RU2292398C2 - Method for presentation of hospital staphylococcus strain staphylococcus aureus - Google Patents
Method for presentation of hospital staphylococcus strain staphylococcus aureus Download PDFInfo
- Publication number
- RU2292398C2 RU2292398C2 RU2004132994/13A RU2004132994A RU2292398C2 RU 2292398 C2 RU2292398 C2 RU 2292398C2 RU 2004132994/13 A RU2004132994/13 A RU 2004132994/13A RU 2004132994 A RU2004132994 A RU 2004132994A RU 2292398 C2 RU2292398 C2 RU 2292398C2
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- hospital
- plasma
- staphylococcus aureus
- strain
- strains
- Prior art date
Links
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims abstract description 27
- 241000191967 Staphylococcus aureus Species 0.000 title claims abstract description 11
- 241000191940 Staphylococcus Species 0.000 title description 6
- 230000015271 coagulation Effects 0.000 claims abstract description 29
- 238000005345 coagulation Methods 0.000 claims abstract description 29
- 230000000813 microbial effect Effects 0.000 claims abstract description 24
- FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M Sodium chloride Chemical compound [Na+].[Cl-] FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M 0.000 claims abstract description 15
- 238000012360 testing method Methods 0.000 claims abstract description 14
- 239000000725 suspension Substances 0.000 claims description 27
- 230000000694 effects Effects 0.000 abstract description 6
- 238000012258 culturing Methods 0.000 abstract description 2
- 239000002002 slurry Substances 0.000 abstract 2
- 238000011835 investigation Methods 0.000 abstract 1
- 239000000126 substance Substances 0.000 abstract 1
- 230000001580 bacterial effect Effects 0.000 description 18
- 235000015097 nutrients Nutrition 0.000 description 15
- 230000001717 pathogenic effect Effects 0.000 description 14
- 241000295644 Staphylococcaceae Species 0.000 description 13
- 229920001817 Agar Polymers 0.000 description 12
- 239000008272 agar Substances 0.000 description 12
- MYSWGUAQZAJSOK-UHFFFAOYSA-N ciprofloxacin Chemical compound C12=CC(N3CCNCC3)=C(F)C=C2C(=O)C(C(=O)O)=CN1C1CC1 MYSWGUAQZAJSOK-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 10
- 238000013461 design Methods 0.000 description 9
- 239000002609 medium Substances 0.000 description 8
- 244000052769 pathogen Species 0.000 description 8
- 241000894006 Bacteria Species 0.000 description 7
- 239000003242 anti bacterial agent Substances 0.000 description 7
- 229940088710 antibiotic agent Drugs 0.000 description 7
- 230000000721 bacterilogical effect Effects 0.000 description 7
- 239000003814 drug Substances 0.000 description 7
- 238000000855 fermentation Methods 0.000 description 7
- 230000004151 fermentation Effects 0.000 description 7
- 230000036541 health Effects 0.000 description 7
- 244000005700 microbiome Species 0.000 description 7
- 230000035945 sensitivity Effects 0.000 description 7
- 229940079593 drug Drugs 0.000 description 6
- CEAZRRDELHUEMR-URQXQFDESA-N Gentamicin Chemical compound O1[C@H](C(C)NC)CC[C@@H](N)[C@H]1O[C@H]1[C@H](O)[C@@H](O[C@@H]2[C@@H]([C@@H](NC)[C@@](C)(O)CO2)O)[C@H](N)C[C@@H]1N CEAZRRDELHUEMR-URQXQFDESA-N 0.000 description 5
- 229930182566 Gentamicin Natural products 0.000 description 5
- OJMMVQQUTAEWLP-UHFFFAOYSA-N Lincomycin Natural products CN1CC(CCC)CC1C(=O)NC(C(C)O)C1C(O)C(O)C(O)C(SC)O1 OJMMVQQUTAEWLP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 5
- 102000015439 Phospholipases Human genes 0.000 description 5
- 108010064785 Phospholipases Proteins 0.000 description 5
- 229960004821 amikacin Drugs 0.000 description 5
- LKCWBDHBTVXHDL-RMDFUYIESA-N amikacin Chemical compound O([C@@H]1[C@@H](N)C[C@H]([C@@H]([C@H]1O)O[C@@H]1[C@@H]([C@@H](N)[C@H](O)[C@@H](CO)O1)O)NC(=O)[C@@H](O)CCN)[C@H]1O[C@H](CN)[C@@H](O)[C@H](O)[C@H]1O LKCWBDHBTVXHDL-RMDFUYIESA-N 0.000 description 5
- 229960003405 ciprofloxacin Drugs 0.000 description 5
- 229960002518 gentamicin Drugs 0.000 description 5
- 229960005287 lincomycin Drugs 0.000 description 5
- OJMMVQQUTAEWLP-KIDUDLJLSA-N lincomycin Chemical compound CN1C[C@H](CCC)C[C@H]1C(=O)N[C@H]([C@@H](C)O)[C@@H]1[C@H](O)[C@H](O)[C@@H](O)[C@@H](SC)O1 OJMMVQQUTAEWLP-KIDUDLJLSA-N 0.000 description 5
- 239000006916 nutrient agar Substances 0.000 description 5
- UWYHMGVUTGAWSP-JKIFEVAISA-N oxacillin Chemical compound N([C@@H]1C(N2[C@H](C(C)(C)S[C@@H]21)C(O)=O)=O)C(=O)C1=C(C)ON=C1C1=CC=CC=C1 UWYHMGVUTGAWSP-JKIFEVAISA-N 0.000 description 5
- 229960001019 oxacillin Drugs 0.000 description 5
- 239000002504 physiological saline solution Substances 0.000 description 5
- 238000009331 sowing Methods 0.000 description 5
- 241000894007 species Species 0.000 description 5
- 102000016938 Catalase Human genes 0.000 description 4
- 108010053835 Catalase Proteins 0.000 description 4
- 206010011409 Cross infection Diseases 0.000 description 4
- FBPFZTCFMRRESA-KVTDHHQDSA-N D-Mannitol Chemical compound OC[C@@H](O)[C@@H](O)[C@H](O)[C@H](O)CO FBPFZTCFMRRESA-KVTDHHQDSA-N 0.000 description 4
- WQZGKKKJIJFFOK-GASJEMHNSA-N Glucose Natural products OC[C@H]1OC(O)[C@H](O)[C@@H](O)[C@@H]1O WQZGKKKJIJFFOK-GASJEMHNSA-N 0.000 description 4
- 108010006464 Hemolysin Proteins Proteins 0.000 description 4
- 229930195725 Mannitol Natural products 0.000 description 4
- 238000002474 experimental method Methods 0.000 description 4
- 239000008103 glucose Substances 0.000 description 4
- 239000003228 hemolysin Substances 0.000 description 4
- 239000000594 mannitol Substances 0.000 description 4
- 235000010355 mannitol Nutrition 0.000 description 4
- 239000000463 material Substances 0.000 description 4
- OGJPXUAPXNRGGI-UHFFFAOYSA-N norfloxacin Chemical compound C1=C2N(CC)C=C(C(O)=O)C(=O)C2=CC(F)=C1N1CCNCC1 OGJPXUAPXNRGGI-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 4
- 229960001180 norfloxacin Drugs 0.000 description 4
- 239000000049 pigment Substances 0.000 description 4
- 238000001356 surgical procedure Methods 0.000 description 4
- 241001486863 Sprattus sprattus Species 0.000 description 3
- 238000002955 isolation Methods 0.000 description 3
- 238000003771 laboratory diagnosis Methods 0.000 description 3
- 230000002906 microbiologic effect Effects 0.000 description 3
- 239000000203 mixture Substances 0.000 description 3
- 238000011160 research Methods 0.000 description 3
- 239000011780 sodium chloride Substances 0.000 description 3
- 230000003115 biocidal effect Effects 0.000 description 2
- 238000007796 conventional method Methods 0.000 description 2
- 208000015181 infectious disease Diseases 0.000 description 2
- 101710146739 Enterotoxin Proteins 0.000 description 1
- 102000004190 Enzymes Human genes 0.000 description 1
- 108090000790 Enzymes Proteins 0.000 description 1
- 230000005526 G1 to G0 transition Effects 0.000 description 1
- 206010029803 Nosocomial infection Diseases 0.000 description 1
- 238000010564 aerobic fermentation Methods 0.000 description 1
- 230000016571 aggressive behavior Effects 0.000 description 1
- 229940124350 antibacterial drug Drugs 0.000 description 1
- 230000004071 biological effect Effects 0.000 description 1
- 244000309464 bull Species 0.000 description 1
- 239000000969 carrier Substances 0.000 description 1
- 239000003153 chemical reaction reagent Substances 0.000 description 1
- 238000011109 contamination Methods 0.000 description 1
- 238000001514 detection method Methods 0.000 description 1
- 239000000147 enterotoxin Substances 0.000 description 1
- 231100000655 enterotoxin Toxicity 0.000 description 1
- 230000007613 environmental effect Effects 0.000 description 1
- 239000001963 growth medium Substances 0.000 description 1
- 230000002949 hemolytic effect Effects 0.000 description 1
- 238000011081 inoculation Methods 0.000 description 1
- 230000000877 morphologic effect Effects 0.000 description 1
- 230000001575 pathological effect Effects 0.000 description 1
- 230000005180 public health Effects 0.000 description 1
Landscapes
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
Description
Изобретение относится к области медицины, а именно к микробиологической лабораторной диагностике возбудителей госпитальных стафилококковых инфекций.The invention relates to medicine, namely to microbiological laboratory diagnostics of pathogens of hospital staph infections.
В Тюменской области в 2000 г. зарегистрировано 1098 случаев внутрибольничных инфекций: в родовспомогательных учреждениях (51%), хирургических отделениях (22%) и амбулаторно-поликлинических учреждениях (22%). (Марченко А.Н. с соавторами. Научный вестник Тюменской медицинской академии. Медицина и охрана здоровья. Тюмень, 2001. - № 4, - с.85). В хирургических отделениях Тюменской областной клинической больницы преобладают госпитальные инфекции с гнойно-воспалительными процессами, вызванные патогенными стафилококками (Тимохина Т.Х и др. Этиология гнойных инфекций в хирургических стационарах Тюменской областной больницы / Научный вестник Тюменской медицинской академии. Медицина и охрана здоровья. Тюмень, 2002. - С.105).In the Tyumen region in 2000, 1098 cases of nosocomial infections were registered: in obstetric institutions (51%), surgical departments (22%) and outpatient clinics (22%). (Marchenko A.N. et al. Scientific Bulletin of the Tyumen Medical Academy. Medicine and Health. Tyumen, 2001. - No. 4, - p. 85). In the surgical departments of the Tyumen Regional Clinical Hospital, hospital infections with purulent-inflammatory processes caused by pathogenic staphylococci predominate (Timokhina T.Kh et al. Etiology of purulent infections in surgical hospitals of the Tyumen Regional Hospital / Scientific Bulletin of the Tyumen Medical Academy. Medicine and health. Tyumen, 2002. - P.105).
Известен способ идентификации патогенных стафилококков, который включает посев патологического материала на питательные среды с последующим выделением чистой культуры и изучением биологических свойств. Идентификацию выделенной культуры проводят в течение 6-7 дней по морфологическим, культурально-биохимическим, гемолитическим, плазмокоагулирующим свойствам, лецитиназной активности и наличию энтеротоксина. Внутривидовую идентификацию выделенной культуры бактерий проводят по определению фаготипа, чувствительности к антибиотикам и другим признакам (Лабинская А.С. Микробиология с техникой микробиологических исследований. М.: Медицина. - 1978. - С.164-174).A known method for the identification of pathogenic staphylococci, which includes the sowing of pathological material on nutrient media, followed by isolation of pure culture and the study of biological properties. Identification of the selected culture is carried out for 6-7 days according to morphological, cultural, biochemical, hemolytic, plasma-coagulating properties, lecithinase activity and the presence of enterotoxin. Intraspecific identification of the isolated bacterial culture is carried out by determining the phagotype, sensitivity to antibiotics and other signs (Labinskaya A.S. Microbiology with the technique of microbiological research. M .: Medicine. - 1978. - S.164-174).
Описанный выше метод лабораторной диагностики штаммов вида Staphylococcus aureus трудоемок, требует больших материальных затрат на питательные среды и реактивы. Для определения принадлежности выделенного штамма к госпитальному необходимо проводить дополнительные исследования по выделению возбудителей инфекции от больных, бактерионосителей и из окружающей среды с последующей их идентификацией. Лабораторные исследования проводят в течение длительного времени (6 дней и более). Вышеперечисленные недостатки способа лабораторной диагностики госпитальных штаммов S.aureus не позволяют органам практического здравоохранения широко использовать данный способ для лабораторной диагностики госпитальных штаммов.The above-described method of laboratory diagnosis of strains of the species Staphylococcus aureus is laborious, requires large material costs for nutrient media and reagents. To determine whether the selected strain belongs to the hospital one, it is necessary to conduct additional studies on the isolation of pathogens from patients, bacterial carriers, and from the environment with their subsequent identification. Laboratory studies are carried out for a long time (6 days or more). The above disadvantages of the method of laboratory diagnosis of hospital strains of S.aureus do not allow public health authorities to widely use this method for laboratory diagnosis of hospital strains.
Яфаев Р.Х и Зуева Л.П. (Эпидемиология внутрибольничной инфекции. Л.: Медицина. - 1989. - С.26-31) к госпитальным штаммам относят культуры бактерий, выделенные от больных в стационаре с ярко выраженной резистентностью "к некоторому количеству антибиотиков".Yafaev R.Kh and Zueva L.P. (Epidemiology of nosocomial infection. L .: Medicine. - 1989. - P.26-31) hospital strains include bacterial cultures isolated from patients in a hospital with a pronounced resistance "to a certain number of antibiotics."
Шевченко Ю.Л. с соавторами (Шевченко Ю.Л., Гришанин В.А., Матвеев С.А., Мазайшвилли К.В. // Госпитальная инфекция и некоторые аспекты ее иммунопрофилактики / Вестник хирургии. - 1996, № 5. С.104-106) к госпитальным штаммам относят микроорганизмы с одинаковым таксономическим положением по 3-м и более признакам и маркерами устойчивости не менее чем к 5 антибактериальным препаратам в случае выделения бактерий от разных больных за ограниченный период времени.Shevchenko Yu.L. with co-authors (Shevchenko Yu.L., Grishanin V.A., Matveev S.A., Mazayshvilli K.V. // Hospital infection and some aspects of its immunoprophylaxis / Herald of surgery. - 1996, No. 5. P.104-106 ) microorganisms with the same taxonomic position according to 3 or more traits and resistance markers to at least 5 antibacterial drugs are assigned to hospital strains in case of isolation of bacteria from different patients for a limited period of time.
Известен способ выявления госпитальных штаммов по определению чувствительности штаммов к антибиотикам, составлению антибиотикограмм и сопоставлению антибиотикограмм культур бактерий, выделенных от больных и из окружающей среды (RU 2003101899 А. Козлов Л.Б. С 12 Q 1/04. Опубл. 10.02.2005. Бюл. № 4), выбранный в качестве наиболее близкого аналога заявляемого изобретения. Недостатком предложенного способа является необходимость предварительного проведения идентификации возбудителей, выделенных от больных и с объектов окружающей среды с последующим определением чувствительности выделенных культур к антибиотикам.There is a method of identifying hospital strains by determining the sensitivity of strains to antibiotics, compiling antibioticograms and comparing antibioticograms of bacteria cultures isolated from patients and from the environment (RU 2003101899 A. Kozlov LB S 12 Q 1/04. Publ. 10.02.2005. Bull. No. 4), selected as the closest analogue of the claimed invention. The disadvantage of the proposed method is the need for preliminary identification of pathogens isolated from patients and environmental objects with the subsequent determination of the sensitivity of the selected cultures to antibiotics.
Известен способ определения плазмокоагулирующих свойств у патогенных стафилококков, позволяющий в комплексе с другими свойствами определить вид патогенного возбудителя: Staphylococcus aureus. Способ заключается в следующем: в две пробирки наливают по 0,5 мл плазмы, разбавленной 1:5 изотоническим раствором хлорида натрия, затем в каждую пробирку вносят бактериологической петлей 18-20-часовую культуру стафилококка. Одну пробирку (опытную) засевают исследуемой культурой, вторую (первый контроль) - заведомо патогенным, плазмокоагулирующим штаммом стафилококка. Засеянные пробирки выдерживают в условиях термостата (37°С) в течение 3 часов. Если за указанное время коагуляции плазмы не происходит, пробирки оставляют при комнатной температуре еще на 18 ч. Если и через это время свертывание плазмы не произойдет, исследуемая культура является коагулазоотрицательной. Одновременно в термостат ставят несколько пробирок с незасеянной плазмой (второй контроль). Если в одной из пробирок второго контроля наступает коагуляция плазмы, обусловленная микробным загрязнением, результат опыта не учитывают. В общей сложности результат опыта учитывают через 21 час (Лабинская А.С. Микробиология с техникой микробиологических исследований. М.: Медицина. - 1978. - С.167).A known method for determining the plasma-coagulating properties of pathogenic staphylococci, which in combination with other properties to determine the type of pathogenic pathogen: Staphylococcus aureus. The method consists in the following: 0.5 ml of plasma diluted 1: 5 with isotonic sodium chloride solution is poured into two tubes, then an 18-20-hour staphylococcus culture is introduced into each tube by a bacteriological loop. One test tube (experimental) is inoculated with the studied culture, the second (first control) is a known pathogenic, plasma-coagulating staphylococcus strain. Inoculated tubes are kept in a thermostat (37 ° C) for 3 hours. If plasma coagulation does not occur during the indicated time, the tubes are left at room temperature for another 18 hours. If plasma coagulation does not occur even after this time, the test culture is coagulase-negative. At the same time, several tubes with unplated plasma are placed in the thermostat (second control). If plasma coagulation due to microbial contamination occurs in one of the tubes of the second control, the result of the experiment is not taken into account. In total, the result of the experiment is taken into account after 21 hours (Labinskaya A.S. Microbiology with the technique of microbiological research. M .: Medicine. - 1978. - P.167).
Существенный недостаток предложенного способа заключается в том, что способ предназначен для выявления у патогенных стафилококков одного из наиболее часто встречающихся ферментов агрессии, а не для индикации госпитальных штаммов.A significant drawback of the proposed method is that the method is intended to detect in pathogenic staphylococci one of the most common enzymes of aggression, and not to indicate hospital strains.
Задачей настоящего изобретения является разработка нового, экономичного экспресс-способа индикации госпитальных штаммов Staphylococcus aureus.The objective of the present invention is to develop a new, economical express method for indicating hospital strains of Staphylococcus aureus.
Технический результат - простой, не требующий больших материальных затрат экспресс-способ индикации госпитальных штаммов стафилококков, основанный на свойствах госпитальных штаммов обладать более ранней по времени плазмокоагулирующей способностью по сравнению с внебольничными штаммами патогенных стафилококков. В качестве критерия для индикации госпитальных штаммов предложено определение плазмокоагулазы у патогенных стафилококков по времени плазмокоагуляции. Использовано известное свойство патогенных стафилококков по новому назначению, а именно для индикации госпитальных штаммов.The technical result is a simple, low-cost express method for indicating hospital staphylococcus strains, based on the properties of hospital strains to have an earlier plasma-coagulating ability compared to community-acquired strains of pathogenic staphylococci. As a criterion for the indication of hospital strains, the determination of plasmocoagulase in pathogenic staphylococci by the time of plasmocoagulation is proposed. The well-known property of pathogenic staphylococci was used for a new purpose, namely, to indicate hospital strains.
Технический результат достигается тем, что способ индикации госпитальных штаммов S.aureus согласно изобретению проводят по коагуляции плазмы в сроки до 50 минут с 12-часовой культурой стафилококка, стандартизированной любым общепринятым способом до рабочей концентрации микробной взвеси, равной 1 млрд КОЕ/мл.The technical result is achieved by the fact that the method of indicating hospital strains of S.aureus according to the invention is carried out by coagulation of plasma in up to 50 minutes with a 12-hour culture of staphylococcus, standardized by any conventional method to a working concentration of microbial suspension equal to 1 billion CFU / ml.
Сущность способа достигается тем, что согласно изобретению госпитальные штаммы в более короткие сроки вызывают коагуляцию плазмы по сравнению с внебольничными штаммами S.aureus, а использование стандартизированной 12-часовой культуры бактерий по сравнению с 18-20-часовой культурой позволяет получать генетически более однородные популяции бактерий.The essence of the method is achieved by the fact that according to the invention, hospital strains in a shorter time cause plasma coagulation compared to community-acquired S.aureus strains, and the use of a standardized 12-hour bacterial culture compared to an 18-20-hour culture allows to obtain genetically more uniform bacterial populations .
Предлагаемый способ осуществляют следующим образом.The proposed method is as follows.
На стандартных питательных средах для культивирования S.aureus выращивают 12-часовую культуру стафилококка при температуре 37°С. Микробную взвесь любым общепринятым способом доводят до рабочей концентрации микробной взвеси, равной 1 млрд КОЕ/мл. Полученную взвесь бактерий в количестве 0,1 мл вносят в пробирку с 0,3 мл плазмы, разбавленной 1:5 изотоническим раствором хлорида натрия. Коагуляция плазмы происходит в условиях термостата при температуре 37°С. Учет результатов реакции наблюдают в течение 85 минут. Время коагуляции плазмы учитывают с помощью секундомера.On standard culture media for culturing S.aureus, a 12-hour staphylococcus culture is grown at a temperature of 37 ° C. The microbial suspension by any conventional method is adjusted to a working concentration of microbial suspension equal to 1 billion CFU / ml. The resulting suspension of bacteria in an amount of 0.1 ml is introduced into a test tube with 0.3 ml of plasma diluted 1: 5 with an isotonic sodium chloride solution. Coagulation of plasma occurs in a thermostat at a temperature of 37 ° C. Analysis of the results of the reaction is observed for 85 minutes. Plasma coagulation time is taken into account using a stopwatch.
Предложенный способ индикации госпитальных штаммов стафилококков по сравнению с аналогами позволяет экономить материальные средства и сокращает время проведения исследований.The proposed method for indicating hospital strains of staphylococci in comparison with analogues can save material resources and reduces the time of research.
Примеры конкретного выполнения предлагаемого способаExamples of specific performance of the proposed method
Пример 1Example 1
От больного В. 26 лет, находящегося на лечении в отделении гнойной хирургии Областной клинической больницы (ОКБ) г.Тюмени, выделена культура S.aureus. Идентификация возбудителя проведена до вида в бактериологической лаборатории ОКБ г.Тюмени по общепринятым тестам для стафилококков: наличие гемолизинов, пигментов, лецитиназы на желточно-солевом агаре, плазмокоагулазы, каталазы, ферментации маннита в аэробных и анаэробных условиях, ферментации глюкозы в аэробных и анаэробных условиях.From patient B., 26 years old, being treated at the Department of Purulent Surgery of the Regional Clinical Hospital (OKB) of Tyumen, S.aureus culture was isolated. The pathogen was identified in a bacteriological laboratory in the Tyumen Design Bureau according to generally accepted tests for staphylococci: the presence of hemolysins, pigments, lecithinase on yolk-salt agar, plasmocoagulase, catalase, mannitol fermentation under aerobic and anaerobic conditions, and aerobic and aerobic glucose fermentation under aerobic conditions.
После установления принадлежности выделенной культуры к виду S.aureus штамм исследовали на чувствительность к антибиотикам для установления принадлежности штамма к госпитальному варианту. Выделенный штамм S.aureus оказался резистентным к гентамицину, оксациллину, линкомицину, амикацину, норфлоксацину, ципрофлоксацину и поэтому отнесен к госпитальному и ему присвоен порядковый № 2888.After establishing the belonging of the selected culture to the species S.aureus, the strain was examined for sensitivity to antibiotics to establish the belonging of the strain to the hospital variant. The isolated S.aureus strain turned out to be resistant to gentamicin, oxacillin, lincomycin, amikacin, norfloxacin, ciprofloxacin and is therefore assigned to the hospital and assigned serial number 2888.
Выделенная культура S.aureus выращена на стандартной питательной среде (питательный агар для культивирования микроорганизмов, сухой. Министерство Здравоохранения РФ НПО "Питательные среды" г.Махачкала). Состав питательной среды, г/л: панкреатического гидролизата кильки - 17,9; агара - 11,2±1,2; натрия хлорида - 7,7±0,3. рН 7,3±0,2.The isolated S.aureus culture was grown on a standard nutrient medium (nutrient agar for the cultivation of microorganisms, dry. Ministry of Health of the Russian Federation NGOs "Nutrient media", Makhachkala). The composition of the nutrient medium, g / l: pancreatic sprat hydrolyzate - 17.9; agar - 11.2 ± 1.2; sodium chloride - 7.7 ± 0.3. pH 7.3 ± 0.2.
Посев выделенной культуры проведен штрихом на скошенный агар. Рост бактерий происходил в течение 12 часов при температуре 37°С, что соответствует стационарной фазе максимума роста бактерий (Пяткин К.Ю., Кривошеин Ю.С. Микробиология. М.: Медицина, 1980).Sowing of the selected culture was done with a stroke on mowed agar. Bacterial growth occurred within 12 hours at a temperature of 37 ° C, which corresponds to the stationary phase of the maximum bacterial growth (Pyatkin K.Yu., Krivoshein Yu.S. Microbiology. M .: Medicine, 1980).
Затем готовили рабочую концентрацию микробной взвеси в физиологическом растворе, используя прибор для определения мутности бактериальной суспензии - денситометр фирмы "Biomerie". Рабочая концентрация микробной взвеси составила 3,3 единиц по MF (MacFarland), что соответствовало 1 млрд КОЕ/мл.Then, a working concentration of microbial suspension in physiological saline was prepared using a bacterial suspension turbidity meter — a Biomerie densitometer. The working concentration of microbial suspension was 3.3 units by MF (MacFarland), which corresponded to 1 billion CFU / ml.
Рабочую концентрацию микробной взвеси в количестве 0,1 мл вносили в пробирку с 0,3 мл плазмы, разбавленной 1:5 изотоническим раствором хлорида натрия. Плазмокоагуляция проходила при температуре 37°С. Учет скорости коагуляции плазмы проводили с помощью секундомера.A working concentration of microbial suspension in the amount of 0.1 ml was introduced into a test tube with 0.3 ml of plasma diluted 1: 5 with isotonic sodium chloride solution. Plasma coagulation took place at a temperature of 37 ° C. The coagulation rate of plasma was taken into account using a stopwatch.
Коагуляция плазмы наблюдалась через 44 мин. Выделенный штамм по времени коагуляции плазмы отнесен к госпитальному.Plasma coagulation was observed after 44 minutes. The selected strain by the time of plasma coagulation is assigned to the hospital.
Пример 2Example 2
В качестве контроля изучена плазмокоагулирующая активность внебольничного музейного штамма S.aureus американской коллекции типовых культур микроорганизмов (АТСС № 209-М). Для роста бактерий использована стандартная питательная среда (питательный агар для культивирования микроорганизмов, сухой. Министерство Здравоохранения РФ НПО "Питательные среды" г.Махачкала). Состав питательной среды, г/л: панкреатического гидролизата кильки - 17,9; агара - 11,2±1,2; натрия хлорида -7,7±0,3. рН 7,3±0,2.As a control, the plasma-coagulating activity of the community-acquired museum strain S.aureus of the American collection of typical cultures of microorganisms (ATCC No. 209-M) was studied. For the growth of bacteria used a standard nutrient medium (nutrient agar for the cultivation of microorganisms, dry. Ministry of Health of the Russian Federation NPO "Nutrient media", Makhachkala). The composition of the nutrient medium, g / l: pancreatic sprat hydrolyzate - 17.9; agar - 11.2 ± 1.2; sodium chloride -7.7 ± 0.3. pH 7.3 ± 0.2.
Посев музейного штамма АТС № 209-М проведен на скошенный агар штрихом. Рост бактерий происходил в течение 12 часов при температуре 37°С. Затем готовили рабочую концентрацию микробной взвеси в физиологическом растворе. Концентрацию микробной взвеси определяли по мутности бактериальной суспензии с помощью денситометра фирмы "Biomerie". Рабочая концентрация микробной взвеси была равна 3,3 единиц по MF (MacFarland), что соответствовало 1 млрд КОЕ/мл.Inoculation of the museum strain ATS No. 209-M was carried out on mowed agar with a stroke. Bacterial growth occurred within 12 hours at a temperature of 37 ° C. Then, the working concentration of microbial suspension in physiological saline was prepared. The concentration of microbial suspension was determined by the turbidity of the bacterial suspension using a Biomerie densitometer. The working concentration of the microbial suspension was 3.3 units by MF (MacFarland), which corresponded to 1 billion CFU / ml.
Рабочую концентрацию микробной взвеси в количестве 0,1 мл вносили в пробирку с 0,3 мл плазмы, разбавленной 1:5 изотоническим раствором хлорида натрия. Плазмокоагуляция проходила в условиях термостата при 37°С. Учет времени коагуляции плазмы проведен с помощью секундомера.A working concentration of microbial suspension in the amount of 0.1 ml was introduced into a test tube with 0.3 ml of plasma diluted 1: 5 with isotonic sodium chloride solution. Plasma coagulation took place in a thermostat at 37 ° C. Accounting for plasma coagulation time was carried out using a stopwatch.
Коагуляция плазмы наблюдалась через 60 мин. Выделенный штамм по времени коагуляции плазмы отнесен к внебольничному.Plasma coagulation was observed after 60 minutes. The isolated strain in terms of plasma coagulation is attributed to community-acquired.
Пример 3Example 3
Больной К. 45 лет, находился на лечении в отделении реанимации и интенсивной терапии ОКБ г.Тюмени. От больного выделена культура S.aureus под № 2891. Идентификация возбудителя проведена до вида в бактериологической лаборатории ОКБ г.Тюмени по общепринятым тестам для стафилококков: наличие гемолизинов, пигментов, лецитиназы на желточно-солевом агаре, плазмокоагулазы, каталазы, ферментации маннита в аэробных и анаэробных условиях, ферментации глюкозы в аэробных и анаэробных условиях.Patient K., 45 years old, was treated in the intensive care unit of the Tyumen Design Bureau. The S.aureus culture at No. 2891 was isolated from the patient. The pathogen was identified in the bacteriological laboratory of the Tyumen Design Bureau according to generally accepted tests for staphylococci: the presence of hemolysins, pigments, lecithinase on yolk-salt agar, plasmocoagulase, catalase, fermentation of mannitol in aerobic and anaerobic conditions; glucose fermentation under aerobic and anaerobic conditions.
После установления принадлежности выделенных культур к виду S.aureus штамм исследован на чувствительность к антибиотикам для установления принадлежности штамма к госпитальному варианту. Штамм S.aureus № 2891 был резистентным к гентамицину, оксациллину, линкомицину, амикацину, норфлоксацину, ципрофлоксацину и поэтому он отнесен к госпитальному.After establishing the affiliation of the isolated cultures to the species S.aureus, the strain was tested for antibiotic sensitivity to establish the affiliation of the strain to the hospital variant. Strain S.aureus No. 2891 was resistant to gentamicin, oxacillin, lincomycin, amikacin, norfloxacin, ciprofloxacin and is therefore classified as hospital.
Для роста бактерий использована стандартная питательная среда (питательный агар для культивирования микроорганизмов, сухой. Министерство Здравоохранения РФ НПО "Питательные среды" г.Махачкала). Состав питательной среды, г/л: панкреатического гидролизата кильки - 17,9; агара - 11,2±1,2; натрия хлорида - 7,7±0,3. pH 7,3±0,2.For the growth of bacteria used a standard nutrient medium (nutrient agar for the cultivation of microorganisms, dry. Ministry of Health of the Russian Federation NPO "Nutrient media", Makhachkala). The composition of the nutrient medium, g / l: pancreatic sprat hydrolyzate - 17.9; agar - 11.2 ± 1.2; sodium chloride - 7.7 ± 0.3. pH 7.3 ± 0.2.
Посев культуры № 2891 проведен на скошенный агар штрихом. Рост бактерий происходил в течение 12 часов при температуре 37°С. Затем была приготовлена рабочая концентрация микробной взвеси в физиологическом растворе, используя прибор для определения мутности бактериальной суспензии - денситометр фирмы "Biomerie". Рабочая концентрация микробной взвеси составила 3,3 единиц по MF (MacFarland), что соответствовало 1 млрд КОЕ/мл.Sowing culture No. 2891 was carried out on mowed agar with a stroke. Bacterial growth occurred within 12 hours at a temperature of 37 ° C. Then, a working concentration of microbial suspension in physiological saline was prepared using a device for determining the turbidity of a bacterial suspension — a Biomerie densitometer. The working concentration of microbial suspension was 3.3 units by MF (MacFarland), which corresponded to 1 billion CFU / ml.
Рабочую концентрацию микробной взвеси в количестве 0,1 мл вносили в пробирку с 0,3 мл плазмы, разбавленной 1:5 изотоническим раствором хлорида натрия. Коагуляция плазмы проходила при 37°С. Учет результатов реакции проведен с помощью секундомера.A working concentration of microbial suspension in the amount of 0.1 ml was introduced into a test tube with 0.3 ml of plasma diluted 1: 5 with isotonic sodium chloride solution. Plasma coagulation was carried out at 37 ° C. The reaction results were taken into account using a stopwatch.
Коагуляция плазмы наблюдалась через 44 мин. Выделенный штамм по времени коагуляции плазмы отнесен к госпитальному.Plasma coagulation was observed after 44 minutes. The selected strain by the time of plasma coagulation is assigned to the hospital.
Пример 4Example 4
Больной Т. 48 лет, находился на лечении в ожоговом отделении ОКБ г.Тюмени. От больного выделена культура S.aureus №2305. Идентификация возбудителя проведена до вида в бактериологической лаборатории ОКБ г.Тюмени по общепринятым тестам для стафилококков: наличие гемолизинов, пигментов, лецитиназы на желточно-солевом агаре, плазмокоагулазы, каталазы, ферментации маннита в аэробных и анаэробных условиях, ферментации глюкозы в аэробных и анаэробных условиях.Patient T., 48 years old, was treated in the burn department of the Design Bureau of Tyumen. The culture of S.aureus No. 2305 was isolated from the patient. The pathogen was identified in a bacteriological laboratory in the Tyumen Design Bureau according to generally accepted tests for staphylococci: the presence of hemolysins, pigments, lecithinase on yolk-salt agar, plasmocoagulase, catalase, mannitol fermentation under aerobic and anaerobic conditions, and aerobic and aerobic glucose fermentation under aerobic conditions.
Установлено, что выделенная культура обладала свойствами, характерными для вида S.aureus. Штамм исследован на чувствительность к антибиотикам. Штамм S.aureus № 2305 был резистентным к гентамицину, оксациллину, линкомицину, амикацину, норфлоксацину, ципрофлоксацину и поэтому отнесен к госпитальному.It was established that the isolated culture possessed properties characteristic of the species S.aureus. The strain was tested for sensitivity to antibiotics. Strain S.aureus No. 2305 was resistant to gentamicin, oxacillin, lincomycin, amikacin, norfloxacin, ciprofloxacin and is therefore classified as hospital.
Для роста бактерий использована стандартная питательная среда (питательный агар для культивирования микроорганизмов, сухой. Министерство Здравоохранения РФ НПО "Питательные среды", г.Махачкала).For the growth of bacteria used a standard nutrient medium (nutrient agar for the cultivation of microorganisms, dry. Ministry of Health of the Russian Federation NPO "Nutrient media", Makhachkala).
Посев выделенной культуры проведен штрихом на скошенный агар. Рост бактерий происходил в течение 12 часов при температуре 37°С. Затем была приготовлена рабочая концентрация микробной взвеси в физиологическом растворе. С помощью прибора для определения мутности бактериальной суспензии - денситометра фирмы "Biomerie". Рабочая концентрация микробной взвеси составила 3,3 единиц по MF (MacFarland), что соответствовало 1 млрд КОЕ/мл.Sowing of the selected culture was done with a stroke on mowed agar. Bacterial growth occurred within 12 hours at a temperature of 37 ° C. Then, a working concentration of microbial suspension in physiological saline was prepared. Using a device for determining the turbidity of a bacterial suspension - densitometer company "Biomerie". The working concentration of microbial suspension was 3.3 units by MF (MacFarland), which corresponded to 1 billion CFU / ml.
Рабочую концентрацию микробной взвеси в количестве 0,1 мл вносили в пробирку с 0,3 мл плазмы, разбавленной 1:5 изотоническим раствором хлорида натрия. Коагуляция плазмы проходила при 37°С. С помощью секундомера определяли время, в течение которого происходила коагуляция плазмы.A working concentration of microbial suspension in the amount of 0.1 ml was introduced into a test tube with 0.3 ml of plasma diluted 1: 5 with isotonic sodium chloride solution. Plasma coagulation was carried out at 37 ° C. Using a stopwatch, the time during which plasma coagulation occurred was determined.
Коагуляция плазмы наблюдалась через 45 мин. Штамм отнесен к госпитальному.Plasma coagulation was observed after 45 minutes. The strain is assigned to the hospital.
Пример 5Example 5
Больной Ц. 29 лет, находился на лечении в ожоговом отделении ОКБ г.Тюмени. От больного выделена культура S.aureus № 1719. Идентификация возбудителя проведена до вида в бактериологической лаборатории ОКБ г.Тюмени по общепринятым тестам для стафилококков: наличие гемолизинов, пигментов, лецитиназы на желточно-солевом агаре, плазмокоагулазы, каталазы, ферментации маннита в аэробных и анаэробных условиях, ферментации глюкозы в аэробных и анаэробных условиях.Patient C., 29 years old, was treated in the burn department of the Design Bureau of Tyumen. S.aureus culture No. 1719 was isolated from the patient. The pathogen was identified in the bacteriological laboratory of the Tyumen Design Bureau according to generally accepted tests for staphylococci: the presence of hemolysins, pigments, lecithinase on yolk-salt agar, plasmocoagulase, catalase, mannitol fermentation in aerobic and aerobic fermentation of glucose under aerobic and anaerobic conditions.
Культура бактерий отнесена к виду S.aureus. Штамм исследован на чувствительность к антибиотикам и оказался чувствительным к гентамицину, оксациллину, линкомицину, амикацину, норфлоксацину, ципрофлоксацину и поэтому он был отнесен к внебольничному.The bacterial culture is classified as S.aureus. The strain was tested for sensitivity to antibiotics and was sensitive to gentamicin, oxacillin, lincomycin, amikacin, norfloxacin, ciprofloxacin, and therefore it was assigned to community-acquired.
Для роста бактерий использована стандартная питательная среда (питательный агар для культивирования микроорганизмов, сухой. Министерство Здравоохранения РФ НПО "Питательные среды", г.Махачкала).For the growth of bacteria used a standard nutrient medium (nutrient agar for the cultivation of microorganisms, dry. Ministry of Health of the Russian Federation NPO "Nutrient media", Makhachkala).
Посев выделенной культуры проведен штрихом на скошенный агар. Рост бактерий происходил в течение 12 часов при температуре 37°С. Затем была приготовлена рабочая концентрация микробной взвеси в физиологическом растворе. С помощью прибора для определения мутности бактериальной суспензии - денситометра фирмы "Biomerie". Рабочая концентрация микробной взвеси составила 3,3 единиц по MF (MacFarland), что соответствовало 1 млрд КОЕ/мл.Sowing of the selected culture was done with a stroke on mowed agar. Bacterial growth occurred within 12 hours at a temperature of 37 ° C. Then, a working concentration of microbial suspension in physiological saline was prepared. Using a device for determining the turbidity of a bacterial suspension - densitometer company "Biomerie". The working concentration of microbial suspension was 3.3 units by MF (MacFarland), which corresponded to 1 billion CFU / ml.
Рабочую концентрацию микробной взвеси в количестве 0,1 мл вносили в пробирку с 0,3 мл плазмы, разбавленной 1:5 изотоническим раствором хлорида натрия. Коагуляция плазмы проходила при 37°С. С помощью секундомера определяли время, в течение которого происходила коагуляция плазмы.A working concentration of microbial suspension in the amount of 0.1 ml was introduced into a test tube with 0.3 ml of plasma diluted 1: 5 with isotonic sodium chloride solution. Plasma coagulation was carried out at 37 ° C. Using a stopwatch, the time during which plasma coagulation occurred was determined.
Коагуляция плазмы наблюдалась через 81 мин. Штамм отнесен к внебольничному.Plasma coagulation was observed after 81 minutes. The strain is classified as community-acquired.
Со штаммами АТСС 209-М, 2888, 2891, 2305, 1719 проведено 10 опытов для определения плазмокоагулирующей активности. Результаты опытов представлены в таблице.With strains of ATCC 209-M, 2888, 2891, 2305, 1719, 10 experiments were conducted to determine the plasma-coagulating activity. The results of the experiments are presented in the table.
Исследования по идентификации штаммов S.aureus проведены в бактериологической лаборатории ОКБ г.Тюмени по общепринятым методикам.Studies on the identification of S.aureus strains were carried out in the bacteriological laboratory of the Design Bureau of the city of Tyumen according to generally accepted methods.
За 2004 г. исследовано 1233 штаммов бактерий, выделенных от больных, находящихся на лечении в ОКБ г.Тюмени. Заболеваемость, вызванная S.aureus, составила 18%. Чаще всего S.aureus выделяли от больных ожогового отделения (32,4%), гнойной хирургии (26,5%), реанимации и интенсивной терапии (10,3%). Выделенные стафилококки в 32,4% обладали множественной устойчивостью к антибиотикам. На основании устойчивости к оксациллину, гентамицину, амикацину, ципрофлоксацину, линкомицину данные штаммы были отнесены к госпитальным. Итак, наиболее часто госпитальные штаммы выделялись в отделениях хирургии, ожоговом и реанимации и интенсивной терапии. Поэтому для исследования были взяты 3 штамма вида S.aureus, выделенных из этих отделений. Исследования по плазмокоагулирующей активности штаммов проведены на базе бактериологической лаборатории кафедры микробиологии ГОУ ВПО Тюменской государственной медицинской академии Росздрава.In 2004, 1233 bacterial strains isolated from patients being treated in the Design Bureau of the city of Tyumen were studied. The incidence of S.aureus was 18%. Most often, S.aureus was isolated from patients in the burn department (32.4%), purulent surgery (26.5%), resuscitation and intensive care (10.3%). Isolated staphylococci in 32.4% had multiple antibiotic resistance. Based on resistance to oxacillin, gentamicin, amikacin, ciprofloxacin, lincomycin, these strains were assigned to hospital. So, the most common hospital strains were allocated in the departments of surgery, burn and resuscitation and intensive care. Therefore, 3 strains of S.aureus species isolated from these departments were taken for the study. Studies on the plasma-coagulating activity of the strains were carried out on the basis of the bacteriological laboratory of the Department of Microbiology, GOU VPO of the Tyumen State Medical Academy of Roszdrav.
Приведенные примеры иллюстрируют возможность применения предложенного способа для индикации госпитальных штаммов.The above examples illustrate the possibility of using the proposed method for indicating hospital strains.
Предложенный способ индикации госпитальных штаммов стафилококков не требуют больших материальных затрат, легко воспроизводим, сокращает сроки выявления госпитальных штаммов стафилококков и позволяет проводить индикацию госпитальных штаммов стафилококков, обладающих плазмокоагулирующей активностью, с точностью 100%.The proposed method for indicating hospitalized staphylococcal strains does not require large material costs, it is easy to reproduce, it shortens the detection time for hospitalized staphylococcal strains and allows the indication of hospitalized staphylococcal strains with plasma-coagulating activity with an accuracy of 100%.
Время коагуляции плазмы (в мин) госпитальных и внебольничных штаммов S.aureusTable
Plasma coagulation time (in min) of hospital and community-acquired S.aureus strains
№ опытаp / p
Experience number
Claims (1)
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| RU2004132994/13A RU2292398C2 (en) | 2004-11-15 | 2004-11-15 | Method for presentation of hospital staphylococcus strain staphylococcus aureus |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| RU2004132994/13A RU2292398C2 (en) | 2004-11-15 | 2004-11-15 | Method for presentation of hospital staphylococcus strain staphylococcus aureus |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| RU2004132994A RU2004132994A (en) | 2006-04-27 |
| RU2292398C2 true RU2292398C2 (en) | 2007-01-27 |
Family
ID=36655352
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| RU2004132994/13A RU2292398C2 (en) | 2004-11-15 | 2004-11-15 | Method for presentation of hospital staphylococcus strain staphylococcus aureus |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| RU (1) | RU2292398C2 (en) |
Cited By (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2332461C1 (en) * | 2006-11-08 | 2008-08-27 | Владимир Николаевич Ананьев | Method of pathogenic staphylococci detection by plasma coagulating activity |
| RU2458990C1 (en) * | 2011-05-20 | 2012-08-20 | Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования Курская государственная сельскохозяйственная академия имени профессора И.И. Иванова Министерства сельского хозяйства Российской Федерации | Method for recovering pure staphylococcus culture |
Citations (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| SU1277966A1 (en) * | 1984-04-04 | 1986-12-23 | Научно-Исследовательский Институт Эпидемиологии,Микробиологии И Инфекционных Болезней | Method of identification of staphylococcus type |
| RU2003101899A (en) * | 2003-01-23 | 2004-07-27 | Леонид Борисович Козлов | METHOD FOR HOSPITAL STRAIN IDENTIFICATION |
Family Cites Families (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2245922C2 (en) * | 2003-01-23 | 2005-02-10 | Козлов Леонид Борисович | Method for detecting hospital strains |
-
2004
- 2004-11-15 RU RU2004132994/13A patent/RU2292398C2/en not_active IP Right Cessation
Patent Citations (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| SU1277966A1 (en) * | 1984-04-04 | 1986-12-23 | Научно-Исследовательский Институт Эпидемиологии,Микробиологии И Инфекционных Болезней | Method of identification of staphylococcus type |
| RU2003101899A (en) * | 2003-01-23 | 2004-07-27 | Леонид Борисович Козлов | METHOD FOR HOSPITAL STRAIN IDENTIFICATION |
Non-Patent Citations (1)
| Title |
|---|
| АКАТОВ А.К., ЗУЕВА B.C. Стафилококки. АМН СССР. - М.: Медицина, 1983, с.14. СПРАВОЧНИК ПО МИКРОБИОЛОГИЧЕСКИМ И ВИРУСОЛОГИЧЕСКИМ МЕТОДАМ ИССЛЕДОВАНИЯ. - Под ред. М.О.Биргера. 3-е изд., перераб. и доп. - М.: Медицина, 1982, с.252-253. * |
Cited By (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2332461C1 (en) * | 2006-11-08 | 2008-08-27 | Владимир Николаевич Ананьев | Method of pathogenic staphylococci detection by plasma coagulating activity |
| RU2458990C1 (en) * | 2011-05-20 | 2012-08-20 | Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования Курская государственная сельскохозяйственная академия имени профессора И.И. Иванова Министерства сельского хозяйства Российской Федерации | Method for recovering pure staphylococcus culture |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| RU2004132994A (en) | 2006-04-27 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| US20110151495A1 (en) | Method and menstrum for detecting the presence or absence of methicillin resistant staphylococcus aureus (MRSA) in a test sample | |
| RU2292398C2 (en) | Method for presentation of hospital staphylococcus strain staphylococcus aureus | |
| US8546103B2 (en) | Method for detecting the presence or absence of pathogenic Staphylococci in a test sample, including test mixture with micro particles | |
| US5759799A (en) | Marker for revealing contaminants and application method for performing an antibiogram carried out directly on a sample | |
| RU2262533C2 (en) | Method for assay of microorganism sensitivity to antibiotic in treatment of suppurative-inflammatory process | |
| CN111197069A (en) | Method for directly identifying pathogen and detecting drug sensitivity by using blood culture positive specimen | |
| RU2156807C2 (en) | Method of determination of antilactoferrin activity in microorganisms | |
| CN100360680C (en) | A kind of preparation method of milk cow Streptococcus mastitis culture solution | |
| Samuel et al. | ANTIBIOTIC RESISTANCE PATTERN OF BACTERIAL ISOLATES ASSOCIATED WITH ASYMPTOMATIC URINARY TRACT INFECTIONS IN WUKARI METROPOLIS, TARABA STATE, NIGERIA. | |
| Gould et al. | Does storage of sputum specimens adversely affect culture results? | |
| Sufa et al. | Efficient techniques for identifying gram-positive clinical bacteria | |
| Al-Quraishi | The relationship between biofilm production and antibiotic sensitivity of (MRSA) Staphylococcus aureus | |
| RU2332461C1 (en) | Method of pathogenic staphylococci detection by plasma coagulating activity | |
| RU2840800C1 (en) | Method for quantitative assessment of lytic activity of bacteriophages | |
| Saito et al. | Blood culture examinations at a community hospital without a microbiology laboratory: using an automated blood culture system and performing a Gram stain on positive culture bottles in the institution | |
| Shaapera et al. | Antibiotics Profiling of Bacteria Isolated from Urine Samples of Individuals in Wukari, Taraba State | |
| Alieva et al. | ANTIBIOTIC RESISTANCE OF STAPHYLOCOCCUS AUREUS STRAINS ISOLATED FROM ANIMALS AND BIRDS IN THE TERRITORY OF KOSTANAY REGION | |
| RU2331073C2 (en) | Method of specific differential staphylococci diagnostics | |
| RU2666257C1 (en) | Method for determining sensitivity of bacterial hemocultures to antibiotics | |
| Al-Ethari | Molecular and Biochemical Identification of Acinetobacter baumannii isolated from Different Clinical Sources in Kerbala and Najaf Governorates: University of Kerbala, Collage of science, kerbala, Iraq | |
| Salim et al. | Evaluation of Biofilm Production and Antibiotic Resistance Pattern Between Biofilm Producing and Non-biofilm Producing Isolates | |
| RU2194281C1 (en) | Method for early prediction of chronic disease flow in children after acute pyelonephritis | |
| Peras et al. | T2Bacteria panel used simultaneously with blood cultures helps to determine the etiology of bloodstream infections | |
| Al-Jawari et al. | Molecular diagnosis of bacteria Pseudomonas aeruginosa isolated from urinary tract infection in women and detection of virulence factors | |
| Kansak et al. | Comparison of intra-assay and inter-assay reproducibility and positive detection times of two different (BacT/Alert 3D and Autobio BC) commercial blood culture systems |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| FA92 | Acknowledgement of application withdrawn (lack of supplementary materials submitted) |
Effective date: 20060313 |
|
| FZ9A | Application not withdrawn (correction of the notice of withdrawal) |
Effective date: 20060313 |
|
| MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20101116 |