RU2120799C1 - Method of immunostimulating agent preparing - Google Patents
Method of immunostimulating agent preparing Download PDFInfo
- Publication number
- RU2120799C1 RU2120799C1 RU96123779A RU96123779A RU2120799C1 RU 2120799 C1 RU2120799 C1 RU 2120799C1 RU 96123779 A RU96123779 A RU 96123779A RU 96123779 A RU96123779 A RU 96123779A RU 2120799 C1 RU2120799 C1 RU 2120799C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- cells
- supernatant
- concentration
- bone marrow
- solution
- Prior art date
Links
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims abstract description 20
- 239000003022 immunostimulating agent Substances 0.000 title claims abstract description 13
- 239000006228 supernatant Substances 0.000 claims abstract description 16
- 241000283690 Bos taurus Species 0.000 claims abstract description 8
- 210000001185 bone marrow Anatomy 0.000 claims abstract description 6
- 230000003308 immunostimulating effect Effects 0.000 claims description 13
- 229960001438 immunostimulant agent Drugs 0.000 claims description 11
- 241001465754 Metazoa Species 0.000 claims description 7
- 235000015097 nutrients Nutrition 0.000 claims description 7
- 235000013305 food Nutrition 0.000 abstract description 5
- 241001494479 Pecora Species 0.000 abstract description 3
- 230000008569 process Effects 0.000 abstract description 2
- 241000283707 Capra Species 0.000 abstract 1
- 230000003247 decreasing effect Effects 0.000 abstract 1
- 230000000694 effects Effects 0.000 abstract 1
- 239000000126 substance Substances 0.000 abstract 1
- 210000004027 cell Anatomy 0.000 description 23
- 239000000243 solution Substances 0.000 description 10
- 210000000988 bone and bone Anatomy 0.000 description 7
- 238000002474 experimental method Methods 0.000 description 7
- 241000282887 Suidae Species 0.000 description 6
- 210000002798 bone marrow cell Anatomy 0.000 description 6
- 238000011534 incubation Methods 0.000 description 6
- 239000000203 mixture Substances 0.000 description 6
- 241000699670 Mus sp. Species 0.000 description 5
- 238000005119 centrifugation Methods 0.000 description 5
- 238000001727 in vivo Methods 0.000 description 5
- 235000013372 meat Nutrition 0.000 description 5
- 102000004169 proteins and genes Human genes 0.000 description 5
- 108090000623 proteins and genes Proteins 0.000 description 5
- 230000000638 stimulation Effects 0.000 description 5
- FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M Sodium chloride Chemical compound [Na+].[Cl-] FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 4
- 238000004364 calculation method Methods 0.000 description 4
- 238000005520 cutting process Methods 0.000 description 4
- 235000015872 dietary supplement Nutrition 0.000 description 4
- 238000011156 evaluation Methods 0.000 description 4
- 230000001900 immune effect Effects 0.000 description 4
- 239000000725 suspension Substances 0.000 description 4
- QTCANKDTWWSCMR-UHFFFAOYSA-N costic aldehyde Natural products C1CCC(=C)C2CC(C(=C)C=O)CCC21C QTCANKDTWWSCMR-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- 210000003743 erythrocyte Anatomy 0.000 description 3
- 238000010438 heat treatment Methods 0.000 description 3
- 230000028993 immune response Effects 0.000 description 3
- ISTFUJWTQAMRGA-UHFFFAOYSA-N iso-beta-costal Natural products C1C(C(=C)C=O)CCC2(C)CCCC(C)=C21 ISTFUJWTQAMRGA-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 description 3
- 239000002994 raw material Substances 0.000 description 3
- 230000004071 biological effect Effects 0.000 description 2
- 239000006285 cell suspension Substances 0.000 description 2
- 238000001816 cooling Methods 0.000 description 2
- 239000002778 food additive Substances 0.000 description 2
- 235000013373 food additive Nutrition 0.000 description 2
- 238000007710 freezing Methods 0.000 description 2
- 230000008014 freezing Effects 0.000 description 2
- 239000000047 product Substances 0.000 description 2
- 239000011780 sodium chloride Substances 0.000 description 2
- 238000003860 storage Methods 0.000 description 2
- 238000004458 analytical method Methods 0.000 description 1
- 238000010171 animal model Methods 0.000 description 1
- 230000003833 cell viability Effects 0.000 description 1
- 238000010790 dilution Methods 0.000 description 1
- 239000012895 dilution Substances 0.000 description 1
- 238000000909 electrodialysis Methods 0.000 description 1
- 238000010828 elution Methods 0.000 description 1
- 238000009472 formulation Methods 0.000 description 1
- 238000004108 freeze drying Methods 0.000 description 1
- 238000002523 gelfiltration Methods 0.000 description 1
- 239000007924 injection Substances 0.000 description 1
- 238000002347 injection Methods 0.000 description 1
- 238000002955 isolation Methods 0.000 description 1
- 210000003141 lower extremity Anatomy 0.000 description 1
- 210000001165 lymph node Anatomy 0.000 description 1
- 235000013622 meat product Nutrition 0.000 description 1
- 238000010899 nucleation Methods 0.000 description 1
- 235000016709 nutrition Nutrition 0.000 description 1
- 230000035764 nutrition Effects 0.000 description 1
- 230000003204 osmotic effect Effects 0.000 description 1
- 239000000575 pesticide Substances 0.000 description 1
- 239000002504 physiological saline solution Substances 0.000 description 1
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 description 1
- 239000013049 sediment Substances 0.000 description 1
- 238000000108 ultra-filtration Methods 0.000 description 1
- 238000005406 washing Methods 0.000 description 1
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Substances O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
Images
Landscapes
- Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
Description
Изобретение относится к области пищевой промышленности, в частности к способам получения пищевых добавок. The invention relates to the field of food industry, in particular to methods for producing food additives.
Известен способ получения экстракта для медицинских целей, обладающего иммуностимулирующим действием, из сырья животного происхождения путем изоляции костного мозга, нагревания в свободной от пирогенов воде и выдерживания при 80oC в течение 5 мин, центрифугирования и использования надосадочной жидкости для последующей ультрафильтрации, электродиализа (см. а.с. N 1442064, МКИ A 61 K 37/24, 1988, БИ N 44).A known method of obtaining an extract for medical purposes, having an immunostimulating effect, from raw materials of animal origin by isolating bone marrow, heating in pyrogen-free water and keeping at 80 o C for 5 min, centrifugation and the use of supernatant for subsequent ultrafiltration, electrodialysis (see A.S. N 1442064, MKI A 61 K 37/24, 1988, BI N 44).
Однако известный способ является сложным в исполнении и экономически невыгодным для получения иммуностимулятора в виде пищевой добавки. However, the known method is complicated in execution and economically disadvantageous for obtaining an immunostimulant in the form of a dietary supplement.
Наиболее близким способом к заявляемому изобретению по совокупности признаков является способ получения иммуностимулятора путем выделения клеток из костного мозга животных с последующим инкубированием их в питательной среде, концентрированием и элюцией надосадочной жидкости (см. а. с. N 1005790, МКИ A 61 K 39/00, 1983, БИ N 11). The closest way to the claimed invention in terms of features is a method of obtaining an immunostimulant by isolating cells from the bone marrow of animals, followed by incubation of them in a nutrient medium, concentration and elution of the supernatant (see A. S. N 1005790, MKI A 61 K 39/00 1983, BI N 11).
Однако известный способ является трудоемким, т.к. требует строгих стерильных условий, дорогостоящим из-за применения питательной среды 199, в состав которой входят следующие компоненты (г/л):NaCl-8, KCl-0.4, MgCl2•6H2O-0.1, MgSO4•7H2O-0.1, Na2HPO4•7H2O-0.06, KH2PO4•7H2O-0.06, CaCl2-0.14, NaHCO3-0.6, фенолрот-0.02, глюкоза-0.6, применение которой не позволяет использовать ее на пищевые цели. Способ предусматривает применение только рядовой кости свиней.However, the known method is time consuming, because requires strict sterile conditions, expensive due to the use of a nutrient medium 199, which includes the following components (g / l): NaCl-8, KCl-0.4, MgCl 2 • 6H 2 O-0.1, MgSO 4 • 7H 2 O- 0.1, Na 2 HPO 4 • 7H 2 O-0.06, KH 2 PO 4 • 7H 2 O-0.06, CaCl 2 -0.14, NaHCO 3 -0.6, phenolroth-0.02, glucose-0.6, the use of which does not allow its use in food goals. The method involves the use of only ordinary pig bones.
Таким образом, задача, решаемая в предлагаемом изобретении, заключается в получении иммуностимулятора в виде пищевой добавки. Технический результат, получаемый при осуществлении способа, - это упрощение технологического процесса и расширение сырьевой базы. Thus, the problem to be solved in the present invention is to obtain an immunostimulant in the form of a dietary supplement. The technical result obtained by the method is to simplify the process and expand the raw material base.
Для достижения обеспечиваемого предлагаемым изобретением технического результата в способе получения иммуностимулятора путем выделения клеток костного мозга животных с последующей инкубацией их в питательной среде, центрифугирования надосадочной жидкости, согласно изобретению клетки выделяют из костного мозга мелкого рогатого скота, а в качестве питательной среды применяют онкотический раствор с концентрацией 0,85 - 0,90%, при этом клетки берут в заданной концентрации. In order to achieve the technical result provided by the invention, in a method for producing an immunostimulant by isolating animal bone marrow cells and then incubating them in a nutrient medium, centrifuging the supernatant, according to the invention, the cells are isolated from the bone marrow of small cattle, and an oncotic solution with a concentration of 0.85 - 0.90%, while the cells are taken in a given concentration.
В результате проведенных экспериментов, авторы выявили возможность применения онкотического раствора с концентрацией 0,85 - 0,90% в качестве питательной среды для клеток костного мозга животных. При этом авторы обнаружили, что можно использовать не только клетки костного мозга свиней, но и мелкого рогатого скота. Концентрация клеток была подобрана таким образом, чтобы получить максимальный выход биологически активных компонентов и сохранить жизнеспособность клеток. As a result of the experiments, the authors revealed the possibility of using an oncotic solution with a concentration of 0.85-0.90% as a nutrient medium for animal bone marrow cells. At the same time, the authors found that it is possible to use not only pig bone marrow cells, but also small cattle. The cell concentration was selected in such a way as to obtain the maximum yield of biologically active components and maintain cell viability.
Анализ патентной и научно-технический литературы показал, что из уровня техники авторами не выявлены технические решения, включающие совокупность признаков, сходных или эквивалентных заявляемым. An analysis of the patent and scientific and technical literature showed that the authors did not identify technical solutions from the prior art that include a combination of features similar or equivalent to those claimed.
Это позволяет сделать вывод о соответствии предложения критериям "новизна" и "изобретательский уровень". This allows us to conclude that the proposal meets the criteria of "novelty" and "inventive step".
Предлагаемый способ получения иммуностимулятора осуществляется следующим образом. The proposed method of obtaining an immunostimulant is as follows.
При разделывании туш на мясокомбинате извлекаются ребра животных, это могут быть ребра свиней или мелкого рогатого скота. Вымывание клеток из реберной кости производят шприцом с онкотическим раствором с концентрацией 0,85 - 0,90%. Онкотический раствор является естественной средой для жизнедеятельности клеток костного мозга, т.к. поддерживает осмотическое давление в клетке, позволяет проводить как выделение, так и инкубацию, не нарушая целостность клетки. Затем производят трехкратное промывание клеток этим же раствором: взвесь клеток центрифугируют, надосадочную жидкость сливают, а осадок разводят онкотическим раствором. В последнем устанавливают концентрацию путем подсчета клеток, приходящихся на 1 мл онкотического раствора, в камере Горяева. Чтобы достичь заданной концентрации клеток после подсчета производят или концентрацию, или разведение взвеси клеток онкотическим раствором. Какова концентрация клеток в заявляемом способе получения иммуностимулятора авторы конкретно не указывают, так как это является "ноу-хау" в предлагаемом изобретении. И авторам не хотелось бы, чтобы этот момент был раскрыт. В этой концентрации клетки помещают в культуральные флаконы по 100 - 150 мл взвеси на флакон, объем которого один литр. Инкубацию проводят при температуре 37oC в течение 14 - 18 ч. По окончании инкубации взвесь клеток центрифугируют, в надосадочной жидкости определяют количество белка по методу Лоури, а после этого либо используют в эксперименте, либо хранят при температуре -12oC.When carcasses are cut, the ribs of animals are removed at the meat processing plant, these can be ribs of pigs or small cattle. The cells are washed out from the costal bone by a syringe with an oncotic solution with a concentration of 0.85-0.90%. Oncotic solution is a natural environment for the life of bone marrow cells, because It supports the osmotic pressure in the cell, allows both isolation and incubation, without violating the integrity of the cell. Then the cells are washed three times with the same solution: the cell suspension is centrifuged, the supernatant is drained, and the sediment is diluted with an oncotic solution. In the latter, the concentration is established by counting the cells per 1 ml of the oncotic solution in the Goryaev chamber. To achieve a given concentration of cells after counting, either concentration or dilution of the suspension of cells with an oncotic solution is performed. What is the concentration of cells in the claimed method of obtaining an immunostimulant, the authors do not specifically indicate, since this is the "know-how" in the present invention. And the authors would not want this moment to be revealed. At this concentration, the cells are placed in culture bottles of 100 - 150 ml of suspension in a vial, the volume of which is one liter. Incubation is carried out at a temperature of 37 o C for 14 to 18 hours. At the end of the incubation, the cell suspension is centrifuged, the amount of protein is determined in the supernatant by the Lowry method, and then either used in the experiment or stored at -12 o C.
Оценку иммунологической активности полученного иммуностимулятора проводили в системе in vivo на лабораторных животных (мышах). Evaluation of the immunological activity of the obtained immunostimulant was carried out in an in vivo system in laboratory animals (mice).
Заявляемый способ подтверждается следующими примерами конкретного выполнения. The inventive method is confirmed by the following examples of specific performance.
Пример 1. При разделывании туш на мясокомбинате извлекают ребра свиней. Клетки вымывают из реберной кости свиней физиораствором, промывают и инкубируют в заданной концентрации в течение 16 ч при температуре 37oC в культуральных флаконах по 100 - 150 мл суспензии на флакон, объем которого 1 л. Надосадочную жидкость отделяют от клеток центрифугированием при 2000 мин. В надосадочной жидкости определяют количество белка по Лоури. Содержание его 2 мг/мл.Example 1. When cutting carcasses in a meat factory, ribs of pigs are removed. Cells are washed from the costal bone of pigs with saline, washed and incubated at a predetermined concentration for 16 hours at a temperature of 37 o C in culture bottles of 100 - 150 ml of suspension per bottle, the volume of which is 1 l. The supernatant was separated from the cells by centrifugation at 2000 min. In the supernatant, the amount of protein is determined by Lowry. Its content is 2 mg / ml.
Оценку иммунологической активности проводят в системе in vivo при локальном введении фракции мышам на 4 сут вторичного иммунного ответа к эритроцитам барана в дозе 100 мкг, содержащейся в 0.1 мл физиораствора, в подушечку задней конечности. В другой группе, служившей контролем, вводят физиораствор. На следующий день у этих мышей извлекают подколенные лимфатические узлы и определяют в них число антителообразующих клеток, сравнивая их количество в опыте и контроле. Evaluation of immunological activity is carried out in an in vivo system with local injection of the fraction into mice for 4 days of a secondary immune response to ram erythrocytes at a dose of 100 μg contained in 0.1 ml of physiological saline in the hind limb pad. In another group that served as a control, saline is administered. The next day, popliteal lymph nodes were removed from these mice and the number of antibody-forming cells was determined in them, comparing their number in the experiment and control.
Коэффициент стимуляции антителообразования К определяют в обеих моделях рассчетным путем как отношение количества АОК в опыте к соответствующему количеству АОК в контроле. The antibody stimulation coefficient K is determined in both models by calculation as the ratio of the amount of AOK in the experiment to the corresponding amount of AOK in the control.
Пример 2. При разделывании туш на мясокомбинате извлекают ребра мелкого рогатого скота, физиораствором вымывают клетки костного мозга из кости, промывают и инкубируют в заданной концентрации в течение 16 ч при температуре 37oC в культуральных флаконах по 100 - 150 мл суспензии на флакон, объем которого 1 л. Надосадочную жидкость отделяют от клеток центрифугированием при 2000 мин. В надосадочной жидкости определяют количество белка по Лоури. Содержание его 2,1 мг/мл. Параллельно проводят выделение клеток средой 199, промыв и инкубацию ведут в той же среде. Условия получения аналогичны примеру 1. Содержание белка - 2,5 мг/мл.Example 2. When cutting carcasses at a meat processing plant, ribs of small cattle are removed, bone marrow cells are washed out of the bone with a saline solution, washed and incubated at a predetermined concentration for 16 hours at a temperature of 37 o C in culture bottles of 100-150 ml of suspension per bottle, volume which 1 liter The supernatant was separated from the cells by centrifugation at 2000 min. In the supernatant, the amount of protein is determined by Lowry. Its content is 2.1 mg / ml. At the same time, cells are isolated by medium 199; washing and incubation are carried out in the same medium. The preparation conditions are similar to Example 1. The protein content is 2.5 mg / ml.
Оценку иммунологической активности проводят в системе in vivo при локальном введении фракции мышам на 4 сут вторичного иммунного ответа к эритроцитам барана. В случае получения композиции на среде 199 в группе, служившей контролем, вводят среду 199. Evaluation of immunological activity is carried out in an in vivo system with local administration of a fraction to mice for 4 days of a secondary immune response to sheep erythrocytes. In the case of obtaining the composition on medium 199 in the group that served as control, enter the medium 199.
Коэффициент стимуляции антителообразования К определяют в обеих моделях расчетным путем как отношение количества АОК в опыте к соответствующему количеству АОК в контроле. The antibody stimulation coefficient K is determined in both models by calculation as the ratio of the amount of AOK in the experiment to the corresponding amount of AOK in the control.
Пример 3. При разделывании туш на мясокомбинате извлекают ребра свиней. Клетки вымывают из реберной кости свиней физиораствором, промывают и инкубируют в заданной концентрации в течение 16 ч при температуре 37oC в культуральных флаконах. Надосадочную жидкость отделяют от клеток центрифугированием при 2000 мин. В надосадочной жидкости определяют количество белка по Лоури. Содержание его 2,2 мг/мл.Example 3. When cutting carcasses in a meat factory, ribs of pigs are removed. Cells are washed from the costal bone of pigs with saline solution, washed and incubated at a predetermined concentration for 16 hours at a temperature of 37 o C in culture bottles. The supernatant was separated from the cells by centrifugation at 2000 min. In the supernatant, the amount of protein is determined by Lowry. Its content is 2.2 mg / ml.
Для доказательства того, что эту композицию можно использовать в продуктах, подвергаемых тепловой обработке, и сохранить при этом ее биологическую активность, надосадочную жидкость нагревают при 100oC в течение 10 мин.To prove that this composition can be used in products subjected to heat treatment, while maintaining its biological activity, the supernatant is heated at 100 o C for 10 minutes
Оценку иммунологической активности композиции, подвергнутой нагреву, проводят в системе in vivo аналогично первым двум примерам. Коэффициент стимуляции антителообразования К определяют в обеих моделях рассчетным путем как отношение количества АОК в опыте к соответствующему количеству АОК в контроле. Evaluation of the immunological activity of the composition subjected to heating is carried out in an in vivo system similarly to the first two examples. The antibody stimulation coefficient K is determined in both models by calculation as the ratio of the amount of AOK in the experiment to the corresponding amount of AOK in the control.
Пример 4. При разделывании туш на мясокомбинате извлекают ребра мелкого рогатого скота. Клетки вымывают, промывают и инкубируют средой 199. Инкубацию в заданной концентрации проводят в течение 16 ч при температуре 37oC в культуральных флаконах. Надосадочную жидкость отделяют от клеток центрифугированием при 2000 мин. В надосадочной жидкости определяют количество белка по Лоури. Содержание его 2,8 мг/мл.Example 4. When cutting carcasses in a meat factory, ribs of small cattle are removed. Cells are washed, washed and incubated with medium 199. Incubation at a predetermined concentration is carried out for 16 hours at a temperature of 37 o C in culture bottles. The supernatant was separated from the cells by centrifugation at 2000 min. In the supernatant, the amount of protein is determined by Lowry. Its content is 2.8 mg / ml.
При выборе способов консервирования пищевой композиции рассматривали возможность охлаждения при 0 - 4oC, замораживания при -18oC и хранения при -12oC в течение 1 мес. Охлаждение оказалось не эффективным в результате быстрого обсеменения, а фракцию, подвергнутую замораживанию и хранению при низких температурах, оценивали по стимуляции антителообразующих клеток системе in vivo при локальном введении фракции мышам на 4 сут вторичного иммунного ответа к эритроцитам барана.When choosing methods for preserving the food composition, the possibility of cooling at 0-4 ° C, freezing at -18 ° C and storage at -12 ° C for 1 month was considered. Cooling was not effective as a result of rapid seeding, and the fraction subjected to freezing and storage at low temperatures was evaluated by stimulation of antibody-forming cells in vivo with local administration of the fraction to mice for 4 days of a secondary immune response to sheep erythrocytes.
По технической сущности заявляемое изобретение сравнивали с прототипом (см. а.с. N 1005790, кл. A 61 K 39/00, 1983, БИ N 11). The technical nature of the claimed invention was compared with the prototype (see.with. N 1005790, class A 61 K 39/00, 1983, BI N 11).
Коэффициент стимуляции антителообразования К определяют в обеих моделях рассчетным путем как отношение количества АОК в опыте к соответствующему количеству АОК в контроле. The antibody stimulation coefficient K is determined in both models by calculation as the ratio of the amount of AOK in the experiment to the corresponding amount of AOK in the control.
Данные примеров приведены в таблице. These examples are shown in the table.
Таким образом, предлагаемый способ позволяет получать клетки костного мозга не только из костей свиней, но и костей мелкого рогатого скота, что позволяет значительно расширить сырьевую базу для получения пищевой добавки. Иммуностимулятор, полученный данным способом, сохраняет свои биологические свойства как при высоких, так и при низких температурах. По сравнению с уже известным способом получения стимулятора антителопродуцентов предлагаемый способ получения сокращается на 2 - 4 ч; упрощается за счет отказа от проведения гель-фильтрации, лиофилизации; замена питательной среды 199 на онкотический раствор значительно удешевляет способ; композиция, полученная этим способом, может храниться при низких температурах. Thus, the proposed method allows to obtain bone marrow cells not only from the bones of pigs, but also bones of small cattle, which can significantly expand the raw material base for obtaining a nutritional supplement. The immunostimulant obtained by this method retains its biological properties at both high and low temperatures. Compared with the already known method for producing a stimulator of antibody producers, the proposed method for producing is reduced by 2 to 4 hours; simplified due to the rejection of gel filtration, lyophilization; replacing the nutrient medium 199 with an oncotic solution significantly reduces the cost of the method; the composition obtained by this method can be stored at low temperatures.
Использование полученного иммуностимулятора в виде пищевой добавки позволит получать продукты для специализированного питания с иммуностимулирующими свойствами. The use of the obtained immunostimulant in the form of a dietary supplement will make it possible to obtain products for specialized nutrition with immunostimulating properties.
В Проблемной лаборатории "Иммунохимии пестицидов и пищевых добавок" разрабатываются рецептуры мясных продуктов с введением заявляемого иммуностимулятора. In the Problem laboratory "Immunochemistry of pesticides and food additives" are developing formulations of meat products with the introduction of the inventive immunostimulant.
Claims (1)
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| RU96123779A RU2120799C1 (en) | 1996-12-16 | 1996-12-16 | Method of immunostimulating agent preparing |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| RU96123779A RU2120799C1 (en) | 1996-12-16 | 1996-12-16 | Method of immunostimulating agent preparing |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| RU2120799C1 true RU2120799C1 (en) | 1998-10-27 |
| RU96123779A RU96123779A (en) | 1999-02-10 |
Family
ID=20188236
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| RU96123779A RU2120799C1 (en) | 1996-12-16 | 1996-12-16 | Method of immunostimulating agent preparing |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| RU (1) | RU2120799C1 (en) |
Families Citing this family (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2250773C1 (en) * | 2004-07-16 | 2005-04-27 | Центральный научно-исследовательский рентгено-радиологический институт МЗ РФ (ЦНИРРИ) | Method for treating the cases of allergic diseases |
Citations (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| SU1005790A1 (en) * | 1982-01-11 | 1983-03-23 | Предприятие П/Я В-2343 | Method of producing stimulant of antibody producents |
-
1996
- 1996-12-16 RU RU96123779A patent/RU2120799C1/en not_active IP Right Cessation
Patent Citations (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| SU1005790A1 (en) * | 1982-01-11 | 1983-03-23 | Предприятие П/Я В-2343 | Method of producing stimulant of antibody producents |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| Cohen et al. | Purification and properties of a nerve growth-promoting factor isolated from mouse sarcoma 180 | |
| US20240150724A1 (en) | Production of heme for cell-based meat products | |
| US20020044942A1 (en) | Transfer factor composition and process for producing same | |
| JPS61502334A (en) | Cell surface proteins and their production and use | |
| Gutierrez et al. | Interrelationship between certain bacteria and the rumen ciliate Dasytricha ruminantium | |
| RU2120799C1 (en) | Method of immunostimulating agent preparing | |
| US4921710A (en) | Method of converting cholesterol in food to coprostanol | |
| US4009257A (en) | Preparation of immunosuppressive materials | |
| US3143470A (en) | Rabies virus propagation in embryonic cells maintained in a medium containing pancreatic digest of casein | |
| US4001080A (en) | Production of immunological materials | |
| Fahmi et al. | Immunosuppressive activity of bovine seminal plasma on bovine lymphocytes in vitro | |
| US4490357A (en) | Simplified in-vitro interferon production | |
| US20060182748A1 (en) | Method of creating antivenom using Emus | |
| Kochish et al. | Activization of adaptogenesis and realization of meat qualities of Aberdeen-Angus bulls by biological products | |
| Slozhenkina et al. | Metrological aspects of using probiotics | |
| RU2043770C1 (en) | Method of preparing vaccine against necrobacteriosis in animals | |
| Smith et al. | The Chemical Basis of the Virulence of Bacillus anthracis. VIII: Fractionation of the Intracellular Material of Bacillus anthracis | |
| RU2020153C1 (en) | Method of preparing of enzyme hydrolysate and nutrient medium for cultivation of eucaryotic cells | |
| Kraybill et al. | Effect of ionizing radiation on the allergenicity of milk protein | |
| CN114097711B (en) | Method for inducing yellow meal worm to produce antibacterial peptide, preparation method and application of yellow meal worm antibacterial peptide | |
| Greenblatt et al. | Mouse serum as an environment for the growth of Trypanosoma lewisi | |
| RU2270584C1 (en) | Method for production of bioactive additive | |
| Williams et al. | Developmental and biochemical characteristics of sterile cultures of the blowfly Lucilia cuprina | |
| US4758510A (en) | Simplified in-vitro interferon production | |
| Vellenga et al. | Effects of irradiated sow colostrum on some biochemical and haematological measurements in newborn piglets |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20071217 |