RU2115678C1 - Method of lycopin preparing - Google Patents
Method of lycopin preparing Download PDFInfo
- Publication number
- RU2115678C1 RU2115678C1 RU97118317A RU97118317A RU2115678C1 RU 2115678 C1 RU2115678 C1 RU 2115678C1 RU 97118317 A RU97118317 A RU 97118317A RU 97118317 A RU97118317 A RU 97118317A RU 2115678 C1 RU2115678 C1 RU 2115678C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- lycopene
- sunflower oil
- amount
- bkmf
- medium
- Prior art date
Links
Landscapes
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
Abstract
Description
Изобретение относится к биотехнологии, в частности к способу получения ликопина. The invention relates to biotechnology, in particular to a method for producing lycopene.
В последние годы в научной литературе появился новый термин "антиоксидантные витамины" [1]. В первую очередь к ним относятся каротиноиды - природные ярко окрашенные пигменты, образуемые растениями, водорослями, прокариотами (бактериями) и низшими эукариотами (грибами). Среди этих каротиноидов, представляющих собой C10-полиены, наибольшее внимание в настоящее время привлекает ликопин, имеющий темно-розово-фиолетовое окрашивание.In recent years, the new term "antioxidant vitamins" has appeared in the scientific literature [1]. First of all, these include carotenoids - natural brightly colored pigments formed by plants, algae, prokaryotes (bacteria) and lower eukaryotes (fungi). Among these carotenoids, which are C 10 polyenes, the greatest attention is currently attracted by lycopene, which has a dark pink-purple color.
Основным свойством ликопина, вызывающим повышенный интерес, является его способность выступать в качестве очень мощного антиоксиданта, тормозящего развитие процесса перекисного окисления липидов. Это свойство ликопина позволило в последние годы найти ему широкое применение в медицине. Ликопин в виде различных лекарственных форм используют как профилактическое радиопротекторное средство [2], антиканцерогенный препарат, который применяют в комплексной профилактике ряда раковых заболеваний (рак простаты, легких, желудка), антисклеротическое средство при лечении атеросклероза, катаракты, ишемической болезни сердца. The main property of lycopene, causing increased interest, is its ability to act as a very powerful antioxidant, inhibiting the development of lipid peroxidation. This property of lycopene in recent years has allowed him to find widespread use in medicine. Lycopene in the form of various dosage forms is used as a prophylactic radioprotective agent [2], an anticarcinogenic drug that is used in the complex prevention of a number of cancers (prostate, lung, stomach cancer), an antisclerotic agent in the treatment of atherosclerosis, cataracts, coronary heart disease.
Благоприятный эффект ликопина показан при использовании его как адаптогена при действии неблагоприятных климатических условий и смене часовых поясов. The beneficial effect of lycopene is shown when using it as an adaptogen under adverse climatic conditions and changing time zones.
Помимо значения ликопина как перспективного медицинского препарата, этот пигмент предполагается все шире использовать как краситель для пищевых изделий и в парфюмерии. Добавление ликопина в кондитерские изделия, к растительным маслам, к мазям и кремам обеспечивает не только окрашивающий эффект, но и оказывает оздоровительное действие. In addition to the importance of lycopene as a promising medical product, this pigment is supposed to be increasingly used as a dye for food products and perfumes. Adding lycopene to confectionery, to vegetable oils, to ointments and creams provides not only a coloring effect, but also has a healing effect.
До сих пор основным источником получения ликопина были растения, в частности специально отселекционированные сорта томатов. Однако, биотехнологии с использованием в качестве продуцентов ликопина низших грибов, обладают значительно большей эффективностью. В этом случае производству не грозит сезонность и угроза потери урожая от действия неблагоприятных погодных факторов или патогенных микромицетов. Кроме того, микробиологические производства обладают высокой и неограниченной товароемкостью, а также дают возможность получать ликопин в виде all-trans-формы [3]. Until now, the main source of lycopene was plants, in particular specially selected varieties of tomatoes. However, biotechnologies using lower fungi as producers of lycopene are significantly more effective. In this case, production is not threatened by seasonality and the threat of crop loss due to adverse weather factors or pathogenic micromycetes. In addition, microbiological industries have a high and unlimited commodity intensity, and also make it possible to obtain lycopene in the form of an all-trans form [3].
Известны несколько способов получения ликопина с использованием в качестве продуцентов микроскопических грибов, в частности мукоровых гетероталличных (+) и (-) штаммов. В качестве стимуляторов синтеза ликопина используют гетероциклические азотсодержащие соединения - пиридин, имидазол, морфолин и их производные [4-6]. Several methods are known for producing lycopene using microscopic fungi as producers, in particular, mucor heterotallic (+) and (-) strains. Heterocyclic nitrogen-containing compounds — pyridine, imidazole, morpholine, and their derivatives are used as stimulators of lycopene synthesis [4-6].
Наиболее близким по технической сущности и достигаемому эффекту является способ получения ликопина [7], согласно которому продуцентами синтеза ликопина являются A-732-3 (+) и A-732-3 (-) штаммы Blakeslea trispora. Споровый материал выращивают на косячках картофельно-морковной среды в течение 6-7 сут при t=28-29oC. Штаммы (+) и (-) Blakeslea trispora отдельно выращивают при t=28oC на гидролизной среде, содержащей 47 г соевой муки и 23 г кукурузной муки (на 1 л воды), далее вносят 2,8 мл конц. H2SO4 и стерилизуют при 1 атм. 1,5 ч. После стерилизации устанавливают pH 6,7-6,8 и добавляют 0,5 г KH2PO4.The closest in technical essence and the achieved effect is a method for producing lycopene [7], according to which the producers of lycopene synthesis are A-732-3 (+) and A-732-3 (-) strains of Blakeslea trispora. Spore material is grown on shoals of potato-carrot medium for 6-7 days at t = 28-29 o C. Strains (+) and (-) Blakeslea trispora are separately grown at t = 28 o C on a hydrolysis medium containing 47 g of soybean flour and 23 g of corn flour (per 1 liter of water), then add 2.8 ml of conc. H 2 SO 4 and sterilized at 1 ATM. 1.5 hours. After sterilization, the pH is adjusted to 6.7-6.8 and 0.5 g of KH 2 PO 4 is added.
Двухсуточный, разбитый на отдельные фрагменты мицелий (+) и (-) штаммов в количестве 20% по объему помещают в негидролизованную мучную среду (кукурузно-соевую в соотношении 1:9 соответственно с 4% подсолнечного масла), добавляют аминометил-замещенные пиридины, в частности 2-амино-6-метилпиридин, в концентрации 0,005% и выращивают 72 ч на качалке. Выход ликопина, согласно спектрофотометрическому определению составляет 0,7 г/л [8]. Для получения кристаллического ликопина проводят экстракцию биомассы горячим (85oC) подсолнечным маслом. После кристаллизации при охлаждении промывают препарат этанолом. Дальнейшая очистка ведется перекристаллизацией из толуола кипящим абсолютным этанолом. Получают 97% ликопин. Для получения ликопина, не содержащего примесей других каротиноидов, используют колоночную хроматографию на окиси алюминия.Two-day, divided into separate fragments of mycelium (+) and (-) strains in an amount of 20% by volume are placed in non-hydrolyzed flour medium (corn-soybean in a ratio of 1: 9, respectively, with 4% of sunflower oil), aminomethyl-substituted pyridines are added to in particular 2-amino-6-methylpyridine, at a concentration of 0.005% and grown for 72 hours on a rocking chair. The yield of lycopene, according to spectrophotometric determination, is 0.7 g / l [8]. To obtain crystalline lycopene, biomass is extracted with hot (85 o C) sunflower oil. After crystallization, the preparation is washed with ethanol while cooling. Further purification is carried out by recrystallization from toluene with boiling absolute ethanol. Get 97% lycopene. To obtain lycopene, not containing impurities of other carotenoids, column chromatography on alumina is used.
Основным недостатком данного способа является низкий выход ликопина, что отрицательно сказывается на рентабельности производства. The main disadvantage of this method is the low yield of lycopene, which negatively affects the profitability of production.
Поэтому целью настоящего изобретения является повышение выхода ликопина и расширение числа продуцентов. Therefore, the aim of the present invention is to increase the yield of lycopene and the expansion of the number of producers.
Сущность предлагаемого изобретения заключается в том, что мицелиальные грибы, относящиеся к порядку Phecomycetes, семейству Choanephoraceae - Blakeslea trispora T(+) и T(-) штаммы [9] BKMF, 904(+), 903(+), 812(+) выращивают раздельно на косяках картофельно-морковного агара в течение 10-14 сут при t= 24oC. В этом случае споровым посевным материалом являются только споры, образованные в спорангиолях (СП-споры). В качестве инокулята используют 48-50-часовые мицелии (+) и (-) штаммов в соотношении 1:7 соответственно и количестве 20% по объему. Выращивание ведут на кукурузно-соевой среде с добавлением 5% подсолнечного, кукурузного или хлопкового масла и 20% 7 Б сусла, создавая более аэробные условия (отношение объема к объему колбы - 1: 8) в течение 80-96 ч. Стимулятор ликопинообразования - 2-амино-6-метилпиридин вносят с посевным материалом при 0 ч. Выход ликопина - 1,3-1,5 г/л.The essence of the invention lies in the fact that the mycelial fungi belonging to the order Phecomycetes, the family Choanephoraceae - Blakeslea trispora T (+) and T (-) strains [9] BKMF, 904 (+), 903 (+), 812 (+) grown separately on the jambs of potato-carrot agar for 10-14 days at t = 24 o C. In this case, only spores formed in sporangiols (SP-spores) are spore seeds. As an inoculum, 48-50-hour mycelia of (+) and (-) strains are used in a ratio of 1: 7, respectively, and an amount of 20% by volume. Cultivation is carried out on a corn-soybean medium with the addition of 5% sunflower, corn or cottonseed oil and 20% 7 B wort, creating more aerobic conditions (volume to volume ratio of the flask - 1: 8) for 80-96 hours. Lycopene formation stimulator - 2 -amino-6-methylpyridine is introduced with seed at 0 h. The yield of lycopene is 1.3-1.5 g / l.
Примеры конкретного выполнения способа получения ликопина. Examples of specific performance of the method of producing lycopene.
Пример 1. Подготовка спорового посевного материала осуществляется следующим образом. На косяках картофельно-морковного агара раздельно выращивают (-)T штамм и (+) 812 BKMF штамм в течение 7 сут при t=24oC. В этих условиях получают однородный споровый материал, представленный только СП-спорами. СП-споры используют для получения (+) и (-) мицелиев. В качестве инокулята используют 2-суточные мицелии, которые вносят в ферментационную колбу в соотношении 1: 7 и количестве 20% по объему среды. Ферментацию проводят на кукурузно-соевой среде с добавлением 20% 7 Б сусла, 5% подсолнечного масла и 2-амино-6-метилпиридина (0,005%) в течение 90 ч. Для ферментации используют соотношение объема среды к объему колбы 1:8 соответственно. Выход ликопина составляет 1,5 г/л среды.Example 1. The preparation of spore seed is as follows. On jambs of potato-carrot agar, the (-) T strain and the (+) 812 BKMF strain are separately grown for 7 days at t = 24 ° C. Under these conditions, a homogeneous spore material represented only by SP spores is obtained. SP spores are used to produce (+) and (-) mycelia. As an inoculum, 2-day-old mycelia are used, which are introduced into the fermentation flask in a ratio of 1: 7 and an amount of 20% by volume of the medium. Fermentation is carried out on a corn-soybean medium with the addition of 20% 7 B wort, 5% sunflower oil and 2-amino-6-methylpyridine (0.005%) for 90 hours. For fermentation, the ratio of medium volume to volume of flask is 1: 8, respectively. The yield of lycopene is 1.5 g / l of medium.
Пример 2. То же, что в примере 1, но в качестве спорового посевного материала используют стилоспоры (+) и (-) T штаммов B.trispora, образующиеся при выращивании на КМА при 29oC. Выход ликопина составляет 0,9 г/л среды.Example 2. The same as in example 1, but as a spore inoculum using stylospores (+) and (-) T strains of B.trispora formed when grown on KMA at 29 o C. The yield of lycopene is 0.9 g / l Wednesday.
Пример 3. То же, что в примере 1, но соотношение посевных (+) и (-) мицелиев составляет 1:9. Выход ликопина составляет 1,2 г/л среды. Example 3. The same as in example 1, but the ratio of inoculum (+) and (-) mycelia is 1: 9. The output of lycopene is 1.2 g / l of medium.
Пример 4. То же, что в примере 1, но используют среду без добавления 20% 7 Б сусла. Выход ликопина составляет 1,3 г/л среды. Example 4. The same as in example 1, but using medium without adding 20% 7 B wort. The yield of lycopene is 1.3 g / l of medium.
Пример 5. То же, что в примере 1, но используют среду, содержащую 4% подсолнечного масла. Выход ликопина составляет 1,25 г/л среды. Example 5. The same as in example 1, but using a medium containing 4% sunflower oil. The yield of lycopene is 1.25 g / l of medium.
Пример 6. То же, что в примере 1, но ферментацию ведут 72-74 ч. Выход ликопина составляет 1,1 г/л среды. Example 6. The same as in example 1, but the fermentation is 72-74 hours. The yield of lycopene is 1.1 g / l of medium.
Пример 7. То же, что в примере 1, но отношение объема среды к объему колбы составляет 1:5. Выход ликопина составляет 1,0 г/л среды. Example 7. The same as in example 1, but the ratio of the volume of the medium to the volume of the flask is 1: 5. The output of lycopene is 1.0 g / l of medium.
Пример 8. То же, что в примере 1, но в качестве продуцентов ликопина используют (-)T и (+) 904 штаммы B.trispora. Выход ликопина составляет 1,3 г/л среды. Example 8. The same as in example 1, but as producers of lycopene use (-) T and (+) 904 strains of B.trispora. The yield of lycopene is 1.3 g / l of medium.
Пример 9. То же, что в примере 1, но в качестве продуцентов ликопина используют (-)T и (+)T штаммы B.trispora. Выход ликопина составляет 1,4 г/л среды. Example 9. The same as in example 1, but as producers of lycopene use (-) T and (+) T strains of B.trispora. The yield of lycopene is 1.4 g / l of medium.
Пример 10. То же, что в примере 1, но в качестве продуцентов ликопина используют (-)T и (+)903 штаммы B.trispora. Выход ликопина составляет 1,3 г/л среды. Example 10. The same as in example 1, but (-) T and (+) 903 B.trispora strains are used as producers of lycopene. The yield of lycopene is 1.3 g / l of medium.
Таким образом, предлагаемый способ позволяет значительно повысить (практически в два раза) выход целевого продукта за счет нового способа получения спорового посевного материала, изменения сроков и условий культивирования, установления новых соотношений (+) и (-) мицелиев в посевном материале, расширения числа штаммов продуцентов. Thus, the proposed method can significantly increase (almost twice) the yield of the target product due to a new method for producing spore seed, changing the terms and conditions of cultivation, establishing new ratios of (+) and (-) mycelia in the seed, expanding the number of strains producers.
Литература
1. Капитонов А. Б., Пименов А.М. Каротиноиды как антиоксидантные модуляторы клеточного метаболизма.// Успехи современной биологии, 1966, т. 116, в. 2, с. 179-193.Literature
1. Kapitonov A. B., Pimenov A. M. Carotenoids as antioxidant modulators of cell metabolism. // Successes in modern biology, 1966, v. 116, c. 2, p. 179-193.
2. Капитонов А.Б., Пименов А.М., Обухова Л.К., Измайлов Д.М. Радиозащитная эффективность ликопина.// Радиационная биология. Радиоэкология, 1994, т. 34, N 3, с. 67. 2. Kapitonov A.B., Pimenov A.M., Obukhova L.K., Izmailov D.M. Radioprotective efficacy of lycopene. // Radiation biology. Radioecology, 1994, v. 34, No. 3, p. 67.
3. Porter I.W., Zscheile F.P.// Arch. Biochem. 1946, V. 10, N 1, p. 537. 3. Porter I.W., Zscheile F.P. // Arch. Biochem. 1946, V. 10, N 1, p. 537.
4. Ninet I. , Renaut J., Tissier R. Procede de production de lycopene. //Патент Франции, N 1.403.839, 1965. 4. Ninet I., Renaut J., Tissier R. Procede de production de lycopene. // French patent, N 1.403.839, 1965.
5. Ninet I., Renaut J., Tissier R. Activation of the Biosynthesis of Carotenoids by Blakeslea trispora.// Biotechnol. Bioengineering, 1969, v. 11, p. 1195-1210. 5. Ninet I., Renaut J., Tissier R. Activation of the Biosynthesis of Carotenoids by Blakeslea trispora.// Biotechnol. Bioengineering, 1969, v. 11, p. 1195-1210.
6. Феофилова Е. П. Каратиноиды грибов: биологические функции и практическое использование.// Прикладная биохимия и микробиология, 1994, т. 30, в. 2, с. 181-195. 6. Feofilova E. P. Mushroom caratinoids: biological functions and practical use. // Applied Biochemistry and Microbiology, 1994, v. 30, c. 2, p. 181-195.
7. Ивакин А.Ф. Феофилова Е.П., Киселева А.И., Гаврилов А.С., Панова Н.А. , Терешина В.М., Кардюкова Н.П. и др. Способ получения ликопина. //Положительное решение на заявку N 95104293 от 22.03.95 (прототип) Опубликовано в Бюл.Описаний, N 34 10.12.96 г. 7. Ivakin A.F. Feofilova E.P., Kiseleva A.I., Gavrilov A.S., Panova N.A. , Tereshina V.M., Kardyukova N.P. et al. A method for producing lycopene. // A positive decision on the application N 95104293 of 03.22.95 (prototype) Published in Bull. Description, N 34 12/10/96
8. Терешина В.М., Меморская А.С., Феофилова Е.П. Экспресс-метод определения содержания ликопина и β каротина, 1994, т. 63, в. 6, с. 1111-1116. 8. Tereshina V.M., Memorskaya A.S., Feofilova E.P. Express method for determining the content of lycopene and β carotene, 1994, v. 63, c. 6, p. 1111-1116.
9. Феофилова Е.П. Прогресс в области экспериментальной микологии как основа для создания современных биотехнологий.// Микробиология, 1997, т. 66, в. 3, с. 302-309. 9. Feofilova EP Progress in the field of experimental mycology as the basis for the creation of modern biotechnologies.// Microbiology, 1997, v. 66, c. 3, p. 302-309.
Claims (1)
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| RU97118317A RU2115678C1 (en) | 1997-11-13 | 1997-11-13 | Method of lycopin preparing |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| RU97118317A RU2115678C1 (en) | 1997-11-13 | 1997-11-13 | Method of lycopin preparing |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| RU2115678C1 true RU2115678C1 (en) | 1998-07-20 |
| RU97118317A RU97118317A (en) | 1998-12-10 |
Family
ID=20198719
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| RU97118317A RU2115678C1 (en) | 1997-11-13 | 1997-11-13 | Method of lycopin preparing |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| RU (1) | RU2115678C1 (en) |
Cited By (5)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2166868C1 (en) * | 2000-07-11 | 2001-05-20 | Институт микробиологии РАН | Method for obtaining biologically active product |
| EA002468B1 (en) * | 2001-03-30 | 2002-04-25 | Общество С Ограниченной Ответственностью "Био-3" | A pair of strains of heterothallic fungus "blakeslea trispora" vsb-129 (-) and vsb-130 (+), producing lycopene and process for lycopene production |
| RU2211862C2 (en) * | 2001-10-29 | 2003-09-10 | Федеральное государственное унитарное предприятие "Государственный научно-исследовательский институт генетики и селекции промышленных микроорганизмов" | (-)-strain of heterothallic phycomycetus blakeslea trispora producing lycopin in pair with different (+)-strains of blakeslea trispora and method for micribiological synthesis of lycopin |
| RU2245917C2 (en) * | 2002-12-15 | 2005-02-10 | Государственное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Оренбургский государственный университет" | Nutrient medium for submerged culturing fungus blakeslea trispora vkpm f-117 biomass as producer of carotene |
| RU2415916C1 (en) * | 2009-10-22 | 2011-04-10 | Учреждение Российской академии наук Центральная клиническая больница РАН | Method for preparing biologically active agent of lycopin |
-
1997
- 1997-11-13 RU RU97118317A patent/RU2115678C1/en active
Non-Patent Citations (1)
| Title |
|---|
| 2. Терешина В.М. и др. Экспресс-метод определения содержания ликопина и β- каротина. - Микробиология, 1994, т.63, вып.6, с.1111-1116. * |
Cited By (5)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2166868C1 (en) * | 2000-07-11 | 2001-05-20 | Институт микробиологии РАН | Method for obtaining biologically active product |
| EA002468B1 (en) * | 2001-03-30 | 2002-04-25 | Общество С Ограниченной Ответственностью "Био-3" | A pair of strains of heterothallic fungus "blakeslea trispora" vsb-129 (-) and vsb-130 (+), producing lycopene and process for lycopene production |
| RU2211862C2 (en) * | 2001-10-29 | 2003-09-10 | Федеральное государственное унитарное предприятие "Государственный научно-исследовательский институт генетики и селекции промышленных микроорганизмов" | (-)-strain of heterothallic phycomycetus blakeslea trispora producing lycopin in pair with different (+)-strains of blakeslea trispora and method for micribiological synthesis of lycopin |
| RU2245917C2 (en) * | 2002-12-15 | 2005-02-10 | Государственное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Оренбургский государственный университет" | Nutrient medium for submerged culturing fungus blakeslea trispora vkpm f-117 biomass as producer of carotene |
| RU2415916C1 (en) * | 2009-10-22 | 2011-04-10 | Учреждение Российской академии наук Центральная клиническая больница РАН | Method for preparing biologically active agent of lycopin |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| Kumar et al. | Microbial pigments: production and their applications in various industries | |
| Jeon et al. | Combined effects of light intensity and acetate concentration on the growth of unicellular microalga Haematococcus pluvialis | |
| Carvalho et al. | Production of Monascus biopigments: an overview | |
| Mukherjee et al. | Fungal pigments: an overview | |
| US20040077036A1 (en) | Process to produce astaxanthin from haematococcus biomass | |
| Zimermann et al. | Growth kinetics, phenolic compounds profile and pigments analysis of Galdieria sulphuraria cultivated in whey permeate in shake-flasks and stirred-tank bioreactor | |
| Maldonade et al. | Selection and characterization of carotenoid-producing yeasts from Campinas region, Brazil | |
| AU2004274750B2 (en) | Process for producing carotenoid compound | |
| RU2211862C2 (en) | (-)-strain of heterothallic phycomycetus blakeslea trispora producing lycopin in pair with different (+)-strains of blakeslea trispora and method for micribiological synthesis of lycopin | |
| CN101445815A (en) | Microbial synthesis method of gamma-linolenic acid oil | |
| JPS58212787A (en) | Substance ws6049, its preparation and anticancer agent containing the same as active constituent | |
| PETERSEN et al. | Production of cladospirone bisepoxide, a new fungal metabolite | |
| RU2115678C1 (en) | Method of lycopin preparing | |
| RU2102416C1 (en) | Method of lycopine producing | |
| JP2003502052A (en) | How to make lycopene | |
| US2865814A (en) | Method of making carotenes and related substances by mixed culture fermentation | |
| US20080293097A1 (en) | Biological Production of Zeaxanthin and Carotenoid Biosynthesis Control | |
| KR101797083B1 (en) | Novel Escherichia coli Ajou_CEM45W strain | |
| Kaewkam et al. | Utilization of Spirulina maxima to enhance yield and cordycepin content in Cordyceps militaris artificial cultivation. | |
| Shlomai et al. | Production of carotene stereoisomers by Phycomyces blakesleeanus | |
| CN113337432B (en) | Methylophilus for producing pyrroloquinoline quinone and application thereof | |
| RU2053301C1 (en) | Pair strains of heterothallic fungus blakeslea trispora f - 674(+) and f-551 (-) producing beta-carotene | |
| CA2105527A1 (en) | Process for producing .beta.-carotene | |
| KR20230041197A (en) | Composition for Anti-oxidant Comprising Fractions of Polyporus parvovarius Culture Extract, and Uses thereof | |
| Šovljanski et al. | Microorganisms as Biotechnological Source of Carotenoids |