RU2116075C1 - Method of medicinal purified pectin preparing - Google Patents
Method of medicinal purified pectin preparing Download PDFInfo
- Publication number
- RU2116075C1 RU2116075C1 RU96103099A RU96103099A RU2116075C1 RU 2116075 C1 RU2116075 C1 RU 2116075C1 RU 96103099 A RU96103099 A RU 96103099A RU 96103099 A RU96103099 A RU 96103099A RU 2116075 C1 RU2116075 C1 RU 2116075C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- pectin
- pectins
- solution
- potassium chloride
- ammonium citrate
- Prior art date
Links
- 229920001277 pectin Polymers 0.000 title claims abstract description 103
- 239000001814 pectin Substances 0.000 title claims abstract description 103
- 235000010987 pectin Nutrition 0.000 title claims abstract description 103
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims description 26
- LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N Ethanol Chemical compound CCO LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims abstract description 32
- WCUXLLCKKVVCTQ-UHFFFAOYSA-M Potassium chloride Chemical compound [Cl-].[K+] WCUXLLCKKVVCTQ-UHFFFAOYSA-M 0.000 claims abstract description 28
- YWYZEGXAUVWDED-UHFFFAOYSA-N triammonium citrate Chemical compound [NH4+].[NH4+].[NH4+].[O-]C(=O)CC(O)(CC([O-])=O)C([O-])=O YWYZEGXAUVWDED-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims abstract description 15
- 239000001103 potassium chloride Substances 0.000 claims abstract description 14
- 235000011164 potassium chloride Nutrition 0.000 claims abstract description 14
- VEXZGXHMUGYJMC-UHFFFAOYSA-N Hydrochloric acid Chemical compound Cl VEXZGXHMUGYJMC-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims abstract description 8
- 239000012528 membrane Substances 0.000 claims abstract description 8
- 238000001914 filtration Methods 0.000 claims abstract description 7
- 239000000203 mixture Substances 0.000 claims abstract description 7
- 229920000298 Cellophane Polymers 0.000 claims abstract description 5
- 239000003792 electrolyte Substances 0.000 claims abstract description 5
- QGZKDVFQNNGYKY-UHFFFAOYSA-N Ammonia Chemical compound N QGZKDVFQNNGYKY-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims abstract description 4
- 239000010178 pectin extract Substances 0.000 claims abstract 2
- 238000000502 dialysis Methods 0.000 claims description 18
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 claims description 9
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Substances O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 7
- 239000012141 concentrate Substances 0.000 claims description 5
- 239000002994 raw material Substances 0.000 claims description 5
- 238000000605 extraction Methods 0.000 claims description 4
- VHUUQVKOLVNVRT-UHFFFAOYSA-N Ammonium hydroxide Chemical compound [NH4+].[OH-] VHUUQVKOLVNVRT-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 3
- 239000011541 reaction mixture Substances 0.000 claims description 2
- 239000002253 acid Substances 0.000 claims 1
- 238000001556 precipitation Methods 0.000 claims 1
- 238000005406 washing Methods 0.000 claims 1
- 235000016068 Berberis vulgaris Nutrition 0.000 abstract description 14
- 241000335053 Beta vulgaris Species 0.000 abstract description 14
- 241000220225 Malus Species 0.000 abstract description 6
- 230000000694 effects Effects 0.000 abstract description 6
- 230000027455 binding Effects 0.000 abstract description 4
- 239000000126 substance Substances 0.000 abstract description 4
- 235000020971 citrus fruits Nutrition 0.000 abstract description 2
- 239000007795 chemical reaction product Substances 0.000 abstract 2
- 241000207199 Citrus Species 0.000 abstract 1
- 235000011430 Malus pumila Nutrition 0.000 abstract 1
- 235000015103 Malus silvestris Nutrition 0.000 abstract 1
- 229910021529 ammonia Inorganic materials 0.000 abstract 1
- 239000003795 chemical substances by application Substances 0.000 abstract 1
- 235000019441 ethanol Nutrition 0.000 abstract 1
- 238000002955 isolation Methods 0.000 abstract 1
- 239000000243 solution Substances 0.000 description 52
- 238000010521 absorption reaction Methods 0.000 description 8
- 230000003287 optical effect Effects 0.000 description 8
- 239000002244 precipitate Substances 0.000 description 8
- 125000003178 carboxy group Chemical group [H]OC(*)=O 0.000 description 7
- 229930003935 flavonoid Natural products 0.000 description 7
- 150000002215 flavonoids Chemical class 0.000 description 7
- 235000017173 flavonoids Nutrition 0.000 description 7
- PYMYPHUHKUWMLA-UHFFFAOYSA-N 2,3,4,5-tetrahydroxypentanal Chemical compound OCC(O)C(O)C(O)C=O PYMYPHUHKUWMLA-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 6
- 239000009194 citrus pectin Substances 0.000 description 6
- 229940040387 citrus pectin Drugs 0.000 description 6
- 239000011521 glass Substances 0.000 description 6
- 238000000746 purification Methods 0.000 description 6
- 229910052751 metal Inorganic materials 0.000 description 5
- 239000002184 metal Substances 0.000 description 5
- 238000002211 ultraviolet spectrum Methods 0.000 description 5
- 239000000284 extract Substances 0.000 description 4
- 239000012535 impurity Substances 0.000 description 4
- OKKJLVBELUTLKV-UHFFFAOYSA-N Methanol Chemical compound OC OKKJLVBELUTLKV-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- 230000000536 complexating effect Effects 0.000 description 3
- 235000013305 food Nutrition 0.000 description 3
- 150000002739 metals Chemical class 0.000 description 3
- OYPRJOBELJOOCE-UHFFFAOYSA-N Calcium Chemical compound [Ca] OYPRJOBELJOOCE-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- XEEYBQQBJWHFJM-UHFFFAOYSA-N Iron Chemical compound [Fe] XEEYBQQBJWHFJM-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- GRYLNZFGIOXLOG-UHFFFAOYSA-N Nitric acid Chemical compound O[N+]([O-])=O GRYLNZFGIOXLOG-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 208000028571 Occupational disease Diseases 0.000 description 2
- 229920002230 Pectic acid Polymers 0.000 description 2
- 239000007864 aqueous solution Substances 0.000 description 2
- 229910052791 calcium Inorganic materials 0.000 description 2
- 239000011575 calcium Substances 0.000 description 2
- 150000001768 cations Chemical class 0.000 description 2
- 230000000052 comparative effect Effects 0.000 description 2
- 230000007423 decrease Effects 0.000 description 2
- 239000003814 drug Substances 0.000 description 2
- 229910052739 hydrogen Inorganic materials 0.000 description 2
- 239000001257 hydrogen Substances 0.000 description 2
- 235000015110 jellies Nutrition 0.000 description 2
- 239000008274 jelly Substances 0.000 description 2
- 230000007935 neutral effect Effects 0.000 description 2
- 229910017604 nitric acid Inorganic materials 0.000 description 2
- 238000003918 potentiometric titration Methods 0.000 description 2
- 239000000047 product Substances 0.000 description 2
- 230000002285 radioactive effect Effects 0.000 description 2
- 150000003839 salts Chemical class 0.000 description 2
- 239000002904 solvent Substances 0.000 description 2
- 229910052712 strontium Inorganic materials 0.000 description 2
- CIOAGBVUUVVLOB-UHFFFAOYSA-N strontium atom Chemical compound [Sr] CIOAGBVUUVVLOB-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 235000000346 sugar Nutrition 0.000 description 2
- 150000008163 sugars Chemical class 0.000 description 2
- 231100000331 toxic Toxicity 0.000 description 2
- 230000002588 toxic effect Effects 0.000 description 2
- 241000219310 Beta vulgaris subsp. vulgaris Species 0.000 description 1
- 241000196324 Embryophyta Species 0.000 description 1
- 229920002488 Hemicellulose Polymers 0.000 description 1
- FYYHWMGAXLPEAU-UHFFFAOYSA-N Magnesium Chemical compound [Mg] FYYHWMGAXLPEAU-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 235000021536 Sugar beet Nutrition 0.000 description 1
- VBIXEXWLHSRNKB-UHFFFAOYSA-N ammonium oxalate Chemical compound [NH4+].[NH4+].[O-]C(=O)C([O-])=O VBIXEXWLHSRNKB-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 239000000729 antidote Substances 0.000 description 1
- 229940075522 antidotes Drugs 0.000 description 1
- 235000021016 apples Nutrition 0.000 description 1
- 235000011001 calcium citrates Nutrition 0.000 description 1
- AXCZMVOFGPJBDE-UHFFFAOYSA-L calcium dihydroxide Chemical compound [OH-].[OH-].[Ca+2] AXCZMVOFGPJBDE-UHFFFAOYSA-L 0.000 description 1
- 239000000920 calcium hydroxide Substances 0.000 description 1
- 229910001861 calcium hydroxide Inorganic materials 0.000 description 1
- 150000001860 citric acid derivatives Chemical class 0.000 description 1
- 238000012790 confirmation Methods 0.000 description 1
- 238000011109 contamination Methods 0.000 description 1
- 230000006378 damage Effects 0.000 description 1
- 238000001784 detoxification Methods 0.000 description 1
- 239000000385 dialysis solution Substances 0.000 description 1
- 238000010790 dilution Methods 0.000 description 1
- 239000012895 dilution Substances 0.000 description 1
- 238000004090 dissolution Methods 0.000 description 1
- 229940079593 drug Drugs 0.000 description 1
- 238000001035 drying Methods 0.000 description 1
- 235000013399 edible fruits Nutrition 0.000 description 1
- 238000001704 evaporation Methods 0.000 description 1
- 230000008020 evaporation Effects 0.000 description 1
- 230000029142 excretion Effects 0.000 description 1
- 238000002474 experimental method Methods 0.000 description 1
- 230000002349 favourable effect Effects 0.000 description 1
- 239000000706 filtrate Substances 0.000 description 1
- 210000001035 gastrointestinal tract Anatomy 0.000 description 1
- 238000001879 gelation Methods 0.000 description 1
- 150000004676 glycans Chemical class 0.000 description 1
- 238000000227 grinding Methods 0.000 description 1
- 230000035987 intoxication Effects 0.000 description 1
- 231100000566 intoxication Toxicity 0.000 description 1
- 150000002500 ions Chemical class 0.000 description 1
- 229910052742 iron Inorganic materials 0.000 description 1
- 229920002521 macromolecule Polymers 0.000 description 1
- 229910052749 magnesium Inorganic materials 0.000 description 1
- 239000011777 magnesium Substances 0.000 description 1
- 235000002538 magnesium citrate Nutrition 0.000 description 1
- 230000009965 odorless effect Effects 0.000 description 1
- 230000035699 permeability Effects 0.000 description 1
- 239000010318 polygalacturonic acid Substances 0.000 description 1
- 229920001282 polysaccharide Polymers 0.000 description 1
- 239000005017 polysaccharide Substances 0.000 description 1
- 239000000843 powder Substances 0.000 description 1
- 230000001376 precipitating effect Effects 0.000 description 1
- 230000000069 prophylactic effect Effects 0.000 description 1
- 238000000926 separation method Methods 0.000 description 1
- 238000001179 sorption measurement Methods 0.000 description 1
- 235000019614 sour taste Nutrition 0.000 description 1
- 230000003595 spectral effect Effects 0.000 description 1
- 238000001228 spectrum Methods 0.000 description 1
- 238000003756 stirring Methods 0.000 description 1
- 239000007785 strong electrolyte Substances 0.000 description 1
- 238000000954 titration curve Methods 0.000 description 1
- PLSARIKBYIPYPF-UHFFFAOYSA-H trimagnesium dicitrate Chemical class [Mg+2].[Mg+2].[Mg+2].[O-]C(=O)CC(O)(CC([O-])=O)C([O-])=O.[O-]C(=O)CC(O)(CC([O-])=O)C([O-])=O PLSARIKBYIPYPF-UHFFFAOYSA-H 0.000 description 1
Images
Landscapes
- Polysaccharides And Polysaccharide Derivatives (AREA)
Abstract
Description
Изобретение относится к фармацевтической и пищевой промышленности и касается способа получения лекарственных средств с высокой детоксицирующей способностью. The invention relates to the pharmaceutical and food industries and relates to a method for producing drugs with high detoxifying ability.
В литературе [1] описан способ получения пектинов из пищевых выжимок путем последовательной экстракции сырья сначала водным раствором азотной кислоты при 70 - 80oC в течение 3,0 - 3,5 ч, затем водой при 45 - 50oC в течение 2 ч фильтрования, объединения и концентрирования экстрактов и осаждением пектинов 96%-ным этанолом в соотношении 1 : 3 с последующим отделением, очисткой и сушкой пектина. Выход целевого продукта - 11% к весу сухого сырья. Данный способ получения пектинов близок к предлагаемому.The literature [1] describes a method for producing pectins from food pomace by sequential extraction of raw materials first with an aqueous solution of nitric acid at 70 - 80 o C for 3.0 - 3.5 hours, then with water at 45 - 50 o C for 2 hours filtering, combining and concentrating the extracts and precipitating pectins with 96% ethanol in a ratio of 1: 3, followed by separation, purification and drying of pectin. The yield of the target product is 11% by weight of dry raw materials. This method of producing pectins is close to the proposed.
Недостатками приведенного способа являются недостаточно высокая комплексообразующая способность (КС) пектинов (190 мг Pb2+/г), загрязненность их различными веществами (метанолом, флавоноидами, нейтральными сахарами и др. ), что не позволяет использовать эти пектины в медицинских целях для детоксикации, а также использование токсичного экстрагента (азотной кислоты) для очистки пектинов.The disadvantages of this method are the insufficiently high complexing ability (CS) of pectins (190 mg Pb 2+ / g), their contamination with various substances (methanol, flavonoids, neutral sugars, etc.), which does not allow the use of these pectins for medical purposes for detoxification, and the use of toxic extractant (nitric acid) for the purification of pectins.
Известен [2] способ получения очищенного пектина из фруктовых выжимок путем экстракции 1%-ным водным раствором оксалата аммония с одновременным измельчением сырья в течение 10 мин при гидромодуле 1 : 20 с последующей фильтрацией и вакуумным концентрированием экстракта. Пектин осаждают из экстракта этанолом и сушат. Затем их обрабатывают водным раствором аммиака при pH 10,5 и гидромодуле 1 : 10 2 ч. К реакционной смеси добавляют хлороводородную кислоту до pH 2, выдерживают смесь при 18oC 1 ч, выделяют пектин. КС пектина составляет 922,77 мг Pb2+/г. Данный способ близок к предлагаемому и выбран за прототип.Known [2] is a method for producing purified pectin from fruit squeezes by extraction with a 1% aqueous solution of ammonium oxalate with simultaneous grinding of raw materials for 10 min at a water module of 1: 20, followed by filtration and vacuum concentration of the extract. Pectin is precipitated from the extract with ethanol and dried. Then they are treated with aqueous ammonia at a pH of 10.5 and a hydromodule of 1: 10 2 hours. Hydrochloric acid is added to the reaction mixture to a pH of 2, the mixture is kept at 18 ° C for 1 hour, pectin is isolated. The pectin CS is 922.77 mg Pb 2+ / g. This method is close to the proposed and selected for the prototype.
Недостатками способа являются: невозможность очистки пектинов от некоторых примесей органических веществ (например, флавоноидов и др.), что снижает комплексообразующие свойства пектинов. The disadvantages of the method are: the inability to purify pectins from certain impurities of organic substances (for example, flavonoids, etc.), which reduces the complexing properties of pectins.
Для оценки чистоты пектинов (т.е. содержания свободных, неэтерифицированных карбоксильных групп пектинов) или для оценки их связывающей способности используется показатель КС, который характеризует число мг катионов свинца, связанное 1 г пектина [1]. Пектины, выпускаемые отечественной промышленностью, предназначены для пищевых целей (желеобразования); они содержат много балластных веществ (нейтральных сахаров, флавоноидов, неорганических солей, гемицеллюлоз и др.) и, как правило, высокоорганических солей. В ряде источников [3, 4] имеются сведения о том, что при приеме внутрь пектины обладают способностью образовывать комплексы с ионами токсичных, в т.ч. и радиоактивных металлов, и выводить их из организма человека. Поэтому совершенствование технологии получения пектинов с целью повышения их степени чистоты для усиления их сорбционных свойств позволит получить пектины для медицинского применения. To assess the purity of pectins (ie, the content of free, unesterified carboxyl groups of pectins) or to evaluate their binding ability, the KS indicator is used, which characterizes the number of mg lead cations bound to 1 g of pectin [1]. Pectins produced by domestic industry are intended for food purposes (gelation); they contain a lot of ballast substances (neutral sugars, flavonoids, inorganic salts, hemicelluloses, etc.) and, as a rule, highly organic salts. In a number of sources [3, 4] there is evidence that, when ingested, pectins have the ability to form complexes with toxic ions, including and radioactive metals, and remove them from the human body. Therefore, improving the technology for producing pectins in order to increase their purity to enhance their sorption properties will allow to obtain pectins for medical use.
Заявляемый способ получения пектина позволяет получить пектины с высокой степенью чистоты, что подтверждается изменением характера УФ-спектров пектинов и высокими результатами КС. The inventive method for producing pectin allows to obtain pectins with a high degree of purity, as evidenced by a change in the nature of the UV spectra of pectins and high CS results.
Задача изобретения - повышение степени чистоты и связывающей способности пектинов для возможности их применения в медицине. The objective of the invention is to increase the purity and binding ability of pectins for the possibility of their use in medicine.
Поставленная задача достигается тем, что способ получения медицинского (очищенного) пектина из пектиновых образцов отечественного производства, выделенных из выжимок сахарной свеклы, цитрусовых плодов и яблок, осуществляют путем растворения пектинов в 0,5%-ном растворе цитрата аммония при соотношении пектин : 0,5%-ный раствор цитрата аммония 1 : 25; далее приготовленный раствор отделяют процеживанием от осадка, состоящего из нерастворимого пектина и цитратов кальция и магния. Затем фильтрат при определенной ионной силе, создаваемой с помощью 0,1 М раствора хлорида калия, диализуют через целлофановую мембрану с рабочей площадью 9 см2 при толщине мембраны 0,4 нм, температуре 38oC и времени диализа 24 ч. Полученный диализат упаривают под вакуумом, обрабатывают 96 мас.% этанолом в соотношении концентрат : этанол 1 : 3 и далее поступают как в способе, принятом за прототип (фиг. 1).The problem is achieved in that the method of obtaining medical (purified) pectin from domestic pectin samples extracted from squeezed sugar beets, citrus fruits and apples is carried out by dissolving pectins in a 0.5% solution of ammonium citrate at a ratio of pectin: 0, 5% solution of ammonium citrate 1: 25; Further, the prepared solution is separated by filtering from a precipitate consisting of insoluble pectin and calcium and magnesium citrates. Then the filtrate at a certain ionic strength created using a 0.1 M potassium chloride solution is dialyzed through a cellophane membrane with a working area of 9 cm 2 at a membrane thickness of 0.4 nm, a temperature of 38 o C and a dialysis time of 24 hours. The resulting dialysate is evaporated under vacuum, treated with 96 wt.% ethanol in the ratio of concentrate: ethanol 1: 3 and then proceed as in the method adopted for the prototype (Fig. 1).
В предлагаемом способе в качестве растворителя пектинов используют 0,5%-ный раствор цитрата аммония, который хелатообразно связывает катионы металлов (кальций, магний, железо и др.), сопутствующие пектинам, и частично деминерализует пектины. Выделенные цитраты металлов отделяются от пектина фильтрацией. In the proposed method, a 0.5% solution of ammonium citrate is used as a solvent of pectins, which chelates the metal cations (calcium, magnesium, iron, etc.) associated with pectins and partially demineralizes the pectins. Isolated metal citrates are separated from pectin by filtration.
Стадия диализа позволяет очистить пектин, особенно свекловичный. Для свекловичного производственного образца характерно наличие двух максимумов поглощения в УФ-области спектров: 286 нм, 300 нм [5]. Даже после многократной очистки различными способами [5] не удавалось устранить устойчивую примесь к свекловичному пектину (по-видимому, флавоноиды), имеющую максимум поглощения при 330 нм (эта область поглощения не характерна для полисахаридов). После диализа свекловичного пектина удалось устранить максимум при 330 нм, а максимум при 286 нм становился очень отчетливым. Диализ цитрусового пектина также позволил более четко выделить его максимум при 282 нм. А диализ яблочного пектина уменьшил "плечо" в его УФ-спектре. The dialysis stage allows the purification of pectin, especially beet. A beet production sample is characterized by the presence of two absorption maxima in the UV spectral region: 286 nm, 300 nm [5]. Even after repeated purification by various methods [5], it was not possible to eliminate a stable impurity to beet pectin (apparently flavonoids), which has an absorption maximum at 330 nm (this absorption region is not typical for polysaccharides). After dialysis of beet pectin, a maximum at 330 nm was eliminated, and a maximum at 286 nm became very distinct. Dialysis of citrus pectin also made it possible to more clearly isolate its maximum at 282 nm. And dialysis of apple pectin reduced the “shoulder” in its UV spectrum.
Диализ растворов пектинов в предлагаемом способе производится при постоянной ионной силе, создаваемой с помощью хлорида калия. Присутствие сильного электролита разрывает водородные связи между цепями полигалактуроновых кислот пектина, что способствует их лучшему прохождению через целлофановую мембрану. Dialysis of pectin solutions in the proposed method is carried out at a constant ionic strength created using potassium chloride. The presence of a strong electrolyte breaks the hydrogen bonds between the polygalacturonic acid chains of pectin, which contributes to their better passage through the cellophane membrane.
Таким образом, предлагаемый способ очистки пектинов позволяет получить медицинский пектин, т.е. пектин, очищенный от флавоноидов (стадия диализа), металлов (растворение в цитрате аммония). Thus, the proposed method for the purification of pectins allows to obtain medical pectin, i.e. pectin purified from flavonoids (stage of dialysis), metals (dissolution in ammonium citrate).
Заявляемый способ обеспечивает получение свекловичного пектина (СП) с КС = 1525 мг Pb2+/г, цитрусового пектина (ЦП) с КС = 1215 мг Pb2+/г (КС ЦП, полученного по способу-прототипу, составляет 922,77 мг Pb2+/г), яблочного пектина (ЯП) с КС = 1078 мг Pb2+/г. Подтверждением высокой степени чистоты пектинов являются и их УФ-спектры: очищенные пектины имеют более выраженные максимумы поглощения при более высокой оптической плотности растворов, чем пектины, полученные по способу-прототипу.The inventive method provides the production of beet pectin (SP) with KS = 1525 mg Pb 2+ / g, citrus pectin (CP) with KS = 1215 mg Pb 2+ / g (KS of the CPU obtained by the prototype method is 922.77 mg Pb 2+ / g), apple pectin (YP) with KS = 1078 mg Pb 2+ / g. A confirmation of the high degree of purity of pectins is also their UV spectra: purified pectins have more pronounced absorption maxima at a higher optical density of solutions than pectins obtained by the prototype method.
В результате исследований подобраны следующие оптимальные условия очистки пектинов (табл. 1 - 5, фиг. 1, 2). As a result of the research, the following optimal conditions for the purification of pectins were selected (Tables 1–5, Figs. 1, 2).
Из табл. 1 видно, что цитрат аммония максимально повышает КС пектинов в сравнении с другими растворителями. From the table. 1 it can be seen that ammonium citrate maximizes the pectin CS in comparison with other solvents.
Из табл. 2 следует, что оптимальной концентрацией раствора цитрата аммония для обеспечения высокой КС пектинов является 0,5%. Дальнейшее повышение концентрации раствора не приводит к заметным изменениям КС. From the table. 2 it follows that the optimal concentration of a solution of ammonium citrate to ensure a high CS of pectins is 0.5%. A further increase in the concentration of the solution does not lead to noticeable changes in CS.
Как видно из табл. 3, полученные результаты свидетельствуют об оптимальном соотношении пектины : 0,5%-ный раствор цитрата аммония 1 : 25. Хотя при соотношении 1 : 30 наблюдаются немного большие значения КС, чем при соотношении 1 : 25, но в случае соотношения 1 : 30 происходит более сильное разбавление раствора цитратом аммония, что увеличивает в дальнейшем продолжительность упаривания экстрактов. As can be seen from the table. 3, the obtained results indicate the optimal ratio of pectin: 0.5% solution of ammonium citrate 1: 25. Although at a ratio of 1: 30 slightly higher values of KS are observed than at a ratio of 1: 25, but in the case of a ratio of 1: 30, stronger dilution of the solution with ammonium citrate, which further increases the duration of evaporation of the extracts.
Влияние диализа пектиновых растворов на характер УФ-спектров пектинов показано на фиг. 1. Как видно из фиг. 1, для СП после диализа (кривая 1а) характерен один максимум при 286 нм, очень четко выраженный по сравнению с пектином, полученным по прототипу (кривая 1б), при этом разница в оптической плотности по абсолютному значению составляет примерно 0,3; второй максимум при 330 нм, характерный для флавоноидных примесей, у диализованного СП не наблюдается. У диализованного ЦП максимум поглощения при 282 нм более четко выражен, чем у ЦП, полученного по прототипу; разница в оптической плотности по абсолютному значению составляет примерно 0,1. Для ЯП после диализа характерно уменьшение "плеча" в спектре при 273 нм, что позволит более четко идентифицировать его при стандартизации; кроме того, разница в оптической плотности составляет примерно 0,15. Все сравнения УФ-спектров пектинов проводились при одинаковой исходной концентрации растворов пектинов - 4%. The effect of dialysis of pectin solutions on the nature of the UV spectra of pectins is shown in FIG. 1. As can be seen from FIG. 1, the SP after dialysis (curve 1a) is characterized by one maximum at 286 nm, which is very distinct in comparison with the pectin obtained by the prototype (curve 1b), while the difference in optical density in absolute value is about 0.3; the second maximum at 330 nm, characteristic of flavonoid impurities, is not observed in dialyzed SP. In dialyzed CP, the absorption maximum at 282 nm is more pronounced than in the CPU obtained by the prototype; the difference in optical density in absolute value is approximately 0.1. After dialysis, YP is characterized by a decrease in the “shoulder” in the spectrum at 273 nm, which will make it possible to more clearly identify it during standardization; in addition, the difference in optical density is approximately 0.15. All comparisons of the UV spectra of pectins were carried out at the same initial concentration of pectin solutions - 4%.
Из табл. 4 видно, что оптимальная продолжительность диализа для пектиновых растворов составляет 24 ч; последующий диализ не приводит к существенному повышению оптической плотности растворов. From the table. 4 shows that the optimal dialysis duration for pectin solutions is 24 hours; subsequent dialysis does not lead to a significant increase in the optical density of solutions.
Как видно из табл. 5, наиболее благоприятной температурой для диализа является температура 38oC, при этом оптическая плотность диализатов максимальна. С повышением температуры оптическая плотность растворов падает, видимо, из-за разрушения пектинов.As can be seen from the table. 5, the most favorable temperature for dialysis is a temperature of 38 o C, while the optical density of the dialysates is maximum. With increasing temperature, the optical density of the solutions decreases, apparently due to the destruction of pectins.
Влияние электролитов на характер кривой титрования СП показано на фиг. 2. Влияние электролита (0,1 М раствора хлорида калия) на характер кривой потенциометрического титрования СП с помощью гидроксида кальция очевидно: если раствор СП имеет pH 3,45, то после добавления к нему 0,1 М раствора хлорида калия pH раствора СП становится 3,38. Кривая потенциометрического титрования СП в присутствии хлорида калия (кривая 1) более вертикальна, чем без электролита. Хлорид калия разрушает водородные связи в пектиновой макромолекуле между цепями полигалактуроновых кислот (что подтверждается повышением кислотности), уменьшая их "сцепляемость", это приводит к улучшению проходимости пектинов через мембрану. The effect of electrolytes on the nature of the SP titration curve is shown in FIG. 2. The effect of the electrolyte (0.1 M potassium chloride solution) on the nature of the curve of potentiometric titration of SP with calcium hydroxide is obvious: if the SP solution has a pH of 3.45, then after adding a 0.1 M potassium chloride solution to it, the pH of the SP solution becomes 3.38. The curve of potentiometric titration of SP in the presence of potassium chloride (curve 1) is more vertical than without electrolyte. Potassium chloride destroys the hydrogen bonds in the pectin macromolecule between the chains of polygalacturonic acids (as evidenced by an increase in acidity), reducing their "adhesion", this leads to an improvement in the permeability of pectins through the membrane.
Пример 1. 2 г сухого свекловичного пектина (производство Краснодарского пектинового завода) помещают в плоскодонную колбу вместимостью 1 л, приливают 50 мл 0,5%-ного раствора цитрата аммония и перемешивают содержимое колбы на магнитной мешалке в течение 1 ч при комнатной температуре. Раствору дают отстояться в течение 5 мин, после чего раствор процеживают через тройной слой марли. К процеженному раствору приливают 25 мл 0,1 М раствора хлорида калия, перемешивают раствор и помещают его в диализную трубку длиной 15 см, конец которой закрыт целлофановой мембраной с помощью резинок. Рабочая площадь трубки составляет 9 см2, толщина мембраны 0,4 нм. Диализную трубку помещают в стакан, в котором находится 100 мл 0,1 М раствора хлорида калия. Стакан и трубку с диализуемым раствором помещают в термостат и выдерживают в течение 24 ч при температуре 38oC. Затем полученный диализат (содержимое наружного стакана) упаривают под вакуумом до 1/3 от первоначального объема, обрабатывают 96%-ным этанолом в соотношении концентрат : этанол 1 : 3. Выпавший осадок пектинов фильтруют под вакуумом, промывают дважды на фильтре 90%-ным этанолом (по 30 мл). Осадок пектинов (примерно 0,5 г) переносят в колбу вместимостью 100 мл, приливают 10 мл воды (примерно 5%-ный раствор пектина), добавляют при перемешивании примерно 5 мл 5%-ного раствора гидрата аммиака, pH смеси составляет 10,5 (показатель pH определяют потенциометрически). Колбу со смесью закрывают плотной крышкой и выдерживают смесь 2 ч при комнатной температуре. При этом происходит деметоксилирование пектинов, раствор приобретает форму желе. Далее полученное желе постепенно подкисляют разбавленным (8,3%) раствором хлороводородной кислоты до pH около 2 и оставляют смесь на 1 ч при температуре 18oC в термостате. При этом выпадает осадок низкометоксилированного и деминерализованного свекловичного пектина, который фильтруют через бумажный фильтр, промывают на фильтре 90%-ным этанолом (дважды по 30 мл), сушат в сушильном шкафу при 60oC.Example 1. 2 g of dry beet pectin (production of the Krasnodar Pectin Plant) is placed in a flat-bottomed flask with a capacity of 1 l, 50 ml of a 0.5% solution of ammonium citrate are added and the contents of the flask are stirred on a magnetic stirrer for 1 h at room temperature. The solution was allowed to stand for 5 minutes, after which the solution was filtered through a triple layer of gauze. 25 ml of a 0.1 M potassium chloride solution are poured into the filtered solution, the solution is stirred and placed in a 15 cm long dialysis tube, the end of which is closed with a cellophane membrane using rubber bands. The working area of the tube is 9 cm 2 , the membrane thickness is 0.4 nm. The dialysis tube is placed in a beaker containing 100 ml of a 0.1 M potassium chloride solution. The glass and tube with the dialyzable solution are placed in a thermostat and incubated for 24 hours at a temperature of 38 o C. Then the resulting dialysate (the contents of the outer glass) is evaporated under vacuum to 1/3 of the original volume, treated with 96% ethanol in the ratio of concentrate: ethanol 1: 3. The precipitated pectin precipitate was filtered under vacuum, washed twice on the filter with 90% ethanol (30 ml each). A precipitate of pectins (about 0.5 g) is transferred to a 100 ml flask, 10 ml of water are added (about 5% pectin solution), about 5 ml of a 5% solution of ammonia hydrate are added with stirring, the pH of the mixture is 10.5 (pH is determined potentiometrically). The flask with the mixture was closed with a tight lid and the mixture was kept for 2 hours at room temperature. In this case, pectins are demethoxylated, the solution takes the form of jelly. Next, the obtained jelly is gradually acidified with a diluted (8.3%) solution of hydrochloric acid to a pH of about 2 and the mixture is left for 1 h at a temperature of 18 o C in a thermostat. This precipitates low methoxylated and demineralized beet pectin, which is filtered through a paper filter, washed on the filter with 90% ethanol (twice 30 ml), dried in an oven at 60 o C.
Содержание свободных карбоксильных групп очищенного свекловичного пектина составило 19,21%. КС составило 1525 мг Pb2+/г.The content of free carboxyl groups of purified beet pectin was 19.21%. The CS was 1525 mg of Pb 2+ / g.
Целевой продукт - очищенный СП - представляет собой порошок коричневого цвета с блеском, без запаха, с кисловатым вкусом, трудно растворим в воде. The target product - purified SP - is a brown powder with a gloss, odorless, with a sour taste, it is difficult to dissolve in water.
Пример 2 (сравнительный). 2 г сухого свекловичного пектина помещают в плоскодонную колбу вместимостью 1 л, приливают 30 мл 0,2%-ного раствора цитрата аммония и перемешивают содержимое колбы на магнитной мешалке в течение 1 ч при комнатной температуре. Раствору дают отстояться в течение 5 мин, после чего раствор процеживают через тройной слой марли. К процеженному раствору приливают 25 мл 0,1 М раствора хлорида калия, перемешивают раствор и помещают его в диализную трубку, которую помещают в стакан, в котором находится 100 мл 0,1 М раствора хлорида калия. Стакан и трубку с диализуемым раствором помещают в термостат и выдерживают в течение 10 ч при температуре 30oC. Затем полученный диализат упаривают под вакуумом до 1/3 от первоначального объема, обрабатывают 96%-ным этанолом в соотношении концентрат : этанол - 1 : 3. Выпавший осадок пектинов фильтруют под вакуумом, промывают дважды на фильтре 90%-ным этанолом (по 30 мл). Осадок пектинов (примерно 0,4 г) переносят в колбу вместимостью 100 мл, приливают 8 мл воды (примерно 5%-ный раствор пектина); далее поступают так, как описано в примере 1.Example 2 (comparative). 2 g of dry beet pectin is placed in a flat-bottomed flask with a capacity of 1 l, 30 ml of a 0.2% solution of ammonium citrate are added, and the contents of the flask are stirred on a magnetic stirrer for 1 h at room temperature. The solution was allowed to stand for 5 minutes, after which the solution was filtered through a triple layer of gauze. 25 ml of a 0.1 M potassium chloride solution are poured into the filtered solution, the solution is mixed and placed in a dialysis tube, which is placed in a glass in which 100 ml of a 0.1 M potassium chloride solution is located. The glass and tube with the dialyzed solution are placed in a thermostat and incubated for 10 hours at a temperature of 30 o C. Then the resulting dialysate is evaporated in vacuo to 1/3 of the original volume, treated with 96% ethanol in the ratio of concentrate: ethanol - 1: 3 The precipitated pectin precipitate is filtered under vacuum, washed twice on the filter with 90% ethanol (30 ml each). A precipitate of pectins (approximately 0.4 g) is transferred to a 100 ml flask, 8 ml of water are added (approximately 5% pectin solution); then proceed as described in example 1.
Содержание свободных карбоксильных групп очищенного свекловичного пектина составило 16,85%. КС составило 1475 мг Pb2+/г.The content of free carboxyl groups of purified beet pectin was 16.85%. The CS was 1475 mg of Pb 2+ / g.
Пример 3 (сравнительный). 2 г сухого свекловичного пектина помещают в плоскодонную колбу вместимостью 1 л, приливают 60 мл 1,0%-ного раствора цитрата аммония и перемешивают содержимое колбы на магнитной мешалке в течение 1 ч при комнатной температуре. Раствору дают отстояться в течение 5 мин, после чего раствор процеживают через тройной слой марли. К процеженному раствору приливают 25 мл 0,1 М раствора хлорида калия, перемешивают раствор и помещают его в диализную трубку, которую помещают в стакан, где находится 100 мл 0,1 М раствора хлорида калия. Стакан и трубку с диализуемым раствором помещают в термостат и выдерживают в течение 48 ч при температуре 40oC. Затем полученный диализат упаривают под вакуумом до 1/3 от первоначального объема, обрабатывают 96%-ным этанолом в соотношении концентрат : этанол - 1 : 3. Выпавший осадок пектинов фильтруют под вакуумом, промывают дважды на фильтре 90%-ным этанолом (по 30 мл). Осадок пектинов (примерно 0,55 г) переносят в колбу вместимостью 100 мл, приливают 11 мл воды (примерно 5%-ный раствор пектина); далее поступают также, как описано в примере 1.Example 3 (comparative). 2 g of dry beet pectin is placed in a 1 L flat-bottomed flask, 60 ml of a 1.0% solution of ammonium citrate are added, and the contents of the flask are stirred on a magnetic stirrer for 1 h at room temperature. The solution was allowed to stand for 5 minutes, after which the solution was filtered through a triple layer of gauze. 25 ml of a 0.1 M potassium chloride solution are poured to the filtered solution, the solution is mixed and placed in a dialysis tube, which is placed in a glass where 100 ml of a 0.1 M potassium chloride solution is located. The glass and tube with the dialyzable solution are placed in a thermostat and incubated for 48 hours at a temperature of 40 o C. Then the resulting dialysate is evaporated in vacuo to 1/3 of the original volume, treated with 96% ethanol in the ratio of concentrate: ethanol - 1: 3 The precipitated pectin precipitate is filtered under vacuum, washed twice on the filter with 90% ethanol (30 ml each). The precipitate of pectins (approximately 0.55 g) is transferred to a flask with a capacity of 100 ml, poured 11 ml of water (approximately 5% pectin solution); further proceed also as described in example 1.
Содержание свободных карбоксильных групп очищенного свекловичного пектина составило 19,22%. КС составило 1528 мг Pb2+/г.The content of free carboxyl groups of purified beet pectin was 19.22%. The CS was 1528 mg Pb 2+ / g.
Пример 4. 2 г сухого цитрусового пектина (производство Майкопского экспериментально-производственного объединения "Коопкондитерпром") помещают в плоскодонную колбу вместимостью 1 л, приливают 50 мл 0,5%-ного раствора цитрата аммония и далее поступают так, как описано в примере 1. Example 4. 2 g of dry citrus pectin (manufactured by the Maikop experimental production association "Koopkonditerprom") is placed in a flat-bottomed flask with a capacity of 1 l, 50 ml of a 0.5% solution of ammonium citrate are added, and then proceed as described in example 1.
Содержание свободных карбоксильных групп очищенного цитрусового пектина составило 17,05%. КС составило 1215 мг Pb2+/г.The content of free carboxyl groups of purified citrus pectin was 17.05%. The CS was 1215 mg of Pb 2+ / g.
Пример 5. 2 г сухого яблочного пектина (производство Бендеровского АПОЛ "Варница") помещают в плоскодонную колбу вместимостью 1 л, приливают 50 мл 0,5%-ного раствора цитрата аммония и далее поступают так, как описано в примере 1. Example 5. 2 g of dry apple pectin (manufactured by Bender APO "Varnitsa") is placed in a flat-bottomed flask with a capacity of 1 l, 50 ml of a 0.5% solution of ammonium citrate are added, and then proceed as described in example 1.
Содержание свободных карбоксильных групп очищенного яблочного пектина составило 18,08%. КС составило 1078 мг Pb2+/г.The content of free carboxyl groups of purified apple pectin was 18.08%. The CS was 1078 mg of Pb 2+ / g.
Применение предложенного способа позволит:
1. Очистить свекловичный пектин от флавоноидных примесей, характеризующихся максимумом поглощения при 330 нм. Кроме того, для всех пектинов удалось добиться более четких максимумов поглощения.Application of the proposed method will allow:
1. To clear beet pectin from flavonoid impurities, characterized by a maximum absorption at 330 nm. In addition, clearer absorption maxima were achieved for all pectins.
2. Повысить степень чистоты пектинов. Оптическая плотность пектинов, полученных заявляемым способом, возросла на 0,1 для ЦП, на 0,15 для ЯП, на 0,3 для СП по сравнению с пектинами, полученными по способу-прототипу. Кроме того, повысилось содержание свободных карбоксильных групп пектинов: в 1,3 раза для СП (по заявляемому способу - 19,21%, по прототипу - 14,78%); в 1,1 раза для ЦП (по заявляемому способу - 17,05%, по прототипу - 15,64%); в 1,15 раза для ЯП (по заявляемому способу - 18,08%, по прототипу - 15,72%). 2. Increase the purity of pectins. The optical density of the pectins obtained by the claimed method increased by 0.1 for the CPU, by 0.15 for the PL, by 0.3 for the SP in comparison with the pectins obtained by the prototype method. In addition, the content of free carboxyl groups of pectins increased: 1.3 times for SP (according to the present method - 19.21%, according to the prototype - 14.78%); 1.1 times for the CPU (by the present method - 17.05%, by the prototype - 15.64%); 1.15 times for nuclear weapons (according to the claimed method - 18.08%, according to the prototype - 15.72%).
3. Повысить комплексообразующую способность пектинов (мг Pb2+/г): в 1,5 раза для СП (по заявляемому способу - 1525, по прототипу - 1017)%; в 1,3 раза для ЦП (по заявляемому способу - 1215, по прототипу - 923); в 1,33 раза для ЯП (по заявляемому способу - 1078, по прототипу - 811).3. To increase the complexing ability of pectins (mg Pb 2+ / g): 1.5 times for SP (according to the present method - 1525, according to the prototype - 1017)%; 1.3 times for the CPU (according to the claimed method - 1215, according to the prototype - 923); 1.33 times for nuclear weapons (according to the claimed method - 1078, according to the prototype - 811).
4. Получить пектины для медицинских целей, которые можно использовать как эффективные средства для связывания и выведения из организма металлов. При этом пектины в отличие от синтетических антидотов биологически совместимы с организмом человека, не оказывают побочного действия. 4. Obtain pectins for medical purposes, which can be used as effective means for binding and excretion of metals from the body. At the same time, pectins, unlike synthetic antidotes, are biologically compatible with the human body and do not have side effects.
Источники информации
1. Карпович Н.С., Донченко Л.В., Нелина В.В., Компанцев В.А., Мельник Г. С. Пектин. Производство и применение. - Киев: Урожай, 1989, с. 33 - 39, 42 - 45.Sources of information
1. Karpovich N. S., Donchenko L. V., Nelina V. V., Kompantsev V. A., Miller G. S. Pectin. Production and application. - Kiev: Harvest, 1989, p. 33 - 39, 42 - 45.
2. Патент РФ N 2004549, кл. C 08 B 37/06. Способ получения пектина. Кайшева Н.Ш., Компанцев В.А., Щербак С.Н. и др. 2. RF patent N 2004549, class. C 08 B 37/06. The method of producing pectin. Kaisheva N.Sh., Kompantsev V.A., Scherbak S.N. and etc.
3. Рубановская Л.А. Влияние пектина на всасывание радиоактивного стронция из желудочно-кишечного тракта в эксперименте. Гигиена труда и профессиональные заболевания. - М., 1960. - N 3. - С. 39. 3. Rubanovskaya L.A. The effect of pectin on the absorption of radioactive strontium from the gastrointestinal tract in the experiment. Occupational health and occupational diseases. - M., 1960. - N 3. - S. 39.
4. Беззубов А.Д., Хатина А.И. О применении пектина как профилактического средства при интоксикации стронцием. Гигиена труда и профессиональные заболевания. - М., 1961. - N 4. - С. 39. 4. Bezzubov A.D., Khatina A.I. On the use of pectin as a prophylactic in case of strontium intoxication. Occupational health and occupational diseases. - M., 1961. - N 4. - S. 39.
5. А. с. N 1829611, кл. G 01 N 21/33. Способ качественного определения пектинов. Кайшева Н.Ш., Компанцев В.А., Крикова Н.И., Щербак С.Н. 5. A. p. N 1829611, cl. G 01 N 21/33. A method for the qualitative determination of pectins. Kaisheva N.Sh., Kompantsev V.A., Krikova N.I., Shcherbak S.N.
Claims (1)
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| RU96103099A RU2116075C1 (en) | 1996-02-16 | 1996-02-16 | Method of medicinal purified pectin preparing |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| RU96103099A RU2116075C1 (en) | 1996-02-16 | 1996-02-16 | Method of medicinal purified pectin preparing |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| RU96103099A RU96103099A (en) | 1998-05-20 |
| RU2116075C1 true RU2116075C1 (en) | 1998-07-27 |
Family
ID=20177036
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| RU96103099A RU2116075C1 (en) | 1996-02-16 | 1996-02-16 | Method of medicinal purified pectin preparing |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| RU (1) | RU2116075C1 (en) |
Cited By (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2147438C1 (en) * | 1998-08-24 | 2000-04-20 | Потиевский Эмиль Григорьевич | Method for stabilizing soluble state and antibacterial activity of pectin |
| US7833558B2 (en) | 2003-07-07 | 2010-11-16 | Kmc Kartoffelmelcentralen Amba | Method for preparing fibre-containing pectin and products and uses thereof |
| CN116925257A (en) * | 2023-07-20 | 2023-10-24 | 华南理工大学 | Method for preparing low methoxy orange peel pectin using regional temperature control and electrochemistry at both anode and anode |
Citations (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2004549C1 (en) * | 1991-07-22 | 1993-12-15 | П тигорский фармацевтический институт | Method of pectin production |
| RU2073014C1 (en) * | 1994-11-28 | 1997-02-10 | Московская государственная академия пищевых производств | Method of extraction of pectin substances from the vegetable raw |
-
1996
- 1996-02-16 RU RU96103099A patent/RU2116075C1/en active
Patent Citations (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2004549C1 (en) * | 1991-07-22 | 1993-12-15 | П тигорский фармацевтический институт | Method of pectin production |
| RU2073014C1 (en) * | 1994-11-28 | 1997-02-10 | Московская государственная академия пищевых производств | Method of extraction of pectin substances from the vegetable raw |
Non-Patent Citations (1)
| Title |
|---|
| Карпович Н.С., и др. Производство и применение. - Киев: Урожай, 1989, с.33 - 39, 42 - 50. * |
Cited By (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2147438C1 (en) * | 1998-08-24 | 2000-04-20 | Потиевский Эмиль Григорьевич | Method for stabilizing soluble state and antibacterial activity of pectin |
| US7833558B2 (en) | 2003-07-07 | 2010-11-16 | Kmc Kartoffelmelcentralen Amba | Method for preparing fibre-containing pectin and products and uses thereof |
| CN116925257A (en) * | 2023-07-20 | 2023-10-24 | 华南理工大学 | Method for preparing low methoxy orange peel pectin using regional temperature control and electrochemistry at both anode and anode |
| CN116925257B (en) * | 2023-07-20 | 2024-04-05 | 华南理工大学 | Method for preparing low-methoxy orange peel pectin by regional temperature control and coordinated electrochemical positive and negative electrodes |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| RU2198548C1 (en) | Method of producing extract from plants stevia rebaudiana bertoni | |
| JPS5828246A (en) | Preparation of stevioside | |
| RU2131252C1 (en) | Method of preparing inulin from jerusalem artichoke tubers for medicinal and food aims (variants) | |
| DK159824B (en) | ANALOGY PROCEDURE FOR THE PREPARATION OF SUCCINYLFERROPROTEIN | |
| RU2080081C1 (en) | Method of preparing the dry pectin extract from plant raw and a method of preparing pectin from plant raw | |
| RU2060818C1 (en) | Process for preparing melanine-containing phytosorbent, and melanine-containing phytosorbent | |
| CN101089021A (en) | Method for separating and extracting hyaluronic acid from microbial fermentation broth | |
| RU2116075C1 (en) | Method of medicinal purified pectin preparing | |
| US3236833A (en) | Method of extracting carrageenan in the presence of hydrogen peroxide | |
| JPS60160865A (en) | Production of food having salt reducing action | |
| CN112029015A (en) | Production and purification process of high-purity low-molecular-weight heparin sodium | |
| CN111171170A (en) | Method for extracting scindapsus aureus flower polysaccharide | |
| CN118772310A (en) | Preparation method and application of Eucheuma polysaccharide | |
| CN113651899B (en) | Ganoderma lucidum extract with low chroma and high polysaccharide content and preparation method thereof | |
| RU2613294C1 (en) | Method for producing melanin from sunflower husks | |
| RU2194525C1 (en) | Method for obtaining biologically active substances out of laminaria for medicinal purposes | |
| Eis et al. | Floc in carbonated beverages | |
| CN113845564A (en) | Rosa roxburghii antioxidant oligopeptide, preparation method and application thereof, and antioxidant product | |
| RU2200424C2 (en) | Method for obtaining pectin-containing product out of sea grasses of zosteraceae species | |
| JP2000069946A (en) | Extract of bamboo grass and its production | |
| JPH0648950A (en) | Antiulcer agent | |
| RU2197249C1 (en) | Method of medicinal purified sodium alginate preparing | |
| RU2004549C1 (en) | Method of pectin production | |
| Roboz et al. | Chemical study of beet pectin | |
| CN116874628B (en) | Preparation method and application of sargassum fusiforme polysaccharide-iron complex |