune reactions of a host against allogenic cells or tissue, the pharmaceutical compositions containing said fraction and a process for preparing the latter
RU2000789C1 (ru) * 1981-10-13 1993-10-15 Научно-исследовательский институт традиционных методов лечени "Обезболивающее средство "Миелопид""
RU2041716C1 (ru) * 1993-01-05 1995-08-20 Рэм Викторович Петров Способ получения миелопида

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
МИХАЙЛОВА А.А. Миелопептиды - новая группа регуляторных пептидов. Обзор. Иммунология, 1999, №4, с. 14-17. ПЕТРОВ Р.В. и др. Миелопептиды. - М.: Наука, 2001, с. 77, 103 и 104. *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Niu et al. Ribonucleic acid-induced changes in mammalian cells
US10046009B2 (en) Method of treatment using a pharmaceutical composition comprising erythrocytes encapsulating a PLP-dependent enzyme and its cofactor
JP2023512443A (ja) 生合成乳生産のための生細胞構築物及び関連製品及び方法
US20100021426A1 (en) Methods for making and compositions comprising fermentation products of cordyceps sinensis
Lovett Chemical and physical characterization of “nuclear caps” isolated from Blastocladiella zoospores
JP2013536683A (ja) 真核細胞のための培養培地
WO2003070921A1 (fr) PROCÉDÉS DE PRODUCTION DE LYMPHOCYTES ϜδT
KR20150014435A (ko) 진핵 세포용 배양 배지
RU2232584C1 (ru) Способ получения миелопида
Martin The biochemistry of viruses
MXPA06008958A (es) Composiciones para medios de cultivo libres de suero bovino fetal.
JP4234594B2 (ja) 松かさ抽出物とこれらの使用
Colter et al. Immunological studies with protein fractions isolated from Ehrlich ascites carcinoma cells
WO2004110484A1 (en) Method for producing a live tissue-cultural vaccine against influenza virus
FR2615737A1 (fr) Preparation et utilisation d'interferon-gamma
CN101709315A (zh) 一种提高s-腺苷甲硫氨酸产量的发酵工艺
KR20210090669A (ko) 케토 산을 포함하는 배양 배지
CN118109408A (zh) 一种新型抗肿瘤nk细胞的制备方法和应用
ES2267201T3 (es) Ribonucleopoliptidos que contienen metal.
CN105200102B (zh) 从产朊假丝酵母发酵液中提取谷胱甘肽的方法
CN103289953B (zh) 鱼类白细胞分离方法
CN116179484A (zh) 一种来源于肿瘤组织的t淋巴细胞的制备方法及应用
CN101781625B (zh) 一株乙硫氨酸抗性产朊假丝酵母及其应用
CN111116702A (zh) 一种多肽提取组合物及试剂盒
SU554854A1 (ru) Способ автолиза дрожжевой биомассы

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A The patent is invalid due to non-payment of fees

Effective date: 20090228