RU2265057C2 - Method for indication of biocide activity of peroxide disinfecting solutions to botulinic neurotoxin - Google Patents
Method for indication of biocide activity of peroxide disinfecting solutions to botulinic neurotoxin Download PDFInfo
- Publication number
- RU2265057C2 RU2265057C2 RU2003133774/13A RU2003133774A RU2265057C2 RU 2265057 C2 RU2265057 C2 RU 2265057C2 RU 2003133774/13 A RU2003133774/13 A RU 2003133774/13A RU 2003133774 A RU2003133774 A RU 2003133774A RU 2265057 C2 RU2265057 C2 RU 2265057C2
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- indication
- neurotoxin
- peroxide
- activity
- botulinic
- Prior art date
Links
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims abstract description 41
- 230000000694 effects Effects 0.000 title claims abstract description 22
- 230000003115 biocidal effect Effects 0.000 title claims abstract description 18
- 150000002978 peroxides Chemical class 0.000 title claims abstract description 13
- 230000000249 desinfective effect Effects 0.000 title claims abstract description 12
- 101710138657 Neurotoxin Proteins 0.000 title abstract description 6
- 239000002581 neurotoxin Substances 0.000 title abstract description 6
- 231100000618 neurotoxin Toxicity 0.000 title abstract description 6
- 239000003139 biocide Substances 0.000 title abstract description 5
- 239000000645 desinfectant Substances 0.000 claims abstract description 27
- 102000004169 proteins and genes Human genes 0.000 claims abstract description 24
- 108090000623 proteins and genes Proteins 0.000 claims abstract description 24
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 claims abstract description 14
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Substances O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims abstract description 10
- 244000005700 microbiome Species 0.000 claims abstract description 8
- 230000015572 biosynthetic process Effects 0.000 claims abstract description 6
- 102000034238 globular proteins Human genes 0.000 claims abstract description 4
- 108091005896 globular proteins Proteins 0.000 claims abstract description 4
- 239000000203 mixture Substances 0.000 claims abstract description 4
- 241000588698 Erwinia Species 0.000 claims abstract 2
- 241000589516 Pseudomonas Species 0.000 claims abstract 2
- 230000001580 bacterial effect Effects 0.000 claims abstract 2
- 108030001720 Bontoxilysin Proteins 0.000 claims description 14
- 231100001103 botulinum neurotoxin Toxicity 0.000 claims description 10
- 238000004659 sterilization and disinfection Methods 0.000 claims description 7
- 102000007474 Multiprotein Complexes Human genes 0.000 claims description 4
- 101710117545 C protein Proteins 0.000 claims 1
- 239000003053 toxin Substances 0.000 abstract description 6
- 231100000765 toxin Toxicity 0.000 abstract description 6
- 108700012359 toxins Proteins 0.000 abstract description 6
- 230000000977 initiatory effect Effects 0.000 abstract description 5
- 238000011156 evaluation Methods 0.000 abstract description 4
- 239000000126 substance Substances 0.000 abstract 1
- 239000000243 solution Substances 0.000 description 27
- MHAJPDPJQMAIIY-UHFFFAOYSA-N Hydrogen peroxide Chemical compound OO MHAJPDPJQMAIIY-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 20
- 238000012360 testing method Methods 0.000 description 17
- 238000010790 dilution Methods 0.000 description 11
- 239000012895 dilution Substances 0.000 description 11
- 230000006911 nucleation Effects 0.000 description 11
- 238000010899 nucleation Methods 0.000 description 11
- 239000000523 sample Substances 0.000 description 11
- 241001465754 Metazoa Species 0.000 description 9
- 241000588912 Pantoea agglomerans Species 0.000 description 8
- 238000010171 animal model Methods 0.000 description 8
- 230000001066 destructive effect Effects 0.000 description 8
- 238000004458 analytical method Methods 0.000 description 6
- 238000002425 crystallisation Methods 0.000 description 6
- 230000008025 crystallization Effects 0.000 description 6
- 108090000790 Enzymes Proteins 0.000 description 5
- 102000004190 Enzymes Human genes 0.000 description 5
- LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N Ethanol Chemical compound CCO LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 5
- BDAGIHXWWSANSR-UHFFFAOYSA-N Formic acid Chemical class OC=O BDAGIHXWWSANSR-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 5
- 230000002779 inactivation Effects 0.000 description 5
- 239000008363 phosphate buffer Substances 0.000 description 5
- 239000003814 drug Substances 0.000 description 4
- 229940079593 drug Drugs 0.000 description 4
- 238000005755 formation reaction Methods 0.000 description 4
- 230000008014 freezing Effects 0.000 description 4
- 238000007710 freezing Methods 0.000 description 4
- 150000003839 salts Chemical class 0.000 description 4
- 239000000725 suspension Substances 0.000 description 4
- 231100000757 Microbial toxin Toxicity 0.000 description 3
- 108010085220 Multiprotein Complexes Proteins 0.000 description 3
- 241000699670 Mus sp. Species 0.000 description 3
- 239000000427 antigen Substances 0.000 description 3
- 108091007433 antigens Proteins 0.000 description 3
- 102000036639 antigens Human genes 0.000 description 3
- 230000004071 biological effect Effects 0.000 description 3
- 239000012472 biological sample Substances 0.000 description 3
- 239000000872 buffer Substances 0.000 description 3
- 230000006378 damage Effects 0.000 description 3
- 235000019441 ethanol Nutrition 0.000 description 3
- -1 hydrogen ions Chemical class 0.000 description 3
- 238000011160 research Methods 0.000 description 3
- OSWFIVFLDKOXQC-UHFFFAOYSA-N 4-(3-methoxyphenyl)aniline Chemical compound COC1=CC=CC(C=2C=CC(N)=CC=2)=C1 OSWFIVFLDKOXQC-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- IJGRMHOSHXDMSA-UHFFFAOYSA-N Atomic nitrogen Chemical compound N#N IJGRMHOSHXDMSA-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 241000894006 Bacteria Species 0.000 description 2
- HEDRZPFGACZZDS-UHFFFAOYSA-N Chloroform Chemical compound ClC(Cl)Cl HEDRZPFGACZZDS-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 241000193155 Clostridium botulinum Species 0.000 description 2
- 241000589540 Pseudomonas fluorescens Species 0.000 description 2
- FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M Sodium chloride Chemical compound [Na+].[Cl-] FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 2
- 230000004913 activation Effects 0.000 description 2
- XAGFODPZIPBFFR-UHFFFAOYSA-N aluminium Chemical compound [Al] XAGFODPZIPBFFR-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 229910052782 aluminium Inorganic materials 0.000 description 2
- 230000001364 causal effect Effects 0.000 description 2
- 238000006243 chemical reaction Methods 0.000 description 2
- 238000001816 cooling Methods 0.000 description 2
- 235000019253 formic acid Nutrition 0.000 description 2
- 239000001257 hydrogen Substances 0.000 description 2
- 229910052739 hydrogen Inorganic materials 0.000 description 2
- 238000003018 immunoassay Methods 0.000 description 2
- 230000000813 microbial effect Effects 0.000 description 2
- 230000002906 microbiologic effect Effects 0.000 description 2
- 239000012188 paraffin wax Substances 0.000 description 2
- 230000007918 pathogenicity Effects 0.000 description 2
- 238000012545 processing Methods 0.000 description 2
- 230000001681 protective effect Effects 0.000 description 2
- 230000035945 sensitivity Effects 0.000 description 2
- RVEZZJVBDQCTEF-UHFFFAOYSA-N sulfenic acid Chemical compound SO RVEZZJVBDQCTEF-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 238000004448 titration Methods 0.000 description 2
- 230000002588 toxic effect Effects 0.000 description 2
- 231100000419 toxicity Toxicity 0.000 description 2
- 230000001988 toxicity Effects 0.000 description 2
- 108010077805 Bacterial Proteins Proteins 0.000 description 1
- 231100000699 Bacterial toxin Toxicity 0.000 description 1
- 208000003508 Botulism Diseases 0.000 description 1
- 241000588699 Erwinia sp. Species 0.000 description 1
- 206010021118 Hypotonia Diseases 0.000 description 1
- CTQNGGLPUBDAKN-UHFFFAOYSA-N O-Xylene Chemical compound CC1=CC=CC=C1C CTQNGGLPUBDAKN-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 206010033799 Paralysis Diseases 0.000 description 1
- 206010057249 Phagocytosis Diseases 0.000 description 1
- ISWSIDIOOBJBQZ-UHFFFAOYSA-N Phenol Chemical compound OC1=CC=CC=C1 ISWSIDIOOBJBQZ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 241000589615 Pseudomonas syringae Species 0.000 description 1
- 210000003815 abdominal wall Anatomy 0.000 description 1
- 230000002378 acidificating effect Effects 0.000 description 1
- 230000009471 action Effects 0.000 description 1
- 150000001412 amines Chemical class 0.000 description 1
- BFNBIHQBYMNNAN-UHFFFAOYSA-N ammonium sulfate Chemical compound N.N.OS(O)(=O)=O BFNBIHQBYMNNAN-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 229910052921 ammonium sulfate Inorganic materials 0.000 description 1
- 235000011130 ammonium sulphate Nutrition 0.000 description 1
- 239000000688 bacterial toxin Substances 0.000 description 1
- 239000011324 bead Substances 0.000 description 1
- 239000003181 biological factor Substances 0.000 description 1
- 229940053031 botulinum toxin Drugs 0.000 description 1
- 239000007853 buffer solution Substances 0.000 description 1
- 238000004364 calculation method Methods 0.000 description 1
- 238000005119 centrifugation Methods 0.000 description 1
- 230000008859 change Effects 0.000 description 1
- 238000012512 characterization method Methods 0.000 description 1
- 239000003153 chemical reaction reagent Substances 0.000 description 1
- 239000012531 culture fluid Substances 0.000 description 1
- 230000003111 delayed effect Effects 0.000 description 1
- 238000001514 detection method Methods 0.000 description 1
- 238000011161 development Methods 0.000 description 1
- 238000007865 diluting Methods 0.000 description 1
- 239000012153 distilled water Substances 0.000 description 1
- 238000009826 distribution Methods 0.000 description 1
- 230000002255 enzymatic effect Effects 0.000 description 1
- 230000007717 exclusion Effects 0.000 description 1
- 238000002474 experimental method Methods 0.000 description 1
- 231100000573 exposure to toxins Toxicity 0.000 description 1
- 239000012530 fluid Substances 0.000 description 1
- 239000011888 foil Substances 0.000 description 1
- 239000010200 folin Substances 0.000 description 1
- 239000011521 glass Substances 0.000 description 1
- 230000006910 ice nucleation Effects 0.000 description 1
- 239000003547 immunosorbent Substances 0.000 description 1
- 229910052500 inorganic mineral Inorganic materials 0.000 description 1
- 230000035987 intoxication Effects 0.000 description 1
- 231100000566 intoxication Toxicity 0.000 description 1
- 238000002955 isolation Methods 0.000 description 1
- 239000007788 liquid Substances 0.000 description 1
- 238000004020 luminiscence type Methods 0.000 description 1
- 239000000463 material Substances 0.000 description 1
- 238000005259 measurement Methods 0.000 description 1
- 235000013372 meat Nutrition 0.000 description 1
- 238000009629 microbiological culture Methods 0.000 description 1
- 239000011707 mineral Substances 0.000 description 1
- 238000012986 modification Methods 0.000 description 1
- 230000004048 modification Effects 0.000 description 1
- 210000003205 muscle Anatomy 0.000 description 1
- 230000036640 muscle relaxation Effects 0.000 description 1
- 229910052757 nitrogen Inorganic materials 0.000 description 1
- 235000015097 nutrients Nutrition 0.000 description 1
- 210000000056 organ Anatomy 0.000 description 1
- 230000001717 pathogenic effect Effects 0.000 description 1
- 230000007170 pathology Effects 0.000 description 1
- 230000000737 periodic effect Effects 0.000 description 1
- 230000008782 phagocytosis Effects 0.000 description 1
- 238000001556 precipitation Methods 0.000 description 1
- 238000000746 purification Methods 0.000 description 1
- 238000012797 qualification Methods 0.000 description 1
- 230000001105 regulatory effect Effects 0.000 description 1
- 230000000241 respiratory effect Effects 0.000 description 1
- 230000029058 respiratory gaseous exchange Effects 0.000 description 1
- 239000012898 sample dilution Substances 0.000 description 1
- 238000005070 sampling Methods 0.000 description 1
- 238000013207 serial dilution Methods 0.000 description 1
- 230000000405 serological effect Effects 0.000 description 1
- 239000011780 sodium chloride Substances 0.000 description 1
- 239000007787 solid Substances 0.000 description 1
- 239000002904 solvent Substances 0.000 description 1
- 238000000527 sonication Methods 0.000 description 1
- 230000006641 stabilisation Effects 0.000 description 1
- 238000011105 stabilization Methods 0.000 description 1
- 238000007619 statistical method Methods 0.000 description 1
- 238000004781 supercooling Methods 0.000 description 1
- 208000024891 symptom Diseases 0.000 description 1
- 231100000563 toxic property Toxicity 0.000 description 1
- 238000012549 training Methods 0.000 description 1
- LWIHDJKSTIGBAC-UHFFFAOYSA-K tripotassium phosphate Chemical class [K+].[K+].[K+].[O-]P([O-])([O-])=O LWIHDJKSTIGBAC-UHFFFAOYSA-K 0.000 description 1
- 238000005406 washing Methods 0.000 description 1
- 238000005303 weighing Methods 0.000 description 1
- 239000008096 xylene Substances 0.000 description 1
Landscapes
- Agricultural Chemicals And Associated Chemicals (AREA)
Abstract
Description
Изобретение относится к способам определения дезинфицирующей активности перекисных растворов в отношении микробных токсинов белковой природы и может быть использовано в биотехнологии, санитарной, медицинской и прикладной микробиологии.The invention relates to methods for determining the disinfecting activity of peroxide solutions against microbial toxins of protein nature and can be used in biotechnology, sanitary, medical and applied microbiology.
Определение биоцидной активности дезинфицирующих средств предполагает воздействие ими на тест-объект с последующей оценкой его биологической активности до и после воздействия. Применительно к ботулиническому нейротоксину определение биологической активности заключается в количественном определении белка по его токсическим свойствам.Determination of the biocidal activity of disinfectants involves their exposure to the test object, followed by an assessment of its biological activity before and after exposure. In relation to botulinum neurotoxin, the determination of biological activity consists in the quantitative determination of a protein by its toxic properties.
Имеется большое количество методов определения активности ботулинических токсинов, среди которых необходимо отметить индикацию ботулинических токсинов по реакции задержки фагоцитоза и восстановления его в присутствии специфических сывороток (Матвеев К.И. Ботулизм. - М., 1959, - 407 с.). Однако метод не нашел широкого признания ввиду ориентировочности получаемых результатов. Малоупотребительными, ввиду недостаточной чувствительности, остаются и обычные серологические методы, основанные на реакции между токсином и соответствующими антителами. В настоящее время разработаны многочисленные варианты иммуноферментных твердофазных или гомогенных методов анализа. Они основаны на специфической фиксации определенных антител или антигенов на нерастворимой основе с последующим тестированием связанного компонента с помощью индикационной системы - антитела (или антигена), ковалентно связанного с ферментом (Егоров А.М., Осипов А.П., Дзантиев Б.Б., Гаврилова Е.М. Теория и практика иммуноферментного анализа. - М., 1991, - 286 с.). Однако реализация иммуноферментного метода требует индивидуальной специфичности конъюгатов для каждого типа антигенов и высокой степени их очистки, что снижает возможность их использования в широкой практике.There are a large number of methods for determining the activity of botulinum toxins, among which it is necessary to note the indication of botulinum toxins by the reaction of delayed phagocytosis and its restoration in the presence of specific sera (Matveev K.I. Botulism. - M., 1959, - 407 p.). However, the method did not find wide recognition due to the orientation of the results. Conventional serological methods based on the reaction between the toxin and the corresponding antibodies remain uncommon, due to insufficient sensitivity. Currently, numerous variants of enzyme-linked immunosorbent enzyme-linked solid or homogeneous methods of analysis have been developed. They are based on the specific fixation of certain antibodies or antigens on an insoluble basis, followed by testing the associated component using an indicator system - an antibody (or antigen) covalently bound to the enzyme (Egorov A.M., Osipov A.P., Dzantiev B.B. Gavrilova EM Theory and practice of enzyme immunoassay. - M., 1991, - 286 p.). However, the implementation of the enzyme immunoassay requires individual specificity of the conjugates for each type of antigens and a high degree of purification, which reduces the possibility of their use in wide practice.
Известен также способ определения активности токсинов по уменьшению люминесценции бактерий после воздействия токсинами. Способ информативный, в некоторой степени инструментальный, но является недостаточно точным вследствие использования биологического компонента (Способ определения активности бактериальных токсинов, патент RU 2075081. Поляков В.М., Текутьев С.И., Андрусенко И.Т. и др., 1997).There is also a method of determining the activity of toxins to reduce the luminescence of bacteria after exposure to toxins. The method is informative, to some extent instrumental, but is not sufficiently accurate due to the use of a biological component (Method for determining the activity of bacterial toxins, patent RU 2075081. Polyakov VM, Tekutiev SI, Andrusenko IT, etc., 1997) .
В качестве ближайшего аналога определения биоцидной активности перекисных дезинфицирующих растворов к токсинам микробного происхождения выбран суспензионный способ, включающий "Способ" определения эффективности дезинфицирующих средств в отношении токсинов титрованием на лабораторных животных" (Лабинская А.С. Микробиология с техникой микробиологических исследований. - М.: Медицина, 1978, С.258-260).As the closest analogue to the determination of the biocidal activity of peroxide disinfectant solutions to toxins of microbial origin, the suspension method was selected, including the "Method" for determining the effectiveness of disinfectants in relation to toxins by titration in laboratory animals "(Labinskaya AS Microbiology with the technique of microbiological research. - M .: Medicine, 1978, S.258-260).
Токсичность исследуемой пробы определяют путем титрования на белых беспородных мышах весом 18-20 г без банальной патологии. Для этого пробу разводят фосфатно-питательным буферным раствором с рН 6,5...6,7 десятикратным шагом. Каждое разведение вводят внутрибрюшинно 4 белым мышам по 0,5 мл каждой. Контролем служит прогретая 30 минут при 100°С опытная проба в аналогичных разведениях. За зараженными и контрольными животными наблюдают в течение 4-х суток, ежедневно регистрируя их гибель и отмечая появление симптомов, характерных для интоксикации ботулиническим нейротоксином (учащенное дыхание, полное расслабление мышц, западание мышц брюшной стенки - осиная талия, параличи конечностей). После получения результатов предварительного исследования определяют токсическую активность тем же способом, но при двухкратном шаге разведения пробы. Одновременно определяют концентрацию белка в пробе по методу Лоури (Loury О.Н.3 Farr A.R. et al. Protein measurement with the Folin phenol reagent // J. Biol. Chem. - 1951. - Vol.19. - P.265-275). Активность пробы выражают величиной ЛД50 в мл-1 с определением среднеквадратичного отклонения. Вычисляют так же удельную активность пробы ЛД50 в мл-1 белка. Активность пробы (ЛД50) рассчитывают по методу Кербера в модификации Ашмарина (Ашмарин И.П., Воробьев А.А. Статистические методы в микробиологических исследованиях - Л.: Медгиз, 1962). Продолжительность анализа по биологической пробе на лабораторных животных составляет от 7 до 8 суток.The toxicity of the test sample is determined by titration on white outbred mice weighing 18-20 g without a banal pathology. For this, the sample is diluted with a phosphate-nutrient buffer solution with a pH of 6.5 ... 6.7 in ten-fold increments. Each dilution was administered intraperitoneally to 4 white mice, 0.5 ml each. The control is a test sample warmed up for 30 minutes at 100 ° C in similar dilutions. Infected and control animals are monitored for 4 days, daily recording their death and noting the appearance of symptoms characteristic of intoxication with botulinum neurotoxin (rapid breathing, complete muscle relaxation, retraction of the muscles of the abdominal wall - wasp waist, paralysis of the extremities). After obtaining the results of a preliminary study, toxic activity is determined in the same way, but with a two-step sample dilution. At the same time, the protein concentration in the sample is determined by the method of Lowry (Loury O.N. 3 Farr AR et al. Protein measurement with the Folin phenol reagent // J. Biol. Chem. - 1951. - Vol.19. - P.265-275 ) The activity of the sample is expressed by the value of LD 50 in ml -1 with the definition of standard deviation. The specific activity of the LD 50 sample in ml -1 of protein is also calculated. Sample activity (LD 50 ) is calculated according to the Kerber method in the modification of Ashmarin (Ashmarin I.P., Vorobyov A.A. Statistical methods in microbiological research - L .: Medgiz, 1962). The duration of the analysis of a biological sample in laboratory animals is from 7 to 8 days.
Общим с заявленным способом является этап приготовления из исследуемого белкового препарата предварительных разведении необходимой кратности, режимы и способы дезинфекции, отбор проб для анализа.In common with the claimed method is the stage of preparation of the studied protein preparation of preliminary dilutions of the required multiplicity, modes and methods of disinfection, sampling for analysis.
К недостаткам данного метода следует отнести трудоемкость и сложность определения биоцидной активности дезинфицирующих перекисных растворов по биологической пробе на лабораторных животных, длительность и низкую точность определения вследствие использования не стандартизованных по чувствительности лабораторных животных.The disadvantages of this method include the complexity and complexity of determining the biocidal activity of disinfecting peroxide solutions from a biological sample in laboratory animals, the duration and low accuracy of determination due to the use of laboratory animals that are not standardized for sensitivity.
Задачей изобретения является разработка способа, обеспечивающего нетрудоемкое, экспрессное определение эффективности дезинфектантов в отношении ботулинического нейротоксина, представляющего собой глобулярный белковый комплекс, сформированный из нескольких субъединиц, на этапах разработки прописей дезинфицирующих композиций, режимов и технических средств их применения.The objective of the invention is to develop a method that provides easy, rapid determination of the effectiveness of disinfectants against botulinum neurotoxin, which is a globular protein complex formed from several subunits, at the stages of development of prescriptions of disinfectant compositions, modes and technical means for their use.
Поставленная задача решается благодаря тому, что в способа индикации биоцидной активности перекисных дезинфицирующих растворов предусмотрено использование:The problem is solved due to the fact that the method of indicating the biocidal activity of peroxide disinfectant solutions provides for the use of:
в качестве объекта тестового воздействия, препаратов бактериальных белков, инициирующих льдообразование (БИЛ), регистрация биологической активности которых осуществляется по наличию в пробе центров нуклеации (ЦН) переохлажденной воды, формируемых белками этого типа;as an object of test exposure, preparations of bacterial proteins initiating ice formation (BIL), the biological activity of which is recorded by the presence in the sample of nucleation centers (CNs) of supercooled water formed by proteins of this type;
методики капельного замораживания для количественного обнаружения ЦН в пробах, сущность которой заключается в подсчете относительного числа кристаллизующихся микрокапель серийных разведении исследуемых проб при определенной температуре переохлаждения и использовании известной зависимости концентрации ЦН от доли замерзающих микрокапель, подчиняющейся распределению Пуассона;drip freezing techniques for quantitative detection of CN in samples, the essence of which is to calculate the relative number of crystallizable microdrops of serial dilutions of the studied samples at a certain supercooling temperature and use the known dependence of the concentration of CN on the proportion of freezing microdrops that obeys the Poisson distribution;
рациональной температуры анализа, находящейся в интервале от минус 7°С до минус 11°С, т.к. при этой температура чистая вода и разбавленные растворы солей, не содержащие гетерогенных ядер нуклеации, в микрокаплях сохраняются в переохлажденном состоянии продолжительное время;rational analysis temperature, which is in the range from minus 7 ° C to minus 11 ° C, because at this temperature, pure water and dilute solutions of salts that do not contain heterogeneous nuclei of nucleation in microdrops remain in a supercooled state for a long time;
миникриостата с регулируемой температурой (производства ОАО "Био-машприбор", г. Йошкар-Ола), сконструированного на основе элементов "Пельтье", обеспечивающих охлаждение и термостабилизацию рабочей поверхности с точностью 0,2°С в интервале температур от минус 1°С до минус 13°С;temperature-controlled mini-criostat (manufactured by Bio-Mashpribor OJSC, Yoshkar-Ola), constructed on the basis of Peltier elements that provide cooling and thermal stabilization of the working surface with an accuracy of 0.2 ° C in the temperature range from minus 1 ° C to minus 13 ° C;
активных штаммов-продуцентов белков, инициирующих льдообразование (БИЛ) - микроорганизмов Erwinia herbicola, штаммы №1211 и №1123 (также возможно использование Pseudomonas syringae, штамм 1567, Pseudomonas fluorescens штамм 1475) из Всероссийской коллекции микроорганизмов, продуцирующих в значительных количествах белковые комплексы класса С, инициирующие кристаллизацию переохлажденной воды при температуре от минус 7°С и ниже, представляющие собой глобулярные образования из нескольких субъединиц, имеющие молекулярную массу около 150 кДт и изоэлектрическую точку в кислой зоне рН, что аналогично ботулиническому нейротоксину (Виноградова И.Д., Уварова Р.Н., Иванов К.К. и др. Получение нейротоксина и гемаглютинина Clostridium botulinum типа А и характеристика нейротоксина // Биохимия. - 1983. - Т.4, вып.5 - С: 788-795; Burke M.J., Lindow S.E. Surface properties and size of the ice nucleation site in ice nucleattion active bacteria: Theoretical considerations // Cryobiology. - 1990 - Vol.- 27, №1. - Р.80-84). Другим доказательством подобия льдообразующих белков и белков ботулинического нейротоксина являются сопоставимые уровни энергии активации (Еакт) и предэкспоненциального множителя (А) в уравнении Аррениуса (k=Аехр(-Еакт/RT), характеризующего термоустойчивость микроорганизмов. Так энергия активации и предэкспоненциальный множитель для Clostridium botulinum типа А равны 72 ккал×моль-1 и 2×1039 с-1, а для Pseudomonas fluorescens 69 ккал×моль-1 и 3×1043 с-1 соответственно (Мунблит В.Я., Тальрозе В.Л., Трофимов В.И. Термоинактивация микроорганизмов. - М.: Наука, 1985, - 247 с.).active producer strains of ice formation initiating proteins (BIL) - microorganisms Erwinia herbicola, strains No. 1211 and No. 1123 (it is also possible to use Pseudomonas syringae, strain 1567, Pseudomonas fluorescens strain 1475) from the All-Russian collection of microorganisms that produce significant amounts of protein complexes initiating crystallization of supercooled water at a temperature of minus 7 ° С and below, representing globular formations of several subunits, having a molecular weight of about 150 kDt and an isoelectric point in acidic not pH, which is similar to botulinum neurotoxin (Vinogradova I.D., Uvarova R.N., Ivanov K.K. et al. Obtaining neurotoxin and hemaglutinin Clostridium botulinum type A and neurotoxin characterization // Biochemistry. - 1983. - T.4 , issue 5 - С: 788-795; Burke MJ, Lindow SE Surface properties and size of the ice nucleation site in ice nucleattion active bacteria: Theoretical considerations // Cryobiology. - 1990 - Vol.- 27, No. 1. - P.80-84). Another evidence of the similarity between ice-forming proteins and botulinum neurotoxin proteins is comparable levels of activation energy (E act ) and preexponential factor (A) in the Arrhenius equation (k = A exp (-E act / RT), which characterizes the thermal stability of microorganisms. So, the activation energy and preexponential factor for Clostridium botulinum type A are 72 kcal × mol -1 and 2 × 10 39 s -1 , and for Pseudomonas fluorescens 69 kcal × mol -1 and 3 × 10 43 s -1 respectively (Munblit V.Ya., Talroze V. L., Trofimov V.I. Thermal inactivation of microorganisms. - M .: Nauka, 1985, - 247 p.).
Способ включает следующие этапы:The method includes the following steps:
приготовление тест-объекта из белкового препарата;preparation of a test object from a protein preparation;
проведение инактивации препарата перекисными дезинфектантами;inactivation of the drug with peroxide disinfectants;
определение содержания ЦН в тест-объекте до и после воздействия дезинфицирующего раствора криоскопическим микрокапельным методом;determination of the content of CN in the test object before and after exposure to a disinfectant solution using the cryoscopic microdrop method;
обработка результатов.processing the results.
Способ выполняется следующим образом.The method is as follows.
Для получения тест-препарата выращивают культуру продуцента, из которой выделяют БИЛ.To obtain a test drug, a producer culture is grown from which BIL is isolated.
Выращивание микробов продуцентов осуществляется на поверхности плотной питательной среды, на основе ферментативного гидролизата мяса, содержащей аминный азот в количестве (110±10) мг %, имеющей концентрацию водородных ионов (7,2±0,2) ед. рН. Получение микробных культур производится при температуре (24±4)°С в течение 3 суток с последующим смывом колоний физиологическим раствором хлористого натрия.The microbes of producers are grown on the surface of a dense nutrient medium, based on an enzymatic meat hydrolyzate containing amine nitrogen in an amount of (110 ± 10) mg%, having a concentration of hydrogen ions (7.2 ± 0.2) units. pH Microbial cultures are obtained at a temperature of (24 ± 4) ° C for 3 days, followed by washing the colonies with physiological sodium chloride solution.
Выделение БИЛ осуществляют путем разрушения клеток суспензии микроорганизмов встряхиванием со стеклянными бусами или обработкой ультразвуком. БИЛ выделяют из культуральной жидкости методом солевого осаждения в присутствии сульфата аммония при рН среды 3,5...5,5 ед. рН с последующим центрифугированием. На основе полученной белковой пасты готовят тест-препарат, соответствующий раствору ботулинического нейротоксина по содержанию белка, минеральных солей и кислотности.Isolation of BIL is carried out by destroying the cells of a suspension of microorganisms by shaking with glass beads or sonication. BIL is isolated from the culture fluid by salt precipitation in the presence of ammonium sulfate at a pH of 3.5 ... 5.5 units. pH followed by centrifugation. Based on the obtained protein paste, a test preparation is prepared corresponding to a solution of botulinum neurotoxin in terms of protein, mineral salts and acidity.
Инактивацию белкового препарата исследуемыми дезинфицирующими растворами осуществляют суспензионным методом при соотношении препарата и дезинфицирующего средства 1:9 и экспозиции от 5 до 30 мин с периодическим встряхиванием.Inactivation of the protein preparation by the investigated disinfectant solutions is carried out by the suspension method with a ratio of the drug and the disinfectant 1: 9 and exposure from 5 to 30 minutes with periodic shaking.
Для регистрации ЦН в пробах проводят следующие операции:To register CN in samples, the following operations are carried out:
по описанию, прилагаемому к криостату, подготавливают прибор к работе. Устанавливают рабочую температуру минус 7°С.according to the description attached to the cryostat, prepare the device for operation. Set the operating temperature to minus 7 ° C.
Разводящую жидкость - фосфатный буфер готовят на основе растворов солей однозамещенного и двузамещенного фосфорнокислого калия и дистиллированной воды. Концентрация водородных ионов (рН) должна находиться в пределах 7,3...7,6 ед. рН. Приготовленный буфер стерилизуется при 120°С в течение 30 минут. Стерильный буфер проверяют на наличие абиогенных центров нуклеации. Для этого буфер разливают в стерильные пробирки по 4...10 мл и замораживают в криостате при температуре минус (7...9)°С в течение 5 мин. Замерзшие при этой температуре пробирки отбраковывают.A diluting liquid, a phosphate buffer, is prepared on the basis of solutions of salts of monosubstituted and disubstituted potassium phosphate and distilled water. The concentration of hydrogen ions (pH) should be in the range of 7.3 ... 7.6 units. pH The prepared buffer is sterilized at 120 ° C for 30 minutes. The sterile buffer is checked for abiogenic nucleation sites. For this, the buffer is poured into sterile tubes of 4 ... 10 ml and frozen in a cryostat at a temperature of minus (7 ... 9) ° С for 5 minutes. Tubes frozen at this temperature are discarded.
Приготовление парафинированных кювет осуществляют из алюминиевой фольги и переплавленного парафина, растворенного в ксилоле или хлороформе в концентрации 3%. Кюветы готовят в виде круга диаметром 8...10 см с загнутыми краями и высотой бортов 5...10 мм. Раствор парафина наносится на поверхность кюветы с избытком. Излишек раствора сливают. Кювету подсушивают в течение 2...3 минут над пламенем спиртовки для испарения растворителя.The preparation of waxed cuvettes is carried out from aluminum foil and molten paraffin dissolved in xylene or chloroform at a concentration of 3%. Ditches are prepared in the form of a circle with a diameter of 8 ... 10 cm with curved edges and a side height of 5 ... 10 mm. The paraffin solution is applied to the surface of the cuvette in excess. Excess solution is drained. The cuvette is dried for 2 ... 3 minutes above the flame of an alcohol lamp to evaporate the solvent.
Стерильные мерные пробирки в количестве, необходимом для выполнения требуемых десятикратных разведений, заполняют 4,5 см3 фосфатного буфера. Исследуемую пробу тщательно перемешивают и 0.5 см3 вносят в первую пробирку с фосфатным буфером. Дальнейшие разведения осуществляют десятикратным шагом. Анализу подвергают исходную пробу и все 5...8 десятикратных разведений.Sterile volumetric tubes in the amount necessary to perform the required ten-fold dilutions are filled with 4.5 cm 3 of phosphate buffer. The test sample is thoroughly mixed and 0.5 cm 3 is introduced into the first tube with phosphate buffer. Further dilutions are carried out in ten-fold increments. The initial sample and all 5 ... 8 ten-fold dilutions are subjected to analysis.
Микропипеткой наносят на поверхность алюминиевой парафинированной кюветы по 20...40 капель (объемом 0,01 см3) (контролей фосфатного буфера и исследуемого дезинфицирующего раствора) и каждого анализируемого разведения. Кюветы устанавливают в криостат и визуально определяют количество замерзших капель в каждой кювете через три минуты с момента начала кристаллизации. Замерзание капель регистрируют по их помутнению. Изменяют температуру охлаждающей поверхности криостата и через 3 мин повторяют подсчет числа замерзших микрокапель.A micropipette is applied to the surface of an aluminum waxed cuvette with 20 ... 40 drops (0.01 cm 3 volume) (controls of a phosphate buffer and a test disinfectant solution) and each analyzed dilution. The cuvettes are installed in a cryostat and visually determine the number of frozen drops in each cuvette three minutes after the start of crystallization. Freezing drops recorded by their turbidity. Change the temperature of the cooling surface of the cryostat and after 3 min repeat the count of the number of frozen microdrops.
При расчете концентрации центров нуклеации используют кюветы, в которых отмечено замерзание части нанесенных капель. Анализ считается зачетным, если в контролях (фосфатном буфере и исследуемом дезинфицирующем растворе) ЦН при выбранной температуре не регистрируются.When calculating the concentration of nucleation centers, cuvettes are used in which a part of the applied droplets is frozen. The analysis is considered valid if in the controls (phosphate buffer and the test disinfectant solution), the CNs at the selected temperature are not recorded.
Расчет концентрации ЦН в пробах ведут следующим порядком.The calculation of the concentration of CN in the samples is carried out in the following order.
Для каждого разведения пробы (i) по формулам 1 и 2 рассчитывают долю замерзших капель - эффект кристаллизации (fi) и соответствующую этому эффекту концентрацию центров нуклеации (Сfi).For each dilution of the sample (i), the fraction of frozen droplets is calculated using formulas 1 and 2 — the crystallization effect (f i ) and the concentration of nucleation centers (C fi ) corresponding to this effect.
где: fi - эффект кристаллизации, доля;where: f i - crystallization effect, fraction;
Сfi - концентрация центров нуклеации в исследуемой жидкости, ц.н. см-3;С fi - concentration of nucleation centers in the test fluid, c.n. cm -3 ;
Noi - общее количество зачетных капель исследуемого разведения на данной кювете;N oi is the total number of test drops of the test dilution on this cuvette;
N3i - число замерзших капель исследуемого разведения на данной кювете;N 3i - the number of frozen drops of the investigated dilution on this cuvette;
d - степень разведения;d is the degree of dilution;
V - объем капли на кювете (0,01 см3).V is the droplet volume on the cuvette (0.01 cm 3 ).
На основе полученных значений методом наименьших квадратов рассчитывают концентрацию центров нуклеации, соответствующую 50 - процентному эффекту кристаллизации.On the basis of the obtained values by the least squares method, the concentration of nucleation centers corresponding to the 50% crystallization effect is calculated.
Статистическую обработку результатов параллельных определений выполняют в соответствии с общепринятыми нормами.Statistical processing of the results of parallel determinations is performed in accordance with generally accepted standards.
Наличие причинно-следственной связи между совокупностью существенных признаков заявляемого объекта и достигаемыми техническими результатами показано в таблице 1.The presence of a causal relationship between the totality of the essential features of the claimed object and the achieved technical results are shown in table 1.
Сведения о причинно-следственной связи между совокупностью существенных признаков заявляемого объекта и достигаемыми техническими результатамиTable 1
Information about the causal relationship between the totality of the essential features of the claimed object and the achieved technical results
Предлагаемый способ индикации биоцидной активности перекисных дезинфицирующих растворов в отношении микробных токсинов имеет следующие преимущества перед прототипом:The proposed method for indicating the biocidal activity of peroxide disinfectant solutions against microbial toxins has the following advantages over the prototype:
сокращается продолжительность регистрации биоцидного эффекта дезраствора на льдообразующие белки, являющиеся биологическим имитатором ботулинического нейротоксина;the duration of the registration of the biocidal effect of the disinfectant on ice-forming proteins, which are a biological simulator of botulinum neurotoxin, is reduced;
исключается опасность для персонала, выполняющего работы по проведению дезинфицирующих мероприятий и регистрации результатов;danger to personnel performing disinfection measures and recording results is eliminated;
повышается точность определения эффективности проводимой дезинфекции за счет исключения еще одного биологического фактора - использования лабораторных животных для определения остаточной токсичности и полноты дезинфекционных мероприятий;the accuracy of determining the effectiveness of disinfection is improved by eliminating another biological factor - the use of laboratory animals to determine residual toxicity and completeness of disinfection measures;
существенно снижаются затраты на проведение исследований за счет исключения работ, требующих специальных мер защиты (зонированных лабораторий и вивариев, СИЗ кожных покровов и органов дыхания, специальной подготовки персонала и т.п.);research costs are significantly reduced due to the exclusion of work requiring special protective measures (zoned laboratories and vivariums, PPE of the skin and respiratory organs, special training of personnel, etc.);
повышается производительность при использовании инструментального метода регистрации биоцидного эффекта перекисных дезинфектантов по активности биологических центров нуклеации.productivity increases when using the instrumental method of recording the biocidal effect of peroxide disinfectants by the activity of biological nucleation centers.
Возможность осуществления предлагаемого способа показана на следующих примерах.The possibility of implementing the proposed method is shown in the following examples.
Пример 1. Оценка деструктивного действия 5%-ного раствора перекиси водорода на БИЛ бактерий Erwinia herbicola произведена в динамике при температурах регистрации эффекта кристаллизации минус 7°С и минус 11°С суспензионным методом.Example 1. The evaluation of the destructive effect of a 5% hydrogen peroxide solution on the BIL of Erwinia herbicola bacteria was carried out in dynamics at the temperatures of recording the crystallization effect of minus 7 ° C and minus 11 ° C by the suspension method.
Деструктивное влияние перекиси водорода на БИЛ бактерий Erwinia herbicola штамм №1211table 2
The destructive effect of hydrogen peroxide on BIL bacteria Erwinia herbicola strain No. 1211
Из представленных данных следует, что простой раствор перекиси водорода обладает некоторой деструктивной активностью в отношении изучаемых белков. Более крупные и лабильные белковые комплексы, регистрируемые при температуре минус 7°С, инактивируются за 30 мин. Стабильные белковые комплексы, регистрируемые при температуре минус 11°С, полностью не инактивируются. Остаточная их концентрация после 30-минутной экспозиции свидетельствует о том, что полней деструкции белков не наступает.From the data presented it follows that a simple solution of hydrogen peroxide has some destructive activity in relation to the studied proteins. Larger and more labile protein complexes, recorded at a temperature of minus 7 ° С, are inactivated in 30 minutes. Stable protein complexes recorded at a temperature of minus 11 ° C are not completely inactivated. Their residual concentration after a 30-minute exposure indicates that complete destruction of the proteins does not occur.
Пример 2. Оценка деструктивного действия активированного муравьиной кислотой раствора перекиси водорода на белки Erwinia herbicola штамм №1211 в тех же условиях, что и в примере 1.Example 2. Evaluation of the destructive effect of activated formic acid solution of hydrogen peroxide on proteins Erwinia herbicola strain No. 1211 under the same conditions as in example 1.
Деструктивное влияние активированного раствора перекиси водорода на БИЛ бактерий Erwinia herbicola штамм №1211Table 3
The destructive effect of the activated hydrogen peroxide solution on the BIL of bacteria Erwinia herbicola strain No. 1211
Примечание. Состав дезинфицирующего раствора: перекиси водорода 5%, муравьиная кислота 1%, сульфонол 0,3%.Note. The composition of the disinfecting solution: hydrogen peroxide 5%, formic acid 1%, sulfonol 0.3%.
Полученные результаты свидетельствуют о том, что деструктивная активность активированного раствора перекиси водорода существенно выше чем у ее простого раствора. Однако достижение полной деструкции белков достигается только после 15-минутной экспозиции, что свидетельствует о некоторой ненадежности используемого дезсредства для этих целей.The results obtained indicate that the destructive activity of the activated hydrogen peroxide solution is significantly higher than that of its simple solution. However, the achievement of complete destruction of proteins is achieved only after a 15-minute exposure, which indicates some unreliability of the disinfectant used for these purposes.
Пример 3. Оценка деструктивного действия 10%-ного раствора перекиси водорода с 35%-ным раствором этилового спирта на белки Erwinia sp. №16. Условия проведения опыта аналогичны примеру №1.Example 3. Evaluation of the destructive effect of a 10% solution of hydrogen peroxide with a 35% solution of ethyl alcohol on Erwinia sp. No. 16. The conditions of the experiment are similar to example No. 1.
Воздействие спиртово-перекисного раствора испытанной концентрации вызывает полную деструкцию белков Erwinia herbicola штамм №1211 уже после 5-минутной экспозиции, что свидетельствует о получении высокого биоцидного эффекта действия испытанного раствора.The effect of the alcohol-peroxide solution of the tested concentration causes the complete destruction of the proteins of Erwinia herbicola strain No. 1211 after a 5-minute exposure, which indicates a high biocidal effect of the action of the tested solution.
Деструктивное влияние спиртово-перекисного раствора на БИЛ бактерий Erwinia herbicola штамм №1211Table 4
The destructive effect of alcohol-peroxide solution on the BIL of bacteria Erwinia herbicola strain No. 1211
воздействия дезинфектанта, минTime
disinfectant exposure, min
Адекватность использования белков инициирующих льдообразование в качестве модели ботулинического нейротоксина для экспрессного определения эффективности дезинфектантов обусловлена результатами экспериментальных исследований их действия на нейротоксин. Исследования эффективности дезинфектантов на основе перекиси водорода показали, что полная инактивация ботулотоксина наблюдается в интервале от 5 до 30 минут. При этом установлено, что максимальную биоцидность проявляет 10%-ный раствор перекиси водорода с 35%-ным раствором этилового спирта, минимальную - раствор перекиси водорода, а раствор перекиси водорода, активированный муравьиной кислотой с добавлением сульфонола, занимает промежуточное положение. Эти результаты полностью согласуются с экспериментальными данными, полученными с использованием льдообразующих белков бактерий Erwinia herbicola штамм №1211 (таблицы 2, 3 и 4).The adequacy of the use of proteins initiating ice formation as a model of botulinum neurotoxin for the rapid determination of the effectiveness of disinfectants is due to the results of experimental studies of their effect on neurotoxin. Studies of the effectiveness of disinfectants based on hydrogen peroxide have shown that complete inactivation of botulinum toxin is observed in the range from 5 to 30 minutes. It was found that the maximum biocide is shown by a 10% hydrogen peroxide solution with a 35% solution of ethyl alcohol, the minimum by a hydrogen peroxide solution, and a hydrogen peroxide solution activated by formic acid with the addition of sulfonol occupies an intermediate position. These results are completely consistent with experimental data obtained using the ice-forming proteins of bacteria Erwinia herbicola strain No. 1211 (tables 2, 3 and 4).
Также следует отметить, что действующая нормативная документация (Санитарно-эпидемиологические правила. Безопасность работы с микроорганизмами 1-11 групп патогенности (опасности) - СП - 1.3.1285 - 03) предписывает для инактивации токсинов микробного происхождения использование дезинфицирующих растворов на основе перекиси водорода.It should also be noted that the current regulatory documentation (Sanitary and epidemiological rules. Safety of working with microorganisms of 1-11 pathogenicity (danger) groups - SP - 1.3.1285 - 03) requires the use of disinfectant solutions based on hydrogen peroxide for inactivation of microbial toxins.
Claims (1)
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| RU2003133774/13A RU2265057C2 (en) | 2003-11-20 | 2003-11-20 | Method for indication of biocide activity of peroxide disinfecting solutions to botulinic neurotoxin |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| RU2003133774/13A RU2265057C2 (en) | 2003-11-20 | 2003-11-20 | Method for indication of biocide activity of peroxide disinfecting solutions to botulinic neurotoxin |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| RU2003133774A RU2003133774A (en) | 2005-05-10 |
| RU2265057C2 true RU2265057C2 (en) | 2005-11-27 |
Family
ID=35746410
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| RU2003133774/13A RU2265057C2 (en) | 2003-11-20 | 2003-11-20 | Method for indication of biocide activity of peroxide disinfecting solutions to botulinic neurotoxin |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| RU (1) | RU2265057C2 (en) |
Cited By (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2305706C1 (en) * | 2006-01-10 | 2007-09-10 | Евгений Васильевич Пименов | Liquid nutrient broth for deep cultivation of ice-forming bacteria |
| RU2354704C1 (en) * | 2007-10-09 | 2009-05-10 | Федеральное государственное учреждение "48 Центральный научно-исследовательский институт Министерства обороны Российской Федерации" | Method of controlling distribution and stability of biological admixtures of protein nature in environment |
| RU2704808C2 (en) * | 2013-06-28 | 2019-10-31 | Мерц Фарма Гмбх Энд Ко. Кгаа | Agents and methods for determining biological activity of neurotoxin polypeptides in cells |
Citations (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2075082C1 (en) * | 1992-09-24 | 1997-03-10 | Ростовский научно-исследовательский институт микробиологии и паразитологии Госкомсанэпиднадзора | Method of determination of bacterial toxin activity |
| RU2188169C1 (en) * | 2001-11-29 | 2002-08-27 | Гутенев Владимир Владимирович | Method of preparation of potable water |
-
2003
- 2003-11-20 RU RU2003133774/13A patent/RU2265057C2/en not_active IP Right Cessation
Patent Citations (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2075082C1 (en) * | 1992-09-24 | 1997-03-10 | Ростовский научно-исследовательский институт микробиологии и паразитологии Госкомсанэпиднадзора | Method of determination of bacterial toxin activity |
| RU2188169C1 (en) * | 2001-11-29 | 2002-08-27 | Гутенев Владимир Владимирович | Method of preparation of potable water |
Non-Patent Citations (1)
| Title |
|---|
| ЛАБИНСКАЯ А.С. Микробиология с техникой микробиологических исследований. М.: Медицина, 1978, с.258-260. * |
Cited By (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2305706C1 (en) * | 2006-01-10 | 2007-09-10 | Евгений Васильевич Пименов | Liquid nutrient broth for deep cultivation of ice-forming bacteria |
| RU2354704C1 (en) * | 2007-10-09 | 2009-05-10 | Федеральное государственное учреждение "48 Центральный научно-исследовательский институт Министерства обороны Российской Федерации" | Method of controlling distribution and stability of biological admixtures of protein nature in environment |
| RU2704808C2 (en) * | 2013-06-28 | 2019-10-31 | Мерц Фарма Гмбх Энд Ко. Кгаа | Agents and methods for determining biological activity of neurotoxin polypeptides in cells |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| RU2003133774A (en) | 2005-05-10 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| Hugh-Jones et al. | Zoonoses: recognition, control, and prevention | |
| Spagnolo et al. | Forensic microbiology applications: a systematic review | |
| Zuerner | Laboratory maintenance of pathogenic Leptospira | |
| Rajoriya et al. | Enriching membrane cholesterol improves stability and cryosurvival of buffalo spermatozoa | |
| Hensel et al. | Biological and biochemical analysis of bacteria and viruses | |
| Griebsch et al. | Emerging leptospirosis in urban Sydney dogs: a case series (2017–2020) | |
| US20190177774A1 (en) | Molecular reference controls | |
| Chaban et al. | Isolation rates of Campylobacter fetus subsp venerealis from bovine preputial samples via passive filtration on nonselective medium versus selective medium, with and without transport medium | |
| CN101592661B (en) | Brucellosis antibody competitive enzyme-linked immunosorbent assay reagent kit | |
| de Waard et al. | Conventional diagnostic methods | |
| RU2265057C2 (en) | Method for indication of biocide activity of peroxide disinfecting solutions to botulinic neurotoxin | |
| Guedes et al. | Leptospira transport medium (LTM): A practical tool for leptospires isolation | |
| Kessy et al. | A microbiological and serological study of leptospirosis among pigs in the Morogoro municipality, Tanzania | |
| Baake et al. | Detection of intraocular leptospiral DNA, antibodies and Leptospira spp. in horses with equine recurrent uveitis in different laboratories | |
| Mahmood et al. | Application of serum based PCR and fluorescence polarization assay for diagnosis of brucellosis among people occupationally at risk to disease | |
| Chappell et al. | Adenovirus 36 antibody detection: Improving the standard serum neutralization assay | |
| CN115747114B (en) | Methods for isolating and culturing Brucella bovis | |
| Weiner et al. | Diagnosis of bovine brucellosis using traditional serological techniques and fluorescence polarisation assay | |
| CN101846681A (en) | FPA antibody detection kit for animal brucellosis fluorescence polarization detection method | |
| CN102391997A (en) | Aminoglycosides phosphate modifying enzyme and detection method for detecting antibiotics | |
| CN105177109B (en) | Detect the method and kit of staphylococcus aureus | |
| Osue et al. | Assessing Reliability of Widal | |
| RU2354704C1 (en) | Method of controlling distribution and stability of biological admixtures of protein nature in environment | |
| Evans | THE TOXICITY OF ACIDS FOR LEUCOCYTES, AS | |
| Zuraidawati et al. | Use of vinegar as a candidate substitute of acetic acid (CH3COOH) in the rivalta test method in diagnosis feline infectious peritonitis (FIP) domestic cat |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20071121 |